ES2267593T3 - Anticuerpos anti-april y celulas hibridomas. - Google Patents
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Abstract
Anticuerpo monoclonal que es el anticuerpo monoclonal 3C6.4.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1347; o el anticuerpo monoclonal 5E8.7.4 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1344; o el anticuerpo monoclonal 5E11.1.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso
Description
Anticuerpos anti-APRIL y células
hibridomas.
La presente invención se refiere en general a
anticuerpos que modulan la actividad del factor de necrosis tumoral
(TNF) y de las moléculas relacionadas con el receptor del TNF
(TNFR), y más específicamente, a los miembros de las familias del
TNF y TNFR denominados APRIL. La presente invención también se
refiere a procedimientos para la diagnosis y/o tratamiento in
vitro, in situ y/o in vivo de células de mamífero o condiciones
patológicas asociadas con TALL-1, APRIL, TACI, o
BCMA, usando una o más de las moléculas agonistas o
antagonistas.
Varias moléculas, tales como el factor de
necrosis tumoral-\alpha
("TNF-\alpha"), el factor de necrosis
tumoral-\beta ("TNF-\beta"
o "linfotoxina-\alpha"), la
linfotoxina-\beta
("LT-\beta"), el ligando de CD30, el ligando
de CD27, el ligando de CD40, el ligando de OX-40, el
ligando de 4-1BB, el ligando de
Apo-1 (también denominado como ligando de Fas o
ligando de CD95), el ligando de Apo-2 (también
denominado TRAIL), el ligando de Apo-3 (también
denominado TWEAK), la osteoprotegerina (OPG), el APRIL, el ligando
de RANK (también denominado TRANCE), y el TALL-1
(también denominado BlyS, BAFF o THANK), se han identificado como
miembros de la familia de citocinas del factor de necrosis tumoral
("TNF") [Ver, por ejemplo, Gruss y Dower, Blood,
85:3378-3404 (1995); Pitti et al., J.
Biol. Chem., 271:12687-12690 (1996); Wiley et
al., Immunity, 3:673-682 (1995);
Browning et al., Cell, 72:847-856
(1993); Armitage et al., Nature,
357:80-82 (1992), la patente internacional WO
97/01633 publicada el 16 de enero de 1997; la patente internacional
WO 97/25428 publicada el 17 de julio de 1997; Marsters et
al., Curr. Biol., 8:525-528 (1998);
Simonet et al., Cell, 89:309-319
(1997); Chicheportiche et al., Biol. Chem.,
272:32401-32410 (1997); Hahne et al., J.
Exp. Med., 188:1185-1190 (1998); la patente
internacional WO98/28426 publicada el 2 de julio de 1998; la patente
internacional WO 98/46751 publicada el 22 de octubre de 1998; la
patente internacional WO/98/18921 publicada el 7 de mayo de 1998;
Moore et al., Science, 285:260-263
(1999); Shu et al., J. Leukocyte Biol., 65:680 (1999);
Schneider et al., J. Exp. Med.,
189:1747-1756 (1999); Mukhopadhyay et al.,
J. Biol. Chem., 274:15978-15981 (1999)].
Entre estas moléculas, se ha descrito que
TNF-\alpha, TNF-\beta, el
ligando de CD30, el ligando de 4-1BB, el ligando de
Apo-1, el ligando de Apo-2
(Apo2L/TRAIL) y el ligando de Apo-3 (TWEAK) están
implicadas en la muerte celular apoptótica. Se ha publicado que
tanto el TNF-\alpha como el
TNF-\beta inducen la muerte apoptótica en células
tumorales susceptibles [Schmid et al., Proc. Natl. Acad.
Sci., 83:1881 (1986); Dealtry et al., Eur. J.
Immunol., 17:689
(1987)].
(1987)].
Varias moléculas en la familia TNF también
parecen tener una función o funciones en el funcionamiento o
desarrollo del sistema inmune [Gruss et al., Blood,
85:3378 (1995)]. Zheng et al. han descrito que el
TNF-\alpha está implicado en la apoptosis
posterior a la estimulación de células T
CD8-positivas [Zheng et al., Nature,
377:348-351 (1995)]. Otros investigadores han
descrito que el ligando de CD30 podría estar implicado en la
supresión de las células T autoreactivas en el timo [Amakawa et
al., Cold Spring Harbor Laboratory Symposium on Programmed
Cell Death, resumen nº 10, (1995)]. El ligando de CD40 activa
muchas funciones de las células B, incluyendo la proliferación, la
secreción de inmunoglobulina, y la supervivencia [Renshaw et
al., J. Exp. Med., 180:1889 (1994)]. Se ha descrito que
otra citocina recientemente identificada de la familia del TNF, la
TALL-1 (BlyS), en ciertas condiciones, induce la
proliferación de las células B y la secreción de inmunoglobulinas.
[Moore et al., ver más arriba; Schneider et al., ver
más arriba; Mackay et al., J. Exp. Med., 190:1697
(1999)].
Se han asociado mutaciones en los genes del
receptor o ligando de Fas/Apo-1 de ratón
(denominados respectivamente lpr y gld) con ciertos trastornos
autoinmunes, indicando que el ligando de Apo-1
podría desempeñar un papel en la regulación de la supresión clonal
de los linfocitos autoreactivos en la periferia [Krammer et
al., Curr. Op. Immunol., 6:279-289
(1994); Nagata et al., Science,
267:1449-1456 (1995)]. También indica que el
ligando de Apo-1 induce la apoptosis posterior a la
estimulación en linfocitos T CD4-positivos y en
linfocitos B, y podría estar implicado en la eliminación de los
linfocitos activados cuando ya no se necesita su función [Krammer
et al., ver más arriba; Nagata et al., ver más
arriba]. Se ha descrito que los anticuerpos monoclonales de ratón
agonistas que se unen específicamente al receptor de
Apo-1 muestran una actividad para matar células que
es comparable o similar a la del TNF-\alpha
[Yonehara et al., J. Exp. Med.,
169:1747-1756 (1989)].
La inducción de varias respuestas celulares
mediadas por dichas citocinas de la familia del TNF se cree que se
inicia mediante su unión a receptores celulares específicos.
Previamente, se identificaron dos receptores distintos del TNF, de
aproximadamente 55-kDa (TNFR1) y
75-kDa (TNFR2) [Hohman et al., J. Biol.
Chem., 264:14927-14934 (1989); Brockhaus et
al., Proc. Natl. Acad. Sci., 87:3127-3131
(1990); EP 417.563, publicada el 20 de marzo de 1991; Loetscher
et al., Cell, 61:351 (1990); Schall et al.,
Cell, 61:361 (1990); Smith et al., Science,
248:1019-1023 (1990); Lewis et al., Proc.
Natl. Acad. Sci., 88:2830-2834 (1991); Goodwin
et al., Mol. Cell. Biol., 11:3020-3026
(1991)]. Se observó que dichos TNFRs compartían la estructura típica
de los receptores de superficie celular, incluyendo las regiones
extracelular, transmembrana e intracelular. Se observó también que
las regiones extracelulares de ambos receptores también se
encontraban de forma natural como proteínas solubles de unión al
TNF [Nophar, Y. et al., EMBO J., 9:3269 (1990); y
Kohno, T. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.,
87:8331 (1990); Hale et al., J. Cell. Biochem.
Supplement 15F, 1991, p. 113 (P424)].
La región extracelular de los TNFRs del tipo 1 y
tipo 2 (TNFR1 y TNFR2) contiene un patrón de secuencia de
aminoácidos repetitivos de cuatro dominios ricos en cisteínas (CRD)
designados del 1 al 4, comenzando a partir del extremo
NH_{2}-terminal. [Schall et al., ver más
arriba; Loetscher et al., ver más arriba; Smith et
al., ver más arriba; Nophar et al., ver más arriba; Kohno
et al., ver más arriba; Banner et al., Cell,
73:431-435 (1993)]. Existe un patrón repetitivo de
CDR similar en otras proteínas de la superficie celular, incluyendo
el receptor P75 del factor de crecimiento del nervio (NGFR) [Johnson
et al., Cell, 47:545 (1986); Radeke et al.,
Nature, 325:593 (1987)], el antígeno CD40 de la célula B
[Stamenkovic et al., EMBO J., 8:1403 (1989)], el
antígeno OX40 de la célula T [Mallet et al., EMBO J.,
9:1063 (1990)] y el antígeno Fas [Yonehara et al., ver más
arriba, e Itoh et al., Cell,
66:233-243 (1991)]. Los CDR también se hallan en las
proteínas solubles T2 de tipo TNFR (sTNFR) de los poxvirus de
Shope y mixoma [Upton et al., Virology,
160:20-29 (1987); Smith et al., Biochem.
Biophys. Res. Commun., 176:335 (1991); Upton et al.,
Virology, 184:370 (1991)]. El alineamiento óptimo de estas
secuencias indica que las posiciones de los residuos cisteína están
bien conservadas. Estos receptores algunas veces se denominan de
forma conjunta como miembros de la superfamilia del receptor de
TNF/NGF.
Los ligandos de la familia del TNF identificados
hasta la fecha, con excepción de la
linfotoxina-\alpha, son proteínas transmembrana
del tipo II, cuyo extremo C-terminal es
extracelular. Por contra, la mayoría de los receptores en la
familia del receptor del TNF (TNFR) identificados hasta la fecha son
proteínas transmembrana del tipo I. No obstante, en ambas familias
del ligando y del receptor del TNF, la homología identificada entre
los miembros de la familia se ha observado principalmente en el
dominio extracelular ("ECD"). Varias de las citocinas de la
familia del TNF, incluyendo el TNF-\alpha, el
ligando de Apo-1 y el ligando de CD40, se dividen
proteolíticamente a nivel de la superficie celular; la proteína
resultante en cada caso típicamente forma una molécula
homotrimérica que funciona como una citocina soluble. Las proteínas
de la familia del receptor del TNF también se dividen
proteolíticamente de forma habitual para liberar ECD solubles del
receptor que pueden funcionar como inhibidores de las citocinas
cognadas.
Más recientemente, se han identificado otros
miembros de la familia del TNFR. En von Bulow et al.,
Science, 278:138-141 (1997), los
investigadores describen un receptor de la membrana plasmática
denominado como Activador Transmembrana que interacciona con CAML o
"TACI". Se ha descrito que el receptor de TACI contiene un
motivo rico en cisteína característico de la familia del TNFR, y que
está presente tanto en células B como en células T activadas. En un
ensayo in vitro, el entrecruzamiento de TACI, con anticuerpos
específicos para TACI, sobre la superficie de células Jurkat
transfectadas condujo a la activación del NF-KB.
[ver también la patente internacional WO 98/39361 publicada el 18
de septiembre de 1998].
Laabi et al., EMBO J.,
11:3897-3904 (1992) descubrieron la identificación
de un nuevo gen denominado "BCM" cuya expresión se observó que
coincidía con la maduración terminal de las células B. El marco de
lectura abierto del ADNc normal del BCM predijo un polipéptido de
184 aminoácidos de longitud con un único dominio transmembrana.
Estos investigadores posteriormente denominaron a este gen
"BCMA." [Laabi et al., Nucleic Acids Res.,
22:1147-1154 (1994)]. Se describió que la expresión
del ARNm del BCMA estaba ausente en las líneas de células B humanas
malignas, las cuales representa la etapa
pro-linfocito B, y por tanto se cree que está
vinculado a la etapa de diferenciación de los linfocitos [Gras
et al., Int. Immunology, 7:1093-1106
(1995)]. En Madry et al., Int. Immunology,
10:1693-1702 (1998), se descubrió la clonación del
ADNc del BCMA murino. Se ha descrito que el ADNc del BCMA murino
codifica un polipéptido de 185 aminoácidos de longitud que tiene un
62% de identidad con el polipéptido del BCMA humano. El
alineamiento de las secuencias proteicas de murino y humana reveló
un motivo conservado de seis cisteínas en la región
N-terminal, sugiriendo que la proteína BCMA
pertenece a la superfamilia del TNFR [Madry et al., ver más
arriba].
En Marsters et al., Curr. Biol.,
6:750 (1996), los investigadores describen un polipéptido humano de
secuencia nativa, de longitud completa, denominado
Apo-3, el cual presenta similitud con la familia del
TNFR en sus repeticiones extracelulares ricas en cisteínas, y que
se parece al TNFR1 y CD95 en que contiene una secuencia de dominio
de muerte citoplasmático [ver también Marsters et al.,
Curr. Biol., 6:1669 (1996)]. El Apo-3 ha
sido denominado por otros investigadores como DR3,
wsl-1, TRAMP, y LARD [Chinnaiyan et al.,
Science, 274:990 (1996); Kitson et al.,
Nature,
384:372 (1996); Bodmer et al., Immunity, 6:79 (1997); Screaton et al., Proc. Natl. Acad. Sci., 94:4615-4619 (1997)].
384:372 (1996); Bodmer et al., Immunity, 6:79 (1997); Screaton et al., Proc. Natl. Acad. Sci., 94:4615-4619 (1997)].
Pan et al. han descrito otro miembro de
la familia del receptor del TNF denominado como "DR4" [Pan
et al., Science, 276:111-113 (1997);
ver también la patente internacional WO98/32856 publicada el 30 de
julio de 1998]. Se indicó que el DR4 contenía un dominio de muerte
citoplasmático capaz de involucrar el aparato de suicidio de la
célula. Pan et al. describen que se cree que el DR4 es un
receptor para el ligando conocido como Apo2L/TRAIL.
En Sheridan et al., Science,
277:818-821 (1997) y Pan et al.,
Science, 277:815-818 (1997), se describe
otra molécula que se cree que es un receptor para el Apo2L/TRAIL
[ver también la patente internacional WO98/51793 publicada el 19 de
noviembre de 1998; la patente internacional WO98/41629 publicada el
24 de septiembre de 1998]. Esa molécula se denomina como DR5
(alternativamente, también se ha denominado como
Apo-2; TRAIL-R, TR6,
Tango-63, hAPO8, TRICK2 o KILLER [Screaton et
al., Curr. Biol., 7:693-696 (1997);
Walczak et al., EMBO J., 16:5386-5387
(1997); Wu et al., Nature Genetics,
17:141-143 (1997); WO98/35986, publicada el 20 de
agosto 1998; EP 870.827, publicada el 14 de octubre de 1998;
WO98/46643, publicada el 22 de octubre de 1998; WO99/02653
publicada el 21 de enero de 1999; WO99/09165, publicada el 25 de
febrero de 1999; WO99/11791, publicada el 11 de marzo de 1999]. Al
igual que el DR4, se indica que el DR5 contiene un dominio de muerte
citoplasmático y que es capaz de señalar la apoptosis. La
estructura del cristal del complejo formado entre
Apo-2L/TRAIL y DR5 se describe en Hymowitz et
al., Molecular Cell, 4:563-571
(1999).
Aún se ha identificado recientemente otro
receptor que contiene un dominio de muerte, el DR6 [Pan et
al., FEBS Letters, 431:351-356 (1998)].
Aparte de contener cuatro dominios extracelulares putativos ricos
en cisteínas y un dominio de muerte citoplasmático, se cree que el
DR6 contiene una secuencia putativa de cremallera de leucina que se
solapa con un motivo rico en prolinas en la región citoplasmática.
El motivo rico en prolina se parece a secuencias que se unen a los
dominios scr-homología-3, los cuales
se encuentran en muchas moléculas intracelulares transductoras de
señal.
Un grupo adicional de receptores recientemente
identificados se denomina como "receptores de señuelo", los
cuales se cree que funcionan como inhibidores, en vez de como
transductores de señal. Este grupo incluye el DCR1 (también
denominado como TRID, LIT o TRAIL-R3) [Pan et
al., Science, 276:111-113 (1997);
Sheridan et al., Science, 277:818-821
(1997); McFarlane et al., J. Biol. Chem.,
272:25417-25420 (1997); Schneider et al.,
FEBS Letters, 416:329-334 (1997);
Degli-Esposti et al., J. Exp. Med.,
186:1165-1170 (1997); y Mongkolsapaya et
al., J. Immunol., 160:3-6 (1998)] y el
DCR2 (también denominado TRUNDD o TRAIL-R4)
[Marsters et al., Curr. Biol.,
7:1003-1006 (1997); Pan et al., FEBS
Letters, 424:41-45 (1998);
Degli-Esposti et al., Immunity,
7:813-820 (1997)], ambas moléculas de la superficie
celular, así como el OPG [Simonet et al., ver más arriba;
Emery et al., ver más abajo] y DCR3 [Pitti et al.,
Nature, 396:699-703 (1998)], ambas de las
cuales son proteínas solubles, secretadas.
Los miembros adicionales recientemente
identificados de la familia del TNFR incluyen el CAR1, HVEM, GITR,
ZTNFR-5, NTR-1, y TNFL1 [Brojatsch
et al., Cell, 87:845-855 (1996);
Montgomery et al., Cell, 87:427-436
(1996); Marsters et al., J. Biol. Chem.,
272:14029-14032 (1997); Nocentini et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 94:6216-6221
(1997); Emery et al., J. Biol. Chem.,
273:19363-19367 (1998); patente international
WO99/04001, publicada el 28 de enero de 1999; patente internacional
WO99/07738, publicada el 18 de febrero de 1999; patente
internacional WO99/33980, publicada el 8 de julio de 1999].
Tal y como ha sido recientemente revisado por
Tewari et al., TNFR1, TNFR2 y CD40 modulan la expresión de
las citocinas proinflamatorias y coestimuladoras, de los receptores
de citocinas, y de las moléculas de adhesión de células, a través
de la activación del factor de transcripción
NF-\kappaB [Tewari et al., Curr. Op.
Genet. Develop., 6:39-44 (1996)]. El
NF-KB es el prototipo de una familia de factores de
transcripción diméricos cuyas subunidades contienen regiones Rel
conservadas [Verma et al., Genes Develop.,
9:2723-2735 (1996); Baldwin, Ann. Rev.
Immunol., 14:649-681 (1996)]. En su forma
latente, el NF-\kappaB está complejado con
miembros de la familia de inhibidores I\kappaB; tras la
inactivación del I\kappaB en respuesta a ciertos estímulos, el
NF-\kappaB liberado se transloca al núcleo, en
donde se une a secuencias de ADN específicas y activa la
transcripción de genes. Tal como se ha descrito más arriba, los
miembros de la familia del TNFR identificados hasta la fecha, o
incluyen o carecen de una región dominio de muerte intracelular.
Algunas moléculas TNFR que carecen de un dominio de muerte, tales
como el TNFR2, CD40, HVEM y GITR, son capaces de modular la
actividad del NF-\kappaB. [ver, por ejemplo, Lotz
et al., J. Leukocyte Biol.,
60:1-7
(1996)].
(1996)].
Para una revisión de la familia de citocinas del
TNF y sus receptores, ver Ashkenazi y Dixit, Science,
281:1305-1308 (1998); Golstein, Curr. Biol.,
7:750-753 (1997); Gruss y Dower, ver más arriba, y
Nagata, Cell, 88:355-365 (1997).
Los solicitantes han hallado sorprendentemente
que el ligando de la familia del TNF denominado
TALL-1 se une al receptor de TACI y al receptor de
BCMA. Los solicitantes también han hallado sorprendentemente que el
ligando de la familia del TNF denominado APRIL se une a ambos, los
receptores de TACI y de BCMA. Aunque ciertos ligandos de
TALL-1 y APRIL, y ciertos receptores de TACI y BCMA
se han descrito previamente, no se apreció en la técnica que
TALL-1 y APRIL se unen a y activan los receptores de
TACI y BCMA. Por tanto, la presente invención proporciona nuevos
antagonistas de anticuerpos de estos ligandos APRIL relacionados con
el TNF de acuerdo con las reivindicaciones. Los antagonistas
descritos en la presente son útiles para, entre otras cosas, la
diagnosis o el tratamiento in vitro, in situ, o in
vivo de células de mamífero o de condiciones patológicas
asociadas con la presencia (o ausencia) de TALL-1,
APRIL, TACI, o BCMA.
Entre los usos de los mismos se incluyen el
tratamiento de condiciones patológicas o enfermedades en mamíferos
asociadas con, o que resultan de una expresión y/o actividad
incrementada o potenciada de TALL-1 o APRIL. Para
el tratamiento, los antagonistas de TALL-1 o los
antagonistas de APRIL podrían administrarse al mamífero que padece
tal condición patológica o enfermedad. Los antagonistas de
TALL-1 y los antagonistas de APRIL descritos en la
presente incluyen las inmunoadhesinas del receptor de TACI o las
inmunoadhesinas del receptor de BCMA, así como los anticuerpos
contra el receptor de TACI o contra el receptor de BCMA, los cuales
preferiblemente bloquean o reducen la activación o la unión al
receptor respectivo por parte del ligando TALL-1 o
ligando APRIL. Por ejemplo, las inmunoadhesinas del receptor TACI
podrían emplearse para tratar la artritis reumatoide o la
esclerosis múltiple. Los antagonistas de TALL-1 y
los antagonistas de APRIL descritos en la presente incluyen además
los anticuerpos anti-TALL-1 o los
anticuerpos anti-APRIL, los cuales son capaces de
bloquear o reducir la unión de los ligandos respectivos a los
receptores de TACI o BCMA. Aún otras moléculas antagonistas
incluyen las formas modificadas covalentemente, o las proteínas de
fusión, que comprenden TACI o BCMA. A modo de ejemplo, tales
antagonistas podrían incluir el TACI o BCMA pegilados, y el TACI o
BCMA fusionados a secuencias heterólogas tales como las etiquetas
de epítopo o las cremalleras de leucina. Opcionalmente, la molécula
o moléculas antagonistas empleadas serán capaces de bloquear o
neutralizar la actividad de ambos, TALL-1 y APRIL,
por ejemplo, un antagonista dual que bloquea o neutraliza la
actividad tanto de TALL-1 como de APRIL. Puede
usarse un único tipo de molécula antagonista o una combinación de
dos o más tipos de antagonistas.
La invención es acorde a las reivindicaciones, y
proporciona moléculas antagonistas que comprenden anticuerpos
anti-APRIL. Tales anticuerpos incluyen los
anticuerpos monoclonales, los anticuerpos quiméricos, los
anticuerpos humanizados o los anticuerpos humanos. En una
realización, los anticuerpos anti-APRIL comprenden
los anticuerpos anti-APRIL descritos en los Ejemplos
de más abajo. Adicionalmente, en la presente se proporcionan
hibridomas que secretan varios anticuerpos monoclonales
anti-APRIL.
Las Figuras 1A-1B muestran una
secuencia de polinucleótidos que codifica una secuencia humana
nativa de TACI (SEC. Nº ID.:1) (la secuencia inversa
correspondiente se proporciona en SEC. Nº ID.:11) y su secuencia de
aminoácidos putativa (SEC. Nº ID.:2).
La Figura 2 muestra una secuencia de
polinucleótidos que codifica una secuencia humana nativa de BCMA
(SEC. Nº ID.:3) (la secuencia inversa correspondiente se
proporciona en SEC. Nº ID.:12) y su secuencia de aminoácidos
putativa (SEC. Nº ID.:4).
La Figura 3 muestra una secuencia de
polinucleótidos que codifica una secuencia humana nativa de
TALL-1 (SEC. Nº ID.:5) (la secuencia inversa
correspondiente se proporciona en SEC. Nº ID.:13) y su secuencia de
aminoácidos putativa (SEC. Nº ID.:6).
Las Figuras 4A-4B muestran una
secuencia de polinucleótidos que codifica una secuencia humana
nativa de APRIL (SEC. Nº ID.:7) (la secuencia inversa
correspondiente se proporciona en SEC. Nº ID.:14) y su secuencia de
aminoácidos putativa (SEC. Nº ID.:8).
Las Figuras 5A-5B muestran
procedimientos ilustrativos para calcular el % de identidad de la
secuencia de aminoácidos de la secuencia de aminoácidos denominada
"Proteína de comparación" respecto la secuencia de aminoácidos
denominada "PRO". Para los propósitos en la presente, la
secuencia "PRO" podría ser las secuencias de TACI, BCMA,
TALL-1 o APRIL mencionadas respectivamente en las
Figuras 1, 2, 3, o 4 en la presente.
La Figura 6 muestra una alineamiento de las dos
secuencias de aminoácidos del receptor de TACI receptor, denominadas
"hTACI (265)" (SEC. Nº ID.:9), que se cree que es una variante
ayustada, y "hTACI", citada también en las Figuras
1A-1B (SEC. Nº ID.:2).
Las Figuras 7A-7D muestran los
resultados de un ensayo in situ de tinción de la actividad de
AP. Se transfectaron células COS 7 con TACI (Figuras
7A-7C) o plásmido del vector (Figura 7D) y se
incubaron con AP-TALL-1 (Figuras
7A, 7D); AP-TNF-alfa (Figura 7B); o
AP-EDA (Figura 7C).
Las Figuras 8A-8H muestran los
resultados, mediante análisis de transferencias Western de varios
ensayos de co-inmunoprecipitación de
TALL-1 o APRIL con inmunoadhesinas de TACI o BCMA,
tal como se describe en detalle en el Ejemplo 2. En las Figuras
8A-8H, TALL-1 se denomina como
"Blys/TALL-1".
Las Figuras 9A-9B muestran los
resultados de ensayos de unión adicionales que demuestran que
TALL-1 y APRIL son ligandos para TACI y BCMA. En la
Figura 9A, se transfectaron células COS 7 con TALL-1
(9a-9c); APRIL (9d-9f); o
TNF-alfa (9g-9i) y se incubaron con
BCMA-Fc (9a, 9d, y 9g); TACI-Fc (9b,
9e, y 9h); o TNFR1-Fc (9c, 9f, y 9i). A
continuación se lavaron las células, se fijaron, y se detectó la
unión de la proteína Fc mediante anticuerpo de cabra
anti-humano biotinilado seguido por
Cy3-estreptoavidina. En la Figura 9B, se
transfectaron células COS 7 con TACI (1, 2, y 3); BCMA (4, 5, y 6);
o vector (7, 8, y 9) y se incubaron con medio condicionado que
contenía AP-TALL-1 (1, 4, y 7),
AP-APRIL (2, 5, y 8) o
AP-TNF-alpha (3, 6, y 9). A
continuación, se lavaron las células, se fijaron, y se tiñeron en
busca de actividad AC in situ. En las Figuras
9A-9H, TALL-1 se denomina como
"Blys/TALL-1".
La Figura 10 muestra un diagrama de barras que
ilustra los resultados de un ELISA de IgM, que ensaya los efectos
de las citocinas, ligandos y receptores indicados sobre la
producción de IgM por parte de los PBL apuntados.
Las Figuras 11A-11D muestran los
resultados de los ensayos, demostrando que la interacción entre
TALL-1 o APRIL y TACI o BCMA resulta en la
activación del NF-KB. En la Figura 11A, la
estimulación de TACI/BCMA medió la activación del
NF-KB por parte de TALL-1 o APRIL.
En las Figuras 11B y 11C, la estimulación de TACI/BCMA medió la
activación del NF-KB por parte de la cotransfección
del TALL-1 o APRIL de longitud completa. En la
Figura 11D, el tratamiento con
Flag-TALL-1 de células
IM-9 sin transfectar también resultó en la
activación del NF-KR, según se midió en una ensayo
de desplazamiento de la movilidad electroforética.
La Figura 12 muestra un diagrama de barras que
ilustra los resultados de un ELISA que ensaya los efectos de
bloquear las interacciones TALL-1/TACI y
TALL-1/BCMA sobre la producción de IgM específica
para NP, de IgG1 de baja afinidad, y de IgG1 de elevada
afinidad.
Las Figuras 13-1 (paneles A, B y
C) y 13-2 (paneles A, B, y C) muestran el análisis
inmunohistoquímico de secciones de bazo procedentes de ratones
tratados con TACI-Fc o BCMA-Fc, y
descritos con más detalle en el Ejemplo 5.
La Figura 14A muestra los resultados de un ELISA
que ensayaba la unión de varios anticuerpos
anti-APRIL al Flag-APRIL.
La Figura 14B muestra una tabla que indica los
diversos resultados de los ensayos de los anticuerpos monoclonales
3C6.4.2; 5E8.7.4; 5E11.1.2; y 5G8.2.2, incluyendo el análisis del
isotipo.
Las Figuras 15A-15D muestran
diagramas de barras que ilustran los resultados de los ELISA de
unión competitiva de anticuerpos anti-APRIL 3C6.4.2
("3C6") (Figura 15A); 5E8.7.4 ("5E8") (Figura 15B);
5E11.1.2 ("5 \mul") (Figura 15C); y 5G8.2.2 ("5G8")
(Figura 15D), y descritos con más detalle en el Ejemplo 9.
Las Figuras 16A y 16B muestran los resultados de
ensayos que demuestran la inhibición de la artritis inducida por el
colágeno mediante el tratamiento con TACI-Fc en un
modelo con murino in vivo. Las observaciones de valoración
artrítica se describen en el Ejemplo 10.
Las Figuras 17A-17F muestran los
perfiles histoquímicos y radiológicos de articulaciones de ratones
CIA tratados con TACI-Fc o de controles.
Las Figuras 18A-18E muestran los
resultados de ensayos que demuestran que TACI-Fc
inhibió las respuestas inmunes anti-colágeno en el
modelo con murino CIA. Las Figuras 18A y 18B muestran los niveles en
suero de los anticuerpos anti-BCII de los isotipos
IgG1 e IgG2a; la Figura 18C ilustra los efectos de
TACI-Fc sobre las respuestas de las células T
proliferantes; la Figura 18D ilustra los efectos de
TACI-Fc sobre la producción de IL-2
por parte de cé-
lulas T; la Figura 18E ilustra los efectos de TACI-Fc sobre la producción de interferón-gamma por parte de células T.
lulas T; la Figura 18E ilustra los efectos de TACI-Fc sobre la producción de interferón-gamma por parte de células T.
Las Figuras 19A-19B muestran los
efectos inhibidores de TACI-Fc sobre la
proliferación de células T ingenuas inducida por
anti-CD3 (Figura 19A) y sobre la producción de
IL-2 inducida por anti-CD3 por parte
de células T ingenuas, según se midió en ensayos in
vitro.
La Figura 20 muestra los resultados de un ensayo
que demuestra la inhibición de la encefalomielitis alérgica
experimental (EAE) mediante el tratamiento con
TACI-Fc in vivo en un modelo con murino. Las
observaciones de puntuación clínica de la EAE e describen en el
Ejemplo 11.
Los términos "TACI" o "polipéptido de
TACI" o "receptor de TACI", cuando se usan en la presente
abarcan los "polipéptidos de TACI de secuencia nativa" y las
"variantes de TACI" (las cuales se definen adicionalmente en
la presente). "TACI" es una denominación dada a aquéllos
polipéptidos que están codificados por moléculas de ácido nucleico
que comprenden las secuencias de polinucleótidos mostradas en la
Figura 1 y variantes o fragmentos de las mismas, moléculas de
ácidos nucleicos que comprenden la secuencia mostrada en la Figura
1 y variantes de la misma, así como fragmentos de las anteriores.
Los polipéptidos TACI de la invención podrían aislarse a partir de
una variedad de fuentes, tales como a partir de tipos de tejidos
humanos o a partir de otra fuente, o prepararse mediante
procedimientos recombinantes y/o sintéticos.
Una "secuencia nativa" del polipéptido TACI
comprende un polipéptido que tiene la misma secuencia de
aminoácidos que el correspondiente polipéptido TACI derivado de la
naturaleza. Tales polipéptidos TACI de secuencia nativa pueden
aislarse de la naturaleza o pueden producirse mediante medios
recombinantes y/o sintéticos. El término "polipéptido TACI de
secuencia nativa" abarca específicamente las formas truncadas o
secretadas que ocurren de forma natural (por ejemplo, una secuencia
del dominio extracelular), formas de variantes que ocurren de forma
natural (por ejemplo, formas empalmadas de forma alternativa), y
variantes alélicas del polipéptido que ocurren de forma natural.
Los polipéptidos TACI de la invención incluyen pero no se limitan a
los polipéptidos descritos en von Bulow et al., ver más
arriba y WO98/39361, publicada el 11 de septiembre de 1998, la
variante empalmada (denominada "hTACI(265)" más arriba y
mostrada en la Figura 6 (SEC. Nº ID.:9)), y los polipéptidos TACI
que comprenden la secuencia contigua de residuos aminoácidos
1-293 de las Figuras 1A-1B (SEC. Nº
ID.:2).
Un "dominio extracelular" o "ECD" de
TACI se refiere a una forma del polipéptido TACI que carece
esencialmente de los dominios transmembrana y citoplasmático.
Ordinariamente, un ECD de polipéptido TACI tendrá menos de
aproximadamente el 1% de tales dominios transmembrana y/o
citoplasmático, y preferiblemente tendrá menos de aproximadamente
el 0,5% de tales dominios. Se sobreentenderá que cualquier dominio o
dominios transmembrana identificados para los polipéptidos TACI de
la presente invención se identifican siguiendo los criterios
empleados rutinariamente en el campo para identificar ese tipo de
dominio hidrofóbico. Los límites exactos de un dominio
transmembrana podrían variar, pero los más probable es que en no más
de 5 aminoácidos en cada extremo del dominio tal como se identificó
inicialmente. Las formas de ECD de TACI incluyen aquéllas descritas
en von Bulow et al., ver más arriba y WO98/39361.
"Variante de TACI" significa un polipéptido
de TACI que tiene al menos aproximadamente un 80% de identidad de
la secuencia de aminoácidos con la secuencia de aminoácido de TACI o
del ECD de TACI de longitud completa y secuencia nativa.
Preferiblemente, tal variante de TACI actúa como un antagonista de
TALL-1 o antagonista de APRIL, según se definen más
abajo. Tales polipéptidos variantes de TACI incluyen, por ejemplo,
los polipéptidos de TACI en donde uno o más residuos aminoácidos se
añaden, o suprimen, en los extremos N- y/o
C-terminales, así como dentro de uno o más de los
dominios internos, de la secuencia de aminoácido de longitud
completa. También se contemplan los fragmentos del ECD de TACI.
Ordinariamente, un polipéptido variante de TACI tendrá al menos
aproximadamente el 80% de identidad de la secuencia de aminoácidos,
más preferiblemente al menos el 81% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 82% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 83% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 84% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 85% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 86% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 87% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 88% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 89% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 90% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 91% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 92% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 93% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 94% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 95% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 96% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 97% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 98% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, y aún más preferiblemente al menos el 99%
de identidad de la secuencia de aminoácidos con un polipéptido TACI
codificado por una molécula de ácido nucleico mostrada en la Figura
1 o un fragmento especificado de la misma. Los polipéptidos
variante de TACI no abarcan la secuencia de TACI nativa.
Ordinariamente, los polipéptidos variantes de TACI tienen al menos
aproximadamente 10 aminoácidos de longitud, a menudo al menos
aproximadamente 20 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 30 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 40 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 50 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 60 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 70 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 80 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 90 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 100 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 150 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 200 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 250 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 300 aminoácidos de longitud, o más.
Los términos "BCMA" o "polipéptido de
BCMA" o "receptor de BCMA", cuando se usan en la presente,
abarcan los "polipéptidos de BCMA de secuencia nativa" y las
"variantes de BCMA" (las cuales se definen adicionalmente en
la presente). "BCMA" es una denominación dada a aquéllos
polipéptidos que están codificados por moléculas de ácido nucleico
que comprenden las secuencias de polinucleótidos mostradas en la
Figura 2 y variantes de las mismas, moléculas de ácidos nucleicos
que comprenden la secuencia mostrada en la Figura 2 y variantes de
la misma, así como fragmentos de las anteriores. Los polipéptidos
BCMA de la invención podrían aislarse a partir de una variedad de
fuentes, tales como a partir de tipos de tejidos humanos o a partir
de otra fuente, o prepararse mediante procedimientos recombinantes
y/o sintéticos.
Una "secuencia nativa" del polipéptido BCMA
comprende un polipéptido que tiene la misma secuencia de
aminoácidos que el correspondiente polipétido BCMA derivado de la
naturaleza. Tales polipéptidos BCMA de secuencia nativa pueden
aislarse de la naturaleza o pueden producirse mediante medios
recombinantes y/o sintéticos. El término "polipéptido BCMA de
secuencia nativa" abarca específicamente las formas truncadas o
secretadas que ocurren de forma natural (por ejemplo, una secuencia
del dominio extracelular), formas de variantes que ocurren de forma
natural (por ejemplo, formas empalmadas de forma alternativa), y
variantes alélicas del polipéptido que ocurren de forma natural.
Los polipéptidos de BCMA de la invención incluyen los polipéptidos
descritos en Laabi et al., EMBO J.,
11:3897-3904 (1992); Laabi et al., Nucleic
Acids Res., 22:1147-1154 (1994); Gras et
al., Int. Immunology, 7:1093-1106 (1995);
Madry et al., Int. Immunology,
10:1693-1702 (1998); y el polipéptido de BCMA que
comprende la secuencia contigua de los residuos aminoácidos
1-184 de la Figura 2 (SEC. Nº ID.:4).
Un "dominio extracelular" o "ECD" de
BCMA se refiere a una forma del polipéptido de BCMA que carece
esencialmente de los dominios transmembrana y citoplasmático.
Ordinariamente, un ECD del polipéptido de BCMA tendrá menos de
aproximadamente el 1% de tales dominios transmembrana y/o
citoplasmático, y preferiblemente tendrá menos de aproximadamente
el 0,5% de tales dominios. Se sobreentenderá que cualquier dominio o
dominios transmembrana identificados para los polipéptidos de BCMA
de la presente invención se identifican siguiendo los criterios
empleados rutinariamente en el campo para identificar ese tipo de
dominio hidrofóbico. Los límites exactos de un dominio
transmembrana podrían variar, pero los más probable es que en no más
de 5 aminoácidos en cada extremo del dominio tal como se identificó
inicialmente. Las formas de ECD de TACI incluyen aquéllas descritas
en Laabi et al., EMBO J., 11:3897-3904
(1992); Laabi et al., Nucleic Acids Res.,
22:1147-1154 (1994); Gras et al., Int.
Immunology, 7:1093-1106 (1995); Madry et
al., Int. Immunology, 10:1693-1702
(1998).
"Variante de BCMA" significa un polipéptido
de BCMA que tiene al menos aproximadamente el 80% de identidad de
la secuencia de aminoácidos con la secuencia de aminoácido de BCMA o
del ECD de BCMA de longitud completa y secuencia nativa.
Preferiblemente, tal variante de BCMA actúa como un antagonista de
TALL-1 o antagonista de APRIL, según se definen más
abajo. Tales polipéptidos variantes de BCMA incluyen, por ejemplo,
los polipéptidos de BCMA en donde se añaden, o suprimen, uno o más
residuos aminoácidos en los extremos N- y/o
C-terminales, así como dentro de uno o más de los
dominios internos, de la secuencia de aminoácido de longitud
completa. También se contemplan los fragmentos del ECD de BCMA.
Ordinariamente, un polipéptido variante de BCMA tendrá al menos
aproximadamente el 80% de identidad de la secuencia de aminoácidos,
más preferiblemente al menos el 81% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 82% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 83% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 84% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 85% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 86% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 87% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 88% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 89% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 90% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 91% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 92% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 93% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 94% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al menos el 95% de
identidad de la secuencia de aminoácidos, más preferiblemente al
menos el 96% de identidad de la secuencia de aminoácidos, más
preferiblemente al menos el 97% de identidad de la secuencia de
aminoácidos, más preferiblemente al menos el 98% de identidad de la
secuencia de aminoácidos, y aún más preferiblemente al menos el 99%
de identidad de la secuencia de aminoácidos con un polipéptido BCMA
codificado por una molécula de ácido nucleico mostrada en la Figura
2 o un fragmento especificado de la misma. Los polipéptidos
variante de BCMA no abarcan la secuencia de TACI nativa.
Ordinariamente, los polipéptidos variantes de BCMA tienen al menos
aproximadamente 10 aminoácidos de longitud, a menudo al menos
aproximadamente 20 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 30 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 40 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 50 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 60 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 70 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 80 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 90 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 100 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 150 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 200 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 250 aminoácidos de longitud, más a menudo al menos
aproximadamente 300 aminoácidos de longitud, o más.
Los términos "TALL-1" o
"polipéptido de TALL-1", cuando se usan en la
presente, abarcan los "polipéptidos de TALL-1 de
secuencia nativa" y las "variantes de
TALL-1". "TALL-1" es una
denominación dada a aquéllos polipéptidos que están codificados por
moléculas de ácidos nucleicos que comprenden las secuencias de
polinucleótidos mostradas en la Figura 3 y variantes de las mismas,
moléculas de ácidos nucleicos que comprenden la secuencia mostrada
en la Figura 3 y variantes de la misma, así como fragmentos de las
anteriores que tienen la actividad biológica de la secuencia nativa
de TALL-1. Las variantes de TALL-1
preferiblemente tendrán al menos el 80%, más preferiblemente al
menos el 90%, y aún más preferiblemente al menos el 9% de identidad
de la secuencia de aminoácidos con el polipéptido
TALL-1 de secuencia nativa mostrados en la Figura 3.
Una "secuencia nativa" del polipéptido TALL-1
comprende un polipéptido que tiene la misma secuencia de aminoácidos
que el correspondiente polipéptido TALL-1 derivado
de la naturaleza. Tales polipéptidos TALL-1 de
secuencia nativa pueden aislarse de la naturaleza o pueden
producirse mediante medios recombinantes y/o sintéticos. El término
"polipéptido TALL-1 de secuencia nativa"
abarca específicamente las formas truncadas o secretadas que ocurren
de forma natural (por ejemplo, una secuencia del dominio
extracelular), formas de variantes que ocurren de forma natural (por
ejemplo, formas empalmadas de forma alternativa), y variantes
alélicas del polipéptido que ocurren de forma natural. El término
"TALL-1" incluye aquellos polipéptidos
descritos en Shu et al., nº de acceso de GenBank AF136293;
WO98/18921 publicada el 7 de mayo de 1998; EP 869.180 publicada el
7 de octubre de 1998; WO98/27114 publicada el 25 de junio de 1998;
WO99/12964 publicada el 18 de marzo de 1999; WO99/33980 publicada el
8 de julio de 1999; Moore et al., ver más arriba; Schneider
et al., ver más arriba; y Mukhopadhyay et al., ver más
arriba.
Los términos "APRIL" o "polipéptido de
APRIL", cuando se usan en la presente, abarcan los
"polipéptidos de APRIL de secuencia nativa" y las "variantes
de APRIL". "APRIL" es una denominación dada a aquéllos
polipéptidos que están codificados por moléculas de ácidos
nucleicos que comprenden las secuencias de polinucleótidos mostradas
en la Figura 4 y variantes de las mismas, moléculas de ácidos
nucleicos que comprenden la secuencia mostrada en la Figura 4 y
variantes de la misma, así como fragmentos de las anteriores que
tienen la actividad biológica de la secuencia nativa de APRIL. Las
variantes de APRIL preferiblemente tendrán al menos el 80%, más
preferiblemente al menos el 90%, y aún más preferiblemente al menos
el 9% de identidad de la secuencia de aminoácidos con el
polipéptido APRIL de secuencia nativa mostrados en la Figura 4. Una
"secuencia nativa" del polipéptido APRIL comprende un
polipéptido que tiene la misma secuencia de aminoácidos que el
correspondiente polipéptido APRIL derivado de la naturaleza. Tales
polipéptidos APRIL de secuencia nativa pueden aislarse de la
naturaleza o pueden producirse mediante medios recombinantes y/o
sintéticos. El término "polipéptido APRIL de secuencia nativa"
abarca específicamente las formas truncadas o secretadas que ocurren
de forma natural (por ejemplo, una secuencia del dominio
extracelular), formas de variantes que ocurren de forma natural (por
ejemplo, formas empalmadas de forma alternativa), y variantes
alélicas del polipéptido que ocurren de forma natural. El término
"APRIL" incluye aquellos polipéptidos descritos en Hahne et
al., J. Exp. Med., 188:1185-1190 (1998);
nº de acceso de GenBank AF046888; WO 99/00518 publicada el 7 de
enero de 1999; WO 99/12965 publicada el 18 de marzo de 1999; WO
99/33980 publicada el 8 de julio de 1999; WO 97/33902 publicada el
18 de septiembre de 1997; WO 99/11791 publicada el 11 de marzo de
1999; EP 911.633 publicada el 28 de marzo de 1999; y WO99/50416
publicada el 7 de octubre de 1999.
"Porcentaje de identidad de la secuencia de
aminoácidos", en relación a las secuencias polipeptídicas de
ligando o receptor identificadas en la presente, se define como el
porcentaje de residuos aminoácidos en una secuencia candidata que
son idénticos a los residuos aminoácidos en una tal secuencia de
ligando o receptor identificado en la presente, después de alinear
las secuencias e introducir huecos, si es necesario, para conseguir
el máxima porcentaje de identidad de la secuencia, y no considerando
ninguna sustitución conservadora como parte de la identidad de la
secuencia. El alineamiento, para los propósitos de determinar el
porcentaje de identidad de la secuencia de aminoácidos, puede
conseguirse de varias formas que se hallan dentro de los
conocimientos del campo, por ejemplo, usando programas de ordenador
disponibles públicamente, tales como los programas BLAST,
BLAST-2, ALIGN, ALIGN-2 o Megalign
(DNASTAR). Aquellos capacitados en la técnica pueden terminar los
parámetros apropiados para medir el alineamiento, incluyendo
cualquier algoritmos necesarios para conseguir el alineamiento
máximo a lo largo de las secuencias de longitud completa que se
están comparando. Sin embargo, para los propósitos en la presente,
los valores de % de identidad de la secuencia de aminoácidos se
obtienen como se describe más abajo, usando el programa de
ordenador para comparación de secuencias ALIGN-2, en
donde el código fuente completo para el programa
ALIGN-2 se proporciona en la tabla siguiente. El
programa de ordenador de comparación de secuencias
ALIGN-2 fue creado por Genentech, Inc. y el código
fuente mostrado en la tabla siguiente se ha registrado con la
documentación para el usuario en la U.S. Copyright Office,
Washington D.C., 20559, en donde está registrado con el nº de U.S.
Copyright Registration TXU510087. El programa
ALIGN-2 está disponible públicamente a través de
Genentech, Inc., South San Francisco, Calif., o podría compilarse a
partir del código fuente proporcionado en la tabla siguiente. El
programa ALIGN-2 debería compilarse para ser usado
en un sistema operativo UNIX, preferiblemente el UNIX V4.0D de
Digital. Todos los parámetros de comparación de secuencias son
fijados por el programa ALIGN-2 y no varían.
Para los propósitos en la presente, el % de
identidad de la secuencia de aminoácidos de una determinada
secuencia de aminoácidos A respecto a, con, o contra una determinada
secuencia de aminoácidos B (lo que puede redactarse
alternativamente como una determinada secuencia de aminoácidos A que
tiene o comprende un cierto % de identidad de aminoácidos respecto
a, con o contra una determinada secuencia de aminoácidos B) se
calcula como sigue:
100 veces la fracción
X/Y
en donde X es el número de residuos
aminoácidos anotados como emparejamientos idénticos por el programa
de alineamiento de secuencias ALIGN-2 en el
alineamiento del programa de A y B, y en donde Y es el número total
de residuos aminoácidos en B. Se apreciará que, cuando la longitud
de la secuencia de aminoácidos A no es igual a la longitud de
aminoácidos de la secuencia B, el % de identidad de la secuencia de
aminoácidos de A respecto B no será igual al % de identidad de la
secuencia de aminoácidos de B respecto A. Como ejemplos de los
cálculos del % de identidad de la secuencia de aminoácidos, las
Figuras 5A-5B demuestran cómo calcular el % de
identidad de la secuencia de aminoácidos de la secuencia de
aminoácidos denominada "Proteína de comparación" respecto la
secuencia de aminoácidos denominada
"PRO".
A menos que se indique lo contrario, todos los
valores de % de identidad de la secuencia de aminoácidos usados en
la presente se obtuvieron tal como se ha descrito más arriba usando
el programa de ordenador para comparación de secuencias
ALIGN-2. Sin embargo, el % de identidad de la
secuencia de aminoácidos podría haberse determinado también usando
el programa de comparación de secuencias NCBI-BLAST2
(Altschul et al., Nucleic Acids Res.,
25:3389-3402 (1997)). El programa de comparación de
secuencias NCBI-BLAST2 puede descargarse de sitio
web de Internet de los NCBI. NCBI-BLAST2 usa varios
parámetros de búsqueda, en donde todos esos parámetros de búsqueda
se ajustan a valores por defecto, incluyendo, por ejemplo,
desenmascarar = sí, hebra = todas, acontecimientos esperados = 10,
longitud mínima para la baja complejidad = 15/5, valor e para
"multi-pass" = 0,01, constante para
"multi-pass" = 25, disminución para el
alineamiento final espaciado = 25, y matriz de puntuación =
BLOSUM62.
En las situaciones en las que se emplea el
NCBI-BLAST2 para las comparaciones de secuencias de
aminoácidos, el % de identidad de la secuencia de aminoácidos de
una determinada secuencia de aminoácidos A respecto a, con, o
contra una determinada secuencia de aminoácidos B (lo que puede
redactarse alternativamente como una determinada secuencia de
aminoácidos A que tiene o comprende un cierto % de identidad de
aminoácidos respecto a, con o contra una determinada secuencia de
aminoácidos B) se calcula como sigue:
100 veces la fracción
X/Y
en donde X es el número de residuos
aminoácidos anotados como emparejamientos idénticos por el programa
de alineamiento de secuencias NCBI-BLAST2 en el
alineamiento por el programa de A y B, y en donde Y es el número
total de residuos aminoácidos en B. Se apreciará que, cuando la
longitud de la secuencia de aminoácidos A no es igual a la longitud
de aminoácidos de la secuencia B, el % de identidad de la secuencia
de aminoácidos de A respecto B no será igual al % de identidad de
la secuencia de aminoácidos de B respecto
A.
El término "etiquetado con epítopo", cuando
se usa en la presente, se refiere a un polipéptido quimérico que
comprende un polipéptido fusionado a un "polipéptido etiqueta".
El polipéptido etiqueta tiene bastantes residuos como para
proporcionar un epítopo contra el que puede prepararse un
anticuerpo. El polipéptido etiqueta preferiblemente también es
bastante único, de forma que el anticuerpo no reaccione de forma
cruzada sustancialmente con otros epítopos. Los polipéptidos
etiqueta apropiados tienen generalmente al menos seis residuos
aminoácidos, y usualmente entre 8 y 50 residuos aminoácidos
(preferiblemente, entre aproximadamente 10 y 20 residuos
aminoácidos).
Tal como se usa en la presente, el término
"inmunoadhesina" designa las moléculas parecidas a un
anticuerpo que combinan la especificidad de unión de una proteína
heteróloga (una "adhesina") con las funciones efectoras de los
dominios constantes de inmunoglobulina. Estructuralmente, las
inmunoadhesinas comprenden una fusión de una secuencia de
aminoácidos con la especificidad de unión deseada, la cual es
distinta del sitio de reconocimiento y unión del antígeno de un
anticuerpo (es decir, es "heteróloga"), y una secuencia de un
dominio constante de inmunoglobulina. La parte adhesina de una
molécula de inmunoadhesina típicamente es una secuencia de
aminoácidos contigua, que comprende al menos el sitio de unión de
un receptor o de un ligando. La secuencia del dominio constante de
inmunoglobulina podría obtenerse de cualquier inmunoglobulina, tal
como los subtipos IgG-1, IgG-2,
IgG-3 o IgG-4, la IgA (incluyendo la
IgA-1 y la IgA-2), la IgE, la IgD o
la IgM.
El término "antagonista" se usa en el
sentido más amplio, e incluye cualquier molécula que bloquea,
inhibe o neutraliza parcial o completamente una o más de las
actividades biológicas del polipéptido TALL-1,
polipéptido APRIL, o ambos, TALL-1 y APRIL, in
vitro, in situ, o in vivo. Los ejemplos de tales
actividades biológicas de los polipéptidos TALL-1 y
APRIL incluyen la unión de TALL-1 o APRIL a TACI o
BCMA, la activación del NF-KB y la activación de la
proliferación y de la secreción de Ig por parte de las células B,
las condiciones relacionadas con la inmunidad, tales como la
artritis reumatoide, así como aquéllas mencionadas adicionalmente
en la literatura. Un antagonista podría funcionar de manera directa
o indirecta. Por ejemplo, el antagonista podría funcionar para
bloquear, inhibir o neutralizar parcial o totalmente una o más de
las actividades biológicas del polipéptido TALL-1,
polipéptido APRIL, o ambos, TALL-1 y APRIL, in
vitro, in situ, o in vivo, a resultas de su unión
directa a TALL-1, APRIL, TACI o BCMA. El antagonista
también podría funcionar indirectamente para bloquear, inhibir o
neutralizar parcial o totalmente una o más de las actividades
biológicas del polipéptido TALL-1, polipéptido
APRIL, o ambos, TALL-1 y APRIL, in vitro,
in situ, o in vivo, a resultas, por ejemplo, de
bloquear o inhibir otra molécula efectora. La molécula antagonista
podría comprender una actividad antagonista "dual", en donde
la molécula es capaz de bloquear, inhibir o neutralizar parcial o
totalmente una actividad biológica de ambos, TALL-1
y APRIL.
El término "agonista" se usa en el sentido
más amplio, e incluye cualquier molécula que potencia, estimula o
activa parcial o completamente una o más de las actividades
biológicas del polipéptido TACI, polipéptido BCMA, o ambos, TACI y
BCMA, in vitro, in situ o in vivo. Los ejemplos
de tales actividades biológicas de TACI y BCMA incluyen la
activación del NF-KB, la inducción de la producción
y secreción de inmunoglobulina, y la proliferación celular, así
como aquéllas mencionadas adicionalmente en la literatura. Un
agonista podría funcionar de manera directa o indirecta. Por
ejemplo, el agonista podría funcionar para potenciar, estimular o
activar parcial o totalmente una o más de las actividades
biológicas del polipéptido TACI, polipéptido BCMA, o ambos, TACI y
BCMA, in vitro, in situ, o in vivo, a resultas
de su unión directa a TACI o BCMA, lo que causa la activación del
receptor o la transducción de la señal. El agonista podría funcionar
también indirectamente para potenciar, estimular o activar parcial
o totalmente una o más de las actividades biológicas del polipéptido
TACI, polipéptido BCMA, o ambos, TACI y BCMA, in vitro,
in situ, o in vivo, a resultas de, por ejemplo,
estimular otra molécula efectora que causa a continuación la
activación del receptor o la transducción de la señal de TACI o
BCMA. Se contempla que un agonista podría actuar como una molécula
potenciadora que funciona indirectamente para potenciar o
incrementar la activación o actividad de TACI o BCMA. Por ejemplo,
el agonista podría potenciar la actividad del
TALL-1 o APRIL endógenos en un mamífero. Esto podría
conseguirse, por ejemplo, pre-complejando el TACI o
BCMA, o estabilizando los complejos de los respectivos ligandos con
el receptor de TACI o de BCMA (tal como estabilizando el complejo
nativo formado entre TALL-1 y TACI o APRIL y
TACI).
El término "antagonista de
TALL-1" o "antagonista de APRIL" se refiere
respectivamente a cualquier molécula biológica que bloquea, inhibe
o neutraliza parcial o totalmente la actividad biológica de
TALL-1 o APRIL, o ambos, TALL-1 y
APRIL, e incluye, pero no se limita a, las formas solubles del
receptor TACI o del receptor BCMA, tal como una secuencia de
dominio extracelular de TACI o BCMA, las inmunoadhesinas del
receptor TACI, las inmunoadhesinas del receptor BCMA, las proteínas
de fusión de TACI, las proteína de fusión de BCMA, las formas
modificadas covalentemente del receptor TACI, las formas modificadas
covalentemente del receptor BCMA, las variantes de TACI, las
variantes de BCMA, los anticuerpos contra el receptor TACI, los
anticuerpos contra el receptor BCMA, los anticuerpos contra
TALL-1, y los anticuerpos contra APRIL. Para
determinar si una molécula antagonista de TALL-1
bloquea, inhibe o neutraliza parcial o totalmente una actividad
biológica de TALL-1 o APRIL, podrían realizarse
ensayos para verificar el efecto o efectos de la molécula
antagonista sobre, por ejemplo, la unión de TALL-1
o APRO a TACI o a BCMA, o la activación del NF-KB,
por parte del ligando respectivo. Tales ensayos podrían realizarse
en formatos de ensayo in vitro o in vivo conocidos,
por ejemplo, en células que expresan BCMA y/o TACI.
Preferiblemente, el antagonista de TALL-1 empleado
en los procedimientos descritos en la presente será capaz de
bloquear o neutralizar al menos un tipo de actividad de
TALL-1, la cual podría determinarse opcionalmente
en ensayos tales como los descritos en la presente. Para determinar
si una molécula antagonista de APRIL bloquea, inhibe o neutraliza
parcial o totalmente una actividad biológica de
TALL-1 o APRIL, podrían realizarse ensayos para
verificar el efecto o efectos de la molécula antagonista sobre, por
ejemplo, la unión de TALL-1 o APRO a TACI o a BCMA,
o la activación del NF-KB, por parte del ligando.
Tales ensayos podrían realizarse en formatos in vitro o in
vivo conocidos, por ejemplo, usando células transfectadas con
TACI o BCMA (o ambos, TACI y BCMA) (preferiblemente transfectados en
niveles relativamente bajos). Preferiblemente, el antagonista de
APRIL empleado en los procedimientos descritos en la presente será
capaz de bloquear o neutralizar al menos un tipo de actividad de
APRIL, la cual podría determinarse opcionalmente en ensayos tales
como los descritos en la presente. Opcionalmente, un antagonista de
TALL-1 o un antagonista de APRIL será capaz de
reducir o inhibir la unión de uno de los dos, TALL-1
o APRIL (o ambos, TALL-1 y APRIL), al TACI o al BCMA
en al menos el 50%, más preferiblemente al menos el 99%, y los más
preferiblemente, en el 100%, en comparación con una molécula
control negativa, en un ensayo de unión. En una realización, el
antagonista de TALL-1 o el antagonista de APRIL
comprenderán anticuerpos que inhiben competitivamente la unión de
otro ligando o anticuerpo al TACI o BCMA. Los procedimientos para
determinar la especificidad del anticuerpo y la afinidad por la
inhibición competitiva son conocidos en la técnica [consultar, por
ejemplo, Harlow et al., Antibodies: A Laboratory
Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring
Harbor, N.Y. (1998); Colligan et al., Current Protocols in
Immunology, Green Publishing Assoc., NY (1992; 1993); Muller,
Meth. Enzym., 92:589-601 (1983).
Los términos "antagonista de TACI" o
"antagonista de BCMA" se refieren respectivamente a cualquier
molécula que potencia, estimula o activa parcial o completamente una
actividad biológica de TACI BCMA, o ambos, TACI y BCMA, e incluye,
pero no se limita a los anticuerpos anti-receptor
TACI y los anticuerpos anti-receptor BCMA. Para
determinar si una molécula antagonista de TACI potencia, estimula o
activa parcial o totalmente una actividad biológica de TACI o BCMA,
podrían realizarse ensayos para verificar el efecto o efectos de la
molécula agonista sobre, por ejemplo, los PBL o las células
transfectadas con TACI o BCMA. Tales ensayos podrían realizarse en
formatos conocidos de ensayo in vitro o in vivo.
Preferiblemente, el agonista de TACI empleado en los procedimientos
descritos en la presente será capaz de potenciar o activar al menos
un tipo de actividad de TACI, la cual podría determinarse
opcionalmente en ensayos tales como los descritos en la presente.
Para determinar si una molécula agonista de BCMA potencia, estimula
o activa parcial o totalmente una actividad biológica de BCMA o
TACI, podrían realizarse ensayos para verificar el efecto o efectos
de la molécula agonista sobre, por ejemplo, una actividad de APRIL
o TACI. Tales ensayos podrían realizarse en formatos de ensayo
in vitro o in vivo conocidos, por ejemplo, usando PBL
o células transfectadas con TACI o BCMA. Preferiblemente, el
agonista de TACI o el agonista de BCMA serán capaces respectivamente
de estimular o activar el TACI o BCMA, hasta el punto conseguido
por el ligando nativo de los receptores TACI o BCMA.
El término "anticuerpo" se usan en el
sentido más amplio, y específicamente abarca, por ejemplo, los
anticuerpos monoclonales simples contra el TALL-1,
APRIL, TACI, o BCMA, las composiciones de anticuerpo con
especificidad poliepitópica, los anticuerpos de cadena simple, y los
fragmentos de anticuerpos.
El término "anticuerpo monoclonal" tal como
se usa en la presente se refiere a un anticuerpo obtenido a partir
de una población de anticuerpos sustancialmente homogénea, es decir,
los anticuerpos individuales que forman la población son idénticos
excepto por posibles mutaciones que ocurren de forma natural que
podrían estar presentes en pequeñas cantidades. Los anticuerpos
monoclonales son altamente específicos, y están dirigidos contra un
único sitio antigénico. Además, en contraste con las preparaciones
de anticuerpos (policlonales) convencionales, las cuales
típicamente incluyen diferentes anticuerpos dirigidos contra
diferentes determinantes (epítopos), cada anticuerpo monoclonal
está dirigido contra un único determinante sobre el antígeno. Además
de su especificidad, los anticuerpos monoclonales son ventajosos ya
que se sintetizan en cultivos de hibridomas, sin contaminación por
parte de otras inmunoglobulinas. El modificador "monoclonal"
indica el carácter del anticuerpo en el sentido que se obtiene a
partir de una población sustancialmente homogénea de anticuerpos, y
no debe limitarse en el sentido de requerir la producción del
anticuerpo mediante cualquier procedimiento determinado. Por
ejemplo, los anticuerpos monoclonados para ser usado de acuerdo con
la presente invención podrían prepararse mediante el procedimiento
del hibridoma descrito por primera ver por Kohler et al.,
Nature, 256:495 (1975), o podrían prepararse mediante
procedimientos de ADN recombinante (ver, por ejemplo, la patente nº
4.816.567). Los "anticuerpos monoclonales" también podrían
aislarse a partir de bibliotecas de anticuerpos en fagos usando las
técnicas descritas en Clackson et al., Nature,
352:624-628 (1991) y Marks et al., J. Mol.
Biol., 222:581-597 (1991), por ejemplo.
Los anticuerpos monoclonales en la presente
incluyen específicamente los anticuerpos (inmunoglobulinas)
"quiméricos", en los cuales una porción de la cadena pesada y/o
ligera es idéntica a, u homóloga de, las correspondientes
secuencias en anticuerpos derivados de una especie determinada, o
pertenecientes a una determinada clase o subclase de anticuerpo,
mientras que el resto de la cadena o cadena son idénticas con, u
homólogas de, las correspondientes secuencias en anticuerpos
derivados de otra especie, o pertenecientes a otra clase o subclase
de anticuerpo, así como fragmentos de tales anticuerpos, con tal que
exhiban la actividad biológica deseada (patente estadounidense nº
4.816.567; Morrison et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 81:6851-6855 (1984)). Los procedimientos
para preparar anticuerpos quiméricos son conocidos en el campo.
Las formas "humanizadas" de anticuerpos no
humanos (por ejemplo, de roedor) son inmunoglobulinas quiméricas,
cadenas de inmunoglobulinas, o fragmentos de las mismas (tales como
los Fv, Fab, Fab', F(ab')_{2}, u otras subsecuencias de
los anticuerpos unidoras de antígeno) que contienen una secuencia
mínima derivada de la inmunoglobulina no humana. En su mayor parte,
los anticuerpos humanizados son inmunoglobulinas humanas (anticuerpo
receptor) en las cuales se remplazan residuos procedentes de una
región determinante de la complementariedad (CDR) del receptor con
residuos procedentes de una CDR de una especie no humana (anticuerpo
donante), tal como el ratón, la rata o conejo, que tienen
especificidad, afinidad y capacidad deseadas. En algunos casos, los
residuos de la región estructural (FR) Fv se remplazan con residuos
no humanos correspondientes. Además, los anticuerpos humanizados
podrían comprender residuos que no se hallan ni en el anticuerpo
receptor ni en el CDR ni en las secuencias estructurales
importadas. Estas modificaciones se hacen para refinar aún más y
maximizar las prestaciones del anticuerpo. En general, el
anticuerpo humanizado comprenderá sustancialmente la totalidad de al
menos un, y típicamente dos, dominios variables, en los cuales la
totalidad o sustancialmente la totalidad de las regiones CDR
corresponden a las de una inmunoglobulina no humana, y la totalidad
o sustancialmente la totalidad de las regiones FR son las de una
secuencia de inmunoglobulina humana. El anticuerpo humanizado,
óptimamente también comprenderá al menos una porción de una región
constante de inmunoglobulina (Fc), típicamente la de una
inmunoglobulina humana. Para más detalles, consultar Jones et
al., Nature, 321:522-525 (1986);
Reichmann et al., Nature, 332:323-329
(1988); y Presta, Curr. Op. Struct. Biol.,
2:593-596 (1992). El anticuerpo humanizado incluye
un anticuerpo PRIMATIZED^{TM}, en donde la región unidora de
antígeno del anticuerpo se deriva de un anticuerpo producido
inmunizando monos macacos con el antígeno de interés. Los
procedimientos para preparar anticuerpos humanizados son conocidos
en el campo.
Los anticuerpos humanos pueden producirse
también usando varias técnicas conocidas en el campo, incluyendo
las bibliotecas de exhibición en fago. Hoogenboom y Winter, J.
Mol. Biol., 227:381 (1991); Marks et al., J. Mol.
Biol., 222:581 (1991). Las técnicas de Cole et al. y
Boerner et al. también están disponibles para la
preparacióin de anticuerpos monoclonales humanos. Cole et
al., Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R.
Liss, p. 77 (1985); Boerner et al., J. Immunol.,
147(1):86-95 (1991).
"Aislado", cuando se usa para describir los
diversas proteínas descritas en la presente, significa una proteína
que se ha identificado y separado y/o recuperado de un componente de
su entorno natural. Los componentes contaminantes de su entorno
natural son materiales que típicamente interferirían con los usos
diagnósticos o terapéuticos de la proteína, y podrían incluir
enzimas, hormonas, y otros solutos proteicos o no proteicos. En las
realizaciones preferidas, la proteína se purificará (1) hasta un
grado suficiente para obtener al menos 15 residuos de la secuencia
N-terminal o interna mediante el uso de un
secuenciador de copa rotatoria, o (2) hasta su homogeneidad según
SDS-PAGE, en condiciones reductoras o no reductoras,
usando azul de Coomassie o, preferiblemente, tinción con plata. La
proteína aislada incluye la proteína in situ dentro de
células recombinantes, puesto que al menos uno componente del
entorno natural de la proteína no estará presente. Sin embargo,
ordinariamente, la proteína aislada se preparará mediante al menos
un paso de purificación.
"Tratamiento" o "terapia" se refieren
tanto al tratamiento terapéutico como a las medidas profilácticas o
preventivas.
Mamífero, para los propósitos de tratamiento o
terapia, se refiere a cualquier animal clasificado como un
mamífero, incluyendo los humanos, los animales domésticos y de
granja, de zoológicos y de deportes, o los animales de compañía,
tales como los perros, los caballos, los gatos, las vacas, etc.
Preferiblemente, el mamífero es un humano.
"Condición patológica relacionada con
TALL-1" y "condición patológica relacionada con
APRIL" se refieren respectivamente a patologías o condiciones
asociadas con niveles anormales de expresión o actividad de
TALL-1 o APRIL, por encima de, o inferiores a los
niveles de expresión o actividad en mamíferos sanos normales, en
donde tales niveles excesivos o disminuidos ocurren de forma
sistémica, localizada, o en un tejido o tipo celular o ubicación en
el cuerpo determinado. Las condiciones patológicas relacionadas con
TALL-1 y las condiciones patológicas relacionada
con APRIL incluyen las enfermedades crónicas relacionadas con la
inmunidad y el cáncer.
Los términos "cáncer", "canceroso" y
"maligno" se refieren o describen la condición fisiológica en
mamíferos que se caracteriza típicamente por un crecimiento celular
descontrolado. Los ejemplos de cáncer incluyen, pero no se limitan
a, el carcinoma, incluyendo el adenocarcinoma, el linfoma, el
blastoma, el melanoma, el sarcoma y la leucemia. Los ejemplos más
concretos de tales cánceres incluyen el carcinoma de célula
escamosa, el cáncer pulmonar de célula pequeña, el cáncer pulmonar
de células no pequeñas, el cáncer gastrointestinal, el linfoma de
Hodgkin o no Hodgkin, el cáncer de páncreas, el glioblastoma, el
cáncer de cuello de útero, el cáncer de ovarios, los canceres de
hígado, tales como el carcinoma hepático y hepatoma, el cáncer de
vejiga, el cáncer de mama, el cáncer de colon, el cáncer
colorectal, el carcinoma de endometrio, el carcinoma de la glándula
salivar, los cánceres de riñón, tal como el carcinoma de célula
renal y los tumores de Wilm, el carcinoma de célula basal, el
melanoma, el cáncer de próstata, el cáncer de vulva, el cáncer de
tiroides, el cáncer de testículos, el cáncer de esófago, y varios
tipos de cánceres de cabeza y cuello. Opcionalmente, el cáncer
expresará, o tendrá asociados con la célula cancerosa, el
TALL-1, APRIL, TACI o BCMA. A modo de ejemplo, se
ha publicado en la literatura que los cánceres de colon, pulmón y
melanoma expresan APRIL. Los cánceres preferidos para su
tratamiento en la presente incluyen el linfoma, leucemia, mieloma, y
los subtipos de los mismos, tales como el linfoma de Burkitt, el
mieloma múltiple, la leucemia linfoblástica aguda o la leucemia
linfocítica, los linfomas de Hodgkin y de no Hodgkin, y la leucemia
mieloide aguda.
El término "enfermedad relacionada con la
inmunidad" significa una enfermedad en la que un componente del
sistema inmunitario de un mamífero causa, media o contribuye de otro
modo a una morbidez en el mamífero. También se incluyen las
enfermedades en las que la estimulación o la intervención de la
respuesta inmunitaria tienen un efecto de mejoría sobre la
progresión de la enfermedad. Se incluyen dentro de este término las
enfermedades autoinmunes, las enfermedades inflamatorias
inmunomediadas, las enfermedades inflamatorias no inmunomediadas,
las enfermedades infecciosas, y las enfermedades de
inmunodeficiencia. Los ejemplos de enfermedades relacionadas con la
inmunidad y enfermedades inflamatorias, algunas de las cuales son
inmunitarias o están mediadas por células T, que pueden tratarse de
acuerdo con la invención incluyen el lupus eritematoso, la artritis
reumatoide, la artritis crónica juvenil, las espóndiloartropatías,
la esclerosis sistémica (esclerodermia), las miopatías inflamatoria
idiopáticas (dermatomiositis, polimiositis), el síndrome de Sjogren,
la vasculitis sistémica, la sarcoidosis, la anemia autoimmune
hemolítica (pancitopenia inmune, hemoglobinuria nocturna
paroxismal), la trombocitopenia autoinmune (trombocitopenia
idiopática púrpura, trombocitopenia inmune-mediada),
tiroiditis (enfermedad de Grave, tiroiditis de Hashimoto,
tiroiditis linfocítica juvenil, tiroiditis atrófica), la diabetes
mellitus, la enfermedad renal inmunomediada (glomerulonefritis,
nefritis tubulointersticial), las enfermedades desmielinizantes de
los sistemas nerviosos central y periférico tales como la esclerosis
múltiple, la polineuropatía desmielinizante idiopática, y la
polineuropatía desmielinizante inflamatoria crónica; las
enfermedades hepatobiliares, tales como la hepatitis infecciosa
(hepatitis A, B, C, D, E y otros virus no hepatotrópicos), la
hepatitis activa crónica autoinmune, la cirrosis biliar primaria,
la hepatitis granulomatosa, y la colangitis esclerosante,
enfermedades inflamatorias y fibróticas del pulmón tales como la
enfermedad inflamatoria del intestino (colitis ulcerante:
enfermedad de Crohn), la enteropatía sensible al gluten, y la
enfermedad de Whipple, las enfermedades de la piel autoinmunes o
inmunomediadas, incluyendo las enfermedades ampollosas de la piel,
el eritema multiforme y la dermatitis por contacto, la psoriasis,
las enfermedades alérgicas tales como el asma, la rinitis alérgica,
la dermatitis atópica, la hipersensibilidad a la comida y la
urticaria, las enfermedades inmunológicas del pulmón, tales como
las neumonías eosinofílicas, la fibrosis pulmonar idiopática y la
neumonitis por hipersensibilidad; las enfermedades asociadas a
trasplantes, incluyendo el rechazo del injerto y la enfermedad del
injerto contra el huésped. Las enfermedades infecciosas incluyen el
SIDA (infección por VIH), la hepatitis A, B, C, D y E, las
infecciones bacterianas, las infecciones fúngicas, las infecciones
por protozoos y las infecciones parasitarias.
"Enfermedad autoinmune" se usa en la
presente en un sentido amplio, general, para referirse a los
trastornos o condiciones en mamíferos en los que la destrucción del
tejido normal o sano surge a partir de respuestas inmunitarias
humorales o celulares del mamífero individual contra sus propios
constituyentes tisulares. Los ejemplos incluyen, pero no se limitan
a, el lupus eritematoso, la tiroiditis, la artritis reumatoide, la
psoriasis, la esclerosis múltiple, la diabetes autoinmune, y la
enfermedad inflamatoria intestinal (IBD).
El término "agente citotóxico", tal como se
usa en la presente, se refiere a una sustancia que inhibe o
previene la función de las células y/o causa la destrucción de las
células. Se pretende que el término incluya los isótopos
radiactivos (por ejemplo, ^{131}I, ^{125}I, ^{90}Y y
^{186}Re), los agentes quimioterapéuticos, y toxinas tales como
las toxinas enzimáticamente activas de origen bacteriano, fúngico,
vegetal o animal, o fragmentos de las mismas.
Un "agente quimioterapéutico" es un
compuesto químico útil en el tratamiento de la enfermedad. Los
ejemplos de agentes quimioterapéuticos incluyen la adriamicina, la
doxorubicina, la epirubicina, el 5-fluorouracilo,
el arabinósido de citosina ("Ara-C"), la
ciclofosfamida, la tiotepa, el busulfán, la citoxina, los taxoides,
por ejemplo, el paclitaxel (Taxol, Bristol-Myers
Squibb Oncology, Princeton, N.J.) y el doxetaxel (Taxotere,
Rhône-Poulenc Rorer, Antony, Rnace), el toxotero, el
metotrexato, el cisplatino, el melfalán, el CPT-11,
la vinblastina, la bleomicina, el etopósido, la ifosfamida, la
mitomicina C, la mitoxantrona, la vincristina, la vinorelbina, el
carboplatino, la teniposida, la daunomicina, la carminomicina, la
aminopterina, la dactinomicina, las mitomicinas, las esperamicinas
(ver patente estadounidense nº 4.675.187), el melfalán y otras
mostazas de nitrógeno relacionadas. También se incluyen en esta
definición los agentes hormonales que actúan para regular o inhibir
la acción hormonal, tales como el tamoxifén y la onapristona.
Un "agente inhibidor del crecimiento",
cuando se usa en la presente, se refiere a un compuesto o
composición que inhibe el crecimiento de una células, tanto in
vitro como in vivo. Por tanto, el agente inhibidor del
crecimiento es uno que reduce significativamente el porcentaje de
células que sobreexpresan tales genes en la fase S. Los ejemplos de
agentes inhibidores incluyen agentes que bloquean la progresión del
ciclo celular (en una etapa distinta de la fase S), tales como los
agentes que inducen la detención en G1 y en la fase M. Los
bloqueadores clásicos de la fase M incluyen el vincas (vincristina y
vinblastina), el taxol, y los inhibidores de la topo II tales como
la doxorubicina, la epirubicina, la daunorubicina, el etoposido y la
bleomicina. Aquellos agentes que detienen en G1 también desbordan
hacia la detención en la fase S, por ejemplo, los agentes
alquilantes del ADN tales como el tamoxifén, la prednisona, la
dacarbazina, la mecloretamina, el cisplatino, el metotrexato, el
5-fluorouracilo y el Ara-C. Puede
hallarse información adicional en The Molecular Basis of
Cancer, editores Mendelsohn e Israel, capítulo 1, titulado
"Cell cycle regulation, oncogens, and antineoplastic drugs"
por Murakami et al. (WB Saunders: Philadelphia, 1995),
especialmente en la p. 13.
El término "citocina" es un término
genérico para las proteínas liberadas por una población de células
que actúan sobre otra célula como mediadores intercelulares. Los
ejemplos de tales citocinas incluyen las linfocinas, las monocinas
y las hormonas polipeptídicas tradicionales. Entre las citocinas se
incluyen las hormonas del crecimiento, tales como la hormona del
crecimiento humana, la N-metionil hormona del
crecimiento humana, y la hormona del crecimiento bovina; la hormona
paratiroidea; la tiroxina; la insulina; la proinsulina; la
relaxina; la prorelaxina; las hormonas glicoproteicas tales como la
hormona estimuladora del folículo (FSH), la hormona estimuladora de
la tiroides (TSH) y la hormona luteinizante (LH); el factor de
crecimiento hepático; el factor de crecimiento de fibroblastos; la
prolactina; el lactógeno placentario; el
factor-\alpha y -\beta de la necrosis tumoral;
la sustancia inhibidora de mullerian; el péptido asociado a la
gonadotropina de ratón; la inhibina; la activina; el factor de
crecimiento endotelial vascular; la integrina; la trombopoyetina
(TPO); los factores de crecimiento del nervio; el factor de
crecimiento de las plaquetas; los factores de crecimiento
transformadores (TGF) tales como el TGF-\alpha y
TGF-\beta; el factor-I y -II de
crecimiento similar a la insulina; la eritropoyetina (EPO); los
factores osteoinductivos; los interferones tales como el
interferón-\alpha, -\beta, y -gamma; los
factores estimuladores de colonias (CSF), tales como el CSF de
macrófagos (M-CSF); el CSF de
granulocitos-macrófagos (GM-CSF), y
el CSF de granulocitos (G-CSF); las interleucinas
(IL), tales como las IL-1, IL-2,
IL-3, IL-4, IL-5,
IL-6, IL-7, IL-8,
IL-9, IL-11, IL-12;
y otros factores polipéptidos tales como el LIF y el ligando kit
(KL). Tal como se usa en la presente, el término citocina incluye
las proteínas procedentes de fuentes naturales o de cultivos de
células recombinantes, y los equivalentes biológicamente activos de
las citocinas de secuencia nativa.
Generalmente, los procedimientos de la invención
para modular la actividad de TALL-1, APRIL, TACI,
y/o BCMA en células de mamífero comprenden la exposición de las
células a una cantidad deseada de antagonista o agonista que afecta
la interacción de TALL-1 o APRIL con TACI o BCMA.
Preferiblemente, la cantidad de antagonista o agonista empleado
será una cantidad efectiva para afectar la unión y/o actividad del
ligando respectivo o del receptor respectivo, para conseguir un
efecto terapéutico. Esto puede conseguirse in vivo o ex
vivo de acuerdo, por ejemplo, con los procedimientos descritos
más adelante en los ejemplos. Las condiciones o trastornos
ilustrativos a ser tratados con tales antagonistas de
TALL-1 o antagonistas de APRIL incluyen condiciones
en mamíferos denominadas clínicamente como enfermedades autoinmunes,
incluyendo, pero no limitándose a, la artritis reumatoide, la
esclerosis múltiple, la psoriasis y el lupus, u otras condiciones
patológicas en las que la respuesta o respuestas de las células B
en los mamíferos están anormalmente reguladas al alza, tales como
el cáncer. Tal como se muestra en los ejemplos siguientes, las
moléculas inmunoadhesinas de TACI inhibieron sustancialmente la
enfermedad artrítica inducida por la inmunización con colágeno del
tipo-II, redujeron la inflamación articular y la
formación de anticuerpos anti-colágeno, impidieron
la destrucción del hueso y del cartílago, y bloquearon la
estimulación de células T autoreactivas. Estos resultados implican
el TACI en la autoinmunidad mediada por células T, y sugiere que el
bloqueo o la inhibición de las interacciones de TACI con
TALL-1 y/o APRIL podría tener una utilidad
terapéutica para las enfermedades autoinmunes como la RA. Las
condiciones o trastornos ilustrativos a ser tratados con agonistas
de TACI o agonistas de BCMA incluyen la inmunodeficiencia y el
cáncer.
En la presente también se proporcionan
procedimientos diagnósticos. Por ejemplo, los antagonistas o
agonistas podrían emplearse para detectar los respectivos ligandos
(TALL-1 o APRIL) o receptores (TACI o BCMA) en
mamíferos que se sabe o se sospecha tienen una condición patológica
relacionada con el TALL-1 o una condición
patológica relacionada con el APRIL. La molécula antagonista o
agonista podría usarse, por ejemplo, en inmunoensayos para detectar
o cuantificar el TALL-1 o APRIL en una muestra. Una
muestra, tal como las células obtenidas de un mamífero, puede
incubarse en presencia de una molécula antagonista o agonista
marcada, y puede realizarse la detección del antagonista o agonista
marcado unido en la muestra. Tales ensayos, incluyendo varios
procedimientos de ensayo clínicos, son conocidos en el campo, por
ejemplo, tal como se describen en Voller et al.,
Immunoassays, University Park, 1981.
Los antagonistas y agonistas que pueden
emplearse en los procedimientos incluyen, pero no se limitan a las
formas solubles de los receptores TACI y BCMA, las inmunoadhesinas
del receptor TACI y las inmunoadhesinas del receptor BCMA, las
proteínas de fusión de TACI o BCMA, las formas modificadas
covalentemente de TACI o BCMA, las variantes del receptor TACI y
del receptor BCMA, los anticuerpos contra el receptor TACI o BCMA,
y los anticuerpos contra TALL-1 o APRIL. Más
adelante se describen varias técnicas que pueden emplearse para
preparar los antagonistas y agonistas.
Generalmente, las composiciones de la invención
podrían prepararse usando técnicas recombinantes conocidas en la
técnica. La descripción siguiente se refiere a procedimientos para
producir tales polipéptidos cultivando células huéspedes
transformadas o transfectadas con un vector que contiene el ácido
nucleico codificantes, y recuperando el polipéptido del cultivo
celular. (Consultar, por ejemplo, Sambrook et al.,
Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Nueva York: Cold
Spring Harbor Laboratory Press, 1989); Dieffenbach et al.,
PCR Primer: A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor
Laboratory Press, 1995)).
El ácido nucleico (por ejemplo, ADNc o ADN
genómico) que codifica el polipéptido deseado podría insertarse
dentro de un vector replicable para su clonación (amplificación del
ADN) o para su expresión. Hay varios vectores disponibles
públicamente. Los componentes del vector generalmente incluyen, pero
no están limitados a, uno o más de los siguientes: una secuencia
señal, un origen de replicación, uno o más genes marcadores, un
elemento potenciador, un promotor, y una secuencia de terminación
de la transcripción, cada uno de los cuales se describe más abajo.
En el campo se conocen secuencias señal, orígenes de replicación,
genes marcadores, elementos potenciadores y secuencias terminadoras
de la transcripción opcionales que podrían emplearse y se describen
con más detalle en WO97/25428.
Los vectores de clonación y expresión usualmente
contienen un promotor que es reconocido por el organismo huésped, y
que está unido operativamente a la secuencia de ácido nucleico
codificante. Los promotores son secuencias no traducidas ubicadas
cadena arriba (5') respecto el codón de inicio de un gen estructural
(generalmente dentro de aproximadamente 100 a 1000 p.b.) que
controla la transcripción y traducción de una determinada secuencia
de ácido nucleico a la cual está unido operativamente. Tales
promotores típicamente se dividen en dos clases, inducibles y
constitutivos. Los promotores inducibles son promotores que inician
niveles incrementados de transcripción a partir del ADN bajo su
control en respuesta a algún cambio en las condiciones de cultivo,
por ejemplo, la presencia o ausencia de un nutriente o un cambio en
la temperatura. En este momento se conocen bien un gran número de
promotores reconocidos por una variedad de células huéspedes
potenciales. Estos promotores se unen operativamente al ADN
codificante, extrayendo el promotor del ADN fuente mediante la
digestión con un enzima de restricción, e insertando la secuencia
promotora aislada en el vector.
Los promotores apropiados para su uso con
huéspedes procariotas y eucariotas son conocidos en el campo, y se
describen con más detalle en WO97/25428.
La construcción de vectores apropiados, que
contienen uno o más de los componentes listados más arriba, emplea
técnicas de ligación estándares. Los plásmidos o fragmentos de ADN
aislados pueden cortarse, ajustarse, y religarse de la forma
deseada para generar el plásmido necesario. Para el análisis para
confirmar las secuencias correctas en los plásmidos construidos,
las mezclas de ligación pueden usarse para transformar la E.
coli K12 cepa 294 (ATCC 31.446) y los transformantes exitosos
pueden seleccionarse por resistencia a la ampicilina o tetraciclina
según sea apropiado. Los plásmidos para los transformantes se
preparan, analizan mediante digestión con endonucleasas de
restricción, y/o se secuencian usando técnicas estándares conocidas
en el campo. [Consultar, por ejemplo, Messing et al.,
Nucleic Acids Res., 9:309 (1981); Maxam et al.,
Methods in Enzymology, 65:499 (1980)].
Podrían emplearse vectores de expresión que
proporcionan la expresión transitoria en células de mamíferos del
ADN codificante. En general, la expresión transitoria implica el uso
de un vector de expresión que es capaz de replicarse eficientemente
en una célula huésped, de tal forma que la célula huésped acumula
muchas copias del vector de expresión y, a su vez, sintetiza
niveles elevados de un polipéptido deseado codificado por el vector
de expresión [Sambrook et al., ver más arriba]. Los sistemas
de expresión, que comprenden un vector de expresión apropiado y una
célula huésped, permiten la identificación positiva práctica de los
polipéptidos codificados por los ADN clonados, así como el examen
rápido de tales polipéptidos en busca de propiedades biológicas o
fisiológicas.
En Gething et al., Nature,
293:620-625 (1981); Mantei et al.,
Nature, 281:40-46 (1979); EP 117.060; y EP
117.058 se describen otros procedimientos, vectores y células
huéspedes apropiados para su adaptación a la síntesis de los
polipéptidos deseados en cultivos de células vertebradas
recombinantes.
Las células huéspedes apropiadas para clonar o
expresar el ADN en los vectores de la presente incluyen las células
de procariota, de levadura o de eucariota superior. Los procariotas
apropiados incluyen, pero no se limitan a las eubacterias, tales
como los organismos Gram-negativos o
Gram-positivos, por ejemplo, las enterobacterias
tales como Escherichia, por ejemplo, E. coli, Enterobacter,
Erwinia, Klebsiella, Proteus, Salmonella, por ejemplo,
Salmonella typhimurium, Serratia, por ejemplo, Serratia
marcescans, y Shigella, así como Bacilli tales como B.
subtilis y B. licheniformis (por ejemplo, B.
licheniformis 41P descubierta en DD 266.710 publicada el 12 de
abril de 1989), pseudomonas tales como P. aeruginosa, y
Streptomyces. Preferiblemente, la célula huésped debería secretar
cantidades mínimas de enzimas proteolíticos.
Además de los procariotas, los microbios
eucariotas, tales como los hongos filamentosos o las levaduras, son
huéspedes de clonación o expresión apropiados para los vectores. Las
células huéspedes apropiadas para la expresión de polipéptidos
glicosilados se derivan de organismos multicelulares. Los ejemplos
de todas esas células huéspedes se describen adicionalmente en
WO97/25428.
Las células huéspedes se transfectan y
preferiblemente transforman con los vectores de expresión o
clonación descritos más arriba, y se cultivan en medio nutritivo
modificado según sea apropiado para inducir los promotores,
seleccionar los transformantes, o amplificar los genes que codifican
las secuencias deseadas.
La transfección se refiere a la captura de un
vector de expresión por parte de una célula huésped, sin importar
si de hecho se expresa algún secuencia codificante. Hay numerosos
procedimientos de transfección conocidos por el especialista
ordinariamente capacitado, por ejemplo, el CaPO_{4} y la
electroporación. La transfección exitosa generalmente se reconoce
cuando ocurre cualquier indicación de la operación de este vector
dentro de la célula huésped.
Transformación significa introducir ADN en un
organismo de tal forma que el ADN es replicable, bien como un
elemento extracromosómico o mediante integración cromosómica.
Dependiendo de la célula huésped usada, la transformación se
realiza usando técnicas estándares apropiadas para tales células. El
tratamiento con calcio empleando cloruro cálcico, tal como se
describe en Sambrook et al., ver más arriba, o la
electroporación se usan generalmente con los procariotas u otras
células que contienen barreras sustanciales de pared celular. La
infección con Agrobacterium tumefaciens se usa para la
transformación de ciertas células vegetales, tal como describen
Shaw et al., Gene, 23:315 (1983) y WO 89/05859
publicada el 29 de junio de 1989. Además, las plantas podrían
transfectarse usando el tratamiento con ultrasonidos tal como se
describen en WO 91/00358, publicada el 10 de enero de 1991.
Para las células de mamífero sin tales paredes
celulares, podría emplearse el procedimiento de precipitación con
fosfato cálcico de Graham y van der Eb, Virology,
52:456-457 (1978). Los aspectos generales de las
transformaciones de sistemas huéspedes de células de mamífero se
han descrito en la patente estadounidense nº 4.399.216. Las
transformaciones en levaduras típicamente se llevan a cabo de
acuerdo con el procedimiento de Van Solingen et al., J.
Bact., 130:946 (1977) y Hsiao et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. (USA), 76:3829 (1979). Sin embargo, también podrían
usarse otros procedimientos para introducir el ADN en las células,
tales como mediante la microinyección nuclear, la electroporación,
la fusión de protoplastos bacterianos con células intactas, o los
policationes, por ejemplo, el polibreno, la poliornitina. Para
información sobre varias técnicas para transformar células de
mamífero, consultar Keown et al., Methods in
Enzymology, 185:527-537 (1990) y Mansour et
al., Nature, 336:348-352 (1988).
Las células procariotas podrían cultivarse en
medios de cultivo apropiados como se describe de forma general en
Sambrook et al., ver más arriba. Los ejemplos de medios de
cultivo disponibles comercialmente incluyen el F10 de Ham (Sigma),
el medio esencial mínimo ("MEM", Sigma), el
RPMI-1640 (Sigma), y el medio de Eagle modificado
por Dulbecco ("DMEM", Sigma). Cualquiera de tales medios podría
suplementarse según fuera necesario con hormonas y/o otros factores
de crecimiento (tales como la insulina, transferrina o el factor de
crecimiento epidérmico), sales (tales como el cloruro sódico, el
calcio, el magnesio, y el fosfato), tampones (tales como el HEPES),
nucleósidos (tales como la adenosina y la timidina), antibióticos
(tales como el fármaco Gentamicina^{TM}), oligoelementos
(definidos como compuestos inorgánicos presentes usualmente en
concentraciones finales del orden micromolar), y glucosa o una
fuente de energía equivalente. Cualquier otro suplemento necesario
podría incluirse también en las concentraciones apropiadas, las
cuales serán conocidas por los especialistas en el campo. Las
condiciones del cultivo, tales como la temperatura, el pH y
similares, son aquéllas usadas previamente con la célula huésped
seleccionada para la expresión, y serán evidentes para el
especialista ordinariamente capacitado.
En general, los principios, protocolos y
técnicas prácticas para maximizar la productividad de los cultivos
de células de mamífero pueden hallarse en Mammalian Cell
Biotechnology: A Practical Approach, editor M. Butler, (IRL
Press, 1991).
Los polipéptidos expresados podrían recuperarse
del medio de cultivo como un polipéptido secretado, aunque podrían
recuperarse también a partir de lisados de la célula huésped cuando
se producen directamente sin una señal secretoria. Si el
polipéptido está unido a la membrana, puede liberarse de la membrana
usando una solución detergente apropiada (por ejemplo
Triton-X 100), o su región extracelular podría
liberarse mediante corte enzimático.
Cuando el polipéptido se produce en una célula
recombinante distinta de una de origen humano, está libre de
proteínas o polipéptidos de origen humano. Sin embargo,
habitualmente es necesario recuperar o purificar el polipéptido de
proteínas o polipéptidos de la célula recombinante para obtener
preparaciones que son sustancialmente homogéneas. Como un primer
paso, el medio de cultivo o lisado podría centrifugarse para
eliminar los restos celulares en partículas. Los siguientes son
procedimientos ilustrativos de los procedimientos de purificación
apropiados: mediante fraccionamiento en una columna de intercambio
iónico; la precipitación con etanol; la HPLC de fase inversa; la
cromatografía en columnas de sílice o con una resina de intercambio
catiónico tal como la DEAE; el cromatoenfoque; la
SDS-PAGE; la precipitación con sulfato amónico; la
filtración en gel usando, por ejemplo, Sephadex
G-75; y las columnas de Proteína
A-Sepharose para eliminar contaminantes tales como
la IgG.
Las variantes del receptor TACI y las variantes
del receptor BCMA se contemplan para su uso en la invención. Tales
variantes pueden prepararse usando cualquier técnica apropiada en el
campo. Las variantes del receptor pueden prepararse introduciendo
cambios de nucleótidos apropiados en el ADN del receptor, y/o
mediante la síntesis del polipéptido del receptor deseado. Los
especialistas en el campo apreciarán que los cambios de aminoácidos
podrían alterar los procesos del receptor posteriores a la
traducción, tal como cambiando el número o posición de los sitios
de glicosilación o alterando las características del anclaje a la
membrana.
Las variaciones en la secuencia nativa del
receptor o en varios dominios del receptor descritas en la
presente, pueden hacerse, por ejemplo, usando cualquiera de las
técnicas y guías para mutaciones conservadoras y no conservadores
establecida, por ejemplo, en la patente estadounidense nº 5.364.934.
Las variaciones podrían ser una sustitución, una supresión o
inserción de uno o más codones que codifican el receptor, la cual
resulta en un cambio en la secuencia de aminoácidos del receptor en
comparación con el polipéptido del receptor de secuencia nativa.
Opcionalmente, la variación resulta en la sustitución de al menos un
aminoácido con cualquier otro aminoácido en uno o más de los
dominios del receptor. La guía para determinar qué residuo
aminoácido podría insertarse, sustituirse o suprimirse sin afectar
de forma adversa la actividad deseada, podría hallarse comparando
la secuencia del receptor con la de moléculas de proteína homólogas
conocidas, y minimizando el número de cambios en la secuencia de
aminoácidos hechos en regiones de elevada homología. Las
sustituciones de aminoácidos pueden ser el resultado de remplazar
un aminoácido con otro aminoácido que tiene propiedades
estructurales y/o químicas similares, tal como en la sustitución de
una leucina con una serina, es decir, sustituciones de aminoácido
conservadoras. Las inserciones o supresiones podrían estar
opcionalmente en el rango de aproximadamente de 1 a 5 aminoácidos.
La variación permitida podría determinarse haciendo sistemáticamente
inserciones, supresiones o sustituciones de aminoácidos en la
secuencia, y ensayando las variantes resultantes en busca de la
actividad exhibida por la secuencia nativa madura o de longitud
completa.
En la presente se proporciona fragmentos
polipeptídicos de TACI o BCMA. Tales fragmentos podrían estar
truncados en los extremos N-terminal o
C-terminal, o podrían carecer de residuos internos,
por ejemplo, cuando se comparan con una proteína nativa de longitud
completa. Ciertos fragmentos carecen de residuos aminoácidos que no
son esenciales para una actividad biológica deseada del polipéptido
del receptor. Opcionalmente, los fragmentos del polipéptido TACI o
BCMA comprenden las variantes por supresión del ECD, en las cuales
uno o más residuos aminoácidos han sido suprimidos del los extremos
N-terminal o C-terminal de la
secuencia del ECD del receptor. Preferiblemente, tales variantes
por supresión del ECD tienen al menos una actividad biológica en
comparación con la secuencia nativa del receptor.
Los fragmentos de TACI o BCMA podrían prepararse
mediante cualquiera de un cierto número de técnicas convencionales.
Los fragmentos peptídicos deseados podrían sintetizarse
químicamente. Una estrategia alternativa implica generar fragmentos
del receptor mediante digestión enzimática, por ejemplo, tratando la
proteína con un enzima que se sabe corta las proteínas en sitios
definidos por determinados residuos aminoácidos, o mediante la
digestión del ADN con enzimas de restricción apropiados y aislando
el fragmento deseado. Aún otras técnicas apropiadas implican aislar
y amplificar un fragmento de ADN, que codifica un fragmento
polipeptídico deseado, mediante la reacción en cadena de la
polimerasa (PCR). Los oligonucleótidos que definen los extremos
deseados del fragmento de ADN se emplean en los cebadores 5' y 3'
en la PCR.
En realizaciones particulares, las sustituciones
conservadoras de interés se muestran en la Tabla 1 bajo el epígrafe
de sustituciones preferidas. Si tales sustituciones resultan en un
cambio en la actividad biológica, entonces se introducen cambios
más sustanciales, denominados sustituciones ilustrativas en la Tabla
1, o como se describe adicionalmente más abajo en referencia a las
clases de aminoácidos.
Se consiguen modificaciones sustanciales, en
función de la identidad inmunológica del polipéptido del receptor,
seleccionando sustituciones que difieren significativamente en su
efectos sobre el mantenimiento de (a) la estructura del esqueleto
del polipéptido en el área de la sustitución, por ejemplo, como una
conformación en hoja o hélice, (b) la carga o hidrofobicidad de la
molécula en el sitio diana, o (c) el volumen de la cadena lateral.
Los residuos que ocurren de forma natural se dividen en grupos en
base a sus propiedades de cadena lateral comunes:
- (1)
- hidrofóbicos: norleucina, met, ala, val, leu, ile;
- (2)
- hidrofílicos neutros: cys, ser, thr;
- (3)
- ácidos: asp, glu;
- (4)
- básicos: asn, gln, his, lys, arg;
- (5)
- residuos que influyen en la orientación de la cadena: gly, pro; y
- (6)
- aromáticos: trp, tyr, phe.
Las sustituciones no conservadoras supondrán
intercambiar miembros de una de estas clases por otra clase. Tales
residuos sustituidos también podrían introducirse en los sitios de
sustitución conservados o, más preferiblemente, en los sitios
restantes (no conservados).
Las variaciones pueden hacerse usando
procedimientos conocidos en el campos, tales como la mutagénesis
mediada por oligonucleótidos (dirigida contra un sitio), el barrido
con alanina, y la mutagénesis con PCR. La mutagénesis dirigida
contra un sitio, Carter et al., Nucl. Acids Res.,
13:4331 (1986); Zoller et al., Nucl. Acids Res.,
10:6487 (1987)], la mutagénesis por casete [Wells et al.,
Gene, 34:315 (1985)], la mutagénesis por selección de la
restricción [Wells et al., Philos. Trans. R. Soc. London
Ser A, 317:415 (1986)] u otras técnicas conocidas pueden
realizarse sobre el ADN clonado para producir el ADN variante.
El análisis de aminoácidos por barrido puede
emplearse también para identificar uno o más aminoácidos a lo largo
de una secuencia contigua. Entre los aminoácidos de barrido
preferidos se encuentran los aminoácidos neutros, relativamente
pequeños. Tales aminoácidos incluyen la alanina, la glicina, la
serina y la cisteína. La alanina es típicamente un aminoácido de
barrido preferido entre este grupo, porque elimina la cadena lateral
más allá del carbono beta y es menos probable que altere la
conformación de la cadena principal de la variante. [Cunningham y
Wells, Science, 244: 1081-1085 (1989)]. La
alanina también se prefiere típicamente porque es el aminoácido más
común. Además, frecuentemente se halla tanto en posiciones
enterradas como expuestas. [Creighton, The Proteins, (W.H.
Freeman & Co., N.Y.); Chothia, J. Mol. Biol., 150:1
(1976)]. Si la sustitución con alanina no rinde cantidades
adecuadas de la variante, entonces puede usarse un aminoácido
isostérico.
Las formas solubles de los receptores TACI o
receptores BCMA también podrían emplearse como antagonistas en los
p procedimientos de la invención. Tales formas solubles de TACI o
BCMA podrían comprender o consistir en dominios extracelulares del
respectivo receptor (y carecer de los dominios transmembrana e
intracelulares del respectivo receptor). Las secuencias del dominio
extracelular de TACI o BCMA podrían usarse como antagonistas, o
podrían modificarse adicionalmente como se describe más abajo (tal
como fusionándolas a una inmunoglobulina, una etiqueta de epítopo,
o una cremallera de leucina). Ciertas regiones del dominio
extracelular de TACI y BCMA se han descrito en la literatura, y
podrían delinearse adicionalmente usando técnicas conocidas por el
especialista capacitado. Los especialistas en el campo serán capaces
de seleccionar, sin experimentación innecesaria, una secuencia
deseada de dominio extracelular de TACI o BCMA para emplearla como
antagonista.
Las moléculas de inmunoadhesina se contemplan
adicionalmente para su uso en los procedimientos de la presente.
Las inmunoadhesinas del receptor TACI podrían comprender varias
formas de TACI, tales como el polipéptido de longitud completa así
como las formas solubles del receptor, la cuales comprenden una
secuencia del dominio extracelular (ECD) o un fragmento de la
secuencia del ECD. En una realización, la molécula podría
comprender una fusión del receptor TACI con una inmunoglobulina o
una región particular de una inmunoglobulina. Para una forma
bivalente de la inmunoadhesina, tal fusión podría ser con la región
Fc de una molécula de IgG. Las fusiones de Ig preferiblemente
incluyen la sustitución de una forma soluble (con el dominio
transmembrana suprimido o desactivado) de una polipéptido del
receptor en lugar de la menos una región variable dentro de una
molécula de Ig. En una realización particularmente preferida, la
fusión con inmunoglobulina incluye el gozne, y las regiones CH2 y
CH3, o el gozne, y las regiones CH1, CH2 y CH3 de una molécula de
IgG1. Para la producción de fusiones con inmunoglobulina consultar
también la patente estadounidenses nº 5.428.130 concedida el 27 de
junio de 1995, y Chamow et al., TIBTECH,
14:52-60 (1996).
El diseño más simple y más sencillo de
inmunoadhesina combina el dominio o dominos de unión de la adhesina
(por ejemplo, el dominio extracelular (ECD) de un receptor) con la
región Fc de una cadena pesada de inmunoglobulina. Ordinariamente,
cuando se preparan las inmunoadhesinas de la presente invención, el
ácido nucleico que codifica el dominio unidor de la adhesina se
fusionará de forma C-terminal respecto el ácido
nucleico que codifica el extremo N-terminal de una
secuencia de dominio constante de una inmunoglobulina, sin embargo,
también son posibles las fusiones N-terminales.
Típicamente, en tales fusiones el polipéptido
quimérico codificado retendrá al menos los dominios gozne, CH2 y
CH3 funcionalmente activos de la región constante de una cadena
pesada de inmunoglobulina. Las fusiones también se hacen en el
extremo C-terminal de la porción Fc de un dominio
constante, o inmediatamente N-terminales respecto
el CH1 de la cadena pesada o la región correspondiente en la cadena
ligera. El sitio preciso en el que se hace la fusión no es crítico;
los sitios concretos son bien conocidos y podrían seleccionarse con
objetos de optimizar la actividad biológica, la secreción o las
características de unión de la inmunoadhesina.
En una realización preferida, la secuencia de
adhesina se fusiona al extremo N-terminal de la
región Fc de la inmunoglobulina G_{1} (IgG_{1}). Es posible
fusionar la región constante entera de la cadena pesada a la
secuencia de adhesina. Sin embargo, más preferiblemente, en la
fusión se usa una secuencia que empieza en la región gozne, justo
cadena arriba del sitio de corte con papaína que define químicamente
la Fc de IgG (es decir, el residuo 216, tomando el 114 como primer
residuo de la región constante de la cadena pesada), o sitios
análogos de otras inmunoglobulinas. En una realización
particularmente preferida, la secuencia de aminoácidos de la
adhesina se fusiona a (a) la región gozne y CH2 y CH3, o (b) los
dominios C_{H}1, gozne, C_{H}2 y C_{H}3 de una cadena pesada
de IgG.
Para las inmunoadhesinas biespecíficas, las
inmunoadhesinas se ensamblan como multímeros, y particularmente
como heterodímeros o heterotetrámeros. Generalmente, estas
inmunoglobulinas ensambladas tendrán estructuras unitarias
conocidas. Una unidad estructura básica de cuatro cadenas es la
forma en la que existen las IgG, IgD e IgE. En las inmunoglobulinas
de mayor peso molecular se repite una unidad de cuatro cadenas; la
IgM existe como un pentámero de cuatro unidades básicas mantenidas
juntas mediante enlaces disulfuro. La globulina IgA, y
ocasionalmente la globulina IgG, también podrían existir en forma
multimérica en el suero. En el caso del multímero, cada una de la
cuatro unidades podría ser la misma o diferente.
Varios inmunoadhesinas ensambladas ilustrativas
dentro del ámbito de la presente se diagraman esquemáticamente más
abajo:
- (a)
- AC_{L}-AC_{L};
- (b)
- AC_{H}-(AC_{H}, AC_{L}-AC_{H}, AC_{L}-V_{H}C_{H}, o V_{L}C_{L}-AC_{H});
- (c)
- AC_{L}-AC_{H}-(AC_{L}-AC_{H}, AC_{L}-V_{H}C_{H}, V_{L}C_{L}-AC_{H}, o V_{L}C_{L}-V_{H}C_{H})
- (d)
- AC_{L}-V_{H}C_{H}-(AC_{H}, o AC_{L}-V_{H}C_{H}, o V_{L}C_{L}-AC_{H});
- (e)
- V_{L}C_{L}-AC_{H}-(AC_{L}-V_{H}C_{H}, o V_{L}C_{L}-AC_{H}); y
- (f)
- (A-Y)_{n}-(V_{L}C_{L}-V_{H}C_{H})_{2},
en donde cada A representa secuencias de
aminoácidos de adhesinas idénticas o diferentes;
V_{L} es un dominio variable de cadena ligera
de inmunoglobulina;
V_{H} es un dominio variable de cadena pesada
de inmunoglobulina;
C_{L} es un dominio constante de cadena ligera
de inmunoglobulina;
C_{H} es un dominio constante de cadena pesada
de inmunoglobulina;
n es un entero superior a 1;
Y designa el residuo de un agente entrecruzador
covalente.
En interés de la brevedad, las estructuras
anteriores sólo muestran las características claves; no indican la
unión (J) u otros dominios de las inmunoglobulinas, ni se muestran
los enlaces disulfuro. Sin embargo, cuando tales dominios se
requieren para la actividad de unión, no deben construirse para que
estén presentes en las ubicaciones ordinarias que ocupan en las
moléculas de inmunoglobulina.
Alternativamente, las secuencias de adhesina
pueden insertarse entre las secuencias de la cadena pesada y cadena
ligera de inmunoglobulina, de tal forma que se obtenga una
inmunoglobulina que comprende una cadena pesada quimérica. En esta
realización, las secuencias de adhesina se fusionan al extremo 3' de
una cadena pesada de inmunoglobulina en cada brazo de una
inmunoglobulina, bien entre el gozne y el dominio C_{H}2, bien
entre los dominios C_{H}2 y C_{H}3. Construcciones similares han
sido publicadas por Hoogenboom et al., Mol. Immunol.,
28:1027-1037 (1991).
Aunque la presencia de una cadena ligera de
inmunoglobulina no se requiere en las inmunoadhesinas de la
presente invención, una cadena ligera de inmunoglobulina podría
estar presente, o asociada covalentemente a un polipéptido de
fusión de adhesina-cadena pesada de inmunoglobulina,
o fusionada directamente a la adhesina. En el primer caso, el ADN
que codifica la cadena ligera de una inmunoglobulina se coexpresa
típicamente con el ADN que codifica la proteína de fusión
adhesina-cadena pesada de inmunoglobulina. A partir
de la secreción, la cadena pesada híbrida y la cadena ligera
estarán asociadas covalentemente para proporcionar un estructura
similar a un inmunoglobulina, la cual comprende dos pares de cadena
pesada-cadena ligera de inmunoglobulina unidos por
disulfuros. Los procedimientos apropiados para la preparación de
tales estructuras se descubren, por ejemplo, en la patente
estadounidense nº 4.816.567, concedida el 28 de marzo de 1989.
La forma más conveniente de construir las
inmunoadhesinas es fusionando la secuencia de ADNc que codifica la
porción adhesina en pauta con una secuencia de ADNc de
inmunoglobulina. No obstante, también puede usarse la fusión a
fragmentos genómicos de inmunoglobulina (consultar, por ejemplo,
Aruffo et al., Cell, 61:1303-1313
(1990); y Stamenkovic et al., Cell,
66:1133-1144 (1991)). El último tipo de fusión
requiere la presencia de secuencias regulatorias de Ig para la
expresión. Los ADNc que codifican las regiones constantes de la
cadena pesada de IgG pueden aislarse en base a secuencias
publicadas procedentes de bibliotecas de ADNc derivadas de
linfocitos del bazo o de la sangre periférica, mediante técnicas de
hibridación o de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Los
ADNc que codifican la "adhesina" y las partes de
inmunoglobulinas de la inmunoadhesina se insertan en tándem en el
vector plasmídico que dirige la expresión eficiente en las células
huéspedes escogidas.
Los ejemplos de tales secuencias de ECD solubles
incluyen los polipéptidos que comprenden los aminoácidos
2-166 de la secuencia TACI mostrada en la Figura 1,
y descritas adicionalmente en los ejemplos de más abajo. La
inmunoadhesina de receptor TACI puede prepararse de acuerdo con
cualquiera de los procedimientos descritos en el campo.
Las inmunoadhesinas de receptor BCMA pueden
construirse similarmente. Los ejemplos de secuencias de ECD
solubles para uso en la construcción de inmunoadhesinas de BCMA
podrían incluir los polipéptidos que comprenden los aminoácidos
5-51 de la secuencia BCMA mostrada en la Figura 2, y
descritos adicionalmente en los ejemplos de más abajo.
El receptor TACI o BCMA podría modificarse
covalentemente uniendo el polipéptido del receptor a una de uno de
una variedad de polímeros no proteicos, por ejemplo, el
polietilenglicol (PEG), el polipropilenglicol, o los
polioxialquilenos, de la manera establecida en las patentes
estadounidenses nº 4.640.835; 4.496.689; 4.301.144; 4.670.417;
4.791.192 o 4.179.337. Tales formas pegiladas del receptor TACI o
BCMA podrían prepararse usando técnicas conocidas en el campo.
Las formas con cremallera de leucina de estas
moléculas también se contempla en la invención. "Cremallera de
leucina" es un término en el campo usado para referirse a una
secuencia rica en leucinas que potencia, promueve o dirige la
dimerización o trimerización de su pareja de unión (por ejemplo, la
secuencia o molécula a la cual está fusionada la cremallera de
leucina). Se han descrito varios polipéptidos de cremallera de
leucina en el campo. Consultar, por ejemplo, Landschulz et
al., Science, 240:1759 (1988); la patente estadounidense
nº 5.716.805; WO 94/10308; Hoppe et al., FEBS Letters,
344:1991 (1994); Maniatis et al., Nature, 341:24
(1989). Los especialistas en la técnica apreciarán que una
secuencia de cremallera de leucina podría fusionarse en cualquiera
de los extremos 5' ó 3' de la molécula del receptor TACI o BCMA.
Los polipéptidos TACI o BCMA de la presente
invención podrían modificarse también de una determinada manera
para formar moléculas quiméricas mediante la fusión del polipéptido
del receptor a otro polipéptido o secuencia de aminoácidos
heterólogos. Preferiblemente, tal polipéptido o secuencia de
aminoácido heterólogos es uno que actúa para oligomerizar la
molécula quimérica. En una realización, tal molécula quimérica
comprende una fusión del polipéptido del receptor TACI o BCMA con
un polipéptido etiqueta, el cual proporciona un epítopo al cual
puede unirse selectivamente un anticuerpo
anti-etiqueta. La etiqueta de epítopo se coloca
generalmente en los extremos amino- o
carboxi-terminales del polipéptido del receptor. La
presencia de tales formas etiquetadas con epítopo del polipéptido
del receptor puede detectarse usando un anticuerpo contra el
polipéptido etiquetado. También, la provisión de la etiqueta de
epítopo permite que el receptor sea fácilmente purificado mediante
purificación por afinidad usando un anticuerpo
anti-etiqueta u otro tipo de matriz de afinidad que
se une a la etiqueta del epítopo. Varios polipéptidos etiqueta y
sus respectivos anticuerpos son bien conocidos en el campo. Los
ejemplos incluyen las etiquetas de poli-histidina
(poli-his) o de
poli-histidina-glicina
(poli-his-gly); el polipéptido
etiqueta HA de la gripe y su anticuerpo 12CA5 [Field et al.,
Mol. Cell. Biol., 8:2159-2165 (1988)]; la
etiqueta c-myc tag y los anticuerpos 8F9, 3C7, 6E10,
G4, B7 y 9E10 contra la misma [Evan et al., Molecular and
Cellular Biology, 5:3610-3616 (1985)]; y la
etiqueta de la glicoproteína D (gD) del virus Herpes Simplex y su
anticuerpo [Paborsky et al., Protein Engineering,
3(6):547-553 (1990)]. Otros polipéptidos
etiqueta incluyen el péptido Flag [Hopp et al.,
BioTechnology, 6:1204-1210 (1988)]; el
péptido del epítopo de KT3 [Martin et al., Science,
255:192-194 (1992)]; un péptido del epítopo de la
\alpha-tubulina [Skinner et al., J.
Biol. Chem., 266:15163-15166 (1991)]; y el
péptido etiqueta 10 de la proteína 10 del gen de T7
[Lutz-Freyermuth et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, 87:6393-6397 (1990)].
Se contempla que los anticuerpos
anti-receptor TACI, los anticuerpos
anti-receptor BCMA, los anticuerpos
anti-TALL-1, o los anticuerpos
anti-APRIL podrían emplearse también en los
procedimientos descritos actualmente. Los ejemplos de tales
moléculas incluyen los anticuerpos neutralizantes o bloqueadores que
pueden inhibir preferiblemente la unión de TALL-1 o
APRIL a los receptores TACI o BCMA. Los anticuerpos
anti-TACI, anti-BCMA,
anti-TALL-1 o
anti-APRIL podrían ser anticuerpos monoclonales. Los
anticuerpos monoclonales podrían preparase usando procedimientos de
hibridoma, tales como los descritos por Kohler y Milstein,
Nature, 256:495 (1975). En un procedimiento de hibridoma, un
ratón, hámster, u otro animal huésped apropiado, se inmuniza
típicamente con un agente inmunizador para elicitar linfocitos que
producen o son capaces de producir anticuerpos que se unirán
específicamente al agente inmunizador. Alternativamente, los
linfocitos podrían inmunizarse in vitro.
El agente inmunizador típicamente incluirá el
polipéptido TACI o BCMA, o el polipéptido TALL-1 o
APRIL, o una proteína de fusión de los mismos. Generalmente, o se
usan linfocitos de sangre periférica ("PBL") si se desean
células de origen humano, o se usan células de bazo o células de
nódulo linfático si se desean fuentes que no sean mamíferos. Los
linfocitos se fusionan a continuación con una línea celular
inmortalizada usando un agente de fusión apropiado, tal como el
polietilenglicol, para formar una célula hibridoma [Goding,
Monoclonal Antibodies: Principles and Practice, Academic
Press, (1986) pp. 59-103]. Las líneas celulares
inmortalizadas son usualmente células de mamífero transformadas,
particularmente células de mieloma de origen humano, bovino o de
roedor. Usualmente se emplean líneas de células de mieloma de rata o
ratón. Las células hibridoma podrían cultivarse en un medio de
cultivo apropiado que preferiblemente contiene una o más sustancias
que inhiben el crecimiento o supervivencia de las células
inmortalizadas no fusionadas. Por ejemplo, si la célula progenitora
carece del enzima hipoxantina guanina fosforibosil transferasa
(HGPRT o HPRT), el medio de cultivo para los hibridomas típicamente
contendrá hipoxantina, aminopterina y timidina ("medio HAT"),
sustancias que impiden el crecimiento de las células deficientes en
HGPRT.
Las líneas celulares inmortalizadas preferidas
son aquéllas que se fusionan eficientemente, soportan la expresión
estable del anticuerpo con niveles elevados por parte de lasa
células productoras del anticuerpo seleccionadas, y son sensibles a
un medio tal como el medio HAT. Las líneas celulares inmortalizadas
más preferibles son las líneas de mieloma murino, las cuales pueden
obtenerse, por ejemplo, del Salk Institute Cell Distribution
Center, San Diego, Ca., y de la American Type Culture Collection,
Manassas, Va. Las líneas celulares de mieloma humanas y las de
heteromieloma de ratón-humanas también se han
descrito para la producción de anticuerpos monoclonales humanos
[Kozbor, J. Immunol., 133:3001 (1984); Brodeur et al.,
Monoclonal Antibody Production Techniques and Applications,
Marcel Dekker, Inc., New York, (1987) pp.
51-63].
El medio de cultivo en el que se cultivan las
células hibridoma puede ensayarse entonces para detectar la
presencia de anticuerpos monoclonales dirigidos contra TACI, BCMA,
TALL-1 o APRIL. Preferiblemente, la especificidad
de unión de los anticuerpo monoclonales producidos por las células
hibridoma se determina mediante inmunoprecipitación o mediante un
ensayo de unión in vitro, tal como el radioinmunoensayo (RIA)
o el ensayo inmunosorbente unido a enzima (ELISA). Tales técnicas y
ensayos son conocidos en el campo. La afinidad de unión del
anticuerpo monoclonal puede determinarse, por ejemplo, mediante el
análisis de Scatchard de Munson y Pollard, Anal. Biochem.,
107:220 (1980). Opcionalmente, los anticuerpos
anti-TACI, anti-BCMA,
anti-TALL-1, o
anti-APRIL tendrán una afinidad de unión de al menos
10 nM, preferiblemente, de al menos 5 nM, y más preferiblemente, de
al menos 1 nM por su respectivo receptor o ligando, según se
determinó en un ensayo de unión.
Una vez se han identificado las células
hibridomas deseadas, los clones podrían subclonarse mediante
procedimientos de dilución limitada y hacerse crecer mediante
procedimientos estándares [Goding, ver más arriba]. Los medios de
cultivo apropiados para este propósito incluyen, por ejemplo, el
medio de Eagle modificado por Dulbecco y el medio
RPMI-1640. Alternativamente, las células hibridoma
pueden hacerse crecer in vivo como ascitis en un
mamífero.
Los anticuerpos monoclonales secretados por los
subclones podrían aislarse o purificarse a partir del medio de
cultivo o del fluido de ascitis mediante procedimientos de
purificación de inmunoglobulinas convencionales, tales como, por
ejemplo, la Proteína A-Sepharose, la cromatografía
con hidroxiapatito, la electroforesis en gel, la diálisis o la
cromatografía de afinidad.
Los anticuerpos monoclonales podrían preparase
también mediante procedimientos de ADN recombinante, tales como los
descritos en la patente estadounidense nº 4.816.567. El ADN que
codifica los anticuerpos monoclonales de la invención puede
aislarse y secuenciarse fácilmente usando procedimientos
convencionales (por ejemplo, usando sondas oligonucleotídicas que
son capaces de unirse específicamente a genes que codifican las
cadenas pesada y ligera de anticuerpos murinos). Las células
hibridomas de la invención sirven como un fuente preferida de tal
ADN. Una vez aislado, el ADN podría colocarse en vectores de
expresión, los cuales se transfectan a continuación dentro de
células huéspedes tales como las células COS de simio, las células
ováricas de hámster chino (CHO) o las células de mieloma, las
cuales de otro modo no producen proteína inmunoglobulina, para
obtener la síntesis de anticuerpos monoclonales en las células
huéspedes recombinantes. El ADN también podría modificarse, por
ejemplo, sustituyendo la secuencia codificante con dominios
constantes de cadena pesada y ligera humana en lugar de las
secuencias homólogas múridas [patente estadounidense nº 4.816.567;
Morrison et al., ver más arriba], o uniendo covalentemente a
la secuencia codificante de la inmunoglobulina la totalidad o parte
de la secuencia codificante de un polipéptido que no es de
inmunoglobulina. Tal polipéptido que no es de inmunoglobulina puede
sustituirse en el lugar de los dominios constantes de un anticuerpo
de la invención, o puede sustituirse en lugar de los dominios
variables de un sitio de combinación de antígeno de un anticuerpo de
la invención para crear un anticuerpo bivalente quimérico.
Los anticuerpos podrían ser anticuerpos
monovalentes. Los procedimientos para preparar anticuerpos
monovalentes son bien conocidos en el campo. Por ejemplo, un
procedimiento implica la expresión recombinante de la cadena ligera
y la cadena pesada modificada de inmunoglobulina. La cadena pesada
se trunca generalmente en cualquier punto en la región Fc con
objeto de impedir el entrecruzamiento de la cadena pesada.
Alternativamente, los residuos cisteína relevantes se sustituyen
con otro residuo aminoácido o se suprimen con objeto de impedir el
entrecruzamiento.
Los procedimientos in vitro también son
apropiados para preparar anticuerpos monovalentes. La digestión de
anticuerpos para producir fragmentos de los mismos, particularmente,
fragmentos Fab, puede conseguirse usando técnicas rutinarias
conocidas en el campo.
Los anticuerpos o fragmentos de anticuerpos
pueden aislarse a partir de bibliotecas de anticuerpos en fagos
generadas usando las técnicas descritas en McCafferty et al.,
Nature, 348:552-554 (1990). Clackson et
al., Nature, 352:624-628 (1991) y Marks
et al., J. Mol. Biol., 222:581-597
(1991) describen respectivamente el aislamiento de anticuerpos
murinos y humanos usando bibliotecas en fagos. Las publicaciones
subsiguientes describen la producción de anticuerpos humanos de
elevada afinidad (rango nM) mediante la redistribución de la cadena
(Marks et al., Bio/Technology,
10:779-783 (1992)), así como la infección
combinatoria y la recombinación in vivo como una estrategia
para construir bibliotecas en fago muy grandes (Waterhouse et
al., Nuc. Acids. Res., 21:2265-2266
(1993)). Por tanto, estas técnicas son alternativas viables a las
técnicas tradicionales de hibridoma de anticuerpo monoclonal para
el aislamiento de anticuerpos monoclonales.
El ADN también podría modificarse, por ejemplo,
sustituyendo la secuencia codificante con dominios constantes de
cadena pesada y ligera humana en lugar de las secuencias homólogas
múridas (patente estadounidense nº 4.816.567; Morrison, et
al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81:6851 (1984)), o
uniendo covalentemente a la secuencia codificante de la
inmunoglobulina la totalidad o parte de la secuencia codificante de
un polipéptido que no es de inmunoglobulina.
Típicamente, tales polipéptidos que no son de
inmunoglobulina se sustituyen en lugar de los dominios constantes
de un anticuerpo, o se sustituyen en lugar de los dominios variables
de un sitio de combinación de antígeno de un anticuerpo para crear
un anticuerpo bivalente quimérico que comprende un sitio de
combinación de antígeno que tiene especificidad por un antígeno y
otro sitio de combinación de antígeno que tiene especificidad por
un antígeno diferente.
Un anticuerpo humanizado tiene uno o más
residuos aminoácidos introducidos en él procedentes de una fuente
que no es humana. Estos residuos aminoácidos no humanos se denominan
a menudo como residuos "importados", los cuales se toman
típicamente de un dominio variable "importado". La humanización
puede realizarse esencialmente siguiendo el procedimiento de Winter
y colaboradores (Jones et al., Nature,
321:522-525 (1986); Riechmann et al.,
Nature, 332:323-327 (1988); Verhoeyen et
al., Science, 239:1534-1536 (1988)),
sustituyendo CDR o secuencias de CDR en lugar de las secuencias
correspondientes de un anticuerpo humano. En consecuencia, tales
anticuerpos "humanizados" son anticuerpos quiméricos (patente
estadounidense nº 4.816.567) en donde sustancialmente menos de un
dominio variable humano intacto ha sido sustituido por la secuencia
correspondiente procedente de una especie no humana. En la
práctica, los anticuerpos humanizados son típicamente anticuerpos
humanos en los que algunos residuos de CDR, y posiblemente algunos
residuos de FR, se sustituyen con residuos procedentes de sitios
análogos en anticuerpos de roedores.
La elección de los dominios variables humanos,
tanto ligeros como pesados, a usarse en la preparación de
anticuerpos humanizados es muy importante para reducir la
antigenicidad. De acuerdo con el procedimiento denominado del
"mejor ajuste", la secuencia del dominio variable de un
anticuerpo de roedor se examina respecto la biblioteca completa de
secuencias de dominio variable humano conocidas. La secuencia humana
que es la más próxima a la del roedor se acepta entonces como
armazón (FR) humano del anticuerpo humanizado (Sims et al.,
J. Immunol., 151:2296 (1993); Chothia et al., J.
Mol. Biol., 196:901 (1987)). Otro procedimiento usa un armazón
determinado derivado de la secuencia consenso de todos los
anticuerpos de un subgrupo determinado de cadenas ligeras o
pesadas. El mismo armazón podría usarse para varios anticuerpos
humanizados diferentes (Carter et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 89:4285 (1992); Presta et al., J.
Immunol., 151:2623 (1993)).
Es importante además que los anticuerpos sean
humanizados con retención de la elevada afinidad por el antígeno y
de otras propiedades biológicas favorables. Para conseguir este
objetivo, de acuerdo con un procedimiento preferido, los
anticuerpos humanizados se preparan mediante un proceso de análisis
de las secuencias progenitoras, y de varios productos humanizados
conceptuales, usando modelos tridimensionales de las secuencias
progenitoras y humanizadas. Los modelos de inmunoglobulina
tridimensionales están disponibles comúnmente y son familiares a
los especialistas en el campo. Hay disponibles programas de
ordenador que ilustran y muestran estructuras de conformación
tridimensional probable de secuencias de inmunoglobulina candidatas
seleccionadas. La inspección de estas presentaciones permite el
análisis del papel probable de los residuos en el funcionamiento de
la secuencia de inmunoglobulina candidata, es decir, el análisis de
los residuos que influyen en la capacidad de la inmunoglobulina
cantidata para unir su antígeno. De esta forma pueden seleccionarse
y combinarse residuos de FR procedentes del receptor, e importarse
secuencias de tal forma que se consigan las características deseadas
del anticuerpo, tales como una afinidad incrementada por el
antígeno o antígenos diana. En general, los residuos de CDR están
directa y mayoritariamente implicados en influir la unión del
antígeno.
Alternativamente, es posible ahora producir
animales transgénicos (por ejemplo, ratones) que son capaces, a
partir de su inmunización, de producir un repertorio completo de
anticuerpos humanos en ausencia de producción de inmunoglobulina
endógena. Por ejemplo, se ha descrito que la supresión homocigótica
del gen de la región de unión de la cadena pesada (JH) en ratones
quiméricos y mutantes de línea germinal resulta en la completa
inhibición de la producción de anticuerpos endógenos. La
transferencia del conjunto de genes de la línea germinal de
inmunoglobulinas humanas en tales ratones mutantes de la línea
germinal resultará en la producción de anticuerpos humanos a partir
del desafío con antígenos. Consultar, por ejemplo, Jakobovits et
al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:2551 (1993);
Jakobovits et al., Nature, 362:255-258
(1993); Bruggermann et al., Year in Immuno., 7:33
(1993); y Duchosal et al., Nature, 355:258 (1992). Los
anticuerpos humanos pueden derivarse también a partir de
bibliotecas de exhibición sobre fago (Hoogenboom et al.,
J. Mol. Biol., 227:381 (1991); Marks et al., J.
Mol. Biol., 222:581-597 (1991); Vaughan et
al., Nature Biotech, 14:309 (1996)).
Tal como se describe en los ejemplos de más
abajo, se han preparado anticuerpos anti-APRIL
concretos. Cuatro de estos anticuerpos, 3C6.4.2, 5G8.2.2, 5E8.7.4,
y 5E11.1.2, se han depositado en la ATCC, y se les han asignado los
números de acceso PTA-1347,
PTA-1345, PTA-1344 y
PTA-1346. En una realización, los anticuerpos
anti-APRIL descritos en la presente tendrán las
mismas características biológicas que los anticuerpos monoclonales
secretados por las líneas celulares de hibridoma depositadas con los
números de acceso PTA-1347,
PTA-1345, PTA-1344 o
PTA-1346. El término "características
biológicas" se usan para referirse a las actividades o
propiedades in vitro y/o in vivo del anticuerpo
monoclonal, tales como la capacidad para unirse a APRIL, o para
bloquear o reducir sustancialmente la unión a TACI o BCMA o la
activación por APRIL. Opcionalmente, el anticuerpo monoclonal
anti-APRIL tendrá la misma actividad bloqueadora que
el anticuerpo 3C6.4.2, tal como se determina por su capacidad para
bloquear la unión de APRIL a TACI o BCMA. Opcionalmente, el
anticuerpo monoclonal anti-APRIL se unirá al mismo
epítopo que el anticuerpo 5G8.2.2, el anticuerpo 5E8.7.4, el
anticuerpo 3C6.4.2 o el anticuerpo 5E11.1.2 descritos en los
ejemplos de más abajo. Tal propiedad de unión de epítopo puede
determinarse, por ejemplo, en un ensayo de inhibición competitiva
de la unión, cuyas técnicas son conocidas en el campo. Un anticuerpo
anti-APRIL de ese tipo inhibirá preferiblemente de
forma competitiva la unión del anticuerpo 5G8.2.2, del anticuerpo
5E8.7.4, del anticuerpo 3C6.4.2 o del anticuerpo 5E11.1.2 a APRIL.
Se contempla que los anticuerpos anti-APRIL
quiméricos o humanizados pueden construirse (tal como usando las
técnicas descritas más arriba) usando o incorporando fragmentos
seleccionado o secuencias de dominios procedentes de cualquiera de
los anticuerpos anti-APRIL depositados antes
mencionados.
Los estudios de unión ligando/receptor podrían
realizarse en cualquier procedimiento de ensayo conocido, tal como
los ensayos de unión competitiva, los ensayos en sándwich directos e
indirectos, y los ensayos de inmunoprecipitación. Los ensayos
basados en células y modelos animales pueden usarse para comprender
además la interacción entre los ligandos y los receptores
identificados en la presente, y el desarrollo y la patogénesis de
las condiciones y enfermedades mencionadas en la presente.
En una estrategia, las células de mamífero
podrían transfectarse con los ligandos o receptores descritos en la
presente, y analizarse la capacidad de los agonistas o antagonistas
para estimular o inhibir la capacidad de unión o la actividad. Las
células apropiadas pueden transfectarse con el gen deseado y
monitorizarse su actividad. Tales líneas celulares transfectadas
pueden usarse entonces para ensayar la capacidad de los antagonistas
o agonistas para inhibir o estimular, por ejemplo, para modular la
proliferación de las células B o la secreción de Ig. Las células
transfectadas con la secuencia codificante de los genes en la
presente pueden usarse además para identificar candidatos a
fármacos para el tratamiento de enfermedades relacionadas con la
inmunidad o el cáncer.
Además, los cultivos primarios derivados de
animales transgénicos pueden usarse en los ensayos basados en
células. Las técnicas para derivar líneas celulares continuas a
partir de animales transgénicos son bien conocidas en el campo.
[ver, por ejemplo, Small et al., Mol. Cell. Biol.,
5:642-648 (1985)].
Un ensayo basado en células apropiado es la
adición de ligando etiquetado con epítopo (por ejemplo, AP o Flag)
a células que tienen o expresan el receptor respectivo, y el
análisis de la unión (en presencia o ausencia de antagonistas
prospectivos) mediante tinción y FACS con anticuerpo
anti-etiqueta. En otro ensayo, se ensaya la
capacidad de un antagonista para inhibir la proliferación de células
B inducida por TALL-1 o APRIL. Las células B o las
líneas celulares se cultivan con TALL-1 o APRIL en
presencia o ausencia de los antagonistas prospectivos, y la
proliferación de las células B puede medirse mediante la
incorporación de ^{3}H-timidina o el número de
células.
Los resultados de los ensayos in vitro
basados en células pueden verificarse adicionalmente usando modelos
animales in vivo. Pueden usarse una variedad de modelos
animales bien conocidos para entender aún más el papel de los
agonistas y antagonistas identificados en la presente en el
desarrollo y patogénesis de, por ejemplo, una enfermedad
relacionada con la inmunidad o el cáncer, y para ensayar la eficacia
de los agentes terapéuticos candidatos. La naturaleza in
vivo de tales modelos los hace particularmente predictivos de
las respuestas en pacientes humanos. Los modelos animales de
enfermedades relacionadas con la inmunidad incluyen tanto los
animales no recombinantes como los recombinantes (transgénicos). Los
modelos animales no recombinantes incluyen, por ejemplo, los
roedores, por ejemplo, los modelos en murinos. Tales modelos pueden
generarse introduciendo células en ratones singénicos usando
técnicas estándares, por ejemplo, la inyección subcutánea, la
inyección en la vena caudal, la implantación en el bazo, la
implantación intraperitoneal, y la implantación bajo la cápsula
renal.
Por ejemplo, se conocen modelos animales para la
enfermedad injerto contra huésped. La enfermedad injerto contra
huésped ocurre cuando se trasplantan células inmunocompetentes en
paciente inmunosuprimidos o tolerantes. Las células donantes
reconocen y responden a los antígenos del huésped. La respuesta
puede variar desde inflamación grave con amenaza para la vida hasta
los casos leves de diarrea y pérdida de peso. Los modelos injerto
contra huésped proporcionan un medio para verificar la reactividad
de la células T contra antígenos del MHC y antígenos de trasplantes
menores. Un procedimiento apropiado se describe en detalle en
Current Protocols in Immunology, unidad 4.3.
Un modelo animal para el rechazo del aloinjerto
de piel es un medio para ensayar la capacidad de las células T para
mediar la destrucción del tejido in vivo, la cual es
indicativa de y una medida de su papel en la inmunidad antivírica e
inmunidad tumoral. Los modelos más comunes y aceptados usan los
injertos de piel de la cola en murinos. Repetidos experimentos han
mostrado que el rechazo del aloinjerto de piel está mediado por las
células T, las células T auxiliares, y las células T
efectoras-asesinas, y no por anticuerpos.
[Auchincloss, H. Jr. y Sachs, D. H., Fundamental Immunology,
2ª edición, editor W. E. Paul, Raven Press, NY, 1989,
889-992]. Un procedimiento apropiado se describe en
detalle en Current Protocols in Immunology, unidad 4.3. Otros
modelos de rechazo de trasplante que pueden usarse para ensayar las
composiciones de la invención son los modelos de trasplante
alogénico de corazón descritos por Tanabe, M. et al.,
Transplantation, 58:23 (1994) y Tinubu, S. A. et al.,
J. Immunol., 4330-4338 (1994).
Los modelos animales para la hipersensibilidad
de tipo retrasada proporcionan también un ensayo de la función
inmune mediada por célula. Las reacciones de hipersensibilidad de
tipo retrasada con una respuesta inmunitaria in vivo mediada
por células T y caracterizada por inflamación, que no alcanza un
pico hasta después de que haya transcurrido un período de tiempo
después del desafío con un antígeno. Estas reacciones ocurren
también en enfermedades autoinmunes específicas de tejidos, tales
como la esclerosis múltiple (MS) y la encefalomielitis autoinmune
experimental (EAE, un modelo de la MS). Un procedimiento apropiado
se describe en detalle en Current Protocols in Immunology,
unidad 4.3.
Un modelo animal para la artritis es la artritis
inducida por colágeno. Este modelo comparte las características
clínicas, histológica e inmunológicas de la artritis reumatoide
autoinmune humana, y es un modelo aceptable para la artritis
autoinmune humana. Los modelos de rata y ratón se caracterizan por
sinovitis, erosión del cartílago y hueso subcondral. La actividad
de los compuestos de la invención contra la artritis autoinmune
puede ensayarse usando los protocolos descritos en Current
Protocols in Immunology, ver más arriba, unidades 15,5. Ver
también el modelo que usa un anticuerpo monoclonal contra las
integrinas CD18 y VLA-4 descritas en Issekutz, A.
C. et al., Immunology, (1996) 88:569. El Ejemplo 10 de
más abajo describe el modelo en murino de CIA.
Se ha descrito un modelo de asma en el cual la
hiperreactividad de la vías respiratorias inducida por antígeno, la
eosinofilia pulmonar, y la inflamación se inducen sensibilizando un
animal con ovoalbúmina y desafiando a continuación el animal con la
misma proteína suministrada por aerosol. Varios modelos animales
(cobaya, rata, primate no humano) muestran síntomas similares al
asma atópico en humanos a partir de su desafío con antígenos en
aerosol. Los modelos en murinos tienen muchas de las características
del asma humana. Los procedimientos apropiados para ensayar las
composiciones de la invención por su actividad y efectividad en el
tratamiento del asma son descritos por Wolyniec, W. W. et
al., Am. J. Respir. Cell Mol. Biol., (1998) 18:777 y las
referencias citadas en la misma.
Adicionalmente, las composiciones de la
invención pueden ensayarse sobre modelos animales de enfermedades
similares a la psoriasis. Los compuestos de la invención pueden
ensayarse en el modelo en ratón scid/scid descrito por Schon, M. P.
et al., Nat. Med., (1997) 3:183, en el cual los
ratones presentan lesiones cutáneas histopatológicas que parecen la
psoriasis. Otro modelo apropiado es la quimera de ratón scid/piel
humana preparada tal como describen Nickoloff, B. J. et al.,
Am. J. Path., (1995) 146:580.
Varios modelos animales son bien conocidos para
ensayar la actividad anticáncer de una composición terapéutica
candidata. Estos incluyen el xenoinjerto de tumores humanos en
ratones desnudos atímicos o en ratones scid/scid, o los modelos de
tumor murino genético tales como los ratones
knock-out p53.
Los modelos animales recombinantes
(transgénicos) pueden obtenerse introduciendo la porción
codificantes de las moléculas identificadas en la presente dentro
del genoma de los animales de interés, usando técnicas estándares
para la producción de animales transgénicos. Los animales que sirven
como diana de la manipulación transgénica incluyen, sin limitación,
los ratones, gatos, conejos, cobayas, ovejas, cabras, cerdos y los
primates no humanos, por ejemplo, los babuinos, los chimpancés y
los monos. Las técnicas conocidas en el campo para introducir un
transgén en tales animales incluyen la microinyección pronucleica
(Hoppe y Wanger, patente estadounidense nº 4.873.191); la
transferencia del gen mediada por retrovirus en líneas germinales
(por ejemplo, Van der Putten et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 82:6148-615 [1985]); el apuntamiento
al gen en células madre embrionarias (Thompson et al.,
Cell, 56:313-321 [1989]); la electroporación
de embriones (Lo, Mol. Cel. Biol.,
3:1803-1814 [1983]); la transferencia de genes
mediada por esperma (Lavitrano et al., Cell,
57:717-73 [1989]). Para una revisión, consultar,
por ejemplo, la patente estadounidense nº 4.736.866.
Los animales transgénicos de la presente
invención incluyen aquellos que que son portadores del transgén
solamente en parte de sus células ("animales mosaico") El
transgén pueden integrarse como un único transgén, o en
concatámeros, por ejemplo, en tándems de cabeza con cabeza o de
cabeza con cola. La introducción selectiva de un transgén en un
tipo de célula determinado es posible también siguiendo, por
ejemplo, la técnica de Lasko et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 89:6232-6236 (1992).
La expresión del transgén en los animales
transgénicos puede monitorizarse mediante técnicas estándares. Por
ejemplo, pueden usarse el análisis por transferencia Southern o la
amplificación por PCR para verificar la integración del transgén.
El nivel de expresión del ARNm puede analizarse entonces usando
técnicas tales como la hibridación in situ, el análisis por
transferencia Northern, la PCR o la inmunocitoquímica. Los animales
podrían examinarse adicionalmente en busca de signos de patología de
enfermedad inmunitaria, por ejemplo, mediante examen histológico
para determinar la infiltración de células inmunitarias en tejidos
específicos o en busca de la presencia de tejido canceroso o
maligno.
Alternativamente, pueden construirse animales
"knock out" que tienen un gen defectuoso o alterado que
codifica un polipéptido identificado en la presente, como resultado
de la recombinación homóloga entre el gen endógeno que codifica el
polipéptido y ADN genómico alterado, que codifica el mismo
polipéptido, e introducido en una célula embrionaria del animal.
Por ejemplo, el ADNc que codifica un determinado polipéptido puede
usarse para clonar ADN genómico que codifica ese polipéptido de
acuerdo con técnicas establecidas. Un porción del ADN genómico que
codifica un determinado polipéptido puede suprimirse o remplazarse
con otro gen, tal como un gen que codifica un marcador
seleccionable, el cual puede usarse para monitorizar la integración.
Típicamente, se incluyen en el vector varios kilobases de ADN
flanqueador inalterado (tanto en el extremo 5' como en el 3')
[consultar, por ejemplo, Thomas y Capecchi, Cell, 51:503
(1987) para una descripción de vectores recombinantes homólogos].
El vector se introduce en una línea de células madre embrionarias
(por ejemplo, mediante electroporación), y se seleccionan las
células en las que el ADN introducido se ha recombinado
homólogamente con el ADN endógeno [ver, por ejemplo, Li et
al., Cell, 69:915 (1992)]. Las células seleccionadas se
inyectan a continuación en un blastocito de un animal (por ejemplo,
un ratón o rata) para formar quimeras de agregación [ver, por
ejemplo, Bradley, en Teratocarcinomas and Embryonic Stem Cells: A
Practical Approach, editor E. J. Robertson, (IRL, Oxford,
1987), pp. 113-152]. Un embrión quimérico puede
implantarse a continuación en un animal nodriza hembra
pseudopreñado el embrión se lleva a término para crear un animal
"knock out". La progenie que alberga el ADN recombinado
homólogamente en sus células germinales puede identificarse mediante
técnicas estándares, y se usa para criar animales en los que todas
las células del animal contienen el ADN recombinado homólogamente.
Los animales knock-out pueden caracterizarse, por
ejemplo, por su capacidad para defenderse de ciertas condiciones
patológicas, y por desarrollar condiciones patológicas debido a la
ausencia del polipéptido.
Los antagonistas o agonistas descritos en la
presente se emplean preferiblemente en un portador. Los portadores
apropiados y sus formulaciones se describen en Remington's
Pharmaceutical Sciences, 16ª edición, 1980, Mack Publishing
Co., editado por Oslo et al. Típicamente, en el portador se
usa un cantidad apropiada de una sal farmacéuticamente aceptable
para hacer que la formulación sea isotónica. Los ejemplos del
portador incluyen la solución salina, la solución de Ringer y la
solución de dextrosa. El pH de la solución va preferiblemente desde
aproximadamente 5 hasta aproximadamente 8, y más preferiblemente
desde aproximadamente 7,4 hasta aproximadamente 7,8. Será evidente
para las personas formadas en el campo que ciertos portadores
podrían ser más preferibles dependiendo de, por ejemplo, la ruta de
administración y la concentración del agente que se está
administrando. El portador podría estar en forma de una formulación
liofilizada o en solución acuosa.
Los portadores, excipientes o estabilizantes
preferiblemente no son tóxicos para las células y/o los receptores
en las dosis y concentraciones empleadas, e incluyen tampones tales
como el fosfato, citrato y otros ácidos orgánicos; antioxidantes,
incluyendo el ácido ascórbico y la metionina; conservantes (tales
como el cloruro de octadecil dimetil bencilamonio; el cloruro de
hexametonio; el cloruro de benzalconio, el cloruro de bencetonio;
el fenol, el alcohol butílico o bencílico; los alquilparabenos tales
como el metil o propilparaben; el catecol; el resorcinol; el
ciclohexanol; el 3-pentanol; y el
m-cresol); polipéptidos de bajo peso molecular
(menos de aproximadamente 10 residuos); proteínas, tales como la
albúmina del suero, la gelatina, o las inmunoglobulinas; polímeros
hidrofílicos tales como la polivinilpirrolidona; aminoácidos tales
como la glicina, la glutamina, la asparagina, la arginina o la
lisina; monosacáridos, disacáridos, y otros carbohidratos,
incluyendo la glucosa, la manosa, o las dextrinas; agentes
quelantes tales como el EDTA; azúcares tales como la sacarosa, el
manitol, la trehalosa o el sorbitol; contraiones formadores de
sales, tales como el sodio; y/o tensioactivos no iónicos tales como
el TWEEN^{TM}, el PLURONICS^{TM} o el polietilenglicol
(PEG).
La formulación podrían contener también más de
un compuesto activo según sea necesario para la indicación concreta
que se está tratando, preferiblemente aquéllas que complementan
actividades que no se afectan desfavorablemente entre ellas.
El antagonista o agonista también podría estar
atrapado en microcápsulas preparadas, por ejemplo, mediante
técnicas de coacervación o mediante polimerización interfacial, por
ejemplo, respectivamente microcápsulas de hidroximetilcelulosa o
gelatina y microcápsulas de poli-(metilmetacrilato), es sistemas
coloidales de suministro de fármacos (por ejemplo, liposomas,
microesferas de albúmina, microemulsiones, nanopartículas y
nanocápsulas), o en macroemulsiones. Tales técnicas se describen en
Remington's Pharmaceutical Sciences, 16ª edición, Osol A.
Ed. (1980).
Las formulaciones a usarse para administración
in vivo deberían ser estériles. Esto se consigue fácilmene
mediante la filtración a través de membranas de filtración
estéril.
Podrían prepararse preparaciones de liberación
sostenida. Los ejemplos apropiados de preparaciones de liberación
sostenida incluyen las matrices semipermeables de polímeros
hidrofóbicos sólidos que contienen el anticuerpo, matrices que
están en forma de artículos moldeados, por ejemplo, películas o
microcápsulas. Los ejemplos de matrices de liberación sostenida
incluyen los poliésteres, los hidrogeles (por ejemplo, el
poli(2-hidroxietil-metacrilato),
o el poli(vinilalcohol)), los polilácticos (patente
estadounidense nº 3.773.919), los copolímeros de ácido
L-glutámico y
\gamma-etil-L-glutamato,
el etilenvinilacetato no degradable, los copolímeros degradables de
ácido láctico-ácido glicólico tales como el LUPRON DEPOT^{TM}
(microesferas inyectables compuestas de copolímero de ácido
láctico-ácido glicólico y acetato de leuprólido), y el ácido
poli-D-(-)-3-hidroxibutírico.
Mientras que los polímeros tales como el etilenvinilacetato y el
ácido láctico-ácido glicólico permiten la liberación de moléculas
durante más de 100 días, ciertos hidrogeles liberan proteínas
durante períodos de tiempo más cortos.
Las moléculas antagonistas o agonistas descritas
en la presente son útiles en el tratamiento de varias condiciones
patológicas, tales como las enfermedades inmunitarias o el cáncer.
Estas condiciones pueden tratarse estimulando o inhibiendo una
actividad seleccionada asociada con TALL-1, APRIL,
TACI o BCMA en un mamífero, a través de la administración de uno o
más antagonistas o agonistas de la invención.
La diagnosis en mamíferos de las diversas
condiciones patológicas descritas en la presente puede ser hecha
por el médico capacitado. Hay disponibles en el campo técnicas
diagnósticas que permiten, por ejemplo, la diagnosis o detección
del cáncer o la enfermedad inmunitaria en un mamífero. Por ejemplo,
los cánceres podrían identificarse a través de técnicas que
incluyen, pero no se limitan a la palpación, el análisis de sangre,
los rayos-X, la RMN y similares. Las enfermedades
relacionadas con la inmunidad también pueden identificarse
fácilmente. En el lupus eritematoso sistémico, el mediador central
de la enfermedad es la producción de anticuerpos
auto-reactivos contra proteínas/tejidos propios y la
generación subsiguiente de inflamación inmunomediada. Hay múltiples
órganos y sistemas afectados clínicamente, incluyendo los riñones,
pulmones, sistema musculoesquelético, mucocutáneo, ojo, sistema
nervioso central, sistema cardiovascular, tracto gastrointestinal,
médula ósea y sangre.
La artritis reumatoide (RA) es una enfermedad
inflamatoria autoinmune, sistémica y crónica que implica
principalmente la membrana sinovial de múltiples articulaciones, con
lesión resultante del cartílago articular. La patogénesis es
dependiente del linfocito T y está asociada con la producción de
factores reumatoides, auto-anticuerpos dirigidos
contra la IgG propia, con la formación resultante de inmunocomplejos
que alcanzan niveles elevados en el fluido articular y en la
sangre. Estos complejos podrían inducir en la articulación la
marcada infiltración de linfocitos y monocitos dentro del sinovio,
y los marcados cambios sinoviales subsiguientes; el espacio/fluido
articular es infiltrado por células similares con la adición de
numerosos neutrófilos. Los tejidos afectados son principalmente las
articulaciones, a menudo en un patrón simétrico. Sin embargo,
también ocurre la enfermedad extra-articular en dos
formas principales. Una forma es el desarrollo de lesiones
extra-articulares con enfermedad articular
progresiva en curso, y lesiones típicas de la fibrosis pulmonar, la
vasculitis, y las úlceras cutáneas. La segunda forma de enfermedad
extra-articular es el denominado síndrome de Felty,
el cual ocurre más tarde en el curso de la enfermedad RA, a veces
después de que la enfermedad articular haya pasado a estar
quiescente, e implica la presencia de neutropenia, trombocitopenia
y esplenomegalia. Esto puede ir acompañado por vasculitis en
múltiples órganos con formaciones de infartos, úlceras de la piel y
gangrena. Los pacientes desarrollan a menudo nódulos reumatoides en
el tejido subcutis que recubre las articulaciones afectadas; en
etapas más tardías, los nódulos tienen centros necróticos rodeados
por un infiltrado celular inflamatorio mixto. Otras manifestaciones
que pueden ocurrir en la RA incluyen: la pericarditis, la pleuritis,
la arteritis crónica, la neumonitis intersticial con fibrosis
pulmonar, la queratoconjuntivitis sicca, y los nódulos
reumatoides.
reumatoides.
La artritis crónica juvenil es una enfermedad
inflamatoria idiopática crónica que empieza a menudo con menos de
16 años de edad. Su fenotipo tiene ciertas similitudes con la RA;
algunos pacientes que son positivos para el factor reumatoide se
clasifican como artritis reumatoide juvenil. La enfermedad se
subclasifica en tres categorías principales: pauciarticular,
poliarticular y sistémica. La artritis puede ser grave y es
típicamente destructiva, y conduce a la anquilosis articular y al
crecimiento retardado. Otras manifestaciones incluyen la uveitis
anterior crónica y la amiloidosis sistémica.
Las espondiloartropatías son un grupo de
trastornos con algunas características clínicas comunes, y la
asociación común con la expresión del producto del gen
HLA-B27. Los trastornos incluyen: la espondilitis
anquilosante, el síndrome de Reiter (artritis reactiva), la artritis
asociada con la enfermedad inflamatoria del intestino, la
espondilitis asociada con la psoriasis, el inicio juvenil de la
espondiloartropatía y la espondiloartropatía indiferenciada. Las
características distintivas incluyen la sacroileitis con o sin
espondilitis; la artritis inflamatoria asimétrica; la asociación
con HLA-B27 (un alelo definido serológicamente del
locus HLA-B del MCH de la clase I); la inflamación
ocular, y la ausencia de anticuerpos asociados con otras
enfermedades reumatoides. La célula más implicada como clave para
la inducción de la enfermedad es el linfocito CD8+ T, una célula
que apunta a antígenos presentados por moléculas del MHC de la clase
I. Las células CD8+ T podrían reaccionar contra el alelo
HLA-B27 del MHC de la clase I como si fuera un
péptido extraño expresado por moléculas de la clase I del MHC. Se
ha hipotetizado que un epítopo de HLA-B27 podría
imitar un epítopo antigénico de bacteria u otro epítopo antigénico
de microbio y, por tanto, inducir una respuesta de células CD8
+T.
La esclerosis sistémica (esclerodermia) tiene
una etiología desconocida. Una marca característica de la
enfermedad es la induración de la piel; probablemente, ésta es
inducida por un proceso inflamatorio activo. La esclerodermia puede
ser localizada o sistémica; las lesiones vasculares son comunes, y
la lesión de las células endoteliales en la microvasculatura es un
suceso temprano e importante en el desarrollo de la esclerosis
sistémica; la lesión vascular podría ser inmunomediada. Está
implicada una base inmunológica, por la presencia de infiltrados de
células mononucleares en las lesiones cutáneas y por la presencia de
anticuerpos antinucleares en muchos pacientes.
ICAM-1 está a menudo regulada al alza sobre la
superficie celular de los fibroblastos en las lesiones de la piel,
sugiriendo que la interacción de las células T con estas células
podría tener un papel en la patogénesis de la enfermedad. En el
riñón, la proliferación concéntrica de la intima subendotelial que
afecta las pequeñas arterias arcuada e interlobulares puede resultar
en un flujo de sangre cortical renal reducido y, por tanto, en
proteinuria, azotemia e hipertensión; músculo esquelético: atrofia,
fibrosis intersticial; inflamación; pulmón: neumonitis intersticial
y fibrosis intersticial; y corazón: necrosis de la banda de
contracción, cicatrización/fibrosis.
Las miopatías inflamatorias idiopáticas,
incluyendo la dermatomiositis, la polimiositis y otras, son
enfermedades de inflamación crónica del músculo, de etiología
desconocida, que resultan en debilidad muscular. La
lesión/inflamación del músculo es a menudo simétrica y progresiva.
Los autoanticuerpos están asociados con la mayoría de las formas.
Estos autoanticuerpos específicos de la miositis están dirigidos
contra e inhiben la función de los componentes, proteínas y ARN,
implicados en la síntesis proteica.
El síndrome de Sjogren se debe a la inflamación
inmunomediada y subsiguiente destrucción funcional de las glándulas
lacrimales y de las glándulas salivares. Esta enfermedad puede estar
asociada con, o acompañada por, enfermedades inflamatorias del
tejido conectivo. La enfermedad está asociada con la producción de
autoanticuerpos contra los antígenos Ro y La, los cuales son ambos
complejos pequeños de ARN-proteína. Las lesiones
resultan en queratoconjuntivitis sicca, xerostomia, y otras
manifestaciones o asociaciones, incluyendo la cirrosis biliar, la
neuropatía periférica o sensorial, y la púrpura palpable.
Las vasculitis sistémicas son enfermedades en
las que la lesión primaria es la inflamación y subsiguiente lesión
de los vasos sanguíneos, lo que resulta en la
isquemia/necrosis/degeneración de los tejidos suministrados por los
vasos afectados, y la eventual disfunción final del órgano en
algunos casos. Las vasculitis pueden ocurrir también como una
lesión secundaria o secuela de otras enfermedades inflamatorias
inmunomediadas, tales como la artritis reumatoide, la esclerosis
sistémica, etc., particularmente en enfermedades asociadas también
con la formación de complejos inmunes. Las enfermedades en el grupo
de la vasculitis sistémica primaria incluyen: la vasculitis
sistémica necrotizante, la poliarteritis nudosa, la angitis alérgica
y la granulomatosis, la poliangis, la granulomatosis de Wegener; la
granulomatosis linfomatoide; y la arteritis de células gigantes.
Las diversas vasculitis incluyen: el síndrome del nodo linfático
mucocutáneo (MLNS o enfermedad de Kawasaki), la vasculitis aislada
del SNC, la enfermedad de Behet's, la tromboangitis obliterante
(enfermedad de Buerger's) y la venulitis necrotizante cutánea. Se
cree que el mecanismo patogénico de la mayoría de los tipos de
vasculitis listados se debe principalmente a la deposición de
complejos de inmunoglobulina en la pared del vaso, y en la
inducción subsiguiente de una respuesta inflamatoria a través de la
ADCC, de la activación del complemento, o ambas.
La sarcoidosis es una condición de etiología
desconocida que se caracteriza por la presencia de granulomas
epitelioides en casi cualquier tejido en el cuerpo; la implicación
del pulmón es la más común. La patogénesis implica la persistencia
de macrófagos activados y células linfoides en los sitios de la
enfermedad, con la subsiguiente secuela crónica que resulta de la
liberación de productos local y sistémicamente activos, liberados
por estos tipos celulares.
La anemia hemolítica autoinmune, incluyendo la
anemia hemolítica autoinmune, la pancitopenia inmune, y la
hemoglobinuria paroxística nocturna, es un resultado de la
producción de anticuerpos que reaccionan con antígenos expresados
sobre la superficie de los glóbulos rojos (y en algunos casos otras
células sanguíneas, incluyendo también las plaquetas) y es un
reflejo de la supresión de estas células recubiertas por anticuerpos
a través de la lisis mediada por el complemento y/o por los
mecanismos mediados por ADCC/receptor Fc.
En la trombocitopenia autoinmune, incluyendo la
púrpura trombocitopénica, y la trombocitopenia inmunomediada en
otras situaciones clínicas, la destrucción/eliminación de las
plaquetas ocurre a resultas de la unión del anticuerpo o
complemento a las plaquetas, y la eliminación subsiguiente por
mecanismos mediados por la lisis de complemento, por la ADCC o por
el receptor-Fc.
La tiroiditis, incluyendo la enfermedad de
Grave, la tiroiditis de Hashimoto, la tiroiditis juvenil
linfocítica y la tiroiditis atrófica, son el resultado de una
respuesta autoinmune contra antígenos de la tiroides con producción
de anticuerpos que reaccionan con proteínas presentes en, y a menudo
específicas de la glándula tiroides. Existen modelos
experimentales, incluyendo modelos espontáneos: en ratas (ratas BUF
y BB) y en pollos (cepa de pollos obesos); modelos inducibles:
inmunización de los animales con tiroglobulina, antígeno microsomal
tiroideo (peroxidasa tiroidea).
La diabetes mellitus del tipo I o diabetes
dependiente de la insulina es la destrucción autoinmune de las
células \beta de los islotes pancreáticos; esta destrucción está
mediada por autoanticuerpos y células T autoreactivas. Los
anticuerpos contra la insulina o el receptor de la insulina pueden
producir también el fenotipo de no respuesta a la insulina.
Las enfermedades renales inmunomediadas,
incluyendo la glomerulonefritis y nefritis tubulointersticial, son
el resultado de la lesión al tejido renal, mediada por anticuerpos o
linfocitos T, bien directamente a resultas de la producción de
anticuerpos autoreactivos o de células T contra antígenos renales, o
indirectamente a resultas del deposito en el riñón de anticuerpos
y/o complejos inmunes que reaccionan contra otros antígenos no
renales. Por tanto, otras enfermedades inmunomediadas que resultan
en la formación de inmunocomplejos pueden inducir también una
enfermedad renal inmunomediada como secuela indirecta. Tanto los
mecanismos inmunes directos como los indirectos resultan en una
respuesta inflamatoria que produce/induce el desarrollo de una
lesión en los tejidos renales, con el resultado del deterioro de la
función del órgano y, en algunos casos, la progresión hacia el
fallo renal. Ambos, mecanismos inmunes humorales y celulares pueden
estar implicados en la patogénesis de las lesiones.
Se cree que las enfermedades desmielinizantes de
los sistemas nerviosos central y periférico, incluyendo la
esclerosis múltiple, la polineuropatía idiopática desmielinizante o
síndrome de Guillain-Barre y la polineuropatía
inflamatoria crónica desmielinizante, tienen una base autoinmune y
resultan en la desmielinación del nervio a resultas del daño
causado a los oligodendrocitos o directamente a la mielina. En la MS
hay evidencia que sugiere que la inducción y progresión de la
enfermedad depende de los linfocitos T. La esclerosis múltiple es
una enfermedad desmielinizante que es dependiente de los linfocitos
T, que tiene, o un curso recurrente-remitente o un
curso progresivo crónico. La etiología es desconocida; sin embargo,
todos contribuyen: las infecciones víricas, la predisposición
genética, el entorno y la autoinmunidad. Las lesiones contienen
infiltrados de, predominantemente, células microgliales y
macrófagos infiltrantes mediados por linfocitos T; los linfocitos T
CD4+ son el tipo celular predominante en las lesiones. El mecanismo
de la muerte de las células oligodendrocitos y la desmielinación
subsiguiente no se conoce, pero es probable que esté dirigido por
los linfocitos T.
La enfermedad pulmonar inflamatoria y fibrótica,
incluyendo las neumonías eosinofílicas, la fibrosis idiopática
pulmonar, y la neumonitis por hipersensibilidad podrían implicar una
respuesta inmuno-inflamatoria desregulada. La
inhibición de esta respuesta tendría un beneficio terapéutico.
Las enfermedades de la piel autoinmunes o
inmuno-mediadas, incluyendo las enfermedades de la
piel ampollosa, el eritema multiforme, y la dermatitis por
contacto, están mediadas por auto-anticuerpos, la
génesis de los cuales depende de los linfocitos T.
La psoriasis es una enfermedad inflamatoria
mediada por linfocitos T. Las lesiones contienen infiltrados de
linfocitos T, macrófagos y células procesadores de antígeno, y
algunos neutrófilos.
Las enfermedades alérgicas, incluyendo el asma,
la rinitis alérgica, la dermatitis atópica, la hipersensibilidad a
la comida, y la urticaria, son dependientes de linfocitos T. Estas
enfermedades son predominantemente mediadas por la inflamación
inducida por linfocitos T, la inflamación mediada por IgE o una
combinación de ambas.
Las enfermedades asociadas con los trasplantes,
incluyendo el rechazo del injerto y la enfermedad del
injerto-contra-el huésped (GVHD) son
linfocito-T dependientes; la inhibición de la
función de los linfocitos T es aliviadora.
Otras enfermedades en las que la intervención de
la respuesta inmunitaria y/o inflamatoria proporciona beneficio son
las enfermedades infecciosas, incluyendo pero no limitándose a la
infección vírica (incluyendo pero no limitándose al SIDA, hepatitis
A, B, C, D, E), la infección bacteriana, las infecciones por hongos,
y las infecciones por protozoos o parásitos (la molécula (o
derivados/agonistas) que estimulan el MLR pueden utilizarse
terapéuticamente para potenciar la respuesta inmune contra agentes
infecciosos), las enfermedades de inmunodeficiencia
(moléculas/derivados/agonistas) que estimulan el MLR pueden
utilizarse terapéuticamente para potenciar la respuesta inmune en
condiciones de inmunodeficiencia heredada, adquirida, inducida por
infección (como en la infección por el VIH) o iatrogénica (es
decir, como procedente de la quimioterapia) y de neoplasia.
Los antagonistas o agonistas pueden
administrarse de acuerdo con procedimientos conocidos, tales como
la administración intravenosa como un bolo o mediante infusión
continuada a lo largo de un período de tiempo, por rutas
intramuscular, intraperitoneal, intracerebrospinal, subcutánea,
intra-articular, intrasinovial, intratecal, oral,
tópica, o por inhalación. Opcionalmente, la administración podría
realizarse a través de la infusión con mini-bomba,
usando varios dispositivos disponibles comercialmente. Los
antagonistas o agonistas podrían emplearse también usando la
técnicas de terapia génica que se han descrito en el campo.
Las dosificaciones y regímenes para administrar
antagonistas o agonistas podrían determinarse empíricamente, y
hacer tales determinaciones se halla dentro de los conocimientos del
campo. Podrían empleares dosificaciones únicas o múltiples. Se cree
actualmente que una dosis o cantidad efectiva de antagonista o
agonista usado solo podría oscilar desde aproximadamente 1
\mug/kg hasta aproximadamente 100 mg/kg de peso corporal o más
por día. El escalado de las dosis entre especies puede realizarse de
una forma conocida en el campo, por ejemplo, tal como se describe
en Mordenti et al., Pharmaceut. Res., 8:1351
(1991).
Cuando se emplea la administración in
vivo de un agonista o antagonista del mismo, las cantidades de
dosificación normal podrían variar desde aproximadamente 10 ng/kg
hasta aproximadamente 100 mg/kg de peso corporal del mamífero, o
más por día, preferiblemente aproximadamente desde 1 \mug/kg/día
hasta 10 mg/kg/día, dependiendo de la ruta de administración. La
guía sobre dosificaciones y procedimientos de suministro concretos
se proporciona en la literatura, consultar, por ejemplo, las
patentes estadounidenses nº 4.657.760; 5.206.344; o 5.225.212. Se
anticipa que formulaciones diferentes serán efectivas para
diferentes compuestos de tratamiento y diferentes trastornos, que
la administración que apunta a un órgano o tejido específico podría
necesitar, por ejemplo, ser suministrada de manera distinta a la de
otro órgano o tejido. Los especialistas en el campo apreciarán que
la dosificación de antagonista o agonista que debe administrarse
variará dependiendo, por ejemplo, del mamífero que recibirá el
agonista o antagonista, de la ruta de administración, y de otros
fármacos o terapias que se estén administrando al mamífero.
Dependiendo del tipo y gravedad de la
enfermedad, una dosificación candidata inicial, para la
administración al paciente, es aproximadamente de 1 \mug/kg a 15
mg/kg (por ejemplo, 0,1-20 mg/kg) del anticuerpo
antagonista o anticuerpo agonista, sea, por ejemplo, mediante una o
más administraciones separadas o mediante infusión continuada. Una
dosificación diaria típica podría oscilar desde aproximadamente 1
\mug/kg hasta 100 mg/kg o más, dependiendo de los factores antes
mencionados. Para administraciones repetidas a lo largo de varios
días o más, dependiendo de la condición, el tratamiento se mantiene
hasta que ocurre una supresión deseada de los síntomas. Sin
embargo, podrían ser útiles otros regímenes de dosificación.
Opcionalmente, antes de la administración de
cualquier antagonista o agonista, el mamífero o paciente puede
ensayarse para determinar los niveles o actividad de
TALL-1 o APRIL, o TACI o BCMA. Tales ensayos podrían
realizarse mediante ELISA o FACS de muestras de suero o con
leucocitos de sangre periférica.
Podría usarse un único tipo de antagonista o
agonista en los procedimientos de la invención. Por ejemplo, podría
administrase un antagonista de TALL-1, tal como una
molécula inmunoadhesina del receptor TACI. Alternativamente, el
médico capacitado podría optar por emplear una combinación de
antagonistas o agonistas en los procedimientos, por ejemplo, una
combinación de una inmunoadhesina de receptor TACI y un anticuerpo
anti-APRIL. Podría ser deseable ademas emplear un
antagonista dual, es decir, un antagonista que actúa para bloquear o
inhibir tanto TALL-1 como APRIL Un molécula
antagonista tal podría, por ejemplo, unirse a epítopos conservados
entre el TALL-1 y APRIL, o TACI y BCMA.
Se contempla que aún podrían emplearse terapias
adicionales en el procedimiento. La otra terapia u otras terapias
podrían incluir, pero no limitarse a, la administración de terapia
de radiación, citocina(s), agente(s)
inhibidor(es) de crecimiento, agente(s)
quimioterapéutico(s), agente(s) citotóxico(s),
inhibidores de la tirosina quinasa, inhibidores de la transferasa
ras farnesil, angiogénesis, inhibidores, e inhibidores de la
quinasa dependiente de ciclina, los cuales son conocidos en el campo
y se definen adicionalmente particularmente en la SECCIÓN 1
anterior. Además, las terapias basadas en anticuerpos terapéuticos
que apuntan a los antígenos del tumor diana, tales como el
Rituxan^{TM} o Hercepetina^{TM}, así como los anticuerpos
anti-angiogénicos tales como el
anti-VEGF.
La preparación y programación de la dosificación
para los agentes quimioterapéuticos podría usarse de acuerdo con
las instrucciones del fabricante, o según sea determinado
empíricamente por el médico capacitado. La preparación y los
programas de dosificación para tal quimioterapia se describen
también en Chemotherapy Service, Ed. M. C. Perry, Williams
& Wilkins, Baltimore, Md. (1992). El agente quimioterapéutico
podría preceder, o seguir la administración de, por ejemplo, un
antagonista, o podrían administrase simultáneamente al mismo. Los
antagonistas podrían combinarse también con un compuesto
anti-estrógeno como el tamoxifén, o una
anti-progesterona tal como la onapristona
(consultar, EP 616.812) en dosis conocidas para tales moléculas.
Podría ser deseable administrar también
anticuerpos contra otros antígenos, tales como los anticuerpos
unidos a CD20, CD11a, CD18, CD40, ErbB2, EGFR, ErbB3, ErbB4, o al
factor endotelial vascular (VEGF). Alternativamente, o además,
podrían coadministrarse al pacientes dos o más anticuerpos que se
unen al mismo o a dos o más antígenos diferentes descritos en la
presente. A veces, podría ser beneficioso administrar también una o
más citocinas al paciente. En una realización, los antagonistas de
la invención se coadministran con un agente inhibidor del
crecimiento. Por ejemplo, el agente inhibidor del crecimiento podría
administrarse primero, seguido por un antagonista de la
invención.
El antagonista o agonista (y una o más de otras
terapias) podrían administrarse de forma concurrente o secuencial.
A continuación de la administración de antagonista o agonista,
pueden analizarse las células tratadas in vitro. Cuando ha
habido un tratamiento in vivo, el mamífero tratado puede
monitorizarse de varias formas bien conocidas por el médico
capacitado. Por ejemplo, pueden ensayarse los marcadores de
actividad de las células B, tales como la producción de Ig (no
específica o específica para el antígeno).
La invención también abarca procedimientos de
cribado de moléculas para identificar aquéllas que pueden actuar
como agonistas o antagonista de la interacción de APRIL/TACI/BCMA o
de la interacción de TALL-1/TACI/BCMA. Tales
moléculas podrían comprender moléculas pequeñas o polipéptidos,
incluyendo los anticuerpos. Los ejemplos de moléculas pequeñas
incluyen, pero no se limitan a, los péptidos pequeños o las
moléculas similares a péptidos, los péptidos preferiblemente
solubles, y los compuestos inorgánicos u orgánicos no peptídicos
sintéticos. Los ensayos de cribado en busca de candidatos de
fármacos se diseñan para identificar compuestos o moléculas que se
unen o complejan con los polipéptidos de ligando o receptor
identificados en la presente, o que interfieren de otro modo con la
interacción de estos polipéptidos con otras proteínas celulares.
Tales ensayos de cribado incluirán los ensayos capaces de un
cribado de elevado rendimiento de bibliotecas químicas, haciéndolos
particularmente apropiados para identificar pequeñas moléculas
candidatas a fármaco.
Los ensayos pueden realizarse en una variedad de
formatos, incluyendo los ensayos de unión
proteína-proteína, los ensayos de cribado
bioquímico, los inmunoensayos, y los ensayos basados en células, los
cuales están bien caracterizados en el campo.
Los ensayos para, por ejemplo, antagonistas
tienen en común que buscan poner en contacto el candidato a fármaco
con un polipéptido de ligando o receptor identificado en la
presente, en condiciones y durante un tiempo suficiente para
permitir que estos dos componentes interaccionen.
En los ensayos de unión, la interacción es la
unión, y el complejo formado puede aislarse o detectarse en la
mezcla de reacción. En una realización particular, el polipéptido de
ligando o receptor identificado en la presente o el candidato a
fármaco se inmovilizan sobre una fase sólida, por ejemplo, sobre una
placa de microvaloración, mediante acoplamiento covalente o no
covalente. El acoplamiento no covalente generalmente se consigue
recubriendo la superficie sólida con una solución del polipéptido
del ligando o receptor y secándola. Alternativamente, un anticuerpo
inmovilizado, por ejemplo, un anticuerpo monoclonal, específico para
el polipéptido ligando o receptor a inmovilizarse, puede usarse
para anclarlo sobre un superficie sólida. El ensayo se realiza
añadiendo el componente no inmovilizado, el cual podría marcarse
mediante una marca detectable, al componente inmovilizado, por
ejemplo, la superficie recubierta que contiene el componente
anclado. Cuando se completa la reacción, se eliminan los
componentes que no han reaccionado, por ejemplo, mediante lavado, y
se detectan los complejos anclados sobre la superficie sólida.
Cuando el componente originalmente no inmovilizado es portador de
una marca detectable, la detección de la marca inmovilizada sobre la
superficie indica que ha ocurrido la formación del complejo. Cuando
el componente originalmente no inmovilizado no es portador de una
marca, la formación del complejo puede detectarse, por ejemplo,
usando un anticuerpo marcado que se une específicamente al complejo
inmovilizado.
Si el compuesto candidato interacciona pero no
se une un polipéptido ligando o receptor concreto identificado en
la presente, su interacción con ese polipéptido puede ensayarse
mediante procedimientos bien conocidos para detectar interacciones
proteína-proteína. Tales ensayos incluyen las
estrategias tradicionales, tales como, por ejemplo, el
entrecruzamiento, la co-inmunoprecipitación, y la
co-purificación a través de gradientes o columnas
cromatográficas. Además, las interacciones
proteína-proteína pueden monitorizarse usando un
sistema genético basado en levaduras descrito por Fields y
colaboradores (Fields y Song, Nature (London),
340:245-246 (1989); Chien et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 88:9578-9582 (1991)) tal
como describen Chevray y Nathans, Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 89: 5789-5793 (1991). Muchos de los
activadores de la transcripción, tales como el GAL4 de levadura,
consisten en dos dominios modulares físicamente discretos, actuando
uno como dominio unidor de ADN, y funcionando el otro como dominio
de activación de la transcripción. El sistema de expresión de
levadura descrito en lsa publicaciones precedentes (generalmente
denominado como el "sistema de dos híbridos") se aprovecha de
esta propiedad, y emplea dos proteínas híbridas, una en la que la
proteína diana está fusionada al dominio unidor de ADN de GAL4, y
otra en la que las proteínas activadoras candidatas están unidas al
dominio de activación. La expresión de un gen informador
GAL1-lacZ bajo control de un promotor
GAL4-activado depende de la reconstitución de la
actividad GAL4 a través de la interacción
proteína-proteína. Las colonias que contienen los
polipéptidos que interaccionan se detectan con un sustrato
cromogénico para la \beta-galactosidasa. Un
equipo completo (MATCHMAKER^{TM}) para identificar interacciones
proteína-proteína entre dos proteínas específicas
usando la técnica de dos híbridos está disponible de Clontech. Este
sistema puede extenderse también para mapear dominios proteicos
implicados en interacciones proteicas específicas, así como para
señalar residuos aminoácidos que son cruciales para estas
interacciones.
Los compuestos o moléculas que interfieren con
la interacción de un polipéptido ligando o receptor identificado en
la presente y otros componentes intra- o extracelulares, puede
ensayarse como sigue: usualmente se prepara una mezcla de reacción
que contiene el producto del gene y el componente intra- o
extracelular en condiciones y durante un tiempo que permite la
interacción y unión de los dos productos. Para ensayar la capacidad
de un compuesto candidato para inhibir la unión, la reacción se
corre en ausencia y en presencia del compuesto de ensayo. Además,
podría añadirse un placebo a una tercera mezcla de reacción para
servir como control positivo. La unión (formación de complejo)
entre el compuesto de ensayo y el componente intra- o extracelular
presente en la mezcla se monitoriza como se ha descrito en la
presente más arriba. La formación de un complejo en la reacción o
reacciones de control, pero no en la mezcla de reacción que contiene
el compuesto de ensayo, indica que el compuesto de ensayo
interfiere con la interacción del compuesto de ensayo y su pareja de
reacción.
Para ensayar los antagonistas, el polipéptido
ligando o receptor podría añadirse a un célula junto con el
compuesto a examinarse en función de una determinada actividad, y la
capacidad del compuesto para inhibir la actividad de interés en
presencia del polipéptido de ligando o receptor indica que el
compuesto en un antagonista del polipéptido ligando o receptor.
Alternativamente, los antagonistas podrían detectarse combinando el
polipéptido ligando o receptor y un antagonista potencial con
receptores o receptores recombinantes polipeptídicos unidos a
membrana en condiciones apropiadas para un ensayo de inhibición
competitiva. El polipéptido ligando o receptor puede marcarse, tal
como mediante radiactividad, de tal forma que el número de moléculas
de polipéptido unidad al receptor puede usarse para determinar la
efectividad del antagonista potencial. El gen que codifica el
receptor puede identificarse mediante numerosos procedimientos
conocidos por aquéllos capacitados en el campo, por ejemplo, el
cribado de ligando y la separación FACS. Coligan et al.,
Current Protocols in Immun., 1(2): capítulo 5 (1991).
Preferiblemente, la clonación de expresión se emplea cuando se
prepara ADN poliadenilado a partir de una célula que responde al
polipéptido ligando o receptor, y una biblioteca de ADNc creada a
partir de esta ARN se divide en lotes y se usa para transfectar
células COS u otras células que no responden al polipéptido ligando
o receptor. Las células transfectadas, que se hacen crecer sobre
portaobjetos de vidrio, se exponen a polipéptido ligando o receptor
marcado. El polipéptido ligando o receptor puede marcarse mediante
una variedad de medios, incluyen la yodación o la inclusión de un
sitio de reconocimiento para una quinasa de proteína específica de
un sitio. A continuación de la fijación e incubación, los
portaobjetos se someten a análisis autorradiográfico. Se
identifican los lotes positivos y se preparan sublotes y transfectan
de nuevo usando un proceso interactivo de subdivisión y reexamen,
rindiendo eventualmente un único clon que codifica el receptor
putativo.
Como una estrategia alternativa, el polipéptido
ligando marcado puede unirse por fotoafinidad con preparaciones de
membrana celular o extractos que expresan la molécula del receptor.
El material entrecruzado se resuelve mediante PAGE y se expone a
película de rayos-X. El complejo marcado que
contiene el receptor puede extraerse, resolverse en fragmentos
peptídicos, y someterse a microsecuenciación de proteína. La
secuencia de aminoácidos obtenida de la microsecuenciación se
usaría para diseñar un conjunto de sonda de oligonucleótidos
degeneradas para examinar un biblioteca de ADNc para identificar los
genes que codifican el receptor putativo.
En otra realización de la invención, se
proporciona un artículo manufacturado que contiene materiales
útiles para el tratamiento de los trastornos descritos más arriba.
El artículo manufacturado comprende un contenedor y una marca. Los
contenedores apropiados incluyen, por ejemplo, las botellas, los
viales, las jeringas y los tubos de ensayo. Los contenedores
podrían estar formados por una variedad de materiales, tales como
el vidrio o el plástico. El contenedor contiene una composición que
es efectiva para tratar la condición, y podría tener un puerto de
acceso estéril (por ejemplo, el contenedor podría ser una bolsa de
solución intravenosa o un vial que tiene un tapón perforable
mediante una aguja de inyección hipodérmica). Los agentes activos
en la composición podrían comprender el antagonista o antagonistas
de TALL-1 o el antagonista o antagonistas de APRIL,
o el agonista o agonistas de TACI, o el agonista o agonistas de
BCMA. Las marca sobre, o asociada al contenedor indica que la
composición se usa para tratar la condición escogida. El artículo
manufacturado podría comprender además un segundo contenedor que
comprende un tampón farmacéuticamente aceptable, tal como una
solución salina tamponada con fosfato, una solución de Ringer, y una
solución de dextrosa. Además, podría incluir otros materiales
deseables desde un punto de vista comercial y del usuario,
incluyendo otros tampones, diluyentes, filtros, agujas, jeringas, e
insertos del paquete con instrucciones para su uso.
Los ejemplos siguientes se ofrecen a modo de
ilustración y no a modo de limitación.
Se preparó una proteína quimérica, denominada
"AP-TALL-1", usando la
fosfatasa alcalina (AP) de placenta humana fusionada al extremo
N-terminal del polipéptido TALL-1,
consistente en los aminoácidos 136-285 mostrados en
la Figura 3. La AP se obtuvo mediante ampliación por PCR usando
pAPtag-5 (Genehunter Corporation) como plantilla, y
se fusionó y clonó en el vector de expresión, pCMV-1
Flag (Sigma), con AP en el extremo N-terminal de
TALL-1. AP-TALL-1 se
transfectó transitoriamente (usando el reactivo Lipofectamine;
Gibco-BRL) y se expresó en células 293 de riñón
embrionario humano (ATCC).
AP-TNF-alfa (Pennica et al.,
ver más abajo) se preparó de forma similar. AP-EDA
(que comprende los aminoácidos 241-391 de EDA;
Srivastava et al., Proc. Natl. Acad. Sci.,
94:13069-13074 (1997)) también se preparó de forma
similar. El medio condicionado procedente de las células 293
transfectadas se filtro (0,45 micras), se almacenó a 4ºC en un
tampón que contenía HEPES 20 mM (pH 7,0) y azida sódica 1 mM, y se
usó para los procedimientos de tinción celular subsiguientes.
Además, se construyó un forma de
TALL-1 marcada con Flag en el extremo
N-terminal en el vector pCMV-1
Flag. Para promover la trimerización de esta construcción
TALL-1 marcada con Flag, se insertó una forma
trimérica de secuencia de cremallera de leucina [Science,
262:1401-1407 (1993)] entre la marca Flag y el
TALL-1 (consistente en los aminoácidos
136-285 de la Figura 3), y esta construcción se
denominó
"Flag-LZP-TALL-1".
El Flag-LZP-TALL-1
se purificó usando gel M2-agarosa (Sigma) a partir
de medio libre de suero de células 293 transfectadas con el
plásmido de expresión del
Flag-LZP-TALL-1.
La reactividad de AP pudo detectarse fácilmente
cuando se aplicó medio condicionado por
AP-TALL-1, pero no con el medio
control condicionado con AP, a células IM-9 (ATCC),
las cuales se ha observado presentan niveles elevados de actividad
de unión de TALL-1 (no se muestran los datos). El
Flag-LZP-TALL-1
purificado también se unió a las células IM-9,
según se determinó mediante análisis FACS (no se muestran los
datos). De forma importante, la unión de
AP-TALL-1 a las células
IM-9 se bloqueó efectivamente mediante preincubación
con Flag-LZP-TALL-1
purificado, pero no con TNF-alfa [preparado
esencialmente tal como se describe en Pennica et al.,
Nature, 312:724-729 (1984)], sugiriendo que
ambas formas de TALL-1 eran funcionales y que la
unión respectiva de AP-TALL-1 y
Flag-LZP-TALL-1 a
células IM-9 era específica.
Para identificar un receptor para
TALL-1, se construyó una biblioteca de expresión de
ADNc en el vector pRK5 (EP 307.247, publicada el 15 de marzo de
1989) usando ARNm PolyA+ derivado de las células
IM-9 [Flanagan et al., Cell, 63:185
(1990)]. Se transfectaron lotes de 1000 clones de ADNc (Miniprep DNA
(Qiagen)) procedentes de la biblioteca (usando Lipofectamine) en
células COS 7 (ATCC) en placas de 6 pocillos, las cuales,
transcurridas 36-48 horas, se incubaron a
continuación con medio condicionado con
AP-TALL-1, se lavaron y se tiñeron
en busca in situ en busca de actividad AP. Un lote positivo
se rompía en lotes sucesivamente de menor tamaño. Después de tres
rondas de cribado, se identificó un único ADNc que codificaba una
actividad de unión por AP-TALL-1.
La secuenciación del inserto de ADNc reveló un único marco de
lectura abierta, que se predijo codificaba una proteína de 265
aminoácidos. Este polipéptido de 265 aminoácidos (denominado
"hTACI (265)" en la Figura 6), cuando se alineaba con la
secuencia TACI mostrada en la Figura 1 (denominada "hTACI" en
la Figura 6), reveló un elevado porcentaje de identidad de
secuencia, particularmente en el ECD. El alineamiento de estas dos
secuencias se muestra en la Figura 6. Se cree que la forma de 265
aminoácidos de TACI podría ser una variante ayustada de la
secuencia TACI mostrada en la Figura 1.
En un ensayo in vitro, se sembraron
células COS 7 (ATCC) en placas de 12 pocillos 24 horas antes de su
transfección. Las células se transfectaron entonces con 1 microgramo
de TACI (la forma de 265 aminoácidos del TACI humano descrito más
arriba, clonado en el vector pRK5B vector, ver más abajo) o el
plásmido vector (pRK5B) solo. 18-24 horas después
de la transfección, las células se incubaron con medio condicionado
que contenía AP-TALL-1,
AP-TNF-alfa, o
AP-EDA, durante 1 hora a temperatura ambiente, y se
tiñeron in situ en busca de actividad AP según se describe
en Tartaglia et al., Cell,
83:1263-1271 (1995).
Tal como se muestra en la Figura 7, se halló que
AP-TALL-1 (Figura 7A), pero no
AP-TNF-alfa (Figura 7B) o
AP-EDA (Figura 7C), se unía a células COS 7
transfectadas con TACI. El AP-TALL-1
no tiñó las células transfectadas con el plásmido vector solo
(Figura 7D). La unión de AP-TALL-1 a
las células COS 7 transfectadas con TACI fue bloqueada
efectivamente por una forma marcada con Flag de
TALL-1, pero no por una forma marcada con Flag de
LIGHT (Mauri et al., ver más arriba], otro homólogo del TNF
(no se muestran los datos).
Se prepararon ligando marcados con Flag tal como
sigue. Los aminoácidos 82-240 de LIGHT (Mauri et
al., Immunity, 8:21-30 (1998)) se
subclonaron en pCMV-1 Flag (Sigma) usando un sitio
NotI para fusionar los aminoácidos 1-27 de la
secuencia de marca y señal Flag cadena arriba de la secuencia LIGHT.
Los aminoácidos 105-250 de APRIL (ver la Figura 4)
se clonaron de forma similar en pCMV-1 Flag (Sigma),
excepto que se usó un sitio HindIII, resultando en la fusión a los
aminoácidos 1-24 de la secuencia de marca y señal
Flag. Los aminoácidos 124-285 de
TALL-1 (ver la Figura 3) se fusionaron a los
aminoácidos 1-27 de la secuencia de marca y señal
Flag, tal como se ha descrito más arriba para la secuencia
Flag-LIGHT. AP-APRIL se preparó
clonando los aminoácidos 105-250 de APRIL (ver la
Figura 4) en un vector pCMV-1 Flag que codificaba la
fosfatasa alcalina de placenta humana, de tal forma que la
secuencia codificante de APRIL estaba fusionada de forma
C-terminal a AP, mientras que la AP estaba
fusionada de forma C-terminal a Flag.
AP-TALL-1 se preparó clonando los
aminoácidos 135-285 de TALL-1 (ver
la Figura 3) en el vector pCMV-1 Flag AP, tal como
se describió más arriba para AP-APRIL. Las
respectivas proteínas marcadas se expresaron entonces en células 293
o en células CHO, y se purificaron usando resina M2
anti-Flag (Sigma).
Un \mug de Flag-LIGHT
(control), Flag-APRIL, o
Flag-TALL-1, o
Flag-AP-APRIL, o
Flag-AP-TALL-1
humanos purificados se incubó con 1 \mug de una inmunoadhesina
humana purificada que contenía la fusión IgG1-Fc
del ECD de DcR3 (control; Pitti et al., Nature,
396:699-703 (1998)) o TACI o BCMA, durante la noche,
a 4ºC, por duplicado. Las inmunoadhesinas
TACI-ECD.hFc se prepararon según los procedimientos
descritos en Ashkenazi et al., Proc. Natl. Acad.
Sci., 88:10535-10539 (1991). Las construcciones
inmunoadhesinas consistían en los aminoácidos 2-166
del polipéptido TACI humano (ver la Figura 1). Las construcciones
TACI-ECD se expresaron en células CHO usando una
secuencia señal heteróloga (pre-pro tripsina
aminoácidos 1-17 de pCMV-1 Flag
(Sigma)) y codificando la región Fc de IgG1 cadena abajo respecto
la secuencia TACI, y a continuación se purificaron mediante
cromatografía de afinidad con Proteína-A. Las
inmunoadhesinas BCMA-ECD se prepararon mediante
procedimientos descritos en Ashkenazi et al., tal como se
citó más arriba. Las construcciones inmunoadhesinas consistían en
los aminoácidos 5-51 del polipéptido BCMA humano
(ver la Figura 2). Las construcciones BCMA-ECD se
expresaron en células CHO usando una secuencia señal heteróloga
(pre-pro tripsina aminoácidos 1-17
de pCMV-1 Flag (Sigma)) y codificando la región Fc
de IgG1 cadena abajo respecto la secuencia BCMA, y a continuación se
purificaron mediante cromatografía de afinidad con
Proteína-A.
Un conjunto de reacciones (Figura 8; paneles
A-C) se sometió a inmunoprecipitación a través del
receptor-inmunoadhesina con Proteína
A-agarosa (Repligen). El segundo conjunto de
reacciones (Figura 8; paneles D-F) se sometió a
inmunoprecipitación a través del ligando marcado con Flag con mAb
anti-Flag-M2-agarosa
(Sigma). Los inmunoprecipitados se analizaron entonces mediante
transferencia Western con mAb M2 anti-Flag conjugado
con peroxidasa de rábano silvestre (Sigma) para detectar los
ligando marcados con Flag (Figuras 8A-C) o con pAb
de IgG anti-humana de cabra conjugado con
peroxidasa de rábano silvestre (Amersham) para detectar las
receptor-inmunoadhesinas (Figuras
8D-F).
Los datos muestran que
Flag-LIGHT se unía a DcR3-IgG, pero
no a TACI-IgG o BCMA-IgG.
Flag-APRIL y
Flag-AP-APRIL se unían a
TACI-IgG y BCMA-IgG, pero no a
DcR3-IgG. De forma similar,
Flag-TALL-1 y
Flag-AP-TALL-1 se
unían a TACI-IgG y BCMA-IgG, pero no
a DcR3-IgG. Los resultados de estos ensayos indican
que APRIL y TALL-1 pueden cada uno unirse de una
manera estable y específica a TACI y a BCMA.
En un ensayo de
co-inmunoprecipitación realizado de forma similar,
TACI-Fc (descrito en el Ejemplo 2),
HVEM-Fc (Montgomery et al., ver más arriba),
DR3-Fc (Chinnaiyan et al., Science,
274:990 (1996), Marsters et al., Curr. Biol., 6:1669
(1996)), o DR6-Fc (Pan et al., FEBS
Letters, 431:351-356 (1998)) (1 \mug/ml) se
incubaron con Flag-TALL-1 (1
\mug/ml; preparado según se describe en el Ejemplo 2). Un conjunto
de reacciones se sometió a inmunoprecipitación a través de la
fusión receptor-Fc con Proteína
A-agarosa (Repligen); el segundo conjunto de
reacciones se sometió a inmunoprecipitación a través del ligando con
anticuerpo anti-Flag. Las muestras se analizaron
mediante transferencia Western, como más arriba.
Flag-TALL-1 no se detectó en la
co-inmunoprecipitación con anti-Fc
con las construcciones de fusión con Fc de HVEM, DR3, o DR6 (Figura
8G). De forma opuesta, TACI-Fc no se detectó en la
co-inmunoprecipitación con anti-Flag
con HVEM-Fc, DR3-Fc, o
DR6-Fc (Figura 8H).
Se realizaron ensayos adicionales para
determinar si TACI podía servir como un receptor para otros
miembros de la familia TNF de ligandos. Se transfectaron
transitoriamente células COS 7 (ATCC) (usando el reactivo
Lipofectamine) con formas de membrana de ligandos de la familia TNF.
Entre los ligandos ensayados estaban APRIL, TALL-1,
4-1 BBL, CD27L, CD30L, CD40L, EDA, FasL, GITRL,
LT-alfa, OX-40L, RANKL,
TNF-alfa, TNF-beta y
Apo2L/TRAIL.
El TNF-alfa humano se clonó en
el vector pRK5B (pRK5B es un precursor de pRK5D que no contiene el
sitio SfiI; ver Holmes et al., Science,
253:1278-1280 (1991)). Para la detección de la
expresión del TNF-alfa sobre la superficie celular,
se insertó una marca Flag entre el aminoácido 70 y el aminoácido 71
(usando la numeración acorde con la secuencia en Pennica et
al., ver más arriba). Una región extracelular de
TALL-1 (aa 75-285; ver la Figura
3), 4-1BBL (aa 59-254; Goodwin et
al., Eur. J. Immunol., 23:2631-2641
(1993)), de ligando de CD27 (aa 40-193; Goodwin
et al., Cell, 73:447-456 (1993)), de
ligando de CD30 (aa 61-234; Smith et al.,
Cell, 73:1349-1360 (1993)), de RANKL (aa
71-317; ver WO98/28426), de ligando de
Apo-2 (aa 40-281; ver WO97/25428) o
de Apo-3L (aa 46-249; ver
WO99/19490) se clonó individualmente en el sitio BamHI. Esto resultó
en un ligando quimérico, con las regiones intracelular y
transmembrana del TNF-alfa y la región extracelular
de varios ligandos. Para APRIL (ver la Figura 4) y EDA (Srivastava
et al., ver más arriba), se usando clones de ADNc de longitud
completa sin la marca Flag.
A continuación se incubaron células COS 7
transfectadas con la inmunoadhesina TACI.ECD.hFC (preparada como se
describió más arriba). Las células se incubaron con la TACI
ECD-IgG (o una construcción
TNFR1-IgG preparada como se describió en Ashkenazi
et al., Proc. Natl. Acad. Sci.,
88:10535-10539 (1991)) a 1 \mug/ml durante 1 hora
en PBS. A continuación se lavaron las células tres veces con PBS y
se fijaron con 4% de paraformaldehído en PBS. La tinción de las
células se visualizó mediante incubación con anticuerpo
anti-humano de cabra biotinilado (Jackson Labs, a
una dilución de 1:200) seguida por
Cy3-estreptoavidina (Jackson Labs, a una dilución de
1:200).
Para identificar ligando(s)
potencial(es) de BCMA, se realizaron experimentos de unión
similares, tal como se ha descrito más arriba para TACI. Se preparó
una inmunoadhesina BCMA.ECD.hFc, tal como se ha descrito más
arri-
ba.
ba.
De forma similar a TACI, BCMA sólo interaccionó
con APRIL y TALL-1. Tal como se muestra en la Figura
9A, TACI-hFc y BCMA-hFc se unieron
a células transfectadas con TALL-1 o April pero no
con TNF-alfa. En cambio,
AP-TALL-1 o AP-APRIL
se unieron específicamente a células transfectadas con TACI o BCMA
(Figura 9B).
Se aislaron células mononucleares periféricas
humanas (PBMC) en un gradiente de Ficoll de acuerdo con las
instrucciones del fabricante (medio LSM, ICN/Cappel, Ohio). A
continuación se obtuvieron los leucocitos de sangre periférica
(PBL) a partir del PBMC usando la eliminación estándar de células
que se adhieren a plástico. Los PBL se sembraron placas de 48
pocillos (3 \times 10^{4} células/pocillo en 0,3 ml de medio
RPMI-1640 conteniendo un 10% de FBS) y se incubaron
durante 72 horas a 37ºC, 5% CO2, con PBS (control), o
IL-4 (100 ng/ml, control, R&D Systems,
Minneapolis, Minn.), o Flag-TALL-1
(según se describió en el Ejemplo 2 más arriba) (1 \mug/ml). Para
el análisis de inhibición, se incubaron las células con cada uno de
los anteriores en combinación con 20 \mug/ml de
TACI-IgG o BCMA-IgG (preparados como
se describe en el Ejemplo 2, más arriba), o un control de
inmunoadhesina del mismo isotipo. Se recolectaron los sobrenadantes
de las células y se analizaron los niveles de IgM usando un equipo
de ELISA para IgM de acuerdo con las instruccions del fabricante
(Bethyl Laboratories, TX).
Los resultados se muestran en la Figura 10. La
IL-4, usada como un control positivo, indujo la
producción de IgM en comparación con el PBS de control.
TALL-1 o APRIL indujeron al menos tanta producción
de IgM como la IL-4. La combinación de
TALL-1 y APRIL no mostró una inducción adicional de
IgM en comparación con cada ligando solo. TACI-IgG
no bloqueó el efecto de la IL-4, pero bloqueó
completamente el efecto de TALL-1 y/o APRIL.
BCMA-IgG no bloqueó el efecto de
la IL-4, pero bloqueó sustancialmente el efecto de
TALL-1 y/o APRIL, aunque no completamente. La
inmunoadhesina de control no bloqueó ninguno de los ligandos. Estos
resultados muestran que TALL-1 y APRIL pueden
inducir la producción de IgM en PBL. Más aún, los datos muestran que
TACI-IgG y BCMA-IgG pueden bloquear
el efecto de TALL-1 o APRIL sobre la producción de
IgM, confirmando su respectiva capacidad para unirse cada ligando y
demostrando su respectiva capacidad para bloquear la actividad del
ligando sobre las células diana.
Se sembraron células 293 (ATCC) 24 horas antes
de la transfección a 1 \times 10^{5} células/pocillo en placas
de 12 pocillos, y se transfectaron con 0,25 \mug de plásmido del
gen informador ELAM-luciferasa, 25 ng de
PRL-TK (Promega) y la cantidad indicada de cada
construcción de expresión (ver la Figura 11). La cantidad total de
ADN transfectado se mantuvo constante a 1 mg mediante la
suplementación con vector pRK5B vacío (ver el Ejemplo 2). En
algunos pocillos de ensayo, se añadieron ligando marcados con Flag
(preparados como se describió en el Ejemplo 2) en las
concentraciones indicadas 4 horas después de la transfección. En
otros pocillos de ensayo, las células se cotransfectaron con
TALL-1 (Figura 3) o RANKL (WO98/28426) de longitud
completa. Las células se recolectaron 20-24 horas
después de la transfección y la actividad del gen informador se
determinó con el "Dual-Luciferase Reporter Assay
System" (Promega).
Sólo se observó una activación mínima del
NF-kB cuando TACI o BCMA se expresaban solos a
niveles bajos (tales como a 0,1 ng). Sin embargo, la activación de
NF-kB aumento enormemente, bien por la adición de
Flag-TALL-1 o
Flag-APRIL (Figura 11A), o por la cotransfección con
TALL-1 o APRIL de longitud completa (Figura 11B;
11C).
El tratamiento con
Flag-TALL-1 de células
IM-9 sin transfectar también resultó en la
activación del NF-KR (ver la Figura 11D). Las
células IM-9 (ATCC) se incubaron con
Flag-TALL-1 (0,3 \mug/ml) o PBS
solo o en combinación con 20 \mug/ml de TACI-IgG
o TNFR1-IgG (preparado tal como se describió en el
Ejemplo 2). La actividad del NF-kB se midió
mediante un ensayo de desplazamiento de la actividad electroforética
tal como se describe en Montgomery et al., Cell,
87:427-436 (1996); Marsters et al., J.
Biol. Chem., 272:14029 (1997); Chinnaiyan et al.,
Science, 274:990 (1996); Marsters et al., Curr.
Biol., 6:1669 (1996); Pan et al., FEBS Letters,
431:351 (1998).
Los datos sugieren que una consecuencia
fisiológica de la interacción
TALL-1/APRIL-TACI/BCMA es la
activación de la vía NF-kB.
Se realizaron ensayos in vivo para
determinar si el bloqueo de la interacción
TALL-1/TACI o TALL-1/BCMA perjudica
las respuestas inmunitarias humorales. Tres grupos de ratones
C57BL/6 hembra de 6-8 semanas de edad se
inmunizaron intraperitonealmente (i.p.) con 100 \mug de
gammaglobulina de pollo conjugada con acetilo
(NP23-CgG) (Biosource Technologies) precipitada en
alum
(4-hidroxi-3-nitrofenilo).
Los grupos de animales se trataron diariamente durante 14 días con
50 \mug de TACI-Fc o BCMA-Fc
(preparados según se describe en el Ejemplo 2) en 100 \mul de
solución salina (y los animales control se trataron con 100 \mul
de solución salina) mediante inyección i.p.
Transcurridos 14 días, los sueros de los ratones
se analizaron en busca de IgM específica para NP, IgG1 de baja
afinidad, e IgG1 de elevada afinidad, usando un procedimiento ELISA
estándar. La IgG1 específica de NP, ambos anticuerpos de elevada
afinidad, y los anticuerpos totales (alta más baja afinidad) se
cuantificaron mediante ELISA en pocillos recubiertos con albúmina
de suero bovino conjugada respectivamente con NP2,5 y NP23. Los
anticuerpos unidos se detectaron con IgM o IgG1
anti-ratón de cabra conjugadas con AP
(Pharmingen).
Los resultados se muestran en la Figura 12.
TACI-Fc y BCMA-Fc inhibían
sustancialmente la producción de anticuerpos de IgM específicos
para NP en comparación con el control (Figura 12A), indicando que
las interacciones TALL-1/TACI y
TALL-1/BCMA (y las interacciones APRIL/TACI y
APRIL/BCMA) eran importantes durante la fase temprana de la
activación de las células B que conduce a la secreción de la IgM.
TACI-Fc y BCMA-Fc también inhibían
las respuestas IgG1 de baja y alta afinidad específicas para NP
(Figura 12 B, C), sugiriendo que las interacciones
TALL-1/TACI y TALL-1/BCMA (y las
interacciones APRIL/TACI y APRIL/BCMA) son importantes también para
el cambio de clase de Ig y la maduración de afinidad.
Durante la primera parte de una respuesta de
anticuerpo específico para antígeno, las células B se diferencian
en células formadoras de anticuerpos (AFC). Esto tiene lugar en las
áreas extrafoliculares del bazo compuestas por vainas linfoides
periarteriolares (PALS) [Gray et al., Immunology,
65:73 (1988); NacLennan, Ann. Rev. Immunol., 12:117 (1988)],
en donde a continuación ocurre el cambio de clase de Ig. Se
compararon las regiones asociadas a PALS procedentes de bazos de
ratones inmunizados con NP23-CgG, tratados durante
10 días con Ig, TACI-Fc, o BCMA-Fc,
de forma similar a como se ha descrito más arriba. A continuación se
realizó el análisis inmunohistoquímico de las diversas secciones
del bazo. Las secciones de bazo preparadas 10 días después de la
inmunización y teñidas con anti-IgG1 conjugada con
FITC se muestran en la Figura 13-1 (panel A) y en
la Figura 13-2 (panel A). Tal como se esperaba, los
ratones control mostraron un gran número de focos de AFC agrupados
que se teñían intensamente con anti-IgG1 y que
contenían muchas células parecidas a inmunoblastos (Figura
13-1, panel A, izquierda). Por contra, los ratones
tratados con TACI-Fc mostraron solamente unas pocas
células aisladas IgG1-positivas, sin formación de
focos de AFC (Figura 13-1, panel A, derecha). De
igual forma, los ratones tratados con BCMA-Fc
mostraron solamente unas pocas células aisladas
IgG1-positivas, sin formación de focos de AFC
(Figura 13-2, panel A). Por tanto, las interacciones
TALL-1/TACI y TALL-1/BCMA (y
APRIL/TACI y APRIL/BCMA) son importantes para la diferen-
ciación extrafolicular de células B que precede el cambio de clase de Ig en las áreas esplénicas asociadas con PALS.
ciación extrafolicular de células B que precede el cambio de clase de Ig en las áreas esplénicas asociadas con PALS.
Para estudiar el papel potencial de las
interacciones TALL-1/TACI y
TALL-1/BCMA en la maduración por afinidad del
anticuerpo, se examinó la formación de centros germinales (GC) en
los bazos de ratones inmunizados con NP23-CgG en el
día 14. Se prepararon secciones de bazo 14 días después de la
inmunización, y se tiñeron con anti-PNA conjugado
con FITC (fluorescencia verde) y anti-IgM conjugado
con Rojo de Texas (fluorescencia roja). Tal como se esperaba, los
folículos esplénicos procedentes de controles mostraban una tinción
intensa con la aglutinina de cacahuete (PNA), una lectina que se
une específicamente a células B GC (Figura 13-1,
panel B, izquierda). En marcado contraste, los folículos esplénicos
de ratones tratados con TACI-Fc estaban vacíos de
GC, y mostraban sólo unas pocas, aisladas, células que se teñían con
PNA (Figura 13-1, panel B, derecha). Los folículos
esplénicos de ratones tratados con BCMA-Fc también
estaban vacíos de GC, y mostraban sólo unas pocas, aisladas,
células que se teñían con PNA (Figura 13-2, panel
B).
A pesar de la ausencia de GC, no había
anormalidades en las arquitecturas foliculares esplénicas de
ratones tratados con TACI-Fc o
BCMA-Fc, según se juzgó mediante la tinción con
hematoxilina y eosina de secciones del bazo del día 14 (Figura
13-1, panel C, izquierdo (controles) y panel C,
derecho (tratados con TACI-Fc); y Figura
13-1, panel C (tratados con
BCMA-Fc).
Esto sugiere que en los ratones tratados con
TACI-Fc o BCMA-Fc, algunas células B
foliculares se pudieron diferenciar en AFC, pero no pudieron
proceder a formar GC. Por tanto, las interacciones
TALL-1/TACI y TALL-1/BCMA (así como
las interacciones APRIL/TACI y APRIL/BCMA) parecen ser críticas para
la correcta formación de GC.
Por tanto, el bloqueo de las interacciones
TALL-1/TACI y TALL-1/BCMA (o de las
interacciones APRIL/TACI y APRIL/BCMA) en ratones durante la
inmunización primaria inhibió varios aspectos de la respuesta de las
células B: (a) la fase temprana de activación de células B
extrafoliculares que conduce a la producción de IgM específica para
el antígeno; (b) la diferenciación de las células B que conduce al
cambio de clase de Ig; (c) la formación de GC esplénicos, en donde
ocurre la maduración de afinidad y se genera la memoria de las
células B. Aunque que la formación de GC fue completamente
bloqueada por TACI-Fc o BCMA-Fc,
ocurrió cierta producción residual de IgM e IgG1. Que las
respuestas de anticuerpos atenuadas pueden proceder, a pesar de la
ausencia de GC, se ha observado en otros sistemas [ver, por
ejemplo, Matsumoto et al., Nature, 382:462 (1996);
Kato et al., J. Immunol., 160:4788 (1998); Futtere
et al., Immunity, 9:59 (1998). Es posible que otros
factores aparte de TALL-1 o APRIL y TACI o BCMA
medien la producción restante de anticuerpos. Alternativamente, el
tratamiento seleccionado TACI-Fc o
BCMA-Fc in vivo podrían no haber sido
suficiente para impedir todos los sucesos de unión
TALL-1/TACI, TALL-1/BCMA, APRIL/TACI
o APRIL/BCMA.
Estudios previos indican que las interacciones
CD40L-CD40 [Foy et al., Ann. Rev.
Immunol., 14:591 (1996)] y
CD86-CD28/CTLA-4 [Han et al.,
J. Immunol., 155:556 (1995); Lenschow et al., Ann.
Rev. Immunol., 14:233 (1996)] son importantes para la entrada
de células B extrafoliculares en las áreas GC y para el
establecimiento en GC. La inhibición de estas interacciones a
través de la eliminación de genes, o mediante tratamiento con
anticuerpos bloqueadores o con fusiones receptor-Fc,
disminuyen la producción de anticuerpos y bloquea la formación de
GC [Lane et al., J. Exp. Med., 179:819 (1994); Durie
et al., Immunol. Today, 15:406 (1994); Hathcock et
al., Science, 262:905 (1993); Linsey et al.,
Science, 257:7992 (1992); Renshaw et al., J. Exp.
Med., 180:1889 (1994); Xu et al., Immunity, 1:423
(1994); Kawabe et al., Immunity, 1:167 (1994); Foy
et al., J. Exp. Med., 180:157 (1994)]. Hay algunas
similitudes sorprendentes entre los sistemas
TALL-1/TACI, TALL-1/BCMA y
CD40L-CD40: ambos ligandos están relacionados con
el TNF y se expresan sobre células T activadas, y ambos receptores
son homólogos del TNFR que estimulan el NF-kB y se
expresan sobre células B. Por tanto, la interacción de
TALL-1 o APRIL con TACI o BCMA podría mediar la
ayuda de las células T a células B similar a CD40L y CD40.
TALL-1 también podría contribuir a la activación de
las células B por parte de células dendríticas, las cuales sí que
expresan el ligando TALL-1. A diferencia de los
ratones knock-out de CD40L y CD40, que exhiben
respuestas de IgG deterioradas pero no las de IgM, y a diferencia
de los pacientes deficientes en CD40L con síndrome de
hiper-IgM [Callard et al., Immunol.
Today, 14:559 (1993); Allen et al., Science,
259:990 (1993); Aruffo et al., Cell, 72:291 (1993)],
los ratones tratados con TACI-Fc o
BCMA-Fc mostraron un déficit tanto en la producción
de IgM como de IgG. Por tanto, es posible que TALL-1
o APRIL y TACI o BCMA operen temprano en la activación de las
células B, de tal forma que su bloqueo perjudica todas las fases de
la respuesta humoral. Por contra, CD40L y CD40 podrían operar más
tarde en la activación de las células B, de tal forma que su bloqueo
perjudica sólo las fases más tardías de la respuesta de
anticuerpos.
Se inmunizaron ratones Balb/c (obtenidos de los
Charles River Laboratories) inyectándoles 1,0 \mug de
Flag-APRIL (diluido en adyuvante
MPL-TDM comprado a Ribi Immunochemical Research,
Hamilton, Mont.) 10 veces en cada planta de las pies de la patas
traseras. La inmunización consistió en una serie de 6 inyecciones
(una inyección/semana durante 6 semanas). Los animales se dejaron
descansar durante dos meses, y se administraron inyecciones de
inmunización subsiguientes una vez por semana durante 4 semanas. La
proteína de fusión de APRIL marcada con Flag se preparó como se
describió en el Ejemplo 2 de más arriba, y se purificaron mediante
cromatografía de afinidad con M2
anti-Flag-agarosa (Sigma).
Tres días después del recuerdo final, se
extrajeron los nódulos linfáticos poplíteos de los ratones, y se
preparó una única suspensión celular en medio DMEM (obtenido de
Biowhitakker Corp.) suplementado con un 1% de
penicilina-estreptomicina. Las células de los
nódulos linfáticos se fusionaron con células de mieloma murino
P3X63AgU.1 (ATCC CRL 1597) usando polietilenglicol al 35%, y se
cultivaron en placas de cultivo de 96 pocillos. Los hibridomas
resultantes de la fusión se seleccionaron en medio HAT. Diez días
después de la fusión, los sobrenadantes del cultivo de hibridomas
se examinaron en un ELISA para ensayar la presencia de anticuerpos
monoclonales que se unieran a la proteína Flag. Como control
negativo para descartar que los anticuerpos monoclonales se unieran
a la porción Flag de la molécula, los anticuerpos monoclonales se
examinaron también en busca de cualquier unión a
Apo-3 marcada con Flag.
En el ELISA, se recubrieron placas de
microvaloración de 96 pocillos (Maxisorb; Nunc, Kamstrup, Dinamarca)
añadiendo 50 \mul de 0,25 \mug/ml de Flag-APRIL
o Flag-Apo-3 en tampón carbonato 50
mM, pH 9,6, a cada pocillo e incubando a 4ºC durante la noche. A
continuación se lavaron las placas tres veces con tampón de lavado
(PBS conteniendo un 0,05% de Tween 20). Los pocillos en las placas
de microvaloración se bloquearon entonces con 200 \mul de
albúmina de suero bovina al 2,0% en PBS, y se incubaron a
temperatura ambiente durante 1 hora. A continuación se lavaron de
nuevo las placas tres veces con tampón de lavado.
A continuación de los pasos de lavado, se
añadieron 100 \mul de los sobrenadantes de hibridoma o varias
concentraciones de suero policlonal a los pocillos designados. Se
añadieron 100 \mul de medio condicionado con células de mieloma
P3X63AgU.1 a otros pocillos designados como controles. Las placas se
incubaron a temperatura ambiente durante 1 hora en un aparato
agitador y se lavaron a continuación tres veces con tampón de
lavado.
A continuación, se añadieron a cada pocillo 50
\mul de Fc de IgG anti-ratón de cabra (comprado a
Cappel Laboratories), conjugado con HRP, diluido 1:1000 en tampón se
ensayo (0,5% de albúmina de suero bovina, 0,05% de
Tween-20, 0,01% de Thimersol en PBS), y se incubaron
las placas durante 1 hora temperatura ambiente en un aparato
agitador. Las placas se lavaron tres veces con tampón de lavado,
seguido por la adición de 50 \mul de sustrato (sustrato
peroxidasa TMB microwell, Kirkegaard & Perry, Gaithersburg, Md.)
a cada pocillo y se incubaron a temperatura ambiente durante 10
minutos. La reacción se detuvo mediante la adición de 50 \mul de
solución de detención componente del TMB 1 (dietilglicol, Kirkegaard
& Perry) a cada pocillo, y se leyó la absorbancia a 490 nm en
un lector automatizado de placas de microvaloración.
Los sobrenadantes que daban positivo en el ELISA
se clonaron a continuación dos veces mediante dilución
limitante.
Tal como se muestra en la Figura 14A, se halló
que los anticuerpos 3C6.4.2, 5E8.7.4, 5E11.1.2 y 5G8.2.2 se unían a
Flag-APRIL.
Los isotipos de los anticuerpos monoclonales
anti-APRIL (ver Ejemplo 6) se determinaron
recubriendo placas con Ig anti-ratón, de cabra,
específicas de isotipo (Fisher Biotech, Pittsburgh, Pa.) a 4ºC
durante la noche. Después de bloquear los sitios de unión no
específicos con 2% de BSA, se añadieron 100 \mul de los
sobrenadantes de cultivo de hibridoma o 0,5 \mug/ml de los mAb
purificados. Después de una incubación durante 30 minutos a
temperatura ambiente, las placas se incubaron con Ig
anti-ratón, de cabra, conjugada con HRP, durante 30
minutos a temperatura ambiente. El nivel de HRP unida a la placa se
detectó usando sustrato de HRP como se ha descrito más arriba.
Tal como se muestra en la tabla en la Figura
14B, se halló que los anticuerpos anti-APRIL
5E8.7.4, 5E11.1.2 y 3C6.4.2 eran anticuerpos del isotipo IgG2a. Se
halló que el anticuerpo anti-APRIL 5E11.1.2 era un
anticuerpo del isotipo IgG1.
Se recubrieron placas de microvaloración (Nunc,
Dinamarca) con 50 \mul/pocillo de anticuerpo de cabra
anti-Fc humano (Boehringer Manheim) a 5 \mug/ml en
tampón carbonato, durante la noche, a 4ºC. las placas se bloquearon
entonces con 150 \mul/pocillo de BSA 2% en tampón PBS, durante 1
hora, a temperatura ambiente. Las inmunoadhesinas respectivas,
BCMA-IgG o TACI-IgG (preparadas como
se describe en el Ejemplo 2 anterior) se añadieron en un volumen de
50 \mul/pocillo a 5 \mug/ml en tampón de bloqueo, y se se
incubaron a temperatura ambiente durante 1 hora. Todos los
anticuerpos (los cuales se identificaron en la fusión descrita en
el Ejemplo 6), se diluyeron a 1:100 y se añadieron 25 \mul/pocillo
a la placa junto con 25 \mul/pocillo de 2 \mug/ml de
Flag-APRIL (ver Ejemplo 2) y se incubaron a
temperatura ambiente durante 1 hora. La señal se reveló con
sucesivas incubaciones con anticuerpo anti-Flag
biotinilado (Sigma Aldrich, Missouri) y peroxidasa de rábano
silvestre (Amersham Life Science, New Jersey). Todos los pasos,
excepto el primero, estuvieron precedidos por un paso de lavado con
PBS/0,01% Tween 20.
Identificación del | % de unión máxima | SD | % de unión máxima | SD |
mAb | a BCMA | a TACI | ||
3C6.4.2 | 10 | 0 | 18 | 0 |
5E8.7.4 | 96 | 2 | 88 | 6 |
5E11.1.2 | 65 | 0 | 52 | 4 |
5G8.2.2 | 101 | 5 | 94 | 9 |
IgG Ctrl | 100 | 0 | 100 | 0 |
Tal como se muestra en la tabla anterior, el
anticuerpo 3C6.4.2 anti-APRIL bloqueó efectivamente
la unión de APRIL a BCMA y a TACI. En el ensayo, el anticuerpo
5E11.1.2 también mostró un bloqueo parcial de APRIL a BCMA y a
TACI.
Para determinar si los anticuerpos
anti-APRIL 3C6.4.2, 5E8.7.4, 5E11.1.2 y 5G8.2.2
(descritos en los ejemplos anteriores) reconocían el mismo o
diferentes epítopos, se realizó un ELISA de unión competitiva tal
como se describe en J. Immunol. Methods,
156:9-17 (1992) usando anticuerpos biotinilados
anti-APRIL. Los anticuerpos monoclonales
anti-APRIL se biotinilaron usando
N-hidroxilsuccinimida tal como se describe en J.
Immunol. Methods, 156:9-17 (1992). Se
recubrieron pocillos de microvaloración con 50 \mul de 0,5
\mug/ml de Flag-APRIL (Ejemplo 2) en tampón
carbonato 50 mM, pH 9,6, durante la noche, a 4ºC. Después del
lavado, se bloquearon los sitios de unión no específica con 200
\mul de BSA al 2% durante 1 hora. Después del lavado, se añadió a
cada pocillo una mezcla de concentración óptima predeterminada de
anticuerpos anti-APRIL biotinilados, y un exceso de
100 veces de anticuerpos monoclonales no marcados. Después de una
incubación de 1 hora a temperatura ambiente, se lavaron las placase
y se detectó la cantidad de anticuerpo biotinilado
anti-APRIL mediante la adición de
HRP-estreptoavidina. Después de lavar los pocillos
de microvaloración, se detectó el enzima unido mediante la adición
de sustrato, y las placas se leyeron a 450 nm con un lector de
placas de ELISA.
Los resultados se muestran en la Figura 15. Los
datos muestra que el anticuerpo 3C6.4.2 y el anticuerpo 5E11.1.2
podrían reconocer epítopos compartidos puesto que los anticuerpos no
marcados 3C6.4.2 o 5E11.1.2 eran capaces de inhibir la unión de
ambas formas biotiniladas a los anticuerpos
(Bio-3C6.4.2, Bio-5E11.1.2). Ambos
anticuerpos, 3C6.4.2 y 5E11.1.2 reconoced epítopos diferentes a los
reconocidos por 5E8.7.4 y 5G8.2.2, puesto que ninguno de los
anticuerpos bloqueó la unión de Bio-5E8.7.4 y
Bio-5G8.2.2. Además, los anticuerpos 5E8.7.4 y
5G8.2.2 fueron capaces de bloquear sólo su propio anticuerpo
monoclonal biotinilado, pero no otros. En consecuencia, de entre
los cuatro anticuerpos monoclonales ensayados, parece que se
detectaron tres epítopos principales sobre APRIL.
Se realizó un ensayo in vivo en un modelo
en murino de artritis inducida por colágeno (CIA) para determinar
si la inhibición de la interacción de TACI con su ligando o ligandos
podía impedir la progresión de la CIA.
La artritis reumatoide (RA) es una enfermedad
autoinmune en la cual la membrana sinovial de múltiples
articulaciones puede pasar a estar inflamada, conduciendo a la
destrucción de los tejidos articulares, incluyendo el hueso y
cartílago. El sinovio en la RA puede ser altamente inflamatorio por
naturaleza, y se caracteriza típicamente por la infiltración de
linfocitos y células mononucleares, la activación de las células T y
de las células presentadoras de antígeno (APC), la secreción de
inmunoglobulina (Ig) de células B, y la producción de citocinas
proinflamatorias [Potocnik et al., Scand. J. Immunol.,
31:213 (1990); Wernick et al., Arthritis Rheum.,
28:742 (1985); Ridley et al., Br. J. Rheumatology,
29:84 (1990); Thomas et al., J. Immunol., 152:2613
(1994); Thomas et al., J. Immunol., 156:3074 (1996)].
El sinovio inflamado crónicamente está usualmente acompañado por
una infiltración masiva de células T CD4 [Pitzalis et al.,
Eur. J. Immunol., 18:1397 (1988); Morimoto et al.,
Am. J. Med., 84:817 (1988)].
La artritis inducida por colágeno (CIA) es un
modelo animal para la RA humana, el cual se parece a la enfermedad
humana, y puede ser inducido en cepas de ratones susceptibles
mediante la inmunización con colágeno del tipo-II
(CII) [Courtenay et al., Nature, 283:665 (1980);
Cathcart et al., Lab. Invest., 54:26 (1986)]. Para
desarrollar la CIA se requieren tanto las células T CD4 como los
anticuerpos contra el CII. La transferencia de
anti-CII a animales ingenuos sólo conduce a una
histopatología parcial que es bastante diferente de la CIA, y no se
desarrollan los síntomas completos de la CIA [Holmdahl et
al., Agents Action, 19:295 (1986)]. Por contra, la
transferencia adoptiva de ambos, las células T CD4 y los anticuerpos
anti-CII de ratones inmunizados con CII, a un
receptores nativos reconstituye completamente los síntomas de la CIA
clásica [Seki et al., J. Immunol., 148:3093 (1992)].
La implicación de ambas, las células T y los anticuerpos en CIA es
consistente también con los hallazgos histopatológicos de las
articulaciones inflamadas en la CIA. Por tanto, los agentes que
bloquean las funciones de las células B o células T, o inhiben las
citocinas proinflamatorias inducidas por las células T, podrían ser
eficaces para prevenir o tratar la artritis. Más aún, el vaciado de
células T CD4, el bloqueo de las interacciones
CD40-CD40L, la neutralización del
TNF-alfa o el bloqueo de los receptores de
IL-1, todo puede conducir a la prevención de la CIA
en ratones [Maini et al., Immunol. Rev., 144:195
(1995); Joosten et al., Arthritis Rheum., 39:797
(1996); Durie et al., Science, 261:1328
(1993)].
(1993)].
En el estudio de los solicitantes, dos grupos de
ratones (ratones DBA/1, machos, de 7 a 8 semanas de edad, Jackson
Laboratory)) se inmunizaron intradérmicamente con 100 \mug de
colágeno bovino del tipo-II (BCII) (Sigma Chemical
Co.) emulsionado en adyuvante de Freund (CFA) (Difco). Los ratones
se desafiaron de nuevo con BCII en adyuvante de Freund incompleto
21 días más tarde. Se desarrolló en los animales una enfermedad
espectacular, con los signos clínicos de la artritis, que progresó a
una forma más severa con el tiempo. Empezando el día 24, un grupo
de ratones se inyectó con 100 \mug de TACI-Fc tres
veces por semana intraperitonealmente durante seis semanas (N = 9),
y un segundo grupo recibió 100 \mug de IgG de ratón como control
(N = 10). La construcción TACI-Fc se preparó usando
cebadores basados en la secuencia de TACI humana (descrita en la
presente) para amplificar el ADNc de TACI de ratón a partir de una
biblioteca de bazo de ratón. Se clonó un producto de la PCR de
aproximadamente 0,45 kb. Subsiguientemente se aisló, a partir de la
misma biblioteca, un clon de ADNc que contenía el marco de lectura
abierta completo del TACI de ratón (número de acceso de GenBank
AF257673). El TACI-Fc de murino se construyó
clonando el dominio extracelular de TACI de ratón (aminoácidos
2-129) entre una secuencia señal
pro-tripsina y una secuencia IgG1-Fc
de ratón, y se preparó la inmunoadhesina tal como se describe en
los ejemplos anteriores. A continuación se monitorizaron los
animales en busca de signos clínicos de artritis, y al final del
estudio, tal como se describe más abajo, se realizó un examen
radiológico e histopatológico.
Los ratones se examinaron diariamente en busca
de signos de inflamación articular y se puntuaron como sigue: 0,
normal; 1, eritema y tumefacción leve confinados a la articulación
del tobillo; 2, eritema y tumefacción leve extendiéndose desde el
tobillo hacia las articulaciones metatarsiana/metacarpiana; 3,
eritema y tumefacción moderada extendiéndose desde el tobillo hacia
las articulaciones metatarsofalángicas/metacarpofalángicas; 4,
eritema y tumefacción severa extendiéndose desde el tobillos hacia
los dedos. La puntuación artrítica máxima por pies es 4, y la
puntuación máxima de la enfermedad por ratón es 16; la puntuación
artrítica media se calculó a partir de todos los animales en el
grupo.
Para el análisis radiológico al final del
estudio, tanto las plantas delanteras como las plantas traseras se
radiografiaron usando un Faxitron Imaging System de
rayos-X (Faxitron X-ray Corp.,
Wheeling, Ill.). Se digitalizaron los datos y se prepararon
radiografías. A continuación, se examinaron las radiografías en
busca de erosión del hueso y tumefacción del tejido blando. Para el
análisis histopatológico, se extrajeron las plantas de los ratones,
se fijaron en formalina al 10%, se descalcificaron, y se sumergieron
en parafina. Se prepararon secciones de la articulación
(6-8 \mum) y se tiñeron con hematoxilina y eosina
usando procedimientos histoquímicos estándares. La evaluación
microscopia de las patas artríticas se realizó a ciegas. Los cambios
artríticos en el tobillo, metacarpofalange/metatarsofalange,
interfalángica proximal, y las articulaciones se examinaron en
busca de erosión del cartílago articular y del hueso subcondral.
La Figura 16A ilustra el curso de la enfermedad
en ratones tratados con TACI-Fc (círculos), o
ratones control tratados con IgG (recuadros), y los ratones
tratados con solución salina (triángulos) Cada punto de dato
representa una media \pm SD de un total de 9 (para el grupo
tratado con TACI-Fc) o 10 (para los grupos control)
ratones. Las diferencias entre el grupo tratado con
TACI-Fc y cada uno de los otros dos grupos son
estadísticamente significativas. Los ratones en el grupo control
desarrollaron síntomas clínicos típicos de la artritis, los cuales
empezaron aproximadamente hacia el día 30 y progresaron rápidamente
a puntuaciones artríticas muy elevadas (Figura 16A). Por contra, en
los ratones tratados con TACI-Fc, la progresión de
la artritis estuvo marcadamente inhibida. Figura 16B muestra las
puntuaciones de enfermedad individuales de los pies 3 semanas
después de la segunda inmunización. Cada punto representa un pie
individual. Las diferencias entre el control y los grupos tratados
con TACI-Fc son estadísticamente significativas. Las
puntuaciones artríticas en los ratones tratados con
TACI-Fc alcanzaron sólo 1,0, y esto sucedió sólo
hacia el final del estudio, mientras que en el grupo control, las
puntuaciones alcanzaron hasta >7,0. Estos datos demuestran
claramente que la interacción de TACI con su ligando o ligandos es
importante para el desarrollo de la CIA.
Para determinar si el tratamiento de los ratones
con TACI-Fc tenía efecto alguno sobre la
histopatología de las articulaciones, al final del estudio se
realizaron exámenes histopatológicos de las patas de los ratones.
Al final del estudio (48 días después de la segunda inmunización),
se sacrificaron los ratones y se analizó la histología de sus
articulaciones del tobillo (tinción con HE).
En el grupo control, se caracterizó una
enfermedad artrítica grave con proliferación sinovial, infiltración
masiva de leucocitos, formación de pinnus que resultó en la erosión
del cartílago articular y del hueso, tal como se muestra en la
articulación interfalángica proximal (Figura 17A). La Figura 17A
muestra una articulación falángica de un ratón control que indica
una sinovitis grave, hiperplasia y destrucción del hueso y
cartílago. También se observó el espesamiento sinovial, la
infiltración de leucocitos, la degeneración del cartílago
articular, y la erosión periarticular en la articulación
metacarpiana. La Figura 17B muestra una articulación falángica de
un ratón tratado con TACI-Fc, sin signos de
sinovitos o patología de la enfermedad. En los ratones tratados con
TACI-Fc, no hubo evidencia de síntomas
histopatológicos, indicando que el TACI-Fc no sólo
bloquea los síntomas clínicos de la CIA, sino que también inhibe
los síntomas histopatológicos (Figuras 17C,D). Figura 17C muestra
un metacarpo de un ratón control que tiene la patología de la
enfermedad con signos masivos de sinovitos, y la Figura 17D muestra
una articulación metacarpiana de un ratón tratado con
TACI-Fc sin ninguna patología.
Al final del estudio, las patas anteriores y
posteriores de los animales se radiografiaron y analizaron en busca
de estructuras óseas, tal como se ha descrito más arriba. En el
grupo control, los signos de destrucción masiva del hueso y la
desfiguración fueron evidentes, mientras que en los ratones tratados
con TACI-Fc no se observaron signos significativas
de pérdida de hueso o desfiguración (Figuras 17E,F). La Figura 17E
muestra una radiografía de un ratón control mostrando signos de
destrucción masiva del hueso y desfiguración. La Figura 17F muestra
una radiografía de un ratón tratado con TACI-Fc que
no muestra signos significativos de pérdida de masiva o
desfiguración. Cuando las radiografías de los ratones tratados con
TACI-Fc se compararon con las de ratones ingenuos;
no se revelaron diferencias aparentes, indicando que el tratamiento
protegía completamente los ratones del daño óseo a al
cartílago.
Puesto que se cree que los anticuerpos
anti-colágeno juegan un papel importante en el
desarrollo de la artritis, también se analizaron las muestras de
suero de los ratones para determinar si el tratamiento
TACI-Fc de los ratones resultaba en la inhibición de
una respuesta inmunitaria humoral anti-colágeno.
Para ensayar las respuestas inmunitarias humorales, se sangraron
los ratones de forma retroorbital 14 días (Figura 18A) y 45 días
(Figura 18B) después de la segunda inmunización, y se analizó la
presencia de anticuerpos anti-colágeno.
Los niveles en suero de los isotipos IgG1 e IgG2
de anti-BCII se midieron mediante un ELISA usando
colágeno BCII como antígeno. De forma resumida, se recubrieron
placas de microvaloración con 10 \mug/ml de CII bovino nativo, se
bloquearon y se incubaron con sueros de ensayo diluidos en serie. Se
detectó la IgG unida mediante incubación con
anti-IgG de ratón, de cabra, conjugado con fosfatasa
alcalina (Pharmingen), seguida por sustrato (dinitrofenilfosfato).
Las densidades ópticas se midieron a 450 nm en un lector de placas
de ELISA (Molecular Devices).
Los resultados se muestran en la Figura 18. Cada
punto de dato representa una media \pm SD de cinco ratones en
cada grupo. Los sueros de los ratones en el grupo control mostraron
la presencia de niveles elevados de IgG1 e IgG2
anti-colágeno, mientras que en el grupo tratado con
TACI-Fc, se observó una considerable inhibición
tanto de IgG1 como de IgG2 en los días 14 y 47 después de la segunda
inmunización. (Figuras 18A,B). La Figura 18A muestra los niveles de
IgG1 e IgG2a anticolágeno 14 días después de la segunda
inmunización, y la Figura 18B muestra los niveles de IgG1 e IgG2a
anticolágeno 47 días después de la segunda inmunización (barras en
blanco, ratones tratados con BSA; barras en negro, ratones tratados
con TACI-Fc). Estos resultados sugieren que el
tratamiento con TACI-Fc podría adaptar el desarrollo
de la CIA, al menos parcialmente, mediante el bloqueo de los
anticuerpos anti-colágeno.
Puesto que tanto las células T como las B
específicas del colágeno pueden iniciar la CIA, se realizó un
ensayo adicional para examinar si la prevención de la CIA mediado
por TACI-Fc estaba asociada también con la
inhibición de las funciones efectoras de la célula T. Se
recolectaron los nódulos linfáticos y los bazos procedentes de
ratones control y tratados con TACI-Fc al final del
estudio, y se examinó las respuestas de recuerdo in vitro de
las células T contra el colágeno y la producción de citocinas
efectoras. Se sacrificaron ratones inmunizados con BCII 47 días
después de la segunda inmunización, y se recolectaron sus nódulos
linfáticos inguinales y bazos. Se prepararon suspensiones de célula
única, y las células se cultivaron en placas de 96 pocillos a una
densidad de 1 \times 10^{6} células/ml (200 \mul/well) en DMEM
que contenía un 5% de FCS inactivado por calor, glutamina 2 mM, 100
U/ml penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina, y 2 \times
10^{-5} M 2-ME. Las células se cultivaron en
medio solo, o en presencia de varias concentraciones de BCII. Para
ensayar la proliferación de linfocitos (Figura 18C), las células de
nódulo linfático (1 \times 10^{6} células por pocillo) se
cultivaron primero durante 72 horas, seguidas por la adición de 1
\muCi de [^{3}H]-timidina (International
Chemical and Nuclear, Irvine, Calif.) durante las 18 últimas horas
de un cultivo de 5 días, y se ensayó la incorporación de
radiactividad mediante recuento de las escintilaciones en líquido
(representado como c.p.m.) usando un contador de \beta en placa
Wallac.
Las respuestas frente al colágeno de las células
T proliferantes procedente de ratones tratados con
TACI-Fc fue casi inapreciable en comparación con las
de los ratones control (Figura 18C; recuadros, ratones control;
círculos, ratones tratados con TACI-Fc).
Para los ensayos de citocinas, las células de
nódulo linfático y esplénicas se cultivaron en 0,2 ml de medio con
o sin BCII; 1 \times 10^{6} células/ml (200 \mul/pocillo) se
cultivaron en el medio arriba mencionado, solas o en presencia de
BCII. Los sobrenadantes se recogieron después de 24 horas para
ensayar la secreción de IL-2, y 72 horas después
para ensayar la producción de IFN-gamma, las cuales
se halló que eran los tiempos de incubación óptimos para la
determinación de las citocinas, y se almacenaron a -20ºC hasta
analizarlos. Los niveles de IL-2 e
IFN-gamma se detectaron mediante ELISA usando un
equipo procedente de Pharmingen (San Deigo, Calif.). Las curvas
estándares se generaron usando IL-2 e
IFN-gamma recombinantes de ratón. Cuando se midió
la producción de IL-2 e IFN-gamma
por parte de las células T procedentes de estos ratones, el grupo
tratado con TACI-Fc (mostrado en las Figuras 18D y
18E mediante círculos) mostró muy poca producción de estas
citocinas, mientras que las células T procedentes del grupo control
(mostrado en las Figuras 18D y 18E mediante recuadros) secretaron
niveles significativos tanto de IL-2 como de
IFN-gamma (Figura 18D (producción de
IL-2), 18E (producción de
IFN-gamma)).
Estos datos sugieren que el tratamiento con
TACI-Fc de los ratones no tan sólo inhibió la
producción de anticuerpo anti-colágeno, sino que
también reguló funciones de las células T efectoras. Por tanto, se
cree que las interacciones de TACI con su(s)
ligando(s) son importantes también en las respuestas
inmunitarias mediadas por células T.
Puesto que se ha mostrado también que el
receptor TACI se expresa sobre las células T y está implicado en la
activación de las NF-AT asociadas con la activación
de las células T [von Bulow et al., Science, 278:138
(1997)], se cree que el bloqueo de la interacción de TACI con su
ligando o ligandos podría perjudicar directamente la activación de
las células T y sus funciones efectoras que son necesarias, por
ejemplo, para la progresión de la CIA en los ratones.
Para determinar el papel directo de TACI en la
activación de las células T, se realizó un ensayo in vitro
de la activación específica para el antígeno de células T. Se
examinó in vitro la activación de las células T por el
anticuerpo anti-CD3 en presencia de
TACI-Fc midiendo la proliferación y producción de
IL-2 por parte de estas células T. Se cultivaron
células esplénicas procedentes de ratones C57BL/6 adultos (Jackson
Laboratory) (1 \times 10^{6} por pocillo) en varias
concentraciones de 10 \mug/ml de anticuerpo monoclonal
anti-CD3 (Pharmingen) con o sin diferentes
concentraciones de TACI-Fc en el medio, tal como se
ha descrito más arriba. La proliferación se midió mediante la
captación de ^{3}H-timidina como se ha explicado
más arriba. También se prepararon ensayos paralelos para medir los
efectos de TACI-Fc sobre la producción de
IL-2 inducida por el anticuerpo
anti-CD3 en un sistema de cultivo de 24 horas, como
se ha mencionado más arriba. Se usó un ELISA para determinar los
niveles de IL-2 en los sobrenadantes, usando
anticuerpos procedentes de Pharmingen, y usando sus protocolos
recomendados. Para estudiar los efectos de TACI-Fc
sobre la estimulación in vitro de las células transgénicas
TCR, se cultivaron 1 \times 10^{6} células procedentes de
ratones transgénicos MBP-TCR adultos (criados a
partir de un par de animales de cria obtenidos del Dr. Richard
Flavell, Howard Hughes Medical Institute, Yale University) en
presencia de 10 \mug/ml MBP-Ac1-11
(un péptido sintético NH2-terminal de la Proteína
Básica de Mielina, que tiene la secuencia de aminoácidos ASQKRPSQRSK
(SEC. Nº ID.:10) con el primer aminoácido acetilado), con o sin
diferentes concentraciones de TACI-Fc en placas de
96 pocillos, en medio DMEM suplementado con un 5% FCS, glutamina 2
mM, 100 U/ml penicilina, 100 \mug/ml estreptomicina. La
proliferación se midió mediante la adición de 1 \muCi de
[^{3}H]-timidina (International Chemical and
Nuclear, Irvine, Calif.) durante las 18 últimas horas de un cultivo
de 5 días, y la incorporación de radiactividad se ensayó mediante
recuento de escintilaciones en líquido.
La Figura 19A muestra la inhibición por
TACI-Fc de la proliferación de células T ingenuas,
inducida por el anticuerpo anti-CD3, de forma
dependiente de la dosis, mientras que la Figura 19B muestra la
inhibición de la producción de IL-2 por parte de
células T nativas inducida por el anticuerpo
anti-CD3, según se ve afectada por
TACI-Fc de forma dependiente de la dosis. (En las
Figuras 19A y 19B, el tratamiento con TACI-Fc se
muestra mediante círculos; los controles se muestran mediante
recuadros).
También se examinó la activación in vitro
de las células T transgénicas TCR de la Proteína Básica de Mielina
(MBP) en presencia de TACI-Fc midiendo la
proliferación y producción de IL-2 por parte de
estas células T (tal como se ha descrito más arriba). De nuevo,
TACI-Fc inhibió tanto la proliferación como la
producción de IL-2 por parte de células T
transgénicas MBP-TCR de manera dependiente de la
dosis (no se muestran los datos). Estos resultados demuestran que
el receptor TACI está implicado en la activación de las células T,
y que esta función puede bloquearse con TACI-Fc.
El modelo en murino de EAE se ha descrito en la
literatura como un modelo para la esclerosis múltiple humana
[Grewal et al., Science, 273:1864-1867
(1996).
En el estudio de los solicitantes, se
inmunizaron subcutáneamente dos grupos de 10 ratones cada uno
(ratones transgénicos MBP-TCR machos y hembras de 10
a 15 semanas de edad (descritos en el Ejemplo 10) con 10 \mug de
MBP Acl-11 (descrita en el Ejemplo 10 anterior) en
100 \mul de adyuvante de Freund completo (CFA) (Difco). A
continuación de la inmunización inicial con Acl-11,
se inyectaron intraperitonealmente en cada ratón 200 ng de toxina
de Pertussis (List Biologicals, Campbell, Calif.) en 100 \mul de
solución salina, a las 24 y 48 horas. Empezando el día 2 hasta el
día 24, un grupo de ratones se inyectó con 100 \mug de
TACI-Fc (descrito en el Ejemplo 10) en 100 \mul de
solución salina estéril, intraperitonealmente, a diario, y un
segundo grupo recibió 100 \mug de IgG de murino en 100 \mul de
solución salina estéril, intraperitonealmente, a diario. Los
animales se monitorizaron entonces diariamente en busca del inicio
de la enfermedad. Los signos clínicos de encefalomielitis alérgica
experimental (EAE) se verificaron diariamente y se asignó una
puntuación del 1 al 5 a cada ratón en base a el sistema de índices
de EAE establecido: 0 = apariencia normal; 1 = cola caída; 2 =
andares anormales; 3 = debilidad de las extremidades; 4 = parálisis
que implica una extremidad (parálisis parcial de la extremidad
posterior); 5 = parálisis que implica dos extremidades (parálisis de
la extremidad posterior total). Este es un sistema de puntuación
modificado respecto el descrito previamente en Grewal et
al., Science, 273:1864-1867 (1996).
Los resultados se muestran en la Figura 20. Los
datos mostrados en la Figura 20 indican que los animales que
recibían la IgG de control desarrollaron los síntomas clínicos
esperados de la EAE; la aparición de la enfermedad en los ratones
tratados control empezó el día 5 y alcanzó los niveles de pico en 10
días. Por contra, los ratones tratados con TACI-Ig
no desarrollaron formas graves de los síntomas de la EAE. La
puntuación de la enfermedad fue mucho más baja que en el grupo
control, alcanzando solamente puntuaciones clínicas de 2 (que no
progresaron a puntuaciones más elevadas durante el estudio). Los
resultados sugieren que el tratamiento con TACI-Ig
protegió los ratones de desarrollar una EAE patente.
Los siguientes materiales se han depositado con
la American Type Culture Collection, 10801 University Blvd.,
Manassas, Va. 20110-2209, USA (ATCC):
\vskip1.000000\baselineskip
Material | nº de depósito con ATCC | Fecha de depósito |
3C6.4.2 | PTA-1347 | 15 de febrero de 2000 |
5E11.1.2 | PTA-1346 | 15 de febrero de 2000 |
5G8.2.2 | PTA-1345 | 15 de febrero de 2000 |
5E8.7.4 | PTA-1344 | 15 de febrero de 2000 |
Este depósito de hace bajo las disposiciones del
Tratado de Budapest sobre el Reconocimiento Internacional del
Depósito de Microorganismos a los Fines del Procedimiento en Materia
de Patentes, y las Regulaciones bajo el mismo (Tratado de
Budapest). Esto asegura el mantenimiento de un cultivo viable del
depósito durante 30 años a partir de la fecha de depósito. El
depósito de ara asequible por parte de la ATCC bajo los términos
del Tratado de Budapest, y sometido a un acuerdo entre Genentech,
Inc. y la ATCC, que asegura una disponibilidad permanente y no
restringida de la progenie del cultivo del depósito al público a
partir de la concesión de la pertinente patente estadounidense o a
partir de la exposición al publico de cualquier solicitud de patente
estadounidense o de país extranjero, cualquiera que suceda primero,
y asegura la disponibilidad de la progenie para alguien determinado
por el U.S. Commissioner of Patents and Trademarks como con derecho
a la misma de acuerdo con los artículos 35 y 112 de la USC y las
normas del Commissioner en relación a lo mismo (incluyendo el 37
CFR '1.14, con particular referencia a 886 OG 638).
El cesionarios de la presente aplicación ha
aceptado que, si un cultivo de los materiales en depósito muriese o
se perdiera o fuera destruido cuando se cultiva en condiciones
apropiadas, los materiales serán remplazados con prontitud, a
partir de la notificación, con otros del mismo tipo. La
disponibilidad del material de depósito no debe considerarse como
una licencia para practicar la invención en contravención de los
derechos garantizados bajo la autoridad de cualquier gobierno de
acuerdo con sus leyes de patentes.
La descripción escrita precedente se considera
que es suficiente para permitir que un especialista en el campo
practique la invención. La presente invención no debe ser limitada
en su ámbito por los ejemplos presentados en la presente. Más aún,
varias modificaciones de la invención, además de las mostradas y
descritas en la presente, serán evidentes para los especialistas en
el campo a partir de la descripción precedente, y se hallan dentro
del ámbito de las reivindicaciones anexas.
<110> GENENTECH, INC.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> USOS DE AGONISTAS Y ANTAGONISTAS
PARA MODULAR LA ACTIVIDAD DE MOLÉCULAS RELACIONADAS CON EL TNF
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> P1805R1 PCT
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
2000-11-28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 60/182.938
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2000-02-16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 60/226.986
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2000-08-22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1377
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 293
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 995
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 184
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 858
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 285
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1348
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 250
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
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<210> 9
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<211> 265
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<400> 9
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
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<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia sintetizada
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
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\sa{Ala Ser Gln Lys Arg Pro Ser Gln Arg Ser
Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1377
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 995
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<212> DNA
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<213> Homo sapiens
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<400> 12
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\newpage
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<210> 13
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<211> 858
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<212> DNA
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<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 14
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<211> 1348
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
Claims (4)
1. Anticuerpo monoclonal que es el
anticuerpo monoclonal 3C6.4.2 secretado por el hibridoma depositado
con la ATCC como número de acceso PTA-1347; o el
anticuerpo monoclonal 5E8.7.4 secretado por el hibridoma depositado
con la ATCC como número de acceso PTA-1344; o el
anticuerpo monoclonal 5E11.1.2 secretado por el hibridoma
depositado con la ATCC como número de acceso
PTA-1346; o el anticuerpo monoclonal 5G8.2.2
secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de
acceso PTA-1345.
2. Línea celular de hibridoma que produce
el anticuerpo monoclonal 3C6.4.2 y depositado con la ATCC como
número de acceso PTA-1347; o el anticuerpo
monoclonal 5E11.1.2 y depositado con la ATCC como número de acceso
PTA-1346; o el anticuerpo monoclonal 5G8.2.2 y
depositado con la ATCC como número de acceso
PTA-1345; o el anticuerpo monoclonal 5E87.4 y
depositado con la ATCC como número de acceso
PTA-1344.
3. Anticuerpo anti-APRIL
quimérico que se une específicamente al polipéptido APRIL y
comprende:
- (a)
- una secuencia derivada del anticuerpo 3C6.4.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1347; o
- (b)
- una secuencia derivada del anticuerpo 5E11.1.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1346; o
- (c)
- una secuencia derivada del anticuerpo 5G8.2.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1345; o
- (d)
- una secuencia derivada del anticuerpo 5E8.7.4 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1344.
4. Anticuerpo anti-APRIL
humanizado que se une específicamente al polipéptido APRIL y
comprende:
- (a)
- una secuencia derivada del anticuerpo 3C6.4.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1347; o
- (b)
- una secuencia derivada del anticuerpo 5E11.1.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1346; o
- (c)
- una secuencia derivada del anticuerpo 5G8.2.2 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1345; o
- (d)
- una secuencia derivada del anticuerpo 5E8.7.4 secretado por el hibridoma depositado con la ATCC como número de acceso PTA-1344.
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