JP6527487B2 - 多能性幹細胞から誘導した細胞を精製するための方法 - Google Patents

多能性幹細胞から誘導した細胞を精製するための方法

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    • C12N2506/02—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from embryonic cells

Description

（関連出願の相互参照）
本願は、２０１０年３月１日出願の米国特許仮出願第６１／３０９，１９３号の優先権
を主張する。
（発明の分野）
本発明は、多能性幹細胞を分化させる方法を目的とする。具体的には、本発明は、膵内
分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させた細胞を、特有の表面マーカ
ーを利用して性質決定する方法を提供する。本発明は、膵内分泌系に特徴的なマーカーを
発現している細胞を、濃縮又は選別する方法も提供する。本発明は、本発明の方法により
形成される膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団に混入する恐れのある
細胞を枯渇させることで、移植後にインビボで形成される腫瘍の発生率を減少させる方法
も提供する。
多能性幹細胞は、すべての体細胞性組織及び臓器を構成する、分化型細胞を産生する、
潜在能力を有する。細胞治療による糖尿病の処置は、ヒト膵島細胞と同様に機能し得る大
量の細胞を産生することにより容易になる。したがって、多能性幹細胞から誘導されるこ
れらの細胞を産生することと、並びにこのような細胞を精製するための信頼性の高い方法
とが必要とされている。
多能性幹細胞及び多能性幹細胞から誘導される細胞集団で見出されるタンパク質及び他
の細胞表面マーカーは、これらの集団を分離及び単離するための試薬を調製する際に有用
である。細胞表面マーカーは、これらの細胞を更に特徴付けるのにも有用である。
一例では、国際公開第２００９１３１５６８号は、ａ）多能性幹細胞から誘導された、
腸内胚葉細胞を含む細胞集団を、腸内胚葉細胞で発現している細胞表面マーカーに結合す
るリガンドに曝露すること（ここで、上記細胞表面マーカーは、ＣＤ４９ｅ、ＣＤ９９、
ＣＤ１６５、及びＣＤ３３４からなる群から選択される）；並びにｂ）腸内胚葉細胞を、
多能性幹細胞から誘導された、リガンドと結合しない細胞から分離することで、上記腸内
胚葉細胞を精製すること、を含む、腸内胚葉を精製する方法を開示する。
別の例では、国際公開第２０１００００４１５号は、脂肪細胞、軟骨細胞及び膵臓細胞
への分化能を有する幹細胞を単離する際に、単独で、あるいはＣＤ５６に結合する抗体又
は抗体の機能断片と組み合わせで、ＴＮＡＰ抗原に結合する抗体又は抗体の機能断片を使
用することを開示する。
別の例では、米国特許第７３７１５７６号は、インスリン産生細胞又はインスリン産生
細胞の凝集塊へと分化する傾向が非常に高い膵幹細胞の特有の画分を選別することを可能
にする、選択的な細胞表面マーカーの発見について開示する。
別の例では、米国特許第７５８５６７２号は、ヒト胚性幹細胞から誘導された培養物か
ら内胚葉系及び膵臓系の細胞を濃縮するための方法を開示し、この方法は、（ａ）ヒト胚
性幹細胞のインタクトなコロニーを培養して、臓側卵黄嚢（ＶＹＳ）細胞により取り囲ま
れた、完全なインタクトな胚様体を形成させる工程であって、この際、ヒト胚性幹細胞は
、Ｏｃｔ−４、発生段階特異的な胚表面抗原−３／４（ＳＳＥＡ ３／４）、及び上皮細
胞接着分子（ＥｐＣＡＭ）を発現する、工程；（ｂ）胚葉体細胞を、内胚葉系及び膵臓系
の細胞を含有している細胞集団へと分化させる条件下で、工程（ａ）の胚様体を培養する
工程；（ｃ）工程（ｂ）の細胞集団を単独の細胞へと分散させる工程；（ｄ）ＳＳＥＡ
３／４の発現が陽性の細胞を選別することで、工程（ｃ）の細胞から未分化の細胞を除去
する工程；（ｅ）ＳＳＥＡ−１の発現が陽性の細胞を選別することで、工程（ｄ）の残り
の細胞からＶＹＳ細胞を除去する工程；及び（ｆ）工程（ｅ）の残りの細胞から、ＥｐＣ
ＡＭの発現が陽性の細胞を選別することで、内胚葉系及び膵臓系の細胞を濃縮する工程、
を含む。
米国特許第７５８５６７２号は、ヒト胚性幹細胞から誘導された培養物から内胚葉系及
び膵臓系の細胞を濃縮するための方法も開示し、この方法は、（ａ）ヒト胚性幹細胞のイ
ンタクトなコロニーを培養して、臓側卵黄嚢（ＶＹＳ）細胞により取り囲まれた、完全な
インタクトな胚様体を形成させる工程であって、この際、ヒト胚性幹細胞は、Ｏｃｔ−４
、発生段階特異的な胚表面抗原−３／４（ＳＳＥＡ ３／４）、及び上皮細胞接着分子（
ＥｐＣＡＭ）を発現する、工程；（ｂ）胚葉体細胞を、内胚葉系及び膵臓系の細胞を含有
している細胞集団へと分化させる条件下で、工程（ａ）の胚様体を培養する工程；（ｃ）
工程（ｂ）の細胞集団を有効量の線維芽細胞増殖因子１０（ＦＧＦＩ ０）により処理す
る工程；及び（ｄ）工程（ｃ）の細胞集団を単独の細胞へと分散させ、内胚葉及び膵臓系
の細胞を濃縮する工程、（ｅ）ＳＳＥＡ−３／４の発現が陽性の細胞を選別することで、
工程（ｄ）の細胞から未分化の幹細胞を除去する工程；（ｆ）ＳＳＥＡ−１の発現が陽性
の細胞を選別することで、工程（ｅ）の細胞からＶＹＳ細胞を除去する工程；及び（ｇ）
工程（ｆ）の残りの細胞からＥｐＣＡＭの発現が陽性の細胞を選別することで、内胚葉系
及び膵臓系の細胞を濃縮する工程、を含む。
米国特許第７５８５６７２号は、細胞集団から誘導された、腫瘍原性を持たない幹細胞
を作製するための濃縮方法も開示し、この方法は、（ａ）ヒト胚性幹細胞のインタクトな
コロニーを培養して、臓側卵黄嚢（ＶＹＳ）細胞により取り囲まれた完全なインタクトな
胚様体を作製する工程であって、この際、ヒト胚性幹細胞は、Ｏｃｔ−４、発生段階特異
的な胚表面抗原−３／４（ＳＳＥＡ ３／４）、及び上皮細胞接着分子（ＥｐＣＡＭ）を
発現する、工程；（ｂ）胚葉体細胞を、内胚葉系及び膵臓系の細胞を含有している細胞集
団へと分化させる条件下で、工程（ａ）の胚様体を培養する工程；（ｃ）工程（ｂ）の細
胞集団を単独の細胞へと分散させる工程；（ｄ）ＳＳＥＡ ３／４の発現が陽性の細胞を
選別することで、工程（ｃ）の細胞から未分化の細胞を除去する工程；（ｅ）ＳＳＥＡ−
１の発現が陽性の細胞を選別することで、工程（ｄ）の細胞からＶＹＳ細胞を除去する工
程；並びに（ｆ）工程（ｅ）の残りの細胞から、ＥｐＣＡＭの発現が陽性の細胞を選別す
る工程、を含み、得られる細胞は、免疫不全状態のマウスに注入した場合に腫瘍を形成し
ない。
別の例では、米国特許第２００５０２６０７４９号は、幹細胞から誘導された培養物か
ら、内胚葉系及び膵臓系の細胞を濃縮する方法を開示し、この方法は、幹細胞を培養して
胚様体を形成させる工程；及び胚葉体から、適切な種類の発現段階特異的な胚表面抗原を
発現している胚葉体を選別する工程、並びに内胚葉細胞及び膵臓細胞へと分化させるにあ
たり、発現段階特異的な細胞表面抗原を発現しない胚様体のみを培養する工程、を含む。
別の例では、米国特許第２０１００００３７４９号は、膵臓幹細胞集団の単離を開示し
、この案件では、膵臓幹細胞集団は、ＣＤ１３３＋ＣＤ４９ｆ＋膵臓幹細胞に関し濃縮さ
れている。
米国特許第２０１００００３７４９号は、更に、膵臓細胞集団、膵臓由来の細胞集団、
又は胃腸由来の細胞集団から、ＣＤ１３３＋、ＣＤ４９ｆ＋、又はＣＤ１３３＋ＣＤ４９
ｆ＋の細胞を選別すること；ＣＤ１５＋の細胞を除去することであって、ここで、残りの
細胞はＣＤ１５−である、除去すること；残りの細胞を、増殖因子を１種以上含有してい
る無血清培養培地に導入すること；並びに残りの細胞を培養培地で増殖させること、で生
じる、プライマリーな膵臓組織（primary pancreatic tissue）からの膵臓幹細胞の単離
を開示する。
他の例では、Ｄｏｒｒｅｌｌ ｅｔ．ａｌは、「我々は、ヒト膵臓のすべての主要な細
胞型の単離及び研究用の細胞表面マーカーに関する新規パネルを開発した。インタクトな
、又は解離させたヒト膵島細胞によるＢａｌｂ／Ｃマウスの差引き免疫化後にハイブリド
ーマを選別し、免疫組織化学及びフローサイトメトリーにより細胞型特異性及び細胞表面
反応性を評価した。膵島（膵内分泌腺（panendocrine）又は膵島α細胞（α-specific）
）上の及び膵島のものではない膵臓細胞のサブセット（外分泌腺及び管）上の表面抗原へ
の特異的な結合性により、抗体を識別した。これらの抗体を別個に又は組み合わせて使用
することで、ＦＡＣＳにより、プライマリーなヒト膵臓からα細胞集団、β細胞集団、外
分泌細胞集団、又は管細胞集団を単離し、ヒト膵島調製物の詳細な細胞組成について特徴
付けした。これらの抗体は、ヒト膵島の増殖培養物が非内分泌細胞に由来したことと、亜
集団を選別し、転写因子Ｐｄｘ−１及びｎｇｎ３を過剰発現させることにより、インスリ
ン発現レベルを最大で通常の島細胞の１％にまで上昇させることができることとを示す際
にも採用され、この培養系により、前述の結果は大きく改善された。これらの方法は、細
胞治療に可能性のある、機能的に異なる膵臓細胞集団の解析及び単離を可能にする」（Ｓ
ｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｖｏｌｕｍｅ １，Ｉｓｓｕｅ ３，Ｓｅｐｔｅ
ｍｂｅｒ ２００８，Ｐａｇｅｓ １５５〜１５６）と記載している。
他の例では、Ｓｕｇｉｙａｍａ ｅｔ ａｌ．は、「我々は、最終的に、マウスからＮ
ＧＮ３＋細胞を精製するのに有用な、ＣＤ１３３及びＣＤ４９ｆと呼ばれる２つの抗原を
同定した。ＣＤ１３３（プロミニン（prominin）−１とも呼ばれる）は、機能未知の膜貫
通型タンパク質であり、かつ造血細胞前駆体及び神経幹細胞の既知のマーカーである。Ｃ
Ｄ４９ｆは、α６−インテグリンとも呼ばれ、ラミニンの受容体サブユニットである。Ｃ
Ｄ１３３及びＣＤ４９ｆを認識する抗体を組み合わせることで、我々は４種の異なる膵臓
細胞集団を分取した。免疫染色及びＲＴ−ＰＣＲにより、細胞集団ＣＤ４９ｆｈｉｇｈ
ＣＤ１３３＋（「フラクションＩ」、使用量のうち５０％）は、ＣａｒｂＡを発現してい
る分化した外分泌細胞により主に構成されることが明らかになった。ＣＤ４９ｆｌｏｗ
ＣＤ１３３−フラクション（「フラクションＩＩＩ」、使用量のうち１０％）は、インス
リン及びグルカゴンなどの内分泌腺分泌物を発現しているホルモン＋細胞を包含していた
。対照的に、ＣＤ４９ｆｌｏｗ ＣＤ１３３＋フラクション（名称「フラクションＩＩ」
、使用量のうち１３％）は、ＮＧＮ３＋細胞を含有していたものの、ホルモン＋細胞は含
有していなかった。フラクションＩＩの細胞のうち、およそ８％は免疫染色可能なＮＧＮ
３を産生していた。ＣＤ４９ｆ−ＣＤ１３３−フラクション（「フラクションＩＶ」、使
用量のうち２５％）では、我々はＮＧＮ３、ＣａｒｂＡ又は膵島ホルモンを発現している
細胞を検出できなかった」（Ｄｉａｂｅｔｅｓ，Ｏｂｅｓｉｔｙ ａｎｄ Ｍｅｔａｂｏ
ｌｉｓｍ，Ｖｏｌｕｍｅ １０，Ｉｓｓｕｅ ｓ４，Ｐａｇｅｓ １７９〜１８５）と記
載している。
別の例では、Ｆｕｊｉｋａｗａ ｅｔ ａｌ．は、「ＣＤ４５−ＴＥＲ１１９−ｓｉｄ
ｅ−ｓｃａｔｔｅｒｌｏｗ ＧＦＰｈｉｇｈ細胞を選別したところ、高い増殖性を持つ、
α−フェトプロテイン陽性の未熟内胚葉と特徴付けられる細胞がこの集団に存在していた
。クローン解析及び電子顕微鏡による評価により、この集団中の各単独の細胞が、肝細胞
だけでなく、胆嚢上皮細胞ヘも分化することができ、二系統への分化活性を示すことが明
らかになった。それらは、表面マーカーを解析した場合には、インテグリン−α６及び−
β１に関し陽性であったが、ｃ−Ｋｉｔ及びＴｈｙ１．１に関しては陰性であった」（Ｊ
ｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｅｐａｔｌｏｇｙ，Ｖｏｌ ３９，ｐａｇｅｓ １６２〜１７０
）と記載している。
別の例では、Ｚｈａｏ ｅｔ ａｌ．は、「本研究において、我々は、ｈＥＳ細胞誘導
体から精製するにあたり、肝内胚葉細胞の表面マーカーとして最初にＮ−カドヘリンを同
定し、ネズミ胚性間質フィーダー（ＳＴＯ）細胞と共培養することで、精製肝内胚葉細胞
から肝前駆細胞を生成した。これらの肝前駆細胞は、１００日超にわたり増殖させ及び継
代することができる。興味深いことに、これらは初期肝臓マーカーＡＦＰ及び胆嚢系マー
カーＫＲＴ７を共発現していたことから、肝細胞及び胆管細胞の両方の共通の祖先細胞で
あることが示唆された。更に、これらの前駆細胞は、遺伝子発現及び機能アッセイの両方
により確認されるように、肝細胞様細胞及び胆管細胞様細胞への二分化能を維持させつつ
広範に拡張することができた。したがって、本研究により、肝臓の発達を研究するための
新規のインビトロモデル、並びに肝前駆細胞に基づく細胞治療用の新規資源が提供される
ことになる。」（ＰＬｏＳ ＯＮＥ ４（７）：ｅ６４６８．ｄｏｉ：１０．１３７１／
ｊｏｕｍａｌ．ｐｏｎｅ．０００６４６８）と記載している。
別の例では、Ｃａｉ ｅｔ ａｌ．は、「ＰＤＸ１＋細胞の純度を更に高めるために、
我々はＣＸＣＲ４などの、ＥＳ細胞から誘導される内皮細胞のマーカーを用い、アクチビ
ンＡ誘導型の細胞を選別した。ＣＸＣＲ４＋集団のほとんどすべての細胞で内皮細胞マー
カーＳＯＸ１７が陽性であり、かつ９０％超の細胞でＦＯＸＡ２が陽性であったことから
、ＣＸＣＲ４を高発現している内皮細胞集団が選別された。」（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ａｄｖａｎｃｅ Ａｃｃｅｓｓ ｏｒ
ｉｇｉｎａｌｌｙ ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｏｎｌｉｎｅ ｏｎ Ｎｏｖｅｍｂｅｒ １２
，２００９．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ
２０１０ ２（１）：５０〜６０；ｄｏｉ：１０．１０９３／ｊｍｃｂ／ｍｊｐ０３７）
と記載している。
別の例では、Ｋｏｂｌａｓ ｅｔ ａｌ．は、「我々は、ＣＤ１３３陽性のヒト膵臓細
胞集団が、ニューロゲニン−３を発現している内分泌腺前駆細胞、並びに多能性幹細胞の
マーカー（ヒトテロメアーゼ、ＡＢＣＧ２、Ｏｃｔ−３／４、Ｎａｎｏｇ、及びＲｅｘ−
１）を発現している細胞を包含していることを見出した。これらの細胞は、インビトロで
インスリン産生細胞ヘと分化させることができるものであり、及びグルコース依存性の様
式でＣ−ペプチドを分泌した。我々の研究結果に基づき、我々は、ＣＤ１３３分子が、膵
内分泌系前駆細胞の同定及び単離に好適な別の細胞表面マーカーを提示するものと仮定し
ている」（Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ Ｐｒｏｃ．２００８ Ｍａｒ；４０（２）：４１５−
８）と記載している。
別の例では、Ｓｕｇｉｙａｍａ ｅｔ ａｌ．は、「我々は、ＮＧＮ３＋細胞がＣＤ１
３３を発現していることを見出した。ＣＤ１３３は、明らかに膵管上皮細胞の頂端膜に局
在している。」（ＰＮＡＳ ２００７ １０４：１７５〜１８０；書籍として出版される
前にインターネットで公開、２００６年１２月２６日，ｄｏｉ：１０．１０７３／ｐｎａ
ｓ．０６０９４９０１０４）と記載している。
別の例では、Ｋｏｂａｙａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．は、「胚性膵上皮及び後の管上皮では
、膵臓が発達するにつれて内分泌及び外分泌細胞が増加することが既知であるが、同定さ
れたこれらの細胞に関する特異的な表面マーカーは存在しない。この度、我々は、マウス
膵臓の発達時に、これらの上皮細胞に特異的なマーカーとしてＤｏｌｉｃｈｏｓ Ｂｉｆ
ｌｏｒｕｓ Ａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ（ＤＢＡ）を利用した。フルオレセインＤＢＡ及び膵
臓特異的な細胞マーカーを用いる免疫蛍光研究の結果から、我々は、ＤＢＡは特異的に上
皮を検出する一方で、内分泌細胞又は腺房細胞のいずれも区別しなかったことを見出した
。我々は、膵臓細胞集団の発達時の混合物からこれらの推定上の多能性細胞を精製するた
めに、このマーカーを更に免疫磁気ビーズによる分離系（Ｄｙｎａｂｅａｄ系）において
マーカーとして利用した。この手順は、膵臓の発達において、分化研究及び細胞系の選別
に使用することができ、また、細胞工学に使用できる可能性のある膵臓前駆細胞の選別に
も使用することができる。」（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ及びＢｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ Ｒ
ｅｓｅａｒｃｈ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｖｏｌｕｍｅ ２９３，Ｉｓｓｕｅ
２，２００２年５月３日，６９１〜６９７頁）と記載している。
多能性幹細胞から得られた細胞により発現されているマーカーを同定することで、これ
らの細胞に対する理解を深めることができ、インビボ及びインビトロでのそれらの同定の
一助となる場合があり、並びに研究及び使用に際しては、インビトロにおいて、それらの
発現が陽性である細胞を濃縮することが可能になり得る。したがって、多能性幹細胞から
誘導された細胞、具体的には、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞を、単
離及び特徴付けするのに有用なツールが未だに必要とされている。
一実施形態では、本発明は、多能性幹細胞集団を、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発
現している細胞集団へと分化させる方法を提供し、この方法は以下の工程を含む：
ａ．多能性幹細胞集団を培養する工程、
ｂ．多能性幹細胞集団を、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へ
と分化させる工程、
ｃ．胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、初期腸管系に特徴的
なマーカーを発現している細胞へと分化させる工程、
ｄ．初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
ｅ．膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内分泌系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程。
一実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団は動物に移植
され、この場合、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞はインスリン産生細
胞を形成する。一実施形態では、インスリン産生細胞の生成効率は、移植前に、膵内分泌
系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮することで増加する。
一実施形態では、インスリン産生細胞の生成効率は、Ｃ−ペプチドの発現が、移植後、
検出可能なレベルに到達するまでにかかる時間を測定することで判定される。
別の実施形態では、濃縮させることで、移植した細胞の、移植後のテラトーマ形成能が
減少する。
細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ１３-、ＣＤ５６-ＣＤ１３-及びＣＤ５６-ＣＤ１３+での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量（Fold expression）は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 細胞集団ＣＤ５６＋ＣＤ１３−、ＣＤ５６−ＣＤ１３−及びＣＤ５６−ＣＤ１３＋での、ＮＫＸ２．２（パネルｅ）及びＰＡＸ４（パネルｆ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量（Fold expression）は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ１３３に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ１３３に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＫＸ２．２（パネルｅ）及びＰＡＸ４（パネルｆ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ４９ｃに対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ５６及びＣＤ１５に対する抗体を用いて選別した細胞集団における、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ５６及びＣＤ１５に対する抗体を用いて選別した細胞集団における、インスリン（パネルｅ）及びグルカゴン（パネルｆ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ１５に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ１５に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＫＸ２．２（パネルｅ）、ＰＡＸ−４（パネルｆ）、グルカゴン（パネルｇ）及びインスリン（パネルｈ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ５６及びＣＤ５７に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ５６及びＣＤ５７に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＫＸ２．２（パネルｅ）、インスリン（パネルｆ）、及びグルカゴン（パネルｇ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ５６及びＣＤ１８４に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＺＩＣ１（パネルａ）、アルブミン（パネルｂ）、ＣＤＸ２（パネルｃ）、ＮＧＮ３（パネルｄ）、ＰＡＸ４（パネルｅ）、及びＮＥＵＲＯＤ（パネルｆ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ５６及びＣＤ１８４に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＫＸ６．１（パネルｇ）、ＰＴＦ１ α（パネルｈ）、及びＰＤＸ１（パネルｉ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ９８に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、インスリン（パネルｃ）、及びグルカゴン（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ４７に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＥＵＲＯＤ（パネルａ）、ＮＧＮ３（パネルｂ）、ＰＤＸ１（パネルｃ）、及びＮＫＸ６．１（パネルｄ）、の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ４７に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＮＫＸ２．２（パネルｅ）及びＰＡＸ４（パネルｆ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ４７に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＰＤＸ−１（パネルａ）、ＮＫＸ６．１（パネルｂ）、ＮＫＸ２．２（パネルｃ）、及びＰＡＸ−４（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＣＤ４７に対する抗体を用いて選別した細胞集団での、ＰＴＦ１ａ（パネルｅ）、ＮＧＮ３（パネルｆ）、インスリン（パネルｇ）及びグルカゴン（パネルｈ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＬＩＦ受容体に対する抗体を用いて選別した細胞集団における、ＨＮＦ４ α（パネルａ）、及びＬＩＦ受容体（パネルｂ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、実施例１に概略される分化プロトコルの、ステージＩＩの２日目の選別されていない細胞と比較して示す。 ＳＳＥＡ４を発現している細胞を磁気ビーズを用い枯渇させた細胞集団での、ＯＣＴ４（パネルａ）、ＮＡＮＯＧ（パネルｂ）、ＳＯＸ２（パネルｃ）、及びグースコイド（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。 ＳＳＥＡ４を発現している細胞をＦＡＣＳを用い枯渇させた細胞集団における、ＯＣＴ４（パネルａ）、ＮＡＮＯＧ（パネルｂ）、ＳＯＸ２（パネルｃ）、及びグースコイド（パネルｄ）の発現を、リアルタイムＰＣＲによる検出結果として示す。発現量は、未分化のＨ１胚性幹細胞と比較して示す。
開示を分かりやすくするため、限定を目的とすることなく、「発明を実施するための形
態」を本発明の特定の特徴、実施形態、又は用途を、説明又は例示する下記の小項目に分
割する。
定義
「β細胞系」は、転写因子ＰＤＸ−１、及び以下の転写因子、すなわち、ＮＧＮ３、Ｎ
ＫＸ２．２、ＮＫＸ６．１、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＨＮＦ−３ β、ＭＡＦＡ、ＰＡ
Ｘ４、及びＰＡＸ６のうちの少なくとも１つについて遺伝子の発現が陽性である細胞を指
す。β細胞系に特徴的なマーカーを発現している細胞としては、β細胞が挙げられる。
本明細書で使用するとき、「胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞」と
は、以下のマーカー、すなわちＳＯＸ１７、ＧＡＴＡ４、ＨＮＦ−３ β、ＧＳＣ、ＣＥ
Ｒ１、Ｎｏｄａｌ、ＦＧＦ８、Ｂｒａｃｈｙｕｒｙ、Ｍｉｘ様ホメオボックスタンパク質
、ＦＧＦ４ ＣＤ４８、エオメソダーミン（eomesodermin）（ＥＯＭＥＳ）、ＤＫＫ４、
ＦＧＦ１７、ＧＡＴＡ６、ＣＤ１８４、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９又はＯＴＸ２のうちの少な
くとも１つを発現する細胞を指す。胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞
としては、原始線条前駆体細胞、原始線条細胞、中内胚葉細胞及び胚体内胚葉細胞が挙げ
られる。
「初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞」は、以下のマーカー、すなわち
、ＨＮＦ−１ β、又はＨＮＦ−４ αのうちの少なくとも１つを発現している細胞を指
す。
本明細書で使用するとき、「膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞」は、
以下のマーカー、すなわち、ＰＤＸ１、ＨＮＦ−１ β、ＰＴＦ−１ α、ＨＮＦ６、又
はＨＢ９のうちの少なくとも１つを発現している細胞を指す。膵内胚葉系に特徴的なマー
カーを発現している細胞としては、膵内胚葉細胞が挙げられる。
本明細書で使用するとき、「膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞」は、以下のマーカー、すなわち、ＮＧＮ３、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬＩ、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＰＡＸ４、又はＰＴＦ−１ αのうちの少なくとも１つを発現している細胞を指す。膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞としては、膵内分泌細胞、膵臓ホルモン発現細胞及び膵臓ホルモン分泌細胞、並びにβ細胞系の細胞が挙げられる。
本明細書で使用するとき、「胚体内胚葉」は、原腸形成中、胚盤葉上層から生じ、胃腸
管及びその誘導体を形成する細胞の特徴を保有している細胞を指す。胚体内胚葉細胞は、
以下のマーカー、すなわち、ＣＤ１８４、ＨＮＦ−３ β、ＧＡＴＡ４、ＳＯＸ１７、ケ
ルベロス、ＯＴＸ２、グースコイド、ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＭｉｘｌ１を発現する
。
本明細書で使用するとき、「マーカー」は、対象とする細胞での発現の仕方が異なる核
酸又はポリペプチド分子である。この文脈において、差異的な発現は、陽性マーカーのレ
ベルの増大及び陰性マーカーのレベルの減少を意味する。マーカー核酸又はポリペプチド
の検出可能なレベルは、他の細胞と比較して対象とする細胞において充分に高いか又は低
いことから、当該技術分野において知られる各種の方法のいずれを用いても対象とする細
胞を他の細胞から識別及び区別することが可能である。
本明細書で使用するとき、「膵内分泌細胞」又は「膵臓ホルモン発現細胞」とは、以下
のホルモンのうちの少なくとも１つを発現することが可能な細胞を指す：インスリン、グ
ルカゴン、ソマトスタチン、及び膵臓ポリペプチド。
本明細書で使用するとき、「膵臓ホルモン分泌細胞」は、以下のホルモンのうちの少な
くとも１つを分泌できる細胞を指す：インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、及び膵
臓ポリペプチド。
本明細書で使用するとき、「前原始線条細胞」は、以下のマーカーのうちの少なくとも
１つを発現する細胞を指す：Ｎｏｄａｌ、又はＦＧＦ８。
本明細書で使用するとき、「原始線条細胞」は、以下のマーカーのうちの少なくとも１
つを発現している細胞を指す：Ｂｒａｃｈｙｕｒｙ、Ｍｉｘ様ホメオボックスタンパク質
、又はＦＧＦ４。
幹細胞は、単独の細胞レベルで自己複製し、分化して後代細胞を生成するという、これ
らの両方の能力で定義される未分化細胞であり、後代細胞には、自己複製前駆細胞、非再
生前駆細胞、及び最終分化細胞が含まれる。幹細胞はまた、インビトロで複数の胚葉層（
内胚葉、中胚葉及び外胚葉）から様々な細胞系の機能的細胞へと分化する能力によって、
また移植後に複数の胚葉層の組織を生じ、胚盤胞への注入後、すべてではないとしても殆
どの組織を提供する能力によっても、特徴付けられる。
幹細胞は、発生上の能力によって、（ｉ）すべての胚性及び胚体外細胞型を生ずる能力
を有することを意味する分化全能性、（ｉｉ）すべての胚性細胞のタイプを生ずる能力を
有することを意味する分化万能性、（ｉｉｉ）細胞系のサブセットを生ずる能力を有する
が、それらがすべて特定の組織、臓器、又は生理学的システムのものであるような分化多
能性（例えば、造血幹細胞（ＨＳＣ）は、ＨＳＣ（自己複製性）、血球限定的寡能性前駆
細胞、及び血液の通常の成分であるすべての細胞型及び要素（例、血小板）を含む子孫細
胞を生じ得る）、（ｉｖ）多能性幹細胞よりも限定された細胞系のサブセットを生ずる能
力を有することを意味する分化寡能性、及び（ｖ）単一の細胞系（例、精原幹細胞）を生
ずる能力を有することを意味する分化単一性に分類される。
分化は、専門化されていない（「中立の」）又は比較的専門化されていない細胞が、例
えば、神経細胞又は筋細胞などの専門化された細胞の特徴を獲得するプロセスである。分
化細胞又は分化を誘導された細胞は、細胞系内でより専門化された（「分化決定された」
）状況を呈している細胞である。分化のプロセスについて用いられる場合、「分化決定さ
れた」なる用語は、通常の条件下で特定の細胞型又は細胞型のサブセットにまで分化し続
けるが、通常の条件下では異なる細胞型には分化できず、分化のより未熟な細胞型にも戻
ることができない点にまで分化経路を進んだ細胞のことを指す。脱分化とは、細胞が、細
胞系においてより専門化（又は分化決定）されていない位置にまで戻るプロセスのことを
指す。本明細書で使用するとき、細胞系とは、その細胞の遺伝、すなわちその細胞がどの
細胞から生じたものであり、どのような細胞を生じ得るか、ということを定義するもので
ある。ある細胞系とは、発生及び分化の遺伝スキーム内にその細胞を位置付けるものであ
る。系統特異的マーカーとは、対象とする系統の細胞の表現型と特異的に関連した特徴を
指し、分化決定されていない細胞の、対象とする系統への分化を評価するために使用する
ことができる。
培養中の細胞を記載するために様々な用語が用いられる。「維持」は、一般に、細胞集
団の増加をもたらし得る又はもたらし得ない、細胞の成長及び／又は***を促進する条件
下で、増殖培地中に細胞を置くことを意味する。「継代」は、細胞増殖及び／又は細胞分
裂を促進する条件下で、細胞を１番目の培養容器から取り出し、それらの細胞を２番目の
培養容器へと設置するプロセスを指す。
特定の細胞集団又は細胞株は、しばしば継代された回数によって呼称されるか特徴付け
られる。例えば、１０回継代された培養細胞集団はＰ１０培養物と呼ばれる場合がある。
初代培養、すなわち組織から細胞を単離した後の最初の培養はＰ０と称される。最初の継
代培養の後、細胞は２次培養（Ｐ１又は継代数１）と記載される。２回目の継代培養の後
では細胞は３次培養物（Ｐ２又は継代数２）となる、といった具合である。当業者であれ
ば、継代期間中に集団は何度も倍加し得るものであり、したがってある培養の集団倍加の
回数は継代数よりも大きいことは理解されるであろう。各継代間の期間での細胞の増殖（
すなわち集団倍加数）は、播種密度、基質、培地、培養条件、及び継代間の時間が挙げら
れるがこれらに限定されない多くの因子に依存する。
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞の濃縮
一実施形態では、本発明は、多能性幹細胞集団を、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発
現している細胞集団へと分化させる方法を提供し、この方法は以下の工程を含む：
ａ．多能性幹細胞集団を培養する工程、
ｂ．多能性幹細胞集団を、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へ
と分化させる工程、
ｃ．胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、初期腸管系に特徴的
なマーカーを発現している細胞へと分化させる工程、
ｄ．初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
ｅ．膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内分泌系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程。
一実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団は動物に移植
され、この場合、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞はインスリン産生細
胞を生成する。一実施形態では、インスリン産生細胞の生成効率は、移植前に、膵内分泌
系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮することで増加する。
一実施形態では、インスリン産生細胞の生成効率は、Ｃ−ペプチドの発現が、移植後、
検出可能なレベルに到達するまでにかかる時間を測定することで判定される。
別の実施形態では、濃縮させることで、移植した細胞の、移植後のテラトーマ形成能が
減少する。
膵内分泌系のマーカーを発現している細胞は、細胞表面上に見出される、細胞表面抗原
に特異的に結合する試薬に対する抗原の結合により、同定又は選別される。
別の実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、動物に移植
する前に、インスリン産生細胞へと更に分化させる。インスリン産生細胞は、細胞表面上
に見出される、細胞表面抗原に特異的に結合する試薬に対する抗原の結合により、同定又
は選別される。
代替的実施形態では、本発明は、多能性幹細胞集団を、膵内分泌系に特徴的なマーカー
を発現している細胞集団へと分化させる方法を提供し、この方法は以下の工程を含む：
ａ．多能性幹細胞集団を培養する工程、
ｂ．多能性幹細胞集団を、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へ
と分化させる工程、
ｃ．胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、初期腸管系に特徴的
なマーカーを発現している細胞へと分化させる工程、
ｄ．初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮する工程、
ｅ．初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
ｆ．膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内分泌系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程。
一実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団は動物に移植
され、この場合、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞はインスリン産生細
胞を形成する。一実施形態では、インスリン産生細胞の生成効率は、移植前に、初期腸管
系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮することで増加する。
初期腸管系のマーカーを発現している細胞は、細胞表面に見出される、細胞表面抗原に
特異的に結合する試薬に対する抗原の結合により、同定又は選別される。
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞の濃縮を促進する表面抗原
一実施形態では、動物に移植する前に、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している
細胞集団は、ＣＤ９、ＣＤ１３、ＣＤ１５、ＣＤ４７、ＣＤ５６、ＣＤ７３、ＣＤ１１７
、ＣＤ１３３、ＣＤ１８４、ＣＤ２００、ＣＤ３１８、ＣＤ３２６及びＳＳＥＡ４からな
る群から選択されるマーカーに結合することのできる、少なくとも１種の試薬により処理
される。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＣＤ５６の発
現が陽性であり、かつマーカーＣＤ１３の発現が陰性である、膵内分泌系に特徴的なマー
カーを発現している細胞集団が得られる。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＣＤ５６の発
現が陽性であり、かつマーカーＣＤ１５の発現が陰性である、膵内分泌系に特徴的なマー
カーを発現している細胞集団が得られる。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＣＤ１３３の
発現が陰性である、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が得られる。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＣＤ１５の発
現が陰性である、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が得られる。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＣＤ１８４の
発現が陽性である、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が得られる。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＳＳＥＡ４の
発現が陰性である、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が得られる。
インスリン産生細胞の濃縮を促進する表面抗原
一実施形態では、動物に移植する前に、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している
細胞集団を、インスリン産生細胞集団へと更に分化させる。インスリン産生細胞集団を、
ＣＤ４７、ＣＤ５６、ＣＤ５７ ＣＤ９８及びＳＳＥＡ４からなる群から選択されるマー
カーと結合することのできる少なくとも１種の試薬により処理する。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＣＤ５６及び
ＣＤ５７の発現が陽性であるインスリン産生細胞集団が得られる。あるいは、インスリン
産生細胞集団は、ＣＤ９８の発現が陽性であってもよい。あるいは、インスリン産生細胞
集団は、ＣＤ４７の発現が陰性であってもよい。
一実施形態では、少なくとも１種の試薬により処理することで、マーカーＳＳＥＡ４の
発現が陰性であるインスリン産生細胞集団が得られる。
ＣＤ１３は、大多数の末梢血単球及び顆粒球で発現されている。ＣＤ１３は、ほとんど
の急性骨髄性白血病、急性転化した慢性骨髄性白血病、少数のリンパ性白血病及び骨髄細
胞株でも発現されている。ＣＤ１３は、線維芽細胞及び内皮細胞などの数種類の非造血細
胞でも、並びに血漿中で可溶性の形態でも見出される。ＣＤ１３は、Ｂ細胞、Ｔ細胞、血
小板、又は赤血球では発現しない。ＣＤ１３は、活性ペプチドの代謝、増殖及び分化の調
節、貪食作用、並びに殺菌性／殺腫瘍性において役割を果たす。ＣＤ１３もヒトコロナウ
イルス（ＨＣＶ）の受容体として働く。
ＣＤ１５は、糖タンパク質、糖脂質、及びプロテオグリカン上で発現され得る炭水化物
接着分子である。ＣＤ１５は、好中球で見られる貪食作用及び走化性を介在するものであ
り、ホジキン病患者、一部のＢ細胞型慢性リンパ球性白血病患者、急性リンパ性白血病患
者、及びほとんどの急性非リンパ性白血病患者で発現される。ＣＤ１５はＬｅｗｉｓ ｘ
及びＳＳＥＡ−１（ステージ特異的胚抗原１）とも呼ばれ、マウス多能性幹細胞のマーカ
ーにもなり、着床前胚において、細胞の接着及び移動に重要な役割を果たす。
ＣＤ４７は膜タンパク質であり、細胞外マトリックスへの細胞接着に応じて生じる、細
胞内のカルシウム濃度の上昇に関与する。このタンパク質はまた、トロンボスポンジンの
Ｃ末端にある細胞結合ドメインの受容体でもあり、膜輸送及びシグナル伝達で機能し得る
。
神経細胞接着分子（ＮＣＡＭ）としても既知であるＣＤ５６は、同種親和性の結合を行
なう糖タンパク質であり、神経細胞、神経膠細胞、骨格筋細胞及びナチュラルキラー細胞
の表面に発現する。ＮＣＡＭは、細胞間接着、神経突起伸長、シナプス可塑性、並びに学
習及び記憶に機能することが示唆されている。
ＨＮＫ−１又はＬｅｕ−７としても既知のＣＤ５７は、特定の細胞型の細胞外タンパク
質で検出された、抗原性のオリゴ糖断片である。血液中では、ＣＤ５７はＮＫ及びＴ細胞
のサブセットを包含する単核細胞の１５〜２０％で見られるが、赤血球、単球、顆粒球、
又は血小板では見られない。同様に、ＣＤ５７の発現は様々な神経系細胞型でも見出すこ
とができる。
ＣＤ９８は大型中性アミノ酸輸送体（ＬＡＴ１）の小型のサブユニットを含む糖タンパ
ク質である。ＬＡＴ１はヘテロ二量体の膜輸送タンパク質であり、中性の分枝状（バリン
、ロイシン、イソロイシン）及び芳香族（トリプトファン、チロシン）アミノ酸を選択的
に輸送する。
ＣＤ１３３は、ヒト及びげっ歯目においてプロミニン１（ＰＲＯＭ１）としても既知で
ある糖タンパク質である。ＣＤ１３３は膜貫通型糖タンパク質のペンタスパン（pentaspa
n）（５−膜貫通型、５−ＴＭ）のメンバーであり、細胞の突起に特異的に局在する。Ｃ
Ｄ１３３は、造血幹細胞、血管内皮前駆細胞、神経膠芽腫、神経幹細胞、及び膠幹細胞で
発現される。Ｃｏｒｂｅｉｌ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ
Ｃｏｍｍｕｎ ２８５（４）：９３９〜１４，２００１．ｄｏｉ：１０．１００６／ｂ
ｂｒｃ．２００１．５２７１．ＰＭＩＤ １１４６７８４２を参照されたい。
初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞の濃縮を促進する表面抗原
代替的実施形態では、本発明は、多能性幹細胞集団を、膵内分泌系に特徴的なマーカー
を発現している細胞集団へと分化させる方法を提供し、この方法は以下の工程を含む：
ａ．多能性幹細胞集団を培養する工程、
ｂ．多能性幹細胞集団を、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へ
と分化させる工程、
ｃ．胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、初期腸管系に特徴的
なマーカーを発現している細胞へと分化させる工程、
ｄ．初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮する工程、
ｅ．初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
ｆ．膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内分泌系に特徴的な
マーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程。
一実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団は動物に移植
され、この場合、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞はインスリン産生細
胞を形成する。一実施形態では、インスリン産生細胞の生成効率は、移植前に、初期腸管
系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮することで増加する。
初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団は、ＬＩＦ受容体と結合するこ
とのできる少なくとも１種の試薬により処理する。
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞、初期腸管系に特徴的なマーカーを
発現している細胞又はインスリン産生細胞を、実施例に更に記載されるように濃縮、枯渇
、単離、選別、及び／又は精製することもできる。本明細書で使用するとき、用語「濃縮
した」又は「精製した」、あるいは「他の既知の細胞集団を枯渇させることにより濃縮し
た又は精製した」とは、細胞集団が濃縮及び／又は精製されるよう、細胞を何らかの選別
プロセスにかけたことを示す。同様に、対象とする細胞が、比較的濃縮され及び／又は精
製されている場合も考慮され、すなわち、別の細胞集団と比較して、「濃縮」又は「精製
」前の多能性幹細胞と比較して、あるいは元の細胞培養物又は開始時細胞培養物と比較し
て、特定の分化細胞集団が有意に多い場合も考慮される。
所定の分化細胞型の濃縮又は精製には、他の細胞型からの、１種以上の既知の細胞型の
「枯渇」又は「分離」又は「選別」も包含され得る。一実施形態では、細胞集団は、不必
要な分化細胞型を枯渇させることにより精製され得る。既知の又は未知の細胞型の培養物
を枯渇させることにより、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞を濃縮及び
精製することが有利である場合がある。この方法では、濃縮又は精製した細胞集団は、抗
体に対して結合又は付着しない。精製する集団から抗体を除去する必要がないことから、
細胞治療用に濃縮又は精製された細胞を使用することは、改良され得る。
例えば、濃縮、枯渇、単離、分離、選別及び／又は精製方法としては、選択的培養条件
法が挙げられる。この方法では、任意の望ましくない細胞型にとって、培養条件が有害な
ものである。
例えば、濃縮、枯渇、単離、分離、選別及び／又は精製方法としては、抗体コーティン
グした磁気ビーズ法、アフィニティクロマトグラフィー、並びに固体マトリックス若しく
は固相補足培地、例えばプレート、カラムに取り込んだ抗体による「パニング」、又はそ
の他の都合の良いかつ利用可能な技術も挙げられる。正確に分離する技術としては、細胞
表面及び細胞内のパラメーター、加えて形状変化及び粒度の測定に有用であり、並びに抗
体又はプローブ結合試薬として使用されるビーズの解析に有用である、フローサイトメト
リーが挙げられる。フローサイトメトリーアッセイによる読み取り情報としては、限定す
るものではないが、別個の蛍光抗体により検出される細胞表面分子若しくはサイトカイン
に関連する、平均蛍光値又は平均蛍光強度、蛍光強度の分散、あるいはこれらの間の何ら
かの関係性が挙げられる。
フローサイトメトリーを包含する分析工程を含む、実施形態の一部の態様では、最小パ
ラメーター、又はビーズの特性は、少なくとも１つの蛍光波長における散乱（ＦＳ及び／
又はＳＳ）である。フローサイトメトリーを使用することで、細胞表面タンパク質、又は
それらの立体構造的な修飾若しくは翻訳後修飾の有無；細胞内タンパク質又は分泌タンパ
ク質の有無などのパラメーターを定量化することができる。この場合、透過処理により抗
体（又はプローブ）の接近が可能になる。フローサイトメトリー法は当該技術分野におい
て既知であり、以下の文献に記載されている：Ｆｌｏｗ Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ ａｎｄ
Ｃｅｌｌ Ｓｔｏｒｉｎｇ（Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｌａｂ Ｍａｎｕａｌ），Ｒａｄｂｒｕ
ｃｈ，Ｅｄ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ，２０００；Ｏｒｍｅｒｏｄ，Ｆｌｏｗ
Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ，１９９９；Ｆｌｏｗ Ｃｙｔ
ｏｍｅｔｒｙ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉ
ｏｌｏｇｙ，Ｎｏ ９１），Ｊａｒｏｓｚｅｓｋｉ ａｎｄ Ｈｅｌｌｅｒ，Ｅｄｓ．，
Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，１９９８；Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｃ
ｙｔｏｍｅｔｒｙ，Ｒｏｂｉｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，ｅｄｓ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ
＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，Ｎ．Ｙ．，２０００。
細胞の染色強度は、フローサイトメトリーによりモニターすることもでき、フローサイ
トメトリーでは、蛍光色素の定量的レベルをレーザーが検出する（特異的な試薬、例えば
固体が結合している、細胞表面マーカーの量を比例する）。フローサイトメトリー、すな
わちＦＡＣＳを使用することで、特異的な試薬への結合強度に基づき、並びに細胞の大き
さ及び光散乱などの他のパラメーターに基づき、細胞集団を分離することもできる。完全
な染色の程度は特定の蛍光色素及び試薬製品によって異なり得るが、データは、対照に対
して標準化化することができる。対照に対し分布を標準化するために、各細胞を、特定の
染色強度を有するデータポイントとして記録する。
対照に対し分布を標準化するために、各細胞を、特定の染色強度を有するデータポイン
トとして記録する。これらのデータポイントは対数スケールに従って示すことができ、任
意の染色強度が測定ユニットになる。一例では、集団中で最も明るい細胞は、染色強度の
最も低い細胞と比較して、４ｌｏｇ以上の強度があるものとして記載される。この方式で
示される場合、染色強度の対数値が最も大きい細胞が明るく、その一方、染色強度の最も
低い細胞は陰性であることが明白である。染色強度が２〜３ｌｏｇになる染色強度の「低
い」染色細胞は、陰性及び陽性細胞と比べ特有の特性を有する場合がある。別の対照は、
表面におけるマーカーの密度が明確である基材、例えば、強度が陽性である対照を提供す
るよう作製されたビーズ又は細胞株を用いることができる。「低い」という表記は、染色
レベルが、対照と一致するアイソタイプの輝度を上回るものの、その強度が、集団で標準
的に見られる最も輝度の高い染色細胞には及ばないことを示す。
選択されたパラメーターの読み取りは同時に行うことができ、又は単一解析時には、例
えば、蛍光抗体を細胞表面分子に対して使用することにより、順番に行なうこともできる
。例として、これらは、フローサイトメトリーによる４種以上の蛍光色素の同時解析を可
能にする、異なる蛍光色素、蛍光ビーズ、タグ、例えば、量子ドットなどによりタグ付け
することができる。例えば、表記「陰性」は、染色レベルが、陰性対照と一致するアイソ
タイプの輝度以下であることを意味するのに対し、表記「薄暗い」は、染色レベルが陰性
の染色のレベルに近いものであることを意味するが、ただし、対照と一致するアイソタイ
プよりも輝度が高い場合もある。
例えば、異なるレベルの蛍光化合物を含む細胞種、及び本明細書に上記されるものなど
を含む細胞種ユニットの差異について標識するにあたり、個別の細胞の識別子に関する、
例えば、異なる細胞種又は細胞型変異体に関する識別子は、蛍光物質であり得る。実施形
態の一部の態様では、２種の細胞種が混合され、ここで、１つは標識され、もう１つは未
標識である。実施形態の一部の態様では、３種以上の細胞種が包含され、各細胞種は、異
なる濃度の標識化合物とインキュベーションすること、又は異なる時間にわたってインキ
ュベーションすることにより、異なるレベルの蛍光標識がされ得る。別個の単位の細胞種
が、複数種の蛍光の強度、例えば、カルボキシフルオレスセインスクシンイミジルエステ
ル（ＣＦＳＥ）などの第１の蛍光色の蛍光強度、テトラメチルローダミンイソチオシアネ
ート（ＴＲＩＴＣ）などの選択された第２の蛍光色の蛍光強度、及び第３の蛍光色の蛍光
強度などにより互いに識別されるように、大量の細胞集団の識別子として２色以上の異な
る蛍光色の強度を標識する蛍光マトリックスを使用することができる。あるいは、異なる
細胞種の固有光散乱特性、又は解析に包含される試験パラメータのＢｉｏＭＡＰの特徴を
、細胞種識別子のユニットとして蛍光標識に加え、又は蛍光標識の代わりに使用すること
もできる。
別の態様では、従来の親和性又は抗体技術を用い、細胞を濃縮、枯渇、分離、選別、及
び／又は精製することもできる。例えば、リガンド及び／又は抗体に、標識、例えば、磁
気ビーズ；アビジン又はストレプトアビジンに対して高親和性で結合するビオチン；蛍光
標示式細胞分取器で使用することのできる蛍光色素；ハプテン；及び同様物などを結合さ
せることで、特定の細胞種の分離を容易にすることもできる。
一実施形態では、本明細書に記載のリガンド、作用剤、及び／又は抗体を、直接的に又
は間接的に超常磁性微小粒子（微小粒子）などの磁気試薬と結合させることもできる。当
該技術分野において既知の様々な化学的連結基を使用することで、磁性粒子に直接結合さ
せることもできる。一部の実施形態では、側鎖アミノ基又はスルフヒドリル（sufhydryl
）、及びヘテロ官能性（heterofunctional）架橋剤により、抗体を微小粒子に結合させる
。
様々なヘテロ官能性化合物を、実体を連結させるために使用することができる。例えば
、少なくとも、抗体上に、反応性スルフヒドリル基を有する３−（２−ピリジジチオ（py
ridyidithio））プロピオン酸Ｎ−ヒドロキシこはく酸イミドエステル（ＳＰＤＰ）又は
４−（Ｎ−マレイミドメチル）−シクロヘキサン−ｌ−カルボン酸Ｎ−ヒドロキシこはく
酸イミドエステル（ＳＭＣＣ）、及び磁性粒子上に反応性アミノ基を使用することができ
る。磁気分離デバイスの一例は、参照によりその全体が本案件に組み込まれる、国際公開
第９０／０７３８０号、ＰＣＴ／ＵＳ第９６／００９５３号、及び欧州特許第４３８，５
２０号に記載されている。
精製した細胞集団は、任意の適切な培地に回収することもできる。例えば、好適な培地
としては、ダルベッコ変法イーグル培地（ｄＭＥＭ）、ハンクス平衡緩衝塩溶液（ＨＢＳ
Ｓ）、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（ｄＰＢＳ）、ＲＰＭＩ、イスコフ改変ダルベッ
コ培地（ＩＭＤＭ）、５ｍＭのＥＤＴＡを添加したリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）など
が挙げられ、しばしばウシ胎児血清（ＦＣＳ）、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ヒト血
清アルブミン（ＨＳＡ）、及びＳｔｅｍＰｒｏ（登録商標）ｈＥＳＣ ＳＦＭが添加され
る。
一実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現していない細胞を選別する少な
くとも１種の剤で処理することで、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞が
濃縮される。別の実施形態では、インスリン産生細胞を選別する少なくとも１種の剤で処
理することで、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞が濃縮される。
本明細書に記載の方法を用いることで、未処理の細胞集団又は細胞培養物と比較して細
胞含量が少なくとも約２倍〜約１０００倍になるよう、細胞集団又は細胞培養物を濃縮す
ることができる。一部の実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細
胞は、未処理の細胞集団又は細胞培養物と比較して少なくとも約５倍〜約５００倍に濃縮
され得る。他の実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、未
処理の細胞集団又は細胞培養物と比較して少なくとも約１０倍〜約２００倍に濃縮され得
る。更に他の実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、未処
理の細胞集団又は細胞培養物と比較して少なくとも約２０倍〜約１００倍に濃縮され得る
。更に他の実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、未処理
の細胞集団又は細胞培養物と比較して少なくとも約４０倍〜約８０倍に濃縮され得る。特
定の実施形態では、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、未処理の細胞
集団又は細胞培養物と比較して少なくとも約２倍〜約２０倍に濃縮され得る。
多能性幹細胞から誘導された細胞の特徴付け
幹細胞から分化させた細胞の編成は、所定の分化細胞型に特徴的なマーカーの発現を判
定することにより特定され得る。一部の実施形態では、分化細胞の同定及び特徴付けは、
特定のマーカーの発現又は発現レベルの違い、及び１種以上のマーカーのパターンにより
なされる。
特に、１種以上のマーカーの存在又は非存在、高発現又は低発現により、細胞種を典型
化及び同定することができる。同様に、特定のマーカーは一過性発現する場合があり、こ
れにより、マーカーは発達時の一ステージでは高発現し、発達時の別のステージでは発現
が乏しくなる場合がある。特定のマーカーの発現は、細胞培養物又は細胞集団の、そのマ
ーカーが標準化又は基準化した対照マーカーと比較して細胞中に存在するレベルを測定す
ることで判定できる。このようなプロセスでは、マーカーの発現の測定は、定性的なもの
であるか又は定量的なものであり得る。マーカー遺伝子により産生されるマーカーの発現
を定量化する方法の一つは、定量的ＰＣＲ（Ｑ−ＰＣＲ）の使用を介するものである。Ｑ
−ＰＣＲを実施する方法は、当該技術分野において周知である。当該技術分野において既
知である他の方法を使用して、マーカー遺伝子の発現を定量化することもできる。例えば
、マーカー遺伝子産物の発現は、対象とするマーカー遺伝子産物に特異的な抗体を用い検
出することができる（例えば、ウエスタンプロット及びフローサイトメトリー解析など）
。特定の実施形態では、分化した細胞に特徴的なマーカー遺伝子の発現に加えて、分化し
た細胞に特徴的なマーカー遺伝子の発現の有意な欠失も判定される。
組織特異的な遺伝子産物の発現は、ノーザンブロット解析、ドットブロットハイブリダ
イゼーション解析、又は標準的な増幅方法で配列特異的なプライマーを用いる逆転写ポリ
メーラーぜ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）により、ｍＲＮＡレベルで判定することもできる。
更に詳細には、米国特許第５，８４３，７８０号を参照されたい。本開示に列挙される特
定のマーカーに関する配列データは、ＧｅｎＢａｎｋなどの公共のデータベースから入手
することができる。
多能性幹細胞は、ステージ特異的胚抗原（ＳＳＥＡ）３及び４、並びにＴｒａ−１〜６
０及びＴｒａ−１〜８１と呼ばれる抗体によって検出可能なマーカーのうちの１つ以上を
発現している（Ｔｈｏｍｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８２：１１４５，１
９９８）。インビトロで多能性幹細胞を分化させると、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ−１〜６０
、及びＴｒａ−１〜８１の発現が減少し（存在する場合）、ＳＳＥＡ−１の発現が上昇す
る。未分化の多能性幹細胞は、典型的には、細胞を４％パラホルムアルデヒドで固定した
後、製造業者（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ Ｃａ
ｌｉｆ．））によって記載されるようにＶｅｃｔｏｒ Ｒｅｄを基質として現像すること
によって検出することができる、アルカリホスファターゼ活性を有しする。未分化の多能
性幹細胞はまた、ＲＴ−ＰＣＲにより検出されるように、一般にＯＣＴ４及びＴＥＲＴも
発現する。
膵内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＰＤＸ１、ＨＮＦ１ β、ＰＴＦ１ α、ＨＮＦ６
、ＨＢ９及びＰＲＯＸ１からなる群から選択される。膵内胚葉系に特徴的なこれらのマー
カーのうちの少なくとも１つを発現する細胞が本発明における使用に適している。本発明
の一態様では、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、膵内胚葉細胞であ
る。
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＳＯＸ１７、ＧＡＴＡ４、ＨＮＦ３ β、ＧＳＣ
、ＣＥＲ１、Ｎｏｄａｌ、ＦＧＦ８、Ｂｒａｃｈｙｕｒｙ、Ｍｉｘ様ホメオボックスタン
パク質、ＦＧＦ４、ＣＤ４８、エオメソダーミン（ＥＯＭＥＳ）、ＤＫＫ４、ＦＧＦ１７
、ＧＡＴＡ６、ＣＤ１８４、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＯＴＸ２からなる群から選択さ
れる。胚体内胚葉系に特徴的なマーカーのうちの少なくとも１つを発現している細胞は本
発明での使用に好適である。本発明の一態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発
現している細胞は、原始線条前駆細胞である。別の態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマ
ーカーを発現している細胞は、中内胚葉細胞である。別の態様では、胚体内胚葉系に特徴
的なマーカーを発現している細胞は、胚体内胚葉細胞である。
膵内分泌系に特徴的なマーカーは、ＮＧＮ３、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＰＡＸ４、及びＰＴＦ−１ αからなる群から選択される。一実施形態では、膵内分泌細胞は、以下のホルモン：インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、及び膵臓ポリペプチドのうちの少なくとも１つを発現することができる。本発明で使用するに好適なものは、膵内分泌系の特徴を示すマーカーを少なくとも１つ発現する細胞である。本発明の一態様において、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、膵内分泌細胞である。膵内分泌細胞は、膵臓ホルモン発現細胞であってよい。また、膵内分泌細胞は膵臓ホルモン分泌細胞であってもよい。
本発明の一態様では、膵内分泌細胞は、β細胞系に特徴的なマーカーを発現している細
胞である。β細胞系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、ＰＤＸ１と、以下の転写
因子、すなわち、ＮＧＮ３、ＮＫＸ２．２、ＮＫＸ６．１、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、Ｈ
ＮＦ３ β、ＭＡＦＡ、ＰＡＸ４、及びＰＡＸ６のうちの少なくとも１つを発現している
。本発明の一態様では、β細胞系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、β細胞であ
る。
多能性幹細胞
多能性幹細胞の特徴付け
多能性幹細胞は、発生段階特異的胚性抗原（ＳＳＥＡ）３及び４のうちの１つ以上、及
びＴｒａ−１〜６０及びＴｒａ−１〜８１と呼ばれる抗体を用いて検出可能なマーカーを
発現し得る（Ｔｈｏｍｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８２：１１４５，１９
９８）。インビトロで多能性幹細胞を分化させると、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ−１〜６０、
及びＴｒａ−１〜８１の発現が消失し（存在する場合）、ＳＳＥＡ−１の発現が増大する
。未分化の多能性幹細胞は、典型的には、細胞を４％パラホルムアルデヒドで固定し、次
いで製造業者（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ Ｃａ
ｌｉｆ．））によって記載されるようにＶｅｃｔｏｒ Ｒｅｄを基質として現像すること
によって検出することができる、アルカリホスファターゼ活性を有する。未分化の多能性
幹細胞は、典型的には、ＲＴ−ＰＣＲによって検出されるＯｃｔ−４及びＴＥＲＴも発現
している。
増殖させた多能性幹細胞の別の望ましい表現型は、３つの胚葉のすべて、すなわち、内
胚葉、中胚葉、及び外胚葉組織の細胞に分化する能力である。幹細胞の多能性は、例えば
、細胞を重症複合免疫不全症（ＳＣＩＤ）マウスに注入し、形成される奇形腫を４％パラ
ホルムアルデヒドで固定し、次いでこれを３胚葉由来の細胞型の根拠について組織学的に
調べることによって確認することができる。代替的に、多能性は、胚様体を形成し、この
胚様体を３つの胚葉に関連したマーカーの存在に関して評価することにより決定すること
ができる。
増殖させた多能性幹細胞株は、標準的なＧバンド法を使用し、対応する霊長類種の発表
されている核型と比較することで、核型を決定することができる。細胞は「正常な核型」
を有することが望ましく、「正常な核型」とは、細胞が正倍数体であり、ヒト染色体がす
べて揃っておりかつ目立った変化のないことを意味する。
多能性幹細胞の供給源
使用可能な多能性幹細胞の種類としては、妊娠期間中の任意の時期（必ずしもではない
が、通常は妊娠約１０〜１２週よりも前）に採取した前胚性組織（例えば胚盤胞など）、
胚性組織、胎児組織などの、妊娠後に形成される組織に由来する多能性細胞の株化細胞系
が含まれる。非限定的な例は、例えばヒト胚性幹細胞株Ｈ１、Ｈ７及びＨ９（ＷｉＣｅｌ
ｌ）などのヒト胚性幹細胞又はヒト胚生殖細胞の樹立株である。更に、こうした細胞の初
期の株化又は安定化の際に本開示の組成物を使用することも考えられるが、その場合は、
供給源となる細胞は供給源の組織から直接採取される１次多能性細胞である。フィーダー
細胞の非存在下で既に培養された多能性幹細胞集団から得られる細胞も、フィーダー細胞
の存在下で既に培養された多能性幹細胞集団と同様、好適である。例えば、ＢＧ０１ｖ（
ＢｒｅｓａＧｅｎ，Ａｔｈｅｎｓ，ＧＡ）などの変異型ヒト胚幹細胞株も好適である。例
えば、Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ １３１：１〜１２（２００７））
によって開示される細胞などの成人ヒト体細胞から誘導される細胞も好適である。
一実施形態において、ヒト胚幹細胞は、Ｔｈｏｍｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（米国特許第５
，８４３，７８０号、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８２：１１４５，１９９８、Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ
．Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．３８：１３３ ｆｆ．，１９９８、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ
．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．９２：７８４４，１９９５）に記載されているように調製される
。
体細胞から誘導された多能性幹細胞も想到される。一実施形態では、本発明での使用に
好適な多能性幹細胞は、Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ １２６：６６３
〜６７６，２００６）に記載の方法に従って誘導することができる。
別の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、Ｌｉ ｅｔ ａｌ．（Ｃ
ｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ４：１６〜１９，２００９）に記載の方法に従って誘導す
ることができる。
別の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、Ｍａｈｅｒａｌｉ ｅｔ
ａｌ．（Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ １：５５〜７０，２００７）に記載の方法に
従って誘導することができる。
別の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、Ｓｔａｄｔｆｅｌｄ ｅ
ｔ．ａｌ（Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ２：２３０〜２４０）に記載の方法に従って
誘導することができる。
別の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、Ｎａｋａｇａｗａ ｅｔ
ａｌ．（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２６：１０１〜１０６，２００
８）に記載の方法に従って誘導することができる。
別の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅ
ｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ １３１：８６１〜８７２，２００７）に記載の方法に従って誘導
することができる。
別の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、米国特許出願第６１／２
５６，１４９号（Ｃｅｎｔｏｃｏｒ Ｒ＆Ｄ，Ｉｎｃ．に譲渡）に記載の方法に従って誘
導することができる。
多能性幹細胞の培養
一実施形態では、多能性幹細胞は、本発明の方法に従って培養するのに先立って、様々
な点で多能性幹細胞を支持するフィーダー細胞又は細胞外マトリクスタンパク質の層上で
培養する。例えば、多能性幹細胞を、細胞を実質的に分化させずに多能性幹細胞の増殖を
支持するフィーダー細胞層上で培養する。フィーダー細胞層上での分化をともなわない多
能性幹細胞の増殖は、（ｉ）フィーダー細胞層を含んでいる培養容器を得て、（ｉｉ）別
の細胞型と予め培養することによって馴化させた培地を用いることで、又は例えば無血清
又は更には化学合成培地などの非馴化培地を用いることで支持される。
別の例では、フィーダー細胞を実質的に含まないにも関わらず、多能性幹細胞を実質的
に分化させずに増殖を支持する培養系で多能性幹細胞を培養する。無フィーダー細胞培養
での分化をともなわない多能性幹細胞の増殖は、（ｉ）１種以上の細胞外マトリクスタン
パク質を有する固体基質表面上の吸着層、及び（ｉｉ）別の細胞型と予め培養することに
よって馴化させた培地、又は、例えば無血清又は更には化学合成培地などの非馴化培地を
用いることで支持される。
別の実施形態では、多能性幹細胞を、別の細胞型と予め培養することによって馴化培地
、又は、例えば無血清又は更には化学合成培地などの非馴化培地中、少なくとも約０．５
％の窒素を含有し、酸素と窒素の合計量が１７．２％以上であり、接触角が少なくとも約
１３．９°である表面改質プレート上で培養する。
培地：本発明における使用に適した細胞培地の一実施例を、米国特許出願公開第２００
２００７２１１７号に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞培養培地の別の
例を、米国特許第６６４２０４８号に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞
培養培地の別の例を、国際公開第２００５０１４７９９号に見出すこともできる。本発明
での使用に適した細胞培地の別の例を、Ｘｕ ｅｔ ａｌ．（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ ２
２：９７２〜９８０，２００４）に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞培
地の別の例を、米国特許出願公開第２００７００１００１１号に見出すこともできる。本
発明での使用に適した細胞培地の別の実施例を、Ｃｈｅｏｎ ｅｔ ａｌ．（ＢｉｏＲｅ
ｐｒｏｄ ＤＯＩ：１０．１０９５／ｂｉｏｌｒｅｐｒｏｄ．１０５．０４６８７０；１
９ Ｏｃｔ ２００５）に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞培地の別の
例を、Ｌｅｖｅｎｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ ２４：５６８〜５
７４，２００６）に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞培地の別の例を、
米国特許第２００５０１４８０７０号に見出すこともできる。本発明での使用に適した細
胞培地の別の例を、米国特許第２００５０２３３４４６号に見出すこともできる。本発明
での使用に適した細胞培地の別の例を、米国特許第６８００４８０号に見出すこともでき
る。本発明での使用に適した細胞培地の別の例を、米国特許出願公開第２００５０２４４
９６２号に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞培地の別の例を、国際公開
第２００５０６５３５４号に見出すこともできる。本発明での使用に適した細胞培地の別
の例を、国際公開第２００５０８６８４５号に見出すこともできる。
好適な培地はまた、以下の成分、例えば、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、
Ｇｉｂｃｏ Ｎｏ．１１９６５−０９２；ノックアウトダルベッコ改変イーグル培地（Ｋ
Ｏ ＤＭＥＭ）、Ｇｉｂｃｏ Ｎｏ．１０８２９−０１８；ハムＦ１２／５０％ ＤＭＥ
Ｍ基礎培地；２００ｍＬ Ｌ−グルタミン、Ｇｉｂｃｏ Ｎｏ．１５０３９−０２７；非
必須アミノ酸溶液、Ｇｉｂｃｏ Ｎｏ．１１１４０−０５０；β−メルカプトエタノール
、Ｓｉｇｍａ Ｎｏ．Ｍ７５２２；ヒト組み換え塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）
、Ｇｉｂｃｏ Ｎｏ．１３２５６−０２９などから調製することもできる。
多能性幹細胞の分化
一実施形態では、多能性幹細胞を培地で増殖させ、次いで別の細胞型への分化を促進す
るような方式で処理する。例えば、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、
国際公開第２００７０３０８７０号に開示されている方法に従って神経前駆細胞及び心筋
細胞へと分化させることもできる。
別の例では、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、米国特許第６，４５
８，５８９号に開示されている方法に従って肝細胞へと分化させることもできる。
本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞の、胚体内胚葉系に特徴的なマーカー
を発現している細胞への分化
本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、当該技術分野の任意の方法により
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることもできる。
例えば、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ
ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２３，１５３４〜１５４１（２０
０５）に開示されている方法に従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞に分化させることもできる。
例えば、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、Ｓｈｉｎｏｚａｋｉ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ １３１，１６５１〜１６６２（２００４）に開示
されている方法に従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞に分化さ
せることもできる。
例えば、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、ＭｃＬｅａｎ ｅｔ ａ
ｌ．，Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ ２５，２９〜３８（２００７）に開示されている方法に従
って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞に分化させることもできる。
例えば、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ
ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２４，１３９２〜１４０１（２０
０６）に開示されている方法に従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞に分化させることもできる。
別の例では、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、ＬｉｆｅＳｃａｎ，
Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願公開第１１／７３６，９０８号に開示されている方
法に従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることも
できる。
別の例では、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、ＬｉｆｅＳｃａｎ，
Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願公開第１１／７７９，３１１号に開示されている方
法に従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることも
できる。
別の例では、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、ＬｉｆｅＳｃａｎ，
Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願公開第１２／４９３，７４１号に開示されている方
法に従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることも
できる。
別の例では、本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞を、ＬｉｆｅＳｃａｎ，
Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願第１２／４９４，７８９号に開示されている方法に
従って、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることもでき
る。
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞の形成は、以下の特定のプロトコ
ルの前後に、マーカーの存在に関して試験することにより判定することができる。多能性
幹細胞は、典型的にはそのようなマーカーを発現しない。したがって、多能性細胞の分化
は、細胞がそれらの発現を開始した際に検出されることになる。
本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞の、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを
発現している細胞への分化
本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞は、当該技術分野の任意の方法により
、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞に分化させることもできる。
例えば、多能性幹細胞は、Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅ
ｃｈｎｏｌｏｇｙ ２４，１３９２〜１４０１（２００６）に開示されている方法に従っ
て、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることもできる。
例えば、本発明の方法に従って得られる、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現して
いる細胞は、この胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞を線維芽細胞増殖
因子及びヘッジホッグシグナル伝達経路阻害剤ＫＡＡＤ−シクロパミンで処理し、次いで
線維芽細胞増殖因子及びＫＡＡＤ−シクロパミンを含有する培地を除去した後に、レチノ
イン酸、線維芽細胞増殖因子及びＫＡＡＤ−シクロパミンを含有する培地中で培養するこ
とにより、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。この方
法の例は、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２４，１３９２〜１４０１（２
００６）に開示されている。
例えば、本発明の方法に従って得られる、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現して
いる細胞は、この胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞を米国特許出願第
１１／７３６，９０８号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従い
レチノイン酸及び１種の線維芽細胞増殖因子で所定の時間処理することによって、膵内胚
葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、本発明の方法に従って得られる、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現して
いる細胞を、レチノイン酸（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，ＭＯ）及びエキセンディン４
で処理し、次いでＤＡＰＴ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，ＭＯ）及びエキセンディン４
を含有している培地を除去し、続いてエキセンディン１、ＩＧＦ−１及びＨＧＦを含む培
地で細胞を培養することにより、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと
更に分化させる。この方法の例は、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２４，
１３９２〜１４０１（２００６）に開示されている。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞をエキセンディン４を含有
している培地で培養し、次にエキセンディン４を含有している培地を除去し、続いて細胞
をエキセンディン１、ＩＧＦ−１及びＨＧＦを含有している培地で培養することにより、
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。この方法の例は、
Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６
に開示されている。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、ＤＡＰＴ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，ＭＯ）及びエキセンディン４を含有
している培地で培養することにより、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞
へと更に分化する。この方法の例は、Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂ
ｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６に開示されている。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、エキセンディン４を含有している培地で培養することにより、膵内分泌系に特
徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。この方法の例は、Ｄ’Ａｍｏｕｒ
ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６に開示されてい
る。
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願第１１／７３６，９０
８号に開示された方法に従って、ノッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理すること
により、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願第１１／７７９，３１
１号に開示された方法に従って、ノッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理すること
により、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、米国特許出願第６０／
９５３，１７８号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従って、ノ
ッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理することにより、膵内分泌系に特徴的なマー
カーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、米国特許出願第６０／９９０，５２９号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）
に開示された方法に従って、ノッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理することによ
り、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞の、膵内分泌系に特徴的なマーカーを
発現している細胞への分化
本発明の方法を使用して形成される多能性幹細胞は、当該技術の任意の方法により、膵
内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させることもできる。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞をエキセンディン４を含有
している培地で培養し、次にエキセンディン４を含有している培地を除去し、続いて細胞
をエキセンディン１、ＩＧＦ−１及びＨＧＦを含有している培地で培養することにより、
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。この方法の例は、
Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６
に開示されている。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞を、ＤＡＰＴ（Ｓｉｇｍａ
−Ａｌｄｒｉｃｈ，ＭＯ）及びエキセンディン４を含有している培地で培養することによ
り、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。この方法の例
は、Ｄ’Ａｍｏｕｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０
０６に開示されている。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、エキセンディン４を含有している培地で培養することにより、膵内分泌系に特
徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。この方法の例は、Ｄ’Ａｍｏｕｒ
ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６に開示されてい
る。
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願第１１／７３６，９０
８号に開示された方法に従って、ノッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理すること
により、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された、米国特許出願第１１／７７９，３１
１号に開示された方法に従って、ノッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理すること
により、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、米国特許出願第６０／
９５３，１７８号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従って、ノ
ッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理することにより、膵内分泌系に特徴的なマー
カーを発現している細胞へと更に分化する。
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞は、米国特許出願第６０／９９０，５２９号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡
）に開示された方法に従って、ノッチシグナル伝達経路を阻害する因子で処理することに
より、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化する。
本発明を以下の実施例によって更に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定さ
れるものではない。
（実施例１）
ウシ胎児血清の非存在下での、ヒト胚性幹細胞株Ｈ１の、膵内分泌細胞への分化
様々な継代数のヒト胚性幹細胞株Ｈ１細胞（ｐ４０〜ｐ５２）を、マトリゲル（１：３
０希釈）をコーティングしたディッシュで培養し、以下の複数工程プロトコルを用い膵臓
系に分化させた：
ａ．ステージＩ（胚体内胚葉）：ヒト胚性幹細胞を、２％のＢＳＡ（脂肪酸不含）（カ
タログ番号６８７００，Ｐｒｏｌｉａｎｔ，ＩＡ）、及び１００ｎｇ／ｍＬのアクチビン
Ａ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）に加え、２０ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ−３ａ（カタログ
番号１３２４−ＷＮ−００２，Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）及び８ｎｇ／ｍＬのｂＦ
ＧＦ（カタログ番号１００−１８Ｂ，ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ，ＮＪ）を添加したＲＰＭＩ培
地で１日間培養した。次いで、細胞を、２％のＢＳＡ及び１００ｎｇ／ｍＬのアクチビン
Ａに加え８ｎｇ／ｍＬのｂＦＧＦを添加したＲＰＭＩ培地で更に２日間処理した。次いで
ｂ．ステージＩＩ（初期腸管）：細胞を、ＲＰＭＩ＋２％のＢＳＡ（脂肪酸不含）及び
５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７及び０．２５μＭのＳＡＮＴ−１（＃Ｓ４５７２，Ｓｉｇｍａ
，ＭＯ）で２〜３日間処理した。次いで
ｃ．ステージＩＩＩ（前腸後部（Posterior foregut））：細胞を、１：２００希釈し
たＩＴＳ−Ｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）及び０．１％ ＢＳＡ（Ｌｉｐｉｄ Ｒｉ
ｃｈ）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，カタログ番号１１０２１−０４５）、５０ｎｇ／ｍＬの
ＦＧＦ７、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、２μＭのレチノイン酸（ＲＡ）（Ｓｉｇｍａ、
ＭＯ）、１００ｎｇ／ｍＬのノギン（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）、及び２０ｎｇ／
ｍＬのアクチビンＡを添加したＤＭＥＭ／高グルコースで４日間処理した；特定の変法で
は、ノギンを濃度２μＭのＡＭＰＫ阻害剤６−［４−（２−ピペリジン−１−イルエトキ
シ）フェニル］−３−ピリジン−４−イルピラゾロ［１，５−ａ］ピリミジン（Ｓｉｇｍ
ａ，製品番号．Ｐ５４９９）で置き換えた。更に他の変法では、Ｐ３８阻害剤（４−［４
−（４−フルオロフェニル）−１−（３−フェニルプロピル）−５−ピリジン−４イル−
１Ｈ−イミダゾール−２−イル］ブタ−３−イン−１−オール）（米国特許第６，５２１
６５５号に開示）を２．５μＭで添加した。次いで、
ｄ．ステージＩＶ（膵内分泌前駆体）：細胞を、１：２００希釈したＩＴＳ−Ｘ（Ｉｎ
ｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）及び０．１％のＢＳＡ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａ）、１０
０ｎｇ／ｍＬのノギン、１μＭのＡＬＫ５阻害剤（ＳＤ−２０８，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ２００７ ７２：１５２〜１６１に開示）を添加したＤＭＥ
Ｍ／高グルコースで３日間処理した。次いで、
ｅ．ステージＶ（膵内分泌細胞）：細胞を、１：２００希釈したＩＴＳ−Ｘ（Ｉｎｖｉ
ｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）、０．１％のＢＳＡ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａ）、１μＭのＡ
ＬＫ５阻害剤ＩＩ（カタログ番号６１６４５２，Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ，Ｃａ）を添加し
たＤＭＥＭ／高グルコースで７日間処理した。次いで、
ｆ．ステージＶＩ（成熟膵内分泌細胞）：細胞を、１：２００希釈したＩＴＳ−Ｘ（Ｉ
ｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）、０．１％のＢＳＡ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａ）を添加
したＤＭＥＭ／高グルコースで７日間処理し、培地は１日おきに交換した。
（実施例２）
フローサイトメトリーによる特徴付け及び濃縮した様々な膵細胞系の選別
実施例１に概説される分化プロセスの様々なステージを形成する新規細胞集団の単離及
び特徴付けを促進するために、様々なステージから得た細胞の詳細な特徴付けをフローサ
イトメトリーにより行った。使用した抗体、及び様々な分化ステージにおける表面マーカ
ーの発現レベルの、完全な一覧を表Ｉに示す。
様々な継代数（ｐ４０〜ｐ５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１細胞を、マトリゲルをコーテ
ィングしたプレートで培養し、実施例１に記載のプロトコルを用い膵内分泌細胞ヘと分化
させた。
異なる成熟ステージにある細胞（前腸後部（ステージＩＩＩ）、内分泌腺前駆細胞（ス
テージＩＶ）、膵内分泌細胞（ステージＶ）又は成熟膵内分泌細胞（ステージＶＩ）を３
７℃で２〜３分間ＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製品番号１２６
０４，ＣＡ）中でインキュベーションすることで、穏やかに遊離させ、２％のＢＳＡ（Ｂ
Ｄ製品番号５５４６５７，ＣＡ）を含有しているＢＤ ＦＡＣＳ染色緩衝液で２度洗浄し
た。およそ０．５〜１×１０6個の細胞を、染色に備え１００〜２００μＬのブロッキン
グ緩衝液（染色緩衝液（ＢＤ，ＣＡ）に１：４希釈した０．５％のヒトγ−グロブリン）
に再懸濁させた。一次抗体を直接結合させる染色に際し、適切な抗体を最終希釈濃度１：
２０で細胞に添加し、細胞を４℃で３０分間インキュベートした。未結合の抗体に関し、
一次抗体を希釈率１：５０〜１：１００で細胞に添加し、細胞を４℃で３０分間インキュ
ベートし、染色緩衝液で２度洗浄した。次いで、細胞を、１：５００希釈した適切な二次
抗体中でインキュベートした。染色した細胞を３００μＬの染色緩衝液に再懸濁し、生細
胞／死細胞を識別するため、ＢＤ ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩでの解析前に５〜１０μ
Ｌの７ＡＡＤを添加した。
フローサイトメトリー解析に関し、およそ３０〜４０×１０6個の細胞を細胞選別の際
に同様に加工した。細胞を、表ＩＩに示すような適切な抗体で染色した。細胞を、表ＩＩ
に要約されるように２つ又は３つの下位集団に選別した。細胞選別ゲートは、対照に一致
するイソタイプに基づいて設定した。選別した細胞のアリコートを選別後に純度に関し解
析した後、重要な膵臓マーカーの発現に関しＰＣＲ解析した。予選別した試料及び様々な
画分から、Ｒｎｅａｓｙミニキット（Ｑｉａｇｅｎ，ＣＡ）を用いＲＮＡを回収した。
選別に使用した細胞表面マーカーは、実施例１に概説される分化プロトコルの異なるス
テージにて解析される細胞集団の、多様なマーカーの発現に基づいて選択した。本研究で
採用したマーカーを表ＩＩに開示する。簡潔に言えば、表ＩＩに開示される表面マーカー
を、単独で、又は組み合わせて用いて様々な細胞集団を選別した。選別した細胞試料を用
い、膵内分泌系に特徴的なマーカーの発現についてリアルタイムＰＣＲにより解析した。
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞の選別
実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＶから得た細胞集団の選別には、Ｃ
Ｄ５６及びＣＤ１３に対する抗体を使用した。３つの細胞集団：ａ）細胞集団ＣＤ５６+
ＣＤ１３-、ｂ）細胞集団ＣＤ５６-ＣＤ１３-、及びｃ）細胞集団ＣＤ５６-ＣＤ１３+を
識別した。ＣＤ５６+ＣＤ１３-集団は、ステージＩＶの選別されていない細胞、又はＣＤ
５６-ＣＤ１３-細胞集団、又はＣＤ５６-ＣＤ１３+細胞集団と比較した場合に、選別後に
およそ１．３倍に濃縮され、選別された細胞は、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、Ｎ
ＫＸ６．１、ＮＫＸ２．２及びＰＡＸ−４を包含する膵内分泌系に特徴的なマーカーの発
現に関し非常に濃縮されていた。図１のパネルａ〜ｆを参照のこと。
実験の第２シリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＶから得
た細胞集団を、ＣＤ１３３に対する抗体を使用して選別した。２つの細胞集団：ａ）細胞
集団ＣＤ１３３+、及びｂ）細胞集団ＣＤ１３３-を識別した。ＣＤ１３３-集団は、ステ
ージＩＶの選別されていない細胞、又はＣＤ１３３+細胞集団と比較した場合に、選別後
におよそ１．９倍に濃縮され、選別された細胞は、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、
ＮＫＸ６．１、ＮＫＸ２．２及びＰＡＸ−４を包含する膵内分泌系に特徴的なマーカーの
発現に関し非常に濃縮されていた。図２のパネルａ〜ｆを参照のこと。
実験の第３シリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＶから得
た細胞集団を、ＣＤ４９ｃに対する抗体を使用して選別した。２つの細胞集団：ａ）細胞
集団ＣＤ４９ｃHI、及びｂ）細胞集団ＣＤ４９ｃLOを識別した。ＣＤ４９ｃLO細胞は、選
別されていない細胞、又はＣＤ４９ｃHI細胞集団と比較した場合に、選別後におよそ３．
１倍に濃縮され、選別された細胞は、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、及びＮＫＸ６
．１を包含する膵内分泌系に特徴的なマーカーの発現に関し非常に濃縮されていた。図３
のパネルａ〜ｄを参照のこと。
実験の第４シリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＶから得
た細胞集団を、ＣＤ５６及びＣＤ１５に対する抗体を使用して選別した。次の細胞集団を
識別した：ａ）細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ１５LO、ｂ）細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ１５HI、ｃ）
細胞集団ＣＤ１５+及びｄ）細胞集団ＣＤ１５-。細胞集団ＣＤ１５-は選別後におよそ１
．１倍に濃縮された。細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ１５loは、選別されていない細胞、又は細
胞集団ＣＤ５６+ＣＤ１５hiと比較した場合に、選別後非常に濃縮され、選別された細胞
は、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、インスリン及びグルカゴンを包
含する膵内分泌系に特徴的なマーカーの発現に関し非常に濃縮されていた。図４のパネル
ａ〜ｆを参照のこと。同様にして、単一マーカーを使用して選別した細胞集団ＣＤ１５-
は、選別されていない細胞、又は細胞集団ＣＤ１５+と比較した場合に、ＮＥＵＲＯＤ、
ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＮＫＸ２．２、ＰＡＸ−４、グルカゴン及びインス
リンを包含する膵内分泌系に特徴的なマーカーの発現に関し非常に濃縮されていた。図５
のパネルａ〜ｈを参照のこと。
実験の第５シリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＶから得
た細胞集団を、ＣＤ５６及びＣＤ５７に対する抗体を使用して選別した。２つの細胞集団
：ａ）細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ５７+、及びｂ）細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ５７-を識別した。
細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ５７+は、選別後におよそ１．９倍に濃縮された。ＣＤ５６+ＣＤ
５７+細胞は、選別されていない細胞、又は細胞集団ＣＤ５６+ＣＤ５７-と比較した場合
に、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＮＫＸ２．２並びにインスリン
及びグルカゴンを包含する膵内胚葉系に特徴的なマーカーの発現に関し非常に濃縮されて
いた。図６のパネルａ〜ｇを参照されたい。実施例１に概説される分化プロトコルのステ
ージＶの細胞集団を、ＣＤ５６及びＣＤ５７に対する抗体を用い選別した場合にも、同様
の結果が観察された。
実験の第６シリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＶから得
た細胞集団を、ＣＤ５６及びＣＤ１８４に対する抗体を使用して選別した。３つの細胞集
団を識別した：ａ）細胞集団ＣＤ１８４+、ｂ）細胞集団ＣＤ１８４-、及びｃ）細胞集団
ＣＤ５６+ＣＤ１８４-。表ＩＶは、濃縮前後の細胞におけるＣＤ１８４の発現について要
約する。細胞集団ＣＤ１８４+を、ＰＡＸ４、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＫＸ６．１、ＰＤＸ１及
びＰＴＦ１ αを包含する膵内分泌系に特徴的なマーカーの発現に関し濃縮した。ＺＩＣ
１、アルブミン及びＣＤＸ２の発現は減少していた。図７のパネルａ〜ｉを参照のこと。
インスリン産生細胞の選別
実施例１に概説される分化プロトコルのステージＶＩから得た細胞集団の選別には、Ｃ
Ｄ９８に対する抗体を使用した。２つの細胞集団を識別した：ａ）細胞集団ＣＤ９８+(Hi
)、及びｂ）細胞集団ＣＤ９８-(Lo)。細胞集団ＣＤ９８+(Hi)は、選別後におよそ１．６
倍に濃縮された。ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、インスリン、及びグルカゴンの発現に関しＣ
Ｄ９８+(Hi)細胞を濃縮した。図８のパネルａ〜ｄを参照のこと。
実験の別のシリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＶから得た
細胞集団を、ＣＤ４７に対する抗体を使用して選別した。２つの細胞集団：ａ）細胞集団
ＣＤ４７Hi(+)、及びｂ）細胞集団ＣＤ４７Lo(-)を識別した。細胞ＣＤ４７Lo(-)は選別
後におよそ３．３倍に濃縮された。ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、
ＮＫＸ２．２及びＰＡＸ４の発現に関しＣＤ４７Lo(-)細胞を濃縮した。図９のパネルａ
〜ｆを参照のこと。
実験の別のシリーズでは、実施例１に概説される分化プロトコルのステージＶＩから得
た細胞集団を、ＣＤ４７に対する抗体を使用して選別した。２つの細胞集団：ａ）細胞集
団ＣＤ４７Hi(+)、及びｂ）細胞集団ＣＤ４７Lo(-)を識別した。ＣＤ４７Lo(-)細胞を、
ＰＤＸ−１、ＮＫＸ６．１、ＮＫＸ２．２、ＰＡＸ−４、ＰＴＦ１ａ、ＮＧＮ３、インス
リン及びグルカゴンの発現に関し濃縮した。図１０のパネルａ〜ｈを参照のこと。
（実施例３）
初期腸管ステージ（ステージ２）のＬｉｆ受容体陽性細胞の選別
継代数４４のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、マトリゲルをコーティングしたプレート
で培養し、以下のプロトコルを用いてインスリン産生細胞へと分化させた：
ａ．２％のＢＳＡ（脂肪酸不含）（カタログ番号６８７００，Ｐｒｏｌｉａｎｔ，ＩＡ
）、及び１００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）に加え２０
ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ−３ａ（カタログ番号１３２４−ＷＮ−００２，Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅ
ｍｓ，ＭＮ）及び８ｎｇ／ｍＬのｂＦＧＦ（カタログ番号１００−１８Ｂ，ＰｅｐｒｏＴ
ｅｃｈ，ＮＪ）を添加したＲＰＭＩ培地で１日処理した後に、２％のＢＳＡ、１００ｎｇ
／ｍＬのアクチビンＡ、８ｎｇ／ｍＬのｂＦＧＦを添加したＲＰＭＩ培地で更に２日間処
理し（ステージ１）、次いで
ｂ．ＲＰＭＩ＋２％のＢＳＡ＋５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７＋０．２５μＭのＳＡＮＴ−
１（＃Ｓ４５７２，Ｓｉｇｍａ，ＭＯ）で３日間処理し（ステージ２）、次いで
ｃ．ＤＭＥＭ／高グルコース＋１：２００希釈したＩＴＳ−Ｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ
，ＣＡ）＋０．１％のＢＳＡ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａ）＋５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ
７（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ，ＮＪ）＋０．２５μＭのＳＡＮＴ−１＋２μＭのレチノイン酸
（ＲＡ）（Ｓｉｇｍａ，ＭＯ）＋１００ｎｇ／ｍＬのノギン（Ｒ ＆ Ｄ Ｓｙｓｔｅｍ
ｓ，ＭＮ）及び２０ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡで４日間処理し（ステージ３）、次いで
ｄ．ＤＭＥＭ／高グルコース＋１：２００希釈したＩＴＳ−Ｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ
，ＣＡ）＋０．１％ ＢＳＡ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａ）＋１００ｎｇ／ｍＬのノギ
ン＋１μＭのＡＬＫ５阻害剤（ＳＣＩ０１２０）＋で３日間処理した（ステージ４）
ステージ２の細胞を、ＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒ
ｌｓｂａｄ，ＣＡ）を用い単独の細胞へと分散させ、ステージ４の基本培地（ＤＭ−Ｈｇ
＋ＩＴＳ−Ｘ＋ＢＳＡ）で洗浄した。放出された細胞をスピンダウンし、得られた細胞ペ
レットを、２％のＢＳＡ、０．０５％のアジ化ナトリウム／ＰＢＳ（Ｓｉｇｍａ，ＭＯ）
からなる染色緩衝液に懸濁した。必要に応じて、０．１％γ−グロブリン（Ｓｉｇｍａ）
溶液を使用して、細胞のＦｃ−受容体を１５分間ブロックした。アリコート（およそ１０
5個の細胞）を、モノクローナル抗体と結合させた（１０6個の細胞あたり抗体５μＬ）Ｌ
ｉｆ受容体−フィリコエリトリン（ＰＥ）（Ｒ ＆ Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）と共に
インキュベートした。対照には、適切なアイソタイプと一致する抗体と、未染色の細胞を
包含させた。抗体を用いるインキュベーションは、すべて４℃で３０分間行い、その後細
胞を染色緩衝液で洗浄した。染色した細胞をＦＡＣＳ Ａｒｉａ（ＢＤ，Ｃａ）で選別し
た。予分類試料（presort sample）、Ｌｉｆ受容体＋フラクション及びＬｉｆ受容体陰性
フラクションから、ＲＮＡ（Ｒｎｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ，Ｑｉａｇｅｎ，ＣＡ）を
回収した。Ｌｉｆ受容体の発現レベル及び発現パターンを表ＩＩＩに要約する。
表ＩＩＩは、ステージ２の２日及び３日目でのＬｉｆ受容体の発現を要約する。ステー
ジ２の３日目では、細胞のおよそ７０％がＬｉｆ受容体を発現していた。表ＩＩＩに要約
されるように、ステージ２の細胞ではＬｉｆ受容体が高発現であったことが特徴的であっ
たが、ステージ３及び４の細胞ではＬｉｆ受容体の発現は最低限のものであった。図１１
中のパネルａ〜ｂに示されるとおり、Ｌｉｆ受容体が豊富であるステージ２の細胞は、未
選別の細胞又はＬｉｆ受容体陰性の細胞と比較して、ＨＮＦ４ αの発現が有意に上昇し
た。リアルタイムＰＣＲにより測定されたＬｉｆ受容体ｍＲＮＡの発現は、Ｌｉｆ−受容
体陽性細胞を含有している細胞フラクションでも豊富であった。
（実施例４）
インビボでの腫瘍形成を低減させるためにＳＳＥＡ−４＋細胞を枯渇させるための磁気
ビーズによる細胞選別
ＳＳＥＡ４抗原の発現はヒト胚性幹細胞の多能性の重要な指標であり、分化過程でこの
マーカーの発現は非常に下方制御される。しかしながら、残りのＳＳＥＡ−４陽性細胞も
、ある程度分化させた細胞を移植させた後に観察される腫瘍及び／又は奇形腫に対して応
答性である恐れがある。奇形腫の形成を低減させるにあたり、分化させた細胞集団に混入
しているＳＳＥＡ４+細胞を移植前に枯渇させるための方法が開発されてきた。
ヒト胚性幹細胞株Ｈ１（継代数４０〜５２）を、実施例１に概説される分化プロトコル
の様々なステージへと分化させた。ＳＳＥＡ−４を枯渇させる概念及び有効性を証明する
ために、本実験では、まず始めに、細胞がＳＳＥＡ−４を依然として高発現していること
を保証するために、細胞をただ初期腸管ステージ（実施例１に概説される分化プロトコル
のステージ２）に分化させた。続く実験において、実施例１に概説される分化プロトコル
のステージ４で、分化させた細胞集団からＳＳＥＡ−４を発現している細胞を枯渇させた
。観察結果については表Ｖを参照されたい。３７℃で２〜３分間、ＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐ
ｒｅｓｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ＃ １２６０４，ＣＡ）と共にインキュベートするこ
とで、細胞を単独の細胞へと穏やかに遊離させた。枯渇時の、細胞の生存性及び活性を向
上させるため、細胞を回収する前に、すべての単離緩衝液に１０μＭのＹ−２７６３２（
カタログ番号Ｙ ０５０３，Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ ＭＯ）又は０．５μＭのＴ
ｈｉａｚｏｖｉｖｉｎ（カタログ番号０４−００１７，Ｓｔｅｍｇｅｎｔ，Ｓａｎ Ｄｉ
ｅｇｏ，ＣＡ）を含む抗アポトーシス剤を細胞に添加した。
０．１％のＢＳＡ及び２ｍＭのＥＤＴＡを添加したリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）（
Ｃａ2+及びＭｇ2+は不含）からなる分離緩衝液で、細胞を洗浄した。１０〜１００×１０
6個の細胞を、５００μＬあたりの最終的な細胞密度が５×１０6個になるように分離緩衝
液に再懸濁した。細胞５００μＬあたり２５μＬのＳＳＥＡ−４抗体を添加し、持続的に
混合するために穏やかに揺らす装置を用い、細胞を室温で１５〜２０分間インキュベート
した。３００ｘｇで８分間スピンさせて、分離緩衝液で細胞を洗浄した。上清を除去し、
細胞を元の容量の緩衝液に再懸濁し、細胞懸濁液５００μＬ毎に、予洗浄したＳＳＥＡ−
４ Ｄｅｐｌｅｔｉｏｎ ｂｅａｄｓ（ＤｙｎａＢｅａｄｓ（登録商標）ＳＳＥＡ−４，
Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，＃１１１６０Ｄ）を５０μＬ加えた。細胞及びビーズを混合し、
持続的に穏やかに傾斜及び回転させながら室温で１５〜２０分間インキュベートした。穏
やかにピペッティングすることで細胞を混合し、磁気上に５分間配置した。ＳＳＥＡ−４
陰性細胞を含有している上清を新しいチューブに移し、残留ビーズを取り除くために、こ
のプロセスを２〜３回繰り返した。ビーズに結合したＳＳＥＡ４+細胞を磁場から放出さ
せ、両方の細胞集団を計数し、ＦＡＣＳ及びＰＣＲ解析のために加工した。未分化のＨ１
細胞、初期腸細胞及びステージＩＶの細胞の、細胞の選別前及び選別後のＳＳＥＡ４の発
現レベルを、どちらも表Ｖに要約する。
実施例１に概説される分化プロトコルのステージＩＩで分離した細胞集団では、選別前
に細胞の２０．５％がＳＳＥＡ４マーカーを発現していた。対照的に、選別後には細胞の
１．８％がＳＳＥＡ４を発現していた（表Ｖ）。枯渇により、ＳＳＥＡ−４陽性細胞のう
ち９１．２％が除去されたことになる。内分泌腺前駆細胞を用いる別の実験では、枯渇前
には細胞の２５．３％がＳＳＥＡ−４を発現していたが、枯渇後にはわずかに０．９％の
みがＳＳＥＡ−４を発現しており、ＳＳＥＡ−４陽性細胞のうち９５．５％が除去されて
いた（表Ｖ）。分化細胞とは対照的に、未分化の胚性幹細胞集団では９１．２％がＳＳＥ
Ａ４を発現していた。
選別されたＳＳＥＡ４+細胞は、ＯＣＴ４、ＮＡＮＯＧ、ＳＯＸ２及びグースコイドを
包含する多能性マーカーを非常に高発現していた（図１２のパネルａ〜ｄ）。
（実施例５）
ＦＡＣＳによるＳＳＥＡ４+(HI)及びＳＳＥＡ４(LO)細胞の選別
分化細胞から多能性マーカー（ＳＳＥＡ−４＋）に富む細胞をフローサイトメトリーに
より枯渇させることの調査及びその確認のため、細胞を実施例１に記載のようにステージ
ＶＩヘと分化させた。ＴｒｙｐｌｅＥ Ｅｘｐｒｅｓｓの細胞解離緩衝液を用い、培養物
から細胞を解離させ、実施例２で記載されたように選別するにあたり細胞を調製した。Ｓ
ＳＥＡ−４抗体（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ，カタログ番
号ＦＡＢ１４３５Ｐ）を使用し、ＳＳＥＡ−４（＋）Ｈｉ細胞群及びＳＳＥＡ−４（−）
Ｌｏ細胞群として識別される２つの細胞画分へと分離した。分離した細胞画分を、実施例
４に記載されるようにＲＴ−ＰＣＲにより、多能性マーカーの発現について解析した。実
施例５に記載されるように、磁気ビーズを用い分離した、ＳＳＥＡ−４を枯渇させた画分
及び濃縮させた画分も同様に、選別されたＳＳＥＡ−４（＋）Ｈｉ細胞では、ＳＳＥＡ−
４（−）Ｌｏ細胞とは異なり多能性マーカーのＯＣＴ４、ＮＡＮＯＧ、ＳＯＸ２及びグー
スコイドの発現度が非常に高かった。図１３のパネルａ〜ｄを参照のこと。
（実施例６）
ＳＳＥＡ−４を枯渇させた細胞集団のインビボ移植
予備実験では、ＳＳＥＡ−４を枯渇させた細胞を、実施例１に概説される分化プロトコ
ルのステージＩＶへと分化させ、次いでマウスの腎被膜ヘと移植し、細胞が生存し、生着
するかを試験した。移植したマウスから得たデータを表ＶＩに要約する。
５〜６週齢のオスのｓｃｉｄ−ｂｅｉｇｅマウス（Ｃ．Ｂ−Ｉｇｈ−１ｂ／ＧｂｍｓＴ
ａｃ−Ｐｒｋｄｃscid−Ｌｙｓｔbg Ｎ７）をＴａｃｏｎｉｃ Ｆａｒｍｓより購入した
。滅菌した餌と水を自由に利用できるような状態で、マウスをｍｉｃｒｏｉｓｏｌａｔｏ
ｒケージ内に収容した。外科手術を準備するため、マウスをイヤータグで同定し、体重を
測定し、手持ち式ｇｌｕｃｏｍｅｔｅｒ（ＬｉｆｅＳｃａｎ；Ｏｎｅ Ｔｏｕｃｈ）を用
いて血糖を測定した。マウスにイソフルランと酸素の混合物で麻酔をかけ、手術部位を小
動物用はさみで剪毛した。マウスには手術前に皮下に０．１ｍｇ／ｋｇのＢｕｐｒｅｎｅ
ｘを投与した。７０％イソプロピルアルコール、１０％ポビドンヨード、及び７０％イソ
プロピルアルコールで連続的に洗浄して手術部位の用意をし、皮膚層と筋層を貫通させて
左側切開部を作製した。左腎を露出させ、０．９％塩化ナトリウムで保湿させた。２４Ｇ
×３／４”Ｉ．Ｖ．カテーテルを使用して腎臓被膜を貫通させた後、針を除去した。次い
で腎臓被膜下でカテーテルを腎臓の遠位端まで前進させた。
マウスの手術前準備の間に、細胞を１．５ｍＬ遠心管で遠心し、次いで細胞ペレットを
回収するのに十分な量の培地を残しつつほとんどの上清を除去した。細胞をＲａｉｎｉｎ
製Ｐｏｓ−Ｄポジティブディスプレイスメント式ピペットに回収し、ピペットを反転させ
て重力により細胞を沈降させた。移植用に充填した細胞調製物を残して過剰な培地を除去
した。
移植に際し、Ｐｏｓ−Ｄピペットチップをカテーテルのハブにしっかりと取り付け、腎
臓皮膜下でカテーテルを通してピペットから細胞を分配し、腎臓の遠位極に供給した。カ
テーテルの内腔に少量の培地を流し、残留している細胞を放出させ、カテーテルを引き抜
いた。腎臓皮膜を低温焼灼でシールし、腎臓を解剖学的な元の位置に戻した。５−０ ｖ
ｉｃｒｙｌを用いて連続縫合することで筋を縫合し、皮膚を創傷クリップにより閉じた。
マウスには手術後に１．０ｍｇ／ｋｇ Ｍｅｔａｃａｍを皮下投与した。マウスを麻酔か
ら覚めさせ、完全に回復させた。
移植後に、マウスを週に１回秤量し、週に２回血糖を測定した。移植に続き、マウスに
は様々な間隔で３ｇ／ｋｇグルコースを腹腔内投与し、グルコース注入の６０分後に、ヘ
パリンを少量含有している遠心管に後眼窩静脈洞から血液を吸引した。血液を遠心分離し
、２本目の遠心管中に血漿を配置し、ドライアイス上で凍結させ、その後、ヒトｃペプチ
ドアッセイを実施するまでの間−８０℃で保管した。ヒトｃ−ペプチドレベルは製造者に
よる取扱説明書に従って、Ｍｅｒｃｏｄｉａ／ＡＬＰＣＯ社の診断用超高感度Ｃペプチド
ＥＬＩＳＡを用いて測定した。
屠殺時には、上記のように血液を回収し、マウスを安楽死させた。腎被膜から移植片を
採取し、リアルタイムｑＰＣＲ、免疫組織化学、及び病理の面から解析した。
三群のマウスに、それぞれｉ）細胞クラスター、ｉｉ）単独の細胞（枯渇させず）及び
ｉｉｉ）ＳＳＥＡ４を枯渇させた単独の細胞、から構成される３．３×１０6個の細胞を
移植した。ステージＩＶへと分化させた細胞は、ＳＳＥＡ−４の枯渇に際し、穏やかに掻
き取って小さな細胞クラスターにするか、又はＴｒｙｐｌｅＥにより単独の細胞へと剥離
させるかした。実施例５に概説されるようなＳＳＥＡ−４の枯渇後、移植する前に、低接
着プレート（Ｃｏｓｔａｒ，Ｃｏｍｉｎｇ Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ，ＮＹカタログ番
号３４７１）を用い、細胞クラスター及び単独の細胞調製物のどちらも、前駆（ステージ
ＩＶ）細胞分化培地に一晩再播種した。１０μＭの濃度で、ｒｏｃｋ阻害剤Ｙ−２７６３
２ジヒドロクロリド一水和物（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｙ０５０３）を一晩培養物に添
加した。移植後、マウスを上記のように最大で１２週間にわたって監視した。移植片の生
存率は、単独の細胞レシピエント（枯渇又は未枯渇）では視覚的には確認されなかったが
、５匹中２匹のマウスで細胞クラスターの受容が観察された。細胞クラスターを受容した
、５匹中１匹のマウスでは、移植後１２週間の時点ではＣ−ペプチド濃度が検出可能なレ
ベルになっていた。予備実験では移植片の生存率が低かったのは、細胞の品質が低下して
いたこと、及び移植細胞数が少なかったことが原因である。
ヒト胚細胞を、胚体内胚葉（ＤＥ）、膵内胚葉（ＰＥ）及び膵前駆体が包含される、い
くつかの中間段階を経て、成熟した、膵内分泌細胞ヘと分化させる複数工程は、表面マー
カーの発現の動的な変化と関連付けられるものである。この分化プロトコルでは、外胚葉
細胞型及び中胚葉細胞型を含む、限定されていない複数系統の細胞の不均一な集団が生じ
るが、膵分化培地において表面マーカーの発現の変化を追うことで、細胞の濃縮及び精製
に有用であり得るマーカーを識別することができる。表ＶＩＩは、発現の増加又は減少の
いずれかが証明された表面マーカーの要約を示す。これらの表面マーカーの発現は、膵内
胚葉細胞の陰性又は陽性の選別に有用であり得る。分化プロセス中に発現が減少したマー
カーとしては、ＣＤ１１７、ＣＤ１３３、ＣＤ１８１、ＣＤ１８４、ＣＤ２００、ＣＤ２
２１、ＣＤ３２６、ＣＤ５５、ＣＤ５７、ＣＤ９、及びＣＤ９８が挙げられる。分化プロ
セス中に発現が減少したマーカーとしては、ＣＤ１３、ＣＤ１４１、ＣＤ１５、ＣＤ３１
８、ＣＤ４６、ＣＤ４７、ＣＤ４９ｃ、ＣＤ４９ｅ、ＣＤ５６、及びＣＤ７３が挙げられ
る。これらのマーカーを単独で、又は様々に組み合わせて使用することで、膵臓内胚葉及
び前駆細胞に関し濃縮された細胞集団を精製することができる。
（実施例７）
フローサイトメトリーによる選別手順
成熟段階が異なる細胞を、ＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ＃
１２６０４，ＣＡ）で３７℃で２〜３分インキュベートすることで穏やかに剥離させ、２
％のＢＳＡを含有させたＢＤ ＦＡＣＳ染色緩衝液（ＢＤ ＃ ５５４６５７，ＣＡ）で
２回洗浄した。染色させるため、細胞の収率に基づき、２０〜５０×１０6個の単独細胞
を、２〜３ｍＬのブロッキング緩衝液（０．５％のヒトγ−グロブリンを染色緩衝液（Ｂ
Ｄ，ＣＡ）に１：４希釈させたもの）に再懸濁した。フルオロフォアを結合させた一次抗
体を最終希釈率１：２０で細胞に添加し、細胞を４℃で３０分間インキュベートした。洗
浄後、染色した細胞を２〜３ｍＬの染色緩衝液に再懸濁した。解析及び細胞選別に先立ち
、生細胞／死細胞の識別のために、５０〜６０μＬの７ＡＡＤを添加した。対照ＩｇＧ抗
体と一致するアイソタイプを陰性対照の染色に使用した。選別前のフルオロフォアの補償
値を算出するにあたり、細胞は未染色のままにするか、あるいは、フルオレセインイソチ
オシアネート（ＦＩＴＣ）、フィリコエリトリン（ＰＥ）又はアロフィコシアニン（ＡＰ
Ｃ）、核染料７−アミノアクチノマイシン（Aminoactinomucin）Ｄ（７−ＡＡＤ）のうち
のいずれかのフルオロフォアで染色するかした。
ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｉａ細胞選別機及びＢＤ ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェアを用い細
胞選別を実施した。対照細胞と一致するアイソタイプを使用して、各細胞選別の陰性ゲー
トを設定した。各細胞選別実験に関し、光電子増倍管（ＰＭＴ）の電圧設定は適切なフル
オロフォア補償値を用い調整し、明るい集団（陽性（＋）又はＨｉ）及び暗い集団又は細
胞サブセット（陰性（−）又はＬｏ）を検出した。典型的には、陽性細胞集団（＋又はＨ
ｉ）は、第３ ｄｅｃａｄｅ以上のオーダー（１０4）であるのに対し、陰性集団は第１
〜第２ ｄｅｃａｄｅ（１０2〜１０3）にあった。設定されたゲートを用い、１００μＭ
のノズルを用い、流速１．０で細胞を選別した。選別後に細胞の少量のアリコートを分析
して、選別した細胞サブセットの精製具合を評価した。ＲＴ−ＰＣＲ解析にあたり、Ｒｎ
ｅａｓｙミニキット（Ｑｉａｇｅｎ，ＣＡ）を使用し、予選別及び選別細胞からＲＮＡを
回収した。
本明細書の全体を通じて引用した刊行物は、その全体を参照により本明細書に組み込む
ものとする。以上、本発明の様々な態様を実施例及び好ましい実施形態を参照して説明し
たが、本発明の範囲は、上記の説明文によってではなく、特許法の原則の下で適宜解釈さ
れる以下の「特許請求の範囲」によって定義されるものである点は認識されるであろう。

・「表面マーカーに関連する変化」は、細胞が胚体内胚葉（ＤＥ，ステージＩ）から膵内胚葉（ＰＥ，ステージＩＩＩ）へと、及び最終的には内分泌細胞（ステージＶ／ＶＩ）へと分化する場合に、特定の表面マーカーの発現レベルが増加するのか又は減少するのかについて記載する。
本発明は次の実施態様を含む。
（１） 膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団からのインスリン産生細胞の生成効率を増加させる方法であって：
ａ．多能性幹細胞集団を培養する工程、
ｂ．前記多能性幹細胞集団を、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、
ｃ．前記胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させる工程、
ｄ．前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
ｅ．前記膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
ｆ．前記膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞を、哺乳動物に少なくともある程度の量移植する工程、を含む、方法。
（２）前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が濃縮されている、上記（１）に記載の方法。
（３）前記初期腸管に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が、前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、Ｌｉｆ受容体に結合することのできる試薬と接触させることで濃縮される、上記（２）に記載の方法。
（４）前記膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、ＣＤ９、ＣＤ１３、ＣＤ１５、ＣＤ４７、ＣＤ５６、ＣＤ７３、ＣＤ１１７、ＣＤ１３３、ＣＤ１８４、ＣＤ２００、ＣＤ３１８、ＣＤ３２６及びＳＳＥＡ４からなる群から選択されるマーカーと結合することのできる少なくとも１種の試薬と接触させる、上記（１）に記載の方法。
（５）前記哺乳動物がヒトである、上記（１）に記載の方法。

Claims (7)

  1. 膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団からのインスリン産生細胞の生成効率を増加させる方法であって：
    ａ．多能性幹細胞集団を培養する工程、
    ｂ．前記多能性幹細胞集団を、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、
    ｃ．前記胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと分化させる工程、
    ｄ．前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、
    ｅ．前記膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団へと分化させる工程、並びに
    ｆ．下記の細胞集団：
    (i.) ＣＤ５６陽性でＣＤ１３陰性である膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、
    (ii.) ＣＤ１３３陰性である膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、
    (iii.) ＣＤ４９ｃLOである膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、
    (iv.) ＣＤ５６陽性でＣＤ１５loである膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、又は
    (v.) ＣＤ５６及びＣＤ５７が双方とも陽性である膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、
    の一つ以上を単離し、これにより濃縮された細胞集団を生成することで、前記膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、ＮＥＵＲＯＤ、ＮＧＮ３、ＰＤＸ１及びＮＫＸ６．１の発現について濃縮する工程
    を含む、方法。
  2. 前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を濃縮する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
  3. 前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が、前記初期腸管系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団を、Ｌｉｆ受容体に結合することのできる試薬と接触させることで濃縮される、請求項２に記載の方法。
  4. 前記膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団が、
    下記の細胞集団：
    (i.) ＣＤ５６陽性でＣＤ１３陰性である膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、
    (ii.) ＣＤ５６陽性でＣＤ１５loである膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、又は
    (iii.) ＣＤ５６及びＣＤ５７が双方とも陽性である膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞集団、
    の一つ以上を単離し、これにより濃縮された細胞集団を生成することにより、
    濃縮されるものである、請求項１に記載の方法。
  5. 前記細胞がフローサイトメトリーを用いて濃縮されるものである、請求項１に記載の方法。
  6. 前記細胞がＦＡＣＳを用いて濃縮されるものである、請求項１に記載の方法。
  7. 膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞が膵内分泌前駆細胞である、請求項１及び４〜６のいずれか１項に記載の方法。
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