KR0132440B1 - 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 생합성 방법 - Google Patents

7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 생합성 방법

Info

Publication number
KR0132440B1
KR0132440B1 KR1019940700777A KR19940070777A KR0132440B1 KR 0132440 B1 KR0132440 B1 KR 0132440B1 KR 1019940700777 A KR1019940700777 A KR 1019940700777A KR 19940070777 A KR19940070777 A KR 19940070777A KR 0132440 B1 KR0132440 B1 KR 0132440B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
adipoyl
dna
adca
expandase
promoter
Prior art date
Application number
KR1019940700777A
Other languages
English (en)
Inventor
제이.콘더 마이클
크로포드 로릴리
씨. 맥아더 필리스
에이. 람보섹 존
Original Assignee
빌렘 포엘프 드보어
기스트-브로카데스 베.파우
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 빌렘 포엘프 드보어, 기스트-브로카데스 베.파우 filed Critical 빌렘 포엘프 드보어
Application granted granted Critical
Publication of KR0132440B1 publication Critical patent/KR0132440B1/ko

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0071—Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P35/00—Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P35/00—Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin
    • C12P35/02—Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin by desacylation of the substituent in the 7 position
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P37/00—Preparation of compounds having a 4-thia-1-azabicyclo [3.2.0] heptane ring system, e.g. penicillin
    • C12P37/04—Preparation of compounds having a 4-thia-1-azabicyclo [3.2.0] heptane ring system, e.g. penicillin by acylation of the substituent in the 6 position
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215—Microorganisms
    • Y10S435/911—Microorganisms using fungi
    • Y10S435/933—Penicillium
    • Y10S435/935—Penicillium chrysogenum

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Cephalosporin Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

세팔로스포린 항생물질인 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA)을 제조하기 위한 주요한 중간체가, 형질전환된 페니실륨 크리스제눔(Penicillium chrysogenum) 균주를 아디페이트 공급을 스톡의 존재하에 배양하여 아디포일-6-APA(6-아미노페니실란산)을 생성시키고; 상기 페니실륨 크리소제눔을 형질전환시킨 스트렙토마이세스 클라불리제루스(Streptomyces clavuligerus)와 같은 균주로부터의 익스팬다제(expadase) 유전자가 동일계에서 발현되어 아디포일-6-APA를 환 학장에 의해 아디포일-7-ADCA로 전환시키는 신규한 생합성 받법에 의해 제조된다. 이어서, 아디포일 아실라제를 이용한 아디포일 측쇄의 절단에 의하여 최종 생성물인 7-ADCA가 제조된다. 따라서, 전체 합성은 생합성 방법을 이용하여 수행되며 효율적이고 경제적이다.

Description

7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 생합성 방법
발명의 배경
1. 발명의 분야
본 발명은 현재 유효한 수로 존재하며 오늘날에 이르러 4세대 치료제로서 각광받는 시판용 세팔로스포린 항생제를 제조하는 합성 방법 분야에 속한다. 시판용 세팔로스포린에서 발견되는 바와 같이 측쇄의 다양성이 크고 세팔로스포린의 경제적 중요성이 크므로, 여러 가지 세팔로스포린의 신속한 합성을 허용하는 주요 중간체를 제조하는 보다 경제적이고 효율적인 방법을 달성하는데에 있어서의 중요성이 증가되었다.
이러한 중요한 중간체중 하나가 하기 구조식으로 나타낼 수 있는 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA)이다:
최근에, 7-ADCA는 페니실린 G로부터 생성되며 페닐실린 환 시스템을 5원 환으로부터 세팔로스포린을 특성화하는 6원환으로 확장(expanding)시키기 위한 4 또는 5개의 화학적 단계를 필요로 한다. 전적으로 화학적 합성인 경우와 마찬가지로, 이 방법은 심각한 단점을 갖는다. 상기 방법 중에는 다단계 및 복잡한 공정, 비싼 시약, 상당한 양의 공정 부산물로 인한 유출물 처리 문제 및 화학적 처리 시작 전 매우 불순한 출발물질의 정제가 요구된다. 결과적으로, 현재 이용되고 있는 화학적 방법보다 더 경제적으로 효소적 환 확장 및 측쇄 절단을 달성하여 7-ADCA를 수득하는 미생물학적 또는 발효적 방법에 대한 연구가 진전되고 있다.
따라서, 본 발명은 특히 주요한 세팔로스포린 중간체인 7-ADCA의 제조분야, 더욱 특히는 7-ADCA의 제조를 위한 생합성분야에 속한다.
오늘날까지, 7-ADCA를 제조하는 성공적인 생합성 방법에 대한 연구는 특히 상업적 규모의 관점에서 효과가 없는 것으로 충분히 입증되었다. 예를 들어, 7-ADCA를 수득하는데 있어서 단지 환 확장만이 요구되는 6-아미노페닐실란산(6-APA)을 페닐실린 G의 직접 발효 및/또는 효소적 처리에 의해 제조할 수 있었으나, 불행히도, 정상 대사 경로에서 환 확장을 수행하는 세팔로스포륨(Cephalosporium) 또는 스토렙토마이세스(Streptomyces)의 효소가 기질로서 6-PAP를 수용할 수 없음이 밝혀졌다. 당해 분야에서 집합적으로 DAOCS 또는 익스팬다제(expandase)효소로서 언급되는 상기 효소는 페니실린-형 분자에서 발견되는 페남 환 구조를 세프-3-엠 환으로 확장시키는 것을 촉매하는 효소로서 정의된다. 이후로는 이들 효소를 익스팬다제 효소로서 언급할 것이다.
익스팬다제 효소가 작용하는 기질은 페니실린 N이며, 이것은 환 확장시 데아세톡시 세팔로스포린.C(DAOC)를 제공한다. 이때, 7-ADCA를 수득하기 위해서는 (D)-α-아미노아디포일 측쇄를 절단하는 것만이 필요하지만, 이 측쇄는 효소적 절단에 대해 완강하여 허용되지 않게 낮은 수율로만 수득되는 것으로 입증되었다.
본 발명에 따라, 익스팬다제 효소 시스템을 발현시키도록 형질 전환된 페니실린 생성 미생물에 의해 동일계(in situ)에서 생성되는 익스팬다제 효소 시스템에 대해 허용가능한 기질인(아디포일측쇄를 포함하는) 페니실린 화합물을 신규한 발효 방법에 의해 고역가로 생성하는 효율적인 생합성 방법을 달성할 수 있었다. 이때 익스팬다제 효소는 페니실린 화합물을 세팔로스포린 화합물로 고수율로 환 확장시킨다. 그리고, 중요하게도 제2의 극적 단계에서, 페니실린 화합물(이제는 세팔로스포린 화합물)의 측쇄는 또 다른 효소 시스템에 의해 놀랍게도 고수율로 제거될 수 있다. 본 발명을 포함하는 상기 독특한 생합성 방법으로, 놀라울 정도의 고수율로 7-ADCA를 생성하는 예기치 못한 결과가 초래된다.
2. 선행 문헌에 대한 간단한 기술
칸트웰(Cantwell)등은 문헌[참조:Curr Genet(1990)17:213-221]에서 페니실린 V를 환 확장시킨 다음 생성된 데아세톡시세팔로스포린 V를 효소적 가수분해시켜 7-ADCA를 제조하는 생합성 방법을 제안하였다. 이 제안은 에스.클라불리제루스(S. clavuligerus)로부터 크로닝된 페니실린 N익스팬다제 유전자(cef E)[참조:Kovacevic et al., J. Bacteriol.(1989) 171: 754-760 and U.S. 5,070,020]의 이용 가능성에 근거한 것이다. 그러나, 익스팬다제가 이의 천연 기질인 페니실린 N에 대해서는 작용하지만 페니실린 V에 대해서는 작용하지 않기 때문에, 상기 제안은 페니실린 V를 환-확장시킬 수 있는 변형된 익스팬다제 유전자를 생성하기 위한 유전 공학 기술을 필요로 한다. 그러나 필요한 변형이 칸트웰 등에 의해서 달성되지 못했으며, 이들은 단지 페니실륨 크리소제눔(Penicillium chrysogenum)을 스트렙토마이세스 클라불리제루스로부터의 cef E 유전자로 형질전환시켜 DAOCS (익스팬다제 )효소를 저-수준으로 발현시키는데 성공했을 뿐이다.
익스팬다제 효소는 당해 분야에서, 이의 활성 및 이의 유전 서열 둘 다에 대해 널리 연구되었다. 예를 들어, 문헌[참조:Wolfe, U.S. 4,510,246 및 4,536,476]에서, 사이클라제, 에피머라제 및 환 확장 효소가 스트렙토마이세스 클라불리제루스를 포함하는 원핵세포성 β-락탐 생성 유기체의 세포 비함유 추출물로부터 개별적으로 분리되어 안정한 효소 제제를 제공하였다. EP-A-0 366 354는 말단 잔기 및 아미노산 조성에 의해 특정지워지며 분자량이 약 34,600달톤이라고 알려진, 에스.클라불리제루스로부터 분리 및 정제된 익스팬다제 효소에 대해 기술하고 있다. 그러나 이것은 U.S. 4,536,476에서 동일한 효소로 여겨지는 것에 할당된 분자량 29,000달톤과 대조적이다. EP-A-0 2333 715는 에스.클라불리제루스로부터 수득된 익스팬다제 효소의 분리 및 엔도뉴클레아제 제한지도 특징, 상기 효소의 숙주에서의 형질 전환 및 발현, 및 상기 효소를 사용한 페니실린 N기질의 환 확장의 입증에 대해 기술하고 있다. U.S. 5,070,020는 에스.클라불리제루스로부터 수득된 익스팬다제 효소를 암호화하는 DNA 서열에 대해 기술하고 있으며, 상기 DNA 서열 함유하는 발현 벡터를 사용한 피. 크리소제눔의 형질전환으로 익스팬다제 효소의 발현물을 수득하는 것에 대해 기술하고 있다. 상기 효소가 페니실린 N 이외의 기질의 확장에 유용하다고 제시되고 있으나, 이러한 확장에 대한 실제의 입증은 없다.
상기 기술된 연구는 원핵세포성에스.클라불리제루스로부터 유도된 익스팬다제 효소에 초점을 두고 있다.
상기 동일한 효소, 또는 적어도 외관적으로 동일한 환 확장 활성을 갖는 것으로 보이는 효소가 또한 진핵세포 세팔로스포륨 아크레모늄(Cephalosporium acremonium)[또한 아크레모늄 크리소제눔(Acremonium chrysogenum)으로 언급됨]의 균주에 의해 발현된다. 그러나, 이러한 균주에서, 익스팬다제 활성물은 이작용성 유전자(cef EF)(이러한 이작용성 유전자는 또한 익스팬다제 효소의 데아세톡시세팔로스포란산(DAOC) 생성물을 데아세틸 세팔로스포린 C(DAC)로 전환시키는 천연 작용을 갖는 DACS(하이드록실라제)활성물을 발현시킨다)에 의해 발현된다. 이 결과에 의한 효소는 단일하지만 이작용성인 익스팬다제/하이드록실라제 효소이다. 이들 두 개 유전자 생성물의 활성물을 분리하기 위한 노력이 이루어져 왔지만, 아직까지 성공하지 못했다. 예를 들어, EP-A-0 281 391은, 씨. 아크레모늄(ATCC 11550)으로부터 수득된 DAOCS/DACS 유전자의 분리 및 DNA 서열 확인 및 상기 효소의 상응하는 아미노산 서열에 대해 기술하고 있다. 페니실륨이 형질 전환되어 상기 효소를 발현하지만, 페니실린 G 및 V의 상응하는 세팔로스포린으로의 시도되는 전환은 입증되지 않았다.
더우기, 유전공학 기술이 DACS로부터 DAOCS를 암호화하는 유전 정보를 분리하고 개별적으로 이들을 발현하는 즉석 수단을 제공함에도 불구하고 이러한 분리에 대한 실제 입증은 기술되어 있지 않다.
씨. 아크레모늄의 DAOCS/DACS(익스팬다제 /하이드록실라제)효소는 또한 당해 분야에서 이의 활성, 이의 특징 및 유전 서열의 관점에서 널리 연구되어 왔다. 예를 들어, 문헌[참조 : Demain U.S. 4,178,210; 4,248,966 ; 및 4.307.192]에서, 다양한 페니실린-형 출발 물질은 환을 에피머화하고 확장시키는 씨. 아크레모늄의 세포-비함유 추출물로 처리되어 세팔로스포린 항생제 생성물을 수득한다. 우-쿠앙예(Wu-Kuang Yeh)의 U.S. 4,753,881은 등전점, 분자량, 아미노산 잔기, 하이드록실라제 활성물 대 익스팬다제 활성물의 비율 및 펩타이드 단편의 견지에서 씨. 아크레모늄 효소에 대해 기술하고 있다.
상기에서 논의된 선행 기술은 본 발명의 단지 하나의 국면, 즉, 익스팬다제 효소를 발현하는 유전자로 피.
크리소제눔 균주를 형질전환시키고 효소 발현물을 수득하는 국면을 취급하고 있다. 그러나, 상기 기술은 페니실린 G 및 V가 아니라 페니실린 N을 환-확장시키기 위해 발현된 효소를 사용했을 뿐이다. 이 경우에서 조차, 페니실린 N은 본 발명의 방법에서와 같이 7-ADCA를 제공하기 위해 효소적으로 절단될 수 없는 7-위치 측쇄를 가지고 있다. 본 발명은, 아디포일 측쇄가 피. 크리소제눔 균주에 의해 효율적으로 첨가될 수 있고, 동일 세포내에서 발현된 익스팬다제 효소가 아디포일 7ADCA로의 환 확장을 위해 상기 화합물을 기질로서 효율적으로 사용할 수 있으며, 이어서 아디포일 측쇄가 또다른 효소에 의해 효율적으로 제거되어 7-ADCA를 수득할 수 있다는 놀라운 발견에 근거하고 있다. 본 발명의 다양한 부분적 단편은 선행 기술에서 발견될 수 있지만, 이들의 조합되어 본 발명의 방법에 따라 수득되는 예기치 못한 결과를 수득할 수 있다는 것은 전혀 제안된 바가 없었다.
예를 들어, 6-아디포일 페니실란산의 생성은 당해 분야에 공지되어 있다[ 참조 : Ballio, A. et al. , Nature (1960) 185, 97-99]. 시험관내에 근거한 6-아디포일 페니실란산의 효소적 확장이 또한 당해 분야에 공지되어 있다.[참조 : Baldwin et al., Tetrahedron (1987) 43, 3009-3014 ; 및 EP-A-0 268 343]. 그리고 아디포일 측쇄의 효소적 절단도 또한 당해 분야에 공지 되어 있다. [참조 : Matsuda et al., T. Bact. (1987) 169, 5815-5820].
아디포일 측쇄는 구조식 COOH-(CH2)4-CO-를 갖고 밀접하게 관련된 구조물의 측쇄는 구조식 COOH-(CH2)3-CO-의 글루타릴의 측쇄이다. 글루타릴 측쇄의 효소적 절단은 당해 분야에 공지되어 있다[참조 : Shibuya et al., Agric. Biol. Chem. (1981) 45, 1561-1567; Matsuda and Komatsu, J. Bact. (1985) 163,1222-1228; Matsuda et al., J. Bact. (1987) 169, 5815-5820; Jap. 53-086084(1978-Banyu Pharmaceutical Co. Ltd.); 및 Jap. 52-128293(1977-Bany Pharmaceutical Co. Ltd.)].
또한, EPA-A-0 453 048은 슈도모나스(Pseudomonas )SY-77-1에 의해 생성되는 글루타릴 아실라제의 아디포일-절단 활성을 개선시키는 방법에 대해 기술하고 있다. 알파-서브단위(subunit)내의 특정 위치에서 상이한 아미노산을 치환함으로써, 3내지 5배 더 빠른 속도의 아디포일 절단(아디포일-세린으로부터)이 관측되었다.
EP-A-0 453 048이 외관상으로 아디포일-측쇄에 대해 개선된 활성을 갖는 아실라제를 입증하고 있음에도 불구하고, 이 문헌은 아디포일-세팔로스포린이 최초 장소에서 생성될 수 있는 어떤 방법(본 명세서에 기술된 것과 유사한 방식의 화학적 방법 또는 생합성 방법)도 언급하고 있지 않다.
(D)-α-아미노아디포일 측쇄가 존재하는 경우, 우선 (D)-아미노액시드옥시다제를 사용하여 효소적으로 아미노 그룹을 제거하고 측쇄를 단축시켜 글루타릴(GL-7) 측쇄만 남게 한 다음 제 2 효소 (글루타릴 아실라제)를 사용하여 글루타릴 축쇄를 제거하는 것은 당해 분양에 공지되어 있다. 이러한 2-단계 절단은 문헌[참조 : Matsuda U.S. 3,960,662 ; EP-A-O 275 901; Jap. 61-218057(1988-Komatsu, Asahi Chemical Industry Co.); WO 90/12110(1990-Wong, Biopure Corp.); 및 Isogai et al., Bio/ Technology (1991) 9, 188-191]에 공지되어 있다.
공계류중인 특허원에 대한 참조
본원에 기술된 7-ADCA를 제조하는 생합성 방법과 동일한 방법으로 피.크리소제눔 형질전환체에서 익스팬다제 효소 활성물의 발현에 의존하는 7-ACA를 제조하는 생합성 방법에 대해 기술하고 있는 공계류중인 특허원(대리인 참조번호 18572 IA)이 참조된다. 그러나, 7-ACA생합성 방법에서, 본 명세서에서 제안되지 않은, 뚜렷한 최종 생성물에 대한 전적으로 상이한 재조합대사 경로를 달성하기 위한 추가의 효소적 활성물의 발현을 위해 추가의 형질 전환체가 요구된다.
본 발명의 방법 및 상기에서 기술된 선행 기술의 참조 문헌의 교시에 대한 이해를 보다 더 촉진하기 위해, 페니실린 G 및 세팔로스포린 C를 유도하는 대사 과정, 중간체 생성물 및 수반되는 전환을 수행하는 효소에 대한 예시가 하기에 기재 될 것이다. :
발명의 요약
본 발명은
1) 이소페니실린 N을 생성하며 아디포일-6-아미노 페니실란산(아디포일-6-APA)을 기질로서 허용할 수 있는 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA에 의해 형질전환된 페니실륨 크리소제늄 균주를 이의 성장을 지탱할 수 있는 배양 배지 중에서 유지시키고, 상기 페니실륨 크리소제눔 균주에 의해 동화되고 이용되어 아디포일-6-APA를 생성할 수 있는 아디프산 또는 이의 염 및 에스테르 하나 이상을 함유하는 아디페이트 공급을 스톡을 상기 배지에 가하여 아디포일-6-APA를 생성 시키며, 상기 익스팬다제 효소 활성물의 발현에 의해 상기 균주에 의해 생성된 아디포일-6-APA를 동일계에서(in situ)환 확장시켜 아디포일-7- 아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(아디포일-7-ADCA)을 형성시키고;
2) 상기 아디포일-7-ADCA를 아디포일 아실라제와 접촉시켜 아디포일 측쇄를 제거하여 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA) 생성물을 형성시킨 다음 이 생성물을 분리하는 단계를 포함함을 특징으로 하는, 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA)을 제조하는 신규한 생합성 방법에 관한 것이다.
본원에서 사용된 용어는 하기 지시된 의미를 갖는다:
아디포일-6-APA는 [2S-(2α, 5α,6β)]-3,3-디메틸-7-옥소-6-[(헥산-1,6-디오일)아미노]-4-티아-1-아자비사이클로-[3.2.0]헵탄-2-카복실산을 의미하고; 아디포일-7-ADCA는 7-[(헥산-1,6-디오일)아미노]-3-메칠-8-옥소-5-티아-1-아자비사이클로-(4.2.0)-옥트-2-엔-2-카복실산을 의미한다.
특히, 본 발명은 아디페이트 공급물 스톡이 이나트륨 아디페이트이고 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA가 스트렙토마이세스 클라불리제루스 ATCC 27064로부터 유도되고 아디포일 아실라제가 슈도모나스종으로부터 유도되는 상기 언급된 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA)을 제조하는 신규한 생합성 방법에 관한 것이다.
추가로 본 발명은 스트렙토마이세스 클라불리제루스 ATCC 27064로부터 유도된 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA 및 상기 익스팬다제 활성물-암호화 DNA의 발현을 추진하는 프로모터를 포함하는 벡터, 예를 들어 하기에 기술되는 바와 같은 플라스미드pPenFTSO를 포함하는 재조합 DNA 발현 벡터에 관한 것이다.
또한 본 발명은 스트렙토마이세스 클라불리제루스 ATCC 27064로부터 유도된 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA 및 상기 익스팬다제 활성-암호화 DNA의 발현을 추진하는 프로모터, 예를 들어 페니실륨 크리소제눔 IPNS유전자의 프로모터를 포함하는 재조합 DNA발현 벡터로 형질 전환된 페니실륨 크리소제눔 숙주 세포에 관한 것이다. 특히, 본 발명은 하기에 기술되는 바와 같이 플라스미드 pPenFTSO를 포함하는 재조합 DNA 발현 벡터로 형질 전환된 페니실륨 크리소제눔 숙주 세포에 관한 것이다.
본 발명은 또한 스트렙토마이세스 클라부리제루스 ATCC 27064로부터 유도된 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA 및 상기 익스팬다제-암호화 DNA의 발현을 추진하는 프로모터, 예를 들어 페니실륨 크리소제눔 IPNS 유전자의 프로모터를 포함하는 재조합 DNA 발현 벡터를 포함하는 재조합 페니실륨 크리소제눔 숙주 세포를 유전자 발현에 적합한 조건하에서 배양시키는 단계를 포함하는 방법에 관한 것이다. 특히, 본 발명은 하기에 기술되는 바와 같이 플라스미드 pPenFTSO를 포함하는 재조합 DNA 발현 벡터를 포함하는 재조합 페니실륨 크리소제눔 숙주 세포를 유전자 발현에 적합한 조건하에서 배양시키는 방법에 관한 것이다.
본 발명의 제1국면은 하기 구조식으로 나타낼 수 있는 합성 시판용 세팔로스포린 제조에서 주요 중간체인 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA)를 제조하는 신규한 생합성 방법이다:
세팔로스포린 핵 이외에, 7-ADCA의 두드러진 특징은 7-아미노 그룹 및 3-메틸 그룹이다. 7-아미노 그룹은 특정수의 유도체 측쇄로 전환될 수 있는 것이므로 다양한 시판용 세팔로스포린을 합성하기위한 기초가 된다.
3-메틸 그룹은 항상은 아니지만 통상 세팔렉신의 경우와 같이 시판용 세팔로스포린을 합성하기 위해 특정 기타 측쇄로 전환되어야 할 것이다.
본 발명의 방법의 7-ADCA생성물은 하기 구조식으로 나타낼 수 있는 또다른 주요 세팔로스포린 중간체인 세팔로스포린 C와 대조될 수 있다:
상기 중간체에 대해, 3-아세틸옥시메틸 측쇄는 시판용 세팔로스포린을 합성하는데 있어서 헝용될 수 있다.
그러나, 7-(D)-α-아미노아디포일 측쇄는 추가의 합성 유도체를 합성하는데 있어 허용될 수 없으며 허용가능한 7-아미노 그룹을 수득하기 위해서는 절단되어야만 한다. 불행하게도, 7-(D)-α-아미노아디포일 측쇄는 항상 화학적 방법 또는 생화학적 방법에 관계없이 제거하기 어려운 것으로 입증되었다.
정의
본 명세서 및 특히 단락별로 제목을 붙인 바람직한 양태에 대한 기술에서 사용된 용어는 하기의 의미를 갖는다:
7-ADCA 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산
7-APA 6-아미노페니실란산
DAOC 데스아세톡시세팔로스포란산
DAOCS DAOC 신서타제
DAC 데아세틸세팔로스포린 C
DACS DAC 신서타제
IPNS 이소페니실린 N 신서타제
트리스 트리스[하이트록시메틸]아미노메탄
EDTA 에틸렌디아민테트라이세트산
DEPC 디에틸피로카보네이트
TE 트리스/EDTA 완충액
SSC 염(염화나트륨), 시트르산 나트륨 완충액
SDS 나트륨 도데실설페이트
PEG 폴리에틸렌 글리콜
페니실륨 크리소제눔 배양
본 발명의 제1단계는 이소페니실린 N을 생성하는 페니실륨 크리소제눔의 균주를 이의 성장을 지탱할 수 있는 배양 배지 중에 유지시키고 아디프산 또는 이의 염 및 에스테르를 함유하는 아디페이트 공급물 스톡을 상기 배양 배지에 가하는 단계를 포함한다. 아디페이트 공급물 스톡은 피. 크리소제눔이 배양 배지에 접종된 후에 배양 배지에 가할 수 있지만, 접종시 이디페이트 공급물 스톡이 배양 배지에 이미 존재하는 경우가 바람직하다. 아디프산, 또는 이의 염 및 에스테르는 피. 크리소제눔균주에 의해 동화되고 이용되어 아디포일-6-APA를 생성할 수 있는 것들이며, 이때 상기 피. 크리소제눔 균주는 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA에 의해 형질전환된 것이며 발현에 의해 아디포일-6-APA가 동일계에서 환-확장되어 아디포일-7-ADCA를 형성한다.
크리소제눔 종 뿐만 아니라 페니실륨 속의 기타 종 들도 이소페니실린 N을 생성한다. 그러나, 유래적으로 이소페니실린 N의 최고 생성 균주는 모두 크리소제눔 종으로부터 균주개발에 대한 널리 공지된 기술에 의해 개발된 것들이다. 실질적 문제로서, 본 발명은 기타 종들에 대한 적용가능성이 명백함에도 불구하고 페니실룸 크리소제눔 균주로 제한 되었다. 페니실륨 크리소제눔의 기탁된 균주 또는 기타 공개적으로 입수 가능한 이러한 균주의 공급원이 본 발면의 방법을 수행하기 위한 적합한 출발점이다.
이소페니실린 N을 생성하는 페니실륨 크리소제눔 균주의 성장을 지탱할 수 있는 배양 배지는 당해 분야의 통상의 숙련가가 용이하게 잘 알 수 있는 타입의 것들이다.
예를 들어, 배양은 액침 호기성 발효 방법에 의해 수행될 것이며 사용되는 배지는 이용가능한 많은 적합한 배지 중에서 선택될 것이다. 전형적인 배지는 탄소원으로서 예를 들어 슈크로즈, 글루코즈 및 전분을 이용하고; 질소원으로서 예를 들어 콩가루 및 콩그릿, 면실유, 땅콩가루 및 다양한 아미노산, 이들의 혼합물 및 펩톤을 이용한다. 생성 조건은 수율 및 분리의 용이성을 강조하므로 이러한 상황에서 바람직한 배지는 탄소원이 당밀이고 질소원이 콩가루 및 아미노산일 수 있다.
영양 무기염은 통상적으로 배양 배지에 첨가되며, 하기 이온성 성분을 공급할 수 있는 염을 포함한다: 나트륨, 칼륨, 암모늄, 칼슘, 포스페이트, 설페이트, 클로라이드, 브로마이드, 니트레이트, 카보네이트, 제 2철, 제 1철, 마그네슘, 망간등. 미량 원소는 또한 통상 페니실륨 크리소제눔의 성장, 발달 및 대사를 위해 필수적으로 기타 배양 배지 성분의 오염물로서 미리 공급되지 않는한 배양 배지에 직접 첨가될 수 있다.
페니실륨 크리소제눔 균주는 단지 소량의 7-ADCA를 생성하기에 바람직한 1ℓ들이 진탕 플라스크와 같은 소 용적 장치에서 배양될 수 있다. 그러나, 더 많은 양의 아디포일-7-ADCA가 바람직한 경우, 액침 호기성 발효 조건하의 대규모 발효 탱크가 사용될 것이다.
아디포일-7-ADCA의 대규모 제조를 수행하는 경우, 페니실륨 크리소제눔 균주의 포자는 아가 사면 배지상에 유지 된다. 사면 배지로부터의 포자는 소용적인 성장용 배지에 접종하기 위해 사용된다. 성장용 배지는 비중이 크고 신선하며 왕성하게 성장하는 미생물 배양을 생성하기 위해 항온처리 된다. 그 다음에 이 성장용 배지는 대규모 발효 배지를 위해 접종물로서 사용된다. 특정 경우에, 발효 배지를 위한 접종물로서 추가의 성장용 배지를 포함하는 것이 바람직할 수 있다. 이러한 2단계 성장용 배지는 발호 배지의 용적이 제 1의 성장용 배지보다 매우 더 큰 경우 통상 사용된다. 이런식으로, 미생물의 포자는 우선 소용적인 성장용 배지 중에서 배양되어 더 큰 용적의 성장용 배지를 위한 접종물이 수득된다. 그 다음에 더 큰 용적의 성장용 배지는 대규모 발효 탱크에서 발효의 신속한 시작을 개시할 수 있기에 충분한 농도의 미생물을 공급한다. 성장용 배지는 발효 배지와 동일한 조성을 가지거나 미생물의 성장 및 발육을 소규모로 자극하기 위해 추가의 성분을 함유할 수 있다.
본 발명의 방법에서 사용된 페니실륨 크리소제눔 균주는 약 20 내지 30℃ 온도에서 가장 효율적으로 배양되지만 최적 수율은 온도가 약 22 내지 28℃, 바람직하게는 약 25℃인 경우 수득될 것이다.
아디포일-7-ADCA의 최대 생성은 페니실륨 크리소제눔 균주가 대규모 탱크 중에서 약 10내지 30일, 바람직하게는 15 내지 25일의 기간동안 배양되는 경우 발생한다. 그러나, 250㎖ 진탕 플라스크와 같은 소규모 장치에서 배양되는 경우, 미생물의 성장은 더 급속하며 이것은 보다 단기간, 즉, 4내지 15일, 빈번하게는 5내지 7일내에 아디포일-7-ADCA를 생성한다.
대규모 발효에서 최종 pH가 8.0 이상에 달하는 경우, 아디포일-7-ADCA의 수율은 역으로 영향받을 수 있다. 이런 상황에서, 발효 과정 전체를 통해 배양 배지의 pH를 모니터링하는 것이 바람직하다. pH는 아디포일-7-ADCA의 최대 생성이 발생하는 시기 전에 상기 수준에 도달될 것이며 pH는 적합한 산 또는 완충제를 발효 배지에 가함으로써 편리하게 하향조정될 수 있다고 여겨진다.
아디포일-7-ADCA의 생성에 이어서 크로마토그래피적으로 발효액 샘플을 시험한다.
대부분의 액침 호기성 발효를 이용하는 경우, 페니실륨 크리소제눔 균주의 보다 효율적인 성장 및 아디포일-7-ADCA의 생성 증가를 위해 멸균된 공기를 배양 배지에 통과시킨다. 배양 배지를 통해 공급되는 공기 용적은 통상 약 0.2 공기 용적/분/배양 배지 용적이다. 그러나, 공기 통과 속도를 증가시키면 종종 아디포일-7-ADCA의 생성에 유리한 영향을 줄 수 있다.
페니실륨 크리소제눔 균주는 전형적으로 아디포일-7-ADCA이외에 많은 부산물 및 대사물질을 생성할 것이다. 이들중 몇몇은 산에 불안정하기 때문에, 발효 배지로부터 아디포일-7-ADCA의 회수시 얼마간의 공-생성된 불순물을 파괴하기 위해 단기간 동안 산 pH에서 전체 발효액을 처리하는 것이 바람직하다. 아디포일-7-ACDA 발효 생성물은 여과된 발효액으로부터 회수되어 처리되고 임의로 이온 교환 수지상 크로마토그래피에 의해 발효 배지의 기타 성분으로부터 분리될 수 있으며 필요한 경우 아디포일 측쇄의 효소적 절딴의 후속 단계 전에 크로마토그래피에 의해 추가로 정제될 수 있다. 측쇄 절단이 수행된 후 이러한 이온 교환 크로마크래피 분리를 수행하는 것도 또한 가능하다. 분리시켜야 하는 주 부산물중 하나가 아디포일-6-APA이며 분리를 보다 쉽게하기 위해 상기 부산물을 화학적 또는 효소적으로 분해시킬 수 있다. 먼저, 여과된 발효액을 분순물을 제거하기 위해 수-비혼화성 유기 용매, 예를 들어, n-부탄올 또는 아밀아세테이트를 사용하여 초기 추출물을 포함할 수 있는 예비 정제 공정을 수행한다. 이어서 추출된 발효액을 활성화된 탄소상 크로마토그래피에 의해 예비 방법으로 추가로 정제할 수 있다.
아디페이트 공급물 스톡의 첨가
바람직하게는, 상기와같이 확립된 페니실륨 크리소제눔의 발효 배양시, 즉 접종전에, 아디페이트 공급물 스톡을 발효 배양 배지의 다른 성분에 첨가한다. 임의로, 아디페이트 공급물 스톡은 접종후 특정시에, 예를 들어, 접종후 1, 2 및/ 또는 3일째에 첨가될 수 있다. 아디페이트 공급물 스톡은 배양되는 페니실륨 크리소제눔 균주에 의해 동화되고 이용되어 아디포일-6-APA를 생성할 수 있는 아디프산 또는 아디프산의 하나이상의 염 또는 에스테르로서 정의된다. 아디프산, 이의 염 및 에스테르는 단독으로 또는 배합물로 사용될 수 있다. 이나트륨염이 바람직하지만 칼륨 및 나트륨과의 혼합 염도 또한 적합할 것이다. 메틸 에스테르가 사용될 수 있지만, 에틸 에스테르는 수불용성이다. 아디프산 염 또는 에스테르는 페니실륨 크리소제눔 균주에 의해 동화되고 이용되어 아디포일-6-APA를 생성할 수 있는 것이어야 한다. 예를 들어, 아디프산 자체는 수 불용성 임에도 불구하고 적합한 pH 조건하에서 동화가능한 염이 형성되는 경우 적합할 수 있다.
적합한 익스팬다제 효소
상기에 기술된 바와같이 아디포일-6-APA를 생성하도록 아디페이트 공급물 스톡을 사용하여 배양한 페니실륨 크리소제눔 균주는 또한 익스팬다제 효소의 활성물을 암호화하는 DNA에 의해 형질 전환된 것으로서, 이의 발현의 결과로서 상기 아디포일-6-APA가 동일계에서 환-확장되어 아디포일-7-ADCA를 형성한다.
아디포일-6-APA는 아디페이트 공급물 스톡으로 배양된 페니실륨 크리소제눔에 의해 세포내에서 생성된다. 이러한 세포내 세팅, 즉 동일 세포에 근거한 경우, 형질전환된 페니실륨 크리소제눔은 또한 익스팬다제 효소의 활성물을 암호화하는 DNA를 발현하며, 이때 효소가 기질로서 아디포일-6-APA상에 작용하여 환-확장시켜 아디포일-7-ADCA를 형성한다.
본 발명의 신규한 생합성 방법은 이의 범주내에 익스팬다제 효소의 활성물을 암호화하는 DNA를 사용한 상기 기술된 타입의 페니실륨 크리소제눔 균주의 형질 전환을 포함하며, 상기 DNA의 발현의 결과로서 아디포일-6-APA가 동일계에서 환 확장되어 아디포일-7-ADCA를 형성한다. 따라서, 페니실룸 크리소제눔을 형질 전환시킨 DNA는 당해 분야에서 이해되는 익스팬다제 효소의 활성, 즉 이소페니실린 N을 DAOC로 환-확장시키는 능력 뿐만 아니라 아디포일-6-APA를 아디포일-7-ADCA로 환-확장시키는 능력을 갖는 효소를 발현해야 한다. 그러나, 측쇄 유사성에 근거하여, 익스팬다제 효소가 본 발명의 신규한 생합성 방법에서 작용할 수 있으리라 간주된다.
스트렙토마이세스 클라불리제루스 ATCC 27064로부터 유도된 익스팬다제 효소가 완전히 서열 분석되고 또한 엔도뉴클레아제 지도화에 의해 특성화되었음은 선행기술을 기술하는 부분에서 이미 주지되었다. 그러나, 에스.클라불리제룻, NRRL 3585로부터 유래된 동일한 효소로 여겨지는 것이 상이한 분자량을 갖는다고 보고되었지만 이것이 서열 분석되지는 않았다.
선행 기술에서 이미 동정된 이들 익스팬다제 효소가 본 발명의 신규한 방법에서 유용하다. 에스. 클라불리제루스의 상이한 균주로부터, 또는 상이한 속의 미생물로부터 유도된, 아직 동종되지 않은 기타 익스팬다제 효소가 또한 본 발명의 신규한 생합성 방법을 수행하기에 적합한 것으로 입증될 수 있다. 이러한 신규한 유용한 미생물의 균주 및 속을 동정하고 추정적 익스팬다제 효소를 분리하고 본 발명의 방법에서 사용하기에 적합한 것으로 확립하는 절차는 당해 분양의 숙련가에게 간단하며 널리 공지되어 있다. 신균한 균주 및 속의 유용한 후보 미생물의 세포-비함유된 추출물의 스크리닝은 제1철(Fe2+)이온, 아스코르베이트, α-케토글루타레이트 및 아데노신 트리포스 페이트(ATP)를 포함하는 공지된 DAOCS 조인자(co-factor)의 존재하에 아디포일-6-APA 기질에 상기 추출물을 가함으로서 확실하고 재생성인 방법으로 수행될 수 있다. 아디포일-6-APA 기질은 하기에 추가로 상세히 기술되는 것과 유사한 방법으로 비형질 전환된 페니실륨 크리소제눔에 아디페이트 공급물 스톡을 공급함으로써 충분한 양으로 제조될 수 있다. 목적하는 익스팬다제 효소는 아디포일-7-ADCA가 형성되는 경우 존재하며 이의 존재는 크로마토그래피에 의해 검출할 수 있다.
널리-공지된 재조합 기술을 사용하여 에스.크라불리제루스 및 씨. 아크레모늄의 익스팬다제 서열에 근거한 DNA탐침을 생성할 수 있으며, 예를 들어 본 발명의 방법에서 사용하기에 적합한 익스팬다제를 생성할 것 같은 후보 미생물의 DNA함량을 또한 스크리닝할 수 있다.
익스팬다제 효소의 가능한 공급원
이미 주지된 바와 같이 익스팬다제 효소는 페남 환 구조물(페니실린-형 분자에서 발견됨)의 세프-3-엠 환(세팔로스포린에서 발견되는 바와 같음)으로의 확장을 촉매하는 효소이다. 그러므로 세펨 환을 함유하는 대사물질을 생성하는 유기체는 익스팬다제-암호화 DNA의 가능한 공급원이다. 이러한 유기체의 예는 하기에 기술된 바와 같지만, 이러한 목록은 예시에 불과하며 제한적인 것으로 고려되지 않아야 한다.
진균
세팔로스포륨 아크레모늄(Cephalosporium acremonium)
세팔로스포륨 종(Cephalosporium sp.)
에메리셀로프시스(Emericellopsis)
패실로마이세스(Paecilomyces)
스코플라리오프시스(Scopulariopsis)
디헤테로스포라(Diheterospora)
스피로이듐(Spiroidium)
아녹시오프시스(Anoxiopsis)
악티노마이세테스
스트렙토마이세스 클라불리제루스(Streptomyces clavuligerus)
에스. 림파니(S. lipmanii)
에스. 와다야멘시스(S. wadayamensis)
에스. 토도로미넨시스(S. todorominemsis)
에스. 필리피넨시스 세파마이시니(S. fillipinensis cephamycini)
에스. 헤데로모르푸스(S. heteromorphus)
에스. 파나옌시스(S. panayensis)
에스. 그리세우스(S. griseus)
에스. 카틀레야(S. sattleya)
노카르디아 락탐두란스(Nocardia lactamdurans)
가타 세균
플라보박테리움 종(Flavobacterium sp.)
알칼리제네스 데니트리피칸스(Alcaligenes denitrificans)
마이코플라나 불라타(Mycoplana bullata)
프로비덴키아 레트게리(Providencia rettgeri)
라이소박터 락탐게누스(Lysobacter lactamgenus)
상기 기재된 유기체의 익스팬다젠는 추가의 조사를 위해 단순히 제시된 것이며 상기 모든 것이 본 발명의 신규한 방법을 위해 적절할 것이라고는 할 수 없다. 예를 들어, 익스팬다제 활성 및 하이드록실라제 활성을 모두 가진 효소, 예를 들어 씨. 아크레모늄으로부터의 효소의 사용은 하이드록실화된 아디포일-7-ADCA, 즉, 아디포일 측쇄를 포함한 DAC의 합성을 초래할 수 있다.
익스팬다제 활성물을 암호화하는 DNA단편의 분리
목적하는 익스팬다제 효소의 존재가 상기 기술된 방식으로 검출되었으며, 익스팬다제 효소 활성물을 암호와하는 DNA의 분리를 위한 과정이 또한 당해 분야에서 용이하며 널리 공지되어 있다. 분리되는 목적하는 효소 암호화 DNA와 하이브리드화하는, 익스팬다제 효소를 암호화하는 유전자의 공지된 서열 및 부분서열에 근거한 DNA 탐침이 작제된다. 이러한 탐침의 작제는 익스팬다제 효소를 암호화하는 아미노산 및 뉴클레오타이드 염기-서열 및 관련된 특정 미생물의 코돈 선호성에 대한 지식에 근거한다. 스트렙토마이세스 클라불리제루스 ATCC 27064의 게놈성 DNA에 적용되는 이러한 타입의 전형적 방법에 대한 상세한 설명의 하기에 추가로 기술된다.
익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA의 분리는 재조합 DNA 기술에서 널리 공지된 제한 및 연결 방법을 이용하여 달성된다. 관련된 미생물의 게놈의 엔도뉴클레아제 제한 지도를 갖는 것이 필수적이며, 이로써 적당한 제한 단편이 생성되고 분리될 수 있다. 에스. 클라불리제루스 및 씨. 아크레모늄에 대한 제한 지도가 이미 획득가능하며; 따라서, 전자를 위해서 제한 효소 Bam HI 및 Sal I이 사용되며 전기 영동은 목적하는 1.8내지 2.2kb 크기의 단편을 제공한다.
페니실륨 크리소제눔 균주의 형질전환
익스팬다제 활성물을 암호화하는 DNA단편이 수득되면, 이들은 프로모터, 해독 활성화 서열, 내성 마커, 조절 서열, 코스미드 형성제, 및 형질전환을 허용 또는 촉진하고 유전자 생성물의 발현을 추진하며 형질전환체의 분리를 촉진하는 기타 DNA 서열을 포함하는 DNA단편과 함께 플라스미드 또는 기타 발현 벡터로 삽입될 수 (연결될 수) 있다. 따라서 작제 된 발현 벡터는 그 다음에 페니실린 크리소제눔의 형질 전환 및 익스팬다제 효소의 활성물의 세포내 발현을 달성하는데 사용된다. 형질전환 및 발현을 달성하기 위해 사용되는 기술은 당해 분야에 널리 공지 되어 있으며 이러한 전형적 방법의 상세한 설명이 하기에 더욱 기술되어 있다.
또한 상기에서 이미 기재된 바와 같이, 형질전환된 페니실륨 크리소제눔 균주는 세포내에서 익스팬다제 효소 활성물을 발현한 다음 동일계에서 아디포일-6-APA 기질에 작용하여 이것을 아디포일-7-ADCA로 환 확장시킨다.
신규한 형질전환체
본 발명의 바람직한 양태에서 익스팬다제 유전자의 활성물을 발현하는 특정 페니실륨 크리소제눔 형질전환체는 선행 기술[참조 : Cantewll et al., (1990) Current Genetic, 17, 213-221]과 비교하여 상기 작제의 관점에서 신규하다. 선행 기술 및 본 발명의 2가지의 작제에서, 시험관내 돌연변이 유발은 익스팬다제 유전자에 프로모터를 연결시키는데 사용한다. 선행의 칸트웰 작제에서, 실험 조작은 Xba I/Nde I 링커에 의해 IPNS 프로모터의 3' 말단에서 Xba I 부위에 연결된 익스팬다제 유전자의 ATG에 Nde I 부위를 도입시킨다. 본 발명의 작제에서, Nco I부위는 익스팬다제 유전자의 ATG에서 만들어지고 IPNS링커의 3'말단에서 Nco I 부위에 연결된다.
이러한 작제에서 프로모터-유전자 결합부 주위에 하기 서열을 만든다:
칸트웰 작제는 C를 T로 대체하는 반면, 본 발명의 작제에서는 C가 보존되므로 ATG 출발 코돈에 직접 인접한 IPNS 프로모터의 서열은 천연의 IPNS 유전자를 사용한 경우 발견되는 것과 정확히 일치한다. 단지 단일 뉴클레오타이드 염기가 상이함에도 불구하고 선행 기술의 프로모터는 더 낮은 해독 효율을 초래하여 결과적으로 저 수준의 익스팬다제 유전자 발현을 초래할 수 있다.
기타 차이점은 작제물에 포함되는 프로모터 또는 유전자의 영역에 존재한다. 칸트웰 작제물은 IPNS 프로모터의 5' Bam HI내지 Xba I 3' 영역을 함유하는 반면 본 발명의 벡터는 프로모터의 5' Nco I 내지 Nco I 3' 영역을 함유한다[참조 : Diez, et al., (1990), J. Biol. Chem. 265, 16358-16365]. 이 결과로 칸트웰 작제물에서 IPNS 프로모터의 5' 말단상에 약 250bp가 추가된다. 그러나, 이 영역은 IPNS 유전자의 상부 스트림에 있는 ACV신서타제 유전자의 개방 판독 프레임에 있다.
칸트웰 작제물은 또한 스트렙토마이세스 유전자의 ATG내지 Bam HI 부위 3'를 함유하는 반면, 본 발명의 벡터는 상기 유전자의 ATG 내지 Sal I 부위 3' 를 함유한다[참조 : Kovacevic et al., (1989), J. Bacteriol., 171, 745-760]. 이로써 칸트웰 작제물 상의 3' 말단 서열에 약 1000bps가 추가된다. 본 발명의 작제물은 여전히 익스팬다제 유전자의 상부 스트림 영역내지 ATG의 Bam HI 부위 5'을 함유하지만, IPNS 프로모터에 의해 익스팬다제 유전자의 판독 프레임으로부터 분리되어 있다.
선행 기술에 기재된 작제물에 대한 본 발명의 작제물의 기타 차이점은 사용되는 선별가능한 마커에 관한 것이다. 본 발명의 작제물에서 페니실륨 IPNS 프로모터: 플레오마이신 유전자 융합물의 사용은 다수의 카피수의 통합 또는 고수준의 발현을 허용하는 위치에서의 통합을 선택하는 경향이 있으므로 익스팬다제 유전자를 고수준으로 발현하는 형질 전환체를 더 높은 비율(%)로 잠재적으로 수득할 수 있다.
상기 기술된 타입의 신규한 형질전환체는 PC100으로 동정된 페니실륨 크리소제눔이다. 이의 분류학상 특징은 전형적으로 넓게 퍼진 청녹색 내지 녹색의, 황색 소적으로 포함하는 매끄러운 촉감의 콜로니의 생성; 아가상으로 역 황색 확산; 모든 매끄러운 부분으로 분지된 분생포자 헤드; 길이가 3내지 4mm인 타원형 내지 구형의 분생포자를 포함한다. 피. 크리소제눔을 위한 허용가능한 배양 조건은 증류수 1ℓ중 일수환된 락토즈 1.5%(w/v); 옥수수 침지액 0.5%(w/v); 펩톤 0.5%(w/v); NaCl 0.4%(w/v); MgSO4-7H2O 0.05%(w/v); KH2PO4 0.06%(w/v); FeCl3-6H2O 0.0005%(w/v); CuSO4-5H2O 0.0002%(w/v); 아가 3.0%(w/v)를 포함하는 고체 배지(pH 4.8)를 사용한다. 상기 기술되고 PC100으로 지정된 피. 크리소제눔은 미합중국 메릴랜드 20852 록크빌 파크로운 드라이브 12301 소재의 아메리칸 타입 컬쳐 콜렉션에 기탁되었다(기탁일 : 1992년 8월 27일에 수령되고 1992년 8월 27일에 생존성 확인됨).
아디포일 측쇄의 절단
본 발명의 신규한 생합성 방법의 다음 단계는 아디포일-7-ADCA로부터 아디포일 측쇄의 절단이며, 이것은 아디포일 아실라제 효소 시스템을 사용한 선행 단계의 생성물의 처리를 필요로한다. 이미 상기에 기재한 바와 같이, 본 발명의 중요한 성과는 단일 발효 배양으로 아디포일-7-ADCA의 발효를 초래하는 모든 단계를 수행할 수 있다는 것이다. 이러한 성과는 방법의 단계들로부터의 중간체 생성물을 분리 및 부분적으로 정제할 필요가 없는 경우 예외적으로 개선된 효율을 제공한다. 그러나, 상기 마지막 단계에서, 아디포일 아실라제 효소 시스템이 존재하지 않는다. 즉, 최초 발효 배양에서 동일계로 생성되지 않는다.
본 발명의 신규한 생합성 방법이 배치식(batch-wise)방식으로 수행되는 경우, 제 1단계의 생성물을 분리하고 부분적으로 정제하는 것이 필요할 것이며 이를 수행하기 위한 예비의 방법은 이미 상기에서 기술하였다.
그럼에도 불구하고, 본 발명의 방법은 아디포일 아실라제가 아디포일-7-ADCA와 효과적으로 접촉되며 7-ADCA로의 상기 화합물의 전환이 일어날 수 있도록 하는 방식으로 수행될 수 있다. 이것이 최대로 광범위한 의미의 용어 접촉에 대한 정의이다. 공급 스트림으로서 조 아디포일-7-ADCA의 세포 비함유된 브로쓰를 사용하고 조 아디포일 아실라제 브로쓰로 상기 브로쓰를 배치식으로 처리할 수 있다. 이러한 접근은 초기에 반응물의 실질적 정제를 필요로 하지 않기 때문에 특정 효과를 실현한다. 물론, 변형이 가능하다. 예를 들어, 반응물은 서로 접촉되기 전에 목적하는 정도로 정제될 수 있다. 또한, 배치식보다 연속방식으로 상기 방법을 수행할 수 있다. 반응물 끼리의 접촉은 방법 기술에서 진보성을 유지하는 다양한 방식으로 변형될 수 있다. 따라서, 고정된 효소는 예를 들어, 칼럼을 통해 통과되는 아디포일-7-ADCA와 함께 아디포일 아실라제를 함유하는 칼럼의 형태로 사용될 수 있다. 고정된 효소는 또한 현탁액으로서 아디포일-7-ADCA용액에 첨가될 수 있다. 이러한 고정된 효소는 용이한 효소 회수 및 다수의 재사용의 잇점을 제공한다. 이러한 방법 기술의 또다른 예는 막 반응기와 관련된 것이다. 반응물을 접촉시키는 바람직한 방법은 고정된 효소 칼럼을 경유하는 것이다.
절단 단계에서 유용한 아디포일 아실라제 효소
아치포일 측쇄에 대해 특이적인 것으로 공지된 특정수의 효소가 존재한다. RAEV코포레이션으로부터 시판되는 이디포일 아실라제를 사용하여 수득한 결과가 하기의 실시예에서 더욱 설명된다. 기타 7개의 효소의 세팔로스포린-타입 분자로부터 아디포일 측쇄를 제거하는 것으로 문헌에 보고 되어 있다. 상기 7개 효소중 6개는 슈도모나스 종으로부터의 것이고 7번째의 것은 바실러스(Bacillus)종으로부터의 것이다. 특정 슈도모나스 효소 사이에는 얼마간의 유사성이 존재하지만 모든 상기 7개 효소는 물리적/생물학적 특성에서 어느정도 상이하다.
이들의 특징중 몇몇은 하기에 요약한다:
상기 아디포일 아실라제 효소 모두는 본 발명의 신규한 생합성 방법에서 유용하다. 본 발명의 방법에서 유용한 기타 아디포일 아실라제 효소가 작용해야 하는 실제 기질인 아디포일-7-ADCA에 대해 후보 효소를 시험함으로써 용이하게 발견될 수 있다.
긍정적 결과는 후보 효소가 본 발명의 방법에서 결국 유용하다는 것을 결정하는 확실하고 재생성인 방법을 제공하다. 기질은 문헌 [참조 : Szewczuk and Wellman-Bednawska, Clin. Chim. Acta(1978) 84, 19-26]에서 보고된 방법의 변형을 이용하여 7-ADCA과 아디프산 무수물의 반응물로부터 직접적 방식으로 제조될 수 있다. 아디프산 무수물도 문헌[참조: Albertson and Lundmark, J. Macromol. Sci. Chem. (1990) A27, 397-412]의 방법에 따라 제조될 수 있다. 7-ADCA는 이. 알.스퀴브 앤드 선스, 리미티트(E. R. Squibb Sons, Ltd., NJ) 및 인터켐 코포레이션(Interchem Corop., NJ)을 포함하는 수개의 시판 공급처로부터 구입할 수 있다.
신속한 비색 방법을 사용하여 후보 효소의 대략적 스크리닝을 수행하는 것이 바람직한 경우, 아디포일-PABA(파라-아미노벤조산) 또는 아디포일-PNA(파라 -니트로아닐린)와 같은 비색 기질로 아디포일-7-ADCA 기질을 대체할 수 있다. 측쇄의 절단은 색 형성 종을 제공하며 이의 존재 및 농도는 비색계를 사용하여 용이하게 측정된다. 상기 및 기타 적합한 비색 방법에 관한 더 상세한 정보는 하기 문헌을 참조한다. [참조 : Marelli, L. P. (1968) J. Pharm. Sci. 57 : 2172-2173; Szasz, G.(1969) Clin. Chem. 15: 124-136; Szewczuk, A. et al. (1980) Anal. Biochem. 103-166-169; 및 Reyes, F. et al. (1989) J. Pharma. Pharmacol. 41: 136-137].
RAEV 효소의 N-말단 아미노산 서열과 상기 표에 기술된 acy II 및 GK 16 효소의 큰 서브단위의 비교가 수행되었다. 비교의 결과는 하기에 나타낸다(여기서, 괄호는 할당정도가 덜 결정적임을 의미한다):
REV - 서열확인번호 : 5
S N (S) (G) A V A P G K T A N G N A L (L) L Q N (P)
GK16 - 서열확인번호 : 6
S N S W A V A P G K T A N G N A L L L Q N P
acyII - 서열확인번호 : 7
S N N W A V A P G R T A T G R P I L A G D P
상기 나타낸 서열로부터, 3개의 이들 펩타이트 모두가 관련되어 있음이 명백하다. 그러나, 상기 나타낸 것과 유사한 N-말단 서열을 갖는 단백질이 아르토로박터(Arthrobacter)에 의해 생성된 페니실린 G아실라제를 사용한 경유에서 처럼 반드시 아디포일 아실라제 활성을 갖지는 않을 것이다. 다른 한편, 상기 N-말단 서열에 대해 충분한 상동성을 나타내지 않는 본 발명의 방법에서 유요한 아디포일 아실라제가 존재한다. 예를 들어, 상기 표에 기술된 후지사와 비. 락테로스포루스 J1 아실라제 및 아사히 효소 acyI는 얼마간의 아디포일-7-ACA 아실라제 활성을 가짐을 보여주지만 상기 기술된 기타 효소와 상동성인 어떤 서열도 공유하지 않는다. 결과적으로, 신규한 생합성 방법의 제2단계에서 유용한 아디포일 아실라제의 관점에서 본 발명의 범위는 후보 효소가 아디포일-7-ADCA로부터 아디포일 측쇄를 절단할 수 있는지의 여부, 즉 상기 기술된 바와 같이 용이하게 그리고 확실하게 결정될 수 있는 상기 문제에 의해 결정된다.
적합한 아디포일 아실라제를 찾기 위한 다른 접근이 가능하다. 예를 들어, EPA-A-O 453 048은 슈도모나스 SY-77-1에 의해 생성된 글루타릴 아실라제의 아디포일-절단 활성을 개선시키는 방법에 대해 기술하고 있다.
알파-서브단위내의 특정 위치에서 상이한 아미노산을 대체함으로써, 아디포일 세린으로부터의 아디포일 절단이 3내지 5배 더 빠른 속도를 나타냄이 관찰되었다. 이러한 개선된 효소는 또한 본 발명에서 사용하기에 적합할 것이다. EP-A-O 453 048이 외관상 아디포일 측쇄에 대한 개선된 활성을 갖는 아실라제임을 입증함에도 불구하고, 아디포일-세팔로스포린이 제 1위치로 생성될 수 있는 특정 방법(화학적 방법 또는 본 명세서에서 기술된 것과 유사한 생합성 방법을 통한 방법)에 대해서는 기술하고 있지 않다.
바람직한 양태에 대한 설명
본 발명의 특정의 바람직한 양태에 대한 상세한 설명이 하기에 기술되지만 단지 예시하려는 의도이며 어떤 식으로든 본 발명을 제한하지는 않는다.
페니실륨 크리소제눔 배양 조건
이방법에서 사용된 페니실륨 크리소제눔 균주를 증류수 1ℓ중 일수화된 락토즈 1.5%(w/v); 옥수수 침지액 0.5%(w/v); 펩톤 0.5%(w/v); NaCl 0.4%(w/v); MgSO4-7H2O 0.05%(w/v); KH2PO40.06%(w/v); FeCl3-6H2O 0.0005%(w/v); CuSO4-5H2O 0.0002%(w/v); 아가 3.0%(w/v)으로 구성된 LCSB 배지(pH 4.8)를 함유하는 평판상에 유지시킨다. 25℃ 및 65%상대 습도에서 12일 후에, 단일 콜로니를 분리해 내어 유리 비이드를 함유하는 스크류-탑(screw-top)튜브중 멸균수 2ml에 가한다. 볼텍스(vortex)로 성장 배양물을 부드럽게 한 후, 현탁액을 사용하여 라이스(rice) 플라스크에 접종한다. 천영의 그레인인 Uncle Ben 전환된 쌀을 플라스크 250ml당 25g을 함유한는 라이스 플라스크는 3내지 4배 용적의 증류수로 7분 동안 세척하고 매 30초 마다 혼합한 다음 쌀로의 물 흡수가 약 25%에 도달할 때까지 물을 배수시킨다.
25℃ 및 65% 습도에서 12일 후에, 포자를 멸균수를 50ml을 사용하여 쌀로부터 씻어낸다. 포자 현탁액을 사용하여 액체 배양물을 접종하고 또한 4℃에서 저장하기 위한 배양물의 리오필(lyophile)을 수득한다. 포자를 동용적의 5%탈지 우유에 가하고 멸균 앰플에서 동결 건조시킨다.
진탕 플라스크에서의 균주의 2단계 발효는 페니실린의 생성 또는 RNA 또는 DNA 공급원으로서 균사체의 생성을 위해 사용한다. 씨드(seed)단계는 500ml 플라스크당 증류수 1ℓ중 글루코즈 3.0%(w/v); 파르마메디아 1.0%(w/v); 옥수수 침지액 3.0%(w/v); 암모늄 설페이트 0.2%(w/v); CaCO30.5%(w/v); 인산일칼륨 무수물 0.05%(w/v); 락토즈 1.0%(w/v); 1급 건성 효모 1.0%(w/v)로 구성된 배지 50ml에 1×108개 포자를 가함으로써 개시한다. 배양은 직경이 70mm인 회전 진탕기 상에서 220rpm으로 25℃ 및 65% 상대 습도에서 수행한다. 48시간의 배양후, 생성단계는 500㎖ 플라스크당 증류수 1ℓ중 KH2PO40.05%(w/v); K2SO40.5%(w/v); (NH4)2SO41.0%(w/v);
락토즈 12.0%(w/v), 파르마메디아 2.75%(w/v); CaCo3(침전됨) 1.0%(w/v), 라아드유 1.0%(w/v)로 구성된 배지(pH 6.6) 35ml에 식물성 씨드 2ml을 가해 개시한다. 오토클레이브한 후, 접종전에, 멸균된 25% 나트륨 아디케이트 (pH 6.6)를 가하여 최종 나트륨 아디페이트 농도 2.5%가 되게 한다. 접종 후, 5내지 7일 동안 씨드 단계와 동일한 조건하에서 배양을 계속한다.
균사체가 형질 전환을 위해 또는 DNA의 공급원으로서 원형질체를 생성할 필요가 있는 경우, 균주를 250ml 플라스크당 증류수 1ℓ 20X Clutterbuck 염(Na2NO3120g, KCl 10.4g, MgSO4-7H2O 10.4g, KH2PO430.4g) 50ml, Vogel 미량 원소 (0.3M 시트르산, 0.2M ZnSO4, 25mM Fe(NH4)2(SO4)2-6H2O, 10mM CuSO4, 3mM MnSO4, 8mM 붕산, 2mM Na2MoO4-2H2O) 2.0ml, 트립톤 5g 효모 추출물 5g, 글루코즈 10g 으로 구성된 완전 배지 (CM) 50ml중에서 성장시킨다. 배양은 회전 진탕기상에서 220rpm으로 25℃에서 수행한다.
실시예 2
페니실륨 게놈성 DNA 및 총 RNA의 분리
상기에 기술된 바와 같이 제조된 48시간 배양물로부터 생장성 균사체 성장물을 투막한 무명 천을 통해 여과하고 약체 질소중에 동결시키고 밤새 동결건조시킨다. 건조된 균사체를 유발중 모래 및 유봉으로 분쇄하고 100mM LiCl, 50mM EDTA, 10mM 트리스 pH 8.0, 4% SDS중에 재현탁시킨다. 현탁액을 60℃ 수욕중에서 50내지 55℃로 가열한 후, 혼합물을 우선 1M트리스 (pH 8) 포화된 페놀, 이어서 트리스-포화된 페놀:클로로포름(1:1, v:v) 그 다음에 클로로포름으로 추출한다. RNA를 동용적의 냉 6M LiCl을 가함으로써 수성상으로부터 침전시킨 다음 혼합물을 -20℃에서 2 내지 3시간 동안 유지시킨다. 12000xg에서 4℃로 20분 동안 원심분리한 후, 상음액을 66%(v/v) 에탄올 처리하고 -20℃에서 15분 동안 냉각시켜 DNA를 침전시킨다. 상기한 바와 같이 원심부리한 후, DNA펠렛을 70% 에탄올로 세척하고 건조하고 TE 완충액(10mM 트리스-HCl, pH 7.5, 1mM EDTA)중에 재현탁시킨다. 아가로즈 겔 전기영동에서 에티듐 브로마이드로 염색하여, DNA농도를 공지된 DNA표준물에 비교하여 평가한다.
실시예 1에서 기술한 바와 같이 페니실륨 크리소제눔의 배양물을 회전 진탕기상 220rpm으로 25℃에서 발효 배지(상기 기술한 발효 조건) 35ml중에서 96시간 동안 성장시킨다. 균사체를 진공하에서 와트만(Whatman) #1 필터를 통안 여과로 수집하고 약 50ml의 물로 세척한다. 균사체를 즉시 필터로부터 긁어내고 브레이킹 완충액(50mM 트리스-HCl pH 7.4, 150mM NaCl, 5mM EDTA pH 8.0, 5% SDS) 5ml중에 재현탁시키고, 액체 질소중에 동결시키고 동결건조한다. 밤새 동결건조한 후, 0.1% DEPC 및 1M트리스 (pH 8) 포화된 페놀:클로로포름 : 이소아밀 알콜( 50:50:1) 5ml을 함유하는 물 5ml을 가하고 혼합물을 방치하여 37℃에서 20분 동안 진탕하면서 해동시킨다. 혼합물을 12000xg에서 4℃로 10분 동안 원심분리하고 수층을 제거하고 우선 1M트리스 (pH 8) 포화된 페놀 : 클로로포름 : 이소아밀 알콜(50:50:1)로, 1M 트리스 ( pH 8 )포화된 페놀로, 그 다음에 클로로포름으로 재추출한다. 등용적의 6M LiCl을 최종 수층과 합하고 용액을 -20℃에서 최소 4시간 동안 정치시킨다.
총 RNA를 12000xg에서 4℃로 20분 동안 펠렛화시키고 펠렛을 TE 완충액 0.3ml +3M 아세트산 나트륨 0.03㎖중에 용해시키고 2.5배 용적의 에탄올을 가하여 RNA를 재침전시킨다. 최종 펠렛을 TE완충액 0.1ml중에 용해시키고 RNA농도를 260㎚에서의 흡광도를 이용하여 분광 광도계로 측정한다.
실시예 3
스트렙토마이세스 클라불리제루스 배양 조건
이 공정에서 사용된 스트렙토마이세스 클라불리제루스 균주는 ATCC 27064 이다. 이 균주는 증류수 1ℓ 효모 추출물 4g: 맥아 추추출물 10g: 글루코즈 4g: 아가 20g으로 구성된 평판 ( pH 7.2 )상에서 유지시킨다. 30℃에서 5일 동안 성장시킨 후, 멸균수 2ml을 평판에 가하고 배양 성장물을 아가 표면으로부터 스크래핑시킨다.
생성된 현탁액을 유리미이드를 함유하는 멸균 스크류-탑 튜브로 옮긴다. 볼텍싱하여 배양 성장물을 부드럽게 한후, 현탁액을 사용하여 액체 배양물을 접종한다. 또한 현탁액은 글리세롤을 최종 용적이 15%가 되도록 가함으로써 -70℃에서의 영구 배양 저장을 위해 사용한다.
균사체가 형질전환을 위해 또는 DNA의 공급원을 위해 원형질체를 생성할 필요가 있는 경우 균주를 1ℓ 이 플라스크당 증류수 1ℓ 효모 추출물 3g; 펩톤 5g; 맥아 추출물 3g; 글루코즈 10g; 슈크로즈 340g; MgCl2-6H2O 1.02g; 글리신 5g; 아가 18g으로 구성된 YEME 배지 200ml중에서 성장시킨다. 회전 진탕기상 220rpm, 28℃에서 배양한다.
실시예4
스트렙토마이세스 게놈성 DNA의 분리
상기 기술한 바와 같이 제조된 48시간 배양물로부터 생장성 성장물을 22100xg에서 10분 동안 원심분리한다. 세포를 TE 완충액 10ml중에 재현탁시키고 라이소자임 10mg을 가하고 혼합물을 30℃에서 15분 동안 항온처리한다. 그 다음에 20% SDS 1ml을 가하고 즉시 이어서 TE(pH 8) 포화된 페놀 10ml 및 5M NaCl 1.5ml을 가하고 혼합물을 20분 동안 완만하게 전화시킨다. 상을 12000xg에서 10분 동안 원심 분리하여 분리한 후 수상을 분리하여 새로운 튜브에 옮긴다. 등용적의 클로로포름을 가하고 혼합물을 10분 동안 완만하게 전화시킨다. 상을 12000xg에서 10분 동안 원심분리하여 다시 분리하고 수상을 분리해내어 다시 새로운 튜브로 옮긴다. 2배 용적의 이소프로판올을 조심스럽게 가하고 침전된 DNA를 감고 최소 용적의 TE완충액중에 재용해시킨다.
RNAse A를 최종 농노가 20mg/ml이 되도륵 가하고 용액을 50℃에서 1 시간 동안 항온 처리한다. 그 다음에 프로테아제 K를 100mM NaCl 및 0.4% SDS와 함께 최종 농도가 100mg/ml이 되도록 가하고 혼합물을 37℃에서 1시간 동안 항온처리한다. 용액을 등용적의 TE(pH 8) 포화된 페놀로 추출한 다음, 이어서 또다른 클로로포름 추출한다. 2배 용적의 이소프로판올을 가한 후 최종 추출물로부터의 DNA를 감고 농도를 260nm에서의 흡광도를 이용하여 분광광도계로 측정한다.
실시예 5
스트렙토마이세스 클라불리제루스 익스팬다제 유전자를 함유하는 DNA 단편의 유전자 라이브러리의 작제 및 분리 상기 기술된 방법으로부터 수득한 스트랩토마이세스 클라불리제루스 게놈성 DNA를 제한 효소 Bam HI 및 Sal I 으로 분해한다. 분해된 DNA를 0.8 % 아가로즈 겔상에서 전기영동하고 1.8 내지 2.2kb 크기의 단편을 용출시키고 미리 Bam HI 및 Sal I으로 분해시킨 pUC18 DNA에 연결한다. 연결 혼합물의 희석물을 사용하여 전기포레이션(electroporation)을 이용하여 컴피턴트 JM 109 세포를 형질전환시킨다.[참조; Gene Pulser, Bio-Rad, Richmond, CA] . 컴피탄트 세포의 제조 및 전기포레이션 조건은 제조업자의 지시에 따른다. 형질전환체 혼합물을 암피실린 100mg/ml, 및 2% X-Gal 75ml을 함유하는 LB평판상에 도말한다. 37℃에서 밤새 배양한 후, 재조합 콜로니를 플라스미드 벡터 베타-갈락토시다제 유전자 활성물의 불활성으로 인한 무색 외관에 의해 동정한다. 무색 콜로니를 암피실린 100mg/ml을 함유하는 새로운 LB평판으로 집어낸다. 37℃에서 밤새 성장시킨 후, 콜로니를 니트로셀룰로즈 옮기고 공지된 스트렙토마이세스 클라불리제루스 믹스팬다제 유전자 서열 염기 52내지 918 에 상응 하는, 폴리머라제 쇄 반응에 의해 생성된 탐침과 하이브리드화 시킨다. [참조; Kovacevic et al. (1989) J. Bacteriol. 171:754-760; 및 U.S. 5,070,020]. 폴리머라제 쇄 반응 생성물의 표지화는 제조업자의 지시에 따라 (32p) dCTP 및 올리고표지화 키트 (Oligolabelling kit)(Pharmacia, Piscataway, New Jersey)를 사용한 랜덤-프라이며 연장 반응에의해 달성한다. 하이브리드화 반응은 106CPM의 방사능 표지된 탐침, 30% 포름아미드, 5 X SSC(0.15M NaCl, 0.015M 나트륨 시트레이트 pH 7), 0.1 % SDS, 5X 덴하르트(Denhardt)( 피콜 5g, 폴리비닐피롤리돈 5g 및 BSA 5g: 50X 스톡 500ml을 위해) 및 100mg/ml 송아지 흉선 DNA의 존재하에서 37℃에서 밤새 수행한다. 수개의 형질전환체가 탐침에 강하게 하이브리드화한다. 하나의 콜로니가 제한 효소 분석에 의해 익스팬다제 유전자를 운반하는 벡터를 함유하는 것으로 확인되었으며 이 플라스미드를 pFTSO-1으로 지정한다.
실시예6
플라스미드 DNA의 분리
상기 플라스미드를 함유하는 이 콜라이 배양물을 회전진탕기상 220rpm으로 15mg/ml 테트라사이클린을 포함하는 LB브로쓰(LB 브로쓰 염기 20g/ℓ(Gibco, Paisley, Scotland) 500ml 중에서 12 내지 16시간 동안 37℃에서 성장시킨다. 세포를 4000xg에서 4℃로 10분 동안 원심분리한다. 세포 펠렛을 글루코즈 완충액 (50mM 글루코즈, 25mM 트리스 pH 8.0, 10mM EDTA) 18ml중에 재현탁시키고 글루코즈 완충액 중 40mg/ml 라이소자임 ( Sigma, St. Louis, MO) 2ml를 가하고 혼합하고 혼합물을 실온에서 15분 동안 항온처리한다. 0.2N N4OH, 1% SDS의 새로 제조된 용액 40ml을 가하고 혼합물을 부드럽게 교반하고 빙상에 10분 동안 둔다. 그 다음에 5M 아세트산 칼륨 pH 4.8 30ml을 가하고 잘 혼합하고 생성된 혼합물을 빙상에 추가로 10분 동안 둔다. 세포 찌꺼기를 4000xg에서 4℃로 10분 동안 원심분리하여 펠렛화시키고 생성된 상등액을 투박한 무명천 필터를 총해 여과시킨다. 이소프로판올(0.6 배 용적)을 청정하게 된 상등액에 가하여 플라스미드 DNA를 침전시키고 침전물을 실온에서 20분 동안의 항온처리동안 형성시킨다. 플라스미드 DNA를 4000xg에서 4℃로 20분 동안 펠렛화 한 다음 70% 에탄올로 세척하고 재빨리 건조시킨다. 펠렛을 TE 완충액 9ml중에 재현탁 시킨 다음 CsCl 10g 및 10mg/ml 에티듐 브로마이드 용액 0.387ml을 가한다. 이 용액을 313,100xg에서 24시간 동안 원심분리한다. 염화세슘 구배에 형성된 플라스미드 밴드를 자외선으로 가시화하여 분리한 다음 에티듐 브로마이드를 추출용 수 포화된 부탄올을 사용하여 제거한다. 그 다음에 플라스미드 제제중의 CsCl을 TE 완충액에 대한 투석으로 제거하고 최종적으로 DNA를 PEG( MW 8000 )을 사용하여 농축시킨다. DNA농도를 260nm에서의 흡광도를 이용하여 분광 광도계로 측정한다.
실시예 7
페니실륨 형질전환 벡터 pPenFTSO의 작제
페니실륨 형질전환 벡터를 우성 선별성 마커로서 플레오마이신 내성 유전자를 사용하여 작제한다. 이것은 우선 아가로즈 겔상에서 전기영동에 의해 그리고 아가로즈 겔로부터의 용출에 의해, 플레오마이신 내성 유전자[스트렙토알로테이쿠스 힌두스타누스(Streptoalloteichus hindustanus)]를 함유하여 또한 플라스미드 pUT 713(CAYLA, Toulouse Cedex, France)의 Bam HI/Bgl II 분해로 부터의 효모 사이토크롬 Cl 터미네이터에 커플링된 660bp 단편을 분리함으로써 수행한다. 분리한 단편을 벡터 pSELECT*1(Promega Corporation)의 Bam HI 부위로 연결시키고 유전자의 배향을 제한 효소 분석에 의해 결정한다. 그 다음에 , 적당한 크기의 삽입물이 포함되는 경우 벡터가 코스미드 형성을 위해 사용될 수 있도록 하는 람다 cos 부위를 함유하는 550pb PatI 단편을 삽입한다. 그 다음에, 페니실륨 크리소제눔 이소페니실린 N 신서타제(IPNS) 유전자의 프로모터 영역을 함유하는 1.5 kb NcoI/Bam HI 단편을 IPNS 유전자를 함유하는 게놈성 클론의 Ncol/Bam HI 분해로부터 분리한다. (아가로즈겔상 전기영동 및 아가로즈 겔로부터의 용출에 의함). 분리된 IPNS-프로모터 단편을 Bam HI/Ncol 분해된 벡터에 연결한다. Ncol 부위는 플레오마이신 내성 유전자의 ATG 출말 코돈에 있다. 이 벡터는 pUTZ-2로 지정한다.
스트렙토마이세스 클라불리제루스 익스팬다제 유전자를 함유하는 1.645kb 단편을 pFTSO-1( 상기 이미 언급된 벡터)의 Bam HI 및 Sal I 분해물로부터 0.8%아가로즈 겔상 전기영동 및 아가로즈 겔로부터의 용출에 의해 정제한다. 분리된 단편을 또한 Bam HI 및 Sal I으로 분해된 벡터 pSELECT(Promega Corporation)으로 연결 시킨다. 이 벡터는 pFTSO-8로 지정한다. 신규한 Nco I 부위를 변형된 부위*시험관내 돌연변이 유발 시스템(Promega Corporation)을 사용아여 익스팬다제 유전자의 ATG 출발 코돈에 만든다. 돌연변이 유발은 제조업자의 지시에 따라 수행한다. 올리고뉴클레오타이드는 스트렙토마이세스 익스팬다제 유전자의 공지된 서열로부터의 ATG출발 코돈에 있는 DNA 영역의 암호와 서열을 보충하도록 작제한다. [참조: Kovacevic et al, (1990) Journal of Bacteriology 171, p. 3952-3958]. 올리고뉴클레오타이드는 시아노에틸 포스포라미다이트 화학 공정(Pharmacia Gene Assembler instrumentation)에 의해 합성하며 올리고 서열은 하기와 같다.
서열확인번호:8
3' CGAGAGGATCAGTGAGAGTCCATGGACACGACGG 5'.
돌연변이 유발은 제한 효소 분석에 의해 확인한다. 그 다음에 , 페니실륨 크리소제눔 이소페니실린 N신서타제 유전자를의 프로모터 영역을 함유하는 1.2kb NcoI 단편을 IPNS 유전자를 IPNS 유전자를 함유하는 게놈성 클론의 NcoI 분해물로부터 분리한다.(아가로즈 겔상 전기 영동 및 아가로즈 겔로부터의 용출에 의함). IPNS-프로모터 영역을 익스팬다제 유전자의 ATG 출발 코돈에서 돌연변이 유발에 의해 만들어진 신규한 Nco I 부위에서 pFTSO-8 벡터로 연결시킨다. 익스팬다제 유전자의 프로모터의 배향은 제한 효소 분석에 의해 달성한다. 그 다음에, 이러한 IPNS-프로모터: 익스팬다제 유전자 카세트를 BamHI/Sal I 단편으로서 상기 기술된 BamHI/Sal I 절단 페니실륨 형질전환 벡터 pUTZ-2로 분리한다. 최종 작제물은 pPenFTSO로 지정한다.
실시예 8
페니실륨 β-튜불린 프로모터의 클로닝
페니실륨 β-튜불린 유전자를 하이브리드화 탐침으로서 아스퍼길러스 니거(Aspergillus niger) β-튜불린 유전자를 사용하여 페니실륨 람다 게놈성 라이브러리로부터 클로닝한다. 이들 클론의 서열 분석 및 아스퍼길러스 니거의 β-튜불린 유전자의 공지된 아미노산 서열에 대한 비교로 ATG개시 코돈으로 시작되는 91%의 상동성 영역을 확인한다. 작동적 프로모터를 포함하는 서열을 개시 코돈 및 1.4kb 상부 스트림의 Bam HI 부위 사이에서 분리한다.
페니실륨 β-튜불린 프로모터를 수반하는 형질전환 벡터의 작제
페니실륨 β-튜불린 프로모터를 함유하는 2.0kb Xba I/Hind III 단편을 또한 XbaI/Hind III로 분해한 벡터 pSELECT (Promega Corporation)로 연결시킨다. 신규한 Nco I 부위는 변형된 부위 시험관내 돌연변이 유발 시스템 (Promega Corporation)을 사용하여 부위-지시된 돌연변이 유발에 의해 ATG 출발 코돈에 만들어진다.
돌연변이 유발은 제조업자의 지시에 따라 수행한다. 올리고뉴클레오타이드는 Nco I 부위를 만들기 위해 수개의 변화를 갖는 것을 제외하고는 ATG출발 부위 영역과 상보성이도록 작제하며 돌연변이 유발에 사용한다. 올리고 뉴클레오타이드는 시아노에틸 포스포라미다이트 화학공정(Pharmacia Gene Assembler instrumentation)에 의해 합성하고 올리고 서열은 하기와 같다.
서열확인번호 : 9
5' ATCTCTTTTCTAATACCTTCACCATGGGTGAGATTGTACGTGAT CCC 3'
돌연변이 유발은 제한 효소 분석에 의해 확인한다. 다음에, 페니실륨 β-튜불린 프로모터를 함유하는 1.4kb Bam HI/NcoI 단편을 Bam HI/Nco I 분해된 벡터 pFTSO-8 (실시예 7에서 이미 엄급함)중 스트렙토마이세스 익스팬다제 유전자의 ATG에서 유전공학적으로 제조된 Nco I 부위에 연결시킨다. 이 벡터를 btFTSO-8로 지정한다. β-튜불린 프로모터를 함유하는 1.4kb BamHI/Nco I 단편을 또한 Bam HI/Nco I 분해된 벡터 pUTZ-2(실시예 7에서 이미 언급함)로 연결시킨다. 이 연결은 플레오마이신 내성 유전자의 바로 앞에 직접 β-튜불린 프로모터를 위치시킨다. 이 벡터를 pCI-6으로 지정한다. 그 다음에 , β-튜불린 프로모터 익스팬다제 유전자 카세트를 함유하는 벡터 btFTSO-8로부터의 2.4kb Bam HI/Hind III단편을 Bam HI/Hind III 분해된 벡터 pCI-6에 연결하여 스트렙토마이세스 익스팬다제 유전자 및 플레오마이신 내성 마커가 β-튜불린 프로모터로부터 발현되는 최종의 페니실륨 형질전환 벡터를 수득한다. 이 벡터는 pTS-2라고 지정한다.
실시예 9
페니실륨(GAP) 프로모터의 클로닝
페니실륨 글리세르알데하이드-3-포스페이트 데하이드로게나제(GAP) 유전자를 하이브리드화 탐침으로서 아스퍼길러스 니거로부터의 GAP유전자를 사용하여 페니실륨 람다 게놈성 라이브러리로부터 클로닝한다. 4개의 잠재적 양성물을 세팔로스포륨 GAP유전자의 5' 영역에 대한 프라이머로부처 생성된 PCR 생성물을 사용하여 추가로 탐침한다. [참조: Kimura, H. et al., (1991) J. Ferm.and Bioeng., 71, 145-150]. 폴리머라제 쇄 반응 (PCR)의 프라이머를 위한 올리고뉴클레오타이드는 시아노에틸 포스포라미다이트 화학 공정(Pharmacia Gene Assembler instrumentation)에 의해 합성하며 올리고 서열은 하기와 같다:
서열확인번호 :10
5' CGCGGATCCCGGCATCAACGGCTTCGGTCGTAT 3'
서열확인번호 : 11
5' CGCGGATCCGGGCACGCGCATGGACATGCCAGTG 3'
4개의 추정의 양성물중 하나가 PCR 생성물과 교차 하이브리드화 한다. 상기 게놈성 클론으로 부터의 4kb Bam HI 단편을 서열 분석하기 위해 Bam HI 분해된 벡터 pSELECT(Promega Corporation)에 연결시킨다. 이 벡터를 pTS-O이라 지정한다. 이 단편의 서열 분석은 세팔로스포린 GAP 유전자의 공지된 서열과 비교함으로써 ATG 개시자 코돈을 확인한다.
페니실륨 GAP 프로모터를 수반하는 형질전환 벡터의 작제 스트렙토마이세스 익스팬다제 유전자를 사용하여 페니실륨 GAP 프로모터를 유전자 조작하기 위해, 신규한 Nco I 부위를 벡터 pTS-O을 사용하여 시험관내 부위 지시된 돌연변이 유발에 의해 페니실륨 GAP 유전자의 ATG에 만든다. 돌연변이 유발은 제조업자의 지시에 따라 수행한다. 오리고뉴클레오타이드는 Nco I 부위를 만들기 위해 염기 변화를 갖는 것을 제외하고는 GAP유전자의 ATG 출발 코돈에서 DNA영역의 암호화 서열에 대해 상보적이도록 작제한다. 올리고뉴클레오타이드는 시아노에틸 포스포라미다이트 화학공정(Pharmacia Gene Assembler instrumentation)에 의해 합성하며 올리고 서열은 하기와 같다.:
서열확인번호 : 12
5' CAGTAAACGCAACCATGGTTGTCCAG 3'
돌연변이 유발은 제한 효소 분석에 의해 확인한다. 그 다음에, GAP 프로모터를 함유하는 pTS-O으로부터의 1.9kb Nco I/Bam HI 단편을 스트렙토마이세스 익스팬다제 유전자와 함께 GAP 프로모터를 위치시키기 위해 Nco I/Bam HI 분해된 벡터 pFSO-8(실시예 7에서 이미 언급된 벡터)에 연결시킨다. 이 벡터를 pTS-O-1이라 지정한다. 그 다음에 GAP 프로모터:익스팬다제 카세트를 함유하는 벡터 pTS-O-1로 부터의 3.0kb Bam HI/Hind III 단편을 Bam HI/Hind III 분해된 벡터 pCI-6(실시예 8에서 이미 언급한 벡터)에 연결시켜 스트렙토마이세스 익스팬다제 유전자가 GAP 프로모터로부터 발현하는 최종의 페니실륨 형질전환 벡터 pSD-1을 수득한다.
실시예 10
페니실륨 크리소제눔의 형질전환
상기 기술된 페니실륨 크리스제눔 균주로부터의 원형질체를 회전 진탕기상 220rpm으로 25℃에서 67시간 동안 1×107개 포자를 CM 브로쓰 50ml에 접종함으로써 생성시킨다. 균사체를 투박한 무명 천 필터상으로 여과하여 수집하고 500ml들이 플라스크로 옮기고 100mg노보자임 (Novozyme) 234(Novo Biolabs, Bagsvaerd, Denmark)를 함유하는 KMP( 0.7M KCl, 0.8M 만니톨, 0.02M KPO4pH 6.3) 25ml중에 재현탁시키고 30℃, 100rpm에서 항온처리한다. 스페로플라스트를 투박한 무명 천/글래스울 필터를 통해 여과하여 분리하고 350xg에서 10분 동안 원심분리하여 펠럿화 한다. 그 다음에 스페로플라스트를 KMP완충액 10ml로 3회 세척한 다음 KMPC (50mM CaCl2를 포함하는 KMP)중에 재현탁시켜 5×107개 세포/ ml로 농축시키고 실온에서 20분 동안 정치시킨다. 페니실륨의 형질전환을 위해, 스페로플라스트 현탁액 200ml을 PPC(40% PEG MW 3500, 20mM KPO4, pH 6.3, 5% CaCl2를 사용직전에 가함) 50ml와 함께 DNA(5mg/ml의 헤파린을 포함하는 KPMC 6.2ml중의 벡터 DNA 5mg)에 가하고 형질전환 혼합물을 빙상에서 30분 동안 항온처리한다. 새로이 제조한 PPC 1ml을 가하고 혼합물을 용융된(50℃) 재생 아가 (CM +1.3M 만니톨 및 3% 아가) 50ml로 옮긴다, 그 다음에 형질전환 혼합물을 5개 페트리 디쉬에 분배한다. 25℃에서 24시간 동안의 재생 후, 평판을 OL(1% 아가중 1% 펩톤) 50ml당 100mg 플레오마이신을 함유하는 OL로 입힌다. 입힌 양은 재생 아가의 양과 등량이다. 평판을 25℃에서 7 내지 14일 동안 항온 처리하여 형질전환체의 생성을 관측한다.
실시예 11
아디포일-6-APA 및 아디포일-7-ADCA 발효 생성물의 HPLC분석 고 성능 액체 크로마토그래피(HPLC)를, 사용된 비형질전환된 피, 크리소재늄에서의 아디포일-6-APA생성 및 사용된 형질전환된 피. 크리소제늄에서의 아디포일-7-ADCA의 생성을 분석하기 위해 사용한다. 분석은 625 용매 이동 시스템, 220nm 및 254nm에 세팅된 490E 가변 파장 검출기, 825 막시마(Maxima) 데이터 시스템, 및 정지상으로서 Novo-C18 칼럼을 포함하는 워터스(Water) 시스템상에서 수행한다. 이동상(유속 1m/분)은 5분 동안의 이소크라틱 2%메탄올/98% 0.010M KH2PO4, pH 7.0 및 15분 동안의 2 내지 40%선형 구배의 메탄올 / 0.010M KH2PO4, pH 7.0으로 구성한다. 아디포일-6-APA의 정량은 220nm에서 표준 페니실긴 N의 표준 곡선을 이용하여 측정하고 아디포일-7-ADCA의 정량은 254nm에서 표준 데아세톡시세팔로스포린 N의 표준 곡선을 이용하여 측정한다.
아디포일-6-APA 및 아디포일-7-ADCA의 페니실리나제 처리에 대한 민감성에 대한 분석은 1 단위 /ml의 페니실리나제 I 또는 페니실리나제 II를 여액에 가하고 실온에서 10 내지 30분 동안 항온처리함으로써 수행한다. 이들 샘플은 상기한 바와 같이 동일한 HPLC 조건하에서 진행시킨다.
아디포일-6-APA 및 아디포일-7-ADCA 생성물의 UV 스펙트럼 분석은 510 용매 이동 시스템, 990포토다이오드 정렬 검출기, 990 데이터 시스템 및 정지상으로서 Novo-C18 칼럼을 포함하는 워터스 시스템을 이용하여 수행한다. 사용된 이동상은 상기 기술된 조건과 동일하다.
전체 발효액으로부터의 아디포일-7-ADCA 생성물의 대규모 분리는 510 용매 이동 시스템, 990 포토다이오드 정렬 검출기, 990 데이터 시스템, 및 정지상으로서 mBondapack C18 제조용 칼럼을 포함하는 워터스 시스템을 사용하여 수행한다. 이동상(유속 5ml/분)은 35분 동안의 이소크라틱 0.010M KH2PO4pH 7.0 으로 구성한다.
아디포일-7-ADCA 생성물의 체류 시간에 상응하는 흡수 피이크를 분획 수집기를 사용하여 수집한다.
실시예 12
생활성 분석
아가 확산 생분석을 HPLC 분리된 아디포일-6-APA 및 아디포일-7-ADCA 발효 생성물의 항생 물질 활성을 측정하기 위해 사용한다. 분리된 생성물 20ml을 LB 아가 평판상 5mm 디스크[바실러스 서브틸리스 ATCC 33677 또는 이 콜라이 슈퍼 센서티브 균주(MIT의 Arnold L. Demain 교수로부터 공급됨)가 씨딩된 3%아가를 포함하는 20g/ℓLB 브로쓰 염기(Gibco, Paisley, Scotland)]에 적용시킨다. 바실러스 서브틸리스는 아디포일-6-APA 생성물을 분석하기 위한 지시 균주로서 사용하고 이 콜라이 슈퍼 센서티브 균주로서 사용한다. 37℃에서 15시간 항온처리한 후 생성물을 나타내는 디스크 주위의 지시 세균의 억제된 성장의 무리는 생활성을 보여준다. 이 실험에서 대조군은 β-락탐 구조의 확인을 위한 대조군으로서 페니실리나제를 함유하거나 페니실리나제를 함유하지 않는 아가, 데아세톡시세팔로스포린 C, 세팔로스포린 C, 페니실린 V을 포함한다.
실시예 13
RAEV효소 분석
전체 발효액으로부터 정제된 아디포일-7-ADCA 생성물은 RAEV 효소(RAEV Corp.)의 특이적 활성을 측정하기 위한 기질로서 사용한다. 총 용적 50ml로 0.16M KH2PO4중 10mM 기질, RAEV 효소 1mg, 5%글리세롤을 함유하는 반응 혼합물을 37℃에서 항온처리한다. 5ml 분취량을 0 , 1 , 3 , 5 , 10 , 20 및 30분 시점에서 취하고 0.010M KH2PO4pH 3.5 35ml 로 희석하고 이미 기술된 조건하에서의 HPLC에 의한 분석에 선행하여 -70℃에서 동결시킨다.
비색성 아디포일-P-아미노벤조산 기질에 대한 RAEV효소의 활성은 총 50ml로 0.065 KH2PO4pH 7.0중 5mM 기질 , RAEV 효소 8.25mg, 10% 글리세롤을 사용하여 37℃에서 30분 동안 분석한다. 반응은 96웰 마이크로 역가티쉬에서 수행한다. 0.25M 아세트산중 1M NaNO2의 1/100 희석액 50ml을 가하여 반응을 종결시키고 반응물을 실온에서 3분 동안 정지시킨다. H2O중 10mg/ml 4-아미노-5-하이드록시-2,7-나프탈렌-디설폰산, 일나트륨 염 수화물의 0.5M NaHCO3으로의 1/100 희석액 100ml을 가하고 색 전개를 EL 312 생역학 평판 판독기(Bio-kinetics Plaste Reader)( BioTeck Instruments)를 사용하여 515nm에서 즉시 모니터링한다.
실시예 14
RAEV효소 반응 생성물의 HPLC 분석
HPLC에 의해 모니터링된 아디포일-7-ADCA 기질을 사용하여 모든 RAEV 효소(RAEV Corp.) 분석을 625 용매 이동 시스템, 203nm 및 254nm로 새팅된 490E 가변 파장 검출기, 825막시마 데이터 시스템 , 및 정지상으로서 Novo-C18 칼럼을 포함하는 워터스 시스템을 사용하여 수행한다. 이동상(유속 1ml/분)은 5분 동안의 이소크라틱 2% 메탄올/98% 0.01M KH2PO4, pH 3.5 및 15분 동안의 2 내지 40% 선행 구배의 메탄올/0.010M KH2PO4, pH 3.5 로 구성한다. 표준 7-ADCA를 사용하여 반응 생성물의 체류 시간을 모니터링한다. 반응 생성물의 정량은 254nm에서 표준 7-ADCA의 표준곡선을 사용하여 계산한다.
실시예 15
아디포일-7-ADCA 발효 생성물의 13C-NMR분석
13C-NMR(광밴드 양성자-탈커플링된) 스펙트럼을 푸리어 트랜스폼(Fourier Transform)모드로 1BM-AF-350 분광광도계상 75.4MHz(7.1T)에서 수득된다. 샘플을 350°K에서 5mm 튜브에 D2O(99.8% D, Aldrich) 0.5ml 또는 DMSO-d6(99.0% D, Aldrich) 0.5ml중 발효액으로부터의 아디포일-7-ADCA생성물 50mg으로 구성한다.
NMR데이타는 아디포일-7-ADCA로서의 생성물 생성을 확인시킨다.
실시예 16
다른 아디포일 아실라제 효소에 대한 평가
RAEV효소를 사용하는 연구 이외에, 아디포일-7-ADCA( 및 기타 아디포일-화합물)로부터 아디포일 측쇄의 제거를 다양한 미생물 공급원으로부너 생성된 효소를 사용하여 입증한다. 초기 연구에서, 퍼멘테이션 리서치 인스티튜트(Fermentation Research Institute)에 기탁번호 FERM BP-817 및 FERM BP-818로 각각 기탁된 슈도모나스 종 균주 SE-83 및 SE-495 및 노던 리지날 리서치 래보러토리(Northern Regional Research Laboratory)에 기탁번호 NNRL B-8070으로 기탁된 슈도모나스 종 균주 SY-77-7을 HyCase SF 2.0%(w/v); 일나트륨 글루타메이트 0.5%(w/v) ;효모 추출물 0.5%(w/v); 옥수수 침지 분말 0.2%(w/v); 면실유 0.5%(w/v) 및 글루타르산 0.1% (w/v)을 함유하는 배지중에서 72시간 동안 성장시킨다. 원심분리에 의해 세포를 회수하고 50mM인산염 완충액, pH 8.0으로 세착한 다음 완충액중에 재현탁하고 소용적의 클로로포름 첨가에 의해 외부 막을 투과성으로 만든다. 그 다음에 분취량의 세포 현탁액을 아디포일-파라-나트로아닐린(ad-PNA)과 혼합하고 30℃에서 2내지 18시간 동안 항온처리한다. 항온처리 후, 혼합물을 10%(w/v) 아세트산의 첨가에 의해 산성화한다. 그 다음에, 유리된 p-니트로아닐린을 감마-글루타민-트랜스퍼라제(Sigma 제품 번호 545-A)의 분석을 위한 시그마 케미칼 캄파니에 의해 키트-형태로 공급되는 시약을 사용하여 디아조 화합물로 전환시킨 후 비색 방법에 의해 검출한다. 3개 균주의 상대적 활성은 SE-495, SE-83 및 SY-77-1에 대해 각각 100%, 85.5% 및 48%이다. 사기 REAV효소를 위해 기술된 것과 유사한 방법을 사용하여 아디포일-7-ADCA에 대한 SE-83 및 SE-495의 활성을 또한 입증한다. SY-77-1에 의한 베타-락타마제의 생성은 아디포일-7-ADCA에 대한 이 균주의 탈아실화 활성의 입증을 방해한다.
유사한 방법에 대해, 아디포일-아실라제 생성물을 또한 2개의 진균 균주[알테르나리아(Alternaria) 종 MA-133, ATCC No. 20492 및 아스퍼길러스 종 MA-13, ATCC No. 20491; 참조: U.S. 4, 141, 790(Meiji Seika Kaisha Ltd) 및 U.S. 3,239,394(Merk CO., Inc)에서 세팔로스포린 C 아실라제 생성자로 기술된 3개의 추가의 세균 균주[브레비박테리움(Brevibacterium), ATCC No. 14,649: 및 아크로박테리움(Achromobacterium), ATCC No. 14,648 및 플라보박테리움(Flavobacterium), ATCC No. 14,650)에 대해서도 입증한다.
서열 리스트
(1)일반 정보:
(i) 출원인: 마이클 제이. 콘더
필리스 맥아다
존 람보섹
(ii)발명의 명칭 : 7-ADCA를 제조하는 신규한 생합성 방법
(iii) 서열수 : 12개
(iv)서신 주소 :
(A)수신인 : 머크 앤드 캄파니, 인코보레이티드
(B)거리 : 이스트 링컨 애비뉴 126
(C)도시 : 라웨이
(D)주 : 쥬저지
(E)국가 : 미합중국
(F)우편번호 : 07065
(v)컴퓨터 판독형 :
(A)매질형 : 플로피 디스크
(B)컴퓨터 : IBM PC 호환성
(C)작동체계 : PC-DOS/MS-DOS
(D)소프트웨어 : PatentIn Release 1.0, 버전 1.25
(vi)현 특허원 네이타 :
(A)출원번호 : US 07/757,879
(B)출원일 : 1991년 9월 11일
(C)분류 :
(vii)변리사/대리인 정보 :
(A)성명 : 레이몬드 엠, 스피어
(B)등록번호 : 26,810
(C)참조/ 문서 번호 : [07/757,879] 18532
(viii)전신 정보
(A)전화 : (908) 594-4481
(B)팩스 : (908) 594-4720
(2)서열확인번호 : 1에 대한 정보
(i)서열 특성 :
(A)길이 : 14개 bp
(B)타입 : 핵산
(C)본쇄 : 이본쇄
(D)형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 1:
TCTAGACACC ATGG
(2)서열확인번호 : 2에 대한 정보
(i)서열 특성 :
(A)길이 : 16개 bp
(B)타입 : 핵산
(C)본쇄 : 이본쇄
(D)형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 : 2
GTGAGATTG ATGGAC
(2)서열확인번호 : 3에 대한 정보
(i)서열 특성 :
(A) 길이 : 16개 bp
(B) 타입 : 핵산
(C) 본쇄 : 이본쇄
(D) 형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호: 3
TCTAGACACT ATGGAC
(2)서열확인번호 : 4에 대한 정보:
(i)서열 특성 :
(A) 길이 : 16개 bp
(B) 타입: 핵산
(C) 본쇄 : 이본쇄
(D) 형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 : 4
TCTAGACACC ATGGAC
(2)서열확인번호 : 5에 대한 정보:
(i)서열 특성 :
(A) 길이 :22개 아미노산
(B) 타입 :아미노산
(C) 본쇄 :일본쇄
(D) 형태 : 선형
(ii)분자형 :펩타이드
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 : 5
Ser Asn Ser Gly Ala Val Ala Pro Gly Lys Thr Ala Asn Gly Asn Ala
1 5 10 15
Leu Leu Leu Gln Asn Pro
20
(2) 서열확인번호 : 6에 대한 정보:
(i)서열 특성 :
(A)길이 : 22개 아미노산
(B)타입 : 아미노산
(C)본쇄 : 일본쇄
(D)형태 : 선형
(ii)분자형 : 펩타이드
(iii)서열 기재 : 서열확인번호: 6
Ser Asn Ser Trp Ala Val Ala Pro Gly Lys Thr Ala Asn Gly Asn Ala
1 5 10 15
Leu Leu Leu Gln Asn Pro
20
(2) 서열확인번호 : 7에 대한 정보:
(i)서열 특성 :
(A) 길이 : 22개 아미노산
(B) 타입 : 아미노산
(C) 본쇄 : 일본쇄
(D) 형태 : 선형
(ii)분자형 : 펩타이드
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 : 7
Ser Asn Asn Trp Ala Val Ala Pro Gly Arg Thr Ala Thr Gly Arg Pro
1 5 10 15
Ile Leu Leu Gly Asp Pro
20
(2)서열확인번호 : 8에 대한 정보
(i)서열 특성 :
(A) 길이 : 34개 bp
(B) 타입 : 핵산
(C) 본쇄 : 일본쇄
(D) 형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA (게놈)
(iii)서열 기재 :서열확인번호 :8
CGAGAGGATC AGTGAGAGTC CATGGACACG ACGG
(2) 서열확인번호 : 9에 대한 정보 :
(i)서열 특성 :
(A)길이 : 47개 bp
(B)타입 : 핵산
(C)본쇄 : 일본쇄
(D)형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 : 9
ATCTCTTTTC TAATACCTTC ACCATGGGTTG AGATTGTACG TGATCCC
(2)서열확인번호: 10에 대한 정보 :
(i)서열 특성 :
(A) 길이 : 33개 bp
(B) 타입 :핵산
(C) 본쇄 : 일본쇄
(D) 형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 :10
CGCGGATCCC GGCATCAACG GCTTCGGTCG TAT
(2)서열확인번호: 11에 대한 정보:
(i)서열 특성 :
(A)길이 :34개 bp
(B)타입 : 핵산
(C)본쇄 : 일본쇄
(D)형태 : 선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 :11
CGCGGATCCG GGCACGCGCA TGGACATGCC AGTG
(2)서열확인번호 : 12에 대한 정보:
(i)서열 특성 :
(A)길이 : 26개 bp
(B)타입 : 핵산
(C)본쇄 :일본쇄
(D)형태 :선형
(ii)분자형 : DNA(게놈)
(iii)서열 기재 : 서열확인번호 : 12
CAGTAAACGC AACCATGGTT GTCCAG

Claims (7)

1) 이소페니실린 N을 생성하며 아디포일-6-아미노페니실란산(아디포일-6-APA)을 기질로서 허용할 수 있는 익스팬다제(expanase)효소 활성물을 암호화하는 DNA에 의해 형질전환된 페니실륨 크리소제눔(Penicillium chrysogenuum) 균주를 이의 성장을 지탱할 수 있는 배양 배지 중에서 유지시키고, 상기 페니실륨 크리소제눔 균주에 의해 동화되고 이용되어 아디포일-6-APA를 생성할 수 있는 아디프산 또는 이의 염 및 에스테르 하나 이상을 함유하는 아디페이트 공급물 스톡을 상기 배지에 가하여 아디포일-6-APA를 생성시키며, 상기 익스팬다제 효소 활성물의 발현에 의해 상기 균주에 의해 생성된 아디포일-7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(아디포일-7-ADCA)을 형성시키고 ;
2) 상기 아디포일-7-ADCA를 아디포일 아실라제와 접촉시켜 아디포일 측쇄를 제거하여 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산(7-ADCA) 생성물을 형성시킨 다음, 이 생성물을 분리하는 단계를 포함함을 특징으로 하는 , 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산 (7-ADCA)을 제조하는 생합성 방법.
제1항에 있어서, 아디페이트 공급을 스톡이 이나트륨 아티페이트인 생합성 방법.
제1항에 있어서, 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA가 스트렙토마이세스 크라불리제루스(Streptomyces clavuligerus) ATCC 27064로부터 유도되는 생합성 방법.
제1항에 있어서, 아디포일 아실라제가 슈드모나스(Pseudomonas) 종으로부터 유도되는 생합성 방법
스트렙토마이세스 클라불리제루스 ATCC 27064로부터 유도되는 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA; 및 페니실륨 크리소제눔 IPNS유전자의 프로모터로 필수적으로 구성되며 상기 익스팬다제 활성물-암호화 DNA의 발현을 추진하는 프로모터로 필수적으로 구성되며, PC100(ATCC 74182)로 지정된 재조합 페니실륨 크리소제늄 균주의 염색체성 DNA로 통합될 수 있는 재조합 DNA 발현벡터인 플라스미드 pPenFTSO
스트렙토마이세스 클라불리제루스 (A)ATCC 27064로부터 유도되는 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA; 및 페니실륨 크리소제눔 IPNS유전자의 프로모터로 필수적으로 구성되며 상기 익스팬다제 활성물-암호화 DNA의 발현을 추진하는 프로모터로 필수적으로 구성되면 숙주 세포의 염색체성 DNA로 통합되는 재조합 DNA발현 벡터인 플라스미드 pPenFTSO로 형질 전환된 PC 100(ATCC 741820로 지정된 페니실륨 크리스제늄 숙주세포.
스트렙토마이세스 클라부리제루스 ATCC 27064로부터 유도되는 익스팬다제 효소 활성물을 암호화하는 DNA; 및 페니실륨 크리소제눔 IPNS유전자의 프로모터로 필수적으로 구성되며 상기 익스팬다체 활성물-암호화 DNA의 발현을 추진하는 프로모터로 필수적으로 구성되며 숙주세포의 염색체성 DNA로 통합되는 재조합 DNA발현 벡터인 플라스미드 pPenTFSO를 포함하는 PC 100(ATCC 74182)로 지정죈 재조합 페니실륨 크리소제눔 숙주세포를 유전자 발현에 적합한 조건하에서 배양시키는 단계를 포함함을 특징으로 하는 방법
KR1019940700777A 1991-09-11 1992-09-11 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 생합성 방법 KR0132440B1 (ko)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US75787991A 1991-09-11 1991-09-11
US07/757.879 1991-09-11
US07/933.469 1992-08-28
US07/933,469 US5318896A (en) 1991-09-11 1992-08-28 Recombinant expandase bioprocess for preparing 7-aminodesacetoxy cephalosporanic acid (7-ADCA)
PCT/US1992/007711 WO1993005158A1 (en) 1991-09-11 1992-09-11 Novel bioprocess for preparing 7-adca

Publications (1)

Publication Number Publication Date
KR0132440B1 true KR0132440B1 (ko) 1998-04-14

Family

ID=27116462

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1019940700777A KR0132440B1 (ko) 1991-09-11 1992-09-11 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 생합성 방법
KR1019940700777A KR940702544A (ko) 1991-09-11 1992-09-11 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 신규한 생합성 방법

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1019940700777A KR940702544A (ko) 1991-09-11 1992-09-11 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 신규한 생합성 방법

Country Status (25)

Country Link
US (1) US5318896A (ko)
EP (2) EP0843013A3 (ko)
JP (2) JP3027847B2 (ko)
KR (2) KR0132440B1 (ko)
CN (2) CN1066488C (ko)
AT (1) ATE173017T1 (ko)
AU (1) AU657787B2 (ko)
BG (1) BG62177B1 (ko)
CA (1) CA2077921C (ko)
CZ (1) CZ287357B6 (ko)
DE (1) DE69227494T2 (ko)
DK (1) DK0532341T3 (ko)
ES (1) ES2126588T3 (ko)
FI (1) FI108148B (ko)
HU (1) HU217171B (ko)
IL (1) IL103076A (ko)
MX (1) MX9205175A (ko)
NO (1) NO316742B1 (ko)
NZ (1) NZ244236A (ko)
RO (1) RO115886B1 (ko)
RU (1) RU2178808C2 (ko)
SK (1) SK282387B6 (ko)
TW (1) TW270149B (ko)
UA (1) UA41292C2 (ko)
WO (1) WO1993005158A1 (ko)

Families Citing this family (34)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0233715B1 (en) * 1986-01-31 1994-05-25 BEECHAM GROUP plc Isolation and expression of genes involved in the biosynthesis of beta-lactams
US6709859B1 (en) 1986-01-31 2004-03-23 Beecham Group P.L.C. Chromosomal DNA Fragments Encoding Enzymes for Encoding B-Lactam Biosynthesis Enzymes, and Vector and Transformants for Their Expression
CZ288721B6 (cs) * 1991-10-15 2001-08-15 Dsm Gist B. V. Biologický způsob výroby kyseliny 7-aminodeacetylcefalosporanové
US5726032A (en) * 1993-07-30 1998-03-10 Gist-Brocades B.V. Process for the efficient production of 7-ADCA via 2-(carboxyethylthio)acetyl-7-ADCA and 3-(carboxymethylthio)propionyl-7-ADCA
JP3574453B2 (ja) * 1993-07-30 2004-10-06 ギスト ブロカデス ベスローテン フェンノートシャップ ３‐（カルボキシエチルチオ）プロピオニル‐７‐ａｄｃａを経由した７‐ａｄｃａの効果的な製造法
US5731165A (en) * 1995-06-02 1998-03-24 Gist-Brocades, B.V. Process for the production of 7-ADCA via expandase activity on penicillin G
WO1997020053A2 (en) * 1995-11-27 1997-06-05 Gist-Brocades B.V. Improved process for the production of semi-synthetic cephalosporins via expandase activity on penicillin g
AU2508897A (en) * 1996-04-04 1997-10-29 Gist-Brocades B.V. An enzyme with high adipoyl-coenzyme a synthetase activity and uses thereof
EP0924180A4 (en) 1996-07-02 2005-04-20 Toray Finechemicals Co Ltd PROCESS FOR THE PRODUCTION OF OPTICALLY ACTIVE KETONES
AU4201897A (en) 1996-07-16 1998-02-09 Gist-Brocades B.V. Novel process for the preparation of cephalosporins using (acremonium chrysogenum)
AU6400098A (en) * 1997-02-20 1998-09-09 Gist-Brocades B.V. Fermentative production of valuable compounds on an industrial scale using chemically defined media
ZA983396B (en) * 1997-04-22 1998-10-27 Gist Brocades Bv A method for controlling the solubility of a beta-lactam nucleus
KR20000022106A (ko) * 1997-04-22 2000-04-25 데 보어 빌렘 뢸프 β-락탐 항생물질의 제조방법
AU7648898A (en) * 1997-04-22 1998-11-13 Gist-Brocades B.V. Process for the fermentative production of deacylated cephalosporins
US6410259B1 (en) * 1997-04-22 2002-06-25 Dsm Patents & Trademarks Process for the fermentative production of deacylated cephalosporins
EP0918878B1 (en) 1997-04-22 2005-02-09 DSM IP Assets B.V. Improved process for the fermentative production of cephalosporin
CA2316401A1 (en) * 1997-12-24 1999-07-08 Isis Innovation Limited Modified deacetoxycephalosporin c synthase (daocs) and x-ray structure
RU2219182C2 (ru) * 1998-03-27 2003-12-20 Дсм Н.В. Новый способ ферментативного получения цефалоспорина
US6383773B2 (en) * 1998-04-23 2002-05-07 Massachusetts Institute Of Technology Penicillin conversion
KR100648480B1 (ko) 1998-05-19 2006-11-24 디에스엠 아이피 어셋츠 비.브이. 세팔로스포린의 개선된 생체내 생산
ES2165276B1 (es) * 1999-06-18 2003-03-01 Antibioticos Sau Procedimiento biotecnologico para la produccion de acido 7-aminocefal osporanico (7-adca) y compuestos de sintesis intermedios particularmente penicilina n y desacetoxicefalosporina c (daoc)
ATE273982T1 (de) 2000-05-13 2004-09-15 Smithkline Beecham Plc Verfahren zur reinigung eines salzes der clavulansäure
WO2007073947A2 (en) 2005-12-28 2007-07-05 Dsm Ip Assets B.V. Mutant type ii beta- lactam acylases
EP1987041B1 (en) * 2006-02-23 2013-05-22 DSM Sinochem Pharmaceuticals Netherlands B.V. Improved cephalosporin production
EP2123772A1 (en) 2008-04-29 2009-11-25 DSM IP Assets B.V. Beta-lactam antibiotic producing strains
EP2392649A3 (en) 2008-08-05 2012-01-11 DSM IP Assets B.V. Adipoyl-7-ADCA producing strains
WO2010015625A1 (en) * 2008-08-05 2010-02-11 Dsm Ip Assets B.V. Adipoyl-7-adca producing strains
WO2010015624A1 (en) * 2008-08-05 2010-02-11 Dsm Ip Assets B.V. Adipoyl-7-adca producing strains
CN102369290A (zh) 2009-04-03 2012-03-07 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 发酵工艺
CN103003439A (zh) 2010-06-22 2013-03-27 中化帝斯曼制药有限公司荷兰公司 气泡发酵工艺
CN103108879B (zh) 2010-09-07 2016-08-17 中化帝斯曼制药有限公司荷兰公司 用于生产头孢菌素类的方法
BR112013022521B1 (pt) 2011-03-03 2019-05-07 Dsm Sinochem Pharmaceuticals Netherlands B.V. PROCESSO PARA A DEGRADAÇÃO DE UM COMPOSTO ß-LACTÂMICO E USO DE SULFITO NA DEGRADAÇÃO DE UM COMPOSTO ß-LACTÂMICO
WO2015091455A1 (en) 2013-12-17 2015-06-25 Dpx Holdings B.V. Bioreactor
CN113699209B (zh) * 2021-08-30 2023-05-02 浙江昂利康制药股份有限公司 一种7-adca回收方法

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1270852A (fr) * 1960-09-20 1961-09-01 Bayer Ag Procédé d'acylation enzymatique d'acide 6-aminopénicillanique
EP0233715B1 (en) * 1986-01-31 1994-05-25 BEECHAM GROUP plc Isolation and expression of genes involved in the biosynthesis of beta-lactams
HUT43644A (en) * 1986-11-17 1987-11-30 Univ Oxford Process for producing 3-substituted-cephalosporines
ES2058141T3 (es) * 1987-01-17 1994-11-01 Hoechst Ag Utilizacion de gamma-glutamil-transpeptidasa.
US5070020A (en) * 1988-05-09 1991-12-03 Eli Lilly And Company Recombinant dna expression vectors and dna compounds that encode deacetoxycephalosporin c synthetase
US5108918A (en) * 1988-08-11 1992-04-28 Gist-Brocades Method for identifying and using biosynthetic genes for enhanced production of secondary metabolites
IL95766A (en) * 1989-09-27 1996-12-05 Lilly Co Eli Recombinant DNA expression vectors And DNA compounds. Which encode Aspergillus acyltransferase activity
KR0171897B1 (ko) * 1989-12-27 1999-02-01 후지사와 도모끼찌로 7-아미노세펨 화합물 또는 그 염류의 제조 방법
CZ288721B6 (cs) * 1991-10-15 2001-08-15 Dsm Gist B. V. Biologický způsob výroby kyseliny 7-aminodeacetylcefalosporanové

Also Published As

Publication number Publication date
BG62177B1 (bg) 1999-04-30
CN1066488C (zh) 2001-05-30
SK282387B6 (sk) 2002-01-07
JPH07501931A (ja) 1995-03-02
US5318896A (en) 1994-06-07
DE69227494D1 (de) 1998-12-10
NO940848D0 (no) 1994-03-10
EP0843013A2 (en) 1998-05-20
SK28894A3 (en) 1994-09-07
IL103076A (en) 1996-10-31
EP0532341B1 (en) 1998-11-04
AU2354292A (en) 1993-03-18
DE69227494T2 (de) 1999-04-08
HU9400715D0 (en) 1994-06-28
ATE173017T1 (de) 1998-11-15
KR940702544A (ko) 1994-08-20
DK0532341T3 (da) 1999-07-19
CN1332247A (zh) 2002-01-23
AU657787B2 (en) 1995-03-23
CZ53294A3 (en) 1994-08-17
HU217171B (hu) 1999-12-28
CA2077921C (en) 1998-11-24
FI108148B (fi) 2001-11-30
RU2178808C2 (ru) 2002-01-27
FI941135A (fi) 1994-03-10
RO115886B1 (ro) 2000-07-28
CZ287357B6 (cs) 2000-11-15
MX9205175A (es) 1994-02-28
TW270149B (ko) 1996-02-11
IL103076A0 (en) 1993-02-21
NO940848L (no) 1994-03-10
EP0843013A3 (en) 1998-06-17
CN1075336A (zh) 1993-08-18
BG98643A (bg) 1995-03-31
UA41292C2 (uk) 2001-09-17
JP2000060582A (ja) 2000-02-29
JP3027847B2 (ja) 2000-04-04
NZ244236A (en) 1994-03-25
WO1993005158A1 (en) 1993-03-18
ES2126588T3 (es) 1999-04-01
EP0532341A1 (en) 1993-03-17
FI941135A0 (fi) 1994-03-10
HUT69801A (en) 1995-09-28
CA2077921A1 (en) 1993-03-12
JP3072101B2 (ja) 2000-07-31
NO316742B1 (no) 2004-04-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR0132440B1 (ko) 7-아미노데스아세톡시 세팔로스포란산을 제조하는 생합성 방법
KR100227711B1 (ko) 7-아미노세팔로스포란산 및 7-아미노데아세틸세팔로스포란산 제조를 위한 신규한 생물학적 공정
RU2202616C2 (ru) Способ получения 7-аминоцефалоспорановой кислоты, вектор экспрессии, рекомбинантный штамм
PL174984B1 (pl) Nowy proces biologiczny wytwarzania kwasu 7-aminodezacetoksycefalosporanowego (kwasu 7-ADC)
PL172155B1 (pl) Sposób biotechnologiczny wytwarzania pochodnych kwasu cefalosporanowego