EA007465B1 - Процедура получения клеточных линий в безбелковых средах и клеточные линии, полученные этим способом - Google Patents

Процедура получения клеточных линий в безбелковых средах и клеточные линии, полученные этим способом Download PDF

Info

Publication number
EA007465B1
EA007465B1 EA200500695A EA200500695A EA007465B1 EA 007465 B1 EA007465 B1 EA 007465B1 EA 200500695 A EA200500695 A EA 200500695A EA 200500695 A EA200500695 A EA 200500695A EA 007465 B1 EA007465 B1 EA 007465B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
protein
cells
concentration
cell line
protein concentration
Prior art date
Application number
EA200500695A
Other languages
English (en)
Other versions
EA200500695A1 (ru
Inventor
Роландо Перес Родригес
Витльоч Адольфо Кастильо
Сарасола Свьета Виторес
Тамми Боджано АЕ
Луис Рохас Дель Кальво
Original Assignee
Сентро Де Инмунология Молекулар
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Сентро Де Инмунология Молекулар filed Critical Сентро Де Инмунология Молекулар
Publication of EA200500695A1 publication Critical patent/EA200500695A1/ru
Publication of EA007465B1 publication Critical patent/EA007465B1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2803Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
    • C07K16/2809Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily against the T-cell receptor (TcR)-CD3 complex
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2863Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against receptors for growth factors, growth regulators
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2896Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against molecules with a "CD"-designation, not provided for elsewhere
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0693Tumour cells; Cancer cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0693Tumour cells; Cancer cells
    • C12N5/0694Cells of blood, e.g. leukemia cells, myeloma cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/20Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin
    • C07K2317/24Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin containing regions, domains or residues from different species, e.g. chimeric, humanized or veneered
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/90Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
    • C12N2500/95Protein-free medium and culture conditions
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00Genetically modified cells
    • C12N2510/02Cells for production

Abstract

Настоящее изобретение относится к способу получения клонов клеток млекопитающих, адаптированных для роста в бессывороточных и безбелковых средах, где используемая процедура включает двустадийный процесс адаптации к росту в таких условиях. Настоящее изобретение относится к интервалу критических концентраций белка, в котором клетки должны выращиваться, с тем чтобы они сохранили способность выживать в бессывороточных и безбелковых условиях, так что в случае клеток, растущих в таком интервале критических концентраций, дальнейшее снижение концентрации не будет сказываться отрицательно ни на жизнеспособности, ни на времени удвоения клеток. Такой интервал критических концентраций является специфичным для конкретной клеточной линии. Кроме того, в настоящем изобретении описаны клоны клеток млекопитающих, которые сохраняют стабильность в бессывороточных и безбелковых средах в течение по меньшей мере 40 генераций; дополнительно, описанные в настоящем изобретении клоны экспрессируют рекомбинантный продукт. Клоны клеток, описанные в настоящем изобретении, продуцируют гуманизированные анти-EGF-R антитела hR3, гуманизированные анти-CD6 антитела T1hT, химерные анти-CD3 антитела T3Q или их фрагменты.

Description

Настоящее изобретение относится к биотехнологии, конкретно к способу получения стабильных клеточных клонов, адаптированных к бессывороточной и безбелковой среде в ходе двустадийного процесса адаптации.
Предпосылки создания изобретения
С момента начала внедрения методов культивирования клеток млекопитающих ίη νίΐτο выросла потребность в крупномасштабном производстве таких клеток в связи с тем, что многие получаемые при этом продукты имеют диагностическое и терапевтическое применение. Указанные полезные продукты включают моноклональные антитела, гормон роста человека, лимфокины, эритропоэтин, факторы свертывания крови и тканевые активаторы плазминогена.
Использование рекомбинантных моноклональных антител (гМаЬ) при лечении и диагностике ίη νίνο разных заболеваний включает во многих случаях применение для лечения высоких доз. Этот факт подводит к необходимости производства больших количеств необходимых гМаЬ с очень высокой степенью чистоты.
Некоторые рекомбинантные моноклональные антитела, которые имеют потенциал, позволяющий использовать их при лечении и диагностике рака и аутоиммунных заболеваний, экспрессируются в клетках миеломы N80, получаемых в Центре молекулярной иммунологии (Сеп1ег о£ Мо1еси1аг 1ттипо1оду). В патенте США 5891996 описывается получение химерных и гуманизированных антител против рецептора эпидермального фактора роста (ЕСЕ-К), применяемых при диагностике и лечении опухолей, экспрессирующих указанный рецептор. В \У0 97/19111 описываются анти-СЭ6 моноклональные антитела, применяемые для диагностики и лечения псориаза у пациентов. СамПопйо е1 а1. ίη НуЬпйота 9, Νο. 5, 1999 описали анти-СЭ3 моноклональные антитела, названные 10К-Т3а.
Для культивирования в безбелковой среде были разработаны различные методики. Так, в одном конкретном случае, были разработаны полностью безбелковые среды, которые позволяют осуществлять выращивание клеток в безбелковых условиях.
В \У0 97/05240 описывается экспрессия рекомбинантных белков в безбелковых условиях.
В 1Р 2696001 описывается использование безбелковой среды для получения фактора VIII в СНО клетках при добавлении неионного поверхностно-активного вещества или циклодекстрина для повышения продуктивной способности хозяйских клеток. Для повышения эффективности указанных добавок рекомендуется внесение, например, бутирата и лития.
В \У0 96/26266 описывается культивирование клеток в среде, которая включает глутаминсодержащий белковый гидролизат, в котором содержание свободных аминокислот составляет менее 15% от всего веса белка и в котором пептиды имеют вес менее 44 кДа. В качестве культуральной среды для культивирования клеточных культур используют синтетическую минимальную среду в качестве базовой среды, к которой, в дополнение к белковому гидролизату, добавляют, в том числе, фетальную сыворотку теленка, гентамицин и меркаптоэтанол. Использование среды, включающей сыворотку, для получения рекомбинантными методами факторов крови в указанном документе не рассматривается.
В патенте США № 5393668 А описываются специальные синтетические поверхности, которые позволяют растить прикрепляющиеся клетки в условиях безбелковой среды.
Для стимуляции пролиферации клеток СНО клетки, которые осуществляют суперэкспрессию человеческого инсулина, размножают на искусственном субстрате, с которым ковалентно связывается инсулин (Ιΐο е1 а1., 1996 ΡΝΑ8 И.8.Л.. 93:3598-3601).
Кейег е1 а1. (1992, Су1о1есйпо1оду 9:247-253) описывают иммобилизацию Г-СН0 клеток, выращенных в бессывороточной среде с высокой плотностью, на носителях с последующей перфузией через иммобилизованные клетки безбелковой среды в ходе фазы продукции, при которой происходит непрерывное высвобождение белка в клеточный супернатант. Таким образом, клетки могут поддерживаться в течение менее 10 генераций в безбелковой среде.
Способы, успешно применявшиеся ранее для крупномасштабного получения клеточных культур в безбелковых условиях, описаны применительно к клеточным линиям; в частности для νΕΚ0 клеток (\У0 96/15231). Таким образом, клетки могут расти в бессывороточных и безбелковых условиях, начиная с исходной ампулы до крупного технического процесса масштабом до 1200 л.
Процесс адаптации клеток, которые вначале выращивались в условиях, включающих сыворотку, к безбелковой среде представляет собой трудную задачу, требующую обычно много времени; кроме того, неоднократно было показано, что выход экспрессированного белка и производительность рекомбинантных СНО клеток существенно снижаются при адаптации к безбелковым условиям в сравнении с условиями, включающими сыворотку (Ра1ег8оп е1 а1., 1994, Лрр1. М1сгоЬю1. Вю1ес11по1. 40:691-658). Указанное явление представляет собой следствие нестабильности или сниженного роста рекомбинантных клонов в измененных условиях культивирования. Несмотря на использование стабильных исходных клонов, большая часть клеток снова становится клетками со сниженной экспрессией или даже непродуцентами, которые обгоняют в росте клеткипродуценты в ходе процесса продуцирования, за счет чего культура в ферментере в итоге полностью становится культурой непродуцирующих клеток или таких клеток, которые характеризуются низким уровнем экспрессии.
В настоящем изобретении авторы предлагают подход для разработки стабильных клеточных линий,
- 1 007465 адаптированных к бессывороточным и безбелковым средам. В соответствии с этим подходом выделяют несколько клонов в безбелковой среде.
Подробное описание изобретения
Две стадии адаптации клеточных линий к безбелковой среде
Эта процедура включает использование линий клеток млекопитающих, в отношении которых не представляется возможным осуществить процедуру непосредственной адаптации из среды, включающей сыворотку, или из бессывороточной среды к безбелковой среде.
Способ по настоящему изобретению состоит из двустадийного процесса, в ходе которого осуществляется адаптация клеточных линий к безбелковой среде (РЕМ).
Первая стадия, которая рассматривается как некритическая стадия, представляет собой снижение содержания белка без потери жизнеспособности клеток, в ходе которой не отмечается важного для популяции снижения времени удвоения клеток на каждой стадии при изменении концентрации белка. Некритическая стадия обычно имеет место при общей концентрации белка от 5 до 0,5 мг/мл в культуральной среде, и при этом культура демонстрирует практически те же ростовые характеристики, что и в исходной культуральной среде.
Эта первая стадия начинается с уровня жизнеспособности клеточной линии, характеризующейся показателями от 80 до 100%, и клетки растут в культуральных средах при последовательном снижении концентрации белка вплоть до критической концентрации, при которой жизнеспособность клеток падает до 0%. Указанная концентрация белка представляет собой исходную точку для следующей стадии.
Вторая стадия, которая рассматривается как критическая: на данной стадии происходит снижение жизнеспособности клеток и показателя времени удвоения клеток, а также может потребоваться больше времени для их адаптации при переходе с одной стадии на другую стадию, определяемой по концентрации белка. Существуют критические концентрации белка в культуральной среде, которую невозможно миновать в ходе адаптационного процесса. Указанные критические концентрации белка являются специфичными для каждой рекомбинантной клеточной линии, но обычно они ниже 0,6 мг/мл. Как только клетки восстанавливают свои исходные показатели жизнеспособности и скорости роста при данных критических концентрациях белка, создается возможность для их субкультивирования в следующих условиях со сниженной концентрацией белка.
Когда критическая концентрация белка имеет фиксированное значение, ближайшая повышенная концентрация белка, которая поддерживает рост клеток, рассматривается как предкритическая концентрация белка. Начиная с предкритической концентрации белка, указанную концентрацию медленно снижают до восстановления клетками исходных показателей жизнеспособности и скорости роста.
Выбранное сочетание стадий, применяемое для снижения концентрации белка на критической стадии, будет определять общее время адаптации на данной стадии, и скорость адаптации (Уадапт.) вычисляется по следующему уравнению:
Уядяпт = Δ Концентрация белка/ΔΤ.
Однако это сочетание стадий не будет влиять на время, необходимое для адаптации к каждой из взятых концентраций белка, включая критические концентрации. Для определения конечной точки некритической стадии и критических концентраций белка необходимо осуществлять постадийную адаптацию, при проведении серийного разбавления клеточной культуры желательной безбелковой средой, при котором каждый раз концентрацию белка снижают в 2 раза (см. таблицу). Указанное снижение может быть осуществлено путем снижения содержания сыворотки или добавки основной среды с разными уровнями некоторых обогащенных белками заменителей сыворотки.
Постадийное снижение концентрации белка для определения критических концентраций, начиная с использования культуральной среды, содержащей в качестве добавок 5 мг/мл белка (эквивалентно 10% фетальной сыворотки теленка)
Пояснение к таблице
ЕВ8 - фетальная сыворотка теленка
РЕМ - безбелковая среда
8СМ - среда, содержащая сыворотку * Общее содержание белка в фетальной сыворотке теленка принимается равным примерно 50 мг/мл
- 2 007465
Перед началом процедуры адаптации клетки поддерживают в Т-бутылях при показателях жизнеспособности не ниже 80% с использованием стандартной среды, обычно используемой для культивирования клеток.
Процесс адаптации осуществляют постадийно, выполняя описанные ниже стадии.
ί. Высеивают в 3 ячейки в шестиячеечном планшете для культивирования клеток рекомбинантную клеточную линию с использованием стандартной культуральной среды для культивирования клеток (с исходной концентрацией белка). Плотность клеток должна составлять 1-5 х 105 клеток/мл. Через 48 ч половину супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, что приводит к достижению конечной концентрации белка, составляющей 50% от ее значения в исходных условиях.
ίί. Каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 50% от исходных условий.
ίίί. Клетки растят до слияния при данной белковой концентрации.
ίν. Клетки со стадии ίίί высеивают по меньшей мере в 3 ячейки с плотностью в диапазоне 1-5 х 105 клеток/мл в культуральной среде, в которой содержание белка составляет 50% от его концентрации в исходных условиях. Через 48 ч половину супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, что приводит к достижению конечной концентрации белка, составляющей 50% от ее значения в предыдущих условиях.
ν. Каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 50% от исходных условий.
νί. Клетки растят до слияния при данной белковой концентрации.
νίί. Стадии (ίν)-(νί) повторяют, при этом в ходе каждого цикла концентрацию белка снижают до 50% относительно концентрации в предыдущем цикле. Процедуру повторяют до достижения концентрации белка, которая вызывает гибель клеток.
νίίί. Клетки из клеточной культуры с показателями жизнеспособности 80% или выше высеивают с использованием предкритической концентрации белка по меньшей мере в 3 ячейки с плотностью в диапазоне 2-6 х 105 клеток/мл. Клетки растят при предкритической концентрации белка и через 48 ч 25% супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, с достижением при этом конечной концентрации белка, которая составляет 75% от предкритической концентрации белка.
ΐχ. Каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 75% от предкритической концентрации белка.
х. Клетки растят до слияния при данной белковой концентрации.
χί. Клетки со стадии (х) высеивают по меньшей мере в 3 ячейки с плотностью 2-6 х 105 клеток/мл в культуральной среде, в которой содержание белка составляет 75% от предкритической концентрации белка. Через 48 ч 25% супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, с достижением при этом конечной концентрации белка, которая составляет 75% от концентрации на предыдущей стадии.
χίί. Каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 75% от концентрации на стадии (х).
χίίί. Клетки растят до слияния при данной белковой концентрации.
χίν. Стадии (χί)-(χίίί) повторяют, при этом в ходе каждого цикла концентрацию белка снижают до 75% относительно концентрации в предыдущем цикле и далее процедуру повторяют до достижения концентрации белка, которая не вызывает потери жизнеспособности клеток и снижения времени удвоения клеток в популяции. Когда клетки переносят в среду со сниженной концентрацией белка и они способны расти без потери жизнеспособности клеток и снижения времени удвоения клеток в популяции перед первым субкультивированием, авторы считают, что такие клетки достигли снова некритической стадии, и высеивают их непосредственно в безбелковой среде (концентрация белка 0 мг/мл).
В процедуре осуществления настоящего изобретения исходная культуральная среда содержит фетальную сыворотку теленка в количестве от 5 до 10%.
Линия клеток млекопитающих, адаптированная для роста в безбелковой среде, представляет собой миеломную линию, в частности N80 клетки.
Настоящее изобретение также может быть полезно в том случае, когда используют линию клеток N80, трансфицированных полипептидом или рекомбинантным белком, в частности, когда осуществляется трансфекция последовательностью, кодирующей рекомбинантное антитело или его фрагменты. Описываются также линии клеток млекопитающих, модифицированные в соответствии с процедурой по настоящему изобретению, которые растут в безбелковой среде.
Другой вариант настоящего изобретения относится к любой линии клеток млекопитающих, экспрессирующих гуманизированные или химерные антитела, выбранные из группы, состоящей из антител против рецептора ЕСР 11Р3. анти-СЭ6 Т1ЙТ, анти-СЭЗ Т3С или их фрагментов, растущих в безбелковой среде, так что эти антитела могут секретироваться этими клеточными линиями.
Клеточные линии, получаемые способом согласно изобретению, поддерживают стабильный рост в безбелковой среде в течение по меньшей мере 40 генераций.
Примеры
Пример 1. Адаптация рекомбинантной клеточной линии 11Р3 к безбелковой среде.
Рекомбинантную клеточную линию 11Р3 получают путем трансфекции миеломной клеточной линии
- 3 007465
N80 векторными конструкциями для достижения экспрессии легкой и тяжелой цепей гуманизированного моноклонального антитела против рецептора человеческого БОЕ 11Κ3. Адаптацию этой клеточной линии к безбелковой среде осуществляют по описанной ранее процедуре, в процессе двустадийного снижения содержания белка в среде.
Указанные клетки вначале культивируют в среде ΚΡΜΙ-1640 с добавкой 10% БВ8. Замещение БВ8 осуществляют за счет внесения обогащенной белком добавки МЦпйоша N8 (Воейппдег Μαηΐιοίιη) к безбелковой среде ΚΡΜΙ-1640, когда концентрация белка достигнет 0,15 мг/мл. Снижение содержания белка в исходной среде осуществляют путем последовательных разбавлений с использованием безбелковой среды РБНМ-ΙΙ (О1Ьео).
На фиг. 1 и 2, соответственно, показаны результаты вычисления критических концентраций и скоростей адаптации Уадапт..
Пример 2. Адаптация рекомбинантной клеточной линии Т111Т к безбелковой среде.
Рекомбинантную клеточную линию Т111Т получают путем трансфекции миеломной клеточной линии N80 векторными конструкциями для достижения экспрессии легкой и тяжелой цепей гуманизированного по методу Т-супрессии эпитопа моноклональными антителами против человеческого СЭ6.
Адаптацию этой клеточной линии к безбелковой среде осуществляют по процедуре, описанной в п.2, в ходе двустадийного процесса снижения содержания белка в среде.
Указанные клетки культивируют в среде ΚΡΜΙ-1640 с добавкой 10% БВ8. Снижение содержания белка в исходной среде осуществляют путем последовательных разбавлений с использованием безбелковой среды РБНМ-ΙΙ (О1Ьео).
Результаты вычисления критических концентраций и скоростей адаптации Уадапт. показаны на фиг. 3 и 4, соответственно.
Пример 3. Адаптация рекомбинантной клеточной линии Т30 к безбелковой среде.
Рекомбинантную клеточную линию Т30 получают путем трансфекции миеломной клеточной линии N80 векторными конструкциями для достижения экспрессии легкой и тяжелой цепей гуманизированного моноклонального антитела Т30. который распознает рецептор СЭ3 на человеческих лимфоцитах.
Адаптацию этой клеточной линии к безбелковой среде проводят по процедуре, описанной в п.2, в ходе двустадийного процесса снижения содержания белка в среде.
Указанные клетки культивируют в среде ΚΡΜΙ-1640 с добавкой 10% БВ8. Снижение содержания белка в исходной среде осуществляют путем последовательных разбавлений с использованием безбелковой среды ΡΕΗΜ-ΙΙ (О1Ьео).
Результаты вычисления критических концентраций и скоростей адаптации Уадапт. показаны на фиг. 5 и 6, соответственно.
Краткое описание чертежей
Фиг. 1. Корреляция времени, необходимого для адаптации 11-Κ3 клеток к каждой из исследуемых концентраций (до восстановления жизнеспособности и показателя времени удвоения клеток), и натурального логарифма величины, обратной концентрации белка. Значения критических концентраций для линии клеток 11-Κ3 составляют 0,32 и 0,11 мг/мл применительно к общей концентрации белка.
Фиг. 2. Корреляция суммарного периода времени от момента начала процесса адаптации по используемой процедуре и натурального логарифма величины, обратной концентрации белка, для линии клеток 11-Κ3. Показатели скоростей адаптации для линии клеток Η-Κ3 составляют 0,0053 мг/день.
Фиг. 3. Корреляция времени, необходимого для адаптации Т111Т клеток к каждой из исследуемых концентраций (до восстановления жизнеспособности и показателя времени удвоения клеток), и натурального логарифма величины, обратной концентрации белка. Значения критических концентраций для линии клеток Т111Т составляют 0,12 и 0,01 мг/мл применительно к общей концентрации белка.
Фиг. 4. Корреляция суммарного периода времени от момента начала процесса адаптации по используемой процедуре и натурального логарифма величины, обратной концентрации белка, для линии клеток Т1Ы. Показатели скоростей адаптации для линии клеток Т1Н1 составляют 0,0014 мг/день.
Фиг. 5. Корреляция времени, необходимого для адаптации Т30 клеток к каждой из исследуемых концентраций (до восстановления жизнеспособности и показателя времени удвоения клеток), и натурального логарифма величины, обратной концентрации белка. Значения критических концентраций для линии клеток Т30 составляют 0,63 мг/мл применительно к общей концентрации белка.
Фиг. 6. Корреляция суммарного периода времени от момента начала процесса адаптации по используемой процедуре и натурального логарифма величины, обратной концентрации белка, для линии клеток Т30. Показатели скоростей адаптации для линии клеток Т30 составляют 0,0172 мг/день.

Claims (20)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Способ получения линии клеток млекопитающих, адаптированных к росту в бессывороточных и безбелковых средах, который включает две стадии:
    Ι) первую стадию, в ходе которой показатели жизнеспособности клеток в клеточной линии состав
    - 4 007465 ляют от 80 до 100% и клетки выращивают в культуральных средах, в которых последовательно снижают содержание белка до критической концентрации белка, при которой жизнеспособность клеток падает до 0%;
    II) вторую стадию, в ходе которой, на основе уже определенной критической концентрации белка, поддерживают предкритическую концентрацию как такую концентрацию белка, при которой клеточный рост возможен, фиксируя ее как исходную точку для дальнейшего медленного снижения концентрации белка до момента, когда клеточная культура достигнет исходных показателей жизнеспособности клеток и времени удвоения клеток в популяции.
  2. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что первая стадия состоит из следующих стадий:
    ί) высеивают в 3 ячейки в шестиячеечном планшете для культивирования клеток рекомбинантную клеточную линию с использованием стандартной культуральной среды для культивирования клеток (с исходной концентрацией белка); плотность клеток должна составлять 1-5 х 105 клеток/мл; через 48 ч половину супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, что приводит к достижению конечной концентрации белка, составляющей 50% от ее значения в исходных условиях;
    ίί) каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 50% от исходных условий;
    ϊϊΐ) клетки растят до слияния при данной белковой концентрации;
    ίν) клетки со стадии ш высеивают по меньшей мере в 3 ячейки с плотностью в диапазоне 1-5 х 105 клеток/мл в культуральной среде, в которой содержание белка составляет 50% от его концентрации в исходных условиях; через 48 ч половину супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, что приводит к достижению конечной концентрации белка, составляющей 50% от ее предыдущего значения;
    ν) каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 50% от ее предыдущего значения;
    νί) клетки растят до слияния при данной белковой концентрации;
    νίί) стадии (ίν)-(νί) повторяют, при этом в ходе каждого цикла концентрацию белка снижают до 50% относительно концентрации в предыдущем цикле; процедуру повторяют до достижения концентрации белка, которая вызывает гибель клеток.
  3. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что вторая стадия состоит из следующих стадий:
    νίίί) клетки из клеточной культуры с показателями жизнеспособности 80% или выше высеивают с использованием предкритической концентрации белка по меньшей мере в 3 ячейки с плотностью в диапазоне 2-6 х 105 клеток/мл; клетки растят при предкритической концентрации белка и через 48 ч 25% супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, с достижением при этом конечной концентрации белка, которая составляет 75% от предкритической концентрации белка;
    ίχ) каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 75% от предкритической концентрации белка;
    х) клетки растят до слияния при данной белковой концентрации;
    χί) клетки со стадии (х) высеивают по меньшей мере в 3 ячейки с плотностью 2-6 х 105 клеток/мл в культуральной среде, в которой содержание белка составляет 75% от предкритической концентрации белка; через 48 ч 25% супернатанта заменяют свежей безбелковой средой, с достижением при этом конечной концентрации белка, которая составляет 75% от концентрации на предыдущей стадии;
    χίί) каждые 48 ч супернатант полностью заменяют свежей культуральной средой, в которой концентрация белка составляет 75% от концентрации на стадии (х);
    χίίί) клетки растят до слияния при данной белковой концентрации;
    χίν) стадии (χί)-(χίίί) повторяют, при этом в ходе каждого цикла концентрацию белка снижают до 75% относительно концентрации в предыдущем цикле и далее процедуру повторяют до достижения концентрации белка, которая не вызывает потери жизнеспособности клеток и снижения времени удвоения клеток в популяции; когда клетки переносят в среду со сниженной концентрацией белка и они способны расти без потери жизнеспособности клеток и без снижения времени удвоения клеток в популяции перед первым субкультивированием, авторы считают, что такие клетки достигли снова некритической стадии, и высеивают их непосредственно в безбелковой среде (концентрация белка 0 мг/мл).
  4. 4. Способ по пп.1-3, где бессывороточная и безбелковая среда, в которую клетки первоначально высеивают, включает от 5 до 10% фетальной сыворотки теленка.
  5. 5. Способ по пп.1-4, где линия клеток млекопитающих, адаптированных для роста в бессывороточных и безбелковых средах, представляет собой миеломную линию.
  6. 6. Способ по п.5, где миеломная линия представляет собой клеточную линию N80.
  7. 7. Способ по п.6, где указанная клеточная линия N80 содержит последовательность, кодирующую рекомбинантный полипептид или рекомбинантный белок.
  8. 8. Способ по п.7, где последовательность, кодирующая рекомбинантный полипептид или рекомбинантный белок, кодирует рекомбинантное антитело или его фрагмент.
  9. 9. Линия клеток млекопитающих, полученная способом по пп.1-8, где указанная клеточная линия адаптирована для роста в бессывороточных и безбелковых средах.
  10. 10. Линия клеток млекопитающих по п.9, где указанная линия клеток млекопитающих представляет
    - 5 007465 собой миеломную линию.
  11. 11. Линия клеток млекопитающих по п.10, где указанная клеточная линия представляет собой клеточную линию N80.
  12. 12. Линия клеток млекопитающих по п.11, где клеточная линия N80 содержит последовательность, кодирующую рекомбинантный полипептид или рекомбинантный белок.
  13. 13. Линия клеток млекопитающих по п.12, где последовательность, кодирующая рекомбинантный полипептид или рекомбинантный белок, кодирует рекомбинантное антитело или его фрагмент.
  14. 14. Линия клеток млекопитающих по п.13, где последовательность кодирует гуманизированное рекомбинантное анти-ΕΘΕ-Κ ΙτΚ3 антитело или его фрагмент.
  15. 15. Линия клеток млекопитающих по п.13, где последовательность кодирует гуманизированное рекомбинантное анти-СЭ6 Т1НТ антитело или его фрагмент.
  16. 16. Линия клеток млекопитающих по п.13, где последовательность кодирует химерное рекомбинантное анти-СЭ3 Т3^ антитело или его фрагмент.
  17. 17. Применение способа по пп.1-8 для получения линии клеток млекопитающих, адаптированных для роста в бессывороточной и безбелковой среде.
  18. 18. Гуманизированное моноклональное антитело к ΕΘΕ-Κ ΙτΚ3 или его фрагменты, секретируемое клетками, полученными способом по пп.1-8.
  19. 19. Гуманизированное моноклональное антитело против антигена СЭ6 Т1НТ или его фрагменты, секретируемое клетками, полученными способом по пп.1-8.
  20. 20. Химерное моноклональное антитело против антигена СЭ3 Т3^ или его фрагменты, секретируемое клетками, полученными способом по пп.1-8.
EA200500695A 2002-10-23 2003-10-22 Процедура получения клеточных линий в безбелковых средах и клеточные линии, полученные этим способом EA007465B1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CU20020239A CU23097A1 (es) 2002-10-23 2002-10-23 Método para la obtención de líneas celulares en medio libre de proteína y líneas celulares obtenidas por este método
PCT/CU2003/000012 WO2004038010A1 (es) 2002-10-23 2003-10-22 Método para la obtención de líneas celulares en medio libre de proteína y líneas celulares obtenidas por este método

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA200500695A1 EA200500695A1 (ru) 2005-10-27
EA007465B1 true EA007465B1 (ru) 2006-10-27

Family

ID=40134843

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA200500695A EA007465B1 (ru) 2002-10-23 2003-10-22 Процедура получения клеточных линий в безбелковых средах и клеточные линии, полученные этим способом

Country Status (27)

Country Link
US (2) US20060036082A1 (ru)
EP (2) EP2363418B1 (ru)
JP (1) JP4674087B2 (ru)
KR (1) KR101186048B1 (ru)
CN (1) CN1714147B (ru)
AR (1) AR041645A1 (ru)
AT (1) ATE502103T1 (ru)
AU (1) AU2003273727B2 (ru)
CA (1) CA2503315C (ru)
CU (1) CU23097A1 (ru)
DE (1) DE60336415D1 (ru)
DK (1) DK1564285T3 (ru)
EA (1) EA007465B1 (ru)
EC (1) ECSP055740A (ru)
ES (2) ES2624279T3 (ru)
GE (1) GEP20084444B (ru)
HK (1) HK1084414A1 (ru)
HR (1) HRP20050760A2 (ru)
LT (1) LT5354B (ru)
LV (1) LV13361B (ru)
MY (1) MY144088A (ru)
NZ (1) NZ540171A (ru)
PE (1) PE20040552A1 (ru)
PT (1) PT1564285E (ru)
TN (1) TNSN05116A1 (ru)
UY (1) UY28037A1 (ru)
WO (1) WO2004038010A1 (ru)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104673754B (zh) * 2015-02-14 2018-03-02 百泰生物药业有限公司 重组骨髓瘤细胞克隆的筛选方法及由此获得的抗体分子
CN104651314B (zh) * 2015-02-14 2018-06-19 百泰生物药业有限公司 获得高产稳定表达细胞克隆的方法及由此获得的抗体分子

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2986484A (en) * 1983-06-27 1985-01-03 Monash University Leptospira strains grown in protein free medium
US6100061A (en) * 1997-06-20 2000-08-08 Immuno Aktiengesellschaft Recombinant cell clone having increased stability in serum- and protein-free medium and a method of recovering the stable cell clone and the production of recombinant proteins by using a stable cell clone

Family Cites Families (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3694263A (en) * 1970-10-23 1972-09-26 Joseph J Korn Sr Swimming pool cleaning methods and apparatus therefor
CU22545A1 (es) * 1994-11-18 1999-03-31 Centro Inmunologia Molecular Obtención de un anticuerpo quimérico y humanizado contra el receptor del factor de crecimiento epidérmico para uso diagnóstico y terapéutico
US3886616A (en) * 1972-12-06 1975-06-03 Fay A Hayes Hand propelled swimming pool cleaner
US4275474A (en) * 1979-04-30 1981-06-30 Woodard Randle C Vacuum head for swimming pool cleaning system
US4240174A (en) * 1979-07-30 1980-12-23 Scott Jeffrey L Self-contained mobile pool cleaning apparatus
US4430214A (en) * 1982-09-15 1984-02-07 Baker Marvin E Strainer mill for swimming pool pump intake
US4558479A (en) * 1984-01-26 1985-12-17 Alopex Industries, Inc. Pool cleaner
US4683599A (en) * 1984-03-30 1987-08-04 Fahet Nv Automatic pool cleaner fitting
US4581075A (en) * 1985-03-15 1986-04-08 Maxi-Sweep, Inc. Self-propelled water borne pool cleaner
AU6291090A (en) 1989-09-29 1991-04-28 Atomic Energy Of Canada Limited Infrared-based gas detector
JP2696001B2 (ja) 1991-04-15 1998-01-14 財団法人化学及血清療法研究所 組換え蛋白質産生用培地
EP0531562A1 (de) 1991-09-11 1993-03-17 Doerr, Hans-Wilhelm, Prof. Dr. med. Kultivierung von Säugetierzellen
PT784684E (pt) * 1994-09-16 2007-11-23 Cancer Res Fund Of Contra Cost ''péptidos recontinantes derivados do anticorpo mc3 anti-ba46, métodos para a sua utilização e métodos de hmnanização de péptidos do anticorpo''
JP3158157B2 (ja) 1994-11-10 2001-04-23 バクスター・アクチエンゲゼルシャフト 無蛋白培養における生物製剤の製造法
AU703484B2 (en) 1995-02-23 1999-03-25 Quest International Services B.V. Peptides for tissue and cell culture media
AUPN442295A0 (en) 1995-07-26 1995-08-17 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Regulated autocrine growth of mammalian cells
CU22584A1 (es) 1995-11-17 1999-11-03 Centro Inmunologia Molecular Composiciones farmacéuticas que contienen un anticuerpo monoclonal que reconoce el antígeno de diferenciación leucocitario humano cd6 y sus usos para el diagnóstico y tratamiento de la psoriasis

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2986484A (en) * 1983-06-27 1985-01-03 Monash University Leptospira strains grown in protein free medium
US6100061A (en) * 1997-06-20 2000-08-08 Immuno Aktiengesellschaft Recombinant cell clone having increased stability in serum- and protein-free medium and a method of recovering the stable cell clone and the production of recombinant proteins by using a stable cell clone

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Hybridoma-SFM: Serum-Free and Protein-Free Media for Hybridoma Culture. Data sheet from GIBCO INVITRON CORPORATION, August 2002 [retrieved on 8 January 2003 (08.01.03)]. Retrieved from the Internet: <URL: http://invitrogen.com/content/sfs/manuals/3913.pdf, the whole data sheet. *

Also Published As

Publication number Publication date
WO2004038010A1 (es) 2004-05-06
CA2503315A1 (en) 2004-05-06
GEP20084444B (en) 2008-08-10
HRP20050760A2 (en) 2006-08-31
UY28037A1 (es) 2004-04-30
ECSP055740A (es) 2005-09-20
PE20040552A1 (es) 2004-10-26
MY144088A (en) 2011-08-15
PT1564285E (pt) 2011-04-20
EP1564285B1 (en) 2011-03-16
KR20050088403A (ko) 2005-09-06
LT2005053A (en) 2006-04-25
JP4674087B2 (ja) 2011-04-20
DK1564285T3 (da) 2011-05-16
DE60336415D1 (de) 2011-04-28
ATE502103T1 (de) 2011-04-15
EP2363418A2 (en) 2011-09-07
EP2363418B1 (en) 2017-02-08
LV13361B (en) 2006-02-20
US20100197011A1 (en) 2010-08-05
KR101186048B1 (ko) 2012-09-25
CA2503315C (en) 2014-02-18
EA200500695A1 (ru) 2005-10-27
LT5354B (lt) 2006-07-25
BR0315565A (pt) 2005-08-23
CN1714147A (zh) 2005-12-28
EP2363418A3 (en) 2011-11-16
BR0315565B1 (pt) 2022-01-25
US20060036082A1 (en) 2006-02-16
HK1084414A1 (en) 2006-07-28
TNSN05116A1 (en) 2007-05-14
CN1714147B (zh) 2011-01-12
AU2003273727A1 (en) 2004-05-13
EP1564285A1 (en) 2005-08-17
CU23097A1 (es) 2005-11-18
AU2003273727B2 (en) 2008-04-03
ES2360049T3 (es) 2011-05-31
JP2006503879A (ja) 2006-02-02
AR041645A1 (es) 2005-05-26
ES2624279T3 (es) 2017-07-13
NZ540171A (en) 2008-04-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0043718B1 (en) Improvements in or relating to cell lines
KR101591671B1 (ko) 항체의 이질성을 감소시키는 방법 및 그 항체의 제조방법
RU2592680C2 (ru) Способ снижения накопления лактата при культивировании и способ получения антитела
JP2017532046A (ja) タンパク質産物の等電性プロファイルをシフトさせる方法およびその使用
Borrebaeck In vitro immunization for production of murine and human monoclonal antibodies: present status
JP2017516484A (ja) タンパク質生産のための細胞培養工程
JPS63503273A (ja) 細胞培養による蛋白質の製造
JP2003506077A5 (ru)
JPH04228066A (ja) 外来遺伝子発現用培養細胞
EA007465B1 (ru) Процедура получения клеточных линий в безбелковых средах и клеточные линии, полученные этим способом
CN101451151A (zh) 一种利用肿瘤细胞生产生物活性产物的方法
CN103539859B (zh) 用于制备避孕疫苗的自组装多肽纳米
Damerdji et al. Utilization of whey fractions as a substitute for fetal calf serum in culture media
EP0251107A2 (en) Improved fusion products
EP0251106A2 (en) Improved fusion method
JPS60204727A (ja) 抗ヒトv型コラ−ゲン抗体
BRPI0315565B1 (pt) Método para se obter uma linhagem celular de mieloma nso que contém uma sequência que codifica um polipeptídeo recombinante ou uma proteína recombinante adaptada para crescer em meio livre de soro e proteína, e, uso do método
CN117986356A (zh) 一种制备抗体的方法
JPS60137284A (ja) 抗体産生細胞の取得方法、及びそれを用いた抗体の製造方法
JPS61271987A (ja) ウロキナ−ゼ前駆体の製造方法
JPH089968A (ja) n−酪酸を含有することを特徴とする動物細胞培養用培地及び培養方法
JPS62285780A (ja) 動物細胞増殖用組成物および増殖方法
JPH05123167A (ja) 無血清培養用培地
JPH03160989A (ja) ヒト血漿性フィブロネクチン産生細胞株と生産法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ MD TM

MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): TJ