DE1642717C - Verfahren zur Herstellung von L Pro Im - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von L Pro ImInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch aerobes Züchten von Mikroorganismen
in hierfür üblichen, Ammonium- und Chloridionen enthaltenden wäßrigen Nährmedien mit
einem Gehalt an Biotin in einer für das Wachstum der Mikroorganismen mindestens ausreichenden Menge.
Es ist bereits bekannt, daß L-Prolin auf fermentativem Wege unter Verwendung einer Mutanten
von Escherichia coli aus Glutaminsäure hergestellt werden kann. Es ist ferner bekannt, daß sich zur
fermentativen Herstellung von L-Prolin aurh Neurospora sitophila und verschiedene Hefen eignen.
Aus der französischen Patentschrift 1 427 534 ist es bereit? bekannt, daß L-Prolin auf fermentativem
Wege in einem ein Kohlenhydrat enthaltenden Nährmedium angereichert wird, wenn in diesem Brevibacterium
flavum ATCC 15 940 kultiviert wird. Aus der USA.-Patentschrift 3 222 258 ist schließlich bereits
ein Verfahren zur Herstellung von L-Prolin auf fermentativem Wege unter Verwendung von Mikroorganismen
der Gattung Pseudomonas und Candida in einem üblichen, Biotin, Ammonium- und Chloridionen
in einer Konzentration von etwa 0,1 Mol/Liter enthaltenden Nährmedium bekannt.
Die bisher bekannten Verfahren zur Herstellung von L-Prolin sind jedoch wegen der damit erzielbaren
geringen Ausbeute für die großtechnische Herstellung dieser bekannten Aminsäure nicht geeignet.
Aufgabe der Erfindung ist es nun, ein verbessertes Verfahren zur fennentativen Herstellung von L-Prolin
anzugeben, mit dessen Hilfe die den bisher bekannten Verfahren anhaftenden Nachteile beseitigt werden
können und das insbesondere zur großtechnischen Herstellung von L-Prolin geeignet und einfach durchführbar
ist
Es wurde nun gefunden, daß diese Aufgabe dadurch gelöst werden kann, daß man ganz bestimmte Mikro-Organismen
der Gattung Micrococcus glutamicus verwendet und in dem Nähnnedium eine Mindestkonzentration
an Ammonium- und Chloridionen von jeweils 0,5 Mol pro Liter aufrechterhält.
Gegenstand der Erfindung ist nun ein Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch aerobes Züchten von
Mikroorganismen in hierfür üblichen, Aß'-aonium- und Chloridioneri enthaltenden wäßrigen Nährmedien
mit einem Gehalt an Biotin in einer für das Wachstum der Mikroorganismen mindestens ausreichenden
Menge, das dadurch gekennzeichnet ist, daß als Mikroorganismen Micrococcus glutamicus ATCC
21 157, 21 158 oder 21 159 eingesetzt wird und die Ammonium- und Chloridionenkonzentration im
Nährmedium jeweils mindestens 0,5 Mol pro Liter beträgt.
Bezüglich der Konzentration an Biotin in dem Nährmedium ist es zweckmäßig, die Kultivierung unter
solchen Bedingungen durchzuführen, bei denen die Biotinkonzentration auf einem Wert gehalten wird.
bei dem die Mikroorganismenzellen optimal wachsen. Dabei hat sich gezeigt, daß die Konzentration an Ammoniumionen
in dem Nährmedium möglichst hoch gehalten werden muß. Die Bildung von L-Prolin wird begünstigt, wenn die Konzentration des Ammoniumsalzes
in dem Nährmedium auf einem Wert von mindestens etwa 4 Gewichtsprozent gehalten wird,
insbesondere dann, wenn als Ammoniumsalz Ammoniumchlorid verwendet wird. Ferner wurde gefunden,
daß durch die Anwesenheit von zusätzlichen Cnloridionen die Bildung von L-Prolin in synergistischer
Weise begünstigt wird.
Die Abhängigkeit der i.-Prolinbildung von der
Konzentration der Ammoniumionen und Chloridionen sowie der Konzentration an Biotin in dem
Nährmedium geht aus den folgenden Tabellen hervor:
0 | 1.23 | Tabelle | 1 | (0.561) | 4,92 | 6.15 | 7.38 | |
(0) | (0.1871 | 10.4 | (0.748) | (0.935) | (1.122) | |||
(NHJ1SO4 in g dl. | 3,2 | 4.8 | NaCl. & \l {CW MoII) | 15,6 | 12,2 | 15,3 | 13,2 | |
(NH4* in Mol Liter) | 5,7 | 9,4 | 24,4 | 17.4 | 19,0 | 14.8 | ||
7.2 | 11.8 | 2.46 I 3,69 | 27.0 | 28,3 | 27,0 | 19,1 | ||
1.26 (0,187) | 9,4 | 13,8 | (0,374) | 29.5 | 32,4 | 30,0 | 24.6 | |
2.52 (0,374) | H). I | 16.7 | 6,3 | 20.6 | 30.4 | 21.4 | 16.6 | |
3.78 (0,561) | 10.2 | 15.3 | 11,9 | 17.6 | 13.7 | 10.4 | ||
5,04 (0,748) | 18,2 | |||||||
6.30 (0.935) | 21,4 | |||||||
7.46 (1.122) | 25.4 | |||||||
21.8 | ||||||||
Zusammensetzung des Nährmediums
Glukose
[NH4I,Sf)4
NaCI
KH,PO4
K,HPO4
MpSO4 7H.O
FeSf)4 7 H,Ό
MnSO4 4H,O
Bemerkung I) zu Tabelle I
ISg dl
wie in Tabelle I angegeben
wie in Tabelle I angegeben
0.10 g dl
0.10 g dl
(1.05 g dl
0.002 g dl
0,lX>2 ρ dl
ZnSO4 711,0 0.(X)I g dl
NiCI, ■ MU) 0,001 g dl
K-CrO4 . ." 0.00! i; iü
Biotin 100 ■ Ί
Thiaminhulroehlorid - mg 1
Fleischextrakt 0,5 g dl
HainsipfT 0.5 g dl
CaCOj 5.0 g dl
Bemerkung 2) zu Tabelle I
Züchtungsbedingungen
20 ml des Nährmediums werden in einen Sakaguchi-IColben gegossen und sterilisiert. Der Stamm Micrococcus glutamicus ATCC 21 157
ird eingeimpft uiid unter aeroben Bedingungen unter Schütteln bei 28 bis 305C 96 Stunden lang kultiviert.
Bemerkung 3) zu Tabelle I Die Zahlenwerte in der Tabelle I zeigen die gebildete L-Prolinmenge in mg/ml.
Biotin- | : | Menge | -0 (0J74 | Menge | Ammoniumchlorid, g/dl | Menge | Menge | Menee | 6,0 (1.121 | Menge | Menge | Menge | 10,0 (1.870) | Menge | Menge | Menee | |
konzen- | an | Menge | der" | 4.0 tü.748 | an | an er | der | an | an er | der | an | an er | der | ||||
Zucker | t ration | erzeug tem |
an er- | Bak- terien- |
erzeug tem |
zeugter L-GIu- |
Bakte rien |
erzeug tem |
zeugter L-GIu- |
Bakte rien- |
erzeug tem |
zeugter L-GIu- |
Bakte rien |
||||
konzen | L-Prolin | zeueter L-GIu- |
zeüen | L-Prolin | tamin- | zellen | L-Prolin | tamin- | Zellen | L-Prolin | tamin- | zellen | |||||
tration | tamin- | säure | säure | säure | |||||||||||||
j'/i | mg/ml | säure | me dl | me ml | me ml | medi | me/ml | mg/ml | mg/dl | mg/ml | mg/ml | mg/dl | |||||
5 | 16 | me ml | B.O | 5.1 | 20.5 | lO.t | 8.9 | 8.0 | 10.0 | 3.2 | 0.3 | 6,2 | |||||
g/dl | 1" | 6.3 | 23.4 | 16.2 | 9.9 | 23.2 | 16.4 | 13.2 | 7.5 | 16.6 | 7.6 | 0.6 | S.l | ||||
15 | 15 | 8.1 | 30.2 | 29.2 | 14.4 | 20.2 | 21.8 | iS.l | 17.4 | 18.4 | 13.2 | 1.2 | 10.2 | ||||
20 | 12.6 | 19.4 | 31.4 | 18.1 | 5.8 | 27.6 | 21.5 | 7.4 | 212 | 15.6 | 1.8 | 12.4 | |||||
30 | 115 | 3.6 | 312 | 18.8 | 4.6 | 31.2 | 26.5 | 3.2 | 25.8 | 17.8 | 1.5 | 14.8 | |||||
50 | 12.2 | 1.0 | 32.4 | 19.2 | 3.2 | 312 | 27.1 | 18 | 26.2 | 19.6 | 0.9 | 17.1 | |||||
100 | 12.2 | 0.9 | 32.8 | 19.5 | 16 | 318 | "*7 ^ | 11 | 26.4 | 21.2 | 0.3 | 18.6 | |||||
1000 | 12.1 | 0.9 | 3L. | 19.0 | 14 | 31.4 | 2Ϊ.3 | 1.9 | 26.2 | 23.5 | 0.1 | 19.2 | |||||
5 | 1.8 | 0.8 | 11.2 | 3.2 | 3.6 | 9,2 | 2.7 | 1.8 | 8.8 | 1.3 | 0.1 | 3.4 | |||||
10 | 7,1 | ,5.3 | 16.2 | 8.8 | 9.2 | 13.6 | 9.1 | 2.4 | 118 | 3.6 | 0.3 | 7.2 | |||||
20 | 15 | 9.T | 17.2 | 22.4 | 17.3 | 9.4 | 19.4 | 19.7 | 5.0 | 15.8 | 7.9 | 0.7 | 8.5 | ||||
20 | 15,8 | 19.4 | 29.2 | 216 | 15.4 | 21.2 | 26.5 | 3.3 | 17.8 | 13.2 | 1.2 | 9.1 | |||||
30 | 16.8 | 11.0 | 31.4 | 25.4 | 4.2 | 23.0 | 35.0 | 3.9 | 19,8 | 15,4 | 1.7 | 11.2 | |||||
50 | 17.1 | 2.8 | 32.0 | 26.2 | 3.S | 25.0 | 36.4 | 19 | 21.2 | 17,6 | 1.4 | 14.1 | |||||
100 | 17.2 | 31.4 | 26.1 | 3.6 | 26.4 | 37.2 | 2,7 | 21.6 | 20,2 | 0.9 | 15.2 | ||||||
1000 | 17.2 | 2.3 | 31.2 | 25.8 | 3.4 | 26.2 | 36.5 | 2.5 | 21.8 | 218 | 0.6 | 16.4 | |||||
2.. | |||||||||||||||||
Bemerkung l|r: Tabelle II
Zusammensetzung des Nährmediums:
Glukose wie in der Tabelle
NH4Cl wie in der Tabelle
K,H PO4 0.10 g/dl
KH1PO4 0.10 g/dl
MgSO4 · 7H,O 0,05 g dl
FeSO4 · 7H,Ö 0.002 g/dl
MnSO4 · 4H,0 0.002 g dl
ZnSO4 -7H,Ö 0.001 g dt
NiCI, -6H,O 0.001 g dl
K2CrO4 .." Ü.OOI g/dl
Biotin wie in der Tabelle
Thiaminhydrociilorid 2 mg/1
Fleischextrakt 0,5 g/dl
Harnstoff 0 5 a/dl
CaCO3 5,0 g/dl
Bemerkung 2) zu Tabelle II
Züchtungsbedingungen Wie in Tabelle I.
Bemerkung 3) zu Tabelle II Die Mengen an Baktcricnzellen wurden an Hand des Gewichtes der getrockneten Bakterienzellen ermittelt.
Die Beziehung zwischen der Ammoniumchloridkonzcntration
und der Biotinkonzentration geht aus den Tabellen I und II hervor, wobei Ammoniumsulfat
als Ammoniumionenquelle, Natriumchlorid als Ch'.oridionenquelle und Ammoniumchlorid als Quelle
sowohl für Ammonium- als auch Chloridionen eingesetzt wurden. Wie aus diesen Tabellen zu ersehen ist.
steig», die Menge an gebildetem t-Prolin durch Erhöhung
der Ammoniumionenkonzentration in dem Nährmedium an. Darüber hinaus wird die. Bildung von
ι-Prolin durch eine steigende Chloridioncnkonzen·
tration (Zugabe von Natriumchlorid) erheblich beschleunigt. Beträgt die Konzentration an beiden Ionen
0.5 Mol pro Liter oder darüber, dann verstärkt sich diese Neigung erheblich, wobei die Menge an gebildetem
i-Prolin bei einer Konzentration von ungefähr 0.7 bis 1.2 Mol pro Liter ein Maximum erreicht.
Wie aus einem Vergleich der Tabellen I und II hervorgeht, kann die optimale Menge eine beträchtlich
höhere Konzentration bei der Zugabe von Ammoniumchlnrid
als Ammonium- und Chloridionenquelle erreichen als dies der Fall ist, wenn zwei Verbindungen,
wie beispielsweise Ammoniumchlorid und Natriumchlorid,
zugesetzt werden. Die Menge an gebildetem ι-Prolin kann auf diese Weise gesteigert werden.
to Diese Erscheinung scheint auf die Tatsache zurückzuführen
zu sein, daß im Falle von Ammoniumchlorid der osmotische Druck in dem Medium nicht so stark
erhöht wird, daß seine wachstumshemmende Wirkung auf die Mikroorganismen gering ist. wobei die unerwünschte
hemmende Wirkung anderer Ionen, wie beispielsweise von Natrium- und Sulfationen, nicht
eintritt. Ferner steht die Wirkung dieser beiden Ionen auf die Erzeugung von i.-Prolin in enger Beziehung
zu der Konzentration an Biotin in dem Nährmedium.
Die Bildung von L-Prolin zeigt dann ein Maximum, wenn eine Biotinmenge in dem Nährmedium zugegen
ist, die fur das Wachstum der Bakterienzellen ausreicht oder über dieser ausreichenden Menge liegt.
Zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens ist sowohl ein synthetisches Nährmedium als
auch ein natürliches Nährmeüium geeignet, sofern es die für das Wachsen des eingesetzten Mikroorganismus
erforderlichen Nährstoffe enthält. Solche Nährstoffe sind bekannt. Zu ihnen gehören beispielsweise
eine Kohlenstoffquelle, eine Stickstoffquelle und anorganische Verbindungen, wobei diese Nährstoffe
von dem eingesetzten Mikroorganismus in entsprechenden Mengen verbraucht werden.
Als Kohlenstoffquelle seien beispielsweise genannt: Kohlehydrate, wie z. B. Glukose, Fruktose, Maltose,
Rohrzucker. Stärke, Stärkehydrolysat und Melassen, oder irgendwelche anderen geeigneten Kohlenstoff
quellen, wie beispielsweise Glycerin, Mannit. Sorbit,
aliphatische organische Säuren, z. B. Gluer nsäure. Zitronensäure und Essigsäure. Diese Substanzen können
entweder allein oder in Form von Mischungen aus zwei oder mehreren Substanzen eingesetzt werden.
Als Stickstoffquelle kommen verschiedene anorganische oder organische Salze oder Verbindungen in
Frage, beispielsweise Harnstoff, Ammoniak, Ammoniumsalze, z. B. Ammoniumchlorid, Ammoniumsulfat.
Ammoniumnitrat, Ammoniumacetat und Ammoniumphosphat, oder natürliche. Stickstoff enthaltende
Substanzen, beispielsweise Maisquellwasser, Hefeextrakt, Fleischextrakt, Pepton, Fischmehl. Fleischbrühe.
Kaseinhydrolysate, lösliche Fischbestandteile oder Reiskleieextrakt. Diese Substanzen können
ebenfalls allein oder in Form einer Mischung aus zwei oder mehreren Substanzen eingesetzt werden.
Anorganische Verbindungen, die dem Nährmedium zugesetzt werden können, sind beispielsweise Magnesiumsulfat.
Natriumphosphat, Kaliumhydrogenphosphat. Kaliummonohydrogenphosphat, Eisensulfat.
Manganchlorid, Calciumchlorid, Natriumchlorid oder andere Salze von Kalium, Magnesium, Eisen
und Mangan. Außerdem können verschiedene Nährstoffe, wie beispielsweise Vitamine, Aminosäuren oder
Nucleinsäuren, dem Nährmedium zugesetzt werden.
Die Chloi uionen können in Form von beispielsweise
Natriumchlorid, Kaliumchlorid oder Calciumchlorid zugefügt werden. Lie Verwendung von Ammoniumchlorid,
das beide Ionen enthält, ist sowohl aus wirtschaftlichen Gründen als auch hinsichtlich
des Wirkungsgrades zu empfehlen.
Die optimale Konzentration an Biotin, die bei dem erfindungsgemäßen Fermentationsverfahren zur Erzeugung
von ι.-Prolin eingesetzt wird, schwankt etwas mit· der Zusammensetzung des Nährmediums, den
Züchtungsbedingungen u. dgl. Folglich ändert sich die dem Nährmedium zuzusetzende' Biotinkonzentration
mit diesen Bedingungen. Im allgemeinen wird die Zugabe von etwa 30 bis 1000 v/l bevorzugt. Im
Handel erhältliche Quellen für reines Biotin sowie Rohprodukte, die Biotin enthalten, sind einsetzbar.
Falls Biotin enthaltende Substanzen, wie beispielsweise Melassen, in dem Medium verwendet werden,
kann ein Teil des Biotins o';r die ganze erforderliche
Biotinmenge in dieser Form zugeführt werden. Bekannte Biotinersatzverbindungen können ebenfalls
eingesetzt werden. Von deri.<'igen verwendbaren Ersatzverbindungen
seien beispielsweise Biotinhomologe, wie z. B. Biocitin und dJ-Desthiobiotin, Substanzen
mit Pelargonsäuregruppen, wie beispielsweise 7-Keto-8-amino-pelargonsäuresalze und 7,8-Diketopelargonsäure,
höhere ungesättigte Fettsäuren, wie beispielsweise Linoleinsäure und ölsäure sowie nichtionische
oberflächenaktive Mittel, wie beispielsweise Sorbitanmonooleat und Polyoxyäthylensorbitanmonooleat,
erwähnt. Substanzen, die als Äquivalente zu Biotin angesehen werden, können ebenfalls ge-
gebenenfails verwendet werden. Werden diese Ersatzmittel eingesetzt, dann richtet sich die zugesetzte
Menge nach der Wirksamkeit des Ersatzmittels, die im allgemeinen bekannt ist.
Die Züchtung oder Fermentierung wird unter aeroben Bedingungen durchgeführt, beispielsweise durch
aerobes Schütteln oder durch Belüften und Rühren, und zwar bei einer Temperatur von etwa 25 bis 35C C,
verzugsweise 28 bis 32° C. und bei einen, ,Ή von ungefähr
6.0 bis 7,0. Es ist am zweckmäßigsten, das pH
während der Züchtung auf den angegebenen Bereich einzustellen. Als Neutralisierungsmittel für diesen
Zweck seien Ammoniak, Harnstoff, Natriumhydroxyd. Kaliumhydroxyd und Calciumcarboriat erwähnt,
ι.-Prolin wird in der erhaltenen Fermentationsfiüssigkeil
gewöhnlich nach 2- bis 5tägigem Züchten als Hauptprodukt angereichert.
Nach Beendigung d<:r Fermentation kann das
L-Prolin aus eier Fermentalionsflüssigkeit durch Behandlung mit einem Ionenaustauscherharz abgetrennt
werden. Beispielsweise wird das Fermentationsmedium filtriert, die Fermentationsfiüssigkeit mittels
eines Kationenaustauscherharzes behandelt und von letzterem anschließend das L-Prolin eluiert. Nach der
Konzentrierung des Eluais unter vermindertem Druck wird Methanol zugesetzt, um in Methanol kaum
lösliche Aminosäuren durch Filtration abzutrennen. Anschließend wird in der methanolischen i.-f'rolinlösung
das Methanol durch Wasser ersetzt, worauf die Lösung durch ein Katiorenaustauscherharz sowie
durch ein Anionenaustauscherharz zur Entfernung kleiner Mengen basischer und saurer Aminosäuren
geleitet wird. Aus dem konzentrierten mit Methanol versetzten Eluat können nach Filtration und Einengen
zur Trockne unter vermindertem Druck rohe Kristalle von L-Prolin erhalten werden.
Die folgenden Beispiele sollen die Erfindung erläutern. Die Prozentangaben sind Gewichtsprozent.
Ein Nährmedium der folgenden Zusammensetzung wird ir I 1 Wasser hergestellt:
25 g/dl Glukose,
6 g/dl NH4Cl,
0.10g/dl KH7PO4,
0,15 e/dl K-HPO4.
0,10 g/dl MgOO4-TH2O,
0,002 g/dl FeSO4-7H2O,
0,002 g/dl MnSO4-4H2O,
0.001 g/dl ZnSO4-7H2O,
2 mg/1 Thiaminhydrochlorid,
5,0 g/dl CaCO-,
0,5 g/dl Hefeextrakt,
0,5 g/dl Harnstoff,
80 v/dl Biotin.
80 v/dl Biotin.
20 ml des vorstehend beschriebenen Nährmediums werden in einen 500-ml-Sakaguchi-Kolben gegossen
und 15 Minuten lane bei 12O0C sterilisiert. Die Phos-
phate und der Harnstoff werden jeweils getrennt sterilisiert. Auf Teile des erhaltenen Nährmediums,
die in einzelnen Kolben enthalten sind, wird Micrococcus glutamicus ATCC 21 158 aufgeimpft. Das
Züchten wird dann unter aerobem Schütteln 96 Stunden lang bei 300C durchgeführt.
Die Menge des im Fermentationsmedium nach Beendigung des Züchtens angereicherten i.-Prolins
beträgt im Durchschnitt 22,4 mg/ml. Die Menge an als Nebenprodukt anfallender Glutaminsäure beträgt
durchschnittlich 4,2 mg/ml.
Nach Beendigung des Züchtens wird das erhaltene Fermentationsmedium gesammelt und auf ein Volumen
von 11 gebracht. Anschließend wird das pH durch Zugabe von Schwefelsäure auf 2 eingestellt,
worauf unlösliche Substanzen abfiltriert werden. Das Filtrat wird durch ein Kationenaustauscherharz (SuI-fonsäuretyp)
geleitet, worauf nach der Adsorption eine Eluierung mit Ammoniakwasser durchgeführt
wird. 0,31 der L-Prolin-Abflußfraktion werden unter
vermindertem Druck bis auf ein Volumen von etwa 50 ml eingeengt. Anschließend wird kontinuierlich
Methanol zugesetzt, wobei gleichzeitig die Lösung konzentriert wird. Auf diese Weise wird das Wasser
durch Methanol ersetzt. Die Methanollösung wird zur Entfernung von Aminosäuren, die in Methanol
kaum löslich sind, filtriert. Das Methanol wird durch Wasser ersetzt und diese wäßrige Lösung durch eine
Kationenaustauscherharz-Kolonne sowie anschließend durch eine Anionenaustauscherharz-Kolonne
geleitet. Nach der Konzentrierung des Efluats wird das Wasser erneut zur Entfernung von unlöslichen
Substanzen durch Methanol ersetzt. Die erhaltene Methanollösung (etwa 100 ml) wird unter vermindertem
Druck zur Trockne eingedampft. Dabei fallen 16-g roher i-Prolin-Kristalle an.
In 1 1 Wasser wird folgendes Nährmedium hergestellt:
20 g/dl Glukose,
5 g/dl (NH4J2SO4,
5 g/dl NaCl,
0.10g/dl KH2PO4,
0.10 g/dl K2HPO4,
0.05 g/dl MgSO4 -7H2O,
0.002 g/dl MnSO4 4H2O,
0,001 e/dl ZnSO4 - 7H2O,
0,001 g/dl NiCl2 · 6H2O,
0.001 g/dl K2CrO4,
1 mg/ml Thiaminhydrochlorid,
4.0g/di CaCO3,
1,0 g/dl Hefeextrakt,
.0,5 g/dl Harnstoff,
50 γ ft Biotin.
50 γ ft Biotin.
20-ml-Portionen des vorstehend beschriebenen
Nährmediums werden in konische 500-ml-Kolben
gegeben und 15 Minuten lang bei 1200C sterilisiert.
Die Phosphate und der Harnstoff werden getrennt sterilisiert. Jeder Kolben, welcher das Nährmedium
enthält, wird mit Micrococcus glutamicus ATCC 21 157 beimpft. Das Züchten wird dann unter aerobem
Schütteln 96 Stunden lang bei 28° C durchgeführt.
Die nach Beendigung des Züchtens im Fermentationsmedium angereicheue Menge an L-Prolin
beträgt durchschnittlich 24,8 mg /ml. Die Menge der als Nebenprodukt anfallenden l.-Giutaminsäurc wird
zu durchschnittlich 3.1 mg/ml ermittelt.
Nach Beendigung des Züchtens wird das l-'ermcntationsmedium
gesammelt und auf ein Volumen von 1 1 gebracht. Die Abtrennung des ι,-Prolins erfolgt in
der gleichen Weise wie im Beispiel 1. Auf diese Weise werden ungefähr 18 g roher i.-Prolin-Kristalle
erhalten.
In 1 1 Wasser wird ein Nährmedium der folgenden Zusammensetzung hergestellt:
25 g/dl Glukose,
5 g/dl NH4Cl,
0,10g/dl KH2PO4,
0,10g/dl KH2PO4,
0,15 g/dl K2HPO4,
0,05 g/dl MgSO4-7H2O,
0,003 g/dl MnSO4-4H2O,
0,002 g/dl ZnSO4-7H2O,
2 mg/1 Thiaminhydrochlorid.
2 mg/1 Thiaminhydrochlorid.
4,0 g/dl CaCO3,
0,5 g/dl Hefeextrakt,
0,5 g/dl Harnstoff,
100 yft Biotin.
100 yft Biotin.
31 des vorstehend beschriebenen Nährmediums
werden in eine 5-1-Glas-Fermentierungsvorrichtung
gegeben und 15 Minuten lang bei 1200C sterilisiert.
Die Phosphate sowie der Harnstoff werden jeweils
3a getrennt sterilisiert. Anschließend wifd das Nährmedium
mit einer Impfbaktcrienflüssigkeit aus Microcoecus glutamicus ATCC 21 159 beimpft. Das Züchten
wird anschließend unter Belüften und Rühren der Submerskultur bei einer Temperatur von 30° C
durchgeführt, wobei die Belüftung mit 3 I pro Minute erfolgt und mit einer Geschwindigkeit von 650 UpM
gerührt wird.
Die Menge des im Fermentationsmedium nach Beendigung des Züchtens angereicherten i.-Prolins
beträgt 30.4 mg/ml, während die Menge der als Nebenprodukt anfallenden L- Glutaminsäure zu
3,8 mg/ml ermittelt wird.
Nach Beendigung des Züchtens wird das erhaltene Fermentationsmedium in der im Beispiel 1 beschriebenen
Weise behandelt. Dabei werden 70 g rohei L-Prolin Kristalle erhalten.
Das Züchten wird nach der im Beispiel 1 beschriebenen Weise durchgeführt, mit der Ausnahme, dai
die in der folgenden Tabelle III aufgeführten Sub stanzen an Stelle des im Beispiel 1 verwendeten Bia
tins eingesetzt werden. Die Ergebnisse sind ebenfall:
in der folgenden Tabelle III zusammengefaßt.
Biocitin | Tabelle III | Menge an er zeugtem |
Menge | |
L-Prolin | an als Neben produkt |
|||
6o Biotinersatz |
Konzentration | erzeugte | ||
L-Gluta- | ||||
(mg/ml) | minsäun | |||
18,8 | (mg/ml) | |||
6-5 | (5,1) | 7,1 | ||
200 yft | (17,6) | |||
(20 γ ft) | ||||
FortNCt/uni·
Konzentration | Menge an er zeugtem |
Menge | |
Biotincrsatz | L-Prolin | an als Neben produkt |
|
erzeugter !.-Gluta |
|||
(mg/m!) | minsäure | ||
200 ;/l | 16,9 | (mg/ml) | |
d,l-Desthiobiotin | (20 y/1) | 13,6) | 4,2 |
2000 ;·/1 | 14.8 | (14.4) | |
7,8-Diamino- | (200 -//I) | (1,9) | 4,6 |
pclargonsäure | (15,6) | ||
5 | Polyoxyäthylen- | Ij | 10 | Menge an er zeugtem |
Menge | |
lo sorbitanmono- oleat |
i-Prolin | an als Neben produkt |
||||
Eiotincrsatz | Natriumlaurat | Konzentration | erzeugte | |||
L-Gluta | ||||||
Calciuinoleat | (mg ml) | minsäur | ||||
20,8 | (mg ml) | |||||
(7,9) | 2,0 | |||||
20 mg/ml | 17,9 | (25.1) | ||||
(2 mg/ml) | (3,2) | 2,1 | ||||
10 mg/ml | 22,8 | (21,4) | ||||
(1 mg/ml) | (5,9) | 3,2 | ||||
10 mg/ml | (23,7) | |||||
(1 mg/ml) | ||||||
2660
Claims (1)
- Patentanspruch:Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch aerobes Züchten von Mikroorganismen in hierfür üblichen, Ammonium- und Chloridionen enthaltenden wäßrigen Nährmedien mit einem Gehalt an Biotin in einer für das Wachstum der Mikroorganismen mindestens ausreichenden Menge, dadurch gekennzeichnet, daß als Mikroorganismen Micrococcus glutamicus ATCC 21157, 21158 oder 21159 eingesetzt wird und die Ammonium- und Chloridionenkonzentration im Nährmedium jeweils mindestens 0,5 M'ol/Liter beträgt.
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