PT1564285E - Processo para a obtenção de linhas de células de mieoloma de mamífero recombinantes adaptadas para crescer em meio isento de soro e de proteínas - Google Patents
Processo para a obtenção de linhas de células de mieoloma de mamífero recombinantes adaptadas para crescer em meio isento de soro e de proteínas Download PDFInfo
- Publication number
- PT1564285E PT1564285E PT03757654T PT03757654T PT1564285E PT 1564285 E PT1564285 E PT 1564285E PT 03757654 T PT03757654 T PT 03757654T PT 03757654 T PT03757654 T PT 03757654T PT 1564285 E PT1564285 E PT 1564285E
- Authority
- PT
- Portugal
- Prior art keywords
- protein
- concentration
- cells
- medium
- protein concentration
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 33
- 206010035226 Plasma cell myeloma Diseases 0.000 title claims description 14
- 201000000050 myeloid neoplasm Diseases 0.000 title claims description 14
- 230000012010 growth Effects 0.000 title claims description 12
- 239000004017 serum-free culture medium Substances 0.000 title 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 99
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 99
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 61
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 19
- 230000035899 viability Effects 0.000 claims description 15
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 14
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 11
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 claims description 7
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 claims description 7
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 claims description 5
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 claims description 4
- 102000005962 receptors Human genes 0.000 claims description 4
- 108020003175 receptors Proteins 0.000 claims description 4
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 claims description 3
- 239000012228 culture supernatant Substances 0.000 claims description 3
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 3
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 claims description 3
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims description 3
- 102000007056 Recombinant Fusion Proteins Human genes 0.000 claims description 2
- 108010008281 Recombinant Fusion Proteins Proteins 0.000 claims description 2
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 claims description 2
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 claims 4
- 230000030833 cell death Effects 0.000 claims 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 75
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 26
- 239000012980 RPMI-1640 medium Substances 0.000 description 4
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 4
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 4
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 4
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 2
- 210000004978 chinese hamster ovary cell Anatomy 0.000 description 2
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 2
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 239000003531 protein hydrolysate Substances 0.000 description 2
- 208000023275 Autoimmune disease Diseases 0.000 description 1
- 102000015081 Blood Coagulation Factors Human genes 0.000 description 1
- 108010039209 Blood Coagulation Factors Proteins 0.000 description 1
- FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-M Butyrate Chemical compound CCCC([O-])=O FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N Butyric acid Natural products CCCC(O)=O FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000017420 CD3 protein, epsilon/gamma/delta subunit Human genes 0.000 description 1
- 241000699802 Cricetulus griseus Species 0.000 description 1
- 229920000858 Cyclodextrin Polymers 0.000 description 1
- 102000001301 EGF receptor Human genes 0.000 description 1
- 108060006698 EGF receptor Proteins 0.000 description 1
- 108090000394 Erythropoietin Proteins 0.000 description 1
- 102000003951 Erythropoietin Human genes 0.000 description 1
- 102000001690 Factor VIII Human genes 0.000 description 1
- 108010054218 Factor VIII Proteins 0.000 description 1
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 1
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 1
- 101000976075 Homo sapiens Insulin Proteins 0.000 description 1
- 102000002265 Human Growth Hormone Human genes 0.000 description 1
- 108010000521 Human Growth Hormone Proteins 0.000 description 1
- 239000000854 Human Growth Hormone Substances 0.000 description 1
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 description 1
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 1
- WHXSMMKQMYFTQS-UHFFFAOYSA-N Lithium Chemical compound [Li] WHXSMMKQMYFTQS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000008072 Lymphokines Human genes 0.000 description 1
- 108010074338 Lymphokines Proteins 0.000 description 1
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 208000012868 Overgrowth Diseases 0.000 description 1
- 102000001938 Plasminogen Activators Human genes 0.000 description 1
- 108010001014 Plasminogen Activators Proteins 0.000 description 1
- 201000004681 Psoriasis Diseases 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 239000000956 alloy Substances 0.000 description 1
- 229910045601 alloy Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000003708 ampul Substances 0.000 description 1
- 239000003114 blood coagulation factor Substances 0.000 description 1
- 229940019700 blood coagulation factors Drugs 0.000 description 1
- 229960000182 blood factors Drugs 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 1
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 229940105423 erythropoietin Drugs 0.000 description 1
- DNJIEGIFACGWOD-UHFFFAOYSA-N ethyl mercaptane Natural products CCS DNJIEGIFACGWOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000301 factor viii Drugs 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000004408 hybridoma Anatomy 0.000 description 1
- 210000001822 immobilized cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 229940125396 insulin Drugs 0.000 description 1
- PBGKTOXHQIOBKM-FHFVDXKLSA-N insulin (human) Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H]1CSSC[C@H]2C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@H](C(N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CSSC[C@H](NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3NC=NC=3)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)CNC1=O)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(O)=O)=O)CSSC[C@@H](C(N2)=O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CN)[C@@H](C)CC)[C@@H](C)CC)[C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)C1=CN=CN1 PBGKTOXHQIOBKM-FHFVDXKLSA-N 0.000 description 1
- 238000011031 large-scale manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 229910052744 lithium Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000002736 nonionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 210000001672 ovary Anatomy 0.000 description 1
- 230000010412 perfusion Effects 0.000 description 1
- 229940127126 plasminogen activator Drugs 0.000 description 1
- OXCMYAYHXIHQOA-UHFFFAOYSA-N potassium;[2-butyl-5-chloro-3-[[4-[2-(1,2,4-triaza-3-azanidacyclopenta-1,4-dien-5-yl)phenyl]phenyl]methyl]imidazol-4-yl]methanol Chemical compound [K+].CCCCC1=NC(Cl)=C(CO)N1CC1=CC=C(C=2C(=CC=CC=2)C2=N[N-]N=N2)C=C1 OXCMYAYHXIHQOA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000010076 replication Effects 0.000 description 1
- HFHDHCJBZVLPGP-UHFFFAOYSA-N schardinger α-dextrin Chemical compound O1C(C(C2O)O)C(CO)OC2OC(C(C2O)O)C(CO)OC2OC(C(C2O)O)C(CO)OC2OC(C(O)C2O)C(CO)OC2OC(C(C2O)O)C(CO)OC2OC2C(O)C(O)C1OC2CO HFHDHCJBZVLPGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000013207 serial dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012679 serum free medium Substances 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 239000013589 supplement Substances 0.000 description 1
- 238000013268 sustained release Methods 0.000 description 1
- 239000012730 sustained-release form Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 1
- 210000003501 vero cell Anatomy 0.000 description 1
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
- C07K16/2803—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
- C07K16/2809—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily against the T-cell receptor (TcR)-CD3 complex
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
- C07K16/2863—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against receptors for growth factors, growth regulators
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
- C07K16/2896—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against molecules with a "CD"-designation, not provided for elsewhere
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0693—Tumour cells; Cancer cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0693—Tumour cells; Cancer cells
- C12N5/0694—Cells of blood, e.g. leukemia cells, myeloma cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
- C07K2317/20—Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin
- C07K2317/24—Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin containing regions, domains or residues from different species, e.g. chimeric, humanized or veneered
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/90—Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
- C12N2500/95—Protein-free medium and culture conditions
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2510/00—Genetically modified cells
- C12N2510/02—Cells for production
Description
DESCRIÇÃO
PROCESSO PARA A OBTENÇÃO DE LINHAS DE CÉLULAS DE MIEOLOMA DE MAMÍFERO RECOMBINANTES ADAPTADAS PARA CRESCER EM MEIO ISENTO DE SORO E DE PROTEÍNAS
Domínio da invenção A presente invenção refere-se à biotecnologia, especificamente a um processo para a recuperação de clones de células estáveis adaptados a um meio isento de soro proteínas, por meio de um processo de adaptação em duas fases.
Antecedentes da invenção
Dado que o desenvolvimento da cultura in vitro de células de mamíferos aumentou a procura da produção em larga escala destas células devido ao potencial quer de diagnóstico quer terapêutico de muitos dos produtos que elas produzem. Estes agentes úteis incluem anticorpos monoclonais, hormona do crescimento humano, linfocinas, eritropoietina, factores de coagulação do sangue e activadores do plasminogénio dos tecidos. A utilização de anticorpos monoclonais recombinantes (Acmr) para a terapia e o diagnóstico in vivo de diferentes doenças implica, em muitos casos, a utilização de tratamentos com doses elevadas. Este facto torna necessária a produção de grande quantidade do Acmr de interesse, com uma pureza muito elevada. 1 Vários anticorpos monoclonais recombinantes com uma potencial utilização na terapia e no diagnóstico do cancro e de doenças autoimunes têm sido expressos em células de mieloma NSO no Center of Molecular Immunology. A patente norte-americana US 5.891.996 descreve a obtenção de anticorpos guiméricos e humanizados contra o receptor do factor do crescimento epidérmico (R-FCE), útil no diagnóstico e na terapia de tumores que expressam o referido receptor. A patente WO 97/19111 descreve anticorpos monoclonais anti-CD6 úteis no diagnóstico e na terapia de pacientes que sofrem de psoriase. Gavilondo et al. em Hybridoma 9 No.5, 1999 relataram um anticorpo monoclonal anti-CD3 designado por I0R-T3a.
Desenvolveram-se várias técnicas para condições de cultura isentas de proteínas. Assim, desenvolveram-se meios completos, isentos de proteínas, especificamente definidos, que permitem o crescimento das células em condições isentas de proteínas. A patente WO 97/05240 descreve a expressão de proteínas recombinantes em condições isentas de proteínas. A patente JP 2696001 descreve a utilização de um meio isento de proteína para a produção do factor VIII em células de OHC (ovário de hamster chinês), por meio da adição de um agente tensioactivo não iónico ou de ciclodextrina para aumentar a produtividade das células hospedeiras. Para aumentar a eficácia destes aditivos, recomenda-se, por exemplo, a adição de butirato e lítio. A patente WO 96/26266 descreve a cultura de células num meio que contém um hidrolisado de proteína contendo glutamina cujo teor em aminoácidos livres é inferior a 15 % do peso total da proteína e cujos péptidos têm um peso molecular inferior a 44 kD. Como meio de cultura, para as 2 culturas de células, utiliza-se um meio sintético minimo como o meio básico ao qual se adiciona, inter alia, soro bovino fetal, gentamicina e mercapto-etanol, para além do hidrolisado de proteína. A utilização deste meio contendo soro, para a produção recombinante de factores sanguíneos não foi mencionada. A patente norte-americana U.S. No. 5.393.668 A descreve superfícies sintéticas especiais que permitem o crescimento de células aderentes, em condições isentas de proteína.
Para estimular a proliferação de células, as células de OHC que sobre-expressam insulina humana foram multiplicadas num substrato artificial ao qual a insulina de liga por covalência (Ito et al. 1996 PNAS U.S.A. 93: 3598-3601).
Reiter et al. (1992. Cytotechnology 9: 247-253) descrevem a imobilização de células de OHC-r que cresceram primeiro em meio contendo soro com uma elevada densidade em veículos e a subsequente perfusão das células imobilizadas em meio isento de proteínas durante a fase de produção, em que se observou uma libertação contínua da proteína no sobrenadante da cultura de células. Depois, mantiveram-se as células em meio isento de proteína durante menos de 10 gerações. Já foram descritos antes processos para uma preparação bem sucedida de uma cultura de células em larga escala em condições isentas de proteínas, em particular para células VERO (WO 96/15231) . Depois, as células cresceram em condições isentas de soro e isentas de proteínas a partir 3 da ampola original até a uma larga escala técnica de 1200 litros.
Adaptar células que cresceram inicialmente em condições contendo soro até a um meio isento de proteínas é um processo bastante complicado que normalmente demora muito tempo; além disso, tem-se verificado, repetidamente, que o rendimento de proteína expressa e a produtividade de células recombinantes de OHC cai bastante após a adaptação em meio isento de proteínas quando se compara com condições contendo soro (Paterson et al. 1994. Appl. Microbiol. Biotechnol. 40: 691-658). Isto é a consequência de uma instabilidade ou de um crescimento reduzido dos clones recombinantes devido à alteração das condições de cultura. Apesar da utilização de um clone original estável, tendo em conta as condições de fermentação alteradas, repetidamente, uma grande porção de células torna-se em células com uma expressão reduzida, com um sobre-crescimento dos produtores do produto durante o processo de produção, em que a cultura do fermentador consiste, no final, em não produtores dessas células com uma baixa expressão.
Na presente invenção, os requerentes estabeleceram uma abordagem para desenvolver linhas de células estáveis adaptadas a um meio isento de soro e isento de proteínas. Seguindo esta abordagem, isolaram-se vários clones em meio isento de proteína.
Descrição detalhada da invenção
Adaptação, em duas etapas, de linhas de células, ao meio isento de proteínas. 4 células
Este processo compreende linhas de recombinantes de mieloma de mamífero, para as quais não é possível realizar directamente um procedimento de adaptação do meio complementado com soro ou isento de soro para um meio isento de proteína. 0 processo da presente invenção consiste num processo em duas etapas durante a adaptação das linhas de células a um meio isento de proteínas (MIP).
Primeira etapa, que é considerada como uma etapa não crítica: a redução do teor de proteína ocorre sem a perda da viabilidade da célula e não há nenhum decréscimo importante no tempo de duplicação da população em cada etapa de concentração de proteínas. A etapa não crítica observa-se normalmente entre 5 e 0,5 mg/mL da concentração total de proteína no meio de cultura e a cultura exibe quase a mesma taxa de crescimento que no meio de cultura inicial. A primeira etapa começa com a viabilidade da linha de células entre 80 e 100 % e as células crescem no meio de cultura com a consecutiva redução da concentração de proteínas até a uma concentração crítica das proteínas em que a viabilidade das células cai para 0 %. Esta concentração de proteínas é o ponto de partida para a etapa seguinte.
Segunda etapa, que é considerada como uma etapa crítica: nesta etapa, ocorre uma diminuição na viabilidade das células e o tempo de duplicação da população de células será maior para se adaptar de uma etapa de concentração de proteína para a outra. Existem concentrações críticas de proteína no meio de cultura, que não é possível ultrapassar 5 durante o processo de adaptação. Estas concentrações críticas da proteína são específicas para cada linha de células recombinantes, mas normalmente são inferiores a 0,6 mg/ml. Quando as células tiverem recuperado a viabilidade inicial e a taxa de crescimento, a estas concentrações críticas de proteína, é possível fazer uma subcultura, nas condições que se seguem, com concentrações mais baixas de proteína.
Uma vez fixada a concentração crítica das proteínas, considera-se que a concentração de proteínas mais elevada e mais próxima que suporta o crescimento das células é a concentração pré-crítica das proteínas. Começando na concentração pré-crítica das proteínas vai-se reduzindo lentamente até as células recuperarem a viabilidade inicial e a taxa de crescimento. A combinação das etapas seleccionadas para reduzir a concentração de proteínas no estádio crítico irá determinar o tempo total de adaptação neste estádio e a taxa de adaptação (Vadapt.), calculada como a relação:
Vadapt-=A Concentração de proteína ATadapt
Contudo, esta combinação de etapas não terá influência no tempo necessário para a adaptação de cada concentração de proteína, incluindo as concentrações críticas. 6
Para determinar o final da etapa não critica e as concentrações criticas de proteína, é necessário realizar uma adaptação passo a passo, por meio de diluições em série da cultura de células no meio desejado, isento de proteínas, reduzindo, de cada vez, duas vezes, a concentração de proteínas (quadro 1). Esta redução pode ser feita por meio da diminuição da concentração no soro ou complementando o meio de base com diferentes níveis do mesmo substituto do soro rico em proteínas.
Quadro 1: Redução, por etapas, da concentração de proteínas de modo a determinar as concentrações críticas partindo de um meio de cultura complementado com 5 mg/ml de proteina (equivalente a 10 % de soro de bovino fetal) . Número da etapa Concentração total de proteina mg/ml Concentração* equivalente de SBF, % v/v 1 5,000 o o o 2 2,500 5,00 3 1,250 2,50 4 0,625 1,25 5 0,312 o KD O 6 0,156 0,30 7 0,000 o o o LEGENDA: Soro bovino fetal - SBF Meio isento de proteína - MIP Meio contendo soro - MCS * Considera-se que o teor total de proteína do soro bovino fetal seja de cerca de 50 mg/ml.
Antes do processo de adaptação devem manter-se as células, com mais do que 80 % de viabilidade, em frascos T, em meio padrão normalmente utilizado para a cultura de células. O processo de adaptação realiza-se passo a passo seguindo as etapas descritas a seguir. 7 sobrenadante por meio fresco isento de proteína, obtendo-se assim uma concentração final de proteína que corresponde a 50 % da condição inicial. ii. De 48 em 48 horas o sobrenadante é completamente substituído por meio de cultura fresco com uma concentração de proteína que corresponde a 50 % da condição inicial. iii. As células cresceram até à confluência em meio com 50 % de concentração de proteína em relação à condição inicial. iv. Semeiam-se as células da etapa iii em pelo menos 3 poços a uma densidade no intervalo de 1 a 5 χ 105 células/ml em meio de cultura com uma concentração de proteína que corresponde a 50 % da concentração das condições iniciais. Passadas 48 horas, substitui-se metade do sobrenadante por meio fresco isento de proteína, obtendo-se uma concentração final de proteína que corresponde a 50 % da condição inicial. v. De 48 em 48 horas o sobrenadante é completamente substituído por meio de cultura fresco com uma concentração de proteína que corresponde a 50 % da condição inicial. vi. As células cresceram até à confluência no meio com 50 % da concentração anterior de proteína. vii. Repetiram-se as etapas de (iv) a (vi), durante cada ciclo a concentração de proteínas é reduzida para 50 % da concentração do ciclo anterior. Repete-se este procedimento até se atingir uma concentração de proteína que cause a morte das células. viii. Semearam-se as células de uma cultura de células com uma viabilidade de 80 % ou superior crescendo com a concentração pré-crítica de proteínas, em pelo menos 3 poços, a uma densidade num intervalo de 2 a 6 χ 105 células/ml. As células crescem numa concentração pré- crítica de proteínas e, passadas 48 horas, substitui-se 25 % do sobrenadante por meio fresco isento de proteínas, obtendo-se assim uma concentração final de proteína que representa 75 % da concentração pré-crítica de proteínas. ix. De 48 em 48 horas, o sobrenadante é completamente substituído por meio de cultura fresco com uma concentração de proteína que corresponde a 75% da concentração pré-crítica de proteínas. x. As células cresceram até à confluência no meio com 75 % da concentração pré-crítica de proteínas. xi. As linhas de células derivadas da etapa anterior são semeadas em pelo menos 3 poços a uma densidade que varia entre 2 e 6 χ 105 células/ml em meio contendo 75 % da concentração pré-crítica de proteínas e, passadas 48 horas, substitui-se 25 % do sobrenadante da cultura por meio fresco isento de proteínas, originando assim uma concentração final de proteínas que corresponde a 75 % da concentração anterior. xii. De 48 em 48 horas o sobrenadante é completamente substituído por meio de cultura fresco com uma concentração de proteína que corresponde a 75 % da concentração anterior. xiii. As células cresceram até à confluência no meio com 75 % da concentração anterior de proteína. xiv. Repetem-se as etapas (xi) a (xiii), reduzindo a concentração de proteínas de cada ciclo até 75 % da utilizada no ciclo anterior, atingindo uma concentração de proteína tal que quando as células são transferidas para uma concentração inferior crescem com uma viabilidade e um tempo de duplicação semelhantes aos originais, de modo que a subsequente diminuição da concentração de proteínas não afecta a viabilidade ou o tempo de duplicação. 9
No processo da presente invenção, o meio de cultura inicial contém entre 5 e 10 % de soro bovino fetal. A linha de células recombinantes de mamíferos adaptada ao crescimento em meio isento de proteína é de mieloma, particularmente células de NSO. A presente invenção também pode ser útil quando se utilizam linhas de células de NSO transfectadas com um polipéptido ou uma proteína recombinante, particularmente quando são transfectadas com uma sequência que codifica um anticorpo recombinante ou os seus fragmentos. Também se descrevem as linhas de células recombinantes de mieloma de mamíferos modificadas pelo processo da presente invenção que crescem em meio isento de proteína.
Está incluída na presente memória descritiva, mas não faz parte da presente invenção, qualquer linha de células recombinantes de mieloma de mamíferos que expressam um anticorpo humanizado ou quimérico seleccionado no grupo que consiste em anticorpos anti-receptor de FCE, hR3, anti-CD6, TlhT, anti-CD3, T3Q ou os seus fragmentos que crescem em meio isento de proteína e portanto os anticorpos segregados por estas linhas de células.
As linhas de células obtidas pelo processo da presente invenção cresceram de forma estável em meio isento de proteína durante pelo menos 40 gerações.
Exemplos
Exemplo 1: Adaptação da linha de células recombinante hR3 ao meio isento de proteínas. 10
Obteve-se a linha de células recombinante hR3 por transfecção da linha de células NSO de mieloma com as estruturas do vector para expressar as cadeias pesadas e leves do anticorpo monoclonal humanizado anti-receptor humano de FCE, hR3. A adaptação desta linha de células ao meio isento de proteína foi feita seguindo o processo descrito previamente, por meio de duas etapas de redução do teor de proteína do meio.
Fez-se a cultura destas células em meio RPMI-1640 complementado com SBF a 10 %. Substituiu-se o SBF adicionando o suplemento rico em proteína Nutridoma NS (Boheringer Manheinn) ao meio RPMI-1640 isento de proteína quando a concentração de proteína era de 0,15 mg/ml. A redução do teor de proteína no meio inicial foi feita por diluições sucessivas com meio PFHM-II isento de proteína (Gibco).
As fig. 1 e 2 mostram, respectivamente, os resultados do cálculo das concentrações críticas e das taxas de adaptação Vadapt.
Exemplo 2: Adaptação da linha de células recombinante Tlht ao meio isento de proteínas.
Obteve-se a linha de células recombinante Tlht por transfecção da linha de células NSO de mieloma com as estruturas do vector para expressar as cadeias pesadas e leves de um anticorpo monoclonal humanizado anti-CD6 humano pelo processo da supressão do epítope T. 11 A adaptação desta linha de células ao meio isento de proteína foi feita seguindo o processo descrito no ponto 2, por meio de duas etapas de redução do teor de proteína do meio.
Fez-se inicialmente a cultura destas células em meio RPMI-1640 complementado com SBF a 10 %. A redução do teor de proteína no meio inicial foi feita por diluições sucessivas do meio inicial com o meio PFHM-II isento de proteína da Gibco. Os resultados do cálculo das concentrações críticas e das taxas de adaptação Vadapt · estão ilustrados nas fig. 3 e 4 respectivamente.
Exemplo 3: Adaptação da linha de células recombinante T3Q ao meio isento de proteínas.
Obteve-se a linha de células recombinante T3Q por transfecção da linha de células NSO de mieloma com as estruturas do vector para expressar as cadeias pesadas e leves do anticorpo monoclonal humanizado T3Q que reconhece o receptor de CD3 em linfócitos humanos. A adaptação desta linha de células ao meio isento de proteína foi feita seguindo o processo descrito no ponto 2, por meio de duas etapas de redução do teor de proteína do meio.
Fez-se inicialmente a cultura destas células em meio RPMI-1640 complementado com SBF a 10 %. A redução do teor de proteína no meio inicial foi feita por diluições sucessivas no meio PFHM-II isento de proteína da Gibco. 12
Os resultados do cálculo das concentrações críticas e das taxas de adaptação vadapt. estão ilustrados nas fig. 5 e 6 respectivamente.
Beve descrição das figuras:
Figura 1: Correlação do tempo necessário para adaptar as células de hR3 a cada concentração de proteína (até à recuperação da viabilidade e do tempo de duplicação) com o logaritmo natural do inverso da concentração de proteína. Valores de concentrações críticas para a linha de células h-R3: -0,32 e 0,11 mg/ml da concentração total de proteína.
Figura 2: Correlação do tempo total desde o início do processo de adaptação, com o logaritmo natural do inverso da concentração de proteína para a linha de células h-R3. Valores das taxas de adaptação para a linha de células h-R3 durante a etapa crítica - 0,0053 mg/d.
Figura 3: Correlação do tempo necessário para adaptar as células TlhT a cada concentração de proteína (até à recuperação da viabilidade e do tempo de duplicação) com o logaritmo natural do inverso da concentração de proteína. Valores de concentrações críticas para a linha de células TlhT: -0,12 e 0,01 mg/ml da concentração total de proteína.
Figura 4: Correlação do tempo total desde o início do processo de adaptação, com o logaritmo natural do inverso da concentração de proteína para a linha de células TlhT. Valores das taxas de adaptação para a linha de células TlhT - 0,0014 mg/d.
Figura 5: Correlação do tempo necessário para adaptar as células de T3Q a cada concentração de proteína (depois da recuperação da viabilidade e do tempo de duplicação) 13 com o logaritmo natural do inverso da concentração de proteína. Valores de concentrações críticas para a linha de células T3Q: - 0,63 mg/ml da concentração total de proteína.
Figura 6: Correlação do tempo total desde o início do processo de adaptação, com o logaritmo natural do inverso da concentração de proteína para a linha de células T3Q. Valores das taxas de adaptação para a linha de células T3Q - 0,0172 mg/d.
Lisboa, 13 de Abril de 2011. 14
Claims (8)
- REIVINDICAÇÕES 1. Processo para a obtenção de uma linha de células recombinante de mieloma de mamífero, adaptada ao crescimento em meio isento de soro e isento de proteína, caracterizado pelo facto de compreender duas etapas: I. Uma primeira etapa em que a viabilidade da linha de células está entre 80 e 100 % e as células crescem no meio de cultura com a consecutiva redução da concentração de proteínas até a uma concentração crítica das proteínas em que a viabilidade das células cai para 0 %; e II. Uma segunda etapa em que desde que a concentração crítica tenha sido pré-determinada, então a concentração pré-crítica é fixada como uma concentração de proteína em que o crescimento celular é possível e é o ponto de partida para reduzir lentamente a concentração de proteínas até a cultura de células atingir a viabilidade celular inicial e se atingir o tempo de duplicação da população.
- 2. Processo, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo facto de a primeira etapa consistir nas etapas seguintes: i. Sementeira, em 3 poços, numa placa de cultura de seis poços com linha de células recombinante de mieloma de mamífero utilizando o meio padrão de cultura de células com a concentração inicial de proteínas, em que a densidade das células está no intervalo de 1 a 5 x 1 105 células/ml e, após 48 horas, substituição de metade do sobrenadante por meio fresco isento de proteína, originando assim uma concentração final de proteína que representa 50 % da concentração das condições iniciais; ii. Substituição completa do sobrenadante, de 48 em 48 horas, por meio fresco de cultura com uma concentração de proteína que corresponde a 50 % da concentração da condição inicial; iii. Crescimento das células até à confluência no meio com 50 % da concentração de proteína inicial; iv. Sementeira das células da etapa iii, em pelo menos 3 poços, a uma densidade no intervalo de 1 to 5 x 105 células/ml em meio de cultura com uma concentração de proteína que representa 50 % da concentração das condições iniciais, substituindo metade do sobrenadante, passadas 48 horas, por meio fresco isento de proteína, originando uma concentração final de proteína que é de 50 % da concentração da condição inicial; v. Substituição completa do sobrenadante, de 48 em 48 horas, por um meio fresco de cultura com uma concentração de proteína que representa 50 % da concentração da condição anterior; vi. Crescimento das células até à confluência no meio com 50 % de concentração anterior de proteína; e vii. Repetição das etapas (iv) a (vi), em que, durante cada ciclo, a concentração de proteína é reduzida para 50 % da concentração do ciclo anterior, até se atingir uma concentração de proteína que cause a morte da células. 2
- 3. Processo, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo facto de a segunda etapa consistir nas etapas seguintes: viii. Sementeira de células de mieloma de mamífero provenientes de uma cultura de células com uma viabilidade de 80 % ou superior, efectuada com uma concentração pré-crítica de proteína, em pelo menos 3 poços, com uma densidade variando de 2 a 6 x 105 células/ml, crescendo as células a uma concentração pré-crítica de proteínas e, passadas 48 horas, substituição de 25 % do sobrenadante por meio fresco isento de proteína, para se obter assim uma concentração final de proteínas de 75 % da concentração pré-crítica de proteínas; ix. Substituição completa do sobrenadante, de 48 em 48 horas, por um meio fresco de cultura com uma concentração de proteína igual a 75 % da concentração pré-crítica de proteínas; x. Crescimento das células até à confluência num meio contendo 75 % da concentração pré-crítica de proteínas; xi. Sementeira das linhas de células derivadas da etapa anterior, em pelo menos 3 poços, a uma densidade que varia entre 2 e 6 χ 105 células/ml em meio contendo 75 % da concentração pré-crítica de proteínas e, passadas 48 horas, substituição de 25 % do sobrenadante da cultura por meio fresco isento de proteínas, originando assim uma concentração final de proteínas que corresponde a 75 % da concentração anterior; xii. Substituição completa do sobrenadante, de 48 em 48 horas, por meio fresco de cultura com uma 3 concentração de proteína que corresponde a 75 % da concentração prévia; xiii. Crescimento das células até à confluência no meio com 75 % da concentração anterior de proteína; e xiv. Repetição das etapas (xi) a (xiii), reduzindo a concentração de proteínas de cada ciclo até 75 % da utilizada no ciclo anterior, atingindo uma concentração de proteína tal que, quando as células são transferidas para uma concentração inferior, crescem com uma viabilidade e um tempo de duplicação semelhantes aos originais, de modo que a subsequente diminuição da concentração de proteínas não afecta a viabilidade ou o tempo de duplicação.
- 4. Processo, de acordo com as reivindicações 1 a 3, caracterizado pelo facto de o meio contendo soro e proteína, em que as células foram inicialmente semeadas, compreender entre 5 % e 10 % do soro de bovino fetal.
- 5. Processo, de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pelo facto de a linha de células recombinante de mieloma de mamífero ser a linha de células de NSO.
- 6. Processo, de acordo com a reivindicação 5, caracterizado pelo facto de a referida linha de células de NSO conter uma sequência que codifica um polipéptido recombinante ou uma proteína recombinante que codifica para um anticorpo recombinante ou um seu fragmento.
- 7. Processo, de acordo com a reivindicação 6, caracterizado pelo facto de a referida linha de células de NSO conter 4 uma sequência que codifica o anticorpo anti-receptor de FCE, hR3.
- 8. Utilização do processo de acordo com as reivindicações 1 a 6 caracterizada pelo facto de se destinar à obtenção de uma linha de células de mieloma de mamifero adaptada para crescer em meio isento de soro e de proteina. Lisboa, 13 de Abril de 2011. 5
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CU20020239A CU23097A1 (es) | 2002-10-23 | 2002-10-23 | Método para la obtención de líneas celulares en medio libre de proteína y líneas celulares obtenidas por este método |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PT1564285E true PT1564285E (pt) | 2011-04-20 |
Family
ID=40134843
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PT03757654T PT1564285E (pt) | 2002-10-23 | 2003-10-22 | Processo para a obtenção de linhas de células de mieoloma de mamífero recombinantes adaptadas para crescer em meio isento de soro e de proteínas |
Country Status (27)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US20060036082A1 (pt) |
EP (2) | EP2363418B1 (pt) |
JP (1) | JP4674087B2 (pt) |
KR (1) | KR101186048B1 (pt) |
CN (1) | CN1714147B (pt) |
AR (1) | AR041645A1 (pt) |
AT (1) | ATE502103T1 (pt) |
AU (1) | AU2003273727B2 (pt) |
CA (1) | CA2503315C (pt) |
CU (1) | CU23097A1 (pt) |
DE (1) | DE60336415D1 (pt) |
DK (1) | DK1564285T3 (pt) |
EA (1) | EA007465B1 (pt) |
EC (1) | ECSP055740A (pt) |
ES (2) | ES2624279T3 (pt) |
GE (1) | GEP20084444B (pt) |
HK (1) | HK1084414A1 (pt) |
HR (1) | HRP20050760A2 (pt) |
LT (1) | LT5354B (pt) |
LV (1) | LV13361B (pt) |
MY (1) | MY144088A (pt) |
NZ (1) | NZ540171A (pt) |
PE (1) | PE20040552A1 (pt) |
PT (1) | PT1564285E (pt) |
TN (1) | TNSN05116A1 (pt) |
UY (1) | UY28037A1 (pt) |
WO (1) | WO2004038010A1 (pt) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104673754B (zh) * | 2015-02-14 | 2018-03-02 | 百泰生物药业有限公司 | 重组骨髓瘤细胞克隆的筛选方法及由此获得的抗体分子 |
CN104651314B (zh) * | 2015-02-14 | 2018-06-19 | 百泰生物药业有限公司 | 获得高产稳定表达细胞克隆的方法及由此获得的抗体分子 |
Family Cites Families (19)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3694263A (en) * | 1970-10-23 | 1972-09-26 | Joseph J Korn Sr | Swimming pool cleaning methods and apparatus therefor |
CU22545A1 (es) * | 1994-11-18 | 1999-03-31 | Centro Inmunologia Molecular | Obtención de un anticuerpo quimérico y humanizado contra el receptor del factor de crecimiento epidérmico para uso diagnóstico y terapéutico |
US3886616A (en) * | 1972-12-06 | 1975-06-03 | Fay A Hayes | Hand propelled swimming pool cleaner |
US4275474A (en) * | 1979-04-30 | 1981-06-30 | Woodard Randle C | Vacuum head for swimming pool cleaning system |
US4240174A (en) * | 1979-07-30 | 1980-12-23 | Scott Jeffrey L | Self-contained mobile pool cleaning apparatus |
US4430214A (en) * | 1982-09-15 | 1984-02-07 | Baker Marvin E | Strainer mill for swimming pool pump intake |
AU2986484A (en) * | 1983-06-27 | 1985-01-03 | Monash University | Leptospira strains grown in protein free medium |
US4558479A (en) * | 1984-01-26 | 1985-12-17 | Alopex Industries, Inc. | Pool cleaner |
US4683599A (en) * | 1984-03-30 | 1987-08-04 | Fahet Nv | Automatic pool cleaner fitting |
US4581075A (en) * | 1985-03-15 | 1986-04-08 | Maxi-Sweep, Inc. | Self-propelled water borne pool cleaner |
AU6291090A (en) | 1989-09-29 | 1991-04-28 | Atomic Energy Of Canada Limited | Infrared-based gas detector |
JP2696001B2 (ja) | 1991-04-15 | 1998-01-14 | 財団法人化学及血清療法研究所 | 組換え蛋白質産生用培地 |
EP0531562A1 (de) | 1991-09-11 | 1993-03-17 | Doerr, Hans-Wilhelm, Prof. Dr. med. | Kultivierung von Säugetierzellen |
PT784684E (pt) * | 1994-09-16 | 2007-11-23 | Cancer Res Fund Of Contra Cost | ''péptidos recontinantes derivados do anticorpo mc3 anti-ba46, métodos para a sua utilização e métodos de hmnanização de péptidos do anticorpo'' |
JP3158157B2 (ja) | 1994-11-10 | 2001-04-23 | バクスター・アクチエンゲゼルシャフト | 無蛋白培養における生物製剤の製造法 |
AU703484B2 (en) | 1995-02-23 | 1999-03-25 | Quest International Services B.V. | Peptides for tissue and cell culture media |
AUPN442295A0 (en) | 1995-07-26 | 1995-08-17 | Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation | Regulated autocrine growth of mammalian cells |
CU22584A1 (es) | 1995-11-17 | 1999-11-03 | Centro Inmunologia Molecular | Composiciones farmacéuticas que contienen un anticuerpo monoclonal que reconoce el antígeno de diferenciación leucocitario humano cd6 y sus usos para el diagnóstico y tratamiento de la psoriasis |
AT407255B (de) * | 1997-06-20 | 2001-02-26 | Immuno Ag | Rekombinanter zellklon mit erhöhter stabilität in serum- und proteinfreiem medium und verfahren zur gewinnung des stabilen zellklons |
-
2002
- 2002-10-23 CU CU20020239A patent/CU23097A1/es unknown
-
2003
- 2003-10-10 PE PE2003001035A patent/PE20040552A1/es not_active Application Discontinuation
- 2003-10-16 AR ARP030103776A patent/AR041645A1/es active IP Right Grant
- 2003-10-17 MY MYPI20033959A patent/MY144088A/en unknown
- 2003-10-22 CA CA2503315A patent/CA2503315C/en not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 DE DE60336415T patent/DE60336415D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 EP EP11155076.0A patent/EP2363418B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 GE GEAP20038815A patent/GEP20084444B/en unknown
- 2003-10-22 AT AT03757654T patent/ATE502103T1/de active
- 2003-10-22 ES ES11155076.0T patent/ES2624279T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 NZ NZ540171A patent/NZ540171A/en not_active IP Right Cessation
- 2003-10-22 EP EP03757654A patent/EP1564285B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 PT PT03757654T patent/PT1564285E/pt unknown
- 2003-10-22 ES ES03757654T patent/ES2360049T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 WO PCT/CU2003/000012 patent/WO2004038010A1/es active IP Right Grant
- 2003-10-22 CN CN2003801036918A patent/CN1714147B/zh not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 DK DK03757654.3T patent/DK1564285T3/da active
- 2003-10-22 AU AU2003273727A patent/AU2003273727B2/en not_active Expired
- 2003-10-22 KR KR1020057006995A patent/KR101186048B1/ko active IP Right Grant
- 2003-10-22 US US10/532,269 patent/US20060036082A1/en not_active Abandoned
- 2003-10-22 JP JP2004545689A patent/JP4674087B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 2003-10-22 EA EA200500695A patent/EA007465B1/ru not_active IP Right Cessation
- 2003-10-23 UY UY28037A patent/UY28037A1/es not_active Application Discontinuation
-
2005
- 2005-04-22 EC EC2005005740A patent/ECSP055740A/es unknown
- 2005-04-22 TN TNP2005000116A patent/TNSN05116A1/en unknown
- 2005-05-19 LT LT2005053A patent/LT5354B/lt not_active IP Right Cessation
- 2005-05-23 LV LVP-05-61A patent/LV13361B/en unknown
- 2005-09-02 HR HR20050760A patent/HRP20050760A2/xx not_active Application Discontinuation
-
2006
- 2006-04-13 HK HK06104515.2A patent/HK1084414A1/xx not_active IP Right Cessation
-
2010
- 2010-04-13 US US12/759,208 patent/US20100197011A1/en not_active Abandoned
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DK169586B1 (da) | Histil ukendt rottemyelomacellelinie, hybridcellelinie afledt deraf, in vitro cellekultursystem og cellefusionssystem omfattende celler herfra, fremgangsmåde til fremstilling af en hybridcellelinie samt fremgangsmåde til fremstilling af monoklonale antistoffer | |
EP0043718B1 (en) | Improvements in or relating to cell lines | |
CN110072533A (zh) | 选择性扩增γδT细胞群的方法及其组合物 | |
US20060073591A1 (en) | Cell culture media | |
JP2017516484A (ja) | タンパク質生産のための細胞培養工程 | |
PT1564285E (pt) | Processo para a obtenção de linhas de células de mieoloma de mamífero recombinantes adaptadas para crescer em meio isento de soro e de proteínas | |
CN115397976A (zh) | 用多价药剂及其组合物扩增γδT细胞群的方法 | |
AU646875B2 (en) | Beta-alethine use in cell culture and therapy | |
JPH03254679A (ja) | 新規細胞株 | |
Scharff et al. | Hybridomas as a source of antibodies | |
BRPI0315565B1 (pt) | Método para se obter uma linhagem celular de mieloma nso que contém uma sequência que codifica um polipeptídeo recombinante ou uma proteína recombinante adaptada para crescer em meio livre de soro e proteína, e, uso do método | |
EP0251107A2 (en) | Improved fusion products | |
EP0251106A2 (en) | Improved fusion method | |
JP2683946B2 (ja) | 細胞培養によるタンパク質産生方法 | |
JPS60204727A (ja) | 抗ヒトv型コラ−ゲン抗体 | |
JP2500384B2 (ja) | 生理活性物質の製造法 | |
JPH0787799B2 (ja) | モノクローナル抗体生産増強法 | |
JPH089968A (ja) | n−酪酸を含有することを特徴とする動物細胞培養用培地及び培養方法 | |
Morrill | Characterization of the down regulation of antibody production in high cell density perfusion culture | |
JPS6147183A (ja) | ヒト・ヒトハイブリド−マ培養用無血清培地 | |
JPH0491786A (ja) | 完全合成培地 | |
JPS62244392A (ja) | ハイブリド−マを用いて抗体を産生する方法 | |
SK281965B6 (sk) | Monoklonálna protilátka inhibujúca zachytávanie krvotvorných kmeňových buniek a hybridóm | |
JPH01320996A (ja) | 新規リンフォトキシン及びその製造法 |