PL168353B1 - Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego c z y n n i k a von Willebranda o wysokiej czystosci PL PL PL PL PL PL PL - Google Patents

Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego c z y n n i k a von Willebranda o wysokiej czystosci PL PL PL PL PL PL PL

Info

Publication number
PL168353B1
PL168353B1 PL92293738A PL29373892A PL168353B1 PL 168353 B1 PL168353 B1 PL 168353B1 PL 92293738 A PL92293738 A PL 92293738A PL 29373892 A PL29373892 A PL 29373892A PL 168353 B1 PL168353 B1 PL 168353B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
vwf
chromatography
factor
fraction
column
Prior art date
Application number
PL92293738A
Other languages
English (en)
Other versions
PL293738A1 (en
Inventor
Miryana Burnouf-Radosevich
Thierry Burnouf
Original Assignee
Centre Regional De Transfusion
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Centre Regional De Transfusion filed Critical Centre Regional De Transfusion
Publication of PL293738A1 publication Critical patent/PL293738A1/xx
Publication of PL168353B1 publication Critical patent/PL168353B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/745Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • C07K14/755Factors VIII, e.g. factor VIII C (AHF), factor VIII Ag (VWF)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/04Antihaemorrhagics; Procoagulants; Haemostatic agents; Antifibrinolytic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego czynnika von Willebranda o wysokiej czystosci, wzbogaconego w multimery o wysokiej, masie czaste- czkowej, znamienny tym, ze krioprecypitowana frakcje osocza poddaje sie trzem kolejnym etapom chromatografii, przy czym w pierwszych dwóch etapach stosuje sie chromatografie jonowymienna na zywicy z polimeru winylowego o duzych porach z przylaczonymi grupami DEAE, a w trzecim etapie stosuje sie chromatografie powino- wactwa na zelu zelatyna-sefaroza. PL PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania zaSężnnegn, standaryzowanego ludzkiego czynnika von W^^bran^ o wysokiej czystości. Produkt wytworzony sposobem według wynalazku cechuje bardzo wysoka aktywność właściwa i wysoka zawartość sulStsdrów o wysokiej masie cząsteczkowej. Jest on szczególnie przydatny do użycia terapeutycznego.
Czynnik von W^^bran^ /vWF/ jest największą znaną cząsteczką krążącą w osoczu. Występuje on jako zespół połączonych mostkami łousiαrozknwysi sulStsdrów, których pnłjełnnstaa podstawowa ma masę cząsteczkową około 260 kilzdaltonóo /kDa/. Najmniejszą pztSαcin vWF w osoczu jest dimer o masie około 440-500 kDa, a największą są sulSisdry dimeru o masie ccntteockooee osiągającej 20 milionów łalSoiów. Zespoły połączonych ze sobą pzłeełnzsSdk mogą być komórkowo swoiste, vWF ulega syntezie i polimeryzacji w segakarizcySach i komórkach nabłonka.
Czynnik ten odgrywa ważną rolę w homeostazie organizmu dzięki dwóm ważnym funkcjom: transportuje on i stabilizuje we krwi czynnik VIII i jako białko przylepne, pozwala on na pokrycie, przyczepienia się i agregację płytek krwi na tkance pzłśródbłznkzoee naczyń, b^rąc w ten sposób udział w szybkim gojeniu się uszkodzonych naczyń.
Wrodzony niedobór vWF lub strukturalne anomalie tego czynnika powodują rozwój choroby von Wtllebraida, która początkowo przyjmuje postać krwotoków, szczególnie skórnych i błon śluzowych. Kliiiccna postać tej choroby jest bardzo różnorodna i stwarza wiele problemów w chirurgii. Leczenie choroby von Willebranda jest niezbędna do przywrócenia pierwotnej homeostazy organizmu /czasu krwawienia/ i anomalii krzepnięcia /aktywowanego czasu keaaliizoegz i aktywności czynnika VIII/.
168 353
Chorobę leczy się w terapii zastępczej pochodnymi plazmy wzbogaconymi w ludzki vWF /na przykład, krioprecypitowaną frakcję osocza lub zatęZonym czynnikiem VIII zawierającym odpowiednią ilość vWF/. Jednakże te produkty nie są standaryzowane do celów leczenia choroby von Willebranda. Ponadto, istnieje ryzyko zanieczyszczenia wirusami słabo oczyszczonych frakcji osocza krwi, szczególnie krioprecypitatów, ponieważ często nie poddaje się ich żadnemu skutecznemu etapowi inaktywacji wirusów. Co więcej, zawierają one nadmiar zanieczyszczających białek, niepotrzebnych pacjentowi, które mogą wywołać reakcje immunologiczne po wielokrotnych wstrzyknięciach.
Oczyszczony czynnik VIII, można poddać wydajnemu procesowi inaktywacji wirusów, ale sposób jego oczyszczania jest optymalny do leczenia pacjentów z hemofilią A, a nie dla pacjentów z niedoborem czynnika vWF. Rzeczywiście, udoskonalone ostatnio i coraz wydajniejsze sposoby oczyszczania czynnika VIII, takie jak, oczyszczanie z zastosowaniem immunopowinowactwa lub jonowymienne, dają koncentraty, które nie zawierają wystarczająco dużo vWF, aby mogły być skuteczne do leczenia choroby von Willebranda.
W celu umożliwienia efektywnego leczenia choroby von Willebranda opracowano nowy, przemysłowy sposób oczyszczania vWF, dający możliwość ciągłej izolacji innych cząsteczek z osocza. Szczególnie pozwala on na otrzymanie zatężonego czynnika VIII w jednym etapie /według sposobu opisanego w Europejskim zgłoszeniu patentowym Nr EP 0 359 593/ i odzyskanie oddzielnej frakcji vWF z tej samej porcji krioprecypitatu, tak więc sposób ten pozwala na optymalne wykorzystanie ludzkiego osocza. Otrzymaną frakcję vWF oczyszcza się chromatograficznie w dwóch dodatkowych etapach, w których otrzymuje się zatężony vWF o bardzo wysokiej czystości.
Złożoność cząsteczki vWF czyni ją bardzo trudną do oczyszczenia. Sposoby oczyszczani a na małą skalę, to znaczy, 5 do 0000 mi do celów badań anaalttcznych zosttay wwcześiej ooissne /Thorell i wsp. , Thromb. Res. 1984, 35: 431-450/, ale nie znaleziono możliwości przystosowania tych sposobów do otrzymywania vWF na skalę przemysłową. Ponadto nie była tam rozważana idea jak najlepszego wykorzystania krioprecypitatu przez jednoczesne wytwarzanie vWF i czynnika VIII.
vWF oczyszcza się przez rozpuszczanie różnicujące w związkach siarczanowych w obecności glicyny /Berntorp i wsp., Vox Sang. 1989, 56: 112/, w związkach siarczanowych /Winkelman i wsp., Vox Sang. 1989, 57: 97/ i przy użyciu różnych sposobów rozdzielania chromatograficznego, takich jak, wyłączanie cząsteczek o określonej wielkości /Perret i wsp., CadtoαStsis 8484, 14: 189/ i chromatografia jonowymienna /Austen i wsp., Thrombi Haemostat. 1981, 48: 195/. Jednak że, te sposoby dają małą wydajność dτrzymywayia vWF, lub małą zdolność do tworzenia żelu, lub uniemożliwiają jednoczesne izolowanie czynnika VIII i vWF, co czyni je mniej przydatnymi do zastosowania w przemyśle.
Ponadto, Berntorp i wsp., /Vox Sang. 1989, 56: 111/ otrzymują vWF o niskiej czystości: 45 jednostek Ag/mg białka /str. 113, natomiast sposobem według wynalazku otrzymuje się 105 jednostek Ag/mg białka. Podobnie Winkelman i wsp., /Vox Sang 1989, 57: 97/ otrzymują 10 jednostek Ag/mg białka /str. 101/.
Perret i wsp., /Haemostasis 1984, 14: 189/ stosują etap defiarcnacji /w celu wyeliminowania fibryndgeyu jako cząsteczek fibryny/ przy użyciu wapnia, a także enzymów z jadu węża. Czyni to preparaty zupełnie nieprzydatnymi do celów terapeutycznych. Ponadto, stosowany przez nich system filtracji na żelu jest trudny do użycia na skalę p^zem^łow, ppoytcad ppozaal m prrdkość przepływu tylko 10 cm/godzinę lub mniej i wykazuje duże prawdopodobieństwo zatykania, szczególnie w obecności fibrynogenu lub fibronektyny. Ponadto, wiadomo, że wskaźnik oczyszczenia jest przeważnie niski z powodu złego rozdzielania białek w tym układzie chromatograficznym.
Austen, i wsp., /Thn^omb. Had^slas. 19t^^, 48: 46/ także otrzymują koncentrat o niskiej czystości /8 jednostek Ag/mg białka/ i ze stosunkowo niską wydajnością, prawdopodobnie z powodu drastycznych warunków chromatografii /pH 5,5/.
Harrison i wsp., /Thromb. Res. 1988, 50: 195/ stosują podłoże dextrαy-ttαrcnαn scfardny w charakterze podłóż do chromatografii, podłoże to ma małą zdolność zatrzymywania vWF. W rezultacie otrzymują oni preparat vWF o niskiej aktywności włłaśiieć : 21- jeedydtkitmg baidya /str. 301/.
Większość z tych produktów zawiera raczej dużą ilość zacnaturdłayej lub nieaktywnej postaci vWF, na co wskazuje stosunek aktywności kofaktora rystocetyny /RCo/ /antygen wynoszący od 0,08 do 0,8 /Lawrie i wsp., Br. J. Haemdtol. 1989, 73: 100/. Czyni to je mniej wydajnymi w
168 353 leczeniu choroby von Willebranda. Natomiast sposób według wynalazku pozwala uzyskać vWF o stosunku RCo/antygen wyższym od jedności, który jest porównywalny z natywnym vWF z normalnego osocza.
Opis figur rysunku. Figura 1. Elektroforeza w żelu poliakrylamidowym z SOS /SDS-PAGE/ oczyszczonych frakcji vWF. Linia 1: krioprecypitat, linia 2: krioprecypitat traktowany SD, linia 3: niezwiązana frakcja z chromatografii na DEAE-Fractogel, linia 4: pierwszy eluat z vWF, linia 5: drugi eluat z vWF, linia 6: niezwiązana frakcja żelatynowa, linia 7: standardy. Fbn = fibronektyna, IgG = immunoglobulina, Alb = albumina.
Figura 2. Rozmieszczenie multimerów we frakcjach oczyszczania vWF. Linia 1: normalne osocze, linia 2: krioprecypitat, linia 3: krioprecypitat traktowany SD, linia 4: niezwiązana frakcja z chromatografii na DEAE-Fractogel, linia 5: pierwszy eluat z vWF, linia 6: drugi eluat z vWF. linia 7: niezwiązana frakcja żelatynowa.
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania zatężonego standaryzowanego ludzkiego czynnika von Willebranda o wysokiej czystości, wzbogaconego w multimery o wysokiej masie cząsteczkowej, polegający na tym, że krioprecypitowaną frakcję osocza poddaje się trzem kolejnym etapom /chromatografii/, przy czym w pierwszych dwóch etapach stosuje się chromatografię jonowymienną na żywicy z polimeru winylowego o dużych porach z przyłączonymi grupami DEAE, a w trzecim etapie stosuje się chromatografię powinowactwa na żelu żelatyna-sefaroza.
Przemysłowy sposób według wynalazku pozwala na otrzymanie zatężonego ludzkiego czynnika von Willebranda do użycia terapeutycznego, jako produktu ubocznego w procesie wytwarzania czynnika VIII o wysokiej czystości i umożliwia standaryzację porcji o wysokiej zawartości multimerów o dużej masie cząsteczkowej, przy czym w sposobie według wynalazku stosuje się bardzo duże objętości plazmy /4OOO litrów lub więcej/ i osiąga się optymalne wykorzystanie krioprecypitatu.
Bardziej szczegółowo, przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania zatężonego vWF, w którym stosuje się trzy kolejne etapy chromatografii, co pozwala na wzbogacenie frakcji w multimery o wysokiej masie cząsteczkowej, od których zależy aktywność biologiczna vWF. Materiałem wyjściowym jest krioprecypitat ludzkiego osocza, poddany tradycyjnym etapom oczyszczania, włączając adsorpcję na wodorotlenku glinowym.
Materiał ten poddaje się przed oczyszczaniem procesowi inaktywacji wirusów, na przykład, działając rozpuszczalnikiem i detergentem.
Tak więc sposób według wynalazku obejmuje zastosowanie trzech kolejnych etapów chromatograficznych, którym poddaje się produkt uboczny procesu wytwarzania czynnika VIII, z których pierwsze dwa wykorzystują chromatografię jonowymienną, a trzeci chromatografię powinowactwa.
Dwa etapy chromatografii jonowymiennej prowadzi się na tym samym podłożu z polimeru winylowego, który ma przyłączone grupy dwuetyloaminoetylowe /DEAE/, na kolumnach DEAE-Fractogel TSK 650 /Merck/, zrównoważonych buforem zawierającym O,01 M cytrynian trójsodowy, 0,11 M chlorek sodowy, 0,001 M chlorek wapniowy, 0,12 M >glicynę i 0,016 M lizynę, pH 7.
DEAE-Fractogel ® TSK 650 jest syntetycznym, hydrofilowym podłożem żelowym. Jego podstawę stanowi kopolimer oligoetylenoglikolu, glicydylometakrylanu i pentaerytrytodwumetakrylanu, do którego przyłączone sa gruDy dwuetyloaminoetylowe, to znaczy, -O-Ch2-CH~2+ /C„ H HCL, co daje lekko , , , „ , „ TSK 650 jest dostępny w dwóch wielkościach cząsteczek /po namoczeniu w wodzie/: Typ S /O,O 25-0,050 mm/ i typ M /0,045-0,090 mm/. Oba typy są przydatne do prowadzenia sposobu według wynalazku.
Krioprecypitowaną frakcję osocza, wstępnie oczyszczoną i poddaną procesowi inaktywacji wirusów według tradycyjnych metod, podaje się na pierwszą kolumnę chromatograficzną, która zatrzymuje większą część vWF. Następnie vWF eluuje się buforem o zwiększonym do 0,14-0,15 M stężeniu chlorku sodowego.
Tak wyeluowaną frakcję, wzbogaconą w vWF, podaje się na drugą kolumnę chromatograficzną w takich samych warunkach, jak w przypadku pierwszej. Ponieważ wiele białek /szczególnie czynnik VIII i fibronektyna/, które współzawodniczą o miejsca adsorpcji zostało już usuniętych z tej frakcji w pierwszym etapie chromatografii, zdolność adsorbcji vWF drugiej kolumny jest dużo większa. Po usunięciu filtratu i przemyciu kolumny buforem równoważącym, zaadsorbowany vWF eluuje się zwiększonym do 0,15-0,17 M stężeniem chlorku sodowego w buforze. Dzięki wspaniałej pojemności
168 353 i wydajności żywicy DEAE-Fractogel Θ. z kolumny mnana wymyć fWF o barOzo dujej aktnoncści /> 150 jednostek RCo/ml/. W tun sposób modna uniknąć mechanicznego nacisku związanego r ultrafiltracją, niezbędną do zatężenia produktu.
Wyeluowaną frakcję poddaje się chromatografii powinowactwa na żelu pochodnym żelatyny w tym samym buforze równoważącym, tak więc unika się etapu dializy lub ultrafiltracji w celu zmiany składu soli. Kolumna ta jest niezbędna do zatrzymania fibronektyny, która ciągle zanieczyszcza vWF. Wybór pochodnego żelatyny żelu nie jest najważniejszy, jednakże, odpowiednie do prowadzenia sposobu według wynalazku są Gelatiu-SephaΓose, Gelatin-Ultragel® , Gelatiu-Spheroaex Gela tin-Fractogel ® . Najkorzystniej stosuje się Gelatiu-Supharosu, ponieważ zatrzymuje on w warunkach stosowanych w sposobie według wynalazku, 5 do 10 mg fibronektyny/ml żelu.
W takich warunkach wysoko oczyszczony vWF nie wiąże się z żelem i eluuje w filtracie. Ponieważ etap chromatografii powinowactwa na żelatynie nie wywołuje znacznego rozcieńczenia frakcji vWF, produkt można natychmiast rozdzielać, bez potrzeby stosowania etapu zatężenia, na przykład, ultrafiltracji. Brak enzymów proteolitycznych w produkcie końcowym, czyni go bardzo trwałym w trakcie sterylizowania przez filtrację i podczas liofilizacji, bez potrzeby dodawania związków stabilizujących.
Zatężony czynnik von Willebranda uzyskany sposobem według wynalazku ma wyjątkowo wysoki współczynnik czystości, większy niż llOOfO-krotny w stosunku do wyjściowego osocza, a jego aktywność właściwa wynosi 345 jednostek CBA/mg białka /jednostki dla pomiaru aktywności wiązania kolagenu/ i więcej niż 100 jednostek RCo/mg białka /jednostki dla pomiaru aktywności kofaktora rystocetyny/. Udział poszczególnych etapów chromatografii w oczyszczaniu vWF przedstawiono 'na fig. 1.
Poprawę jakości produktu w czasie kolejnych etapów oczyszczania kontroluje się jako funkcję zawartości multimerów o wysokiej masie cząsteczkowej /formy cząsteczkowe vWF mające wysoką aktywność biologiczną/, oznaczonej elektroforetycznie.
Taka analiza wykazała wzrastające wzbogacenie w multimery JZ 4 /fig. 1/, co stanowi 79% polimerów vWF, chociaż połowa została wyeliminowana przez krioprecypitację. Nieoczekiwanie okazało się, że chromatografia na kolumnie DEAE-Fractogel ® TSK 650 faworyzuje selektywne zatrzymywanie bardzo dużych multimerów i eliminuje formy o małej wielkości, nienormalnej strukturze /takie, które uległy częściowej proteolize//, i o niskiej aktywności.
Standardowy koncentrat vWF o wysokiej czystości, wysokiej aktywności właściwej i wysokiej zawartości multimerów o dużej masie cząsteczkowej wytworzony sposobem według wynalazku jest szczególnie przydatny do leczenia różnych postaci choroby von Willebranda, jak to potwierdziły wstępne badania kliniczne.
Wstępne testy kliniczne wykazały, że taki koncentrat daje wyraźne skrócenie czasu krwawienia w czasie krwotoków.
Testy in vitro potwierdziły, że jego biochemiczne i fizjologiczne właściwości są identyczne jak właściwości natywnej cząsteczki, a zwłaszcza takie właściwości jak jego zdolność do unieruchamiania płytek krwi w urządzeniu do perfuzji i jego zdolności do wiązania in vivo endogennego czynnika VIII.
Dzięki swojej wysokiej czystości, vWF wytworzony sposobem według wynalazku można brać pod uwagę w różnych zastosowaniach laboratoryjnych /subtelnej analizie strukturalnej, badaniach funkcyjności, diagnostyce i tak dalej/ i do wytwarzania swoistych przeciwciał.
Koncentratu wytworzonego sposobem według wynalazku można użyć także jako stabilizatora w czasie wytwarzania czynnika VIII przez komórki transformowane metodą inżynierii genetycznej, a także w czasie oczyszczania czynnika VIII tak wytworzonego.
Następujący przykład ilustruje jeden z korzystnych sposobów wykonania sposobu według wynalazku bez ograniczenia jego zakresu.
Przykłd.. Materiał wyjściowy. Krioprecypitat wytworzono ze świeżego osocza zebranego w obecności roztworu antykoagulanta w postaci cytrynianu sodowego /4%/ lub CPD /cytrynian, fosforan, dekstroza/ przez zamrożenie, najczęściej na 6 godzin po otrzymaniu. Plazmę zamrożono głęboko do temperatury -6O°C i przechowywano w temperaturze -35°C. Porcja plazmy zawierała od 1800 do 2000 litrów, które dia potrzeb sposobu według wynalazku zbierano w porcje 4000-litrowe. W celu rozmrożenia, ' laniuę lmUszϋczono n a 12 odzziπ w oornorze z eeuulowaną UlmueaatuΓą dla
168 353 zapewnienia powolnego, stałego podgrzewania do temperatury -7°C, następnie rozmrażano w kontrolowanej termostatowo osłonie do temperatury 0° do 2°C, stale mieszając. Krioprecypitat /który stanowi około 9 g/litr plazmy/ oddzielono przez wirowanie w obniżonej temperaturze.
Po wirowaniu, odzyskany krioprecypitat rozpuszczono i poddano adsorbcji na wodorotlenku glinowym w celu usunięcia zanieczyszczeń, na przykład, składników kompleksu protrombiny /szczególnie czynnika VII/ i czynnika XII. Następnie nadsącz oziębiono do temperatury 15°C, przez co częściowo usunięto fibrynogen i fibronektynę/. Takie traktowanie pozwoliło odzyskać z krioprecypitatu 80 do 86% mieszaniny czynnik VIII/vWF, aktywność właściwa czynnika VIII stanowiła 0,7 jednostek/mg a aktywność właściwa vWF 0,6 RCo/mg /aktywność kofaktora rystocetyny/ i 1,2 jednostek CBA/mg /aktywność wiązania kolagenu/.
Inaktywacja wirusów. Roztwór zawierający mieszaninę czynnik VIII/vWF poddano działaniu rozpuszczalnika/detergentu, znanemu ze swojej skuteczność i w niszczenLu lipidowej otoczki wirusowej /Horowitz i wsp., TTaiisfusion, 1185, 22: 551/, ppprzez innubowanie w cżąąg 8 goCznn w temperaturze 25°C w obecności 0,3% roztworu fosforanu tri-n-butylu /TnBP/ i 1% roztworu Tweenu 80.
Po takim traktowaniu odzyskano 85% aktywności czynnika VIII i vWF, zmierzonej w poprzednim etapie. Dla potwierdzenia, że vWF znajduje się ciągle w formie mul0imeryczneW można użyć elektroforezy.
Etap rozdzielania chromatograficznego. Etap oczyszczania vWF oparto na sposobie oczyszczania czynnika VIII opisanego w Europejskim zgłoszeniu patentowym Nr EP 0358583.
Pierwszą chromatografię prowadzono na Loldlnie LEAEAE-Fctogel ® flt L56 L^yp S lub M /Merck/. Bufor równoważący kolumnę zawierał cytrynian trójsodowy /0,01 M/, chlorek wapniowy /0,001 M/, glicynę /0,12 M/, L-lizynę /0,016 M/ i chlorek sodowy /0,11 M/. Kolumna zatrzymywała vWF , czynnik VIII i fibctnektynę, a zaniezzysnznające białka /głównie fibryetgen i niektóre IgG/ słabo związane lub wcale niezwiązane oraz związki ieak0ywbWąze wirusy wyeluowano dzięki kilku kolejnym przemywaniom tym samym buforem.
Elucję prowadzono przy szybkości przepływu 100 cm/godzinę. W tych warunkach, używana kolumna miała zdolność zatrzymania około 75¾ wstrzykniętej objętości /mierzonej jako antygeL, Ag/, pozostałą część tracono w filtracie. Taka zdolność wiązania odpowiada 45 jednostkom vWF Ag/ml żelu. Zaadsorbowany vWF wyeluowano z kolumny buforem o zwiększonym do 0,15 M stężeniu chlorku sodowego. Zebrana frakcja vWF zawierała od 30 do 35% początkowego vWF, podczas gdy 40% pozostało zaadsorbowane razem z czynnikiem VIII, i wyeluowano przy drugim zwiększeniu stężenia NaCl w buforze, do 0,25 M, a następnie razem oczyszczono. Frakcję zawierającą vWF, wyeluowaną z pierwszej kolumny podano na drugą identyczną kolumnę, po lekkim rozcieńzneeib buforem do równoważenia, w celu obniżenia siły jonowej frakcji vWF poniżej siły jonowej 0,11 M chlorku sodowego.
Ponieważ zanieczyszczenia i czynnik VIII, które współzawodniczą o miejsca adsorpcji na pierwszej kolumnie zostały usunięte w pierwszym etapie chromatografii, zdolność wiązania drugiej kolumny jest dużo większa: 320 jednostek vWF Ag/ml żelu.
Zaadsorbowany vWF wyeluowano z kolumny buforem o zwiększonym do 0,17 M stężeniu chlorku sodowego.
Druga chromatografia dała współczynnik zatężenia 8 do 10 razy większy niż pierwsza, co wyeliminowało konieczność dodatkowego zatężania przez, na przykład, ultcαfiltrację. Przy użyciu standardowych technik, stwierdzono, że eltLt zawćerLł πastęwuZeLθ ilości lub aktywności vWF.
-Antygen /Ag/ 88 ± 9 jednostek/mj
- ^faktor rystocetyny /RCo/ °7 ± 1-19 jednostek/mj
- aktywność wiązania kolagenu CB8// 144 ± 13 jednostek/ml
- multimery o wysokiej masie cząsteczkowej / multimerów/
Jednostki CBA /aktywność wiązania kolagenu/ określono testem ELISA tak, jak opisał Brown i Bosak /Thromb. Res. 1986, 43: 303/. W celu wyrażenia wartości CBA w jednostkach międzynarodowych, jako wzorca użyto standardowego osocza, kalibrowanego według-.2nd British Standard /86/717/.
Stosunek CBA/Ag wynoszący 1,69 wskazuje, że aktywność vWF została dobrze zachowana. Jest to w zgodzie z wysokim procentem multimerów o wysokiej masie cząsteczkowej /79%/ i jest porównywalne z natywnym vWF /70%/ z osocza.
160 353
Analiza elektroforetyczna takiego eluatu vWF wykazała niewielkie zanieczyszczenie fibronektyną i inhibitorami inter-alfa trypsyny i proteazy seryny.
Następnie drugi eluat, w celu wyeliminowania fibronektyny, poddano trzeciemu etapowi oczyszczania na kolumnie Gelatin-Sepharose CL4B /Pharmacia/ zrównoważonej takim buforem jak poprzednia kolumna.
Żel do chromatografii powinowactwa ma zdolność zatrzymywania fibronektyny wynoszącą więcej niż 5 mg/ml, co umożliwia zmniejszenie stężenia tego zanieczyszczenia we frakcji vWF poniżej granicy wykrywania /<T4 mg/1/.
vWF oczyszczony sposobem według wynalazku zbiera się w filtracie z tego etapu i można go odrazu rozlewać i liofilizować.
Analiza elektroforetyczna produktu końcowego nie wykazała jakichkolwiek zanieczyszczeń. Zawartość vWF wynosiła 205 jednostek Ag/ml białka, a aktywność właściwa 345 jednostek CBA/mg białka i 106-220 jednostek RCo/mg białka.
Całkowity współczynnik oczyszczania w stosunku do wyjściowego osocza wynosił więcej niż 10000 razy.
Analiza elektroforetyczna /SDS-agaroza i skanning prążków/ wykazała, że VWF otrzymany takim sposobem oczyszczania składa się w 65 do 00% z multimerów o dużej masie cząsteczkowej, to znaczy w proporcji porównywalnej z wyjściowym osoczem, dla którego zawartość multimerów wynosi 70%.
Trwałość koncentratu badano w postaci ciekłej, w temperaturze pokojowej w ciągu 24 godzin i nie stwierdzono żadnej zauważalnej aktywności proteolitycznej, ani zmian aktywności właściwej.
Brak aktywności wywoływania tworzenia skrzeplin koncentratu sprawdzono tradycyjnymi testami, takimi jak, częściowy, nieaktywowany czas tromboplastyczny. Nie wykryto trombiny, PKA i kalikreiny.
Nie trzeba więc dodawać do końcowego koncentratu vWF żadnych związków stabilizujących.
Zaprojektowanie sposobu oczyszczania, specjalnie pod kątem uzyskania vWF, jako produktu ubocznego w procesie otrzymywania czynnika VIII daje, po raz pierwszy, możliwość wytworzenia koncentratu o wysokiej czystości i bardzo wydajnego w leczeniu choroby von Willebranda.
168 353 1 »Μ« « | 1 »ΠίΙ I |
Fig. 2
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 1,50 zł

Claims (7)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania zatężonego, standaryzowanego ludzkiego czynnika von Willebranda o wysokiej czystości, wzbogaconego w multimery o wysokiej masie cząsteczkowej, znamienny tym, że krioprecypitowaną frakcję osocza poddaje się trzem kolejnym etapom chromatografii, przy czym w pierwszych dwóch etapach stosuje się chromatografię jonowymienną na żywicy z polimeru winylowego o dużych porach z przyłączonymi grupami DEAE, a w trzecim etapie stosuje się chromatografię powinowactwa na żelu żelatyna-sefaroza.
  2. 2. SSpoób wedłuu zzsttz. 1, znamienny tyra, że jako materiał wyjściowy stosuje się krioprecypitowaną raaceją ssocza, ssępniee ocysszczoną aa wddrrotdekku giinowym.
  3. 3. Sposób wwtiług astrzz. 1, znamienny ty m, że w póezwseym d druąie etepie stosuje się żywicę jonowymienną DtAE-FrαoSngel w TSK 650, zrównoważoną roztworem buforu zawierającym 0,01 M cytrynian trójsodowy, 0,11 M chlorek sodowy, 0,001 M chlorek wapniowy, 0,12 M glicynę i 0,016 M L-lizynę.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wstępnie oczyszczoną kriopreoypiSowαią frakcję osocza podaje się na pierwszą kolumnę chromatografii jonowymiennej, a pierwszą frakcję zawierającą czynnik von Willebranda eluuje się buforem o zwiększonym do 0,14-0,15 M stężeniu chlorku sodowego.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że eluat zawierający frakcję czynnika von Willdbrαnłα z pierwszej chromatografii podaje się na drugą kolumnę chromatografii jonowymiennej, a czynnik von Willebranda eluuje się buforem o zwiększonym do 0,15-0,17 M stężeniu chlorku sodowego.
  6. 6. Sposób wweług zza-trz. 1, znamienny tym, Ze z drugijj chromatografi i poddaje się chromatografii na żdlatynie-seaaΓozie, zrównoważonej buforem elucyjnym z poprzedniego etapu chromatografii uzyskując selektywną adsorpcję pozostałej atbrnnektyny na kolumnie.
  7. 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że zbiera się czynnik von Willebranda obecny w filtracie z kolumny żelatyna-sefaroza, rozlewa się, zamraża i wysusza.
    * * *
PL92293738A 1991-03-08 1992-03-06 Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego c z y n n i k a von Willebranda o wysokiej czystosci PL PL PL PL PL PL PL PL168353B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9102804A FR2673632A1 (fr) 1991-03-08 1991-03-08 Procede de preparation de concentre de facteur von willebrand humain de tres haute purete, approprie a un usage therapeutique.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL293738A1 PL293738A1 (en) 1992-09-21
PL168353B1 true PL168353B1 (pl) 1996-02-29

Family

ID=9410505

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL92293738A PL168353B1 (pl) 1991-03-08 1992-03-06 Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego c z y n n i k a von Willebranda o wysokiej czystosci PL PL PL PL PL PL PL

Country Status (29)

Country Link
US (1) US5408039A (pl)
EP (1) EP0503991B1 (pl)
JP (1) JP3435668B2 (pl)
AT (1) AT407115B (pl)
AU (1) AU645172B2 (pl)
BE (1) BE1004178A3 (pl)
BR (1) BR9200770A (pl)
CA (1) CA2062340C (pl)
CZ (1) CZ283633B6 (pl)
DE (2) DE69227055T2 (pl)
DK (1) DK0503991T3 (pl)
EE (1) EE03057B1 (pl)
EG (1) EG20300A (pl)
ES (1) ES2121830T3 (pl)
FI (1) FI106721B (pl)
FR (1) FR2673632A1 (pl)
HU (1) HU215098B (pl)
IL (1) IL101043A (pl)
IT (1) IT1256692B (pl)
LT (1) LT3175B (pl)
NL (1) NL300394I1 (pl)
NO (1) NO301278B1 (pl)
NZ (1) NZ241701A (pl)
PL (1) PL168353B1 (pl)
RU (1) RU2088590C1 (pl)
SA (1) SA92120446B1 (pl)
SK (1) SK279533B6 (pl)
UA (1) UA27732C2 (pl)
ZA (1) ZA921430B (pl)

Families Citing this family (43)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4435392B4 (de) * 1994-10-04 2008-02-07 Immuno Ag Verfahren zur Trennung von vWF in hochmolekularen vWF und niedermolekularen vWF
DE4435485C1 (de) * 1994-10-04 1996-03-21 Immuno Ag Verfahren zur Gewinnung von hochreinem von Willebrand-Faktor
DE4437544A1 (de) * 1994-10-20 1996-04-25 Behringwerke Ag Einsatz von vWF-enthaltenden Konzentraten als Kombinationstherapie bei Therapie mit Antithrombotika und Fibrinolytika
US5659017A (en) * 1995-11-07 1997-08-19 Alpha Therapeutic Corporation Anion exchange process for the purification of Factor VIII
DE19616540A1 (de) * 1995-11-10 1997-05-15 Immuno Ag Verwendung von von Willebrand-Faktor und pharmazeutische Zubereitung
US6005077A (en) * 1995-11-10 1999-12-21 Immuno Aktiengesellschaft Use of von willebrand factor and pharmaceutical formulation
AT403764B (de) 1996-03-15 1998-05-25 Immuno Ag Stabiler faktor viii/vwf-komplex
US6068838A (en) * 1996-04-29 2000-05-30 Baxter Aktiengesellschaft Purified multimerase
AT404358B (de) 1997-02-04 1998-11-25 Immuno Ag Verfahren zur chromatographischen reinigung bzw. fraktionierung von von willebrand-faktor aus einem vwf-hältigen ausgangsmaterial
AT405403B (de) 1997-02-27 1999-08-25 Immuno Ag Reinigung von von willebrand-faktor durch kationenaustauscherchromatographie
AT405485B (de) * 1997-05-28 1999-08-25 Immuno Ag Eine das vwf-propeptid enthaltende pharmazeutische präparation
BR0008405B1 (pt) 1999-02-22 2014-04-22 Baxter Int Composição de fator viii formulada sem a adição de albumina, uso de uma composição de fator viii, e, método de liofilizar uma formulação farmacêutica aquosa
EP1148063A1 (de) * 2000-04-18 2001-10-24 Octapharma AG Haemostatisch aktives vWF enthaltendes Präparat und Verfahren zu seiner Herstellung
EP1593388A1 (en) * 2004-05-05 2005-11-09 ZLB Behring GmbH Therapeutic plasma protein-concentrates containing von willebrand factor as high molecular weight multimers
FR2874216B1 (fr) 2004-08-16 2006-11-03 Lab Francais Du Fractionnement Procede de preparation d'un concentre de facteur von willebrand (fvw) par voie chromatographique et concentre de fvw susceptible d'etre ainsi obtenu
DE102004044419B4 (de) 2004-09-14 2010-04-15 Biotest Ag Verfahren zur Aufreinigung eines von Willebrand Faktors mittels Hydroxylapatit-Durchlaufchromatographie
DE102004044429B4 (de) * 2004-09-14 2009-04-30 Biotest Ag Verfahren zur Herstellung einer Zusammensetzung enthaltend von Willebrand Faktor
ITLU20070007A1 (it) * 2007-05-07 2008-11-08 Kedrion Spa Processo cromatografico per l'ottenimento di un complesso fviii/vwf con differenti rapporti tra le due proteine da utilizzare nella terapia della emofilia a e nella malattia di von willebrand.
DK2167117T3 (da) 2007-06-13 2012-11-19 Csl Behring Gmbh Anvendelse af VWF-stabiliserede FVIII-præparater til ekstravaskulær administration til terapeutisk og profylaktisk behandling af blødningsforstyrrelser
FR2920429B1 (fr) * 2007-08-30 2012-10-05 Lfb Biotechnologies Procede de purification du facteur viii et du facteur von willebrand
EP2073015A1 (en) 2007-12-21 2009-06-24 CSL Behring GmbH Diagnostic in vitro method for assessing Von Willebrand Disease and bleeding risk associated with Von Willebrand Disease and acquired or congenital disorders of platelet function
US20100273206A1 (en) * 2007-12-21 2010-10-28 Manfred Rauh Diagnostic in vitro method for assessing von willebrand disease and increased bleeding risk associated with von willebrand disease and acquired or congenital disorders of platelet function
KR101648734B1 (ko) 2008-06-24 2016-08-18 체에스엘 베링 게엠베하 연장된 생체내 반감기를 갖는 인자 viii, 폰 빌레브란트 인자 또는 이들의 복합체
US20100168018A1 (en) * 2008-11-07 2010-07-01 Baxter International Inc. Factor viii formulations
IT1396528B1 (it) 2009-01-19 2012-12-14 Kedrion Spa Nuovo processo di purificazione altamente selettivo di due proteine plasmatiche: von willebrand factor (vwf) e fibronectina (fn).
US20120148557A1 (en) 2009-08-20 2012-06-14 Ulrich Kronthaler Albumin fused coagulation factors for non-intravenous administration in the therapy and prophylactic treatment of bleeding disorders
WO2012082933A1 (en) 2010-12-15 2012-06-21 Baxter International, Inc. Eluate collection using conductivity gradient
US9393289B2 (en) 2011-10-18 2016-07-19 Csl Behring Gmbh Use of sulfated glycosaminoglycans for improving the bioavailability of factor VIII
DK2768521T3 (en) 2011-10-18 2016-10-24 Csl Behring Gmbh Combined use of a sulfated glykosamin glycan and a Hyaluronidase to improve bio-availability of factor VIII
EP2814502B1 (en) 2012-02-15 2017-09-13 CSL Behring GmbH Von willebrand factor variants having improved factor viii binding affinity
EP2796145B1 (en) 2013-04-22 2017-11-01 CSL Ltd. A covalent complex of von willebrand factor and faktor viii linked by a disulphide bridge
AU2014346343B2 (en) * 2013-11-08 2018-05-10 Csl Ltd. New method to concentrate von Willebrand factor or complexes thereof
DK3164150T3 (da) 2014-07-02 2021-02-08 CSL Behring Lengnau AG Modificeret von willebrand-faktor
US10626164B2 (en) 2014-07-25 2020-04-21 Csl Limited Purification of VWF
FR3034669B1 (fr) 2015-04-07 2020-02-14 Laboratoire Francais Du Fractionnement Et Des Biotechnologies Nouvelle utilisation du facteur von willebrand
WO2017066683A1 (en) * 2015-10-15 2017-04-20 Plasma Technologies, Llc Methods for extracting proteins from blood plasma
SG10201912857XA (en) 2016-01-07 2020-02-27 CSL Behring Lengnau AG Mutated von willebrand factor
SG11201805497QA (en) 2016-01-07 2018-07-30 Csl Behring Recombinant Facility Ag Mutated truncated von willebrand factor
CN105622747A (zh) * 2016-02-04 2016-06-01 江西博雅生物制药股份有限公司 一种vWF活性保护液
CN105622746A (zh) * 2016-02-04 2016-06-01 江西博雅生物制药股份有限公司 一种从冷沉淀提取凝血因子ⅷ的废料中提取人血管性血友病因子的制备工艺
CN105541997A (zh) * 2016-02-04 2016-05-04 江西博雅生物制药股份有限公司 一种高纯度和高活性血管性血友病因子的制备工艺
EP3488858A1 (en) 2017-11-27 2019-05-29 Laboratoire Français du Fractionnement et des Biotechnologies A von willebrand factor composition for use in treating a pathology mediated by angiogenesis
CN114249812B (zh) * 2020-09-22 2023-09-15 四川远大蜀阳药业有限责任公司 一种降低vWF制品中IgM含量的方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS61166542A (ja) * 1985-01-18 1986-07-28 Hitachi Chem Co Ltd 感光性組成物
US4970300A (en) * 1985-02-01 1990-11-13 New York University Modified factor VIII
US5006642A (en) * 1987-06-29 1991-04-09 Rhone-Poulenc Rorer Pharmaceuticals Inc. Purification of von Willebrand Factor by affinity chromatography
FR2632309B1 (fr) * 1988-06-07 1990-08-24 Lille Transfusion Sanguine Procede de purification par voie chromatographique de proteines, notamment de facteur viii, et les produits obtenus

Also Published As

Publication number Publication date
EP0503991A1 (fr) 1992-09-16
JPH0597696A (ja) 1993-04-20
IT1256692B (it) 1995-12-12
ATA43692A (de) 2000-05-15
FI106721B (fi) 2001-03-30
EE03057B1 (et) 1997-12-15
PL293738A1 (en) 1992-09-21
AU645172B2 (en) 1994-01-06
SK279533B6 (sk) 1998-12-02
HUT63176A (en) 1993-07-28
IL101043A0 (en) 1992-11-15
BE1004178A3 (fr) 1992-10-06
CA2062340A1 (fr) 1992-09-09
EG20300A (fr) 1998-10-31
NO920867L (no) 1992-09-09
ZA921430B (en) 1992-11-25
NO301278B1 (no) 1997-10-06
SA92120446B1 (ar) 2004-05-04
FR2673632A1 (fr) 1992-09-11
ITTO920189A0 (it) 1992-03-06
CZ283633B6 (cs) 1998-05-13
DE122009000034I2 (de) 2011-06-16
CS56892A3 (en) 1992-09-16
DE122009000034I1 (de) 2010-04-08
ITTO920189A1 (it) 1993-09-06
HU215098B (hu) 1998-09-28
FI920992A (fi) 1992-09-09
US5408039A (en) 1995-04-18
CA2062340C (fr) 2000-05-09
HU9200767D0 (en) 1992-05-28
BR9200770A (pt) 1992-11-17
IL101043A (en) 1997-02-18
RU2088590C1 (ru) 1997-08-27
NL300394I1 (nl) 2009-09-01
LT3175B (en) 1995-02-27
DE69227055D1 (de) 1998-10-29
NO920867D0 (no) 1992-03-05
FI920992A0 (fi) 1992-03-06
NZ241701A (en) 1994-10-26
DK0503991T3 (da) 1999-06-14
UA27732C2 (uk) 2000-10-16
JP3435668B2 (ja) 2003-08-11
AU1113192A (en) 1992-09-10
EP0503991B1 (fr) 1998-09-23
FR2673632B1 (pl) 1995-05-05
DE69227055T2 (de) 1999-04-22
LTIP266A (en) 1994-07-15
ES2121830T3 (es) 1998-12-16
AT407115B (de) 2000-12-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL168353B1 (pl) Sposób wytwarzania zatezonego, standaryzowanego ludzkiego c z y n n i k a von Willebranda o wysokiej czystosci PL PL PL PL PL PL PL
US5880265A (en) Method for isolation of highly pure von willebrand factor
US4495175A (en) Preparation of highly purified human antihemophilic factor
EP0144957B1 (en) Process for purifying factor viii:c
CA2024667C (en) Process for preparing a concentrate of blood coagulation factor viii-von willebrand factor complex from total plasma
CA2159702C (en) High molecular and low molecular fractions of von willebrand factor
JP2013047273A (ja) 可溶化血漿フラクションから蛋白質フィブリノーゲン、第xiii因子および生物学的グルーを分離し、そして該蛋白質の凍結乾燥濃縮物を調製するための方法
AU2003244850B2 (en) Processes for the preparation of fibrinogen
TW200918145A (en) Method for purifying factor VIII and von willebrand factor
JP4250771B2 (ja) カチオン交換クロマトグラフィーによる因子VIII/vWF複合体の精製方法
JPH06511018A (ja) 血漿分画精製法
US4774323A (en) Purification of von Willebrand Factor solutions using gel permeation chromatography
AU2005203243A1 (en) Process for the preparation of a Von Willebrad (FvW) factor concentrate by chromatography and a FvW concentrate thus obtainable
US6034222A (en) Method for the separation of recombinant pro-factor IX from recombinant factor IX
JPH06505494A (ja) Ix因子の調製
US4406886A (en) Purification of antihemophilia factor VIII by precipitation with zinc ions
US20020019036A1 (en) Von willebrand factor derivatives and methods of isolating proteins that bind to von willebrand factor
JP2931319B2 (ja) 血液凝固第▲viii▼因子の製造法
JPS59167519A (ja) 不活化トロンビンゲルにより血漿タンパク質混合液からフイブリノ−ゲンを除去する方法
JP2931655B2 (ja) 全血漿から血液疑固▲viii▼因子―フオン・ビルブラント因子複合体濃縮物の製造方法
de Lille Burnouf-Radosevich et a1.
LV10193B (en) Highly clean and therapeutically usable standardized method for producing Willebrand factor concentrate for industrial production