DE2342404C3 - 3-(5,7-Dimethyl-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decadienyI)-glutarimid sowie Verfahren zu dessen Herstellung - Google Patents
3-(5,7-Dimethyl-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decadienyI)-glutarimid sowie Verfahren zu dessen HerstellungInfo
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Description
Die Erfindung betrifft das antibiotisch wirkende in 3-(5,7-Dimethyl-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decadienyl)-glutarimid
sowie ein Verfahren zur Herstellung desselben. Dieses Antibiotikum wird vorläufig als »Antibiotikum
TS-S85« bezeichnet
Verschiedene Antibiotika und andere Naturstoffe r>
konnten bereits durch Kultivierung von Streptomyces-Stämmen hergestellt werden. Aus nachstehenden
Literaturstellen sind die Antibiotika Protomycin und Streptimidon bekannt: R. R. Frohardt.H. W. Dion,
Z. LJakubowski.A. Ryder, J. C. French und Q. R. B a r t ζ, J. Am. Chem. Soc, 81, 5500 (1959); P. W. R.
W ο ο, H. W. D i ο η und Q. R. B a r t ζ, ebenda, 83,3085
(1961); F. F. van Tamelen und V. Haarstad, ebenda, 82, 2974 (1960); Francis Johnson, N. A.
Starkovsky und William D. Gurowitz, ebenda, 4"> 87, 3492 (1965); R. Sugawara und A. Matsumae,
Journal of Antibiotics, 16A, 111 (1963).
Aufgabe der Erfindung war es, ein Antibiotikum, welches sich zur Unterdrückung bestimmter Virusarten
eignet, aufzufinden, sowie ein Verfahren zur Herstellung >o
dieses Antibiotikums zu schaffen.
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß durch die Bereitstellung von 3-(5,7-Dimethyl-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decadienyl)-glutarimid
gelöst, welches vorläufig als »Antibiotikum TS-885« bezeichnet wird. Dieses Anti- ·->■>
biotikum eignet sich ausgzeichnet gegen verschiedene Virusarten wie Poliovirus und Influenzavirus vom Typ
A. Dieses Antibiotikum wird durch Kultivierung von Streptomyces pruricolorescetis var. yamashitaensis
S-885 hergestellt. Dieser Mikroorganismus wurde am ho
Fermentation Research Institute of the Japanese Ministry for International Trade and Industry in Tokyo
unter der Nr. FERM-1546 hinterlegt. Ferner wurde dieser Mikroorganismus unter der Nr. ATCC Nr. 21 956
am American Type Culture Collection hinterlegt. tn
Die Kultivierung erfolgt in wäßrigem Nährmedium unter submersen aeroben Fermentationsbedingungen.
Die ursprüngliche Quelle des Organismus isi Streptomyces
pluricolorescens var. yamashitaensis und wurde in Watarigun, Miyagi Pref, Japan, gefunden. Im
folgenden werden die taxonomischen Kennzeichen dieses Stammes angegeben:
(A) Morphologie
Der Stamm entwickelt sich sowohl auf natürlichem als auch auf synthetischem Nährmedium wohl und bildet
ein vegetatives BasismyceL Das Luftmycel auf Glyzerinagar und auf Glucose-asparagin-agar bildet unregelmäßig
verzweigte Hauptachsen, geschlossene Spiralen aber keine Wirbel. Der Mikroorganismus bildet am
oberen Bereich des Luftmycels ellipsoide Sporen (0,4-0,6 χ 0,9-1,2 μ). Die Oberfläche der Sporen ist
bei Betrachtung unter dem Elektronenmikoskop glatt
(B) Kulturcharakteristika
Die Charakteristika der Streptomyces S-835-Bakterien werden unter Verwendung verschiedener Medien,
welche gewöhnlich zur Identifikation von Streptomyces-Stämmen dienen, festgestellt Die folgenden Ergebnisse
werden erhalten:
(1) Saccharose-Nitrat-Agarplatte ^Czapeks Lösung) (27° C).
Der Stamm wächst mit farbloser Wuchsform und bildet ein pulvriges Mycel mit einer grauen bis
gräulichbraunen Färbung und es wird kein lösliches Pigment gebildet
(2) Glyzerin-Nitrat-Agarplatte (27° C).
Der Stamm wächst mit einer gräulichbraunen Wuchsform mit bräunlichpurpurner rückwärtiger
Oberfläche. Es wird ein pulvriges Luftmycel mit Blaßorangefärbung gebildet sowie ein lösliches
Pigment mit einer blaß rötlichbraunen Färbung.
(3) GIucose-Nitrat-Agarplatte (27° C).
Der Stamm zeigt eine blaß gelblichorange Wuchsform mit einer leicht rötlichbraunen Färbung
auf der Rückseite. Das Luftmycel hat eine gräulichbraune Färbung und es wird ein lösliches
blaß gelblichbraunes Pigment gebildet
(4) Glucose-Asparagin-Agarplatte (27°C) (Krainskys Medium).
Der Stamm wächst mit blaß gelblichbrauner Färbung und mit einer blaß gelblichbraunen
Färbung auf der Rückseite und es bildet sich ein pulvriges Luftmycel mit bräunlichweißer Färbung.
Ferner wird ein blaß-gelbliches Pigment gebildet.
(5) Ca-Malat-Agarplatte(27°C).
Der Stamm wächst mit einer schwärzlich-braunen Wuchsform mit dunkelbrauner Färbung auf der
Rückseite bei 27° C unter Ausbildung eines pulvrigen Luftmycels, welches blaß-gelb oder
blaß-orange gefärbt ist. Ferner wird ein lösliches gräulich-orangenes Pigment gebildet.
(6) Stärke-Agarplatte(27°C).
Der Stamm zeigt eine leicht rötlich-gelbe Wuchsform mit rötlich-gelber Färbung auf der
rückwärtigen Fläche und mit einem pulvrigen Luftmycel mit bräunlich-weißer Färbung. Ein
lösliches orangegefärbtes Pigment wird erzeugt.
(7) Tyrosin-Agarplatte (27° C).
Der Stamm zeigt eine gräulich-braune Wuchsform mit blaß gräulich-orange gefärbter Rückseite
und mit einem blaß-orange gefärbtem Luftmycel. Ein lösliches blaß gelblich-braunes Pigment
wird gebildet.
(8) Glucose-Czapeks Lösung (27° C).
Der Stamm wächst in Form einer Zimthaut und erzeugt kein Luftmycel. Es bildet sich ein lösliches
bräunliches Pigment
(9) Cellulose-Agar(27°C). ■>
Der Stamm wächst schwach und bildet weder ein Luftmycel noch ein lösliches Pigment
(10) Schräges Meeragarmedium.
Der Stamm zeigt eine farblose bis gräulich-weiße Wuchsform mit blaß gelblich-brauner Färbung auf '
der Rückseite und erzeugt weder ein Luftmycel noch ein lösliches Pigment
(11) Pepton-Glucose-Agarplatte (37° C).
Der Stamm zeigt eine dunkel-orange gefärbte Wuchsform mit rötlich-gelb gefärbter Rückseite.
Er bildet ein schwaches gräulich-weißes Mycel und kein lösliches Pigment
(12) BIut-Agarplatte(37°C).
Der Stamm wächst mit gräulich-gelber bis gelber Wuchsform and erzeugt weder ein Luftmycel
noch ein lösliches Pigment
(13) Ei-Agar-Medium(37°C).
Der Stamm wächst schwach zu einer gelben Wuchsform und erzeugt weder ein Luftmyce!
noch ein lösliches Pigment
(14) Gelatine-Impfmedium (20°C).
Der Stamm wächst mit einer blaß-bräunlichen Wuchsform und erzeugt kein Luftmycel. Es wird
jedoch ein lösliches blaß rötlich-braunes Pigment ^o
gebildet
(15) Lackmus-Milch-Medium(37°O
Der Stamm wächst mit einer blaß gelblich-braunen Wuchsform, und zwar in Ringform, und
erzeugt ein Luftmycel und die Flüssigkeit zeigt 3l
eine stumpf-rote Färbung mit saurem pH.
(16) Loefflers Serum-Medium(37°C).
Der Stamm wächst mit einer cremefarbenen bis blaß gelblich-braun gefärbten Wuchsform als
Kolonie mit einem erhobenen Zentrum. Es wird kein Luftmycel gebildet An der Schnittstelle
ändert sich die Färbung zu blaß-gelb hin.
(C) Verwertung von Kohlenstoff quellen
Es werden Tests unter Verwendung von Grundmedium und Pridham und Gottliebs Salzmedium durchgeführt.
Arabinose, Glucose, Glyzerin Maltose, Mannit, Mannose und Stärke werden gut verwertet. Fruktose,
Lactose und Saccharose werden assimiliert und >n Rhamnose, Xylose und Inosit werden nicht verwertet.
(D) Physiologische Eigenschaften
Der Stamm reagiert positiv auf den Ca-Malat-Löslichkehstest,
sowie bei der Nitratreduktion, der Stärkehydrolse, der Gelatineverflüssigung, der Serumverflüssigung,
der Milchkoagulation und der Milchverflüssigung. Der Stamm wirkt jedoch negativ bei der
Thyrosinasereaktion und bei der Melaninbildung. b0
(E) Wuchstemperatur und pH-Wert
Die optimale Temperatur für besten Wuchs liegt bei 27°C und bei einem pH-Wert von 6-8,4. Ferner kann
der Stamm bei 15 — 37°C und bei einem pH-Wert von br,
7,0-8,0 gezüchtet werden, oberhalb 60°C wird kein Wachstum beobachtet, unabhängig vom pH-Wert. Der
Stamm ist aerob.
Zusammenfaßend wird somit festgestellt, daß gemäß obigen taxonomischen Eigenschaften der Stamm eine
Ähnlichkeit zu Streptomyces pluricolorescens Okami et Urnezawa besitzt, jedoch im Detail gewisse Unterschiede
aufweist Die taxonomischen Eigenschaften von Streptomyces pluricolorescens Okami et Umezawa
wurden im Journal of Antibiotics 19 A, 1 —9 (1966) beschrieben.
Im Vergleich zu den Eigenschaften von Streptomyces S-885 wächst der bekannte Streptomyces pluricolorescens
nur in linearen Ketten mit büschelförmigen Zweigen. Im Falle von Gelatine-Impfmedium ist die
Wuchsform farblos und es wird ein blaß-braun gefärbtes Luftmycel gebildet, jedoch kein lösliches Pigment Diese
Eigenschaften sind klar von den entsprechenden Eigenschaften des Streptomyces S-885 unterschieden.
Gewisse Unterschiede bestehen auch noch in anderer Hinsicht
Aus diesen Gründen wird Streptomyces S-885 als neue Varietät von Streptomyces pluricolorescens
angesehen und erhält die Bezeichnung Streptomyces pluricolorescens van yamashitaensis.
Bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens werden Organismen, welche das Antibiotikum
TS-885 erzeugen und zur Gattung Streptomyces gehören (natürliche oder synthetische Varietäten),
kultiviert wobei das Antibiotikum TS-885 entsteht Dieses Verfahrens unterliegt jedoch keinen besonderen
Beschränkungen und verschiedene bekannte Kultivierungsverfahren für Actinomyceten können angewandt
werden. Das Verfahren eignet sich für die industrielle Durchführung. Hierbei wird im Fermentationstank mit
einer submersen aeroben flüssigen Kultur gearbeitet. Während des Betriebs wird der pH-Wert des Mediums
auf etwa 6—8 gehalten und die Temperatur liegt im Bereich von vorzugsweise 25—300C und insbesondere
27-28° C.
Das Medium wird aus herkömmlichen Materialien für Actinomycetenkulturen hergestellt und besteht aus
verschiedenen Kohlenstoffquellen, Stickstoffquellen, anorganischen Salzen, Antischaummitteln od. dgl. in
geeigneter Kombination. Melasse, Glyzerin und Glucose sind als Kohlehydratquellen optimal, obowhl auch
Stärke, Saccharose, Maltose, Lactose, Dextrin, Cellulose und Fructose mit Erfolg angewandt werden können. Die
Konzentration der Kohlehydrate liegt im Bereich von 0,5—10 Gewichtsprozent und insbesondere im Bereich
von 1 — 5 Gewichtsprozent, bezogen auf das Gesamtmedium. Fleischextrakt, Pepton und CSL sind optimale
Stickstoffquellen. Ferner können jedoch auch Sojabohnen, Casaminosäure, Polypepton, Ammoniumsulfat,
Kaliumnitrat und Casein eingesetzt werden. Die Konzentration der Stickstoffquelle liegt vorzugsweise
im Bereich von 0,3 — 5 Gewichtsprozent und insbesondere vor 0,5-3 Gewichtsprozent, bezogen auf das
Gesamtmedium. Es kommen anorganische Salze in Frage, welche Kalium Magnesium- und Phosphationen
liefern können. Die Konzentration der anorganischen Salze liegt vorzugsweise im Bereich von 0,01 — 1
Gewichtsprozent, bezogen auf das Gesamtmedium. Es ist bevorzugt, Siliconöl oder Sojabohnenöl als Antischaummittel
zuzusetzen.
Nach 48 bis 120 Stunden, gerechnet vom Beginn der Kultivierung an, liegt eine maximale Konzentration des
Antibiotikums TS-885 vor. Die Menge des sich ansammelnden Antibiotikums TS-885 in der Kulturbrühe
kann nach einer der folgenden beiden Methoden gemessen werden:
a) Hemmwirkung auf das Wachstum von Helazellen und
b) Hemmwirkung auf die Poliovirusplattenbildung in Helazellen.
Sodann wird die Kulturbrühe aufgearbeitet wobei die Flüssigkeit von dem das Mycel enthaltenden Festkörper
in herkömmlicher Weise durch Filtrieren oder Zentrifugieren abgetrennt wird. Das Antibiotikum TS-885
befindet sich in der Hauptsache im Filtrat obwohl auch ι ο kleine Mengen des Antibiotikums im Filtrierrückstand
zurückbleiben. Zur Isolierung des Antibiotikums TS-885 wendet man am besten ein Extrationsverfahren unter
Verwendung eines organischen Lösungsmittels, wie Äthylacetat Amylacetat oder Butanol, an, da das
Antibiotikum in Wasser unlöslich ist Das Antibiotikum TS-885 wird mit dem organischen Lösungsmittel
exuahiert und wird sodann durch Säulenchromatographie oder Dünnschichtchromatographie in der üblichen
Weise gereinigt
Im einzelnen verfährt man in folgender Weise: Die Kulturbrühe wird filtriert um die Feststo'fkomponenten
zu entfernen, sodann wird Salzsäure zu dem Filtrat gegeben, um den pH-Wert einzustellen. Das Antibiotikum
TS-885 wird mit organischem Lösungsmittel, wie Äthylacetat, aus dem Filtrat extrahiert Sodann wird das
CHj CHj
C H CH Lösungsmittel unterhalb 40°C im Vakuum abgedampft, um das Antibiotikum TS-885 zu erhalten. Das so
erhaltene dunkelbraune ölige Produkt wird durch Säulenchromatographie über Silicagel gereinigt. Hierzu
wird mit Benzol, Äthylacetat und Äthanol entwickelt, wobei ein gelbes, ein gelblich-rotes und ein braunes
Band gebildet wird. Das gelbe Band wird mit Benzol eluiert Es ist inaktiv. Wenn das Äthylacetat vermehrt
wird, so wird das Band unklar und der gröBte Teil des Antibiotikums TS-885 wird mit einem Gemisch aus
Benzol und Äthylacetat (Gewichtsverhältnis 1:1) eluiert Das so erhaltene gelbe Gemisch, welches das
Antibiotikum TS-885 enthält, wird weiter durch Säulenchromatographie über Silicagel gereinigt. Bei
dieser Reinigung wird das so erhaltene Gemisch mit Benzol entwickelt um Verunreinigungen abzutrennen,
worauf die aktive Substanz mit einem Gemisch aus Benzol und Äthylacetat (4 :1) eluiert wird. Aus dem so
erhaltenen gelblichen Sirup wird schließlich das Antibiotikum TS-885 durch Dünnschichtchromatographie
abgetrennt und gereinig;.· -(Entwickler : Äthylacetat). Hierzu wird die Fraktion mit cem Rf-Wert von 0,5
abgetrennt. Das Antibiotikum TS-885 wird als blaßgelbliches viskoses Material erhalten. Es besitzt die
Bezeichnung 3-(5,7-Dimethyl-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decudienyl)-glutarimid
und weist die Formel
HC
C
C
C H H,
CHC O
CHC O
/H2\|/ \ f
HjC HC C C C
OH H,C NH
auf.
Das so erhaltene Gelbprodukt wird durch Dünnschichtchromatographie
(Entwickler: Äthylacetat) weiter aufgearbeitet, wobei eine Fraktion mit dem Rf-Wert
von 0,5 abgetrennt wird. Hierbei wird das blaß-gelbe ölige Antibiotikum TS-885 erhalten.
Diese Verbindung hat die nachstehenden physikalisch-chemischen Eigenschaften:
(1) Form
Schwach saures, blaß-gelbliches, öliges Material
(2) Elementaranalyse C17H25O4N
Berechnet | Oefunden | CHCI3) | |
C % 66,42 | 65,88 | ||
H % 8,20 | 8,60 | ||
N% 4,56 | 4,38 | ||
0% 20,82 | 21,14 | ||
(3) | Summenformel | ||
C17H25O4N | |||
(4) | Molekulargewicht | ||
307 (Masrenspectrographie) [M + | |||
(5) | Spezifische Drehung | ||
(α]?=, + 105" (C:0,1 | |||
m/e = 307)
b0
65
(6) Siedepunkt
135-1400C(I mm/Hg)
135-1400C(I mm/Hg)
(7) Farbreaktionen
Positiv bei Ehrlich-Reaktion, m-Phenylendiamin-Reaktion
(aktives Methylen) und Schwefelkohlenstoffreaktion (primäres und sekundäres Amin).
Negativ bei Tollens und Ninhydrin-Reaktionen.
Negativ bei Tollens und Ninhydrin-Reaktionen.
(8) Löslichkeit
Löslich: Aceton,Chloroform, Benzol,
Äthylacetat, Äthanol, Methanol;
1% Natronlauge und Pyridin.
1% Natronlauge und Pyridin.
Schwach löslich: Äther.
Unlöslich: Wasser und 5%ige Sahsäure.
(9) Rf-Wert der Dünnschichtchromatographie bei verschiedenen Lösungsmitteln:
0,8 (Chloroform: Äthanol= 10 :3)
0,65 (Äthanol)
0,5 (Äthylacetat)
0,25 (Benzol :Äthylace.tat=1 :1)
0 (Benzol)
Die physikalisch-chemischen Eigenschaften des Antibiotikums TS-885, des Streptimidons und des Protomycins
sind in der nachstehenden Tabelle 1 zusammengestellt:
Plnsikalisch-ehemische Hiycnschaften des Antibiotikums TS-SK5. des Streptimidons und des Protomvcins
Eigenschaften |
Antibiotikum
TS-885 |
Streptimidon | Protomycin |
lorm | blaßgelbliehes OI | farblose Nadeln | weiße Kristalle |
Ip. (KpI | 135 140 Cl min Hg | 72 73 C | 5S 61 C |
IxI | + 105 (( 0.1. CHCI1) | t 23« (('0.5.CHCI,! | t 126 (C 1.0. CHCI.,1 |
Löslichkeit | Löslich in Bcn/ol. AtInI- acetai. Aceton. Äthanol I"c. NaOH: schwach löslich in Äther: unlöslich in Wasser. 5"<> HCI |
Löslich in Ben/ol. AtInI- acelal. Aceton. Äthanol: unlöslich in Wasser |
Löslich in Ben/ol. AtInI acetat. Aceton. Äthanol: unlöslich in CCI4. Petroläther |
Suniiiienloriiiel | C1-IL5O4N | C1JL1O4N | C111IL11(KN |
Molekular gewicht |
307 | 293 | 351 |
I. V. | 231.5115. 3501 | 232(23. 100) | 232.5 (24. (HK)) |
/ ma\ | 2X3.0(1. 259) | 29I( 7901 | 2X7 I 1.3301 |
um I.· I | 291.0(1. 23Oi | ||
IR:cm ' | 3475. 3225 1725 1710 1690 |
1710. 1700 16Sl) |
Ws 3tS() 1725. 1690 |
N. M. R. | 1.151 CH CU, I | 1.071 CH-CH1) | |
Spektrum | 1.S(C- CH CH,) | l.S3(CC CH.,| | |
I.S5IC -C CH1) | |||
Masseiispektrum | M ' m e 307 | ||
LLC H |
CH,
H1C mc 109
O OH
mc 198
NH
Die obige Formel des Antibiotikums TS-885 ergibt sich aus den obigen Daten, wobei das Infrarotspektrum
die Gegenwart von —OH, -NH-, einem Keton und
einer konjugierten Doppelbindung anzeigt, und wobei das Ultraviolettspektrum die Gegenwart einer kunjugierten
Doppelbindung und eines Glutarimidrings anzeigt, und wobei das N.M.R.-Spektrum die Gegenwart
von drei Methylgruppen anzeigt
Im folgenden wird die biologische Aktivität des Antibiotikums TS-885 erläutert Die biologischen
Eigenschaften werden folgendermaßen festgestellt:
100 mg des Antibiotikums TS-885 werden in einem Gemisch aus 0,6 m! Dimethylsulfoxid und 0,02 m!
Polyoxyäthylensorbitanhydrid-monoiaurat (EO: 20) aufgelöst, worauf 1,0 ml Salzlösung (pH-Wert 7,2; mit
0,01 M Phosphat gepuffert) unter Rühren zu der
Mischung gegeben werden, wobei sich eine gleichförmige Lösung bildet Darauf werden 48 ml Salzlösung zu
Ϊ5 der Lösung gegeben, wobei man die Stammlösung des
Antibiotikums TS-885 mit einer Konzentration von 2 mg/ml erhält. Die Stammlösung wird für die folgenden
Anwendungen mit Pufferlösung verdünnt
1) Antimikrobiell Aktivität
Das Antibiotikum TS-885 zeigt keine antibakteriellen
und antimycoplasmischen Aktivitäten. Es zeigt jedoch Hemmwirkungen gegenüber einigen Hefen. Die antimikrobiellen
Spektren wurden mittels der Agarstrichmethode und der Diffusionsmethode festgestellt Die
Ergebnisse sind in den Tabellen 2 und 3 zusammengestellt
Testorganismus
Medium*
Minimale
llemm-
konzentration
(mcg/ml)
Staphylococcus aureus N
209,,
209,,
Streptococcus hemolyticus N
Diplococcus pneumoniac N
Sarcina lutea 1001 N
Bacillus suhtilis N
Kscherichia coli NIIIJ N
Shigella liexneri 2a N
Proteus mirabilis N
i'"se udomonas acruginosa N
Salmonella typhi N
Candida alibicane E
Trychophyton rubrum E
Mycoplasma pneumoniae PPLO-Agar
>1000
>1000 >1000
> 1000 >IOOO
>1000 >IOOO >IOOO
> i 000
> 1000 >1000
1000 >1000 >1000 >1000 >1000
> 1000
PPLO-Agar > 1000
Mycoplasma hominis PPLO-Agar
Mycoplasma orale PPLO-Agar
Mycoplasma salivarium PPLO-Agar
Mycoplasma PPLO-Agar gnllisepticum
Mycoplasma laidlawii
*' Medium.
N: Nähragarmedium.
K: llefeexiraktmedium.
I'l'I.O-Sair: Vollständiges Medium aus Heu PPLO (Uilco)
+ 0,5 % lleleextrakt und 20 % Pferdeserum
Globulin.
2) Cytotoxizität
Die Cytotoxizität des Antibiotikums TS-885 gegen verschiedene Gewebszellkulturen wird nach zwei
-> Methoden festgestellt:
(1) Zylindermethode (auf dünner Keimplatte),
(2) Röhrenverdünnungsmethode.
(1)10 ml Zellsuspension (3 χ 105 Zellen/ml) werden in
in einer Petrischale mit einem Durchmesser von 90 mm
geimpft und danach werden die Platten unter CO2 in einem Inkubator bei 37°C inkubiert. Nach 24 Stunden
wird das Medium entfernt und die Platten werden mit 5 ml Agarmedium belegt, worauf ein Zylinder auf das
ι ί Medium gestellt wird. 0,25 ml der Testprobe werden in
den Zylinder gefüllt. Die Platten werden 2 Stunden bei Zimmertemperatur belassen, wobei das Antibiotikum
TS-885 in das Agar diffundiert. Die Platte wird unter CO2 irr, Inkubator bei 37°C inkubicrt. Nach 48 Stunden
_>(i wird der cytotoxische Effekt des Antibiotikums TS-885
gemessen. Hierzu wird die Größe des Durchmessers der Wachstumshemmzone um den Zylinder herum gemessen.
(2) Bei der Röhrchenverdünnungsmethode werden
(2) Bei der Röhrchenverdünnungsmethode werden
_'-> 2 χ 1015 Zellen in ein kleines Teströhrchen geimpft und
die Zellen werden während 24 Stunden bei 37° C inkubiert.
Verschiedene Konzentrationen des Antibiotikums TS-885 werden in die Röhrchen mit den Zellen gegeben
!ti und diese werden wiederum bei 700C inkubiert. Nach 48
Stunden werden die Entartungsfiguren der Zellen mikroskopisch untersucht. Die Ergebnisse sind in
Tabelle 4 zusammengestellt.
,-, Tabelle 4
Testzellen
Testorganismus
Medium Minimale llemmkonzentration
(mcg/ml)
Candida alibicans S.A. >100
Candida utilis IFO 0396 S.A. 100
Candida tropicalis M.A. 100
Candida parapsilosis M.A. > 100
IFO 0708
Hansenula anomalaIFOOl 18 M.A. 20
Cryptococcus albidus M.A. 4
IFO 0378
Brettanomyces anomalus M.A.
>I00
IFO 0648
Phodotorula glutinis M.A. 100
IFO 0754
R. rubra IFO 0001 M.A. 20
Torula rubra var alpa M.A. 4
Saccharomyces sakeHUT7U9 M.A. 4
Saccharomyces fragil is M.A. 20 IAM 7160
Saccharomyces rosei AHU 3174 M.A. 100
Medium: S.A. Sabouraud's Agar
M.A. Malt's Agar.
M.A. Malt's Agar.
Medium Minimum-Ilemmkonzentration
/.ylin- Röhrchenderverdünnungs
methode methode
HeLa (HeIa S,Zellen)
L (L-Zellen)
CEC(Hühnerembryofibroblasten-
zellen)
CEC(Hühnerembryofibroblasten-
zellen)
MK (AfTennierenzellen)
P1IIR-I (8u.-k.itt-
!ymphomzeüen
YLE
0,2
YLE 0,25
MEM 0,5
MEM 0,2
MEM -
0,4
0,5
1,0
1,0
0,4
0,1
3) Antivirusaktivität
(1) Hemmwirkung gegenüber der Vermehrung von
Poliovirus in HeLa-Zellkultur.
Poliovirus in HeLa-Zellkultur.
1 Röhrchenverdünnungsmethode
400 000/ml HeLa-Zellen werden in ein kleines Teströhrchen gegeben und während 48 Stunden bei 27° C kultiviert. Etwa 100 TCID 50/ml Polioviren werden in die HeLa-Zellkultur gegeben. Nach Inkubation während 90 Minuten bei 37° C zur Absorption der Viren an den Zellen werden die Zellen mit Hanks-Lösung gewaschen und verschiedene Konzentrationen des Antibiotikums TS-885 werden hinzu gegeben. Nach der
400 000/ml HeLa-Zellen werden in ein kleines Teströhrchen gegeben und während 48 Stunden bei 27° C kultiviert. Etwa 100 TCID 50/ml Polioviren werden in die HeLa-Zellkultur gegeben. Nach Inkubation während 90 Minuten bei 37° C zur Absorption der Viren an den Zellen werden die Zellen mit Hanks-Lösung gewaschen und verschiedene Konzentrationen des Antibiotikums TS-885 werden hinzu gegeben. Nach der
Inkubation während 48 Stunden bei 37°C wird der cytopathische Effekt der Zellen mikroskopisch untersucht.
Die Ergebnisse sind in Tabelle 5 zusammengestellt.
Konzentration
(mcg/ml)
Cytotoxizität
Cytopatischer
Effekt
Effekt
AntiviruselTekt
10
I
I
0,5
0,25
0,125
0,0625
0
0,25
0,125
0,0625
0
toxisch
toxisch
toxisch
toxisch
toxisch
2 Plattenmethode
Zehn ml HeLa-Zellen (6 χ 105 Zellen/ml) werden in
eine Petrischale gegeben (90 mm Durchmesser) und die Platten werden bei 37°C im Inkubator unter CO2
inkubiert. Nach 24 Stunden werden die Platten mit Polioviren infiziert (1000 P Fu/ml).
Nach der Inkubation bei 37°C während 120 Minuten zur Absorption der Viren werden die Platten mit 2
Teilen Hanks Salzlösung gewaschen, um nicht absorbierte Viren zu entfernen und die Platten werden mit
5 ml Agarmedium und mit einer Pulpescheibe, welche verschiedene Konzentrationen des Antibiotikums
TS-885 enthält, belegt. Die Antivirusaktivität wird anhand des Durchmessers der freien Zone gemessen.
Die Ergebnisse sind in Tabelle 6 zusammengestellt.
Konzentration
(mcg/ml)
Cytotoxizität
Durchmesser
der freien
Zone
der freien
Zone
Antivirusaktivität
25
12,5
6,25
5,0
1,0
0,5
0
6,25
5,0
1,0
0,5
0
tnvisrh
toxisch
28,4
25,0
19,4
15,0
0
25,0
19,4
15,0
0
(2) Antiviruseffekt bei vesikulären Stomatitisviren
In Teströhrchen werden Hühnerembryofibroplasten-
In Teströhrchen werden Hühnerembryofibroplasten-
— ~11r,.~ .«·* ..An!l..ilnmH Ctn(Hn4itinrii.nn «r,fi^"o # tnrl ritt*
^C]IUl llflt V\.31ftUfai LtI OtUIIiaUlt««ll\.tl lllllcivt ι UlIU UtV.
PlattsnfTiethode wird angewandt, um den Antiviruseffeki
zu ieäien. Die Ergebnisse sind in Tabelle 7 zusammengestellt
Konzentration Cyto- Durchmesser Antivims-
toxizität der plättchen- effekt
freien Zone
freien Zone
(mcg/ml)
(mm)
250 | |
I | 125 |
100 |
42,0 | toxisch |
33,2 | toxisch |
31,7 | toxisch |
Konzentration
(mcg/ml)
Lytotoxizitiit
Durchmesser
der pliittchen-Ireien /one
der pliittchen-Ireien /one
(mm)
AntiviruselTekt
62,5
20
10
5
20
10
5
2,5
1,25
0,6
0,3
28,8
26,2
22,9
19,6
18,9
18,1
17,4
15.4
<8,0
26,2
22,9
19,6
18,9
18,1
17,4
15.4
<8,0
toxisch
toxisch
toxisch
(3) Antiviruseffekt gegenüber Influenzaviren
bei Mäusen.
bei Mäusen.
Das Antibiotikum TS-885 wird 24 Stunden, 6 Stunden bzw. 3 Stunden vor der Virusinfektion und 3 Stunden
bzw. 6 Stunden und einmal täglich an sieben aufeinanderfolgenden Tagen intraperitoneal an Mäuse
mit einer Dosis von 7 bzw. 22 mg/kg verabreicht. Die Virusinfektion (Influenzavirus-Aj/Kumamoto, I0LD50)
geschieht durch Inhalation. Der Antiviruseffekt wird durch Feststellung der Lebensdauer im Vergleich zu
nicht behandelten Mäusen und/oder im Vergleich zu mit Amantadin (1-Adamantylamin) behandelten Mäusen
festgestellt. Die Ergebnisse sind in Tabelle 8 zusammengestellt.
»"» Überlebenszeit
-Tage-
-Tage-
Überlebende Mäuse/behandelte Mäuse x 100% Antibiotikum TS-885 Amantadin Blindprobe
22 mg/kg 7 mg/kg 20 mg/kg
100%
80%
^n °/.
80%
^n °/.
50%
50%
50%
100%
60%
35 "/·
35%
35%
60%
35 "/·
35%
35%
100%
60%
in»/»
60%
in»/»
0%
0%
0%
100%
45%
10"/,
0%
0%
Wenn das Antibiotikum TS-885 mit einer Dosis von 22 mg/kg verabreicht wird, so überleben 50% der
Mäuse, woraus sich ein deutlicher Antiinfluenzaeffekt in ergibt.
(4) Antitumoreffekt
1000 000 .Mäuseaseites-Turnorzeüeri (Sarcom 180)
werden intrapsritoneal iransplantiert. Nach 24 Stunden
bt> iiäch Transplantation Werden u€ii ι ϋΠΐοΓπΐαϋ5£π verschiedene
Dosen des Antibiotikums einmal täglich während 6 Tagen durch intraperitoneale Injektion
verabreicht. Das Antibiotikum TS-885 führt bei einer Dosis von 2,5 mg/Maus je Tag zu einer Hemmung des
bo Wachstums des Ascitestumors, woraus sich klar eine
Verlängerung der Lebensdauer der Mäuse ergibt, deren
Tumor mit dem Antibiotikum behandelt wurde.
(5) Invivo- und Invitrountersuchungen
Das Antibiotikum TS-885 wird mit einer Dosis von 25 mg/kg bzw. 25 mg/kg Mäusen intravenös eingespritzt
Nach 10 und 30 Minuten nach Injektion werden
die Mäuse getötet und das Serum wird entnommen Die Konzentration des Antibiotikums im Serum wird
anhand des Hemmeffekts der Bildung von Scheibchen von Poliovirus in HeLa-Zellen bestimmt. Man stellt fest,
daß bei der Gruppe von Mäusen, welchen 25 mg/kg des Antibiotikums verabreicht wurden, nach 10 Minuten
eine Antibiotikumkonzentration im Blut von 2,9 mcg/ml vorhanden ist und nach 30 Minuten eine Konzentration
von 2,4 mcg/ml. Bei der Gruppe von Mäusen, welchen 2,5 mg/kg verabreicht wurden, beträgt die Konzentration
nach 10 Minuten 1,8 mcg/ml und nach 30 Minuten 0,58 mcg/ml.
(6) Toxizität
Das Antibiotikum TS-885 wird einmal täglich während 10 Tagen in einer Dosis von 20 mg/kg pro Tag
durch intravenöse Injektion an Mäusen mit einem Gewicht von 20 g verabreicht (Gesamtdosis 200 mg/kg).
Irgendwelche toxische Anzeichen werden nicht beobachtet.
Somi kann das Antibiotikum TS-885 verabreicht
werden, um Infektionen durch Poliovirus, Influenzavirus vom Typ A od. dgl. zu verhindern oder zu inhibieren.
Wenn die Verabreichung vor der Infektion erfolgt, so tritt eine prophylaktische Wirkung ein. In diesem Fall ist
es bevorzugt, daß die Verabreichung 0 — 24 Stunden vor der Infektion des Tieres oder des Menschen mit
pathogenen Viren liegt. Die Verabreichung kann topisch, oral oder parenteral an Säugetiere, wie z. B.
Hunde, Affen, Katzen, Meerschweinchen, welche mit den genannten Viren infiziert sind, erfolgen. Die
optimale Dosis variiert je nach Verabreichung und je nach zu behandelndem Virus sowie je nach Tierart,
Alter, Gesundheit, Gewicht, Ausmaß der Infektion und Häufigkeit der Behandlung sowie je nach der Natur des
gewünschten Effekts. Normalerweise wird eine Dosis von 0,5 bis 20 mg/kg Körpergewicht verabreicht. Unter
den Darreichungsformen für orale und parenteral Verabreichung seien z. B. Tabletten, Kapseln, Injektionsflüssigkeiten
genannt. Lösungen oder Suspensionen können mit jedwedem nicht toxischen pharmazeutischen
Träger verabreicht werden. Der Träger muß sich tür die orale Verabreichung eignen oder tür die topische
Anwendung oder für die parenteraie oder buccale Verabreichung eignen.
Im folgenden wird die Erfindung näher erläutert.
a) 100 ml eines flüssigen Mediums mit einem pH-Wert von 7,2, welches 2% Sojabohnen, 0,5% Natriumchlorid,
0,2% Calciumkarbonat, 2% Stärke, 0,005% Mangansulfat, 0,005% Zinksulfat und 0,005% Kupfer(ll)-sulfat
enthält, werden in einen 500 ml Schüttelkolben gegeben, und das Medium wird mit Streptomyces S-885
ίκ-τ*-*/~* Iincc\ —A:.«_r.t _._-j ι : i-ro^-» ^i ι on
Stunden unter Schütteln kultiviert Andererseits werden 2501 eines Mediums mit einem pH-Wert 7,4 mit 1%
Pepton, 0,5% Bouillon, 03% Natriumchlorid, 0,2%
Calciumkarbonat, 1% Glyzerin und 3% Stärke in 200 Anteilen von je 500 ml in den Schüttelkolben gegeben,
und die Kultur wird sodann aerob bei 27° C kultiviert
und zu diesem Zweck werden je 3 ml in ein Flaschen gegeben. Nach etwa 96 Stunden erreicht die Konzentration
des Antibiotikums TS-885 in der Kulturbrühe ein Maximum. Der Titer beträgt etwa 100 mcg/ml und der
pH-Wert der Brühe beträgt etwa 8,2. Die Kultivierung wird zu dieser Zeit unterbrochen untl der Festkörper
wird über Filterpapier oder einem Filtermittel filtriert, wobei man etwa 220 1 eines gelblich-braunen Filtrats
erhält. Das Filtrat wird auf einen pH-Wert von 5,1^ mit
Salzsäure eingestellt und mit Äthylacetat zweimal extrahiert (halbe Menge des Filtrats), so daß der größte
Teil des aktiven Bestandteils in die Äthylacetatschicht übergeht. Die so erhaltene Äthylacetatschicht wird bei
weniger als 40°C in Vakuum eingeengt, um das Äthylacetat zu entfernen. Man erhält 2,4 g eines rohen
dunkelbraunen öligen Materials, welches das Antibiotikum TS-885 enthält.
Das rohe ölige Material hemmt das Wachstum von HeLa-Zellen bei einer Konzentration von 1,2 mcg/ml
und der Titer des Produkts beträgt 350 mcg/mg.
b) 2,4 g des dunkelbraunen öligen Materials werden in eine Säule mit einem Durchmesser von 3 cm und einer
Länge von 50 cm, welche mit 60 g Silicagel gepackt ist, gegeben, und die Chromatographie wird nach einer
Trockenmethode durchgeführt. Die Säule wird mit 1000 ml Benzol entwickelt, um die Verunreinigungen zu
eluieren, worauf die Entwicklung mit einem Gemisch aus Benzol und Äthylacetat (1:1) fortgesetzt wird.
Hierbei werden 900 mg einer gelblich-braunen Fraktion von Syrupkonsistenz erhalten. Diese Fraktion enthält
das Antibiotikum TS-885, welches gegenüber HeLa-Zellen aktiv ist. Der Titer des Produkts beträgt 700 mcg/ml.
c) Das gelblich-braune Rohantibiotikum TS-885 wird durch Chromatographie über eine Kieselgelsäule weiter
gereinigt. 900 mg des Rohmaterials werden in 2 ml Benzol aufgelöst und die Lösung wird auf eine Säule
(3 cm Durchmesser und 60 cm Länge), welche mit 70 g Silicagel gepackt ist, gegeben. Die Säule wird mit
1200 ml Benzol entwickelt. Nachfolgend wird Äthylacetat zum Benzol gegeben und das Gemisch wird dazu
verwendet, den größten Teil der Verunreinigungen zu eluieren. Die Säule wird ferner mit 1500 ml eines
uemisches aus benzoi und Aihyiaceiat (4 : i) eniwikkelt,
wobei das gesamte Antibiotikum Tr-885 eluiert wird. Das Eluat wird in Vakuum eingeengt und das
Lösungsmittel verdampft, wobei 385 mg des gelben Antibiotikums TS-885 erhalten werden. Der Titer des
Produkts beträgt 900 mcg/mg.
d) Das nach c) erhaltene Antibiotikum TS-885 von gelber Farbe wird schließlich durch Dünnschichtchi
matographie in hochreinen Zustand gebracht. Etwa 10 g Silicagel werden auf eine Platte gestrichen (20 χ 20 cm), getrocknet und aktiviert. Etwa 30 mg des Antibiotikums TS-885 werden in Aceton aufgelöst und
matographie in hochreinen Zustand gebracht. Etwa 10 g Silicagel werden auf eine Platte gestrichen (20 χ 20 cm), getrocknet und aktiviert. Etwa 30 mg des Antibiotikums TS-885 werden in Aceton aufgelöst und
Äthylacetat entwickelt Das Antibiotikum TS-885 wird an der Position des Rf-Wertes von 0,5 entwickelt. Der
Fleck des Rf-Wertes von 0,5 wird aufgenommen und in
eine Säule (2 χ 30 cm) gegeben und mit Aceton eluiert, wobei 308 mg des reinen Antibiotikums TS-885 erhalten
werden. Der Titer des Produkts beträgt 1000 mcg/mg.
Claims (4)
1. 3-(5,7-Dimethyl-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decadienylj-glutarimid.
2. Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums 3-(5,7-DimethyI-2-hydroxy-4-oxo-6,8-decadienyl)-glutarimid,
dadurch gekennzeichnet, daß in an sich bekannter Weise Streptomyces pluricolorescens var.
yamashitaensis (S-885), ATCC Nr. 21 956 in einem wäßrigen Nährmedium, welches Kohlehydrate und
eine Quelle für organischen Stickstoff enthält, solange unter submersen aeroben Bedingungen
kultiviert werden, bis das Nährmedium eine wesentliche Antivirusaktivität aufweist, worauf das ι ί
Antibiotikum aus der Kulturbrühe isoliert wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das Kulturmedium auf einer Temperatur
von etwa 15 bis etwa 37°C und bei einem pH-Wert von etwa 6 bis etwa 8 während etwa 48
Stunden bis etwa 120 Stunden gehalten wird.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die nitrierte Kulturbrühe
anschließend mit Äthylacetat, Amylacetat oder Butanol extrahiert wird. 2
>
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---|---|---|---|
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- 1972-08-25 JP JP8507472A patent/JPS5530838B2/ja not_active Expired
-
1973
- 1973-08-22 DE DE2342404A patent/DE2342404C3/de not_active Expired
- 1973-08-24 FR FR7330767A patent/FR2196789B1/fr not_active Expired
- 1973-08-24 CA CA179,615A patent/CA987618A/en not_active Expired
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FR2196789A1 (de) | 1974-03-22 |
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GB1392266A (en) | 1975-04-30 |
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