WO2014021387A1 - ラテックス凝集阻害免疫法 - Google Patents

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WO2014021387A1
WO2014021387A1 PCT/JP2013/070775 JP2013070775W WO2014021387A1 WO 2014021387 A1 WO2014021387 A1 WO 2014021387A1 JP 2013070775 W JP2013070775 W JP 2013070775W WO 2014021387 A1 WO2014021387 A1 WO 2014021387A1
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latex
absorbance
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恵子 服部
壮一 北野
道子 川本
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積水メディカル株式会社
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    • G01N2400/00—Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving carbohydrates

Definitions

  • the present invention relates to a method for avoiding a non-specific reaction in a latex immunoagglutination measurement method caused by some component in a blood sample, and a reagent used for the avoidance method.
  • the latex immunoagglutination measurement method (hereinafter sometimes referred to as LTIA) is a method for measuring a test substance using latex particles on which an antigen or antibody is immobilized, and is widely used in the field of clinical examination.
  • LTIA a method for measuring an antigen as a test substance by LTIA
  • latex particles to which an antibody against the test substance is immobilized and an antigen as a test substance are reacted to form a sandwich-type immune complex
  • immune A method of measuring a test substance (antigen) from the degree of aggregation of the latex particles associated with the complex formation hereinafter sometimes referred to as sandwich LTIA
  • sandwich LTIA sandwich LTIA
  • the test substance) to inhibit the formation of immune complexes between the latex particles and the antibody, and the test substance (antigen) is determined based on the degree of inhibition of latex particle aggregation associated with the inhibition of immune complex formation. It can be roughly classified into the measurement methods (hereinafter
  • LTIA agglutination that should not occur in latex particles to which an antigen or antibody is immobilized by some component contained in the test sample, despite the absence of the test substance in the test sample such as serum, does not occur. Occasionally, it will occur or the aggregation that should occur does not occur. These are called non-specific reactions and are known to cause various measurement errors.
  • Patent Document 1 describes a method of adding an inorganic boron compound to a sample solution in combination with a buffer system as a method of removing non-specific turbidity (synonymous with non-specific aggregation) in sandwich LTIA.
  • this method is a method for eliminating the occurrence of aggregation that should not occur in the measurement method using latex particles to which antibodies are immobilized, and is a method that can cope with the fact that aggregation that should occur does not occur in aggregation inhibition LTIA. is not.
  • a buffer solution containing no blood component is measured as a test sample even though it is a blood sample that does not contain a test substance due to the influence of some component in the blood sample. In some cases, only an agglomeration degree lower than the agglomeration degree obtained at the time can be obtained.
  • the standard substance for concentration conversion of the test substance in the test sample hereinafter sometimes referred to as the standard substance for concentration conversion
  • the degree of aggregation does not match and deviates.
  • a method that can avoid a nonspecific reaction that aggregation that should occur does not occur in aggregation-inhibiting LTIA has not been established, and development of a new method has been required.
  • An object of the present invention is to provide a method capable of avoiding a nonspecific reaction that aggregation that should occur does not occur in aggregation-inhibiting LTIA.
  • POE-POP block copolymer polyoxyethylene polyoxypropylene block copolymer
  • POE alkyl ether oxyethylene alkyl ether
  • POE fatty acid ester polyoxyethylene fatty acid ester
  • polyvalent quaternary amine polymer compound polyvalent quaternary amine polymer compound
  • the present invention has the following configuration.
  • Latex in the presence of one or more compounds selected from the group consisting of polyoxyethylene-polyoxypropylene block copolymers, polyoxyethylene alkyl ethers, polyoxyethylene fatty acid esters, and polyvalent quaternary amine polymer compounds A method for avoiding a non-specific reaction in a latex agglutination inhibition method, comprising performing an agglutination inhibition measurement method.
  • the non-specific reaction is a non-specific reaction in which aggregation that should occur does not occur when a test substance is not present in the test sample.
  • R 1 O (C 2 H 4 O) n H (II) (Wherein R 1 is an alkyl group having 8 to 20 carbon atoms (the alkyl group may be either primary or secondary, and has at least one double bond in the alkyl group). And n represents an arbitrary integer of 7 to 40.)
  • ⁇ 5> The method according to ⁇ 1> or ⁇ 2>, wherein the polyoxyethylene fatty acid ester is represented by the formula (III).
  • R 2 COO (C 2 H 4 O) n R 3 (III) (Wherein R 2 represents an alkyl group having 16 to 18 carbon atoms (the alkyl group may have one or more double bonds), n represents an arbitrary integer of 170 to 180, R 3 represents a hydrogen atom or an R 2 COO group.)
  • ⁇ 6> The method according to ⁇ 1> or ⁇ 2>, wherein the polyvalent quaternary amine polymer compound is polybrene (CAS number: CB1327317).
  • a reagent for latex aggregation inhibition method comprising a polyoxyethylene-polyoxypropylene block copolymer, a polyoxyethylene alkyl ether, a polyoxyethylene fatty acid ester, and a polyvalent quaternary amine polymer compound
  • One or more selected compounds are contained in any one or more of the following (1) to (4): (1) Concentration conversion standard substance (2) Solution containing anti-test substance antibody (3) Solution containing latex particles with immobilized antigen (4) Solution for dissolving or diluting concentration conversion standard substance ⁇ 8>
  • the reagent according to ⁇ 7> which is used for measuring teicoplanin in a human blood sample.
  • ⁇ 9> One or more compounds selected from the group consisting of polyoxyethylene-polyoxypropylene block copolymers, polyoxyethylene alkyl ethers, polyoxyethylene fatty acid esters and polyvalent quaternary amine polymer compounds as active ingredients Non-specific reaction avoidance agent for latex aggregation inhibition method.
  • a curve ( ⁇ ) and a calibration curve ( ⁇ ) when human serum added with the test substance is diluted with human serum not added with the test substance It is a figure of the result of having examined the composition of the standard substance dilution liquid for concentration conversion containing the nonspecific reaction avoidance compound of this invention.
  • a calibration curve ( ⁇ ) when the standard substance for concentration conversion is diluted with the standard substance dilution liquid for concentration conversion of the present invention, and human serum to which the test substance is added are diluted with human serum to which the test substance is not added. This is a calibration curve ( ⁇ ).
  • Non-specific reaction avoidance compound examples include one or more compounds selected from the group consisting of POE-POP block copolymers, POE alkyl ethers, POE fatty acid esters, and polyvalent quaternary amine polymer compounds.
  • the polyoxyethylene polyoxypropylene block copolymer (POE-POP block copolymer) of the present invention has a structure represented by the following formula (I). [Chemical 1] HO (C 2 H 4 O) a - (C 3 H 6 O) b - (C 2 H 4 O) c H (I) (Wherein a, b and c represent arbitrary integers, a + c is determined to be ethylene oxide having an average polymerization degree of 4 to 200 units (hereinafter sometimes referred to as EO), and b is 5 (Determined to be propylene oxide having an average degree of polymerization of ⁇ 100 units (hereinafter sometimes referred to as PO))
  • Specific examples of commercially available products containing the POE-POP block copolymer used in the present invention include “F” among nonionic surfactants generally sold under the name of “Pluronic (registered trademark)”.
  • notation As components of the POE-POP block copolymer, and it is possible to confirm the identity and similarity between each notation, but even if it is a commercial product with the same name, the numerical value between each notation May not match exactly. These are specific to the polymerizable polymer and can be understood by those skilled in the art.
  • Pluronic F77 (1) Polyoxyethylene content 70%, polyoxypropylene molecular weight approximately 2306 (2) Number of EO-number of PO: (52x2) -35
  • Pluronic F87 (1) Polyoxyethylene content 70%, polyoxypropylene molecular weight approximately 2644 (2) EO number-PO number: (62x2) -39
  • Pluronic F88 (1) Polyoxyethylene content 80%, polyoxypropylene molecular weight approximately 2644 (2) EO number-PO number: (97x2) -39
  • Pluronic F68 (1) Polyoxyethylene content 80%, polyoxypropylene molecular weight approximately 1967 (2) Number of EO-Number of PO: (75x2) -30 Epan 485 (1) Polyoxyethylene content 85%, polyoxypropylene molecular weight approximately 1200 (2) Number of EO-number of PO: (80x2) -21 Epan 680 (1) Polyoxyethylene content 80%, polyoxypropylene molecular weight approximately
  • the polyoxyethylene alkyl ether (POE alkyl ether) of the present invention has a structure represented by the following formula (II). [Chemical 2] R 1 O (C 2 H 4 O) n H (II) (Wherein R 1 is an alkyl group having 8 to 20 carbon atoms (the alkyl group may be either primary or secondary, and has at least one double bond in the alkyl group). And n represents an arbitrary integer of 7 to 40.) Specific examples of commercial products containing the POE alkyl ether used in the present invention include “BT”, “BC” among nonionic surfactants generally sold under the name “NIKKOL (registered trademark)”. ”Or“ BO ”.
  • Nikkor BC40TX (3) Polyoxyethylene cetyl ether (4) R 1 : carbon number 16, n: 40
  • Nikkor BO10TX (3)
  • Polyoxyethylene oleyl (4) R 1 carbon number 18, n: 10
  • Nikkor BT-7 (3)
  • Nikkor BT-9 (3)
  • the polyoxyethylene fatty acid ester (POE fatty acid ester) of the present invention has a structure represented by the following formula (III).
  • R 2 COO (C 2 H 4 O) n R 3 (III) (Wherein R 2 represents an alkyl group having 16 to 18 carbon atoms (the alkyl group may have a double bond), n represents an arbitrary integer of 170 to 180, and R 3 represents Represents a hydrogen atom or R 2 COO group.)
  • Specific examples of commercially available products containing the POE fatty acid ester used in the present invention are enclosed in “DS” among nonionic surfactants generally sold under the name of “Neugen (registered trademark)”. Product can be mentioned. More specific examples of commercially available products are given together with the notations (5) and (6) as components that can be confirmed.
  • Neugen DS-601 (5) Polyoxyethylene distearate (6)
  • R 1 carbon number 17, n: 175
  • polyvalent quaternary amine polymer compound examples include polybrene (CAS number: CB1327317).
  • the non-specific reaction avoidance compound of the present invention dissolves a concentration-converting standard substance (so-called calibrator), a solution containing an anti-test substance antibody, a solution containing latex particles with immobilized antigen, and a concentration-converting standard substance. It can be used by adding to one or more reagents for performing aggregation-inhibiting LTIA, such as a solution for dilution. Among these, it is preferable to add to the standard substance for concentration conversion.
  • the preferred concentration of the nonspecific reaction avoiding compound is the concentration in the state in which the three components of the standard substance for concentration conversion, the anti-test substance antibody, and the latex particles on which the antigen is immobilized coexist in the reaction system (in the reaction system).
  • Final concentration of 0.003 to 0.078% (v / v, the same shall apply hereinafter), more preferably 0.006 to 0.034%, and particularly preferably 0.007 to 0.024%.
  • the non-specific reaction avoidance compound of the present invention is not limited to the effects of the present invention, and can guarantee the performance as a formulation.
  • Buffers, proteins, salts, preservatives and the like usually used in LTIA Can be used as a mixture.
  • Buffer solution for example, a buffer solution having a buffering action near neutral pH, preferably pH 6.5 to 7.8, more preferably pH 6.8 to 7.5 (phosphate buffer solution, Good buffer solution, glycine).
  • a buffer solution, a borate buffer solution, a wide-area buffer solution in which a plurality of buffer agents are combined, and the like are preferable.
  • the concentration of the buffering agent in these buffers is preferably 0.1 mM to 1 M, more preferably 1 mM to 800 mM, and particularly preferably 5 mM to 500 mM.
  • a buffer having an amine structure in the molecule for example, Tris
  • Components other than the nonspecific reaction-avoiding compound of the present invention can be selected by experimentation in consideration of the characteristics of each test substance.
  • protein Proteins include, but are not limited to, bovine serum albumin (BSA) and casein. These are used for the purpose of improving the storage stability of latex particles on which antibodies and antigens are immobilized, or for the purpose of aligning the reaction environment by approximating the concentration of protein components that a blood sample brings into the reaction system. .
  • BSA bovine serum albumin
  • casein casein
  • salts examples include, but are not limited to, sodium chloride and potassium chloride.
  • Preservatives include, but are not limited to, antibacterial agents such as ofloxacin and sodium azide.
  • a latex competition method in which the degree of aggregation of latex particles to which an antigen is immobilized is reduced according to the concentration of the test substance in the test sample.
  • the test substance can be measured by optically or electrochemically observing the degree of aggregation that has occurred. Examples of the optical observation method include a method of measuring scattered light intensity, absorbance, or transmitted light intensity with an optical instrument.
  • the test sample to be measured by the latex agglutination inhibition measurement method using the nonspecific reaction avoidance compound of the present invention is a blood sample such as serum or plasma.
  • the test substance (detection target) in the test sample include low molecular antigens such as peptide antigens and haptens.
  • peptide antibiotics such as teicoplanin, arbekacin, vancomycin, synthetic antibacterial agents such as ofloxacin
  • Test substances suitable for competitive immunoassay such as egg white and beans-derived allergens, can be mentioned. Of these, teicoplanin is preferred.
  • the antibody used in the present invention may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody.
  • a functional fragment of an antibody having antigen-antibody reaction activity can be used, and a general animal (mouse, goat, sheep, etc.) immunization process In addition to those obtained through the process, those obtained using genetic recombination techniques and chimeric antibodies can also be used.
  • functional fragments of antibodies include F (ab ′) 2 and Fab ′, which are fragments having antigen-antibody reaction activity.
  • Functional fragments of these antibodies can be produced by treating the antibody obtained as described above with a proteolytic enzyme (for example, pepsin or papain).
  • these antibodies may be immobilized on latex particles, or may not be immobilized.
  • Latex particles examples include polystyrene, styrene-styrene sulfonate copolymer, methacrylic acid polymer, acrylic acid polymer, acrylonitrile butadiene styrene copolymer, vinyl chloride-acrylic acid ester copolymer, Examples thereof include polyvinyl acetate acrylate.
  • the average particle size of the latex particles is appropriately selected from 0.1 ⁇ m to 0.4 ⁇ m in consideration of the concentration of the test substance in the test sample or the detection sensitivity of the measuring instrument.
  • a physical adsorption (hydrophobic bond) method or a chemical bond method may be appropriately selected according to the characteristics of the antigen to be immobilized. it can.
  • a physical adsorption (hydrophobic bond) method a polyhapten is formed and adsorbed.
  • a binding functional group such as a maleimide group is introduced into the antigen. By utilizing it, it can be bound and immobilized on a binding functional group on the latex particle surface.
  • the reagent for aggregation inhibition LTIA containing the nonspecific reaction avoidance compound of this invention can be provided with any one or more of the following forms normally used, it is not limited to this.
  • Standard substance for concentration conversion sometimes called by name such as calibrator
  • a solution containing an antibody against a test substance sometimes referred to as an antibody solution, first test solution, etc.
  • Latex particle solution with immobilized antigen sometimes called by the name of latex reagent, second reagent, etc.
  • a solution for dissolving or diluting the standard substance for concentration conversion (sometimes called by a name such as a calibrator dilution)
  • the buffer containing the non-specific reaction avoidance compound of the present invention may be provided under the names of a standard substance for concentration conversion (calibrator), a specimen dilution, and the like. Equivalent to. (2) When a non-specific reaction avoiding compound of the present invention is contained in a solution containing an antibody against a test substance or (3) a latex particle solution on which an antigen is immobilized, avoiding the non-specific reaction of the present invention It can be provided as a solution containing the compound. In the above (1) to (4), as long as they are used in a series when the aggregation inhibition LTIA is performed, each may be provided independently or may be provided in a lump such as a kit. Absent.
  • the composition when the PBS tablet is a 100 mL solution is as follows. 800 mg NaCl, 20 mg KCl, 115 mg sodium monohydrogen phosphate (anhydrous), potassium dihydrogen phosphate (anhydrous) (4) Anti-teicoplanin antibody solution (containing 2.8 mg / mL anti-teicoplanin sheep polyclonal antibody and 0.5% BSA, pH 7.0, hereinafter referred to as antibody solution) (5) Teicoplanin-sensitized latex reagent (pH 7.2 or less, referred to as latex reagent) 2. Method Teicoplanin was diluted to 0, 5, 10, 25, 50, and 100 ⁇ g / mL with a standard solution to prepare a calibrator.
  • base serum to which teicoplanin was added so as to be 110 ⁇ g / mL was prepared in 10 stages (0, 11, 22, 33, 44, 55, 66, 77, 88, 99) with base serum without teicoplanin or a standard substance dilution. , 110 ⁇ g / mL) to prepare simulated sample solution 1 and simulated sample solution 2 respectively.
  • simulated sample solution 1 or simulated sample solution 2 and 180 ⁇ L of anti-teicoplanin antibody solution were mixed and mixed at 37 ° C. for 5 minutes.
  • the dabs of the base serum itself are compared with the dabs of the calibrator (standard substance dilution solution itself) with a teicoplanin concentration of 0 ⁇ g / mL.
  • Example 1 Investigation of search for nonspecific reaction avoidance compound Reagent (1) Serum obtained from teicoplanin non-administered human (base serum) (2) Anti-teicoplanin antibody solution (antibody solution) (3) Teicoplanin sensitized latex reagent (latex reagent) For the above (1) to (3), the same ones as in Comparative Example 1 were used. (4) 10% BSA-2 ⁇ PBS (pH 7.0) One PBS tablet and 5 g of BSA were made up to 50 ml with water to make 10% BSA-2 ⁇ PBS. (5) The searched compounds are shown in Table 1. (A) Blocking N101 and N102 (both manufactured by NOF Corporation).
  • Epan 750 (POE-POP block copolymer, manufactured by Daiichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.) (1) Polyoxyethylene content 50%, polyoxypropylene molecular weight approximately 2000 (2) EO number-PO number: (23x2) -34
  • C Pluronic L34 (POE-POP block copolymer, manufactured by ADEKA) (1) Polyoxyethylene content 40%, polyoxypropylene molecular weight approximately 870 (2) Number of EO-Number of PO: (7x2) -15
  • D Pluronic F68 (POE-POP block copolymer, manufactured by ADEKA)
  • E) Neugen DS601 (POE fatty acid ester, manufactured by Daiichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.)
  • F Nikkor BC40TX (POE alkyl ether, manufactured by Nikko Chemicals)
  • G Nikkor BO-10
  • test solution 1 prepared by mixing 2.4 ⁇ L of base serum or 10% BSA-2 ⁇ PBS and the searched compound prepared to double the final concentration described in Table 1 at a volume ratio of 1: 1 (test solution 1) was mixed with 180 ⁇ L of the antibody solution and mixed at 37 ° C. for 5 minutes. Subsequently, 60 ⁇ L of latex test solution was mixed, and after 37 ° C., 1 minute (absorbance I), 1 minute 20 seconds (absorbance II), 3 minutes (absorbance III), 3 minutes 20 seconds (absorbance IV). Absorbance at 700 nm was measured for each.
  • Example 2 Examination of Effective Concentration Range of Nonspecific Reaction Avoidance Compound (Candidate) -1 The effective concentration range was examined for the nonspecific reaction avoidance compound candidates narrowed down from the results of Example 1.
  • Reagent (1) Serum obtained from teicoplanin non-administered human (base serum) (2) Anti-teicoplanin antibody solution (antibody solution) (3) Teicoplanin sensitized latex reagent (latex reagent) For the above (1) to (3), the same ones as in Comparative Example 1 were used. (4) 10% BSA-2 ⁇ PBS (pH 7.0) (5) Nonspecific reaction avoidance compound (candidate) It is shown in Table 2.
  • Example 3 Examination of concentration range of nonspecific reaction avoiding compound-2 1.
  • Reagent (1) Serum obtained from teicoplanin non-administered human (base serum) (2) Anti-teicoplanin antibody solution (antibody solution) (3) Teicoplanin sensitized latex reagent (latex reagent) In the above (1) to (3), the same as those in Comparative Examples 1 and 2 were used.
  • Nonspecific reaction avoiding compound (a) Pluronic F88 (B) Nikkor BT-9 2.
  • Method 2.4 ⁇ L of base serum as well as 10% BSA-2 ⁇ PBS and an additive compound prepared at a concentration twice the final concentration described in Table 3 (test solution 3) were mixed at a ratio of 1: 1 (test solution 3). It was mixed with the antibody solution and mixed at 37 ° C. for 5 minutes. Subsequently, 60 ⁇ L of latex test solution was mixed, and after 37 ° C., 1 minute (absorbance I), 1 minute 20 seconds (absorbance II), 3 minutes (absorbance III), 3 minutes 20 seconds (absorbance IV). Absorbance at 700 nm was measured for each. The difference between (average value of absorbance II and absorbance I) and (average value of absorbance IV and absorbance III) was determined and defined as dabs.
  • ⁇ BSA 5%, PB- 1.75 g sodium chloride, 0.7 g Pluronic F88, 5 g BSA, 2 mg ofloxacin were weighed and made up to 100 mL.
  • ⁇ BSA 10%, PB- 1.75 g sodium chloride, 0.7 g Pluronic F88, 10 g BSA, 2 mg ofloxacin were weighed and made up to 100 mL.
  • ⁇ BSA 0%, PB + One PBS tablet, 0.7 g of Pluronic F88, 2 mg of ofloxacin were weighed and made up to 100 mL.
  • Example 4 A standard curve when the standard substance for concentration conversion is diluted with a buffer containing the nonspecific reaction avoiding compound of the present invention and a standard curve when diluted with human serum not containing a test substance.
  • Teicoplanin was diluted to 0, 5, 10, 25, 50, and 100 ⁇ g / mL with a standard solution to prepare a calibrator.
  • base serum to which teicoplanin was added so as to be 110 ⁇ g / mL was classified into 10 levels (0, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100 ⁇ g / mL) with base serum without teicoplanin.
  • 2.4 ⁇ L of the calibrator and simulated sample solution 3 and 180 ⁇ L of anti-teicoplanin antibody solution were mixed and mixed at 37 ° C. for 5 minutes.

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Abstract

　本発明は、凝集阻害ＬＴＩＡにおいて、生じるべき凝集が生じないという非特異的反応を回避できる方法の提供を課題とする。　ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物の存在下にラテックス凝集阻害測定法を行うことにより、ラテックス凝集阻害法における非特異的反応を回避する方法を提供する。

Description

ラテックス凝集阻害免疫法
本発明は、血液試料中の何らかの成分により生じる、ラテックス免疫凝集測定法における非特異的な反応の回避方法、及び当該回避方法に用いられる試薬に関する。
ラテックス免疫凝集測定法（以下、ＬＴＩＡということがある）は、抗原あるいは抗体を固定化したラテックス粒子を用いて、被検物質を測定する方法であり、臨床検査の分野で広く使用されている。ＬＴＩＡにより被検物質である抗原を測定する方法としては、被検物質に対する抗体を固定化したラテックス粒子と、被検物質である抗原とを反応させ、サンドイッチ型の免疫複合体を形成させ、免疫複合体形成に伴う当該ラテックス粒子の凝集の程度から被検物質（抗原）を測定する方法（以下、サンドイッチＬＴＩＡということがある）と、抗原を固定化したラテックス粒子と被検試料中の抗原（被検物質）とを競合させて、当該ラテックス粒子と抗体との免疫複合体の形成を阻害し、免疫複合体の形成阻害に伴う当該ラテックス粒子の凝集阻害の程度から被検物質（抗原）を測定する方法（以下、凝集阻害ＬＴＩＡということがある）に大別することができる。
ＬＴＩＡにおいては、血清などの被検試料中に被検物質が存在していないにもかかわらず、被検試料中に含まれる何らかの成分により抗原あるいは抗体を固定化したラテックス粒子に生じるべきでない凝集が生じたり、あるいは生じるべき凝集が生じなかったりすることがしばしば発生する。これらは非特異的反応と呼ばれ、様々な測定誤差の原因となることが知られている。
非特異的反応の回避方法として、反応系に様々な物質を添加する方法が知られている。
特許文献１には、サンドイッチＬＴＩＡにおける非特異性混濁（非特異的凝集と同義）を除去する方法として、無機ホウ素化合物を緩衝系と組み合わせて試料溶液に添加する方法が記載されている。しかしながら当該方法は、抗体を固定化したラテックス粒子を使用する測定する方法において生じるべきでない凝集が生じることを除去する方法であって、凝集阻害ＬＴＩＡにおいて、生じるべき凝集が生じないことに対応できる方法ではない。
凝集阻害ＬＴＩＡで血液試料を測定する場合、血液試料中の何らかの成分の影響により、被検物質を含まない血液試料であるにもかかわらず、血液成分を全く含まない緩衝液を被検試料として測定した際に得られる凝集度よりも低い凝集度しか得られない場合がある。また、被検試料中の被検物質の濃度換算用の標準物質（以下、濃度換算用標準物質ということがある）を緩衝液で希釈した場合と血液成分を含む緩衝液で希釈した場合とで、凝集度（吸光度）が一致せずに乖離することがある。しかしながら上記のように、現在においても、凝集阻害ＬＴＩＡにおいて、生じるべき凝集が生じないという非特異的反応を回避できる方法は確立しておらず、新たな方法の開発が必要であった。
特開昭６４－０４４８５５公報
本発明は、凝集阻害ＬＴＩＡにおいて、生じるべき凝集が生じないという非特異的反応を回避できる方法の提供を課題とする。
本発明者らは、凝集阻害ＬＴＩＡにおける上記課題を解決するため、鋭意検討を行ったところ、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロック共重合体（以下、ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重体ということがある）、ポリオキシエチレンアルキルエーテル（以下、ＰＯＥアルキルエーテルということがある）、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル（以下、ＰＯＥ脂肪酸エステルということがある）、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の非特異的反応回避化合物を、濃度換算用標準物質を希釈するための緩衝液中に添加しておくと、当該緩衝液それ自体を被検試料として測定した場合に得られる凝集度と、被検物質を含まない血液試料を測定した場合の凝集度との差を縮小させることができることを見出し、本発明を完成するに至った。
本発明は、以下の構成を有する。
＜１＞ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物の存在下にラテックス凝集阻害測定法を行うことを特徴とする、ラテックス凝集阻害法における非特異的反応を回避する方法。
＜２＞非特異的反応が、被検試料中に被検物質が存在しないときに、生じるべき凝集が生じないという非特異的反応である、＜１＞の方法。
＜３＞ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体が、式（Ｉ）で表されるものである、＜１＞または＜２＞の方法。
ＨＯ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）a－（Ｃ3Ｈ6Ｏ）b－（Ｃ2Ｈ4Ｏ）cＨ　（Ｉ）
（式中、ａ，ｂ，ｃは任意の整数を表し、ａ＋ｃは４～２００単位の平均重合度の酸化エチレンとなるよう決定され、かつｂは５～１００単位の平均重合度の酸化プロピレンとなるよう決定される）
＜４＞ポリオキシエチレンアルキルエーテルが、式（II）で表されるものである、＜１＞または＜２＞の方法。
Ｒ1Ｏ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）nＨ　（II）
（式中、Ｒ1は炭素数８～２０のアルキル基（当該アルキル基は、第１級、第２級のいずれであってもよく、アルキル基中に二重結合を一つ以上有していてもよい）を表し、ｎは７～４０の任意の整数を表す。）
＜５＞ポリオキシエチレン脂肪酸エステルが、式（III）で表されるものである、＜１＞または＜２＞の方法。
Ｒ2ＣＯＯ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）nＲ3　（III）
（式中、Ｒ2は炭素数１６～１８のアルキル基（当該アルキル基は、二重結合を一つ以上有していてもよい）を表し、ｎは１７０～１８０の任意の整数を表し、Ｒ3は水素原子を表すかまたはＲ2ＣＯＯ基を表す。）
＜６＞多価第四級アミン高分子化合物が、ポリブレン（ＣＡＳ番号：ＣＢ１３２７３１７）である、＜１＞または＜２＞の方法。
＜７＞ラテックス凝集阻害法用の試薬であって、ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物を以下（１）～（４）のいずれか一つ以上に含有することを特徴とする試薬。
（１）濃度換算用標準物質
（２）抗被検物質抗体を含む溶液
（３）抗原が固定化されたラテックス粒子を含む溶液
（４）濃度換算用標準物質を溶解または希釈するための溶液
＜８＞ヒト血液試料中のテイコプラニン測定に用いるものである、＜７＞の試薬。
＜９＞ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物を有効成分とするラテックス凝集阻害法用非特異的反応回避剤。
本発明により、凝集阻害ＬＴＩＡにおいて、生じるべき凝集が生じないという非特異的反応を回避できる方法が提供される。本発明により、凝集阻害ＬＴＩＡによる血液試料中の被検物質の正確な測定が可能になる。
濃度換算用標準物質をヒト血清成分を全く含まない緩衝液で希釈した場合の検量線（×）、被検物質を添加したヒト血清をヒト血清成分を全く含まない緩衝液で希釈した場合の検量線（○）及び被検物質を添加したヒト血清を被検物質を添加していないヒト血清で希釈した場合の検量線（▲）である。 本発明の非特異的反応回避化合物を含む濃度換算用標準物質希釈液の組成を検討した結果の図である。 濃度換算用標準物質を本発明の濃度換算用標準物質希釈液で希釈した場合の検量線（×）、及び被検物質を添加したヒト血清を被検物質を添加していないヒト血清で希釈した場合の検量線（▲）である。
（非特異的反応回避化合物）
本発明の非特異的反応回避化合物としては、ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重体、ＰＯＥアルキルエーテル、ＰＯＥ脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物が挙げられる。
本発明のポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロック共重合体（ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重体）は、下記式（Ｉ）に示す構造を有する。
　［化１］
ＨＯ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）a－（Ｃ3Ｈ6Ｏ）b－（Ｃ2Ｈ4Ｏ）cＨ　（Ｉ）
（式中、ａ，ｂ，ｃは任意の整数を表し、ａ＋ｃは４～２００単位の平均重合度の酸化エチレン（以下、ＥＯと表記することがある）となるよう決定され、かつｂは５～１００単位の平均重合度の酸化プロピレン（以下、ＰＯと表記することがある）となるよう決定される）
本発明において使用するＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重体を含有する市販品の具体的な例としては、一般に「プルロニック（登録商標）」の名称で販売されている非イオン性界面活性剤のうち「Ｆ」で括られる製品、または「エパン（登録商標）」の名称で販売されている非イオン界面活性剤を挙げることができる。
なお、ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重合体の成分としての表記は数種類存在し、各表記間で相互に同一性、類似性を確認できるが、同一名称の市販品であっても各表記間での数値が完全に一致しない場合がある。これらは重合性高分子に特有のものであり当業者は当然に理解しうる。
より具体的な市販品の例を、確認できる成分としての表記（１），（２）とともに挙げる。
プルロニックＦ７７：
（１）ポリオキシエチレン含量７０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ２３０６
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（５２ｘ２）－３５
プルロニックＦ８７：
（１）ポリオキシエチレン含量７０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ２６４４
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（６２ｘ２）－３９
プルロニックＦ８８：
（１）ポリオキシエチレン含量８０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ２６４４
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（９７ｘ２）－３９
プルロニックＦ６８：
（１）ポリオキシエチレン含量８０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ１９６７
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（７５ｘ２）－３０
エパン４８５
（１）ポリオキシエチレン含量８５％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ１２００
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（８０ｘ２）－２１
エパン６８０
（１）ポリオキシエチレン含量８０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ１７５０
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（８４ｘ２）－３０
エパン７８５
（１）ポリオキシエチレン含量８５％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ２０００
（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（１４０ｘ２）－３４
エパン７５０
（１）ポリオキシエチレン含量５０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ２０００
（２）ＥＯ－ＰＯ数：（２３ｘ２）－３４
これらのうち、プルロニックＦ８８およびプルロニックＦ６８は、医薬部外品原料規格２００６にも収載されている。
本発明のポリオキシエチレンアルキルエーテル（ＰＯＥアルキルエーテル）は、下記式（II）に示す構造を有する。
　［化２］
　Ｒ1Ｏ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）nＨ　（II）
（式中、Ｒ1は炭素数８～２０のアルキル基（当該アルキル基は、第１級、第２級のいずれであってもよく、アルキル基中に二重結合を一つ以上有していてもよい）を表し、ｎは７～４０の任意の整数を表す。）
本発明において使用するＰＯＥアルキルエーテルを含有する市販品の具体的な例としては、一般に「ＮＩＫＫＯＬ（登録商標）」の名称で販売されている非イオン性界面活性剤のうち「ＢＴ」、「ＢＣ」あるいは「ＢＯ」で括られる製品を挙げることができる。
より具体的な市販品の例を、確認できる成分としての表記（３）、（４）とともに挙げる。
　ニッコールＢＣ４０ＴＸ：
　（３）ポリオキシエチレンセチルエーテル
　（４）Ｒ1：炭素数１６、ｎ：４０
　ニッコールＢＯ１０ＴＸ：
　（３）ポリオキシエチレンオレイルエーエル
　（４）Ｒ1：炭素数１８、ｎ：１０
　ニッコールＢＴ－７：
　（３）ポリオキシエチレンアルキルエーテル
　（４）Ｒ1：炭素数１２～１４（２級アルキル）、ｎ：７
　ニッコールＢＴ－９：
　（３）ポリオキシエチレンアルキルエーテル
　（４）Ｒ1：炭素数１２～１４（２級アルキル）、ｎ：９
本発明のポリオキシエチレン脂肪酸エステル（ＰＯＥ脂肪酸エステル）は、下記式（III）に示す構造を有する。
Ｒ2ＣＯＯ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）nＲ3　（III）
（式中、Ｒ2は炭素数１６～１８のアルキル基（当該アルキル基は、二重結合を有していてもよい）を表し、ｎは１７０～１８０の任意の整数を表し、Ｒ3は水素原子を表すかまたはＲ2ＣＯＯ基を表す。）
本発明において使用するＰＯＥ脂肪酸エステルを含有する市販品の具体的な例としては、一般に「ノイゲン（登録商標）」の名称で販売されている非イオン性界面活性剤のうち「ＤＳ」で括られる製品を挙げることができる。
より具体的な市販品の例を、確認できる成分としての表記（５）、（６）とともに挙げる。
　ノイゲンＤＳ－６０１：
　（５）ポリオキシエチレンジステアリン酸エステル
　（６）Ｒ1：炭素数１７、ｎ：１７５
多価第四級アミン高分子化合物としては、ポリブレン（ＣＡＳ番号：ＣＢ１３２７３１７）が挙げられる。
これらのうち、プルロニックＦ８８、ニッコールＢＴ―７、ニッコールＢＴ－９が好適である。
本発明の非特異的反応回避化合物は、濃度換算用標準物質（いわゆるキャリブレータ）、抗被検物質抗体を含む溶液、抗原が固定化されたラテックス粒子を含む溶液、濃度換算用標準物質を溶解または希釈するための溶液など、凝集阻害ＬＴＩＡを行うための試薬の一以上に添加して使用することができる。なかでも濃度換算用標準物質に添加することが好ましい。
非特異的反応回避化合物の好ましい濃度は、濃度換算用標準物質、抗被検物質抗体、抗原が固定化されたラテックス粒子の３成分が反応系中に共存した状態での濃度（反応系中での終濃度）として０．００３～０．０７８％（ｖ/ｖ、以下同じ）、さらに好ましくは０．００６～０．０３４％、特に好ましくは０．００７～０．０２４％である。
本発明の非特異的反応回避化合物は、本発明の効果に影響を与えないこと、製剤としての性能が担保できることを限度として、ＬＴＩＡで通常使用される緩衝液、タンパク質、塩類、防腐剤などと混合して使用することができる。
（緩衝液）
緩衝液としては、例えば、中性ｐＨ付近、好ましくはｐＨ６．５～７．８、より好ましくはｐＨ６．８～７．５に緩衝作用を有する緩衝液（リン酸緩衝液、グッド緩衝液、グリシン緩衝液、ホウ酸緩衝液、及び複数の緩衝剤を組み合わせた広域緩衝液など）が好適である。これらの緩衝液中の緩衝剤の濃度としては、０．１ｍＭ～１Ｍが好ましく、さらに好ましくは１ｍＭ～８００ｍＭ、特に好ましくは５ｍＭ～５００ｍＭである。
なお、製剤としての性能担保の観点から、例えば、抗原が後述実施例のテイコプラニンである場合には、テイコプラニンの保存安定性に望ましくない影響をあたえるので、分子内にアミン構造を有する緩衝剤（例えば、Ｔｒｉｓ）の使用は好適ではない。本発明の非特異的反応回避化合物以外の成分は、被検物質それぞれの特性を考慮して、実験などにより選択することができる。
（タンパク質）
タンパク質としては、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）およびカゼインなどが挙げられるが、これらに限定されない。これらは、抗体や抗原が固定化されたラテックス粒子の保存安定性向上のため、あるいは、血液試料が反応系に持ち込むタンパク成分の濃度と近似させ反応環境をそろえるためなどの目的で使用されている。
（塩類）
塩類としては、塩化ナトリウム、塩化カリウムなどが挙げられるがこれらに限定されない。
（防腐剤）
防腐剤としては、オフロキサシンなどの抗菌剤や、アジ化ナトリウムなどが挙げられるが、これらに限定されない。
（測定方法）
本発明の非特異的反応回避化合物を用いる凝集阻害ＬＴＩＡの測定方法としては、被検試料中の被検物質の濃度に応じて抗原が固定化されたラテックス粒子の凝集度が減少するラテックス競合法を使用することができ、生じた凝集の程度を光学的あるいは電気化学的に観察することにより被検物質を測定できる。光学的に観察する方法としては、散乱光強度、吸光度、又は透過光強度を光学機器で測定する方法が挙げられる。
（被検試料・被検物質）
本発明の非特異的反応回避化合物を用いたラテックス凝集阻害測定法が測定対象とする被検試料は、血清、血漿などの血液試料である。被検試料中の被検物質（検出対象）としては、ペプチド抗原、ハプテンといった低分子抗原が挙げられ、例えば、テイコプラニン、アルベカシン、バンコマイシンのようなペプチド系抗生物質、オフロキサシンのような合成抗菌剤、卵白や豆類由来のアレルゲンなど、競合免疫測定法に好適な被検物質が挙げられる。これらのなかでもテイコプラニンが好適である。
（抗体）
本発明に用いる抗体は、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよい。本発明の抗体としては、抗体分子全体のほかに抗原抗体反応活性を有する抗体の機能性断片を使用することも可能であり、一般的な動物（マウス、ヤギ、ヒツジなど）への免疫工程を経て得られたもののほか、遺伝子組み換え技術を使用して得られるものやキメラ抗体を用いることも可能である。抗体の機能性断片としては抗原抗体反応活性を有する断片であるＦ（ａｂ'）2、Ｆａｂ'などが挙げられる。これらの抗体の機能性断片は前記のようにして得られた抗体をタンパク質分解酵素（例えば、ペプシンやパパインなど）で処理することにより製造できる。また、これらの抗体は、ラテックス粒子に固定化されていてもよいし、固定化されていなくてもよい。
（ラテックス粒子）
本発明に用いるラテックス粒子としては、例えば、ポリスチレン、スチレン－スチレンスルホン酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アクリル酸重合体、アクリロニトリルブタジエンスチレン共重合体、塩化ビニル－アクリル酸エステル共重合体、ポリ酢酸ビニルアクリレートなどが挙げられる。ラテックス粒子の平均粒径は、被検物質の被検試料中での濃度あるいは測定機器の検出感度などを考慮し、０．１μｍ～０．４μｍのものが適宜選択される。
（抗原を固定化したラテックス粒子）
本発明に用いる抗原を固定化したラテックス粒子における抗原の固定化方法は、固定化しようとする抗原の特性に応じて物理吸着（疎水結合）法、化学結合法のいずれかを適宜選択することができる。物理吸着（疎水結合）法においては、ポリハプテンを形成させて吸着させる方法、化学結合法においてはマレイミド基などの結合性の官能基を抗原に導入したり、抗原が糖を有する場合にはこれを利用してラテックス粒子表面の結合性の官能基に結合させ固定化することができる。
（凝集阻害ＬＴＩＡ用試薬）
本発明の非特異的反応回避化合物を含有する凝集阻害ＬＴＩＡ用試薬は、通常使用される以下の形態のいずれか一以上で提供することができるが、これに限定されない。
（１）濃度換算用標準物質（キャリブレータなどの名称で呼ばれる場合がある）
（２）被検物質に対する抗体を含む溶液（抗体液、第一試液などの名称で呼ばれる場合がある）
（３）抗原が固定化されたラテックス粒子溶液（ラテックス試液、第二試液などの名称で呼ばれる場合がある）
（４）濃度換算用標準物質を溶解または希釈するための溶液（キャリブレータ希釈液などの名称で呼ばれる場合がある）
このうち、（１）濃度換算用標準物質に、本発明の非特異的反応回避化合物を含有させる場合には、本発明の非特異的反応回避化合物を含有させたのち、これを溶液のまま提供しても、あるいは凍結乾燥などの手段により固形化して提供してもよい。また、本発明の非特異的反応回避化合物を含有しない状態で提供し、使用時に本発明の非特異的反応回避化合物を含有する緩衝液等で復元あるいは希釈して使用できるように提供してもよい。前記本発明の非特異的反応回避化合物を含有する緩衝液等は、濃度換算用標準物質（キャリブレータ）希釈液、検体希釈液等の名称で提供される場合もあり、前記（４）の形態に相当する。
（２）被検物質に対する抗体を含む溶液あるいは（３）抗原が固定化されたラテックス粒子溶液に、本発明の非特異的反応回避化合物を含有させる場合には、本発明の非特異的反応回避化合物を含有させた溶液として提供することができる。
上記（１）～（４）は、凝集阻害ＬＴＩＡを実施する際に、一連で使用されるものであれば、それぞれが独立して提供されても、キットなどのように一括提供されても構わない。
＜比較例１＞　濃度換算用標準物質を、ヒト血清成分を全く含まない緩衝液で希釈した場合の検量線と、被検物質を含まないヒト血清で希釈した場合の検量線の比較
１．試薬
（１）テイコプラニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ社製）
（２）テイコプラニン非投与ヒトから得た血清（１００名のプール血清。以下、ベース血清という）
（３）濃度換算用標準物質希釈液（以下、標準物質希釈液という）：５％ＢＳＡ－ＰＢＳ（ｐＨ７．２）、０．００２％ オフロキサシン
ＰＢＳ錠剤（ＤＵＬＢＥＣＣＯ’Ｓ ＰＢＳ ＴＡＢＬＥＴＳ（－）（ＤＳファーマバイオメディカル社製））１錠、ＢＳＡ（Ｐｒｏｂｕｍｉｎ（商標） Ｒｅａｇｅｎｔ Ｇｒａｄｅ （ｋ）（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製））５ｇおよびオフロキサシン２ｍｇを水で１００ｍＬにメスアップし、標準物質希釈液を調製した。
なお、ＰＢＳ錠剤を１００ｍＬの溶液とした場合の組成は以下である。
８００ｍｇＮａＣｌ、２０ｍｇＫＣｌ、１１５ｍｇリン酸一水素ナトリウム（無水）、リン酸二水素カリウム（無水）
（４）抗テイコプラニン抗体液（２．８ｍｇ／ｍＬ抗テイコプラニンヒツジポリクローナル抗体及び０．５％ＢＳＡ含有。ｐＨ７．０。以下、抗体液という）
（５）テイコプラニン感作ラテックス試液（ｐＨ７．２．以下、ラテックス試液という）
２．方法
テイコプラニンを標準物質希釈液で０、５、１０、２５、５０、１００μｇ／ｍＬになるように希釈し、キャリブレータとした。また、１１０μｇ／ｍＬとなるようテイコプラニンを添加したベース血清を、テイコプラニン非添加のベース血清または標準物質希釈液で１０段階（０、１１、２２、３３、４４、５５、６６、７７、８８、９９、１１０μｇ／ｍＬ）に希釈し、それぞれ模擬検体溶液１、模擬検体溶液２とした。２．４μＬのキャリブレータ、模擬検体溶液１あるいは模擬検体溶液２と、１８０μＬの抗テイコプラニン抗体液を混合し、３７℃、５分混和した。続いて、６０μＬのラテックス試液を混合し、３７℃、１分後（吸光度Ｉ）、１分２０秒後（吸光度II）、３分後（吸光度III）、３分２０秒後（吸光度IV）に、それぞれ７００ｎｍの吸光度を測定した。（吸光度IIと吸光度Ｉの平均値）と（吸光度IVと吸光度IIIの平均値）の差を求め、吸光度変化量（以下、ｄａｂｓという）とした。
３．結果
結果を図１に示す。テイコプラニン非添加のベース血清で希釈した模擬検体溶液１（▲）では、ベース血清それ自体（テイコプラニン濃度０μｇ／ｍＬ）のｄａｂｓが、テイコプラニン濃度０μｇ／ｍＬのキャリブレータ（標準物質希釈液それ自体）のｄａｂｓよりも低く、また１１～１１０μｇ／ｍＬの濃度範囲でのキャリブレータ（×）および模擬検体溶液２（○）のｄａｂｓと比較して、いずれも低いｄａｂｓとなり、何らかの血清成分による非特異的反応が疑われた。
＜実施例１＞　非特異的反応回避化合物の探索検討
１．試薬
（１）テイコプラニン非投与ヒトから得た血清（ベース血清）
（２）抗テイコプラニン抗体液（抗体液）
（３）テイコプラニン感作ラテックス試液（ラテックス試液）
以上（１）～（３）は比較例１と同様のものを使用した。
（４）１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳ（ｐＨ７．０）
ＰＢＳ錠剤１錠とＢＳＡ５ｇを水で５０ｍｌにメスアップし、１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳとした。
（５）探索した化合物
表１に示した。
（ａ）ブロッキングＮ１０１、Ｎ１０２（ともに日油社製）。合成ポリマーを主成分とする免疫学的測定用ブロッキング試薬である。
（ｂ）エパン７５０（ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重合体。第一工業製薬社製）
　（１）ポリオキシエチレン含量５０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ２０００
　（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（２３ｘ２）－３４
（ｃ）プルロニックＬ３４（ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重合体。ＡＤＥＫＡ社製）
　（１）ポリオキシエチレン含量４０％、ポリオキシプロピレンの分子量およそ８７０
　（２）ＥＯ数－ＰＯ数：（７ｘ２）－１５
（ｄ）プルロニックＦ６８（ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重合体。ＡＤＥＫＡ社製）
（ｅ）ノイゲンＤＳ６０１（ＰＯＥ脂肪酸エステル。第一工業製薬社製）
（ｆ）ニッコールＢＣ４０ＴＸ（ＰＯＥアルキルエーテル。日光ケミカルズ社製）
（ｇ）ニッコールＢＯ－１０ＴＸ（ＰＯＥアルキルエーテル。日光ケミカルズ社製）
（ｈ）ニッコールＢＴ－７（ＰＯＥアルキルエーテル。日光ケミカルズ社製）
（ｉ）ニッコールＢＴ－９（ＰＯＥアルキルエーテル。日光ケミカルズ社製）
（ｊ）ＰＥＧ６０００（Ｈ（ＯＣＨ２ＣＨ２）ｎＯＨ 平均分子量：７３００～９３００、和光純薬社製）
（ｋ）マンニトール（キシダ化学社製）
（ｌ）ポリブレン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ社製）
（ｍ）ヘパリンナトリウム（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ社製）
２．方法
２．４μＬのベース血清あるいは１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳと、表１中に記載の終濃度の２倍濃度に調製した探索した化合物を容量比１：１で混合した溶液（試験溶液１）を、１８０μＬの抗体液と混合し、３７℃、５分混和した。続いて、６０μＬのラテックス試液を混合し、３７℃、１分後（吸光度Ｉ）、１分２０秒後（吸光度II）、３分後（吸光度III）、３分２０秒後（吸光度IV）にそれぞれ７００ｎｍの吸光度を測定した。（吸光度IIと吸光度Ｉの平均値）と（吸光度IVと吸光度IIIの平均値）の差を求め、ｄａｂｓとした。下記式（Ａ）で差がマイナスとなる場合を効果ありと判定した。
（ベース血清のｄａｂｓ）－（試験溶液１のｄａｂｓ）・・・式（Ａ）　
なお、非特異的反応回避化合物の代わりに精製水を添加した物をコントロールとした。
３．結果
プルロニックＦ６８、ノイゲンＤＳ６０１、ニッコールＢＣ４０ＴＸ、ニッコールＢＯ－１０ＴＸ、ニッコールＢＴ－７、ニッコールＢＴ－９で効果ありと判定し、非特異的反応回避化合物とした。またベース血清との差から、エパン７５０とポリブレンも非特異的反応回避化合物候補とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 注：表１に記載の終濃度中、「１／２」の記載は、市販品原液を１とした場合の希釈度（２倍希釈）を表している。　
＜実施例２＞　非特異的反応回避化合物（候補）の有効濃度範囲の検討－１
実施例１の結果から絞込んだ非特異的反応回避化合物候補について、有効な濃度範囲を検討した。
１．試薬
（１）テイコプラニン非投与ヒトから得た血清（ベース血清）
（２）抗テイコプラニン抗体液（抗体液）
（３）テイコプラニン感作ラテックス試液（ラテックス試液）
以上（１）～（３）は比較例１と同様のものを使用した。
（４）１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳ（ｐＨ７．０）
（５）非特異的反応回避化合物（候補）
表２に示した。
（ａ）エパン４８５（ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重合体。第一工業製薬社製）
（ｂ）プルロニックＦ６８
（ｃ）プルロニックＦ８８
（ｄ）ノイゲンＤＳ６０１
（ｅ）ニッコールＢＴ－７
（ｆ）ニッコールＢＴ－９
（ｇ）ポリブレン
２．方法
２．４μＬのベース血清あるいは１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳと、表２中に記載の終濃度の２倍濃度に調製した添加化合物を１：１で混合した溶液（試験溶液２）を１８０μＬの抗体液と混合し、３７℃、５分混和した。続いて、６０μＬのラテックス試液を混合し、３７℃、１分後（吸光度Ｉ）、１分２０秒後（吸光度II）、３分後（吸光度III）、３分２０秒後（吸光度IV）にそれぞれ７００ｎｍの吸光度を測定した。（吸光度IIと吸光度Ｉの平均値）と（吸光度IVと吸光度IIIの平均値）の差を求め、ｄａｂｓとした。下記式（Ｂ）で比が９５％～１０５％となる場合を効果ありと判定した。
（ベースの血清のｄａｂｓ）／（試験溶液２のｄａｂｓ）・・・式（Ｂ）
３．結果
プルロニックＦ６８、プルロニックＦ８８、ノイゲンＤＳ６０１、ニッコールＢＴ－７、ニッコールＢＴ－９、ポリブレンで効果ありと判定した。また、エパン４８５についても、終濃度を上げることで効果があることが推測された。以上より、これらを非特異的反応回避化合物と判断した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 注：空欄は試験を実施しなかった。
＜実施例３＞　非特異的反応回避化合物の濃度範囲の検討－２
１．試薬
（１）テイコプラニン非投与ヒトから得た血清（ベース血清）
（２）抗テイコプラニン抗体液（抗体液）
（３）テイコプラニン感作ラテックス試液（ラテックス試液）
以上（１）～（３）は比較例１、２と同様のものを使用した。
（４）１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳ（ｐＨ７．０）
（５）非特異的反応回避化合物
　（ａ）プルロニックＦ８８
　（ｂ）ニッコールＢＴ－９
２．方法
２．４μＬのベース血清ならびに１０％ＢＳＡ－２×ＰＢＳと、表３中に記載の終濃度の２倍濃度に調製した添加化合物を１：１で混合した溶液（試験溶液３）を１８０μＬの抗体液と混合し、３７℃、５分混和した。続いて、６０μＬのラテックス試液を混合し、３７℃、１分後（吸光度Ｉ）、１分２０秒後（吸光度II）、３分後（吸光度III）、３分２０秒後（吸光度IV）にそれぞれ７００ｎｍの吸光度を測定した。（吸光度IIと吸光度Ｉの平均値）と（吸光度IVと吸光度IIIの平均値）の差を求め、ｄａｂｓとした。
下記式（Ｃ）で比が最も小さくなる濃度を単回帰分析から算出した。
（ベース血清のｄａｂｓ）／（試験溶液３のｄａｂｓ）・・・式（Ｃ）
３．結果
プルロニックＦ８８は、１．７５％で、ベース血清との差が最も小さくなった。ニッコールＢＴ－９では、２．５％でベース血清との差が最も小さくなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
＜参考例１＞　バッファー組成の検討
１．試薬
（１）テイコプラニン非投与ヒトから得た血清（ベース血清）
（２）抗テイコプラニン抗体液（抗体液）
（３）テイコプラニン感作ラテックス試液（ラテックス試液）
以上（１）～（３）は比較例１、２と同様のものを使用した。
（４）非特異的反応回避化合物
　プルロニックＦ８８
２．方法
以下の６通りの試験溶液４を調製した。
・ＢＳＡ０％、ＰＢ－
　１．７５ｇの塩化ナトリウム、０．７ｇのプルロニックＦ８８、２ｍｇのオフロキサシンを秤量し１００ｍＬにメスアップした。
・ＢＳＡ５％、ＰＢ－
　１．７５ｇの塩化ナトリウム、０．７ｇのプルロニックＦ８８、５ｇのＢＳＡ、２ｍｇのオフロキサシンを秤量し１００ｍＬにメスアップした。
・ＢＳＡ１０％、ＰＢ－
　１．７５ｇの塩化ナトリウム、０．７ｇのプルロニックＦ８８、１０ｇのＢＳＡ、２ｍｇのオフロキサシンを秤量し１００ｍＬにメスアップした。
・ＢＳＡ０％、ＰＢ＋
　ＰＢＳ錠剤１錠、０．７ｇのプルロニックＦ８８、２ｍｇのオフロキサシンを秤量し１００ｍＬにメスアップした。
・ＢＳＡ５％、ＰＢ＋
　ＰＢＳ錠剤１錠、０．７ｇのプルロニックＦ８８、５ｇのＢＳＡ、２ｍｇのオフロキサシンを秤量し１００ｍＬにメスアップした。
・ＢＳＡ１０％、ＰＢ＋
　ＰＢＳ錠剤１錠、０．７ｇのプルロニックＦ８８、１０ｇのＢＳＡ、２ｍｇのオフロキサシンを秤量し１００ｍＬにメスアップした。
２．４μＬのベース血清ならびに上記６種類の試験溶液４を１８０μＬの抗体液と混合し、３７℃、５分混和した。続いて、６０μＬのラテックス試液を混合し、３７℃１分後（吸光度Ｉ）、１分２０秒後（吸光度II）、３分後（吸光度III）、３分２０秒後（吸光度IV）にそれぞれ７００ｎｍの吸光度を測定した（吸光度Ｉ、吸光度II、吸光度III、吸光度IV）。（吸光度IIと吸光度Iの平均値）と（吸光度IVと吸光度IIIの平均値）の差を求め、ｄａｂｓとした。下記式（Ｄ）で比を計算し、バッファー組成の効果を確認した。
　（ベース血清のｄａｂｓ）／（試験溶液４のｄａｂｓ）・・・式（Ｄ）
３．結果
結果を図２に示す。ＰＢＳは、本発明の非特異的反応回避化合物の効果を向上させることが確認された。一方、ＢＳＡは非特異的反応回避化合物の効果には影響を与えなかった。
以上、比較例１、実施例１～３、参考例１の結果より、ＰＯＥ－ＰＯＰブロック共重体、ＰＯＥアルキルエーテル、ＰＯＥ脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物に、凝集阻害ＬＴＩＡにおける生じるべき凝集が生じないという非特異的反応を回避できることが確認された。
また、本発明の非特異的反応回避化合物は、濃度換算用標準物質（キャリブレータ）に添加することでその効果を発揮するという従来にない特徴を有していることが確認された。
＜実施例４＞　濃度換算用標準物質を、本発明の非特異的反応回避化合物を含む緩衝液で希釈した場合の検量線と、被検物質を含まないヒト血清で希釈した場合の検量線の比較
１．試薬
（１）テイコプラニン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ社製）
（２）テイコプラニン非投与ヒトから得た血清（以下、ベース血清という）
（３）濃度換算用標準物質希釈液（以下、標準物質希釈液という）：５％ＢＳＡ－ＰＢＳ（ｐＨ７．２）、０．００２％ オフロキサシン、０．７％プルロニックＦ８８
（４）抗テイコプラニン抗体液（抗体液）
（５）テイコプラニン感作ラテックス試液（ラテックス試液）
２．方法
テイコプラニンを標準物質希釈液で０、５、１０、２５、５０、１００μｇ／ｍＬになるように希釈し、キャリブレータとした。また、１１０μｇ／ｍＬとなるようテイコプラニンを添加したベース血清を、テイコプラニン非添加のベース血清で１０段階（０、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００μｇ／ｍＬ）に希釈し、模擬検体溶液３とした。２．４μＬのキャリブレータ、模擬検体溶液３と、１８０μＬの抗テイコプラニン抗体液を混合し、３７℃、５分混和した。続いて、６０μＬのラテックス試液を混合し、３７℃、１分後（吸光度Ｉ）、１分２０秒後（吸光度II）、３分後（吸光度III）、３分２０秒後（吸光度IV）に、それぞれ７００ｎｍの吸光度を測定した。（吸光度IIと吸光度Ｉの平均値）と（吸光度IVと吸光度IIIの平均値）の差を求め、ｄａｂｓとした。
３．結果
結果を図３に示す。テイコプラニン非添加のベース血清で希釈した模擬検体溶液３（▲）とキャリブレータ(×)のｄａｂｓはテイコプラニン濃度０μｇ～１１０μｇ／ｍＬの濃度範囲すべてで一致した。以上により、本発明の効果が確認された。
本発明により、凝集阻害ＬＴＩＡにおいて、生じるべき凝集が生じないという非特異的反応を回避できる方法が提供される。本発明により、凝集阻害ＬＴＩＡによる血液試料中の被検物質の正確な測定が可能になる。

Claims (9)

  1. ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物の存在下にラテックス凝集阻害測定法を行うことを特徴とする、ラテックス凝集阻害法における非特異的反応を回避する方法。
  2. 非特異的反応が、被検試料中に被検物質が存在しないときに生じるべき凝集が生じないという非特異的反応である、請求項１に記載の方法。
  3. ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体が、式（Ｉ）で表されるものである、請求項１または２に記載の方法。
    ＨＯ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）a－（Ｃ3Ｈ6Ｏ）b－（Ｃ2Ｈ4Ｏ）cＨ　（Ｉ）
    （式中、ａ，ｂ，ｃは任意の整数を表し、ａ＋ｃは４～２００単位の平均重合度の酸化エチレンとなるよう決定され、かつｂは５～１００単位の平均重合度の酸化プロピレンとなるよう決定される）
  4. ポリオキシエチレンアルキルエーテルが、式（II）で表されるものである、請求項１または２に記載の方法。
    　Ｒ1Ｏ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）nＨ　（II）
    （式中、Ｒ1は炭素数８～２０のアルキル基（当該アルキル基は、第１級、第２級のいずれであってもよく、アルキル基中に二重結合を有していてもよい）を表し、ｎは７～４０の任意の整数を表す。）
  5. ポリオキシエチレン脂肪酸エステルが、式（III）で表されるものである、請求項１または２に記載の方法。
    Ｒ2ＣＯＯ（Ｃ2Ｈ4Ｏ）nＲ3　（III）
    （式中、Ｒ2は炭素数１６～１８のアルキル基（当該アルキル基は、二重結合を有していてもよい）を表し、ｎは１７０～１８０の任意の整数を表し、Ｒ3は水素原子を表すかまたはＲ2ＣＯＯ基を表す。）
  6. 多価第四級アミン高分子化合物が、ポリブレン（ＣＡＳ番号：ＣＢ１３２７３１７）である、請求項１または２に記載の方法。
  7. ラテックス凝集阻害測定法用の試薬であって、ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物を以下（１）～（４）のいずれか一つ以上に含有することを特徴とする試薬。
    （１）濃度換算用標準物質
    （２）抗被検物質抗体を含む溶液
    （３）抗原が固定化されたラテックス粒子を含む溶液
    （４）濃度換算用標準物質を溶解または希釈するための溶液
  8. ヒト血液試料中のテイコプラニン測定に用いるものである、請求項７に記載の試薬。
  9. ポリオキシエチレン－ポリオキシプロピレンブロック共重体、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、多価第四級アミン高分子化合物からなる群より選ばれる一種以上の化合物を有効成分とするラテックス凝集阻害測定法用非特異的反応回避剤。
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