JP2011172585A - 治療薬として有用な一価抗体断片 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】単一抗原結合アーム及びFc領域を含有してなる抗体断片であり、該抗原結合アームを含んでなるFab分子と比較して該抗体断片の安定性が増大しており、該Fc領域が第一及び第二Fcポリペプチドの複合体を含んでなり、Fcポリペプチドの一方だけでなく両方がN末端切断型重鎖である、抗体断片。
【選択図】なし
Description
本出願は、米国特許法規則1.53(b)(1)に基づき出願した非仮出願であり、2003年12月19日出願の米国特許仮出願番号60/531409号の優先権を主張し、その全体の開示が出典明記によりそのままここに組み込まれる。
本発明は一般に分子生物学及び抗体医療の分野に関する。より詳細には、本発明は治療薬としての使用のために特徴的性質を有する一価抗体断片の新規の形態に関する。
近年、様々な疾患及び疾病の診断及び治療薬として抗体の使用に期待が高まっている。診断、研究及び治療目的のための一般的な抗体の重要性は、天然の抗体にみられる配列及び構造から抗体配列及び構造を研究したり修飾したりするために非常に多くの努力が費やされていることからもわかる。
一般的には、理想的な治療的抗体は標的特異性、対象患者への投与後のバイオ安定性及び生体有用性、並びに治療的効果を最大にするのに十分な標的結合親和性などの特定の最小の特徴を備えているであろうと考えられる。残念なことに、全て又は大部分のこれらの最小の特徴を備える抗体治療法を生成するには努力の割に成功が少なかった。例えば、IgGのような完全長抗体は、単一の抗体分子の2本の抗原結合アームの存在から得られる結合活性効果に応じた良好な標的結合能及び望ましい薬物動態学(例えば生体内実質的半減期)を示す。しかしながら、このような完全長抗体は、そのより大きな分子の大きさの結果として生体有用性の問題に悩む。さらに、Fab断片として拮抗的抗体がある場合であっても、完全長抗体は標的抗原への結合の際に拮抗的効果(望ましくないもの)を場合によっては示しうる。例として、米国特許第6,468,529号参照。拮抗的効果が所望の治療的機能である場合にこの現象は好ましくない。ある場合では、この現象は、細胞表面レセプターに結合してレセプター活性を引き起こすレセプター二量体化を促進する二価抗体の「架橋性」効果によるものであり得る。
一価抗体が「架橋性」効果を有すると期待されない反面、現在まで、一価抗体はその構造/設計に固有の限界があるために治療法として望ましくなかった。例えば、Fab型の一価抗体は、治療薬としての使用に関して劣った薬力学(例えば投与後の急速クリアランス及びインビボ不安定性)を有する。さらに、それらの多価相対物と比較して、一価抗体は、一般に結合活性結合効果の欠如により見かけの結合親和性がより低い。
特に、成功の程度を変化する抗体断片のインビボ安定性を増やすために努力が成されている。例えば、Fab断片は、ポリエチレングリコールなどの安定性成分、又は異種性のペプチドなどの他の安定化分子に付着されてもよい。例として、Dennis等, J. Biol. Chem. (2002), 277:35035-35043;PCT公開番号WO01/45746を参照のこと。
上記からみて、抗体の形態の改良、及び、治療剤又は予防剤などとしてこのような抗体を生産して、使用する方法に著しい必要性がある。本願明細書において記載される発明は、この必要性について述べ、他の利点を提供するものである。
本明細書中に挙げる特許出願及び文献を含むすべての参考文献は、出典明記によりその全体が組み込まれる。
本発明は、治療的有用性、機能性及びその生成の方法に関して様々な利点を提供する抗体の形態を提供する。一態様では、本発明の抗体は、特定の非免疫性応答を元にした治療的方策に必須である一価性の特徴を提供する。例えば、拮抗的機能を必要としている病的状態、および抗体の二価性により望ましくない作用効果が生じる場合、本発明の抗体の一価性の特徴により、標的分子への抗体の結合の際に拮抗的機能が生じる及び/又は確実となる。さらに、本発明の抗体は、類似の/実質的に同一の抗原結合特徴を有するFab型と比較して、優れた薬物動態学的特質(例えばインビボでのクリアランス速度の減退及び/又は改良された半減期)に特徴があり、したがって従来の一価性Fab抗体の使用における重大な欠点を克服している。一態様では、本発明の抗体は、ほとんど免疫エフェクター機能、特に免疫エフェクタ応答が有害である病理学的症状を治療する際に有用である特徴を具備しない。他の態様では、本発明の抗体は大いに生成効率を改良する変更に特徴がある。さらに、一価性抗体断片のある従来の生産方法(例えば、酵素的消化、化学共役などに続いて行うもの)に対して、本発明の製造方法の組換え体性質は、治療薬として開発及び/又は商業化のために有用な均質性及び/又は精製度の十分に高い抗体集団を得ることを可能にする。
免疫エフェクター機能は、特定の臨床環境において不必要であるか、さらに有害である。いくつかの実施態様では、本発明の抗体はアグリコシル化される。このような抗体は、Fc領域のグリコシル化に依存する実質的免疫エフェクター機能を示さない。一般に及び好ましくは、本発明のアグリコシル化抗体は、FcRnへの結合を除いて実質的免疫エフェクター機能を示さない。いくつかの実施態様では、本発明の抗体断片はFcRn結合以外のエフェクター機能を実質的に有さない又は完全に欠いている。一実施態様では、前記エフェクター機能は補体細胞溶解である。一実施態様では、前記エフェクター機能は、抗体依存性細胞傷害(ADCC)である。一実施態様では、抗体断片はFcRnを結合する。アグリコシル化抗体は、従来技術に公知の様々な方法によって生産されることができる。便利な方法は、大腸菌などの原核生物の宿主細胞内で抗体を発現することを含んでなる。
いくつかの実施態様では、本発明の抗体断片は免疫応答の構成成分を標的にしないため、治療的活動のメカニズムは免疫応答の調節及び/又は連動を具備しない。例えば、一実施態様では、本発明の抗体断片は、ほとんど免疫抑制性特性を有しない。例えば、前記免疫抑制性特性は、直接又は間接的にT細胞枯渇をもたらす能力を具備してもよい。一実施態様では、前記抗体断片はT細胞表面抗原に特異的に結合せず、いくつかの実施態様ではその抗原はCD3又はCD4である。一実施態様では、前記T細胞表面抗原はCD3である。さらに他の実施態様では、抗体断片は、イムノグロブリンポリペプチドを特異的に結合しない、例えば、表面イムノグロブリンのλ鎖上の定常決定基又は表面イムノグロブリン上のイディオタイプ決定基に特異的に結合しない。
一態様では、本発明は以下のものを具備する抗体断片を提供する:(i)軽鎖可変ドメインを含有する第一ポリペプチド(及びいくつかの実施態様では更に軽鎖定常ドメインを含有する)、(ii)重鎖可変ドメイン、第一Fcポリペプチド配列を含有する第二ポリペプチド(及びいくつかの実施態様では更に非Fc重鎖定常ドメイン配列を含有する)、及び(iii)第二Fcポリペプチド配列を含有する第三ポリペプチド。通常、第二ポリペプチドは、重鎖可変ドメイン、重鎖定常ドメイン(例えばCH1の全部又は一部)並びに第一Fcポリペプチドを含有する単一のポリペプチドである。例えば、第一Fcポリペプチド配列は、通常、ペプチド結合[すなわち非ペプチジル結合でない]によって、重鎖定常ドメインに連結される。一実施態様では、第一ポリペプチドは、ヒト軽鎖定常ドメインに融合された非ヒト軽鎖可変ドメインを具備する。一実施態様では、第二ポリペプチドは、ヒト重鎖定常ドメインに融合された非ヒト重鎖可変ドメインを具備する。一実施態様では、第三ポリペプチドは、そのN末端に少なくとも一部のヒンジ配列を含有するN末端切断型重鎖を具備する。一実施態様では、第三ポリペプチドは、そのN末端に機能的な又は野生型ヒンジ配列を具備しないN末端切断型重鎖を具備する。いくつかの実施態様では、本発明の抗体断片の2つのFcポリペプチドは共有結合により連結される。例えば、ヒンジ領域のシステイン残基間の分子間ジスルフィド結合などの分子間ジスルフィド結合を介して2つのFcポリペプチドが連結されてもよい。
一態様では、本発明は、抗体断片内のFc配列のホモ二量体化を最小化する一方、ヘテロ二量体化を促進する少なくとも1つの特徴を具備する抗体断片を提供する。本願明細書において記載されるように、このような特徴は本発明の方法によって入手できるイムノグロブリン集団の効率及び/又は精製度及び/又は均質性を改良する。一実施態様では、第一Fcポリペプチドと第二Fcポリペプチドは作用領域で会合/相互作用する。第一及び第二のFcポリペプチドが作用領域で会合するいくつかの実施態様において、第二Fcポリペプチド(配列)の作用領域は、第一Fcポリペプチド(配列)の作用領域内のキャビティに位置しうる***を具備する。一実施態様では、第一Fcポリペプチドはキャビティをコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されているか、あるいは、第二Fcポリペプチドは***をコードする鋳型/元のポリペプチドから変更されているか、あるいはその両方である。一実施態様では、第一Fcポリペプチドはキャビティをコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されており、第二Fcポリペプチドは***をコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されている。一実施態様では、第二Fcポリペプチドの作用領域は第一Fcポリペプチドの作用領域内のキャビティに位置しうる***を具備し、キャビティ又は***又はその両方がそれぞれ第一及び第二のFcポリペプチドの作用領域に導入されている。第一Fcポリペプチドと第二Fcポリペプチドが作用領域で会合するいくつかの実施態様において、第一Fcポリペプチド(配列)の作用領域は、第二Fcポリペプチド(配列)の作用領域内のキャビティに位置しうる***を具備する。一実施態様では、第二Fcポリペプチドはキャビティをコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されているか、あるいは、第一Fcポリペプチドは***をコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されているか、あるいはその両方である。一実施態様では、第二Fcポリペプチドはキャビティをコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されており、第一Fcポリペプチドは***をコードするために鋳型/元のポリペプチドから変更されている。一実施態様では、第一Fcポリペプチドの作用領域は第二Fcポリペプチドの作用領域内のキャビティに位置しうる***を具備し、***又はキャビティ又はその両方がそれぞれ第一及び第二のFcポリペプチドの作用領域に導入されている。
本発明の抗体断片は、異種性成分とコンジュゲートしてもよい。抗体へのコンジュゲートが抗体の所望の機能及び/又は特徴を実質的に減退しない限り、どの異種性成分でも適するであろう。例えば、いくつかの実施態様では、免疫コンジュゲートは、細胞障害性剤である異種性成分を具備する。いくつかの実施態様では、前記細胞障害性剤は、放射性同位体、化学療法剤及び毒素からなる群から選択される。いくつかの実施態様では、前記毒素は、カリケアマイシン、メイタンシン及びトリコセン(trichothene)からなる群から選択される。いくつかの実施態様では、免疫コンジュゲートは検出可能なマーカーである異種性成分を具備する。いくつかの実施態様では、前記検出可能なマーカーは、放射性同位体、リガンド-レセプタ対のメンバー、酵素-基質対のメンバー及び蛍光共鳴エネルギー転移対のメンバーからなる群から選択される。
一態様では、本発明は、本発明の抗体断片及び担体を具備する組成物を提供するものであり、それは一実施態様では、薬学的に受容可能な担体である。一実施態様では、抗体断片は異種性成分にコンジュゲートされる。
他の態様では、本発明は、容器及び容器に内包される組成物を具備する製造品を提供するものであり、該組成物は本発明の抗体断片を具備する。いくつかの実施態様では、製造品は更に、前記組成物を用いるための指示書を具備する。一実施態様では、抗体断片は、治療上有効量で提供される。
一態様では、本発明は本発明の抗体を発現するための組み換えベクターを提供する。
一態様では、本発明は、本発明のポリヌクレオチド又は組換えベクターを具備する宿主細胞を提供する。一実施態様では、宿主細胞は原核細胞、例えば大腸菌である。一実施態様では、宿主細胞は、真核細胞、例えばチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞などの哺乳類の細胞である。
本発明の抗体は、様々な環境の中で様々な用途を提供する。例えば、本発明の抗体は、通常治療的抗体である。本発明の抗体は、様々なメカニズムの何れかによってその治療効果を発揮しうる。例えば、本発明の抗体は、アゴニスト抗体であってもよい。他の例では、本発明の抗体は拮抗的抗体であってもよい。さらに他の例では、本発明の抗体は遮断抗体であってもよい。他の例では、本発明の抗体は中和抗体である。
一態様では、本発明は、疾患の経過を治療するかないしは遅延させる方法を提供するものであり、疾患を有する対象体に疾患の経過を治療するかないしは遅延させる際に効果的な本発明の抗体断片を有効量投与することを含んでなる。一実施態様では、疾患は腫瘍又は癌である。一実施態様では、疾患は免疫学的疾患、例えば自己免疫性疾患、例えば関節リウマチ、免疫性血小板減少性紫斑病、全身性エリテマトーデス、乾癬、シェーグレン症候群、インシュリン依存性糖尿病などである。他の実施態様では、疾患は異常な脈管化(例えば血管新生)を伴う。さらに他の実施態様では、疾患は、成長因子-レセプターシグナル伝達の調節不全を伴う。ある例では、前記成長因子-レセプターシグナル伝達はチロシンキナーゼを伴う。ある例では、前記成長因子-レセプターシグナル伝達は、HGF-c-met系を伴う。
QVQLQQSGPELVRPGASVKMSCRASGYTFTSYWLHWVKQRPGQGLEWIGMIDPSNSDTRFNPNFKDKATLNVDRSSNTAYMLLSSLTSADSAVYYCATYGSYVSPLDYWGQGTSVTVSS (配列番号:7)
一実施態様では、本発明の抗体断片は、以下の配列を有する軽鎖可変ドメインを含有してなる抗原結合アームを含んでなる:
DIMMSQSPSSLTVSVGEKVTVSCKSSQSLLYTSSQKNYLAWYQQKPGQSPKLLIYWASTRESGVPDRFTGSGSGTDFTLTITSVKADDLAVYYCQQYYAYPWTFGGGTKLEIK (配列番号:8)
一態様では、本発明は、疾患、例えば癌、腫瘍、細胞増殖性疾患、免疫性(例えば自己免疫性)疾患及び/又は血管新生関連疾患の治療的及び/又は予防的処置のための医薬の調製における本発明の抗体断片(例えば本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片をコードする核酸)の使用を提供する。
一態様では、本発明は、疾患、例えば癌、腫瘍、細胞増殖性疾患、免疫性(例えば自己免疫性)疾患及び/又は血管新生関連疾患の治療的及び/又は予防的処置のための医薬の調製における本発明の発現ベクター(例えば本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片をコードするベクター)の使用を提供する。
一態様では、本発明は、疾患、例えば癌、腫瘍、細胞増殖性疾患、免疫性(例えば自己免疫性)疾患及び/又は血管新生関連疾患の治療的及び/又は予防的処置のための医薬の調製における本発明の宿主細胞(例えば本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片をコードするベクターを含んでなる宿主細胞)の使用を提供する。
一態様では、本発明は、疾患、例えば癌、腫瘍、細胞増殖性疾患、免疫性(例えば自己免疫性)疾患及び/又は血管新生関連疾患の治療的及び/又は予防的処置のための医薬の調製における本発明のキット(例えば本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片及び/又は本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片をコードする核酸を含んでなるキット)の使用を提供する。
一態様では、本発明は、c-met活性化細胞増殖を阻害する方法を提供するものであり、該方法は本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片の有効量と細胞又は組織とが接触することを含んでなり、それによってc-met活性化を伴う細胞増殖が阻害される方法である。
一態様では、本発明は、対象体のc-met活性化の調節不全を伴う病的状態の治療方法を提供するものであり、該方法は本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片の有効量が対象体に投与されることを含んでなり、それによって外傷上を治療する方法である。
一態様では、本発明は、c-met又は肝細胞増殖因子ないしはその両方を発現する細胞を含有する癌性腫瘍を有する哺乳動物を治療的に処置する方法を提供するものであり、該方法は該哺乳動物に本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片の有効量が投与されることを含んでなり、それによって、該哺乳動物が効果的に治療される方法である。一実施態様では、細胞は異なる細胞によって発現されるHGFに(例えば、傍分泌効果を介して)接触する。
一態様では、本発明は、c-met又は肝細胞成長ないしはその両方の発現増加又は活性増強を伴う細胞増殖性疾患を治療ないしは予防するための方法を提供するものであり、該方法は、このような治療を必要とする対象体に本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片の有効量が投与されることを含んでなり、このことにより該細胞増殖性疾患が効果的に治療ないしは予防される方法である。一実施態様では、前記増殖性疾患は癌である。
一態様では、本発明は、哺乳動物の腫瘍を治療的に処置する方法を提供するものであり、該腫瘍の成長がc-met又は肝細胞増殖因子ないしはその両方の成長潜在的効果に少なくとも少しは依存しており、該方法は本発明のc-metアンタゴニスト抗体断片の有効量と該腫瘍とが接触することを含んでなり、このことにより該腫瘍が効果的に治療される方法である。一実施態様では、細胞は異なる細胞によって発現されるHGFに(例えば、傍分泌効果を介して)接触する。
本発明の方法は更に付加的処置工程を含むことができる。例えば、一実施態様では、方法は更に、標的細胞及び/又は組織(例えば癌細胞)が放射線治療又は化学療法剤にさらされる工程を含む。
c-met活性化(及びその後のシグナル伝達)の調節不全は、例えば、HGF(c-metの同系リガンド)の過剰発現及び/又はc-met自体を含む多くの細胞性変異から生じうる。したがって、いくつかの実施態様では、本発明の方法は、c-met又は肝細胞成長因子あるいはその両方が、同じ組織起源の正常細胞と比較して、細胞(例えば癌細胞)により多く発現される細胞を標的とすることを含んでなる。c-met発現細胞は様々な起源からのHGFによって、すなわち自己分泌又は傍分泌方法で、調整されうる。例えば、本発明の方法の一実施態様では、標的細胞は、異なる細胞において発現される肝細胞成長因子に(例えば、傍分泌を介して)接触/結合する。前記異なる細胞は、同じ組織起源のもの又は異なる組織起源のものでありうる。一実施態様では、標的細胞は、標的細胞自体によって発現されるHGFに(例えば、自己分泌効果/ループを介して)接触/結合する。一実施態様では、標的細胞のc-met活性(又は活性化)はリガンド依存性である。一実施態様では、c-met活性(又は活性化)は、リガンド非依存性である。
本発明は、特定の病理学的症状を治療するための使用に特に有用とする固有の特徴を有する一価性抗体断片を用いるための方法、組成物、キット及び製造品を提供する。さらに、抗体断片は、実用的効率かつ望ましい精製度で確実に調製されうる。本発明の抗体断片は、従来の一価性抗体と比較して、優れた物理化学的及び/又は治療的能力に特徴がある。一般に、本発明の一価性抗体断片は、単一の抗原結合アーム及びFc領域を含んでなるものであり、該抗体断片は該抗原結合アームを有しているが該Fc領域を欠いているFab抗体断片と比較して生体内安定性が改良されている。いくつかの実施態様では、本発明の抗体断片は、Fc領域を補う両Fcポリペプチド間に多量体化作用領域を形成する各々のFc配列の残基に一又は複数の変異を含有する。本発明は、本発明の抗体断片を製作して使用する方法を提供する。本発明により、本発明の新規の抗体断片の効率的かつ商業性に富む生成が可能となる。抗体断片は、本質的に一価性であり非常に安定した治療的抗体の使用が望まれる及び/又は必要とされる病的状態の治療に使用されうる。本発明の方法、組成物、キット及び製造品の詳細は本願明細書において記載する。
本発明の実施は、特に明記しない限り、当業者の技術範囲内の分子生物学(組換え技術を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学及び免疫学の従来技術を使用して行う。このような技術は、例えば以下のような文献に完全に明記されている。「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」, 第2版(Sambrookら, 1989);「Oligonucleotide Synthesis」(M. J. Gait, 編, 1984);「Animal Cell Culture」(R. I. Freshney, 編, 1987);「Methods in Enzymology」(Academic Press, Inc.);「Current Protocols in Molecular Biology」(F. M. Ausubelら, 編., 1987, and periodic updates);「PCR: The Polymerase Chain Reaction」, (Mullisら, 編, 1994);「A Practical Guide to Molecular Cloning」(Perbal Bernard V., 1988)。
ここで使用される「ベクター」という用語は、それが結合している他の核酸を輸送することのできる核酸分子を意味するものである。一つのタイプのベクターは「プラスミド」であり、これは付加的なDNAセグメントが結合されうる円形の二重鎖DNAループを意味する。他の型のベクターはファージベクターである。他の型のベクターはウイルスベクターであり、付加的なDNAセグメントをウイルスゲノムへ結合させうる。所定のベクターは、それらが導入される宿主細胞内において自己複製することができる(例えば、細菌の複製開始点を有する細菌ベクターとエピソーム哺乳動物ベクター)。他のベクター(例えば、非エピソーム哺乳動物ベクター)は、宿主細胞への導入時に宿主細胞のゲノム中に組み込まれ、宿主ゲノムと共に複製する。更に、所定のベクターは、それらが作用可能に結合している遺伝子の発現を指令し得る。このようなベクターはここでは「組換え発現ベクター」(又は単に「組換えベクター」)と呼ぶ。一般に、組換えDNA技術で有用な発現ベクターはしばしばプラスミドの形をとる。本明細書では、プラスミドが最も広く使用されているベクターの形態であるので、「プラスミド」と「ベクター」を相互交換可能に使用する場合が多い。
本願明細書において用いられるように、「肝細胞増殖因子」又は「HGF」なる用語は、特別に又は文脈上別途示されない限り、HGF/c-metシグナル伝達過程を起こす条件下においてこの経路を活性化しうる任意の(天然/天然に生じるもの又は合成のもののいずれにせよ)天然の又は変異形のHGFポリペプチドを指す。「野生型HGF」なる用語は、一般に、天然に生じるHGFタンパク質のアミノ酸配列を含有してなるポリペプチドを指す。「野生型HGF配列」なる用語は、一般に、天然に生じるHGFにおいてみられるアミノ酸配列を指す。
「抗体」及び「免疫グロブリン」なる用語は互換性をもって広義な意味で使われ、モノクローナル抗体(例えば完全長又は無傷のモノクローナル抗体)、ポリクローナル抗体、単価抗体、多価抗体、多特異性抗体(例えば所望の生物学的活性を示す限りの二重特異性抗体)及び本明細書で記載される抗体断片が含まれる。抗体はヒト、ヒト化及び/又は親和性成熟したものであり得る。
本願明細書において用いられるように、「抗原結合アーム」なる句は対象とする標的分子を特異的に結合する能力を有する本発明の抗体断片の構成成分を指す。一般に、そして、好ましくは、抗原結合アームはイムノグロブリンポリペプチド配列の複合体、例えばイムノグロブリンの軽鎖及び重鎖の可変ドメイン配列及び/又はCDRである。
本願明細書において用いられるように、「N末端切断型重鎖」なる句は、完全長イムノグロブリン重鎖の全てでなく部分を含んでなるポリペプチドを指すものであり、欠損する部分は通常重鎖のN末端領域に位置するものである。欠損する部分には、可変ドメイン、CH1及びヒンジ配列の一部又は全体が制限されることなく含まれ得る。一般に、野生型ヒンジ配列が存在しない場合、N末端切断型重鎖の残りの定常ドメイン(一又は複数)は他のFc配列(すなわち、本願明細書において記載される「第一」Fcポリペプチド)に結合可能な構成成分を含有するであろう。例えば、前記構成成分は、ジスルフィド結合を形成することが可能な修飾残基又は付加システイン残基でありうる。
ここで、モノクローナル抗体は、重鎖及び/又は軽鎖の一部が、特定の種由来の抗体、あるいは特定の抗体クラス又はサブクラスに属する抗体の対応する配列と同一であるか又は相同性があり、鎖の残りの部分が他の種由来の抗体、あるいは他の抗体クラス又はサブクラスに属する抗体の対応する配列と同一であるか又は相同である「キメラ」抗体、並びにそれが所望の生物的活性を有する限りこのような抗体の断片を特に含む(米国特許第4816567号;及びMorrison等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81:6851-6855(1984))。
「親和性成熟」抗体は、その1つ以上のCDRに1つ以上の変更を有する抗体であって、そのような変更を有しない親抗体と比較して、抗原に対する抗体の親和性を向上させる。好ましい親和性成熟抗体は、標的抗原に対して、ナノモル単位の、さらにはピコモル単位の親和性を有する。親和成熟抗体は、当技術分野において既知の方法により生産できる。Marks他は、Bio/Technology, 10:779-783(1992年)において、VHドメインとVLドメインのシャフリングによる親和成熟を開示している。CDRおよび/またはフレームワーク残基のランダムな突然変異誘発が、Barbas他、Proc Nat. Acad. Sci, USA 91:3809-3813(1994); Schier他、Gene, 169:147-155 (1995); Yelton他、J. Immunol., 155:1994-2004 (1995); Jackson他, J. Immunol., 154(7):3310-9 (1995); およびHawkins他, J. Mol. Biol., 226:889-896 (1992)に開示されている。
「ヘテロ多量体」、「ヘテロ多量体性複合体」又は「ヘテロ多量体性ポリペプチド」は少なくとも第一ポリペプチド及び第二ポリペプチドを含有する分子であり、該第二ポリペプチドはアミノ酸配列において少なくとも一アミノ酸残基が該第一ポリペプチドとは異なるものである。ヘテロ多量体は第一及び第二のポリペプチドにより形成される「ヘテロダイマー」を含有するかないしは、第一及び第二のポリペプチドにポリペプチドの付加が存在する高次の三次構造を形成することができる。
本明細書中で用いる「ポリペプチド」は、一般におよそ10アミノ酸以上を有するペプチド及びタンパク質を意味する。
本明細書中で用いる「免疫抑制性質」なる句又はその異なる言い回しは、体液性免疫及び細胞性免疫に限らず、免疫系を伴う一又は複数の正常活性及び/又は機能の抑制を直接的又は間接的に引き起こす抗体の性質を意味する。
「抗体依存性細胞媒介性細胞障害(抗体依存性細胞性障害)」及び「ADCC」とは、Fcレセプター(FcR)を発現する非特異的な細胞障害細胞(例えば、ナチュラルキラー(NK)細胞、好中球及びマクロファージ)が標的細胞上に結合した抗体を認識して、続く標的細胞の溶解を引き起こす細胞媒介性応答を意味する。
ここで使用される「シストロン」という用語は、概してポリペプチド鎖及び隣接コントロール領域をコードしているヌクレオチド配列を含む翻訳単位に相当する遺伝子要素を指すことを意図する。「隣接コントロール領域」は例えば、翻訳開始領域(TIR;下記に定義されるようなもの)及び末端領域を含む。
ここで使用される用語「翻訳強度」とは、TIRの一以上の変異体がポリペプチドの直接分泌に使用され、その結果を同じ培地及びアッセイ条件下で野生型TIR又は幾つかの他のコントロールに比較して得た、コントロールシステムにおける分泌ポリペプチドの測定を意図する。いずれかの見解に限定する訳ではないが、ここで使用される「翻訳強度」は、例えば、mRNA安定性、リボソーム結合部位に結合するリボソームの能力、及び膜を超える転位座の機序の測定を含みうる。
「遮断(ブロック)」抗体又は「アンタゴニスト」抗体は、結合する抗原(例えば、c-met及びVEGFレセプター)の生物学的活性を抑制又は減退させるものである。
本明細書中で用いる「アゴニスト抗体」は、対象となるポリペプチド(例えば、HGF及びVEGF)の少なくとも一の機能的活性を模倣する抗体である。
「疾病」は、本発明の方法又は抗体を用いた治療によって利益を得る任意の症状である。これには、問題とする疾患に哺乳動物がかかりやすくなる病理学的症状を含む慢性及び急性の疾病又は疾患を含む。限定的なものではなく、ここで治療する疾患の例には、悪性及び良性の腫瘍;非白血病性及びリンパ球性悪性腫瘍;神経系、神経膠系、星状性、視床下部系及び他の腺性、マクロファージ性、上皮性、間質性及び胚盤胞性疾患;及び炎症性、免疫性及び他の血管形成性関連疾患が含まれる。
「有効量」とは所望の治療又は予防結果を達成するために必要な用量及び時間での効果的な量を意味する。本発明の抗体の「治療的有効量」は、例えば個体の疾病ステージ、年齢、性別、及び個体の体重、並びに個体に所望の応答を誘発する抗体の能力のような因子に従って変わりうる。また、治療的有効量は抗体の任意の毒性又は有害な効果よりも治療的に恩恵のある効果が上回るものである。「予防的有効量」とは所望の予防結果を達成するために必要な用量及び時間での効果的な量を意味する。典型的には、予防的用量は疾患の初期ステージ又はその前の患者に用いるので、予防的有効量は治療的有効量よりも少ないであろう。
ここで用いる、他の抗体の形態(例えばFab断片相対物)と比較して本発明の抗体断片が「より安定している」又は「安定性が亢進している」及びその異なる言い回しは、本発明の抗体断片が参照する抗体(例えばFab断片相対物)と比較してインビボでの安定性において検出可能な/測定可能な増加を表すことを意味する。安定性は、本発明の抗体断片が対象体への該抗体断片の投与後のある時点で対象体内にどの程度残存しているかの指標として、半減期、クリアランス率及び/又は当分野で理解される任意の他のパラメータに基づくことができる。半減期及び/又はクリアランス率などの安定性パラメータの測定方法は当分野で公知であり、そのいくつかは本明細書中に記載されるものである。
一般的に「結合親和性」は、分子(例えば抗体)の単一結合部位とその結合パートナー(例えば抗原又はFcRnレセプター)との間の非共有結合的な相互作用の総合的な強度を意味する。一般的に、分子XのそのパートナーYに対する親和性は、解離定数(Kd)として表される。親和性は、本明細書中に記載のものを含む当業者に公知の共通した方法によって測定することができる。低親和性抗体は抗原(又はFcRnレセプター)に弱く結合して素早く解離する傾向があるのに対し、高親和性抗体は抗原(又はFcRnレセプター)により密接により長く結合したままとなる。
ここで用いられる「細胞障害性剤」という用語は、細胞の機能を阻害又は阻止し及び/又は細胞破壊を生ずる物質を指す。この用語は、放射性同位体(例えば、At211、I131、I125、Y90、Re186、Re188、Sm153、Bi212、P32及びLuの放射性同位体)、化学治療薬、及び毒素、例えば細菌、糸状菌、植物又は動物起源のその断片及び/又は変異体を含む小分子毒素又は酵素的に活性な毒素を含むように意図されている。
「***」は、第一ポリペプチドの作用領域から突出する少なくとも一つのアミノ酸側鎖であり、したがって、ヘテロ多量体を安定化させるために隣接した作用領域(すなわち第二ポリペプチドの作用領域)内の代償的なキャビティ内に位置し、これによって例えばホモ多量体形成よりも好ましいヘテロ多量体形成を起こすものを意味する。***は、元の作用領域の中に存在してもよいかまたは総合的に導入されてもよい(例えば、作用領域をコード化している核酸を変えることによって)。通常、第一ポリペプチドの作用領域をコードする核酸は、***をコードするように変更される。これを達成するために、第一ポリペプチドの作用領域内の少なくとも一つの「元の」アミノ酸残基をコードする核酸は、元のアミノ酸残基より大きな側鎖容量を有する少なくとも一つの「移入」アミノ酸残基をコードする核酸によって置換される。複数の元の残基及び対応する移入残基があることが好ましいであろう。置換される元の残基の数の上限は、第一ポリペプチドの作用領域内のすべての残基の数である。様々なアミノ残基の側鎖容量は、以下の表に示される。
a 分子量アミノ酸から水の分子量を除したもの。Handbook of Chemistry and Physics, 第43版. Cleveland, Chemical Rubber Publishing Co., 1961からの値。
b A.A. Zamyatnin, Prog. Biophys. Mol. Biol. 24:107-123, 1972からの値。
c C. Chothia, J. Mol. Biol. 105:1-14, 1975からの値。近接可能な表面領域はこの引例の図6ないし20に定義される。
「キャビティ」とは、第二ポリペプチドの作用領域から窪んでいるために第一ポリペプチドの近接する作用領域上の一致する***に対応する少なくとも一のアミノ酸側鎖を指す。前記キャビティは元の作用領域内に存在するかあるいは、合成的に導入されてもよい(例えば作用領域をコードする核酸を変更することによって)。通常、第二ポリペプチドの作用領域をコードする核酸は、キャビティをコードするために変更される。これを達成するために、第二ポリペプチドの作用領域内の少なくとも一つの「元の」アミノ酸残基をコードする核酸は、元のアミノ酸残基より小さな側鎖容量を有する少なくとも一つの「移入」アミノ酸残基をコードするDNAによって置換される。複数の元の残基及び対応する移入残基があることが好ましいであろう。置換される元の残基の数の上限は、第二ポリペプチドの作用領域内のすべての残基の数である。様々なアミノ残基の側鎖容量は上記の表1に示される。キャビティの形成のために好適な移入残基は、通常天然に生じるアミノ酸残基であって、アラニン(A)、セリン(S)、スレオニン(T)及びバリン(V)から選択されるのが好ましい。セリン、アラニン又はスレオニンが最も好適である。一実施態様では、キャビティの形成のための元の残基は、大きな側鎖容量、例えばチロシン、アルギニン、フェニルアラニン又はトリプトファンを有する。
「元の又は鋳型の核酸」とは、***又はキャビティをコードするために「変更する」ことができる(すなわち遺伝子操作するかないしは突然変異させる)対象とするポリペプチドをコードする核酸を意味する。元のあるいははじめの核酸は、天然に生じる核酸でもよいし、事前に変更させてある(例えばヒト化抗体断片)核酸を含んでもよい。核酸を「変更する」とは、元の核酸が対象とするアミノ酸残基をコードする少なくとも一つのコドンを挿入、欠損又は置換することによって変異させることを意味する。通常、元の残基をコードするコドンは、移入残基をコードするコドンによって置換される。このように遺伝的にDNAを修飾する技術は、Mutagenesis: a Practical Approach, M.J. McPherson, 編集, (IRL Press, Oxford, UK. (1991)に概説されており、例えば、部位特異的突然変異、カセット突然変異誘発及びポリメラーゼ連鎖反応(PCR)突然変異誘発が含まれる。したがって、元の/鋳型の核酸を変異させることによって、元の/鋳型の核酸によってコードされる元の/鋳型のポリペプチドは同様に変更される。
一般に、***を形成するための移入アミノ酸残基は、相対的に小さな数の「回転異性体」(例えば約3−6)を有する。「回転異性体(rotomer)」はアミノ酸側鎖のエネルギー的に好適な高次構造である。様々なアミノ酸残基の回転異性体の多くは、Ponders及びRichards, J. Mol. Biol. 193: 775-791 (1987)に概説される。
「単離された」ヘテロ多量体とは、その自然細胞培養物環境の成分から同定され分離され及び/又は回収されたものを意味する。その自然環境の汚染成分とは、ヘテロ多量体の診断又は治療への使用を妨害する物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質様又は非タンパク質様溶質が含まれる。いくつかの実施態様では、ヘテロ多量体は、(1)ローリー(Lowry)法によって定量して95重量%超の、最も好ましくは99重量%超のタンパク質まで、(2)スピニングカップシークエネーターを使用することにより、少なくとも15のN末端あるいは内部アミノ酸配列の残基を得るのに充分な程度まで、あるいは(3)クーマシーブルー又は銀染色を用いた還元又は非還元条件下でのSDS-PAGEによる均一性まで精製される。
「コントロール配列」という表現は、特定の宿主生物において作用可能に結合したコード配列を発現するために必要なDNA配列を指す。例えば原核生物に好適なコントロール配列は、プロモーター、場合によってはオペレータ配列、リボソーム結合部位、あるいは滅多に用いられない配列などの他のものを含む。
核酸は、他の核酸配列と機能的な関係にあるときに「作用可能に結合し」ている。例えば、プレ配列あるいは分泌リーダーのDNAは、ポリペプチドの分泌に参画するプレタンパク質として発現されているなら、そのポリペプチドのDNAに作用可能に結合している;プロモーター又はエンハンサーは、配列の転写に影響を及ぼすならば、コード配列に作用可能に結合している;又はリボソーム結合部位は、もしそれが翻訳を容易にするような位置にあるなら、コード配列と作用可能に結合している。一般的に、「作用可能に結合している」とは、結合したDNA配列が近接しており、分泌リーダーの場合には近接していて読みフェーズにあることを意味する。しかし、エンハンサーは必ずしも近接している必要はない。結合は簡便な制限部位でのライゲーションにより達成される。そのような部位が存在しない場合は、従来の手法に従って、合成オリゴヌクレオチドアダプターあるいはリンカーが使用される。
本発明の抗体の組み換え生成のために、コードする核酸を単離して、更なるクローニング(DNAの増幅)又は発現のために複製ベクターに挿入する。抗体をコードするDNAは従来の手順で簡単に単離し、配列決定される(例えば、抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合することができるオリゴヌクレオチドプローブを用いて)。多くのベクターが利用可能である。用いる宿主細胞にある程度依存してベクターを選択する。一般的に、好適な宿主細胞は原核生物又は真核生物(一般的に哺乳動物)由来の細胞である。
ベクターの構築
本発明の抗体のポリペプチド成分をコードしているポリヌクレオチド配列は標準的な組換え技術を使用して得ることができる。所望のポリヌクレオチド配列はハイブリドーマ細胞のような抗体産生細胞から単離し配列決定することができる。あるいは、ポリヌクレオチドはヌクレオチド合成機又はPCR法を使用して合成することができる。ひとたび得られると、ポリペプチドをコードしている配列は原核生物宿主中で異種ポリヌクレオチドを複製し、発現することが可能な組換えベクター中に挿入される。当該分野において入手でき知られている多くのベクターを本発明の目的のために使用することができる。適切なベクターの選択は、主として、ベクターに挿入される核酸のサイズとベクターで形質転換される特定の宿主に依存する。各ベクターは、機能(異種性ポリヌクレオチドの増幅又は発現ないしその両方)及び属する特定の宿主細胞への適合性に応じて、様々な成分を含む。一般的に、限定するものではないが、ベクター成分には複製起源、選択マーカー遺伝子、プロモータ、リボゾーム結合部位(RBS)、シグナル配列、異種性核酸挿入及び転写終末配列が含まれる。
一般には、レプリコン及び宿主細胞と適合性のある種に由来するコントロール配列を含んでいるプラスミドベクターが、宿主細胞と関連して使用される。そのベクターは、通常、複製開始点並びに形質転換細胞において表現型の選択を提供可能なマーキング配列を有する。例えば、一般的に大腸菌は、大腸菌種由来のプラスミドであるpBR322を用いて形質転換する。pBR322はアンピシリン(Amp)及びテトラサイクリン(Tet)耐性のコード遺伝子を含んでいるため、形質転換細胞を容易に同定することができる。pBR322、その誘導体又は他の微生物プラスミド又はバクテリオファージも外来性タンパク質を発現する微生物によって使用可能なプロモータを含むか、含むように変更される。特定の抗体の発現に使用されるpBR322誘導体の例はCarter等の米国特許第5648237号に詳細に記載されている。
本発明の発現ベクターは各ポリペプチド成分をコードする2又はそれ以上のプロモータ−シストロン(翻訳単位)対を含みうる。プロモーターはその発現を調節するシストロンの上流(5')に位置している非翻訳配列である。原核生物のプロモーターは典型的には誘導性と構成的との二つのクラスのものがある。誘導性プロモーターは、例えば栄養分の有無又は温度の変化のような、培養条件の変化に応答してその調節下でシストロンの転写レベルを増大させるように誘導するプロモーターである。
様々な潜在的宿主細胞によって認識されるプロモータが非常にたくさん公知となっている。選択したプロモーターを、制限酵素消化によって供給源DNAからプロモータを除去し、本発明のベクター内に単離したプロモータを挿入することによって軽鎖又は重鎖をコードするシストロンDNAに作用可能に連結することができる。天然プロモーター配列と多くの異種プロモーターの双方を、標的遺伝子の増幅及び/又は発現を生じさせるために使用することができる。ある実施態様では、天然の標的ポリペプチドプロモーターと比較して、一般的に発現する標的遺伝子をより多く転写させ、効率をよくするので、異種プロモーターが有用である。
本発明の一態様では、組換えベクター内の各シストロンは、膜を貫通して発現されるポリペプチドの転写を誘導する分泌シグナル配列成分を含む。一般に、シグナル配列はベクターの成分でありうるか、ベクター中に挿入される標的ポリペプチドDNAの一部でありうる。この発明の目的のために選択されるシグナル配列は宿主細胞によって認識されプロセシングされる(つまりシグナルペプチダーゼにより切断される)ものでなければならない。異種ポリペプチドに天然のシグナル配列を認識せずプロセシングする原核生物宿主細胞に対しては、シグナル配列は、例えばアルカリホスファターゼ、ペニシリナーゼ、Ippあるいは熱安定性エンテロトキシンII(STII)リーダー、LamB、PhoE、PelB、OmpA及びMBPからなる群から選択される原核生物シグナル配列によって置換される。一実施態様では、発現系の双方のシストロンに使用されるシグナル配列はSTIIシグナル配列又はその変異体である。
本発明は、発現されるポリペプチド成分の量的割合を本発明の抗体の分泌及び好適な集積効率が最大となるように調節することができる発現系を提供する。ポリペプチド成分の翻訳強度を同時に調節することによって少なくともある程度その調節が達成される。
好ましくは、そこの各シストロンに対してある範囲のTIR強さを有する一群のベクターが産生される。この制限された群は各鎖の発現レベルと様々なTIR強さの組合せ下で所望の抗体産物の収量の比較をもたらす。TIR強さはSimmons等の米国特許第5840523号に記載されているレポーター遺伝子の発現レベルを定量することによって決定することができる。翻訳強度を比較することによって、所望の個々のTIRsが選択されて、本発明の発現ベクターコンストラクト中で組み合わされる。
上述した発現ベクターで宿主細胞を形質転換又は形質移入し、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードする遺伝子を増幅するのに適するように修飾された通常の栄養培地中で培養する。
形質転換とは、DNAを原核生物宿主中に導入し、そのDNAを染色体外要素として、又は染色体組込みによって複製可能にすることを意味する。使用される宿主細胞に応じて、形質転換はそのような細胞に適した標準的技術を使用してなされる。塩化カルシウムを用いるカルシウム処理は実質的な細胞壁障害を含む細菌細胞のために一般に使用される。形質転換のための他の方法はポリエチレングリコール/DMSOを用いる。さらに別の方法はエレクトロポレーションである。
本発明のポリペプチドを生産するために使用される原核生物細胞は当該分野で知られ、選択された宿主細胞の培養に適した培地中で増殖させられる。好適な培地の例には、ルリア培地(LB)プラス必須栄養分サプリメントが含まれる。ある実施態様では、培地は発現ベクターを含む原核生物細胞の増殖を選択的に可能にするために、発現ベクターの構成に基づいて選択される選択剤をまた含む。例えば、アンピシリンがアンピシリン耐性遺伝子を発現する細胞の増殖用培地に加えられる。
原核生物宿主細胞は適切な温度で培養される。例えば、大腸菌の増殖に対しては、好適な温度は約20℃から約39℃、より好ましくは約25℃から約37℃の範囲、更により好ましくは約30℃である。培地のpHは、主として宿主生物に応じて、約5から約9の範囲の任意のpHでありうる。大腸菌に対しては、pHは好ましくは約6.8から約7.4、より好ましくは約7.0である。
本発明の発現ベクターに誘導性プロモータが用いられる場合、プロモータの活性に適する条件下でタンパク質発現を誘導する。本発明の一態様では、ポリペプチドの転写制御のためにPhoAプロモータが用いられる。したがって、形質転換した宿主細胞を誘導のためにリン酸限定培地で培養する。好ましくは、リン酸限定培地はC.R.A.P培地である(例として、Simmonsら., J. Immunol. Methods (2002), 263:133-147を参照)。様々な他の誘導因子は用いるベクターコンストラクトに応じて当業者に知りうるように用いてよい。
本発明の一側面では、抗体産生は発酵法によって多量に受け継がれる。組換えタンパク質の生産には様々な大規模流加発酵法を利用することができる。大規模発酵は少なくとも1000リットルの容量、好ましくは約1000から100000リットルの容量である。これらの発酵槽は、酸素と栄養分、特にグルコース(好ましい炭素/エネルギー源)を分散させる撹拌翼を使用する。小規模発酵とは一般におよそ100リットル以下の容積で、約1リットルから約100リットルの範囲でありうる発酵槽での発酵を意味する。
本発明のポリペプチドの生産収量と品質を改善するために、様々な発酵条件を変更することができる。例えば、分泌される抗体ポリペプチドの正しい組み立てとフォールディングを改善するために、例えばDsbタンパク質(DsbA、DsbB、DsbC、DsbD及び/又はDsbG)又はFkpA(シャペロン活性を持つペプチジルプロピルシス、トランス-イソメラーゼ)のようなシャペロンタンパク質を過剰発現する更なるベクターを用いて宿主原核細胞を同時形質転換させることができる。シャペロンタンパク質は細菌宿主細胞中で生産される異種性タンパク質の適切な折り畳みと溶解性を容易にすることが実証されている。Chen等 (1999) J Bio Chem 274:19601-19605;Georgiou等, 米国特許第6083715号;Georgiou等, 米国特許第6027888号;Bothmann及びPluckthun (2000) J. Biol. Chem. 275:17100-17105;Ramm及びPluckthun (2000) J. Biol. Chem. 275:17106-17113;Arie等 (2001) Mol. Microbiol. 39:199-210。
ある実施態様では、タンパク質溶解性酵素を欠損した、一以上のシャペロンタンパク質を過剰発現するプラスミドで形質転換した大腸菌株を本発明の発現系の宿主細胞として用いる。
ある実施態様では、本明細書に記載の生成した抗体タンパク質をさらに精製して、更なるアッセイ及び使用のために実質的に均一な調製物を得る。当分野で公知の標準的なタンパク質精製方法を用いることができる。以下の方法は好適な精製手順の例である:免疫親和性又はイオン交換カラムによる分画化、エタノール沈降法、逆相HPLC、シリカ又はDEAEなどの陽***換樹脂によるクロマトグラフィ、クロマトフォーカシング、SDS−PAGE、硫酸アンモニウム沈降法及び、例えばSephadex G−75を用いたゲル濾過法。
一態様では、固形層に固定したプロテインAを本発明の完全長抗体産物の免疫親和性精製法に用いる。プロテインAは抗体のFc領域に高い親和性で結合する黄色ブドウ球菌から単離した41kDの細胞壁タンパク質である。Lindmark ら (1983) J. Immunol. Meth. 62:1-13。プロテインAを固定した固形層は、ガラス又はシリカ表面、より好ましくは孔を調節したガラスカラム又はケイ酸カラムを含むカラムが好ましい。ある方法では、カラムは非特異的な混入物の接着を防ぐためにグリセロールなどの試薬でコートされている。
精製の初めの工程では、上記に記載のように細胞培養物からの調製物をプロテインA固定固形層に適応し、プロテインAに対象とする抗体を特異的に結合させる。ついで、固形層を洗浄して、固形層に非特異的に結合した混入物を除去する。最後に、対象とする抗体を溶出により固形層から除去する。
一般的に、ベクターは、限定するものではないが、以下の一以上を含む:シグナル配列、複製起点、一以上のマーカ遺伝子、エンハンサー因子、プロモータ及び転写終末因子。
(i)シグナル配列成分
真核生物の宿主細胞に用いるベクターは、シグナル配列あるいは成熟タンパク質あるいは対象とするポリペプチドのN末端に特異的切断部位を有する他のポリペプチドを含んでいてもよい。好ましく選択された異種シグナル配列は宿主細胞によって認識され加工される(すなわち、シグナルペプチダーゼによって切断される)ものである。哺乳動物細胞での発現においては、哺乳動物のシグナル配列並びにウイルス分泌リーダー、例えば単純ヘルペスgDシグナルが利用できる。
このような前駆体領域のDNAは、多価抗体をコードするDNAに読み枠を一致させて結合される。
一般には、哺乳動物の発現ベクターには複製開始点成分は不要である。例えば、SV40開始点は典型的にはただ初期プロモーターを有しているために用いられる。
(iii)選択遺伝子成分
発現及びクローニングベクターは、選択可能マーカーとも称される選択遺伝子を含む。典型的な選択遺伝子は、(a)アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセートあるいはテトラサイクリンのような抗生物質あるいは他の毒素に耐性を与え、(b)必要があれば栄養要求性欠陥を補い、又は(c)複合培地から得られない重要な栄養素を供給するタンパク質をコードする。
選択方法の一例では、宿主細胞の成長を抑止する薬物が用いられる。異種性遺伝子で首尾よく形質転換した細胞は、薬物耐性を付与するタンパク質を生産し、よって選択工程を生存する。このような優性選択の例は、薬剤ネオマイシン、ミコフェノール酸及びハイグロマイシンを使用する。
例えば、DHFR選択遺伝子によって形質転換された細胞は、先ず、DHFRの競合的アンタゴニストであるメトトリキセート(Mtx)を含む培地において形質転換物の全てを培養することで同定される。野生型DHFRを用いた場合の好適な宿主細胞は、DHFR活性に欠陥のあるチャイニーズハムスター卵巣(CHO)株化細胞である(例として、ATCC CRL-9096)。
あるいは、抗体をコードするDNA配列、野生型DHFRタンパク質、及びアミノグリコシド3'-ホスホトランスフェラーゼ(APH)のような他の選択可能マーカーで形質転換あるいは同時形質転換した宿主細胞(特に、内在性DHFRを含む野生型宿主)は、カナマイシン、ネオマイシンあるいはG418のようなアミノグリコシド抗生物質のような選択可能マーカーの選択剤を含む培地中での細胞増殖により選択することができる。米国特許第4965199号を参照のこと。
発現及びクローニングベクターは通常は宿主生物体によって認識され抗体ポリペプチド核酸に作用可能に結合しているプロモーターを含む。真核生物に対してもプロモーター配列が知られている。実質的に全ての真核生物の遺伝子が、転写開始部位からおよそ25ないし30塩基上流に見出されるATリッチ領域を有している。多数の遺伝子の転写開始位置から70ないし80塩基上流に見出される他の配列は、Nが任意のヌクレオチドであるCNCAAT領域である。大部分の真核生物遺伝子の3'末端には、コード配列の3'末端へのポリA尾部の付加に対するシグナルであるAATAAA配列がある。これらの配列は全て真核生物の発現ベクターに適切に挿入される。
哺乳動物の宿主細胞におけるベクターからの抗体ポリペプチドの転写は、例えば、ポリオーマウィルス、伝染性上皮腫ウィルス、アデノウィルス(例えばアデノウィルス2)、ウシ乳頭腫ウィルス、トリ肉腫ウィルス、サイトメガロウィルス、レトロウィルス、B型肝炎ウィルス及びサルウィルス40(SV40)のようなウィルスのゲノムから得られるプロモーター、異種性哺乳動物プロモーター、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロブリンプロモーター、熱ショックプロモーターにょって、このようなプロモーターが宿主細胞系に適合し得る限り、調節される。
SV40ウィルスの初期及び後期プロモーターは、SV40ウイルスの複製起点を更に含むSV40制限断片として簡便に得られる。ヒトサイトメガロウィルスの最初期プロモーターは、HindIIIE制限断片として簡便に得られる。ベクターとしてウシ乳頭腫ウィルスを用いて哺乳動物宿主中でDNAを発現させる系が、米国特許第4419446号に開示されている。この系の変形例は米国特許第4601978号に開示されている。また、単純ヘルペスウイルス由来のチミジンキナーゼプロモーターの調節下でのマウス細胞中でのヒトβインターフェロンcDNAの発現について、Reyes等, Nature, 297:598-601(1982)を参照のこと。あるいは、ラウス肉腫ウィルス長末端反復をプロモーターとして使用することができる。
より高等の真核生物によるこの発明の抗体ポリペプチドをコードしているDNAの転写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによってしばしば増強される。哺乳動物遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている(グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α-フェトプロテイン及びインスリン)。しかしながら、典型的には、真核細胞ウィルス由来のエンハンサーが用いられるであろう。例としては、複製起点の後期側のSV40エンハンサー(100−270塩基対)、サイトメガロウィルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサー及びアデノウィルスエンハンサーが含まれる。真核生物プロモーターの活性化のための増強要素については、Yaniv, Nature, 297:17-18 (1982)もまた参照のこと。エンハンサーは、抗体ポリペプチドコード配列の5'又は3'位でベクター中にスプライシングされうるが、好ましくはプロモーターから5'位に位置している。
また、真核生物宿主細胞に用いられる発現ベクターは、典型的には、転写の終結及びmRNAの安定化に必要な配列を含む。このような配列は、真核生物又はウィルスのDNA又はcDNAの5'、時には3'の非翻訳領域から一般に取得できる。これらの領域は、抗体をコードしているmRNAの非翻訳部分にポリアデニル化断片として転写されるヌクレオチドセグメントを含む。一つの有用な転写終結成分はウシ成長ホルモンポリアデニル化領域である。国際公開第94/11026号とそこに開示された発現ベクターを参照のこと。
ここに記載のベクター中のDNAをクローニングあるいは発現させるために適切な宿主細胞は、脊椎動物の宿主細胞を含む本明細書中に記載の高等真核生物細胞を含む。培養(組織培養)中での脊椎動物細胞の増殖は常套的な手順になっている。有用な哺乳動物宿主株化細胞の例は、SV40によって形質転換されたサル腎臓CV1株 (COS-7, ATCC CRL1651);ヒト胚腎臓株(293又は懸濁培養での増殖のためにサブクローン化された293細胞、Graham等, J. Gen Virol., 36:59 (1977));ハムスター乳児腎細胞(BHK, ATCC CCL10);チャイニーズハムスター卵巣細胞/-DHFR(CHO, Urlaub等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:4216 (1980));マウスのセルトリ細胞(TM4, Mather, Biol. Reprod., 23:243-251 (1980));サルの腎細胞 (CV1 ATCC CCL70); アフリカミドリザルの腎細胞(VERO-76, ATCC CRL-1587); ヒト子宮頸癌細胞 (HELA, ATCC CCL2); イヌ腎細胞 (MDCK, ATCC CCL34); バッファローラット肝細胞 (BRL3A, ATCC CRL1442); ヒト肺細胞 (W138, ATCC CCL75); ヒト肝細胞 (Hep G2, HB8065); マウス***腫瘍細胞 (MMT060562, ATCC CCL51);TRI細胞(Mather等, Annals N.Y. Acad. Sci., 383:44-68 (1982));MRC5細胞;FS4細胞;及びヒト肝癌株(HepG2)である。
宿主細胞は、抗体生産のために上述の発現又はクローニングベクターで形質転換され、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードしている遺伝子を増幅するために適切に修飾された常套的栄養培地で培養される。
本発明の抗体を産生するために用いられる宿主細胞は種々の培地において培養することができる。市販培地の例としては、ハム(Ham)のF10(シグマ)、最小必須培地((MEM),(シグマ)、RPMI-1640(シグマ)及びダルベッコの改良イーグル培地((DMEM),シグマ)が宿主細胞の培養に好適である。また、Ham等, Meth. Enz. 58:44 (1979), Barnes等, Anal. Biochem. 102:255 (1980), 米国特許第4767704号;同4657866号;同4927762号;同4560655号;又は同5122469号;国際公開第90/03430号;国際公開第87/00195号;又は米国再発行特許第30985号に記載された何れの培地も宿主細胞に対する培地として使用できる。これらの培地には何れもホルモン及び/又は他の成長因子(例えばインシュリン、トランスフェリン、又は表皮成長因子)、塩類(例えば、塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム及びリン酸塩)、バッファー(例えばHEPES)、ヌクレオチド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えば、GENTAMYCINTM薬)、微量元素(最終濃度がマイクロモル範囲で通常存在する無機化合物として定義される)及びグルコース又は等価なエネルギー源を必要に応じて補充することができる。任意の他の必要な補充物質もまた当業者に知られている適当な濃度で含むことができる。培養条件、例えば温度、pH等々は、発現のために選ばれた宿主細胞について過去に用いられているものであり、当業者には明らかであろう。
組換え技術を用いる場合、抗体は細胞内で生成され、又は培地内に直接分泌される。抗体が細胞内に生成された場合、第1の工程として、宿主細胞か溶解された断片の何れにしても、粒子状の細片が、例えば遠心分離又は限外濾過によって除去される。抗体が培地に分泌された場合は、そのような発現系からの上清を、一般的には先ず市販のタンパク質濃縮フィルター、例えばAmicon又はPelliconの限外濾過装置を用いて濃縮する。PMSFなどのプロテアーゼ阻害剤を上記の任意の工程に含めて、タンパク質分解を阻害してもよく、また抗生物質を含めて外来性の汚染物の成長を防止してもよい。
予備的精製工程に続いて、目的の抗体および混入物を含む混合液をpH約2.5−4.5、好ましくは低塩濃度(例として、約0−0.25M塩)の溶出緩衝液を用いて低pH疎水性作用クロマトグラフィを行う。
本発明の抗体は当該分野で知られている様々なアッセイによってその物理的/化学的性質及び生物学的機能について特徴付けることができる。
精製された免疫グロブリンは、限定されるものではないが、N末端シークエンシング、アミノ酸解析、非変性サイズ排除高圧液体クロマトグラフィー(HPLC)、質量分析、イオン交換クロマトグラフィー及びパパイン消化を含む一連のアッセイによって更に特徴付けることができる。
本発明の特定の実施態様では、ここで生産された免疫グロブリンはその生物学的活性について分析される。ある実施態様では、本発明の免疫グロブリンはその抗原結合活性について試験される。当該分野で知られ、ここで使用することができる抗原結合アッセイには、ウェスタンブロット、ラジオイムノアッセイ、エライザ(酵素結合免疫吸着検定法)、「サンドウィッチ」イムノアッセイ、免疫沈降アッセイ、蛍光イムノアッセイ、及びプロテインAイムノアッセイのような技術を用いた任意の直接的又は競合的結合アッセイが制限なく含まれる。抗原結合アッセイは以下の実施例の項で解説する。
本発明は、ヒト抗体を包含する。非ヒト抗体をヒト化する様々な方法は当分野でよく知られている。例えば、ヒト化抗体には非ヒト由来の一又は複数のアミノ酸残基が導入されている。これら非ヒトアミノ酸残基は、しばしば、典型的には「移入」可変ドメインから得られる「移入」残基と呼ばれる。ヒト化は、本質的にはヒト抗体の該当する高頻度可変領域配列を置換することによりウィンターと共同研究者の方法(Jonesほか, Nature, 321:522-525 (1986)、Riechmannほか, Nature, 332:323-327 (1988)、Verhoeyenほか, Science, 239:1534-1536(1988))を使用して実施することができる。よって、このような「ヒト化」抗体は、完全なヒト可変ドメインより実質的に少ない分が非ヒト種由来の該当する配列で置換されたキメラ抗体(米国特許第4,816,567号)である。実際には、ヒト化抗体は、典型的にはいくらかの高頻度可変領域残基及び場合によってはいくらかのFR残基が齧歯類抗体の類似部位からの残基によって置換されているヒト抗体である。
抗原性を低減するには、ヒト化抗体を生成する際に使用するヒトの軽重両方の可変ドメインの選択が非常に重要である。「ベストフィット法」では、齧歯動物抗体の可変ドメインの配列を既知のヒト可変ドメイン配列のライブラリ全体に対してスクリーニングする。次に齧歯動物のものと最も近いヒト配列をヒト化抗体のヒトフレームワークとして受け入れる(Simsほか, J. Immunol., 151:2296 (1993);Chothiaら, J. Mol. Biol., 196:901(1987))。他の方法では、軽又は重鎖の特定のサブグループのヒト抗体全てのコンセンサス配列から誘導される特定のフレームワークを使用する。同じフレームワークをいくつかの異なるヒト化抗体に使用できる(Carterほか, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89:4285 (1992);Prestaほか, J. Immunol., 151:2623(1993))。
一態様では、本発明は、Fc領域を含むFcポリペプチドの作用面内に修飾を有する抗体断片を提供するものであり、ここでいう修飾によって異種性二量体化を容易にする及び/又は促進される。この修飾は、第一Fcポリペプチド内への***と第二Fcポリペプチド内への腔の導入を含むものであり、ここでいう***は第一Fcポリペプチドと第二Fcポリペプチドの複合体化を促進するために腔内に位置する。これらの修飾を有する抗体の生成方法は当分野で公知であり、例えば米国特許第5,731,168号に記載されている。
ある実施態様では、本明細書中に記載の抗体のアミノ酸配列の修飾を考える。例えば、抗体の結合親和性及び/又は他の生物学的特性を改善することが望まれうる。抗体のアミノ酸配列変異体は、抗体核酸中に適当なヌクレオチド変化を導入することにより、又はペプチド合成により調製される。そのような修飾は、例えば、抗体のアミノ酸配列内の残基の欠失及び/又は挿入及び/又は置換を含む。欠失、挿入、及び置換の任意の組み合わせをその最終コンストラクトに達するまでなされることによって最終コンストラクトが所望の特徴を有する。配列を作製すると同時に目的の抗体アミノ酸配列にアミノ酸修飾を導入するのがよい。
他の型の変異体はアミノ酸置換変異体である。これらの変異体は、抗体分子において少なくとも一つのアミノ酸残基が異なる残基で置換されている。置換突然変異に対して最も興味深い部位は高頻度可変領域を含むが、FR変化も考えられる。保存的置換は、「好ましい置換」と題して表2に示す。このような置換が生物学的活性の変化をもたらす場合、以下の表に「例示的置換」と名前を付け、又はアミノ酸の分類に関して以下に更に記載するような、より実質的な変化を導入し、生成物をスクリーニングしてもよい。
(1) 疎水性:ノルロイシン, Met, Ala, Val, Leu, Ile;
(2) 中性親水性:Cys, Ser, Thr;
(3) 酸性:Asp, Glu;
(4) 塩基性:Asn, Gln, His, Lys, Arg;
(5) 鎖配向に影響する残基:Gly, Pro;及び
(6) 芳香族:Trp, Tyr, Phe。
非保存的置換は、これらの分類の一つのメンバーを他の分類に交換することを必要とするであろう。
抗体のアミノ酸配列変異体をコードする核酸分子は、この分野で知られた種々の方法によって調製される。これらの方法は、限定するものではないが、天然源からの単離(天然に生じるアミノ酸配列変異体の場合)又は初期に調製された抗体の変異体又は非変異体のオリゴヌクレオチド媒介(又は部位特異的)突然変異誘発、PCR突然変異誘発、及びカセット突然変異誘発による調製を含む。
当分野での記載や教示に従って、ある実施態様では、本発明の方法を用いた抗体が野生型の対応抗体と比較して例えばFc領域内に一以上の変異を有することを考慮する。にもかかわらず、この抗体はその野生型対応物と比較して治療的有用性を示す実質的に同じ特徴を維持している。例えば、WO99/51642などに記載のようにC1q結合及び/又は補体依存性細胞障害(CDC)を変更する(すなわち改良又は減少する)結果となるFc領域内に特定の変異を生じさせることが考えられる。また、Fc領域変異型の他の例に関するDuncan & Winter Nature 322:738-40 (1988);米国特許第5,648,260号;米国特許第5,624,821号;及びWO94/29351を参照。
また、本発明は、化学療法剤、薬剤、成長阻害剤、毒素(例えば、細菌、糸状菌、植物又は動物由来の酵素活性性毒素、又はその断片)、又は放射性同位体(すなわち放射性コンジュゲート)などの細胞毒性剤にコンジュゲートした抗体を含む免疫コンジュゲート又は抗体−薬剤コンジュゲート(ADC)に関する。
細胞障害性又は細胞***停止性の薬剤、すなわち癌治療における腫瘍細胞を殺す又は阻害するための薬剤の局部運搬に抗体−薬剤コンジュゲートを用いると(Syrigos及びEpenetos (1999) Anticancer Research 19:605-614; Niculescu-Duvaz and Springer (1997) Adv. Drg Del. Rev. 26:151-172;米国特許第4,975,278号)、論理的に腫瘍への薬剤成分の標的とする運搬とそこでの細胞内集積が可能となるものであり、この非コンジュゲート薬物作用剤の全身性投与により正常細胞並びに除去しようとする腫瘍細胞への毒性が容認できないレベルとなりうる(Baldwinら., (1986) Lancet pp. (Mar. 15, 1986):603-05; Thorpe, (1985) 「Antibody Carriers Of Cytotoxic Agents In Cancer Therapy: A Review,」 in Monoclonal Antibodies '84: Biological And Clinical Applications, A. Pincheraら. (ed.s), pp. 475-506)。これによって、最小限の毒性で最大限の効果を求める。ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体はこの方策に有用であるとして報告されている(Rowlandら., (1986) Cancer Immunol. Immunother., 21:183-87)。この方法に用いる薬物には、ダウノマイシン、ドキソルビジン、メトトレキサート及びビンデジンが含まれる(Rowlandら., (1986)、上掲)。抗体−毒素コンジュゲートに用いる毒素には、ジフテリア毒素などの細菌性毒素、ゲルダナマイシン(Mandlerら(2000) Jour. of the Nat. Cancer Inst. 92(19):1573-1581;Mandlerら(2000) Bioorganic & Med. Chem. Letters 10:1025-1028;Mandlerら(2002) Bioconjugate Chem. 13:786-791)、メイタンシノイド(EP 1391213;Liuら., (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:8618-8623)、及びカリケアマイシン(Lodeら (1998) Cancer Res. 58:2928;Hinmanら (1993) Cancer Res. 53:3336-3342)などのリシン、小分子毒素などの植物毒が含まれる。該毒素は、チューブリン結合、DNA結合又はトポイソメラーゼ阻害を含む機能によりその細胞障害性及び細胞***停止性の効果に影響しうる。ある種の細胞障害性剤は、大きな抗体又はタンパク質レセプターリガンドにコンジュゲートした場合に、不活性又は活性が低減する傾向がある。
抗体のコンジュゲートと一又は複数の小分子毒素、例えばカリケアマイシン、メイタンシノイド、トリコセン(trichothene)及びCC1065、及び毒性活性を有するこれらの毒素の誘導体が、ここで考察される。
一実施態様では、本発明の抗体(完全長又は断片)は一又は複数のメイタンシノイド分子と結合している。
メイタンシノイドは、チューブリン重合を阻害するように作用する***阻害剤である。メイタンシンは、最初、東アフリカシラブMaytenus serrataから単離されたものである(米国特許第3896111号)。その後、ある種の微生物がメイタンシノイド類、例えばメイタンシノール及びC-3メイタンシノールエステルを生成することが発見された(米国特許第4151042号)。合成メイタンシノール及びその誘導体及び類似体は、例えば米国特許第4137230号;同4248870号;同4256746号;同4260608号;同4265814号;同4294757号;同4307016号;同4308268号;同4308269号;同4309428号;同4313946号;同4315929号;同4317821号;同4322348号;同4331598号;同4361650号;同4364866号;同4424219号;同4450254号;同4362663号;及び同4371533号に開示されており、その開示は出典を明示してここに取り込まれる。
治療指標を改善する試みにおいて、メイタンシン及びメイタンシノイドは、腫瘍細胞抗原に特異的に結合する抗体と結合している。メイタンシノイドを含有する免疫コンジュゲート及びそれらの治療用途は、例えば米国特許第5,208,020号、同5,416,064号、欧州特許第0425235B1号に開示されており、その開示は出典を明示してここに取り込まれる。Liu等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:8618-8623(1996)には、ヒト結腸直腸癌に対するモノクローナル抗体C242に結合するDM1と命名されたメイタンシノイドを含有する免疫コンジュゲートが記載されている。前記コンジュゲートは培養された結腸癌細胞に対して高い細胞障害性を有することが見出されており、インビボ腫瘍成長アッセイにおいて抗腫瘍活性を示す。Chari等, Cancer Research, 52:127-131(1992)には、メイタンシノイドが、ジスルフィド結合を介して、ヒト結腸癌株化細胞の抗原に結合するマウス抗体A7、又はHER-2/neuオンコジーンに結合する他のマウスモノクローナル抗体TA.1に結合している免疫コンジュゲートが記載されている。TA.1-メイタンシノイドコンジュゲートの細胞障害性はヒト乳癌株化細胞SK-BR-3におけるインビトロで試験され、細胞当たり3×105HER-2表面抗原が発現した。薬剤コンジュゲートにより、遊離のメイタンシノイド剤に類似した細胞障害度が達成され、該細胞障害度は、抗体分子当たりのメイタンシノイド分子の数を増加させることにより増加する。A7-メイタンシノイドコンジュゲートはマウスにおいては低い全身性細胞障害性を示した。
抗体-メイタンシノイドコンジュゲートは、抗体又はメイタンシノイド分子のいずれの生物学的活性もほとんど低減することなく、メイタンシノイド分子に抗体を化学的に結合させることにより調製される。1分子の毒素/抗体は、裸抗体の使用において細胞障害性を高めることが予期されているが、抗体分子当たり、平均3−4のメイタンシノイド分子が結合したものは、抗体の機能又は溶解性に悪影響を与えることなく、標的細胞に対する細胞障害性を向上させるといった効力を示す。メイタンシノイドは当該技術分野でよく知られており、公知の技術で合成することも、天然源から単離することもできる。適切なメイタンシノイドは、例えば米国特許第5208020号、及び他の特許、及び上述した特許ではない刊行物に開示されている。好ましいメイタンシノイドは、メイタンシノール、及び種々のメイタンシノールエステル等の、メイタンシノール分子の芳香環又は他の位置が修飾されたメイタンシノール類似体である。
例えば、米国特許第5208020号又は欧州特許第0425235B1号、及びChari等, Cancer Research, 52:127-131(1992)に開示されているもの等を含む、抗体-メイタンシノイドコンジュゲートを作製するために、当該技術で公知の多くの結合基がある。結合基には、上述した特許に開示されているようなジスルフィド基、チオエーテル基、酸不安定性基、光不安定性基、ペプチターゼ不安定性基、又はエステラーゼ不安定性基が含まれるが、ジスルフィド及びチオエーテル基が好ましい。
リンカーは結合の種類に応じて、種々の位置でメイタンシノイド分子に結合し得る。例えば、従来からのカップリング技術を使用してヒドロキシル基と反応させることによりエステル結合を形成することができる。反応はヒドロキシル基を有するC-3位、ヒドロキシメチルで修飾されたC-14位、ヒドロキシル基で修飾されたC-15位、及びヒドロキシル基を有するC-20位で生じる。好ましい実施態様において、結合はメイタンシノール又はメイタンシノールの類似体のC-3位で形成される。
対象の他の免疫コンジュゲートには、一又は複数のカリケアマイシン分子と結合した抗体が含まれる。抗生物質のカリケアマイシンファミリーはサブ-ピコモルの濃度で二重鎖DNA破壊を生じることができる。カリケアマイシンファミリーのコンジュゲートの調製については、米国特許第5712374号、同5714586号、同5739116号、同5767285号、同5770701号、同5770710号、同5773001号、同5877296号(全て、American Cyanamid Company)を参照のこと。使用可能なカリケアマイシンの構造類似体には、限定するものではないが、γ1 I、α2 I、α3 I、N-アセチル-γ1 I、PSAG及びθI 1(Hinman等, Cancer Research, 53:3336-3342(1993)、Lode等 Cancer Research, 58:2925-2928(1998)及び上述したAmerican Cyanamidの米国特許)が含まれる。抗体が結合可能な他の抗腫瘍剤は、葉酸代謝拮抗薬であるQFAである。カリケアマイシン及びQFAは双方共、細胞内に作用部位を有し、原形質膜を容易に通過しない。よって抗体媒介性インターナリゼーションによるこれらの薬剤の細胞への取込により、細胞障害効果が大きく向上する。
本発明の抗体と結合可能な他の抗腫瘍剤には、BCNU、ストレプトゾイシン、ビンクリスチン及び5-フルオロウラシル、米国特許第5053394号、同5770710号に記載されており、集合的にLL-E33288複合体として公知の薬剤のファミリー、並びにエスペラマイシン(esperamicine)(米国特許第5877296号)が含まれる。
使用可能な酵素活性毒及びその断片には、ジフテリアA鎖、ジフテリア毒素の非結合性活性断片、外毒素A鎖(シュードモナス・アエルギノーサ(Pseudomonas aeruginosa)より)、リシンA鎖、アブリンA鎖、モデシン(modeccin)A鎖、アルファ-サルシン(sarcin)、アレウライツ・フォルディイ(Aleurites fordii)プロテイン、ジアンシン(dianthin)プロテイン、フィトラッカ・アメリカーナ(Phytolaca americana)プロテイン(PAPI、PAPII及びPAP-S)、モモルディカ・キャランティア(momordica charantia)インヒビター、クルシン(curcin)、クロチン、サパオナリア(sapaonaria)オフィシナリスインヒビター、ゲロニン(gelonin)、マイトゲリン(mitogellin)、レストリクトシン(restrictocin)、フェノマイシン、エノマイシン及びトリコセセンス(tricothecenes)が含まれる。例えば、1993年10月28日公開の国際公開第93/21232号を参照のこと。
本発明は、抗体と核酸分解活性を有する化合物(例えばリボヌクレアーゼ又はDNAエンドヌクレアーゼ、例えばデオキシリボヌクレアーゼ;DNアーゼ)との間に形成される免疫コンジュゲートをさらに考察する。
放射-又は他の標識が、公知の方法でコンジュゲートに導入される。例えば、ペプチドは生物合成されるか、又は水素の代わりにフッ素-19を含む適切なアミノ酸前駆体を使用する化学的なアミノ酸合成により合成される。標識、例えばtc99m又はI123、Re186、Re188及びIn111は、ペプチドのシステイン残基を介して結合可能である。イットリウム-90はリジン残基を介して結合可能である。IODOGEN法(Fraker等(1978) Biochem. Biophys. Res. Commun. 80:49-57)は、ヨウ素-123の導入に使用することができる。他の方法の詳細は、「Monoclonal Antibodies in Immunoscintigraphy」(Chatal, CRC Press 1989)に記載されている。
本発明の化合物は、限定するものではないが、架橋剤:市販されている(例えば、Pierce Biotechnology, Inc., Rockford, IL., U.S.Aより)BMPS、EMCS、GMBS、HBVS、LC-SMCC、MBS、MPBH、SBAP、SIA、SIAB、SMCC、SMPB、SMPH、スルホ-EMCS、スルホ-GMBS、スルホ-KMUS、スルホ-MBS、スルホ-SIAB、スルホ-SMCC、及びスルホ-SMPB、及びSVSB (succinimidyl-(4-ビニルスルホン)安息香酸塩)にて調製したADCが特に考えられる。2003-2004 Applications Handbook and Catalogの467−498頁を参照。
本発明の抗体薬剤コンジュゲート(ADC)において、抗体(Ab)を、リンカー(L)を介して、一つ以上の薬剤部分(D)、例えば抗体につき約1〜約20の薬剤部分にコンジュゲートする。式IのADCはいくつかの手段、当業者に公知の有機化学反応、状態および試薬を用いて調製されうる:(1)共有結合の後に薬剤部分Dと反応してAb-Lを形成するための、二価のリンカー試薬を用いた抗体の求核基の反応;及び(2)共有結合の後に抗体の求核基と反応してD-Lを形成するための、二価のリンカー試薬を用いた薬剤部分の求核基の反応、が含まれる。
Ab−(L−D)p I
抗体上の求核基には、限定するものでなく、以下のものを含む:(i)N末端アミン基、(ii)側鎖アミン基、例えばリシン、(iii)側鎖チオール基、例えばシステイン、および(iv)抗体がグリコシル化される糖水酸基又はアミノ基。アミン、チオールおよび水酸基は、求核であり、反応して、リンカー部分上の求電子性の群およびリンカー試薬により共有結合を形成することができる:(i)活性エステル、例えばNHSエステル、HOBtエステル、ハロギ酸および酸ハロゲン化物;(ii)アルキルおよびベンジルハライド、例えばハロアセトアミド;(iii)アルデヒド、ケトン、カルボキシルおよびマレイミド群、が含まれる。特定の抗体は、還元しうる鎖間ジスルフィド、すなわちシステイン架橋を有する。抗体は、還元剤、例えばDTT(ジチオトレイトール)による処置によって、リンカー試薬を用いたコンジュゲート反応を行ってもよい。ゆえに、各々のシステイン架橋は、理論的には、2の反応性のチオール求核基を形成する。チオールにアミンを転換させる2-イミノチオラン(トラウトの試薬)を用いてリシンを反応させることによって抗体に付加的な求核基を導入することができる。
別法として、抗体及び細胞障害剤を含有する融合タンパク質は、例えば組換え技術又はペプチド合成により作製される。DNAの長さは、コンジュゲートの所望する特性を破壊しないリンカーペプチドをコードする領域により離間しているか、又は互いに隣接しているコンジュゲートの2つの部分をコードする領域をそれぞれ含有する。
他の実施態様において、腫瘍の事前ターゲティングに利用するために、「レセプター」(例えばストレプトアビジン)に抗体をコンジュゲートし、ここで抗体-レセプターコンジュゲートを患者に投与し、続いて清澄剤を使用し、循環から非結合コンジュゲートを除去し、細胞障害剤(例えば放射性ヌクレオチド)にコンジュゲートする「リガンド」(例えばアビジン)を投与する。
本発明の抗体は当該分野において知られ直ぐに利用できる更なる非タンパク質性部分を含むように更に修飾することができる。好ましくは、抗体の誘導体化に適した部分は水溶性ポリマーである。水溶性ポリマーの非限定的な例には、限定されるものではないが、ポリエチレングリコール(PEG)、エチレングリコール/プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ-1,3-ジオキソラン、ポリ-1,3,6-トリオキサン、エチレン/無水マレイン酸コポリマー、ポリアミノ酸(ホモポリマーかランダムコポリマー)、及びデキストラン又はポリ(n-ビニルピロリドン)ポリエチレングリコール、プロピレングリコールホモポリマー、プロリプロピレンオキシド/エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチレン化ポリオール(例えばグリセロール)、ポリビニルアルコール、及びそれらの混合物が含まれる。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは水中におけるその安定性のために製造の際に有利であろう。ポリマーは任意の分子量であってよく、分枝状でも非分枝状でもよい。抗体に結合するポリマーの数は変化してもよく、一を超えるポリマーが結合する場合、それらは同じでも異なった分子でもよい。一般に、誘導体化に使用されるポリマーの数及び/又はタイプは、限定されるものではないが、その抗体誘導体が定まった条件下での治療に使用されるかどうか、改善される抗体の特定の性質又は機能を含む考慮事項に基づいて決定することができる。
本発明は任意の適切な抗原結合特異性を有する抗体に適用できる。好ましくは、本発明の方法に用いる抗体は、生物学的に重要なポリペプチドである抗原に特異的である。より好ましくは、本発明の抗体は哺乳動物の疾病又は疾患の治療又は診断に有用である。本発明の抗体は、限定するものではないが、遮断用抗体、アゴニスト抗体、中和用抗体又は抗体コンジュゲート(抱合体)が含まれる。治療用抗体の非限定的な例には、抗c-met、抗VEGF、抗IgE、抗CD11、抗CD18、抗CD40、抗組織因子(TF)、抗HER2及び抗TrkC抗体が含まれる。非ポリペプチド抗原(例えば腫瘍関連糖脂質抗原)に対する抗体もまた考えられる。
一実施態様では、本発明の抗体はリンホカインに特異的に結合可能である。他の実施態様では、本発明の抗体はサイトカインに特異的に結合可能である。
一実施態様では、本発明の抗体は脈管形成に関与する分子に特異的に結合可能である。他の実施態様では、本発明の抗体は血管形成に関与する分子に特異的に結合可能である。
他の分子と場合によっては抱合していてもよい可溶型抗原又はその断片を、抗体を産生するための免疫原として使用することができる。レセプターのような膜貫通分子に対しては、これらの分子の断片(例えばレセプターの細胞外ドメイン)を免疫原として使用することができる。あるいは、膜貫通分子を発現する細胞を免疫原として使用することもできる。そのような細胞は天然源(例えば癌細胞株)から取り出すことができ、又は膜貫通分子を発現するように組換え技術により形質転換された細胞であってもよい。抗体の調製に有用な他の抗原とその型は当業者には明らかであろう。
本発明の抗体を含んでなる治療用製剤は、所望の純度を持つ抗体と、場合によっては生理学的に許容される担体、賦形剤又は安定化剤を混合することにより(Remington's Pharmaceutical Sciences 16版, Osol, A. 編 (1980))、水溶液、凍結乾燥又は他の乾燥製剤の形態に調製されて保存される。許容される担体、賦形剤又は安定化剤は、用いられる用量と濃度でレシピエントに非毒性であり、ホスフェート、シトレート、ヒスチジン及び他の有機酸等のバッファー;アスコルビン酸及びメチオニンを含む酸化防止剤;保存料(例えばオクタデシルジメチルベンジルアンモニウムクロリド;ヘキサメトニウムクロリド;ベンザルコニウムクロリド、ベンズエトニウムクロリド;フェノール、ブチル又はベンジルアルコール;メチル又はプロピルパラベン等のアルキルパラベン;カテコール;レゾルシノール;シクロヘキサノール;3-ペンタノール;及びm-クレゾール);低分子量(約10残基未満)のポリペプチド;血清アルブミン、ゼラチン、又は免疫グロブリン等のタンパク質;ポリビニルピロリドン等の親水性ポリマー;グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン又はリシン等のアミノ酸;グルコース、マンノース、又はデキストリンを含む単糖類、二糖類、及び他の炭水化物;EDTA等のキレート化剤;スクロース、マンニトール、トレハロース又はソルビトール等の糖;ナトリウム等の塩形成対イオン;金属錯体(例えば、Zn-タンパク質複合体);及び/又はTWEENTM、PLURONICSTM又はポリエチレングリコール(PEG)等の非イオン性界面活性剤を含む。
また活性成分は、例えばコアセルベーション技術あるいは界面重合により調製されたマイクロカプセル、例えばそれぞれヒドロキシメチルセルロース又はゼラチンマイクロカプセル及びポリ-(メタクリル酸メチル)マイクロカプセルに、コロイド状ドラッグデリバリー系(例えば、リポソーム、アルブミンミクロスフィア、マイクロエマルション、ナノ-粒子及びナノカプセル)に、あるいはマクロエマルションに捕捉させてもよい。このような技術は、Remington's Pharmaceutical Sciences 16版, Osol, A.編 (1980)に開示されている。
インビボ投与に使用される製剤は無菌でなければならない。これは、滅菌濾過膜を通して濾過することにより容易に達成される。
例えば、本発明の免疫グロブリンは、インビトロ、エクスビボ及びインビボの治療法で用いてもよい。本発明は、従来の一価性抗体と比較して優れた特性を有する一価性抗体断片を用いることに基づく様々な方法を提供する。特定の病的状態では、一価性抗体を利用することが必要及び/又は望ましい。また、ある例では、治療的抗体は、免疫系媒介性活性、例えばエフェクター機能ADCC、食作用及びCDCなどを伴わない治療的作用に効果を示しうる。このような場合、このような活性が実質的に減退するか又は排除される抗体の形態を生成することが望ましい。また、抗体が有効かつ効率よく作製されうる形態であれば有用である。本発明は、例えば治療法、予防薬及び診断法などの様々な目的のために使用することができる抗体を提供する。例えば、本発明は疾患の治療方法を提供するものであり、該方法は、治療を必要とする対象体に、単一抗原結合アームを含んでなる安定性の高い抗体断片が投与されることを含んでなるものであり、これによって疾患が治療される方法である。本明細書中に記載される何れかの本発明の抗体断片は、本明細書中に記載される治療的(又は予防的又は診断的)方法に使用することができる。
本発明の抗体は、インビトロ、エクスビボ及び/又はインビボで特異的抗原活性を部分的に又は完全にブロック(遮断)するアンタゴニストとして用いることができる。さらに、本発明の少なくともいくつかの抗体は、他の種から抗原活性を中和することができる。したがって、本発明の抗体は、例えば、抗原を含んでいる細胞培養物中、患者、又は、本発明の抗体が交差反応する抗原を有する他の哺乳類対象動物(例えばチンパンジ、ヒヒ、マーモセット、カニクイザルおよび赤毛猿、ブタ又はマウス)の特異的抗原活性を阻害するために用いることができる。一実施態様において、本発明の抗体は、抗原活性が阻害されるように抗原と抗体とを接触させることによって抗原活性を阻害するために用いることができる。抗原はヒトタンパク質分子であることが好ましい。
ある実施態様では、細胞障害性剤とコンジュゲートした抗体を含んでなる免疫コンジュゲートを患者に投与する。いくつかの実施態様では、免疫コンジュゲート及び/又はそれが結合する抗原が細胞に内在化されていると、結合する標的細胞を殺す際の免疫コンジュゲートの治療効果が増す。一実施態様において、細胞障害性剤は標的細胞内の核酸を標的とするか又は妨げる。このような細胞障害性剤の例には、本明細書に記載の何れかの化学療法剤(例えばメイタンシノイド又はカリケアマイシン)、放射性同位元素、又はRNA分解酵素ないしDNAエンドヌクレアーゼが含まれる。
本発明の抗体(及び補助治療薬)は、非経口的、皮下、腹膜内、肺内、鼻腔内、そして、必要に応じて局所の治療のために、病巣内投与を含む任意の好適な手段によって投与する。非経口注入には、筋肉内、静脈内、動脈内、腹膜内、又は皮下的な投与を含む。加えて、抗体を、特に抗体の用量を減少して、パルス注入によって好適に投与する。投与が短期のものであるか長期のものであるかにある程度依存して、任意の好適な経路、例えば、静脈内又は皮下注射などの注射によって投与することができる。
疾患の予防又は治療のために、本発明の抗体の好適な用量は(単独で用いる場合、又は化学療法剤などの他の作用剤と組み合わせて用いる場合)、治療する疾患のタイプ、抗体のタイプ、疾患の重症度及び経過、抗体を予防目的で投与するか治療目的で投与するか、以前の治療法、患者の病歴及び抗体への応答性、及び担当医師の判断に依存するであろう。抗体は一時的又は一連の治療にわたって好適に患者に投与される。疾患のタイプ及び重症度に応じて、約1μg/kg〜15mg/kg(例えば0.1mg/kg〜10mg/kg)の抗体が、例えば一以上の分割投与又は連続注入による患者投与の初期候補用量である。ある典型的な1日量は、上記の要因に応じて、約1μg/kg〜100mg/kg以上の範囲であろう。症状に応じて、数日間以上にわたる繰り返し投与は、所望の疾患症状の抑制が得られるまで持続する。抗体の用量の例は、約0.05mg/kg〜約10mg/kgの範囲であろう。ゆえに、約0.5mg/kg、2.0mg/kg、4.0mg/kg又は10mg/kgの一以上の用量を(又はそれらを組み合わせて)患者に投与してもよい。このような用量は、間欠的に、例えば週ごと又は3週ごとに投与してもよい(例えば患者に約2〜約20、例えば約6用量の抗体が投与される)。初期のより高い負荷投与量の後、一以上のより低い用量を投与してもよい。例示的用量療法は、約4mg/kgの初期負荷投与量の後、約2mg/kgの毎週の維持用量抗体を投与することを含む。しかしながら、他の投与計画が有効かもしれない。この治療の進行は、従来技術及びアッセイにより容易にモニターすることができる。
本発明の他の態様では、上記の疾患の治療、予防及び/又は診断に有用な物質を含む製造品が提供される。該製造品は容器と該容器の又は該容器に付随するラベル又はパッケージ挿入物を具備する。好適な容器には、例えば、ビン、バイアル、シリンジ等々が含まれる。容器は、様々な材料、例えばガラス又はプラスチックから形成されうる。容器は、それのみによって又は他の組成物と組み合わせて症状を治療、予防及び/又は診断するのに有効な組成物を収容し、滅菌アクセスポートを有しうる(例えば、容器は皮下注射針が貫通可能なストッパーを有するバイアル又は静脈内投与溶液バッグでありうる)。組成物中の少なくとも一つの活性剤は本発明の抗体である。ラベル又はパッケージ挿入物は、組成物が癌のような選択した症状の治療に使用されることを示す。更に、製造品は、(a)組成物を中に収容し、その組成物が本発明の抗体を含む第一の容器と;(b)組成物を中に収容し、その組成物が更なる細胞毒性剤を含む第二の容器とを含みうる。本発明のこの実施態様における製造品は、第一及び第二の抗体組成物を癌などの特定の症状の治療に使用することができることを示しているパッケージ挿入物を更に含む。あるいは、もしくは付加的に、製造品は、薬学的に許容されるバッファー、例えば注射用の静菌水(BWFI)、リン酸緩衝生理食塩水、リンガー液及びデキストロース溶液を含む第二の(又は第三の)容器を更に具備してもよい。更に、他のバッファー、希釈剤、フィルター、針、シリンジを含む、商業上及び使用者の見地から望ましい他の材料を含んでもよい。
発現ベクターの構築
完全長又はFab/c抗c-met抗体の発現のためのプラスミドはすべて、重鎖及び軽鎖及びFc断片の転写のための独立したphoAプロモータ(AP)(Kikuchi等, Nucleic Acids Res., 9: 5671-5678 (1981))を基として、それに転写開始のためのシャイン-ダルガーノ配列(Yanofsky等, Nucleic Acids Res., 9: 6647-6668 (1981)及びChang等, Gene, 55: 189-196 (1987))が続く、独立したシストロンシステム(Simmons等, J. Immunol. Methods, 263: 133-147 (2002))に基づくものであった。加えて、耐熱性毒素IIシグナル配列(STII)(Picken等, Infect. Immun., 42: 269-275 (1983)及びLee等, Infect. Immun., 42: 264-268 (1983))を、重鎖及び軽鎖及びFc断片の周辺質分泌に用いた。翻訳開始領域(TIR)内にサイレントコドン変異を含有する、相対的な翻訳強度を測定した前述のSTIIシグナル配列変異形を用いて、両鎖及びFc断片の翻訳を良好にコントロールした(Simmons及びYansura, Nature Biotechnol., 14: 629-634 (1996) and Simmons et al., J. Immunol. Methods, 263: 133-147 (2002))。最後に、λt0転写ターミネータ(Schlosstissek及びGrosse, Nucleic Acids Res., 15: 3185 (1987))、を両鎖及びFc断片のコード配列の下流に配置した。すべてのプラスミドはpBR322ベースのベクター系のフレームワークを用いる(Sutcliffe, Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol., 43: 77-90 (1978))。起源抗c-met抗体は、米国特許第5,686,292号;同第5,646,036号;同第6,207,152号;同第6,214,344号及び同第6,468,529号に記載される5D5抗体であった。5D5起源抗体のハイブリドーマ細胞株は、ATCC番号HB-11895(ハイブリドーマ5D5.11.6)として、アメリカ培養細胞系統保存機関(12301 Parklawn Drive, Rockville, Md., USA)に既に寄託された(寄託日:1995年5月23日)。
キメラ5D5 抗c-met抗体をコードする所望のpxcM11Cプラスミドを生成するするために2つの中間型(intermediate)プラスミドを用いた。。始めに、5D5重鎖及び軽鎖の可変ドメインは、各々の鎖の発現のためにpBR322ベースのプラスミド上に別々に移入した。以下はこれら中間型プラスミドpxcMLC及びpxcMHCの調製の後のpxcM11Cの構築について記載する。
pxcMLC
このプラスミドは、マウス5D5抗体の軽鎖可変ドメインを完全長抗体生成に関して互換性を持つヒト軽鎖フレームワークへ移入するために構築した。このプラスミドの構築には3つのDNA断片のライゲーションが伴う。第一ものは、小さなMluI-BamHI断片が除去されているpPho51ベクターであった(Simmons及びYansura, Nature Biotechnol, 14: 629-634 (1996)、変異形1)。ライゲーションの第二部分は、軽鎖の最後の15アミノ酸、λt0転写終結区及びtet遺伝子を開始領域をコードするpST7LC由来のおよそ516の塩基対のAlwNI-BamHI断片であった。プラスミドpST7LCは、STIIシグナル配列の下流にヒトκ軽鎖を有する変異形6の誘導体である(上記参照)。ライゲーションの第三部分は、5D5 Fab配列を含有するプラスミドから以下のプライマー:
5’ - TAAATTTAACGCGTACGCTGACATTATGATGTCCCAGTCTCCATCC (配列番号:9)
5’ - GGGCGAGCTCAGGCCCTGATGGGTGACTTCGCAGGC (配列番号:10)
を用いて生成されるおよそ623塩基対のMluI-AlwNI PCR断片であった(以下の実施例2では「5D5 Fabのクローニング及び組み換え発現」と記載)。
このプラスミドは、マウス5D5抗体の重鎖可変ドメインを完全長抗体生成に関して互換性を持つヒト重鎖フレームワークへ導入するために構築した。このpxcMHCの構築には2つのDNA断片のライゲーションが伴う。第一のものは、小さなMluI-BstEII断片が除去されているpST2HCベクターであった。プラスミドpST2HCは、ヒトIgG1重鎖とSTIIシグナル配列の下流を融合した変異形3の誘導体である(上記参照)。ライゲーションの第二部分は、5D5 Fab配列を含有するプラスミドから以下のプライマー:
5’ - GCTACAAACGCGTACGCTCAGGTTCAGCTGCAGCAGTCTGGG (配列番号:11)
5’ - AAGAGACGGTGACCGAGGTTCCTTGACC (配列番号:12)
を用いて生成されるおよそ346塩基対のMluI-BstEII PCR断片であった(以下の実施例2では「5D5 Fabのクローニング及び組み換え発現」と記載)。
pxcM11Cプラスミドは、完全長5D5キメラ抗体を発現するように構築した。プラスミドの構築には4つのDNA断片のライゲーションが伴う。第一のものは、小さなMluI-BstEII断片が除去されているpaTF20ベクターであった(Simmons等, J. Immunol. Methods, 263: 133-147 (2002)、paTF20は1の軽鎖及び1の重鎖のTIRを有する多シストロン性ベクターである)。ライゲーションの第二部分は、pxcMLC由来のおよそ623塩基対のMluI-AlwNI断片であった。第三部分は、paTF50由来のおよそ547塩基対のAlwNI-BsiWI断片であった(上記を参照;paTF50は、1の軽鎖及び1の重鎖のTIRを有する独立したシストロンベクターである)。ライゲーションの最終部分は、pxcMHC由来のおよそ349塩基対のBsiWI-BstEII断片であった。
プラスミドpxcM11C-Fc
pxcM11C-Fcの構築のために、APプロモーター、STIIシグナル配列及びλt0転写終結区を含む上記の調節要素すべてを有するFc断片の発現をコードするカセットを、pxcM11Cプラスミドに加えた。pxcM11c-Fcの構築につながる2つのプラスミド、pBR322.VNERK.HC及びpBR322.Fcが始めに記載のように必要である。
pBR322.VNERK.HCプラスミドは、STIIシグナル配列の下流にヒト重鎖を有する変異形1の誘導体である(Simmons及びYansura, Nature Biotechnol, 14: 629-634 (1996))。このプラスミドは、2つのDNA断片を共にライゲーションすることによって構築した。第一ものは、小さなEcoRI-ClaI断片が除去されているベクターpBR322であった。ライゲーションの第二部分は、APプロモーター、STIIシグナル配列、重鎖、λt0転写終結区及びtet遺伝子の開始領域をコードするpVG11.VNERKから以下のプライマー:
5’ - TTTCCCTTTGAATTCTTGGTTGTTAACGTTGCCGACGCGCATC (配列番号:13)
5’ -TTTCCCTTTATCGATGATAAGCTGTCAAACATGAGTAAACAATAAAAAACGCCC (配列番号:14)
を用いて生成されるおよそ1885塩基対のEcoRI-ClaI PCR断片であった。
プラスミドpVG11.VNERKは、軽鎖及び重鎖可変ドメインが抗VEGF抗体(VNERK)に変化されている1の軽鎖及び1の重鎖のTIRsを有する独立したシストロンベクターの誘導体である(Simmons等, J. Immunol. Methods, 263: 133-147 (2002))。
pBR322.Fcプラスミドは、上記の調節要素をすべて有するFc断片の発現をコードするpBR322.VNERK.HCプラスミドの誘導体である。
pBR322.Fcプラスミドは、2つのDNA断片を共に連結させることによって構築した。第一のものは、小さなMluI-NsiI断片が除去されたベクターpBR322.VNERK.HCであった。ライゲーションの第二部分は、アミノ酸SGTTの後にヒトIgG1のアミノ酸221〜429をコードするpJAL226からのおよそ1319塩基対のMluI-NsiI断片であった。pJAL226は、STIIシグナル配列の下流にヒトFc断片を有する変異形3の誘導体である(Simmons及びYansura, Nature Biotechnol, 14: 629-634 (1996))。
pxcM11C-Fc
pxcM11C-Fcは、2つのDNA断片を共に連結させることによって構築した。第一のものは、小さなHpaI-ClaI断片が除去されたベクターpxcM11Cであった。ライゲーションの第二部分は、pBR322.Fc由来のおよそ1198塩基対のHpaI-ClaI断片であった。このライゲーションにより、所望のプラスミド消化型pxcM11C-Fcが生じた。
プラスミドpxcM11C.H-Fc.Kは、pxcM11C重鎖のCH3ドメインを「孔」(本明細書において「キャビティ」とも称する)突然変異(T366S、L368A、Y407V)を有するCH3ドメインで置換したpxcM11C-Fcの誘導体である(Merchant等, Nature Biotechnology, 16:677-681 (1998))。加えて、Fc断片のCH3ドメインを、「ノブ(knob)」(本明細書において「***」とも称する)突然変異(T366W)を有するCH3ドメインで置換した(上記を参照)。
pxcM11C.H
プラスミドを2工程で構築した。第1工程では、2つのDNA断片を共にライゲーションすることによって「孔」突然変異導入した。第一のものは、小さなSacII-NsiI断片が除去されたベクターpxcM11Cであった。ライゲーションの第二部分は、pBR322.VNERK.HC.H由来のおよそ411塩基対のSacII-NsiI断片であった。pBR322.VNERK.HC.Hは「孔」突然変異(T366S、L368A、Y407V)が導入されたpBR322.VNERK.HCプラスミドの誘導体である(上記参照)(Merchant等, Nature Biotechnology, 16:677-681 (1998))。この中間型プラスミドをpxcM11C.Hと呼称する。
第2工程により、「ノブ」突然変異をFc断片に導入して、2つのDNA断片のライゲーションを行った。第一のものは、小さなClaI-HpaI断片が除去されたベクターpxcM11C.Hであった。ライゲーションの第二部分は、「ノブ」突然変異を有するFc断片の発現カセットをコードするpBR322.Fc.K由来のおよそ1198塩基対のClaI-HpaI断片であった。pBR322.Fc.Kは、「ノブ」突然変異(T366W)(Merchant等, Nature Biotechnology, 16:677-681 (1998))及び上記すべての調節要素を有するFc断片の発現をコードするpBR322.Fcプラスミド(上記参照)の誘導体である。このライゲーションにより、pxcM11C.H-Fc.Kと称する所望のプラスミドが生じた。
親のコンストラクト(5D5抗c-MetのpxcM11C)及び一アーム形Fab/c抗体コンストラクト(pxcM11C-Fc)を用いて抗体の小規模誘導を行った。各々のコンストラクトの小規模発現のために、宿主細胞として、大腸菌株33D3(W3110ΔfhuA(ΔtonA)ptr3 lac Iq lacL8ΔompTΔ(nmpc-fepE)degP41 kanR)を用いた。形質転換後、選択された形質転換体選択候補を、カルベニシリン(50μg/mL)を添加した5mLのLuria―Bertani培地に播種して、終夜培養振とう器上で30℃で生育した。次いで、それぞれの培養物を、メディアをC.R.A.P.リン酸制限培地にて希釈(1:100)した(Simmons等, J. Immunol. Methods 263:133-147 (2002))。次いで、カルベニシリンを50μg/mLの濃度で誘導培養物に添加し、培養物を培養振とう器上で30℃、およそ24時間生育した。特に明記しない限り、振とうフラスコ誘導はすべて5mLの容量で行った。
誘導された培養物からの非還元型全細胞溶解物を、以下の通りに調製した:(1)1OD600mLの誘導試料を、微量遠心管チューブにて遠心分離した;(2)それぞれのペレットを、90μLのTE(10mM トリスpH7.6、1mM EDTA)に再懸濁した;(3)10μLの100mM ヨード酢酸(Sigma I-2512)を各々の試料に添加して、任意の遊離システインのブロック及びジスルフィド混合の予防を行った;(4)20μLの10% SDSを、各々の試料に加えた。試料をボルテックス混合して、およそ90℃で3分間加熱し、それから再びボルテックス混合した。試料が室温までに冷却した後、750μLのアセトンを加えてタンパク質を沈殿させた。試料をボルテックス混合し、およそ15分間、室温に置いた。マイクロ遠心機にて5分間、遠心した後、各々の試料の上清を吸引除去し、それぞれのタンパク質ペレットを、50μL dH2O+50μL 2X NOVEX SDSサンプルバッファに再懸濁した。次いで、試料をおよそ90℃で4分間加熱し、よくボルテックス混合して、室温まで冷却した。そうして、最終的に5分間の遠心分離を行い、上清をきれいなチューブへ移した。
調製後、各々の試料の5−8μLを1.0mm NOVEX製の12% トリス-グリシン SDS-PAGEの10のウェルに流し、〜120ボルトで1.5〜2時間、電気泳動にかけた。次いで、結果として生じるゲルを、クーマシーブルーで染色するかあるいはウエスタンブロット分析に用いた。
同様に、抗Fcウエスタンブロットの結果を図2に示す。それらもレーン2では完全に折り畳まれて集積した一アーム形Fab/c抗体の発現が示された。抗Fc抗体は軽鎖を結合できないので検出されない。非還元試料では、完全長抗c-Met抗体とFc領域との共発現により、完全に折り畳まれて集積した完全長抗体から完全に折り畳まれて集積した一アーム形Fab/c抗体までの推移が示された。加えて、Fcポリペプチド単量体及び二量体も、抗Fcウエスタンブロットで検出される。還元試料では、完全長抗c-Met抗体及び一アーム形抗c-Met Fab/c抗体発現について検出される重鎖の量が同じである。おそらく一アーム形Fab/c抗体コンストラクトにより分泌経路にいくらか補助機能があるために、前駆体Fc断片の量も少ない。
抗c-Met Fab/c抗体の調製において完全長抗c-Met抗体の形成を更に最小化するために、Merchant等(Nature Biotechnology, 16:677-681 (1998))に記載されるように、「孔へのノブ」突然変異を基本的にFcのCH3ドメインに作製した。コンストラクトは、「孔」突然変異(T366S、L368A、Y407V)を完全長重鎖に、「ノブ」突然変異(T366W)をFc断片に導入することによって、一アーム形Fab/c抗c-Met抗体(pxcM11C.H-Fc.K)について調製した。
完全長抗c-Met抗体(pxcM11C)、一アーム形Fab/c抗c-Met抗体(pxcM11C-Fc)及び一アーム形Fab/c「孔へのノブ」抗c-Met抗体(pxcM11C.H.Fc.K)コンストラクトが上記と同様に発現された。全細胞溶解物を調製し、SDS-PAGEによって分離し、ニトロセルロースへ転移し、前記のヤギ抗ヒトFab抱合抗体及びヤギ抗ヒトFc抱合抗体を用いて検出した。
同様に、図4の抗Fcウエスタンブロットの結果は、野生型一アーム形Fab/c抗c-Met抗体に対して一アーム形Fab/c「孔へのノブ」の折りたたみ及び集積に顕著な改善がみられる。また、抗Fcウエスタンブロットの結果により、検知されないレベルにまで完全長抗c-Met抗体の減少がみられた。抗Fc抗体は軽鎖を結合することができないので検出されない。還元試料では、完全長のもの、野生型一アーム形Fab/c及び一アーム形Fab/c「孔へのノブ」抗c-Met抗体について検出される重鎖の量は同じである。
材料及び方法
材料−前記の(8;14)ように、HGF及びc-Met IgGはGenentechで生産された。NUNC (Rosklide, Denmark)からMaxisorbミクロタイタープレートを購入した。Jackson Immunochemical (West Grove, PA)から抗hFcを購入した。Zymed (South San Francisco, CA)からHRP-ストレプトアビジンを購入した。Amersham, Inc. (Arlington Heights, IL)から3Hチミジンを購入した。MDA-MB-435細胞はATCC (Rockville, MD)から得た。ピログルタミン酸アミノペプチダーゼはTakara Biochemicals (Berkeley, CA)から得た。Research Organics (Cleveland, OH)からNHS-X-ビオチンを購入した。Millipore (Marlborough, MA)からイモビロン-PSQ PVDFを購入した。スーパースクリプトII RNアーゼH−逆転写酵素は、Gibco-BRL (Gaithersburg, MD)からのものであった。TaqポリメラーゼはPerkin Elmer-Cetus (Foster City, CA)から、Bakerbond ABX、40m孔径はJ. T. Baker (Phillipsburg, NJ)から、SP-セファロース高性能樹脂はPharmacia Biotech, Inc. (Piscataway, NJ)から得た。ビオチン-抗P-TyrはUpstate Biotech (Lake Placid, NY)から、TMBペルオキシダーゼ基質はKPL (Gaithersburg, MD)から購入した。
抗c-Metモノクローナル抗体の生成
5D5抗体を含む抗c-metモノクローナル抗体の生成は記載した。例えば、米国特許第5,686,292号;同第5,646,036号;同第6,207,152号;同第6,214,344号及び同第6,468,529号を参照。BALB/cマウスを、第0、7、14、21、28、266、273及び279日目に、MPL/TDMアジュバントに懸濁した2.5μgの可溶性c-Met-IgG (Mark等, J.Biol.Chem. (1992), 267:26166-26171)をそれぞれ後部足蹠に注入して免疫化した。最後の免疫化の4日後に、リンパ節細胞を回収して、記載されている(Laskov等,Cell.Immunol. (1980), 55:251)ように、35%のポリエチレングリコールを用いてP3/X63-Ag8U1骨髄腫細胞(Yelton等, Curr.Top.Microbio.Immunol. (1978), 81:1)と融合させた。c-Met特異的な抗体を分泌するハイブリドーマ細胞株を、始めに捕獲ELISAによって選択し、その後c-Metを発現するBAF3形質転換細胞を用いてフローサイトメトリによってスクリーニングした。更に、選択されたハイブリドーマを、後述するように、c-Met-IgGへのビオチン-HGF結合を阻害する能力について試験した。ハイブリドーマを限界希釈によって二回クローン化し、次いでそれらの拮抗性及び作用性能力について更に特徴づけした。腹水をbalb/cマウスにおいて生産させ、モノクローナル抗体をタンパク質Gアフィニティーカラムを用いて精製した。タンパク質濃度は、吸光係数1.4を用いて280nmの吸光度で測定した。
抗体5D5は、20mM リン酸塩、10mM EDTA緩衝液にて終夜透析し、次いで、セントリコン30に7mg/mlまで濃縮した。半量mlの固定されたパパイン(Pierce, Rockford, II)を消化緩衝液にて洗浄し、次いで10mgの5D5を加えて、200rpmで振盪しながら37℃で、終夜インキュベートした。1.5倍量mlの結合用緩衝液を混合液に加え、上清をビーズから分離して、結合用緩衝液にて予め平衡化したプロテインAカラムに通した。付加的な結合用緩衝液をカラムに流し、溶出液を1ml分画に回収した。各々の分画の吸光度は280nmで読み取り、Fab断片を含有する溶出液をプールした。タンパク質はPBSにて終夜透析し、吸光係数1.53を用いて280nmの吸光度によりタンパク質濃度を測定した。更にFab断片をゲル濾過によって精製し、残余F(ab´)2を除去した。
5D5 Fabの一定分量を、4−20%の勾配SDSゲル上に分割して、BioRadトランス-ブロット転移細胞(Matsudaira, J.Biol.Chem. (1987), 262:10035-10038)中で250mAの定電流で1時間、PVDF(Immobilon-PSQ)膜上に電気的にブロットした。膜を0.1% クーマシーブルーR-250を含む50% メタノールにて0.5分染色し、10% 酢酸を含む50% メタノールにて2−3分間脱色した。膜を水にて完全に洗浄して乾燥させ、Blott(登録商標)カートリッジ(Applied Biosystem)を用いて、モデル473A自動タンパク質配列決定器にて配列決定を行った。ピークは、Nelson分析機760インターフェイスを用いたJustice Innovationソフトウェアにて積算した。DECα(Henzel等, J.Chromatog. (1996), 404:41-52)にて配列解読を行った。
5D5重鎖の配列を得るためには、以下のように行う非ブロック化を必要とした。Fab断片を、45℃で1時間、7mM DTTにて還元し、25℃で20分、180mM イソプロピルアセトアミドでアルキル化した(Krutzsch & Inman, Anal.Biochem. (1993), 209:109-116)。次いで、アルキル化されたFab断片を、10mM DTT(消化緩衝液)を含有する0.1M リン酸ナトリウムにて、Microcon-10中で3回交換し、20μlの消化緩衝液中で45℃で3時間、1mU ピログルタミン酸アミノペプチダーゼによって消化した。次いで、非ブロック化されたFabをPVDFへ移し、上記の通りに配列決定した。
N末端配列データを用いて、PCRプライマーを軽鎖及び重鎖の可変領域の5'末端に特異的に設定し、3'プライマーは各々の鎖のコンセンサスフレームワーク4にアニール化されるように設定した(Kabat等, Sequences of proteins of immunological interest (1991), Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD)。また、プライマーは、クローニングのための制限酵素部位が付加されるように設計した。Stratagene RNA単離キットを用いてハイブリドーマ5D5の108細胞から抽出した全RNAを、RT-PCRの基質として用いた。フレームワーク4特異的なプライマーとSuperscript II RNアーゼH-逆転写酵素を用いて、標準的条件下にて逆転写を行った(Kawasaki, Amplification of RNA. PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, 21-27頁 (M.A. Innis, D.H. Gelfand, J.J. Sninsky及びT.J. White, 編集) (Academic Press, Inc., San Diego; 1990))。2% DMSOが反応混合液に含まれること以外は記載されている通りに(Kawasaki, Amplification of RNA. PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, 21-27頁 (M.A. Innis, D.H. Gelfand, J.J. Sninsky及びT.J. White, 編集) (Academic Press, Inc., San Diego; 1990))、Taqポリメラーゼを用いてPCR増幅を行った。増幅されたDNA断片は、制限酵素SfiI及びRsrII(軽鎖)又はMluI及びApaI(重鎖)を用いて消化し、ゲル精製して、発現プラスミドpAK19(Carter等, Bio/Technol. (1992), 10:163-167)の誘導体にクローン化した。このベクターpXCA730は部位特異的突然変異(Kunkel, Proc.Natl.Acad.Sci.USA (1985), 82:488)によって修飾して、STIIシグナル配列と可変ドメインの間、及び、各々の鎖の可変ドメイン及び定常ドメインの接合部に固有の制限酵素部位を含有するようにした。軽鎖及び重鎖の可変ドメインcDNAを、ヒトCk及びCH1ドメインのフレームの上流及びフレーム内に挿入した。ジスルフィド架橋を形成してF(ab')2分子を与えうるpAK19の重鎖のC末端システインを取り除いて、抗体のFab型だけが発現できるようにした。
発現プラスミドpxcM11C.H-Fc.K(上記)を用いてE.coli株33D3(W3110 kanR ΔfhuA(ΔtonA)ptr3 lacIq lacL8 ompTΔ(nmpc-fepE)degP)を形質転換して、次いで形質転換体をカルベニシリン(50μg/mL)を添加したLB培地中で30℃で終夜生育した。LB培養物を、カルベニシリン(50μg/mL)含有のC.R.A.P.培地(1)に100倍希釈し、30℃で振盪しながらおよそ24時間生育した。少ない分割量を取り除き、抗Fab抗体(ヒトIgG Fabへのペルオキシダーゼ抱合ヤギIgG分画;CAPPEL#55223)又は抗Fc抗体(ヒトFc断片へのペルオキシダーゼ抱合ヤギIgG分画;Bethyl#A08-104P-41)を用いたウェスタンブロット及びSDS−PAGEによって抗体発現を検査した。次いで、残りの培養物を遠心分離し、抗体精製工程を始めるまで細胞ペーストを−70℃に凍らせた。
タンパク質濃度は定量的アミノ酸分析で測定した。エンドトキシンレベルはLALアッセイで測定した。これらの抗体調製はその後の分析に用いた。
細胞培養
A549肺カルシノーマ細胞を10% FBS添加の最小必須培地中で培養した。既に記載(Schwall等, J.Cell Biol. (1996), 133:709-718)のようにヒトcMetを形質移入したBaF3-cMet細胞、及びベクターを形質移入したBaF3ネオ細胞を、10% FCS、5% WEHI-231細胞培養条件培地(IL-3を含有)、2mM グルタミン、β-メルカプトエタノール(4μl/L)、0.5mg/ml G418を添加したRPMI 1640中で培養した。U87及びU118神経膠芽腫細胞、786-0腎臓カルシノーマ細胞を10% FCS含有のRPMI 1640中で培養した。
HGF-cMet結合
c-Met-IgGがミクロタイタープレート上のIgGドメインを介して捕獲される固相システムのビオチン-HGFを用いてHGF結合研究を行った。HGFは、20倍モルの過剰なNHS-X-ビオチンと共に0.1M NaHCO3、pH8.5中でインキュベートすることによってビオチン化した。NHS-X-ビオチンを4分割して、室温で撹拌しながら、それぞれを15分間隔で加えた。非抱合型ビオチンを透析によって除去し、ラベルをつけて材料を4℃で保存した。ミクロタイタープレートは、2μg/mlのAffiniPureウサギ抗ヒトIgG, Fc (Jackson ImmunoResearch)を用いてコーティング緩衝液(0.05M 炭酸塩/重炭酸塩, pH9.6)中で終夜、4℃でコートした。プレートは0.5% BSA, pH7.4を含有するPBSによって室温(RT)で1時間、ブロックした後、2μg/mlのcMet-IgGと共に2時間インキュベートした。次いで、0.01−1000nMの競合物質である非標識(cold)HGF、抗cMet 5D5 mAb、Fab又は一アーム形抗体と共に又はこれらを含まないで53ng/mlのビオチン標識HGFを、RTで1時間、添加した。プレートに西洋わさびペルオキシダーゼ(HRP)-ストレプトアビジン(1:10000希釈、Amersham)をRTで1時間、添加した後、ホスファターゼ基質CP-ニトロフェニルリン酸塩(Kirkegaard & Perry Laboratories)を添加して、405nmの吸光度を測定した。
結果を図5に示す。競合的結合アッセイにおいて、一アーム形抗c-met5D5抗体は、抗c-met Fabと同様であった。
c-Metのチロシンリン酸化は、Sadick等の方法に基づいてサンドイッチELISAで測定した。その測定方法は可溶化されたレセプターが抗レセプター抗体でコートされたプレート上で捕獲され、抗P-Tyrで検出されるものである (Sadick等, Anal.Biochem. (1996), 235:207-214)。106/mlのU87細胞を96ウェルプレート中で終夜、37℃でプレート培養した。次いで、培地をMEM、0.1% FBSに交換して、HGF及び/又は抗体と共に10分間置いた。次いで、細胞を100μlの溶菌緩衝液(20mM トリス、pH7.5、150mM NaCl、1mM Na2EDTA、1nM EGTA、1% トリトン、1×プロテアーゼインヒビター反応混液(Sigma)、1×ホスファターゼインヒビター反応混液II(Sigma)にてプレート振とう器上でRTで30分間抽出し、氷上又は−70℃に保存した。溶解物を抗c-Met mAb 1949(Genentech)でコートしたプレートに加えて終夜置いた。ホスホチロシンcMetは、1:4000希釈のビオチン化抗ホスホチロシン(4G10, Upstate)の後にHRP-ストレプトアビジン及びTMBを用いた発色により検出した。総cMetは、1:10,000抗c-Met抗体を用いて同様に測定した。
結果を図6に示す。
BaF3は、通常cMetを発現せず、HGFに反応しないマウスIL-3依存性リンパ系細胞である。しかしながら、ヒトc-Metの正常な完全長cDNAの形質移入によって得たBaF3-hMet (Schwall等, J.Cell Biol. (1996), 133:709-718)では、HGFは、IL-3の非存在下で増殖及び生存を促進する。BaF3-hMet及びBaF3-neo細胞は通常、IL-3の起源として、RPMI 1640、5% ウシ胎児血清、4μl/L β-ME、100U/ml ペニシリン、100μg/ml 硫酸ストレプトマイシン、2mM L-グルタミン及び5% WEHI条件培地にて継代した。HGF依存性増殖を測定するために、3日間の治療の後、25μl Alarma Blue (Trek Diagnostic Systems)を加えて4時間後の蛍光強度を測定することによって細胞数を定量化した。特異性の対象のために、一アーム形5D5も、IL-3にて刺激したBaF3-hMet細胞において試験した。
結果を図7に示す。
MDAMB-435-PGL細胞及びU87細胞の移動は、変性ボイデンチャンバアッセイを用いて評価した。10μg/mlのフィブロネクチンでコートした5μm孔のポリカーボネートを有する上部試験糟に細胞を播いた(2×104/ウェル)。上記の量の5D5 Fab又は一アーム形抗体と共に又は伴わない100ng/mlのHGFを、下部試験糟中の培地に加えた。細胞は終夜培養した。細胞は特別なスポンジ綿を用いたフィルター膜の上側から濾し出され、フィルタの下面に移動した細胞は固定されて、YO-PRO-3ヨウ化物(Molecular Probes)で着色され、それから蛍光顕微鏡検査法によって計数した。
結果を図8に示す。
OA-5D5又は5D5 Fab(5mg/kg)をヌードマウスに静脈内注射した。一定の時間点で、4匹のマウスから血清試料を回収して、cMet-IgGでコートしたプレート上で捕獲されるサンドイッチELISAによって検定して、次いで軽鎖特異的な二次抗体を用いて検出した。
結果を図9Aに示す。一アーム形5D5抗体の半減期は、そのFab相対物と比較して有意に増加した。
OA-5D5が生体内で分解するかどうかを調べるために、7日目のPK試料からのOA-5D5でELISAによる40ng相当の血清量を還元又は非還元条件下でSDS-PAGEゲルに流した。ゲルをニトロセルロース上に転写して、HRP抱合抗ヒトFcによってブロットした(1:5000、ヒト特異的、Jackson Labs)。対照として、ナイーヴマウスからの血清の等量を平行に流した。
結果を図9Bに示す。血清一アーム形5D5抗体は投与後7日目では完全であった。
2500000個のA549(ヒト肺癌)細胞又はU87MG細胞(自己分泌HGFを分泌してcMetを発現するヒト神経膠芽腫)を皮下的に接種した4〜6週齢の雌性胸腺欠損ヌードマウスを用いて有効性研究を行った。一アーム形5D5抗体、5D5 Fab抗体又は対照抗体(抗gp120)を用いた処置を、腫瘍細胞接種(すなわちアジュバント治療)又は腫瘍が〜150mm3に成長した後の何れかのときに開始した。全ての抗体は、週に1回で4週間、腹膜内投与した。一アーム形5D5抗体だけがアジュバント治療投薬計画において(抗gp120対照を用いて)試験した点を注記する。
図10は、U87MG細胞の接種によって生成される腫瘍の結果を示す。図10A(アジュバント治療)及び図10B(腫瘍発達後の治療)に示すように、一アーム形5D5抗体は、腫瘍の後退を阻害するかまたは引き起こすことが可能であった。図10Bに示すように、一アーム形5D5抗体は、そのFab相対物と比較して優れた治療有効性を有した。(面白いことに、100nMの一アーム形5D5抗体は、インビトロでのU87細胞数に対する効果が最小であった。)
A549細胞の接種から生成される腫瘍の治療の結果は陰性であった。これは特異的対照であり、U87腫瘍に対する一アーム形5D5 抗c-met抗体の効果が非特異的毒性によるものでないことが確認された。
・ 一アーム形5D5抗体、q7d(すなわち7日間毎日)、10mg/kgを用いた腫瘍試験RXF1220(腎臓)における腫瘍成長の〜30%阻害;
・ (i) 10mg/kg、q7dを用いた腫瘍試験PAXF736(膵臓);(ii)10mg/kg、q7dを用いた腫瘍試験GXF97(胃);(iii) 30mg/kg、q7dを用いた腫瘍試験LXFA526(肺);(iv)30mg/kg、q7dを用いた腫瘍試験LSFA297(肺);における腫瘍成長の<20%の阻害;
・ 10mg/kg、q7dの一アーム形5D5抗体を用いたA549異種移植片において活性は観察されなかった;
・ 30mg/kg、q7dを用いたLXFA650(肺)において活性は観察されなかった。
Claims (97)
- 単一抗原結合アーム及びFc領域を含有してなる抗体断片であり、該抗原結合アームを含んでなるFab分子と比較して該抗体断片の安定性が増大しており、該Fc領域が第一及び第二Fcポリペプチドの複合体を含んでなり、Fcポリペプチドの一方だけでなく両方がN末端切断型重鎖である、抗体断片。
- 前記抗体断片がアグリコシル化されている、請求項1に記載の抗体断片。
- 前記抗体断片が免疫抑制性質をほとんど持たない、請求項1又は2に記載の抗体断片。
- 前記免疫抑制性質がT細胞枯渇に影響する能力を含む、請求項3に記載の抗体断片。
- FcRn結合以外の実質的なエフェクター機能を保持しない、請求項1ないし4の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記エフェクター機能が補体溶解である、請求項5に記載の抗体断片。
- 前記抗体断片がFcRnに結合する、請求項1ないし6の何れか一に記載の抗体断片。
- T細胞表面抗原に特異的に結合しない、請求項1ないし7の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記T細胞表面抗原がCD3又はCD4である、請求項8に記載の抗体断片。
- 前記T細胞表面抗原がCD3である、請求項9に記載の抗体断片。
- 腫瘍抗原に特異的に結合する、請求項1ないし10の何れか一に記載の抗体断片。
- レセプター二量体化により活性化される細胞表面レセプターに特異的に結合する、請求項1ないし11の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記抗体断片が軽鎖可変ドメインを含有してなる第一ポリペプチド、重鎖可変ドメイン及び該第一Fcポリペプチドを含有してなる第二ポリペプチド、並びに、該第二Fcポリペプチドを含有してなる第三ポリペプチドを含んでなる、請求項1ないし12の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記第一ポリペプチドがヒト軽鎖定常ドメインに融合した非ヒト軽鎖可変ドメインを含んでなる、請求項13に記載の抗体断片。
- 前記第一ポリペプチドがヒト化又はヒトフレームワーク配列に融合した非ヒト種由来のCDRを含んでなる、請求項13に記載の抗体断片。
- 前記第二ポリペプチドがヒト重鎖定常ドメインに融合した非ヒト重鎖可変ドメインを含んでなる、請求項13に記載の抗体断片。
- 前記第二ポリペプチドがヒト化又はヒトフレームワーク配列に融合した非ヒト種由来のCDRを含んでなる、請求項13に記載の抗体断片。
- 前記第三ポリペプチドがN末端に少なくとも一のヒンジ配列を含有するN末端切断型重鎖を含んでなる、請求項13に記載の抗体断片。
- 前記2つのFcポリペプチドが共有結合している、請求項1ないし18の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記2つのFcポリペプチドがヒンジ領域で分子内ジスルフィド結合を介して連結している、請求項1ないし19の何れか一に記載の抗体断片。
- 標的分子に結合する場合に、前記抗体断片が標的分子の多量体化を阻害する、請求項1ないし20の何れか一に記載の抗体断片。
- 標的分子に結合する場合に、前記抗体断片が同系結合パートナーの標的分子への結合を阻害する、請求項1ないし21の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記第一Fcポリペプチドと前記第二Fcポリペプチドが作用領域で会合し、該第二Fcポリペプチドの作用領域が第一Fcポリペプチドの作用領域内のキャビティ内に位置しうる***を含んでなる、請求項1ないし22の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記第二Fcポリペプチドが鋳型/起源ポリペプチドから変更されて前記***をコードしているかあるいは、前記第一Fcポリペプチドが鋳型/起源ポリペプチドから変更されて前記キャビティをコードしているか、その両方である、請求項1ないし23の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記第二Fcポリペプチドが鋳型/起源ポリペプチドから変更されて前記***をコードしており、第一Fcポリペプチドが鋳型/起源ポリペプチドから変更されて前記キャビティをコードしているか、その両方である、請求項1ないし24の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記第一Fcポリペプチドと前記第二Fcポリペプチドが作用領域で会合し、該第二Fcポリペプチドの作用領域が第一Fcポリペプチドの作用領域内のキャビティ内に位置しうる***を含んでなり、該キャビティ又は該***あるいはその両方が該第一Fcポリペプチド及び該第二Fcポリペプチドのそれぞれの作用領域内に取り込まれている、請求項1ないし25の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記***及び前記キャビティが前記それぞれのFcポリペプチドの作用領域内に取り込まれている、請求項24ないし26の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記***及び前記キャビティのそれぞれが天然に生じるアミノ酸残基を含んでなる、請求項24ないし27の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記***を含有してなる前記Fcポリペプチドが、鋳型/起源のポリペプチドの作用領域の元の残基を元の残基より大きい側鎖容量を有する移入残基で置換することによって生成される、請求項24ないし28の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記***を含有してなる前記Fcポリペプチドが、前記ポリペプチドの作用領域の元の残基をコードする核酸を元の残基より大きい側鎖容量を有する移入残基をコードする核酸で置換する工程を含んでなる方法により生成される、請求項24ないし29の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記元の残基がスレオニンである、請求項29又は30の抗体断片。
- 前記移入残基がアルギニン(R)である、請求項29ないし31の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記移入残基がフェニルアラニン(F)である、請求項29ないし31の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記移入残基がチロシン(Y)である、請求項29ないし31の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記移入残基がトリプトファン(W)である、請求項29ないし31の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドは、鋳型/元のポリペプチドの作用領域内の元の残基を元の残基より小さな側鎖容量を有する移入残基に置換することによって生成される、請求項23ないし28の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドは、該ポリペプチドの作用領域の元の残基をコードする核酸を元の残基より小さな側鎖容量を有する移入残基をコードする核酸に置換する工程を含む方法によって生成される、請求項23ないし28及び36の何れか一に記載の抗体断片。
- 元の残基がスレオニンである、請求項36又は37に記載の抗体断片。
- 元の残基がロイシンである、請求項36又は37に記載の抗体断片。
- 元の残基がチロシンである、請求項36又は37に記載の抗体断片。
- 移入残基がシステイン(C)でない、請求項36ないし40の何れか一に記載の抗体断片。
- 移入残基がアラニン(A)である、請求項36ないし40の何れか一に記載の抗体断片。
- 移入残基がセリン(S)である、請求項36ないし40の何れか一に記載の抗体断片。
- 移入残基がスレオニン(T)である、請求項36ないし40の何れか一に記載の抗体断片。
- 移入残基がバリン(V)である、請求項36ないし40の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドが、スレオニン、ロイシン及びチロシンからなる群から選択される2以上の元のアミノ酸の置換を具備する、請求項36ないし45の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドが、アラニン、セリン、スレオニン及びバリンからなる群から選択される2以上の移入残基を具備する、請求項36ないし46の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドがスレオニン、ロイシン及びチロシンからなる群から選択される2以上の元のアミノ酸の置換を具備し、該元のアミノ酸がアラニン、セリン、スレオニン及びバリンからなる群から選択される移入残基で置換される、請求項36ないし47の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドが、カバットのEU番号付けスキームに従ったアミノ酸番号366位のスレオニンからセリンへの置換を具備する、請求項23ないし48の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドが、カバットのEU番号付けスキームに従ったアミノ酸番号368位のロイシンからアラニンへの置換を具備する、請求項23ないし48の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドが、チロシンのバリンへの置換を具備する、請求項23ないし50の何れか一に記載の抗体断片。
- キャビティを具備する前記Fcポリペプチドが、T366S, L368A及びY407Vからなる群から選択される2以上のアミノ酸置換を具備する、請求項23ないし51の何れか一に記載の抗体断片。
- ***を具備する前記Fcポリペプチドが、カバットのEU番号付けスキームに従ったアミノ酸番号366位のスレオニンからトリプトファンへの置換を具備する、請求項23ないし52の何れか一に記載の抗体断片。
- 第一Fcポリペプチド及び第二Fcポリペプチドのそれぞれが抗体定常ドメインを具備する、請求項1ないし53の何れか一に記載の抗体断片。
- 前記抗体定常ドメインがCH2及び/又はCH3ドメインである、請求項54に記載の抗体断片。
- 前記抗体定常ドメインがIgG由来である、請求項54又は55に記載の抗体断片。
- 前記IgGがヒトIgG1である、請求項56に記載の抗体断片。
- 単一特異性である、請求項1ないし57の何れか一に記載の抗体断片。
- 単一特異性イムノアドへシンである、請求項1ないし58の何れか一に記載の抗体断片。
- 抗体-イムノアドへシンキメラである、請求項1ないし59の何れか一に記載の抗体断片。
- イムノグロブリンの少なくとも75%が請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片であるイムノグロブリンの集合を含んでなる組成物。
- (a)抗体断片をコードする核酸を含有してなる宿主細胞を培養し;
(b)宿主細胞培養物から抗体断片を回収する
ことを含んでなる、請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片の調整方法。 - 抗体断片を含有してなるポリペプチドが、イムノグロブリンの少なくとも50%が請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片であるイムノグロブリンの集合となる割合で発現される、請求項62に記載の方法。
- 該ポリペプチドがほぼ等モル量で発現される、請求項63に記載の方法。
- 前記ポリペプチドをコードする核酸がほぼ等しい強さの翻訳開始領域(TIRs)に作用可能に結合される、請求項64に記載の方法。
- 前記宿主細胞が原核生物である、請求項62ないし65の何れか一に記載の方法。
- 宿主細胞が大腸菌である、請求項66に記載の方法。
- 大腸菌が内在性プロテアーゼ活性欠陥株のものである、請求項67に記載の方法。
- 前記宿主細胞が真核生物のものである、請求項62ないし65の何れか一に記載の方法。
- 前記宿主細胞がCHOである、請求項69に記載の方法。
- 前記抗体断片が培養液から回収される、請求項62ないし70の何れか一に記載の方法。
- 前記抗体断片が細胞溶解物から回収される、請求項62ないし70の何れか一に記載の方法。
- (a)第二Fcポリペプチドの作用領域をコードする核酸が***をコードするように第二Fcポリペプチドの元の作用領域をコードする核酸から変更されているか、あるいは第一Fcポリペプチドの作用領域をコードする核酸がキャビティをコードするように第一Fcポリペプチドの元の作用領域をコードする核酸から変更されているか、あるいはその両方である抗体断片をコードする核酸を含有してなる宿主細胞宿主細胞を培養し、
(b)前記宿主細胞培養物から抗体断片を回収する
工程を含んでなる、請求項23ないし60の何れか一に記載の抗体断片の調整方法。 - 第二Fcポリペプチドをコードする核酸が***をコードするように元の核酸から変更されており、第一ポリペプチドをコードする核酸がキャビティをコードするように元の核酸から変更されている、請求項73に記載の方法。
- 第二Fcポリペプチドの作用領域の元のアミノ酸残基をコードする核酸が、元のアミノ酸残基より大きな側鎖容量を有する移入アミノ酸残基をコードする核酸で置換される工程が工程(a)に先行するものであり、大きな側鎖容量を有する移入残基が***を含有してなる、請求項73に記載の方法。
- 第一Fcポリペプチドの作用領域の元のアミノ酸残基をコードする核酸が、キャビティを形成するように元のアミノ酸残基より小さい側鎖容量を有する移入アミノ酸残基をコードする核酸で置換される工程が工程(a)に先行するものである、請求項73に記載の方法。
- 第一Fcポリペプチド及び第二Fcポリペプチドをコードする核酸が宿主細胞に導入される工程が工程(a)に先行するものである、請求項73に記載の方法。
- (a)抗体断片を形成するポリペプチドを調製し;
(b)ヘテロ多量体化を起こす;
工程を含んでなり、これによって抗体断片が形成される、請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片の調整方法。 - 形成されたイムノグロブリンポリペプチド複合体の少なくとも50%が請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片である、請求項62ないし78の何れか一に記載の方法。
- 形成されたイムノグロブリンポリペプチド複合体の少なくとも50%がヘテロ三量体である、請求項62ないし78の何れか一に記載の方法。
- 工程(b)が第一Fcポリペプチドと第二Fcポリペプチドのインビトロでの結合を含んでなる、請求項62ないし78の何れか一に記載の方法。
- 元の作用領域のアミノ酸配列が遺伝子操作した作用領域内に***及びキャビティを生成するように変更されている、請求項62ないし78の何れか一に記載の方法。
- 請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片をコードする単離した核酸。
- 請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片を集合的にコードする二以上の組み換え核酸を含有してなる組成物。
- 請求項83又は84に記載の核酸を含有してなる宿主細胞。
- 抗原結合アームをコードする核酸が単一ベクター内に存在する、請求項85に記載の宿主細胞。
- 抗原結合アームをコードする核酸が別々のベクター内に存在する、請求項85に記載の宿主細胞。
- 抗原結合アーム及びN末端切断型重鎖をコードする核酸が単一ベクター内に存在する、請求項85に記載の宿主細胞。
- ポリペプチドが発現するように請求項83又は請求項84に記載の核酸を含有する宿主細胞を培養して、該細胞培養物から抗体断片を回収することを含んでなる、請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片の作製方法。
- 前記抗体断片が細胞溶解物から回収される、請求項89に記載の方法。
- 前記抗体断片が細胞培養液から回収される、請求項89に記載の方法。
- 前記宿主細胞が原核生物細胞である、請求項89に記載の方法。
- 前記宿主細胞が大腸菌である、請求項90に記載の方法。
- 前記宿主細胞が哺乳類のものである、請求項89に記載の方法。
- 請求項1ないし60の何れか一に記載の抗体断片と担体を含有してなる組成物。
- 単一抗原結合アームを含有してなるFab分子と比較して抗体断片の安定性を向上させる単一抗原結合アーム及びFc領域を含有してなる抗体断片の生成方法であり、抗原結合アームの形成と該Fc領域が形成されるための第一Fcポリペプチドと第二Fcポリペプチドの二量体化とが起こる条件下にて抗原結合アームと第一及び第二のFcポリペプチドをコードする好適な宿主細胞核内で発現させることを含んでなり、該Fcポリペプチドの両方ではなく他方がN末端切断型重鎖である方法。
- 前記方法がイムノグロブリンの異種性集団を生成し、イムノグロブリンの少なくとも50%が単一抗原結合アームを含有してなるFab分子と比較して抗体断片の安定性を向上させるFc領域及び単一抗原結合アームを含有してなる、請求項96に記載の方法。
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