RU2195492C2 - Способ получения пектолитического ферментного препарата - Google Patents

Способ получения пектолитического ферментного препарата

Info

Publication number
RU2195492C2
RU2195492C2 RU2000122994A RU2000122994A RU2195492C2 RU 2195492 C2 RU2195492 C2 RU 2195492C2 RU 2000122994 A RU2000122994 A RU 2000122994A RU 2000122994 A RU2000122994 A RU 2000122994A RU 2195492 C2 RU2195492 C2 RU 2195492C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
enzyme preparation
preparing
enzymes
enzyme
purification
Prior art date
Application number
RU2000122994A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2000122994A (ru
Inventor
А.Г. Донцов
З.В. Хозяинова
А.А. Шубаков
Ю.С. Оводов
Original Assignee
Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения РАН filed Critical Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения РАН
Priority to RU2000122994A priority Critical patent/RU2195492C2/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2195492C2 publication Critical patent/RU2195492C2/ru
Publication of RU2000122994A publication Critical patent/RU2000122994A/ru

Links

Images

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для получения с высоким выходом очищенного пектинолитического ферментного препарата. Изобретение позволяет получить с выходом 57-58% пектинолитический ферментный препарат, свободный от пектиновых веществ и углеводов, приводит к увеличению удельной полигалактуроназной активности целевого продукта в 6,0-6,2 раза по сравнению с исходной. Для удаления неактивных белков пептидов, пектиновых веществ, углеводов и солей культуральные жидкости от грибковых продуцентов пектиназ, полученные с использованием свекловичного пектина в качестве субстрата, обрабатывают при пониженной температуре микропористым активированным углем, анионо- и катионообменными смолами. Проводят выделение фермента из фильтрата с помощью адсорбции при обработке гелем фосфата кальция с последующей экстракцией геля фосфатным буфером. Экстракт стабилизируют подкислением до рН ниже 4,5, обессоливают и концентрируют путем диа- и ультрафильтрации и лиофильно высушивают. 1 з.п.ф-лы, 2 табл.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, гидролизной промышленности и виноделия и предназначено для получения с высоким выходом пектолитического ферментного препарата, пригодного для исследования структуры растительных пектинов методом ферментативного гидролиза, для переработки и утилизации растительного сырья с целью получения олиго- и моносахаридов, для удаления осадка и осветления лучших сортов вин.
Известен способ очистки ферментов с использованием активированного древесного угля (Остерман Л.А. Хроматография белков и нуклеиновых кислот. М.: Наука, 1985. - С.224). Недостатком данного способа является возможность необратимой адсорбции ферментов, приводящей к уменьшению выхода целевого продукта.
Известен способ очистки ферментов ионообменниками (Скоупс Р. Методы очистки белков. - М.: Мир, 1985. - С.101), недостатком которого является возможность адсорбции ферментов, обусловленная их амфотерными свойствами, что снижает избирательность очистки и приводит к уменьшению выхода целевого продукта.
Известен способ адсорбционного выделения ферментов с использованием геля фосфата кальция (Диксон М., Уэбб Э. Ферменты. - М.: Мир, 1982. - T.1. - С. 61) (прототип), недостатком которого является низкая степень извлечения фермента и растворимость геля в условиях, способствующих максимальной рН-стабильности пектиназ (рН 3,0 - 4,5), что приводит к существенному увеличению расхода адсорбента.
Ни один из приведенных способов не позволяет провести полную очистку и выделение пектиназы с высоким выходом. Способы, близкие к предлагаемому по существу, последовательности проведения операций, по выходу и чистоте целевого продукта, не известны.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка нового эффективного способа получения пектолитического ферментного препарата, пригодного для исследования структуры пектиновых полисахаридов из растительного сырья, для использования в гидролизной промышленности и виноделии.
Технический результат состоит в получении ферментного препарата с более высокой полигалактуроназной (ПгА) активностью и степенью очистки от пектиновых веществ при достаточно высоком выходе целевого продукта. Отсутствие пектиновых веществ и углеводов делает возможным его использование для ферментативного гидролиза растительных пектинов в целях изучения их структуры, получения олиго- и моносахаридов, а также в виноделии для осветления лучших сортов вин и удаления винного камня, в состав которого входят пектиновые вещества виноградного сока.
Технический результат достигается тем, что культуральные жидкости или растворы неочищенных ферментных препаратов обрабатывают микропористым активированным углем преимущественно в слабокислой среде при концентрации угля не более 6 - 7 г/л, после чего фильтрат подвергают обработке анионо- и катионообменными смолами преимущественно при рН 3,5 - 6,5, при этом концентрация смол составляет 70 - 80 г/л. Ферменты выделяют путем адсорбции гелем фосфата кальция при рН около 5,5 - 6,5 с последующей десорбцией ферментов фосфатным буфером при рН приблизительно 7,0. Раствор ферментов стабилизируют подкислением до рН ниже 4,5, обессоливают и концентрируют с помощью диа- и ультрафильтрации и лиофильно высушивают. Все стадии обработки проводят при пониженной температуре.
В предлагаемом способе для увеличения выхода целевого продукта процесс очистки проводят в условиях, обеспечивающих ее максимальную избирательность в отношении низкомолекулярных и олигомерных примесей. Это достигается использованием микропористого активированного угля с преимущественным развитием микропор в слабокислой среде, что препятствует необратимой адсорбции ферментов. Избирательность ионообменной очистки достигается последовательной обработкой анионообменниками в слабокислой среде и катионообменниками при рН среды, близком к нейтральному. Выделение ферментов с использованием геля фосфата кальция проводят в среде, близкой к нейтральной, что обеспечивает избирательную адсорбцию ферментов со степенью извлечения 92 - 97% при низком расходе адсорбента.
Для достижения высокого выхода целевого продукта процесс очистки и выделения ферментов реализуют в условиях, обеспечивающих их максимально возможную рН-стабильность, которая наблюдается в слабокислой среде при пониженной температуре. Это достигается тем, что наиболее длительные стадии диа- и ультрафильтрации, а также обработки активированным углем и анионообменником проводятся при рН не выше 4,5. Снижение рН-стабильности при рН 5,5 - 7,0 в случае кратковременных обработок катионообменником и гелем фосфата кальция компенсируется стабилизацией раствора ферментов подкислением до рН ниже 4,5 сразу после их десорбции фосфатным буфером.
Предлагаемая последовательность обработок является оптимальной, т.к. учитывает отрицательное влияние ионной силы раствора на эффективность адсорбционных и ионообменных процессов и приводит лишь к незначительному ее увеличению в ходе обработок, предшествующих диафильтрации.
В примерах 1-4 приведены экспериментальные данные, подтверждающие эффективность использования каждого этапа предлагаемого способа для очистки и выделения пектиназ в сравнении с существующими аналогами. В примере 5 приведены экспериментальные данные по использованию способа для выделения и очистки пектиназ.
Способ опробован на примере культуральных жидкостей от грибковых продуцентов пектиназ: Aspergillus foetidus и Aspergillus niger, а также на ферментном препарате Пектофоетидин ГЗх, выпускаемом промышленностью.
Пример 1. По 1000 мл культуральной жидкости от продуцента пектиназ A. Foetidus с содержанием сухих веществ около 10 г/л обрабатывают микропористым активированным углем СКТ, а также углями БАУ-А и ОУ-А с высоким развитием мезопор в слабокислой среде, концентрации угля в суспензии 7 г/л и температуре 4oС. Степень очистки определяют по снижению цветности раствора, которую оценивают по его оптической плотности при длине волны 320 нм. После фильтрования получают частично очищенные ферментные препараты со следующими характеристиками: степень очистки для угля СКТ - 61,0%, БАУ-А - 78,5%, ОУ-А - 93,1%; потери полигалактуроназной активности (ПгА) для СКТ - 1,6%, БАУ-А - 24,5%, ОУ-А - 81,3%; удельная ПгА (ед/мг белка) составляет для необработанного раствора 80,3, после обработки углем СКТ - 86,4, БАУ-А - 92,0, ОУ-А - 22,1. Использование микропористого угля в указанных условиях позволяет провести более избирательную обработку ферментного препарата со степенью очистки 61% и выходом фермента - 98,4%.
Пример 2. 1000 мл культуральной жидкости по примеру 1 с удельной ПгА 80,3 ед/мг белка обрабатывают анионообменной смолой, например, Амберлит CG-400, при рН 3,5 - 4,0, концентрации смолы в суспензии 80 г/л и температуре 4oС. Полученный фильтрат имеет следующие характеристики: степень очистки - 66,0 - 67,5%, потери активности - 8,0 - 9,1%, удельная ПгА - 112,4 - 120,6 ед/мг белка. Аналогичная обработка при рН 6.0 позволяет получить ферментный препарат со степенью очистки 78,3% при снижении ПгА на 17,3%, с удельной ПгА - 130,7 ед/мг белка.
Пример 3. 1000 мл культуральной жидкости по примеру 1 с удельной ПгА 80,3 ед/мг белка обрабатывают катионообменной смолой, например, Амберлит CG-120, при рН 6 концентрации смолы в суспензии 80,0 г/л и температуре 4oС. Полученный фильтрат имеет следующие характеристики: степень очистки - 35,5%, потери активности - 6,2%, удельная ПгА - 101,1 ед/мг белка. Аналогичная обработка при рН 4.0 позволяет получить препарат со степенью очистки 50,0% при снижении ПгА на 92,0%, с удельной ПгА 20,7 ед/мг белка.
Пример 4. (по прототипу) 1000 мл культуральной жидкости по примеру 1 с удельной ПгА 80,3 ед/мг белка обрабатывают гелем фосфата кальция при рН 6, концентрации геля в суспензии 60 г/л по сухому веществу и температуре 4oС. После фильтрования и промывки геля на фильтре дистиллированной водой с рН 6 проводят десорбцию ферментов 0,2 М фосфатным буфером с рН 7 двумя порциями по 200 мл, после чего объединенный раствор ферментов стабилизируют подкисленном до рН ниже 4,5. Получают концентрированный раствор ферментов со следующими характеристиками: степень извлечения фермента - 96,7%, степень очистки - 60,0%, удельная ПгА - 371,6 ед/мг белка. Аналогичная обработка при рН 5 и 7 позволяет достичь степени извлечения фермента 81 и 83%, степени очистки - 55 и 60% и удельной ПгА растворов 329,1 и 242,3 ед/мг белка соответственно.
Пример 5. 1000 мл культуральной жидкости по примеру 1 при 4oС обрабатывают микропористым активированным углем аналогично примеру 1, анионообменной смолой Амберлит CG-400 при рН 4 и катионообменной смолой Амберлит CG-120 при рН 6, используя по 80 г смолы. Регулируют рН раствора 0,1 М гидроксидом натрия. Из частично очищенного раствора выделяют ферменты гелем фосфата кальция аналогично примеру 4. Стабилизированный раствор ферментов обессоливают диафильтрацией при непрерывном добавлении 2 л 0,01 - 0,20 М ацетатного буфера с рН ниже 4,5 на половолоконном модуле с пределом пропускания около 15 кДа и концентрируют до 100 мл на том же модуле в режиме ультрафильтрации. Очищенный концентрированный раствор ферментов высушивают лиофильно. Результаты приведены в таблице 1. Выход целевого продукта по полигалактуроназной активности составляет 57,2%, по белку - 9,3% от их исходного содержания в культуральной жидкости.
Предлагаемое изобретение позволяет получить ферментный препарат, превосходящий по чистоте и удельной полигалактуроназной активности известные аналоги. В таблице 2 приведена характеристика целевого продукта в сравнении с известными образцами пектиназы.

Claims (2)

1. Способ получения пектолитического ферментного препарата, включающий обработку культуральной жидкости или раствора неочищенного ферментного препарата микропористым активированным углем в слабокислой среде, анионообменной смолой при рН 3,5-4,0 и катионообменной смолой при рН 6, адсорбционное выделение ферментов гелем фосфата кальция, десорбцию ферментов 0,2-0,4 М фосфатным буфером, стабилизацию полученного экстракта подкислением до рН ниже 4,5, обессоливание и концентрирование диа- и ультрафильтрацией и лиофильную сушку.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что обработку культуральной жидкости микропористым активированным углем проводят при концентрации угля не более 6-7 г/л.
RU2000122994A 2000-09-04 2000-09-04 Способ получения пектолитического ферментного препарата RU2195492C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000122994A RU2195492C2 (ru) 2000-09-04 2000-09-04 Способ получения пектолитического ферментного препарата

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000122994A RU2195492C2 (ru) 2000-09-04 2000-09-04 Способ получения пектолитического ферментного препарата

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2195492C2 true RU2195492C2 (ru) 2002-12-27
RU2000122994A RU2000122994A (ru) 2003-01-10

Family

ID=20239735

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2000122994A RU2195492C2 (ru) 2000-09-04 2000-09-04 Способ получения пектолитического ферментного препарата

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2195492C2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2607376C2 (ru) * 2010-07-22 2017-01-10 Байомарин Фармасьютикал Инк. Производство активной высокофосфорилированной n-ацетилгалактозамин-6-сульфатазы человека и ее применение

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ДИКСОН М., УЭББ Э. Ферменты. - М.: Мир, 1982, т.1, с. 61. *
КАЛУНЯНЦ К.А., ГОЛГЕР Л.И. Микробные ферментные препараты. - М.: Пищевая промышленность, 1979, с. 87-89. ШЕРЧИК Е.В., и др. Зависимость состава пектолитических ферментных комплексов бактерий рода ERWINIA от химического состава среды культивирования. Прикладная биохимия и микробиология. - 1992, т. 28, вып.1, с. 87-93. РУДОМЕТОВА Н.В. и др. Сорбция ферментов на ионитах различной структуры. Прикладная биохимия и микробиология. - 1992. т.28, вып.5, с. 684-697. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2607376C2 (ru) * 2010-07-22 2017-01-10 Байомарин Фармасьютикал Инк. Производство активной высокофосфорилированной n-ацетилгалактозамин-6-сульфатазы человека и ее применение

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5968365A (en) Preparation of inulin products
CN111164090A (zh) 用于从微生物发酵纯化中性母乳寡糖(hmo)的方法
US20230217981A1 (en) High Purity Protein Preparation from Plant Material and Products Thereof
AU733296B2 (en) Method of producing fructose syrup from agave plants
BRPI0414761B1 (pt) Método para produzir um produto de xarope invertido a partir de suco de cana-de-açúcar bruto
RU2195492C2 (ru) Способ получения пектолитического ферментного препарата
US4584399A (en) Purification of L-phenylalanine
US6710176B2 (en) Process for producing water-soluble polysaccharides, and method for clarifying water-soluble polysaccharide aqueous solutions
RU1838406C (ru) Способ получени биологически активных компонентов
FI125039B (fi) Sellobioosin puhdistusmenetelmä ja valmistusmenetelmä
CN105238841A (zh) 头孢菌素c吸附废液中dcpc的回收与转化方法
KR20230098181A (ko) 발효액으로부터 산성 모유 올리고당의 정제 방법
CN210367504U (zh) 一种ε-聚赖氨酸的提取装置
WO2011004129A1 (fr) Utilisation d'un coproduit issu d'un procede d'extraction du lysozyme a partir de blanc d'oeuf, pour l'obtention d'au moins une proteine basique de blanc d'oeuf
RU2230119C1 (ru) Способ получения дисахарида
CN113816933B (zh) 一种羟基红花黄色素a的制备方法
EP0059182B1 (en) A process for isolating aminoacylase enzyme from a mammal kidney extract
JPH0269492A (ja) シアル酸の製造方法
RU2225441C1 (ru) Способ получения препарата коллагеназы
SU1741737A1 (ru) Способ получени природного заменител сахара
RU2000122994A (ru) Комбинированный способ получения и очистки пектиназы
PL85201B1 (ru)
JPH047251B2 (ru)
CN116943430A (zh) 一种四步分离纯化甘油葡糖苷的方法
RU2140902C1 (ru) Способ очистки l-лизина от сопутствующих компонентов культуральной жидкости, элюатов и маточников