DE69220326T2 - Verfahren zur Herstellung von Trans-L-Hydroxy-Prolin - Google Patents

Verfahren zur Herstellung von Trans-L-Hydroxy-Prolin

Info

Publication number
DE69220326T2
DE69220326T2 DE69220326T DE69220326T DE69220326T2 DE 69220326 T2 DE69220326 T2 DE 69220326T2 DE 69220326 T DE69220326 T DE 69220326T DE 69220326 T DE69220326 T DE 69220326T DE 69220326 T2 DE69220326 T2 DE 69220326T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
trans
hydroxyproline
amino acids
culture
microorganism
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
DE69220326T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69220326D1 (de
Inventor
Ryoichi Katsumata
Takashi Ohshiro
Michio Shiomi
Haruhiko Yokoi
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
KH Neochem Co Ltd
Original Assignee
Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd filed Critical Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd
Publication of DE69220326D1 publication Critical patent/DE69220326D1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE69220326T2 publication Critical patent/DE69220326T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/02Amides, e.g. chloramphenicol or polyamides; Imides or polyimides; Urethanes, i.e. compounds comprising N-C=O structural element or polyurethanes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/24Proline; Hydroxyproline; Histidine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/873Proteus

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Pyrrole Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

    Stand der Technik
  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von trans-L-Hydroxyprolin. Trans-L-Hydroxyprolin ist eine bekannte Verbindung, die als Ausgangssubstanz bei der Synthese von Amzeimitteln, wie z.B. des Antiphlogistikums N- Acetylhydroxyprolin, nützlich ist.
  • Es ist bekannt, daß Hydroxyprolin durch Extraktion aus Proteinen, z.B. Kollagen, oder durch chemische Synthese hergestellt werden kann. Beispiele bekannter chemischer Syntheseverfahren sind die Synthese aus Allylbromid und Diethylacetamidomalonsäure [Bull. Chem. Soc. Japan 46 (1973), 2924], die Synthese aus D-Glutaminsäure und die Synthese aus Glyoxal und Oxalessigsäure [J. Org. Chem. 42 (1977), 3440].
  • Diese chemischen Syntheseverfahren sind jedoch für technische Anwendungen nicht geeignet, da das Produkt nur in sehr geringen Ausbeuten erhalten wird und es außerdem als ein Gemisch aus vier Isomeren vorliegt. Aus diesem Grund wird trans- L-Hydroxyprolin im allgemeinen hergestellt, indem ein aus tierischem Gewebe stammendes Protein hydrolysiert wird, wie z.B. Kollagen oder Elastin, das trans-L-Hydroxyprolin in großer Menge enthält, anschließend folgt die Isolierung durch Extraktion. Das durch ein solches Verfahren erhaltene Hydrolysat enthält jedoch neben trans-L-Hydroxyprolin noch verschiedene neutrale Aminosäuren, wie z.B. Glycin, L-Prolin, L-Alanin und L-Serin. Zur Abtrennung von trans-L-Hydroxyprolin von diesen neutralen Aminosäuren sind deshalb mehrere Reinigungsschritte erforderlich.
  • Demgemäß besteht Bedarf an einem weniger komplexen Verfahren zur Herstellung von trans-L-Hydroxyprolin in technischem Maßstab. Hierfür haben die Erfinder ein Verfahren zur einfachen Reinigung und Isolierung von trans-L-Hydroxyprolin entwickelt, wobei ein Mikroorganismus in einem Kulturmedium, das ein Kollagenhydrolysat enthält, gezüchtet wird und Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, im Kulturmedium abgebaut werden.
  • Zusammenfassung der Erfindung
  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von trans-L-Hydroxyprolin, umfassend die Züchtung eines Mikroorganismus, der Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, abbauen kann, der jedoch trans-L-Hydroxyprolin im wesentlichen nicht abbauen kann oder es nur in einem geringen Maß, d.h. nicht mehr als 15 % abbauen kann, in einem ein Kollagenhydrolysat enthaltenden Kulturmedium und die Gewinnung von trans-L-Hydroxyprolin aus der resultierenden Kultur.
  • Genaue Beschreibung der Erfindung
  • Gemäß der vorliegenden Erfindung wird trans-L-Hydroxyprolin durch Züchtung eines Mikroorganismus, der Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, abbauen kann, in einem ein Kollagenhydrolysat enthaltenden Medium hergestellt. In der vorliegenden Erfindung kann ein beliebiger Mikroorganismus verwendet werden, solange er Aminosäuren, die nicht trans-L- Hydroxyprolin sind, abbauen kann und trans-L-Hydroxyprolin im wesentlichen nicht abbaut. Der Aminosäureabbau in der vorliegenden Erfindung umfaßt intrazellulären Metabolismus, Assimilation und Dissimilation. Z.B. können Mikroorganismen, die zur Gattung Proteus, Providencia, Deleya oder Planococcus gehören, vorzugsweise Mikroorganismen, die zu den Arten Proteus mirabilis, Providencia alcalifaciens, Deleya venusta oder Planococcus citreus gehören, verwendet werden.
  • Beispiele von geeigneten bevorzugten Stämmen sind Proteus mirabilis IFO 3849, Providencia alcalifaciens ATCC 9886, Deleya venusta ATCC 27125 und Planococcus citreus ATCC 14404. Diese Stämme sind bekannte Typenstämme, die für die Öffentlichkeit leicht zugänglich sind. Genauso können auch andere Stämme dieser Gattungen verwendet und durch bekannte Durchmusterungsverfahren ausgewählt werden. Die kritische Eigenschaft eines geeigneten Stammes besteht in der Fähigkeit, Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, wie z.B. Asparaginsäure, Threonin, Serin, Asparagin, Glutaminsäure, Prolin, Glycin, Alanin, Valin, Cystein, Methionin, Leucin, Isoleucin, Tyrosin, Phenylalanin, Histidin, Lysin, Arginin, Hydroxylysin und α-Aminobuttersäure, abzubauen, ohne trans-L-Hydroxyprolin abzubauen.
  • In der vorliegenden Erfindung kann ein beliebiges natürliches oder synthetisches Medium verwendet werden, solange es das Kollagenhydrolysat entweder als die einzige Kohlenstoffund Stickstoffquelle oder in Kombination mit anderen allgemein verwendeten Kohlenstoffquellen, Stickstoffquellen, Vitaminen usw. enthält, die durch den verwendeten Mikroorganismus assimiliert werden können, und der Mikroorganismus, der Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, abbauen kann und der trans-L-Hydroxyprolin im wesentlichen nicht abbaut, darin effektiv gezüchtet werden kann.
  • Das Kollagenhydrolysat sollte zum Kulturmedium in einer solchen Menge zugegeben werden, daß die Gesamtkonzentration der Aminosäuren im Bereich von 10 bis 300 g/l (trans-L-Hydroxyprolin: 1,5 bis 45 g/l), vorzugsweise im Bereich von 40 bis 200 g/l (trans-L-Hydroxyprolin: 6 bis 30 g/l), liegt. Das Kollagenhydrolysat kann auch während der Züchtung zum Medium zugegeben werden.
  • Die Züchtung kann nach einem beliebigen Verfahren durchgeführt werden, das für den verwendeten Mikroorganismus geeignet ist, im allgemeinen wird die Züchtung jedoch unter Rühren und Belüftung durchgeführt. Die Temperatur während der Züchtung liegt normalerweise im Bereich von 25 bis 45ºC, vorzugsweise von 30 bis 40ºC. Während der Züchtung wird der pH- Wert durch Zusatz einer anorganischen Säure, wie z.B. Salzsäure oder Schwefelsäure, oder einer organischen Säure, wie z.B. Essigsäure, auf einem Wert 7,5 bis 8,0 gehalten.
  • Die Züchtung ist dann vollständig abgelaufen, wenn die Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, abgebaut sind, üblicherweise nach 30 bis 80 Stunden.
  • Die Zellen werden aus der auf diese Weise erhaltenen Kultur abzentrifugiert und trans-L-Hydroxyprolin aus dem Überstand durch ein Reinigungsverfahren isoliert, das üblicherweise zu diesem Zweck verwendet wird, z.B. Säulenchromatographie unter Einsatz eines Ionenaustauscherharzes oder Kristallisation.
  • Bestimmte Ausführungsformen der vorliegenden Erfindung werden in den folgenden Beispielen erläutert.
  • Das in den folgenden Beispielen und im Bezugsbeispiel verwendete Kollagenhydrolysat wurde folgendermaßen hergestellt.
  • Zwei kg Rindshaut wurden mit 5,1 l 12 N Schwefelsäure versetzt und die Hydrolyse 12 Stunden bei 120ºC durchgeführt. Nach der Umsetzung wurden 1 kg Calciumhydroxid und 8 l Wasser zugefügt und die resultierende Suspension filtriert. Anschließend wurde das Filtrat eingeengt und das Konzentrat einer Aminosäureanalyse unter Verwendung eines Aminosäureanalysators unterworfen. Es wurde gefunden, daß das Konzentrat 630 g/l Aminosäuren enthielt, wobei der Gehalt an trans-L-Hydroxyprolin, Glycin und L-Prolin 93 g/l, 158 g/l bzw. 98 g/l betrug. Das Konzentrat wurde als das Kollagenhydrolysat verwendet.
  • Beispiel 1
  • Medium A, das 10 g/l Pepton, 7 g/l Fleischextrakt, 3 g/l Natriumchlorid und 5 g/l Hefeextrakt (pH 7,0) umfaßte, wurde in Portionen zu je 5 ml in Teströhrchen gefüllt und in einem Autoklaven 20 Minuten bei 120ºC sterilisiert, hierdurch wurde ein Vorkulturmedium hergestellt. Eine Ösenfüllung von jedem der in Tabelle 1 aufgelisteten Mikroorganismen wurde in ein Vorkulturmedium geimpft und 24 Stunden bei 3000 unter Schütteln gezüchtet. Die resultierende Kultur wurde als Vorkultur verwendet.
  • Zur Herstellung des Kulturmediums wurde ein Medium, das 40 g/l Maisquellwasser und 150 ml/l Kollagenhydrolysat (pH 7,5) enthielt, in Portionen zu je 5 ml in Teströhrchen gefüllt und in einem Autoklaven 20 Minuten bei 120ºC sterilisiert. Anschließend wurden 0,5 ml von jeder Vorkultur unter sterilen Bedingungen in jeweils ein Kulturmedium eingeimpft und 48 Stunden bei 30ºC unter Schütteln gezüchtet. 5 ml von jeder auf diese Weise erhaltenen Kultur wurden 10 Minuten bei 1000 UpM zentrifugiert, um die Zellen zu entfernen, und der Überstand mit einem Aminosäureanalysator auf die verbleibenden Aminosäuren untersucht.
  • Tabelle 1 zeigt den trans-L-Hydroxyprolin-Gehalt in der Kultur, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, und den verbleibenden Anteil von trans-L-Hydroxyprolin. Diese Werte wurden folgendermaßen berechnet:
  • Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren =
  • Gewicht des in der Kultur enthaltenen trans-L-Hydroxyprolin/ Gesamtgewicht der in der Kultur enthaltenen Aminosäuren, einschließlich trans-L-Hydroxyprolin x 100 %
  • Verbleibender Anteil =
  • Gewicht des nach vollständig abgelaufener Züchtung in der Kultur enthaltenen trans-L-Hydroxyprolin/ Gewicht des im Medium zu Beginn der Züchtung im Medium enthaltenen trans-L-Hydroxyprolin x 100 %
  • Der trans-L-Hydroxyprolin-Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, zeigt den Grad des Abbaus von Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, durch den Mikroorganismus. Wenn der Mikroorganismus die im Medium enthaltenen Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, vollständig abbaut, beträgt der Wert 100 %.
  • Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin zeigt den Grad des Abbaus dieser Substanz im Medium durch den Mikroorganismus. Wenn kein Abbau von trans-L-Hydroxyprolin durch den Mikroorganismus stattfindet, beträgt der Wert 100 % Tabelle 1
  • Beispiel 2
  • In diesem Beispiel wurde zur Herstellung eines Vorkulturmediums das Medium A, das die gleiche Zusammensetzung wie in Beispiel 1 aufwies, in Portionen von jeweils 50 ml in 1-Liter- Erlenmeyerkolben gefüllt und in einem Autoklaven 15 Minuten bei 120ºC sterilisiert. Eine Ösenfüllung Proteus mirabilis IFO 3849 wurde in das Vorkulturmedium eingeimpft und 24 Stunden bei 30ºC unter Schütteln gezüchtet. Die resultierende Kultur wurde als Vorkultur verwendet.
  • Getrennt davon wurden 750 ml eines Kulturmediums, das 30 g Maisquellwasser und 160 ml Kollagenhydrolysat (pH 7,5) umfaßte, in einen 2-Liter-Glasfermenter gefüllt und in einem Autoklaven 30 Minuten bei 120ºC sterilisiert. Anschließend wurden 50 ml der Vorkultur unter sterilen Bedingungen in das Kulturmedium eingeimpft und 30 Stunden bei 37ºC unter Rühren und Belüftung gezüchtet (Rotation: 1000 UpM, Belüftung: 1 VVM). Während der Züchtung wurde das Kulturmedium durch Zugabe von 5 N Schwefelsäure auf einen pH-Wert von 8,0 eingestellt. Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin betrug 94 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte in der Kultur 94 % aus.
  • Die auf diese Weise erhaltene Kultur (800 ml) wurde 10 Minuten bei 10 000 UpM zentrifugiert, um die Zellen zu entfernen, sodann wurde der Überstand durch eine Säule laufengelassen, die mit 200 ml eines Ionenaustauscherharzes [Diaion SK-1B (H&spplus;-Typ); Produkt von Mitsubishi Kasei Corporation] gepackt war, um Aminosäuren an das Harz zu adsorbieren. Anschließend wurde das Harz mit Wasser gewaschen und trans-L-Hydroxyprolin mit 0,2 N wäßriger Ammoniaklösung eluiert. Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin betrug 90 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte 96 % aus.
  • Das Eluat wurde sodann unter vermindertem Druck eingeengt, es folgte die Zugabe von Methanol zur Fällung von Kristallen. Die Umkristallisation in Wasser ergab 10,5 g trans-L- Hydroxyprolin (Reinheit: 99,9 %).
  • Beispiel 3
  • In diesem Beispiel wurden die gleiche Vorkultur .und das gleiche Kulturmedium wie in Beispiel 2 verwendet. Die Vorkultur (50 ml) wurde unter sterilen Bedingungen in das Kulturmedium eingeimpft, die Züchtung wurde unter Rühren und Belüftung bei 37ºC unter den gleichen Bedingungen wie in Beispiel 2 durchgeführt. 20 Stunden nach Beginn der Züchtung wurden zum Medium 160 ml Kollagenhydrolysat zugefügt. Die Züchtung war vom Beginn ab nach 60 Stunden vollständig abgelaufen. Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin betrug 93 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte in der Kultur 90 % aus.
  • Die auf diese Weise erhaltene Kultur wurde in gleicher Art und Weise wie in Beispiel 2 gereinigt, wodurch 20,8 g trans-L-Hydroxyprolin (Reinheit: 99,0 %) erhalten wurden.
  • In der vorliegenden Erfindung können Mikroorganismen verwendet werden, die trans-L-Hydroxyprolin im wesentlichen nicht abbauen können oder es nur in einem geringen Maß, d.h. nicht mehr als 15 % abbauen können; z.B. beträgt der verbleibende Anteil bei Planococcus citreus ATCC 14404 85 %, wie aus Tabelle 1 ersichtlich ist. Somit ist ein verbleibender Anteil von weniger als 100 % für die vorliegende Erfindung annehmbar, solange der Mikroorganismus die Fähigkeit besitzt, die anderen Aminosäuren im Medium in wesentlich größerem Ausmaß abzubauen, was durch den Wert für den Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, nach der Züchtung wiedergegeben wird.
  • Bezugsbeispiel
  • In diesem Beispiel wurden 200 ml Kollagenhydrolysat fünffach mit Wasser verdünnt und durch eine Säule laufengelassen, die mit 200 ml eines Ionenaustauscherharzes [Diaion SK-1B (H&spplus;- Typ)] gepackt war, um Aminosäuren an das Harz zu adsorbieren. Anschließend wurde das Ionenaustauscherharzes mit Wasser gewaschen und trans-L-Hydroxyprolin mit 0,2 N wäßriger Ammoniaklösung eluiert. Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin betrug 76 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte 30 % aus.
  • Sodann wurde das Eluat durch eine Säule laufengelassen, die mit 200 ml eines stark basischen Ionenaustauscherharzes [PA-412 (OH&supmin;-Typ); Produkt von Mitsubishi Kasei Corporation] gepackt war. Das Ionenaustauscherharz wurde mit Wasser gewaschen und trans-L-Hydroxyprolin mit 0,075 N Salzsäure eluiert. Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin betrug 74 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte 61 % aus. Anschließend wurde das Eluat durch eine Säule laufengelassen, die mit 200 ml eines Ionenaustauscherharzes [Diaion SK-1B (H&spplus;-Typ)] gepackt war. Das Ionenaustauscherharz wurde mit Wasser gewaschen und trans-L-Hydroxyprolin mit 0,2 N wäßriger Ammoniaklösung eluiert. Der verbleibende Anteil von trans-L-Hydroxyprolin betrug 77 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte 82 % aus.
  • Die endgültige Ausbeute von trans-L-Hydroxyprolin nach den vorstehenden drei Chromatographieschritten betrug 43 %, sein Gehalt, bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren, machte 82 % aus.

Claims (4)

1. Verfahren zur Herstellung von trans-L-Hydroxyprolin, umfassend die Züchtung eines Mikroorganismus, der Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, abbauen kann, der jedoch trans-L-Hydroxyprolin im wesentlichen nicht abbauen kann oder es nur in einem geringen Maß, d.h. nicht mehr als 15 % abbauen kann, in einem Kulturmedium, das ein Kollagenhydrolysat enthält, so lange, bis die Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, im Kulturmedium abgebaut sind, und danach Gewinnung von trans-L-Hydroxyprolin aus der resultierenden Kultur.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei der Mikroorganismus zur Gattung Proteus, Providencia, Deleya oder Planococcus gehört.
3. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Aminosäuren, die nicht trans-L-Hydroxyprolin sind, aus der Gruppe Asparaginsäure, Threonin, Serin, Asparagin, Glutaminsäure, Prolin, Glycin, Alanin, Valin, Cystein, Methionin, Leucin, Isoleucin, Tyrosin, Phenylalanin, Histidin, Lysin, Arginin, Hydroxylysin und α-Aminobuttersäure ausgewählt sind.
4. Verfahren nach Anspruch 1, wobei der Mikroorganismus Proteus mirabilis IFO 3849, Providencia alcalifaciens ATCC 9886, Deleya venusta ATCC 27125 oder Planococcus citreus ATCC 14404 ist.
DE69220326T 1991-11-13 1992-11-11 Verfahren zur Herstellung von Trans-L-Hydroxy-Prolin Expired - Fee Related DE69220326T2 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3296944A JPH05130883A (ja) 1991-11-13 1991-11-13 トランス−l−ヒドロキシプロリンの製造法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69220326D1 DE69220326D1 (de) 1997-07-17
DE69220326T2 true DE69220326T2 (de) 1997-11-20

Family

ID=17840206

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69220326T Expired - Fee Related DE69220326T2 (de) 1991-11-13 1992-11-11 Verfahren zur Herstellung von Trans-L-Hydroxy-Prolin

Country Status (8)

Country Link
US (1) US5364775A (de)
EP (1) EP0542222B1 (de)
JP (1) JPH05130883A (de)
KR (1) KR930010184A (de)
CN (1) CN1033651C (de)
AT (1) ATE154393T1 (de)
DE (1) DE69220326T2 (de)
TW (1) TW209246B (de)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5693503A (en) * 1992-12-03 1997-12-02 Showa Sangyo Co., Ltd. Process for preparation of amino acid
EP0735143B1 (de) * 1995-03-28 1998-11-18 Tanabe Seiyaku Co., Ltd. Verfahren zur Herstellung von D-Aminosäuren
CZ330498A3 (cs) * 1996-04-16 1999-07-14 Chephasaar Chem.-Pharm. Fabrik Gmbh Použití derivátů hydroxyprolinu
US6025327A (en) * 1997-08-08 2000-02-15 Biocell Technology, Llc Hydrolyzed collagen type II and use thereof
US6721142B1 (en) * 2000-12-21 2004-04-13 Western Digital (Fremont) Inc. Non-corrosive GMR slider for proximity recording
US6780841B2 (en) 2001-11-13 2004-08-24 Biocell Technology, Llc Hyaluronic acid and chondroitin sulfate based hydrolyzed collagen type II and method of making same
HUE042605T2 (hu) 2012-05-08 2019-07-29 Codexis Inc Biokatalizátorok és kémiai vegyületek hidroxilálására szolgáló eljárások
JP6869972B2 (ja) * 2016-05-12 2021-05-12 サントリーホールディングス株式会社 L−ヒドロキシプロリンを含有する酵母ヤロウィア・リポリティカの菌体もしくは菌体培養物又はこれらの抽出物及びその用途並びにl−ヒドロキシプロリンの製造方法
KR102265246B1 (ko) * 2016-05-12 2021-06-15 산토리 홀딩스 가부시키가이샤 L-하이드록시프롤린을 함유하는 효모의 균체 혹은 균체 배양물 또는 이들의 추출물 및 그 용도 그리고 l-하이드록시프롤린의 제조 방법
CN109715817B (zh) 2016-06-09 2022-12-09 科德克希思公司 用于化合物的羟基化的生物催化剂和方法
CN109971800A (zh) * 2019-05-17 2019-07-05 南通普悦生物医药有限公司 酶解法制l-羟基脯氨酸的方法
JP2023509452A (ja) 2020-01-03 2023-03-08 バーグ エルエルシー がんを処置するためのube2kモジュレータとしての多環式アミド

Also Published As

Publication number Publication date
EP0542222B1 (de) 1997-06-11
CN1072211A (zh) 1993-05-19
TW209246B (de) 1993-07-11
EP0542222A2 (de) 1993-05-19
CN1033651C (zh) 1996-12-25
EP0542222A3 (en) 1994-08-10
US5364775A (en) 1994-11-15
ATE154393T1 (de) 1997-06-15
DE69220326D1 (de) 1997-07-17
JPH05130883A (ja) 1993-05-28
KR930010184A (ko) 1993-06-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69220326T2 (de) Verfahren zur Herstellung von Trans-L-Hydroxy-Prolin
DE2161164B2 (de) Verfahren zur mikrobiologischen Erzeugung von Proteinmassen und Verwendung des proteinhaltigen Produkts
DE2825245C2 (de)
DE2417337C3 (de)
DE69122931T2 (de) Verfahren zur Herstellung von Aminosäuren
DE2757980C2 (de)
CH683317A5 (de) Verfahren zur Herstellung eines Haarnährmittels.
DE2041418A1 (de) Verfahren zur Herstellung von 1,-3,4-Dihydroxyphenylalaninderivaten
DE1919837B2 (de) Leupeptine, deren Salze und Verfahren zu ihrer Herstellung
DE2528984C3 (de) Bestatin, dessen Verwendung und Verfahren zu dessen Herstellung
DE3203292A1 (de) Verfahren zur herstellung von aminogeschuetzten l-aspartyl-l-phenylalanin-alkylestern
DE1517823A1 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Lysin durch Fermentierung
DE2531999B2 (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von L-Lysin
DE2931792C2 (de)
DE2164170B2 (de) Verfahren zur biotechnischen Her stellung von L Arginin
EP0321722B1 (de) Verfahren zur Herstellung von Dipeptiden
DE3885671T2 (de) Verfahren zur Racemisierung von optisch aktivem Serin.
DE3617368C2 (de) Verfahren zur Herstellung eines stickstoffhaltigen Polysaccharids
DE1960524C3 (de) Fermentatives Verfahren zur Herstellung von L-3,4-Dihydroxyphenylalanin
DE60123513T2 (de) Verfahren zur Herstellung von D-Asparaginderivaten
DE1792403C (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von L Lysin
DE2148953C3 (de) Verfahren zur Herstellung von L-3,4-disubstituierten Phenylalaninen
DE2159179C3 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Isoleucin
DE1642717C (de) Verfahren zur Herstellung von L Pro Im
DE2745515A1 (de) Verfahren zur spaltung eines racemats

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition
8339 Ceased/non-payment of the annual fee