RU2617641C2 - Новые низкомолекулярные катионные липиды для доставки олигонуклеотидов - Google Patents

Новые низкомолекулярные катионные липиды для доставки олигонуклеотидов Download PDF

Info

Publication number
RU2617641C2
RU2617641C2 RU2013118224A RU2013118224A RU2617641C2 RU 2617641 C2 RU2617641 C2 RU 2617641C2 RU 2013118224 A RU2013118224 A RU 2013118224A RU 2013118224 A RU2013118224 A RU 2013118224A RU 2617641 C2 RU2617641 C2 RU 2617641C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
compound
amine
diene
alkyl
dimethyl
Prior art date
Application number
RU2013118224A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2013118224A (ru
Inventor
Мэттью Дж. СТЭНТОН
Брайан В. БАДЗИК
Грегори Л. БЬЮТНЕР
Хунбяо Ляо
Original Assignee
Сирна Терапьютикс,Инк.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Сирна Терапьютикс,Инк. filed Critical Сирна Терапьютикс,Инк.
Publication of RU2013118224A publication Critical patent/RU2013118224A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2617641C2 publication Critical patent/RU2617641C2/ru

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C209/00—Preparation of compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C209/30—Preparation of compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton by reduction of nitrogen-to-oxygen or nitrogen-to-nitrogen bonds
    • C07C209/40—Preparation of compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton by reduction of nitrogen-to-oxygen or nitrogen-to-nitrogen bonds by reduction of hydroxylamino or oxyimino groups
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/16—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing nitrogen, e.g. nitro-, nitroso-, azo-compounds, nitriles, cyanates
    • A61K47/18—Amines; Amides; Ureas; Quaternary ammonium compounds; Amino acids; Oligopeptides having up to five amino acids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00—Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C211/00—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C211/01—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C211/02—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of an acyclic saturated carbon skeleton
    • C07C211/03—Monoamines
    • C07C211/04—Mono-, di- or tri-methylamine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C211/00—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C211/01—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C211/02—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of an acyclic saturated carbon skeleton
    • C07C211/03—Monoamines
    • C07C211/08—Monoamines containing alkyl groups having a different number of carbon atoms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C211/00—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C211/01—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C211/16—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of a saturated carbon skeleton containing rings other than six-membered aromatic rings
    • C07C211/17—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of a saturated carbon skeleton containing rings other than six-membered aromatic rings containing only non-condensed rings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D207/00—Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom
    • C07D207/02—Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with only hydrogen or carbon atoms directly attached to the ring nitrogen atom
    • C07D207/04—Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with only hydrogen or carbon atoms directly attached to the ring nitrogen atom having no double bonds between ring members or between ring members and non-ring members
    • C07D207/06—Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with only hydrogen or carbon atoms directly attached to the ring nitrogen atom having no double bonds between ring members or between ring members and non-ring members with radicals, containing only hydrogen and carbon atoms, attached to ring carbon atoms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C12N15/88—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation using microencapsulation, e.g. using amphiphile liposome vesicle
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K45/00—Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C211/00—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C211/01—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C211/16—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of a saturated carbon skeleton containing rings other than six-membered aromatic rings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C211/00—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C211/01—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C211/20—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of an acyclic unsaturated carbon skeleton
    • C07C211/21—Monoamines
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C211/00—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton
    • C07C211/01—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C211/25—Compounds containing amino groups bound to a carbon skeleton having amino groups bound to acyclic carbon atoms of an unsaturated carbon skeleton containing rings other than six-membered aromatic rings

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pyrrole Compounds (AREA)
  • Low-Molecular Organic Synthesis Reactions Using Catalysts (AREA)

Abstract

Настоящее изобретение относится к новому катионному липиду по формуле А, или его любой фармацевтически приемлемой соли, которые используются для формирования липидных наночастиц (LNP) для доставки олигонуклеотидов, к композиции липидных наночастиц (LNP), содержащей предлагаемый катионный липид, и к применению катионного липида. В формуле А значения R1, R2, R3, R', Rʺ, n, L1 и L2 такие, как указаны в формуле изобретения. 7 н. и 3 з.п. ф-лы, 14 ил., 2 табл., 9 пр.

Description

Предпосылки к созданию изобретения
Настоящее изобретение относится к новым катионным липидам, которые могут быть использованы в комбинации с другими липидными компонентами, такими как холестерин и PEG-липиды, для формирования липидных наночастиц с олигонуклеотидами, для облегчения клеточного поглощения и эндосомального выделения и к нокдаун мРНК-мишени как in vitro, так и in vivo.
Ранее были раскрыты катионные липиды и использование катионных липидов в липидных наночастицах для доставки олигонуклеотидов, в частности, миРНК и микроРНК. Ранее были раскрыты липидные наночастицы и использование липидных наночастиц для доставки олигонуклеотидов, в частности, миРНК и микроРНК. Ранее были раскрыты олигонуклеотиды (в том числе миРНК и микроРНК) и синтез олигонуклеотидов (Смотрите патентные заявки США: US 2006/0083780, US 2006/0240554, US 2008/0020058, US 2009/0263407 и US 2009/0285881 и патентные заявки PCT: WO 2009/086558, WO 2009/127060, WO 2009/132131, WO 2010/042877, WO 2010/054384, WO 2010/054401, WO 2010/054405 и WO 2010/054406). Смотрите также Semple S.C. et al., Rational design of Cationic lipids for siRNA delivery, Nature Biotechnology, 2010, 28, 172-176.
Другие катионные липиды раскрыты в патентных заявках США: US 2009/0263407, US 2009/0285881, US 2010/0055168, US 2010/0055169, US 2010/0063135, US 2010/0076055, US 2010/0099738 и US 2010/0104629.
Общепринятые катионные липиды, такие как CLinDMA и DLinDMA, использовали для доставки миРНК в печень, но для них характерна неоптимальная эффективность доставки в пределах печени с печеночной токсичностью при более высоких дозах. Задачей данного изобретения является обеспечение каркасного катионного липида, который проявляет повышенную эффективность вместе с более низкой печеночной токсичностью в результате снижения уровней липида в печени. В настоящем изобретении используются низкомолекулярные катионные липиды с одной короткой липидной цепью для усиления эффективности и иммунности доставки in vivo миРНК.
Краткое описание изобретения
Настоящее изобретение обеспечивает новые катионные липиды, которые можно использовать в комбинации с другими липидными компонентами, такими как холестерин и PEG-липиды, для формирования липидных наночастиц с олигонуклеотидами. Задачей данного изобретения является обеспечение каркасного катионного липида, который проявляет повышенную эффективность вместе с более низкой печеночной токсичностью в результате снижения уровней липида в печени. В настоящем изобретении используются низкомолекулярные катионные липиды с одной короткой липидной цепью для усиления эффективности и иммунности доставки in vivo миРНК.
Краткое описание чертежей
Фиг.1. Эффективность LNP (соединение 1) у мышей.
Фиг.2. Эффективность LNP (соединения 32 и 33) у крыс (миРНК ApoB).
Фиг.3. Уровни катионного липида (соединения 32 и 33) в печени крыс.
Фиг.4. Эффективность LNP (соединения 32 и 33, миРНК ApoB) в NHP.
Фиг.5. Эффективность LNP (соединения 32 и 33, миРНК β-катенина) в NHP.
Фиг.6. Пиковые уровни ALT в NHP после дозы LNP (соединения 32 и 33).
Фиг.7. Уровни катионного липида (соединения 32 и 33) в печени NHP.
Фиг.8. KD миРНК β-катенина в печени у мышей TRE-Met (соединение 33).
Фиг.9. KD миРНК β-катенина опухоли у мышей TRE-Met (соединение 33).
Фиг.10. Ингибирование роста опухоли (соединение 33) у мышей TRE-met.
Фиг.11. Эффективность LNP (соединения 32 и 33) у мышей.
Фиг.12. KD миРНК β-катенина печени у мышей TRE-Met (соединение 32).
Фиг.13. KD миРНК β-катенина опухоли у мышей TRE-Met (соединение 32).
Фиг.14. Ингибирование роста опухоли (соединение 32) у мышей TRE-met.
Подробное описание изобретения
Различные аспекты и варианты осуществления данного изобретения направлены на практичность новых катионных липидов, эффективных в липидных наночастицах для доставки олигонуклеотидов, в частности, миРНК и микроРНК, к любому гену-мишени (Смотрите патентные заявки США: US 2006/0083780, US 2006/0240554, US 2008/0020058, US 2009/0263407 и US 2009/0285881, и патентные заявки PCT: WO 2009/086558, WO 2009/127060, WO 2009/132131, WO 2010/042877, WO 2010/054384, WO 2010/054401, WO 2010/054405 и WO 2010/054406). Также смотрите Semple S. C. et al., Rational design of Cationic lipids for siRNA delivery, Nature Biotechnology, 2010, 28, 172-176.
Катионные липиды по настоящему изобретению представляют собой эффективные компоненты в липидных наночастицах для доставки олигонуклеотидов, в особенности миРНК и микроРНК.
В первом варианте осуществления этого изобретения данные катионные липиды представлены формулой А:
Figure 00000001
в которой:
R1 и R2 независимо друг от друга выбраны из H, алкила (C1-C6), гетероциклила и полиамина, где указанный алкил, гетероциклил и полиамин, необязательно, являются замещенными одним-тремя заместителями, выбранными из R’, или R1 и R2 могут быть взяты совместно с азотом, к которому они присоединены для образования моноциклического гетероцикла с 4-7 членами, необязательно содержащего в себе, в дополнение к данному азоту, один или два дополнительных гетероатомов, выбранных из N, O и S, указанный моноциклический гетероцикл, необязательно, является замещенным с использованием от одного до трех заместителей, выбранных из R’;
R3 независимо выбран из H и алкила (C1-C6), указанный алкил, необязательно, является замещенным с использованием от одного до трех заместителей, выбранных из R’;
R’ независимо выбран из галогена, R", OR", SR", CN, CO2R" или CON(R")2;
R" независимо выбран из H и алкила (C1-C6), где указанный алкил, необязательно, является замещенным с использованием галогена и OH;
n равен 0, 1, 2, 3, 4 или 5;
L1 выбран из алкила C4-C24 и алкенила C4-C24, указанные алкил и алкенил, необязательно, являются замещенными с использованием от одного или нескольких заместителей, выбранных из R’; и
L2 выбран из алкила C3-C9 и акленила C3-C9, указанные алкил и алкенил, необязательно, являются замещенными с использованием одного или нескольких заместителей, выбранных из R’;
или любая фармацевтически приемлемая соль или его стереоизомер.
Во втором варианте осуществления данное изобретение описывает соединение, имеющее формулу А, где:
R1 и R2, каждый, представляет собой метил;
R3 представляет собой H;
n равен 0;
L1 выбран из алкила C4-C24 и алкенила C4-C24; и
L2 выбран из алкила C3-C9 и алкенила C3-C9;
или любая фармацевтически приемлемая соль или его стереоизомер.
В третьем варианте осуществления данное изобретение описывает соединение, имеющее формулу А, где:
R1 и R2, каждый, представляет собой метил;
R3 представляет собой H;
n равен 2;
L1 выбран из алкила C4-C24 и алкенила C4-C24; и
L2 выбран из алкила C3-C9 и алкенила C3-C9;
или любая фармацевтически приемлемая соль или его стереоизомер.
Специфические катионные липиды представляют собой:
(20Z,23Z)-N,N-диметилнонакоза-20,23-диен-10-амин (соединение 1);
(17Z,20Z)-N,N-диметилгексакоза-17,20-диен-9-амин (соединение 2);
(16Z,19Z)-N,N-диметилпентакоза-16,19-диен-8-амин (соединение 3);
(13Z,16Z)-N,N-диметилдокоза-13,16-диен-5-амин (соединение 4);
(12Z,15Z)-N,N-диметилгеникоза-12,15-диен-4-амин (соединение 5);
(14Z,17Z)-N,N-диметилтрикоза-14,17-диен-6-амин (соединение 6);
(15Z,18Z)-N,N-диметилтетракоза-15,18-диен-7-амин (соединение 7);
(18Z,21Z)-N,N-диметилгептакоза-18,21-диен-10-амин (соединение 8);
(15Z,18Z)-N,N-диметилтетракоза-15,18-диен-5-амин (соединение 9);
(14Z,17Z)-N,N-диметилтрикоза-14,17-диен-4-амин (соединение 10);
(19Z,22Z)-N,N-диметилоктакоза-19,22-диен-9-амин (соединение 11);
(18Z,21Z)-N,N-диметилгептакоза-18,21-диен-8-амин (соединение 12);
(17Z,20Z)-N,N-диметилгексакоза-17,20-диен-7-амин (соединение 13);
(16Z,19Z)-N,N-диметилпентакоза-16,19-диен-6-амин (соединение 14);
(22Z,25Z)-N,N-диметилгентриаконта-22,25-диен-10-амин (соединение 15);
(21Z,24Z)-N,N-диметилтриаконта-21,24-диен-9-амин (соединение 16);
(18Z)-N,N-диметилгептакоз-18-ен-10-амин (соединение 17);
(17Z)-N,N-диметилгексакоз-17-ен-9-амин (соединение 18);
(19Z,22Z)-N,N-диметилоктакоза-19,22-диен-7-амин (соединение 19); и
N,N-диметилгептакозан-10-амин (соединение 20);
(20Z,23Z)-N-этил-N-метилнонакоза-20,23-диен-10-амин (соединение 21);
1-[(11Z,14Z)-1-нониликоза-11,14-диен-1-ил]пирролидин (соединение 22);
(20Z)-N,N-диметилгептакоз-20-ен-10-амин (соединение 23);
(15Z)-N,N-диметилгептакоз-15-ен-10-амин (соединение 24);
(14Z)-N,N-диметилнонакоз-14-ен-10-амин (соединение 25);
(17Z)-N,N-диметилнонакоз-17-ен-10-амин (соединение 26);
(24Z)-N,N-диметилтритриаконт-24-ен-10-амин (соединение 27);
(20Z)-N,N-диметилнонакоз-20-ен-10-амин (соединение 28);
(22Z)-N,N-диметилгентриаконт-22-ен-10-амин (соединение 29);
(16Z)-N,N-диметилпентакоз-16-ен-8-амин (соединение 30);
(12Z,15Z)-N,N-диметил-2-нонилгеникоза-12,15-диен-1-амин (соединение 31);
(13Z,16Z)-N,N-диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амин (соединение 32);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]гептадекан-8-амин (соединение 33);
1-[(1S,2R)-2-гексилциклопропил]-N,N-диметилнонадекан-10-амин (соединение 34);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]нонадекан-10-амин (соединение 35);
N,N-диметил-21-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]геникозан-10-амин (соединение 36);
N,N-диметил-1-[(1S,2S)-2-{[(1R,2R)-2-пентилциклопропил]метил}циклопропил]нонадекан-10-амин (соединение 37);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]гексадекан-8-амин (соединение 38);
N,N-диметил-1-[(1R,2S)-2-ундецилциклопропил]тетрадекан-5-амин (соединение 39);
N,N-диметил-3-{7-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]гептил}додекан-1-амин (соединение 40)
1-[(1R,2S)-2-гептилциклопропил]-N,N-диметилоктадекан-9-амин (соединение 41);
1-[(1S,2R)-2-децилциклопропил]-N,N-диметилпентадекан-6-амин (соединение 42);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]пентадекан-8-амин (соединение 43); и
(11E,20Z,23Z)-N,N-диметилнонакоза-11,20,23-триен-10-амин (соединение 44);
или любая фармацевтически приемлемая соль или его стереоизомер.
В другом варианте осуществления данные раскрытые катионные липиды являются пригодными при получении липидных наночастиц.
В другом варианте осуществления данные раскрытые катионные липиды являются пригодными компонентами в липидных наночастицах для доставки олигонуклеотидов.
В другом варианте осуществления данные раскрытые катионные липиды являются пригодными компонентами в липидных наночастицах для доставки миРНК и микроРНК.
В другом варианте осуществления данные раскрытые катионные липиды являются пригодными компонентами в липидной наночастице для доставки миРНК.
Данные катионные липиды по настоящему изобретению могут иметь ассиметричные центры, хиральные оси и хиральные плоскости (как описано у E.L. Eliel and S.H. Wilen, Stereochemistry of Carbon Compoundes, John Wiley & Sons, New York, 1994, pages 1119-1190), и встречаться в виде рацематов, рацемических смесей, и в виде отдельных диастериоизомеров, со всеми возможными изомерами и их смесями, включая оптические изомеры, входящие в данное изобретение. Кроме того, раскрытые здесь катионные липиды могут присутствовать в виде таутомеров, и обе таутомерные формы предназначены для включения в диапазон данного изобретения, несмотря на то, что описана только одна таутомерная структура.
Понятно, что заместители и схемы замещения в катионных липидах по настоящему изобретению могут быть выбраны специалистом, владеющим обычными практическими навыками в данной области, для обеспечения катионных липидов, которые являются химически стабильными и которые можно без труда синтезировать с использованием технологических приемов, известных в данной области, а также и тех методов, которые описаны ниже, из легкодоступных исходных материалов. Если сам заместитель является замещенным более чем одной группой, понятно, что эти множественные группы могут присутствовать на одном и том же углероде, или на разных углеродах, при условии получения устойчивой структуры.
Понятно, что специалист, владеющий обычными практическими навыками в данной области, может включить один или несколько атомов Si в катионные липиды по настоящему изобретению для обеспечения катионных липидов, которые являются химически стабильными и которые могут быть с легкостью синтезированы с использованием технологических приемов, известных в данной области, из легкодоступных исходных материалов.
В соединениях по формуле А атомы могут проявлять свой природный изотопный состав, или один или несколько атомов могут быть искусственно обогащенными определенным изотопом, имеющим то же самое атомное число, но атомную массу или атомное число, отличные от атомной массы или атомного числа, преимущественно встречающихся в природе. Настоящее изобретение предназначено для включения в себя всех подходящих изотопных вариантов соединений по формуле А. Например, различные изотопные формы водорода (Н), в том числе протий (1Н) и дейтерий (2Н). Протий представляет собой преобладающий изотоп водорода, встречающийся в природе. Обогащение дейтерия может обеспечить некоторые терапевтические преимущества, такие как увеличение времени полужизни in vivo, или снижение потребности в дозировках, или может обеспечить соединение, пригодное в качестве стандарта для описания характеристик биологических образцов. Изотопно-обогащенные соединения по формуле А могут быть получены без проведения излишних экспериментальных работ, используя общепринятые технологические приемы, хорошо известные специалистам в данной области, или используя процессы, аналогичные описанным в схемах и примерах, применяя соответствующие изотопно-обогащенные реагенты и/или промежуточные соединения.
Используемый здесь термин «алкил» означает насыщенный алифатический углеводород с неразветвленной цепью, циклический или разветвленный, имеющий определенное число атомов углерода.
Используемый здесь термин «алкенил» означает ненасыщенный алифатический углеводород с неразветвленной цепью, циклический или разветвленный, имеющий определенное число атомов углерода, в том числе, но не ограничиваясь этим, диеновые, триеновые и тетраеновые ненасыщенные алифатические углеводороды.
Примеры циклических «алкилов» или «алкенилов» включают в себя:
Figure 00000002
.
Используемый здесь термин «гетероциклил», или «гетероцикл», относится к 4-10-членному ароматическому или неароматическому гетероциклу, содержащему в себе от 1 до 4 гетероатомов, выбранных из группы, имеющей в своем составе О, N и S, и включает в себя бициклические группы. «Гетероциклил», таким образом, включает в себя следующее: бензоимидазолил, бензофуранил, бензофуразанил, бензопиразолил, бензотриазолил, бензотиофенил, бензоксазолил, карбазолил, карболинил, циннолинил, фуранил, имидазолил, индолинил, индолил, индолазинил, индазолил, изобензофуранил, изоиндолил, изохинолил, изотиазолил, изоксазолил, нафтпиридинил, оксадиазолил, оксазолил, оксазолин, изоксазолин, оксетанил, пиранил, пиразинил, пиразолил, пиридазинил, пиридопиридинил, пиридазинил, пиридил, пиримидил, пирролил, хиназолинил, хинолил, хиноксалинил, тетрагидропиранил, тетразолил, тетразолопиридил, тиадиазолил, триазолил, тиенил, триазолил, азетидинил, 1,4-диоксанил, гексагидроазепинил, пиперазинил, пиперидинил, пирролидинил, морфолинил, тиоморфолинил, дигидробензоимидазолил, дигидробензофуранил, дигидробензотиофенил, дигидробензоксазолил, дигидрофуранил, дигидроимидазолил, дигидроиндолил, дигидроизооксазолил, дигидроизотиазолил, дигидрооксадиазолил, дигидрооксазолил, дигидропиразинил, дигидропиразолил, дигидропиридинил, дигидропиримидинил, дигидропирролил, дигидрохинолинил, дигидротетразолил, дигидротиадиазолил, дигидротриазолил, дигидротиенил, дигидротриазолил, дигидроазетидинил, метилендиоксибензоил, тетрагидрофуранил, и тетрагидротиенил, и их N-оксиды, все из которых, необязательно, являются замещенными одним-тремя заместителями, выбранными из R".
Используемый здесь термин «полиамин» означает соединения, имеющие две или более аминогрупп. Примеры включают в себя путресцин, кадаверин, спермидин и спермин.
Используемый здесь термин «галоген» означает Br, Cl, F и I.
В одном варианте осуществления формулы А, R1 и R2 независимо выбраны из H и алкила (C1-C6), где указанный алкил, необязательно, замещенный одним-тремя заместителями, выбранными из R’, или R1 и R2 могут быть взяты вместе с азотом, к которому они присоединены, для формирования моноциклического гетероцикла с 4-7 членами, необязательно содержащего в себе, в дополнение к указанному азоту, один или два гетероатома, выбранных из N, O и S, указанный моноциклический гетероцикл, необязательно, является замещенным одним-тремя заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, R1 и R2 независимо выбраны из H, метила, этила и пропила, где указанный метил, этил и пропил, необязательно, являются замещенными с одним-тремя заместителями, выбранными из R’, или R1 и R2 могут быть взяты вместе с азотом, к которому они присоединены, для формирования моноциклического гетероцикла с 4-7 членами, необязательно содержащего в себе, в дополнение к указанному азоту, один или два гетероатома, выбранных из N, O и S, указанный моноциклический гетероцикл, необязательно, является замещенным одним-тремя заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, R1 и R2 независимо выбраны из H, метила, этила и пропила.
В одном варианте осуществления формулы А, R1 и R2, каждый, представляет собой метил.
В одном варианте осуществления формулы А, R3 независимо выбран из H и метила.
В одном варианте осуществления формулы А, R3 представляет собой H.
В одном варианте осуществления формулы А, R’ представляет собой R".
В одном варианте осуществления формулы А, R" независимо выбран из H, метила, этила и пропила, где указанный метил, этил и пропил, необязательно, являются замещенными одним или несколькими галогенами и OH.
В одном варианте осуществления формулы А, R" независимо выбран из H, метила, этила и пропила.
В одном варианте осуществления формулы А, n равен 0, 1, 2 или 3.
В одном варианте осуществления формулы А, n равен 0, 1 или 2.
В одном варианте осуществления формулы А, n равен 0, 1 или 2.
В одном варианте осуществления формулы А, n равен 0.
В одном варианте осуществления формулы А, n равен 2.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкила C4-C24 и алкенила C4-C24, которые, необязательно, являются замещенными галогеном и OH.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкила C4-C24 и алкенила C4-C24.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкенила C4-C24.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкенила C12-C24.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 представляет собой алкенил C19.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 представляет собой:
Figure 00000003
.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 представляет собой:
Figure 00000004
.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 выбран из алкила C3-C9 и алкенила C3-C9, которые, необязательно, являются замещенными галогеном и OH.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 выбран из алкила C5-C9 и алкенила C5-C9, которые, необязательно, являются замещенными галогеном и OH.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 выбран из алкила C7-C9 и алкенила C7-C9, которые, необязательно, являются замещенными галогеном и OH.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 выбран из алкила C3-C9 и алкенила C3-C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 выбран из алкила C5-C9 и алкенила C5-C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 выбран из алкила C7-C9 и алкенила C7-C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 представляет собой алкил C3-C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 представляет собой алкил C5-C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 представляет собой алкил C7-C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L2 представляет собой алкил C9.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкила C4-C24 и акленила C4-C24, где указанные алкил и алкенил, необязательно, являются замещенными одним или несколькими заместителями, выбранными из R’; и L2 выбран из алкила C3-C9 и алкенила C3-C9, указанные алкил и алкенил, необязательно, являются замещенными одним или несколькими заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкенила C12-C24, указанный алкенил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’; и L2 выбран из алкила C5-C9, указанный алкил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкенила C19, указанный алкенил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’; и L2 выбран из алкила C7-C9, указанный алкил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкенила C19, указанный алкенил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’; и L2 выбран из алкила C9, указанный алкил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, L1 выбран из алкенила C19 с неразветвленной цепью, указанный алкенил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’; и L2 выбран из алкила C9 с неразветвленной цепью, указанный алкил, необязательно, является замещенным одним или несколькими заместителями, выбранными из R’.
В одном варианте осуществления формулы А, «гетероциклил» представляет собой пирролидин, пиперидин, морфолин, имидазол или пеперазин.
В одном варианте осуществления формулы А, «моноциклический гетероциклил» представляет собой пирролидин, пиперидин, морфолин, имидазол или пеперазин.
В одном варианте осуществления формулы А, «полиамин» представляет собой путресцин, кадаверин, спермидин или спермин.
В одном варианте осуществления «алкил» представляет собой насыщенный алифатический углеводород с неразветвленной цепью, имеющий определенное число атомов углерода.
В одном варианте осуществления «алкенил» представляет собой ненасыщенный алифатический углеводород с неразветвленной цепью, имеющий определенное число атомов углерода.
В настоящее изобретение включена свободная форма катионных липидов по формуле А, а также их фармацевтически приемлемые соли и стереоизомеры. Некоторые из приведенных здесь в качестве примеров выделенных специфических катионных липидов представляют собой протонированные соли аминовых катионных липидов. Термин «свободная форма» относится к аминовым катионным липидам в несолевой форме. Охваченные фармацевтически приемлемые соли включают в себя не только приведенные в качестве примеров выделенные соли для определенных катионных липидов, описанных здесь, но также все типичные фармацевтически приемлемые соли свободной формы катионных липидов по формуле А. Свободная форма конкретной соли описанных катионных липидов может быть выделена с использованием технологических приемов, известных в данной области. Например, свободная форма может быть восстановлена в результате обработки данной соли подходящим разбавленным водным основным раствором, таким как разбавленный водный NaOH, карбонат калия, аммиак и бикарбонат натрия. Данные свободные формы могут отличаться от их соответствующих солевых форм, в некоторой степени, некоторыми физическими свойствами, такими, как растворимость в полярных растворителях, но кислые и основные соли в остальном являются эквивалентными их соответствующим свободным формам для целей данного изобретения.
Фармацевтически приемлемые соли данных катионных липидов могут быть синтезированы из катионных липидов по этому изобретению, которые содержат в себе основные или кислотные функциональные группы, используя общепринятые химические методы. В общих чертах соли основных катионных липидов получают либо с помощью ионообменной хроматографии, или в результате реакции свободного основания со стехиометрическими количествами, или с избытком необходимой солеобразующей неорганической или органической кислоты в подходящем растворителе, или различных комбинациях растворителей. Аналогичным образом, соли кислотных соединений формируются в результате реакций с соответствующим неорганическим или органическим основанием.
Таким образом, фармацевтически приемлемые соли катионных липидов по этому изобретению включают в себя традиционные нетоксичные соли катионных липидов по этому изобретению, полученные в результате реакции основных растворимых катионных липидов с неорганической или органической кислотой. Например, традиционные нетоксичные соли включают в себя те, которые получены из неорганических кислот, таких как соляная, бромистоводородная, серная, сульфаминовая, фосфорная, азотная и тому подобное, а также соли, которые получены из органических кислот, таких как уксусная, пропионовая, янтарная, гликолевая, стеариновая, молочная, оксиянтарная, винная, лимонная, аскорбиновая, пальмитиновая, малеиновая, гидроксималеиновая, фенилуксусная, глутаминовая, бензойная, салициловая, сульфаниловая, 2-ацетоксибензойная, фумаровая, толуолсульфоновая, метансульфоновая, этандисульфоновая, щавелевая, изетионовая, трифторуксусная (TFA) и тому подобное.
В случае, когда катионные липиды по настоящему изобретению являются кислотными, подходящие «фармацевтически приемлемые соли» означают соли, полученные из фармацевтически приемлемых нетоксичных оснований, в том числе неорганических оснований и органических оснований. Соли, полученные из неорганических оснований, включают в себя соли алюминия, аммиака, кальция, меди, трехвалентного железа, двухвалентного железа, лития, магния, трехвалентного марганца, двухвалентного марганца, калия, натрия, цинка и тому подобное. Особенно предпочтительными являются соли аммиака, кальция, магния, калия и натрия. Соли, полученные из фармацевтически приемлемых органических нетоксичных оснований, включают в себя соли первичных, вторичных и третичных аминов, циклических аминов и основных ионообменных смол, таких как аргинин, бетаин кофеин, холин, N,N1-дибензилэтилендиамин, диэтиламин, 2-диэтиламиноэтанол, 2-диметиламиноэтанол, этаноламин, этилендиамин, N-этилморфолин, N-этилпиперидин, глюкамин, глюкозамин, гистидин, гидрабамин, изопропиламин, лизин, метилглюкамин, морфолин, пиперазин, пиперидин, полиаминовые смолы, прокаин, пурины, теобромин, триэтиламин, триметиламин трипропиламин, трометамин и тому подобное.
Получение фармацевтически приемлемых солей описано выше и другие типичные фармацевтически приемлемые соли более подробно описаны у Berg et al, "Pharmaceutical Salts," J. Pharm. Sci, 1977: 66: 1-19.
Также следует отметить, что катионные липиды по настоящему изобретению представляют собой потенциально внутренние соли или цвиттерионы, поскольку в физиологических условиях депротеинированная кислотная функциональная группа в данном Соединении, например, карбоксильная группа, может быть анионной, и этот электронный заряд должен быть компенсирован внутренне относительно катионного заряда протеинированной или алкилированной основной функциональной группы, такой как четвертичный атом азота.
ПРИМЕРЫ
Представленные примеры предназначены для содействия в дальнейшем понимании данного изобретения. Конкретные используемые вещества, образцы и условия предназначены для дополнительной иллюстрации данного изобретения и не ограничивают его разумный диапазон. Реагенты, используемые при синтезе катионных липидов, являются либо коммерчески доступными, либо без труда готовятся специалистом, который обладает обычными навыками в данной области.
Синтез новых катионных липидов представляет собой линейный процесс, начинающийся с липидной кислоты (I). Связывание с N,О-диметил гидроксиламином приводит к образованию амида Вайнреба (Weinreb) II. Добавление реагента Гриньяра (Grignard) приводит к образованию кетона III. Опосредованное титаном восстановительное аминирование приводит к образованию конечных продуктов типа IV.
ОБЩАЯ СХЕМА 1
Figure 00000005
Синтез одноуглеродных допустимых катионных липидов V представляет собой линейный процесс, начинающийся с липидного кетона (III). Переход кетона в нитрил (V) осуществляется посредством обработки TOSMIC и трет-бутоксидом калия. Восстановление данного нитрила до первичного амина с последующим восстановительным аминированием обеспечивает конечные катионные липиды VI.
ОБЩАЯ СХЕМА 2
Figure 00000006
Синтез двухуглеродных допустимых катионных липидов IX представляет собой линейный процесс, начинающийся с липидного кетона (III). Переход данного кетона в α,β-ненасыщенный амид VII осуществляется в условиях реакции Петерсона. Сопряженное восстановление α,β-ненасыщенности осуществляется с использованием LS-Selectride для образования амида VIII. Восстановление данного амида с помощью алюмогидрида лития обеспечивает конечные катионные липида IX.
ОБЩАЯ СХЕМА 3
Figure 00000007
Циклопропил-содержащие липиды получены в соответствии с общей схемой 4. Ненасыщенные амиды Вайнреба II подвергают условиям циклопропанирования Симмонса-Смита для получения циклопропил-содержащих амидов Вайнреба X. Их доводят до конечных продуктов как показано в общих схемах 1-3.
ОБЩАЯ СХЕМА 4
Figure 00000008
Синтез аллиламиновых катионных липидов XVI представляет собой линейный процесс, начинающийся с альдегида XI. Добавление трет-бутилацетата приводит к образованию β-сложного гидроксиэфира XII. Преобразование данной гидроксильной функциональной группы во фтор-группу с последующей обработкой кислотой приводит к образованию β-фторзамещенной кислоты XIII. Преобразование данной кислоты в амид Вайнреба с последующим добавлением реагента Гриньяра приводит к образованию β-фтористого кетона XV. Восстановительное аминирование влечет за собой одновременное элиминирование для образования необходимого аллильного амина XVI.
ОБЩАЯ СХЕМА 5
Figure 00000009
20,23-нонакозадиен-10-амин, N,N-диметил-, (20Z,23Z) ( соединен ие 1)
Figure 00000010
11,14-эйкозадиеновую кислоту, (11Z,14Z)- (50 г, 162 ммоль), N,О-диметилгидроксиламин гидрохлорид (31,6 г, 324 ммоль), HOAt (44,1 г, 324 ммоль), Et3N (45,2 мл, 324 ммоль) и EDC (62,1 г, 324 ммоль) смешивали в DCM (810 мл) и перемешивали в течение ночи при температуре окружающей среды. Реакционную смесь затем отмывали 5×700 мл воды, затем отмывали 1×600 мл 1 M NaOH, высушивали с помощью сульфата натрия, фильтровали через целит и конденсировали до получения 53,06 г (93%) 11,14-эйкозадиенамида, N-метокси-N-метил-, (11Z,14Z) в виде очищенного золотистого масла. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3) δ 5,35 (м, 4H), 3,68 (с, 3H), 3,18 (с, 3H), 2,77 (м, 2H), 2,41 (т, J=7 Гц, 2H), 2,05 (м, 4H), 1,63 (м, 2H), 1,40-1,26 (м, 18H), 0,89 (т, J=7 Гц, 3H).
Figure 00000011
11,14-эйкозадиенамид, N-метокси-N-метил-, (11Z,14Z)- 1 (4 г, 11,38 ммоль) растворяли в сухом ТГФ (50,0 мл) в сосуде объемом 250 мл, затем 1 М нонилмагний бромид (22,76 мл, 22,76 ммоль) добавляли под азотом при температуре окружающей среды. Через 10 минут реакцию медленно подавляли с избытком насыщенного водного NH4Cl. Данную реакцию отмывали в делительной воронке с помощью гексана и воды, встряхивали, нижний водный слой удаляли, верхний слой высушивали с помощью сульфата натрия, фильтровали и конденсировали для получения неочищенного кетона в виде золотистого масла. К вышеуказанному неочищенному кетону добавляли диметиламин (2 M в ТГФ) (14,22 мл, 28,4 ммоль) с последующим добавлением Ti(O-i-Pr)4 (6,67 мл, 22,76 ммоль) и оставляли перемешиваться в течение ночи. На следующий день добавляли EtOH (50 мл), с последующим добавлением NaBH4 (0,646 г, 17,07 ммоль). После 5 мин перемешивания непосредственно вводили всю реакционную смесь в 40-г капиллярную кварцевую колонку, которая располагалась на одной линии с 330 г капиллярной кварцевой колонкой. Элюировали 10 мин 100% DCM, затем 30 мин 0-15% MeOH/DCM, собирали 20,23-нонакозадиен-10-амин, N,N-диметил-, (20Z,23Z) (1) (2,45 г, 5,47 ммоль, выход 48,1%) в виде бледно-золотистого масла. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3) δ 5,35 (м, 4H), 2,78 (м, 2H), 2,23 (м, 1H), 2,21 (с, 6H), 2,05 (м, 4H), 1,45-1,16 (м, 38H), 0,89 (м, 6H). HRMS рассчитано для C31H61N 448,4877, получено 448,4872.
Соединения 2-30 представляют собой новые катионные липиды и были получены в соответствии с общей схемой 1, представленной выше.
Соединение Структура HRMS
2
Figure 00000012
 рассчитано для C28H56N 406,4407, получено 406,4405
3
Figure 00000013
 рассчитано для C27H54N 392,4251, получено 392,4250
4
Figure 00000014
 рассчитано для C24H48N 350,3781, получено 350,3770
5
Figure 00000015
 рассчитано для C23H46N 336,3625, получено 336,3613
6
Figure 00000016
 рассчитано для C25H50N 364,3938, получено 364,3941
7
Figure 00000017
 рассчитано для C26H52N 378,4094, получено 378,4081
8
Figure 00000018
 рассчитано для C29H58N 420,4564, получено 420,4562
9
Figure 00000019
 рассчитано для C26H52N 378,4094, получено 378,4089
10
Figure 00000020
 рассчитано для C25H50N 364,3938, получено 364,3931
11
Figure 00000021
 рассчитано для C30H60N 434,4720, получено 434,4717
12
Figure 00000022
 рассчитано для C29H58N 420,4564, получено 420,4561
13
Figure 00000023
 рассчитано для C28H56N 406,4407, получено 406,4404
14
Figure 00000024
 рассчитано для C27H54N 392,4251, получено 392,4245
15
Figure 00000025
 рассчитано для C33H66N 476,5190, получено 476,5196
16
Figure 00000026
 рассчитано для C32H64N 462,5033, получено 462,5045
17
Figure 00000027
 рассчитано для C29H59N 422,4720, получено 422,4726
18
Figure 00000028
 рассчитано для C28H57N 408,4564, получено 408,4570
19
Figure 00000029
 рассчитано для C30H59N 434,4720, получено 434,4729
20
Figure 00000030
 рассчитано для C29H61N 424,4877, получено 424,4875
21
Figure 00000031
 рассчитано для C32H64N 462,5033, получено 462,5023
22
Figure 00000032
 рассчитано для C33H64N 474,5033, получено 474,5033
23
Figure 00000033
 рассчитано для C29H60N 422,4720, получено 422,4716
24
Figure 00000034
 рассчитано для C29H60N 422,4720, получено 422,4718
25
Figure 00000035
 рассчитано для C31H64N 450,5033, получено 450,5031
26
Figure 00000036
 рассчитано для C31H64N 450,5033, получено 450,5034
27
Figure 00000037
 рассчитано для C35H72N 506,5659, получено 506,5635
28
Figure 00000038
 рассчитано для C31H64N 450,5033, получено 450,5037
29
Figure 00000039
 рассчитано для C33H68N 478,5346, получено 478,5358
30
Figure 00000040
 рассчитано для C27H56N 394,4407, получено 394,4407
(12Z,15Z)- N,N -диметил-2-нонилгеникоза-12,15-диен-1-амин ( соединен ие 31)
Figure 00000041
Раствор кетона iii (4,0 г, 9,55 ммоль), TOSMIC (2,4 г, 12,4 ммоль) в диметоксиэтане (45 мл) охлаждали до 0°C и обрабатывали трет-бутоксидом калия (19,1 ммоль, 19,1 мл 1 M раствора в tBuOH). Через 90 минут реакция была разделена между гексанами и водой. Органические вещества были отмыты водой, высушены сульфатом натрия, профильтрованы и конденсированы под вакуумом. Это вещество было очищено с помощью флэш-хроматографии (0-5% EtOAc/гексаны) для получения необходимого продукта (содержащего приблизительно 20% исходного продукта). Эту смесь переносили на следующий этап в виде is. ЖХ/МС (M+H)=430,6.
Figure 00000042
Алюмогидрид лития (23,9 ммоль, 23,9 мл 1 М раствора в ТГФ) добавляли непосредственно к нитрилу v (3,42 г, 8 ммоль) при температуре окружающей среды и данную реакцию перемешивали в течение 20 минут. Реакцию разбавляли с помощью 100 мл ТГФ, охлаждали до 0°C и осторожно подавляли с помощью раствора глауберовой соли. Данные твердые вещества фильтровали и отмывали с помощью ТГФ. Данный фильтрат конденсировали под вакуумом и переносили непосредственно в следующую реакционную сырьевую смесь. ЖХ/МС (M+H)=434,6.
Figure 00000043
Раствор первичного амина (3,45 г, 6,2 ммоль) в дихлорэтане (100 мл) обрабатывали формальдегидом (1,6 мл, 21,7 ммоль) с последующей обработкой триацетоксиборгидридом натрия (6,6 г, 31 ммоль). Через 5 минут данная реакция была разделена между дихлорметаном и 1 н. NaOH. Органические вещества высушивали с помощью сульфата натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом. Данную сырьевую смесь затем очищали посредством обращенно-фазовой препаративной хроматографии (колонка С8) для получения (12Z,15Z)-N,N-диметил-2-нонилгеникоза-12,15-диен-1-амина. HRMS рассчитано 462,5033, получено 462,5026. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3) δ 5,35 (м, 4H), 2,78 (2H, т, J=5,6 Гц), 2,18 (с, 6H), 2,05 (м, 6H), 1,3 (м, 39H), 0,89 (м, 6H).
(13Z , 16Z)- N,N -диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амин ( соединен ие 32)
Figure 00000044
Силиламидный реагент Петерсона (3,1 г, 16,7 ммоль) растворяли в ТГФ (35 мл) и охлаждали до -63°C. К этому раствору добавляли nBuLi (16,7 ммоль, 6,7 мл 2,5 M раствора). Данную реакцию нагревали до температуры окружающей среды в течение 30 минут. Кетон (5,0 г, 11,9 ммоль) растворяли в ТГФ (25 мл) во втором сосуде. Данный раствор кетона переносили к реагенту Петерсона в течение 30 минут, поддерживая температуру между -60°C и -40°C. Данную реакцию нагревали до -40°C в течение 1 часа, затем нагревали до 0°C в течение 30 минут. Данную реакцию подавляли с помощью бикарбоната натрия, разбавляли дополнительно водой и разделяли между водой/гексанами. Органические вещества отмывали солевым раствором, высушивали с помощью сульфата натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом. В результате очистки с помощью флэш-хроматографии получают α,β ненасыщенный амид vii. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3) δ 5,75 (с, 1H), 5,36 (м, 4H), 3,01 (с, 3H), 2,99 (с, 3H), 2,78 (т, 2H), 2,28 (т, 2H), 2,05 (м, 6H), 1,35 (м, 34H), 0,89 (м, 6H).
Figure 00000045
α,β-ненасыщенный амид vii (1 г, 2,1 ммоль) и LS-Selectride (4,1 ммоль, 4,1 мл 1 M раствора) объединяли в герметически закупориваемой пробирке и нагревали до 60°C в течение 24 часов. Данную реакцию охлаждали до температуры окружающей среды и разделяли между раствором хлорида аммония и гептаном. Органические соединения высушивали с помощью сульфата натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом для получения амида viii. Это промежуточное соединение переносили непосредственно в следующую реакционную сырьевую смесь.
В альтернативном сопряженном восстановлению α,β-ненасыщенного амида vii используется восстановление гидрида меди:
Figure 00000046
В 5 л RB, данный медный катализатор (9,77 г, 17,13 ммоль) был растворен в толуоле (1713 мл) под азотом. К этому добавляли PMHS, от Aldrich (304 мл, 1371 ммоль) в одной дозе. Эту реакцию выдерживали в течение 5 минут. К данным растворам добавляли α,β-ненасыщенный амид vii (167,16 г, 343 ммоль). Затем к этой смеси добавляли трет-амиловый спирт (113 мл, 1028 ммоль) в течение 3 ч с помощью шприцевого насоса. После завершения добавления данный раствор был дополнен приблизительно 1700 мл 20% NH4OH небольшими порциями. Предостережение: имеет место интенсивное вспенивание и пенообразование в начале остановки реакции, и должен быть тщательный контроль, и гидроксид аммония необходимо добавлять медленно и небольшими порциями. Эту реакцию разделяли между водой и гексанами. Органические соединения фильтровали через целит и конденсировали под вакуумом. Полученное резиновое твердое вещество измельчали с помощью механической мешалки в гексанах для получения мелких частиц, которые затем фильтровали и отмывали с помощью гексанов. Органические соединения были затем конденсированы под вакуумом и очищены с помощью флэш-хроматографии (двуокись кремния, 0-15% этилацетат/гексаны) для получения требующегося амида viii. ЖХ/МС (M+H)=490,7.
Figure 00000047
К раствору амида viii (2,85 г, 5,8 ммоль) добавляли алюмогидрид лития (8,7 ммоль, 8,7 мл 1 M раствора). Данную реакционную смесь перемешивали при температуре окружающей среды в течение 10 минут, затем останавливали путем медленного добавления раствора глауберовой соли. Данные твердые соединения были профильтрованы и отмыты с помощью ТГФ, и данный фильтрат конденсировали под вакуумом. Данная сырьевая смесь была очищена с помощью обращенно-фазовой препаративной хроматографии (колонка С8) для получения (13Z,16Z)-N,N-диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амина (соединение 32) в виде масла. HRMS (M+H) рассчитано 476,5190, получено 476,5189. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDC13) δ 5,37 (м, 4H), 2,78 (т, 2H), 2,42 (м, 8H), 2,05 (кв., 4H), 1,28 (м, 41H), 0,89 (м, 6H).
N,N -диметил-1-(2-октилциклопропил)гептадекан-8-амин ( соединен ие 33)
Figure 00000048
К раствору олеиновой кислоты (1 г, 3,5 ммоль) в DCM (500 мл), охлажденному до 0°C, добавляли CDI (0,63 г, 3,9 ммоль). Данную реакционную смесь нагревали до температуры окружающей среды в течение 30 минут перед тем, как охладить до 0°C и обработать сначала триэтиламином (0,39 г, 3,9 ммоль), а затем диметил гидроксиламингидрохлоридом (0,38 г, 3,9 ммоль). Через 1 час данную реакцию разделяли между водой и гептаном. Органические соединения высушивали с помощью сульфата магния, фильтровали и конденсировали под вакуумом для получения неочищенного амида Вайнреба ii, который переносили непосредственно в следующую реакцию.
Figure 00000049
Раствор диэтилцинка (70,3 ммоль, 70,3 мл 1 M раствора) в дихлорметане (130 мл) охлаждали до -1°C и обрабатывали капельно с помощью TFA (8,0 г, 70,3 ммоль). Через 30 минут был добавлен дийодметан (18,8 г, 70,3 ммоль), и эту смесь выдерживали в течение 30 минут на ледяной бане. К этому раствору добавляли амид Вайнреба ii (7,6 г, 23,4 ммоль). Данную реакционную смесь нагревали до температуры окружающей среды и перемешивали в течение 1 часа. Данную реакцию останавливали путем добавления раствора хлорида аммония (100 мл), и органический слой отделяли, отмывали с помощью 10% тиосульфата натрия, высушивали сульфатом магния, фильтровали и конденсировали под вакуумом. Очистку проводили посредством флэш-хроматографии (0-30% MTBE/гептан) для получения требуемого продукта x. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3) δ 3,72 (с, 3H), 3,22 (с, 3H), 2,48 (т, 2H), 1,65 (м, 2H), 1,39 (м, 22H), 1,18 (м, 2H), 0,91 (т, 3H), 0,68 (м, 2H), 0,59 (м, 1H), -0,32 (м, 1H).
Figure 00000050
Превращение амида Вайнреба x в соединение 33 осуществляли способом, аналогичным тому, который описан выше для соединения 1 (добавление нонил Гриньяра с последующим восстановительным аминированием). ЖХ/МС (M+H)=436,6. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDC13) δ 2,25 (с, 6H), 1,30 (м, 45H), 0,91 (м, 6H), 0,68 (м, 2H), 0,59 (м, 1H), -0,31 (м, 1H).
Соединения 34-43 представляют собой новые катионные липиды и были получены в соответствии с общими схемами 1-4, представленными выше.
Соединение Структура HRMS
34
Figure 00000051
 рассчитано для C30H62N 436,4877, получено 436,4872
35
Figure 00000052
 рассчитано для C32H66N 464,5190, получено 464,5186
36
Figure 00000053
 рассчитано для C34H70N 492,5503, получено 492,5496
37
Figure 00000054
 рассчитано для C33H66N 476,5190, получено 476,5174
38
Figure 00000055
 рассчитано для C29H60N 422,4720, получено 422,4701
39
Figure 00000056
 рассчитано для C30H62N 436,4877, получено 436,4880
40
Figure 00000057
 рассчитано для C32H66N 464,5190, получено 464,5199
41
Figure 00000058
 рассчитано для C30H62N 436,4877, получено 436,4877
42
Figure 00000059
 рассчитано для C30H62N 436,4877, получено 436,4875
43
Figure 00000060
 ЖХ/МС (M+H) 408,6
(1 1 Е,20Z,23Z)- N,N -диметилнонакоза- 11 ,20 , 23-триен- 10 -амин ( соединен ие 44)
Figure 00000061
К раствору LDA (95 ммоль, 47,5 мл 2 M раствора) в ТГФ (127 мл), охлажденному до -78°C, добавляли трет-бутилацетат. Данную реакционную смесь перемешивали в течение 15 минут, с последующим добавлением альдегида xi. Данная реакция была незамедлительно остановлена путем добавления раствора хлорида аммония, нагрета до температуры окружающей среды и разделена между водой/пентаном. Органические соединения высушивали сульфатом натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом. ЖХ/МС (M+H-tBu)=325,4.
Figure 00000062
Кетоноспирт xii (7 г, 18,4 ммоль) растворяли в дихлорметане (150 мл) и охлаждали до 0°C и обрабатывали дезоксофтором (7,3 г, 33,1 ммоль). Данную реакционную смесь нагревали до температуры окружающей среды с перемешиванием в течение 16 часов, с последующей остановкой реакции раствором бикарбоната натрия. Данную реакционную смесь разделяли и органические соединения высушивали сульфатом натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом. После хроматографии на испарительной колонке (0-5% этилацетат/гексаны) получают β-фторзамещенный сложный эфир.
Промежуточный вторзамещенный сложный эфир (6 г, 15,6 ммоль) в дихлорметане был обработан хлороводородом (157 ммоль, 39,2 мл 4 M раствора в диоксане) и данную реакционную смесь перемешивали при температуре окружающей среды в течение 16 часов. Данную реакционную смесь конденсировали под вакуумом для получения требуемой β-фторзамещенной кислоты xiii. ЖХ/МС (M+H)=327,3.
Figure 00000063
Фторкарбоновую кислоту xiii (5,1 г, 15,7 ммоль), EDC (6,0 г, 31,4 ммоль), N,О-диметилгидроксиламин гидрохлорид (3,1 г, 31,4 ммоль), триметиламин (4,0 г, 39,2 ммоль) и HOAt (4,3 г, 31,4 ммоль) смешивали в DCM (78 мл) и перемешивали при температуре окружающей среды в течение 16 часов. Эту реакционную смесь разделяли на воду/DCM и органические соединения отмывали водой (3 раза) и раствором NaOH (1 раз), высушивали сульфатом натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом. Сырьевое вещество очищали с помощью обратно-фазовой препаративной хроматографии для получения требуемого амида Вайнреба xiv. ЖХ/МС (M+H)=370,4.
Figure 00000064
Раствор амида Вайнреба xiv (4,3 г, 11,7 ммоль) в ТГФ (50 мл) обрабатывали нонилмагний бромидом (23,4 ммоль, 23,4 мл 1 M раствора) при температуре окружающей среды. Реакцию останавливали посредством добавления раствора хлорида аммония через 1 час и разделяли между водой и пентаном. Органические соединения высушивали сульфатом натрия, фильтровали и конденсировали под вакуумом. Это вещество переносили на следующий этап неочищенным.
Figure 00000065
Кетон xv (5,1 г, 11,7 ммоль) обрабатывали диметиламином (29,3 ммоль, 14,7 мл 2 M раствора в ТГФ) и изопропоксидом титана (IV) (6,7 г, 23,5 ммоль) и данную реакцию перемешивали при температуре окружающей среды в течение 16 часов. К данной реакционной смеси добавляли этанол (50 мл) с последующим добавлением боргидрида натрия (0,67 г, 17,6 ммоль). Данную реакцию нагружали непосредственно на кварцевую колонку и очищали посредством флэш-хроматографии (0-15% MeOH/DCM). Данному веществу необходима вторая очистка посредством препаративной обратно-фазовой хроматографии для получения (11E,20Z,23Z)-N,N-диметилнонакоза-11,20,23-триен-10-амина. HRMS рассчитано 446,4720, получено 446,4724. 1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3) δ 5,48 (м, 1H), 5,37 (м, 4H), 5,23 (м, 1H), 2,78 (т, 2H), 2,58 (м, 1H), 2,22 (с, 6H), 2,04 (м, 6H), 1,56 (м, 1H), 1,30 (м, 31H), 0,89 (м, 6H).
Соединение 45 представляет собой DLinKC2DMA, как описано в Nature Biotechnology, 2010, 28, 172-176, WO 2010/042877 A1, WO 2010/048536 A2, WO 2010/088537 A2 и WO 2009/127060 A1.
Figure 00000066
Соединение 46 представляет собой MC3, как описано в WO 2010/054401 и WO 2010/144740 A1.
Figure 00000067
Композиции LNP
Следующие композиции липидных наночастиц (LNP) по настоящему изобретению являются пригодными для доставки олигонуклеотидов, в частности, миРНК и микроРНК:
катионный липид/холестерин/PEG-DMG 56,6/38/5,4;
катионный липид/холестерин/PEG-DMG 60/38/2;
катионный липид/холестерин/PEG-DMG 67,3/29/3,7;
катионный липид/холестерин/PEG-DMG 49,3/47/3,7;
катионный липид/холестерин/PEG-DMG 50,3/44,3/5,4;
катионный липид/холестерин/PEG-C-DMA/DSPC 40/48/2/10;
катионный липид/холестерин/PEG-DMG/DSPC 40/48/2/10; и
катионный липид/холестерин/PEG-DMG/DSPC 58/30/2/10.
Описание процесса LNP
Данные липидные наночастицы (LNP) получены с использованием процесса сталкивающихся струй. Данные частицы сформированы посредством смешивания липидов, растворенных в спирте, с миРНК, растворенной в цитратном буфере. Коэффициент смешения липидов и миРНК задан как 45-55% липидов и 65-45% миРНК. Данный липидный раствор содержит в себе новый катионный липид по настоящему изобретению, вспомогательный липид (холестерин), липид PEG (например, PEG-C-DMA, PEG-DMG), и DSPC в концентрации 5-15 мг/мл с расчетной 9-12 мг/мл в спирте (например, этиловом). Соотношение данных липидов имеет диапазон молярных процентов 25-98 для данного катионного липида, с расчетным 35-65, данный вспомогательный липид имеет диапазон молярных процентов от 0-75 с расчетным 30-50, данный липид PEG имеет диапазон молярных процентов от 1-15 с расчетным 1-6, и DSPC имеет диапазон молярных процентов 0-15 с расчетным 0-12. Данный раствор миРНК содержит в себе одну или несколько последовательностей миРНК в интервале концентраций от 0,3 до 1,0 мг/мл, с расчетной 0,3-0,9 мг/мл в солевом растворе забуференном цитратом натрия, со значением рН в диапазоне 3,5-5. Данные две жидкости нагревали до температуры в диапазоне 15-40°C, рассчитано 30-40°C, и затем смешивали в смесительном аппарате со сталкивающимися струями, сразу же с образованием LNP. Данный teeID имеет диапазон от 0,25 до 1,0 мм и общую скорость потока 10-600 мл/мин. Комбинация скорости потока и внутреннего диаметра трубы (tubing ID) обладает эффектом контроля размера частиц данных LNP между 30 и 200 нм. Данный раствор затем смешивают с забуференным раствором при более высоком значении рН с коэффициентом смешивания в диапазоне от 1:1 до 1:3 об./об., но рассчитано 1:2 об./об. Температура данного забуференного раствора находится в диапазоне 15-40°C, расчетная 30-40°C. Данные смешанные LNP выдерживают от 30 минут до 2 часов до этапа анионообменной фильтрации. Температура во время инкубирования находится в диапазоне 15-40°C, расчетная 30-40°C. После инкубирования данный раствор фильтруют через 0,8-мкм фильтр, включающий в себя анионообменную ступень. В этом процессе используются ID труб в диапазоне от 1 мм ID до 5 мм ID, и скорость потока от 10 до 2000 мл/мин. Данные LNP являются концентрированными посредством процесса ультрафильтрации, в котором спирт удаляется и цитратный буфер замещен на конечный буферный раствор, такой как забуференный фосфатом физиологический раствор. В данном процессе ультрафильтрации используется формат проточной фильтрации вдоль потока (TFF). В этом процессе используется мембрана с отсечкой номинальной молекулярной массы в диапазоне 30-500 кДа. Данная мембрана может быть в виде пористого волокна или кассеты с плоской поверхностью. Процесс TFF с соответствующей точкой отсечки молекулярной массы сохраняет LNP в ультраконцентрате и данный фильтрат или ультрафильтрат содержит в себе спирт; цитратный буфер; излишки конечного буфера. Данный процесс TFF представляет собой многоступенчатый процесс, с первичной концентрацией к концентрации миРНК 1-3 мг/мл. После концентрирования, данный раствор LNP диафильтруют против 10-20 объемов конечного буфера для удаления спирта и осуществления обмена буферов. Данное вещество затем концентрируют дополнительно 1-3-кратно. Конечными этапами процесса LNP являются стерилизирующая фильтрация концентрированного раствора LNP и помещение данного продукта в ампулы.
Аналитическая процедура
1) К онцентрация миРНК
Концентрации дуплекса миРНК были определены посредством высокоемкой анионообменной высокоэффективной жидкостной хроматографии (SAX-HPLC) с использованием системы Waters 2695 Alliance (Water Corporation, Milford MA) с детектором 2996 PDA. Данные LNP, иначе называемые Системы доставки RNAi (RDV), обработаны с помощью 0,5% Triton X-100 для высвобождения общей миРНК и проанализированы посредством сепарирования SAX с использованием колонки Dionex BioLC DNAPac PA 200 (4×250 мм) с УФ-детектором при 254 нм. Мобильная фаза состоит из A: 25 мМ NaClO4, 10 мМ Tris, 20% EtOH, pH 7,0 и B: 250 мМ NaClO4,10 мМ Tris, 20% EtOH, pH 7,0 с линейным градиентом от 0-15 мин и скоростью потока 1 мл/мин. Количество миРНК определено посредством сравнения с калибровочной кривой миРНК.
2) Степень инкапсулирования
Флуоресцентный реагент SYBR Gold использовали для количественного анализа РНК для контроля степени инкапсулирования RDV. RDV с или без Triton X-100 использовали для определения количества свободной миРНК и общей миРНК. Данное исследование осуществлено с использованием микропланшетного спектрофотометра SpectraMax M5e компании Molecular Devices (Sunnyvale, CA). Образцы стимулировали при 485 нм и измеряли флуоресценцию при 530 нм. Количество миРНК определяли путем сравнения с калибровочной кривой миРНК.
Степень инкапсулирования=(1-свободная миРНК/общая миРНК)×100%
3) Размер частиц и полидисперсные свойства
RDV, содержащие в себе 1 мкг миРНК, разводили до конечного объема 3 мл с помощью 1×PBS. Размер частиц и полидисперсные свойства данных образцов оценивали методом динамического рассеяния света с использованием прибора ZetaPALS (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY). Интенсивность рассеянного излучения оценивали посредством He-Ne лазера при 25°C с углом рассеивания 90°.
4) Анализ дзета-потенциала
RDV, содержащие в себе 1 мкг миРНК, разводили до конечного объема 2 мл с помощью 1 М Tris-буфера (pH 7,4). Электрофоретическую подвижность образцов оценивали с использованием прибора ZetaPALS instrument (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY) с электродом и He-Ne лазером в качестве источника света. Предел Смолуховского был принят в расчете дзета-потенциалов.
5) Липидный анализ
Индивидуальные липидные концентрации определяют посредством обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии (RP-HPLC), используя систему Waters 2695 Alliance (Water Corporation, Milford MA) с детектором заряженного аэрозоля Corona (CAD) (ESA Biosciences, Inc, Chelmsford, MA). Индивидуальные липиды в RDV анализируют, используя колонку Agilent Zorbax SB-C18 (50×4,6 мм, размер частиц 1,8 мкм) с CAD при 60°C. Мобильная фаза состоит из A: 0,1% TFA в H2O и B: 0,1% TFA в IPA. Градиент изменяется от 60% мобильной фазы A и 40% мобильной фазы B с момента времени 0 до 40% мобильной фазы A и 60% мобильной фазы B в момент времени 1,00 мин; 40% мобильной фазы A и 60% мобильной фазы B с 1,00 по 5,00 мин; 40% мобильной фазы A и 60% мобильной фазы B с 5,00 мин до 25% мобильной фазы A и 75% мобильной фазы B на 10,00 мин; 25% мобильной фазы A и 75% мобильной фазы B с 10,00 мин до 5% мобильной фазы A и 95% мобильной фазы B на 15,00 мин; и 5% мобильной фазы A и 95% мобильной фазы B с 15,00 до 60% мобильной фазы A и 40% мобильной фазы B на 20,00 мин со скоростью потока 1 мл/мин. Индивидуальную липидную концентрацию определяют путем сравнения с градуировочной кривой со всеми липидными компонентами в данных RDV с подбором квадратической кривой. Молярную концентрацию каждого липида рассчитывали, исходя из его молекулярной массы.
Описание общего процесса LNP для формирования соединен ия 32
Данные липидные наночастицы получены с использованием процесса сталкивающихся струй. Данные частицы сформированы посредством смешивания липидов, растворенных в спирте, с миРНК, растворенной в цитратном буфере. Данный липидный раствор содержал в себе катионный липид, вспомогательный липид (холестерин), липид PEG (например, PEG-C-DMA, PEG-DMG) и DSPC в концентрации 5-15 мг/мл, с заданной 9-12 мг/мл, в спирте (например, этиловом спирте). Соотношение данных липидов имеет диапазон молярных процентов 25-98 для данного катионного липида, с расчетным 35-65, данный вспомогательный липид имеет диапазон молярных процентов от 0-75 с расчетным 30-50, данный липид PEG имеет диапазон молярных процентов от 1-15 с расчетным 1-6, и DSPC имеет диапазон молярных процентов 0-15 с расчетным 0-12. Данный раствор миРНК содержит в себе одну или несколько последовательностей миРНК в интервале концентраций от 0,3 до 1,0 мг/мл, с расчетной 0,3-0,9 мг/мл в солевом растворе забуференном цитратом натрия, со значением рН в диапазоне 3,5-5. Данные две жидкости нагревали до температуры в диапазоне 15-40°C, расчетная 30-40°C, и затем смешивали в смесительном аппарате со сталкивающимися струями, сразу же с образованием LNP. Данный teeID имеет диапазон от 0,25 до 1,0 мм и общую скорость потока 10-600 мл/мин. Комбинация скорости потока и внутреннего диаметра трубы (tubing ID) обладает эффектом контроля размера частиц данных LNP между 30 и 200 нм. Данную суспензию LNP затем смешивают с забуференным раствором при более высоком значении рН с коэффициентом смешивания в диапазоне от 1:1 до 1:3 об./об., но рассчитано 1:2 об./об. Температура данного забуференного раствора находится в диапазоне 15-40°C, расчетная 30-40°C. Данные смешанные LNP выдерживают от 30 минут до 2 часов до этапа анионообменной фильтрации. Температура во время инкубации находится в диапазоне 15-40°C, расчетная 30-40°C. После инкубирования данный раствор фильтруют через 0,8 мкм фильтр, включающий в себя анионообменную ступень. В этом процессе используются ID труб в диапазоне от 1 мм ID до 5 мм ID и скорость потока от 10 до 2000 мл/мин. Данные LNP являются концентрированными посредством процесса ультрафильтрации, в котором спирт удаляется и цитратный буфер замещен на конечный буферный раствор, такой как забуференный фосфатом физиологический раствор. В данном процессе ультрафильтрации используется формат проточной фильтрации вдоль потока (TFF). В этом процессе используется мембрана с отсечкой номинальной молекулярной массы в диапазоне 30-500 кДа. Данная мембрана может быть в виде пористого волокна или кассеты с плоской поверхностью. Процесс TFF с соответствующей точкой отсечки молекулярной массы сохраняет LNP в ультраконцентрате и данный фильтрат или ультрафильтрат содержит в себе спирт; цитратный буфер; излишки конечного буфера. Данный процесс TFF представляет собой многоступенчатый процесс, с первичной концентрацией к концентрации миРНК 1-3 мг/мл. После концентрирования, данный раствор LNP диафильтруют против 10-20 объемов конечного буфера для удаления спирта и осуществления обмена буферов. Данное вещество затем концентрируют дополнительно 1-3-кратно. Конечными этапами процесса LNP являются стерилизирующая фильтрация концентрированного раствора LNP и помещение данного продукта в ампулы.
Аналитическая процедура
Концентрация миРНК
Концентрации дуплекса миРНК были определены посредством высокоемкой анионообменной высокоэффективной жидкостной хроматографии (SAX-HPLC) с использованием системы Waters 2695 Alliance (Water Corporation, Milford MA) с детектором 2996 PDA. Данные LNP, иначе называемые Системы доставки RNAi (RDV), обработаны с помощью 0,5% Triton X-100 для высвобождения общей миРНК, и проанализированы посредством сепарирования SAX с использованием колонки Dionex BioLC DNAPac PA 200 (4×250 мм) с УФ-детектором при 254 нм. Мобильная фаза состоит из A: 25 мМ NaClO4, 10 мМ Tris, 20% EtOH, pH 7,0 и B: 250 мМ NaClO4, 10 мМ Tris, 20% EtOH, pH 7,0 с линейным градиентом от 0-15 мин и скоростью потока 1 мл/мин. Количество миРНК определено посредством сравнения с калибровочной кривой миРНК.
Степень инкапсулирования
Флуоресцентный реагент SYBR Gold использовали для количественного анализа РНК для контроля степени инкапсулирования RDV. RDV с или без Triton X-100 использовали для определения количества свободной миРНК и общей миРНК. Данное исследование осуществлено с использованием микропланшетного спектрофотометра SpectraMax M5e компании Molecular Devices (Sunnyvale, CA). Образцы стимулировали при 485 нм и измеряли флуоресценцию при 530 нм. Количество миРНК определяли путем сравнения с калибровочной кривой миРНК.
Степень капсулирования=(1-свободная миРНК/общая миРНК)×100%
Размер частиц и полидисперсные свойства
RDV, содержащие в себе 1 мкг миРНК, разводили до конечного объема 3 мл с помощью 1×PBS. Размер частиц и полидисперсные свойства данных образцов оценивали методом динамического рассеяния света с использованием прибора ZetaPALS (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY). Интенсивность рассеянного излучения оценивали посредством He-Ne лазера при 25°C с углом рассеивания 90°.
Анализ дзета-потенциала
RDV, содержащие в себе 1 мкг миРНК, разводили до конечного объема 2 мл с помощью 1 М Tris-буфера (pH 7,4). Электрофоретическую подвижность образцов оценивали с использованием прибора ZetaPALS instrument (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY) с электродом и He-Ne лазером в качестве источника света. Предел Смолуховского был принят в расчете дзета-потенциалов.
Липидный анализ
Индивидуальные липидные концентрации определяют посредством обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии (RP-HPLC), используя систему Waters 2695 Alliance (Water Corporation, Milford MA) с детектором заряженного аэрозоля Corona (CAD) (ESA Biosciences, Inc, Chelmsford, MA). Индивидуальные липиды в RDV анализируют, используя колонку Agilent Zorbax SB-C18 (50×4,6 мм, размер частиц 1,8 мкм) с CAD при 60°C. Мобильная фаза состоит из A: 0,1% TFA в H2O и B: 0,1% TFA в IPA. Градиент изменяется от 60% мобильной фазы A и 40% мобильной фазы B с момента времени 0 до 40% мобильной фазы A и 60% мобильной фазы B в момент времени 1,00 мин; 40% мобильной фазы A и 60% мобильной фазы B с 1,00 по 5,00 мин; 40% мобильной фазы A и 60% мобильной фазы B с 5,00 мин до 25% мобильной фазы A и 75% мобильной фазы B на 10,00 мин; 25% мобильной фазы A и 75% мобильной фазы B с 10,00 мин до 5% мобильной фазы A и 95% мобильной фазы B на 15,00 мин; и 5% мобильной фазы A и 95% мобильной фазы B с 15,00 до 60% мобильной фазы A и 40% мобильной фазы B на 20,00 мин со скоростью потока 1 мл/мин. Индивидуальную липидную концентрацию определяют путем сравнения с калибровочной кривой со всеми липидными компонентами в данных RDV с подбором квадратической кривой. Молярную концентрацию каждого липида рассчитывали, исходя из его молекулярной массы.
Общее получение LNP для различных композиций в табл ице 1
Суспензии наночастиц миРНК, представленных в таблице 1, были получены путем растворения миРНК и/или молекул носителя в 20 мМ натрий цитратном буфере (рН 5,0) в концентрации приблизительно 0,40 мг/мл. Липидные растворы получают путем растворения смеси катионного липида (например, 32, смотрите структуру в таблице 2), DSPC, холестерина, и PEG-DMG (соотношения представлены в таблице 1) в абсолютном этаноле в концентрации приблизительно 8 мг/мл. Соотношение азота к фосфату составляет приблизительно 6:1.
Практически одинаковые объемы растворов миРНК/носитель и липидных растворов доставляются с помощью двух насосов FPLC при одинаковой скорости потока в смесительный Т-образный коннектор. Возвратный клапан используется для регулирования необходимого размера частиц. Полученную млечную смесь собирали в стерильные стеклянные бутыли. Эту смесь затем разбавляли равным объемом цитратного буфера, с последующим добавлением равного объема PBS (pH 7,4), фильтровали через ионообменный мембранный фильтр для удаления любых свободных миРНК/носитель из данной смеси. Ультрафильтрацию против PBS (7,4) используют для удаления этанола и для замены буфера. Конечный LNP получали путем концентрирования до требуемого объема и фильтрации в стерильных условиях через 0,2 мкм фильтр. Полученные LNP описываются с точки зрения размера частиц, дзета-потенциала, общего содержания липида, инкапсулированной нуклеиновой кислоты, и общей концентрации нуклеиновой кислоты.
Процесс изготовления LNP
В неограничивающем примере LNP получают в большом объеме следующим образом. Данный процесс состоит из (1) получения липидного раствора; (2) получения раствора миРНК/носитель; (3) смешивания/формирования частиц; (4) инкубации; (5) разведения; (6) ультрафильтрования и концентрирования.
Получение липидного раствора
Стеклянные флаконы для реактивов объемом 2 л и мерные цилиндры были апирогенированы. Липиды нагревали до комнатной температуры. В данный стеклянный флакон для реагентов переносили 0,8 г соединения 32 с помощью пипетки и добавляли 1,2 г DSPC, 3,5 г холестерина, 0,9 г PEG-DMG. К данной смеси добавляли 1 л этилового спирта. Данный флакон для реагентов помещали в нагретую водяную баню, в которой температура не превышает 50°C. Данную липидную суспензию перемешивают с помощью магнитной мешалки. Датчик термопары помещают в данную суспензию через одно горлышко флакона с круглым дном с герметичным переходником. Данную суспензию нагревают при 30-40°C до тех пор, пока она не станет прозрачной. Данный раствор оставляют остывать до комнатной температуры.
Получение раствора миРНК/носитель
В стерильный контейнер, такой как бутыль для хранения Corning, взвешивают 0,4 г с поправкой на фактор стабилизации воды (приблизительно 1,2) порошка миРНК-1. Данную миРНК переносят в апирогенный стеклянный флакон для реагентов объемом 2 л. Данный контейнер для взвешивания споласкивают 3 раза цитратным буфером (20 мМ, pH 5,0), и данные смывы помещают в данный стеклянный флакон объемом 2 л, и доводят объем цитратным буфером до 1 л. Концентрацию данного раствора миРНК определяют с помощью УФ спектрофотометра, применяя следующую процедуру. Из данного раствора забирают 20 мкл, разводят в 50 раз до 1000 мкл и считывают показание УФ прибора, записанные при А269 нм после выставления бланка по цитратному буферу. Этот процесс повторяют. Если показатели для двух образцов сопоставимы, берется среднее значение и проводится расчет концентрации, принимая во внимание коэффициенты экстинции данных миРНК. Если конечная концентрация выпадает из диапазона 0,40±0,01 мг/мл, данную концентрацию корректируют путем добавления большего количества порошка миРНК/носитель, или добавления большего количества цитратного буфера. Этот процесс повторяют для второй миРНК, если применяется.
Альтернативно, если данный раствор миРНК/носитель включает в себя дуплекс единственной миРНК и/или носитель, вместо коктейля двух или более дуплексов миРНК и/или носителя, тогда это раствор миРНК/носитель растворяют в 20 мМ цитратном буфере (pH 5,0) для получения конечной концентрации 0,4 мг/мл.
Растворы липида и этанола затем фильтруют в стерильных условиях через Pall Acropak 20 0,8/0,2 мкм стерильный фильтр PN 12203 в апирогенный стеклянный сосуд, используя перистальтический насос Master Flex модель 7520-40, для получения стерильного исходного материала для процесса инкапсулирования. Процесс фильтрации осуществляют в 80 мл с площадью мембраны 20 см2. Скорость потока составляет 280 мл/минуту. Этот процесс является шкалируемым посредством увеличения диаметра трубы и площади фильтрации.
Этап формирование частиц - смешивание
Используя двухцилиндровый шприцевый насос с приводом (Harvard 33 Twin Syringe), данный стерильный раствор липид/этанол и данный стерильный раствор миРНК/носитель или миРНК/коктейль носителей/цитратный буфер (20 мМ цитратный буфер, pH 5,0) смешивали в Т-смесителе с внутренним диаметром (ID) 0,5 мм (стадия смешивания I) при равных, или практически равных, скоростях потока. Полученная на выходе суспензия LNP содержала в себе 40-50 об.% этанола. При необходимости иметь на выходе суспензию с 45 об.% этанола, данные стерильные растворы липид/этанол, миРНК/носитель или миРНК/коктейль носителей/цитратный буфер, смешивали при скорости потока 54 мл/мин и 66 мл/мин, так чтобы получить общую скорость потока данной смеси на выходе 120 мл/мин.
Разведение
Выходящий поток, получено на стадии смешивания I подавали непосредственно в Т-смеситель с ID 4 мм (стадия смешивания II), где он разводится забуференным раствором при более высоком значении рН (20 мМ цитрат натрия, 300 мМ хлорид натрия, pH 6,0) в соотношении 1:1 об./об.%. Этот забуференный раствор находится при температуре в диапазоне 30-40°C и доставляется в 4 мм Т-смеситель посредством перистальтического насоса (Cole Parmer MasterFlex L/S 600 RPM) при скорости потока 120 мл/мин.
Выходящий поток, получено на стадии смешивания II, подавали непосредственно в Т-смеситель с ID 6 мм (стадия смешивания III), где он разводится забуференным раствором при более высоком значении рН (PBS, pH 7,4) в соотношении 1:1 об./об.%. Этот забуференный раствор находится при температуре в диапазоне 15-25°C и доставляется в 6 мм Т-смеситель посредством перистальтического насоса (Cole Parmer MasterFlex L/S 600 RPM) при скорости потока 240 мл/мин.
Инкубирование и удаление свободной миРНК
Выходящий поток, получено на стадии смешивания III, после смешивания инкубируют в течение 30 минут. Данное инкубирование проводится при температуре 35-40°C и данную обрабатываемую суспензию защищают от воздействия света. После инкубирования свободную (неинкапсулированную) миРНК удаляют посредством анионного обмена с помощью фильтров для хроматографии Mustang Q (капсулы). Перед применением данные фильтры для хроматографии предварительно обрабатывают, последовательно промывая струей 1 н. NaOH, 1 M NaCl, и конечным раствором 12,5 об.% этанола в PBS. Значение рН данной конечной промывочной жидкости проверяют для обеспечения значения рН<8. Данную инкубированную фракцию LNP затем фильтруют через фильтры Mustang Q посредством перистальтического насоса (Cole Parmer MasterFlex L/S 600 RPM) при скорости потока приблизительно 100 мл/мин. Данную профильтрованную фракцию собирают в стерильный стеклянный контейнер для ультрафильтрования и концентрирования, как указано далее.
Ультрафильтрование, концентрирование и стерилизующее фильтрование
Процесс фильтрования представляет собой регулируемый во времени процесс и скорости потока должны контролироваться тщательным образом. Это двухэтапный процесс; первый этап представляет собой этап концентрирования, на котором берется данное разведенное вещество и концентрируется приблизительно 8-кратно, для получения концентрации миРНК приблизительно 0,3-0,6 мг/мл.
На данном первом этапе кольцевой штатив со встроенной ультрафильтрационной мембраной 100 кДа PES (Spectrum Labs), присоединен к перистальтическому насосу (Spectrum KrosFloII System). В данный резервуар добавляют 9,2 л стерильной дистиллированной воды; 3 л сливают и выбрасывают, и оставшееся количество фильтруют через пермеат и выбрасывают. 5,3 л 0,25 н. гидроксида натрия добавляют в данный резервуар, 1,5 л сливают и выбрасывают, и 3,1 л фильтруют через пермеат и выбрасывают. Оставшееся количество гидроксида натрия оставляют в данной системе для очистки (по меньшей мере, 10 минут), и затем данный насос осушают. 9,2 л 70% (об./об.) изопропилового спирта добавляют в данный резервуар, 1,5 л сливают и выбрасывают, и оставшееся количество фильтруют через пермеат и выбрасывают. Добавляют 6 л кондиционирующего буфера (12% этанол в забуференном фосфатом физиологическом растворе), 1,5 л сливают и выбрасывают, а оставшееся количество фильтруют через пермеат до тех пор, пока стоковая жидкость не будет иметь нейтральное значение рН (7-8). Значение потока сквозь мембрану записывают, а затем насос осушают.
Данный разведенный раствор LNP помещают в данный резервуар до метки 1,1 л. Насос включают на 2,3 л/мин. После 5 минут циркуляции в замкнутой системе, данный насос переключают на 62,5 мл/мин и уровень жидкости в данном резервуаре находится неизменным приблизительно на 950 мл. Данный разведенный раствор LNP концентрируют с 9,8 л до 1,1 л в течение 140 минут и насос останавливают, когда весь разбавленный раствор LNP перемещен в резервуар.
Второй этап представляет собой этап диафильтрации, на котором происходит обмен этанол/водяного буфера на забуференный фосфатом физиологический раствор. На этом этапе используют приблизительно 10-20 диафильтрующих объемов забуференного фосфатом физиологического раствора. После диафильтрования предпринято второе концентрирование для концентрирования данной суспензии LNP 3-кратно до приблизительно 1-1,5 мг/мл миРНК. Данную концентрированную суспензию собирали в стерильные пластиковые PETG сосуды. Конечную суспензию затем фильтровали последовательно через фильтры Pall 0,45 мкм PES и Pall 0,2 мкм PES для конечной стерилизации перед наполнением флаконов.
В одном варианте осуществления композиция LNP по настоящему изобретению содержит в себе катионный липид по формуле А, холестерин, DSPC и PEG-DMG.
В другом варианте осуществления композиция LNP по настоящему изобретению дополнительно содержит в себе криопротектор.
В другом варианте осуществления данный криопротектор представляет собой сахарозу, трегалозу, рафинозу, стахиозу, вербаскозу, маннит, глюкозу, лактозу, мальтозу, мальтотриоз-гептаозу, декстран, оксиэтилированный крахмал, инсулин, сорбит, глицерин, аргинин, гистидин, лизин, пролин, диметилсульфоксид или любую их комбинацию.
В другом варианте осуществления данный криопротектор представляет собой сахарозу.
В другом варианте осуществления данный криопротектор представляет собой трегалозу.
В другом варианте осуществления данный криопротектор представляет собой комбинацию сахарозы и трегалозы.
В другом варианте осуществления данная композиция LNP содержит в себе катионный липид (13Z,16Z)-N,N-диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амин (соединение 32), холестерин, DSPC и PEG-DMG.
Полученные LNP охарактеризованы на основании размера частиц, дзета-потенциала, содержания спирта, общего содержания липида, инкапсулированных нуклеиновых кислот и общей концентрации нуклеиновых кислот.
Специалисту в данной области будет полностью понятно, что настоящее изобретение хорошо адаптируется для осуществления целей и получения результатов и упомянутых преимуществ, а также тех, которые связаны с этим. Способы и композиции, описанные здесь, в качестве в настоящее время типичных вариантов осуществления, являются иллюстративными и не предназначены для ограничения диапазона данного изобретения. Специалисту в данной области будут очевидны изменения и другие применения, которые охвачены сущностью данного изобретения и определены диапазоном формулы изобретения.
Таблица 1
Композиция отобранных составов липидных наночастиц
Условное обозначение LNP Липидные компоненты и молярные соотношения siRNA N/P
32 (58%) Холестерин (30%) DSPC (10%) PEG-DMG (2%) SEQ ID 5/6 6
32 (58%) Холестерин (30%) DSPC (10%) PEG-DMG (2%) SEQ ID 7/8 6
32 (58%) Холестерин (30%) DSPC (10%) PEG-DMG (2%) SEQ ID 9/10 6
Таблица 2
Химические структуры липидов в композициях таблицы 1
Липид Химическая структура
32
Figure 00000068
Холестерин
Figure 00000069
DSPC
Figure 00000070
PEG-DMG
Figure 00000071
Используя вышеописанные процессы LNP, были установлены специфические LNP в следующих соотношениях:
Номинальная композиция
Катионный липид/холестерин/PEG-DMG 60/38/2
Катионный липид/холестерин/PEG-DMG/DSPC 58/30/2/10
Luc миРНК
5’-iB-AUAAGGCUAUGAAGAGAUATT-iB 3’ (SEQ ID NO:1)
3’-UUUAUUCCGAUACUUCUCUAU-5’ (SEQ ID NO:2)
AUGC - рибоза
iB - инвертированный дезокси с удаленными азотистыми основаниями
UC - 2’-фтор
AGT - 2’-дезокси
AGU - 2’-OCH3
Номинальная композиция
Катионный липид/холестерин/PEG-DMG 60/38/2
Катионный липид/холестерин/PEG-DMG/DSPC 40/48/2/10
Катионный липид/холестерин/PEG-DMG/DSPC 58/30/2/10
миРНК ApoB
5’-iB-CUUUAACAAUUCCUGAAAUTsT-iB-3’ (SEQ ID NO:3)
3’-UsUGAAAUUGUUAAGGACUsUsUsA-5’ (SEQ ID NO:4)
AUGC-рибоза
iB - инвертированный дезокси с удаленными азотистыми основаниями
UC - 2’-фтор
AGT - 2’-дезокси
AGU - 2’-OCH3
UsA - фосфоро-серная связь
миРНК бета -катенина
5’-iB-CUGUUGGAUUGAUUCGAAAUsU-iB-3’ (SEQ ID NO:5)
3’-UsUGACAACCUAACUAAGCUUU-5’ (SEQ ID NO:6)
AUGC - рибоза
iB - инвертированный дезокси с удаленными азотистыми основаниями
UC - 2’-фтор
AGT - 2’-дезокси
AGU - 2’-OCH3
UsA - фосфоро-серная связь
5’-iB-ACGACUAGUUCAGUUGCUUUsU-iB-3’ (SEQ ID NO:7)
3’-UsUUGCUGAUCAAGUCAACGAA-5’ (SEQ ID NO:8)
AUGC - рибоза
iB - инвертированный дезокси с удаленными азотистыми основаниями
UC - 2’-фтор
AGT - 2’-дезокси
AGU - 2’-OCH3
UsA - фосфоро-серная связь
5’-iB-ACGACUAGUUCAGUUGCUUUU-iB-3’ (SEQ ID NO:9)
3’-UUUGCUGAUCAAGUCAACGAA-5’ (SEQ ID NO:10)
AUGC - рибоза
iB - инвертированный дезокси с удаленными азотистыми основаниями
UC - 2’-фтор
AGT - 2’-дезокси
AGU - 2’-OCH3
UsA - фосфоро-серная связь
Синтез олигонуклеотидов хорошо известен в данной области (Смотрите патентные заявки США: US 2006/0083780, US 2006/0240554, US 2008/0020058, US 2009/0263407 и US 2009/0285881, и патентные заявки PCT: WO 2009/086558, WO 2009/127060, WO 2009/132131, WO 2010/042877, WO 2010/054384, WO 2010/054401, WO 2010/054405 и WO 2010/054406). Раскрытые и используемые в примерах миРНК были синтезированы с использованием стандартных твердофазных процедур.
Пример 1
Оценка эффективности in vivo на мышах
Была проведена оценка эффективности in vivo LNP, применяемых в соединениях 1-44, в номинальных композициях, описанных непосредственно выше. Данные миРНК нацелены на транскрипт мРНК гена люциферазы жука-светляка (Photinus pyralis) (№ доступа M15077). Первичная последовательность и характер модификации химической структуры данной миРНК люциферазы представлен выше. В модели in vivo люциферазы используется трансгенная мышь, у которой кодирующая последовательность люциферазы жука-светляка присутствует во всех клетках. Трансгенные мыши ROSA26-LoxP-Stop-LoxP-Luc (LSL-Luc), запатентованные Институтом Dana Farber Cancer Institute, индуцированы для экспрессии гена люциферазы сначала посредством удаления данной последовательности LSL с помощью рекомбинантного вируса Ad-Cre (Vector Biolabs). Благодаря органотропной природе данного вируса, экспрессия ограничена в печени, при доставке посредством инъекции в хвостовую вену. Уровни экспрессии люциферазы в печени вычисляли количественно, оценивая световой выход, используя систему для формирования изображений IVIS (Xenogen), после введения субстрата люциферина (Caliper Life Sciences). Уровни люминисценции до введения препарата оценивали перед введением данных RDV. Люциферин в PBS (15 мг/мл) вводили внутрибрюшинно (в/б) в объеме 150 мкл. После инкубационного периода длительностью четыре минуты мышам проводили анестезию с помощью изофлюрана и помещали их в систему для формирования изображения IVIS. Данные RDV (содержащие в себе миРНК) в носителе PBS, инъекционно вводили в хвостовую вену в объеме 0,2 мл. Уровни конечной дозы находятся в диапазоне от 0,1 до 0,5 мг/кг миРНК. В качестве контроля вводился носитель PBS. Через 48 часов после введения дозы, используя метод, описанный выше, получали сформированные изображение от данных мышей. Изменения светового выхода люциферина напрямую коррелируют с уровнями мРНК люциферазы и представляют собой непрямое измерение активности миРНК люциферазы. Результаты эффективности in vivo выражаются как % ингибирования люминесценции относительно уровней люминесценции до введения дозы. Системное введение RDV, содержащих в себе миРНК люциферазы, снижает экспрессию люциферазы в дозозависимой манере. Более высокую эффективность наблюдали у мышей, которым вводили RDV, содержащие в себе соединение 1, по сравнению с RDV, содержащим в себе катионный липид октил-CLinDMA (OCD) (фиг.1). OCD является известным и описан в WO 2010/021865. Схожую эффективность наблюдали у мышей, которым вводили дозы RDV, содержащих в себе соединения 32 и 33, по сравнению с RDV, содержащим в себе катионный липид MC3 (соединение 46) (фиг.11).
Пример 2
In vitro анализ связывания ApoE
LNP инкубировали при 37°C в 90% резус-сыворотке при конечной концентрации LNP 4 мкг/мл. Инкубирование продолжается в течение 20 минут с орбитальным вращением. После инкубирования образцы разводили 1:20 с помощью PBS и 100 мкл аликвот каждого разведенного образца помещали в лунки 96-луночного планшета с покрытием анти-PEG антитела (Life Diagnostics по каталогу № P-0001PL). После инкубирования при комнатной температуре в течение 1 часа, планшет отмывали 5× с помощью 300 мкл PBS. После отмывки в каждую лунку добавляли 50 мкл 0,2% Triton X-100 и планшет инкубировали при 37°C в течение 10 минут с последующим встряхиванием на планшетном шейкере в течение 1 минуты при 750 об/мин. Образцы замораживали до осуществления ApoE ELISA и ПЦР-анализа структуры «стебель-петля» образцов.
Анализ ApoE ELISA осуществляют для количественного определения связывания ApoE с данными LNP после инкубирования в резус-сыворотке. Анти-ApoE антитело (Milipore, по каталогу № AB947) разводят 1:1000 в PBS и 100 мкл разведенного антитела добавляют в каждую лунку полистирольного планшета с высокой степенью связывания. Данный планшет с антителом инкубируют в течение ночи при 4°C, после чего планшет отмывают 2× с помощью 200 мкл PBS. Далее, в каждую лунку добавляют 200 мкл буфера, содержащего в себе 1% BSA и 0,05% Tween-20 в PBS (инкубационный буфер), с последующим инкубированием при комнатной температуре в течение 1 часа. Планшеты отмывают 5× с помощью PBS, содержащего в себе 0,05% Tween-20. Замороженные образцы для лизиса тритоном размораживали и разводили 1:6 буфером для инкубирования и аликвоту по 100 мкл пробного образца помещали в лунки планшета с ApoE антителом. Инкубирование длится в течение 1 часа при комнатной температуре, с последующими отмывками 5× с помощью PBS, содержащем в себе 0,05% Tween-20. После отмывки 100 мкл биотинилированного анти-ApoE антитела (Mabtech, по каталогу № E887-biotin), разведенного 1:500 в буфере для инкубирования, добавляли в каждую лунку и инкубировали в течение 1 часа при комнатной температуре, с последующими отмывками 5× с помощью 0,05% Tween-20 в PBS. Затем добавляли стрептавидин-HPR (Thermo, по каталогу № TS-125-HR) 100 мкл на лунку и инкубировали в течение 1 часа при комнатной температуре. После отмывки 5× с помощью 0,05% Tween-20 в PBS, в каждую лунку добавляли 100 мкл субстрата TMB (Thermo, по каталогу № 34028), с последующим инкубированием при комнатной температуре в течение 20 минут в темноте. Данную колориметрическую реакцию останавливали, добавляя 100 мкл стоп-раствора TMB (KPL, по каталогу № 50-85-04), и определяли поглощение при 450 нм. Калибровочную кривую ApoE получали посредством разведения резус рекомбинантного АроЕ в буфере для разведения с 0,03% Triton X-100, с концентрациями в диапазоне от 100 нг/мл до 0,78 нг/мл. Стандарты ApoE определяли в анализе ELISA в параллели с данными опытными образцами. Контрольную резус-сыворотку (не содержащую в себе LNP) использовали для получения фоновых субстратов для сигнала АроЕ, независимого от LNP, в данном анализе ELISA.
Протокол RT -ПЦР для структуры «стебель-петля»
Для нормализации связывания АроЕ с количеством LNP, связанного на анти-PEG антитело планшете, данное количество миРНК, оставшееся в лунке с анти-PEG антителом, определяли количественно с помощью ПЦР «стебель-петля» и определяли соотношение с числом инкапсулированных миРНК на LNP, для получения приблизительной оценки общего количества связанных частиц LNP на лунку.
Получение маркировочны х калибровочных кривых образцов
Калибровочную кривую получали с использованием молекулярной массы данной миРНК (13693 г/моль для ApoB 17063) для подсчета числа копий. Высокий стандарт должен содержать в себе 1011 копий в 3 мкл. 10-кратные серийные разведения были осуществлены сквозь ряд аналитического планшета до тех пор, пока низший стандарт содержит 102 копий в 3 мкл. Разводят 1:80 0,2% Triton X-100 в воде и с помощью пипетки вносят 20 мкл данного разведенного Triton X-100 в 10 лунок 96-луночного планшета. В каждую лунку данного планшета добавляют 30 мкл серийных разведений из калибровочной кривой и смесь. 10 мкл из маркировочной калибровочной кривой используют в реакции обратной транскрипции.
RT -ПЦР «стебель петля» - опытные образцы и калибровочная кривая
Лизаты Triton из планшета с иммобилизованным антителом PEG разводили 1 к 2000 в воде, не содержащей нуклеазы. В каждую лунку 96-луночного планшета Micro-Amp QPCR (ABI, по каталогу № N801-0560) добавляли 10 мкл смеси праймеров «RT-Primer Mix» (Applied Biosystem’s TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit, по каталогу № 4366596).
Компоненты смеси праймеров RT мкл/rxn Конечная концентрация
ApoB RT-праймер (10 мкМ) 0,6 200 нМ
10× буфер 2
Вода 7,4
Последовательность праймера ApoB RT: 5’ GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACCTTTAACA3’ (SEQ ID NO:11)
Аликвоты по 10 мкл каждого опытного образца (разведенного 1 к 2000) или маркировочной калибровочной кривой (выше) были внесены в 96-луночный планшет. Данный планшет накрывали матрасиком (ABI, по каталогу № N801-0550), для сведения к минимуму испарения. Данный планшет центрифугировали при 800 об/мин в течение 1 минуты. Затем данный планшет помещали в термоциклер и осуществляли реакцию, используя следующие циклические параметры:
Циклы 94°C 10 минут
75°C 2 минуты
60°C 3 минуты
50°C 3 минуты
40°C 3 минуты
30°C 3 минуты
4°C удерживание
Далее, в каждую лунку добавляют 10 мкл смеси «RT Mix» (Applied Biosystem’s TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit, по каталогу № 4366596).
Компоненты смеси RT мкл/rxn
100 мМ dNTP 0,3
10× RT буфер 1
Ингибитор РНазы 0,38
Multiscribe RT фермент 1
Вода 7,32
Данная циклическая реакция RT содержит в себе 10 мкл опытного образца, 10 мкл смеси праймеров RT и 10 мкл компонентов смеси RT, с общим объемом реакционной смеси 30 мкл. Конечная концентрация RT-праймера в общем объеме RT-смеси 30 мкл составляет 200 нМ. Затем данный планшет герметически закрывают тем же матрасиком для планшета, центрифугируют при 800 об/мин в течение 1 минуты, затем помещают в термоциклер и осуществляют реакцию, используя следующие циклические параметры:
Циклы 16°C 30 минут
42°C 30 минут
85°C 5 минут
4°C удерживание
Далее, в каждую лунку нового 96-луночного планшета Fast (Applied Biosystem’s TaqMan Fast Universal PCR Master Mix, по каталогу № 4352042) добавляют 15 мкл смеси Fast Enzyme/праймер-зонд.
ApoB
Компоненты базовой смеси ПЦР мкл/rxn Конечная концентрация
Смесь фермента Fast (2× исходная смесь) 10
прямой праймер (100 мкМ) 0,18 900 нМ
обратный праймер (100 мкМ) 0,18 900 нМ
зонд (100 мкМ) 0,05 250 нМ
Вода 4,59
Последовательности праймеров ApoB и зонда:
17063DC F3 GGCGCGAAATTTCAGGAATTGT (SEQ ID NO:12)
17063DC Pr2 CACTGGATACGACCTTTAACA (SEQ ID NO:13)
Universal R2 AGTGCAGGGTCCGAG (SEQ ID NO:14)
В планшет Fast Enzyme Mix вносили по 5 мкл каждой RT-реакции. Данный планшет центрифугировали при 1000 об/мин в течение 1 минуты и осуществляли анализ QPCR на AB17900 с Fast Block. Циклические параметры следующие: 1 цикл - 95°C в течение 20 секунд, с последующими 40 циклами - 95°C в течение 1 секунды, 60°C в течение 20 секунд.
Результат, получено в QPCR используют для расчета концентрации миРНК в лизатах Triton в планшете с иммобилизованным антителом PEG. Исходя из 500 миРНК на частицу LNP, может быть подсчитано число LNP, оставшихся в каждой лунке данного планшета с анти-PEG антителом. Используя концентрацию АроЕ на лунку, как определено в анализе ApoE ELISA, и число частиц LNP на лунку, можно рассчитать приблизительное количество связанных молекул АроЕ на частицу LNP.
#ApoE связанных молекул на LNP
Соединение Молекулы АроЕ/LNP
8 4,9
16 3,3
24 1,2
25 13,7
28 4,7
29 38
32 12,8
33 18,1
34 2,3
45 (KC2) 32,5
46 (MC3) 14,5
Пример 3
HI-TRAP™ анализ связывания на гепарин-сефарозе
Липидные наночастицы (LNP) с нейтральным зарядом поверхности не задерживаются после ввода пробы на гепарин-сефарозе с 1× физиологическим раствором, забуференным фосфатом Дульбекко (DPBS), в качестве рабочего буфера, но элюируются в свободный объем колонки. Аполипопротеин Е сыворотки (АроЕ) проявляет высокоаффинное связывание с гепарин сульфатом и было показано, что LNP связываются с гепарин-сефарозой в степени, зависящей от их внутренней способности связываться с АроЕ (в зависимости и от состава липидной наночастицы, и от концентрации АроЕ) после инкубирования с очищенными и/или рекомбинантными образцами АроЕ человека или образцами сыворотки. Липидные наночастицы с поверхностно связанным АроЕ связываются с гепарин-сефарозой с высокой аффинностью и элюируются только при высоком содержании соли (1 M NaCl).
Анализ связывания гепарин-сефарозы был осуществлен для определения связывания АроЕ сыворотки с липидными наночастицами, исходя из высокоаффинного взаимодействия, которое комплексы АроЕ-LNPA демонстрируют по отношению к гепарин-сефарозе.
Инкуб ирование
Липидные наночастицы инкубировали при 37°C в течение 20 мин в конечной концентрации миРНК 50 мкг/мл с различными концентрациями либо очищенного, либо рекомбинантного АроЕ человека, или 0,1-50% сывороткой крысы/мыши/макаки-резус/человека в 1× физиологическом растворе забуференном фосфатом Дульбекко (DPBS). После инкубирования с АроЕ или сывороткой образцы LNP разводили 10-кратно, используя 1×DPBS, и проводили анализ с помощью хроматографии на гепарин-сефарозе. Площадь пика удержанного LNP (после образования субстрата соответствующих сигналов гашения) сравнивали с общей площадью пика контрольного LNP без инкубирования с ApoE и/или сывороткой, для определения процентного содержания LNP, который претерпевает сдвиг в сторону высокоаффинного взаимодействия с гепарином после инкубирования с ApoE/сывороткой.
Условия для хроматографии на гепарин-сефарозе HI-TRAP™
Колонку для хроматографии на гепарин-сефарозе HI-TRAP™ (GE Healthcare; объем слоя 1 мл) уравновешивают либо с помощью 1×, либо 2×PBS Дульбекко; более высокая 2× концентрация соли используется для LNP с более высокой природной способностью к задержанию на гепарин-сефарозе (предположительно вследствие более высокого положительного поверхностного заряда).
Мобильная фаза A: 1× или 2×DPBS
Мобильная фаза B: 1 M NaCl в 10 мМ натрий-фосфатном буфере, pH 7,0
100% A доставляли изократически в течение 10 мин, с последующим ступенчатым градиентом до 100% В; выдерживали в течение дополнительных 10 мин; осуществляли ступенчатый градиент обратно к 100% А и повторно уравновешивали в течение дополнительных 10 мин перед введением следующего образца.
Скорость потока: 1 мл/мин
Объем вводимого образца: 50 мкл
Регистрация: УФ при 260 нм
HI-TRAP™ результаты связывания после инкубирования с сывороткой макаки-резус (2 × DPBS условия)
Соединение % связывания
32 100
33 <5
45 (KC2) 58
46 (MC3) 7
Пример 4
Оценка i n v ivo эффективности и токсичности у крыс
LNP, в которых используются соединения в номинальных композициях, описанных выше, оценивали на in vivo эффективность и повышение аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы на самках крыс Sprague-Dawley (Crl:CD(SD)) (Charles River Labs). Данная миРНК нацелена на транскрипт мРНК для гена АроВ (№ доступа NM 019287). Первичная последовательность и характер модификации химической структуры миРНК АроВ представлены выше. Данные RDV (содержащие в себе миРНК) в носителе PBS были инъекционно введены в хвостовую вену в объеме от 1 до 1,5 мл. Скорость введения составляла приблизительно 3 мл/мин. В каждой группе использовали по пять крыс. После введения LNP крыс помещали в клетки и содержали с нормальным рационом и наличием воды. Через шесть часов после введения дозы из клеток убирали еду. Вскрытие животных осуществляли через 24 часа после введения дозы LNP. Крысам проводили анестезию изофлураном в течение 5 минут, затем поддерживали под анестезией, помещая их в носовые конусы и продолжая подачу изофлурана до тех пор, пока не закончится обескровливание. Кровь собирают из полой вены, используя набор для венепункции типа «бабочка» 23 калибра, и аликвоты помещали в вакуумный контейнер сепаратора сыворотки для химического анализы сыворотки. Брали пункции удаленных хвостатых долей печени и помещали их в RNALater (Ambion) для анализа мРНК. Фиксированную ткань печени гомогенизировали и выделяли общую РНК, используя бисерную мельницу Qiagen bead mill и набор для выделения РНК Qiagen miRNA-Easy RNA isolation kit, следуя инструкциям фирмы-изготовителя. Уровни мРНК АроВ печени определяли с помощью количественной RT-ПЦР. Информационную РНК амплифицировали из очищенной РНК, используя набор коммерческих зондов АроВ крысы (Applied Biosystems, по каталогу № RN01499054_m1). Реакцию ПЦР осуществляли на оборудовании ABI 7500 с 96-луночным Fast Block. Уровень мРНК ApoB нормализовали к мРНК PPIB «домашнего хозяйства» (NM 011149). Уровни мРНК PPIB были определены с помощью RT-ПЦР, используя коммерческий набор зондов (Applied Biosytems, по каталогу № Mm00478295 m1). Результаты представлены в виде соотношения мРНК ApoB/мРНК PPIB. Все данные мРНК выражены по отношению к контрольной дозе PBS. Анализы ALT и AST сыворотки были осуществлены на оборудовании Siemens Advia 1800 Clinical Chemistry Analyzer, с использованием реагентов Siemens аланинаминотрансферазы (по каталогу № 03039631) и аспартатаминотрансферазы (по каталогу № 03039631). Схожую эффективность и повышенную сопротивляемость наблюдали у крыс, которым вводили дозы RDV, содержащих в себе соединение 32 или 33, в сравнении с RDV, содержащим в себе катионный липид DLinKC2DMA (соединение 45) или MC3 (соединение 46, фиг.2).
Пример 5
Определение уровней катионных липидов в печени крыс/обезьян
Ткань печени взвешивали в пробирках объемом 20 мл и гомогенизировали в воде 9 об/вес, используя GenoGrinder 2000 (OPS Diagnostics, 1600 ударов/мин, 5 мин). Аликвоту 50 мкл каждого гомогената ткани смешивали с 300 мкл сольвента для экстракции/преципитации белка (50/50 ацетонитрил/метанол содержащий 500 нМ внутреннего стандарта) и данный планшет центрифугировали до осаждения белкового осадка. 200 мкл каждого супернатанта затем переносили в изолированные лунки 96-луночного планшета и проводили непосредственный анализ 10 мкл образцов с помощью ЖХ/МС-MC.
Стандарты готовили путем внесения известных количеств метилового исходного раствора соединения в необработанный гомогенат печени крысы (9 об. воды/вес печени). Аликвоты (50 мкл) каждого стандарт/гомогенат печени смешивали с 300 мкл сольвента для экстракции/преципитации белка (50/50 ацетонитрил/метанол содержащий 500 нМ внутреннего стандарта) и данный планшет центрифугировали до осаждения белкового осадка. 200 мкл каждого супернатанта затем переносили в изолированные лунки 96-луночного планшета и проводили непосредственный анализ 10 мкл образцов с помощью ЖХ/МС-MC.
Абсолютное количественное определение в сопоставлении со стандартом, приготовленным и выделенным из гомогенатов печени, было осуществлено с использованием системы Aria LX-2 HPLC (Thermo Scientific), соединенной с масс-спектрометром с тремя квадрупольными линзами API 4000 (Applied Biosystems). Для каждой серии измерений, общий объем 10 мкл образца вносили в колонку BDS Hypersil C8 HPLC (Thermo, 50×2 мм, 3 мкм) при температуре окружающей среды.
Мобильная фаза A: 95% H2O/5% метанол/10 мМ муравьинокислый аммоний/0,1% муравьиная кислота. Мобильная фаза B: 40% метанол/60% n-пропанол/10 мМ муравьинокислый аммоний/0,1% муравьиная кислота. Скорость потока составляла 0,5 мл/мин и профиль градиентного элюирования был следующим: выдержать при 80% A в течение 0,25 мин, линейно изменить до 100% B за 1,6 мин, выдержать при 100% B в течение 2,5 мин, затем возвратить и выдержать при 80% A в течение 1,75 мин. Общее время выполнения составляло 5,8 мин. Параметры источника API 4000 были следующие CAD: 4, CUR: 15, GS1: 65, GS2: 35, IS: 4000, TEM: 550, CXP: 15, DP: 60, EP: 10.
У крыс, получавших дозы RDV, содержащего в себе соединения 32 или 33, уровни в печени были либо аналогичными, либо более низкими по сравнению с RDV, содержащим в себе катионный липид DLinKC2DMA (соединение 45) или MC3 (соединение 46, фиг.3). У макак, получавших дозы RDV, содержащего в себе соединения 32 или 33, уровни в печени были более низкими по сравнению с RDV, содержащим в себе катионный липид DLinKC2DMA (соединение 45) или MC3 (соединение 46, фиг.7).
Пример 6
Оценка i n v ivo эффективности ApoB у макак-резус
LNP, в которых используются соединения в номинальных композициях, описанных выше, оценивали на in vivo эффективность на самцах или самках макак-резус Macaca mullata. Данная миРНК нацелена на транскрипт мРНК для гена АроВ (№ доступа XM 001097404). Первичная последовательность и характер модификации химической структуры миРНК АроВ представлены выше. Данные RDV (содержащие в себе миРНК) в носителе PBS были введены посредством внутривенной инъекции в подкожную вену со скоростью введения 20 мл/мин до уровня дозы миРНК 0,25 мг/килограмм. Вводимые объемы были от 1,9 до 2,1 мл/килограмм, и вес макак находился в диапазоне от 2,5 до 4,5 килограмма. RDV или контрольный PBS вводили трем обезьянам. Через несколько дней после введения дозы, из бедренной артерии был произведен забор крови объемом 1 мл для проведения химического анализа сыворотки. Перед забором крови обезьяны голодали в течение ночи. В качестве меры эффективности, осуществляли мониторинг LDL-C как суррогатного маркера в 5’-3’ направлении уменьшения мРНК АроВ. На 4 день после системного введения RDV, содержащих в себе соединения 32 и 33 (0,25 мг/кг), сывороточные урони LDL-C были снижены до менее чем 30% от уровней до введения дозы (фиг.4).
Пример 7
Оценка i n v ivo эффективности β -катенина у макак-резус
В день исследования -7 перед введением дозы были собраны образцы биопсии печени (приблизительно 0,5-1 грам/образец), полученные от самцов макак-резус в результате лапароскопической хирургической резекции (резекция одного образца биопсии из наружного края одной, выбранной случайным образом, доли печени на обезьяну). Пункцию ткани размером 5 мм использовали для проведения анализа трех несмежных образцов приблизительно 50 мг из каждой биопсии, взятой перед введением дозы. Образцы сохраняли в RNAlater™ (Ambion) для дальнейшего анализа мРНК CTNNB1.
В день исследования 0 обезьянам вводили суспензии испытательных образцов липидных наночастиц (LNP) в физиологическом растворе, забуференном фосфатом (0,05-0,1 мг миРНК/мл) посредством внутривенной болюсной инъекции однократной дозы с расчетными дозами 0,67, 1,34 или 3,34 мг миРНК/мл. Для целей дозирования, площадь поверхности тела (BSA) (м2) оценивалась по массе тела (BW) в соответствии с установленной аллометрической шкалой отношений, представленной ниже (1):
BSA (м2)=0,11×BW(в кг)0,65
В дни исследования 2 и 7, через 48 часов и 168 часов после введения LNP, образцы биопсии печени (приблизительно 0,5-1 грамм/образец) собирали от обезьян посредством лапароскопической хирургической резекции (были проведены резекции 2 раздельных, выбранных случайным образом, долей печени на обезьяну). Пункцию ткани размером 5 мм использовали для проведения анализа трех несмежных образцов приблизительно 50 мг из каждой биопсии, взятой через 48 часов и 168 часов. Образцы сохраняли в RNAlater™ (Ambion) для дальнейшего анализа мРНК CTNNB1.
Уровни мРНК CTNNB1 измеряли посредством сравнительной количественной RT-ПЦР, с использованием набора праймер/зонд, утвержденного для CTNNB1, и нормализованы относительно уровней мРНК пептидилпролилизомеразы В (также известной как PPIB или циклофилин В) и уровней РНК 18S рибосомальной РНК (18S рРНК). Изменение экспрессии мРНК CTNNB 1 в печени определяли как разницу порогового количества циклов ПЦР (AACt) между образцами после введения дозы и каждым соответствующим образцом ткани печени обезьяны, взятым до введения дозы.
Расчет нокдаун мРНК CTNNB1 (относительно уровней перед введением дозы) проводился исходя из AACt, с использованием следующего соотношения:
мРНК (% нокдаун)-100-(100/2-δδCt)
обезьяны, получавшие дозы RDV, содержащих в себе соединения 32 и 33 и миРНК бета-катенина, проявляли устойчивый KD при дозах в диапазоне 0,67-3,34 мг/м2 (фиг.5).
(1) Руководящий документ Управления по контролю за продуктами и лекарствами США (FDA Guidance Document): «Guidance for Industry: Estimating the Maximum Safe Starting Dose in Initial Clinical Trials for Therapeutics in Adult Healthy Volunteers» July 2005, US Department of Health and Human Services, Food and Drug Administration - Center for Drug Evaluation and Research (CDER).
Пример 8
Оценка in vivo повышения ALT у макак-резус
Аланинаминотрансферазу (ALT) измеряют в сыворотке, полученной из коагулированной цельной крови обезьяны после центрифугирования. Автоматический химический анализатор Roche Modular System измеряет ферментативную активность ALT в сыворотке с применением стандартизированных Международной Федерацией по Клинической Химии (International Federation of Clinical Chemistry) процедур и реагентов. Вычислительное устройство данного анализатора использует измерения оптической плотности для расчета активности ALT в данном образце по сравнению с калибровочной кривой. Активность ALT представлена в Международных Единицах на литр (МЕ/л).
У обезьян, получавших дозы RDV, содержащих в себе соединения 32 и 33, наблюдали более низкие подъемы пика ALT, чем у тех, которые получали дозы RDV, содержащего в себе катионный липид DLinKC2DMA (соединение 45) или MC3 (соединение 46, фиг.6).
Пример 9
Оценка на модели гепатоцеллюлярной гарциномы на мышах
Активность LNP в доставке миРНК β-катенина (миРНКβ-cat) в гепатоцеллюлярную карциному оценивали на модели гепатоцеллюлярной карциномы (НСС) у мыши, называемой TRB-MET. Мыши TRE-MET представляют собой трансгенных мышей с генетическим фоном FVB/N, где трансген МЕТ человека экспрессируется с промотороа hCMV с гептамерными трет-оперонами в направлении 3’-5’. Если мышей TRE-MET скрестить с линией LAP-tTA, то двойные трансгенные мыши (TRE-MET/LAP-tTA) экспрессируют МЕТ в печеночноспецифической манере, что может быть подавлено посредством введения диксоциклина. У этих мышей развивается НСС в возрасте приблизительно 3 месяцев с визуально определяемыми опухолевыми узелками на поверхности печени и данные опухоли проявляют диффузный трабекулярный характер роста, типичный для НСС, и экспрессируют опухолевый маркер НСС альфа-фетопротеин (AFP). Кроме того, мутационный анализ данной опухоли мышей TRE-MET также выявил активирующие мутации в гене бета-катенина приблизительно в 95% опухолей. Эти особенности делают модель НСС на мышах TRE-MET подходящей для оценки LNP-опосредованной доставки миРНК β-катенина и результирующей эффективности на рост опухоли.
Эффект LNP, содержащих в себе β-катенин, на молчащих мРНК β-катенина как в печени, так и в опухолевых тканях, сначала был оценен в исследовании фармакодинамики (PD) на мышах TRE-MET, несущих опухоли. Различные дозы LNP, или высокие дозы LNP с контрольной миРНК, были введены внутривенно и через 72 часа было осуществлено вскрытие для забора печени и опухолевых тканей для определения уровней мРНК β-катенина посредством Taqman. Как представлено на фиг.8 и 9, соединение 33 индуцирует устойчивое и дозозависимое выключение мРНК β-катенина как в печени, так и в опухолевых тканях, в то время как у животных, получавших контрольную миРНК или PBS не наблюдали выключение β-катенина. 0,1 мг/кг и 0,05 мг/кг LNP индуцировали 88% и 69% KD в нормальной печени, соответственно. KD в опухолях колеблется в пределах от 70% (2 мг/кг) до приблизительно 40% (0,1 или 0,05 мг/кг). Как представлено на фиг.12 и 13, соединение 32 индуцирует устойчивое и дозозависимое выключение мРНК β-катенина как в печени, так и в опухолевых тканях, в то время как у животных, получавших контрольную миРНК или PBS не наблюдали выключение β-катенина. 0,1 мг/кг и 0,05 мг/кг LNP индуцировали 76% и 78% KD в нормальной печени, соответственно. KD в опухолях колеблется в пределах от 47% (0,25 мг/кг) до приблизительно 20-30% (0,1 или 0,05 мг/кг).
Эффект LNP на опухолевый рост оценивали в исследовании с использованием многократных доз. Мышам TRE-MET HCC вводили дозы соединения 33/миРНКβ-cat, соединения 32/миРНКβ-cat, контрольной миРНК или PBS, еженедельно в течение 3 недель (3 дозы) и объем опухоли у каждого животного определяли посредством микроКТ сканирования за 7 дней до 1ой дозы и через 3 дня после последней дозы (фиг.10 и 14). Кроме того, через 7 дней после финальной дозы производили забор печени и опухолевых тканей для оценки уровней мРНК β-катенина. В то время как у мышей, получавших PBS или контрольную миРНК, наблюдался рост опухолевой нагрузки 360-470%, мыши, получавшие соединение 33/миРНКβ-cat демонстрировали основательное ингибирование роста опухоли или регресс в дозозависимой манере (фиг.10). Дозы 2 мг/кг и 0,5 мг/кг соединения 33/миРНКβ-cat индуцировали 60% и 40% регресс опухоли, соответственно, и доза 0,05 мг/кг вызывала остановку роста опухоли. В то время как у мышей, получавших PBS или контрольную миРНК, наблюдался рост опухолевой нагрузки приблизительно 350%, мыши, получавшие соединение 32/миРНКβ-cat демонстрировали основательное ингибирование роста опухоли или регресс в дозозависимой манере (фиг.14). Дозы 0,5, 0,25 и 0,1 мг/кг соединения 32/миРНКβ-cat индуцировали 37, 58 и 37% регресс опухоли, соответственно, и доза 0,05 мг/кг вызывала остановку роста опухоли.

Claims (79)

1. Катионный липид по формуле А:
Figure 00000072
где:
R1 и R2 независимо друг от друга выбраны из Н, алкила (C1-С6), и полиамина, где указанный алкил, и полиамин, необязательно, являются замещенными одним-тремя заместителями, выбранными из R', или R1 и R2 могут быть взяты совместно с азотом, к которому они присоединены для образования моноциклического гетероцикла с 5 членами, необязательно содержащего в себе, в дополнение к данному азоту, один или два дополнительных гетероатома, выбранных из N, О и S, указанный моноциклический гетероцикл, необязательно, является замещенным с использованием от одного до трех заместителей, выбранных из R';
R3 независимо выбран из Н и алкила (C1-С6), указанный алкил, необязательно, является замещенным с использованием от одного до трех заместителей, выбранных из R';
R' независимо выбран из галогена, Rʺ, ORʺ, SRʺ, CN, CO2Rʺ или CON(Rʺ)2;
Rʺ независимо выбран из Н и алкила (C1-С6), где указанный алкил, необязательно, является замещенным с использованием галогена и ОН;
n представляет собой 0, 1, 2, 3, 4 или 5;
L1 выбран из алкила С12-С24 и алкенила С12-С24, указанные алкил и алкенил, необязательно, являются замещенными с использованием одного или нескольких заместителей, выбранных из R'; и
L2 выбран из алкила С3-С9 и алкенила С3-С9, указанные алкил и алкенил, необязательно, являются замещенными с использованием одного или нескольких заместителей, выбранных из R';
или его любая фармацевтически приемлемая соль.
2. Катионный липид, представленный в формуле А по п. 1, где:
R1 и R2, каждый, представляет собой метил;
R3 представляет собой Н;
n равен 0;
L1 выбран из алкила С12-С24 и алкенила С12-С24; и
L2 выбран из алкила С3-С9 и алкенила С3-С9;
или его любая фармацевтически приемлемая соль.
3. Катионный липид, представленный формулой А по п. 1, где:
R1 и R2, каждый, представляет собой метил;
R3 представляет собой Н;
n равен 2;
L1 выбран из алкила С12-С24 и алкенила С12-С24; и
L2 выбран из алкила С3-С9 и алкенила С3-С9;
или его любая фармацевтически приемлемая соль.
4. Катионный липид, который выбран из:
(20Z,23Z)-N,N-диметилнонакоза-20,23-диен-10-амина (соединение 1);
(17Z,20Z)-N,N-диметилгексакоза-17,20-диен-9-амина (соединение 2);
(16Z,19Z)-N,N-диметилпентакоза-16,19-диен-8-амина (соединение 3);
(13Z,16Z)-N,N-диметилдокоза-13,16-диен-5-амина (соединение 4);
(12Z,15Z)-N,N-диметилгеникоза-12,15-диен-4-амина (соединение 5);
(14Z,17Z)-N,N-диметилтрикоза-14,17-диен-6-амина (соединение 6);
(15Z,18Z)-N,N-диметилтетракоза-15,18-диен-7-амина (соединение 7);
(18Z,21Z)-N,N-диметилгептакоза-18,21-диен-10-амина (соединение 8);
(15Z, 18Z)-N,N-диметилтетракоза-15,18-диен-5-амина (соединение 9);
(14Z,17Z)-N,N-диметилтрикоза-14,17-диен-4-амина (соединение 10);
(19Z,22Z)-N,N-диметилоктакоза-19,22-диен-9-амина (соединение 11);
(18Z,21Z)-N,N-диметилгептакоза-18,21-диен-8-амина (соединение 12);
(17Z, 20Z)-N,N-диметилгексакоза-17,20-диен-7-амина (соединение 13);
(16Z,19Z)-N,N-диметилпентакоза-16,19-диен-6-амина (соединение 14);
(22Z,25Z)-N,N-диметилгентриаконта-22,25-диен-10-амина (соединение 15);
(21Z,24Z)-N,N-диметилтриаконта-21,24-диен-9-амина (соединение 16);
(18Z)-N,N-диметилгептакоз-18-ен-10-амина (соединение 17);
(17Z)-N,N-диметилгексакоз-17-ен-9-амина (соединение 18);
(19Z,22Z)-N,N-диметилоктакоза-19,22-диен-7-амина (соединение 19); и
N,N-диметилгептакозан-10-амина (соединение 20);
(20Z,23Z)-N-этил-N-метилнонакоза-20,23-диен-10-амина (соединение 21);
1-[(11Z,14Z)-1-нониликоза-11,14-диен-1-ил]пирролидина (соединение 22);
(20Z)-N,N-диметилгептакоз-20-ен-10-амина (соединение 23);
(15Z)-N,N-диметилгептакоз-15-ен-10-амина (соединение 24);
(14Z)-N,N-диметилнонакоз-14-ен-10-амина (соединение 25);
(17Z)-N,N-диметилнонакоз-17-ен-10-амина (соединение 26);
(24Z)-N,N-диметилтритриаконт-24-ен-10-амина (соединение 27);
(20Z)-N,N-диметилнонакоз-20-ен-10-амина (соединение 28);
(22Z)-N,N-диметилгентриаконт-22-ен-10-амина (соединение 29);
(16Z)-N,N-диметилпентакоз-16-ен-8-амина (соединение 30);
(12Z,15Z)-N,N-диметил-2-нонилгеникоза-12,15-диен-1-амина (соединение 31);
(13Z,16Z)-N,N-диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амина (соединение 32);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]гептадекан-8-амина (соединение 33);
1-[(1S,2R)-2-гексилциклопропил]-N,N-диметилнонадекан-10-амина (соединение 34);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]нонадекан-10-амина (соединение 35);
N,N-диметил-21-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]геникозан-10-амина (соединение 36);
N,N-диметил-1-[(1S,2S)-2-{[(1R,2R)-2-пентилциклопропил]метил}циклопропил]нонадекан-10-амина (соединение 37);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]гексадекан-8-амина (соединение 38);
N,N-диметил-1-[(1R,2S)-2-ундецилциклопропил]тетрадекан-5-амина (соединение 39);
N,N-диметил-3-{7-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]гептил}додекан-1-амина (соединение 40);
1-[(1R,2S)-2-гептилциклопропил]-N,N-диметилоктадекан-9-амина (соединение 41);
1-[(1S,2R)-2-децилциклопропил]-N,N-диметилпентадекан-6-амина (соединение 42);
N,N-диметил-1-[(1S,2R)-2-октилциклопропил]пентадекан-8-амина (соединение 43); и
(11Е,20Z,23Z)-N,N-диметилнонакоза-11,20,23-триен-10-амина (соединение 44);
или любая фармацевтически приемлемая соль или его стереоизомер.
5. Катионный липид, который представляет собой:
(13Z,16Z)-N,N-диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амин (соединение 32);
или любую фармацевтически приемлемую соль или его стереоизомер.
6. Композиция липидных наночастиц (LNP) для доставки олигонуклеотидов, которая содержит в себе катионный липид по формуле А по п. 1, холестерин, DSPC и PEG-DMG.
7. Композиция липидных наночастиц (LNP) для доставки олигонуклеотидов, которая содержит в себе катионный липид (13Z,16Z)-N,N-диметил-3-нонилдокоза-13,16-диен-1-амин (соединение 32), холестерин, DSPC и PEG-DMG.
8. Применение катионного липида по п. 1 для получения липидных наночастиц.
9. Применение катионного липида по п. 1 в качестве компонента в липидной наночастице для доставки олигонуклеотидов.
10. Применение по п. 9, где данные олигонуклеотиды представляют собой миРНК.
RU2013118224A 2010-09-20 2011-09-20 Новые низкомолекулярные катионные липиды для доставки олигонуклеотидов RU2617641C2 (ru)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US38448610P 2010-09-20 2010-09-20
US61/384,486 2010-09-20
US201161514270P 2011-08-02 2011-08-02
US61/514,270 2011-08-02
PCT/US2011/052328 WO2012040184A2 (en) 2010-09-20 2011-09-20 Novel low molecular weight cationic lipids for oligonucleotide delivery

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013118224A RU2013118224A (ru) 2014-10-27
RU2617641C2 true RU2617641C2 (ru) 2017-04-25

Family

ID=45874319

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013118224A RU2617641C2 (ru) 2010-09-20 2011-09-20 Новые низкомолекулярные катионные липиды для доставки олигонуклеотидов

Country Status (12)

Country Link
US (4) US9669097B2 (ru)
EP (3) EP3144015B1 (ru)
JP (3) JP5961170B2 (ru)
KR (2) KR101878361B1 (ru)
CN (1) CN103167866B (ru)
AU (3) AU2011305617A1 (ru)
BR (1) BR112013004585B1 (ru)
CA (1) CA2809858C (ru)
ES (1) ES2888231T3 (ru)
MX (1) MX349088B (ru)
RU (1) RU2617641C2 (ru)
WO (1) WO2012040184A2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2823298C1 (ru) * 2023-11-14 2024-07-22 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ГНЦ ИБХ РАН) Ионизируемые катионные липиды для доставки нуклеиновых кислот

Families Citing this family (169)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012019168A2 (en) 2010-08-06 2012-02-09 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
KR101878361B1 (ko) 2010-09-20 2018-08-20 시르나 쎄러퓨틱스 인코퍼레이티드 올리고뉴클레오티드 전달을 위한 신규 저분자량 양이온성 지질
CA2821992A1 (en) 2010-10-01 2012-04-05 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
CA2831613A1 (en) 2011-03-31 2012-10-04 Moderna Therapeutics, Inc. Delivery and formulation of engineered nucleic acids
US9464124B2 (en) 2011-09-12 2016-10-11 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
ES2911677T3 (es) 2011-10-03 2022-05-20 Modernatx Inc Nucleósidos, nucleótidos y ácidos nucleicos modificados, y sus usos
JP6305344B2 (ja) 2011-12-07 2018-04-04 アルニラム・ファーマシューティカルズ・インコーポレーテッド 活性作用物質の送達のための生分解性脂質
DE12858350T1 (de) 2011-12-16 2021-10-07 Modernatx, Inc. Modifizierte mrna zusammensetzungen
US9572897B2 (en) 2012-04-02 2017-02-21 Modernatx, Inc. Modified polynucleotides for the production of cytoplasmic and cytoskeletal proteins
US10501512B2 (en) 2012-04-02 2019-12-10 Modernatx, Inc. Modified polynucleotides
EP3501550A1 (en) 2012-04-02 2019-06-26 Moderna Therapeutics, Inc. Modified polynucleotides for the production of proteins associated with human disease
US9283287B2 (en) 2012-04-02 2016-03-15 Moderna Therapeutics, Inc. Modified polynucleotides for the production of nuclear proteins
CN104411338A (zh) 2012-04-02 2015-03-11 现代治疗公司 用于产生与人类疾病相关的生物制剂和蛋白质的修饰多核苷酸
WO2013158579A1 (en) * 2012-04-19 2013-10-24 Merck Sharp & Dohme Corp. Novel diester and triester based low molecular weight, biodegradable cationic lipids for oligonucleotide delivery
US9597380B2 (en) 2012-11-26 2017-03-21 Modernatx, Inc. Terminally modified RNA
EP2971010B1 (en) 2013-03-14 2020-06-10 ModernaTX, Inc. Formulation and delivery of modified nucleoside, nucleotide, and nucleic acid compositions
US8980864B2 (en) 2013-03-15 2015-03-17 Moderna Therapeutics, Inc. Compositions and methods of altering cholesterol levels
EP3019619B1 (en) 2013-07-11 2021-08-25 ModernaTX, Inc. Compositions comprising synthetic polynucleotides encoding crispr related proteins and synthetic sgrnas and methods of use
EP3041938A1 (en) 2013-09-03 2016-07-13 Moderna Therapeutics, Inc. Circular polynucleotides
WO2015034928A1 (en) 2013-09-03 2015-03-12 Moderna Therapeutics, Inc. Chimeric polynucleotides
US10023626B2 (en) 2013-09-30 2018-07-17 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding immune modulating polypeptides
EP3052521A1 (en) 2013-10-03 2016-08-10 Moderna Therapeutics, Inc. Polynucleotides encoding low density lipoprotein receptor
EP3985118A1 (en) 2013-11-22 2022-04-20 MiNA Therapeutics Limited C/ebp alpha short activating rna compositions and methods of use
CN105916839B (zh) * 2014-01-09 2018-09-18 卫材R&D管理有限公司 阳离子性脂质
MX2016009529A (es) 2014-01-21 2016-10-17 Anjarium Biosciences Ag Hibridosomas, composiciones que comprenden los mismos, procesos para su produccion y usos de los mismos.
EP3110401A4 (en) 2014-02-25 2017-10-25 Merck Sharp & Dohme Corp. Lipid nanoparticle vaccine adjuvants and antigen delivery systems
JP6881813B2 (ja) 2014-04-23 2021-06-02 モデルナティーエックス， インコーポレイテッド 核酸ワクチン
JP6570188B2 (ja) * 2014-05-20 2019-09-04 国立大学法人北海道大学 ｓｉＲＮＡ細胞内送達のための脂質膜構造体
SI3766916T1 (sl) 2014-06-25 2023-01-31 Acuitas Therapeutics Inc. Formulacije novih lipidov in lipidnih nanodelcev za dostavo nukleinskih kislin
AU2015289583A1 (en) 2014-07-16 2017-02-02 Modernatx, Inc. Chimeric polynucleotides
EP3171895A1 (en) 2014-07-23 2017-05-31 Modernatx, Inc. Modified polynucleotides for the production of intrabodies
US10889812B2 (en) 2014-10-24 2021-01-12 University Of Maryland, Baltimore Short non-coding protein regulatory RNAs (sprRNAs) and methods of use
AU2015364508A1 (en) 2014-12-18 2017-07-06 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. ReversirTM compounds
US10221127B2 (en) 2015-06-29 2019-03-05 Acuitas Therapeutics, Inc. Lipids and lipid nanoparticle formulations for delivery of nucleic acids
PL3350157T3 (pl) 2015-09-17 2022-05-16 Modernatx, Inc. Związki i kompozycje do dostarczania wewnątrzkomórkowego środków terapeutycznych
WO2017070613A1 (en) 2015-10-22 2017-04-27 Modernatx, Inc. Human cytomegalovirus vaccine
FI3368507T3 (fi) 2015-10-28 2023-03-21 Acuitas Therapeutics Inc Uusia lipidejä ja lipidinanopartikkeliformulaatioita nukleiinihappojen annostelemiseksi
DK3386484T3 (da) 2015-12-10 2022-07-04 Modernatx Inc Sammensætninger og fremgangsmåder til afgivelse af terapeutiske midler
JP7114465B2 (ja) 2015-12-22 2022-08-08 モデルナティエックス インコーポレイテッド 薬剤の細胞内送達のための化合物および組成物
PL3394093T3 (pl) 2015-12-23 2022-05-16 Modernatx, Inc. Metody stosowania polinukleotydów kodujących ligand ox40
US20190241658A1 (en) 2016-01-10 2019-08-08 Modernatx, Inc. Therapeutic mRNAs encoding anti CTLA-4 antibodies
EP3442590A2 (en) 2016-04-13 2019-02-20 Modernatx, Inc. Lipid compositions and their uses for intratumoral polynucleotide delivery
BR112018073683A2 (pt) 2016-05-18 2019-02-26 Modernatx, Inc. polinucleotídeos codificadores de relaxina
CN109311809B (zh) 2016-06-24 2022-04-08 卫材R&D管理有限公司 阳离子脂质
US11583504B2 (en) 2016-11-08 2023-02-21 Modernatx, Inc. Stabilized formulations of lipid nanoparticles
FI3596041T3 (fi) 2017-03-15 2023-01-31 Yhdiste ja koostumuksia terapeuttisten aineiden antamiseen solun sisään
JP7332478B2 (ja) 2017-03-15 2023-08-23 モデルナティエックス インコーポレイテッド 脂質ナノ粒子製剤
DK3596042T3 (da) 2017-03-15 2022-04-11 Modernatx Inc Krystalformer af aminolipider
JP7190794B2 (ja) * 2017-03-29 2022-12-16 塩野義製薬株式会社 核酸医薬及び多分岐脂質の複合体
CA3063723A1 (en) 2017-05-18 2018-11-22 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding tethered interleukin-12 (il12) polypeptides and uses thereof
MA49395A (fr) 2017-06-14 2020-04-22 Modernatx Inc Polynucléotides codant pour le facteur viii de coagulation
WO2018232357A1 (en) 2017-06-15 2018-12-20 Modernatx, Inc. Rna formulations
CA3067192A1 (en) * 2017-06-15 2018-12-20 National University Corporation Hokkaido University Lipid membrane structure for delivery into sirna cell
WO2019046809A1 (en) 2017-08-31 2019-03-07 Modernatx, Inc. METHODS OF MANUFACTURING LIPID NANOPARTICLES
US20200208152A1 (en) 2017-09-08 2020-07-02 Mina Therapeutics Limited Stabilized sarna compositions and methods of use
TW201920669A (zh) 2017-09-08 2019-06-01 英商美納治療公司 ＨＮＦ４ａ ｓａＲＮＡ組成物和使用方法
TWI801477B (zh) 2017-12-27 2023-05-11 日商衛材R&D企管股份有限公司 陽離子性脂質
WO2019147749A2 (en) 2018-01-29 2019-08-01 Merck Sharp & Dohme Corp. Stabilized rsv f proteins and uses thereof
US11566246B2 (en) 2018-04-12 2023-01-31 Mina Therapeutics Limited SIRT1-saRNA compositions and methods of use
CA3100050A1 (en) 2018-05-11 2019-11-14 Lupagen, Inc. Systems and methods for closed loop, real-time modifications of patient cells
WO2020033791A1 (en) 2018-08-09 2020-02-13 Verseau Therapeutics, Inc. Oligonucleotide compositions for targeting ccr2 and csf1r and uses thereof
CA3113025A1 (en) 2018-09-19 2020-03-26 Modernatx, Inc. Peg lipids and uses thereof
CA3113353A1 (en) 2018-09-19 2020-03-26 Modernatx, Inc. High-purity peg lipids and uses thereof
AU2019410737A1 (en) 2018-12-21 2021-06-10 CureVac SE RNA for malaria vaccines
CN113474328A (zh) 2019-01-11 2021-10-01 爱康泰生治疗公司 用于脂质纳米颗粒递送活性剂的脂质
WO2020161342A1 (en) 2019-02-08 2020-08-13 Curevac Ag Coding rna administered into the suprachoroidal space in the treatment of ophtalmic diseases
US20220211740A1 (en) 2019-04-12 2022-07-07 Mina Therapeutics Limited Sirt1-sarna compositions and methods of use
EP3986452A1 (en) 2019-06-18 2022-04-27 CureVac AG Rotavirus mrna vaccine
WO2021016075A1 (en) 2019-07-19 2021-01-28 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Recombinase compositions and methods of use
CN114555127A (zh) 2019-08-06 2022-05-27 L.E.A.F.控股集团公司 制备聚谷氨酸化抗叶酸剂的方法以及它们的组合物的用途
AU2020328855A1 (en) 2019-08-14 2022-03-03 CureVac SE RNA combinations and compositions with decreased immunostimulatory properties
CN114929205A (zh) 2019-09-06 2022-08-19 世代生物公司 包括末端封闭式dna和可切割脂质的脂质纳米颗粒组合物及其使用方法
CN114728887A (zh) 2019-09-19 2022-07-08 摩登纳特斯有限公司 用于治疗剂的细胞内递送的支链尾端脂质化合物和组合物
WO2021061707A1 (en) 2019-09-23 2021-04-01 Omega Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating apolipoprotein b (apob) gene expression
EP4041894A1 (en) 2019-09-23 2022-08-17 Omega Therapeutics, Inc. COMPOSITIONS AND METHODS FOR MODULATING HEPATOCYTE NUCLEAR FACTOR 4-ALPHA (HNF4a) GENE EXPRESSION
MX2022009460A (es) 2020-02-04 2022-12-16 Curevac Ag Vacuna contra el coronavirus.
JP2023516904A (ja) 2020-02-14 2023-04-21 メルク・シャープ・アンド・ドーム・エルエルシー Ｈｐｖワクチン
AU2021234302A1 (en) 2020-03-11 2022-11-10 Omega Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating forkhead box p3 (foxp3) gene expression
CA3172572A1 (en) 2020-03-24 2021-09-30 Generation Bio Co. Non-viral dna vectors and uses thereof for expressing factor ix therapeutics
CN115667531A (zh) 2020-03-24 2023-01-31 世代生物公司 非病毒DNA载体和其用于表达戈谢（Gaucher）治疗剂的用途
TW202206097A (zh) 2020-05-20 2022-02-16 美商旗艦先鋒創新有限責任公司 冠狀病毒抗原組成物及其用途
US20230193311A1 (en) 2020-05-20 2023-06-22 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Immunogenic compositions and uses thereof
AU2021279312A1 (en) 2020-05-29 2022-12-15 CureVac SE Nucleic acid based combination vaccines
US20230203509A1 (en) 2020-05-29 2023-06-29 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Trem compositions and methods relating thereto
MX2022015042A (es) 2020-05-29 2023-03-09 Flagship Pioneering Innovations Vi Llc Composiciones de trem y métodos relacionados con las mismas.
KR20230051172A (ko) 2020-07-16 2023-04-17 아퀴타스 테라퓨틱스 인크. 지질 나노 입자에 사용하기 위한 양이온성 지질
IL299925A (en) 2020-07-27 2023-03-01 Anjarium Biosciences Ag Compounds of DNA molecules, methods for their preparation and methods of using them
US20230272052A1 (en) 2020-07-31 2023-08-31 CureVac SE Nucleic acid encoded antibody mixtures
US20230285310A1 (en) 2020-08-06 2023-09-14 Modernatx, Inc. Compositions for the delivery of payload molecules to airway epithelium
WO2022043551A2 (en) 2020-08-31 2022-03-03 Curevac Ag Multivalent nucleic acid based coronavirus vaccines
IL300947A (en) 2020-09-03 2023-04-01 Flagship Pioneering Innovations Vi Llc Immunogenic compositions and uses thereof
GB2603454A (en) 2020-12-09 2022-08-10 Ucl Business Ltd Novel therapeutics for the treatment of neurodegenerative disorders
CA3171051A1 (en) 2020-12-22 2022-06-30 Curevac Ag Pharmaceutical composition comprising lipid-based carriers encapsulating rna for multidose administration
WO2022137133A1 (en) 2020-12-22 2022-06-30 Curevac Ag Rna vaccine against sars-cov-2 variants
CA3206285A1 (en) 2020-12-23 2022-06-30 Flagship Pioneering, Inc. Compositions of modified trems and uses thereof
EP4087938A2 (en) 2021-01-27 2022-11-16 CureVac AG Method of reducing the immunostimulatory properties of in vitro transcribed rna
TW202245835A (zh) 2021-02-04 2022-12-01 美商默沙東有限責任公司 用於肺炎球菌結合物疫苗之奈米乳化液佐劑組合物
US11524023B2 (en) 2021-02-19 2022-12-13 Modernatx, Inc. Lipid nanoparticle compositions and methods of formulating the same
JP2024511206A (ja) 2021-03-26 2024-03-12 グラクソスミスクライン バイオロジカルズ ソシエテ アノニム 免疫原性組成物
CA3214137A1 (en) 2021-03-26 2022-09-29 Mina Therapeutics Limited Tmem173 sarna compositions and methods of use
EP4312988A2 (en) 2021-03-31 2024-02-07 CureVac SE Syringes containing pharmaceutical compositions comprising rna
AU2022246895A1 (en) 2021-03-31 2023-10-19 Flagship Pioneering Innovations V, Inc. Thanotransmission polypeptides and their use in treating cancer
EP4326860A1 (en) 2021-04-20 2024-02-28 Anjarium Biosciences AG Compositions of dna molecules encoding amylo-alpha-1, 6-glucosidase, 4-alpha-glucanotransferase, methods of making thereof, and methods of use thereof
US20240226324A1 (en) 2021-04-27 2024-07-11 Generation Bio Co. Non-viral dna vectors expressing therapeutic antibodies and uses thereof
WO2022232286A1 (en) 2021-04-27 2022-11-03 Generation Bio Co. Non-viral dna vectors expressing anti-coronavirus antibodies and uses thereof
CA3171589A1 (en) 2021-05-03 2022-11-03 Moritz THRAN Improved nucleic acid sequence for cell type specific expression
AU2022290278A1 (en) 2021-06-11 2024-01-04 LifeEDIT Therapeutics, Inc. Rna polymerase iii promoters and methods of use
WO2023283359A2 (en) 2021-07-07 2023-01-12 Omega Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating secreted frizzled receptor protein 1 (sfrp1) gene expression
WO2023009547A1 (en) 2021-07-26 2023-02-02 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Trem compositions and uses thereof
WO2023014974A1 (en) 2021-08-06 2023-02-09 University Of Iowa Research Foundation Double stranded mrna vaccines
WO2023023152A1 (en) 2021-08-19 2023-02-23 Merck Sharp & Dohme Llc Thermostable lipid nanoparticle and methods of use thereof
CN115724806A (zh) * 2021-08-25 2023-03-03 广州谷森制药有限公司 新型阳离子脂质化合物（二）
AU2022336209A1 (en) 2021-09-03 2024-01-18 CureVac SE Novel lipid nanoparticles for delivery of nucleic acids
CN118043466A (zh) 2021-09-03 2024-05-14 葛兰素史克生物有限公司 自扩增信使核糖核酸中核苷酸碱基的取代
CA3230056A1 (en) 2021-09-03 2023-03-09 Patrick Baumhof Novel lipid nanoparticles for delivery of nucleic acids comprising phosphatidylserine
TW202330916A (zh) 2021-09-17 2023-08-01 美商旗艦先鋒創新有限責任公司 用於產生環狀多核糖核苷酸之組成物和方法
WO2023069397A1 (en) 2021-10-18 2023-04-27 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Compositions and methods for purifying polyribonucleotides
WO2023073228A1 (en) 2021-10-29 2023-05-04 CureVac SE Improved circular rna for expressing therapeutic proteins
CA3236235A1 (en) 2021-11-08 2023-05-11 Orna Therapeutics, Inc. Lipid nanoparticle compositions for delivering circular polynucleotides
WO2023086465A1 (en) 2021-11-12 2023-05-19 Modernatx, Inc. Compositions for the delivery of payload molecules to airway epithelium
CA3239266A1 (en) 2021-11-24 2023-06-01 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Coronavirus immunogen compositions and their uses
CA3238735A1 (en) 2021-11-24 2023-06-01 Jennifer A. Nelson Immunogenic compositions and their uses
AU2022397292A1 (en) 2021-11-24 2024-05-30 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Varicella-zoster virus immunogen compositions and their uses
WO2023099884A1 (en) 2021-12-01 2023-06-08 Mina Therapeutics Limited Pax6 sarna compositions and methods of use
GB202117758D0 (en) 2021-12-09 2022-01-26 Ucl Business Ltd Therapeutics for the treatment of neurodegenerative disorders
TW202340460A (zh) 2021-12-17 2023-10-16 美商旗艦先鋒創新有限責任公司 用於在變性條件下富集環狀ｒｎａ之方法
AU2022417517A1 (en) 2021-12-22 2024-06-27 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Compositions and methods for purifying polyribonucleotides
CA3241026A1 (en) 2021-12-23 2023-06-29 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Circular polyribonucleotides encoding antifusogenic polypeptides
WO2023135273A2 (en) 2022-01-14 2023-07-20 Anjarium Biosciences Ag Compositions of dna molecules encoding factor viii, methods of making thereof, and methods of use thereof
WO2023144330A1 (en) 2022-01-28 2023-08-03 CureVac SE Nucleic acid encoded transcription factor inhibitors
TW202345863A (zh) 2022-02-09 2023-12-01 美商現代公司 黏膜投與方法及調配物
WO2023161350A1 (en) 2022-02-24 2023-08-31 Io Biotech Aps Nucleotide delivery of cancer therapy
WO2023170435A1 (en) 2022-03-07 2023-09-14 Mina Therapeutics Limited Il10 sarna compositions and methods of use
WO2023177655A1 (en) 2022-03-14 2023-09-21 Generation Bio Co. Heterologous prime boost vaccine compositions and methods of use
WO2023183616A1 (en) 2022-03-25 2023-09-28 Senda Biosciences, Inc. Novel ionizable lipids and lipid nanoparticles and methods of using the same
WO2023191628A1 (en) * 2022-03-30 2023-10-05 Bioneedle Drug Delivery B.V. A process for storing biologically active constructs in a biodegradable material
WO2023196634A2 (en) 2022-04-08 2023-10-12 Flagship Pioneering Innovations Vii, Llc Vaccines and related methods
WO2023220083A1 (en) 2022-05-09 2023-11-16 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Trem compositions and methods of use for treating proliferative disorders
TW202409283A (zh) 2022-05-13 2024-03-01 美商旗艦先鋒創新有限責任（Ｖｉｉ）公司 雙股ｄｎａ組合物及相關方法
WO2023227608A1 (en) 2022-05-25 2023-11-30 Glaxosmithkline Biologicals Sa Nucleic acid based vaccine encoding an escherichia coli fimh antigenic polypeptide
WO2023239756A1 (en) 2022-06-07 2023-12-14 Generation Bio Co. Lipid nanoparticle compositions and uses thereof
WO2023242817A2 (en) 2022-06-18 2023-12-21 Glaxosmithkline Biologicals Sa Recombinant rna molecules comprising untranslated regions or segments encoding spike protein from the omicron strain of severe acute respiratory coronavirus-2
WO2023250112A1 (en) 2022-06-22 2023-12-28 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Compositions of modified trems and uses thereof
WO2024030856A2 (en) 2022-08-01 2024-02-08 Flagship Pioneering Innovations Vii, Llc Immunomodulatory proteins and related methods
WO2024033901A1 (en) 2022-08-12 2024-02-15 LifeEDIT Therapeutics, Inc. Rna-guided nucleases and active fragments and variants thereof and methods of use
WO2024035952A1 (en) 2022-08-12 2024-02-15 Remix Therapeutics Inc. Methods and compositions for modulating splicing at alternative splice sites
WO2024040222A1 (en) 2022-08-19 2024-02-22 Generation Bio Co. Cleavable closed-ended dna (cedna) and methods of use thereof
WO2024049979A2 (en) 2022-08-31 2024-03-07 Senda Biosciences, Inc. Novel ionizable lipids and lipid nanoparticles and methods of using the same
EP4342460A1 (en) 2022-09-21 2024-03-27 NovoArc GmbH Lipid nanoparticle with nucleic acid cargo
WO2024068545A1 (en) 2022-09-26 2024-04-04 Glaxosmithkline Biologicals Sa Influenza virus vaccines
US20240174732A1 (en) 2022-10-05 2024-05-30 Flagship Pioneering Innovations V, Inc. Nucleic acid molecules encoding trif and additional polypeptides and their use in treating cancer
DE202023106198U1 (de) 2022-10-28 2024-03-21 CureVac SE Impfstoff auf Nukleinsäurebasis
WO2024097664A1 (en) 2022-10-31 2024-05-10 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Compositions and methods for purifying polyribonucleotides
WO2024102730A1 (en) 2022-11-08 2024-05-16 Orna Therapeutics, Inc. Lipids and nanoparticle compositions for delivering polynucleotides
WO2024102762A1 (en) 2022-11-08 2024-05-16 Orna Therapeutics, Inc. Lipids and lipid nanoparticle compositions for delivering polynucleotides
WO2024102799A1 (en) 2022-11-08 2024-05-16 Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc Compositions and methods for producing circular polyribonucleotides
WO2024102677A1 (en) 2022-11-08 2024-05-16 Orna Therapeutics, Inc. Circular rna compositions
WO2024119051A1 (en) 2022-12-01 2024-06-06 Generation Bio Co. Novel polyglycerol-conjugated lipids and lipid nanoparticle compositions comprising the same
WO2024119074A1 (en) 2022-12-01 2024-06-06 Generation Bio Co. Stealth lipid nanoparticle compositions for cell targeting
WO2024119103A1 (en) 2022-12-01 2024-06-06 Generation Bio Co. Lipid nanoparticles comprising nucleic acids and lipid-anchored polymers
WO2024119039A2 (en) 2022-12-01 2024-06-06 Generation Bio Co. Stealth lipid nanoparticles and uses thereof
WO2024129988A1 (en) 2022-12-14 2024-06-20 Flagship Pioneering Innovations Vii, Llc Compositions and methods for delivery of therapeutic agents to bone
WO2024133160A1 (en) 2022-12-19 2024-06-27 Glaxosmithkline Biologicals Sa Hepatitis b compositions
WO2024134199A1 (en) 2022-12-22 2024-06-27 Mina Therapeutics Limited Chemically modified sarna compositions and methods of use
WO2024151583A2 (en) 2023-01-09 2024-07-18 Flagship Pioneering Innovations Vii, Llc Vaccines and related methods
WO2024151685A1 (en) 2023-01-09 2024-07-18 Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc. Recombinant nucleic acid molecules and their use in wound healing
WO2024151687A1 (en) 2023-01-09 2024-07-18 Flagship Pioneering Innovations V, Inc. Genetic switches and their use in treating cancer
US20240238473A1 (en) 2023-01-09 2024-07-18 Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc. Recombinant nucleic acid molecules and their use in wound healing
GB202404607D0 (en) 2024-03-29 2024-05-15 Glaxosmithkline Biologicals Sa RNA formulation

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4431836A (en) * 1981-02-23 1984-02-14 Uop Inc. Hydrogenation using chitin and chitosan based immobilized metal catalysts
WO2001044160A2 (de) * 1999-12-14 2001-06-21 Merck Patent Gmbh Verfahren zur herstellung kombinatorischer aminbibliotheken
RU2294192C2 (ru) * 2001-05-30 2007-02-27 Дзе Скриппс Рисерч Инститьют Система доставки нуклеиновых кислот
US20100063131A1 (en) * 2007-03-26 2010-03-11 Hirofumi Takeuchi Prompt nucleic acid delivery carrier composition
US20100215582A1 (en) * 2007-05-14 2010-08-26 Konica Minolta Holdings, Inc. Liposome and method for producing liposome

Family Cites Families (57)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2366534A (en) * 1941-07-30 1945-01-02 Du Pont Production of long-chain tertiary amines
US3391192A (en) * 1965-01-29 1968-07-02 Phillips Petroleum Co Production of aldehydes
US3492353A (en) * 1965-11-29 1970-01-27 Phillips Petroleum Co Preparation of higher molecular weight amines from 1-olefins and trimethylamine
CH496084A (de) * 1967-03-15 1970-09-15 Roure Bertrand Dupont Sa Verwendung eines Undecatriens für Parfümeriezwecke
JPS4839451A (ru) * 1971-09-28 1973-06-09
US3873621A (en) * 1972-05-22 1975-03-25 Univ Minnesota Method for preparing amines
US3976697A (en) * 1974-10-29 1976-08-24 Texaco Inc. Preparation of tertiary amines
AT340888B (de) * 1975-07-02 1978-01-10 Henkel Kgaa Verfahren zur herstellung neuer quartarer ammoniumverbindungen
US4057644A (en) * 1975-08-22 1977-11-08 Labaz Active derivatives of methylamine in therapeutic compositions and methods of use
DE3414236A1 (de) * 1984-04-14 1985-10-24 Basf Ag, 6700 Ludwigshafen Verfahren zur herstellung von polyphenylenethern und deren verwendung zur herstellung von formteilen
JPH062642B2 (ja) * 1985-03-18 1994-01-12 花王株式会社 殺ダニ剤
GB8730010D0 (en) * 1987-12-23 1988-02-03 Smith Kline French Lab Compounds
DE4037735A1 (de) * 1990-11-27 1992-06-04 Langhals Heinz Neue perylenfarbstoffe und ihre verwendung in metallic-lackierungen
JP2515447B2 (ja) * 1991-07-22 1996-07-10 花王株式会社 非対称型のジ・長鎖アルキル基又はアルケニル基を有する第３級アミン
JP3160304B2 (ja) * 1991-04-12 2001-04-25 花王株式会社 β−分岐アルキル第１級アミンの製造法
JP2706595B2 (ja) * 1991-04-22 1998-01-28 花王株式会社 Ｎ−アルキルもしくはアルケニル−ｎ−メチルアミンの製造方法
DE19516940A1 (de) * 1995-05-09 1996-11-14 Rwe Dea Ag Herstellung von primären Guerbetaminen
DE59608872D1 (de) * 1995-10-12 2002-04-18 Ciba Sc Holding Ag Naphthalinlactamimid-Fluoreszenzfarbstoffe
US5840835A (en) * 1995-10-30 1998-11-24 Merck & Co., Inc. Inhibitors of peptide binding to MHC class II proteins
US6130198A (en) * 1996-03-26 2000-10-10 Basf Aktiengesellschaft Bleaching efficiency boosters for bleach and textile detergent compositions
FR2764602B1 (fr) * 1997-06-11 1999-07-30 Oreal Composition cosmetique comprenant un amide et nouveaux amides
JP2002518366A (ja) * 1998-06-18 2002-06-25 メルク パテント ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフトング コンビナトリアルアミンライブラリイの調製方法
US7514099B2 (en) 2005-02-14 2009-04-07 Sirna Therapeutics, Inc. Lipid nanoparticle based compositions and methods for the delivery of biologically active molecules
JP2003029367A (ja) * 2001-07-11 2003-01-29 Konica Corp ハロゲン化銀写真感光材料及びヒドロキシルアミン化合物
JP2003096048A (ja) * 2001-09-27 2003-04-03 Nof Corp アミンオキシドの製造方法
WO2004033652A2 (en) * 2002-10-08 2004-04-22 The Scripps Research Institute Inhibitors of fatty acid amide hydrolase
AU2005251403B2 (en) 2004-06-07 2011-09-01 Arbutus Biopharma Corporation Cationic lipids and methods of use
CN101528664A (zh) * 2004-11-15 2009-09-09 宝洁公司 制备长链内脂肪族叔胺的方法
US7404969B2 (en) 2005-02-14 2008-07-29 Sirna Therapeutics, Inc. Lipid nanoparticle based compositions and methods for the delivery of biologically active molecules
DE102005060074A1 (de) * 2005-12-15 2007-06-21 Heinz Prof. Dr. Langhals Domino-Metathesereaktion zur Darstellung von Farbstoff-Cyclophanen mit großen Stokes-Shifts
DE102006050672A1 (de) * 2006-10-24 2008-04-30 Curacyte Discovery Gmbh Hemmstoffe des Plasmins und des Plasmakallikreins
CA2689042A1 (en) * 2007-02-16 2008-08-28 Merck & Co., Inc. Compositions and methods for potentiated activity of biologicaly active molecules
JP2008239965A (ja) * 2007-02-28 2008-10-09 Sanyo Chem Ind Ltd 光学部材用粘着剤
WO2009086558A1 (en) 2008-01-02 2009-07-09 Tekmira Pharmaceuticals Corporation Improved compositions and methods for the delivery of nucleic acids
US8058069B2 (en) 2008-04-15 2011-11-15 Protiva Biotherapeutics, Inc. Lipid formulations for nucleic acid delivery
US20090263407A1 (en) 2008-04-16 2009-10-22 Abbott Laboratories Cationic Lipids and Uses Thereof
US20100055169A1 (en) 2008-04-16 2010-03-04 Abbott Laboratories Cationic lipids and uses thereof
US20090285881A1 (en) 2008-04-16 2009-11-19 Abbott Laboratories Cationic lipids and uses thereof
US20100104629A1 (en) 2008-04-16 2010-04-29 Abbott Laboratories Cationic lipids and uses thereof
US20100076055A1 (en) 2008-04-16 2010-03-25 Abbott Laboratories Cationic Lipids and Uses Thereof
US20100055168A1 (en) 2008-04-16 2010-03-04 Abbott Laboratories Cationic lipids and uses thereof
WO2009132131A1 (en) 2008-04-22 2009-10-29 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Amino lipid based improved lipid formulation
EP2326331A4 (en) 2008-08-18 2013-05-15 Merck Sharp & Dohme NOVEL LIPID NANOPARTICLES AND NEW COMPONENTS FOR NUCLEIC ACID ADMINISTRATION
WO2010030739A1 (en) 2008-09-10 2010-03-18 Abbott Laboratories Polyethylene glycol lipid conjugates and uses thereof
US20100099738A1 (en) 2008-09-10 2010-04-22 Abbott Laboratories Polyethylene glycol lipid conjugates and uses thereof
CN104119242B (zh) 2008-10-09 2017-07-07 泰米拉制药公司 改善的氨基脂质和递送核酸的方法
WO2010048536A2 (en) 2008-10-23 2010-04-29 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Processes for preparing lipids
US8722082B2 (en) 2008-11-10 2014-05-13 Tekmira Pharmaceuticals Corporation Lipids and compositions for the delivery of therapeutics
CA3039251C (en) 2008-11-10 2024-01-09 Arbutus Biopharma Corporation Novel lipids and compositions for the delivery of therapeutics
CA2751342C (en) 2009-01-29 2019-05-07 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Lipid formulations comprising cationic lipid and a targeting lipid comprising n-acetyl galactosamine for delivery of nucleic acid
LT2440183T (lt) 2009-06-10 2018-08-10 Arbutus Biopharma Corporation Patobulinta lipido kompozicija
JP6043285B2 (ja) * 2010-08-02 2016-12-14 サーナ・セラピューティクス・インコーポレイテッドＳｉｒｎａ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，Ｉｎｃ． 低分子干渉核酸（ｓｉＮＡ）を用いたカテニン（カドヘリン結合型タンパク質）β１（ＣＴＮＮＢ１）遺伝子発現のＲＮＡ干渉媒介性阻害
CN108676800B (zh) * 2010-08-17 2022-11-11 瑟纳治疗公司 使用短干扰核酸(siNA)的乙型肝炎病毒(HBV)基因表达的RNA干扰介导的抑制
EP2609106A4 (en) 2010-08-26 2014-03-19 Merck Sharp & Dohme RNA INTERFERENCE-MEDIATED INHIBITION OF EXPRESSION OF PHD2 GENE (PROLYL HYDROXYLASE DOMAIN 2) USING SMALL INTERFERING NUCLEIC ACID (PANI)
KR101878361B1 (ko) * 2010-09-20 2018-08-20 시르나 쎄러퓨틱스 인코퍼레이티드 올리고뉴클레오티드 전달을 위한 신규 저분자량 양이온성 지질
ES2663009T3 (es) * 2010-10-29 2018-04-10 Sirna Therapeutics, Inc. Inhibición de la expresión génica mediada por interferencia por ARN utilizando ácidos nucleicos de interferencia cortos (ANic)
JP5748531B2 (ja) 2011-04-12 2015-07-15 株式会社小糸製作所 車両用灯具

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4431836A (en) * 1981-02-23 1984-02-14 Uop Inc. Hydrogenation using chitin and chitosan based immobilized metal catalysts
WO2001044160A2 (de) * 1999-12-14 2001-06-21 Merck Patent Gmbh Verfahren zur herstellung kombinatorischer aminbibliotheken
RU2294192C2 (ru) * 2001-05-30 2007-02-27 Дзе Скриппс Рисерч Инститьют Система доставки нуклеиновых кислот
US20100063131A1 (en) * 2007-03-26 2010-03-11 Hirofumi Takeuchi Prompt nucleic acid delivery carrier composition
US20100215582A1 (en) * 2007-05-14 2010-08-26 Konica Minolta Holdings, Inc. Liposome and method for producing liposome

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
C.A. BROWN ET AL., Mass spectrometry in structural and stereochemical problems - CLXXI: Factors governing the preferential loss of small vs. large radicals in the alpha-fission of aliphatic amines, Organic Mass Spectrometry, 1969, vol.2, p.625-630. *
C.A. BROWN ET AL., Mass spectrometry in structural and stereochemical problems - CLXXI: Factors governing the preferential loss of small vs. large radicals in the alpha-fission of aliphatic amines, Organic Mass Spectrometry, 1969, vol.2, p.625-630. EITARO KITATSUJI ET AL., Studies on the components in NTU shale oil. IV. The Hofmann degradation of open-chain quaternary ammonium compounds, Yakugaku Zasshi, 1971, vol.91, p.732-739. STEEN HAMMERUM ET AL., Competing simple cleavage reactions: The elimination of alkyl radicals from amine radical cations, Journal of American Chemical Society, 2005, vol.127, p.6466-6475. *
EITARO KITATSUJI ET AL., Studies on the components in NTU shale oil. IV. The Hofmann degradation of open-chain quaternary ammonium compounds, Yakugaku Zasshi, 1971, vol.91, p.732-739. *
STEEN HAMMERUM ET AL., Competing simple cleavage reactions: The elimination of alkyl radicals from amine radical cations, Journal of American Chemical Society, 2005, vol.127, p.6466-6475. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2823298C1 (ru) * 2023-11-14 2024-07-22 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ГНЦ ИБХ РАН) Ионизируемые катионные липиды для доставки нуклеиновых кислот

Also Published As

Publication number Publication date
ES2888231T3 (es) 2022-01-03
MX349088B (es) 2017-07-10
JP6543381B2 (ja) 2019-07-10
KR101878361B1 (ko) 2018-08-20
JP5961170B2 (ja) 2016-08-02
CN103167866B (zh) 2015-09-23
US9669097B2 (en) 2017-06-06
BR112013004585B1 (pt) 2021-09-08
JP2016121129A (ja) 2016-07-07
KR20180083440A (ko) 2018-07-20
EP3144015A2 (en) 2017-03-22
WO2012040184A2 (en) 2012-03-29
US20130178541A1 (en) 2013-07-11
US11911475B2 (en) 2024-02-27
BR112013004585A2 (pt) 2016-08-16
JP2014500233A (ja) 2014-01-09
CN103167866A (zh) 2013-06-19
US11413348B2 (en) 2022-08-16
US20230000989A1 (en) 2023-01-05
RU2013118224A (ru) 2014-10-27
EP3144015B1 (en) 2021-06-02
EP2618847A2 (en) 2013-07-31
KR102038241B1 (ko) 2019-10-29
EP2618847A4 (en) 2014-04-02
CA2809858A1 (en) 2012-03-29
WO2012040184A3 (en) 2012-08-16
JP6340356B2 (ja) 2018-06-06
MX2013003084A (es) 2013-04-05
AU2018202688A1 (en) 2018-05-10
US10576155B2 (en) 2020-03-03
AU2011305617A1 (en) 2013-02-21
CA2809858C (en) 2019-11-12
US20180000939A1 (en) 2018-01-04
EP3144015A3 (en) 2017-04-19
AU2018202688B2 (en) 2020-05-28
KR20130118305A (ko) 2013-10-29
JP2018150338A (ja) 2018-09-27
AU2016202433B2 (en) 2018-01-18
EP3943114A1 (en) 2022-01-26
US20200222540A1 (en) 2020-07-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2617641C2 (ru) Новые низкомолекулярные катионные липиды для доставки олигонуклеотидов
US9725720B2 (en) Low molecular weight cationic lipids for oligonucleotide delivery
US9981907B2 (en) Low molecular weight cationic lipids for oligonucleotide delivery
EP2635265B1 (en) Novel low molecular weight cyclic amine containing cationic lipids for oligonucleotide delivery
US9062021B2 (en) Low molecular weight cationic lipids for oligonucleotide delivery
WO2013016058A1 (en) Novel bis-nitrogen containing cationic lipids for oligonucleotide delivery

Legal Events

Date Code Title Description
HZ9A Changing address for correspondence with an applicant