CN103981210A - 一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法及其重组菌和应用 - Google Patents

一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法及其重组菌和应用 Download PDF

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CN103981210A
CN103981210A CN201410168749.7A CN201410168749A CN103981210A CN 103981210 A CN103981210 A CN 103981210A CN 201410168749 A CN201410168749 A CN 201410168749A CN 103981210 A CN103981210 A CN 103981210A
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mbnbd4
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ppic9k
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CN201410168749.7A
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周向梅
赵德明
康静静
吕悦
杨利峰
尹晓敏
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Abstract

本发明涉及动物医药工程技术领域,提供了一种真核表达载体,由含有牛β-防御素4成熟肽基因与真核表达载体pPIC9K构建而成的pPIC9K-mBNBD4,牛β-防御素4成熟肽基因的核苷酸序列如SEQ IDNO:1所示;还提供了一种重组菌株;还提供了一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法,包括1)牛β-防御素4成熟肽基因的制备;2)上述真核表达载体的构建;3)上述重组菌株的制备;4)毕赤酵母阳性转化子体外诱导表达。本发明所表达的重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽具有抗菌活性,且有一定的抗结核活性,适合于在畜牧生产及疾病治疗中使用,而且生产成本低、生产效率高。

Description

一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法及其重组菌和应用
技术领域
本发明属于动物医药工程技术领域,具体涉及一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法,还涉及一种表达牛β-防御素4成熟肽的重组菌,同时还涉及一种牛β-防御素4成熟肽在畜牧生产和药物治疗中抗菌作用的应用。
背景技术
防御素(defensin)属于内源性抗菌肽(endogenousantibioticpeptidees)家族,具备广谱抗微生物和细胞毒活性,对机体免疫至关重要。1991年,人们在牛气管黏膜上皮细胞中首次发现β-防御素-2这一阳离子多肽抗生素,命名为TAP(Trachea Antiniobial Peptide),而后在牛的粒细胞中又发现了13种不同于α-防御素,却与TAP序列高度同源的防御素,故命名为β-防御素。由于β-防御素的结构特点为基因序列中含有两个exon,其中第二个exon编码成熟的β-防御素,即发挥活性的部分,而且成熟β-防御素中含有6个半胱氨酸,可形成3对二硫键,是β-防御素能够发挥生物活性的必要结构。但是动物体内天然防御素的含量较低,直接提取远不能满足需要,化学合成方法可行但成本太高,因此,通过基因重组技术生产防御素多肽,以满足研究和生产的需要成为一种可能。
另外,有研究已证实牛巨噬细胞有牛嗜中性粒细胞β-防御素(BNBD)4的表达,且分支杆菌主要感染巨噬细胞,并在巨噬细胞内生存,因此,我们推测BNBD4可能在对抗分支杆菌感染中发挥着重要的作用,并可作为一种分支杆菌的新型治疗药物而广泛使用,因此基于防御素的这一重要特点,我们进行了一种真核表达牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽的生产方法的研究。
发明内容
针对现有技术不足,本发明的目的是提供一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法及其重组菌和应用。
为实现上述目的,本发明提供一种真核表达载体,由含有牛β-防御素4成熟肽基因与真核表达载体pPIC9K构建而成的pPIC9K-mBNBD4,所述牛β-防御素4成熟肽基因的核苷酸序列如SEQID NO:1所示。
一种编码牛β-防御素4成熟肽的基因,其核苷酸序列如SEQ IDNO.2所示。
本发明提供了一种重组菌株,由上述真核表达载体pPIC9K-mBNBD4转化毕赤酵母GS115构建制成的重组菌株。
优选的,所述菌株为毕赤酵母阳性转化子菌株巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris(pPIC9K-mBNBD4),该菌株已于2014年3月20日被保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,简称CGMCC,地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,邮编100101,保藏编号为CGMCC No.8938。
本发明提供了一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法,包括以下步骤:
1)牛β-防御素4成熟肽基因的制备:根据GenBank上公布的BNBD4的CDS区域核苷酸序列人工合成mBNBD4基因,并设计PCR引物,
mBNBD4的上游引物:
5′-GCCGAATTCCAAAGAGTAAGAAATCCTC-3′;
mBNBD4的下游引物:
5′-GCCGCGGCCGCCTAATGATGATGATGATGATGCCTCCTGCAGCATGGT-3′。
2)上述真核表达载体的构建:双酶切mBNBD4基因和真核表达载体pPIC9K,胶回收mBNBD4基因片段和开环的真核表达载体pPIC9K,16℃连接处理16h,将连接产物转化至大肠杆菌TOP10感受态细胞,即完成重组质粒pPIC9K-mBNBD4的构建;
3)上述重组菌株的制备:将重组质粒pPIC9K-mBNBD4转化到感受态GS115中,筛选阳性转化子,所得阳性克隆即为能够表达mBNBD4的毕赤酵母阳性转化子菌株;
4)毕赤酵母阳性转化子体外诱导表达。
优选的,步骤3)中所述筛选依次为His+多拷贝转化子的筛选和Mut+转化子的筛选。
优选的,所述步骤4)包括以下步骤:
a、挑取PCR鉴定后证实已***目的片段的His+、Mut+酵母转化子接种至YPD液体培养基中,28℃培养16-18h,离心弃上清;
b、重悬菌体接种至诱导表达前培养基BMGY中,28℃培养18-24h,至OD600nm达到2-6时离心弃上清;
c、重悬菌体接种至诱导表达培养基BMMY中,28℃连续培养72h,培养72h后收集表达培养液,离心取上清,进行Tricine-SDS-PAGE电泳分析,结果显示,与空载体对照相比,含有目的片段的酵母表达上清在7kD处有一特异性条带,说明有目的蛋白表达。
优选的,诱导表达前培养基BMGY的配方为酵母提取物10g/L、蛋白胨20g/L、K2HPO4 3g/L、KH2PO4 11.8g/L、超纯水800mL/L、10×YNB100mL/L、0.02%生物素的500×B1mL/L、10%甘油100mL/L。
优选的,诱导表达培养基BMMY的配方为酵母提取物10g/L、蛋白胨20g/L、K2HPO4 3g/L、KH2PO4 11.8g/L、超纯水800mL/L、10×YNB100mL/L、0.02%生物素的500×B1mL/L、5%甲醇100mL/L。
优选的,所述步骤c中,培养过程中每隔24h补充甲醇使其终浓度为1%。
本发明提供了一种牛β-防御素4成熟肽在抗微生物感染中的应用。
本发明的有益效果:对重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)进行体外生产表达研究,仅对牛嗜中性粒细胞β-防御素4具有生物学活性的成熟肽进行表达,同时为了方便纯化,添加了不影响蛋白生物学活性的6-His·tag,从而有利于重组蛋白的纯化,提高重组蛋白产量。毕赤酵母表达***属于真核表达***,表达出来的蛋白更接近于天然蛋白,有利于保持重组蛋白的天然结构,对于牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)有助于3对二硫键的形成,从而保持重组蛋白的活性。活性检测结果发现所表达的重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)具有抗菌活性,且有一定的抗结核活性,适合于在畜牧生产及疾病治疗中使用,而且生产成本低、生产效率高。
附图说明
图1牛β-防御素4成熟肽的PCR结果;
图2mBNBD4基因的测序比对结果;
图3重组质粒pPIC9K-mBNBD4构建模式图;
图4重组菌株基因组PCR鉴定-通用引物鉴定结果,其中,1-2为空质粒对照pPIC9K,3-8为pPIC9K-mBNBD4;
图5重组菌株基因组PCR鉴定-mBNBD4特异性引物鉴定结果,其中,1-2为空质粒对照pPIC9K,3-8为pPIC9K-mBNBD4;
图6重组蛋白mBNBD4的鉴定结果:Tricine-SDS-PAGE鉴定结果,其中,1:诱导48h;2:诱导60h;3:诱导72h;4:诱导84h;箭头所指为最优表达时间(72h);
图7重组蛋白mBNBD4的鉴定结果:Western Blotting鉴定结果,1为空质粒对照pPIC9K表达产物,2为重组蛋白mBNBD4;
图8重组蛋白mBNBD4对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌有抑制效果;
图9重组蛋白mBNBD4对耻垢分支杆菌的抑制效果;
图10重组蛋白mBNBD4对牛分枝杆菌的抑制效果。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。本发明所使用的限制性内切酶EcoRⅠ、NotⅠ和SacⅠ均购自Takara大连宝生物;真核表达载体pPIC9K购自Invitrogen公司;FastPfu DNA聚合酶,T4连接酶等购自北京全式金生物技术有限公司;毕赤酵母宿主菌GS115菌株购自中国质粒载体菌株细胞株基因保藏中心;遗传霉素G418购自北京拜尔迪生物技术有限公司,生产厂家为美国INALCO公司。
实施例1嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽基因的制备
1、设计人工合成牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因的引物
根据GenBank上公布的BNBD4的CDS区域核苷酸序列(序列号:AF008307.1),以及真核表达载体pPIC9K的酶切位点,上游引物设计在基因起始端,加入了EcoR Ⅰ酶切位点(下划线处),在EcoR Ⅰ酶切位点前加有3个保护性碱基GCC;下游引物设计在基因末端,并加入了Not Ⅰ酶切位点(下划线处),同时为了方便以后蛋白纯化,在下游引物C-端终止密码子前加了一个6-His·tag(波浪下划线处),Not Ⅰ酶切位点前加有3个保护性碱基GCC,委托Genewiz(金唯智)生物科技有限公司合成,分别为:
mBNBD4的上游引物:
5′-GCCGAATTCCAAAGAGTAAGAAATCCTC-3′;
mBNBD4的下游引物:
5′-GCCGCGGCCGCCTAATGATGATGATGATGATGCCTCCTGCAGCATGGT-3′。
2、mBNBD4的PCR扩增
从正常牛肺脏组织提取RNA,反转录后获得cDNA,以此DNA为模板,加入TransStart FastPfu DNA聚合酶、牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因上游引物/下游引物、2.5mM dNTPs进行扩增反应,PCR反应体系为:5×TransStart FastPfu buffer(10μL),2.5mM dNTPs(5μL),浓度为10μM的牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因上游引物和下游引物(各1μL),模板为牛肺脏组织cDNA(2μL),高压灭菌ddH2O(30μL),TransStart FastPfu DNA聚合酶(1μL),PCR反应条件依次为:95℃,1min;95℃,20sec,62℃,20sec,72℃,30sec,35cycles;72℃,5min。反应完成后即获得牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)的PCR产物,PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测后,可见一条158bp左右的条带,如图1所示,与预期结果一致。
实施例2重组质粒pPIC9K-mBNBD4的构建
将获得的牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)的PCR产物用快速琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒进行纯化及回收,回收产物用内切酶EcoR Ⅰ和Not Ⅰ进行双酶切处理,胶回收大小约为150bp的条带;以同样的方法对真核表达载体pPIC9K进行双酶切处理,胶回收约为9kb大小的DNA片段,分别取3μL双酶切后胶回收的牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因片段和2μL双酶切后胶回收的真核表达载体pPIC9K,加入2μL的5×T4DNA连接buffer,1μL的T4DNA连接酶,补充高压灭菌ddH2O至10μL,在16℃条件下连接处理16h,将连接产物转化至大肠杆菌TOP10感受态细胞,涂布200μL于LB/Amp+固体培养基上,37℃培养14-16h,即完成重组质粒pPIC9K-mBNBD4的构建。LB/Amp+固体培养板上长出的白色菌落即为含有重组质粒pPIC9K-mBNBD4的阳性菌。真核表达载体pPIC9K为Invitrogen公司的产品。
挑选LB/Amp+固体培养板上长出的白色菌落加入LB/Amp+液体培养基中扩大培养后,送至北京三博远志公司进行测序,测序结果与GenBank中公布的BNBD4的CDS区域核苷酸序列完全一致,如图2所示,说明mBNBD4基因序列成功***质粒内,重组质粒pPIC9K-mBNBD4已经构建成功,如图3所示。
实施例3毕赤酵母基因工程菌株的制备
1、重组质粒的制备和线性化
挑选转化入重组质粒pPIC9K-mBNBD4的TOP10阳性菌接种于100mL的LB/Amp+液体培养基中,37℃培养12-14h,将菌液于4℃,5000rpm离心30min,收集沉淀的菌体,然后用无内毒素质粒DNA抽提试剂盒提取质粒,同时提取了空质粒pPIC9K的质粒DNA用作空白对照。用内切酶Sac Ⅰ将提取的重组质粒pPIC9K-mBNBD4和空质粒pPIC9K线性化。为了便于电转化,将线性化的重组质粒pPIC9K-mBNBD4和空质粒pPIC9K经酚/氯仿抽提纯化,加入无水乙醇(-20℃预冷)沉淀DNA,将沉淀物自然干燥后,加入高压灭菌ddH2O溶解沉淀。
2、毕赤酵母电转化感受态细胞的制备
接种纯化后的毕赤酵母宿主菌GS115单菌落至5mL的YPD(含有酵母提取物,10g/L;蛋白胨,20g/L;10×葡萄糖,100mL/L)液体培养基中,28℃,250rpm条件下过夜培养。然后取0.1mL的过夜培养物,接种于100mL新鲜配制的YPD液体培养基(250mL锥形瓶)中,28℃,250rpm条件下过夜培养,使OD600nm值达到1.3-1.5。取该培养液分装入两个无菌的50mL离心管中于4℃,1500g条件下离心5min,弃上清液,扣干离心管壁;依次加入25mL、15mL冰预冷的灭菌水及10mL冰预冷的1M无菌山梨醇溶液,振荡重悬菌体,4℃,1500g条件下离心5min,弃上清液,吸干管壁残余液体;再次加入5mL冰预冷的1M无菌山梨醇溶液,重悬菌体,4℃,1500g条件下离心5min,弃上清液,吸干管壁残余液体;最后将细胞重悬于1mL冰预冷的1M无菌山梨醇溶液中,振荡混匀后终体积达到约1.5mL,此时得到的即为毕赤酵母GS115感受态细胞。将制备的感受态细胞按100μL/管分装入1.5mL无菌EP管中,-70℃冰冻保存,保存时间不宜超过两周,时间过长转化效率会变低,最好现用现做。
3、毕赤酵母的电击转化
电转化前取两管100μL新鲜制备的(或者-70℃冰冻保存的)GS115感受态细胞置于冰浴中,使其完全解冻,分别与5-20μg线性化的质粒(重组质粒pPIC9K-mBNBD4和空质粒pPIC9K)混合,轻弹混匀,尽数吸出转移至0.2cm的电穿孔转化杯(冰上预冷)中,冰浴5-10min,保持低温状态,使用电穿孔仪(BioRad)进行点击转化,电穿孔转化条件为:电压1500V,电阻300Ω,电容25μF,脉冲时间6-7ms,一次电击;电击后,立即往电击杯中加入1mL冰预冷的1M山梨醇溶液,用微量移液枪吹打均匀后,吸出转移至1.5mL灭菌EP管中,放入28℃温箱中静置培养1h;此时取出已经在28℃温箱中烘至表面半干的MD培养基平板(含有琼脂粉,15g/L,10×YNB,100mL/L;500×生物素,2mL/L;10×葡萄糖,100mL/L),在超净工作台内将转化液按300μL/板涂于培养基表面;将涂布好的MD平板置于29℃温箱中正面放置烘至表面半干,然后倒置培养,2天以后观察转化子的生长情况,生长出的单克隆即为含有牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)的His+重组转化子。
实施例4含有mBNBD4基因的毕赤酵母阳性转化子的筛选
1、G418抗性筛选(多拷贝转化子筛选)
首先配置含有不同浓度(0.5、1、1.5、2.0、3.0、4.0mg/mL)G418(遗传霉素)的YPD-G418固体培养基平板,然后进行多拷贝转化子筛选,具体步骤如下:
a:吸取1-2mL灭菌水至含有His+转化子的平板上(即MD平板上);
b:用灭菌刮子重悬His+转化子,注意不要划破琼脂板;
c:将细胞悬液集中转移至灭菌的50mL离心管中,涡旋(5-10s)混匀细胞;
d:分光光度计测定细胞浓度(1OD=5×107细胞/mL);
e:在每块含有不同浓度G418的YPD平板上涂布约105个细胞,同时为了确定所得到的多拷贝转化子是否占平板转化子的1-10%,需要涂布不含G418的YPD平板作为对照;
f:28℃温箱培养平板,每天检查转化子生长情况。其中G418抗性克隆生长较慢,一般5天左右出现,而不含G418的YPD平板上2天就会有克隆出现。在G418抗性YPD平板上生长的单克隆即为His+多拷贝转化子,且G418浓度越高,拷贝数也越多。(注意:如果此步骤中重悬下来的His+转化子还有剩余,可加15%灭菌甘油,存于-70℃,可在以后继续做G418抗性筛选。)
2、Mut+转化子的筛选
为了确定His+多拷贝转化子的甲醇诱导型,需进行Mut筛选,具体操作如下:将上一步所得的His+多拷贝转化子(G418抗性YPD板上的单克隆)编号后用灭菌牙签挑取,放入20μL灭菌水中混匀,然后以点种方式分别接种于MM平板(含有琼脂粉,15g/L,10×YNB,100mL/L;500×生物素,2mL/L;5%甲醇,100mL/L)及MD平板(含有琼脂粉,15g/L,10×YNB,100mL/L;500×生物素,2mL/L;10×葡萄糖,100mL/L)上,此时确保先在MM平板上点,每个克隆需要换一次牙签,每块平板上点20-30个单克隆,28℃温箱中培养平板2天。两天后,计数平板,并比较单菌落在MM平板及MD平板上的生长情况,其中在MD平板上和MM平板上生长速度一致,大小也一致的单克隆即为Mut+转化子。
3、毕赤酵母阳性转化子(His+Mut+多拷贝转化子)的PCR鉴定
抽提含有牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)的毕赤酵母阳性转化子的基因组,并以其为模板,加入TransStart FastPfuDNA聚合酶、真核表达载体pPIC9K的通用引物5’AOX1和3’AOX1、以及5′AOX1和牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因的下游引物、2.5mM dNTPs进行扩增反应,PCR反应体系为:5×TransStart FastPfu buffer(10μL),2.5mM dNTPs(5μL),浓度为10μM的真核表达载体pPIC9K的通用引物5’AOX1和3’AOX1、牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因下游引物(各1μL),模板为毕赤酵母阳性转化子的基因组DNA(2μL),高压灭菌ddH2O(30μL),TransStart FastPfu DNA聚合酶(1μL),PCR反应条件依次为:95℃,1min;95℃,20sec,62℃,20sec,72℃,30sec,35cycles;72℃,5min。加入真核表达载体pPIC9K的通用引物扩增出的PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测后,可见两条条带(500bp,2Kbp),且含有重组质粒pPIC9K-mBNBD4的酵母基因组扩增条带大于含有空质粒pPIC9K的酵母基因组扩增条带(图4),说明***重组质粒的完整性良好,且重组质粒pPIC9K-mBNBD4已完全导入酵母基因组。加入真核表达载体pPIC9K通用引物的上游引物和牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)基因的下游引物扩增出的PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测后,结果发现***真核表达载体pPIC9K的酵母基因组并未扩增出条带,而***重组质粒pPIC9K-mBNBD4的酵母基因组却可见一条特异性条带,且大小与预期一致(图5),说明筛选出的酵母菌株即为毕赤酵母阳性转化子(His+Mut+多拷贝转化子)菌株。
实施例5含有mBNBD4基因的毕赤酵母阳性转化子的体外诱导表达
1.阳性酵母转化子的体外诱导表达
挑取PCR鉴定后证实已***目的片段的His+Mut+酵母转化子接种至5mL的YPD液体培养基中,28℃培养16-18h,离心弃上清,重悬菌体接种至25mL BMGY诱导表达前培养基中,BMGY中包含酵母提取物(10g/L)、蛋白胨(20g/L)、K2HPO4(3g/L)、KH2PO4(11.8g/L)、超纯水(800mL/L)、10×YNB(100mL/L)、500×B(0.02%生物素)(1mL/L)、10%甘油(100mL/L),28℃培养18-24h,至OD600nm达到2-6时离心弃上清,重悬菌体接种至200mL的BMGY诱导表达培养基中,BMMY中包含酵母提取物(10g/L)、蛋白胨(20g/L)、K2HPO4(3g/L)、KH2PO4(11.8g/L)、超纯水(800mL/L)、10×YNB(100mL/L)、500×B(0.02%生物素)(1mL/L)、5%甲醇(100mL/L),28℃连续培养72h,培养过程中,每隔24h需补充甲醇使其终浓度为1%,培养72h后收集表达培养液,离心取上清,进行Tricine-SDS-PAGE电泳分析。同时进行空载体pPIC9K阳性酵母转化子的诱导表达,离心收集表达上清做为空白对照。结果显示,与空载体对照相比,含有目的片段的酵母表达上清在7kD处有一特异性条带,说明有目的蛋白表达,如图6所示。
2、重组蛋白的纯化及鉴定
重组蛋白通过镍柱(GE)进行纯化,经过双蒸水透析除盐后,真空冷冻干燥浓缩,PBS溶解后进行Western Blotting鉴定,结果发现只有一条单一条带,如图7所示,说明重组蛋白得到表达,即牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽蛋白。
实施例6初步抑菌活性试验
研究重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的抗菌活性,同时以GS115上清液,空质粒诱导表达上清液作为对照,结果发现0.5μg/mL、1μg/mL和2μg/mL的重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)体外诱导表达发酵液对大肠杆菌和葡萄球菌均有较强的抑菌作用,且有剂量依赖性,如图8所示。而对照组则并未观察到抑菌圈,说明抑菌活性主要归功于重组蛋白mBNBD4。
抗分枝杆菌试验(CFU)研究重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)对耻垢分支杆菌和牛分枝杆菌的抗菌活性,同时以不加蛋白孔作为对照,分别用不同浓度的重组牛嗜中性粒细胞β-防御素4成熟肽(mBNBD4)与耻垢分支杆菌和牛分枝杆菌共培养,培养3h、6h、9h、12h后涂板检测耻垢分支杆菌的存活情况;培养3h、24h、48h、72h后涂板检测牛分支杆菌的存活情况。结果发现纯化后的重组蛋白mBNBD4对耻垢分支杆菌(图9)和牛分枝杆菌(图10)均有杀菌作用,且有剂量依赖性和时间依赖性。
虽然,上文中已经用一般性说明、具体实施方式及试验,对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。

Claims (10)

1.一种真核表达载体,其特征在于,由含有牛β-防御素4成熟肽基因与真核表达载体pPIC9K构建而成的pPIC9K-mBNBD4,所述牛β-防御素4成熟肽基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
2.一种重组菌株,其特征在于,由权利要求1所述的真核表达载体pPIC9K-mBNBD4转化毕赤酵母GS115构建制成的重组菌株。
3.根据权利要求2所述的重组菌株,其特征在于,所述菌株为巴斯德毕赤酵母Pichia pastoris,保藏编号为CGMCC No.8938。
4.一种牛β-防御素4成熟肽的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)牛β-防御素4成熟肽基因的制备:根据GenBank上公布的BNBD4的CDS区域核苷酸序列人工合成mBNBD4基因,并设计PCR引物,
mBNBD4的上游引物:
5′-GCCGAATTCCAAAGAGTAAGAAATCCTC-3′;
mBNBD4的下游引物:
5′-GCCGCGGCCGCCTAATGATGATGATGATGATGCCTCCTGCAGCATGGT-3′。
2)权利要求1所述的真核表达载体的构建:双酶切mBNBD4基因和真核表达载体pPIC9K,胶回收mBNBD4基因片段和开环的真核表达载体pPIC9K,16℃连接处理16h,将连接产物转化至大肠杆菌TOP10感受态细胞,即完成重组质粒pPIC9K-mBNBD4的构建;
3)权利要求3所述重组菌株的制备:将重组质粒pPIC9K-mBNBD4转化到感受态GS115中,筛选阳性转化子,所得阳性克隆即为能够表达mBNBD4的毕赤酵母阳性转化子菌株;
4)毕赤酵母阳性转化子体外诱导表达。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,步骤3)中所述筛选依次为His+多拷贝转化子的筛选和Mut+转化子的筛选。
6.根据权利要求4或5所述的制备方法,其特征在于,所述步骤4)包括以下步骤:
a、挑取PCR鉴定后证实已***目的片段的His+、Mut+酵母转化子接种至YPD液体培养基中,28℃培养16-18h,离心弃上清;
b、重悬菌体接种至诱导表达前培养基BMGY中,28℃培养18-24h,至OD600nm达到2-6时离心弃上清;
c、重悬菌体接种至诱导表达培养基BMMY中,28℃连续培养72h,培养72h后收集表达培养液,离心取上清,进行Tricine-SDS-PAGE电泳分析,结果显示,与空载体对照相比,含有目的片段的酵母表达上清在7kD处有一特异性条带,说明有目的蛋白表达。
7.根据权利要求6所述的制备方法,其特征在于,诱导表达前培养基BMGY的配方为酵母提取物10g/L、蛋白胨20g/L、K2HPO4 3g/L、KH2PO4 11.8g/L、超纯水800mL/L、10×YNB100mL/L、0.02%生物素的500×B1mL/L、10%甘油100mL/L。
8.根据权利要求6所述的制备方法,其特征在于,诱导表达培养基BMMY的配方为酵母提取物10g/L、蛋白胨20g/L、K2HPO43g/L、KH2PO4 11.8g/L、超纯水800mL/L、10×YNB100mL/L、0.02%生物素的500×B1mL/L、5%甲醇100mL/L。
9.根据权利要求6所述的制备方法,其特征在于,所述步骤c中,培养过程中每隔24h补充甲醇使其终浓度为1%。
10.一种由权利要求4-9所述制备方法制得的牛β-防御素4成熟肽在抗微生物感染中的应用。
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CN111202169A (zh) * 2020-03-11 2020-05-29 西南民族大学 一种包含牦牛β-防御素4的非蛋白氮饲料添加剂

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