DE3236298A1 - Krebszellen bekaempfende lymphocyten, verfahren zu deren herstellung und anti-krebsmittel, welche die lymphocyten enthalten - Google Patents
Krebszellen bekaempfende lymphocyten, verfahren zu deren herstellung und anti-krebsmittel, welche die lymphocyten enthaltenInfo
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Description
Die Erfindung betrifft Krebszellen bekämpfende Lymphocyten (nachfolgend als "Killerzellen" bezeichnet) und
ein Verfahren zu deren Herstellung. Sie betrifft insbesondere Killerzellen, die spezifisch auf Krebszellen
mit einem glykoverwandten Antigen, das sich von den Krebszellen ableitet (dieses Antigen wird nachfolgend
als "GRA" bezeichnet), reagiert und die Krebszellen zerstört, sowie ein Verfahren zur Herstellung'der Killerzellen.
Darüber hinaus betrifft die Erfindung ein neues Anti-Krebsmittel, welches die Killerzellen oder GRA als
aktiven Bestandteil enthält.
Immunansprechende Effektorzellen, insbesondere T-Lymphocyten,
die eine Hauptrolle bei einer zellausgelösten Immunreaktion spielen, verursachen eine Zurückweisung
von Pfropfstellen aufgrund eines Fremzellen-Antigens,
bewirken jedoch keine merkliche oder nur eine sehr begrenzte Immunoinhibierung gegen Krebszellen. Infolgedessen
werden die Krebszellen nicht zerstört, sondern ver-( vielfältigen sich in vivo und verursachen schliesslich den
Tod des von Krebs befallenen Trägers.
BAD ORIGINAL
25
30
Der hierbei vorhandene Mechanismus ist jedoch noch nicht
vollständig klar und es sinä verschiedene Untersuchungen angestellt wordne, um nähere Erkenntnisse zu erlangen über
die Art der Materialbasis, die in einem solchen System vorkommt. Z.B. werden Zeiloberflächenmarkierungen auf Mäuseleukämiezellen
oder Embrionalkarzinomzellen unter Verwendung von Lektinen, wie Dolichos biflorus-Agglutinin
(DBA) und Erdm.i.ssagglutinin (PNA) in Diochem. Biophys. Res.
Comm. 89 (2) 448-455 (1979), Ibid. 96-(4) 1547-1553 (1980),
J. Biochem. 8J3 473-481 (1981) und Cell JN3 183-191, September
1979 beschrieben.
Soweit bekannt ist, sind bisher jedoch nochkeine Versuche
unternommen worden, um neue Lymphocyten zur Verfügung zu.r stellen, die Krebszellen spezifisch bekämpfen können, und
die Anti-Krebsmittel darstellen unter Anwendung einer
Immunansprechung der Lymphocyten.
20 35
Gründliche Untersuchungen über die Immunansprechung des Trägers gegenüber Krebszellen und deren Anwendung zur
Behandlung von Krebs haben nun ergeben, dass - in einem krebszellenspezifischen Antigen, das nicht
in differentierten Normalzellen zu finden ist, GRA vorhanden ist, das als Immunogen für den Träger wirkt
und eine sehr hohe Immunogenität aufweist, das eine Immunreaktion, die spezifisch auf Krebszellen ist, verursacht.
Es wurde weiterhin festgestellt, dass dann, wenn man GRA zum Sensibilisieren von Lymphocyten verwendet,
man Killerzellen erhält, die spezifisch auf GRA-enthaltende Krebszellen wirken und dass man bei
Verabreichung der Killerzellen an einen Träger diese GRA erkennen und auf GRA-enthaltende Krebszellen einwirken,
diese zerstören und dass man auf diese Weise eine sehr gute Wirkung bei der Behandlung und Vorbeugung
von Krebs erzielen kann.
Die Erfindung betrifft gemäss einer Ausführungsform
Killerzellen.
Gemäss einer weiteren Ausführungsform betrifft, die
Erfindung ein Verfahren zur Herstellung der Killerzellen.
25
25
Gemäss einer weiteren Ausführungsform betrifft die Erfindung ein Anti-Krebsmittel, enthaltend Killerzellen
oder GRA als aktiven Bestandteil.
BAD ORfGINAL
Fig. 1 ist eine Mikrofotografie von Daudi-Krebszellen,
Fig. 2 ist eine Mikrofotografie, welche die
5 Bildung von Belägen von GRA-1-K-T auf
5 Bildung von Belägen von GRA-1-K-T auf
Krebszellen gemäss Fig. 1 zeigt,
Fig. 3 ist eine Mikrofotografie von KATO-III-
Zellen,
10
10
Fig. 4 ist eine Mikrofotografie, die die Bildung von Belägen durch GRA-1-K-T auf
Krebszellen gemäss Fig. 3 zeigt,
Krebszellen gemäss Fig. 3 zeigt,
Fig. 5 ist eine Mikrofotografie von BT-I-
Krebszellen,
Fig. 6 ist eine Mikrofotografie, welche die
Bildung von Belägen durch GRA-1-K-T
20 auf den Krebszellen von Fig. 5 zeigt,
20 auf den Krebszellen von Fig. 5 zeigt,
Fig. 7 ist eine Mikrofotografie von MKN-45-
Krebszellen,
Fig. 8 ist eine Mikrofotografie, welche die
Bildung von Belägen durch GRA-1-K-T auf Krebszellen gemäss Fig. 7 zeigt,
Fig. 9 ist eine Mikrofotografie von MOLT-Krebszellen,
Fig. 10 ist eine Mikrofotografie, welche die Bildung
von Belägen durch GRA-1-K-T auf Krebszellen gemäss Fig. 9 zeigt,
Fig. 11 ist eine Mikrofotografie von BT-1, das
mit einer Mischung von unsensibilisierten humanen peripheren Blutlymphocyfen
behandelt wurde,
Fig. 12+13 sind jeweils Mikrofotografien von Krebszellengewebe einer krebsigen Maus, der
GRA-M-Ii-KrTAerabreicht wurde,
ist eine Fotografie und zeigt einen Krebszustand bei einer krebsigen Mäusegruppe,
der GRA-M-1 verabreicht wurde,
ist eine Fotografie und zeigt, den Krebszustand
bei einer krebsigen Mäusegruppe, der kein GRA-M-T verabreicht wurde.
Fig. 16 ist eine Mikrofotografie und zeigt Krebszellengewebe einer krebsigen Mäusegruppe,
der kein GRA-M-1 verabreicht wurde,
Fig. 17 ist eine Mikrofotografie von Krebszellengewebe
einer Gruppe, die mit gRA-M-1
behandelt wurde,
30
30
Fig. | 14 | |
15 | ||
Fig. | 15 | |
20 |
BAD ORIGiNiAL
Fig. 18 zeigt ein SDS-Gel-Elektrophorese-Diagramm
von GRA unter Verwendung von Protein-Färbung nach der C.B.B.-Methode,
Fig. 19 bis 21 zeigen SDS-GeI.Elektrophorese-Diagramme
unter Verwendung von Zuckerfärbungen mittels der PAS-Methode.
Fig. 22 ist eine schematische Darstellung der Er-'i 0 gebnisse vom SDS-Gel-Elektrophoreses-
Diagramm von GRA unter Verwendung der Proteinfärbung mittels der C.B.B.-Methode.
Fig. 23 ist eine grafische Darstellung, welche die Tumorwachstumsrate bei C3H/HE/6 Mäusen,
denen X5563 Immunmäuse-Milzzellen und Y5563-Zellen transplantiert worden waren.
Die Killerzellen gemäss der Erfindung kann man beispielsweise
herstellen gemäss einem Verfahren, bei dem GRA zum Sensibilisieren von Lymphocyten verwendet werd.
4H
- ys -
Das bei dem obigen Verfahren verwendete GRA erhält man aus GRA enthaltenden Krebszellen von Menschen oder
Tieren, z.B. von kultivieren Krebszellen, transplantierten Krebszellen, spontan auftretenden Krebszellen,
durch chemische Substanzen oder durch Viren induzierten Krebszellen oder Krebszellen, die man aus Geweben
- herausoperiert hat unter Anwendung der folgenden Verfahren
.
Zellmembrankomponenten werden von Krebszellen der vorerwähnten Art abgetrennt und mit einem Lektin behandelt,
welches sich spezifisch mit terminaler Galaktose oder endständigem N-Acetylgalactosamirr, "wobei GRA mit dem Lektin verbunden
leicht abgetrennt werden kann, bindet (s. J.B.C. ,250,
8518-8523 (1975); Biochem. Biophys. Res. Comm., b_£,
144 (1975); Z. Immunität s for sch., 1_3£, 423-433 (1966);
Br. J. Exp. Pathol., 2]_, 228-236 (1946); Proc. Nath.
Acad. Sei. USA, 75, Nr. 5, 2215-2219 (1978); Biochemistry, 1_3, 196-204 (1974); und Carbohydrate Research, 5J_, 107-118
(1976)), wodurch GRA sich mit dem Lektin vereint und leicht abgetrennt werden kann.
Die Trennung der Krebszellenmembrankomponenten kann man auf einfache bekannte Weise erzielen, z.B. durch eine
Homogenisierungsmethode und eine Solubilisierungsmethode unter Verwendung eines Auflösungsmittels. Vorteilhaft
ist es, eine Methode anzuwenden, bei welcher Krebszellen in physiologischer Kochsalzlösung oder in
einem geeigneten Puffer homogenisiert werden, ein Teil des Niederschlags durch beispielsweise Zentrifugenabtrennung
gesammelt wird und in physiologischer Kochsalzlösung oder einem Puffer mittels eines Lösungsmittels
BAD ORIGiNA!
ΑΌ
gelöst wird, worauf man den überstehenden Teil dann
beispielsweise durch Zentrifugenabscheidung abtrennt. Als Auflösungsmittel kann man beispielsweise oberflächenaktive
Mittel, wie sie allgemein bekannt sind, um Zellmembranen aufzulösen, verwenden, z.B. nichtionische oberflächenaktive Mittel, wie Triton X-100
(hergestellt von Wako Pure Chemical Industries Ltd.), NP-40 (hergestellt von Shell Co., Ltd.), Digitonin und
Harnstoff,oder anionische oberflächenaktive Mittel,
z.B. Natriumdodecylsulfonat (SDS).
Aus den so erhaltenen Zellmembrankomponenten kann man
GRA, das in der Lage ist, sich mit Lektin unter Anwendung üblicher chemischer oder biochemischer Verfah-
15. ren und indem man von den Eigenschaften des Lektins Gebrauch macht, abtrennen. Beispiele für solche Verfahren
sind eine Affinitätschromatografie, bei der man einen ein Lektin enthaltenden Säulenträger verwendet,
eine Immunausfallungsmethode, unter Verwendung von GRA-Antikörper oder dergleichen, eine Dialysemethode,
eine Gelfiltrationsmethode, eine Elektrophoresemethode oder eine physikalische Ausfällung unter Verwendung
eines Zuckerprotein ausfällenden Mittels, z.B. Polyethylenglykol und Aceton, oder eine Kombination- solcher
Verfahren. Besonders bevorzugt ist die Affinitätschromatografie unter Verwendung einer Säule, die ein Lektin
enthält, wobei man den Säulenträger leicht herstellen kann, indem man Lectin auf einem unlöslichen Träger
immobilisiert. Die Immobilisierung von Lektin auf.einem
unlöslichen Träger kann man in bekannter Weise, wie sie für die Immobilisierung von Biosubstanzen angewendet
AIo
wird, durchführen. Von diesen Methoden wendet man bevorzugt die Cyanobromidaktivierungs-Polysaccharid-Methode
und eine Inunobilisierungsmethode unter Verwendung von N-Hydroxysuccimidester an. Die Cyanobfomidaktivierungs-Polysaccharid-Methode
ist eine Methode,
bei der ein unlöslicher Träger mit Cyanobromid behan- - delt wird und das so erhaltene aktivierte Produkt
wird dann unter milden Bedingungen einer Kupplungsreaktion mit einem Lektin unterworfen, wobei das Lektin
immobilisiert wird. Bei.der Behandlung des unlöslichen Trägers mit Cyanbromid wendet man beispielsweise
basische Verbindungen, wie Natriumhydroxid und Natriumhydrogenkarbonat anr um den pH auf 7,5 bis 12 einzustellen
und dann behandelt man den Träger in einem Lö-
15 sungsmittel, wie Wasser, Acetonitril oder einem
bei pH 7,5 bis 12 gehaltenen Pufferr z.B. einem 0,1M
Natriumhydrogenkarbonatpuffer (pH etwa 8,7) und 0,01M Phosphatpuffer (pH etwa 7,7) bei Raumtemperatur während
etwa 1 bis 12 Minuten. Im allgemeinen wendet man vorzugsweise
eine dem unlöslichen Träger äquivalente Menge an Cyanbromid an.
Jeder bekannte unlösliche Träger, der gegenüber allen · Biosubstanzen eine niedrige nichtspezifische Adsorption
zeigt, der eine hohe Porosität hat und der eine funktionelle Gruppe aufweist, die unter milden Bedingungen
in der Lage ist, Biosubstanzen zu immobilisieren und der chemisch und physikalisch ausreichend stabil ist,
kann bei der vorliegenden Erfindung verwendet werden.
Verwendbare unlösliche Träger sind beispielsweise Träger, die aus Zellulose hergestellt wurden, z.B.
BAD ORIGINAL
Aminoethylzellulose, Carboxymethylzellulose, Bromoacetylzellulose
und p-Anilinozellulose, oder ein Träger
aus vernetztem Dextran, z.B. Sephadex und CM-Sephadex
(hergestellt von Farmacia Corp.) und ein Träger aus Agarose, z.B. Sepharose 2B, Sepharose 4B
und Sepharose 6B (hergestellt von Farmacia Corp.).
Bei der Kupplungsreaktion des wie oben erhaltenen, mit
Cyanbromid aktivierten Trägers wird der mit Cyanbromid aktivierte Träger in einer Menge angewendet, die 30
bis 80 mal der des Lektins entspricht und man führt die Umsetzung in einem geeigneten Lösungsmittel, wie
einer 0,1 Mol/l wässrigen Lösung von Natriumhydrogenkarbonat (enthaltend 0,5 Mol/l Natriumchlorid; pH
8,4) bei einer Temperatur zwischen 0 und 40°C und vorzugsweise
2 und 8°C während einer Zeit von etwa 10 bis 20 Stunden durch. Auf diese Weise erhält man einen Lektin
enthaltenden Träger für eine Affinitätschromatografie.
20 Bei der Chromatografie unter Verwendung des Lektin
enthaltenden, wie oben beschrieben hergestellten Trägers, kombiniert sich das gewünschte GRA mit dem auf
dem Träger enthaltenen Lektin und wird in der Säule festgehalten. Anschliessend werden Substanzen, die zu einer
Kombination in der Lage sind, z.B. mit einem Lektin, durch die Säule laufen gelassen, wobei einer Austauschreaktion
stattfindet, oder man führt alternativ eine Adsorptionsabtrennung (mit einer Eluierlösung) durch,
z.B. mit einem hochkonzentrierten Salz, einer wässrigen Lösung von Kaläumthiocyanat und einem Nitratpuffer, um
das gewünschte GRA abzutrennen und zu gewinnen.
Bei der Austauschreaktion sind Substanzen, die in der Lage
sind, sich mit einem Lektin zu verbinden, wenn ein Träger für die Affinitätschromatografie, enthaltend ein galaktosebindendes
Lektin, verwendet wird, beispielsweise solche, die sich mit einem endständigen galaktoseverbindendem Lektin
kombinieren, z.B. Galaktose, Disaccharide,enthaltend endständige Galaktose,und Oligosaccharide,enthaltend eine
endständige Galaktose. Beispiele für Substanzen, die in der Lage sind, sich mit einem Lektin zu verbinden, wenn als
Träger für die Affinitätschromatografie ein N-Acetylgalaktosamin-bindendes
Lektin verwendet wird, sind solche, die sich mit einem endständigen N-Acetylgalaktosamin verbindenden
Lektin verbinden könnten, z.B. N-Acetylgalaktosamin, Disaccharide, enthaltend ein endständiges N-Acetylgalaktosamin
und Oligosaccharide, enthaltend ein endständiges N-Acetylgalaktosamin.
Das so erhaltene GRA enthält Glykoprotein, enthaltend eine Galaktose und/oder N-Acetylgalaktosamin-Endgruppe, Glykolipide
und/oder Saccharide.
Das so hergestellte GRA kann gewünschtenfalls lyophiliisert werden und auch in üblicher Weise unter Anwendung üblicher
Trennmethoden gereinigt werden. Beispielsweise kann man solehe
GRA-Zubereitungen, die mit einem galaktosebindenden
lektin isoliert wurden, einer Trennmethode unterwerfen, unter Anwendung eines N-Acetylgalaktosamin verbindenden
Lektins und GRA, das mit einem N-Acetylgalaktosamin verbindenden Lektin dann isoliert wurde, kann nach einer Trennmethode
behandelt werden, unter Verwendung eines galaktosebindenden Lektins.
-BAD ORIGINAL
Die"hier verwendeten Lymphocyten sind nicht kritisch
und alle Lymphocyten von normalen oder krebsigen Menschen oder Tieren können verwendet werden. Beispiele
hierfür sind Lymphocyten, die man von peripherem Blut, Knochenmark, Lymphknoten, aus der Milz, den
Mandeln oder der Thymusdrüse erhält. Diese Lymphocyten werden durch physikalische oder chemische Methoden,
durch eine Oberflächenmembranmethode oder dergleichen
isoliert.
Die Sensibilisierung von Lymphocyten mit GRA erfolgt, indem man die Lymphocyten auf einem Kulturmedium, enthaltend
GRA, während einer Zeit von 1 bis 10 Tagen, vorzugsweise 2 bis 7 Tagen, kultiviert.
Als Kulturmedium für die Verwendung zum Sensibilisieren der Lymphocyten können verschiedene übliche Nährmedien
verwendet werden, die üblicherweise für solche Zellkultivierungen verwendet werden. Bevorzugte Beispiele
schliessen ein RMPI 1640-Mediumr eine Eagle-MEM-Kultur,
etc., dem Humanserum, Kalbsfötusserum (FCS),
Kalbsserum, Pferdeserum oder dergleichen zugegeben wurde. Die Menge des zur Kultur gegebenen GRA beträgt
im allgemeinen 1 bis 1.000 ng/ml und vorzugsweise 1 bis
25
500 ng/ml, berechnet als Menge Zucker.pro 1 χ 10 /ml
Lymphocyten.
Die Kultivierung wird in üblicher Weise, z.B. bei einem pH von 7,2 und bei einer Temperatur von etwa
37°C durchgeführt.
Die so hergestellten Killerzellen gemäss der Erfindung
sind im wesentlichen normale Lymphocyten und haben eine GRA-spezifische Zellenbekämpfungsaktivität.
Beispielsweise hat GRA-I-KT, eine der erfindungsgemässen
Killerzellen, Eigenschaften die bei humanen peripheren Blut-T-Zellen vorkommen und zeigt
eine zellbekämpfende Aktivität, die spezifisch gegenüber
Krebszellen, enthaltend GRA, ist, wie in den später folgenden Beispielen gezeigt wird.
Typische Beispiele für die neuen Killerzellen gemäss der Erfindung sind GRA-1-KZ und -GRA-M-1r die in den
nachfolgend beschriebenen Beispielen hergestellt werden. Diese Killerzellen sind bei der Anmelderin erhältlich
und eine Probe von GRA-i-rKIVZellen ist bei ATCC am 27. Septeirfoer 1982
hinterlegt worden und hat die Nummer ATCC CRL 8175 erhalten.
Die erfindungsgemässen Killerzellen kann man unlimitiert
vervielfältigen,unter Verwendung des vorerwähnten Kulturmediums, enthaltend einen T-Zellen-Wachstumsfaktor
(TCGF, IL-2 ). in diesem Falle kann man eine selektive
Kultivierung von Klonen der Killerzellen mittels einer üblichen ültraverdünnungsmethode durchführen. Die
Killerzellen können stabil über lange Zeiträume in
BAD ORIGINAL
«Μ
beispielsweise flüssigem Stickstoff aufbewahrt werden.
Das GRA kann einzeln als aktiver Bestandteil eingesetzt
werden oder es kann zusätzlich in Kombination
mit anderen bakteriziden Mitteln und krebsinhibierenden
Mittel verwendet werden. Krebsinhibierende Mittel, die das erfindungsgemässe GRA als aktiven Bestandteil
enthalten, können in jeder Form vorliegen, unter der Voraussetzung, dass sie GRA in wirksamen Mengen enthalten-Im
allgemeinen wird das Mittel intravenös, subkutan, intfadermal oder intramuskulär in Form einer Lösung, einer
Suspension oder als Emulsion verwendet. Man kann es auch als Trockenprodukt herstellen und dann unmittelbar
vor der Verwendung durch Zugabe eines geeigneten Trägers in eine Flüssigkeit überführen. Dieses flüssige
Mittel kann ein Suspensionsmittel, z.B. Methylzellulose, ein Emulgiermittel, z.B. Lecithin, Konservierungsmittel,
z.B. Methyl-p-hydroxybenzoat, Stabilisierungsmittel und dergleichen enthalten, soweit diese keine
25 nachteilige Wirkung auf die Immunisierungsfunktion
bei Menschen oder Tieren hervorrufen. Auch Puffer können
enthalten sein.
Geeignete wässrige Träger sind beispielsweise eine physiologische Kochsalzlösung und ein geeigneter nichtwässriger Träger kann beispielsweise ein Pflanzenöl,
Xi
-2T-
z.B. Sesamöl,. ein Mineralöl, z.B. Paraffin, oder ein
tierisches öl, z.B. Squallene, oder auch Propylenglykol sein. Zur Erhöhung der immunologischen Wirkung
kann man ein geeignetes Adjuvants inkorporieren. Geeignete Adjuvantien sind beispielsweise Freund's
Complete Adjuvants, Saponin bei Tieren und Aluminium- - hydroxid beim Menschen.
Das erfindungsgemässe Anti-Krebsmittel kann einmal oder wiederholt über längere Zeiträume einem Krebspatienten
zur Behandlung von Krebs verabreicht werden oder man kann es jemandem verabreichen, der krebsanfällig ist, um dadurch dem Krebs vorzubeugen.
Da LD50 (Maus, intraperitoneal) von GRA wenigstens
500 mg/kg, berechnet als Zuckermenge, beträgt, zeigt das Anti-Krebsmittel gemäss der Erfindung eine niedrige
Toxizität und man kann es deshalb innerhalb eines weiten Dosierungsbereiches verabreichen. Obwohl die
Konzentration von GRA in dem Anti-Krebsmittel gemäss der.Erfindung nicht kritisch ist, wird doch bevorzugt,
es in einer Menge vonO„001 bis 100 μg/ml, berechnet
als Menge des Zuckers, zu verwenden. Hinsichtlich der Dosierung des.Anti-Krebsmittels wird im allgemeinen
bevorzugt, das Mittel in einer Menge von 0,001 bis 1.000 μg/kg/Tag auf einmal oder in verschiedenen Anteilen
zu verabreichen, wobei jedoch diese Dosierung von dem Krankheitsgrad, dem Alter und dem Geschlecht
des Patienten abhängt.
Das so hergestellte Anti-Krebsmittel, welches die
BAD ORIGINAL
Killerzellen als aktiven Bestandteil enthält, wird vorzugsweise als injizierbare Lösung in Kombination
mit Trägern, die bei der Herstellung von Blutmedizinen
Anwendung finden, verwendet. Die hier verwendeten Tr äger sind nicht kritisch, jedoch bevorzugt man Träger,
die die gleiche Tonizität wie Blut aufweisen. Besonders wird physiologische Kochsalzlösung bevorzugt. Bei der
Herstellung des Mittels wäscht man vorzugsweise die . Killerzellen ausreichend mit einer physiologischen Koch-Salzlösung
oder dergleichen, um das vorerwähnte Kulturmedium zu entfernen und anschliessend wird es dann
in einem Träger aufgenommen.
Die Konzentration an Killerzellen in dem Mittel ist
nicht besonders begrenzt, sie beträgt jedoch vorzugs-
5 9
weise zwischen 10 und 10 pro Milliliter. Verabreicht
weise zwischen 10 und 10 pro Milliliter. Verabreicht
man die Killerzellen intraperitoneal in einer Dosis
von 10 pro Maus, so stellt man keine Toxizität fest. Zwar hängt die Dosis des erfindungsgemässen Anti-Krebsmittels
von dem Grad der Krankheit, dem Alter und dem Geschlecht des Patienten ab, jedoch wird im allgemeinen
das Mittel vorzugsweise in einer Dosis von 10 bis
1 2
10 /kg/Tag auf einmal oder in verschiedenen Anteilen
verabreicht. 25
Die folgenden Beispiele, Referenzbeispiele, Versuchsbeispiele und Vergleichsbeispiele beschreiben die Erfindung,
ohne sie zu beschränken.
5 (D ~A Herstellung von FITC-markiertem Lektin
(PNA-FITC)
- 10 rag Erdnusslektin (PNA), hergestellt von EY Co.) wurden
in 2 ml eines O,01M Phosphatpuffers, enthaltend
10 0,85 % NaCl (pH 7,2) gelöst. In 1 ml eines 0,5M
Hydrogenkarbonatpuffers (pH 9,0) wurden 2 mg FITC (hergestellt von Sigma Laboratories Ine.) gelöst und ein
0,5 ml Anteil der gebildeten Lösung wurde zu dem zuvor hergestellten PNA-Puffer gegeben. Die Mischung wurde
2 Stunden bei Raumtemperatur gerührt und anschliessend über Sephadex G25 (10 mm χ 300 mm, hergestellt von
Farmacia Corp.) getrennt. Das Anfangspeak wurde gesammelt. FITC/PNA-Verhältnis: 1,0.
20 (D-B Zubereitung von FITC-markiertem Lektin
(DBA-FITC)
In gleicher Weise wie in (D-A oben erhielt man DBA-FITC unter Verwendung von DBA, hergestellt von EY Co..
EITC/DBA-Verhältnis =0,9.
(D-C Sojabohnenagglutinin-FITC(TIFT-SBA) ist von
Ey Co. erhältlich.
FITC/SBA-Verhältnis =1,4. 30
FITC/SBA-Verhältnis =1,4. 30
BAD ORIGINAL
3236238
(2) Lokalität von -GRA auf verschiedenen Krebszellen
(a) Human kultivierte Krebszellen (1 χ 10 ) wurden dreimal . mit einem 0,05 M tris-Salzsäurepuffer/ enthaltend
0,85 % NaCl (pH 7,2) durch Zentrifugenverfahren gereinigt und dann wurden 100 μΐ PNA-FITC, DBA-FITC
oder SBA-FITC, (200 μg/ml), hergestellt und gemäss
(1), zugegeben. Die Mischung wurde 3 0 Minuten zur Umsetzung bei Raumtemperatur stehen gelassen. Nach Beendigung
derUmsetzung wrude das Reaktionsgemisch dreimal mit einem 0,01M Phosphatpuffer, enthaltend 0,85 %
NaCl (pH 7,2) gewaschen und anschliessend wurden die Zellen auf eine Glasplatte gelegt und unter
15 einem Fluoreszenzmikroskop untersucht.
Die Ergebnisse werden in Tabelle 1 gezeigt. Die Krebszellen sind alle bekannt und wurden von "First Pathology
Laboratories, Medical Department of Niigata University", bezogen
- 2-5 - at |
Krebszellen | positives Ver hältnis von GRA (%) |
DBA SBA | |
Tabelle 1 | PNA | 1,4 | ||
(Burkitt Lymphoma) | 98,3 | 5,2 | ||
(Burkitt Lymphoma) | 93,1 | 0 | ||
Raji | (Burkitt Lymphma) | 50,1 | 6,7 | |
Dau j i. | (T-Zellen Lymphoma | 44,3 | 4,8 | |
BT-1 | (T-Zellen Leukemia) | 0,6 | 5,3 | |
P-I 2 | (B-Zellen Lymphoma) | 19,2 | 10,0 | |
MOLT | (IgD-Myeloma) | 0,6 | 2,0 | |
Fujimaki | (Lungenkrebs,squamös) | 70,4 | 0,4 | |
ODA | (Lungenkrebs,sguamös) | 78,4 | 0 | |
QG-5 6 | (Lungenkrebs,adenocarcinom) | 77,1 | 0 | |
PC-1 | (Lungenkrebs, kleine Zellen) | 68,0 | 0 | |
PC-3 | (Lungenkrebs, grosse Zellen) | 17,0 | 0,1 | |
QG-90 | .(Magenkrebs, por.) | 63,7 | 0 | |
PC-13 | (Magenkregs sig.) | 57,3 | 40,3 | |
MK-2 | (Magenkrebs por.) | 1,0 | 0,4 | |
KATO-III | (Magenkrebs, adsq.) | 4,6 | 0,1 | |
MKN-45 | (Magenkrebs,tubl) | 0,4 | 0 | |
MKN-1 | (Magenkrebs,tubl) | 0,5 ' | 0 | |
MKN-28 | (Harnblasenkrebs ca.) | 37,4 | 21,4 | |
MKN-74 | (Harnblasenkrebs ca.) | 4,5 | 0 | |
MGH-Ü1 | (Harnblasenkrebs ca.) | 14,6 | .1,0 | |
KU-2 | (Harnblasenkrebs ca.) | 13,1 | 0 | |
T-24 | (Nierenkrebs) | 23,9 | 0,6 | |
NBT-2 ' | (Nierenkrebs) | 3,3 | 0 | |
NRC-12 | (Eierstockkrebs) | 80,0 | 1,7 | |
KU-1 | (Neuroblas toma) | 20,9 | 0,5 | |
Kuramochi | (Neuroblastoma) | 3,6 | 0 | |
NB-1 | (Neuroblastoma) | 4,1 | 1,0 | |
YT-nu | (Neuroblastoma) | 2,0 | 0 | |
TGW-nu-1 | (Neuroblastoma) | 0,5 | ||
TGW-nu-11 | ||||
GOTO | ||||
BAD ORIGINAL
96,9 | 12 | ,3 |
44,6 | 0 | |
14,6 | 3 | ,1 |
5,4 | 0 | |
5,7 | 1 | ,7 |
92,0 | 0 |
- 26 -
a*
ITO (Embryonalcarcinoma)
NEC-8 (Embryonalcarcinoma)
SCH (Choriacarbinoma, Magen)
GCH (Chriocarcinoma, Uterus)
5 YN-1 (Rhabdomyosarcoma)
Maus X 5563 (Plasmacytoma) 92,0 0 90,7
Maus MH134 (Hepatoma) 18,6 0 6,4
(b) Das maligne Gewebe von Krebszellen wurde durch ein
Sieb aus. rostfreiem Stahl (150 mesh) gegeben, unter
Erhalt einer Einzelzellensuspension. Nach zweimaligem Waschen mit 0,01M-HCl-Puffer (pH 7,4) , enthaltend 2mMol
CaCl2, 2mMol MgCl2 und 0,85% NaCl wurden 5x1O5 Zellen
in 100 μΐ Puffer resuspendiert. 100 μΐ FITC-PNA oder
FITC-DBA (200 ng/ml) wurden zu der Zellsuspension gegeben
und die Mischung wurde bei Raumtemperatur 20 Minuten inkubiert. Nach dreimaligem Waschen mit kaltem PBS
wurden die Zellen unter einem Fluoreszenzmikroskop untersucht.
20
20
Die Ergebnisse werden in Tabelle 2 gezeigt. Das maligne Gewebe von Krebspatienten wurde von der Kansai Medical
■Universität erhalten.
GRA
Nr. Krebspatienten-Gewebe
T | Magenkrebs |
2 | Magenkrebs |
3 | Magenkrebs |
4 | Magenkrebs |
5 | Magenkrebs |
6 | Magenkrebs |
7 | Brustkrebs |
8 | Brustkrebs |
9 | Brustkrebs |
10 | Brustkrebs |
11 | Dickdarmkrebs |
12 | Dickdarmkrebs |
13 | Esophaguskrebs |
14 | Hepatoma |
'. Änm | p.rkuncf: " + " beze |
:-Anmerkung: " + " bezeichnet das GRA auf der Zelloberfläche;
"-" bedeutet, dass GRA auf der Zelloberfläche nicht vorkommt.
Referenzbeispiel 2
25
25
(1) -A Herstellung von immobilisiertem Lektin
• (PNA-Sepharose)
3g CNBr-aktivierte Sepharose 4B (hergestellt von Farmacia
Corp.) wurden gründlich mit 1 mmol HCl gewaschen und ■
in 200 ml 0,1M Natriumhydrogenkarbonat (pH 8,5) suspendiert. Dazu wurden 5 ml eines p,01M Phosphatpuffers
ι (pH 8,5), enthaltend 20 mg PNA, gegeben und dann erfolgte
die Umsetzung bei 25°C während 2 stunden, wobei man
einige Male rührte unter Erhalt von PNA-Sepharose.
BAD ORfGINAL
(I)-B In gleicher Weise wie bei (D-A oben, mit
der Ausnahme, dass DBA anstelle von PNA verwendet wurde, erhielt man DBA-Sepharose..
der Ausnahme, dass DBA anstelle von PNA verwendet wurde, erhielt man DBA-Sepharose..
(2) Herstellung von GRA
(a) BT-1 (Burkitt Lymphoma)-Zellen (1,3 χ 108)
wurden 3 mal mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen und dann wurden 30 ml eines 0,01M tris-Salzsäurepuffers
(pH 7,4), enthaltend 2 % Triton X-100 (hergestellt von Wako Pure Chemical Industries Ltd.),
0,85 % NaCl, 2 mmol CaCl, und 2 mmol MgCl2 zugegeben.
Die Mischung wurde 15 Minuten bei 4°C gerührt und dann einer ültrazentrifugenabscheidung mit einer Rate
15 von 100.000 χ g unterworfen. Von 28 ml der dabei erhaltenen
überstehenden Flüssigkeit wurde ein 14 ml-Anteil
durch eine Säule (Durchmesser 0r5, Länge 1 cm) für die
Affinitätschromatografie geschickt, wobei die Säule mit PNA-Agaroseperlen (hergestellt von Maruzen Co., Ltd.),
20 aie zuvor mit einem tris-Salzsäurepuffer (pH 7,4),
enthaltend 0,1 % Triton X-100, 0,85 % NaCl,. 2 mmol
CaCl2 und 2 mmol MgCl2 ins Gleichgewicht gebracht worden waren, geschickt. Nach dem Waschen mit dem gleichen Puffer, wie er oben verwendet wurde, wurde mit
enthaltend 0,1 % Triton X-100, 0,85 % NaCl,. 2 mmol
CaCl2 und 2 mmol MgCl2 ins Gleichgewicht gebracht worden waren, geschickt. Nach dem Waschen mit dem gleichen Puffer, wie er oben verwendet wurde, wurde mit
25 einem 0f01M tris-Salsäurepuffer (pH 7,4), enthaltend
0«1M Laktose, 0,85 % NaCl, 2 mmol CaCl2, 2 mmol MgCl2
und P,1 % Triton X-100 eluiert. Der so eluierte Anteil
0«1M Laktose, 0,85 % NaCl, 2 mmol CaCl2, 2 mmol MgCl2
und P,1 % Triton X-100 eluiert. Der so eluierte Anteil
V ν, W
wurde mit einer 0,1M tris-Salzsäurepufferlösung, enthaltend
O1-85 % NaCl, 2 mmol MgCl2 und 2 mmol CaCl2
48 Stunden dialysiert, wobei man 17 mg einer GRA-Lösung erhielt. In dieser GRA-Lösung wurde die Menge an Protein
und die Menge an Zucker nach der Folin-Lowry-Methode bzw. nach der Phenol-Schwefelsäure-Methode
- bestimmt j diese Mengen betrugen 644 ;ig bzw.. 120 μ^.
Dieses Produkt wird nachfolgend als "GRA-1" bezeichnet.
1 0 (b) C3/€E-Mäuse-Brustkrebs-I>!MT-zei:Len (1 x 10 ) wurden
3~mal mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen und dann wurden 30 ml einer 0,01M tris-Salzsäurepufferlösung (pH I1 4), enthaltend 2 % Triton X-100, 0,85 %
NaCl, 2 mmol CaCl2 und 2 mmol MgCl2, zugegeben. Die
Mischung wurde 30 Minuten bei 4°C gerührt. Anschliessend wurde die Mischung einer uitrazentrifugenabscheidung
in einer Rate von 100.000 χ g während 2 Stunden unterworfen, und die überstehende Flüssigkeit wurde
über Nacht mit einem 0,1M tris-Salzsäurepuffer (pH
7,4), enthaltend 0,85 % NaCl1- 2 mmol CaCl2 und 2 mmol
MgCl2J dialysiert. Die so dialysierte Flüssigkeit wurde auf 3 ml konzentriert und ein 1 ml-Anteil wurde
durch eine Säule (Durchmesser 0,5, Länge 2 cm), die mit der gleichen PNA-Sepharose,- wie zuvor verwendet,
gefüllt worden war und die mit einem tris-Salzsäurepuffer
(pH 7,4), enthaltend 0,05 % Triton X-100, 0,85 % NaCl, 2 mmol CaCl2 und 2 mmol MgCl2, ins Gleichgewicht
gebracht worden war, einer Affinitätschromatografie unterworfen. Nachdem man gründlich mit der gleichen
Pufferlösung wie zuvor gewaschen hatte, eluierte man mit
BAD ORIGINAL
einer Of1M tris-Salzsäurepufferlösung (pH 7,4), enthaltend
0,1M Laktose, 0,85 % NaCl, 2 mmol CaCl2, 2 mmol
MgCl2 und 0,005 % Triton X-100, und der so eluierte
Anteil wurde dann 48 Stunden dialysiert mit einem 0,01M tris-Salzsäurepuffer (pH 7,4), enthaltend 0,85 %
NaCl, 2 mmol CaCl2 und 2 mmol MgCl2. Man erhielt 2 ml
einer GRA-Lösung. In dieser GRA-Lösung betrug der Proteingehalt 156 ug und der Zuckergehalt 94 μg. Diese
Lösung wird nachfolgend als "GRA-M-1" bezeichnet. 10
(c) Annähernd 120 g (Nassgewicht) KATO-III wurde in einem Waring-Mischer in 100 ml PBS homogenisiert. Nach
dem Zentrifugieren mit 100.000 g während einer Stunde wurden die Pellets in 100 ml einer 2% Triton X-100-Lösung
in 0,01M Tris-HCl-Puffer (pH 7,6),enthaltend 0,15M NaCl
gelöst. Die bei der Zentrifugierung mit 100.000 g während 1 h erhaltene überstehende Lösung wurde auf eine Säule
von PNA-Sepharose 4B (0,8x15 cm) zugegeben, die zuvor
mit 0,015 % Trito X-100 in 0,01M Tris-HCl (pH 7,6), enthaltend
0,15MUaCl ins Gleichgewicht gebracht worden war,
aufgetragen. Nach dem Waschen mit 50 ml des Puffers wurde GRA mit dem 0,1M Laktose enthaltenden Puffer eluiert.
Das eluierte GRA. wurde gegen 0,85 % NaCl dialysiert, konzentriert mittels Sephadex Pharmacia Co. und bei
25 -200C vor der Anwendung gelagert.
Die Mengen an Protein und Zucker, in gleicher Weise bestimmt wie bei (a) oben, betrugen 2,0 mg bzw. 0,8 mg.
Dieses Produkt wird nachfolgend als "GRA-2" bezeichnet. 30
(d) Wie in (c) wurden die folgenden GRA-Proben erhalten:
- -31 -
Material | Tabelle 3 | GRA | Zuckerge halt (mg) |
|
GRA- | Quelle | Proteingehalt (mg) |
0,09 | |
Probe | BT-a | Menge (g) | 0,5 | |
GRA-3 | Exzidierter | 33 | 0,5 | |
GRA-4 | Brustkrebs | 0,25 | 0,38 | |
QG-4 6 | 5 | 0,6 | 0,54 | |
GRA-5 | QG-90 | 24 | 1,0 | 0,45 |
GRA-6 | Raji | 26 | 0,78 | 28,4 |
GRA-7 | MMT | 29 | 11,3 | 0,07 |
GRA-M-2 | LLC | 200 | 0,06 | 0,35 |
GRA-M-3 | MH-135 | 14,4 | 0,65 | '0,23 |
GRA-M-4 | X-5563 | 85 | 0,56 | |
GRA-M-5 | 25 | |||
(e) In gleicher Weise wie bei (c), jedoch unter Verwendung
von NKN-45 (etwa 29g) anstelle von Kato-III und unter Verwendung
vn DBA-Sepharose, erhalten gemäss (1)-B, anstelle von
PNA-Sepharose 4B und unter Eluieren mit N-Acetylgalaktosamin
erhielt man eine GRA-Zubereitung mit einem Proteingehalt von 0,03 mg und einem Zuckergehalt von 0,01 mg. Dies wird
25 nachfolgend als GRA-8 bezeichnet.
(f) GRA-3, hergestllt gemäss (d) (5 ml) wurde auf eine DBA-Sepharose-Säule gegeben und mit Tris-HCl-Puffer (0,015 %
Triton X-100, 2 mMol MgCl3, CaCl3, 0,85 % NaCl) eluiert,
wobei man 4 ml-Fraktionen Nr. 1-1:2 erhielt. Fraktionen 1-3
werden als "GRA-3-A" bezeichnet und Fraktionen 4-12 als "GRA-3-B". Dann wurde die Säule mit dem gleichen Puffer
eluiert, der jedoch 0,1M N-Acetylgalktosamin enthielt und
wobei man Fraktionen erhielt die mit "GRA-ß-C" bezeichnet
35 ' werden.
BAD ORIGINAL
(g) SDS-Gelelektrophorese
Jede ·. derobigen GRA-Zubereitungen wurde einer Elektrophorese
unterworfen, wobei die Methode von Fairbanks et al: Biochemistry, Band 10, S. 2606, 1971, angewendet wurde.
Die Ergebnisse werden in den Fig. 18 bis 22 gezeigt.
In den Fig. 18-19 bedeuten die Zahlen 1 bis 5 folgendes: 1 ... Standard; 2 . . . GRa-M-3; 3... GRA-7; 4...GRA-1; und
5 ... GRA-2.
In Fig. 20 bedeuten die Zahlen 1 bis 4 folgendes: !...Standard; 2...GRA-M-2; 3...GRA-6; 4...GRA-5.
15
In Fig. 21 bedeuten die Zahlen 1 bis 3 folgendes: 1...GRA-M-4; 2...GRA-M-5; 3...Standard:
In Fig. 22 bedeuten die Zahlen 1 bis 4 folgendes: 20 1...GRA-3; 2...GRA-3-A; 3...GRA-3-B, 4...GRA-3-C.
Fig. 18 zeigt den Zustand von GRA nach einer Proteinanfärbung
gemäss C.B.B. (Fairbanks et al: Biochemistry, Band 10, S. 2606, 1971).
25
25
Fig. 19 bis 21 zeigen den Zustand von GRA nach Behandlung
mit einer Zuckerfarbreaktion gemäss PAS-Methode (R.M. Zacharius et al: Anal. Biochem. Band 30, S. 128 (19.62)).
Fig. 22 ist eine schematische Darstellung der Ergebnisse von Anfärbungen gemäss der vorerwähnten C.B.B.-Methode.
Als Standard wurden die nachfolgenden, von Biorad Lab. Calif.USA erhaltenen Substanzen verwendet:
35
200 K Dalton; Myosin
116 " ; ß-GälactosIdase
92,5 " ; Phosphorylase 66,2 " ;, BSA
45 " ; Ovalbümin
21,5 β ; Sojabohnentrypsin-Inhibitor
10 Referenzbeispiel 3
(a) Die Milz von japanischen Affen (erhalten von der. Japan
Plymates Co., Ltd.) wurde herausoperiert und 2 mal mit
einem RPMI-1640-Kulturmedium (hergestellt von der Flow
Laboratory Co., Ltd.) gewaschen. Die Zellen wurden unter Verwendung von Mesh (hergestellt von Millipore
Inc., 150 mesh) filtriert und einem spezifischen Schwerkraftzentrifugenverfahren
(spezifische Schwerkraft
1,076) unterworfen, wobei man 2 1 von 2 χ 10 /ml Lymphocyten
erhielt. Die so erhaltenen Lymphocyten wurden 3 mal mit einem RPMI-1640-Kulturmedium gewaschen und
die Anzahl der Lymphocyten wurde auf 5 χ 10^/ml unter
Verwendung des gleichen Mediums wie zuvor, enthaltend 10 % FCS, eingestellt. Dann liess man sie in einer
Kohlendioxid-Fermentationsvorrichtung 1 Stunde bei 370C
stehen. Die überstehenden Lymphocyten wurden gewonnen
und die Anzahl der Lynphocyten wurde unter Verwendung
des gleichen Kulturmediums wie vorher angegeben, enthaltend
1 % FCS auf 1 χ 10 /ml eingestellt. Anschliessend wurden 1 μg/ml Indomethacin (hergestellt von Sigma
Laboratories Inc.) und 0,2 % PHA-P (hergestellt von Difco Co.) zugegeben und dann wurde die Kultivierung
in einer Kohlendioxidgas-Fermentationsvorrichtung 48 Stunden bei 370C durchgeführt. Nachdem man 10 Minuten
eine Zentrifugenabscheidung (3.000 UpM) durchgeführt hatte,- wurde die gebildete überstehende Flüssigkeit
gewonnen und sterilisiert,- indem man sie durch ein Millipore-Filter (hergestellt von der Millipore
Inc., 0,2 μπι) filtrierte und wobei man 2 1 TCGF erhielt.
(b) Als Quelle von TCGF wurde die überstehende Flüssigkeit
von mischkultivierten periphelren Blutlymphocyten
von 10 gesunden Spendern verwendet. Nicht zusammenhängende
Lymphocyten, hergestellt von CF. (Conray. Ficol (Japan Immunoresearch
Co.)) abgetrennten Lymphcyten durch Adsorption auf Plastikoberflächen bei 37°C während 1 h wurden
in RPMI 1640-Medium, enthaltend 1 % FCS (1,5x106Zellen/ml)
suspndiert und mit 0,2 %_ PHA-P, INdomethacin (lug/ml) und
Human-B-Zellen (BT-1) (1,5x1O5 Zellen/ml), vorbehandelt
mit Mitomycin C (50 nrn/ml) inkubiert. Nach 48 Stunden
wurde die aufschwimmende Kultur geerntet und als TCGF-Quelle
verwendet (H.Inoue et al, Scand.J. Immunol. 12, S. 149-145 (1980)).
I Λ* V
Vo
5 (1) Human-periphere Blutlymphocyten
50 ml Blut, erhalten von gesunden Erwachsenen oder Pateinten mit verschiedenen Krebsen durch Häparinisierung,
wurden unter Verwendung von Ficol Pack (hergestellt durch Farmacia Japan Co., Ldt.) einer Zentrifugenabscheidung
unterworfen, wobei man 5x10 periphere Blutlymphocyten erhielt.
15 (2) Mäuse-Milzlymphocyten
Die Milz einer C3H/He-Maus (männlich, 6w) wurde exzidiert und 2-mal mit einem RPMI-1640-Kulturmedium
BAD ORIGINAL
- 35a -
gewaschen. Dann wurde die Milz mittels einer Injektionsnadel gelockert und durch ein Sieb aus rostfreiem
Stahl (100 mesh) zur Entfernung grosser Teile passiert. Die so filtriertenZellen wurden 2 mal mit
dem gleichen Kulturmedium wie oben gewaschen und dann einer Zentrifugentrennung mit einer Rate von 1.200 HpM
während 10 Minuten unterworfen, wobei man 4 χ 107
Milzlymphocyten erhielt.
GRA-1 (Menge an Protein 40 μg/mlj Menge an Zucker
7,5 μg/ml, erhalten gemäss Referenzbeispiel 2,(2a))
wurden auf das 1.000-fache des Ursprungsvolumens mit einem RPMI-1640-Kulturmedium, enthaltend 15 % FCS,
verdünnt, unter Erhalt eines Sensibilisierungs-Kulturmediums.
Lymphocyten von humanem peripheren Blut (5 χ 10 /5 ml) ,
erhalten gemäss Referenzbeispiel 4(1), wurden zu 5 ml des Sensibilisierungs-Kulturmediums, hergestellt wie
oben, gegeben und dies wurde dann in eine Laborschale gegeben und 2 Tage bei 37°C kultiviert. Anschliessend
erfolgte eine weitere Kultivierung auf einem RPMI-1640-Kulturmedium,
enthaltend 20 % TCGF und 15 % FCS, erhalten gemäss Referenzbeispiel 3r für weitere 5 Tage,
wobei man 20 ml einer Killerzel-lenlösung, enthaltend 1x10 Killerzellen/ml, erhielt. Diese wird nachfolgend
als GRA-1-K-T bezeichnet.
- .ZBb -
Die Mäuse-Milzlymphocyten, die im Referenzbeispiel
4(2) erhalten worden waren, wurden unter Verwendung eines RPMI-1640-Kulturmediums,· enthaltend 15 % FCS,
auf eine Zahl von 5x10 /ml eingestellt. Dazu wurde
GRA-M-1, erhalten gemäss Referenzbeispiel 2(2b) gegeben,
so dass das Endprodukt 1r5 μg/ml Protein und
0,9 ug/ml Zucker enthielt. Ein 5 ml-Anteil des erhaltenen
Gemisches wurde in eine Laborschale (60 mm χ 15 mm, hergestellt von Falcon Co.) 2 Tage bei 370C
kultiviert. Es wurde die Bildung von Klonen beobachtet. Der Anteil wurde weiter in einem RPMI-1640-Kulturmedium
mit 15 % FCS, enthaltend 20 Vol.% TCGF (hergestellt
15 von Japan Immuno Research Laboratories Co., Ltd.)
während 4 Tagen kultiviert, wobei man 50 ml einer Killerzellenlösung,
enthaltend 1 χ 10 Killerzellen/ml erhielt. Diese wird nachfolgend als GRA-M-1-K-T bezeichnet
.
,6.
Lymphocyten (5x10 ) von peripherem Blut gesunder Spender
wurde in einem RPMI-1640-Medium, enthaltend 40 ng/ml
(^roteingehalt) von GRA-2 und 15 % FCS bei 37?C inkubiert.
Am zweiten Tag wurde das vorerwähnte Human-TCGF zu dem Medium zugegeben, bis dessen Konzentration 20 % erreichte
und die Inkubierung wurde 3 Tage fortgesetzt, wobei man Killer-Zellen erzielt, diese werden nachfolgend als
"GRA-2-K-T" bezeichnet.
- 3-6 -
Killerzellzubereitungen GRA-8-K-T, GRA-3-A-K-T und GRA-3-C-K-T wurden in gleicher Weise wie in Beispiel 1
unter Verwendung von fRA-8, GRA-3-A und GRA-3-C hergestellt (Proteingehalt: 50 ng/ml/ und des TCGF, das
im Re!ferenzbeispiel 3-(b) erhalten wurde.
10 Beispiel 5
C3HE/Mäusen (weiblich 8 Wochen alt) wurde intradermal X5563-Zellen (10 ) des .gleichen Stammes implantiert und
nach 7 Tagen wurde derTumor chirurgisch herausgeschnitten. Nach weiteren 7 Tagen wurden X5563-Zellen (10 )
gleichen Stammes inokuliert und Mäuse, die gegenüber der Inokulierung resistent waren, wurden als Immun-Mäuse
bezeichnet.
Die Milzzellen der Immunmäuse und von C3H/HE-Mäusen wurden unter üblich angewendeten Methoden präpariert.
Jedes Lot von Milzzellen (5x10 /Well) wurde mit 40 ng/ml (Proteingehalt) von GEA-M-5 in RPMI-1640-Medium, enthaltend
15 % FCS. während 5 Tagen sensibilisiert unter Erhalt von Killerzellen.
Killerzell-Zubereitungen, die aus normalen Milzzellen erhalten wurden, werden nachfolgend als "GRA-M-5-K-t-1"
bezeichnet, und solche, die von Immunen Milzzellen erhalten wurden, werden mit "GRA-M-5-K-T-2" bezeichnet.
Uo
η -
Lymphocyten von peripherem Human-Blut (5x10 ) wurden
in 5 ml RPMI-1640-Medium, enthaltent 50 ng/ml (Proteingehalt)
GRA-1 bei 370C während 2 Tagen inkubiert. Am
dritten Tag wurden die Lymphocyten in das RPMI-1640-Medium,
enthaltend 10 % Serum von dem Spender der Lymphocyten, und 0 bis 100 ng/ml (Proteingehalt) von GRA-1
übetragen und die Inkubierung wurde nach weiteren 5 Tagen fortgeführt, wobei man die in der nachfolgenden Tabelle
gezeigten Killerzellen-Zubereitungen erhielt.
Tabelle 4 | Killerzellen | |
GRA-Kontentration | (ng/ml) | GRA-1-K-T-1 |
Erster Tag | Tag 3 | GRA-1-K-T-2 |
50 | 0 | GRA-1-K-T-3 |
50 | 1,6 | GRA-1-K-T-4 |
50 | 3,2 | GRA-1-K-T-5 |
50 | 6 | GRA-1-K-T-6 |
50 | 12,5 | GRA-1-K-T-7 |
50 | 25 | GRA-1-K-T-8 |
50 | 50 | |
50 | 200 | |
Beispiel 7 | ||
(a) Lymphocyten von peripherem Blut (PBL) von verschiedenen
Krebspatienten nach der Operation wurden mit GRA-3 sensibilisiert unter Erhalt von Killerzeller-Zubereitungen.
PBL (5x10 ) von den Patienten wurde in RPMI-1640-Medium,
, enthaltent 50 ng/ml (Proteingehalt) von lRA-3 währen 2 Tagen
inkubiert und dann inkubierte man in RPMI-1640-Medium, enthaltend
20 % TCGF und 15 % FCS weitere 5 Tage unter Erhalt
der Killerzellen, die in Tabelle 5'gezeigt werden.
BAD ORIGINAL
3236298 | |
H4
- 38 - |
|
Tabelle 5 |
10
Krebs
Magenkrebs Magenkrebs Brustkrebs Brustkrebs Brustkrebs Magenkrebs
P-GRA D-GRA Tage nach der Killerzellen Operation
14 | GRA-3-K-T-1 |
35 | GRA-3-K-T-2 |
21 | GRA-3-K-T-3 |
7 | GRA-3-K-T-4 |
35 | GRA-3-K-T-5 |
21 | GRA-3-K-T-6 |
In der obigen Tabelle bduetet P-GRA und D-GRA die
Lokalität von GRA, ausgedrückt als Maligne-Gewebe (durch Operation entnommen) von Krebspatienten, von denen
PBL in gleicher Weise gesammelt worden war, wie im Referenzbeispiel
1, 2-(b). P-GRA und D-GRA wurden erhalten unter Verwendung von FITC-PNA bzw. FITC-DBA. Die Tage
nach der Operation geben die Zeit an, wann BPL nach der Operation gesammelt worden war.
(b) PBL (5x10 ), gesammelt von Brustkrebspatienten 21 Tage nach der Operation wurde in RPMI-1640-Medium, enthaltend
50 ng/ml (Proteingehalt) GRA-3 und 10 % Serum von den
Patienten während 7 Tagen inkubiert, um das PBL zu sensibilisieren und unter Erhalt von Killerzellen-Zubereitungen.
^Diese werden nachfolgend als GRA-3-K-T-7 bezeichnet.
30
35
- 26 -
(i) GRA-M-1, erhalten gemäss Referenzbeispiel
2(2b) wurde mit physiologischer Kochsalzlösung so verdünnt, dass der Gehalt an Zucker 1,0 ug/ml und an
Protein 1,6 μg/ml betrug. Auf diese Weise erhielt man
ein Anti-Krebsmittel Nr. 1.
(ii) Ein Krebsgewebe von C3H/He spontan auftretendem
Brustkrebs wurde steril zu einem 5 mm kubischen Klumpen geschnitten und unter die Rückenhaut von
jeweils 10 C3H/He-Mäusen des gleichen Stammes wie oben (7 Wochen alt, männlich) transplantiert. 7 Tage
nach der Transplantation wurde die Fixierung und Multiplizierung des Krebses bestätigt. 5 dieser Mäuse
erhielten subkutan das gemäss (i) hergestellte Anti-Krebsmittel Nr. 1 in einer Dosis von 300 μΙ/Tag in
2-tägigem Abstand. Die restlichen 5 Mäuse wurden als unbehandelte Kontrolle verwendet. 10 Tage nach der
ersten Verabreichung wurde der Tumor operativ entfernt und dessen mittleres Gewicht gemessen. Gleichzeitig
wurde eine pathohistologische Untersuchung durchgeführt.
Tumgrvolumen
25 behandelte Gruppe: 22,3 mm3 (Fig.14) Kontrolle: 162,7 mm3 (Fig.15)
Dies bedeutet, dass der Tumor um 86f3 % zurückging.
30
In der Kontrollgruppe (Fig.16) wurden vogelnestähnli
che Krebskörper gebildet, wobei die Art des Gewebes
einem markähnlichen kanalförmigen Krebs entsprach und
eine Verfielfachung der Krebszellen über das Gesamtgewebe festgestellt wurde. Andererseits verursachten
bei der Gruppe, die mit dem Mittel behandelt wurde )(Fig.17) die Krebszellen eine Verflüssigungsnecrosis
an den Stellen, wo sich die Krebszellen gebildet hatten
. und eine Verkalkung und . Firosis wurden festgestellt, wobei nur eine sehr geringe Menge
an Krebszellen zurückblieb. Dies bestätigte die Anti-TO Krebseigenschaften des erfindungsgemässen Anti-Krebsmittels,
GRA-1-K-T (1 μΐ), erhalten gemäss Beispiel 1, wurde
auf eine Mikroplatte (hergestellt von Falcon Corp.) gegeben und 15 Minuten bei Raumtemperatur stehen gelassen.
Dann wurden 4 μΐ FCS (hergestellt von Falcon
Corp.) zugegeben und die Mischung wurde 30 Minuten bei Raumtemperatur stehen gelassen. Neuraminidasebehandelte
rote Blutzellen von Schafen (SRBC ), eingestellt auf eine Anzahl von 1x10 /ml, und 5 μΐ eines
0,1M Phosphatpuffers (pH 7,2) zu dem 0,85 % NaCl zuge-
25 geben worden waren, wurden zugegeben und dann wurde
die Platte einer Zentrifugenabscheidung in einer Rate von 6.000 Upm während 5: Minuten unterworfen. Dann wurde
N die Platte umgedreht und nicht-umgesetzte SRBC wurde
entfernt. Eine Färbelösung (Brilliant Cresyl Blau, 30 hergestellt von Merck & Co.) wurde zum Färben der
Lymphocyten zugegeben und eine rosettenförmig ausgebildete
UH
Positivität wurde festgestellt. Wenigstens 98 % zeigten
die rosettenförmige Positivität (T-Zellen).
Testbeispiel 2
Aktivität
(a) Von den in Tabelle 1 gezeigten Krebszellen wurden die nachfolgenden 5 Zellstämme mit unterschied-
-liehen GRA-Positivitätsverhältnissen als zu bekämpfende
Human-Krebszellen verwendet:
15 Zu bekämpfende Krebszellen:
Nr. | 1 | BT-1 | (Burkitt Lymphoma) |
Nr. | 2 | Daudi | (Burkitt Lymphoma) |
Nr. | 3 | KATO-III | (Magenkrebs) |
Nr. | 4 | MKN-45 | (Magenkrebs) |
Nr. | 5 | MOLT | (T-Zellen Leukemia) |
Auf einer Mikroplatte (hergestellt von Falcon Corp.)
Δ.
wurden pro Vertiefung 5x10" der zu bekämpfenden Krebszellen
durch Zentrifugenabscheidung mit einer einer
Rate von 8.000 Upm während 5 Minuten aufgebracht.
Dann wurden vorsichtig 4 χ 10 pro Vertiefung des nach
Beispiel 1 erhaltenen GRA-1-K-T zugegeben und dann
wurde 1 Stunde inkubiert. 30
Die Abtötungsaktivität · wurde je nach dem'Grad der
BAD ORJGINAL
η m * *
Belagbildung festgestellt und wie folgt bewertet:
++ eine merkliche Abtötungsaktivität wird fest- -"- -
gestellt
5 + eine Abtötungsaktivität wird festgestellt
+ eine geringe Abtötungsaktivität wird feststellt
eine Abtötungsaktivität kann nicht festgestellt werden.
10
10
In einer Kontrollgruppe wurden unsensibilisierte humane
periphere Blutlymphocyten, die in gleicher Weise wie
in Beispiel 1 hergestellt worden waren, jedoch ohne Verwendung von GRA, verwendet. Die Ergebnisse werden in
Tabelle 6 gezeigt.
Aus Tabelle 6 geht hervor, dass die erfindungsgemäss
gebildeten Killer-T-Zellen eine starke GRA-spezifische
cytotoxische Aktivität aufweisen. 20
i Μ
Tabelle β
C t t C
t ι ί <
zu bekämpfende Krebszelle |
(Fig. | D | GRA-Positivver- hältnis (%) |
Beurteilung lagbildung |
der Be- | |
GRA-1-K-T- | Daudi | : (Fig. | 3) | 93r1 | ++ (Fig. | 2) |
Gruppe | KATO-IIΊ | (Fig. | 5) | 57,3 | + (Fig. | 4) |
BT-1 | (Fig- | 7) | 50,1 | ++ (Fig. | 6) | |
MKN-45 | (Fig. | 9) | 1,0 | + (Fig. | 8) | |
MOLT | 0,6 | - (Fig.1 | 0) | |||
Kontroll gruppe |
BT-1 | 50,1 | - (Fig.1 | 1) |
er
ro
co
CD K)
CD
CO
- 44 -
(b)
Die gleichen zu bekämpfenden Krebszellen, wie
sie in (a) verwendet wurden (3r2 χ 10 ) wurden mit
8 χ 105 GRA-1-K-T (Zellverhältnis 5/1) vermischt und
das gebildete Zellgemisch (Gesamtanzahl 4 χ 10 ) wurde in einem 15 % FCS enthaltenden RPMI-1640-Medium kultiviert.
Nach 1 Stunde wurde die Anzahl der verbliebenen Zellen gezählt und das Inhibierungsverhältnis wurde
geitiäss folgender Gleichen errechnet:
Cytotoxizität (%) =
Anzahl der Zellen (1 - (nach der Kultivierung
Anzahl der Zellen vor der Kultivierung (4 χ 106)
Die Ergebnisse werden in Tabelle 7 gezeigt.
HS
- 45. -
zu bekämpfen de Zellen |
Anzahl vor der Kul tivierung |
106 | der Zellen nach der Kul tivierung |
X 106 | "Cyto- :toxi zität (%) j |
Daudi | 4 χ | 106 | 2,9 | χ 106 | 28 |
KATO-III | 4 χ | 106 | 3,7 | χ 106 | 7,5 |
BT-1 | 4 χ | 106 | 3,2 | χ 106 | 20 |
MKN-45 | 4 χ | 106 | 3,9 | χ 106 | 2,5 |
MOLT | 4 χ | 4,2 | —5 |
(c) Das Verfahren von (b) wurde wiederholt mit der Ausnahme, dass das Mischverhältnis von GRA-1-K-T:.
zu den zu bekämpfenden Krebszellen auf 5/3 verändert wurde. Die Ergebnisse werden in Tabelle 4 gezeigt.
zu bekämpfen de Zellen |
Anzahl vor der Kul tivierung |
X | 106 | der Zellen nach der Kul tivierung |
χ 106 | Cyto- toxizität . (%) |
Daudi | 4 | X | 106 | 3,6 | χ 106 | 91 |
KATO-III | 4 | X | 106 | 3,6 | χ 106 | .24 |
BT-1 | 4 | X | 106 | 1,4 | χ 106 | 65 |
MKN-45 | 4 | X | 106 | 3,7 | χ 106 | ,7,2 |
MOLT | 4 | 4,1 | -3 |
BAD ORIGINAL
C3H/He-spontan brustkrebsige Mäuse erhielten subkutan GRA-M-I-KT-, erhalten gemäss Beispiel 2, in einer Dosis
von 2 χ 10 /0,3 ml Mais 3-mal wöchentlich jeden zweiten Tag. Nach 10 Tagen wurde der Fokus herausgenommen und
untersucht. Bei diesem Versuch stellt man fest, dass GRA-1-K-T eine hohe Bindungsaktivität gegenüber Daudi,
KATO-III und BT-1, aber nur eine niedrige Bindungsaktivitat
gegenüber MKN-45 und MOLT zeigt.
Wie in Fig. 12 gezeigt wird, fand eine Infiltration von Lymphocyten in die Krebszellen statt und ein Aufbrechen
des Tumorbereiches wurde festgestellt. Aus .jn; Fig. 13 geht hervor, dass eine Kalzifizierung der Tumorfläche
stattgefunden hat und daraus kann man sehen, dass die erfindungsgemässen Krebszellen eine Antitumoraktivität
aufweisen.
In diesem Beispiel wurden Krebszellen per se als spezifische
Antigene anstelle von GRA für das Verfahren gemäss der Erfindung verwendet.
Krebszellen-sensibilisierte Lymphocyten wurden in gleicher Weise wie in Beispiel 1 erhalten, wobei jedoch
anstelle von GRA, BT-1, Daudi, KATO-III oder MKN-45 in einer Menge von 1x10 pro Laborschale verwendet
wurden.
Mit diesen Lymphocyten wurde die 'äytotoxische
35
Aktivität in gleicher Weise wie im Testbeispiel 2(a) untersucht und die Ergebnisse werden in Tabelle 9
gezeigt.
Aus Tabelle 9 geht hervor, dass die oben hergestellten
Lymphocyten keine cytotoxische Aktivität aufweisen.
zu bekämpfende Zelle
BT-1 Daudi KATO-III MKN-45
Zellen, die für die Sensibilisierung von Lymphocyten verwendet wurden
BT-1 Daudi KATO-III MKN-45
In gleicher Weise wie im Testbeispiel 2-(b) wurde die
krebszellenabtötende Aktivität von GRA-(-K-T, GRA-3-A-K-T und GRA-3-C-K-T, erhalten in Beispiel 4, bestimmt. Die
Ergebnisse werden in Tabelle 10 gezeigt.
BAD ORIGINAL
Zelle
Tabelle 1O
% Cytotoxizität
GRA-8-K-T
GRA-3-A-K-T
GRA-3-C-K-T
KATO-III | 8,0 |
BT-1 | 4,3 |
MKN-45 | 20 |
MOLT | 0 |
5,0 5,0 5,0 0
5,0 4,0 20 0
(a) Die Cytotoxizität der KillerzeIlen-Zubereitungen, erhalten
gemäss Beispiel 6 wurde mittels eines Cr-Färbetests (J. Immunol., 122, 2527-2533 (1979)) bestimmt. Dazu
51
wurden 50 \xC± radioaktives Cr (Japan Isotope Association)
wurden 50 \xC± radioaktives Cr (Japan Isotope Association)
7
zu KATO-III (2x10 ) gegeben und die Zellen wurden 1 h bei 37°C in RPMI-1640-Medium inkubiert und anschliessend durch
zu KATO-III (2x10 ) gegeben und die Zellen wurden 1 h bei 37°C in RPMI-1640-Medium inkubiert und anschliessend durch
51 Zentrifugieren gewaschen unter Erhalt von Cr-markierten
Target-Zellen. Die Killerzellen (Effektorzellen) (2x1O6)
wurden zu den Target-Zellen (1x10 ) gegeben (das Verhältnis E/T betrug 20/1) und die Mischung wurd 4 h bei 370C in
RPMI-1640-Medium inkubiert. Die überstehende Flüssigkeit
wurde durch Zentrifugieren gesammelt und die Radioaktivität wurde durch einen Flüssigsintillator gezählt.
Die spezifische Cr-Freigabe (%),die der cytolytischen Aktivitat
der Effektorzellen entspricht, wurde nach folgender Gleichung bestimmt:
Spezifische CR-Freigabe (%)
(Freigabe im Versuch ) - (Spontane Freigabe)
(Maximale Freigabe)
- (Spontane Freigabe)
χ 100
5ft
Die maximale Freigabe geigt die Radioaktivität wenn
alle Zellen aufgelöst sind,
Bi@ !rgebnisse wenden in Tabelle 11 gezeigt;
Killeszellen | Spezifische Freigabe |
51Cj: (%) | |
SSA-1-K-T-1 | 13 |
eiA-I=K=T=2 | 25 |
6SA-I=K=T=S | 22 |
6SÄ-1-K-T-4 | 20 |
@SA=1=K=T=5 | 22 |
ßBA-1-Κ-ϊ-β | 25 |
SSA-1-K-T-7 | 2? |
6SA-1-K-T-8 | 32 |
den lä?gebnis§en in Tabelle 11 ist ea-kennbaa? ? dass
und FSi keine Beziehung auf die Induzienang dear
llen haben.
(te) CytetexiBitSt von- grä=2=K=t erhalten in Beispiel 3
in gleieheif weise wie in (a) oben mittels des Ca?·
F3?eifäbetes-feeg bestimait» Sie speaifisehe
betrüg 14,3 % bei einea 1 Ci-aarkierten.ΚΑϊΟ-III als
(l/T =
(a) Unter Verwendung von KATO-III (E/T = 20/1) wurde die
Cytotoxizität von Killerzellen, erhalten gemäss Beispiel 7-(a) in gleicher Weise wie im Testbeispiel 2-(b) bestimmt.
Die erzielten Ergebnisse sind in Tabelle 12 gezeigt:
Tabelle 12 | C •i |
|
Killer-Zellen | ||
GRA-3-K-T-1 | ||
GRA-3-K-T-2 | ||
GRA-3-K-T-3 | ||
GRA-3-K-T-4 | ||
GRA-3-K-T-5 | ||
GRA-3-K-T-6 | ||
I Cytotoxizität | ||
38,0 | ||
18,2 | ||
20,9 | ||
23,2 | ||
24,5 | ||
20,2 |
(b) Die Cytotoxizität von GRA-3-K-T-7, erhalten gemäss
51 Beispiel 7-(b) wurde unter Verwendung von Cr-KATO-Ii:
(E/T = 29/1) als Target-Zellen in gleicher Weise wie im
51 Testbeispiel 5 bestimmt. Die spezifische Cr-Freigabe
der Killerzellen betrug 25,5 %.
Die Cytotoxizität von Killerzellen, erhalten in Beispiel 5,
wurde mittels des Cr-Freigabetests in gleicher Weise wie im Testbeispiel 5 bestimmt. Die verwendeten Target-Zellen
waren Cr-markierte X5563-Zellen. Als Kontrolle wurden Lymphocyten, die in gleicher Weise wie in Beispiel 5 erhalten
worden waren mit der Ausnahme, dass die Sensibilisierung der Milzzellen durchgeführt worden war mit 1x10 /Well von
35 Mitomycin C-behandelten X5563-Zellen (5x106/ml von
■■'Si» ''-U
X5563-Zellen wurden mit 50 μg/ml Mitomycin C während
60 Minuten behandelt) anstelle von GRA-M-5, verwendet.
Die erzielten Ergebnisse werden in Tabelle 13 gezeigt:
Tabelle 13 | 40:1 | 20:1 1 | 0:1 | |
12,7 18,4 0,0 |
6,3 20,6 1 0,0 |
5,7 3,7 0,0 |
||
51 Spezifische - Cr-Freigabe (%) |
||||
Killerzellen | E/T-Verhältnis | |||
GRA-M-5-K-T-1 GRA-M-5-K-T-2 Kontrolle |
Testbeispiel 8 (H-2-Assay)
GRA-M-1, GRA-M-3 und GRA-M-4, erhalten gemäss Referenzbeispiel
2 wurden einer Serienverdünnung mit PBS (0,85 % NaCl) unterworfen, unter Erhalt von Proben.
Anti-H2-Serum vom National Institute o£>
Genetic Research und die obigen Proben wurden vermischt und bei 4°C 2 h
inkubiert und dann wurden Target-Zellen entsprechend dem verwendeten Anti-H-2-Serum zugegeben. Milzzellen oder
Lymphknotenzellen, erhalten aus B10 (H-2 ) und B10-BR (H-2k)
Mäusen nach üblichen Methoden wurden als Target-Zellen verwendet. Nach dem Waschen der Zellen mit PBS wurde Komplement
(Kaninchen) zu den Zellen zugegeben und die Zellen wurden 1 h bei 37°C inkubiert und mit 0,2 5Trypan-Blau-PBS angefärbt
zur Bestimmung der prozentualen Cytotoxizität. Das Anti-H-2-Serum wurde in einer Maximalverdünnung verwendet,
so dass es wenigstens 95 %ige Cytotoxizität bei Abewesen-
35 heit von GRA zeigte.»
ORIGINAL
Die Blockierungswirkung von GRA in den Systemen wird in Tabelle 14 gezeigt:
GRA | Anti-H-2 | Serum, Konzentration | X80 X300 |
Target-Zellen |
GRA-M-I | D-23 D-32 |
fAnti-H-2Kk), or , (Anti-H-2DK), |
X600 X80 |
BlOBR (H-2k) Milzzellen |
GRA-M-3 | D-33 D-2 |
(Anti-H-2Kb), oderK (Anti-H-2D ), |
X80 X300 |
BIO (H-2bl Milzzellen |
GRA -M-4 | D-23 D-32 |
> oder • |
BlO-BR (h-2k) Lympnknotenzel-len |
Die Ergebnisse werden in Tabelle 15 gezeigt.
Table 15
Anti-H-2 | X2 | % | Cvtotoxizität | X4 | X8 X16 X32 | X64 | X128 | X256 | X512 | 0 | * | |
Serum | - | Verdünnung der Probe | 13 | 14 12 13 | 14 | 13 | 14 | 13 | 14 | 13 | ||
GRA | - | - | 97 | 99 96 97 | 97 | 96 | 97 | 96 | 96 | 14 | ||
I | D-23 | - | 95 | 95 95 95 | 94 | 95 | 95 | 96 | 95 | 13 | ||
D-32 | - | 19 | 15 14 12 | 15 | 12 | 11 | 12 | 13 | 14 | |||
. - | - | 98 | 98 99 99 | 98 | 99 | 99 | 99 | 99 | 15 | |||
II | D-33 | - | 95 | 96 95 95 | 97 | 95 | 97 | 95 | 95 | 17 | ||
D-2 | 100 | 100 | 100 100 | - | - | - | - | 100 | 10 | |||
D-23 | 99 | 99 | 99 99 | - | - | - | - | 99 | 10 | |||
III | D32 | GRA | I : | GRA-M-I | ||||||||
Anmerkung -. | GRA | II : | GRA-M-3 | |||||||||
GRA | III: | GRA-M-4 | ||||||||||
• | ||||||||||||
m*m bedeutet % Cytotoxizität, wenn-nur-—-^
Komplement verwendet wurde.
Aus den Ergebnissen in Tabelle 15 kann man entnehmen,
dass GRA-M-1, GRA-M-3 und GRA-M-4 keine H-2 haben.
Testbeispiel 9 5
C57BL/6 Mäusen wurde unter S.C. LLC (2x10 ) des gleichen
Stammes transplantiert und nach 6 Tagen wurde 1ng (Protein)
GRA-M-3, erhalten gemäss Referenzbeispiel 2-(d), subkutan verabreicht. Diese Verabreichung wurde einmal täglich in
gleicher Dosierung an 4 Tagen wiederholt. Am Tage nach der
letzten Verabreichung wurden die Tumorzellen herausgeschnitten und gewogen. Zur Kontrolle wurden Tiere verwendet,
denen nur physiologische Kochsalzlösung verabreicht worden war. Jede Testgruppe bestand aus 5 Tieren.
Als Ergebnis stellte man fest, dass das durchschnittliche Krebsgewicht bei der Kontrollgruppe etwa 500 mg war. Bei
der GRA-M-3-behandelten Gruppe zeigten 3 ein Verschwinden
der Tumore und zwei zeigten ein durchschnittliches Tumor-
20 gewicht von 100 mg.
C57BL/6-Mäuse wurden subkutan mit 1 ng ,(Protein) GRA-M-3,
erhalten in Referenzbeispiel 2(d),einmal täglich während
3 Tagen immunisiert und am 5. Tag wurden Milzzellen von den Tieren zur Gewinnung von Effektor-Zellen gesammelt.
Eine Mischung der Effektorzellen und von Lewis-Lungencarcinom
(LLC) als Target-Zellen in einem Verhältnis von E/T = 50/1 wurde hergestellt und ein Teil (1x10 ) davon wurde in Mäusen
des gleichen Stammes transplantiert und eine Winn-Assay
wurde durchgeführt (J. Immunol. 86, S. 228-239 (1961)).
' Die erzielten Ergebnisse werden in Tabelle 16 gezeigt.
35
BAD ORIGINAL
Tabelle | 16 | 5,5 | 17 Tag 18 | Tag | Krebses | (%) | Tag 20 Msrtali- | |
Effektor | Wachstumsgeschwindigkeit des | 39,5 | 5,7 | 3,1 | 19 Tag | 20 | tät / f ruppe | |
zellen | Tag 15 Tag | 65,1 | 37,1 | 55,4 | 1, | 4 | 0/10 | |
A | 5,7 | : Gruppe A | 61,7 | 98,1 | 76, | 8 | 4/10 | |
B- | 21,4 | sind die I | 96, | 4 | 4/10 | |||
C | 39,3 | ylilzzellen | von | GRA-M-3-immu- | ||||
Anmerkung | ||||||||
nen Mäusen;
Gruppe B sind die Milzzellen ναι normalen Mäusen;
Gruppe C sind die Milzzellen von Mäusen,
10 Tage nach der Transplantation von LLC(1x10 );
Die Krebswachstumsrate wurde nach folgender Gleichung berechnet:
Krebswachstumsrate (%) =
m _ m
1A 1N
T N
χ 100
dabei bedeutet T. die Dicke der Fussohle an der Seite wo der Krebsrfcranplantiert war und Ύ die
Dicke einer normalen Fussohle.
C3H/He Mäuse wurden mit 4,5 μg (Protein) GRA-M-4, erhalten
in Referenzbeispiel 2-(d) und 0,1 ml Freund 's Complete
Adjuvant sacrococcygeal immunisiert. Nach 2 Wochen wurden Lymphknotenzellen in üblicher Weise gesammelt und als
Responder-Zellen für die Bestimmung der proliferativen Ansprechung durch GRA-M-4 verwendet.
- 55 -
Zu diesem Zweck wurden Responder-ZeIlen (4x10 ) mit RPMI-1640-Medium,
enthaltend 15 % FCS in Gegenwart von GRA-M-4 während 5 Tagen inkubiert. Während der letzten 18 Stunden der In-
3 3
kubierungszeit wurde l\iCx von H-Thymidine ( H-TdR) zu dem
Medium zugegeben und die Inkorporation in die Zellen wurde
gezählt.
Die Ergebnisse sind in Tabelle 17 gezeigt.
GRA-M-R
Konzentra- 3-H-TdR-Inkorporation tion (ng/ml) (Mittel cpm + Standardirrtum)
S.I.
Kontrolle
Versuch
0,5
5
20
40
20
40
5.302 _+ 1.761
7.903 _+ 1.290
10.076 ± 936
10.686 + 429
10.615 jf 1.270
8.565 + 1.419
1,5 1,9 2,0 2,0
Anmerkung: 11S.I." ist der Stimulierungsindex, ausgedrückt
durch Experiment/Kontrolle 25
Die verzögerte Hypersensibilisierung (DTH)-Ansprechung von C3H/HE-Normalmäsuen, X5563-Immunmäusen und MH134-Immunmausen,
erhalten in gleicher Weise wie in Beispiel 5, und von GRA-M-4-Immunmäusen und GRA-M-5-Immunmäusen, erhalten
in gleicher Weise wie im Testbeispiel 11, wurde durch die
■■ Fussohlen-Reaktion (FPR) bestimmt. Dazu wurden GRA- oder
MMC-behandelte Tumorzellen in die Haut der Fussohle im
BAD ORIGINAL
53
Hinterbein der Tiere eingegeben und das Anschwellen der Fusssohle 24 h nach der Behandlung wurde festgestellt. Die
DTH-Ansprechung wurde berechnet, indem man die Anschwellung
vor der Behandlung von der nach der Behandlung (10 mm)
abzog.
Die erzielten Ergebnisse werden in Tabellen 18 gezeigt.
_2
Mittleres Fussohlenanwachsen (10 mm)
Versuch Normalmäuse MH134 Immunmäuse
1 | 2,8 | 13,6 |
2 | 12,4 | 32,0 |
3 | 3,6 | 3,6 |
4 | 3,2 | 22.0 |
5 | 6,8 | 27,6 |
Anmerkung: Gruppe 1: Syngenische normale Milz 1x10 /2ü μΐ-
Medium (Hanks-Lösung)
Gruppe 2: MH134-Zellen 1x106/20 μΐ Medium
Gruppe 3: Medium 20 μΐ
Gruppe 4: GRA-M-4, 0,8 μg (Protein)/20 μΐ Medium
Gruppe 5: GRA-M-4, 0,4 μ9 »
1*0
Tabelle 19 | 2 Fussohlenawacfesen (10 mm) |
MH13 4 Immunmaus | |
Mittleres | X 5 5 6 3-Immunmaus | 1/1 24,3 |
|
Versuch | Normalmaus | 4,3 16,9 |
|
1 2 3 |
5,4 0,9 2,0 |
||
10 Anmerkung: Gruppe 1; Medium (Hanks-Lösung) 20μ1
Gruppe 2; GRA-M-4, 4 ug (Protein)/20 μΐ Medium
Gruppe 3; GRA-M-5, "
Tabelle 20 | GRA-M-4-Immunmaus | |
-0,3 24,6 |
||
Versuch | _2 Mittleres Fussohlenanwachsen (10 mm) |
|
1 2 |
Normalmaus | |
1/7 5,1 |
Anmerkung: Gruppe 1; Medium (Hanks-Lösung 20 μΐ
Gruppe 2; GRA-M-4, 4 μg (Protein)/20 μΐ Medium
Tabelle | 21 | |
Mittleres | Fussohlenanwachsen (10 mm) | |
Versuch | Normalmaus | GRA-M-4-Immunmaus |
1 2 3 |
-1,8 6,3 6,8 |
0,6 20,0 6,3 |
Amerkung: Gruppe 1; Medium (Hanks-Lösung) 20 11
Gruppe 2; GRA-M-4, 4 μg (Protein)/ 20 μΐ Medium
BAD ORIGINAL
<o4
88 -
Gruppe 3; 4 μg (Protein)/ 20 μΐ Medium des
Teiles, der durch eine PNA-Säule zur Zeit von GRA-M-4 (nachfolgend "CP.")
hindur.chging
Tabelle 22 | GRA-M-4-Immunmaus | |
-1,0 | ||
Versuch | _2 Mittleres Fussohlenanwachsen (10 mm) |
17,7 |
1 | Normalmaus | 1,8 |
2 | 2,4 | 18,9 |
3 | 2,6 | |
4 | 2,4 | |
5,5 . |
Anmerkung: Gruppe 1; Medium( Hanks-Lösung 20 μΐ
Gruppe 2: GRA-M-4, 3,8 μΐη (Protein)/ 20 μΐ Medium
Gruppe 3: 3,8 μg (Protein)/20 μΐ von CP. (siehe
oben)
Gruppe 4: 3,8 μg (Protein) von GRA-M*-4 und 3,8 μg
(Protein)/ 20 μΐ Medium von CP.
25 Referenzversuch
X5563-Immunmäuse wurden in gleicher Weise wie in Beispiel 5 erhalten. Die Milzzellen dieser Immunmäuse wurden als Effek-.
torzellen verwendet und die Effektorzellen (10 ) und die
Target-ZeIlen (X5563, 10 ) wurden zusammen auf Mäusen des
gleichen Stammes transplantiert. Dann wurde eine Winn-Assay
in gleicher Weise wie im Testbeispiel 10 durchgeführt.
Die erzielten Ergebnisse werden in Fig. 23 gezeigt, in
welcher die Abszisse die Tage und die Koordinate die mittlere Krebsgrösse (cm2) +_ Standardirrtum anzeigt, und in welcher
die verschiedenen Markierungen folgende Bedeutung haben:
9 · : Gruppe,zu welcher keine Effektor-Zellen gegeben ft
wurden;
ο ο : Gruppe, zu welcher nicht-behandelte Effektor-Zellen
^gegeben wurden;
a A '' Gruppe, zu welcher Effektor zellen, die mit. Kaninchen-Komplement
behandelt worden waren, gegeben wurden;
x χ : Gruppe, zu welcher Effektor-Zellen, die mit Anti-
Thy 1 (New England Nuclear Co., USA) behandelt worden waren, und zu der Kaninchen-Komplement gegeben
wurde;
D '" D: Gruppe, zu der Effektorzellen, die mit Anti-Lyt
(New England Nuclear Co., USA) behandelt worden waren, und zu der Kaninchen-Komplement gegeben
wurde;
B 1: Gruppe, zu der Effektor-Zellen, die mit Anti-Lyt
(New England Nuclear Co., USA) behandelt und zu der Kaninchen-Komplement gegeben wurde.
Aus den Ergebnissen von Fig. 23 wird ersichtlich, dass y
Lyt 1 Typ T-Zellen eine wichtige Rolle in dem Mechanismus
des in vivo Effektes bei der Tumorimmunitat spielen.
Weiterhin ist es bekannt, dass die DTH-Ansprechung durch
Lyt-1 T-Zellen (J. Exp.Med. 143, S. 1543-39 (1976)) hervorgerufen
wird.
Leerseite
Claims (2)
1. Krebszellen-cytotoxische Lymphocyten, die spezifisch
gegenüber einem von Krebszellen abgeleiteten glykoverwandten Antigen sind.
•5
2. Lymphocyten gemäss Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass man sie durch Sensibilisieruna
von Lymphocyten mit dem von Krebszellen abgeleiteten glykoverwandten Antigen hergestellt hat.
TO 3. 'Lymphocyten gemäss Ansprüchen 1 oder 2, dadurch er e kennzeichnet,
dass das glykoverwandte Antigen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich
mit einem Lektin, das sich spezifisch mit endständiger Galaktose oder N-Acetylgalaktosamin verbindet, kom-
T5 biniert.
4. Lymphocyten gemäss Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass das glykoverwandte Antigen eine
Krebszellenmembrankoinponente ist, die sich mit einem Lektin, das sich spezifisch mit endständiger Galaktose
5 verbindet, kombiniert.
5. Lymphocyten gemäss Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte Antigen eine
Krebszellenmembrankomponente ist, die sich mit einem mit endständigen N-Acetylgalaktosamin spezifisch bindendem
Lektin kombiniert.
6. Verfahren zur Herstellung von Krebszellen-cycotoxischen Lymphocyten, dadurch gekennzeichnet ,
dass man Lymphocyten mit einem von Krebszellen abgeleiteten glykoverwandten Antigen sensibilisiert.
7. Verfahren gemäss Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte Antigen
eine Krebszellenmembrankomponente ist, welche sich mit
einem Lektin, das sich spezifisch mit endständiger Galaktose oder N-Acetylgalaktosamin verbindet, kombiniert.
8. Verfahren gemäss Anspruch 6, dadurch g e k e η η -
zeichnet/ dass das glykoverwandte Antigen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich mit einem
spezifisch mit endständiger Galaktose verbindendem Lektin kombiniert.
9. Verfahren gemäss·Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, dass das glykoverwandte Antigen
eine Krebszellenmembrankomponente ist, welche sich mit einem Lektin, das sich spezifisch mit endständigem N-Acetylgalaktosamin
verbindet, kombiniert.
BAD ORIGINAL
-Β
ΙΟ. Anti-Krebsmittel, enthaltend als aktiven Bestandteil
Krebszellen inhibierende Lymphocyten, die spezifisch
gegenüber einem von Krebszellen abgeleiteten glykoverwandten Antigen sind.
5
5
11. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet , dass die Krebszellen-cytototoxischen
Lymphocyten erhalten wurden durch Sensibilisierung von Lymphocyten mit einem von Krebszellen
10 abgeleiteten glykoverwandten Antigen.
12. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 10 oder 11, dadurch
gekennzeichnet , dass das glykoverwandte Antigen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich
mit einem Lektin, das sich spezifisch mit endständiger
Galaktose oder N-Acetylgalaktosamin verbindet, kombiniert,
13. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte
20 Antigen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die
sich mit einem Lektin, das sich spezifisch mit einer
endständigen Galaktose verbindet, kombiniert.
14. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 12,· dadurch g e kennzeichnet,
dass das glykoverwandte Antigen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich mit einem Lektin, das sich spzeifisch mit endständigem
N-Acetylgalaktosamin verbindet, kombiniert.
15. Anti-Krebsmittel, enthaltend ein von Krebszellen abgeleitetes
glykoverwandtes Antigen als aktiven Bestandteil.
16. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte Antigen
eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich mit
einem Lektin, welches sich spezifisch mit endständiger Galaktose oder N-Acetylgalaktosamin verbindet, komibniert.
17. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte
Antigen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich mit einem Lektin, welches sich spezifisch mit endständiger
Galaktose verbindet, kombiniert.
18. Anti-Krebsmittel gemäss Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte Anti-
gen eine Krebszellenmembrankomponente ist, die sich mit einem Lektin7 welches sich spezifisch mit endständigem
N-Acetylgalaktosamin verbindet, kombiniert.
19. Verfahren zur Behandlung von Krebs, dadurch g e kennzeichnet,
dass man einen krebsigen
Patienten Krebszellen-cytotoxische Lymphocyten, die spezifisch gegenüber einem von Krebszellen abgeleiteten
glykoverwandten Antigen sind, oder ein Krebszellen-abgleitetes
glykoverwandtes Antigen verabreicht. 25
20. Glykoverwandtes Antigen, das aus einer Human-Krebszellenmembrankomponente
isoliert wurde, und das sich mit einem Lektin kombiniert, welches sich mit einer endständigen
Galaktose oder einem endständigen N-Acetylgalaktosamin
30 verbindet.
21. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet , dass das glykoverwandte
Antigen hergestellt wurde, indem man ein glykoverwandtes " Antigen aus Human-Krebszellenmembrankomponente mit einem
BAD ORIGINAL
Lektin isoliert, welches sich spezifisch mit endständiger Galaktose oder einem endständigen N-Acetylgalaktosamin
verbindet.
22. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 21, dadurch
gekennzeichnet , dass das Lektin sich spezifisch mit einer endständigen Galaktose verbindet.
23. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 22, dadurch geke"nnzeichnet, dass das. Lektin Erdnusslektin,
Ricinus communis-Lektin oder Sojabohennlektin
ist.
24. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 23, dadurch gekennzeichnet, dass das Lektin Erdnuss
lektin ist.
25. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 21, dadurch gekennzeichnet , dass das Lektin sich
spezifisch mit einem endständigen N-Acetylgalaktosamin
verbindet.
26. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 25, dadurch ·
gekennzeichnet , dass das Lektin ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Dolichosbohnenagglutinin,
"braid orange"-Lektin, Helix pomatia-Lektin, Limabohnenlektin, Sojabohnenlektin und Bauhiniabohnenlektin.
27. Glykoverwandtes Antigen gemäss Anspruch 26, dadurch gekennzeichnet , dass das Lektin Dolichosbohncriagglutinin
ist.
28. Glykoverwandtes Antigen hergestellt durch Isolieren
eines glykoverwandten Antigens aus Human-Krebszellenmembrankomponente
zunächst mit einen ersten Lektin, das sich spezifisch mit endständiger Galaktose verbindet
und dann mit einem zweiten Lektin, welches sich spezifisch mit einem endständigen N-Acetylgalaktosamin verbindet.
29. Glykoverandtes Antigen gemäss Anspruch 28, dadurch
gekennzeichnet , dass das erste Lektin Erdnusslektin und das zweite Lektin Dolichosbohnenagglutinin
ist.
30. Verfahren zur Herstellung eines glykoverwandten Antigens, dadurch gekennzeichnet , dass man ein
glykoverwandtes Antigen, das sich mit einem Lektin, welches sich spezifisch mit endständiger Galaktose oder
endständigem N-Acetylgalaktosamin verbindet, kombiniert, isoliert.
31. Verfahren gemäss Anspruch 30, dadurch gekennzeichnet , dass man ein glykoverwandtes Antigen
aus Human-Krebszellenmembrankomponente mit einem Lektin, das sich spezifisch mit endständiger Galaktose
oder endständigem N-Acetylgalaktosamin kombiniert,
25 isoliert.
32. Verfahren gemäss Anspruch 31, dadurch gekennzeichnet , dass das Lektin ein solches ist, das
sich spezifisch mit endständiger Galaktose kombiniert.
33. Verfahren gemäss Anpsruch 31, dadurch gekennzeichnet , dass das Lektin ein solches ist,
das sich spezifisch mit endständigem N-Acetylgalaktos-
' amin kombiniert. 35
BAD ORIGINAL
34. Verfahren zur Herstellung von glykoverwandtem Antigen,
dadurch gekennzeichnet , dass man ein glykoverwandtes Antigen aus Human-Krebszellenmembrankomponente
isoliert, und zwar zuerst mit einem ersten Lektin, das sich spezifisch mit endständiger Galaktose
verbindet, und dann mit einem zweiten Lektin, das sich spezifisch mit einem endständigen N-Acetylgalaktosamin
verbindet.
35. Verfahren gemäss Anspruch 32, dadurch gekennzeichnet , dass das erste Lektin Erdnusslektin
und das zweite Lektin Dolichosbohnenagglutinin ist.
Applications Claiming Priority (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP56156413A JPS5857318A (ja) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | 癌細胞障害性リンパ球の製造法 |
JP15641481A JPS5857321A (ja) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | 抗癌剤 |
JP56158472A JPS5859922A (ja) | 1981-10-05 | 1981-10-05 | 癌細胞障害性リンパ球 |
JP56158473A JPS5859923A (ja) | 1981-10-05 | 1981-10-05 | 抗癌剤 |
JP57111168A JPS591420A (ja) | 1982-06-28 | 1982-06-28 | 糖鎖関連抗原およびその製造法 |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3236298A1 true DE3236298A1 (de) | 1984-03-15 |
DE3236298C2 DE3236298C2 (de) | 1987-09-24 |
Family
ID=27526479
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19823249568 Granted DE3249568A1 (de) | 1981-10-01 | 1982-09-30 | Glykoverwandtes antigen, verfahren zu dessen herstellung und dessen verwendung zur bekaempfung von krebs |
DE19823236298 Granted DE3236298A1 (de) | 1981-10-01 | 1982-09-30 | Krebszellen bekaempfende lymphocyten, verfahren zu deren herstellung und anti-krebsmittel, welche die lymphocyten enthalten |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19823249568 Granted DE3249568A1 (de) | 1981-10-01 | 1982-09-30 | Glykoverwandtes antigen, verfahren zu dessen herstellung und dessen verwendung zur bekaempfung von krebs |
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