RU2375447C2 - СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХОНДРО-ОСТЕОГЕННЫХ КЛЕТОК in vitro ИЗ МЕЗЕНХИМНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ - Google Patents
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХОНДРО-ОСТЕОГЕННЫХ КЛЕТОК in vitro ИЗ МЕЗЕНХИМНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ Download PDFInfo
- Publication number
- RU2375447C2 RU2375447C2 RU2006145431/13A RU2006145431A RU2375447C2 RU 2375447 C2 RU2375447 C2 RU 2375447C2 RU 2006145431/13 A RU2006145431/13 A RU 2006145431/13A RU 2006145431 A RU2006145431 A RU 2006145431A RU 2375447 C2 RU2375447 C2 RU 2375447C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- chondro
- human
- collagen
- tgf
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0655—Chondrocytes; Cartilage
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- A61K38/18—Growth factors; Growth regulators
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- A61K38/18—Growth factors; Growth regulators
- A61K38/1841—Transforming growth factor [TGF]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- A61K38/39—Connective tissue peptides, e.g. collagen, elastin, laminin, fibronectin, vitronectin, cold insoluble globulin [CIG]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/02—Inorganic materials
- A61L27/12—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3804—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
- A61L27/3817—Cartilage-forming cells, e.g. pre-chondrocytes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3804—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
- A61L27/3821—Bone-forming cells, e.g. osteoblasts, osteocytes, osteoprogenitor cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3839—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by the site of application in the body
- A61L27/3843—Connective tissue
- A61L27/3847—Bones
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3839—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by the site of application in the body
- A61L27/3843—Connective tissue
- A61L27/3852—Cartilage, e.g. meniscus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3895—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells using specific culture conditions, e.g. stimulating differentiation of stem cells, pulsatile flow conditions
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
- A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0654—Osteocytes, Osteoblasts, Odontocytes; Bones, Teeth
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/10—Growth factors
- C12N2501/15—Transforming growth factor beta (TGF-β)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
- C12N2533/50—Proteins
- C12N2533/54—Collagen; Gelatin
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Botany (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Physical Education & Sports Medicine (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способу получения хондро-остеогенных клеток in vitro и их применению. Хондро-остеогенные клетки получают из мезенхимных стволовых клеток человека. Мезенхимные стволовые клетки человека культивируют в среде с добавками сыворотки крови человека и бета-1 трансформирующего фактора роста, имеющего молекулярный домен, обеспечивающий взаимодействие с коллагеном I (TGF-β1-CBD). Затем стволовые клетки подвергают последующей пролиферации путем дополнения сыворотки крови человека и TGF-β1-CBD. В заключение проводят хондро-остеогенную индукцию дексаметазоном и β-глицерофосфатом. Хондро-остеогенные клетки могут быть использованы в составе композиции, способной индуцировать остеогенез. Данное изобретение позволяет изготовлять лечебные средства для восстановления костной и/или хрящевой ткани. 5 н. и 15 з.п. ф-лы, 3 ил., 3 табл.
Description
Область техники, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение относится к области биомедицинской промышленности, связанной с производством агентов, применяемых при репарации костного скелета, а именно при репарации хрящевой и костной ткани любой этиологии, при спинальной стабилизации или артродезе, остеосинтезе, протезировании при артропластике, при остеопорозе и т.д., а также любой другой производимой репарации или регенерации костной или хрящевой ткани и где дополнительное применение дифференцирующихся клеток эффективно помогает в достижении тканевой репарации.
Уровень техники
Регенерация тканей является сложным процессом, включающим в наивысшей своей точке самые разнообразные клетки, которые присутствовали в месте повреждения ранее или были привлечены туда позже. Все события, проистекающие в процессе репарации, определяются большим количеством взаимодействий между ростовыми факторами и цитокинами, клетками и молекулами, образующими внеклеточный матрикс.
В кости сосуществуют различные индукторы сигналов и факторы роста, включающие TGF-β, PDGF, различные BMP, IGF и FGF (Becerra et al., Med. Clin. 116: 23-24 (2001)). Из них остеоиндуцирующими являются только BMP; однако все они участвуют в репарации фрактуры (Reddi, Nature Medicine 3: 837-839 (1998); Groeneveld and Burger, Eur. J. Endocrinol. 142:9-21 (2000)). В кости имеются также предшественники остеогенных клеток, отвечающие на стимулы фрактуры, активируя и продуцируя BMP, которые в свою очередь индуцируют миграцию мезенхимных стволовых клеток (МСК), пролиферирующих и дифференцирующихся в клетки, формирующие кость (Guerado et al., Rev. Ortop. Traumatol. 47, 362-374 (2003)). Однако понимание сложных взаимоотношений между мезенхимными стволовыми клетками и остеопрогениторными клетками-предшественниками с биохимическими сигналами, модулирующими их миграцию, пролиферацию и дифференциацию в остеогенную клеточную линию, до сих пор имеет существенные пробелы.
TGF-β - группа ростовых факторов, кодируемая семейством генов, экспрессированных во многих тканях и у многих видов (Kindsley, Genes Dev. 8: 133-146 (1994); Bostrom and Asnis, Clin. Orthop. Relat. R. 355S: 124-131 (1998)). Костная ткань была одной из первых тканей, где наблюдали местную продукцию TGF-β, обладающую способностью регулировать клеточные функции (Centrella et al., J. Bone Joint Surg. 73-A: 1418-1428 (1991)). Хотя тромбоциты являются основным источником TGF-β, костная ткань является наиболее существенным резервуаром этого фактора, в 100 раз большим, чем в других мягких тканях, где также имеются BMP (Roberts et al., Biochemistry 22: 5692-5698 (1983)).
В последние годы были получены существенные, иногда противоречивые результаты, когда TGF-β добавлялся к культуре остеобластных клеток. Его митогенное или остеоиндуцирующее или противоположное действие приписывали гетерогенности клеток в культуре, присутствию других ростовых факторов, плотности клеток, условиям культивирования или возможной двухфазности действия фактора (Noda et al., Endocrinology 124: 612-617 (1988); Stein and Lian, Cellular and Molecular Biology of Bone. San Diego: Academic Press 47-95 (1993)). В результате недавних исследований было обнаружено существование различных клеток-мишеней для TGF-β и BMP. Оказалось, что первые действуют на стволовые клетки, уже вовлеченные в остеогенную линию, тогда как BMP могут действовать на некомпетентные клетки (Ballok et al., J. Orthop.Res. 15:463-467 (1997)). В любом случае ясно, что МСК могут самообновляться и размножаться в присутствии TGF-β I (Andrades et al., Cells. Exp.Cell. Res. 250: 485-498 (1999)).
Недавно был разработан экспериментальный подход, позволяющий контролировать биодоступность TGF-β1 в культуре МСК, заключающийся в том, что популяцию клеток, выделенную из спинного мозга крысы, наращивают (амплификация) и для перевода в остеогенную линию подвергают индукции, культивируя в гелях из коллагена в присутствии модифицированного TGF-β1, имеющего молекулярный домен, обеспечивающий специфическое связывание фактора с коллагеном I. Было высказано предположение, что такой TGF-β1 имеет увеличенный срок жизни и более высокую биодоступность при действии на клетки-мишени, так как активный фактор постепенно высвобождается в гель из связанного с коллагеном состояния (Andrades et al., Cells. Exp. Cell. Res. 250: 485-498 (1999)).
Было показано, что способность костной ткани к регенерации с возрастом снижается. Если количество гематопоэтических клеток в костном мозге сохраняется постоянным в продолжение жизни, то количество МСК существенно снижается, кроме того, отмечается отсутствие остеоиндуцирующих факторов или неспособность клеток продуцировать их или отвечать на них (Haynesworth et al., Musculoskeletal Soft-Tissuue Aging: Impact on Mobility. Section 1, Chapter 7. Rosemont: AAOS, 80-86 (1994)). Поэтому заманчиво было бы разработать метод, позволяющий собирать МСК у тех индивидов, которые не обладают способностью к восстановлению костей, амплифицировать их in vitro и переводить в остеогенную линию клеток (процесс капаситации).
Затем обработанные клетки можно было бы доставлять туда, где требуется репарация скелета пациента, внося их в подходящий биологический материал; такой метод представлял бы собой разновидность аутоиммунной клеточной терапии, позволяющей эффективно восстанавливать потерянную или серьезно нарушенную остеорепаративную функцию. Такой метод позволил бы также избежать нежелательных последствий системного или местного введения биологически активных факторов путем непосредственного контроля за их распространением за пределы зоны репарации при возникновении трудностей, чтобы их плейотропные эффекты не мешали.
В любом случае, когда требуется консолидация двух или более костных фрагментов, трансплантацию капаситированных клеток следует делать в специальном микроокружении, стимулирующем остеогенез. Например, когда фрактура или неконсолидированный фокус (псевдоартроз) характеризуется гиперваскуляризацией и пролиферацией хондро-остеогенной ткани (не связывающий или гипертрофический псевдоартроз), простая, устойчивая нединамическая стабилизация фокуса с помощью интра- или экстрамедуллярных имплантов должна вызвать консолидацию. В таких случаях при подсадке капаситированных клеток к остеогенной линии на носитель из гидроксиапатита или коллагена после остеосинтеза получается стабильное гиперваскулярное ложе, являющееся идеальным микроокружением для развития остеогенного каллуса. В случаях же неконсолидированного или атрофического псевдоартроза фиброзная ткань между двумя фрагментами должна быть удалена, кости оставлены рядом друг с другом и должен быть обеспечен источник сосудистого кровоснабжения путем перфораций кости и обкладывания васкуляризованной тканью (как правило, мышечной). Оба фрагмента должны быть застабилизированы остеосинтезом при жестком соединении, предотвращающем подвижность в межкостном пространстве, так как в случае подвижности в этом пространстве соединение следует разрушить и предотвратить пролиферацию сосудистой ткани и тогда нужно будет стимулировать экспрессию химических медиаторов, приводящих к индукции хондрогенеза вместо остеоостеогенеза (Rüedi and Murphy, АО Principles of fracture management. Sttugart, Georg Thieme Verlag (2000); Browne et al., Skeletal Trauma, Basic Science, Management and Reconstruction. Philadelphia, Sounders (2003)).
Необходимо также разрабатывать методы, способствующие увеличению способности формирования костной массы у индивидов с остеопорозом, путем восстановления у этих пациентов нарушенного равновесия между костеобразованием и резорбцией, сдвинутого в сторону первого процесса. Системное введение in vitro капаситированных клеток в остеогенную линию позволит сбалансировать это равновесие.
Раскрытие изобретения
Настоящее изобретение направлено на приготовление агентов и композиционных препаратов, используемых в репарации костного скелета и более конкретно целей при репарации хрящевой и костной ткани, при остеопорозе, протезировании при артропластике и т.д., которые можно инъецировать in situ в небольшие несращенные фрактуры или в дефекты хряща, в общий кровоток индивидов с остеопорозом или можно адсорбировать в подходящем биологическом материале (коллаген, гидроксиапатит и т.д.) и имплантировать с целью стимуляции формирования хряща или кости в повреждениях небольшого размера. Более того, их можно адсорбировать в гидроксиапатите (периапатите), которым покрывают тазобедренные протезы, коленные артропласты с целью увеличения биологической интеграции таких протезов в тело хозяина, продлевая срок их службы. Эти препараты можно также использовать при спинальном артродезе для фиксации спины и улучшения эффективности процедур, выполняемых стандартными методами с аутологичными трансплантатами или препаратами из костного банка.
Первым аспектом данного изобретения является разработка метода ускоренного формирования кости и/или хряща у людей, нуждающихся в этом, путем введения мезенхимных стволовых клеток человека, дифференцированных в хондро-остеогенную линию посредством амплификации под воздействием сыворотки крови и бета-1 трансформирующего ростового фактора, получаемого в эукариотических эспрессирующих системах, соединенного с молекулярным доменом, способным связываться с коллагеном I (TGF-β1-CBD).
В предпочтительном воплощении данного изобретения введение этих капаситированных клеток выполняется путем инъекции in situ в систему кровообращения или с помощью имплантов, адсорбированных в подходящем материале, а наиболее предпочтительным воплощением является использование реабсорбируемого гидроксиапатита, с 50%-ной поровостью, диффузионными камерами коллагеновых гелей.
В предпочтительном воплощении данного изобретения индукцию МСК в хондро-остеогенную линию стимулировали с помощью глюкокортикоида. Предпочтительно использование дексаметазона. В наиболее предпочтительном воплощении изобретения эта индукция выполняется в присутствии дексаметазона и β-глицерофосфата.
В другом предпочтительном воплощении этого изобретения бета-1 трансформирующий фактор, соединенный с молекулярным доменом, способным связываться с коллагеном I (TGF-β1-CBD), экспрессировали в эукариотических экспрессирующих системах. Предпочтительным воплощением является экспрессия с использованием клеток насекомых, а наиболее предпочтительно использование клеток насекомых, трансфецированных бакуловирусами.
Вторым аспектом этого изобретения является процедура капаситации in vitro, представляющая собой получение из МСК человека хондро-остеогенных клеток, которая включает следующие стадии:
- первичное культивирование стволовых клеток в среде с добавками сыворотки крови человека и бета-1 трансформирующего фактора роста, соединенного с молекулярным доменом, способным связываться с коллагеном I (TGF-β1-CBD);
- последующая амплификация путем добавления в среду сыворотки крови человека и TGF-β1-CBD;
- индукция хондро- и остеогенеза дексаметазоном и β-глицерофосфатом.
МСК человека можно получать из различных тканей пациента с разным местоположением, а также из костного мозга, из пуповинной крови, периферической крови или из замороженных бластоцитов человека.
В предпочтительном воплощении процедуры капаситирования бета-1 трансформирующий фактор, соединенный с молекулярным доменом, способным связываться с коллагеном I (TGF-β1-CBD), экспрессировали в эукариотических экспрессирующих системах. Более предпочтительным воплощением является экспрессия с использованием клеток насекомых, а наиболее предпочтительно использование клеток насекомых, трансфецированных бакуловирусами.
В соответствии с другим предпочтительным воплощением первичное культивирование выполняют в геле из коллагена I типа.
В соответствии с другим предпочтительным воплощением выбор МСК костного мозга выполняется в культуре, с добавками к культуральной среде сыворотки крови человека в количестве от 0,1 до 1%, предпочтительно 0,5%.
В соответствии с предпочтительным воплощением амплификация осуществляется в течение периода от 1 до 25 дней, в это время культуральная среда восполняется добавкой сыворотки крови человека в количестве от 5 до 25%, предпочтительно 20%.
Третий аспект данного изобретения заключается в получении клеток с хондро-остеогенными свойствами, с помощью вышеупомянутой процедуры капаситирования, включающей отбор, амплификацию и хондро-остеогенную индукцию МСК.
Четвертым аспектом данного изобретения является использование клеток с хондро-остеогенными свойствами, получаемых с помощью вышеупомянутой процедуры капаситирования, для приготовления композиционных препаратов для репарации костной и/или хрящевой ткани у человека.
Пятым аспектом данного изобретения является получение композиционного препарата, способного индуцировать остеогенез и состоящего из биосовместимого и остеокондуктивного материала и клеток с хондро-остеогенными свойствами, получаемых с помощью вышеупомянутой процедуры капаситирования.
Краткое описание фигур
Фиг.1. - а) Клетки МО, культивированные in vitro в течение 10 дней в коллагеновом геле в присутствии rhTGF-β1-CBD. Видны несколько изолированных клеток. Клетки МО, культивированные в течение 35 дней в коллагеновом геле (b и с) в присутствии rhTGF-β1-CBD и индуцированные дексаметазоном и β-глицерофосфатом соответственно. Видны большая плотность клеток и несколько колоний из них. Увеличение ×60.
Фиг.2. - а) Показана радиография четырех диффузных камер после периода имплантации в подкожную ткань крысы. Различные плотности соответствуют различному качеству и количеству вновь образованной ткани. b) Показаны гистологические срезы камеры после периода имплантации, в которую были помещены клетки, культивированные в контрольных условиях, без rhTGF-β1-CBD; изнутри они заполнены более или менее полно фиброзным материалом, без скоплений хондро-остеоидной ткани (звездочка, фильтр камеры). Краска сириус красный гематоксилин. Увеличение ×10. с) Вид при малом увеличении среза камеры, в которую выращиваемые in vitro клетки были помещены в присутствии rhTGF-β1-CBD, что указывает на некоторое скопление вновь сформированной, отличающейся от других ткани (стрелки) около фильтров. Краска сириус красный гематоксилин. Увеличение ×10. d) Подробное изображение одного из таких скоплений, где различаются два вида ткани, один, слабоокрашенный, по виду похож на хрящевую ткань (окрашенный кружочек). Снаружи от слабоокрашенной ткани видны более окрашенные волокна, которые представляют собой перихондрий (стрелки). Краска сириус красный гематоксилин. Увеличение ×40. е) Представлен срез, параллельный вышеописанному, окрашенный трехцветно по Голднери, дающий интенсивное синее окрашивание (пустой кружочек) более плотной ткани (остеоид) и слабое окрашивание чего-то, что выглядит как хрящ (окрашенный кружочек). Вокруг кружка имеется немного голубоватых волокон, которые представляют собой слой перихондрия (стрелки). Увеличение ×40. f) Когда другой параллельный срез окрашивают щелочным синим, хрящевая ткань выглядит синей (окрашенный кружочек), тогда как остеоидная ткань выглядит бесцветной (пустой кружочек), так же, как и перихондриум. Увеличение ×40. Это подтверждает наличие хондро-остеоидного новообразования. Сириус красный и трехцветный краситель - оба интенсивно окрашивают коллаген, особенно коллаген I типа, который характерен для костной ткани и перихондрия, тогда как щелочной синий окрашивает кислотные и сульфатированные группы протеогликанов, находящиеся в изобилии в хрящевом матриксе.
Фиг.3. - Показаны срезы ткани, сформированной, если гидроксиапатитовые импланты готовили с клетками, обработанными, как указано в тексте. Так как материал перед изготовлением и окрашиванием срезов декальцифицировали, пустые пространства (звездочки) соответствовали стенкам гидроксиапатитовой трабекулы. Отверстия в стенках заполнены тканью, которую можно назвать медуллярной (закрашенные кружочки), тогда как к этим трабекулам прикреплены тонкие вновь сформированные тканевые листочки (стрелки). а) Показано, что ткань, прилегающая к гидроксиапатитовым стенкам, богата коллагеном (интенсивное красное окрашивание сириусом красным) (стрелки), то же показано с помощью двойного лучепреломления на фиг.3b), где представлены те же самые срезы, но в поляризованном свете. Этот коллаген принадлежит к типу I, о чем свидетельствует его положительное окрашивание (стрелки), появляющееся после обработки тканевых срезов антисывороткой к коллагену I, что показано на фиг.3с) Увеличение ×20. d) Показано при большом увеличении, что новая ткань содержит снаружи клетки, похожие на остеобласты, вкрапленные в матрикс, в котором они образовались (Голднер трехцветный). Новая ткань дает красную окраску (более зрелая ткань) или зеленоватый цвет (незрелая ткань). Увеличение ×40. е) Показан срез зоны вблизи от имплантированного гидроксиапатита (звездочки), на котором видно, что некоторые трабекулы хозяйской ткани имеют новые наложения голубовато-зеленой молодой кости, свидетельствующие о некоторой остеогенной активности не только там, где размещен гидроксиапатит, но также вокруг него, что указывает на «остеоиндукцию на некотором расстоянии», вызванную, вероятно, клетками, «диффундировавшими» из гидроксиапатита (Голднер трехцветный). Увеличение ×20. С другой стороны, на фиг.3f) показан срез удаленной от фрагментов гидроксиапатита зоны той же самой хозяйской кости, на котором видно, что в костной трабекуле нет включений новой ткани и что остеоиндукция не простирается дальше зоны имплантов. Увеличение ×20.
Осуществление изобретения
Примеры
Данное изобретение проиллюстрировано следующими неограничивающими примерами:
Пример 1
Конструирование и получение рекомбинантного белка человека TGF-β1 с коллаген I-связывающим доменом (rhTGF-β1-CBD).
кДНК для гена TGF-β1 получали методом ПЦР в режиме реального времени с использованием ДНК-полимеразы с корректируемой емкостью. В качестве матрицы использовали суммарную РНК, экстрагированную методом Chromczynski and Sacchi (1987), из клеток остеосаркомы человека MG63 (ссылка в АТСС: CRL-1247). Праймеры были сконструированы с помощью программы (Oligo v6.6), исходя из последовательностей мРНК, опубликованных в банке генов. Продукты ПЦР клонировали "in dull" в поддерживаемой плазмиде (pBSK II, Stratagene). По окончании клонирования гены сразу проверяли секвенированием обеих цепей. Используя эти плазмиды в качестве матрицы, амплифицировали в ПЦР с помощью pfu-ДНК-полимеразы область, кодирующую зрелый пептид. Используемые праймеры содержат коллаген-связывающий домен (CBD) и сайты рестрикции, адекватные клону "in dull" в трансферной плазмиде экспрессирующей системы бакуловируса, содержащей последовательность для пептидного сигнала секреции, специфичного для клеток насекомых (pAcGP67B, Pharmingen). Чтобы получить фактор без CBD, праймеры имели только сайты рестрикции. Праймер смысловой цепи имел следующую структуру: 5'-(ВаmНI)-последовательность CBD-GGAGGA-(Nnel)-6 первого зрелого пептида нуклеотидов TGF-β1. Праймер антисмысловой цепи был сформирован несколькими нуклеотидами 5'-конца гена и представлял собой стоповый кодон. Кроме того, он имел сайт Not I. Во всех случаях структуру проверяли секвенированием ПЦР-продукта трансферной плазмиды, содержащей этот продукт.
Как только получали трансферную плазмиду для фактора, содержащего и не содержащего CBD, котрансфецировали (sf9) клетки насекомых со смесью трансферной плазмиды и коммерческой ДНК бакуловируса (BacVector3000, Novagen), в которой был удален ген полихедрина, другие гены, кодирующие цистеиновые протеазы. Мы использовали метод переноса с помощью липосом (lipofectin, Novagen), в соответствии с инструкцией коммерческой фирмы.
После того, как ДНК были перенесены в клетки, их в течение нескольких дней культивировали в среде TNM-FH до тех пор, пока наблюдалась аффектация клеток. В течение этого времени внутри клеток происходила гомологичная рекомбинация, при которой вирусная ДНК переносится ниже полихедринового промотора, области плазмиды, представляющей собой сигнальную последовательность пептидов фактора С, содержащего или не содержащего CBD. Этот процесс генерирует инфицирующий вирус, который убивает клетку, высвобождается в окружающую среду и инфицирует другие клетки.
Рекомбинантный вирус выделяли из смеси культурального супернатанта. Это делали с помощью планшетного теста, подращивая клетки до полукоонфлюентного монослоя и делая разведения трансфекционного супернатанта. После инфекционного периода (1 час) планшет покрывали агарозой, приготовленной на культуральной среде, и оставляли культивироваться на 4 суток. В таких условиях из некоторых клеток происходила диффузия инфекции в окружающую агарозу, при этом наблюдались зоны лизиса. Такие зоны лизиса изымали по отдельности и помещали в небольшой объем среды для экстракции вируса. Основываясь на количестве и размере отобранных в первый раз зон лизиса, процедуру повторяли еще раз с тем же планшетом, чтобы убедиться, что в наличии имеется клонированный рекомбинантный вирус. Как только вирус размножался, его подвергали анализу в ПЦР с праймерами, специфическими для фактора, чтобы проверить, что он содержит нужный ген. Затем необходимо было оттитровать стоковый объем культуральной среды, чтобы установить количество колониеобразующих единиц в мл (кол/мл).
Начиная с этой точки, для каждого рекомбинантного вируса подбирали свои условия инфицирования, чтобы получить оптимальную продукцию вируса. Для этого использовали 12-луночные планшеты с известным количеством клеток. В них надо было подобрать различные проценты содержания вируса/на клетку (MOI, множественность инфекции) и разное время культивирования. Проверяли MOI 0,1, 1 и 10, отбирая пробы через 48, 72 и 96 часов инкубации. Для того чтобы культуральная среда не загрязнялась ненужными белками из сыворотки, через 24 часа после инфицирования культивирование продолжали в бессывороточной среде или в среде с добавлением очень небольшого процента сыворотки. После завершения каждого эксперимента собирали супернатант и центрифугировали, чтобы отделить остатки разрушенных клеток.
Целые клетки разрушали последовательным замораживанием-оттаиванием и экстрагировали фосфатно-солевым буферным раствором с твином. Образцы анализировали в SDS-электрофорезе (денатурирующие условия), без восстанавливающих агентов. Полиакриламидный гель окрашивали Кумасси голубым (если не хватало чувствительности, можно было красить серебром). Различные образцы анализировали также методом иммуноблоттинга с использованием специфических антител к TGF-β1. Мы использовали вторые антитела, меченные пероксидазой, идентифицируя их присутствие по хемилюминесценции (CSPD, Amersham). Эту информацию мы использовали для оценки в процентах соотношения продуцируемых мономеров/димеров и определения выхода системы.
Чтобы получить достаточно большое количество рекомбинантных белков, начинали культивировать с жидкой культуры объемом 250 мл и с концентрацией клеток 500000 клеток/мл. После увеличения концентрации примерно до 2×106 клеток/мл их инокулировали вирусом, используя препараты с наиболее высоким MOI и с наиболее высоким выходом. Спустя 24 часа среду с сывороткой удаляли и клетки далее культивировали в бессывороточной среде столько суток, сколько было установлено в предыдущих тестах. Затем рекомбинантные белки чистили, используя протокол, описанный Aono et al. (1995). Он включал катионообменную хроматографию, использование колонки SP-сефарозы (Amersham-Pharmacia). Культуральная среда была уравновешена при рН 8 и содержала добавку 4М мочевины. Колонку уравновешивали 20 мМ трис-НСl-буфером, рН 8 с добавкой 4 М мочевины. После пропускания среды через колонку ее промывали далее буфером и белки элюировали линейным градиентом NaCl от 0 до 0,7 М. Во фракциях измеряли оптическую плотность при 280 нм и те из них, в которых присутствовал белок, анализировали с помощью электрофореза, как описано выше. Положительные фракции собирали, концентрировали ультрафильтрацией и использовали для исследования биологической активности. Концентрацию белков в конечной фракции измеряли по Брэдфорду.
Пример 2
Получение и выделение стволовых мезенхимных клеток человека.
Стволовые мезенхимные клетки человека получали из костного мозга человека (ВМ) после хирургической экстракции подвздошной кости от информированных доноров. Ткань костного мозга промывали полной средой (□-MEM, GIBCO, HD, US), содержащей антибиотики (100 мг/мл пенициллина G (Sigma), 50 мг/мл гентамицина (Sigma) и 0,3 мг/мл фунгизона (Flow-ICN). Суспензию индивидуализированных клеток получали, последовательно пропуская взвесь клеток через иглы шприца с просветом в 18, 20 и 22 микрометра, и в конце для отделения остатков ткани и скоплений клеток фильтровали через тефлоновые стерильные фильтры с размером пор 20 микрометров (Cell Strainer, Falcon, Lincoln Park, NJ).
Пример 3
Культура МСК в коллагеновых гелях
Суспензию клеток, полученных в соответствии с примером 2, центрифугировали при 100 g в течение 5 мин. Осадок ресуспендировали в культуральной среде с очень небольшой добавкой сыворотки крови пациента (HS, 0,5%).
Перед внесением клеток в культуральные чашки или 48-луночные культуральные планшеты в них на дно помещали 100 мл раствора, содержащего 0,35 мг/мл коллагена I человека (Sigma-Aldrich) при рН 7,4. Затем сверху наслаивали 150 мл смеси коллагена I, TGF-β-1 в концентрации 1 мг/мл и 2×106 клеток костного мозга (ВМ). Культуральные планшеты помещали в культуральный шкаф при 37°С на 15 мин для образования коллагенового геля, который до этого был жидким. Затем в каждую лунку добавляли 10 мл культуральной среды, также содержащей TGF-β-1 в такой же концентрации. Культуры, таким образом дополненные, культивировали в атмосфере, состоящей из смеси 95% воздуха и 5% СO2, при 37°С и относительной влажности 100%. Каждые 3 дня культуральную жидкость обновляли, каждый раз добавляя ту же концентрацию TGF-β-1. Оптимальная концентрация TGF-β-1 была подобрана в предыдущих тестах по хемотексическому ответу. При каждом эксперименте, проводившемся с концентрацией фактора, предварительно выбранной по наибольшей хемотаксической способности, добавляли 150 мл раствора коллагена (0,35 мг/мл). Конфлюентные культуры костного мозга крысы были диссоциированы и клетки помещали в верхнее отделение камер Boydens (Neuroprobe, Rockville, MD) при концентрации 2×105 кл/мл среды □-MEM. Нижнее отделение камеры содержало среду с различными концентрациями тестируемого фактора. Через каждые 4 ч инкубации при 37°С в атмосфере с 5% СО2 фильтры изымали и фиксировали в метаноле; затем их промывали, окрашивали и монтировали на слайдах. Хемотаксис оценивали, подсчитывая количество клеток, мигрирующих в 20 полях микроскопа (×400) для каждого фильтра.
Пример 4
Экспериментальная процедура оценки капаситированности клеток (отбор, амплификация и индукция).
Клетки МО подращивали в описанных выше условиях в течение 10 дней, заменяя каждые 3 дня культуральную среду и с ней TGF-β-1. Через 10 дней культуральную среду дополняли 10% сыворотки пациента (HS 10%). Это действие завершало так называемый период селекции и давало начало периоду амплификации, поддерживаемому в течение такого времени, которое было необходимо для получения достаточного для трансплантации количества клеток, но в некоторых случаях этот период не должен был превышать 25 дней. После этого периода среду дополняли дексаметазоном (10-8 М) и β-глицерофосфатом (2 мМ), действующими как химические агенты остеоиндукции. Этот короткий период, длящийся всего 2 дня, назван индукцией.
Во время культивирования клеток через 0, 10, 14, 18, 21, 24, 27, 30, 33 и 36 дней отбирали образцы, в которых анализировали количество клеток, наличие щелочной фосфатазы и содержание кальция. В таблицах I, II, III показаны полученные значения этих показателей. Из них видно, как TGF-β-1 увеличивает количество клеток по сравнению с контролем. То же самое происходит с синтезом щелочной фосфатазы. Содержание кальция также возрастает в течение культивирования, тогда как в контроле они не определялись.
Микроскопирование культур во время описанного процесса показывало, как клетки пролиферировали в течение культивирования и даже формировали колонии в периоде амплификации, когда в среде присутствовал TGF-β-1 DUC (Фиг.1). Когда клетки обрабатывали коммерческим TGF-β-1 (R&D Systems, Minneapolis, MN), они были дисперсными или плохо образовывали кластеры.
Пример 5
Перенос капаситированных клеток.
После завершения культурального периода коллагеновые гели подвергали воздействию коллагеназы и клетки диспергировали 0,05% трипсином и 0,02% ЭДТА при 27°С. Клетки центрифугировали, промывали и ресуспендировали в безсывороточной среде. После соответствующего подсчета часть клеток вносили в миллипоровские диффузионные камеры, имплантированные в подкожную ткань крыс, а другую часть адсорбировали на гидроксиапатитовых фрагментах, которые имплантировали в специальные повреждения кости (Фиг.3).
Пример 6
Подкожная имплантация. Формирование эктопической кости.
Диффузионные камеры с клетками человека в количестве 1×106, капаситированными описанным методом и суспендированными в бессывороточной среде, имплантировали подкожно сзади крысам Fisher, 344 7-месячным самкам и после дачи им анестезии в виде подкожной инъекции фенобарбитала натрия в количестве 3,5 мг/100 мл веса тела. Делали 2-сантиметровый разрез по средней линии задней части тела, чтобы вставить камеры. Каждая крыса имела несколько камер с клетками, обработанными TGF-β-1 CBD и другими контролями, с клетками, которые во время культивирования не обрабатывались или обрабатывались коммерческим TGF-β-1. Раны зашивали и дезинфицировали бетадином. Через четыре недели (период имплантации) крыс убивали сверхдозой анестетика и камеры извлекали для гистологического и радиографического исследования. Последнее выполняли, применяя Х-лучи низкой интенсивности. Для гистологического исследования камеры фиксировали в Bounin или в 10% забуференном формалине. После фиксации пластиковый кружок камеры растворяли, опуская их в ацетон. После обезвоживания их заключали в парафин и делали срезы толщиной 5 микрометров в сагиттальном направлении на нескольких уровнях. Срезы окрашивали различными гистохимическими или иммуноцитохимическими методами, используя антитела к различным типам коллагена, чтобы проанализировать ткань, сформировавшуюся внутри камер во время периода имплантации.
Фиг.2 показывает радиографические и гистологические изображения различных камер, демонстрирующих хрящевую и костную природу ткани, сформированной в них. При сравнении с контрольными камерами, где едва видна фибриллярная ткань, в экспериментальных просматриваются очень большие тканевые поверхности с хрящеподобными признаками, вместе с другими, где появляется остеоидный матрикс, как прелюдия полностью сформированной костной ткани. Эти данные свидетельствуют о том, что хрящеподобная ткань по-видимому трансформируется в остеоидно-костную, что, по-видимому, указывает на протекание в камерах во время периода имплантации настоящего процесса эндохондральной оссификации.
Пример 7
Пример имплантации в фибиальную фрактуру.
Фрагменты гидроксиапатита Proosteon 500 (Interopore) диаметром приблизительно 0,5 см заливали клеточной суспензией, добавляли поверх несколько микролитров и меняли их положение, чтобы убедиться, что большинство его отверстий наполнены клетками. Оформленные таким образом клетки перемещали в рабочую комнату, обеспечивая асептические условия и температуру слегка выше 0°С. После анестезии пациента готовили фрактурные поверхности и по отдельности вводили гидроксиапатитовые фрагменты. Такая фрактура действительно была моделью не сращенного или атрофического псевдоартроза, характеризовавшегося безсосудистым фокусом с фиброзной тканью, без пролиферации васкуляризованной хондро-остеогенной ткани. Поэтому прежде импланта и во время этой же хирургической манипуляции фиброзную ткань удаляли с острия, края, ребра фрактуры, разрешая, оставляя, отпуская обе поверхности в склеротизированной костной ткани и перфорируя их до обнаружения достижения соответственно в проксимальном и дистальном направлениях сосудистого источника. Фрагменты гидроксиапатита помещали в отверстия, периферические по их положению относительно фокуса фрактуры. Другие гидроксиапатитовые фрагменты, всего в количестве 95, помещали в линию фрактуры. После размещения фрагментов гидроксиапатита, содержащих хондро-остеокомпетентные клетки, оба костных фрагмента стабилизировали, подчиняясь принципу нейтрализации, на устойчивом, неподвижном основании с помощью титановой пластины, прикрепленной путем давления с помощью титановых винтов.
Фиг.3 показывает изображение гистологических срезов, выполненное при биопсии спустя шесть недель после имплантации. Эти изображения показывают вновь сформированную ткань в контакте с гидроксиапатитовыми стенками с признаками костной ткани и формирование костномозговой ткани в полости, углублении, выемке слева между минеальными трабекулами. Представленные доказательства показывают, что сформированная ткань имеет характеристики созревшей кости. Более того, данное изображение показывает, что остеоиндукция достигает имплантов, но не движется дальше, что может быть объяснено тем, что трансплантированные клетки чувствительны к этой остеоиндукции и распространяются туда, где клетки спонтанно диффундируют в зону импланта. В области, расположенной дальше импланта, не выявляются симптомы остеоиндукции.
Claims (20)
1. Применение мезенхимных стволовых клеток человека, дифференцированных в хондро-остеогенную линию путем пролиферации под воздействием сыворотки крови человека и бета-1 трансформирующего ростового фактора с молекулярным доменом для связывания коллагена I (TGF-β1-CBD), полученного в эукариотических экспрессирующих системах для приготовления лечебного средства для восстановления костной и/или хрящевой ткани.
2. Применение по п.1, характеризующееся введением этого лечебного средства путем инъекции in situ в системную циркуляцию или в виде имплантов, адсорбированных в подходящем биологическом материале.
3. Применение по п.1 или 2, характеризующееся тем, что введение производится с помощью имплантов, адсорбированных в подходящем материале.
4. Применение по п.1, характеризующееся тем, что материал, использованный для имплантов, представляет собой гидроксиапатит или диффузионные камеры.
5. Применение по п.1, характеризующееся тем, что мезенхимные стволовые клетки человека индуцированы глюкокортикоидом.
6. Применение по п.5, характеризующееся тем, что глюкокортикоид представляет собой дексаметазон.
7. Применение по п.6, характеризующееся тем, что при индукции дополнительно используется β-глицерофосфат.
8. Применение по п.1, характеризующееся тем, что трансформирующий ростовой фактор бета-1 с молекулярным доменом для связывания коллагена I был экспрессирован в эукариотических системах экспрессии.
9. Применение по п.8, характеризующееся тем, что использованная система экспрессии представляет собой клетки насекомых.
10. Применение по п.9, характеризующееся тем, что использованные клетки насекомых трансфектируются бакуловирусом.
11. Способ получения хондро-остеогенных клеток in vitro из мезенхимных стволовых клеток человека, характеризующийся следующими стадиями:
а. первичное культивирование стволовых клеток в среде с добавками сыворотки крови человека и ростового фактора бета-1 с молекулярным доменом для связывания коллагена I (TGF-β1-CBD);
b. последующая пролиферация путем дополнения сывороткой крови человека и TGF-β1-CBD;
с. хондро-остеогенная индукция дексаметазоном и β-глицерофосфатом.
а. первичное культивирование стволовых клеток в среде с добавками сыворотки крови человека и ростового фактора бета-1 с молекулярным доменом для связывания коллагена I (TGF-β1-CBD);
b. последующая пролиферация путем дополнения сывороткой крови человека и TGF-β1-CBD;
с. хондро-остеогенная индукция дексаметазоном и β-глицерофосфатом.
12. Способ по п.11, характеризующийся тем, что бета-1 трансформирующий ростовой фактор с молекулярным доменом для связывания коллагена I экспрессирован в эукариотических системах экспрессии.
13. Способ по п.12, характеризующийся тем, что используемая система экспрессии представляет собой клетки насекомых.
14. Способ по п.13, характеризующийся тем, что используемые клетки насекомых трансфектируются бакуловирусом.
15. Способ по п.11, характеризующийся тем, что культуральной средой является гель коллагена типа I человека.
16. Способ по п.11, характеризующийся тем, что начальная добавка к культуральной среде производится увеличивающимися концентрациями сыворотки крови человека от 0,1 до 1%, с предпочтительным шагом увеличения 0,5%.
17. Способ по п.11, характеризующийся тем, что амплификация происходит в течение периода длительностью от 1 до 25 дней, во время которого добавка к культуральной среде производится увеличивающимися концентрациями сыворотки крови человека от 5 до 25%, с предпочтительным шагом увеличения 20%.
18. Клетки с хондро-остеогенным потенциалом, получаемые в соответствии со способом дифференцирования согласно любому из пп.11-17.
19. Применение клеток с хондро-остеогенным потенциалом по п.18, получаемыми для приготовления лечебного средства для восстановления костной и/или хрящевой ткани человека.
20. Композиция, способная индуцировать остеогенез, характеризующаяся тем, что она содержит биологически совместимый материал, подходящий для остеосинтеза и группу клеток с хондро-остеогенным потенциалом, получаемых в соответствии со способом дифференцирования согласно любому из пп.11-17.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ESP200401227 | 2004-05-21 | ||
ES200401227A ES2245879B1 (es) | 2004-05-21 | 2004-05-21 | Composicion para la reparacion osea o cartilaginosa. |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2006145431A RU2006145431A (ru) | 2008-06-27 |
RU2375447C2 true RU2375447C2 (ru) | 2009-12-10 |
Family
ID=35428711
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006145431/13A RU2375447C2 (ru) | 2004-05-21 | 2005-05-20 | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХОНДРО-ОСТЕОГЕННЫХ КЛЕТОК in vitro ИЗ МЕЗЕНХИМНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ |
Country Status (14)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US20080031915A1 (ru) |
EP (1) | EP1760144A2 (ru) |
JP (1) | JP2007538055A (ru) |
KR (1) | KR20070047740A (ru) |
CN (1) | CN101014701A (ru) |
AU (1) | AU2005244626A1 (ru) |
BR (1) | BRPI0510829A (ru) |
CA (1) | CA2567314A1 (ru) |
ES (1) | ES2245879B1 (ru) |
IL (1) | IL179442A0 (ru) |
MX (1) | MXPA06013492A (ru) |
NZ (1) | NZ552180A (ru) |
RU (1) | RU2375447C2 (ru) |
WO (1) | WO2005112542A2 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2456927C2 (ru) * | 2010-10-13 | 2012-07-27 | Федеральное государственное учреждение "Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" имени академика Г.А. Илизарова" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации ФГУ "РНЦ "ВТО" им. акад. Г.А. Илизарова | Способ биологической оценки остеоиндуцирующего эффекта белков плазмы крови |
Families Citing this family (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20050064042A1 (en) * | 2003-04-29 | 2005-03-24 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Cartilage implant plug with fibrin glue and method for implantation |
US7067123B2 (en) | 2003-04-29 | 2006-06-27 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Glue for cartilage repair |
US20050222687A1 (en) * | 2004-04-02 | 2005-10-06 | Gordana Vunjak-Novakovic | Cartilage implant assembly and method for implantation |
US7901457B2 (en) * | 2003-05-16 | 2011-03-08 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Cartilage allograft plug |
US20080220044A1 (en) * | 2007-03-06 | 2008-09-11 | Semler Eric J | Cancellous construct with support ring for repair of osteochondral defects |
US20090319045A1 (en) | 2004-10-12 | 2009-12-24 | Truncale Katherine G | Cancellous constructs, cartilage particles and combinations of cancellous constructs and cartilage particles |
US7837740B2 (en) * | 2007-01-24 | 2010-11-23 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Two piece cancellous construct for cartilage repair |
US7815926B2 (en) * | 2005-07-11 | 2010-10-19 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Implant for articular cartilage repair |
EP1926459B1 (en) | 2005-09-19 | 2015-01-07 | Histogenics Corporation | Cell-support matrix having narrowly defined uniformly vertically and non-randomly organized porosity and pore density and a method for preparation thereof |
CZ301148B6 (cs) * | 2006-01-25 | 2009-11-18 | Univerzita Karlova V Praze | Zpusob pestování lidských mezenchymových kmenových bunek, zejména pro lécbu nehojících se fraktur, a bioreaktor k provádení tohoto zpusobu |
US8435551B2 (en) * | 2007-03-06 | 2013-05-07 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Cancellous construct with support ring for repair of osteochondral defects |
EP2137300B1 (en) | 2007-04-26 | 2011-10-26 | Ramot at Tel-Aviv University Ltd. | Pluripotent autologous stem cells from oral or gastrointestinal mucosa |
US8062364B1 (en) | 2007-04-27 | 2011-11-22 | Knee Creations, Llc | Osteoarthritis treatment and device |
EP2344631B1 (en) | 2008-10-31 | 2019-10-16 | Synthes GmbH | Method and device for activating stem cells |
WO2011054359A2 (en) | 2009-11-06 | 2011-05-12 | University Of Copenhagen | Method for early detection of cancer |
CN101705208B (zh) * | 2009-12-15 | 2012-05-02 | 北京科润维德生物技术有限责任公司 | 将人羊膜间充质细胞诱导分化成骨或软骨细胞的方法 |
CN102971414B (zh) * | 2009-12-22 | 2016-01-27 | 新加坡科技研究局 | 骨折的治疗 |
US8574614B2 (en) * | 2010-02-04 | 2013-11-05 | Hwa-Chang Liu | Surgical grafts for repairing chondral defects |
US10077420B2 (en) | 2014-12-02 | 2018-09-18 | Histogenics Corporation | Cell and tissue culture container |
CN107224618A (zh) * | 2016-03-25 | 2017-10-03 | 中国科学院苏州纳米技术与纳米仿生研究所 | 促进骨再生的活性支架材料、其制备方法及应用 |
AU2017204355B2 (en) | 2016-07-08 | 2021-09-09 | Mako Surgical Corp. | Scaffold for alloprosthetic composite implant |
CN108578777B (zh) * | 2018-05-06 | 2021-05-07 | 西北工业大学 | 一种生长因子浓度梯度可控的人工硬骨支架制备方法 |
-
2004
- 2004-05-21 ES ES200401227A patent/ES2245879B1/es not_active Expired - Fee Related
-
2005
- 2005-05-20 WO PCT/ES2005/000287 patent/WO2005112542A2/es active Application Filing
- 2005-05-20 AU AU2005244626A patent/AU2005244626A1/en not_active Abandoned
- 2005-05-20 US US11/597,236 patent/US20080031915A1/en not_active Abandoned
- 2005-05-20 RU RU2006145431/13A patent/RU2375447C2/ru active
- 2005-05-20 NZ NZ552180A patent/NZ552180A/en unknown
- 2005-05-20 EP EP05750573A patent/EP1760144A2/en not_active Withdrawn
- 2005-05-20 BR BRPI0510829-2A patent/BRPI0510829A/pt not_active IP Right Cessation
- 2005-05-20 CN CNA2005800230591A patent/CN101014701A/zh active Pending
- 2005-05-20 MX MXPA06013492A patent/MXPA06013492A/es not_active Application Discontinuation
- 2005-05-20 JP JP2007517309A patent/JP2007538055A/ja not_active Withdrawn
- 2005-05-20 KR KR1020067026980A patent/KR20070047740A/ko not_active Application Discontinuation
- 2005-05-20 CA CA002567314A patent/CA2567314A1/en not_active Abandoned
-
2006
- 2006-11-21 IL IL179442A patent/IL179442A0/en unknown
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ANDRADES J.A. et al. A recombinant human TGF-beta1 fusion protein with collagen-binding domain promotes migration, growth, and differentiation of bone marrow mesenchymal cells. Exp Cell Res. 1999, v.250, n.2, p.485-498. ANDRADES J.A. et al. A modified rhTGF-beta1 and rhBMP-2 are effective in initiating a chondro-osseous differentiation pathway in bone marrow cell cultured in vitro. - Connect Tissue Res, 2003, v.44, n.3-4, p.188-197. MURAGLIA A. et al. Clonal mesenchymal progenitors from human bone marrow differentiate in vitro according to a hierarchical model. - J. Cell Sci. 2000, v.113 (pt 7), p.1161-1166. GORDON E.M. et al. Capture and expansion of bone marrow derived mesenchymal progenitor cell with a transforming growth factor-beta1-von Willebrand's factor fusion protein for retrovirus-mediated delivery of coagulation factor IX. - Hum Gene Ther, 1997, v.8, n.11, p.1385-1394. BECERRA J. et al. Bone regeneration, cell therapy and tissue engineering. - Med Clin (Bare), 2001, v.116, n * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2456927C2 (ru) * | 2010-10-13 | 2012-07-27 | Федеральное государственное учреждение "Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" имени академика Г.А. Илизарова" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации ФГУ "РНЦ "ВТО" им. акад. Г.А. Илизарова | Способ биологической оценки остеоиндуцирующего эффекта белков плазмы крови |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2245879B1 (es) | 2006-12-16 |
US20080031915A1 (en) | 2008-02-07 |
BRPI0510829A (pt) | 2007-11-27 |
CN101014701A (zh) | 2007-08-08 |
EP1760144A2 (en) | 2007-03-07 |
AU2005244626A1 (en) | 2005-12-01 |
WO2005112542A2 (es) | 2005-12-01 |
WO2005112542A3 (es) | 2006-03-23 |
ES2245879A1 (es) | 2006-01-16 |
CA2567314A1 (en) | 2005-12-01 |
RU2006145431A (ru) | 2008-06-27 |
KR20070047740A (ko) | 2007-05-07 |
JP2007538055A (ja) | 2007-12-27 |
NZ552180A (en) | 2009-11-27 |
IL179442A0 (en) | 2007-05-15 |
MXPA06013492A (es) | 2007-01-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2375447C2 (ru) | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХОНДРО-ОСТЕОГЕННЫХ КЛЕТОК in vitro ИЗ МЕЗЕНХИМНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ | |
Dorotka et al. | Repair of articular cartilage defects treated by microfracture and a three-dimensional collagen matrix | |
JP4767983B2 (ja) | 骨髄に由来するTGFβ1応答細胞 | |
Meretoja et al. | Articular chondrocyte redifferentiation in 3D co-cultures with mesenchymal stem cells | |
Kasten et al. | Comparison of platelet-rich plasma and VEGF-transfected mesenchymal stem cells on vascularization and bone formation in a critical-size bone defect | |
KR20000052709A (ko) | 와튼제대교질에서 분리된 세포를 이용하여 연골 조직을 생산 | |
CA2386506C (en) | Isolation of precursor cells and their use for tissue repair | |
US20110300203A1 (en) | Cartilage regeneration without cell transplantation | |
JP2015199767A (ja) | 椎間板変性症の治療 | |
US20100247601A1 (en) | Repair and treatment of bone defect using cells induced by agent produced by chondrocytes capable of hypertrophication and scaffold | |
WO2000029552A1 (en) | Alginate layer system for chondrogenic differentiation of human mesenchymal stem cells | |
Zhang et al. | Platelet‐derived growth factor BB gene‐released scaffolds: biosynthesis and characterization | |
Mahon et al. | Extracellular matrix scaffolds derived from different musculoskeletal tissues drive distinct macrophage phenotypes and direct tissue-specific cellular differentiation | |
Boos et al. | Autologous serum improves bone formation in a primary stable silica-embedded nanohydroxyapatite bone substitute in combination with mesenchymal stem cells and rhBMP-2 in the sheep model | |
Xia et al. | Matrigel scaffold combined with Ad-hBMP7-transfected chondrocytes improves the repair of rabbit cartilage defect | |
KR20210063324A (ko) | 지방 유래 줄기 세포 및 젤라틴을 포함하는 생체물질 및 이의 제조방법 | |
He et al. | Full-thickness tissue engineered skin constructed with autogenic bone marrow mesenchymal stem cells | |
KR20200087748A (ko) | 지방 유래 줄기세포를 포함하는 생체재료 및 이를 생산하는 방법 | |
US20100297210A1 (en) | Repair and treatment of bone defect using agent produced by chondrocytes capable of hypertrophication and scaffold | |
JP2006528141A (ja) | ケモカインの使用並びにこれを含有する医薬製剤 | |
CN109675108B (zh) | 利用脂肪组织和支架材料直接再生肥大软骨组织的方法 | |
Becerra et al. | Autologous human-derived bone marrow cells exposed to a novel TGF-β1 fusion protein for the treatment of critically sized tibial defect | |
KR20180087870A (ko) | 골재생용 세포 치료제 및 이것의 제조 방법 | |
KR101539822B1 (ko) | 줄기세포의 3차원 배양을 통한 고농축 배양액의 제조방법 및 고농축 배양액의 용도 | |
KR19990082999A (ko) | 연골 유도를 위한 골유도 단백질과 배화 인자의 조합물의 용도 |