ES2290117T3 - Inhibidores de proteina quinasa 2-indolina sustituida con pirrol. - Google Patents
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Abstract
Un compuesto de fórmula (I) o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo, en la que: R1 se selecciona entre hidrógeno, alquilo (C1-C4), -(CH2)rR16 y -C(O)NR8R9; R2 se selecciona entre hidrógeno, halógeno, arilo y -S(O)2NR13R14; R3 se selecciona entre hidrógeno, alquilo (C1-C4), alcoxi (C1-C4), arilo, heteroarilo, y -C(O)R15; R4 es hidrógeno; R5 se selecciona entre hidrógeno y alquilo (C1-C4); R6 es -C(O)R10; R7 se selecciona entre hidrógeno, alquilo (C1-C4) y arilo; R8 y R9 se seleccionan independientemente entre hidrógeno, alquilo y arilo; R10 es -N(R11)(CH2)nR12, en la que n es 1, 2 ó 3, R11 es hidrógeno y R12 se selecciona entre hidroxi, alcoxi (C1-C4), -C(O)R15, heteroarilo y -NR13R14; R13 y R14 se seleccionan independientemente entre el grupo constituido por hidrógeno. alquilo (C1-C4), cicloalquilo, arilo y heteroarilo; o R13 y R14 pueden combinarse para formar un grupo heterociclo; R15 se selecciona entre el grupo constituido por hidrógeno, hidroxi, alcoxi (C1-C4) y ariloxi; R16 se selecciona entre hidroxi y -C(O)R15; y r es 2 ó 3; y en el que: alcoxi se refiere a O-alquilo u O-cicloalquilo; ariloxi se refiere a O-arilo u O-heteroarilo; heteroarilo se refiere a un grupo de anillo monocíclico o condensado de 5 a 12 átomos en el anillo que contiene uno, dos o tres heteroátomos en el anillo seleccionados entre N, O o S, siendo los restantes átomos en el anillo C; grupo heterociclo se refiere a un radical cíclico saturado de 3 a 8 átomos en el anillo en el que uno o dos átomos en el anillo son heteroátomos seleccionados entre N, O o S(O)n donde n es un número entero de 0 a 2, siendo los restantes átomos en el anillo C, donde uno o dos átomos de C está opcionalmente sustituidos por un grupo carbonilo; los grupos alquilo, alcoxi y cicloalquilo están no sustituidos; los grupos arilo y heteroarilo están opcionalmente sustituidos con uno o dos sustituyentes seleccionados independientemente entre halo, alquilo (C1-C4), trihaloalquilo (C1-C4), hidroxi, mercapto, ciano, N-amido, mono- o dialquil (C1-C4)amino, carboxi y N-sulfonamido; el grupo heterociclo está opcionalmente sustituido con uno o dos sustituyentes seleccionados independientemente entre halo, -alquil (C1-C4), -alquil (C1-C4)-carboxi, -alquil (C1-C4)-éster, hidroxilo y mono- o dialquil (C1-C4)amino.
Description
Inhibidores de proteína quinasa
2-indolinona sustituida con pirrol.
Esta solicitud reivindica prioridad a tenor de
35 U.S.C. 119.(e) para las Solicitudes Provisionales de Estados
Unidos con Nº de Serie 60/182.710, presentada el 15 de febrero de
2000, 60/216.422 presentada el 6 de julio de 2000 y Nº de Serie
60/243.532, presentada el 27 de octubre de 2000, cuyas descripciones
se incorporan por referencia a este documento en su totalidad.
Campo de la
Invención
La presente invención se refiere a ciertos
compuestos 2-indolinona sustituidos con
3-pirrol que modulan la actividad de proteínas
quinasas ("PK"). Los compuestos de esta invención son por lo
tanto útiles para tratar trastornos relacionados con la actividad
anormal de PK. Se describen también composiciones farmacéuticas que
comprenden estos compuestos, procedimientos para tratar enfermedades
utilizando composiciones farmacéuticas que comprenden estos
compuestos y procedimientos de preparación de los mismos.
Estado de la
Técnica
Lo siguiente se ofrece únicamente como
información antecedente y no se admite que sea técnica anterior con
relación a la presente invención.
Las PK son enzimas que catalizan la
fosforilación de grupos hidroxi en restos tirosina, serina y
treonina de proteínas. Las consecuencias de esta actividad
aparentemente sencilla son asombrosas; crecimiento, diferenciación
y proliferación celular, es decir, prácticamente todos los aspectos
de la vida celular de una u otra manera dependen de la actividad de
PK. Adicionalmente, la actividad anormal de PK se ha relacionado con
una multitud de trastornos, que varían desde enfermedades
relativamente amenazantes para la vida tales como psoriasis hasta
enfermedades extremadamente virulentas tales como glioblastoma
(cáncer cerebral).
Las PK pueden dividirse convenientemente en dos
clases, las proteínas tirosina quinasas (PTK) y las
serina-treonina quinasas (STK).
Uno de los aspectos fundamentales de la
actividad de PTK es su implicación con los receptores del factor de
crecimiento. Los receptores del factor de crecimiento son proteínas
de la superficie celular. Cuando se unen mediante un ligando del
factor de crecimiento, los receptores del factor de crecimiento se
convierten en una forma activa que interacciona con proteínas sobre
la superficie interna de una membrana celular. Esto conduce a la
fosforilación de los restos tirosina del receptor y otras proteínas
y a la formación dentro de la célula de complejos con diversas
moléculas de señalización citoplásmicas que, a su vez, efectúan
numerosas respuestas celulares tales como división celular
(proliferación), diferenciación celular, crecimiento celular,
expresión de efectos metabólicos hacia el microentorno
extracelular, etc. Para un análisis más completo, véase Schlessinger
y Ullrich, Neuron, 9:303-391 (1992) que se
incorpora por referencia, incluyendo cualquiera de sus dibujos, como
se muestra en su totalidad en este documento.
Los receptores del factor de crecimiento con
actividad PTK se conocen como tirosina quinasas receptoras
("RTK"). Comprenden una gran familia de receptores
transmembrana con actividad biológica diversa. Actualmente, se han
identificado al menos diecinueve (19) subfamilias distintas de RTK.
Un ejemplo de éstas es la subfamilia denominada RTK "HER", que
incluye EGFR (receptor del factor de crecimiento epitelial), HER2,
HER3 y HER4. Estas RTK están compuestas por un dominio de unión de
ligando glicosilado extracelular, un dominio transmembrana y un
dominio catalítico citoplásmico intracelular que puede fosforilar
los restos tirosina de las proteínas.
Otra subfamilia de RTK está compuesta por
receptor de insulina (IR), receptor del factor de crecimiento de
tipo insulina I (IGF-1R) y receptor relacionado con
el receptor de insulina (IRR). IR y IGF-1R
interaccionan con insulina, IGF-I y
IGF-II para formar un heterotetrámero de dos
subunidades \alpha glicosiladas enteramente extracelulares y dos
subunidades \beta que cruzan la membrana celular y que contienen
el dominio tirosina quinasa.
Una tercera subfamilia de RTK se denomina grupo
receptor del factor de crecimiento derivado de plaquetas
("PDGFR"), que incluye PDGFR\alpha, PDGFR\beta, CSFIR,
c-kit y c-fms. Estos receptores
están compuestos por dominios extracelulares glicosilados
compuestos de cantidades variables de bucles de tipo inmunoglobina y
un dominio intracelular en el que el dominio tirosina quinasa está
interrumpido por secuencias de aminoácido no relacionadas.
Otro grupo que, debido a su similitud con la
subfamilia PDGFR, en ocasiones se incluye en este último grupo, es
la subfamilia del receptor de quinasa del hígado fetal ("flk").
Se cree que este grupo está compuesto por un dominio de inserto de
quinasa - receptor de quinasa de hígado fetal-1
(KDR/FLK-1, VEGF-R2),
flk-1R, flk-4 y tirosina quinasa 1
de tipo fms (flt-1).
Otros miembros de la familia del receptor del
factor de crecimiento de tirosina quinasa es el subgrupo del
receptor del factor de crecimiento de fibroblastos ("FGF").
Este grupo está compuesto por cuatro receptores,
FGFR1-4, y siete ligandos, FGF1-7.
Aunque aún no está bien definido, parece que los receptores están
compuestos por un dominio extracelular glicosilado que contiene una
cantidad variable de bucles de tipo inmunoglobina y un dominio
intracelular en el que la secuencia de tirosina quinasa está
interrumpida por regiones de secuencias de aminoácidos no
relacionadas.
relacionadas.
Otros miembros más de la familia del receptor
del factor de crecimiento de tirosina quinasa es el subgrupo del
receptor del factor de crecimiento endotelial vascular
("VEGF"). VEGF es una glicoproteína dimérica similar a PDGF
pero tiene diferentes funciones biológicas y especificidad por
células diana in vivo. En particular, actualmente se cree
que VEGF desempeña un papel esencial en vasculogénesis y
angiogénesis.
Una lista más completa de las subfamilias de RTK
conocidas se describe en Plowman et al., DN&P,
7(6):334-339 (1994) que se incorpora por
referencia, incluyendo cualquiera de sus dibujos, como se muestra en
su totalidad en este documento.
Además de las RTK, existe también una familia de
PTK enteramente intracelulares denominada "tirosina quinasas no
receptoras" o "tirosina quinasas celulares". Esta última
denominación, abreviada "CTK", se usará en este documento. Las
CTK no contienen dominios extracelular y transmembrana. Actualmente,
se han identificado más de 24 CTK en 11 subfamilias (Src, Frk, Btk,
Csk, Abl, Zap70, Fes, Fps, Fak, Jak y Ack).
La subfamilia Src parece ser de lejos el grupo
más grande de CTK e incluye Src, Yes, Fyn, Lyn, Lck, Blk, Hck, Fgr
e Yrk. Para un análisis más detallado de CTK, véase Bolen, Oncogene,
8:2025-2031 (1993), que se incorpora por
referencia, incluyendo cualquiera de sus dibujos, como se muestra en
su totalidad en este documento.
Las serina/treonina quinasas, STK, tales como
las CTK, son predominantemente intracelulares aunque hay unas pocas
quinasas receptoras de tipo STK. Las STK son las quinasas
citosólicas más comunes; es decir, quinasas que realizan su función
en una parte del citoplasma distinta de los orgánulos citoplásmicos
y el citoesqueleto. El citosol es la región dentro de la célula
donde ocurre la mayor parte de la actividad metabólica intermediaria
y biosintética de la célula; por ejemplo, es en el citosol donde
las proteínas se sintetizan sobre los ribosomas.
Las RTK, CTK y STK se han visto implicadas todas
ellas en una multitud de afecciones patogénicas incluyendo, de
forma significativa, cáncer. Otras afecciones patogénicas que se han
asociado con las PTK incluyen, sin limitación, psoriasis, cirrosis
hepática, diabetes, angiogénesis, reestenosis, enfermedades
oculares, artritis reumatoide y otros trastornos inflamatorios,
trastornos inmunológicos tales como enfermedad autoinmune,
enfermedad cardiovascular tal como aterosclerosis y diversos
trastornos renales.
Con respecto al cáncer, dos de las hipótesis
principales se adelantan para explicar que la proliferación celular
excesiva que impulsa el desarrollo de tumores está relacionada con
funciones que se sabe que están reguladas por PK. Es decir, se ha
sugerido que el crecimiento de células malignas resulta de un fallo
en los mecanismos que controlan la división y/o diferenciación
celular. Se ha demostrado que los productos proteicos de numerosos
proto-oncogenes están implicados en las rutas de
transducción de señales que regulan el crecimiento y diferenciación
celular. Estos productos proteicos de
proto-oncogenes incluyen los factores de crecimiento
extracelulares, receptores transmembrana del factor de crecimiento
de PTK (RTK), PTK citoplásmicas (CTK) y STK citosólicas, analizadas
anteriormente.
A la vista de la aparente relación entre
actividades celulares relacionadas con PK y una amplia variedad de
trastornos humanos, no sorprende que se esté gastando una gran
cantidad de esfuerzo en intentar identificar formas de modular la
actividad de PK. Parte de este esfuerzo ha implicado enfoques
biomiméticos usando grandes moléculas estampadas sobre aquellas
implicadas en los procedimientos celulares reales (por ejemplo,
ligandos mutantes (Solicitud U.S. Nº 4.966.849); receptores
solubles y anticuerpos (Solicitud Nº WO 94/10202, Kendall y Thomas,
Proc. Nat'l Acad. Sci., 90:10705-09 (1994), Kim,
et al., Nature, 362:841-844 (1993)); ligandos
de ARN (Jelinek, et al., Bioquímica, 33:10450-.56); Takano,
et al., Mol. Bio. Cell 4:358A (1993): Kinsella, et
al., Exp. Cell Res. 199:56-62 (1992); Wright,
et al., J. CELULAR Phys., 152:448-57) e
inhibidores de tirosina quinasa (documentos WO 94/03427; WO
92/21660; WO 91/15495; WO 94/14808; Patente de Estados Unidos Nº
5.330,992; Mariani, et al., Proc. Am. Assoc. Cancer Res.,
35: 2268 (1994)).
Además de lo anterior, se han realizado intentos
para identificar moléculas pequeñas que actúan como inhibidores de
PK. Por ejemplo, se han descrito compuestos de arilo
bis-monocíclicos, bicíclicos y heterocíclicos (PCT
WO 92/20642), derivados de vinilenazaindol (PCT WO 94/14808) y
1-ciclopropil-4-piridilquinolonas
(Patente de Estados Unidos Nº 5.330.992) como inhibidores de
tirosina quinasa. Compuestos de estirilo (Patente de Estados Unidos
Nº 5.217.999), compuestos de piridilo sustituidos con estirilo
(Patente de Estados Unidos Nº 5.302.606), derivados de quinazolina
(Solicitud EP Nº 0 566 266 A1), selenaindoles y selenuros (PCT WO
94/03427), compuestos polihidroxílicos tricíclicos (PCT WO
92/21660) y compuestos de ácido bencilfosfónico (PCT WO 91/15495) se
han descrito todos como inhibidores de PTK útiles en el tratamiento
de cáncer.
\newpage
La presente invención se refiere a ciertos
compuestos 2-indolinona sustituidos con
3-pirrol que presentan capacidad moduladora de PK y
son por lo tanto útiles en el tratamiento de trastornos relacionados
con la actividad anormal de PK.
Por consiguiente, en un aspecto, la presente
invención se refiere a 2-indolinona sustituida con
3-pirrol de fórmula (I):
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en la
que:
R^{1} se selecciona entre hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}), -(CH_{2})_{r}R^{16}
y -C(O)NR^{8}R^{9};
R^{2} se selecciona entre hidrógeno, halógeno,
arilo y -S(O)_{2}NR^{13}R^{14};
R^{3} se selecciona entre hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}), alcoxi
(C_{1}-C_{4}), arilo, heteroarilo, y
-C(O)R^{15};
R^{4} es hidrógeno;
R^{5} se selecciona entre hidrógeno y alquilo
(C_{1}-C_{4});
R^{6} es C(O)R^{10};
R^{7} se selecciona entre hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}) y arilo;
R^{8} y R^{9} se seleccionan
independientemente entre hidrógeno, alquilo y arilo;
R^{10} es
-N(R^{11})(CH_{2})_{n}R^{12}, en la que n es
1, 2 ó 3, R^{11} es hidrógeno y R^{12} se selecciona entre
hidroxi, alcoxi (C_{1}-C_{4}),
-C(O)R^{15}, heteroarilo y -NR^{13}R^{14};
R^{13} y R^{14} se seleccionan
independientemente entre el grupo constituido por hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}), cicloalquilo, arilo y
heteroarilo; o
R^{13} y R^{14} pueden combinarse para
formar un grupo heterociclo;
R^{15} se selecciona entre el grupo
constituido por hidrógeno, hidroxi, alcoxi
(C_{1}-C_{4}) y ariloxi;
R^{16} se selecciona entre hidroxi y
-C(O)R^{15}; y
r es 2 ó 3;
o una sal farmacéuticamente
aceptable de la
misma.
Los derivados de indolinona y su uso pretendido
se mencionan en las siguientes publicaciones: Patente de Estados
Unidos 5.886.020; Solicitudes de Patente Internacional WO98/50356,
WO99/61422 y WO00/38519 (publicada el 6 de julio de 2000); J. Med.
Chem. 1998, 41, 2588-2603. Los derivados de oxindol
y su uso pretendido se mencionan en las siguientes publicaciones:
WO00/35908 (publicada el 22 de junio de 2000). Las formulaciones
para agentes farmacéuticos ionizables en forma de ácidos libres o
bases libres se mencionan en la siguiente publicación: WO01/37820
(publicada el 31 de mayo de 2001).
\newpage
En un segundo aspecto esta invención se refiere
a una composición farmacéutica que comprende uno o más compuesto o
compuestos de Fórmula (1) o una sal farmacéuticamente aceptable de
los mismos y un excipiente farmacéuticamente aceptable.
En un tercer aspecto, esta invención se refiere
al uso de un compuesto de fórmula (I) o una sal farmacéuticamente
aceptable del mismo en la preparación de un medicamento para el
tratamiento de un trastorno relacionado con proteína quinasa, en un
organismo, en particular seres humanos, (I). Dichos trastornos
incluyen a modo de ejemplo y no como limitación, cáncer, diabetes,
cirrosis hepática, enfermedad cardiovascular tal como
aterosclerosis, angiogénesis, enfermedad inmunológica tal como
enfermedad autoinmune y enfermedad renal.
\vskip1.000000\baselineskip
Definiciones
A menos que se indique otra cosa los siguientes
términos usados en la memoria descriptiva y en las reivindicaciones
tienen los significados mostrados a continuación:
"Alquilo" se refiere a un radical
hidrocarburo alifático saturado incluyendo grupos de cadena lineal y
de cadena ramificada de 1 a 24 átomos de carbono. Los ejemplos de
grupos alquilo incluyen metilo, etilo, propilo,
2-propilo, n-butilo,
iso-butilo, o terc-butilo, y
similares. El grupo alquilo está no sustituido.
"Cicloalquilo" se refiere a un grupo de
anillo monocíclico todo de carbono de 3 a 8 miembros, un anillo
bicíclico condensado o anillo multicíclico condensado todo de
carbono de 5 miembros/6 miembros o de 6 miembros/6 miembros (un
sistema de anillo "condensado" significa que cada anillo en el
sistema comparte un par de átomos de carbono adyacentes con cada
uno de los otros anillos en el sistema) en el que uno o más de los
anillos puede contener uno o más dobles enlaces pero ninguno de los
anillos tiene un sistema de electrones pi completamente
conjugado.
Ejemplos, sin limitación, de grupos cicloalquilo
son ciclopropano, ciclobutano, ciclopentano, ciclopenteno,
ciclohexano, ciclohexadieno, adamantano, cicloheptano,
cicloheptatrieno, y similares. El grupo cicloalquilo está no
sustituido.
"Arilo" se refiere a grupos de anillo
condensado todo de carbono monocíclico o policíclico (es decir,
anillos que comparten pares de átomos de carbono adyacentes) de 1 a
12 átomos de carbono que tienen un sistema de electrones pi
completamente conjugado. Los ejemplos, sin limitación, de grupos
arilo son fenilo, naftalenilo y antracenilo. El grupo arilo puede
estar sustituido o no sustituido. Cuando está sustituido, el grupo
arilo está sustituido con uno o dos sustituyentes seleccionados
independientemente entre halo, alquilo, trihaloalquilo, hidroxi,
mercapto, ciano, N-amido, mono o dialquilamino,
carboxi, o N-sulfonamido.
"Heteroarilo" se refiere a un grupo de
anillo monocíclico o condensado (es decir, anillos que comparten un
par de átomos adyacentes) de 5 a 12 átomos en el anillo que
contienen uno, dos, o tres heteroátomos en el anillo seleccionados
entre N, O, o S, siendo los restantes átomos en el anillo C, y,
además, que tiene un sistema de electrones pi completamente
conjugado. Los ejemplos, sin limitación, de grupos heteroarilo no
sustituidos son pirrol, furano, tiofeno, imidazol, oxazol, tiazol,
pirazol, piridina, pirimidina, quinolina, isoquinolina, purina y
carbazol. El grupo heteroarilo puede estar sustituido o no
sustituido. Cuando está sustituido, el grupo heteroarilo está
sustituido con uno o dos sustituyentes seleccionados
independientemente entre halo, alquilo, trihaloalquilo, hidroxi,
mercapto, ciano, N-amido, mono o dialquilamino,
carboxi, o N-sulfonamido.
"Heterociclo" significa un radical cíclico
saturado de 3 a 8 átomos en el anillo en el que uno o dos átomos en
el anillo son heteroátomos seleccionados entre N, O, o
S(O)_{n} (donde n es un número entero de 0 a 2),
siendo los restantes átomos en el anillo C, donde uno o dos átomos
de C pueden sustituirse opcionalmente por un grupo carbonilo. Más
específicamente, el término heterociclilo incluye, aunque sin
limitación, tetrahidropiranilo,
2,2-dimetil-1,3-dioxolano,
piperidino,
N-metilpiperidin-3-ilo,
piperazino,
N-metilpirrolidin-3-ilo,
3-pirrolidino, morfolino, tiomorfolino,
tiomorfolino-1-óxido,
tiomorfolino-1,1-dióxido,
4-etiloxicarbonil-piperazino,
3-oxopiperazino, 2-imidazolidone,
2-pirrolidinona;
2-oxohomopiperazino,
tetrahidropirimidin-2-ona, y los
derivados de los mismos. El grupo heterociclo está opcionalmente
sustituido con uno o dos sustituyentes seleccionados
independientemente entre halo, alquilo, alquilo sustituido con
carboxi o éster, hidroxi, mono o dialquilamino.
"Hidroxi" se refiere a un grupo -OH.
"Alcoxi" se refiere a ambos grupos
-O-(alquilo no sustituido) y -O-(cicloalquilo no sustituido). Los
ejemplos representativos incluyen, aunque sin limitación, por
ejemplo, metoxi, etoxi, propoxi, butoxi, ciclopropiloxi,
ciclobutiloxi, ciclopentiloxi, ciclohexiloxi, y similares.
"Ariloxi" se refiere a ambos grupos
-O-arilo y -O-heteroarilo, como se
define en este documento. Los ejemplos representativos incluyen,
aunque sin limitación, fenoxi, piridiniloxi, furaniloxi, tieniloxi,
pirimidiniloxi, piraziniloxi, y similares, y derivados de los
mismos.
"Mercapto" se refiere a un grupo -SH.
"Éster" se refiere a un grupo
-C(O)O-R'', donde R'' se selecciona
entre el grupo constituido por alquilo, trihalometilo,
cicloalquilo, arilo opcionalmente sustituido, heteroarilo
opcionalmente sustituido (unido mediante un carbono del anillo).
El grupo "halo" se refiere a fluoro, cloro,
bromo o yodo, preferiblemente fluoro o cloro.
El grupo "trihalometilo" se refiere a un
grupo -CX_{3} en el que X es un grupo halo como se define en este
documento.
"Ciano" se refiere a un grupo
-C\equivN.
"N-sulfonamido" se refiere
a un grupo -NR^{18}S(O)_{2}R^{19}, con R^{18}
y R^{19} como se define en este documento.
"N-amido" se refiere a un
-grupo R^{18}C(O)NR^{19}, con R^{18} y R^{19}
como se define en este documento.
R^{18} y R^{19} se seleccionan
independientemente entre hidrógeno y alquilo.
Las expresiones
"2-indolinona",
"indolin-2-ona" y
"2-oxindol" se usan de forma intercambiable en
este documento para referirse a una molécula que tiene la
estructura química:
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El término "pirrol" se refiere a una
molécula que tiene la estructura química:
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El término "2-indolinona
sustituida con pirrol" y
"3-pirrolidenil-2-indolinona"
se usan de forma intercambiable en este documento para referirse a
un compuesto químico que tiene la estructura general mostrada en la
Fórmula (I).
Los compuestos que tienen la misma fórmula
molecular pero difieren en la naturaleza o secuencia de enlace de
sus átomos o la colocación de sus átomos en el espacio se denominan
"isómeros". Los isómeros que difieren en la colocación de sus
átomos en el espacio se denominan "estereoisómeros". Los
estereoisómeros que no son imágenes especulares entre sí se
denominan "diastereómeros" y aquellos que no son imágenes
especulares superponibles entre sí se denominan
"enantiómeros". Cuando un compuesto tiene un centro asimétrico,
por ejemplo, se une a cuatro grupos diferentes, es posible un par
de enantiómeros. Un enantiómero puede caracterizarse por la
configuración absoluta de su centro asimétrico y se describe
mediante las reglas de secuenciación R- y S- de Cahn y Prelog, o
por la manera en que la molécula hace girar el plano de luz
polarizada y se denomina dextro-rotatorio o
levo-rotatorio (es decir, como isómeros (+) o (-),
respectivamente). Un compuesto quiral puede existir como cualquiera
de los enantiómeros individuales o como una mezcla de los mismos.
Una mezcla que contiene proporciones iguales de los enantiómeros se
denomina "mezcla racémica".
Los compuestos de esta invención pueden poseer
uno o más centros asimétricos; dichos compuestos pueden producirse
por lo tanto en forma de estereoisómeros individuales (R)- o (S)- o
como mezclas de los mismos.
A menos que se indique de otra manera, la
descripción o nomenclatura de un compuesto particular en la memoria
descriptiva y las reivindicaciones pretende incluir tanto
enantiómeros individuales como mezclas, racémicos u otros de los
mismos. Los procedimientos para la determinación de la
estereoquímica y la separación de estereoisómeros se conocen bien
en la técnica (véase el análisis en el capítulo 4 de "Advanced
Organic Chemistry", 4ª edición J. March, John Wiley and Sons,
Nueva York, 1992).
Los compuestos de Fórmula (I) pueden presentar
fenómenos de tautomería e isomería estructural. Por ejemplo, los
compuestos descritos en este documento pueden adoptar una
configuración E o Z alrededor del doble enlace que conecta el resto
2-indolinona al resto pirrol o pueden ser una mezcla
de E y Z. Esta invención engloba cualquier forma tautomérica o
isomérica estructural y mezclas de las mismas que posean la
capacidad para modular la actividad RTK, CTK y/o STK y no se limita
a ninguna forma tautomérica o isomérica estructural.
Una "composición farmacéutica" se refiere a
una mezcla de uno o más de los compuestos descritos en este
documento, o a sales fisiológicamente/farmacéuticamente aceptables
o profármacos de los mismos, con otros componentes químicos, tales
como vehículos y excipientes fisiológicamente/farmacéuticamente
aceptables. El fin de una composición farmacéutica es facilitar la
administración de un compuesto a un organismo.
El compuesto de Fórmula (I) puede actuar también
como profármaco. Un "profármaco" se refiere a un agente que se
convierte en el fármaco precursor in vivo. Los profármacos a
menudo son útiles porque, en algunas situaciones, pueden ser más
fáciles de administrar que el fármaco precursor. Pueden, por
ejemplo, estar biodisponibles por administración oral mientras que
el fármaco precursor no lo está. El profármaco puede tener también
una solubilidad mejorada en composiciones farmacéuticas respecto al
fármaco precursor. Un ejemplo, sin limitación, de un profármaco
sería un compuesto de la presente invención que se administra en
forma de éster (el "profármaco") para facilitar la transmisión
a través de una membrana celular donde la solubilidad en agua es
perjudicial para la movilidad aunque después se hidroliza
metabólicamente al ácido carboxílico, la entidad activa, una vez
que está dentro de la célula donde la solubilidad en agua es
beneficiosa.
Otro ejemplo de profármaco puede ser un
polipéptido corto, por ejemplo, sin limitación, un polipéptido de
2-10 aminoácidos, unido mediante un grupo amino
terminal a un grupo carboxi de un compuesto de esta invención en el
que el polipéptido se hidroliza o metaboliza in vivo para
liberar la molécula activa. Los profármacos de un compuesto de
Fórmula (I) están dentro del alcance de esta invención.
Además, se contempla que un compuesto de Fórmula
(I) sería metabolizado por enzimas en el cuerpo del organismo tal
como un ser humano para generar un metabolito que puede modular la
actividad de las proteínas quinasas. Dichos metabolitos están dentro
del alcance de la presente invención.
Como se usa en este documento, un "vehículo
fisiológicamente/farmacéuticamente aceptable" se refiere a un
vehículo o diluyente que no provoca irritación significativa a un
organismo y no altera la actividad biológica y propiedades del
compuesto administrado.
Un "excipiente farmacéuticamente aceptable"
se refiere a una sustancia inerte añadida a una composición
farmacéutica para facilitar adicionalmente la administración de un
compuesto. Los ejemplos, sin limitación, de excipientes incluyen,
carbonato cálcico, fosfato cálcico, diversos azúcares y tipos de
almidón, derivados de celulosa, gelatina, aceites vegetales y
polietilenglicoles.
Como se usa en este documento, el término "sal
farmacéuticamente aceptable " se refiere a aquellas sales que
retienen la eficacia y propiedades biológicas del compuesto
precursor. Dichas sales incluyen:
(i) sal de adición de ácido que se obtiene por
reacción de la base libre del compuesto precursor con ácidos
inorgánicos tales como ácido clorhídrico, ácido bromhídrico, ácido
nítrico, ácido fosfórico, ácido sulfúrico, y ácido perclórico y
similares, o con ácidos orgánicos tales como ácido acético, ácido
oxálico, ácido (D) o (L) málico, ácido maleico, ácido
metanosulfónico, ácido etanosulfónico, ácido
p-toluenosulfónico, ácido salicílico, ácido
tartárico, ácido cítrico, ácido succínico o ácido malónico y
similares, preferiblemente ácido clorhídrico o ácido
(L)-málico tal como la sal L-malato
de (2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico;
o
(2) sales formadas cuando un protón ácido
presente en el compuesto precursor puede sustituirse por un ión
metálico, por ejemplo, un ión de metal alcalino, un ión de metal
alcalinotérreo, o un ión de aluminio; o se coordina con una base
orgánica tal como etanolamina, dietanolamina, trietanolamina,
trometamina, N-metilglucamina, y similares.
"PK" se refiere a proteína tirosina quinasa
receptora (RTK), tirosina quinasa no receptora o "celular"
(CTK) y serina-treonina quinasas (STK).
"Procedimiento" se refiere a maneras,
medios, técnicas y formas para realizar una tarea dada incluyendo,
aunque sin limitación, aquellas maneras, medios, técnicas y formas
conocidas, o fácilmente desarrolladas a partir de maneras, medios,
técnicas y formas conocidas por practicantes de las técnicas
química, farmacéutica, biológica, bioquímica y médica.
"Modulación" o "modular" se refieren a
la alteración de la actividad catalítica de las RTK, CTK y STK. En
particular, modular se refiere a la activación de la actividad
catalítica de las RTK, CTK y STK, preferiblemente la activación o
inhibición de la actividad catalítica de las RTK, CTK y STK,
dependiendo de la concentración del compuesto o sal a la que se
expone la RTK, CTK o STK, o más preferiblemente, la inhibición de la
actividad catalítica de las RTK, CTK y STK.
"Actividad catalítica" se refiere a la
velocidad de fosforilación de tirosina bajo la influencia, directa
o indirecta, de las RTK y/o CTK o la fosforilación de serina y
treonina bajo la influencia, directa o indirecta, de las STK.
"Poner en contacto" se refiere a poner
juntos un compuesto de esta invención y una PK diana de manera que
el compuesto puede afectar a la actividad catalítica de la PK,
directamente, es decir, interaccionando con la propia quinasa, o
indirectamente, es decir, interaccionando con otra molécula de la
que depende la actividad catalítica de la quinasa. Dicho
"contacto" puede realizarse "in vitro", es decir,
en un tubo de ensayo, una placa petri o similares. En un tubo de
ensayo, el poner en contacto puede implicar únicamente un compuesto
y una PK de interés o puede implicar células enteras. Las células
pueden mantenerse también o cultivarse en placas de cultivo celular
y ponerse en contacto con un compuesto en este entorno. En este
contexto, la capacidad de un compuesto particular para afectar a un
trastorno relacionado con PK, es decir, la CI_{50} del compuesto,
definida a continuación, puede determinarse antes de intentar usar
los compuestos in vivo con organismos vivos más complejos.
Para células fuera del organismo, existen múltiples procedimientos,
y los conocen bien los especialistas en la técnica, para conseguir
que las PK en contacto con los compuestos incluyendo, aunque sin
limitación, microinyección celular directa y numerosas técnicas de
transporte transmembrana.
"In vitro" se refiere a
procedimientos realizados en un entorno artificial tal como, por
ejemplo, sin limitación, en un tubo de ensayo o medio de
cultivo.
"In vivo" se refiere a
procedimientos realizados dentro de un organismo vivo tal como, sin
limitación, un ratón, rata o conejo.
Las expresiones "trastorno relacionado con
PK", "trastorno accionado por PK", y "actividad anormal de
PK" se refieren todas a un estado caracterizado por una
actividad catalítica de PK inapropiada, es decir, menor o más
habitualmente, mayor, donde la PK particular puede ser una RTK, una
CTK o una STK. La actividad catalítica inapropiada puede surgir
como resultado de: (1) expresión de PK en células que normalmente no
expresan PK, (2) aumento de la expresión de PK que conduce a una
proliferación, diferenciación y/o crecimiento celular no deseados,
o (3) disminución de la expresión de PK que conduce a reducciones no
deseadas en la proliferación, diferenciación y/o crecimiento
celular. La sobre-actividad de una PK se refiere a
la amplificación del gen que codifica una PK particular o a la
producción de un nivel de actividad de PK que puede correlacionarse
con un trastorno de proliferación, diferenciación y/o crecimiento
celular (es decir, según aumenta el nivel de PK, aumenta la
gravedad de uno o más de los síntomas del trastorno celular). La
sub-actividad es, por supuesto, lo inverso, en la
que la gravedad de uno o más síntomas de un trastorno celular
aumentan según disminuye el nivel de la actividad de PK.
"Tratar", "tratando" y
"tratamiento" se refieren a un procedimiento para aliviar o
mitigar un trastorno celular mediado por PK y/o sus síntomas
relacionados. Con respecto particularmente a cáncer, estos términos
significan simplemente que la esperanza de vida de un individuo
afectado con un cáncer aumentará o que uno o más de los síntomas de
la enfermedad se reducirán.
"Organismo" se refiere a cualquier entidad
viva compuesta por al menos una célula. Un organismo vivo puede ser
tan sencillo como, por ejemplo, una única célula eucariota o tan
complejo como un mamífero, incluyendo un ser humano.
"Cantidad terapéuticamente eficaz" se
refiere a la cantidad del compuesto que se administra que aliviará
en alguna extensión uno o más de los síntomas del trastorno a
tratar. Con referencia al tratamiento de cáncer, una cantidad
terapéuticamente eficaz se refiere a aquella cantidad que tiene el
efecto de:
(1) reducir el tamaño del tumor;
(2) inhibir (es decir, ralentizar en alguna
extensión, preferiblemente detener) la metástasis del tumor;
(3) inhibir en alguna extensión (es decir,
ralentizar en alguna extensión, preferiblemente detener) el
crecimiento del tumor, y/o.
(4) aliviar en alguna extensión (o,
preferiblemente, eliminar) uno o más síntomas asociados con el
cáncer.
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"Controlar" significa observar o detectar
el efecto de poner en contacto un compuesto con una célula que
expresa una PK particular. El efecto observado o detectado puede
ser un cambio en el fenotipo celular, en la actividad catalítica de
una PK o un cambio en la interacción de una PK con una pareja de
unión natural. Las técnicas para observar o detectar dichos efectos
se conocen bien en la técnica.
El efecto al que se ha hecho referencia
anteriormente se selecciona entre un cambio o ausencia de cambio en
un fenotipo celular, un cambio o ausencia de cambio en la actividad
catalítica de dicha proteína quinasa o un cambio o ausencia de
cambio en la interacción de dicha proteína quinasa con una pareja de
unión natural en un aspecto final de esta invención.
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"Fenotipo celular" se refiere a la
apariencia externa de una célula o tejido o la función biológica de
la célula o tejido. Los ejemplos, sin limitación, de un fenotipo
celular son el tamaño de célula, crecimiento celular, proliferación
celular, diferenciación celular, supervivencia celular, apoptosis, y
captación de nutrientes y uso. Dichas características fenotípicas
pueden medirse por técnicas bien conocidas en la técnica.
"Pareja de unión natural" se refiere a un
polipéptido que se une a una PK particular en una célula. Las
parejas de unión naturales pueden desempeñar un papel en la
propagación de una señal en un procedimiento de transducción de
señales mediado por PK. Un cambio en la interacción de la pareja de
unión natural con la PK puede manifestarse como un aumento o
disminución de la concentración del complejo PK/pareja de unión
natural y, como resultado, en un cambio observable en la capacidad
de la PK para mediar en la transducción de señales.
En la Tabla I a continuación se muestran
compuestos representativos de la presente invención.
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Los números de los compuestos corresponden a los
números de los Ejemplos en la sección de Ejemplos. Es decir, la
síntesis del Compuesto 1 en la Tabla 1 se describe en el Ejemplo 1.
Los compuestos presentados en la Tabla 1 son únicamente ejemplares
y no deben interpretarse como que limitan el alcance de esta
invención de ninguna manera.
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Aunque la definición más amplia se muestra en el
Sumario de la Invención, se prefieren ciertos compuestos de Fórmula
(I) mostrados a continuación.
(1) Un grupo preferido de compuestos de Fórmula
(I) es aquel en el que R^{1}, R^{3}, y R^{4} son
hidrógeno.
(2) Otro grupo preferido de compuestos de
Fórmula (I) es aquel en el que R^{1}, R^{2}, y R^{4} son
hidrógeno.
(3) Otro grupo preferido de compuestos de
Fórmula (I) es aquel en el que R^{1}, R^{2}, y R^{3} son
hidrógeno.
(4) Otro grupo preferido de compuestos de
Fórmula (I) es aquel en el que R^{2}, R^{3}, y R^{4} son
hidrógeno.
(5) Otro grupo preferido de compuestos de
Fórmula (I) es aquel en el que R^{1}, R^{2}, R^{3} y R^{4}
son hidrógeno.
(6) Otro grupo más preferido de compuestos de
Fórmula (I) es aquel en el que:
R^{1} es hidrógeno, alquilo,
-C(O)NR^{8}R^{9}, preferiblemente hidrógeno o
metilo, particularmente hidrógeno;
R^{2} es hidrógeno, cloro, bromo, fluoro,
fenilo, dimetilaminosulfonilo,
3-clorofenil-aminosulfonilo,
aminosulfonilo, metilaminosulfonilo, fenilaminosulfonilo,
piridin-3-il-aminosulfonilo,
dimetilaminosulfonilo, isopropilamino-sulfonilo,
preferiblemente hidrógeno, fluoro, o bromo;
R^{3} es hidrógeno, metoxi, carboxi, fenilo,
piridin-3-ilo,
3,4-diclorofenilo,
4-n-butilfenilo,
3-isopropilfenilo, preferiblemente hidrógeno o
fenilo; y
R^{4} es hidrógeno.
Dentro del grupo preferido (6) anterior un grupo
de compuestos más preferido es en el que:
R^{5} es hidrógeno, metilo, etilo, isopropilo,
terc-butilo, isobutilo, o n-butilo,
preferiblemente hidrógeno o metilo; y
R^{7} es hidrógeno, metilo, etilo, isopropilo,
n-, iso o terc-butilo, fenilo, preferiblemente
metilo, hidrógeno o fenilo.
(7) Otra realización actualmente preferida de
esta invención es un compuesto que tiene una estructura como se ha
descrito anteriormente en la que R^{13} y R^{14} se seleccionan
independientemente entre el grupo constituido por hidrógeno,
alquilo, heteroarilo y, combinados -(CH_{2})_{4}-,
-(CH_{2})_{5}-,
-(CH_{2})_{2}O(CH_{2})_{2}-, o
-(CH_{2})_{2}N(CH_{3})(CH_{2})_{2}-.
Las PK cuya actividad catalítica está modulada
por los compuestos de esta invención incluyen proteínas tirosina
quinasas de las cuales hay dos tipos, tirosina quinasas receptoras
(RTK) y tirosina quinasas celulares (CTK), y
serina-treonina quinasas (STK). La transducción de
señales mediada por RTK se inicia por interacción extracelular con
un factor de crecimiento específico (ligando), seguido de
dimerización del receptor, estimulación transitoria de la actividad
tirosina quinasa intrínseca de la proteína y fosforilación. Los
sitios de unión se crean de esta manera para moléculas de
transducción de señales intracelular y conduce a la formación de
complejos con un espectro de moléculas de señalización
citoplásmicas que facilitan la respuesta celular apropiada (por
ejemplo, división celular, efectos metabólicos sobre el
microentorno extracelular, etc.). Véase, Schlessinger y Ullrich,
1992, Neuron 9:303-391.
Se ha demostrado que los sitios de fosforilación
de tirosina sobre los receptores del factor de crecimiento
funcionan como sitios de unión de alta afinidad para los dominios
SH2 (homología src) de las moléculas de señalización. Fantl et
al., 1992, Cell 69:413-423, Songyang et
al., 1994, Mol. Cell. Biol. 14:2777-2785),
Songyang et al., 1993, Cell 72:767-778, y
Koch et al., 1991, Science 252:668-678. Se
han identificado diversas proteínas sustrato intracelulares que se
asocian con las RTK. Pueden dividirse en dos grupos principales:
(1) sustratos que tienen un dominio catalítico, y (2) sustratos que
carecen de dicho dominio pero que sirven como adaptadores y se
asocian con moléculas catalíticamente activas. Songyang et
al., 1993, Cell 72:767-778. La especificidad de
las interacciones entre los receptores y los dominios SH2 de sus
sustratos está determinada por los restos aminoacídicos que rodean
directamente el resto tirosina fosforilado. Las diferencias en las
afinidades de unión entre los dominios SH2 y las secuencias de
aminoácidos que rodean los restos fosfotirosina en receptores
particulares son consistentes con las diferencias observadas en sus
perfiles de fosforilación de sustrato. Songyang et al.,
1993, Cell 72:767-778. Estas observaciones sugieren
que la función de cada RTK está determinada no sólo por su patrón
de expresión y disponibilidad de ligando si no también por la matriz
de rutas de transducción de señales cadena abajo que son activadas
por un receptor particular. De esta manera, la fosforilación
proporciona una importante etapa reguladora que determina la
selectividad de las rutas de señalización reclutadas por receptores
específicos del factor de crecimiento, así como por receptores del
factor de diferenciación.
Las STK, que son principalmente citosólicas,
afectan a la bioquímica interna de la célula, a menudo como una
respuesta en línea descendente a un suceso PTK. Las STK se han visto
implicadas en el procedimiento de señalización que inicia la
síntesis de ADN y la posterior mitosis que conduce a la
proliferación celular.
De esta manera, la transducción de señales de PK
da como resultado, entre otras respuestas, proliferación,
diferenciación, crecimiento y metabolismo celular. La proliferación
celular anormal puede dar como resultado un amplio abanico de
trastornos y enfermedades, incluyendo el desarrollo de neoplasia tal
como carcinoma, sarcoma, glioblastoma y hemangioma, trastornos
tales como leucemia, psoriasis, arteriosclerosis, artritis y
retinopatía diabética y otros trastornos relacionados con
angiogénesis y/o vasculogénesis descontroladas.
No se necesita una comprensión precisa del
mecanismo por el que los compuestos de esta invención inhiben las
PK para la práctica de la presente invención. Sin embargo, aunque
este documento no se ciñe a un mecanismo o teoría particular, se
cree que los compuestos interaccionan con los aminoácidos en la
región catalítica de las PK. Las PK típicamente poseen una
estructura bilobular en la que ATP parece unirse en la hendidura
entre los dos lóbulos en una región en la que los aminoácidos se
conservan entre las PK. Se cree que los inhibidores de las PK se
unen mediante interacciones no covalentes tales como uniones de
hidrógeno, fuerzas de van der Waals e interacciones iónicas en la
misma región general en la que el ATP mencionado anteriormente se
une a las PK. Más específicamente, se cree que el componente
2-indolinona de los compuestos de esta invención se
une en el espacio general ocupado normalmente por el anillo de
adenina del ATP. La especificidad de una molécula particular para
una PK particular puede surgir después como resultado de
interacciones adicionales entre los diversos sustituyentes en el
núcleo de 2-indolinona y los dominios aminoacídicos
específicos para las PK particulares. De esta manera, diferentes
sustituyentes indolinona pueden contribuir a una unión preferente a
las PK particulares. La capacidad para seleccionar compuestos
activos en diferentes sitios de unión de ATP (u otro nucleótido)
hace a los compuestos de esta invención útiles para fijar como diana
cualquier proteína con dicho sitio. Los compuestos descritos en
este documento de esta manera tienen utilidad en ensayos in
vitro para dichas proteínas y también presentan efectos
terapéuticos in vivo mediante interacción con dichas
proteínas.
Además, los compuestos de la presente invención
proporcionan un procedimiento terapéutico para el tratamiento de
muchas clases de tumores sólidos, incluyendo aunque sin limitación
carcinomas, sarcomas incluyendo sarcoma de Kaposi, eritroblastoma,
glioblastoma, meningioma, astrocitoma, melanoma y mioblastoma. El
tratamiento o prevención de cánceres sólidos no tumorales tales
como leucemia se contemplan también en esta invención. Las
indicaciones pueden incluir, aunque sin limitación, cánceres
cerebrales, cánceres de vejiga, cánceres de ovario, cánceres
gástricos, cánceres del páncreas, cánceres del colon, cánceres de la
sangre, cánceres de pulmón y cánceres óseos.
Otros ejemplos, sin limitación, de los tipos de
trastornos relacionados con la actividad inapropiada de PK para los
que los compuestos descritos en este documento pueden ser útiles
para prevenir, tratar y estudiar, son trastornos proliferativos
celulares, trastornos fibróticos y trastornos metabólicos.
Los trastornos proliferativos celulares, que
pueden evitarse, tratarse o estudiarse adicionalmente mediante la
presente invención incluyen cáncer, trastornos proliferativos de los
vasos sanguíneos y trastornos proliferativos celulares
mesangiales.
Los trastornos proliferativos de los vasos
sanguíneos se refieren a trastornos relacionados con vasculogénesis
anormal (formación de vasos sanguíneos) y angiogénesis (propagación
de vasos sanguíneos). Aunque vasculogénesis y angiogénesis
desempeñan papeles importantes en diversos procedimientos
fisiológicos normal tales como desarrollo embrionario, formación
del cuerpo lúteo, curación de heridas y regeneración de órganos,
desempeñan también un papel fundamental en el desarrollo del cáncer
donde dan como resultado la formación de nuevos capilares
necesarios para mantener vivo un tumor. Otros ejemplos de trastornos
de proliferación de los vasos sanguíneos incluyen artritis, en la
que los nuevos vasos sanguíneos capilares invaden la articulación y
destruyen el cartílago, y enfermedades oculares, tales como
retinopatía diabética, donde los capilares en la retina invaden el
cristalino, sangran y provocan ceguera.
Se han identificado dos RTK estructuralmente
relacionadas que se unen a VEGF con alta afinidad: el receptor de
tirosina de tipo fms 1 (fit-1) (Shibuya et
al., 1990, Oncogene, 5:519-524; De Vries et
al., 1992, Science, 255:989-991) y el receptor
de KDR/FLK-1, conocido también como
VEGF-R2. Se ha informado de que el factor de
crecimiento endotelial vascular (VEGF) es un mitógeno específico
para células endoteliales con actividad promotora del crecimiento
celular endotelial in vitro. Ferrara y Henzel, 1989,
Biochein. Biophys. Res. Comm., 161:851-858; Vaisman
et al., 1990, J. Biol. Chem.,
265:19461-19566, La información mostrada en las
Solicitudes de Estados Unidos con Nº de Serie 08/193.829,
08/038.596 y 07/975.750, sugiere firmemente que VEGF no solo es
responsable de la proliferación celular endotelial, si no que
también es el regulador principal de la angiogénesis normal y
patológica. Véase de forma general, Klags-burn y
Soker, 1993, Current Biology,
3(10)699-702; Houck, et al.,
1992, J. Biol. Chem., 267:26031-26037.
La vasculogénesis y angiogénesis normales
desempeñan papeles importantes en diversos procedimientos
fisiológicos tales como desarrollo embrionario, curación de
heridas, regeneración de órganos y procedimientos reproductores
femeninos tales como desarrollo del folículo en el cuerpo lúteo
durante la ovulación y crecimiento de la placenta después del
embarazo. Folkman y Shing, 1992, J. Biological Chem.,
267(16):10931-34. La vasculogénesis y/o
angiogénesis descontroladas se han asociado con enfermedades tales
como diabetes así como con tumores sólidos malignos que dependen de
la vascularización para el crecimiento. Klagsburn y Soker, 1993,
Current Biology, 3 (10): 699-702; Folkham, 1991, J.
Natl. Cancer Inst., 82:4-6; Weidner, et al.,
1991, New Engl. J. Med., 324:1-5.
El supuesto papel de VEGF en la proliferación
celular endotelial y migración durante la angiogénesis y
vasculogénesis indica un importante papel para el receptor de
KDR/FLK-1 en estos procedimientos. Enfermedades
tales como diabetes mellitus (Folkman, 198, en XIth Congress of
Thrombosis and Haemostasis (Verstraeta, et al., eds.), pág.
583-596, Leuven University Press, Leuven) y
artritis, así como el crecimiento de tumores malignos pueden ser el
resultado de angiogénesis descontrolada. Véase, por ejemplo,
Folkman, 1971, N. Engl. J. Med., 285:1182-1186. Los
receptores a los que VEGF se une específicamente son una diana
terapéutica importante y poderosa para la regulación y modulación
de vasculogénesis y/o angiogénesis y otras diversas enfermedades
graves que implican crecimiento celular anormal provocado por
dichos procedimientos. Plowman, et al., 1994, DN&P, 7
(6):334-339. Más particularmente, el papel
altamente específico del receptor de KDR/FLK-1 en la
neovascularización lo convierte en una diana apropiada para los
enfoques terapéuticos al tratamiento de cáncer y otras enfermedades
que implican la formación descontrolada de vasos sanguíneos.
De esta manera, la presente invención
proporciona compuestos capaces de regular y/o modular la
transducción de señales de tirosina quinasa incluyendo transducción
de señales del receptor de KDR/FLK-1 para inhibir o
promover la angiogénesis y/o vasculogénesis, es decir, compuestos
que inhiben, previenen, o interfieren con la señal transducida por
KDR/FLK-1 cuando se activa mediante ligandos tales
como VEGF. Aunque se cree que los compuestos de la presente
invención actúan sobre un receptor u otro componente a lo largo de
la ruta de transducción de señales de tirosina quinasa, pueden
actuar también directamente sobre las células tumorales que dan como
resultado angiogénesis descontrolada.
Aunque la nomenclatura de los homólogos humano y
murino del receptor genérico de "flk-1"
difiere, son, en muchos respectos, intercambiables. El receptor
murino, Flk-1, y su homólogo humano, KDR, comparten
una homología de secuencia del 93,4% dentro del dominio
intracelular. Análogamente, FLK-1 murino se une a
VEGF humano con la misma afinidad que a VEGA de ratón, y por
consiguiente, se activa mediante el ligando derivado de cualquiera
de las especies. Millauer et al., 1993, Cell, 72:
835-846; Quinn et al., 1993, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, 90:7533-7537. FLK-1
se asocia también con y posteriormente la tirosina fosforila
sustratos RTK humanos (por ejemplo, PLC-\gamma o
p85) cuando se co-expresa en 293 células
(fibroblastos de riñón embrionario humanos).
Los modelos que dependen del receptor de
FLK-1 por lo tanto son directamente aplicables para
entender el receptor de KDR. Por ejemplo, el uso del receptor de
FLK-1 murino en procedimientos que identifican
compuestos que regulan la ruta de transducción de señales murina
son directamente aplicables a la identificación de compuestos que
pueden usarse para regular la ruta de transducción de señales
humana, es decir, que regula la actividad relacionada con el
receptor de KDR. De esta manera, los compuestos químicos
identificados como inhibidores de KDR/FLK-1 in
vitro, pueden confirmarse en los modelos in vivo
adecuados. Se ha demostrado que ambos modelos animales in
vivo de ratón y rata son un excelente valor para el examen del
potencial clínico de agentes que actúan sobre la ruta de
transducción de señales inducida por KDR/FLK-1.
De esta manera, la presente invención
proporciona compuestos que regulan, modulan y/o inhiben la
vasculogénesis y/o angiogénesis afectando a la actividad enzimática
del receptor de KDR/FLK-1 e interfieren con la señal
transducida por KDR/FLK-1. De esta manera la
presente invención proporciona un procedimiento terapéutico para el
tratamiento de muchas clases de tumores sólidos incluyendo, aunque
sin limitación, glioblastoma, melanoma y sarcoma de Kaposi, y
carcinoma de ovario, pulmón, de mama, de próstata, pancreático, de
colon y epidermoide. Además, los datos sugieren que la
administración de compuestos que inhiben la ruta de transducción de
señales mediada por KDR/Flk-1 puede usarse también
en el tratamiento de hemangioma, reestenosis y retinopatía
diabética.
Adicionalmente, esta invención se refiere a la
inhibición de vasculogénesis y angiogénesis por otras rutas
mediadas por receptor, incluyendo la ruta que comprende el receptor
de flt-1.
La transducción de señales mediada por tirosina
quinasa receptora se inicia por interacción extracelular con un
factor de crecimiento específico (ligando), seguido de dimerización
del receptor, estimulación transitoria de la actividad tirosina
quinasa intrínseca de la proteína y autofosforilación. Los sitios de
unión se crean así para la transducción de señales de moléculas
intracelulares que conduce a la formación de complejos con un
espectro de moléculas de señalización citoplásmica que facilita la
respuesta celular apropiada, por ejemplo, división celular y
efectos metabólicos hacia el microentorno extracelular. Véase,
Schlessinger y Ullrich, 1992, Neuron, 9:1-20.
La cercana homología de las regiones
intracelular de KDR/FLK-1 con la del receptor de
PDGF-\beta (homología del 50,3%) y/o el
relacionado receptor de flt-1 indica la inducción de
rutas de transducción de señales solapantes. Por ejemplo, para el
receptor de PDGF-\beta, los miembros de la familia
src (Twamley et al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
90:7696-7700),
fosfatidilinositol-3'-quinasa (Hu
et al., 1992, Mol. Cell. Biol., 12:981-990),
fosfolipasa c\gamma (Kashishian y Cooper, 1993, Mol. Cell. Biol.,
4:49-51), proteína activadora de
ras-GTPasa, (Kashishian et al., 1992, EMBO
J., 11:1373-1382), PTP-ID/syp
(Kazlauskas et al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 10
90:6939-6943), Grb2 (Arvidsson et al., 1994,
Mol. Cell. Biol., 14:6715-6726), y las moléculas
adaptadoras Shc y Nck (Nishimura et al., 1993, Mol. Cell.
Biol., 13:6889-6896), se ha demostrado que se unen a
regiones que implican diferentes sitios de autofosforilación.
Véase, en general, Claesson-Welsh, 1994, Prog.
Growth Factor Res., 5:37-54. De esta manera, es
probable que las rutas de transducción de señales activadas por
KDR/FLK-1 incluyan la ruta ras (Rozakis et
al., 1992, Nature, 360:689-692), las rutas
PI-3'-quinasa, mediada por src y
mediada por plc\gamma. Cada una de estas rutas puede desempeñar un
papel crítico en el efecto angiogénico y/o vasculogénico de
KDR/FLK-1 en células endoteliales. Por consiguiente,
otro aspecto más de esta invención se refiere al uso de los
compuestos orgánicos descritos en este documento para modular la
angiogénesis y vasculogénesis puesto que dichos procedimientos
están controlados por estas rutas.
Por el contrario, los trastornos relacionados
con el encogimiento, contracción o cierre de los vasos sanguíneos,
tales como reestenosis, están implicados también y pueden tratarse o
prevenirse mediante los procedimientos de esta invención.
Los trastornos fibróticos se refieren a la
formación anormal de matrices extracelulares. Los ejemplos de
trastornos fibróticos incluyen cirrosis hepática y trastornos
proliferativos celulares mesangiales. La cirrosis hepática está
caracterizada por el aumento de los constituyentes de la matriz
extracelular que da como resultado la formación de una huella
hepática. Un aumento de la matriz extracelular que da como resultado
una huella hepática puede estar provocado también por una infección
vírica tal como hepatitis. Los lipocitos parecen desempeñar un
papel principal en la cirrosis hepática. Otros trastornos fibróticos
implicados incluyen aterosclerosis.
Los trastornos proliferativos celulares
mesangiales se refieren a trastornos provocada por la proliferación
anormal de células mesangiales. Los trastornos proliferativos
mesangiales incluyen diversas enfermedad renales humanas tales como
glomerulonefritis, nefropatía diabética y nefroesclerosis maligna
así como trastornos tales como síndromes de microangiopatía,
rechazo de transplantes, y glomerulopatías. Las RTK PDGFR se han
visto implicadas en el mantenimiento de la proliferación celular
mesangial. Floege et al., 1993, Kidney Internacional
43:47S-54S.
Muchos cánceres son trastornos proliferativos
celulares y, como se ha indicado anteriormente, las PK se han
asociado con trastornos proliferativos celulares. De esta manera, no
es sorprendente que las PK tales como, por ejemplo, miembros de la
familia RTK se hayan asociado con el desarrollo de cáncer. Algunos d
estos receptores, tales como EGFR (Tuzi et al., 1991, Br. J.
Cancer 63: 227-233, Torp et al., 1992, APMIS
100:713-719) HER2/neu (Slamon et al., 1989,
Science 244:707-712) y PDGF-R
(Kumabe et al., 1992, Oncogene, 7:627-633) se
sobre-expresan en muchos tumores y/o se activan
persistentemente mediante bucles autocrinos. De hecho, en los
cánceres más comunes y graves, se han demostrado estas
sobre-expresiones del receptor (Akbasak y
Suner-Akbasak et al., 1992, J. Neurol. Sci.,
111:119-133, Dickson et al., 1992, Cancer
Treatment Res. 61:24 9-273, Korc et al.,
1992, J. Clin. Invest. 90:1352-1360) y bucles
autocrinos (Lee y Donoghue, 1992, J. Cell. Biol.,
118:1057-1070, Korc et al., supra, Akbasak y
Suner-Akbasak et al., supra). Por ejemplo,
EGFR se ha asociado con carcinoma de células escamosas,
astrocitoma, glioblastoma, cáncer de cabeza y cuello, cáncer de
pulmón y cáncer de vejiga. HER2 se ha asociado con cáncer de mama,
de ovario, gástrico, de pulmón, de páncreas y de vejiga. PDGFR se
ha asociado con glioblastoma y melanoma así como con cáncer de
pulmón, ovario y próstata. El c-met de RTK se ha
asociado con la formación de tumores malignos. Por ejemplo,
c-met se ha asociado con, entre otros cánceres,
carcinomas y linfomas colorectal, de tiroides, pancreático, gástrico
y hepatocelular. Además c-met se ha relacionado con
leucemia. La sobre-expresión del gen
c-met se ha detectado también en pacientes con
enfermedad de Hodgkins y enfermedad de Burkitts.
IGF-IR, además de estar
implicado en el soporte nutricional y en diabetes de tipo II, se ha
asociado también con diversos tipos de cánceres. Por ejemplo,
IGF-I se ha visto implicado como un estimulador del
crecimiento autocrino para diversos tipos de tumores, por ejemplo
células de carcinoma en cáncer de mama humano (Arteaga et
al., 1989, J. Clin. Invest. 84:1418-1423) y
células tumorales de pulmón pequeñas (Macauley et al., 1990,
Cancer Res., 50:2511-2517). Además,
IGF-I, aunque está implicado integralmente en el
crecimiento y diferenciación normal del sistema nervioso, parece
ser también un estimulador autocrino de gliomas humanos.
Sandberg-Nordqvist et al., 1993, Cancer Res.
53:2475-2478. La importancia de
IGF-IR y sus ligandos en la proliferación celular
está soportada adicionalmente por el hecho de que muchos tipos de
células en cultivo (fibroblastos, células epiteliales, células de
músculo liso, linfocitos T, células mieloides, condrocitos y
osteoblastos (las células madre de la médula ósea)) son estimuladas
para crecer por IGF-I. Goldring y Goldring, 1991,
Eukaryotic Gene Expression, 1:301-326. Baserga y
Coppola sugieren que IGF-IR desempeña un papel
central en el mecanismo de transformación y, como tal, puede ser
una diana preferida para intervenciones terapéuticas para un amplio
espectro de malignidades humanas. Baserga, 1995, Cancer Res.,
55:249-252, Baserga, 1994, Cell
79:927-930, Coppola et al., 1994, Mol. Cell.
Biol., 14:9588-4595.
Las STK se han visto implicadas en muchos tipos
de cáncer incluyendo, particularmente, cáncer de mama (Cance, et
al., Int. J. Cancer, 54:571-77 (1993)).
La asociación entre actividad anormal de PK y
enfermedad no se restringe a cáncer. Por ejemplo, las RTK se han
asociado con enfermedades tales como psoriasis, diabetes mellitus,
endometriosis, angiogénesis, desarrollo de la placa ateromatosa,
enfermedad de Alzheimer, reestenosis, enfermedad de von
Hippel-Lindau, hiperproliferación epidérmica,
enfermedades neurodegenerativas, degeneración macular relacionada
con la edad y hemangiomas. Por ejemplo, EGFR se ha visto implicado
en curación de heridas corneanas y dérmicas. Los defectos en
Insulina-R e IGF-1R están indicados
en diabetes mellitus de tipo II. Una correlación más completa entre
las RTK específicas y sus indicaciones terapéuticas se muestra en
Plowman et al., 1994, DN&P 7:334-339.
Como se ha indicado anteriormente, no solo las
RTK sino también las CTK incluyendo, aunque sin limitación, src,
abl, fps, yes, fyn, lyn, lck, blk, hck, fgr y yrk (revisado por
Bolen et al., 1992, FASEB J., 6:3403-3409)
están implicadas en las ruta de transducción de señales
proliferativa y metabólica y de esta manera podría esperarse, y se
ha demostrado, que están implicadas en muchos trastornos mediados
por PTK a los que se refiere la presente invención. Por ejemplo, se
ha demostrado que src mutado (v-src) es una
oncoproteína (pp60^{v-src}) en pollo. Además, su
homólogo celular, el proto-oncogen
pp60^{c-src} transmite señales oncogénesis de
muchos receptores. La sobre-expresión de EGFR o
HER2/neu en tumores conduce a la activación constitutiva de
pp60^{chsrc}, que es característico de células malignas pero está
ausente en células normales. Por otro lado, los ratones con
expresión deficiente de c-src presentan un fenotipo
osteopetrótico, que indica una participación clave de
c-src en la función de los osteoclastos y una
posible implicación en trastornos relacionados.
Análogamente, Zap70 se ha visto implicado en la
señalización de células T que están relacionadas con trastornos
autoinmunes.
Las STK se han asociado con inflamación,
enfermedad autoinmune, inmunorespuestas, y trastornos de
hiperproliferación tales como reestenosis, fibrosis, psoriasis,
osteoartritis y artritis reumatoide.
Las PK se han visto implicadas también en el
implante de embriones. De esta manera, los compuestos de esta
invención pueden proporcionar un procedimiento eficaz para prevenir
dicho implante de embriones y, por lo tanto, ser útiles como
agentes de control de la natalidad. Los trastornos adicionales que
pueden tratarse o prevenirse usando los compuestos de esta
invención son trastornos inmunológicos tales como enfermedad
autoinmune, SIDA y trastornos cardiovasculares tales como
aterosclerosis.
Finalmente, actualmente se sospecha que ambas
RTK y CTK están implicadas en trastornos hiperinmunes.
Los ejemplos del efecto de numerosos compuestos
ejemplares de esta invención sobre diversas PTK se muestran en la
Tabla 2 a continuación. Los compuestos y datos presentados no deben
interpretarse como limitantes del alcance de esta invención de
ninguna manera.
Un compuesto de la presente invención o una sal
farmacéuticamente aceptable del mismo, puede administrarse como tal
a un paciente humano o puede administrarse en composiciones
farmacéuticas en las que los materiales anteriores se mezclan con
los vehículos o excipientes adecuado. Las técnicas para la
formulación y administración de fármacos pueden encontrarse en
"Remington's Pharmacological Sciences," Mack Publishing Co.,
Easton, PA., última edición.
Como se usa en este documento,
"administrar" o "administración" se refiere a suministrar
un compuesto de Fórmula (I) o una sal farmacéuticamente aceptable
del mismo o una composición farmacéutica que contiene un compuesto
de Fórmula (I) o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo de
esta invención a un organismo con el fin de prevenir o tratar un
trastorno relacionado con PK.
Las vías de administración adecuadas pueden
incluir, sin limitación, administración oral, rectal, transmucosa o
intestinal o inyección intramuscular, subcutánea, intramedular,
intratecal, intraventricular directa, intravenosa, intravitreal,
intraperitoneal, intranasal, o intraocular. Las vías de
administración preferidas son oral y parenteral.
Como alternativa, puede administrarse el
compuesto de una forma local en lugar de sistémica, por ejemplo,
inyectando el compuesto directamente a un tumor sólido, a menudo en
una formulación de depósito o de liberación sostenida.
Adicionalmente, puede administrarse el fármaco
en un sistema de suministro de fármaco dirigido, por ejemplo, en un
liposoma recubierto con un anticuerpo específico para el tumor. Los
liposomas se dirigirán a y serán absorbidos selectivamente por el
tumor.
Las composiciones farmacéuticas de la presente
invención pueden fabricarse por procedimientos bien conocidos en la
técnica, por ejemplo, por procedimientos convencionales de mezcla,
disolución, granulación, preparación de grageas, levigado,
emulsión, encapsulación, atropamiento o liofilización.
Las composiciones farmacéuticas para usar de
acuerdo con la presente invención pueden formularse de una manera
convencional usando uno o más vehículos fisiológicamente aceptables
que comprenden excipientes y auxiliares que facilitan el procesado
de los compuestos activos en preparaciones que pueden usarse
farmacéuticamente. La formulación apropiada depende de la vía de
administración elegida.
Para inyección, los compuestos de la invención
pueden formularse en soluciones acuosas, preferiblemente en
tampones fisiológicamente compatibles tales como solución de Hanks,
solución de Ringer, o tampón salino fisiológico. Para
administración transmucosa, en la formulación se usan los
penetradores apropiados para la barrera a permear. Dichos
penetradores generalmente se conocen en la técnica.
Para administración oral, los compuestos pueden
formularse combinando los compuestos activos con vehículos
farmacéuticamente aceptables bien conocidos en la técnica. Dichos
vehículos permiten formular los compuestos de la invención como
comprimidos, píldoras, pastillas, grageas, cápsulas, líquidos,
geles, jarabes, pastas, suspensiones y similares, para ingestión
oral por un paciente. Las preparaciones farmacéuticas para uso oral
pueden prepararse usando un excipiente sólido, opcionalmente
moliendo la mezcla resultante, y procesando la mezcla de gránulos,
después de añadir otros auxiliares adecuados si se desea, para
obtener comprimidos o núcleos de grageas. Los excipientes útiles
son, en particular, cargas tales como azúcares, incluyendo lactosa,
sacarosa, manitol, o sorbitol, preparaciones de celulosa tales
como, por ejemplo, almidón de maíz, almidón de trigo, almidón de
arroz y almidón de patata y otros materiales tales como gelatina,
goma de tragacanto, metilcelulosa, hidroxipropilmetilcelulosa,
carboximetilcelulosa sódica, y/o polivinilpirrolidona (PVP). Si se
desea, pueden añadirse agentes disgregantes, tales como polivinil
pirrolidona reticulada, goma de agar, o ácido algínico. Puede usarse
también una sal tal como alginato
sódico.
sódico.
Los núcleos de gragea están provistos con los
recubrimientos adecuados. Con este fin, pueden usarse soluciones de
azúcar concentradas que pueden contener opcionalmente goma arábiga,
talco, polivinil pirrolidona, gel carbopol, polietilenglicol, y/o
dióxido de titanio, soluciones de laca, y disolventes orgánicos
adecuados o mezclas de disolventes. Pueden añadirse colorantes o
pigmentos a los recubrimientos de comprimidos o grageas para
identificar o caracterizar diferentes combinaciones de dosis de
compuesto activo.
Las composiciones farmacéuticas que pueden
usarse por vía oral incluyen cápsulas enchufables hechas de
gelatina, así como cápsulas blandas selladas hechas de gelatina y
un plastificante, tal como glicerol o sorbitol. Las cápsulas
enchufables pueden contener los ingredientes activos mezclados con
una carga tal como lactosa, un aglutinante tal como almidón, y/o un
lubricante tal como talco o estearato de magnesio y, opcionalmente,
estabilizadores. En las cápsulas blandas, los compuestos activos
pueden disolverse o suspenderse en líquidos adecuados, tales como
aceite grasos, parafina líquida, o polietilenglicoles líquidos.
También pueden añadirse estabilizadores a estas formulaciones.
Las composiciones farmacéuticas que pueden
usarse también incluyen cápsulas de gelatina duras. Como ejemplo no
limitante, la formulación de producto farmacéutico oral en forma de
cápsula que contiene el compuesto activo puede ser de una potencia
de dosis de 50 y 200 mg (códigos de formulación
J-011248-AA-00 y
J-011248-AA-01,
respectivamente). Las dos potencias de dosis se preparan a partir de
los mismos gránulos llenando cápsulas de gelatina dura de diferente
tamaño, tamaño 3 para la cápsula de 50 mg y tamaño 0 para la cápsula
de 200 mg. la composición de la formulación puede ser, por ejemplo,
como se indica en la Tabla 2.
\vskip1.000000\baselineskip
Las cápsulas pueden envasarse en botellas de
vidrio o plástico marrón para proteger el compuesto activo de la
luz. Los recipientes que contienen la formulación de cápsula con el
compuesto activo deben almacenarse a temperatura ambiente controlada
(15-30ºC).
Para administración por inhalación, los
compuestos para usar de acuerdo con la presente invención se
suministran convenientemente en forma de pulverización en aerosol
usando un envase presurizado o un nebulizador y un propulsor
adecuado, por ejemplo, sin limitación, diclorodifluorometano,
triclorofluorometano, diclorotetrafluoroetano o dióxido de carbono.
En el caso de un aerosol presurizado, la dosificación unitaria puede
controlarse proporcionando una válvula para suministrar una
cantidad medida. Las cápsulas y cartuchos, por ejemplo, de gelatina
para usar en un inhalador o insuflador pueden formularse de manera
que contienen una mezcla en polvo del compuesto y una base en polvo
adecuada tal como lactosa o almidón.
Los compuestos pueden formularse también para
administración parenteral, por ejemplo, por inyección en embolada o
infusión continua. Las formulaciones para inyección pueden
presentarse en forma de dosificación unitaria, por ejemplo, en
ampollas o en recipientes multi-dosis, con un
conservante añadido. Las composiciones pueden tomar formas tales
como suspensiones, soluciones o emulsiones en vehículos oleosos o
acuosos, y pueden contener materiales de formulación tales como
agentes de suspensión, estabilización y/o dispersión.
Las composiciones farmacéuticas para
administración parenteral incluyen soluciones acuosas de una forma
soluble en agua, tales como, sin limitación, una sal, del compuesto
activo. Además, las suspensiones de los compuestos activos pueden
prepararse en un vehículo lipófilo. Los vehículos lipófilos
adecuados incluyen aceites grasos tales como aceite de sésamo,
ésteres de ácido graso sintéticos tales como oleato de etilo y
triglicéridos, o materiales tales como liposomas. Las suspensiones
acuosas para inyección pueden contener sustancias que aumentan la
viscosidad de la suspensión, tales como carboximetil celulosa
sódica, sorbitol, o dextrano. Opcionalmente, la suspensión puede
contener también estabilizadores adecuados y/o agentes que aumentan
la solubilidad de los compuestos para permitir la preparación de
soluciones muy concentradas.
Como alternativa, el ingrediente activo puede
estar en forma de polvo para constitución con un vehículo adecuado,
por ejemplo, agua estéril, sin pirógenos, antes de su uso.
Los compuestos pueden formularse también en
composiciones rectales tales como supositorios o enemas de
retención, usando, por ejemplo, bases de supositorio convencionales
tales como manteca de cacao u otros glicéridos.
\newpage
Además de las formulaciones descritas
anteriormente, los compuestos pueden formularse también como
preparaciones de depósito. Dichas formulaciones de actuación
prolongada pueden administrarse por implante (por ejemplo,
subcutánea o intramuscular) o por inyección intramuscular. Un
compuesto de esta invención puede formularse para esta vía de
administración con materiales poliméricos o hidrófobos adecuados
(por ejemplo, en una emulsión con un aceite farmacológicamente
aceptable), con resinas de intercambio de iones, o como un derivado
apenas soluble tal como, sin limitación, una sal apenas soluble.
Un ejemplo no limitante de un vehículo
farmacéutico para los compuestos hidrófobos de la invención es un
sistema co-disolvente que comprende alcohol
bencílico, un tensioactivo no polar, un polímero orgánico miscible
en agua y una fase acuosa tal como el sistema de
co-disolvente VPD. VPD es una solución de alcohol
bencílico al 3% p/v, tensioactivo no polar Polisorbate 80 al 8%
p/v, y polietilenglicol 300 al 65% p/v, y el resto del volumen
etanol absoluto. El sistema de co-disolvente VPD
(VPD: D5W) está compuesto por VPD diluido 1:1 con dextrosa al 5% en
solución acuosa. Este sistema de co-disolvente
disuelve bien los compuestos hidrófobos, y produce por sí mismo una
baja toxicidad después de administración sistémica. Naturalmente,
las proporciones de dicho sistema de co-disolvente
pueden variarse considerablemente sin destruir sus características
de solubilidad y toxicidad. Adicionalmente, la identidad de los
componentes co-disolventes puede variarse: por
ejemplo, pueden usarse otros tensioactivos no polares de baja
toxicidad en lugar de Polisorbate 80, el tamaño de la fracción de
polietilenglicol puede variarse, otros polímeros biocompatibles
pueden sustituir al polietilenglicol, por ejemplo, polivinil
pirrolidona, y otros azúcares o polisacáridos pueden sustituir a la
dextrosa.
Como alternativa, pueden emplearse otros
sistemas de suministro para compuestos farmacéuticos hidrófobos.
Los liposomas y emulsiones son ejemplos bien conocidos de vehículos
de suministro o vehículos para fármacos hidrófobos. Además, pueden
emplearse también ciertos disolventes orgánicos tales como
dimetilsulfóxido, aunque a menudo al coste de una mayor
toxicidad.
Además, los compuestos pueden suministrarse
usando un sistema de liberación sostenida, tal como matrices
semipermeables de polímeros sólidos hidrófobos que contienen el
agente terapéutico. Diversos materiales de liberación sostenida se
han establecido y los conocen bien los especialistas en la técnica.
Las cápsulas de liberación sostenida pueden, dependiendo de su
naturaleza química, liberar los compuestos durante desde unas pocas
semanas hasta más de 100 días. Dependiendo de la naturaleza química
y la estabilidad biológica del reactivo terapéutico, pueden
emplearse estrategias adicionales para la estabilización de
proteínas.
Las composiciones farmacéuticas en este
documento pueden comprender también vehículos o excipientes en fase
sólida o gel adecuados. Los ejemplos de dichos vehículos o
excipientes incluyen, aunque sin limitación, carbonato cálcico,
fosfato cálcico, diversos azúcares, almidones, derivados de
celulosa, gelatina, y polímeros tales como polietilenglicoles.
Muchos de los compuestos moduladores de PK de la
invención pueden proporcionarse en forma de sales fisiológicamente
aceptables en las que el compuesto reivindicado puede formar la
especie cargada negativa o positivamente. Los ejemplos de sales en
las que el compuesto forma el resto cargado positivamente incluyen,
sin limitación, amonio cuaternario (definido en otra parte de este
documento), sales tales como clorhidrato, sulfato, carbonato,
lactato, tartrato, malato, maleato, succinato en las que el átomo de
nitrógeno del grupo amonio cuaternario es un nitrógeno del
compuesto seleccionado de esta invención que se ha hecho reaccionar
con el ácido apropiado. Las sales en las que un compuesto de esta
invención forma la especie cargada negativamente incluyen, sin
limitación, las sales de sodio, potasio, calcio y magnesio formadas
por la reacción de un grupo ácido carboxílico en el compuesto con
una base apropiada (por ejemplo, hidróxido sódico (NaOH), hidróxido
potásico (KOH), hidróxido cálcico (Ca(OH)_{2}),
etc.).
Las composiciones farmacéuticas adecuadas para
usar en la presente invención incluyen composiciones en las que los
ingredientes activos están contenidos en una cantidad suficiente
para conseguir el fin pretendido, por ejemplo, la modulación de la
actividad de PK o el tratamiento o prevención de un trastorno
relacionado con PK.
Más específicamente, una cantidad
terapéuticamente eficaz significa una cantidad de compuesto eficaz
para prevenir, aliviar o mejorar los síntomas de enfermedad o
prolongar la supervivencia del sujeto que se está tratando.
La determinación de una cantidad
terapéuticamente eficaz está dentro de las capacidades de los
especialistas en la técnica, especialmente a la luz de la
descripción detallada proporcionada en este documento.
Para cualquier compuesto usado en los
procedimientos de la invención, la cantidad o dosis terapéuticamente
eficaz puede estimarse inicialmente a partir de ensayos de cultivo
celular. Después, la dosificación puede formularse para usar en
modelos animales para conseguir un intervalo de concentración en
circulación que incluye la CI_{50} según se ha determinado en el
cultivo celular (es decir, la concentración del compuesto de ensayo
que consigue la mitad de la inhibición máxima de la actividad de
PK). Dicha información puede usarse después para determinar con más
precisión las dosis útiles en seres humanos.
La toxicidad y la eficacia terapéutica de los
compuestos descritos en este documento pueden determinarse por
procedimientos farmacéuticos convencionales en cultivos celulares o
animales experimentales, por ejemplo, determinando la CI_{50} y
la DL_{50} (analizándose ambas en otra parte en este documento)
para un compuesto en cuestión. Los datos obtenidos a partir de
estos ensayos de cultivo celular y estudios con animales pueden
usarse para formular un intervalo de dosificación para usar en seres
humanos. La dosificación puede variar dependiendo de la forma de
dosificación empleada y de la vía de administración utilizada. La
formulación exacta, vía de administración y dosificación puede
elegirlas el médico individual según el estado del paciente. (Véase,
por ejemplo, Fingl, et al., 1975, en "The Pharmacological
Basis of Therapeutics", Cáp. 1 pág. 1).
La cantidad e intervalo de dosificación pueden
ajustarse individualmente proporcionando niveles en plasma de las
especies activas que son suficientes para mantener los efectos
moduladores de quinasa. Estos niveles en plasma se denominan
concentraciones eficaces mínimas (MEC). Las MEC variarán para cada
compuesto aunque pueden estimarse a partir de datos in
vitro, por ejemplo, la concentración necesaria para conseguir el
50-90% de inhibición de una quinasa puede
determinarse usando los ensayos descritos en este documento. Las
dosificaciones necesarias para conseguir las MEC dependerán de
características individuales y de la vía de administración. Pueden
usarse ensayos por HPLC o bioensayos para determinar concentraciones
en plasma.
Los intervalos de dosificación pueden
determinarse también usando valores de MEC. Los compuestos deben
administrarse usando un régimen que mantenga los niveles en plasma
por encima de las MEC durante el 10-90% del tiempo,
preferiblemente entre 30-90% y aún más
preferiblemente entre el 50-90%.
Actualmente, las cantidades terapéuticamente
eficaces de los compuestos de Fórmula (I) pueden variar de
aproximadamente 25 mg/m^{2} a 1500 mg/m^{2} por día;
preferiblemente de aproximadamente 3 mg/m^{2}/día. Aún más
preferiblemente de 50 mg/qm hasta 400 mg/qd.
En los casos de administración local o captación
selectiva, la concentración local eficaz del fármaco puede no estar
relacionada con la concentración en plasma y pueden emplearse otros
procedimientos conocidos en la técnica para determinar la cantidad
de dosificación e intervalo correctos.
La cantidad de una composición administrada
dependerá, por supuesto, del sujeto a tratar, de la gravedad de la
aflicción, del modo de administración, del juicio del médico que lo
prescribe, etc.
Las composiciones pueden presentarse, si se
desea, en un envase o dispositivo dosificador, tal como un kit
aprobado por la FDA, que puede contener una o más formas de
dosificación unitarias que contienen el ingrediente activo. El
envase puede comprender, por ejemplo, una lámina metálica o de
plástico, tal como un envase de tipo blíster. El envase o
dispositivo dosificador puede llevar instrucciones de
administración. El envase o dosificador puede llevar también una
notificación asociada con el recipiente en una forma prescrita por
una agencia gubernamental que regula la fabricación, uso o venta de
productos farmacéuticos, reflejando dicha notificación la
aprobación por parte de la agencia de la forma de las composiciones
o de la administración humana o veterinaria. Dicha notificación,
por ejemplo, puede ser la etiqueta aprobada por la U.S. Food and
Drug Administration para fármacos de prescripción o de un inserto
aprobado en el producto. Las composiciones que comprenden un
compuesto de la invención formuladas en un vehículo farmacéutico
compatible puede prepararse también, ponerse en un recipiente
apropiado, y etiquetarse para tratamiento de un afección indicada.
Las afecciones adecuadas indicadas en la etiqueta pueden incluir
tratamiento de un tumor, inhibición de angiogénesis, tratamiento de
fibrosis, diabetes, y similares.
También es un aspecto de esta invención que un
compuesto descrito en este documento, o su sal o profármaco, puede
combinarse con otros agentes quimioterapéuticos para el tratamiento
de las enfermedades y trastornos analizados anteriormente. Por
ejemplo, un compuesto, sal o profármaco de esta invención puede
combinarse con agentes de alquilación tales como fluorouracilo
(5-FU) solo o combinado con leucovorina; u otros
agentes de alquilación tales como, sin limitación, otros análogos
de pirimidina tales como UFT, capecitabina, gemcitabina y
citarabina, los sulfonatos de alquilo, por ejemplo, busulfan (usado
en el tratamiento de leucemia granulocítica crónica), improsulfan y
piposulfan; aziridinas, por ejemplo, benzodepa, carboquona,
meturedepa y uredepa; etilenoiminas y metilmelaminas, por ejemplo,
altretamina, trietilenmelamina, trietilenfosforamida,
trietilentiofosforamida y trimetilolmelamina; y las mostazas de
nitrógeno, por ejemplo, clorambucilo (usado en el tratamiento de
leucemia linfocítica crónica, macroglobulinemia primaria y linfoma
no Hodgkin), ciclofosfamida (usada en el tratamiento de la
enfermedad de Hodgkin, mieloma múltiple, neuroblastoma, cáncer de
mama, cáncer de ovario, cáncer de pulmón, tumor de Wilm y
rabdomiosarcoma), estramustina, ifosfamida, novembriquina,
prednimustina y mostazas de uracilo (usadas en el tratamiento de
trombocitosis primaria, linfoma no Hodgkin, enfermedad de Hodgkin y
cáncer de ovario); y triazinas, por ejemplo, dacarbazina (usada en
el tratamiento de sarcoma de tejido blando).
Un compuesto, sal o profármaco de esta invención
puede usarse también junto con otros agentes quimioterapéuticos
antimetabolito tales como, sin limitación, análogos de ácido fólico,
por ejemplo metotrexato (usado en el tratamiento de leucemia
linfocítica aguda, coriocarcinoma, micosis fungoide, cáncer de mama,
cáncer de cabeza y cuello y sarcoma osteogénico) y pteropterina; y
los análogos de purina tales como mercaptopurina y tioguanina que
se usan en el tratamiento de leucemias granulocítica aguda,
linfocítica aguda y granulocítica crónica.
Se contempla que un compuesto, sal o profármaco
de esta invención puede usarse también junto con agentes
quimioterapéuticos basados en productos naturales tales como, sin
limitación, los acaloides de la vinca, por ejemplo, vinblastina
(usada en el tratamiento de cáncer de mama y testicular),
vincristina y vindesina; las epipodofilotoxinas, por ejemplo,
etopósido y tenipósido, siendo ambos útiles en el tratamiento de
cáncer testicular y sarcoma de Kaposi; los agentes
quimioterapéuticos, por ejemplo, daunorubicina, doxorubicina,
epirubicina, mitomicina (usados para tratar cáncer de estómago,
cuello del útero, colon, mama, vejiga y páncreas), dactinomicina,
temozolomida, plicamicina, bleomicina (usadas en el tratamiento de
cáncer de piel, esófago y tracto genitourinario); y los agentes
quimioterapéuticos enzimáticos tales como
L-asparaginasa.
Además de lo anterior, un compuesto, sal o
profármaco de esta invención podría usarse junto con los complejos
de coordinación de platino (cisplatino, etc.); ureas sustituidas
tales como hidroxiurea; derivados de metilhidrazina, por ejemplo,
procarbazina; supresores adrenocorticales, por ejemplo, mitotano,
aminoglutetimida; y hormonas y antagonistas de hormonas tales como
los adrenocorticoesteriodes (por ejemplo, prednisona), progestinas
(por ejemplo, caproato de hidroxiprogesterona); estrógenos (por
ejemplo, dietilstilbesterol); antiestrógenos tales como tamoxifeno;
erógenos, por ejemplo, propionato de testosterona; e inhibidores de
aromatasa tales como anastrozol.
Finalmente, se contempla también que la
combinación de un compuesto de esta invención será eficaz junto con
mitoxantrona o paclitaxel para el tratamiento de tumores sólidos,
cánceres o leucemias tales como, sin limitación, leucemia
mielogenosa aguda (no linfocítica).
Puede emplearse la siguiente metodología general
para preparar los compuestos de esta invención: el
2-oxindol apropiadamente sustituido (1 equiv.), el
aldehído apropiadamente sustituido (1,2 equiv.) y una base (0,1
equiv.) se mezclan en un disolvente (1-2 ml/mmol de
2-oxindol) y la mezcla se calienta después durante
de aproximadamente 2 a aproximadamente 12 horas. Después de
enfriar, el precipitado que se forma se filtra, se lava con etanol
frío o éter y se seca al vacío dando el producto sólido. Si no se
forma precipitado, la mezcla de reacción se concentra y el residuo
se tritura con diclorometano/éter, el sólido resultante se recoge
por filtración y después se seca. El producto puede purificarse
adicionalmente opcionalmente por cromatografía.
La base puede ser una base orgánica o
inorgánica. Si se usa una base orgánica, preferiblemente es un base
de nitrógeno. Los ejemplos de bases orgánicas de nitrógeno incluyen,
aunque sin limitación, diisopropilamina, trimetilamina,
trietilamina, anilina, piridina,
1,8-diazabiciclo[5,4,1]undec-7-eno,
pirrolidina y piperidina.
Los ejemplos de bases inorgánicas son, sin
limitación, amoniaco, hidróxidos de metal alcalino o alcalinotérreo,
fosfatos, carbonatos, bicarbonatos, bisulfatos y amidas. Los
metales alcalinos incluyen, litio, sodio y potasio mientras que los
alcalinotérreos incluyen calcio, magnesio y bario.
En una realización de esta invención actualmente
preferida, cuando el disolvente es un disolvente prótico, tal como
agua o alcohol, la base es una base inorgánica de metal alcalino o
alcalinotérreo, preferiblemente, un hidróxido de metal alcalino o
alcalinotérreo.
Estará claro para los especialistas en la
técnica, basado en principios generales conocidos de síntesis
orgánica y en las descripciones en este documento qué base será la
más apropiada para la reacción contemplada.
El disolvente en el que se realiza la reacción
puede ser un disolvente prótico o aprótico, preferiblemente es un
disolvente prótico. Un "disolvente prótico" es un disolvente
que tiene átomo o átomos de hidrógeno unidos covalentemente a
átomos de oxígeno o de nitrógeno que hacen a los átomos de hidrógeno
sensiblemente ácidos y de esta manera capaces de poder
"compartirse" con un soluto mediante enlace con hidrógeno. Los
ejemplos de disolventes próticos incluyen, sin limitación, agua y
alcoholes.
Un "disolvente aprótico" puede ser polar o
no polar pero, en cualquier caso, no contiene hidrógenos ácidos y
por lo tanto es capaz de unirse mediante hidrógeno con los solutos.
Los ejemplos, sin limitación, de disolventes apróticos no polares,
son pentano, hexano, benceno, tolueno, cloruro de metileno y
tetracloruro de carbono. Los ejemplos de disolventes apróticos
polares son cloroformo, tetrahidrofurano, dimetilsulfóxido y
dimetilformamida.
En una realización actualmente preferida de esta
invención, el disolvente es un disolvente prótico, preferiblemente
agua o un alcohol tal como etanol.
La reacción se realiza a temperaturas mayores
que la temperatura ambiente. La temperatura es generalmente de
aproximadamente 30ºC a aproximadamente 150ºC, preferiblemente de
aproximadamente 80ºC a aproximadamente 100ºC, más preferiblemente
de aproximadamente 75ºC a aproximadamente 85ºC, que es
aproximadamente el punto de ebullición del etanol. Por
"aproximadamente" se entiende que el intervalo de temperatura
está preferiblemente en un intervalo de 10 grados centígrados de la
temperatura indicada, más preferiblemente en un intervalo de 5
grados centígrados de la temperatura indicada y, aún más
preferiblemente, en un intervalo de 2 grados centígrados de la
temperatura indicada. De esta manera, por ejemplo, por
"aproximadamente 75ºC" se entiende 75ºC \pm 10ºC,
preferiblemente 75ºC \pm 5ºC y aún más preferiblemente, 75ºC \pm
2ºC.
Los 2-oxindoles y aldehídos,
pueden sintetizarse fácilmente usando técnicas bien conocidas en la
técnica química. Los especialistas en la técnica entenderán que
están disponibles otras rutas sintéticas para formar los compuestos
de la invención y que lo siguiente se ofrece a modo de ejemplo y no
como limitación.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Las siguientes preparaciones y ejemplos se dan
para permitir a los especialistas en la técnica entender más
claramente y practicar la presente invención. No deben considerarse
como que limitan el alcance de la invención, sino simplemente como
ilustrativos y representativos de la misma.
\vskip1.000000\baselineskip
POC_{13} (1,1 equiv.) se añade gota a gota a
dimetilformamida (3 equiv.) a -10ºC seguido de la adición del
pirrol apropiado disuelto en dimetilformamida. Después de agitar
durante dos horas, la mezcla de reacción se diluye con H_{2}O y
se basifica a pH 11 con KOH 10 N. El precipitado que se forma se
recoge por filtración, se lava con H_{2}O y se seca en un horno
de vacío dando el aldehído deseado.
\vskip1.000000\baselineskip
Una mezcla de un éster del ácido
pirrolcarboxílico y KOH (2-4 equiv.) en EtOH se
calienta a reflujo hasta que se indica que la reacción se ha
completado por cromatografía en capa fina (TLC). La mezcla de
reacción enfriada se acidifica a pH 3 con HCl 1 N. El precipitado
que se forma se recoge por filtración, se lava con H_{2}O y se
seca en un horno de vacío dando el ácido pirrolcarboxílico
deseado.
\vskip1.000000\baselineskip
A una solución agitada de un ácido
pirrolcarboxílico disuelto en dimetilformamida (0,3 M) se le añade
1-etil-3-(3-dimetilamino-propil)carbodiimida
(1,2 equiv.), 1-hidroxibenzotriazol (1,2 equiv.), y
trietilamina (2 equiv.). Se añade la amina apropiada (1 equiv.) y
la reacción se agita hasta que se indica que se ha completado por
TLC. Después se añade acetato de etilo a la mezcla de reacción y la
solución se lava con NaHCO_{3} saturado y salmuera (con sal
extra), se seca sobre MgSO_{4} anhidro y se concentra dando la
amida deseada.
\vskip1.000000\baselineskip
Una mezcla del oxindol (1 equivalente), 1
equivalente del aldehído y 1-3 equivalentes de
piperidina (o pirrolidina) en etanol (0,4 M) se agita a
90-100ºC hasta que se indica que la reacción se ha
completado por TLC. Después, la mezcla se concentra y el residuo se
acidifica con HCl 2 N. El precipitado que se forma se lava con
H_{2}O y EtOH y después se seca en un horno de vacío dando el
producto.
\vskip1.000000\baselineskip
Una mezcla del oxindol (1 equivalente), 1
equivalente del aldehído y 1-3 equivalentes de
piperidina (o pirrolidina) en etanol (0,4 M) se agita a
90-100ºC hasta que se indica que la reacción se ha
completado por TLC. La mezcla se enfría a temperatura ambiente y el
sólido que se forma se recoge por filtración al vacío, se lava con
etanol y se seca dando el producto. Si no se forma un precipitado
después de enfriar la mezcla de reacción, la mezcla se concentra y
se purifica por cromatografía en columna.
\vskip1.000000\baselineskip
Los siguientes ejemplos de la síntesis de
oxindoles representativos no deben considerarse limitantes del
alcance de esta invención de ninguna manera. Las rutas alternativas
para los oxindoles mostradas así como otros oxindoles a usar para
preparar los compuestos de esta invención resultarán evidentes para
los especialistas en la técnica basándose en las siguientes
descripciones. Dichas síntesis y oxindoles están dentro del alcance
y espíritu de esta invención.
5-Nitro-2-oxindol
(6,3 g) se hidrogenó en metanol sobre paladio al 10% sobre carbono
dando 3,0 g (rendimiento del 60%) del compuesto del título en forma
de un sólido blanco.
2-Oxindol (1,3 g) en 20 ml de
acetonitrilo se enfrió a -10ºC y se añadieron 2,0 g de
N-bromosuccinimida lentamente con agitación. La
reacción se agitó durante 1 hora a -10ºC y 2 horas a 0ºC. El
precipitado se recogió, se lavó con agua y se secó dando 1,9 g
(rendimiento del 90%) del compuesto del título.
\newpage
Oxalato de dietilo (30 ml) en 20 ml de éter seco
se añadió con agitación a 19 g de etóxido potásico suspendido en 50
ml de éter seco. La mezcla se enfrió en un baño de hielo y se
añadieron lentamente 20 ml de
3-nitro-o-xileno en
20 ml de éter seco. La mezcla espesa de color rojo oscuro se calentó
a reflujo durante 0,5 h, se concentró hasta un sólido rojo oscuro,
y se trató con hidróxido sódico al 10% hasta que se hubo disuelto
casi todo el sólido. La mezcla de color rojo oscuro se trató con
peróxido de hidrógeno al 30% hasta que el color rojo cambió a
amarillo. La mezcla se trató alternativamente con hidróxido sódico
al 10% y peróxido de hidrógeno al 30% hasta que el color rojo
oscuro ya no estuvo presente. El sólido se retiró por filtración y
el filtrado se acidificó con ácido clorhídrico 6 N. El precipitado
resultante se recogió por filtración al vacío, se lavó con agua, y
se secó al vacío dando 9,8 g (rendimiento del 45%) de ácido
2-metil-6-nitrofenilacético
en forma de un sólido blanquecino. El sólido se hidrogenó en
metanol sobre paladio al 10% sobre carbono dando 9,04 g del
compuesto del título en forma de un sólido blanco.
\vskip1.000000\baselineskip
5-Cloro-2-oxindol
(16,8 g) y 19,6 g de N-bromosuccinimida se
suspendieron en 140 ml de acetonitrilo y se calentaron a reflujo
durante 3 horas. La cromatografía en capa fina (sílice, acetato de
etilo) a las 2 horas del reflujo mostró
5-cloro-2-oxindol o
N-bromosuccinimida (Rf 0,8), producto (Rf 0,85) y un
segundo producto (Rf 0,9) cuyas proporciones no cambiaron después
de otra hora de reflujo. La mezcla se enfrió a 10ºC, el precipitado
se recogió por filtración al vacío, se lavó con 25 ml de etanol y se
aspiró hasta dejarlo seco durante 20 minutos en el embudo dando
14,1 g de producto húmedo (rendimiento del 56%). El sólido se
suspendió en 200 ml de etanol desnaturalizado y la suspensión se
lavó por agitación y calentamiento a reflujo durante 10 minutos. La
mezcla se enfrió en un baño de hielo hasta 10ºC. El producto sólido
se recogió por filtración al vacío, se lavó con 25 ml de etanol y
se secó al vacío a 40ºC dando 12,7 g (rendimiento del 51%) de
7-bromo-5-cloro-2-oxindol.
\vskip1.000000\baselineskip
5-Fluoroisatina (8,2 g) se
disolvió en 50 ml de hidrazina hidrato y se calentó a reflujo
durante 1,0 h. Las mezclas de reacción se vertieron después en agua
enfriada con hielo. El precipitado se filtró después, se lavó con
agua y se secó en un horno de vacío dando el compuesto del
título.
\vskip1.000000\baselineskip
2-Oxindol (6,5 g) se disolvió en
25 ml de ácido sulfúrico concentrado y la mezcla se mantuvo a de -10
a -15ºC mientras 2,1 ml de ácido nítrico fumante se añadían gota a
gota. Después de la adición del ácido nítrico la mezcla de reacción
se agitó a 0ºC durante 0,5 h y se vertió en agua enfriada con hielo.
El precipitado se recogió por filtración, se lavó con agua y
cristalizó en ácido acético al 50%. El producto cristalino se filtró
después, se lavó con agua y se secó al vacío dando 6,3 g (70%) de
5-nitro-2-oxindol.
\vskip1.000000\baselineskip
A un matraz de 100 ml cargado con 27 ml de ácido
clorosulfónico se le añadieron lentamente 13,3 g de
2-oxindol. La temperatura de reacción se mantuvo
por debajo de 30ºC durante la adición. Después de la adición, la
mezcla de reacción se agitó a temperatura ambiente durante 1,5 h,
se calentó a 68ºC durante 1 h, se enfrió, y se vertió en agua. El
precipitado se lavó con agua y se secó en un horno de vacío dando
11,0 g de
5-clorosulfonil-2-oxindol
(rendimiento del 50%) que se usó sin purificación adicional.
5-Clorosulfonil-2-oxindol
(2,1 g) se añadió a 10 ml de hidróxido de amonio en 10 ml de etanol
y se agitó a temperatura ambiente durante una noche. La mezcla se
concentró y el sólido se recogió por filtración al vacío dando 0,4 g
(rendimiento del 20%) del compuesto del título en forma de un sólido
blanquecino.
\vskip1.000000\baselineskip
A un matraz de 100 ml cargado con 27 ml de ácido
clorosulfónico se le añadieron lentamente 13,3 g de
2-oxindol. La temperatura de reacción se mantuvo
por debajo de 30ºC durante la adición. La mezcla de reacción se
agitó a temperatura ambiente durante 1,5 horas, se calentó a 68ºC
durante 1 hora, se enfrió, y se vertió en agua. El precipitado que
se formó se filtró, se lavó con agua y se secó en un horno de vacío
dando 11,0 g (50%) de
5-clorosulfonil-2-oxindol
que se usó sin purificación adicional.
Una suspensión de 3 g de
5-clorosulfonil-2-oxindol,
1,15 g de isopropilamina y 1,2 ml de piridina en 50 ml de
diclorometano se agitó a temperatura ambiente durante 4 horas
durante las cuales se formó un sólido blanco. El sólido se recogió
por filtración al vacío, la suspensión se lavó con etanol caliente,
se enfrió, se recogió por filtración al vacío y se secó al vacío a
40ºC durante una noche dando 1,5 g (45%) de
5-isopropilaminosulfonil-2-oxindol.
\global\parskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,69 (s, a, 1 H, NH), 7,63 (dd, J = 2 y 8 Hz, 1 H), 7,59
(d, J = 2 Hz, 1 H), 7,32 (d, J = 7 Hz, 1 H,
NH-SO_{2}-), 6,93 (d, J = 8 Hz, 1 H), 3,57 (s, 2
H), 3,14-3,23 (m, 1 H, CH-(CH_{3})_{2}),
0,94 (d, J = 7 Hz, 6 H, 2xCH_{3}).
\vskip1.000000\baselineskip
Una suspensión de
5-clorosulfonil-2-oxindol
(1,62 g, 7 mmol), anilina (0,782 ml, 8,4 mmol) y piridina (1 ml) en
diclorometano (20 ml) se agitó a temperatura ambiente durante 4
horas. La mezcla de reacción se diluyó con acetato de etilo (300
ml) y se acidificó con ácido clorhídrico 1 N (16 ml). La capa
orgánica se lavó con bicarbonato sódico y salmuera, se secó y se
concentró. El residuo se lavó con etanol (3 ml) y después se
cromatografió sobre gel de sílice eluyendo con metanol/diclorometano
1:9 dando
5-fenilaminosulfonil-2-oxindol.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,71 (s, a, 1 H, NH), 10,10 (s, a, 1 H, NH),
7,57-7,61 (m, 2 H), 7,17-7,22 (m, 2
H), 7,06-7,09 (m, 2 H), 6,97-7,0 (m,
1 H), 6,88 (d, J = 8,4 Hz, 1 H), 3,52 (s, 2 H).
\vskip1.000000\baselineskip
Una solución de
5-clorosufonil-2-oxindol
(3 g) y 3-aminopiridina (1,46 g) en piridina (15 ml)
se agitó a temperatura ambiente durante una noche y en dicho
momento se obtuvo un sólido pardo. El sólido se filtró, se lavó con
etanol y se secó al vacío para producir 1,4 g (38%) de
piridin-3-ilamida del ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,74 (s, 1 H, NH), 10,39 (s, 1 H, SO_{2}NH),
8,27-8,28 (d, 1 H), 8,21-8,23 (m, 1
H), 7,59-7,62 (m, 2 H), 7,44-7,68
(m, 1 H), 7,24-7,28 (m, 1 H),
6,69-6,71 (d, 1 H), 3,54 (s, 2 H).
EM m/z (IQPA+) 290,2.
\vskip1.000000\baselineskip
5-Bromo-2-oxindol
(5 g, 23,5 mmol) se disolvió en 110 ml de tolueno y 110 ml de etanol
con agitación y un poco de calor. Se añadió
tetraquis(trifenilfosfina)paladio (0) (1,9 g, 1,6
mmol) seguido de 40 ml (80 mmol) de carbonato sódico acuoso 2 M. A
esta mezcla se le añadió ácido benceno bórico (3,7 g, 30,6 mmol) y
la mezcla se calentó en un baño de aceite a 100ºC durante 12 horas.
La reacción se enfrió, se diluyó con acetato de etilo. (500 ml), se
lavó con bicarbonato sódico saturado (200 ml), agua (200 ml), HCl 1
N (200 ml) y salmuera (200 ml). La capa orgánica se secó sobre
sulfato de magnesio y se concentró dando un sólido pardo. La
trituración con diclorometano dio 3,8 g (77%) de
5-fenil-2-oxindol en
forma de un sólido tostado.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,4 (s a, 1 H, NH), 7,57 (dd, J = 1,8 y 7,2 Hz, 1 H), 7,5
a 7,35 (m, 5 H), 7,29 (m, 1 H), 6,89 (d, J = 8,2 Hz, 1 H), 3,51 (s,
2 H, CH_{2}CO).
EM m/z 209 [M^{+}].
De una forma similar, pueden prepararse los
siguientes oxindoles:
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,46 (a, 1 H, NH), 7,64 (d, J = 1,8 Hz, 2 H), 7,57 (m, 1
H), 7,27 (m, 2 H), 7,05 (d, J = 1,1 Hz, 1 H), 3, 5 (s, 2 H).
EM-EI m/z 277/279 [M]
^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,39 (s, 1 H, NH), 7,49 (d, J = 8,0 Hz, 2 H), 7,25 (d, J =
8 Hz, 3 H), 7, 17 (dd, J = 1,5 y 7,8 Hz, 1 H), 6,99 (d, J = 1,5 Hz,
1 H), 3,48 (s, 2 H, CH_{2}CO), 2,60 (t, J = 7,5 Hz, 2 Hz,
CH_{2}CH_{3}), 1, 57 (m, 2 H, CH_{2}), 1,32 (m, 2 H,
CH_{2}), 0,9 (t, J = 7,5 Hz, 3 H, CH_{3}).
\vskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,29 (s a, 1 H, NH), 7,16-7,21 (m, 2 H),
7,08 (d, J = 2,4 Hz, 1 H), 6,97-7,01 (m, 2 H), 6,89
(d, J = 0,8 Hz, 1 H), 3,71 (s, 3 H, OCH_{3}), 3,47 (s, 2 H,
CH_{2}CO), 2,86 (m, 1 H, CH(CH_{3})_{2}), 1,19,
(d, J = 6,8 Hz, 6 H, CH(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 281
[M]^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,39 (s a, 1 H, NH), 7,50 (d, J = 8,2 Hz, 2 H), 7,28 (d, J
= 8,2 Hz, 2 H), 7,25 (d, J = 7,5 Hz, 1 H), 7,17 (dd, J = 1,6 y 7,5
Hz, 1 H), 6,99 (d, J = 1,6 Hz, 1 H), 3,48 (s, 2 H, CH_{2}CO),
2,63 (c, J = 7,6 Hz, 2 H, CH_{2}CH_{3}), 1,20 (t, J = 7,6 Hz, 3
H, CH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 237
[M]^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,37 (s a, 1 H, NH), 7,43 (m, 1 H),
7,35-7,39 (m, 1 H), 7,17-7,27 (m, 3
H), 7,01 (d, J = 1,8 Hz, 1 H), 3, 49 (s, 2 H, CH_{2}CO), 2,95 (m,
1 H, CH(CH_{3})_{2}), 1,24 (d, J = 6,8 Hz, 6 H, CH
(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 251
[M]^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,28 (s a, 1 H, NH), 7,17 (m, 2 H), 6, 93 (dd, J = 1, 6 y
7, 6 Hz, 1 H), 6,86 (d, J = 1, 6 Hz, 1 H), 6,63 (d, J = 2,4 Hz, 1
H), 6,58 (dd, J = 2,4 y 8,5 Hz, 1 H), 3,79 (s, 3 H, OCH_{3}), 3,79
(s, 3 H, OCH_{3}), 3,45 (s, 2 H, CH_{2}CO).
EM-EI m/z 269
[M]^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 10,51 (s, 1 H, NH), 8,81 (d, J = 2,5 Hz, 1 H), 8,55 (dd, J
= 1,8 y 5,7 Hz, 1 H), 8 (m, 1 H), 7,45 (dd, J = 5,7 y 9,3 Hz, 1 H),
7,3 (m, 2 H), 7,05 (s, 1 H), 3,51 (s, 2 H, CH_{2}CO).
EM m/z 210 [M]^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
A una solución de
4-carboxi-2-oxindol
(200 mg, 1,13 mmol) y
3-cloro-4-metoxifenilamina
(178 mg, 1,13 mmol) en dimetilformamida (15 ml) a temperatura
ambiente se le añadió hexafluorofosfato de
benzotriazol-1-iloxitris(dimetilamino)fosfonio
(reactivo BOP, 997 mg, 2,26 mmol) seguido de
4-dimetilaminopiridina (206 mg, 1,69 mmol). La
mezcla se agitó a temperatura ambiente durante 72 horas. La
reacción se diluyó después con acetato de etilo (300 ml), se lavó
con bicarbonato sódico saturado (100 ml), agua, ácido clorhídrico 2
N (100 ml), agua (3 x 200 ml) y salmuera. Después se secó sobre
sulfato de magnesio y se concentró. El residuo se trituró con
acetato de etilo dando
(3-cloro-4-metoxifenil)-amida
del ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-4-carboxílico
en forma de un sólido rosa.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta.10,50 (s, a, 1 H, NH), 10,12 (s, a, 1 H, NH), 7,9 (s, J =
2,5 Hz, 1 H), 7,62 (dd, J = 2,5 y 9 Hz, 1 H), 7,38 (d, J = 7,6 Hz,
1 H), 7,32 (t, J = 7,6 Hz, 1 H), 7,13 (d, J = 9 Hz, 1 H), 6,98 (d,
J = 7, 6 Hz, 1 H), 3,83 (s, 3 H, OCH_{3}), 3,69 (s, 2 H,
CH_{2}).
EM-EI m/z 316
[M]^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
Una solución de trimetilsilildiazometano en
hexano (2 M) se añadió gota a gota a una solución de 2,01 g de
2-cloro-3-carboxi-nitrobenceno
en 20 ml de metanol a temperatura ambiente hasta que no ocurrió más
desprendimiento de gas. Después se añadió ácido acético para
inactivar el exceso de trimetilsilildiazometano. La mezcla de
reacción se evaporó al vacío y el residuo se secó en un horno
durante una noche. El
2-cloro-3-metoxicarbonilnitrobenceno
obtenido era suficientemente puro para la siguiente reacción.
Se añadió malonato de dimetilo (6,0 ml) a una
suspensión enfriada con hielo de 2,1 g de hidruro sódico en 15 ml
de DMSO. La mezcla de reacción se agitó a 100ºC durante 1 hora y
después se enfrió a temperatura ambiente. Se añadió
2-cloro-3-metoxicarbonilnitrobenceno
(2,15 g) en una porción y la mezcla se calentó a 100ºC durante 1,5
horas. La mezcla de reacción se enfrió después a temperatura
ambiente, se vertió en agua enfriada con hielo, se acidificó a pH 5
y se extrajo con acetato de etilo. La capa orgánica se lavó con
salmuera, se secó sobre sulfato sódico anhidro y se concentró dando
3,0 g del
2-metoxicarbonil-6-nitrofenil-malonato
de dimetilo.
2-Metoxicarbonil-6-nitrofenilmalonato
de dimetilo (3,0 g) se calentó a reflujo en 50 ml de ácido
clorhídrico 6 N durante una noche. La mezcla se concentró a
sequedad, se añadieron 20 ml de etanol y 1,1 g de cloruro de estaño
(II) y la mezcla se calentó a reflujo durante 2 horas. La mezcla se
filtró a través de Celite, se concentró y se cromatografió sobre
gel de sílice usando acetato de etilo:hexano:ácido acético como
eluyente dando 0,65 g (37%) de
4-carboxi-2-oxindol
en forma de un sólido blanco.
\global\parskip0.930000\baselineskip
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 12,96 (s, a, 1 H, COOH), 10,74 (s, a, 1 H, NH), 7,53 (d, J
= 8 Hz, 1 H), 7,39 (t, J = 8 Hz, 1 H), 7,12 (d, J = 8 Hz, 1 H), 3,67
(s, 2 H).
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Dietilaminopropil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-isopropil-4-fenil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
Una mezcla de clorhidrato de
2-aminoacetofenona (1' equiv.), isobutirilacetato de
etilo (1,2 equiv.) y acetato sódico (2,4 equiv.) en H_{2}O se
agitó a 100ºC durante 18 horas y después se enfrió a temperatura
ambiente. La capa acuosa se retiró por decantación y el aceite se
disolvió en acetato de etilo. Después se lavó con agua y salmuera y
después se secó dando (93%) de éster etílico del ácido
2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
en forma de un aceite pardo rojizo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 11,21 (s, a, 1 H, NH), 7,14-7,27 (m, 5 H),
6,70 (d, J = 2,7 Hz, 1 H), 4,02 (c, J = 7,1 Hz, 2 H,
OCH_{2}CH_{3}), 3,65 (m, 1 H, CH(CH_{3})_{2}),
1,22 (d, J = 7,5 Hz, 6 H, CH(CH_{3})_{2}), 1,04
(t, J = 7,1 Hz, 3 H, OCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 257 [M^{+}].
El pirrol anterior se formiló usando el
procedimiento A dando (41%) de éster etílico del ácido
5-formil-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
en forma de un sólido rojizo.
^{1}H RMN (300 MHz; DMSO-d6)
\delta 12,35 (s, a, 1 H, NH), 9,14 (s, 1 H, CHO), 7,36 (s, 5 H),
3,96 (c, J = 7,1 Hz, 2 H, OCH_{2}CH_{3}), 3,74 (m, 1 H,
CH(CH_{3})_{2}), 1,29 (d, J = 6,9 Hz, 6 H, CH
(CH_{3})_{2}), 0,90 (t, J = 7,1 Hz, 3 H,
OCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 285 [M^{+}].
El éster del ácido pirrolcarboxílico se
hidrolizó usando el procedimiento B dando (57%) de ácido
5-formil-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
en forma de un sólido beige.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 12,28 (s, a, 1 H, COOH), 12,02 (s, a, 1 H, NH), 9, 10 (s, 1
H, CHO), 7,35 (s, 5 H), 3,81 (m, 1 H,
CH(CH_{3})_{2}), 1,28 (d, J = 6,9 Hz, 6 H,
CH(CH_{3})_{2}.
EM-EI m/z 257 [M^{+}].
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(120 mg, 0,31 mmol) se condensó con ácido
5-formil-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(3-dietilaminopropil)amida (preparado por el
procedimiento C) dando 120 mg (71%) del compuesto del título.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 14,23 (s, a, 1 H, NH), 11,08 (s, a, 1 H, NH), 7,
38-7,55 (m, 7 H, Ar-H y
CONHCH_{2}), 7,30 (s, 1 H, H-vinilo), 7,26 (dd, J
= 1,8 y 7,8 Hz, 1 H), 6, 85 (d, J = 8,7 Hz, 1 H), 3, 36 (m, 1 H,
CH(CH_{3})_{2}), 3,07 (m, 2 H, CH_{2}), 2, 34
(c, J = 7, 1 Hz, 4 H, N(CH_{2}CH_{3})_{2}),
2,22 (t, J = 6, 9 Hz, 2 H, CH_{2}), 1, 90 (m, 2 H, CH_{2}), 1,31
(d, J = 6, 9 Hz, 6 H, CH(CH_{3})_{2}), 0,86 (t, J
= 7,1 Hz, 6 H, N (CH_{2}CH_{3})_{2}).
EM m/z 565,1.
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Pirrolidin-1-ilpropil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-isopropil-4-fenil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
Ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(127 mg,
0,28 mmol) se condensó con 3-pirrolidin-1-il-propilamina (43 mg, 0,336 mmol) dando 140 mg (66%) del compuesto del título.
0,28 mmol) se condensó con 3-pirrolidin-1-il-propilamina (43 mg, 0,336 mmol) dando 140 mg (66%) del compuesto del título.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 14,40 (s, a, 1 H, NH), 7,38-7,47 (m, 7 H),
7,23-7,27 (m, 2 H), 6,84 (d, J = 8,1 Hz, 1 H), 3,36
(m, 1 H, CH(CH_{3})_{2}), 3,08 (m, 2 H, CH_{2}),
2,30 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 2,20 (t, J = 7,0 Hz, 2 H, CH_{2}),
1,62 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 1,42 (t, J = 7,0 Hz, 2 H, CH_{2}), 1,31
(d, J = 7,2 Hz, 6 H, CH(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 560 y 562
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\global\parskip1.000000\baselineskip
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(57 g. 0,27 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(120 mg) dando 78 mg (53%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 14,23 (s, a, 1 H, NH), 11,09 (s, a, 1 H, NH),
7,38-7,51 (m, 6 H), 7,25-7,28 (m, 2
H), 7,19 (t, 1 H, CONHCH_{2}), 6,85 (d, J = 7,8 Hz, 1 H), 3,43 (m,
1 H, CH(CH_{3})_{2}), 3,11 (m, 2 H, CH_{2}),
2,28-2,39 (m, 6 H, N (CH_{2}CH_{3})_{2}
y CH_{2}, 1,31 (d, J = 6,9 Hz, CH(CH_{3})_{2}),
0,85 (t, J = 7,0 Hz, 6 H,
N(CH_{2}CH_{3})_{2}.
EM-EI m/z 548 y 550 [M^{+} -1
y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
[3-(4-Metil-piperazin-1-il)propil]amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(53 mg, 0,25 mmol) se condensó
con[3-(4-metilpiperazin-1-il)propil]amida
del ácido
5-formil-2-isopropil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(300 mg) dando 65 mg del compuesto del título.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 14,22 (s, a, 1 H, NH), 11,08 (s, a, 1 H, NH),
7,23-7,50 (m, 9 H), 6, 85 (d, J = 8:7 Hz, 1 H),
3,37 (m, 1 H, CH(CH_{3})_{2}), 3,05 (m, 2 H,
CH_{2}), 2,24 (m, 8 H, 4xCH_{2}), 2,11 (m, 5 H, CH_{2} y
CH_{3}), 1,42 (m, 2 H, CH_{2}), 1,31 (d, J = 7,2 Hz, 6 H,
CH(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 589 y 591
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-metil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(44 mg, 0,21 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2-metil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(70 mg, preparada de la misma manera que el análogo isopropilo,
anterior) dando 0,03 g (27%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,87 (s, a, 1 H, NH), 11,11 (s, a, 1 H, NH),
7,36-7,51 (m, 6 H), 7,26 (dd, J = 1,8 y 8,1 Hz, 1
H), 7,2 (s, 1 H, H-vinilo), 7,09 (m, 1 H,
CONHCH_{2}), 6,83 (d, J = 8,1 1 Hz, 1 H), 3,17 (m, 2 H,
NCH_{2}), 2,48 (m, CH_{3}), 2,29-2,35 (m, 6 H,
3xNCH_{2}), 1,59 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 518 y 520 [M^{+} -1
y M^{+}+1]. 4H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 546 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Dimetilaminoetil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-metil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(46 mg, 0,22 mmol) se condensó
con(2-dimetilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2-metil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(65 mg) dando 60 mg (55%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,86 (s, a, 1 H, NH), 11,09 (s, a, 1 H, NH),
7,47-7,49 (m, 2 H), 7,38-7,41 (m, 4
H), 7,26 (dd, J = 2,2 y 8,3 Hz, 1 H), 7,21 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,04 (m, 1 H, CONHCH_{2}), 6,77 (d, J
= 8,3 Hz, 1 H), 3,15 (m, 2 H, NCH_{2}), 2,48 (m, CH_{3}), 2,16
(t, J = 6,8 Hz, 2 H, 3xNCH_{2}), 2,02 (s, 6 H, 2xNCH_{3}).
EM m/z 493 y 494,8 [M^{+} y M^{+}+2].
\newpage
(3-Dietilaminopropil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2-metil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,47 g, 2,2 mmol) se condensó con
(3-dietilaminopropil)amida del ácido
5-formil-2-metil-4-fenil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,75 g) dando 0,11 g (42%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,86 (s, a, 1 H, NH), 7,42-7,46 (m, 3 H),
7,37-7,50 (m, 7 H), 7,24-7,28 (m, 2
H), 6,83 (d, J = 8,1 Hz, 1 H), 3,09 (m, 2 H, NCH_{2}), 2,45 (s, 3
H, CH_{3}), 2, 38 (c, J = 7, 1 Hz, 4 H, 2xNCH_{2}CH_{3}),
2,26 (t, J = 6, 9 Hz, 2 H, NCH_{2}), 1,42 (m, 2 H, NCH_{2}),
0,87 (t, J = 7,1 Hz, 6 H, 2xNCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 535,0 y 537 [M^{+} y
M^{+}+2].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Dimetilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Una mezcla de terc-butil
3-oxobutirato y nitrito sódico (1 equiv.) en ácido
acético se agitó a temperatura ambiente dando
terc-butil-2-hidroximino-3-oxobutirato.
Etil-3-oxobutirato
(1 equiv.), polvo de cinc (3,8 equiv.) y el
terc-butil-2-hidroximino-3-oxobutirato
bruto en ácido acético se agitó a 60ºC durante 1 h. La mezcla de
reacción se vertió en H_{2}O y el filtrado se recogió dando (65%)
de
2-terc-butiloxicarbonil-3,5-dimetil-4-etoxicarbonilpirrol.
A mezcla de
2-terc-butiloxicarbonil-3,5-dimetil-4-etoxicarbonilpirrol
y ortoformiato de trietilo (1,5 equiv.) en ácido trifluoroacético
se agitó a 15ºC durante 1 hora. La reacción se concentró y el
residuo se purificó dando (64%) de
2,4-dimetil-3-etoxicarbonil-5-formilpirrol
en forma de agujas amarillas.
2,4-Dimetil-3-etoxicarbonil-5-formilpirrol
se hidrolizó usando el procedimiento B dando (90%) de ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 12 (s a, 2 H, NH y CO_{2 H),} 9,58 (s, 1 H, CHO), 2,44
(s, 3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H, CH_{3}).
EM m/z 267 [M^{+}].
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,17 g, 0,8 mmol) se condensó con
(2-dimetilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,2 g, preparada mediante el procedimiento C) usando el
procedimiento B dando 0,3 g (83%) del compuesto del título en forma
de un sólido amarillo.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,60 (s, a, 1 H, NH), 10,94 (s, a, 1 H, NH), 8,07 (d, J =
1,8 Hz, 1 H, H-4), 7,75 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,44 (t, J = 5,2 Hz, 1 H, CONHCH_{2}),
7,24 (dd, J = 1,8 y 8,4 Hz, 1 H, H-6), 6,82 (d, J =
8,4 Hz, 1 H, H-7), 3,26-3,33 (m, 2
H, NCH_{2}), 2,42 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41 (s, 3 H, CH_{3}),
2,38 (t, J = 6,7 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,18 (s, 6 H,
N(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 430 y 432
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Dimetilaminoetil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,17 g, 0,8 mmol) se condensó
con(2-dimetilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,2 g) dando 0,13 g (36%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,59 (s, a, 1 H, NH), 10,93 (, a, 1 H, NH), 7,85 (d, J =
7,92 Hz, 1 H, H-4), 7,63-7,65 (m, 3
H), 7,40-7,47 (m, 3 H), 7,32-7,36
(m, 1 H, Ar-H), 7,30 (dd, J = 1,6 y 7,9 Hz, 1 H,
H-5), 7,11 (d, J = 1,6 Hz, 1 H,
H-7), 3,28-3,34 (m, 2 H, NCH_{2}),
2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41 (s, 3 H, CH_{3}), 2,38 (t, J = 6,8
Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,18 (s, 6 H, N (CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 428 [M^{+}].
(2-Dimetilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,9-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Cloro-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,1 g, 0,6 mmol) se condensó
con(2-dimetilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,15 g) dando 0,22 g (90%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, a, 1 H, NH), 10,98 (, a, 1 H, NH), 7,96 (d, J =
2, 0 Hz, 1 H, H-4), 7,75 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,50 (t, J = 5,5 Hz, 1 H, CONHCH_{2}),
7,12 (dd, J = 2,0 y 8,3 Hz, 1 H, H-6), 6,86 (d, J =
8,3 Hz, 1 H, H-7), 3,26-3,31 (m, 2
H, NCH_{2}), 2,42 (s, 3 H, CH_{3}), 2, 40(s, 3 H,
CH_{3}), 2,36 (t, J = 6,6 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2, 17 (s, 6 H,
N(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 386 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,17 g, 0,8 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,2 g) dando 0,09 g (26%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, a, 1 H, NH), 10,98 (, a, 1 H, NH), 8,09 (d, J =
1,7 Hz, 1 H, H-4), 7,76 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,42 (t, J = 5,5 Hz, 1 H, CONHCH_{2}),
7,24 (dd, J = 1,7 y 8,0 Hz, 1 H, H-6), 6,82 (d, J =
8,0 Hz, 1 H, H-7), 3,23-3,32 (m, 2
H, NCH_{2}), 2, 46-2, 55 (m, 6 H, 3xNCH_{2}),
2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,92 (s, 3 H, CH_{3}), 0,96 (t, J = 7,2
Hz, 6 H, 2xNCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 458 y 460
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-il-etil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,09 g, 0,4 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,1 g) dando 0,14 g (81%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, a, 1 H, NH), 10,98 (, a, 1 H, NH), 8,09 (d, J =
1,9 Hz, 1 H, H-4), 7,76 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,53 (t, J = 5,5 Hz, 1 H, CONHCH_{2}),
7,24 (dd, J = 1,9 y 8,5 Hz, 1 H, H-6), 6,81 (d, J =
8,5 Hz, 1 H, H-7), 3,29-3,35 (m, 2
H, NCH_{2}), 2,54 (t, J = 6,9 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,47 (m, bajo
DMSO), 2,42 (s, 3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H, CH_{3}),
1,66-1,69 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 456 y 458
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Imidazol-1-il-propil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,09 g, 0,4 mmol) se condensó con
(3-imidazol-1-ilpropil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,1 g) dando 0,1 g (59%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,63 (s, a, 1 H, NH), 10,99 (, a, 1 H, NH), 8,09 (d, J =
2,2 Hz, 1 H, H-9), 7,77 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,71 (t, J = 5,7 Hz, 1 H, CONHCH_{2}),
7,65 (s, 1 H, Ar-H), 7,25 (dd, J = 2,2 y 8, 4 Hz, 1
H, H-6), 7,20 (s, 1 H, Ar-H), 6, 89
(s, 1 H, Ar-H), 6,81 (d, J = 8,4 Hz, 1 H,
H-7), 4,02 (t, J = 6,7 Hz, 2 H, NCH_{2}), 3, 18
(c, J = 6,7 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41 (s, 3
H, CH_{3}), 1,93 (m, 2 H, CH_{2}).
EM-EI m/z 467 y 469
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-5-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(80 mg, 0,4 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,1 g) usando el procedimiento B dando 79 mg (46%) del compuesto
del título.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,66 (s, a, 1 H, NH), 10, 95 (, a, 1 H, NH), 8,15 (d, J =
1,2 Hz, 1 H), 7, 81 (s, 1 H, H-vinilo), 7,71 (d, J
= 7,5 Hz, 1 H), 7,40-7,47 (m, 4 H), 7,31 (m, 1 H),
6,95 (d, J = 8,1 Hz, 1 H) 3,2-3,31 (m, 2 H,
NCH_{2}), 2, 46-2,55 (m, 6 H, 3xNCH_{2}), 2,44
(s, 6 H, 2xCH_{3}), 0,96 (t, J = 7,4 Hz, 6 H,
2xNCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 456 [M^{+}].
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-5-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,04 g, 0,2 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,04 g) dando el compuesto del título en forma de un sólido de
color naranja amarillento.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,65 (s, a, 1 H, NH), 10,96 (, a, 1 H, NH), 8,15 (d, J =
1,0 Hz, 1 H), 7,80 (s, 1 H, H-vinilo), 7, 71 (d, J
= 7. 2 Hz, 2 H), 7,49 (t, J = 6,3 Hz, 1 H, CONHCH_{2}),
7,41-7,96 (m, 3 H), 7,31 (m, 1 H), 6,95 (d, J = 7,8
Hz, 1 H), 4,08 (m, 4 H, 2x NCH_{2}), 3,32 (m, 2 H, NCH_{2}),
2,55 (t, J = 7,1 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,47 (m, bajo DMSO), 2,43 (s,
6 H, 2xCH_{3}), 1,66 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 454 [M^{+}].
(3-Imidazol-1-ilpropil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-5-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(8 mg, 0,04 mmol) se condensó con
(3-imidazol-1-ilpropil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(10 mg) dando 10 mg (59%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,67 (s, a, 1 H, NH), 10,96 (, a, 1 H, NH), 8,16 (d, J =
1, 2 Hz, 1 H), 7,81 (s, 1 H, H-vinilo),
7,65-7,72 (m, 4 H), 7,44 (m, 3 H), 7,31 (m, 1 H,
CONHCH_{2}), 7,21 (s, 1 H, Ar-H), 4,02 (t, J =
6,5 Hz, 2 H, NCH_{2}), 3,19 (c, J = 6,5 Hz, 2 H, CONHCH_{2}),
2,44 (s, 6 H, 2xCH_{3}),1,93 (m, 2 H, CH_{2}CH_{2}
CH_{2}).
EM-EI m/z 465 [M^{+}].
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,08 g, 0,4 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,1 g) dando 65 mg (38%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, a, 1 H, NH), 10,99 (, a, 1 H, NH), 7,86 (d, J =
7,8 Hz, 1 H), 7,62-7,66 (m, 3 H),
7,40-7,47 (m, 3 H), 7,28-7,36 (m, 2
H), 7,10 (d, J = 1,2 Hz, 1 H), 3,26 (m, 2 H, NCH_{2}),
2,46-2,55 (m, 6 H, 3xNCH_{2}), 2,44 (s, 3 H,
CH_{3}), 2,41 (s, 3 H, CH_{3}), 0,97 (t, J = 7,2 Hz, 6 H,
2xNCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 456 [M^{+}].
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(30 mg, 0,15 mmol) se condensó
con(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(40 mg) dando 5,9 mg (8,5%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,60 (s, a, 1 H, NH), 10,99 (, a, 1 H, NH), 7,86 (d, J =
7,8 Hz, 1 H), 7,63-7,66 (m, 3 H), 7,51 (m, 1 H,
CONHCH_{2}), 7,45 (m, 2 H), 7,28-7,36 (m, 2 H),
7,10 (d, J = 1,5 Hz, 1 H), 3,31 (m, 6 H, 3xNCH_{2}), 2,55 (t, J =
6,6 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H,
CH_{3}), 1,67 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 454 [M^{+}].
(3-Imidazol-1-ilpropil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(8 mg, 0,04 mmol) se condensó con
(3-imidazol-1-ilpropil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(10 mg) dando 7,3 mg (43%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,62 (s a, 1 H, NH), 10,99 (, a, 1 H, NH), 7,86 (d, J =
8,2 Hz, 1 H), 7:62-7,70 (m, 5 H), 7,45 (m, 2 H),
7,35 (m, 1 H), 7,30 (dd, J = 1,4 y 8,2 Hz, 1 H), 7,21 (s, 1 H), 7,10
(d, J = 1,4 Hz, 1 H), 6,89 (s, 1 H), 4,02 (t, J = 6, Hz, 2 H,
CH_{2}), 3,19 (m, 2 H, NCH_{2} CH_{2}), 2,43 (s, 3 H,
CH_{3}), 2,41 (s, 3 H, CH_{3}), 1,93 (t, J = 6,9 Hz, 2 H,
NCH_{2}).
EM-EI m/z 465 [M^{+}].
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
5-[6-(3,5-diclorofenil)-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
6-(3,5-Diclorofenil)-1,3-dihidroindol-2-ona
(64 mg, 0,23 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(60 mg) dando 53 mg (44%) del compuesto del título en forma de un
sólido pardo claro.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,62 (s, a, 1 H, NH), 10,99 (s, 1 H, NH), 7,89 (d, J = 7,9
Hz, 1 H, H-4), 7,69-7,71 (m, 3 H),
7,55 (m, 1 H, CONHCH_{2}), 7,37 (m, 2 H), 7,19 (d, J = 1,4 Hz, 1
H, H-7), 3,27 (m, 2 H, NCH_{2}),
2,48-2,58 (m, 6 H, 3xNCH_{2}), 2,45 (s, 3 H,
CH_{3}), 2,42 (s, 3 H, CH_{3}), 0,97 (t, J = 6,8 Hz, 6 H,
3xNCH_{2}CH_{3}).
EM m/z 526,9.
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-piridin-3-il-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
6-Piridin-3-il-1,3-dihidroindol-2-ona
(40 mg, 0,19 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(50 mg) dando 29 mg (33%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja claro.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,62 (s, a, 1 H, NH), 11,05 (s, a, 1 H, NH), 8,86 (s, a, 1
H), 8,53 (d, J = 5,8 Hz, 1 H), 8,04 (m, 1 H), 7,91 (d, J = 8,1 Hz,
1 H), 7,70 (s, 1 H, H-vinilo),
7,40-7,48 (m, 2 H), 7,35 (d, J = 7,5 Hz, 1 H), 7,14
(s, 1 H), 3,26 (m, 2 H, NCH_{2}), 2,48-2,55 (m,
3xNCH_{2}), 2,42 (s, 3 H, CH_{3}), 2,38 (s, 3 H, CH_{3}),
0,96 (t, J = 6,9 Hz, 6 H, 2xNCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 457 [M^{+}].
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-piridin-3-il-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Piridin-3-il-1,3-dihidroindol-2-ona
(60 mg, 0,28 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(75 mg) dando 90 mg (71%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja claro.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, a, 1 H, NH), 11,05 (s, a, 1 H, NH), 8,86 (d, J =
1,5 Hz, 1 H), 8,54 (dd, J = 1, 5 y 4,8 Hz,1 H), 8,05 (m, 1 H), 7,91
(d, J = 7,8 Hz, 1 H), 7,70 (s, 1 H, H-vinilo),
7,44-7,53 (m, 2 H), 7,36 (dd, J = 1,5 y 8,1 Hz, 1
H), 7,15 (d, J = 1,2 Hz, 1 H), 3,33 (m, 2 H, NCH_{2}),
2,47-2,57 (m, 6 H, 3xNCH_{2}), 2,43 (s, 3 H,
CH_{3}), 2,41 (s, 3 H, CH_{3}), 1,67 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 455 [M^{+}].
(3-Dimetilaminopropil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-piridin-3-il-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Piridin-3-il-1,3-dihidroindol-2-ona
(42 mg, 0,2 mmol) se condensó con
(3-dimetilaminopropil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(50 mg) dando 67 mg (75%) del compuesto del título en forma de un
sólido pardo amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, a, 1 H, NH), 11,00 (s, a, 1 H, NH), 8,86 (s, a, 1
H), 8,54 (s, a, 1 H), 8,04 (m, 1 H), 7,90 (d, J = 8,0 Hz, 1 H),
7,69 (s, 1 H, H-vinilo), 7,63 (m, 1 H),
7,45-7,48 (m, 1 H), 7,35 (dd, J = 1,7 y 8,0 Hz, 1
H), 7,15 (d, J = 1,7 Hz, 1 H), 3,21-3,27 (m, 2 H,
NCH_{2}), 2, 43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41 (s, 3 H, CH_{3}), 2,28
(m, 2 H, NCH_{2}), 2,14 (s, 6 H, 2xNCH_{3}), 1,64 (m, 2 H,
CH_{2}).
EM-EI m/z 443 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Dimetilaminopropil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-5-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(67 mg, 0,32 mmol) se condensó con
(3-dimetilaminopropil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(81 mg) dando 40 mg (28%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,66 (s, a, 1 H, NH), 10,92 (s, a, 1 H, NH), 8,14 (s, 1
H), 7,79 (s, 1 H), 7,71 (m, 2 H), 7,62 (m, 1 H), 7,44 (m, 3 H),
7,32 (m, 1 H), 6,95 (m, 1 H), 3,33 (m, 2 H, NCH_{2}), 2,43 (s, 6
H, 2xCH_{3}), 2,27 (m, 2 H, NCH_{2}), 2,13 (s, 6 H,
2xNCH_{3}), 1,63 (m, 2 H, CH_{2}).
EM-EI m/z 442 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Dietilaminopropil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-5-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(1,5 g, 7,16 mmol) se condensó con
(3-dietilaminopropil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(2 g) dando 1,3 g (40%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,64 (s, 1 H, NH), 10,91 (s, 1 H, NH), 8,14 (d, J = 1, 4
Hz, 1 H, ArH), 7,8 (s, 1 H, ArH), 7,7 (dd, J = 1,2 y 8,5 Hz, 2 H,
ArH), 7,6 (t, J = 5,3 Hz, 1 H, CONHCH_{2}), 7,4 (m, 3 H, ArH),
7,3 (t, J = 7,4 Hz, 1 H, ArH), 6,9 (d, J = 8,0 Hz, 1 H, ArH), 3,2
(m, 2 H, CONHCH_{2}), 2,5 (m, 12 H, 3xNCH_{2} y 2xCH_{3}),
1,61 (m, 2 H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}), 0,93 (t, J = 6,7 Hz, 6 H,
NCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 470 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Dietilaminopropil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-6-fenil-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
6-Fenil-1,3-dihidroindol-2-ona
(1,5 g, 7,16 mmol) se condensó con
(3-dietilaminopropil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(2 g) dando 1,9 g (57%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,58 (s, 1 H, NH), 10,94 (s, 1 H, NH), 7,8 (d, J = 7,9 Hz,
1 H, ArH), 7,6 (m, 4 H, ArH), 7,4 (t, J = 7,5 Hz, 2 H, ArH), 7,3
(m, 2 H), 7,1 (d, J = 1,4 Hz, 1 H, ArH), 3,2 (m, 2 H,
CONHCH_{2}), 2,5 (m, 12 H, 3xNCH_{2} y 2xCH_{3}), 1,61 (m, 2
H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}), 0,93 (t, J = 6,7 Hz, 6 H,
NCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 470 [M^{+}].
\newpage
(3-Dietilaminopropil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,5 g, 2,36 mmol) se condensó con
(3-dietilaminopropil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(0,51 g) dando 0,84 g del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja rojizo.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,61 (s, 1 H, NH), 10,99 (s, 1 H, NH), 8,09 (d, J = 1,8
Hz, 1 H, ArH), 7,7 (m, 4 H), 7,2 (dd, J = 1,8 y 8,3 Hz, 2 H, ArH),
6,8 (d, J = 7,8 Hz, 1 H, ArH), 3,3 (s a, 4 H, 2xNCH_{2}), 3,2 (m,
2 H, CONHCH_{2}), 2,6 (s a, 2 H, NCH_{2} y 2xCH_{3}), 2,4 (s,
6 H, 2xCH_{3}), 1,66 (m, 2 H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}), 0,98 (t,
J = 7,1 Hz, 6 H, NCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 472 y 474
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-diisopropil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(100 mg, 0,47 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-diisopropil-1H-pirrol-3-carboxílico
(150 mg) dando 0,15 g (62%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,97 (s, 1 H, NH), 10,95 (s, 1 H, NH), 8,09 (d, J = 1,3
Hz, 1 H, ArH), 7,84 (m, 1 H), 7,79 (s, 1 H), 7,23 (dd, J = 1,3 y
8,1 Hz, 1 H, ArH), 6,8 (d, J = 8,1 Hz, 1 H, ArH), 3,5 (m, 1 H, CH),
3,3 (m, 3 H, CH y NHCH_{2}), 2,5 (m a, 6 H, 3xNCH_{2}), 1,28 (d,
J = 6,9 Hz, 6 H, 2xCH_{3}), 1,23 (d, J = 6,6 Hz, 6 H,
2xCH_{3}), 0,96 (m, 6 H, 2xCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 514 y 516
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Dietilaminopropil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-diisopropil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(90 mg, 0,42 mmol) se condensó
con(3-dietilaminopropil)amida del
ácido
5-formil-2,4-diisopropil-1H-pirrol-3-carboxílico
(140 mg) dando 54 mg (25%) del compuesto del título en forma de un
sólido pardo rojizo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,98 (s, 1 H, NH), 10,96 (s, 1 H, NH), 8,09 (d, J = 1,7
Hz, 2 H), 7,78 (s, 1 H, H-vinilo), 7,23 (dd, J = 1,
y 8,1 Hz, 1 H, ArH), 6,82 (d, J = 8,1 Hz, 1 H, ArH), 3, 5 (m, 1 H,
CH), 3,25 (m, 2 H, NHCH_{2}), 3,15 (m, 1 H, CH), 2,7 (s a, 6 H,
3xNCH_{2}), 1,7 (m a, 2 H, CH_{2}CH_{2}CH_{2}), 1,28 (d, J
= 6,9 Hz, 6 H, 2xCH_{3}), 1,24 (d, J = 5,9 Hz, 6 H, 2xCH_{3}),
1,06 (m, 6 H, 2xCH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 528 y 530
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(3-Pirrolidin-1-il-propil)amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-diisopropil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(130 mg, 0,6 mmol) se condensó con
(3-pirrolidin-1-ilpropil)amida
del ácido
5-formil-2,4-diisopropil-1H-pirrol-3-carboxílico
(150 mg, 0,45 mmol) dando 36 mg (15%) del compuesto del título en
forma de un sólido de color naranja tostado.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,98 (s, 1 H, NH), 10,97 (s, 1 H, NH), 8,10 (d, J = 1,6
Hz, 2 H), 7,78 (s, 1 H, H-vinilo), 7,23 (dd, J =
1,6 y 7,6 Hz, 1 H, ArH), 6,82 (d, J = 7,6 Hz, 1 H, ArH), 3,5 (m, 1
H, CH), 3,25 (m, 2 H, NHCH_{2}), 3,15 (m, 1 H, CH), 2,7 (s a, 6 H,
3xNCH_{2}), 1,7 (m a, 6 H, 3xNCH_{2}CH_{2}), 1,28 (d, J = 5,6
Hz, 6 H, 2xCH_{3}), 1,24 (d, J = 5,7 Hz, 6 H, 23CH_{3}).
EM-EI m/z 526 y 528
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
(Piridin-4-ilmetil)-amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Bromo-1,3-dihidroindol-2-ona
(170 mg, 0,8 mmol) se condensó con
(piridin-4-ilmetil)amida del
ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(200 mg) dando 14 mg (4%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,67 (s, 1 H, NH), 11,01 (s, a, 1 H, NH), 8,51 (dd, J =
1,6 y 4,3 Hz, 2 H), 8,23 (t, J = 6,0 Hz, 1 H, CONHCH_{2}), 8,11
(d, J = 1,9 Hz, 1 H), 7,78 (s, 1 H, H-vinilo), 7,31
(d, J = 6,0 Hz, 2 H), 7,25 (dd, J = 1,9 y 8,1 Hz, 1 H), 6,82 (d, J =
8,1 Hz, 1 H), 4,45 (d, J = 6,0 Hz, 2 H, NCH_{2}), 2,46 (s, 6 H,
2xCH_{3}).
EM-EI m/z 450 y 452
[M^{+}-1 y M^{+}+1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-[6-(4-butilfenil)-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-[6-(4-Butilfenil)]-1,3-dihidroindol-2-ona
(50 mg, 0,19 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(50 mg) dando 74 mg (76%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,58 (s, 1 H, NH), 10,93 (s, a, 1 H, NH), 7,82 (d, J = 7,9
Hz, 1 H), 7,63 (s, 1 H, H-vinilo), 7,54 (d, J = 7,9
Hz, 2 H), 7,46 (m, 1 H, CONH), 7,26 (m, 3 H), 7,09 (s, 1 H), 3,30
(m, 2 H, CH_{2}), 2,52-2,63 (m, 4 H, 2xCH_{2}),
2,49 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H,
CH_{3}), 1,68 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 1,58 (m, 2 H, CH_{2}), 1,34
(m, 2 H, CH_{2}), 0,91 (t, J = 7,2 Hz, 3 H, CH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 510 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-[6-(4-etilfenil)-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
6-(4-Etilfenil)-1,3-dihidroindol-2-ona
(45 mg, 0,19 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(50 mg) dando 60 mg (65%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,59 (s, 1 H, NH), 10,96 (s, a, 1 H, NH), 7,83 (d, J = 8,4
Hz, 1 H), 7,64 (s, 1 H, H-vinilo),
7,51-7,56 (m, 3 H), 7,25-7,30 (m, 3
H), 7,08 (d, J = 1 Hz, 1 H), 3,31 (m, 2 H, CH_{2}), 2,63 (m, 2 H,
CH_{2}CH_{3}), 2,55 (m, 2 H, CH_{2}), 2,49 (m, 4 H,
2xCH_{2}), 2,42 (s, 3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H, CH_{3}), 1,67
(m, 4 H, 2xCH_{2}), 1,20 (t, J = 7,5 Hz, 3 H,
CH_{2}CH_{3}).
EM-EI m/z 482 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-[6-(3-isopropilfenil)-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
6-(3-Isopropilfenil)-1,3-dihidroindol-2-ona
(48 mg, 0,19 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(50 mg) dando 59 mg (63%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,63 (s, 1 H, NH), 10,97 (s, a, 1 H, NH), 7,87 (d, J = 7,8
Hz, 1 H), 7,68 (s, 1 H, H-vinilo),
7,24-7,55 (m, 6 H), 7,13 (s, 1 H), 3,34 (m, 2 H,
CH_{2}), 3,30 (m, 1 H, CH(CH_{3})_{2}), 2,60
(m, 2 H, CH_{2}), 2, 50 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 2,45 (s, 3 H,
CH_{3}), 2, 43 (s, 3 H, CH_{3}), 1, 70 (m, 4 H, 2xCH_{2}),
1,27 (d, J = 6, 9 Hz, 6 H, CH(CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 496 [M^{+}].
\newpage
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Fluoro-1,3-dihidroindol-2-ona
(0,54 g, 3,8 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dando 0,83 g (55%) del compuesto del título en forma de un sólido de
color verde amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13, 66 (s, 1 H, NH), 10,83 (s, a, 1 H, NH), 7,73 (dd, J =
2,5 y 9,4 Hz, 1 H), 7,69 (s, 1 H, H-vinilo), 7,37
(t, 1 H, CONHCH_{2}CH_{2}), 6,91 (m, 1 H),
6,81-6,85 (m, 1 H), 3,27 (m, 2 H, CH_{2}), 2,51
(m, 6 H, 3xCH_{2}), 2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41 (s, 3 H,
CH_{3}), 0,96 (t, J = 6,9 Hz, 6 H, N
(CH_{2}CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 398 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 35 (Síntesis
alternativa)
(2-Dietilaminoetil)-amida
del ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
Hidrazina hidrato (55%, 3000 ml) y
5-fluoroisatina (300 g) se calentaron a 100ºC. Se
añadió 5-fluoroisatina adicional (500 g) en
porciones (100 g) durante 120 minutos con agitación. La mezcla se
calentó a 110ºC y se agitó durante 4 horas. La mezcla se enfrió a
temperatura ambiente y los sólidos se recogieron por filtración al
vacío dando hidrazida del ácido
(2-amino-5-fluoro-fenil)-acético
bruta (748 g). La hidrazida se suspendió en agua (700 ml) y el pH
de la mezcla se ajustó a < pH 3 con 12 N ácido clorhídrico. La
mezcla se agitó durante 12 horas a temperatura ambiente. Los
sólidos se recogieron por filtración al vacío y se lavaron dos
veces con agua. El producto se secó al vacío dando
5-fluoro-1,3-dihidro-indol-2-ona
(600 g, rendimiento del 73%) en forma de un polvo pardo. ^{1}H
RMN (dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta 3,46 (s, 2
H, CH_{2}), 6,75, 6,95, 7,05 (3 x m, 3 H, aromático), 10,35 (s, 1
H, NH). EM m/z 152 [M+1].
4-Etil éster de
2-terc-butil éster del ácido
3,5-dimetil-1H-pirrol-2,4-dicarboxílico
(2600 g) y etanol (7800 ml) se agitaron vigorosamente mientras se
añadía lentamente ácido clorhídrico 10 N (3650 ml). La temperatura
aumentó de 25ºC a 35ºC y comenzó el desprendimiento de gas. La
mezcla se calentó a 54ºC y se agitó con calentamiento adicional
durante una hora en cuyo momento la temperatura era de 67ºC. La
mezcla se enfrió a 5ºC y 32 l de hielo y agua se añadieron
lentamente con agitación. El sólido se recogió por filtración al
vacío y se lavó tres veces con agua. El sólido se secó al aire
hasta peso constante dando éster etílico del ácido
2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(1418 g, rendimiento del 87%) en forma de un sólido rosáceo.
^{1}H RMN (dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta
2,10, 2,35 (2xs, 2x3H, 2xCH_{3}), 4,13 (c, 2 H, CH_{2}), 6,37
(s, 1 H, CH), 10,85 (s, 1 H, NH). EM m/z 167 [M+1].
Dimetilformamida (322 g) y diclorometano (3700
ml) se enfriaron en un baño de hielo a 4ºC y se añadió con
agitación oxicloruro de fósforo (684 g). Éster etílico del ácido
2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
sólido (670 g) se añadió lentamente en alícuotas durante 15
minutos. La temperatura máxima alcanzada fue de 18ºC. La mezcla se
calentó a reflujo durante una hora, se enfrió a 10ºC en un baño de
hielo y se añadieron rápidamente 1,6 l de agua enfriada con hielo
con agitación vigorosa. La temperatura aumentó a 15ºC. Se añadió
ácido clorhídrico 10 N (1,6 l) con agitación vigorosa. La
temperatura aumentó a 22ºC. La mezcla se dejó en reposo durante 30
minutos y se permitió que las fases se separaran. La temperatura
alcanzó un máximo de 40ºC. La capa acuosa se ajustó a pH
12-13 con hidróxido potásico 10 N (3,8 l) a una
velocidad que permitió que la temperatura alcanzara y permaneciera
a 55ºC durante la adición. Una vez completada la adición la mezcla
se enfrió a 10ºC y se agitó durante 1 hora. El sólido se recogió
por filtración al vacío y se lavó cuatro veces con agua dando éster
etílico del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(778 g, rendimiento del 100%) en forma de un sólido amarillo.
^{1}H RMN (DMSO-d_{6}) \delta 1,25 (t, 3 H,
CH_{3}), 2,44, 2,48 (2xs, 2x3H, 2xCH_{3}), 4,16 (c, 2 H,
CH_{2}), 9,59 (s, 1 H, CHO), 12,15 (s a, 1 H, NH). EM m/z 195
[M+1].
Éster etílico del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(806 g), hidróxido potásico (548 g), agua (2400 ml) y metanol (300
ml) se calentaron a reflujo durante dos horas con agitación y
después se enfriaron a 8ºC. La mezcla se extrajo dos veces con
diclorometano. La capa acuosa se ajustó a pH 4 con 1000 ml de ácido
clorhídrico 10 N manteniendo la temperatura por debajo de 15ºC. Se
añadió agua para facilitar la agitación. El sólido se recogió por
filtración al vacío, se lavó tres veces con agua y se secó al vacío
a 50ºC dando ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(645 g, rendimiento del 93,5%) en forma de un sólido amarillo. RMN
(DMSO-d_{6}) \delta 2,40, 2,43 (2xs, 2x3H,
2xCH_{3}), 9,57 (s, 1 H, CHO), 12,07 (s a, 2 H, NH+COOH). EM m/z
168 [M+1].
Ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(1204 g) y 6020 ml de dimetilformamida se agitaron a temperatura
ambiente mientras se añadía clorhidrato de
1-(3-dimetil-aminopropil-3-etilcarbodiimida
(2071 g), hidroxibenzotriazol (1460 g), trietilamina (2016 ml) y
dietiletilendiamina (1215 ml). La mezcla se agitó durante 20 horas a
temperatura ambiente. La mezcla se diluyó con 3000 ml de agua, 2000
ml de salmuera y 3000 ml de una solución saturada de bicarbonato
sódico y el pH se ajustó por encima de 10 con hidróxido sódico 10 N.
La mezcla se extrajo dos veces con 5000 ml cada vez de metanol al
10% en diclorometano y los extractos se combinaron, se secaron sobre
sulfato de magnesio anhidro y se evaporaron rotatoriamente a
sequedad. La mezcla se diluyó con 1950 ml de tolueno y se evaporó
rotatoriamente de nuevo a sequedad. El residuo se trituró con 3:1 de
hexano:éter dietílico (4000 ml). Los sólidos se recogieron por
filtración al vacío, se lavaron dos veces con 400 ml de acetato de
etilo y se secaron al vacío a 34ºC durante 21 horas dando
(2-dietilamino-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(819 g, rendimiento del 43%) en forma de un sólido pardo claro.
^{1}H RMN (dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta
0,96 (t, 6 H, 2xCH_{3}), 2,31, 2,38 (2xs, 2 x CH_{3}), 2, 51 (m,
6 H 3xCH_{2}), 3,28 (m, 2 H, CH_{2}), 7,34 (m, 1 H, amida NH),
9,56 (s, 1 H, CHO), 11,86 (s, 1 H, pirrol NH). EM m/z 266 [M+1].
(2-Dietilaminoetil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(809 g),
5-fluoro-1,3-dihidro-indol-2-ona
(438 g), etanol (8000 ml) y pirrolidina (13 ml) se calentaron a
78ºC durante 3 horas. La mezcla se enfrió a temperatura ambiente y
los sólidos se recogieron por filtración al vacío y se lavaron con
etanol. Los sólidos se agitaron con etanol (5900 ml) a 72ºC durante
30 minutos. La mezcla se enfrió a temperatura ambiente. Los sólidos
se recogieron por filtración al vacío, se lavaron con etanol y se
secaron al vacío a 54ºC durante 130 horas dando
(2-dietilamino-etil)-amida
del ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(1013 g, rendimiento del 88%) en forma de un sólido naranja.
^{1}H RMN (dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta
0,98 (t, 6 H, 2xCH_{3}), 2,43, 2,44 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 2,50
(m, 6 H, 3xCH_{2}), 3,28 (c, 2 H, CH_{2}), 6,84, 6,92, 7,42,
7,71, 7,50 (5xm, 5 H, aromático, vinilo, CONH), 10,88 (s, 1 H,
CONH), 13,68 (s, 1 H, pirrol NH). EM m/z 397
[M-1].
\vskip1.000000\baselineskip
Ácido
3-[4-(2-dietilaminoetilcarbamoil)-3,5-dimetil-1H-pirrol-2-ilmetilen]-2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-6-carboxílico
Ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-6-carboxílico
(80 mg, 0,45 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dando 210 mg (92%) del compuesto del título en forma de un sólido de
color naranja amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,6 (s, 1 H, NH), 7,76 (d, J = 8,0 Hz, 1 H), 7,66 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,57 (dd, J = 1,5 8,0 Hz, 1 H), 7,
90-7, 42 (m, 2 H), 3,28 (m, 2 H, CH_{2}), 2,88 (m,
H-piperidina), 2,54 (m, 6 H, 3xCH_{2}), 2,44 (s,
3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H, CH_{3}), 1,56 (m,
H-piperidina), 0,97 (t, J = 6,98 Hz, 6 H, N
(CHZCH_{3})_{2}).
EM m/z 424 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-(5-dimetilsulfamoil-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
Dimetilamida del ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
(90 mg, 0,38 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(100 mg) dando 100 mg (54%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,65 (s, 1 H, NH), 11,30 (s, a, 1 H, NH), 8,25 (d, 1 H),
7,92 (s, 1 H, H-vinilo), 7,48-7,53
(m, 2 H), 7,07 (d, J = 8,2 Hz, 1 H), 3,33 (m, 2 H, CH_{2}), 2,61
(s, 6 H, N(CH_{3})_{2}), 2,56 (t, 2 H, CH_{2}),
2,49 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 2,45 (s, 3 H, CH_{3}), 2,44 (s, 3 H,
CH_{3}), 1,67 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM-EI m/z 485 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-[5-(3-clorofenilsulfamoil)-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(3-Clorofenil)amida del
ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
(120 mg, 0,38 mmol) se condensó con
(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(100 mg) dando 150 mg (69%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color naranja amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,55 (s, 1 H, NH), 11,26 (s a, 1 H, NH), 10,30 (s a,1H,
NH), 8,26 (d, 1 H), 7,79 (s, 1 H, H-vinilo),
7,51-7,57 (m, 2 H), 7,22 (t, J = 8,1 Hz, 1 H), 7,15
(m, 1 H), 7,07 (m, 1 H), 7,0 (m, 2 H), 3,44 (m, 2 H, CH_{2}),
2,57 (t, J = 7,0 Hz, 2 H, CH_{2}), 2,49 (m, 4 H, 2xCH_{2}),
2,44 (s, 3 H, CH_{3}), 2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 1,68 (m, 4 H,
2xCH_{2}).
EM m/z 568 [M^{+}].
(2-Pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
2,4-dimetil-5-[2-oxo-5-(piridin-3-ilsulfamoil)-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-
1H-pirrol-3-carboxílico
1H-pirrol-3-carboxílico
Piridin-3-ilamida
del ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
(110 mg, 0,38 mmol) se condensó
con(2-pirrolidin-1-iletil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(100 mg) dando 150 mg (74%) del compuesto del título en forma de un
sólido naranja.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,58 (s, 1 H, NH), 8,21 (d, J = 2,0 Hz, 2 H), 8,04 (m, 1
H), 7,76 (s, 1 H, H-vinilo),
7,49-7,54 (m, 2 H), 7,41 (m, 1 H), 7,14 (m, 1 H), 6,
94 (d, J = 8,5 Hz, 1 H), 3, 33 (m, 2 H, CH_{2}), 2,56 (t, J =
7,06 Hz, 2 H, CH_{2}), 2,49 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 2,43 (s, 6 H,
2xCH_{3}), 1,68 (m, 4 H, 2xCH_{2}).
EM m/z 535 [M^{+}].
3-[3,5-Dimetil-4-(4-metilpiperazina-1-carbonil)-1H-pirrol-2-ilmetilen]-4-(2-hidroxietil)-1,3-dihidroindol-2-ona
4-(2-Hidroxietil)-1,3-dihidroindol-2-ona
(71 mg, 0,4 mmol) se condensó con
3,5-dimetil-4-(4-metil-piperazina-1-carbonil)-1H-pirrol-2-carbaldehído
dando 90 mg (55%) del compuesto del título en forma de un sólido
naranja.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 14,25 (s, 1 H, NH), 10,88 (s, 1 H, NH), 7,57 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,03 (m, 1 H), 6,75-6,82
(m, 2 H), 9. 86 (m, 1 H, OH), 3,70 (m, 2 H, CH_{2}), 3,04 (m, 2 H,
CH_{2}), 2,48 (m, 4 H, 2xCH_{2}), 2,28 (s a, 7 H), 2,19 (s, 3
H, CH_{3}), 2,18 (s, 3 H, CH_{3}).
EM m/z (+ve) 4,09,3 [M^{+}].
Fenilamida del ácido
3-[3,5-dimetil-4-(4-metilpiperazina-1-carbonil)-1H-pirrol-2-ilmetilen]-2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
Fenilamida del ácido
2-oxo-2,3,-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
(110 mg, 0,4 mmol) se condensó con
3,5-dimetil-4-(4-metilpiperazina-1-carbonil)-1H-pirrol-2-carbaldehído
(100 mg) dando 50 mg (24%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,52(s, 1 H, NH), 11,26 (s, 1 H, NH), 10,08 (s, 1
H, NH), 8,21 (d, J = 1, 6 Hz, 1 H), 7,75 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,50 (dd, J = 1,6 y 8,3 Hz, 1 H), 7,19
(m, 2 H), 7,10 (m, 2 H), 6,97 (m, 2 H), 2,49 (m, 4 H, 2xCH_{2}),
2,28 (m, 10 H, 2xCH_{3} y 2xCH_{2}), 2,18 (s, 3 H,
CH_{3}).
EM-EI m/z 519 [M^{+}].
(2-Dietil-aminoetil)amida
del ácido
5-(5-dimetilsulfamoil-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
Dimetilamida del ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
(90 mg, 0,38 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(100 mg) dando 80 mg (43%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 11,30 (s, 1 H, NH), 8,27 (d, J = 1,7 Hz, 1 H), 7,94 (s, 1
H, H-vinilo), 7,49 (dd, J = 1,7 y 8,0 Hz, 1 H),
7,44 (m, 1 H, CONHCH_{2}CH_{2}), 7,07 (d, J = 8,0 Hz, 1 H), 3,26
(m, 2 H, CH_{2}), 2,60 (s, 6 H, N(CH_{3})_{2}),
2, 53 (m, 2 H, CH_{2}), 2,45-2,50 (m, 10 H,
2xCH_{3} y N (CH_{2}CH_{3})_{2}, 0,96 (t, J = 7,2
Hz, 6 H, N(CH_{2}CH_{3})_{2}).
EM-EI m/z 487 [M^{+}].
(2-Dietilaminoetil)amida del
ácido
5-[5-(3-clorofenilsulfamoil)-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(3-Clorofenil)amida del
ácido
2-oxo-2,3-dihidro-1H-indolo-5-sulfónico
(120 mg, 3,8 mmol) se condensó con
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(100 mg) dando 80 mg (37%) del compuesto del título en forma de un
sólido amarillo.
\newpage
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,55 (s, 1 H, NH), 11,24 (s, 1 H, NH), 10,29 (s, 1 H, NH),
8,25 (d, J = 1,87 Hz, 1 H), 7,79 (s, 1 H,
H-vinilo), 7,52 (dd, J = 1,87 y 8,3 Hz, 1 H), 7,42
(m, 1 H, CONHCH_{2}CH_{2}), 7,22 (t, J = 8,02 Hz, 1 H), 7,15
(t, J = 2 Hz, 1 H), 7,08 (m, 1 H), 7,0 (m, 2 H), 3,27 (m, 2 H,
CH_{2}), 2,48-2,57 (m, 6 H, 3xCH_{2}), 2,45 (s,
3 H, CH_{3}), 2,44 (s, 3 H, CH_{3}), 0,97 (t, J = 7,0 Hz, 6 H,
N(CH_{2}CH_{3})_{2}).
EM m/z 570,1 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
Éster etílico del ácido
{[4-metil-5-(4-metil-5-metilsulfamoil-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carbonil]-amino}-acético
Éster etílico del ácido
4-metil-1H-pirrol-3-carboxílico
(ref. biblio. D.O. Cheng, T. L. Bowman y E. LeGoff; J. Heterocyclic
Chem.; 1976; 13; 1145-1147) se formiló usando el
procedimiento A, se hidrolizó usando el procedimiento B seguido de
amidación (procedimiento C) dando éster etílico del ácido
[(5-formil-4-metil-1H-pirrol-3-carbonil)-amino]-acético.
4-Metil-5-metilaminosulfonil-2-oxindol
(50 mg, 0,21 mmol) se condensó con éster etílico del ácido
[(5-formil-4-metil-1H-pirrol-3-carbonil)-amino)-acético
(100 mg, 0,42 mmol) y piperidina (0,1 ml) en etanol (2 ml) dando 50
mg (52%) del compuesto del título.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,59 (s, 1 H, NH), 11,29 (v.br. s, 1 H,
NH-CO), 8,33 (t, J = 5,8 Hz, 1 H, CONHCH_{2}), 7,
83 (d, J = 3,11 Hz, 1 H), 7,80 (s, 1 H, H-vinilo),
7,71 (d, J = 8,5 Hz, 1 H), 7,34 (m a, 1 H, NHCH_{3}), 6,89 (d, J
= 8,5 Hz, 1 H), 4,11 ( q, J = 7,1 Hz, 2 H, OCH_{2}CH_{3}), 3,92
( d, J = 5, 8 Hz, 2 H, GlyCH_{2}), 2, 86 (s, 3 H, CH_{3}), 2,
48 (s, 3 H, CH_{3}), 2,42 (d, J = 4,71 Hz, 3 H, HNCH_{3}), 1,20
(t, J = 7,1 Hz, 3 H, OCH_{2}CH_{3})
EM-EI m/z 460 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
Éster etílico del ácido
{[4-metil-5-(5-metilsulfamoil-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carbonil]-
amino}-acético
amino}-acético
Una mezcla de
5-metilaminosulfonil-2-oxindol
(0,06 g, 0,22 mmol), éster etílico del ácido
[(5-formil-4-metil-1H-pirrol-3-carbonil)-amino]-acético
(0,075 g, 0,27 mmol) y piperidina (2 gotas) en etanol (5 ml) se
calentó en un tubo cerrado herméticamente a 90ºC durante 12 h.
Después de enfriar, el precipitado se recogió por filtración al
vacío, se lavó con etanol, se trituró con diclorometano/éter y se
secó dando 0,035 g (36%) del compuesto del título en forma de un
sólido de color pardo amarillento.
^{1}H RMN (360 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,6 (s, 1 H, NH), 11 (s a, 1 H, NH-CO),
8,30 (t, J = 5,7 Hz, 1 H, CONRCH_{2}), 8,25 (d, J = 1,2 Hz, 1 H),
7.88 (s, 1 H, H-vinilo), 7, 89 (d, J = 3,3 Hz, 1 H),
7,57 (dd, J = 1,9 y 8,5 Hz, 1 H), 7,14 (m a, 1 H, NHCH_{3}), 7,04
(d, J = 8,5 Hz, 1 H), 4,11 (c, J = 6,7 Hz, 2 H, OCH_{2}CH_{3}),
3,92 (d, J = 5,7 Hz, 2 H, GlyCH_{2}), 2,55 (s, 3 H, CH_{3}), 2,
41 (m, 3 H, NCH_{3}), 1,20 ( t, J = 6,7 Hz, 3 H,
OCH_{2}CH_{3}).
EM m/z 446 [M^{+}].
\vskip1.000000\baselineskip
Ácido
([4-metil-5-(5-metilsulfamoil-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carbonil]-amino}-acético
Una mezcla de éster etílico del ácido
[(5-formil-4-metil-1H-pirrol-3-carbonil)-amino]-acético
(0,142 g, 0,59 mmol) y NaOH 1 N (1,2 ml) en metanol (10 ml) se
agitó a temperatura ambiente durante 1 h. La reacción se concentró
y el residuo se condensó con
5-metilaminosulfonil-2-oxindol
(0,13 g, 0,48 mmol) y piperidina (0,12 ml) en etanol (12 ml) dando
0,11 g (52%) del compuesto del título.
^{1}H RMN (300 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,98 (s a, 1 H, NH), 8,17 (s, 1 H), 7,80 (s, 1 H), 7,75
(d, J = 3,1 Hz, 1 H), 7,51 ( dd, J = 2 y 8,2 Hz, 1 H), 7,21 (m
sobre s a, 2 H), 6,97 (d, J = 8,1 Hz, 1 H), 3,41 (d, J = 4,2 Hz, 2
H, CH_{2}NH), 2,54 (s, 3 H, pirrol-CH_{3}), 2,39
(s, 3 H, ArCH_{3}).
EM m/z 417
[M-1]^{+}.
\newpage
(2-Dietilamino-etil)-amida
del ácido
2,9-dimetil-5-(2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
Una mezcla de
1,3-dihidro-indol-2-ona
(266 mg, 2 mmol),
(2-dietilamino-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(530 mg, 2 mmol) y piperidina (1 gota) en etanol se calentó a 90ºC
durante 2 horas. La reacción se enfrió a temperatura ambiente, el
precipitado resultante se recogió por filtración al vacío, se lavó
con etanol y se secó dando 422 mg (55%) del compuesto del título en
forma de un sólido amarillo claro.
^{1}H RMN (400 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,7 (s, 1 H, NH), 10,9 (s, 1 H, NH), 7,88 (d, J = 7,6 Hz,
1 H), 7,64 (s, 1 H, H-vinilo), 7,91 (t, J = 5,4 Hz,
1 H, NH), 7,13 (dt, J = 1,2 y 7, 6 Hz, 1 H), 6,99 (dt, J = 1,2 y
7,6 Hz, 1 H), 6,88 (d, J = 7,6 Hz, 1 H), 3,28 (m, 2 H),
2,48-2,55 (m, 6 H), 2,44 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41
(s, 3 H, CH_{3}), 0,97 (t, J = 7,2 Hz, 6 H,
N(CH_{2}CH_{3})_{2}). EM + ve IQPA 381 [M^{+}
+ 1].
(2-Dietilamino-etil)-amida
del ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Una mezcla de
5-cloro-1,3-dihidro-indol-2-ona
(335 mg, 2 mmol),
(2-dietilamino-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(530 mg, 2 mmol) y piperidina (1 gota) en etanol se calentó a 90ºC
durante 2 horas. La reacción se enfrió a temperatura ambiente, el
precipitado resultante se recogió por filtración al vacío, se lavó
con etanol y se secó dando 565 mg (68%) del compuesto del título en
forma de un sólido naranja.
^{1}H RMN (400 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,65 (s, 1 H, NH), 11,0 (s, 1 H, NH), 7,98 (d, J = 2,1 Hz,
1H) 7,77 (s, 1H H-vinilo), 7,44 (t, NH), 7,13 (dd,
J = 2,1 y 8,4 Hz, 1H) 6,87 (d, J = 8,4 Hz, 1 H), 3,28 (g, 2 H),
2,98-2,53 (m, 6 H), 2,49 (s, 3 H, CH_{3}), 2,43
(s, 3 H, CH_{3}), 0,97 (t, J = 7,0 Hz, 6 H,
N(CH_{2}CH_{3})_{2}) EM + ve IQPA 415 [M^{+} +
1].
(2-Pirrolidin-1-etil)-amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
1,3-Dihidro-indol-2-ona
se condensó con
(2-pirrolidin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dando el compuesto del título. EM + ve IQPA 379 [M^{+} + 1].
(2-Pirrolidin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,9-dimetil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
5-Fluoro-1,3-dihidro-indol-2-ona
se condensó con
(2-pirrolidin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dando el compuesto del título. EM + ve IQPA 397 [M^{+} + 1].
Ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(61 g),
5-fluoro-1,3-dihidro-indol-2-ona
(79 g), etanol (300 ml) y pirrolidina (32 ml) se calentaron a
reflujo durante 4,5 horas. Se añadió ácido acético (24 ml) a la
mezcla y se continuó calentando a reflujo durante 30 minutos. La
mezcla se enfrió a temperatura ambiente y los sólidos se recogieron
por filtración al vacío y se lavaron dos veces con etanol. Los
sólidos se agitaron durante 130 minutos en acetona al 40% en agua
(400 ml) que contiene ácido clorhídrico 12 N (6,5 ml). Los sólidos
se recogieron por filtración al vacío y se lavaron dos veces con
acetona al 40% en agua. Los sólidos se secaron al vacío dando ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(86 g, rendimiento del 79%) en forma de un sólido naranja. ^{1}H
RMN (dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta 2,48, 2,50
(2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 6,80, 6,88, 7,68, 7,72 (4xm, 4 H, aromático
y vinilo), 10,88 (s, 1 H, CONH), 12,12 (s, 1 H, COOH), 13,82 (s, 1
H, pirrol NH). EM m/z 299 [M-1].
Ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(32)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(100 g) y dimetilformamida (500 ml) se agitaron y se añadieron
hexafluorofosfato de
benzotriazol-1-iloxitris(dimetilamino)fosfonio
(221 g), 1-(2-aminoetil)pirrolidina (45,6 g)
y trietilamina (93 ml). La mezcla se agitó durante 2 horas a
temperatura ambiente. El producto sólido se recogió por filtración
al vacío y se lavó con etanol. Los sólidos se lavaron en suspensión
agitando en etanol (500 ml) durante una hora a 64ºC y se enfriaron a
temperatura ambiente. Los sólidos se recogieron por filtración al
vacío, se lavaron con etanol, y se secaron al vacío dando
(2-pirrolidin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(32)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(101,5 g, rendimiento 77%). ^{1}H RMN
(dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta 1,60 (m, 4 H,
2xCH_{2}), 2,40, 2,44 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 2,50 (m, 4 H,
2xCH_{2}), 2,57, 3,35 (2xm, 4 H, 2XCH_{2}, 7,53, 7,70, 7,73,
7,76 (4xm, 4 H, aromático y vinilo), 10,88 (s, 1 H, CONH), 13,67 (s,
1 H, pirrol NH). EM m/z 396 [M+1].
\global\parskip0.900000\baselineskip
(2-Pirrolidin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
5-Cloro-1,3-dihidro-indol-2-ona
se condensó
con(2-pirrolidin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dando el compuesto del título. EM + ve IQPA 413 [M^{+} + 1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Dimetilaminoetil)-amida
del ácido
2,4-dimetil-5-(2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-1H-pirrol-3-carboxílico
1,3-Dihidro-indol-2-ona
se condensó con
(2-dimetil-aminoetil)amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dando el compuesto del título.
^{1}H RMN (400 MHz, DMSO-d6)
\delta 13,63 (s, 1 H, NH), 10,90 (s, 1 H, NH), 7,78 (d, J = 7,8
Hz, 1 H), 7,63 (s, 1H H-vinilo), 7,48 (t, 1 H, NH),
7,13 (dt, 1 H), 6,98 (dt, 1 H), 6,88 (d, J =7,7 Hz, 1 H), 3,31 (c,
J = 6,6 Hz, 2 H), 2,43 (s, 3 H, CH_{3}), 2,40 (s, 3 H, CH_{3}),
2,38 (t, J = 6,6 Hz, 2 H), 2,19 (s, 6 H,
N(CH_{2}CH_{3})_{2}) EM + ve IQPA 353 [M^{+} +
1].
\vskip1.000000\baselineskip
(2-Etilamino-etil)-amida
del ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(2-Etilamino-etil)-amida
del ácido
5-formil-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(99 g), etanol (400 ml),
5-fluoro-2-oxindol
(32 g) y pirrolidina (1,5 g) se calentaron a reflujo durante 3 horas
con agitación. La mezcla se enfrió a temperatura ambiente y los
sólidos se recogieron por filtración al vacío. Los sólidos se
agitaron en etanol a 60ºC, se enfriaron a temperatura ambiente y se
recogieron por filtración al vacío. El producto se secó al vacío
dando
(2-etilamino-etil)-amida
del ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(75 g, rendimiento del 95%). ^{1}H RMN
(dimetilsulfóxido-d_{6}) \delta 1,03 (t, 3 H,
CH_{3}), 2,42, 2,44 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 2,56 (c, 2 H,
CH_{2}), 2,70, 3,30 (2xt, 4 H, 2xCH_{2}), 6,85, 6,92, 7,58,
7,72, 7,76 (5xm, 5 H, aromático, vinilo y CONH), 10,90 (s a, 1 H,
CONH), 13,65 (s a, 1 H, pirrol NH). EM m/z 369
[M-1].
\vskip1.000000\baselineskip
[2-(Piridin-1-il)etil]-amida
del ácido
5-[S-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
Ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(120 mg, 0,4
mmol) se agitó con EDC, HCl (96 mg, 0,5 mmol), 1-hidroxibenzotriazol anhidro (68 mg, 0,5 mmol), y 2-(2-aminoetilpiridina adquiridos en Aldrich en DMF anhidra (3 ml) durante 2-3 días a temperatura ambiente. La mezcla de reacción se diluyó con NaHCO_{3} 1 M (1,5 ml), después con 8 ml de agua. El producto bruto precipitado se recogió por filtración, se lavó con agua, se secó y se purificó por cristalización o cromatografía dando [2-(piridin-1-il)-etil]amida del ácido 5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
mmol) se agitó con EDC, HCl (96 mg, 0,5 mmol), 1-hidroxibenzotriazol anhidro (68 mg, 0,5 mmol), y 2-(2-aminoetilpiridina adquiridos en Aldrich en DMF anhidra (3 ml) durante 2-3 días a temperatura ambiente. La mezcla de reacción se diluyó con NaHCO_{3} 1 M (1,5 ml), después con 8 ml de agua. El producto bruto precipitado se recogió por filtración, se lavó con agua, se secó y se purificó por cristalización o cromatografía dando [2-(piridin-1-il)-etil]amida del ácido 5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
\vskip1.000000\baselineskip
[2-(Piridin-1-il)etil]amida
del ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
Procediendo como en el ejemplo anterior pero
sustituyendo ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
con ácido
5-[5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(127 mg) proporcionó
[2-(piridin-1-il)etil]amida
del ácido
5-[5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
\vskip1.000000\baselineskip
[2-(Piridin-1-il)etil]amida
del ácido
5-[5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-
carboxílico
carboxílico
Procediendo como se describe en el Ejemplo 95
anterior pero sustituyendo ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
con ácido
5-[5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(145 mg) proporcionó
[2-(piridin-1-il)etil]amida
del ácido
5-[5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
\global\parskip1.000000\baselineskip
[2-(Piridin-1-il)etil]amida
del ácido
5-[2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Procediendo como se ha descrito en el Ejemplo 95
anterior pero sustituyendo ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
con ácido
5-[2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(113 mg)
proporcionó[2-(piridin-1-il)etil]amida
del ácido
5-[2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
Ejemplos 91, 92, 93, y
101
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con
1-(2-aminoetil)pirrolidina, adquirida en
Aldrich Chemical Company, Inc. proporcionó los compuestos
deseados.
Ejemplos
62-65
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con
1-(2-aminoetil)imidazolin-2-ona
(preparada calentando carbonato de dimetilo con
bis(2-aminoetil) amina (2 equivalentes) en
un matraz sellado a 150ºC durante 30 min, siguiendo el procedimiento
descrito en la Patente de Estados Unidos 2613212 (1950), de Rohm y
Haas Co. El producto bruto se purificó sobre sílice usando una
mezcla eluyente de
cloroformo-metanol-amoniaco acuoso
80:25:2) proporcionó los compuestos deseados.
Ejemplos 66-68 y
89
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con éster etílico
del ácido
4-(2-aminoetil)piperazina-1-acético
(preparado de la siguiente manera: éster etílico del ácido
piperazina-1-acético (11,22 g) se
trató con yodoacetonitrilo (5,0 ml) en presencia de carbonato
potásico (6,9 g) en acetato de etilo (260 ml) a 0ºC. Una vez
completada la adición de yodoacetonitrilo (45 min), la mezcla de
reacción se agitó posteriormente a temperatura ambiente durante 11
horas. La mezcla de reacción se filtró y los filtrados se
evaporaron. El residuo se hidrogenó en presencia de boruro de
cobalto (preparado a partir de CoCl_{2} y borohidruro sódico) a
temperatura ambiente a 0,34 MPa (50 psi) durante 2 días en etanol.
La filtración, evaporación y purificación cromatográfica usando una
mezcla eluyente de
cloroformo-metanol-amoniaco acuoso
80:25:2 proporcionaron la amina deseada (3,306 g) en forma de un
aceite amarillo pálido) que proporcionó los compuestos deseados.
Ejemplo
69-72
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con
1-(3-aminopropil)-azepin-2-ona
(preparada de acuerdo con el procedimiento de Kraft A.: J. Chem.
Soc. Perkin Trans. 1, 6, 1999, 705-14, excepto que
la hidrólisis de DBU se realizó a 145ºC puro en presencia de
hidróxido de litio (1 h, 5 ml de DBU, 2 ml de agua, 420 mg de
hidróxido de litio hidrato). La purificación del producto bruto
sobre sílice usando una mezcla eluyente de
cloroformo-metanol-amoniaco acuoso
80:40:4 proporcionó
1-(3-aminopropil)-azepin-2-ona
(4,973 g, rendimiento del 87%)) que proporcionó los compuestos
deseados.
Ejemplos 54-56 y
73
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con
N-acetil etilendiamina, (preparada calentando una
mezcla de acetato de etilo con etilendiamina (1,5 equivalentes) a
160ºC durante 1 h en un recipiente sellado. La destilación al vacío
proporcionó el producto deseado con un rendimiento del 56%.
N-acetiletilendiamina también está disponible en
Aldrich) que proporcionó los compuestos deseados.
Ejemplos
57-60
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con
1-(3-aminopropil)-tetrahidro-pirimidin-2-ona
(preparada de la misma manera que la
1-(3-aminopropil)-azepin-2-ona
de acuerdo con el procedimiento en Kraft A.: J. Chem. Soc. Perkin
Trans. 1, 6, 1999, 705-14: Brevemente,
1,3,4,6,7,8-hexahidro-2H-pirimido
[1,2-a]pirimidina (4,939 g), hidróxido de
litio hidrato (918 mg) y 2 ml de agua se calentaron sin un
disolvente en un recipiente sellado a 145ºC durante 1 h. El
producto bruto se purificó sobre una columna de sílice en
cloroformo-metanol-amoniaco acuoso
80:40:4 dando amina pura (5,265 g, rendimiento del 94%).
Ejemplos 61, 74-75
y
90
Procediendo como se ha descrito en los Ejemplos
95, 94, 96 y 97 anteriores, pero sustituyendo
2-(2-aminoetil)piridina con
1-(2-aminoetil)-piperazina-2-ona
(preparada de la siguiente manera: cloruro de
terc-butildifenilsililo puro (25 ml, 97,7 mmol) se
añadió gota a gota a una solución de DBU (19,5 ml, 130 mmol) y
bis(2-aminoetil)amina (4,32 ml, 40
mmol) en dimetil acetamida anhidra (80 ml) a temperatura ambiente
tras enfriar en un baño de agua durante 5 minutos. La mezcla se
agitó durante 5 horas. Se añadió éster etílico del ácido
bromoacético (6,70 ml, 60 mmol) puro tras enfriar a temperatura
ambiente. La reacción se agitó durante 25 minutos, después se
evaporó a alto vacío. El residuo se disolvió en metanol (200 ml), se
añadieron KHCO_{3} (10 g) y KF (12 g, 200 mmol) y la mezcla se
agitó a 60ºC durante 5 horas. Se añadieron 10 g de Na_{2}CO_{3},
se agitó durante 10 minutos, se enfrió y se filtró. Los filtrados
se evaporaron. El residuo se extrajo con hexanos (2 veces, 250 ml).
El material insoluble en hexano se disolvió en etanol (60 ml), se
filtró y se evaporó. El residuo se purificó en una columna de
sílice en
cloroformo-metanol-amoniaco acuoso
80:40:4 dando amina pura (4,245 g, rendimiento del 74%)) que
proporcionó los compuestos deseados.
(2-(4-Metilpiperazin-1-il)-etil]-amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico
rrol-3-carboxílico
A una mezcla amarilla turbia agitada de ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(90 mg), DMF (0,8 ml) y TEA (0,084 ml) en un tubo de reacción de 20
ml, se le añadió reactivo BOP (199 mg). La mezcla se aclaró en 5
min. Se añadió
2-(4-Metilpiperazin-1-il)etilamina^{1}
(51 mg) a la mezcla transparente. La solución resultante se agitó a
temperatura ambiente durante una noche. Precipitaron productos
sólidos amarillos en el sistema de reacción. La cromatografía en
capa fina (metanol al 10% en cloruro de metileno) mostró que todo
el material de partida se había convertido en el producto. El sólido
se aisló por filtración al vacío y se lavó una vez con etanol (1
ml). El sólido se sonicó en éter dietílico (2 ml) durante 20 min y
se recogió por filtración al vacío. Después se secar al vacío se
obtuvo
(4-metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(79 mg, rendimiento del 62%) se obtuvo.
^{1}H RMN (DMSO-d_{6})
\delta 2,13 (s, 3 H, CH_{3}), 2,40, 2,42 (2xs, 6 H, 2x
CH_{3}), 2,41 (m, 2 H, CH_{2}), 2,47 (m, 8 H, 4xCH_{2}), 3,30
(m, 2 H, CH_{2}), 6,82 (dd, J = 4,5, 8,7 Hz, 1 H), 6,91(td,
^{2}J=2,4, ^{3}J=8,8 Hz, 1 H), 7,43 (t, J = 5,6 Hz, 1 H), 7,70
(s, 1 H), 7,75 (dd, J = 2,8, 9,6 Hz, 1H) (aromático y vinilo),
10,88 (s, 1 H, CONH), 13,67 (s, 1 H, NH). CL-EM
(m/z) 424,4 (M-1).
(4-Metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Siguiendo el procedimiento del Ejemplo 77
anterior pero sustituyendo ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(32)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
con ácido
5-[5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(32)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(95 mg, 0,3 mmol) dio
(4-metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(76 mg, 58%).
^{1}H RMN (DMSO-d_{6})
\delta 2,13 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41, 2,42 (2xs, 6 H, 2x
CH_{3}), 2,42 (m, 2 H, CH_{2}), 2,48 (m, 8 H, 4xCH_{2}), 3,30
(m, 2 H, CH_{2}), 6,84 (d, J = 8,0 Hz, 1 H), 7,11 (dd, J = 2,0,
8,0 Hz, 1 H), 7,44 (t, J = 5,6 Hz, 1 H), 7,76 (s, 1 H), 7,97 (d, J =
2,0 Hz, 1H) (aromático y vinilo), 10,98 (s, 1 H, CONH), 13,62 (s, 1
H, NH). CL-EM (m/z) 440,2 (M-1).
(4-Metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Siguiendo el procedimiento descrito en el
Ejemplo 77, pero sustituyendo ácido
5-(5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
con ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dio
(4-metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(39 mg, 54%) se obtuvo a partir de SU011670 (54 mg, 0,15 mmol).
^{1}H RMN (DMSO-d_{6})
\delta 2,14 (s, 3 H, CH_{3}), 2,41, 2,42 (2xs, 6 H, 2x
CH_{3}), 2,42 (m, 2 H, CH_{2}), 2,48 (m, 8 H, 4xCH_{2}), 3,31
(m, 2 H, CH_{2}), 6,80 (d, J = 8,0 Hz, 1 H), 7,23 (dd, J = 2,0,
8,0 Hz, 1 H), 7,44 (t, J = 5,6 Hz, 1 H), 7,76 (s, 1 H), 8,09 (d, J =
2,0 Hz, 1H) (aromático y vinilo), 10,99 (s, 1 H, CONH), 13,61 (s, 1
H, NH). CL-EM (m/z) 486,6 (M).
(4-Metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Siguiendo el procedimiento descrito en el
Ejemplo 77 anterior pero sustituyendo ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
cid SU014900 con ácido
5-(2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
dio
(4-metilpiperazin-1-il-etil)-amida
del ácido
5-(2-oxo-1,2-dihidro-indol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico,
SU014903 (136 mg, 84%) se obtuvo a partir de SU012120 (112,8 mg,
0,4 mmol). ^{1}H RMN (DMSO-d_{6}) \delta 2,13
(s, 3 H, CH_{3}), 2,39, 2,42 (2xs, 6 H, 2x CH_{3}), 2,42 (m, 2
H, CH_{2}), 2,48 (m, 8 H, 4xCH_{2}), 3,30 (t, 2 H, CH_{2}),
6,86 (d, J = 8,0 Hz, 1 H), 6,96 (t, J = 7,4 Hz, 1 H), 7,10 (t, J =
7,8 Hz, 1 H), 7,41 (t, J = 5,4 Hz, 1 H), 7,62 (s, 1 H), 7,76 (d, J
= 7,6 Hz, 1H) (aromático y vinilo), 10,88 (s, 1 H, CONH), 13,61 (s,
1 H, NH). CL-EM (m/z) 406,6
(M-1).
[2-(3,5-Dimetilpiperazin-1-il)etil)amida
del ácido
5-[2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
A una mezcla amarilla turbia agitada de ácido
5-[2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(112,8 mg, 0,4 mmol), DMF (0,5 ml) y trietilamina (0,111 ml) en un
tubo de reacción de 20 ml, se le añadió reactivo BOP (265 mg). La
mezcla se hizo transparente en 5 min. Se añadió
2-(2,6-dimetilpiperazin-1-il)etilamina
(68,6 mg) (véase, Tapia, L. Alonso-Cires, P.
Lopez-Tudanca, R. Mosquera, L. Labeaga, A.
Innerarity, A. Orjales, J. Med. Chem., 1999, 42,
2870-2880) a la mezcla transparente. La solución
resultante se agitó a temperatura ambiente durante una noche. La
cromatografía en capa fina (metanol al 10% en cloruro de metileno)
mostró que todo el material de partida se había convertido en el
producto. La mezcla de reacción se evaporó a sequedad y después se
purificó por cromatografía ultrarrápida
(CH_{2}Cl_{2}/CH_{3}OH=20/1-15/1) seguido de
recristalización dando
[2-(3,5-dimetilpiperazin-1-il)etil)amida
del ácido
5-[2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(83 mg, rendimiento del 50%). ^{1}H RMN
(DMSO-d_{6}) \delta 1,15, 1,16 (2xs, 6 H,
2xCH_{3}), 1,95 (t, J = 11,6 Hz, 2 H, CH_{2}), 2,41, 2,47 (2xs,
6 H, 2xCH_{3}), 2,50 (m, 2 H, CH_{2}), 3,03 (d, J = 10 Hz, 2
H), 3,19 (m, 2 H), 3,30 (m, 2 H, CH_{2}), 6,86 (d, J = 8,0 Hz, 1
H), 6,97 (t, J = 7,2 Hz, 1 H), 7,11 (t, J = 7,8 Hz, 1 H), 7,48 (t,
J = 5,6 Hz, 1 H), 7,61 (s, 1 H), 7,75 (d, J = 7,6 Hz, 1H) (aromático
y vinilo), 10,88 (s, 1 H, CONH), 13,62 (s, 1 H, NH).
CL-EM (m/z) 422,2 (M+1).
[2-(3,5-Dimetil-piperazin-1-il)etil)amida
del ácido
5-[5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidro
-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Siguiendo el procedimiento descrito en el
Ejemplo 77 anterior se obtuvo el compuesto deseado (60 mg, 0,2
mmol). ^{1}H RMN (DMSO-d_{6}) \delta 0,891,
0,907 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 1,49 (t, J = 10,4 Hz, 2 H), 2,40,
2,42 (2xs, 6 H, 2x CH_{3}), 2,41 (m, 2 H, CH_{2}), 2,74 (m, 4
H), 3,30 (m, 2 H), 6,82 (dd, J = 4,5, 8,7 Hz, 1 H), 6,90 (td,
^{2}J=2,4, ^{3}J=8,4 Hz, 1 H), 7,42 (t, J = 5,6 Hz, 1 H), 7,70
(s, 1 H), 7,74 (dd, J = 4,6, 8,4 Hz, 1H) (aromático y vinilo),
10,88 (s, 1 H, CONH), 13,65 (s, 1 H, NH). CL-EM
(m/z) 438,4(M-1).
[2-(3,5-Dimetil-piperazin-1-il)etil)amida
del ácido
5-[5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Siguiendo el procedimiento del Ejemplo 80
anterior se obtuvo el compuesto deseado (31,2 mg, 34%) a partir de
ácido
5-[5-cloro-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(63 mg, 0,2 mmol). ^{1}H RMN (DMSO-d_{6})
\delta 1,15, 1,16 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 1,95 (t, J = 11,6 Hz, 2
H, CH_{2}), 2,40, 2. 42 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 2,50 (m, 2 H,
CH_{2}), 3,03 (d, J = 11, 2 Hz, 2 H), 3,19 (m, 2 H), 3, 30 (m, 2
H, CH_{2}), 6,85 (d, J = 8,4 Hz, 1 H), 7,11 (dd, J = 2,0, 8,0 Hz,
1 H), 7,52 (t, J = 5,6 Hz, 1 H), 7,76 (s, 1 H), 7. 97 (d, J = 2,0
Hz, 1H) (aromático y vinilo), 10,99 (s, 1 H, CONH), 13,63 (s, 1 H,
NH). CL-EM (m/z) 456,2 (M+1).
[2-(3,5-Dimetil-piperazin-1-il)etil)amida
del ácido
5-[5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
Siguiendo el procedimiento descrito en el
Ejemplo 80 se obtuvo el compuesto deseado (40 mg, 40%) a partir de
ácido
5-[5-bromo-2-oxo-1,2-dihidro-indol-(3Z)-ilidenmetil]-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(74 mg, 0,2 mmol). ^{1}H RMN (DMSO-d_{6})
\delta 1,15, 1,16 (2xs, 6 H, 2xCH_{3}), 1,95 (t, J = 11,6 Hz, 2
H, CH_{2}), 2,40, 2,42 (2xs, 6 H, 23CH_{3}), 2,50 (m, 2 H,
CH_{2}), 3,03 (d, J = 10,4 Hz, 2 H), 3,19 (m, 2 H), 3,30 (m, 2 H,
CH_{2}), 6,81 (d, J = 8,4 Hz, 1 H), 7,24 (dd, J = 2,0, 8,4 Hz, 1
H), 7,51 (t, J = 5,6 Hz, 1 H), 7,76 (s, 1 H), 8,10 (d, J = 2,0 Hz,
1H) (aromático y vinilo), 10,99 (s, 1 H, CONH), 13,62 (s, 1 H, NH).
CL-EM (m/z) 498,4 (M-1).
Los siguientes ensayos se emplean para encontrar
aquellos compuestos que demuestran el grado óptimo de la actividad
deseada.
Los siguientes ensayos pueden usarse para
determinar el nivel de actividad y efecto de los diferentes
compuestos de la presente invención sobre una o más de las PK.
Pueden diseñarse ensayos similares a lo largo de las mismas líneas
para cualquier PK usando técnicas bien conocidas en la técnica.
Varios de los ensayos descritos en este
documento se realizan en un formato ELISA (Ensayo Inmunoabsorbente
Ligado a Enzimas) (Voller, et al., 1980,
"Enzyme-Linked Immunosorbent Assay", Manual of
Clinical Immunology, 2ª ed., Rose y Friedman, Am. Soc. of
Microbiology, Washington, D.C., pág. 359-371). El
procedimiento general es de la siguiente manera: se introduce un
compuesto en células que expresan la quinasa de ensayo, de forma
natural o recombinantemente, durante un periodo de tiempo
seleccionado después del cual, si la quinasa de ensayo es un
receptor, se añade un ligando que se sabe que activa el receptor.
Las células se lisan y el lisado se transfiere a los pocillos de
una placa de ELISA recubierta previamente con un anticuerpo
específico que reconoce el sustrato de la reacción de fosforilación
enzimática. Los componentes que no son sustrato del lisado celular
se lavan y la cantidad de fosforilación sobre el sustrato se detecta
con un anticuerpo que reconoce específicamente fosfotirosina
comparado con células de control que no se pusieron en contacto con
un compuesto de ensayo.
Los protocolos actualmente preferidos para
realizar los experimentos de ELISA para PK específicas se
proporcionan a continuación. Sin embargo, la adaptación de estos
protocolos para determinar la actividad de los compuestos contra
otras RTK, así como para CTK y STK, está dentro del alcance del
conocimiento de los especialistas en la técnica. Otros ensayos
descritos en este documento miden la cantidad de ADN creado en
respuesta a la activación de una quinasa de ensayo, que es una
medida general de una respuesta proliferativa. El procedimiento
general para este ensayo es de la siguiente manera: se introduce un
compuesto a las células que expresan la quinasa de ensayo, de forma
natural o recombinantemente, durante un periodo de tiempo
seleccionado después del cual, si la quinasa de ensayo es un
receptor, se añade un ligando que se sabe que activa el receptor.
Después de incubación al menos durante una noche, se añade un
reactivo de marcado de ADN tal como
5-bromodesoxiuridina (BrdU) o
H^{3}-timidina. La cantidad de ADN marcado se
detecta con un anticuerpo anti-BrdU o midiendo la
radiactividad y se compara con células de control que no se han
puesto en contacto con un compuesto de ensayo.
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo analiza la actividad tirosina
quinasa de GST-Flk1 sobre poli(glu, tyr)
péptidos.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- Placas Corning de 96 pocillos para ELISA (Corning Nº de Catálogo 5805-96).
- 2.
- poli(glu, tyr) 4:1, liofilizado (Sigma Nº de Catálogo P0275).
- 3.
- Preparación de placas de ensayo recubiertas con poli(glu, tyr) (pEY): recubrir 2 ug/pocillo de poli(glu, tyr) (pEY) en 100 ul de PBS, mantener a temperatura ambiente durante 2 horas o a 4ºC durante una noche. Cubrir bien las placas para evitar la evaporación.
- 4.
- Tampón PBS: para 1 litro, mezclar 0,2 g de KH_{2}PO_{4}, 1,15 g de Na_{2}HPO_{4}, 0,2 g de KCl y 8 g de NaCl en aproximadamente 900 ml de dH_{2}O. Cuando todos los reactivos se hayan disuelto, ajustar el pH a 7,2 con HCl. Llevar el volumen total a 1 l con dH_{2}O.
- 5.
- Tampón PBST: a 1 l de Tampón PBS, añadir 1,0 ml de Tween-20.
- 6.
- TBB - Tampón de Bloqueo: para 1 l, mezclar 1,21 g de TRIS, 8,77 g de NaCl, 1 ml de TWEEN-20 en aproximadamente 900 ml de dH_{2}O. Ajustar el pH a 7,2 con HCl. Añadir 10 g de BSA, agitar hasta disolver. Llevar el volumen total a 1 l con dH_{2}O. Filtrar para retirar la materia particulada.
- 7.
- BSA al 1% en PBS: para preparar una solución de trabajo 1x, añadir 10 g de BSA a aproximadamente 990 ml de tampón PBS, agitar hasta disolver. Ajustar el volumen total a 1 l con tampón PBS, filtrar para retirar la materia particulada.
- 8.
- Hepes 50 mM pH 7,5.
- 9.
- GST-Flk1cd purificado a partir de la transformación del baculovirus recombinante sf9 (SUGEN, Inc.).
- 10.
- DMSO al 4% en dH_{2}O.
- 11.
- ATP 10 mM en dH_{2}O.
- 12.
- MnCl_{2} 40 mM
- 13.
- Tampón de Dilución de Quinasa (KDB): mezclar Hepes 10 ml (pH 7,5), 1 ml de NaCl 5 M, 40 \mul de ortovanadato sódico 100 mM y 0,4 ml de BSA al 5% en dH_{2}O con 88,56 ml de dH_{2}O.
- 14.
- placas NUNC de polipropileno con fondo en V de 96 pocillos, Applied Scientific Nº de Catálogo AS-72092.
\newpage
- 15.
- EDTA: mezclar 14,12 g de ácido etilendiaminatetraacético (EDTA) con aproximadamente 70 ml dH_{2}O. Añadir NaOH 10 N hasta que el EDTA se disuelve. Ajustar el pH a 8,0. Ajustar el volumen total a 100 ml con dH_{2}O.
- 16.
- 1^{er} Tampón de Dilución de Anticuerpo: mezclar 10 ml de BSA al 5% en tampón PBS con 89,5 ml de TBST.
- 17.
- Anticuerpo monoclonal anti-fosfotirosina conjugado con peroxidasa de rábano rusticano (PY99 HRP, Santa Cruz Biotech).
- 18.
- ácido 2,2'-azinobis(3-etilbenztiazolin-6-sulfónico (ABTS, Moss, Nº Cat. ABST). 19, SDS al 10%.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir las placas Corning de 96 pocillos para ELISA con 2 mg de péptido poliEY en PBS estéril como se ha descrito en la etapa 3 de Materiales y Reactivos.
- 2.
- Retirar el líquido no unido de los pocillos invirtiendo la placa. Lavar una vez con TBST. Poner la placa en una toallita de papel para retirar el exceso de líquido.
- 3.
- Añadir 100 ml de BSA al 1% en PBS a cada pocillo. Incubar, con agitación, durante 1 h. a temperatura ambiente.
- 4.
- Repetir la etapa 2.
- 5.
- Empapar los pocillos con HEPES 50 mM (pH 7,5) (150 ml/pocillo).
- 6.
- Diluir el compuesto de ensayo con dH_{2}O/DMSO al 4% hasta 4 veces la concentración de ensayo final deseada en placas de polipropileno de 96 pocillos.
- 7.
- Añadir 25 \mul de compuesto de ensayo diluido a una placa para ELISA. En los pocillos de control, poner 25 ml de dH_{2}O/DMSO al 4%.
- 8.
- Añadir 25 \mul de MnCl_{2} 40 mM con 4x ATP (2 \muM) a cada pocillo.
- 9.
- Añadir 25 ml EDTA 0,5 M a los pocillos de control negativo.
- 10.
- Diluir GST-Flk1 a 0,005 \mug (5 ng)/pocillo con KDB.
- 11.
- Añadir 50 \mul de enzima diluida a cada pocillo.
- 12.
- Incubar, con agitación, durante 15 minutos a temperatura ambiente.
- 13.
- Detener la reacción añadiendo 50 \mul de EDTA 250 mM (pH 8,0).
- 14.
- Lavar 3X con TBST y poner la placa sobre una toallita de papel para retirar el exceso de líquido.
- 15.
- Añadir 100 \mul por pocillo de conjugado anti-fosfotirosina HRP, dilución 1:5.000 en tampón de dilución de anticuerpo. Incubar, con agitación, durante 90 min. a temperatura ambiente.
- 16.
- Lavar como en la etapa 14.
- 17.
- Añadir 100 \mul de solución de ABTS a temperatura ambiente a cada pocillo.
- 18.
- Incubar, con agitación, durante 10 a 15 minutos. Retirar las burbujas.
- 19.
- Detener la reacción añadiendo 20 \mul de SDS al 10% a cada pocillo.
- 20.
- Leer los resultados en un lector de ELISA Dynatech MR7000 con filtro de ensayo a 410 nM y filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad
quinasa in vitro de pyk2 de longitud completa marcado con
epítope HA (FL-pyk2-HA) en un ensayo
ELISA.
\newpage
\global\parskip0.990000\baselineskip
Materiales y
reactivos:
- 1.
- placas Corning de 96 pocillos para Elisa.
- 2.
- anticuerpo anti-HA monoclonal 12CA5 (SUGEN, Inc.).
- 3.
- PBS (Solución Salina de Dulbecco Tamponada con Fosfato (Gibco Nº de Catálogo 450-1300EB).
- 4.
- Tampón TBST: para 1 l, mezclar 8,766 g de NaCl, 6,057 g de TRIS y 1 ml de Triton X-100 al 0,1% en aproximadamente 900 ml de dH_{2}O. Ajustar el pH a 7,2, llevar el volumen a 1 l.
- 5.
- Tampón de Bloqueo: para 1 l, mezclar 100 g de BSA al 10%, 12,1 g de TRIS 100 mM, 58,44 g de NaCl 1 M y 10 ml de TWEEN-20 al 1%.
- 6.
- FL.pyk2-HA de lisados celulares de sf9 (SUGEN, Inc.).
- 7.
- DMSO al 4% en MilliQue H_{2}O.
- 8.
- ATP 10 mM en dH_{2}O.
- 9.
- MnCl_{2} 1 M.
- 10.
- MgCl_{2} 1 M.
- 11.
- Ditiotreitol 1 M (DTT).
- 12.
- tampón fosforilación de quinasa 10X: mezclar 5,0 ml de Hepes 1 M (pH 7,5), 0,2 ml de MnCl_{2} 1 M, 1,0 ml de MgCl_{2} 1 M, 1,0 ml de Triton X-100 al 10% en 2,8 ml de dH_{2}O. Justo antes de usar, añadir 0,1 ml de DTT 1 M.
- 13.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V.
- 14.
- EDTA 500 mM en dH_{2}O.
- 15.
- tampón de dilución de anticuerpo: para 100 ml, 1 ml de BSA al 5%/PBS y 1 ml de Tween-20 al 10% en 88 ml de TBS.
- 16.
- anti-Ptyr conjugado con HRP PY99), Santa Cruz Biotech Nº Cat. SC-7020.
- 17.
- ABTS, Moss, Nº Cat. ABST-2000.
- 18.
- SDS al 10%.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir placas Corning de 96 pocillos para ELISA con 0,5 mg por pocillo de anticuerpo anti-HA 12CA5 en 100 ml de PBS. Almacenar durante una noche a 4ºC.
- 2.
- Retirar el anticuerpo HA no unido de los pocillos invirtiendo la placa. Lavar la placa con dH_{2}O. Poner la placa en una toallita de papel para retirar el exceso de líquido.
- 3.
- Añadir 150 \mul de Tampón de Bloqueo a cada pocillo. Incubar, con agitación, durante 30 min a temperatura ambiente.
- 4.
- Lavar la placa 4x con TBS-T.
- 5.
- Diluir el lisado en PBS (1,5 \mug lisado/100 ml de PBS).
- 6.
- Añadir 100 \mul de lisado diluido a cada pocillo. Agitar a temperatura ambiente durante 1 h.
- 7.
- Lavar como en la etapa 4.
- 8.
- Añadir 50 \mul de Tampón quinasa 2X a la placa para ELISA que contiene pyk2-HA capturado.
- 9.
- Añadir 25 \mul de compuesto de ensayo 400 \muM en DMSO al 4% a cada pocillo. Para los pocillos de control usar DMSO al 4% únicamente.
- 10.
- Añadir 25 \mul de EDTA 0,5 M a los pocillos de control negativo.
\global\parskip1.000000\baselineskip
- 11.
- Añadir 25 ml de ATP 20 mM a todos los pocillos. Incubar, con agitación, durante 10 minutos.
- 12.
- Detener la reacción añadiendo 25 \mul de EDTA 500 mM (pH 8,0) a todos los pocillos.
- 13.
- Lavar como en la etapa 4.
- 14.
- Añadir 100 \mul de anti-Ptyr conjugado con HRP diluido 1:6000 en Tampón de Dilución de Anticuerpo a cada pocillo. Incubar, con agitación, durante 1 h. a temperatura ambiente.
- 15.
- Lavar la placa 3X con TBST y 1X con PBS.
- 16.
- Añadir 100 \mul de solución de ABST a cada pocillo.
- 17.
- Si fuera necesario, detener el desarrollo de la reacción añadiendo 20 \mul de SDS al 10% a cada pocillo.
- 18.
- Leer la placa en un lector de ELISA con filtro de ensayo a 410 nM y filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad
quinasa in vitro de FGF1-R en un ensayo
ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- placas Costar de 96 pocillos para Elisa (Corning Nº de Catálogo 3369).
- 2.
- Poli(Glu-Tyr) (Sigma Nº de Catálogo P0275).
- 3.
- PBS (Gibco Nº de Catálogo 450-1300EB).
- 4.
- Solución Tampón de Hepes 50 mM.
- 5.
- Tampón de Bloqueo (BSA al 5%/PBS).
- 6.
- GST-FGFR1 purificado (SUGEN, Inc.).
- 7.
- Tampón de Dilución de Quinasa.
- \quad
- Mezclar 500 ml de Hepes 1 M (GIBCO), 20 \mul de BSA al 5%/PBS, 10 \mul de ortovanadato sódico 100 mM y 50 \mul de NaCl 5 M.
- 8.
- ATP 10 mM.
- 9.
- mezcla de fosforilación ATP/MnCl_{2}: mezclar 20 ml de ATP, 400 ml de MnCl_{2} 1 M y 9,56 ml de dH_{2}O.
- 10.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V (Applied Scientific Nº de Catálogo AS-72092).
- 11.
- EDTA 0,5 M.
- 12.
- TBST al 0,05%
- \quad
- Añadir 500 ml de TWEEN a 1 litro de TBS.
- 13.
- suero policlonal de conejo anti-fosfotirosina (SUGEN, Inc.).
- 14.
- conjugado de (anticuerpo) de cabra anti-IgG de conejo con peroxidasa (Biosource, Nº de Catálogo ALI0404).
- 15.
- Solución de ABTS.
- 16.
- Solución de ABTS/H_{2}O_{2}.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir placas Costar de 96 pocillos para ELISA con 1 mg por pocillo de Poli(Glu, Tyr) en 100 ml de PBS. Almacenar durante una noche a 4ºC.
- 2.
- Lavar las placas recubiertas una vez con PBS.
- 3.
- Añadir 150 ml de BSA al 5%/PBS Tampón de Bloqueo a cada pocillo. Incubar, con agitación, durante 1 h a temperatura ambiente.
- 4.
- Lavar la placa 2x con PBS, después una vez con Hepes 50 mM. Poner las placas sobre una toallita de papel para retirar el exceso de líquido y las burbujas.
- 5.
- Añadir 25 \mul de compuesto de ensayo 0,4 mM en DMSO al 4% o DMSO al 4% solo (controles) a la placa.
- 6.
- Diluir GST-FGFR1 purificado en Tampón de Dilución de Quinasa (5 ng quinasa/50 ul KDB/pocillo).
- 7.
- Añadir 50 \mul de quinasa diluida a cada pocillo.
- 8.
- Iniciar la reacción de quinasa añadiendo 25 \mul/pocillo de ATP/Mn++ preparado recientemente (0,4 ml de MnCl_{2} 1 M, 40 \mul de ATP 10 mM, 9,56 ml de dH_{2}O), preparado recientemente).
- 9.
- Esta es una reacción de quinasa rápida y debe detenerse con 25 ml de EDTA 0,5 M de una manera similar a la adición de ATP.
- 10.
- Lavar la placa 4x con TBST reciente.
- 11.
- Preparar Tampón de Dilución de Anticuerpo: por cada 50 ml:
- \quad
- Mezclar 5 ml de BSA al 5%, 250 \mul de leche al 5% y 50 \mul de vanadato sódico 100 mM, llevar al volumen final con TBST al 0,05%.
- 12.
- Añadir 100 ml por pocillo de anti-fosfotirosina (dilución 1:10000 en ADB). Incubar, con agitación durante 1 h. a temperatura ambiente.
- 13.
- Lavar como en la etapa 10.
- 14.
- Añadir 100 ml por pocillo de conjugado de (anticuerpo) de cabra anti-IgG de conejo con peroxidasa Biosource (dilución 1:6000 en ADB). Incubar, con agitación durante 1 h. a temperatura ambiente.
- 15.
- Lavar como en la etapa 10 y después con PBS para retirar las burbujas y el exceso de TWEEN.
- 16.
- Añadir 100 ml de solución de ABTS/H_{2}O_{2} a cada pocillo.
- 17.
- Incubar, con agitación, durante 10 a 20 minutos. Retirar las burbujas.
- 18.
- Leer el ensayo en un lector de ELISA Dynatech MR7000: filtro de ensayo a 410 nM, filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad
quinasa in vitro de FGF1-R en un ensayo
ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- placas Corning de 96 pocillos para Elisa.
- 2.
- anticuerpo anti-EGFR monoclonal SUMO1 (SUGEN, Inc.).
- 3.
- PBS.
- 4.
- Tampón TBST.
- 5.
- Tampón de Bloqueo: para 100 ml, mezclar 5,0 g de leche Carnation Instant Non-fat Milk® con 100 ml de PBS.
- 6.
- lisado celular de A431 (SUGEN, Inc.).
- 7.
- Tampón TBS:
\newpage
- 8.
- TBS + DMSO al 10%: para 1 l, mezclar 1,514 g TRIS, 2,192 g de NaCl y 25 ml de DMSO; llevar a 1 litro de volumen total con dH_{2}O.
- 9.
- ATP (Adenosina-5'-trifosfato, de músculo Equino, Sigma Nº Cat. A-5394), solución 1,0 mM en dH_{2}O. Este reactivo debe prepararse inmediatamente antes de su uso y mantenerse en hielo.
- 10.
- MnCl_{2} 1,0 mM.
- 11.
- mezcla de fosforilación ATP/MnCl_{2}: para preparar 10 ml, mezclar 300 ml de ATP 1 mM, 500 ml de MnCl_{2} y 9,2 ml de dH_{2}O. Preparar justo antes de usar, mantener en hielo.
- 12.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V.
- 13.
- EDTA.
- 14.
- suero policlonal de conejo anti-fosfotirosina (SUGEN, Inc.).
- 15.
- conjugado de (anticuerpo) de cabra anti-IgG de conejo con peroxidasa (Biosource Nº Cat. ALI0404).
- 16.
- ABTS.
- 17.
- peróxido de hidrógeno al 30%.
- 18.
- ABTS/H_{2}O_{2}.
- 19.
- HCl 0,2 M.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir placas Corning de 96 pocillos para ELISA con 0,5 mg de SUMO1 en 100 \mul de PBS por pocillo, almacenar durante una noche a 4ºC.
- 2.
- Retirar el SUMO1 no unido de los pocillos invirtiendo la placa para retirar el líquido. Lavar 1x con dH_{2}O. Poner la placa en una toallita de papel para retirar el exceso de líquido.
- 3.
- Añadir 150 ml de Tampón de Bloqueo a cada pocillo. Incubar, con agitación, durante 30 min. a temperatura ambiente.
- 4.
- Lavar la placa 3x con agua desionizada, después una vez con TBST. Poner la placa sobre una toallita de papel para retirar el exceso de líquido y las burbujas.
- 5.
- Diluir el lisado en PBS (7 \mug lisado/100 ml de PBS).
- 6.
- Añadir 100 \mul de lisado diluido a cada pocillo. Agitar a temperatura ambiente durante 1 h.
- 7.
- Lavar la placas como en la etapa 4, anterior.
- 8.
- Añadir 120 \mul de TBS a la placa para ELISA que contiene EGFR capturado.
- 9.
- Diluir el compuesto de ensayo 1:10 en TBS, poner en el pocillo.
- 10.
- Añadir 13,5 \mul de compuesto de ensayo diluido a la placa para ELISA. A los pocillos de control, añadir 13,5 ml de TBS en DMSO al 10%.
- 11.
- Incubar, con agitación, durante 30 minutos a temperatura ambiente.
- 12.
- Añadir 15 ml de mezcla de fosforilación a todos los pocillos excepto al pocillo de control negativo. El volumen final del pocillo debe ser de aproximadamente 150 \mul con una concentración final ATP 3 mM/MnCl_{2} 5 mM en cada pocillo. Incubar con agitación, durante 5 minutos.
- 13.
- Detener la reacción añadiendo 16,5 ml de solución de EDTA mientras se agita. Agitar durante 1 min. más.
- 14.
- Lavar 4x con agua desionizada, 2x con TBST.
- 15.
- Añadir 100 \mul de anti-fosfotirosina (dilución 1:3000 en TBST) por pocillo. Incubar, con agitación, durante 30-45 min. a temperatura ambiente.
- 16.
- Lavar como en la etapa 4, anterior.
- 17.
- Añadir 100 \mul de conjugado de (anticuerpo) de cabra anti-IgG de conejo con peroxidasa Biosource (dilución en 1:2000 TBST) a cada pocillo. Incubar con agitación durante 30 min. a temperatura ambiente.
- 18.
- Lavar como en la etapa 4, anterior.
- 19.
- Añadir 100 ml de solución de ABTS/H_{2}O_{2} a cada pocillo.
- 20.
- Incubar de 5 a 10 minutos con agitación. Retirar las burbujas.
- 21.
- Si fuera necesario, detener la reacción añadiendo 100 ml de HCl 0,2 M por pocillo.
- 22.
- Leer el ensayo en un lector de ELISA Dynatech MR7000: filtro de ensayo a 410 nM, filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad
quinasa in vitro de FGF1-R en un ensayo
ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- placas Corning de 96 pocillos para Elisa.
- 2.
- anticuerpo anti-PDGFR monoclonal 28D4C10 (SUGEN, Inc.).
- 3.
- PBS.
- 4.
- Tampón TBST.
- 5.
- Tampón de Bloqueo (igual que para el bioensayo de EGFR).
- 6.
- lisado celular de NIH 3T3 que expresa PDGFR-\beta (SUGEN, Inc.).
- 7.
- Tampón TBS.
- 8.
- TBS + DMSO al 10%.
- 9.
- ATP.
- 10.
- MnCl_{2}.
- 11.
- mezcla de fosforilación de tampón quinasa: para 10 ml, mezclar 250 \mul de TRIS 1 M, 200 \mul de NaCl 5 M, 100 \mul de MnCl_{2} 1 M y 50 \mul de Triton X-100 100 mM en suficiente dH_{2}O para preparar 10 ml.
- 12.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V.
- 13.
- EDTA.
- 14.
- suero policlonal de conejo anti-fosfotirosina (SUGEN, Inc.).
- 15.
- conjugado de (anticuerpo) de cabra anti-IgG de conejo con peroxidasa (Biosource Nº Cat. ALI0404).
- 16.
- ABTS.
- 17.
- Peróxido de hidrógeno, solución al 30%.
- 18.
- ABTS/H_{2}O_{2}.
- 19.
- HCl 0,2 M.
\newpage
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir placas Corning de 96 pocillos para ELISA con 0,5 mg de 28D4C10 en 100 \mul de PBS por pocillo, almacenar durante una noche a 4ºC.
- 2.
- Retirar el 28D4C10 no unido de los pocillos invirtiendo la placa para retirar el líquido. Lavar 1x con dH_{2}O. Poner la placa en una toallita de papel para retirar el exceso de líquido.
- 3.
- Añadir 150 \mul de Tampón de Bloqueo a cada pocillo. Incubar durante 30 min. a temperatura ambiente con agitación.
- 4.
- Lavar la placa 3x con agua desionizada, después una vez con TBST. Poner la placa sobre una toallita de papel para retirar el exceso de líquido y las burbujas.
- 5.
- Diluir el lisado en HNTG (10 \mug lisado/100 ml HNTG).
- 6.
- Añadir 100 \mul de lisado diluido a cada pocillo. Agitar a temperatura ambiente durante 60 min.
- 7.
- Lavar la placas como se ha descrito en la Etapa 4.
- 8.
- Añadir 80 \mul de mezcla de trabajo con tampón quinasa a la placa para ELISA que contiene PDGFR capturado.
- 9.
- Diluir el compuesto de ensayo 1:10 en TBS en placas de polipropileno de 96 pocillos.
- 10.
- Añadir 10 \mul de compuesto de ensayo diluido a la placa para ELISA. A los pocillos de control, añadir 10 \mul de TBS + DMSO al 10%. Incubar con agitación durante 30 minutos a temperatura ambiente.
- 11.
- Añadir 10 ml de ATP directamente a todos los pocillos excepto al pocillo de control negativo (el volumen final del pocillo debe ser de aproximadamente 100 \mul con ATP 20 \muM en cada pocillo). Incubar 30 minutos con agitación.
- 12.
- Detener la reacción añadiendo 10 ml de solución de EDTA a cada pocillo.
- 13.
- Lavar 4x con agua desionizada, dos veces con TBST.
- 14.
- Añadir 100 \mul de anti-fosfotirosina (dilución 1:3000 en TBST) por pocillo. Incubar con agitación durante 30-45 min. a temperatura ambiente.
- 15.
- Lavar como en la Etapa 4.
- 16.
- Añadir 100 \mul de conjugado de (anticuerpo) de cabra anti-IgG de conejo con peroxidasa Biosource (dilución 1:2000 en TBST) a cada pocillo. Incubar con agitación durante 30 min. a temperatura ambiente.
- 17.
- Lavar como en la Etapa 4.
- 18.
- Añadir 100 \mul de solución de ABTS/H_{2}O_{2} a cada pocillo.
- 19.
- Incubar de 10 a 30 minutos con agitación. Retirar las burbujas.
- 20.
- Si fuera necesario detener la reacción con la adición de 100 ml de HCl 0,2 M por pocillo.
- 21.
- Leer el ensayo en un lector de ELISA Dynatech MR7000 con filtro de ensayo a 410 nM y filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad
quinasa de HER-2 en células enteras en un formato
ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- DMEM (GIBCO Nº de Catálogo 11965-092).
- 2.
- Suero Bovino Fetal (FBS, GIBCO Nº de Catálogo 16000-044), inactivado por calor en un baño de agua durante 30 min. a 56ºC.
- 3.
- Tripsina (GIBCO Nº de Catálogo 25200-056).
- 4.
- L-Glutamina (GIBCO Nº de Catálogo 25030-081).
- 5.
- HEPES (GIBCO Nº de Catálogo 15630-080).
- 6.
- Medios de Crecimiento.
- \quad
- Mezclar 500 ml de DMEM, 55 ml de FBS inactivado por calor, 10 ml de HEPES y 5,5 ml de L-Glutamina.
- 7.
- Medios de Inanición.
- \quad
- Mezclar 500 ml de DMEM, 2,5 ml de FBS inactivado por calor, 10 ml de HEPES y 5,5 ml de L- Glutamina.
- 8.
- PBS.
- 9.
- Placas de microtitulación de cultivo tisular de 96 pocillos de fondo plano (Corning Nº de Catálogo 25860).
- 10.
- Placas de Cultivo Tisular de 15 cm (Corning Nº de Catálogo 08757148).
- 11.
- Placas Corning de 96 pocillos para ELISA.
- 12.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V.
- 13.
- Cartuchos de Transferencia Costar para Transtar 96 (Costar Nº de Catálogo 7610).
- 14.
- SUMO 1: anticuerpo anti-EGFR monoclonal (SUGEN, Inc.).
- 15.
- Tampón TBST.
- 16.
- Tampón de Bloqueo: Carnation Instant Milk® al 5% en PBS.
- 17.
- Ligando EGF: EGF-201, Shinko American, Japón. Suspender el polvo en 10 ul de HCl 10 mM. Añadir 100 ul de NaOH 10 mM. Añadir 800 ul de PBS y transferir a un tubo Eppendorf, almacenar a -20ºC hasta que esté listo para usar.
- 18.
- Tampón de Lisis HNTG.
- \quad
- Para Reserva 5X HNTG, mezclar 23,83 g de Hepes, 43,83 g de NaCl, 500 ml de glicerol y 100 ml de Triton X-100 y suficiente dH_{2}O para preparar 1 l de solución total. Para 1X HNTG*, mezclar 2 ml de HNTG, 100 ml de Na_{3}VO_{4} 0,1 M, 250 ml de Na_{4}P_{2}O_{7} 0,2 M y 100 ml de EDTA.
- 19.
- EDTA.
- 20.
- Na_{3}VO_{4}. Para preparar solución de reserva, mezclar 1,84 g de Na_{3}VO_{4} con 90 ml de dH_{2}O. Ajustar el pH a 10. Hervir en microondas durante un minuto (la solución se hace transparente). Enfriar a temperatura ambiente. Ajustar el pH a 10. Repetir el ciclo de calentamiento/enfriamiento hasta que el pH permanece a 10.
- 21.
- Na_{4}P_{2}O_{7} 200 mM.
- 22.
- antisuero policlonal de conejo específico para fosfotirosina (anticuerpo anti-Ptyr, SUGEN, Inc.).
- 23.
- antisuero purificado por afinidad, anticuerpo IgG de cabra anti-conejo, conjugado de peroxidasa (Biosource Cat Nº ALI0904).
- 24.
- Solución de ABTS.
- 25.
- peróxido de hidrógeno, solución al 30%.
- 26.
- ABTS/H_{2}O_{2}.
- 27.
- HCl 0,2 M.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir placas Corning de 96 pocillos para ELISA con SUMO1 a 1,0 ug por pocillo en PBS, 100 ul volumen final/pocillo. Almacenar durante una noche a 4ºC.
\newpage
- 2.
- En el día de uso, retirar el tampón de recubrimiento y lavar la placa 3 veces con dH_{2}O y una vez con Tampón TBST. Todos los lavados en este ensayo deben hacerse de esta manera, a menos que se indique otra cosa.
- 3.
- Añadir 100 ul de Tampón de Bloqueo a cada pocillo. Incubar la placa, con agitación, durante 30 min. a temperatura ambiente. Justo antes de usar, lavar la placa.
- 4.
- Usar la línea celular EGFr/HER-2 quimera/3T3-C7 para este ensayo.
- 5.
- Elegir placas que tengan una confluencia del 80-90%. Recoger las células por tripsinización y centrifugar a 1000 rpm a temperatura ambiente durante 5 min.
- 6.
- Resuspender las células en medio de inanición y contar con azul de tripano. Se requiere una viabilidad por encima del 90%. Sembrar las células en el medio de inanición a una densidad de 2.500 células por pocillo, 90 ul por pocillo, en una placa de microtitulación de 96 pocillos. Incubar las células sembradas durante una noche a 37ºC en CO_{2} al 5%.
- 7.
- Iniciar el ensayo dos días después de la siembra.
- 8.
- Los compuestos de ensayo se disuelven en DMSO al 4%. Las muestras se diluyen después adicionalmente directamente sobre placas privadas de DMEM. Típicamente, esta dilución será 1:10 o mayor. Todos los pocillos se transfieren después a la placa celular a una dilución 1:10 adicional (10 \mul de muestra y medios en 90 \mul de medios de inanición. La concentración final de DMSO debe ser del 1% o menor. Puede usarse también una dilución en serie convencional.
- 9.
- Incubar en CO_{2} al 5% a 37ºC durante 2 horas.
- 10.
- Preparar ligando EGF diluyendo el EGF de reserva (16,5 \muM) en DMEM caliente a 150 nM.
- 11.
- Preparar suficiente HNTG* reciente para 100 ul por pocillo; poner en hielo.
- 12.
- Después de 2 horas de incubación con compuesto de ensayo, añadir ligando EGF preparado a las células, 50 ul por pocillo, para una concentración final de 50 nM. Los pocillos de control positivo reciben la misma cantidad de EGF. Los controles negativos no reciben EGF. Incubar a 37ºC durante 10 min.
- 13.
- Retirar el compuesto de ensayo, EGF, y DMEM. Lavar las células una vez con PBS.
- 14.
- Transferir HNTG* a las células, 100 ul por pocillo. Poner en hielo durante 5 minutos. Mientras, retirar el tampón de bloqueo de la placa para ELISA y lavar.
- 15.
- Raspar las células de la placa con una micropipeta y homogeneizar el material celular repetidamente aspirando y dispensando el tampón de lisis HNTG*. Transferir el lisado a una placa para ELISA recubierta, bloqueada, lavada. O, usar un cartucho de transferencia Costar para transferir el lisado a la placa.
- 16.
- Incubar, con agitación, a temperatura ambiente durante 1 h.
- 17.
- Retirar el lisado, lavar. Transferir anticuerpo anti-Ptyr diluido recientemente (1:3000 en TBST) a una placa para ELISA, 100 ul por pocillo.
- 18.
- Incubar, con agitación, a temperatura ambiente, durante 30 min.
- 19.
- Retirar el anticuerpo anti-Ptyr, lavar. Transferir el anticuerpo BIOSOURCE diluido recientemente a una placa para ELISA (1:8000 en TBST, 100 ul por pocillo).
- 20.
- Incubar, con agitación, a temperatura ambiente durante 30 min.
- 21.
- Retirar el anticuerpo BIOSOURCE, lavar. Transferir la solución de ABTS/H_{2}O_{2} preparada recientemente a una placa para ELISA, 100 ul por pocillo.
- 22.
- Incubar, con agitación, durante 5-10 minutos. Retirar las burbujas.
- 23.
- Detener la reacción con la adición de 100 ul de HCl 0,2 M por pocillo.
- 24.
- Leer el ensayo en un lector de ELISA Dynatech MR7000 con filtro de ensayo ajustado a 410 nM y filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad
quinasa de serina/treonina in vitro de cdk2/ciclina A humana
en un Ensayo de Proximidad por Centelleo (SPA).
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- placas Wallac de 96 pocillos de polietilentereftalato (flexi) (Wallac Nº de Catálogo 1450-401).
- 2.
- Amersham Redivue [\gamma^{33}P] ATP (Amersham Nº de catálogo AH 9968).
- 3.
- Amersham perlas SPA de poliviniltolueno recubiertas con estreptavidina (Amersham Nº de catálogo RPNQ0007). Las perlas deben reconstituirse en PBS sin magnesio o calcio, a 20 mg/ml.
- 4.
- complejo enzimático activado de cdk2/ciclina A purificado a partir de células Sf9 (SUGEN, Inc.).
- 5.
- sustrato peptídico biotiniliado (Debtide). Biotina-X-PKTPKKAKKL peptídico se disuelve en dH_{2}O a una concentración de 5 mg/ml.
- 6.
- Mezcla péptido/ATP: para 10 ml, mezclar 9,979 ml de dH_{2}O, 0,00125 ml de ATP "frío", 0,010 ml de Debtide y 0,010 ml de \gamma^{33}P ATP. La concentración final por pocillo será de ATP "frío" 0,5 mM, 0,1 mg de Debtide y 0,2 \muCi de \gamma^{33}P ATP.
- 7.
- Tampón quinasa: para 10 ml, mezclar 8,85 ml de dH_{2}O, 0,625 ml de TRIS(pH 7,4), 0,25 ml de MgCl_{2} 1 M, 0,25 ml de NP40 al 10% y 0,025 ml de DTT 1 M, añadido reciente justo antes de su uso.
- 8.
- ATP 10 mM en dH_{2}O.
- 9.
- Tris 1 M, pH ajustado a 7,4 con HCl.
- 10.
- MgCl_{2} 1 M.
- 11.
- DTT 1 M.
- 12.
- PBS (Gibco Nº de Catálogo 14190-144).
- 13.
- EDTA 0,5 M.
- 14.
- Solución de parada: para 10 ml, mezclar 9,25 ml de PBS, 0,005 ml de ATP 100 mM, 0,1 ml de EDTA 0,5 M, 0,1 ml de Triton X-100 al 10% y 1,25 ml de 20 mg/ml de perlas SPA.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Preparar soluciones de compuestos de ensayo a 5x la concentración final deseada en DMSO al 5%. Añadir 10 ul a cada pocillo. Para los controles negativos, usar 10 ul de DMSO al 5% solo en los pocillos.
- 2.
- Diluir 5 ml de solución de cdk2/ciclina A con 2,1 ml de tampón quinasa 2x.
- 3.
- Añadir 20 ul de enzima a cada pocillo.
- 4.
- Añadir 10 \mul de EDTA 0,5 M a los pocillos de control negativo.
- 5.
- Para iniciar la reacción con quinasa, añadir 20 \mul de mezcla péptido/ATP a cada pocillo. Incubar durante 1 h. sin agitar.
- 6.
- Añadir 200 \mul de solución de parada a cada pocillo.
- 7.
- Mantener al menos 10 min.
- 8.
- Hacer girar la placa a aproximadamente 2300 rpm durante 3-5 min.
- 9.
- Contar la placa usando Trilux o un lector similar.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir los niveles de
fosfotirosina en un sustrato de poli(ácido glutámico:tirosina (4:1))
como medio para identificar agonistas/antagonistas de la
transfosforilación de met del sustrato.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- placas Corning de 96 pocillos para Elisa, Corning Nº de Catálogo 25805-96.
- 2.
- Poli(glu, tyr) 4:1, Sigma, Nº Cat. P 0275.
- 3.
- PBS, Gibco Nº de Catálogo 450-1300EB.
- 4.
- HEPES 50 mM.
- 5.
- Tampón de Bloqueo: Disolver 25 g de Albúmina de Suero Bovina, Sigma Nº Cat. A-7888, en 500 ml de PBS, filtrar a través de un filtro de 4 \mum.
- 6.
- proteína de fusión GST purificada que contiene el dominio de quinasa Met, Sugen, Inc.
- 7.
- Tampón TBST.
- 8.
- DMSO acuoso al 10% (MilliQue H_{2}O).
- 9.
- Adenosina-5'-trifosfato acuoso 10 mM (dH_{2}O), Sigma Nº Cat. A-5394.
- 10.
- Tampón de Dilución de Quinasa 2X: para 100 ml, mezclar 10 ml de HEPES 1 M a pH 7,5 con 0,4 ml de BSA al 5%/PBS, 0,2 ml de ortovanadato sódico 0,1 M y 1 ml de cloruro sódico 5 M en 88,4 ml de dH_{2}O.
- 11.
- Mezcla de Reacción ATP 4X: para 10 ml, mezclar 0,4 ml de cloruro de manganeso 1 M y 0,02 ml de ATP 0,1 M en 9,56 ml de dH_{2}O.
- 12.
- Mezcla de Controles Negativos 4X: para 10 ml, mezclar 0,4 ml de cloruro de manganeso 1 M en 9,6 ml de dH_{2}O.
- 13.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V, Applied Scientific Nº de Catálogo S-72092.
- 14.
- EDTA 500 mM.
- 15.
- Tampón de Dilución de Anticuerpo: para 100 ml, mezclar 10 ml de BSA al 5%/PBS, 0,5 ml de Carnation Instant Milk® al 5% en PBS y 0,1 ml de ortovanadato sódico 0,1 M en 88,4 ml de TBST.
- 16.
- anticuerpo antofosfotirosina policlonal de conejo, Sugen, Inc.
- 17.
- anticuerpo conjugado de peroxidasa de rábano rusticano de cabra anti-conejo, Biosource, Inc.
- 18.
- Solución de ABTS: para 1 l, mezclar 19,21 g de ácido cítrico, 35,49 g de Na_{2}HPO_{4} y 500 mg de ABTS con suficiente dH_{2}O para preparar 1 l.
- 19.
- ABTS/H_{2}O_{2}: mezclar 15 ml de solución de ABST con 2 ml de H_{2}O_{2} cinco minutos antes de usarla.
- 20.
- HCl 0,2 M
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir placas para ELISA con 2 mg de Poli(Glu-Tyr) en 100 ml de PBS, almacenar durante una noche a 4ºC.
- 2.
- Bloquear la placa con 150 ml de BSA al 5%/PBS durante 60 min.
- 3.
- Lavar la placa dos veces con PBS, una con tampón Hepes 50 mM pH 7,4.
- 4.
- Añadir 50 \mul de la quinasa diluida a todos los pocillos. (La quinasa purificada se diluye con Tampón de Dilución de Quinasa. La concentración final debe ser de 10 ng/pocillo.).
- 5.
- Añadir 25 \mul del compuesto de ensayo (en DMSO al 4%) o DMSO solo (4% en dH_{2}O) para controles a la placa.
\global\parskip0.990000\baselineskip
- 6.
- Incubar la mezcla quinasa/compuesto durante 15 minutos.
- 7.
- Añadir 25 \mul de MnCl_{2} 40 mM a los pocillos de control negativo.
- 8.
- Añadir 25 \mul de mezcla ATP/MnCl_{2} a todos los demás pocillos (excepto los controles negativos). Incubar durante 5 min.
- 9.
- Añadir 25 \mul de EDTA 500 mM para detener la reacción.
- 10.
- Lavar la placa 3x con TBST.
- 11.
- Añadir 100 \mul de (anticuerpo) policlonal de conejo anti-Ptyr diluido 1:10.000 en Tampón de Dilución de Anticuerpo a cada pocillo. Incubar, con agitación, a temperatura ambiente durante una hora.
- 12.
- Lavar la placa 3x con TBST.
- 13.
- Diluir el anticuerpo anti-conejo conjugado HRP de Biosource 1: 6,000 en Tampón de Dilución de Anticuerpo. Añadir 100 ml por pocillo e incubar a temperatura ambiente, con agitación, durante una hora.
- 14.
- Lavar la placa 1X con PBS.
- 15.
- Añadir 100 \mul de solución de ABTS/H_{2}O_{2} a cada pocillo.
- 16.
- Si fuera necesario, detener el desarrollo de la reacción con la adición de 100 \mul de HCl 0,2 M por pocillo.
- 17.
- Leer la placa en un lector de ELISA Dynatech MR7000 con el filtro de ensayo a 410 nM y el filtro de referencia a 630 nM.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir el nivel de
fosfotirosina en poli(ácido glutámico:tirosina) (4:1) para la
identificación de agonistas/antagonistas de transfosforilación de
gst-IGF-1 de un sustrato.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- placas Corning de 96 pocillos para Elisa.
- 2.
- Poli(Glu-tyr) (4:1), Sigma Nº Cat. P 0275.
- 3.
- PBS, Gibco Nº de Catálogo 450-1300EB.
- 4.
- HEPES 50 mM.
- 5.
- Tampón de Bloqueo TBB: para 1 l, mezclar 100 g de BSA, 12,1 g de TRIS (pH 7,5), 58,44 g de cloruro sódico y 10 ml de TWEEN-20 al 1%.
- 6.
- proteína de fusión GST purificada que contiene el dominio IGF-1 de quinasa (Sugen, Inc.).
- 7.
- Tampón TBST: para 1 l, mezclar 6,057 g de Tris, 8,766 g de cloruro sódico y 0,5 ml de TWEEN-20 con suficiente dH_{2}O para preparar 1 litro.
- 8.
- DMSO al 4% en Milli-Q H_{2}O.
- 9.
- ATP 10 mM en dH_{2}O.
- 10.
- Tampón de Dilución de Quinasa 2X: para 100 ml, mezclar 10 ml de HEPES 1 M (pH 7,5), 0,4 ml de BSA al 5% en dH_{2}O, 0,2 ml de ortovanadato sódico 0,1 M y 1 ml de cloruro sódico 5 M con suficiente dH_{2}O para preparar 100 ml.
- 11.
- Mezcla de Reacción ATP 4X: para 10 ml, mezclar 0,4 ml de MnCl_{2} 1 M y 0,008 ml de ATP 0,01 M y 9,56 ml de dH_{2}O.
- 12.
- Mezcla de Controles Negativos 12,4X: mezclar 0,4 ml de cloruro de manganeso 1 M en 9,60 ml de dH_{2}O.
- 13.
- placas NUNC de polipropileno de 96 pocillos de fondo en V.
\global\parskip1.000000\baselineskip
- 14.
- EDTA 500 mM en dH_{2}O.
- 15.
- Tampón de Dilución de Anticuerpo: para 100 ml, mezclar 10 ml de BSA al 5% en PBS, 0,5 ml de Carnation Instant Non-fat Milk® al 5% en PBS y 0,1 ml de ortovanadato sódico 0,1 M en 88,4 ml de TBST.
- 16.
- anticuerpo policlonal de conejo antifosfotirosina, Sugen, Inc.
- 17.
- anticuerpo de cabra anti-conejo conjugado con HRP, Biosource.
- 18.
- Solución de ABTS.
- 20.
- ABTS/H_{2}O_{2}: mezclar 15 ml de ABTS con 2 ml de H_{2}O_{2} 5 minutos antes de la utilización.
- 21.
- HCl 0,2 M en dH_{2}O.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Recubrir una placa para ELISA con 2,0 mg/pocillo de Poli(Glu, Tyr) 4:1 (Sigma P0275) en 100 ml de PBS. Almacenar placa durante una noche a 4ºC.
- 2.
- Lavar la placa una vez con PBS.
- 3.
- Añadir 100 \mul de Tampón de Bloqueo TBB a cada pocillo. Incubar la placa durante 1 hora con agitación a temperatura ambiente.
- 4.
- Lavar la placa una vez con PBS, después dos veces con tampón Hepes 50 mM pH 7,5.
- 5.
- Añadir 25 \mul de compuesto de ensayo en DMSO al 4% (obtenido diluyendo una solución de reserva de compuesto de ensayo 10 mM en DMSO al 100% con dH_{2}O) a la placa.
- 6.
- Añadir 10,0 ng de gst-IGF-1 quinasa en 50 ml de Tampón de Dilución de Quinasa) a todos los pocillos.
- 7.
- Iniciar la reacción de quinasa añadiendo 25 ml de Mezcla de Reacción ATP 4X a todos los pocillos de ensayo y pocillos de control positivo. Añadir 25 \mul de Mezcla de Controles Negativos 4X a todos los pocillos de control negativo. Incubar durante 10 minutos con agitación a temperatura ambiente.
- 8.
- Añadir 25 ml de EDTA 0,5 M (pH 8,0) a todos los pocillos.
- 9.
- Lavar la placa 4x con Tampón TBST.
- 10.
- Añadir antisuero policlonal de conejo anti-fosfotirosina a una dilución de 1:10.000 en 100 ml de Tampón de Dilución de Anticuerpo a todos los pocillos. Incubar, con agitación, a temperatura ambiente durante 1 hora.
- 11.
- Lavar la placa como en la Etapa 9.
- 12.
- Añadir 100 \mul de HRP anti-conejo Biosource a una dilución de 1:10.000 en tampón de dilución de anticuerpo a todos los pocillos. Incubar, con agitación, a temperatura ambiente durante 1 hora.
- 13.
- Lavar la placa como en la Etapa 9, seguir con un lavado con PBS para reducir las burbujas y el exceso de Tween-20.
- 14.
- Desarrollar añadiendo 100 \mul/pocillo de ABTS/H_{2}O_{2} a cada pocillo.
- 15.
- Después de aproximadamente 5 minutos, leer en un lector de ELISA con filtro de ensayo a 410 nm y filtro de referencia a 630 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Los siguientes ensayos usan células modificadas
genéticamente para expresar un receptor seleccionado y después
evaluar el efecto de un compuesto de interés sobre la actividad de
síntesis de ADN inducida por ligando determinando la incorporación
de BrdU en el ADN.
Los siguientes materiales, reactivos y
procedimiento son generales para cada uno de los siguientes ensayos
de incorporación de BrdU. Se observan varianzas en ensayos
específicos.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- El ligando apropiado.
- 2.
- Las células modificadas genéticamente apropiadas.
- 3.
- Reactivo de Marcado BrdU: 10 mM, en PBS (pH 7,4) (Boehringer Mannheim, Alemania).
- 4.
- FixDenat: solución de fijación (lista para usar) (Boehringer Mannheim, Alemania).
- 5.
- Anti-BrdU-POD: anticuerpo monoclonal de ratón conjugado con peroxidasa (Boehringer Mannheim, Alemania).
- 6.
- Solución de Sustrato TMB: tetrametilbenzidina (TMB, Boehringer Mannheim, Alemania).
- 7.
- Solución de Lavado con PBS: PBS 1X, pH 7,4.
- 8.
- Albúmina, Bovina (BSA), fracción V en polvo (Sigma Chemical Co., EE.UU.).
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento
General:
- 1.
- Las células se siembran a 8000 células/pocillo en CS al 10%, Gln 2 mM en DMEM, en una placa de 96 pocillos. Las células se incuban durante una noche a 37ºC en CO_{2} al 5%.
- 2.
- Después de 24 horas, las células se lavan con PBS, y después se privan de suero en medio sin suero (CS al 0% en DMEM con BSA al 0,1%) durante 24 horas.
- 3.
- En el día 3, el ligando apropiado y el compuesto de ensayo se añaden a las células simultáneamente. Los pocillos de control negativo reciben DMEM sin suero con BSA al 0,1% únicamente; las células de control positivo reciben el ligando pero no el compuesto de ensayo. Los compuestos de ensayo se preparan en DMEM sin suero con ligando en una placa de 96 pocillos, y se diluyen en serie durante 7 concentraciones de ensayo.
- 4.
- Después 18 horas de activación del ligando, se añade reactivo de marcado BrdU diluido (1:100 en DMEM, BSA al 0,1%) y las células se incuban con BrdU (concentración final = 10 mM) durante 1,5 horas.
- 5.
- Después de la incubación con reactivo de marcado, el se retira decantando y golpeando suavemente la placa invertida sobre una toallita de papel. Se añade solución FixDenat (50 \mul/pocillo) y las placas se incuban a temperatura ambiente durante 45 minutos en un agitador de placa.
- 6.
- La solución FixDenat se retira minuciosamente decantando y golpeando suavemente la placa invertida sobre una toallita de papel. Se añade leche (leche deshidratada al 5% en PBS, 200 ml/pocillo) como solución de bloqueo y la placa se incuba durante 30 minutos a temperatura ambiente en un agitador de placa.
- 7.
- La solución de bloqueo se retira por decantación y los pocillos se lavan una vez con PBS. Se añade solución anti-BrdU-POD (dilución 1:200 en PBS, BSA al 1%) (50 ml/pocillo) y la placa se incuba durante 90 minutos a temperatura ambiente en un agitador de placa.
- 8.
- El anticuerpo conjugado se retira minuciosamente decantando y enjuagando los pocillos 5 veces con PBS, y la placa se seca invirtiendo y golpeando suavemente sobre una toallita de papel.
- 9.
- Se añade solución de sustrato TMB (100 \mul/pocillo) y se incuba durante 20 minutos a temperatura ambiente en un agitador de placa hasta que el desarrollo de color es suficiente para la detección fotométrica.
- 10.
- La absorbancia de las muestras se mide a 410 nm (en modo "longitud de onda doble" con una lectura de filtro a 490 nm, como una longitud de onda de referencia) en un lector Dynatech de placa para ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- ratón EGF, 201 (Toyobo Co., Ltd., Japón).
- 2.
- 3T3/EGFRc7.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- ratón EGF, 201 (Toyobo Co., Ltd., Japón).
- 2.
- 3T3/EGFr/Her2/EGFr (EGFr con un dominio de quinasa Her-2).
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- ratón EGF, 201 (Toyobo Co., Ltd., Japón).
- 2.
- 3T3/EGFr/Her4/EGFr (EGFr con un dominio de quinasa Her-4).
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- PDGF B/B humano (Boehringer Mannheim, Alemania).
- 2.
- 3T3/EGFRc7.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- Human FGF2/bFGF (Gibco BRL, EE.UU.).
- 2.
- 3T3c7/EGFr
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- Humano, recombinante (G511, Promega Corp., EE.UU.)
- 2.
- 3T3/IGFlr.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- Insulina, cristalina, bovina, Zinc (13007, Gibco BRL, EE.UU.).
- 2.
- 3T3/H25.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y
Reactivos:
- 1.
- HGF humano recombinante (Nº Cat. 249-HG, R&D Systems, Inc. EE.UU.).
- 2.
- células BxPC-3 (ATCC CRL-1687).
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimiento:
- 1.
- Las células se siembran a 9000 células/pocillo en RPMI de FBS al 10% en una placa de 96 pocillos. Las células se incuban durante una noche a 37ºC en CO_{2} al 5%.
- 2.
- Después 24 horas, las células se lavan con PBS, y después se les priva de suero en 100 \mul de medio sin suero (RPMI con BSA al 0,1%) durante 24 horas.
- 3.
- En el día 3, 25 \mul que contienen ligando (preparado a 1 \mug/ml en RPMI con BSA al 0,1%; conc. final de HGF es 200 ng/ml) y compuestos de ensayo se añaden a las células. Los pocillos de control negativo reciben 25 ml de RPMI sin suero con BSA al 0,1% únicamente; las células de control positivo reciben el ligando (HGF) pero no el compuesto de ensayo. Los compuestos de ensayo se preparan a 5 veces su concentración final en RPMI sin suero con ligando en una placa de 96 pocillos, y se diluyen en serie dando 7 concentraciones de ensayo. Típicamente, la mayor concentración final del compuesto de ensayo es de 100 mM, y se usan diluciones 1:3 (es decir, intervalo de concentración final del compuesto de ensayo es 0,137-100 mM).
- 4.
- Después 18 horas de activación con ligando, se añaden 12,5 ml de reactivo de marcado BrdU diluido (1:100 en RPMI, BSA al 0,1%) a cada pocillo y las células se incuban con BrdU (concentración final es 10 mM) durante 1 hora.
- 5.
- Igual que el Procedimiento General.
- 6.
- Igual que el Procedimiento General.
- 7.
- La solución de bloqueo se retira decantando y los pocillos se lavan una vez con PBS. Se añade solución anti-BrdU-POD (dilución 1:100 en PBS, BSA al 1%) (100 ml/pocillo) y la placa se incuba durante 90 minutos a temperatura ambiente en un agitador de placa.
- 8.
- Igual que el Procedimiento General.
- 9.
- Igual que el Procedimiento General.
- 10.
- Igual que el Procedimiento General.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este ensayo se usa para medir la actividad de un
compuesto contra PDGF-R, FGF-R,
VEGF, aFGF o Flk-1/KDR, todos los cuales se expresan
de forma natural por células HUV-EC.
1. Lavar y tripsinizar células
HUV-EC-C (células endoteliales de la
vena umbilical humana, (American Type Culture Collection, Nº de
catálogo 1730 CRL). Lavar con solución salina de Dulbecco tamponada
con fosfato (D-PBS, obtenida de Gibco BRL, Nº de
catálogo 14190-029) 2 veces a aproximadamente 1
ml/10 cm^{2} de matraz de cultivo de tejido. Tripsinizar con
tripsina al 0,05%-EDTA en solución de disociación celular no
enzimática (Sigma Chemical Company, Nº de catálogo
C-1544). La tripsina al 0,05% se prepara diluyendo
tripsina al 0,25%/EDTA 1 mM (Gibco, Nº de catálogo
25200-049) en la solución de disociación celular.
Tripsinizar con aproximadamente 1 ml/25-30 cm^{2}
de matraz de cultivo de tejido durante aproximadamente 5 minutos a
37ºC. Una vez que las células se han separado del matraz, añadir un
volumen igual de medio de ensayo y transferir a un tubo de
centrífuga estéril de 50 ml (Fisher Scientific, Nº de catálogo
05-539-6).
2. lavar las células con aproximadamente 35 ml
de medio de ensayo en el tubo de centrífuga estéril de 50 ml
añadiendo el medio de ensayo, centrifugar durante 10 minutos a
aproximadamente 200 x g, aspirar el sobrenadante, y resuspender con
35 ml de D-PBS. Repetir el lavado dos veces más con
D-PBS, resuspender las células en aproximadamente 1
ml de medio de ensayo/15 cm^{2} de matraz de cultivo de tejido. El
medio de ensayo está compuesto por medio F12K (Gibco BRL, Nº de
catálogo 21127-014) y 0,5% suero bovina fenal
inactivado con calor. Contar las células con un contador Coulter
Counter® (Coulter Electronics, Inc.) y añadir medio de ensayo a las
células para obtener una concentración de 0,8-1,0 x
10^{5} células/ml.
3. Añadir las células a placas de 96 pocillos de
fondo plano a 100 ml/pocillo o 0,8-1,0 x 10^{4}
células/pocillo, incubar ~24h a 37ºC, CO_{2} al 5%.
1. Preparar valoraciones del compuesto de ensayo
dos veces en placas de 96 pocillos diferentes, generalmente de 50
mM disminuyendo a 0 mM. Usar el mismo medio de ensayo mencionado
para el día 0, etapa 2 anterior. Las valoraciones se preparan
añadiendo 90 ml/pocillo de compuesto de ensayo a 200 mM (4X la
concentración final del pocillo) al pocillo superior de una columna
de placa particular. Como el compuesto de ensayo de reserva es
normalmente 20 mM en DMSO, la concentración de fármaco 200 \muM
contiene DMSO al 2%.
Se usa un diluyente formado por DMSO al 2% en
medio de ensayo (F12K + suero bovino fetal al 0,5%) como diluyente
para las valoraciones del compuesto de ensayo para diluir el
compuesto de ensayo pero mantener constante la concentración de
DMSO. Añadir este diluyente los pocillos restantes en la columna a
60 ml/pocillo. Tomar 60 \mul de los 120 \mul de dilución del
compuesto de ensayo 200 \muM en el pocillo superior de la columna
y mezclar con los 60 \mul en el segundo pocillo de la columna.
Tomar 60 \mul de este pocillo y mezclar con los 60 \mul en el
tercer pocillo de la columna, y así sucesivamente hasta que se
completan dos valoraciones. Cuando se mezcla el pocillo siguiente
con el anterior, tomar 60 \mul de los 120 \mul en este pocillo y
desecharlos. Dejar el último pocillo con 60 \mul de diluyente
DMSO/medio como un control que contiene compuesto que no es de
ensayo. Preparar 9 columnas de compuesto de ensayo valorado,
suficiente triplicar los pocillos cada uno para: (1) VEGF (obtenido
de Pepro Tech Inc., Nº de catálogo 100-200, (2)
factor de crecimiento celular endotelial (ECGF) (conocido también
como factor de crecimiento de fibroblastos ácidos, o aFGF) (obtenido
de Boehringer Mannheim Bio-chemica, Nº de catálogo
1439 600), o, (3) PDGF B/B humano (1276-956,
Boehringer Mannheim, Alemania) y control del medio de ensayo. ECGF
viene como una preparación con heparina sódica.
2. Transferir diluciones de 50 \mul/pocillo
del compuesto de ensayo a las placas de ensayo de 96 pocillos que
contienen 0,8-1,0x10 ^{4} células/100 ml/pocillo
de las células HUV-EC-C del día 0 e
incubar 2 h a 37ºC, CO_{2} al 5%.
3. Por triplicado, añadir 50 \mul/pocillo de
80 \mug/ml de VEGF, 20 ng/ml de ECGF, o control del media a cada
condición del compuesto de ensayo. Como con los compuestos de
ensayo, las concentraciones del factor de crecimiento son 4X la
concentración final deseada. Usar el medio de ensayo del día 0,
etapa 2, para preparar las concentraciones de factores de
crecimiento. Incubar aproximadamente 24 horas a 37ºC, CO_{2} al
5%. Cada pocillo tendrá 50 \mul de dilución de compuesto de
ensayo, 50 \mul de factor de crecimiento o medio, y 100 \mul de
células, que se calcula como 200 \mul/pocillo total. De esta
manera las concentraciones 4X de compuesto de ensayo y factores de
crecimiento se hacen 1X una vez que se ha añadido todo a los
pocillos.
1. Añadir ^{3}H-timidina
(Amersham, Nº de catálogo TRK-686) a 1
\muCi/pocillo (10 \mul/pocillo de solución 100 \muCi/ml
formada por medio RPMI + suero bovino fetal al 10% inactivado por
calor) e incubar 24 h a 37ºC, CO_{2} al 5%. RPMI se obtiene de
Gibco BRL, Nº de catálogo 11875-051.
1. Congelar las placas durante una noche a
-20ºC.
Descongelar las placas y recuperar con un
colector de placa de 96 pocillos (Tomtec Harvester 96®) sobre mallas
de filtro (Wallac, Nº de catálogo 1205-401), leer
los recuentos en un contador de centelleo líquido Wallac
Betaplate^{TM}.
La Tabla 3 muestra los resultados del ensayo
biológicos de algunos compuestos ejemplares de esta invención. Los
resultados se muestran en términos de CI_{50}, la concentración
micromolar (mM) del compuesto a ensayar que provoca un cambio del
50% en la actividad de la PTK diana comparado con la actividad de la
PTK en un control al que no se ha añadido compuesto de ensayo.
Específicamente, los resultados mostrados indican la concentración
de un compuesto de ensayo necesaria para provocar una reducción del
50% de la actividad de la PTK diana. Los bioensayos que se han
usado o que pueden usarse para evaluar los compuestos se describen
en detalle a continuación.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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MODELOS ANIMALES DE
XENOINJERTO
La capacidad de los tumores humanos para crecer
en forma de xenoinjertos en ratones atímicos (por ejemplo, Balb/c,
nu/nu) proporciona un modelo in vivo útil para estudiar la
respuesta biológica a terapias para tumores humanos. Desde el
primer xenotransplante con éxito de tumores humanos en ratones
atímicos, (Rygaard y Poilsen, 1969, Acta Pathol. Microbial. Scand.
77:758-760), se han transplantado muchas líneas
celulares humanas de tumores diferentes (por ejemplo, melanomas
mamario, de pulmón, genitourinario,
gastro-intestinal, de cabeza y cuello,
glioblastoma, óseo, y maligno) y se han desarrollado con éxito en
ratones desnudos. Los siguientes ensayos pueden usarse para
determinar el nivel de actividad, especificidad y efecto de los
diferentes compuestos de la presente invención. Tres tipos general
de ensayos son útiles para evaluar compuestos: celular/catalítico,
celular/biológico e in vivo. El objeto de los ensayos
celulares/catalíticos es para determinar el efecto de un compuesto
sobre la capacidad de una TK para fosforilar tirosinas en un
sustrato conocido en una célula. El objeto de los ensayos
celulares/biológicos es determinar el efecto de un compuesto sobre
la respuesta biológica estimulada por una TK en una célula. El
objeto de los ensayos in vivo es determinar el efecto de un
compuesto en un modelo animal de un trastorno particular tal
como
cáncer.
cáncer.
Las líneas celulares adecuadas para experimentos
de xenoinjerto subcutáneo incluyen células C6 (glioma, ATCC Nº CCL
107), células A375 (melanoma, ATCC Nº CRL 1619), células A431
(carcinoma epidermoide, ATCC Nº CRL 1555), células Calu 6 (pulmón,
ATCC Nº HTB 56), células PC3 (próstata, ATCC Nº CRL 1435), células
SKOV3TP5 y fibroblastos NIH 3T3 modificados genéticamente para
sobreexpresar EGFR, PDGER, IGF-1R o cualquier otra
quinasa de ensayo. Puede usarse el siguiente protocolo para
realizar experimentos de xenoinjerto:
Ratones atímicos hembra (BALB/c, nu/nu) se
obtienen de Simonsen Laboratories (Gilroy, CA). Todos los animales
se mantienen en condiciones de alojamiento limpio en jaulas
Micro-isolator con camas Alpha-dri.
Reciben pienso para roedores estéril y agua a discreción.
Las líneas celulares se desarrollan en el medio
apropiado (por ejemplo, MEM, DMEM, F10 de Ham, o F12 de Ham más
suero bovino fetal (FBS) al 5%-10% y glutamina 2 mM (GLN)). Todos
los medios de cultivo celular, glutamina, y suero bovino fetal se
adquirieron en Gibco Life Technologies (Grand Island, NY) a menos
que se indique otra cosa. Todas las células se desarrollan en una
atmósfera húmeda de 90-95% de aire y
5-10% de CO_{2} a 37ºC. Todas las líneas
celulares se subcultivan de forma rutinaria dos veces a la semana y
son negativas para micoplasma según se determina por el
procedimiento de Mycotect (Gibco).
Las células se recuperan a o cerca de la
confluencia con tripsina al 0,05%-EDTA y sedimentan a 450 x g
durante 10 min. El sedimento se vuelve a resuspender en PBS estéril
o medio (sin FBS) a una concentración particular y las células se
implantan en el costado trasero de los ratones (8-10
ratones por grupo, 2-10 x 10^{6} células/animal).
El crecimiento del tumor se mide durante 3 a 6 semanas usando
calibres Venier. Los volúmenes de tumor se calculan como un
producto de longitud x anchura x altura a menos que se indique otra
cosa. Los valores P se calculan usando el ensayo de t de Student.
Los compuestos de ensayo en 50-100 ml de excipiente
(DMSO, o VPD:D5W) pueden suministrarse por inyección IP a diferentes
concentraciones generalmente empezando en el día uno después del
implante.
\newpage
MODELO DE INVASIÓN
TUMORAL
El siguiente modelo de invasión tumoral se ha
desarrollado y puede usarse para la evaluación del valor y eficacia
terapéutica de los compuestos identificados para inhibir
selectivamente al receptor de KDR/FLK-1.
Procedimiento
Se usan ratones desnudos de 8 semanas de edad
(hembra) (Simonsen Inc.) como animales experimentales. El implante
de células tumorales puede realizarse en un campana de flujo
laminar. Para la anestesia, se administra un cóctel de
xilazina/quetamina (100 mg/kg de quetamina y 5 mg/kg de xilazina)
por vía intraperitoneal. Se realiza una incisión media para exponer
la cavidad abdominal (aproximadamente de 1,5 cm de longitud) para
inyectar 10^{7} células tumorales en un volumen de 100 \mul de
medio. Las células se inyectan al lóbulo duodenal del páncreas o
bajo la serosa del colon. El peritoneo y los músculos se cierran con
sutura de seda 6-0 continua y la piel se cierra
usando grapas para heridas. Los animales se observan
diariamente.
Análisis
Después de 2-6 semanas,
dependiendo de observaciones en bruto de los animales, los ratones
se sacrifican, y el tumor local se metastatiza a diversos órganos
(pulmón, hígado, cerebro, estómago, bazo, corazón, músculo) se
extirpan y analizan (se mide el tamaño del tumor, grado de invasión,
inmunoquímica, determinación de hibridación in situ,
etc.).
Este ensayo se usa para detectar el nivel de
fosforilación con tirosina c-kit.
Se privó de suero a células MO7E (leucemia
mieloide aguda humana) durante una noche en suero al 0,1%. Las
células se pre-trataron con el compuesto
(simultáneamente con la privación de suero), antes de la
estimulación con ligando. Las células se estimularon con 250 ng/ml
de rh-SCF durante 15 minutos. Después de la
estimulación, las células se lisaron e inmunoprecipitaron con un
anticuerpo anti-c-kit. Se
determinaron los niveles de fosfotirosina y proteína por
transferencia Western.
Se privó de suero a células MO7E y se
pre-trataron con compuesto como se ha descrito para
los experimentos de fosforilación. Las células se colocaron en
placas a 4X10^{5} células/pocillo en una placa de 96 pocillos, en
100 \mul de RPMI + suero al 10%. Se añadió rh-SCF
(100 ng/ml) y la placa se incubó durante 48 horas. Después de 48
horas, se añadieron 10 \mul de 5 mg/ml de MTT [bromuro de 3-(4,
5-dimetiltiazol-2-il)-2,5-difenil
tetrazolio) y se dejó incubar durante 4 horas. Se añadió
isopropanol ácido (100 \mul de HCl 0,04 N en isopropanol) y la
densidad óptica se midió a una longitud de onda de 550 nm.
Se incubaron células MO7E +/- SCF y +/-
compuesto en FBS al 10% con
rh-GM-CSF (10 ng/ml) y
rh-IL-3 (10 ng/ml). Las muestras se
ensayaron a las 24 y 48 horas. Para medir la
caspasa-3 activada, las muestras se lavaron con PBS
y se permeabilizaron con etanol al 70% enfriado con hielo. Las
células se tiñeron después con (anticuerpo) policlonal de conejo
anti-caspasa-3 activa conjugado con
PE y se analizaron por FACS. Para medir el PARP escindido, las
muestras se lisaron y se analizaron por transferencia western con un
anticuerpo anti-PARP.
Los ensayos adicionales que pueden usarse para
evaluar los compuestos de esta invención incluyen, sin limitación,
un ensayo bio-flk-1, un ensayo de
receptor de EGF-receptor quimérico de HER2 en
células enteras, un ensayo bio-src, un ensayo
bio-lck y un ensayo que mide la función de
fosforilación de raf. Los protocolos para cada uno de estos ensayos
puede encontrarse en la Solicitud de Estados Unidos con Nº de Serie
09/099.842, que se incorpora por referencia, incluyendo cualquiera
de sus dibujos, en este documento.
Los compuestos terapéuticos deben ser más
potentes inhibiendo la actividad tirosina quinasa del receptor que
ejerciendo un efecto citotóxico. Una medida de la eficacia y
toxicidad celular de un compuesto puede obtenerse determinando el
índice terapéutico, es decir, CI_{50}/DL_{50}. CI_{50}, la
dosis requerida para conseguir una inhibición del 50%, puede
medirse usando técnicas convencionales tales como las descritas en
este documento. DL_{50}, la dosificación que da como resultado
una toxicidad del 50%, puede medirse también por técnicas
convencionales (Mossman, 1983, J. Immunol. Procedimientos,
65:55-63), midiendo la cantidad de LDH liberado
(Korzeniewski y Callewaert, 1983, J. Immunol. Procedures, 64:313,
Decker y Lohmann-Matthes, 1988, J. Immunol.
Procedures, 115:61), o midiendo la dosis letal en modelos animales.
Se prefieren los compuestos con un gran índice terapéutico. El
índice terapéutico debe ser mayor de 2, preferiblemente al menos 10,
más preferiblemente al menos 50.
Para confirmar la potencia de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) detectada en ensayos bioquímicos (véase a
continuación), la capacidad de dicho compuesto para inhibir la
fosforilación de RTK dependiente de ligando se evaluó en ensayos
basados en células usando células de ratón NIH-3T3
modificadas genéticamente para sobreexpresar Flk-1 o
PDGFR\beta humano. La
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibió la fosforilación de tirosina
Flk-1 dependiente de VEGF con un valor de CI_{50}
de aproximadamente 0,03 \muM. Este valor es similar al valor de
K_{i} de 0,009 \muM determinado para la inhibición de
Flk-1 por
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) determinada en ensayos bioquímicos. Esto indica que
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) penetra fácilmente en las células. Consistente con
los datos bioquímicos (véase a continuación) indicando que
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) tenía una actividad comparable contra
Flk-1 y PDGFR\beta, se encontró también que
inhibía la fosforilación del receptor dependiente de PDGF en
células con un valor de CI_{50} de aproximadamente 0,03 \muM.
La capacidad de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) para inhibir c-kit, una RTK muy
relacionada que se une con el factor de célula madre (SCF), se
determinó usando células MO7E que expresan este receptor. En estas
células,
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibió la fosforilación de c-kit
dependiente de SCF con un valor de CI_{50} de
0,01-0,1 \muM. Este compuesto inhibió también la
fosforilación de c-kit estimulada por SCF en blastos
de leucemia mieloide aguda (AML) asilados de sangre periférica de
pacientes.
Además de ensayar la capacidad de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) para inhibir la fosforilación del receptor
dependiente de ligando en las células, se examinó también su efecto
in vitro sobre la respuesta proliferativa dependiente de
ligando de las células (véase la Tabla 4). En estos estudios, se
indujo a las células inactivadas durante una noche por privación de
suero a someterse a síntesis de ADN tras la adición del ligando
mitógeno apropiado. Como se muestra en la Tabla 4,
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibió la proliferación de células
NIH-3T3 inducida por PDGF que sobreexpresan
PDGFR\beta o PDGFR\alpha con valores de CI_{50} de 0,031 y
0,069 \muM, respectivamente, y la proliferación de células MO7E
inducida por SCF con un valor de CI_{50} de 0,007 \muM.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Como se muestra en la Tabla 4, hay un acuerdo
general entre las actividades bioquímicas y celulares de
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) que respaldan la conclusión de que este compuesto
cruza las membranas celulares. Además, puede concluirse que las
respuestas celulares son un resultado de la actividad del compuesto
35 contra la diana indicada. En contraste, cuando se ensaya en
presencia de medio de crecimiento completo, in vitro, se
requirieron concentraciones sustancialmente superiores de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) (>10 \muM) para inhibir el crecimiento de
diversas células tumorales humanas (véase la Tabla 5). Esto indica
que el compuesto no inhibía directamente el crecimiento de estas
células a las concentraciones requeridas para inhibir la
fosforilación del receptor dependiente de ligando y la proliferación
celular.
Brevemente, los resultados mostrados en la Tabla
5 se obtuvieron incubando las células durante 48 h en medio de
crecimiento completo en presencia de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
diluida en serie. Al final del periodo de crecimiento, se determinó
la cantidad relativa de células. Los valores de CI_{50} se
calcularon como la concentración de compuesto que inhibía el
crecimiento de las células en un 50% respecto a las células no
tratadas. Los valores de DL_{50} se calcularon como la
concentración de compuesto que provocaba una reducción del 50% en
la cantidad de células respecto a aquellas que había al comienzo del
experimento.
Un ensayo basado en células más pertinente en el
que para evaluar el potencial anti-angiogénico de
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) es el ensayo de mitogénesis in vitro usando
células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC) como un
sistema modelo para la proliferación celular endotelial crítica para
el procedimiento angiogénico. En este ensayo, una respuesta
mitógena, medida como un aumento en la síntesis de ADN, se induce en
HUVEC privadas de suero tras la adición de VEGF o FGF. En estas
células,
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibió la respuesta mitógena inducida por VEGF y
FGF de una manera dependiente de la dosis con valore de CI_{50}
de 0,004 mM y 0,7 mM, respectivamente, cuando el compuesto estaba
presente durante todas las 48 h del ensayo.
Brevemente, los resultados mencionados
anteriormente se obtuvieron usando HUVEC privadas de suero que se
incubaron con concentraciones mitógenas de VEGF (100 ng/ml) o FGF
(30 ng/ml) en presencia de diluciones en serie de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) durante 24 h. La respuesta mitógena durante las
siguientes 24 h en presencia de ligando e inhibidor se cuantificó
midiendo la síntesis de ADN basada en la incorporación de
bromodesoxiuridina en el ADN celular.
En experimentos diferentes, el compuesto 35
inhibió la fosforilación de ERK 1/2 (quinasa p42/44MAP) dependiente
de VEGF, una diana cadena abajo temprana de
Flk-1/KDR, de una manera dependiente de la dosis. Se
demostró también que la actividad inhibidora del compuesto 35 era
de larga duración en este sistema; inhibiendo la fosforilación de
ERK 1/2 dependiente de VEGF durante tanto como 48 horas después de
la retirada de
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) del medio después de una corta exposición (2 h) a
concentraciones micromolares del compuesto.
Se ha reconocido que VEGF es un factor de
supervivencia importante para las células endoteliales. Como
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibe la respuesta mitógena dependiente de VEGF de
las HUVEC, se investigó el efecto del compuesto sobre la
supervivencia de HUVEC. En estos experimentos, la escisión del
sustrato caspasa 3 de
poli-ADP-ribosil polimerasa (PARP)
se usó como lectura para apoptosis. Las HUVEC cultivadas en
condiciones sin suero durante 24 horas presentaron niveles
sustanciales de escisión de PARP, detectado por la acumulación del
fragmento de escisión de PARP de 23 kDa. Esto se evitó en gran
medida mediante la adición de VEGF al medio celular, lo que indicaba
que VEGF actúa como factor de supervivencia en este ensayo. Se ha
demostrado que
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibe la señalización de KDR. Por consiguiente,
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) inhibía la supervivencia de HUVEC mediada por VEGF
de una manera dependiente de la dosis. De esta manera, estos datos
indican que el compuesto 35 inducía la apoptosis en células
endoteliales en cultivo en presencia de VEGF.
\vskip1.000000\baselineskip
Se estudió la eficacia in vivo de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,9-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) en modelos de xenoinjerto subcutáneos (SC) usando
células tumorales humanas implantadas en la región del costado
trasero de ratones atímicos. Después del implante, se dejó que los
tumores se estabilizaran a un tamaño de 100-550
mm^{3} antes de empezar el tratamiento oral con el compuesto.
La administración oral diariamente del compuesto
35 provocó una inhibición dependiente de la dosis del crecimiento
de tumores A431 cuando se inició el tratamiento después de que los
tumores hubieran crecido hasta un tamaño 400 mm^{3}. La
inhibición del crecimiento de tumores estadísticamente significativa
(P <0,05) se observó a una dosis de 40 mg/kg/día (inhibición del
74%) y de 80 mg/kg/día (inhibición del 84%) (véase la Tabla 6). En
experimentos preliminares, una dosis más alta (160 mg/kg/día) del
compuesto no era más eficaz contra los tumores A431 establecidos
que la dosis de 80 mg/kg/día. Además, los ratones tratados a la
dosis de 160 mg/kg/día del compuesto perdieron peso corporal, lo
que indicaba que dosis más altas no se toleraban igual de bien. Se
obtuvieron resultados similares en un experimento en el que solo se
permitía a los tumores A431 alcanzar un tamaño de 100 mm^{3}
(véase la Tabla 5). En este segundo experimento, la regresión
completa de los tumores ocurrió en seis de cada ocho animales
tratados a la dosis de 80 mg/kg/día durante 21 días. En estos seis
animales, los tumores no se desarrollaron durante un periodo de
observación de 110 días después del final del tratamiento. En los
dos animales en los que los tumores se desarrollaron a un tamaño
mayor (2000-3000 mm^{3}), los tumores
retrocedieron en respuesta a una segunda vuelta de tratamiento con
el compuesto 35. Es importante destacar que en todos los
experimentos de eficacia,
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,9-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) a 80 mg/kg/día se toleró bien, incluso cuando se
dosificó continuamente durante más de 100 días.
\vskip1.000000\baselineskip
Brevemente, los resultados mostrados en la Tabla
6 se obtuvieron usando células A431 (0,5 x 106 células/ratón) que
se implantaron SC en la región del costado trasero de ratones
atímicos. La administración oral diariamente de
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) en un vehículo basado en Cremophor o vehículo de
control empezó cuando los tumores alcanzaron el volumen medio
indicado. Los tumores ser midieron usando calibres Vernier y el
volumen del tumor se calculó como el producto de longitud x anchura
x altura. Los valores P se calcularon comparando el tamaño de los
tumores para animales que se trataron con el compuesto 35 (n=8) con
el de aquellos animales que se trataron con un vehículo (n=16) en el
último día del experimento, usando el ensayo de t de Student de dos
colas.
La eficacia del compuesto 35 contra tumores
humanos establecidos de diferentes orígenes se determinó usando
xenoinjertos de Colo205 (carcinoma de colon), SF763T (glioma), y
NCI-H460 (carcinoma macrocítico de pulmón) (véase
la Tabla 7). Estos experimentos se realizaron usando
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico
(Compuesto 35) administrada por vía oral a 80 mg/kg/día; una dosis
que era eficaz y se toleraba bien.
En los experimentos mencionados anteriormente,
el compuesto 35 se administraba una vez al día a 80 mg/kg en un
vehículo basado en Cremophor una vez que los tumores alcanzaron el
tamaño indicado. El porcentaje de inhibición comparado con el del
grupo de control tratado con vehículo se calculó cuando terminaron
los experimentos. Los valores P se calcularon comparando los
tamaños del tumor de los animales que se habían tratado con el
compuesto con los tamaños del tumor de aquellos animales que se
habían tratado con el vehículo, usando el ensayo de t de Student de
dos colas.
Aunque
(2-dietilamino-etil)amida del
ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pi-
rrol-3-carboxílico (Compuesto 35) inhibía el crecimiento de todos los tipos de tumor mostrados en la Tabla 7, había una diferencia en la respuesta de los diferentes modelos de xenoinjerto. Específicamente, el crecimiento de tumores NCI-H460 y SF763T se detuvo o se ralentizó en gran medida, mientras que los tumores Colo205, tal como los tumores A431, retrocedieron cuando se trataron con (2-dietilamino-etil)amida del ácido 5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
rrol-3-carboxílico (Compuesto 35) inhibía el crecimiento de todos los tipos de tumor mostrados en la Tabla 7, había una diferencia en la respuesta de los diferentes modelos de xenoinjerto. Específicamente, el crecimiento de tumores NCI-H460 y SF763T se detuvo o se ralentizó en gran medida, mientras que los tumores Colo205, tal como los tumores A431, retrocedieron cuando se trataron con (2-dietilamino-etil)amida del ácido 5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
Para determinar la base molecular para la
diferencia en la respuesta entre modelos de xenoinjerto, se
estudiaron los tumores SF763T. Por lo tanto, los tumores SF763T,
que eran menos sensibles al tratamiento con
(2-dietilamino-etil)amida
del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico,
se han evaluado a nivel molecular usando técnicas
inmunohistológicas para determinar el efecto del tratamiento con el
compuesto. Estos estudios se realizaron inicialmente en este tipo
de tumor porque los tumores SF763T están muy vascularizados con
micro-vasos que expresan fuertemente el marcador
celular endotelial CD31 y, por lo tanto, son muy adecuados para
estudios de densidad de microvasos tumorales (MVD). La evaluación
inmunohistológica de tumores SF763T indicaba que los tumores de los
animales tratados habían reducido su MVD respecto a los controles
tratados con vehículo, lo que es consistente con un mecanismo de
acción anti-angiogénico para el compuesto 35; MVD
era 24,2 \pm 4,1 en animales tratados con el compuesto 35,
comparado con 39,3 \pm 5,7 para aquellos que se trataron sólo con
el vehículo. Como se anticipa de la detención del crecimiento de
tumores asociada, una inhibición pronunciada de la proliferación
celular tumoral era evidente en los tumores que se trataron con el
compuesto 35. Estos tumores tenían la mitad del índice mitótico de
aquellos en los tumores tratados con vehículo (datos no mostrados).
El efecto del compuesto 35 sobre la MVD y la proliferación celular
tumoral indica que el compuesto tiene profundos efectos
anti-angiogénicos y anti-tumorales,
incluso en condiciones en las que los tumores no retroceden.
La capacidad del compuesto 35 para inhibir la
fosforilación de PDGFR y posterior señalización in vivo se
evaluó también en los tumores SF763T, que expresan altos niveles de
PDGFR\beta. El tratamiento de tumores SF763T con el compuesto 35
inhibió fuertemente la fosforilación con tirosina de PDGFR\beta en
tumores SF763T establecidos. El compuesto 35 redujo también los
niveles de fosfolipasa C gamma (PLC-\gamma)
fosforilada (activada), un indicador inmediato cadena debajo de la
activación de PDGFR. Estos datos demuestran que la administración
oral del compuesto 35 provoca un efecto directo sobre la actividad
diana de (PDGFR) en tumores in vivo.
Basado en la demostración de que la capacidad
del compuesto 35 para inhibir la señalización en HUVEC dependiente
de VEGF in vitro era de larga duración (véase lo anterior),
la eficacia del compuesto se evaluó cuando el compuesto se
administró con poca frecuencia en el modelo de tumor Colo205. Como
se muestra en la Tabla 8, 80 mg/kg (inhibición del 91%) y 40 mg/kg
(inhibición del 84%) fueron eficaces cuando se administraron
diariamente, pero no cuando se administraron dos veces a la semana.
En contraste, una dosis mayor del compuesto 35 (160 mg/kg) inhibía
(inhibición del 52%) el crecimiento de tumores Colo205 establecidos
cuando se administraba dos veces a la semana, sugiriendo que este
compuesto puede demostrar eficacia cuando se administra de forma
poco frecuente a una dosis mayor. Debe observarse que los regímenes
de dosificación pueden determinarlos los especialistas habituales
en la técnica sin excesiva experimentación.
Brevemente, los resultados mostrados en la Tabla
8 se obtuvieron usando células Colo205 (0,5 x 10^{6}
células/ratón) que se habían implantado SC en la región del costado
trasero de ratones atímicos. La administración oral del compuesto
35 de acuerdo con el programa indicado empezó cuando los tumores
alcanzaron 400 mm^{3}. Los tumores se midieron usando calibres
Vernier y el volumen del tumor se calculó como el producto de
longitud x anchura x altura. Los valores P se calcularon comparando
el tamaño de los tumores para animales que se trataron con el
compuesto 35 con aquellos de animales que se trataron con un
vehículo en el último día del experimento, usando el ensayo de t de
Student de dos colas.
Además de soportar el crecimiento sostenido de
tumores sólidos primarios, la angiogénesis también es un componente
esencial que soporta el desarrollo de la enfermedad diseminada
debido a metástasis a partir del tumor primario. El efecto del
compuesto 35 sobre el desarrollo de la enfermedad diseminada se
examinó en el modelo de colonización de melanoma de pulmón de ratón
B16-F1. En este modelo, las células
B16-F1 inoculadas por vía intravenosa a través de
la vena de la cola de ratones atímicos colonizaron los pulmones y
formaron tumores. Como se muestra en la Tabla 8, la administración
oral del compuesto 35 a 80 mg/kg/día redujo eficazmente la carga de
células B16-F1 en el pulmón como se evalúa midiendo
el peso total del pulmón. Estos datos sugieren que el compuesto 35
puede inhibir la enfermedad diseminada in vivo.
Brevemente, los resultados mostrados en la Tabla
9 se obtuvieron usando ratones atímicos que se habían inoculado con
células tumorales B16-F1 (5x10^{5} células/ratón)
a través de la vena de la cola. Los ratones se trataron diariamente
con el compuesto 35 administrado por vía oral a 80 mg/kg/día (n=10)
o vehículo (n=18) durante 24 días después de la inoculación de las
células tumorales. Al final del periodo de tratamiento, los ratones
se sacrificaron y sus pulmones se retiraron y pesaron. El porcentaje
de inhibición se calculó comparando el peso del pulmón de aquellos
animales que se habían tratado con el compuesto 35, con el peso del
pulmón de los animales que sólo se habían tratado con vehículo. Los
valores P se determinaron usando el ensayo de t de Student de dos
colas.
Los ejemplos de la potencia in vitro de
los compuestos de esta invención se muestra en la Tabla 2.
En estudios para investigar las características
farmacocinéticas de los compuestos de las realizaciones preferidas
de la presente invención se ha demostrado que la administración oral
de una única dosis de dichos compuestos dio como resultado una alta
biodisponibilidad oral en ratones. La buena biodisponibilidad oral y
farmacocinética lineal indican que los compuestos de las
realizaciones preferidas de las presente invención tienen
características farmacocinéticas favorables.
Además, los compuestos de las realizaciones
preferidas de la presente invención son potentes inhibidor de la
actividad tirosina quinasa de la división del dominio quinasa de las
RTK Flk-1/KDR y PDGFR, que están implicadas en
angiogénesis, y c-kit de RTK, un receptor para el
factor de célula madre (SCF), que está implicado en ciertos
cánceres hematológicos. A mayores concentraciones, los compuestos de
las realizaciones preferidas de la presente invención inhiben
también la actividad tirosina quinasa de FGFR-1, una
tercera RTK implicada en la angiogénesis. Consistente con su
actividad bioquímica, los compuestos de las realizaciones preferidas
de la presente invención inhiben la fosforilación con tirosina
dependiente de ligando de las RTK diana y la respuesta mitógena
in vitro de células endoteliales de la vena umbilical humana
(HUVEC) estimulada con VEGF o FGF, de células
NIH-3T3 que expresan PDGFR estimuladas con PDGF, y
de las células MO7E de leucemia mieloide aguda estimuladas con SCF.
En contraste, los compuestos de las realizaciones preferidas de la
presente invención no inhiben directamente la proliferación de las
células tumorales en medio de crecimiento completo excepto a
concentraciones de 2 a 3 órdenes de magnitud mayores que las
requeridas para inhibir las respuestas mitógenas dependientes de
ligando. En estudios de xenoinjerto en ratón, los compuestos de las
realizaciones preferidas de la presente invención inhibían el
crecimiento de tumores humanos establecidos de diversos orígenes de
una manera dependiente de la dosis y a concentraciones que se
toleraban bien incluso después de una dosificación prolongada
(>100 días). A 80 mg/kg/día, los compuestos de las realizaciones
preferidas de la presente invención inducían la regresión de
grandes tumores A431 y Colo205 establecidos, y provocaban el la
inhibición sustancial del crecimiento o estasis de los tumores
SF763T y NCI-H460. En ratones que llevan los tumores
SF763T, los compuestos de las realizaciones preferidas de la
presente invención provocaban reducciones en la densidad de los
microvasos, fosforilación de PDGFR en los tumores, e índice
mitótico en las células tumorales. A esta dosis, los compuestos de
las realizaciones preferidas de la presente invención inhibían
también la colonización del pulmón por células tumorales
B16-F1 en un modelo de metástasis tumoral. Los
estudios de régimen demostraron que los compuestos de las
realizaciones preferidas de la presente invención son más eficaces
cuando se administran diariamente. La evidencia directa de la
actividad anti-angiogénica de los compuestos de las
realizaciones preferidas de la presente invención se detectó en
tumores SF763T en los que la densidad de los microvasos se redujo.
La evidencia directa de que los compuestos de las realizaciones
preferidas de la presente invención inhibían la fosforilación de
PDGFR y señalización in vivo se obtuvo también en tumores
SF763T.
Tomados conjuntamente, estos datos respaldan la
idea de que los compuesto de las realizaciones preferidas de la
presente invención administrados por vía oral son agentes
anti-angiogénicos para el tratamiento de cánceres,
incluyendo tumores sólidos y malignidades hematológicas en las que
la angiogénesis y/o señalización mediante c-kit son
importantes en la patología de la enfermedad.
Se entenderá que los compuestos, procedimientos
y composiciones farmacéuticas de la presente invención son eficaces
para modular la actividad de PK y por lo tanto se espera que sean
eficaces como agentes terapéuticos contra trastornos relacionados
con RTK, CTK y STK.
Todas las patentes y publicaciones mencionadas
en la memoria descriptiva son indicativas de los niveles de los
especialistas en la técnica a la que pertenece la invención. Todas
las patentes y publicaciones se incorporan a este documento por
referencia en la misma extensión como si cada publicación individual
se indicara específica e individualmente que se incorpora por
referencia.
La invención descrita de forma ilustrativa en
este documento puede realizarse de forma práctica adecuadamente en
ausencia de cualquiera del elemento o elementos, limitación o
limitaciones que no se describen específicamente en este documento.
De esta manera, por ejemplo, en cada caso en este documento
cualquiera de las expresiones "que comprende", "compuesto
esencialmente por" y "constituido por" pueden sustituirse
por cualquiera de las otras dos expresiones. La expresión y
expresiones que se han empleado se usan como términos de descripción
y no de limitación, y no hay intención de que el uso de dichos
términos y expresiones excluya ningún equivalente de las
características mostradas y descritas o partes de las mismas, aunque
se reconoce que son posibles diversas modificaciones dentro del
alcance de la invención reivindicada. De esta manera, debe
entenderse que aunque la presente invención se ha descrito
específicamente mediante realizaciones preferidas y características
opcionales, los especialistas en la técnica pueden recurrir a la
modificación y variación de los conceptos descritos en este
documento, y que dichas modificaciones y variaciones se consideran
dentro del alcance de esta invención como se define mediante las
reivindicaciones adjuntas.
Además, cuando se describen características o
aspectos de la invención en términos de grupos de Markush, los
especialistas en la técnica entenderán que la invención se describe
también, por lo tanto, en términos de cualquier miembro individual
o subgrupo de miembros del grupo de Markush. Por ejemplo, si X se
describe como seleccionado entre el grupo constituido por bromo,
cloro, y yodo, las reivindicaciones para que X sea bromo y las
reivindicaciones para que X sea bromo y cloro se describen
completamente.
Otras realizaciones están comprendidas en las
siguientes reivindicaciones.
Claims (17)
1. Un compuesto de fórmula (I)
o una sal farmacéuticamente
aceptable del mismo, en la
que:
R^{1} se selecciona entre hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}), -(CH_{2})_{r}R^{16}
y -C(O)NR^{8}R^{9};
R^{2} se selecciona entre hidrógeno, halógeno,
arilo y -S(O)_{2}NR^{13}R^{14};
R^{3} se selecciona entre hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}), alcoxi
(C_{1}-C_{4}), arilo, heteroarilo, y
-C(O)R^{15};
R^{4} es hidrógeno;
R^{5} se selecciona entre hidrógeno y alquilo
(C_{1}-C_{4});
R^{6} es -C(O)R^{10};
R^{7} se selecciona entre hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{4}) y arilo;
R^{8} y R^{9} se seleccionan
independientemente entre hidrógeno, alquilo y arilo;
R^{10} es
-N(R^{11})(CH_{2})_{n}R^{12}, en la que n es
1, 2 ó 3, R^{11} es hidrógeno y R^{12} se selecciona entre
hidroxi, alcoxi (C_{1}-C_{4}),
-C(O)R^{15}, heteroarilo y -NR^{13}R^{14};
R^{13} y R^{14} se seleccionan
independientemente entre el grupo constituido por hidrógeno. alquilo
(C_{1}-C_{4}), cicloalquilo, arilo y
heteroarilo; o
R^{13} y R^{14} pueden combinarse para
formar un grupo heterociclo;
R^{15} se selecciona entre el grupo
constituido por hidrógeno, hidroxi, alcoxi
(C_{1}-C_{4}) y ariloxi;
R^{16} se selecciona entre hidroxi y
-C(O)R^{15}; y
r es 2 ó 3;
\vskip1.000000\baselineskip
y en el que:
alcoxi se refiere a O-alquilo u
O-cicloalquilo;
ariloxi se refiere a O-arilo u
O-heteroarilo;
heteroarilo se refiere a un grupo de anillo
monocíclico o condensado de 5 a 12 átomos en el anillo que contiene
uno, dos o tres heteroátomos en el anillo seleccionados entre N, O o
S, siendo los restantes átomos en el anillo C;
grupo heterociclo se refiere a un radical
cíclico saturado de 3 a 8 átomos en el anillo en el que uno o dos
átomos en el anillo son heteroátomos seleccionados entre N, O o
S(O)_{n} donde n es un número entero de 0 a 2,
siendo los restantes átomos en el anillo C,
donde uno o dos átomos de C está opcionalmente
sustituidos por un grupo carbonilo;
los grupos alquilo, alcoxi y cicloalquilo están
no sustituidos;
los grupos arilo y heteroarilo están
opcionalmente sustituidos con uno o dos sustituyentes seleccionados
independientemente entre halo, alquilo
(C_{1}-C_{4}), trihaloalquilo
(C_{1}-C_{4}), hidroxi, mercapto, ciano,
N-amido, mono- o dialquil
(C_{1}-C_{4})amino, carboxi y
N-sulfonamido;
el grupo heterociclo está opcionalmente
sustituido con uno o dos sustituyentes seleccionados
independientemente entre halo, -alquil
(C_{1}-C_{4}), -alquil
(C_{1}-C_{4})-carboxi, -alquil
(C_{1}-C_{4})-éster, hidroxilo y mono- o
dialquil (C_{1}-C_{4})amino.
2. El compuesto de la reivindicación 1, en el
que R^{13} y R^{14} se seleccionan independientemente entre
hidrógeno, alquilo (C_{1}-C_{4}), heteroarilo y,
combinados, -(CH_{2})_{4}-, -(CH_{2})_{5}-,
-(CH_{2})_{2}-O-(CH_{2})_{2}-
y
-(CH_{2})_{2}N(CH_{3})(CH_{2})_{2}-.
3. El compuesto de la reivindicación 1, en el
que n es 2 ó 3 y R^{12} es -NR^{13}R^{14} en la que R^{13} y
R^{14} son independientemente alquilo
(C_{1}-C_{4}).
4. El compuesto de la reivindicación 1, en el
que n es 2 ó 3 y R^{12} es -NR^{13}R^{14} en la que R^{13} y
R^{14} se combinan para formar un grupo seleccionado entre
-(CH_{2})_{4}-, -(CH_{2})_{5}-,
-(CH_{2})_{2}-O-(CH_{2})_{2}-
o
-(CH_{2})_{2}N(CH_{3})(CH_{2})_{2}-.
5. El compuesto de la reivindicación 1, en el
que R^{1} es -C(O)NR^{8}R^{9}, en la que R^{8}
es hidrógeno y R^{9} es arilo.
6. El compuesto de la reivindicación 1 que tiene
por fórmula
o una sal farmacéuticamente
aceptable del
mismo.
7. El compuesto de la reivindicación 1, que es
la sal L-malato de
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
8. El compuesto de la reivindicación 1 que tiene
por fórmula
o una sal farmacéuticamente
aceptable del
mismo.
9. Una composición farmacéutica que comprende un
compuesto de la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente
aceptable del mismo, y un vehículo o excipiente farmacéuticamente
aceptable.
10. Una composición farmacéutica que comprende
un compuesto de la reivindicación 6 o una sal farmacéuticamente
aceptable del mismo, y un vehículo o excipiente farmacéuticamente
aceptable.
11. La composición farmacéutica de la
reivindicación 10, que comprende la sal L-malato de
(2-dietilaminoetil)amida del ácido
5-(5-fluoro-2-oxo-1,2-dihidroindol-3-ilidenmetil)-2,4-dimetil-1H-pirrol-3-carboxílico.
12. Uso de un compuesto de la reivindicación 1 o
6 o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo, en la preparación
de un medicamento para el tratamiento de un trastorno relacionado
con proteína quinasa en un organismo.
13. El uso de la reivindicación 12, en el que
dicho trastorno relacionado con proteína quinasa se selecciona entre
un trastorno relacionado con una tirosina quinasa receptora, un
trastorno relacionado con una tirosina quinasa no receptora y un
trastorno relacionado con una serina-treonina
quinasa.
14. El uso de la reivindicación 12, en el que
dicho trastorno relacionado con proteína quinasa se selecciona entre
un trastorno relacionado con EGFR, un trastorno relacionado con
PDGFR, un trastorno relacionado con IGFR y un trastorno relacionado
con flk.
15. El uso de la reivindicación 12, en el que
dicho trastorno relacionado con proteína quinasa es un cáncer
seleccionado entre carcinoma de células escamosas, astrocitoma,
sarcoma de Kaposi, glioblastoma, cáncer de pulmón, cáncer de vejiga,
cáncer de cabeza y cuello, melanoma, cáncer de ovario, cáncer de
próstata, cáncer de mama, cáncer de pulmón microcítico, glioma,
cáncer colorectal, cáncer genitourinario y cáncer
gastrointestinal.
16. El uso de la reivindicación 12, en el que
dicho trastorno relacionado con proteína quinasa se selecciona entre
diabetes, un trastorno autoinmune, un trastorno de
hiperproliferación, reestenosis, fibrosis, psoriasis, enfermedad de
von Heppel-Lindau, osteoartritis, artritis
reumatoide, angiogénesis, un trastorno inflamatorio, un trastorno
inmunológico y un trastorno cardiovascular.
17. El uso de la reivindicación 12, en el que
dicho organismo es un ser humano.
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