KR20230052104A - 다중 실시간 정량 pcr을 이용한 수인성 사람 노로바이러스 gi 및 gii의 동시진단 - Google Patents
다중 실시간 정량 pcr을 이용한 수인성 사람 노로바이러스 gi 및 gii의 동시진단 Download PDFInfo
- Publication number
- KR20230052104A KR20230052104A KR1020210135264A KR20210135264A KR20230052104A KR 20230052104 A KR20230052104 A KR 20230052104A KR 1020210135264 A KR1020210135264 A KR 1020210135264A KR 20210135264 A KR20210135264 A KR 20210135264A KR 20230052104 A KR20230052104 A KR 20230052104A
- Authority
- KR
- South Korea
- Prior art keywords
- norovirus
- real
- gii
- time pcr
- waterborne
- Prior art date
Links
- 241000532183 Norovirus GI Species 0.000 title claims description 37
- 241000532184 Norovirus GII Species 0.000 title claims description 36
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 title abstract description 15
- 238000011529 RT qPCR Methods 0.000 title description 4
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 claims abstract description 95
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims abstract description 28
- 239000000523 sample Substances 0.000 claims description 68
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 35
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 34
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 32
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 28
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 claims description 18
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 claims description 10
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 8
- 239000011358 absorbing material Substances 0.000 claims description 7
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 claims description 7
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 7
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 7
- 101150024766 VP1 gene Proteins 0.000 claims description 6
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 claims description 6
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 claims description 6
- 108090000565 Capsid Proteins Proteins 0.000 claims description 5
- 102100023321 Ceruloplasmin Human genes 0.000 claims description 5
- 101000833492 Homo sapiens Jouberin Proteins 0.000 claims description 5
- 101000651236 Homo sapiens NCK-interacting protein with SH3 domain Proteins 0.000 claims description 5
- 102100024407 Jouberin Human genes 0.000 claims description 5
- 101710159752 Poly(3-hydroxyalkanoate) polymerase subunit PhaE Proteins 0.000 claims description 5
- 101710130262 Probable Vpr-like protein Proteins 0.000 claims description 5
- 108010014303 DNA-directed DNA polymerase Proteins 0.000 claims description 4
- 102000016928 DNA-directed DNA polymerase Human genes 0.000 claims description 4
- 101150030521 gI gene Proteins 0.000 claims description 4
- 239000011535 reaction buffer Substances 0.000 claims description 3
- 241001263478 Norovirus Species 0.000 abstract description 63
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 abstract description 12
- 208000005577 Gastroenteritis Diseases 0.000 abstract description 5
- 208000012873 acute gastroenteritis Diseases 0.000 abstract description 5
- 238000011002 quantification Methods 0.000 abstract description 4
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 20
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 19
- 150000007523 nucleic acids Chemical group 0.000 description 16
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 14
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 14
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 14
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 12
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 10
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 10
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 10
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 9
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 9
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 9
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 9
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 8
- 239000002299 complementary DNA Substances 0.000 description 6
- 238000003757 reverse transcription PCR Methods 0.000 description 6
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 5
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 5
- 241000894007 species Species 0.000 description 5
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 5
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 4
- 208000019331 Foodborne disease Diseases 0.000 description 4
- 230000008859 change Effects 0.000 description 4
- 238000002405 diagnostic procedure Methods 0.000 description 4
- 239000003673 groundwater Substances 0.000 description 4
- 238000012795 verification Methods 0.000 description 4
- 230000008673 vomiting Effects 0.000 description 4
- ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N Chlorine atom Chemical compound [Cl] ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000991587 Enterovirus C Species 0.000 description 3
- 241000582786 Monoplex Species 0.000 description 3
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 3
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 3
- 244000309743 astrovirus Species 0.000 description 3
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 3
- 239000000460 chlorine Substances 0.000 description 3
- 229910052801 chlorine Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000003795 desorption Methods 0.000 description 3
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 208000004998 Abdominal Pain Diseases 0.000 description 2
- 241000709711 Coxsackievirus B5 Species 0.000 description 2
- 238000009007 Diagnostic Kit Methods 0.000 description 2
- 206010012735 Diarrhoea Diseases 0.000 description 2
- 241000709661 Enterovirus Species 0.000 description 2
- 241001529459 Enterovirus A71 Species 0.000 description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 2
- 241000724675 Hepatitis E virus Species 0.000 description 2
- 241000709721 Hepatovirus A Species 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000702244 Orthoreovirus Species 0.000 description 2
- 241000873939 Parechovirus A Species 0.000 description 2
- 241001137860 Rotavirus A Species 0.000 description 2
- CGNLCCVKSWNSDG-UHFFFAOYSA-N SYBR Green I Chemical compound CN(C)CCCN(CCC)C1=CC(C=C2N(C3=CC=CC=C3S2)C)=C2C=CC=CC2=[N+]1C1=CC=CC=C1 CGNLCCVKSWNSDG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000369757 Sapovirus Species 0.000 description 2
- 206010047700 Vomiting Diseases 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 2
- 230000009977 dual effect Effects 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 210000003608 fece Anatomy 0.000 description 2
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 description 2
- 208000005252 hepatitis A Diseases 0.000 description 2
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 description 2
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 2
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 2
- WGTODYJZXSJIAG-UHFFFAOYSA-N tetramethylrhodamine chloride Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(N(C)C)=CC2=[O+]C2=CC(N(C)C)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O WGTODYJZXSJIAG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000004916 vomit Anatomy 0.000 description 2
- UDGUGZTYGWUUSG-UHFFFAOYSA-N 4-[4-[[2,5-dimethoxy-4-[(4-nitrophenyl)diazenyl]phenyl]diazenyl]-n-methylanilino]butanoic acid Chemical compound COC=1C=C(N=NC=2C=CC(=CC=2)N(C)CCCC(O)=O)C(OC)=CC=1N=NC1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 UDGUGZTYGWUUSG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WCKQPPQRFNHPRJ-UHFFFAOYSA-N 4-[[4-(dimethylamino)phenyl]diazenyl]benzoic acid Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC=C1N=NC1=CC=C(C(O)=O)C=C1 WCKQPPQRFNHPRJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SJQRQOKXQKVJGJ-UHFFFAOYSA-N 5-(2-aminoethylamino)naphthalene-1-sulfonic acid Chemical compound C1=CC=C2C(NCCN)=CC=CC2=C1S(O)(=O)=O SJQRQOKXQKVJGJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101000768957 Acholeplasma phage L2 Uncharacterized 37.2 kDa protein Proteins 0.000 description 1
- 101000823746 Acidianus ambivalens Uncharacterized 17.7 kDa protein in bps2 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000916369 Acidianus ambivalens Uncharacterized protein in sor 5'region Proteins 0.000 description 1
- 101000769342 Acinetobacter guillouiae Uncharacterized protein in rpoN-murA intergenic region Proteins 0.000 description 1
- 101000823696 Actinobacillus pleuropneumoniae Uncharacterized glycosyltransferase in aroQ 3'region Proteins 0.000 description 1
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 description 1
- 101000786513 Agrobacterium tumefaciens (strain 15955) Uncharacterized protein outside the virF region Proteins 0.000 description 1
- 241001036151 Aichi virus 1 Species 0.000 description 1
- 101000618005 Alkalihalobacillus pseudofirmus (strain ATCC BAA-2126 / JCM 17055 / OF4) Uncharacterized protein BpOF4_00885 Proteins 0.000 description 1
- 102100020724 Ankyrin repeat, SAM and basic leucine zipper domain-containing protein 1 Human genes 0.000 description 1
- 101000967489 Azorhizobium caulinodans (strain ATCC 43989 / DSM 5975 / JCM 20966 / LMG 6465 / NBRC 14845 / NCIMB 13405 / ORS 571) Uncharacterized protein AZC_3924 Proteins 0.000 description 1
- 101000823761 Bacillus licheniformis Uncharacterized 9.4 kDa protein in flaL 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000819719 Bacillus methanolicus Uncharacterized N-acetyltransferase in lysA 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000789586 Bacillus subtilis (strain 168) UPF0702 transmembrane protein YkjA Proteins 0.000 description 1
- 101000792624 Bacillus subtilis (strain 168) Uncharacterized protein YbxH Proteins 0.000 description 1
- 101000790792 Bacillus subtilis (strain 168) Uncharacterized protein YckC Proteins 0.000 description 1
- 101000819705 Bacillus subtilis (strain 168) Uncharacterized protein YlxR Proteins 0.000 description 1
- 101000948218 Bacillus subtilis (strain 168) Uncharacterized protein YtxJ Proteins 0.000 description 1
- 101000718627 Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki Putative RNA polymerase sigma-G factor Proteins 0.000 description 1
- 241000237519 Bivalvia Species 0.000 description 1
- 101000641200 Bombyx mori densovirus Putative non-structural protein Proteins 0.000 description 1
- 241000714198 Caliciviridae Species 0.000 description 1
- 101710132601 Capsid protein Proteins 0.000 description 1
- 101710197658 Capsid protein VP1 Proteins 0.000 description 1
- 206010008631 Cholera Diseases 0.000 description 1
- 101000947633 Claviceps purpurea Uncharacterized 13.8 kDa protein Proteins 0.000 description 1
- 241000709687 Coxsackievirus Species 0.000 description 1
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 1
- 230000004544 DNA amplification Effects 0.000 description 1
- 102100031438 E3 ubiquitin-protein ligase RING1 Human genes 0.000 description 1
- 101000948901 Enterobacteria phage T4 Uncharacterized 16.0 kDa protein in segB-ipI intergenic region Proteins 0.000 description 1
- 241000146324 Enterovirus D68 Species 0.000 description 1
- 101000805958 Equine herpesvirus 4 (strain 1942) Virion protein US10 homolog Proteins 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- 101000790442 Escherichia coli Insertion element IS2 uncharacterized 11.1 kDa protein Proteins 0.000 description 1
- 101000788354 Escherichia phage P2 Uncharacterized 8.2 kDa protein in gpA 5'region Proteins 0.000 description 1
- 108060002716 Exonuclease Proteins 0.000 description 1
- 206010016952 Food poisoning Diseases 0.000 description 1
- 101000770304 Frankia alni UPF0460 protein in nifX-nifW intergenic region Proteins 0.000 description 1
- 206010017964 Gastrointestinal infection Diseases 0.000 description 1
- 101000797344 Geobacillus stearothermophilus Putative tRNA (cytidine(34)-2'-O)-methyltransferase Proteins 0.000 description 1
- 101000748410 Geobacillus stearothermophilus Uncharacterized protein in fumA 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000772675 Haemophilus influenzae (strain ATCC 51907 / DSM 11121 / KW20 / Rd) UPF0438 protein HI_0847 Proteins 0.000 description 1
- 101000631019 Haemophilus influenzae (strain ATCC 51907 / DSM 11121 / KW20 / Rd) Uncharacterized protein HI_0350 Proteins 0.000 description 1
- 101000768938 Haemophilus phage HP1 (strain HP1c1) Uncharacterized 8.9 kDa protein in int-C1 intergenic region Proteins 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 101000785414 Homo sapiens Ankyrin repeat, SAM and basic leucine zipper domain-containing protein 1 Proteins 0.000 description 1
- 101000707962 Homo sapiens E3 ubiquitin-protein ligase RING1 Proteins 0.000 description 1
- 102100034343 Integrase Human genes 0.000 description 1
- 206010022678 Intestinal infections Diseases 0.000 description 1
- 101000782488 Junonia coenia densovirus (isolate pBRJ/1990) Putative non-structural protein NS2 Proteins 0.000 description 1
- 101000811523 Klebsiella pneumoniae Uncharacterized 55.8 kDa protein in cps region Proteins 0.000 description 1
- 101000818409 Lactococcus lactis subsp. lactis Uncharacterized HTH-type transcriptional regulator in lacX 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000878851 Leptolyngbya boryana Putative Fe(2+) transport protein A Proteins 0.000 description 1
- 101000758828 Methanosarcina barkeri (strain Fusaro / DSM 804) Uncharacterized protein Mbar_A1602 Proteins 0.000 description 1
- 101001122401 Middle East respiratory syndrome-related coronavirus (isolate United Kingdom/H123990006/2012) Non-structural protein ORF3 Proteins 0.000 description 1
- 101001055788 Mycolicibacterium smegmatis (strain ATCC 700084 / mc(2)155) Pentapeptide repeat protein MfpA Proteins 0.000 description 1
- 101000740670 Orgyia pseudotsugata multicapsid polyhedrosis virus Protein C42 Proteins 0.000 description 1
- 241000237502 Ostreidae Species 0.000 description 1
- 102100039467 P3 protein Human genes 0.000 description 1
- 101710117080 P3 protein Proteins 0.000 description 1
- 206010033971 Paratyphoid fever Diseases 0.000 description 1
- 101000769182 Photorhabdus luminescens Uncharacterized protein in pnp 3'region Proteins 0.000 description 1
- 108010076039 Polyproteins Proteins 0.000 description 1
- 101000961392 Pseudescherichia vulneris Uncharacterized 29.9 kDa protein in crtE 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000731030 Pseudomonas oleovorans Poly(3-hydroxyalkanoate) polymerase 2 Proteins 0.000 description 1
- 101001065485 Pseudomonas putida Probable fatty acid methyltransferase Proteins 0.000 description 1
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 1
- 108010092799 RNA-directed DNA polymerase Proteins 0.000 description 1
- 101710118046 RNA-directed RNA polymerase Proteins 0.000 description 1
- 101000711023 Rhizobium leguminosarum bv. trifolii Uncharacterized protein in tfuA 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000948156 Rhodococcus erythropolis Uncharacterized 47.3 kDa protein in thcA 5'region Proteins 0.000 description 1
- 101000917565 Rhodococcus fascians Uncharacterized 33.6 kDa protein in fasciation locus Proteins 0.000 description 1
- 208000035217 Ring chromosome 1 syndrome Diseases 0.000 description 1
- 241000702670 Rotavirus Species 0.000 description 1
- 101000790284 Saimiriine herpesvirus 2 (strain 488) Uncharacterized 9.5 kDa protein in DHFR 3'region Proteins 0.000 description 1
- 238000012300 Sequence Analysis Methods 0.000 description 1
- 101000936719 Streptococcus gordonii Accessory Sec system protein Asp3 Proteins 0.000 description 1
- 101000788499 Streptomyces coelicolor Uncharacterized oxidoreductase in mprA 5'region Proteins 0.000 description 1
- 101001102841 Streptomyces griseus Purine nucleoside phosphorylase ORF3 Proteins 0.000 description 1
- 101000708557 Streptomyces lincolnensis Uncharacterized 17.2 kDa protein in melC2-rnhH intergenic region Proteins 0.000 description 1
- 108091027544 Subgenomic mRNA Proteins 0.000 description 1
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L Sulfate Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 101000649826 Thermotoga neapolitana Putative anti-sigma factor antagonist TM1081 homolog Proteins 0.000 description 1
- 208000037386 Typhoid Diseases 0.000 description 1
- 101000827562 Vibrio alginolyticus Uncharacterized protein in proC 3'region Proteins 0.000 description 1
- 101000778915 Vibrio parahaemolyticus serotype O3:K6 (strain RIMD 2210633) Uncharacterized membrane protein VP2115 Proteins 0.000 description 1
- 108020000999 Viral RNA Proteins 0.000 description 1
- 101710108545 Viral protein 1 Proteins 0.000 description 1
- 239000002250 absorbent Substances 0.000 description 1
- 230000002745 absorbent Effects 0.000 description 1
- 238000000137 annealing Methods 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 description 1
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 235000020639 clam Nutrition 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 208000019836 digestive system infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 239000012470 diluted sample Substances 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 231100000676 disease causative agent Toxicity 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 208000001848 dysentery Diseases 0.000 description 1
- 238000001493 electron microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 102000013165 exonuclease Human genes 0.000 description 1
- 239000002360 explosive Substances 0.000 description 1
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 230000037406 food intake Effects 0.000 description 1
- 239000001046 green dye Substances 0.000 description 1
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 239000012948 isocyanate Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 238000010309 melting process Methods 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 238000007857 nested PCR Methods 0.000 description 1
- 238000001668 nucleic acid synthesis Methods 0.000 description 1
- 235000020636 oyster Nutrition 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- 238000010791 quenching Methods 0.000 description 1
- 230000000171 quenching effect Effects 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 238000010839 reverse transcription Methods 0.000 description 1
- 235000015170 shellfish Nutrition 0.000 description 1
- AKHNMLFCWUSKQB-UHFFFAOYSA-L sodium thiosulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=S AKHNMLFCWUSKQB-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 235000019345 sodium thiosulphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- -1 tetramethylrhodamine isocyanate Chemical class 0.000 description 1
- MPLHNVLQVRSVEE-UHFFFAOYSA-N texas red Chemical compound [O-]S(=O)(=O)C1=CC(S(Cl)(=O)=O)=CC=C1C(C1=CC=2CCCN3CCCC(C=23)=C1O1)=C2C1=C(CCC1)C3=[N+]1CCCC3=C2 MPLHNVLQVRSVEE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 201000008297 typhoid fever Diseases 0.000 description 1
- 241000701161 unidentified adenovirus Species 0.000 description 1
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 1
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
- C12Q1/701—Specific hybridization probes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2561/00—Nucleic acid detection characterised by assay method
- C12Q2561/113—Real time assay
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2563/00—Nucleic acid detection characterized by the use of physical, structural and functional properties
- C12Q2563/107—Nucleic acid detection characterized by the use of physical, structural and functional properties fluorescence
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Virology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
본 발명은 사람에게 급성위장관염을 일으킬 수 있는 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 동시진단 및 실시간 정량하여 신속하고 높은 검출 민감도로 확인할 수 있는 노로바이러스를 검출하기 위한 real time PCR 반응용 프라이머 세트 및 이의 용도에 관한 것이다.
Description
본 발명은 수인성식품매개질환을 유발하는 수인성 노로바이러스 2종의 동시진단 검사 키트 및 진단 방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 리얼타임 PCR (실시간 중합효소 연쇄반응)을 이용하여 수인성 바이러스 중 노로바이러스 GI 및 GII를 동시에 검사하는 키트 및 진단방법에 관한 것이다.
일반적으로 식중독으로 알려져 있는 수인성식품매개질환은 병원성 미생물, 바이러스, 또는 병원체에 오염된 물, 식품 등을 섭취하여 위장관에서 증식하며 여러 감염 증상(설사, 구토, 발열, 복통 등의 위장관 감염)을 나타내는 감염병으로, 제1군 감염병(콜레라, 장티푸스, 파라티푸스, 세균성이질, 장출혈성대장균감염증 및 A형 간염)과 지정감염병 중 장관감염증 등이 포함되는 전염성 질환 중 하나이다. 이러한 병원성 미생물, 바이러스, 병원체 등은 위장관에서 증식하며, 이후 대소변을 통해 몸밖으로 빠져나가게 되는데, 이 때 빠져나간 오염물질(병원성 미생물, 바이러스, 병원체)들이 또다시 주변의 물을 오염시키면서 다른사람에게 전파되는 '분변-구강' 경로에 의해 전파되는 것이 특징이다. 수인성식품매개질환은 동일한 물을 많은 사람들이 함께 사용할 때 다수의 환자가 발생하며 폭발적으로 유행하는 특징이 있으며, 대표적인 수인성 장바이러스로는 A형 간염, 노로바이러스, 로타바이러스, 아데노바이러스, 아스트로바이러스, 칼리시바이러스, 엔테로바이러스, 콕사키바이러스, 폴리오바이러스 등이 보고되어 있다.
노로바이러스(Norovirus; NoV)는 Caliciviridae과 Norovirus속에 속하는 single-stranded positive-sense RNA로서, 피막이 없으며, 입자의 크기는 약 23-40 nm이다. 바이러스의 RNA는 7.5 kb으로 알려져 있다. 노로바이러스의 유전자는 3개의 ORF로 구성되어 있으며, polyprotein(ORF1; NS1/2, NS3-7), capsid protein(ORF2), subgenomic RNA(ORF3; VP2)로 구성되어 있다. 노로바이러스의 유전자형은 크게 7개의 유전자형으로 구분되며 이중 GI, GII가 사람에게 급성 위장염을 일으키는 것으로 알려져 있으며, 이중 GII.4가 전 세계적으로 가장 많이 확인되는 유전자형으로 알려져 있다.
노로바이러스의 주요 감염경로는 생굴, 조개 같은 연안 양식 어패류의 섭취 또는 접촉, 오염된 식기류의 사용 및 환자의 구토물, 분변, 신체접촉 등에 의해 감염되는 것으로 알려져 있다. 노로바이러스의 임상증상은 구토, 설사, 복통, 오한 발혈 등 다른 급성위장관염 바이러스와 유사한 것으로 알려져 있다. 잠복기는 24-48시간이며, 발생 후 72시간 동안 지속되다가 빠르게 회복되는 것이 특징이다. 노로바이러스의 경우, 나이와 관계없이 소아뿐만 아니라 성인에서도 감염이 가능하며, 전 세계적으로 감염이 발생하고, 비세균성 급성 위장관염의 원인병원체 중 가장 높은 비율을 차지하고 있다. 노로바이러스는 영하 20도에서도 생존이 가능하여 기온이 낮아지는 11월-4월에 빈번하게 보고되고 있으며, 산(pH 2.7, 3시간), 열(60ㅀC, 30분)에 안정적이고, 수돗물의 염소농도에서도 활동력이 있을 정도로 저항성이 강한 것이 특징이다.
노로바이러스는 배양법이 확립되어 있지 않아 현재까지 분자생물학적 검출방법인 Reverse-transcription PCR(RT-PCR), RT-nested PCR, real-time RT-PCR 등을 이용한 진단 방법이 주로 사용되고 있다. 국내 질병관리본부의 감염병 실험진단에 따르면, 환자의 검체(대변, 직장도말물, 구토물)에서 특이유전자인 ORF1와 ORF2를 표적 유전자로 하여 검사를 수행한다. 그러나, 바이러스의 존재가 매우 낮은 물환경 시료에서는 노로바이러스의 검출이 매우 미미하고, 유전자형의 분석이 어렵다는 단점이 있다.
한편, 전자현미경을 이용한 방법의 경우, 바이러스의 존재를 확인할 수 있으나, 형태학적 분석이 어렵다는 단점이 있다. 효소 면역 측정법의 경우, 임상 양상이 서로 비슷한 바이러스의 구분이 가능하다는 장점이 있지만, 바이러스의 증식, 감염성 여부의 평가가 어렵고, 위음성 결과가 보고되어 정확도가 떨어지는 단점이 있다.
Reverse transcription polymerase chain reaction(RT-PCR)의 경우, 전자현미경, 효소 면역 측정법과 달리 염기서열 분석을 통한 유전자형 분석이 가능하고, target 유전자를 특이적으로 증폭 할 수 있다는 장점이 있으나, 정량이 불가능하고, 시간이 오래 걸린다는 단점이 있다.
반면, real time PCR 방법은 형광물질과 상쇄물질을 PCR 기법에 응용한 것으로 반응 검체 내 존재하는 target 유전자의 증폭과 함께 형광물질의 발광(emission) 정도를 실시간으로 검출하고 정량 분석하여 target 유전자의 증폭 유무 및 그 양상을 신속, 정확하게 분석하는 방법이다. real time PCR에서의 정량은 PCR시 매 주기의 진행 상황을 감시하여 지수 증가기(expotential phase) 범위 내에서 실시간으로 증폭산물을 측정하는 방법으로서, 형광세기가 기본값(base line)을 넘어서 감지될 수 있는 Ct (threshold cycle)값을 통해 실시간 정량이 가능하며, 형광세기의 표준 곡선을 얻은 후, target 유전자가 존재하는지 여부와 검체 또는 시료 내에 포함된 바이러스 유전자의 초기 주형량을 정량적으로 분석할 수 있다. 이러한 실시간 정량이 가능하다는 장점이 있다.
따라서, 본 발명자들은 real time PCR 방법을 이용하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 형광물질을 다르게 하여 특이적으로 동시진단이 가능한 기술을 개발하였다.
Yoo et al., (2017). Evaluation of Various Real-Time Reverse Transcription Quantitative PCR Assays for Norovirus Detection. J. Microbiol. Biotechnol. 27(4); 816-824
따라서, 본 발명의 목적은 1개의 튜브에서 1개의 target 유전자만 진단하던 기존의 기술과 달리, 측정파장이 다른 2개의 형광발색 물질을 이용하여 보다 특이적이고, 신속하며 높은 검출민감도를 가지는 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 동시진단하기 위한 것으로, real time PCR을 이용한 노로바이러스 유전자형 GI, GII 감염 진단용 프라이머 세트 및/또는 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 상술된 프라이머 조합을 이용하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 감염여부를 동시 진단할 수 있는 진단키트 및 진단 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 목적들은 이상에서 언급한 목적들로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 목적들은 아래의 기재로부터 당업자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
상술된 본 발명의 목적을 달성하기 위해, 본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 제1프라이머쌍 ; 및 서열번호 4 내지 6으로 표시되는 제2프라이머쌍;을 포함하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임(real-time) PCR 프라이머 세트를 제공한다.
바람직한 실시예에 있어서, 상기 제1프라이머쌍에 포함된 서열번호 1 및 2의 염기서열은 상기 노로바이러스 GI의 ORF1 및 ORF2 부위의 염기서열(5,283-5,673; NS7-VP1 유전자)를 주형으로 설계 및 제작되고, 상기 제2프라이머쌍에 포함된 서열번호 4 내지 6은 상기 노로바이러스 GII의 Capsid protein 부위의 염기서열(5,011-5,403; VP1 유전자)을 주형으로 설계 및 제작된 것이다.
바람직한 실시예에 있어서, 상기 수인성 노로바이러스 GI 유전자에 특이적인 프로브로서 서열번호 3의 올리고뉴클레오티드와 이러한 올리고뉴클 레오티드에 상보적인 올리고뉴클레오티드로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 제1프로브 및 상기 수인성 노로바이러스 GII 유전자에 특이적인 프로브로서 서열번호 7의 올리고뉴클레오티드와 이러한 올리고뉴클 레오티드에 상보적인 올리고뉴클레오티드로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 제2프로브;를 더 포함한다.
또한 본 발명은 상술된 어느 하나의 프라이머 세트를 포함하는 수인성 노로바이러스(Norovirus)의 유전형 GI, GII를 동시진단하기 위한 real time PCR 반응용 프라이머 조성물을 제공한다.
바람직한 실시예에 있어서, 상기 리얼타임 PCR용 프라이머 세트에 포함된 제1프로브 및 제2프로브는 각각 염기서열의 5′말단에 부착되는 형광물질과 염기서열의 3′말단에 부착되는 형광흡수물질로 구성되는데, 상기 제1프로브의 형광물질과 제2프로브의 형광물질은 서로 상이한 흡수 및 방출 파장을 갖는다.
바람직한 실시예에 있어서, DNA 중합효소, dNTPs 및 반응버퍼를 더 포함한다.
또한, 본 발명은 상술된 어느 하나의 조성물을 포함하는, 수인성 노로바이러스(Norovirus) GI, GII를 동시진단하기 위한 검출키트를 제공한다.
바람직한 실시예에 있어서, 상기 수인성 노로바이러스 GI는 Genebank accession number JQ388274.1 이고, 상기 수인성 노로바이러스 GII는 Genebank accession number KX356908.1 이다.
또한 본 발명은 검체로부터 유전자 샘플을 준비하는 단계; 상술된 어느 하나의 리얼타임 PCR 조성물을 이용하여 상기 유전자 샘플을 리얼타임 PCR로 증폭시키는 단계; 및 상기 리얼타임 PCR 조성물에 포함된 제1 및 제2 프로브에 부착된 형광물질의 발광(emission)정도를 실시간으로 검출하고 분석하는 단계;를 포함하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII 진단방법을 제공한다.
바람직한 실시예에 있어서, 상기 수인성 노로바이러스 GI 및 GII에 특이적인 유전자의 카피수를 알고 있는 양성 표준자를 상술된 어느 하나의 리얼타임 PCR 조성물을 이용하여 증폭하는 단계;를 더 포함한다.
먼저, 본 발명의 real time PCR 프라이머 세트는 노로바이러스 외에 다른 종의 바이러스와는 반응하지 않는 종 특이성이 높고 단일 온도에서 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 동시진단 및 정량이 가능하므로 신속하면서도 높은 특이성 및 높은 검출감도로 노로바이러스를 검출할 수 있다.
또한, 본 발명의 노로바이러스의 유전자형 GI, GII를 동시진단 및 정량 할 수 있는 리얼타임 PCR 프라이머 세트를 포함하는 진단용 키트 및 진단 방법에 의하면, 1개의 tube에서 FAM, HEX 두가지의 형광물질을 포함하고 있는 프로브의 형광발색을 분석하여 노로바이러스 GI, GII의 감염 여부를 동시 진단할 수 있어, 노로바이러스 의심 환자를 진단 및 치료를 신속하게 진행할 수 있다.
본 발명의 이러한 기술적 효과는 이상에서 언급한 범위만으로 제한되지 않으며, 명시적으로 언급되지 않았더라도 후술되는 발명의 실시를 위한 구체적 내용의 기재로부터 통상의 지식을 가진 자가 인식할 수 있는 발명의 효과 역시 당연히 포함된다.
도 1a 및 도 1b는 본 발명의 실시예에서 합성된 Genebank accession number JQ388274.1 plasmid를 연속으로 희석한 시료 (10-3, 10-4, 10-5, 10-6, 10-7, 10-8)를 첨가하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 real time PCR 프라이머 세트를 이용한 monoplex real time PCR 결과 그래프이다.
도 2a, 2b 및 도 2c는 본 발명의 실시예에서 합성된 Genebank accession number JQ388274.1 plasmid를 연속으로 희석한 시료 (10-3, 10-4, 10-5, 10-6, 10-7, 10-8)를 첨가하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 real time PCR 프라이머 세트를 이용한 duplex real time PCR 결과이다.
도 3a, 3b 및 3c는 본 발명의 실시예에 따른 환경시료를 통한 실증실험 결과이다.
도 4a, 4b 및 4c는 본 발명의 실시예에 따른 환경시료 실증시험 결과 음성으로 나타난 환경시료의 cDNA에 plasmid를 인위감염 후 연속으로 희석(10-1, 10-2, 10-3, 10-4, 10-5)후 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 duplex real time PCR 인위감염 검출 민감도 결과이다.
도 5a, 5b 및 5c는 본 발명의 실시예에 따른 양성대조구의 최적 칵테일을 구현을 위하여 본 발명의 프라이머조성물 및 plasmid의 농도조절 통한 duplex real time PCR 결과이다.
도 2a, 2b 및 도 2c는 본 발명의 실시예에서 합성된 Genebank accession number JQ388274.1 plasmid를 연속으로 희석한 시료 (10-3, 10-4, 10-5, 10-6, 10-7, 10-8)를 첨가하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 real time PCR 프라이머 세트를 이용한 duplex real time PCR 결과이다.
도 3a, 3b 및 3c는 본 발명의 실시예에 따른 환경시료를 통한 실증실험 결과이다.
도 4a, 4b 및 4c는 본 발명의 실시예에 따른 환경시료 실증시험 결과 음성으로 나타난 환경시료의 cDNA에 plasmid를 인위감염 후 연속으로 희석(10-1, 10-2, 10-3, 10-4, 10-5)후 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 duplex real time PCR 인위감염 검출 민감도 결과이다.
도 5a, 5b 및 5c는 본 발명의 실시예에 따른 양성대조구의 최적 칵테일을 구현을 위하여 본 발명의 프라이머조성물 및 plasmid의 농도조절 통한 duplex real time PCR 결과이다.
본 발명에서 사용되는 용어는 본 발명에서의 기능을 고려하면서 가능한 현재 널리 사용되는 일반적인 용어들을 선택하였으나, 이는 당 분야에 종사하는 기술자의 의도 또는 판례, 새로운 기술의 출현 등에 따라 달라질 수 있다. 또한, 특정한 경우는 출원인이 임의로 선정한 용어도 있으며, 이 경우 해당되는 발명의 설명 부분에서 상세히 그 의미를 기재할 것이다.
본 발명에서 언급한 '포함한다', '갖는다', '이루어진다' 등이 사용되는 경우 '~만'이 사용되지 않는 이상 다른 부분이 추가될 수 있다. 구성 요소를 단수로 표현한 경우에 특별히 명시적인 기재 사항이 없는 한 복수를 포함하는 경우를 포함한다.
구성 요소를 해석함에 있어서, 별도의 명시적 기재가 없더라도 오차 범위를 포함하는 것으로 해석한다.
본 발명의 여러 구현예들 각각의 특징적인 부분들은 부분적으로 또는 전체적으로 서로 결합 또는 조합가능하고, 기술적으로 다양한 연동 및 구동이 가능하며, 각 구현예들은 서로에 대하여 독립적으로 실시 가능할 수도 있고 연관 관계로 함께 실시할 수도 있다.
본 발명에서 사용되는 용어인 '프라이머'는 짧은 자유 3 말단 수산화기(free 3' hydroxyl group)를 가지는 핵산 서열로 상보적인 핵산의 주형 (template)과 염기쌍(base pair)을 형성할 수 있고 핵산 주형의 가닥 복사를 위한 시작 지점으로 기능 하는 짧은 핵산 서열을 의미한다.
본 발명에서 사용되는 용어인 '유전자 샘플'이란 RNA, DNA, 역전사 효소에 의해 RNA로부터 생성된 cDNA, prePCR (예비 PCR)을 통해 증폭된 DNA 또는 cDNA 등을 포함하는 광의의 개념으로 사용된다. 또한, 본 명세서에서 사용되는 '합성된 노로바이러스'는 RNA 서열 뿐만 아니라 RNA로부터 생성된 cDNA 서열로 구성될 수 있다.
본 발명에서 사용되는 용어인'리얼타임(real-time) PCR'이란 형광물질(fluorescent material)을 PCR 기법에 응용한 것으로 반응 중 검체 내에 존재하는 표적 유전자의 증폭과 함께 형광물질의 발광(emission) 정도를 실시간으로 검출하고 정량 분석하여 표적 유전자의 증폭 유무 및 그 양상을 신속하고 정확하게 분석할 수 있는 방법이다. 이러한 리얼타임 PCR은 SYBR 그린(SYBR Green)을 사용하는 방법과 이중 표지된 프로브를 이용하는 방법 등으로 나누어질 수 있다. SYBR 그린(SYBR green) 기법은 리얼타임 PCR 증폭 과정에서 증폭된 DNA에 SYBR 그린 염색약이 끼어들어가 PCR 반응으로 합성된 이중가닥 DNA에 결합하여 형광신호를 발생하게 되고 이러한 형광신호를 검출하여 표적 유전자의 존재 여부와 이로부터의 증폭산물의 생성량을 측정할 수 있는 방법이다. 또한, 이중 표지된 프로브(dual labeled probe)를 이용한 리얼타임 PCR 기법은 5'말단에 형광물질이 표지되어 있고 3'말단에 소광물질(Quencher)이 표지된 이중 표지된 프로브를 이용하는 방법으로서, 이중 표지된 프로브에 의한 형광신호를 통해 이중 표지된 프로브가 표적 유전자의 PCR 증폭 산물과 어닐링되었는지 여부를 확인할 수 있고, 표적 유전자의 존재 여부와 이로부터의 증폭산물의 생성량을 측정할 수 있는 방법이다. 본 발명에서는 상기 방법 이외에 TaqMan 프로브법 등 당업계에 알려진 리얼타임 PCR이 적용가능함은 물론이다. TaqMan probe는 이중 표지된 프로브의 일종으로 PCR 과정 중, Annealing 단계에서 target DNA에 특이적으로 결합하지만, 상쇄물질인 quancher로 인해 reporter dye가 형광을 발하지 못하다가 extension 단계에서 DNA polymerase의 exonuclease 기능으로 인해 가수분해 되고, 이로 인해 quancher와 reporter dye가 분리되면서 형광이 나타나는 원리이다.
이하, 첨부한 도면 및 바람직한 실시예들을 참조하여 본 발명의 기술적 구성을 상세하게 설명한다.
그러나, 본 발명은 여기서 설명되는 실시예에 한정되지 않고 다른 형태로 구체화 될 수도 있다. 명세서 전체에 걸쳐 본 발명을 설명하기 위해 사용되는 동일한 참조번호는 동일한 구성요소를 나타낸다.
본 발명의 기술적 특징은 노로바이러스 유전자형 GI, GII 외에 다른 종의 바이러스와는 반응하지 않는 종 특이성이 높고 형광발색의 차이로 유전자형 GI, GII의 동시진단이 가능하므로, 신속하면서도 높은 특이성 및 높은 검출감도로 급성 위장관염을 일으킬 수 있는 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 신속하고 높은 검출감도로 동시진단 할 수 있는 real time PCR 반응용 프라이머 세트 및 이의 용도를 제공하는 것에 있다.
즉, 본 발명자들은 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 동시진단하기 위해 real time PCR 방법을 이용하였는데, real time PCR 방법은 기존의 RT-PCR (reverse transcription PCR)과 달리 실시간으로 정량 분석이 가능하고, 단시간 내에 고농도 의 유전자 증폭이 가능하기 때문이다.
따라서, 본 발명의 real time PCR 프라이머 세트는 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 동시진단 하기 위한 것으로서, 서열번호 1 및 2로 표시되는 제1프라이머쌍 ; 및 서열번호 4 내지 6으로 표시되는 제2프라이머쌍;을 포함한다.
여기서, 제1프라이머쌍에 포함된 서열번호 1 및 2의 염기서열은 노로바이러스 GI(Genebank accession number JQ388274.1)의 ORF1 및 ORF2 부위의 염기서열(5,283-5,673; NS7-VP1 유전자)을 주형으로 설계 및 제작되고, 제2프라이머쌍에 포함된 서열번호 4 내지 6은 노로바이러스 GII(Genebank accession number KX356908.1)의 Capsid protein 부위의 염기서열(5,011-5,403; VP1 유전자)을 주형으로 설계 및 제작되었다.
즉, 노로바이러스의 VP1 유전자는 노로바이러스의 항원성 및 다양성과 관련 있으며, VP1 염기서열의 차이에 따라 7개의 유전자형으로 나뉘어져 있다. 이 중 GI, GII 및 GIV가 인체 감염을 일으키는 것으로 보고되어 있으며, 총 유전자형은 33개로 보고되어 있고, capsid protein은 크게 S, P1, P2 및 P3의 단백질 domain 으로 구성되어 있으며, S domain의 경우 conserved region이고, P1과 P2 단백질 서열의 변화에 따라 항원다양성(antigenic diversity)가 발생하는 것으로 보고되어 있기 때문이다.
따라서, 본 발명에서는 노로바이러스 GI의 NS7-VP1 및 GII의 VP1 유전자를 주형으로 프라이머를 설계 및 제작한 것이 특징이다.
한편, 상술된 바와 같이 real time PCR 은 형광물질(fluorescent material)을 PCR 기법에 응용한 것이므로, 형광물질의 발광(emission) 정도를 실시간으로 검출하고 정량 분석하기 위해 다양한 방법이 사용될 수 있는데, 일 구현예로서 본 발명에서는 이중 표지된 프로브를 이용한 리얼타임 PCR기법을 사용할 수 있다. 이 경우 본 발명의 real time PCR 프라이머 세트는 수인성 노로바이러스 GI 유전자에 특이적인 프로브로서 서열번호 3의 올리고뉴클레오티드와 이러한 올리고뉴클 레오티드에 상보적인 올리고뉴클레오티드로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 제1프로브 및 상기 수인성 노로바이러스 GII 유전자에 특이적인 프로브로서 서열번호 7의 올리고뉴클레오티드와 이러한 올리고뉴클 레오티드에 상보적인 올리고뉴클레오티드로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 제2프로브;를 더 포함할 수 있다.
여기서, 제1프로브 및 제2프로브는 각각 염기서열의 5′말단에 부착되는 형광물질과 염기서열의 3′말단에 부착되는 형광흡수물질로 구성되는데, 제1프로브의 형광물질과 제2프로브의 형광물질은 서로 상이한 흡수 및 방출 파장을 갖는다.
제1 및 제2 프로브에 부착되는 형광물질은 서로 발광 및 흡수파장이 다르기만 하면 당업계에 공지된 모든 형광물질을 사용할 수 있는데, 일 구현예로서 프로브의 5'말단은 Cy5, Cy3, 비오틴-결합물질, EDANS(5-(2'-아미노에틸)아미노-1-나프탈렌황산), 테트라메틸로다민(TMR), 테트라메틸로다민 이소시아네이트(TMRITC), x-로다민, 텍사스 레드, SYBR 그린 I(SYBR green I), VIC, FAM(fluorescein), TAMRA(carboxytetramethylrhodamine), HEX(carboxy-2',4,4',5',7,7'- hexachloro flurescein), JOE, NED, TET 등으로 구성된 그룹에서 선택되는 어느 하나의 형광물질로 표지될 수 있고, 프로브의 다른쪽 말단, 3'말단은 IABkFQ, DABCYL, BHQ (BHQ-1, BHQ-2 등), EBQ, ZEN-IBFQ 등으로 구성된 그룹에서 선택되는 어느 하나의 소광물질 즉 형광흡수물질로 표지될 수 있다. 형광흡수물질 또한 전술한 예시에 한정되는 것이 아니고, 당업계에 알려진 다양한 형광흡수물질이 사용될 수 있음은 물론이다.
이와 같이 본 발명은 형광물질을 2개를 사용한 2 채널 방식의 프로브를 사용한 것이 특징인데, 일 구현예로서 후술하는 바와 같이 실시예에서 제1프로브 및 제2프로브에 사용된 형광물질은 각각 FAM (흡수파장 450-490 nm, 방출 파장 515-530 nm) 및 HEX (흡수파장 515-535 nm, 방출 파장 560-580 nm)이고, 형광흡수물질인 quencher는 BHQ™-1로 를 표지하였다. 특히 형광흡수물질은 형광물질의 빛을 흡수하는 역할이므로, 2개 프로브에 동일한 물질을 동시에 사용해도 파장에 직접적인 영향을 받지 않는다는 특징이 있다.
다음으로, 본 발명의 수인성 노로바이러스 GI, GII 동시 검출용 real time PCR 조성물은 상술된 프라이머 세트를 포함하는데, 필요한 경우 real time PCR 반응용 DNA 중합효소, dNTPs 및 반응버퍼를 더 포함할 수 있다.
또한, 본 발명의 수인성 노로바이러스 GI 및 GII검출키트는 real time PCR 조성물을 포함하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 동시진단 할 수 있는데, 수인성 노로바이러스 GI는 Genebank accession number JQ388274.1 이고, 수인성 노로바이러스 GII는 Genebank accession number KX356908.1일 수 있다.
또한, 본 발명의 인성 노로바이러스 GI 및 GII 진단방법은 검체로부터 유전자 샘플을 준비하는 단계; 제 4 항 내지 제 6 항 중 어느 하나의 리얼타임 PCR 조성물을 이용하여 상기 유전자 샘플을 리얼타임 PCR로 증폭시키는 단계; 및 상기 리얼타임 PCR 조성물에 포함된 제1 및 제2 프로브에 부착된 형광물질의 발광(emission)정도를 실시간으로 검출하고 분석하는 단계;를 포함할 수 있다.
필요한 경우, 증폭시키는 단계를 수행하기 전에 수인성 노로바이러스 GI 및 GII에 특이적인 유전자의 카피수를 알고 있는 양성 표준자를 상술된 리얼타임 PCR 조성물을 이용하여 증폭하는 단계를 더 수행할 수 있다. 여기서, 양성 표준자는 서열번호 8로 표시되는 수인성 노로바이러스 GI에 특이적인 양성대조구 유전자와 서열번호 9로 표시되는 수인성 노로바이러스 GII에 특이적인 양성대조구 유전자일 수 있다.
형광물질의 발광(emission)정도를 실시간으로 검출하는 단계는, 상기 양성 표준자의 전체 PCR 증폭 기간에 대한 상기 형광물질의 형광세기의 변화를 측정하고, 일정한 형광세기에 도달하는 PCR 반응회수(Cp 값 또는 Ct 값)를 분석하는 단계; 상기 형광 물질의 형광세기의 변화를 측정하여 얻어진 표준곡선으로부터 상기 유전자 서열의 카피수와, Cp 값 또는 Ct값을 대응시키는 단계; 상기 유전자샘플에 존재하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII에 특이적인 유전자 서열의 전체 PCR 증폭기간에 대한 상기 형광 물질의 형광세기의 변화를 측정하고, 일정한 형광세기에 도달하는 PCR 반응회수(Cp 값 또는 Ct 값)를 분석하는 단계; 및 상기 유전자 샘플에 존재하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII에 특이적인 유전자를 PCR 증폭하여 얻은 Cp 값 또는 Ct 값을 상기 양성 표준자의 카피수에 대응시켜, 상기 검체 내에 존재하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 감염 정도를 정량적으로 측정하는 단계를 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않을 수 있다.
본 발명의 real time PCR 프라이머 세트는 종 특이적 염기서열로부터 디자인된 프라이머로서, 실제 노로바이러스에 감염 되었는지 여부를 진단할 수 있을 뿐만 아니라, 이론적으로 합성된 노로바이러스 유전자도 검출 가능하며, 대상 바이러스 이외의 핵산과는 비 특이적 반응이 없고, 대상 바이러스에 대해서는 검출력이 우수하다. 또한, 본 발명의 real time PCR 프라이머를 이용한 반응은, 반응의 조건을 모든 바이러스 및 프라이머 조합에서 동일하게 하여 검출의 효율을 높일 수 있도록 설계되었다.
실시예
1. 바이러스 핵산 합성 및 염기서열 수집
노로바이러스의 동시진단 및 특이성을 확인하기 위하여, 대상바이러스인 노로바이러스 유전자형 GI의 NS7-VP1 유전자(JQ388274.1, 5,283-5,673) 및 노로바이러스 유전자형 GII의 VP1유전자(KX356908.1, 5,011-5,403)의 염기서열을 ㈜마크로젠에 의뢰하여 유전자 합성을 진행하였다. 또한, 특이적 프라이머 설계를 위하여, 참고 수인성 바이러스 12종 [Hepatitis A virus (HAV), Rotavirus-A (RV-A), Astrovirus (AstV), Sapovirus (SV), Hepatitis E virus (HEV), Aichivirus-A (AiV-A), Coxsackievirus-B5 (CoxV-B5), Parechovirus-A (PeV-A), Orthoreovirus (OrV), Poliovirus (PV), Enterovirus-71 (EV-71) 및 Enterovirus-68 (EV-68)]의 염기서열을 수집하였다.
2. 노로바이러스 유전자형 GI, GII 동시진단용 real time PCR 프라이머 제작
노로바이러스 유전자형 GI, GII를 동시진단하기 위해, 프라이머 설계는 Primer 3 및 Oligo calc 프로그램을 이용하여 설계하였다. real time PCR을 수행하기 위해서는 3종류의 프라이머(Forward, Reverse 및 probe)가 하나의 세트로 작용하여야 하며, 위와 같이 수집된 대상 바이러스 및 참고 수인성 바이러스 유전자의 염기서열을 비교하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII에 특이적인 프라이머를 제작하였다.
하기 표 1은 본 발명의 실시예에 따라 설계 제작된 동시진단 real time PCR용 프라이머 세트의 염기서열을 나타낸 것이다.
실험예 1
노로바이러스 유전자형 GI, GII이 각 프라이머 조합에 반응하는지 확인하기 위해, monoplex real time PCR을 수행하였다. 노로바이러스 유전자형 GI의 real time PCR 조성물은 AccuPower® Plus DualStar™ qPCR PreMix (2X) 12.5 uL, ROX dye (50X) 0.5 uL, forward primer (25 pmol) 1 uL, reverse primer (25 pmol) 1 uL, probe (25 pmol), 1 uL, 주형 핵산 1 uL 및 멸균증류수 8 uL를 1개 튜브에 넣고, 주형 핵산으로 합성된 plasmid를 단계희석법으로 희석 후 리얼타임 PCR 반응을 수행하였다. PCR 반응은 95℃에서 10분 변성 후, 95℃에서 5초, 55℃에서 5초 과정을 50회 반복하고, 95℃에서 10초, 50℃에서 95℃까지 5초당 1℃씩 증가하는 멜팅 과정을 실시하였다.
노로바이러스 GII의 real time PCR 조성물은 AccuPower® Plus DualStar™ qPCR PreMix (2X) 12.5 uL, ROX dye (50X) 0.5 uL, forward primer-1 (25 pmol) 1 uL, forward primer-2 (25 pmol) 1 uL, reverse primer (25 pmol) 1uL, probe (25 pmol), 1 uL, 주형 핵산 1 uL 및 멸균증류수 7 uL를 1개 튜브에 넣고, 주형 핵산은 합성된 plasmid를 단계희석법으로 희석 후 리얼타임 PCR 반응을 수행하였다. PCR 반응은 노로바이러스 유전자형 GI의 monoplex 반응과 동일하게 실시하였다. real time PCR의 반응을 실시간으로 확인한 결과를 도 1에 나타내었다.
도 1은 본 발명의 리얼타임 PCR 반응용 프라이머 조성물이 노로바이러스 유전자형 GI(도 1a), GII(도 1b)를 각각의 튜브에서의 단일 증폭 되었는지를 검출 민감도로 확인한 결과이다. 10-3부터 10-8은 주형 핵산의 희석 배율을 나타낸 것이며, N은 negative control로 주형 핵산을 포함하지 않은 튜브이다. 제작된 노로바이러스 유전자형 GI, GII는 각각의 단일 프라이머 조성물로 10-5의 희석 배율까지 진단 할 수 있는 것을 확인하였다.
실험예 2
실험예 1에서 반응한 리얼타임 PCR용 프라이머 조성물을 이용하여 노로바이러스 유전자형 GI, GII를 1개의 튜브에서의 동시진단을 통한 검출 민감도를 확인하기 위해, PCR 조성물은 AccuPower® Plus DualStar™ qPCR PreMix (2X) 12.5 uL, ROX dye (50X) 0.5 uL, GI 특이적 forward primer (25 pmol) 1 uL, GI 특이적 reverse primer (25 pmol) 1 uL, GI 특이적 probe (25 pmol), 1 uL, GII 특이적 forward primer-1 (10 pmol) 1 uL, GII 특이적 forward primer-2 (10 pmol) 1 uL, GII 특이적 reverse primer (10 pmol) 1uL, GII 특이적 probe (10 pmol), 1 uL, 주형 핵산 2 uL 및 멸균증류수 3 uL를 1개 튜브에 넣고, 실험예1과 동일한 PCR 반응 조건으로 real time PCR을 실시하였다. 반응 결과는 실시간으로 확인하고, 그 결과를 도 2에 나타내었다.
도 2는 실험예2 에서 제조된 프라이머 조성물의 Duplex real-time PCR의 검출 민감도를 확인한 결과이다. 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 특이적 프라이머 조성물을 이용하여 하나의 튜브에서 동시진단을 실시한 결과, 노로바이러스 유전형 GI은 10-5(10 fg/uL), GII는 10-5(10 fg/uL)의 희석 배율까지 진단 할 수 있는 것을 확인하였다.
실험예 3
바이러스가 미량 또는 극미량 오염으로 예상되는 지하수 시료를 이용하여 실증실험을 진행하였다. 지하수 시료의 채취, 탈리 및 농축에 필요한 실험 재료 및 방법은 「지하수 중 노로바이러스 관리매뉴얼(환경부, 2014)」 및 US-EPA (814-B-95-002; Virus Monitoring Protocol for the Information Collection Requirements Rule)와 동일하게 수행하였다. 수도꼭지 주변 소독 및 물을 10 L 정도 흘린 후, pH, 온도, 탁도, 잔류염소 등을 측정 및 부가장치 연결 및 시약 처리를 수행하였다. pH 8.0 이상인 경우 모듈에 0.1 M 염산 실린더를 연결하고, 잔류염소 측정이 될 경우 물 1 gal (약 3.8 L) 당 2% 티오황산나트륨 10 mL 주입하였으며, 탁도가 75 NTU 이상인 경우 하우징 앞쪽에 전처리 필터를 연결하여 시료 채취를 진행하였다. 압력계를 달아 수압 30 psi로 조절하여 지하수 시료 채취 500 L 이상을 흘려준 후 아이스박스에 담아 실험실로 이동하였다. 탈리 및 농축과정은 1.5% 소고기 추출물(beef extract) 용액을 이용하여 탈리 및 원심분리 방식으로 시료 별 농축액 20 mL을 제조 후 초저온 냉동고에서 보관하였다. 이 후 QIAamp Viral RNA Mini Kit (Qiagen)를 사용하여 RNA 핵산을 추출하였다. 추출한 RNA를 이용하여 cDNA를 합성하고, 노로바이러스 유전자형 GI, GII 특이적 프라이머 조성물을 이용하여 real time PCR을 진행하였다. duplex real time PCR 조성물 및 반응 조건은 실험예 2와 동일하게 실시하였고, 그 결과를 도 3에 나타내었다.
도 3은 실험예3 에서 제조된 프라이머 조성물을 이용한 Duplex real-time PCR의 환경시료 실증시험 결과이다. 환경시료 실증시험 결과 5개의 수계환경 시료 중, 2개의 환경시료에서 노로바이러스 유전자형 GI의 양성반응이 확인되었으며, 노로바이러스 유전자형 GII의 경우, 모두 음성으로 확인되었다.
실험예 4.
실험예3에서 실증실험 결과 음성으로 확인된 환경시료를 이용하여 인위감염 실험을 진행하였다. 환경시료 cDNA에 실시예 1에서 합성한 노로바이러스 GI, GII plasmid를 10배 단계희석 하여 인위감염 후, 주형핵산으로 사용하여 real time PCR을 진행하였다. duplex real time PCR 조성물 및 반응 조건은 실험예 2와 동일하게 실시하였고, 그 결과를 도 4에 나타내었다.
도 4는 환경시료에 plasmid를 주형핵산으로 인위감염 후 검출 민감도를 확인한 결과이다. 인위감염 실험 결과 노로바이러스 유전형 GI은 10-4(100 fg/uL), GII는 10-5(10 fg/uL)의 희석 배율까지 진단 할 수 있는 것을 확인하였다. Plasmid 검출민감도 실험결과와 비교했을 때, 노로바이러스 유전자형 GI에서 검출민감도의 10배 감소, GII는 검출민감도의 변화가 확인되지 않았다.
실험예 5.
본 발명에서 개발한 노로바이러스 GI, GII의 동시진단용 양성대조구 최적 칵테일을 구현을 위하여, 본 발명의 프라이머 조성물에 대한 농도조절을 통한 duplex real time PCR 반응을 진행 하였다. 최적 칵테일의 구현을 위하여 노로바이러스 유전자형 GI의 프라이머 농도는 25 pmol로 고정하였으며, 노로바이러스 유전자형 GII의 프라이머 농도는 25, 20, 15 및 10 pmol로 조절하여 duplex real time PCR 반응을 진행하였다. 또한 양성대조구로 이용될 plasmid 핵산의 최적 증폭 칵테일을 찾기 위하여, plasmid 희석배율을 조절하여 duplex real time PCR 반응을 진행 하였다. PCR 조건은 실험예 2에서 실시한 조건과 동일하게 수행하였고, 그 결과를 도 5에 나타내었다.
도 5는 실험예 5에서 실시한 노로바이러스 유전자형 GI, GII의 양성대조구 최적 칵테일 구현을 위한 duplex real-time PCR의 결과이다. 양성대조구 최적 칵테일 조건은 GI 특이적 프라이머의 경우, 서열번호 8로 표시되는 양성대조구 핵산은 10-3(1 pg/uL)의 희석 배율, 프라이머 농도는 25 pmol에서 가장 최적의 반응이 확인되었고, GII 특이적 프라이머의 경우, 서열번호 9로 표시되는 양성대조구 핵산은 10-4(100 fg/uL)의 희석 배율, 프라이머 농도는 10 pmol에서 가장 최적의 반응이 확인되었다.
본 발명은 이상에서 살펴본 바와 같이 바람직한 실시 예를 들어 도시하고 설명하였으나, 상기한 실시 예에 한정되지 아니하며 본 발명의 정신을 벗어나지 않는 범위 내에서 당해 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자에 의해 다양한 변경과 수정이 가능할 것이다. 예를 들어, 설명된 기술들이 설명된 방법과 다른 순서로 수행되거나, 및/또는 설명된 구성요소들이 설명된 방법과 다른 형태로 결합 또는 조합되거나, 다른 구성요소 또는 균등물에 의하여 대치되거나 치환되더라도 적절한 결과가 달성될 수 있다.
<110> CHO, Woo ri
<120> Real-time primer set for simultaneous diagnosis of water-borne
Norovirus GI and GII, and use thereof
<130> DPP-2021-0061-KR
<160> 9
<170> KoPatentIn 3.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> COG1F
<400> 1
cgytggatgc gnttycatga 20
<210> 2
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> COG1R
<400> 2
cttagacgcc atcatcatty ac 22
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> RING1(a)-TP
<400> 3
agatygcgat cycctgtcca 20
<210> 4
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> BPO-13
<400> 4
anccnatgtt yagntggatg ag 22
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> BOP-13N
<400> 5
agtcaatgtt taggtggatg ag 22
<210> 6
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> BPO-14
<400> 6
tcgacgccat cttcattcac a 21
<210> 7
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> BPO-18
<400> 7
cacrtgggag ggcgatcgca atc 23
<210> 8
<211> 391
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Positive control sequence for Norovirus GI
<400> 8
tgttccgctg gatgcggttc catgatcttg gcttgtggac aggagatcgc aatctcctgc 60
ccgaattcgt aaatgatgat ggcgtctaag gacgccccaa catcccctga tggcgccagt 120
ggcgccggcc agctggtacc ggaggctaat acagctgagc aaatttcaat ggaccctgtt 180
gcgggtgctt caacagcagt cgcgacggct ggacaagtaa atatgattga cccttggatt 240
tttaataatt ttgtccaggc acctcaagga gaattcacta tttcccctaa taataccccc 300
ggtgatattt tgtttgattt acaattggga ccccacctta acccatttct agcccatctc 360
tcacagatgt ataatggttg ggtcggcaat a 391
<210> 9
<211> 393
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Positive control sequence for Norovirus GII
<400> 9
acaagagtca atgttcagat ggatgaggtt ctcagatcta agcacatggg agggcgatcg 60
caatctggct cccagttttg tgaatgaaga tggcgtcgaa tgacgccgct ccatctaatg 120
atggtgctgc tggtctcgta ccagagggca acaacgagac ccttccccta gaaccagttg 180
cgggcgcagc tatagccgca cccgtcactg gccaaaataa cataattgac ccctggatta 240
gaacaaattt tgtgcaagca ccaaatggag agttcacagt gtcacccaga aactctcctg 300
gagaaatttt attaaactta gagttgggcc ctgacttgaa cccttatttg gctcatttgt 360
caaggatgta caatgggtat gctggtggag tgg 393
Claims (10)
- 서열번호 1 및 2로 표시되는 제1프라이머쌍 ; 및 서열번호 4 내지 6으로 표시되는 제2프라이머쌍;을 포함하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임 PCR 프라이머 세트.
- 제 1 항에 있어서,
상기 제1프라이머쌍에 포함된 서열번호 1 및 2의 염기서열은 상기 노로바이러스 GI의 ORF1 및 ORF2 부위의 염기서열(5,283-5,673; NS7-VP1 유전자)를 주형으로 설계 및 제작되고, 상기 제2프라이머쌍에 포함된 서열번호 4 내지 6은 상기 노로바이러스 GII의 Capsid protein 부위의 염기서열(5,011-5,403; VP1 유전자)을 주형으로 설계 및 제작된 것을 특징으로 하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임 PCR 프라이머 세트.
- 제 1 항에 있어서,
상기 수인성 노로바이러스 GI 유전자에 특이적인 프로브로서 서열번호 3의 올리고뉴클레오티드와 이러한 올리고뉴클 레오티드에 상보적인 올리고뉴클레오티드로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 제1프로브 및 상기 수인성 노로바이러스 GII 유전자에 특이적인 프로브로서 서열번호 7의 올리고뉴클레오티드와 이러한 올리고뉴클 레오티드에 상보적인 올리고뉴클레오티드로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 하나의 제2프로브;를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임 PCR 프라이머 세트.
- 제 1 항 내지 제 3항 중 어느 한 항의 리얼타임 PCR용 프라이머 세트;를 포함하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임 PCR 조성물.
- 제 4 항에 있어서,
상기 리얼타임 PCR용 프라이머 세트에 포함된 제1프로브 및 제2프로브는 각각 염기서열의 5′말단에 부착되는 형광물질과 염기서열의 3′말단에 부착되는 형광흡수물질로 구성되는데,
상기 제1프로브의 형광물질과 제2프로브의 형광물질은 서로 상이한 흡수 및 방출 파장을 갖는 것을 특징으로 하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임 PCR 조성물.
- 제 4 항에 있어서,
DNA 중합효소, dNTPs 및 반응버퍼를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII의 동시 검출용 리얼타임 PCR 조성물.
- 제 4 항 내지 제 6 항 중 어느 한 항의 리얼타임 PCR 조성물을 포함하는, 수인성 노로바이러스 GI 및 GII 검출키트.
- 제 7 항에 있어서,
상기 수인성 노로바이러스 GI는 Genebank accession number JQ388274.1 이고, 상기 수인성 노로바이러스 GII는 Genebank accession number KX356908.1 인 것을 특징으로 하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII검출키트.
- 검체로부터 유전자 샘플을 준비하는 단계;
제 4 항 내지 제 6 항 중 어느 하나의 리얼타임 PCR 조성물을 이용하여 상기 유전자 샘플을 리얼타임 PCR로 증폭시키는 단계; 및
상기 리얼타임 PCR 조성물에 포함된 제1 및 제2 프로브에 부착된 형광물질의 발광(emission)정도를 실시간으로 검출하고 분석하는 단계;를 포함하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII 진단방법. - 제 9 항에 있어서,
상기 수인성 노로바이러스 GI 및 GII에 특이적인 유전자의 카피수를 알고 있는 양성 표준자를 제 4 항 내지 제 6 항 중 어느 하나의 리얼타임 PCR 조성물을 이용하여 증폭하는 단계;를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 수인성 노로바이러스 GI 및 GII진단방법.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020210135264A KR20230052104A (ko) | 2021-10-12 | 2021-10-12 | 다중 실시간 정량 pcr을 이용한 수인성 사람 노로바이러스 gi 및 gii의 동시진단 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020210135264A KR20230052104A (ko) | 2021-10-12 | 2021-10-12 | 다중 실시간 정량 pcr을 이용한 수인성 사람 노로바이러스 gi 및 gii의 동시진단 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
KR20230052104A true KR20230052104A (ko) | 2023-04-19 |
Family
ID=86142427
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
KR1020210135264A KR20230052104A (ko) | 2021-10-12 | 2021-10-12 | 다중 실시간 정량 pcr을 이용한 수인성 사람 노로바이러스 gi 및 gii의 동시진단 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
KR (1) | KR20230052104A (ko) |
-
2021
- 2021-10-12 KR KR1020210135264A patent/KR20230052104A/ko not_active Application Discontinuation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Yoo et al., (2017). Evaluation of Various Real-Time Reverse Transcription Quantitative PCR Assays for Norovirus Detection. J. Microbiol. Biotechnol. 27(4); 816-824 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yan et al. | Detection of norovirus (GI, GII), Sapovirus and astrovirus in fecal samples using reverse transcription single-round multiplex PCR | |
CN110760620A (zh) | 一种猪瘟病毒与非洲猪瘟病毒双重荧光pcr检测试剂、试剂盒和检测方法 | |
Tan et al. | Development of multiplex real-time hybridization probe reverse transcriptase polymerase chain reaction for specific detection and differentiation of Enterovirus 71 and Coxsackievirus A16 | |
Liu et al. | Rapid and sensitive detection of Salmonella in chickens using loop-mediated isothermal amplification combined with a lateral flow dipstick | |
Kang et al. | Detection of canine parvovirus in fecal samples using loop-mediated isothermal amplification | |
Masuda et al. | Development of one-step real-time reverse transcriptase-PCR-based assays for the rapid and simultaneous detection of four viruses causing porcine diarrhea | |
US20030149259A1 (en) | Foot and mouth disease virus diagnostic and methods | |
Zeng et al. | Molecular detection of genotype II grass carp reovirus based on nucleic acid sequence-based amplification combined with enzyme-linked immunosorbent assay (NASBA-ELISA) | |
Zhang et al. | An isothermal molecular point of care testing for African swine fever virus using recombinase-aided amplification and lateral flow assay without the need to extract nucleic acids in blood | |
CN113249524A (zh) | 一种用于检测多种猪圆环病毒的三重实时荧光定量pcr引物和探针组合物及其应用 | |
CN109593883B (zh) | 猪圆环病毒多重实时荧光pcr检测引物对、探针、及制备的试剂盒 | |
Dreier et al. | Enhanced reverse transcription-PCR assay for detection of norovirus genogroup I | |
Chin et al. | Recent trends and developments of PCR-based methods for the detection of food-borne Salmonella bacteria and Norovirus | |
KR20170117012A (ko) | 리얼타임 pcr을 이용한 급성위장관염 유발 칼리시비리데 바이러스 검사 키트 및 방법 | |
Wang et al. | Development of a duplex real-time reverse transcription-polymerase chain reaction assay for the simultaneous detection of goose astrovirus genotypes 1 and 2 | |
Dokphut et al. | Development of a loop-mediated isothermal amplification assay for rapid detection of African swine fever. | |
KR101780033B1 (ko) | 노로바이러스 검출용 프라이머, 프로브 및 이를 이용한 검출키트 및 방법 | |
JP4898210B2 (ja) | サポウイルスの検出方法 | |
Hrdy et al. | MOL-PCR and xMAP Technology: A Multiplex System for Fast Detection of Food-and Waterborne Viruses | |
CN116814859A (zh) | 鉴别非洲猪瘟病毒基因ⅰ型和ⅱ型的引物探针组合物、试剂盒及方法 | |
KR20230109123A (ko) | 흰반점 증후군 바이러스 검출용 조성물 및 이의 검출방법 | |
CN106471135B (zh) | 肠道病毒和双埃柯病毒的分子检测 | |
KR20230052104A (ko) | 다중 실시간 정량 pcr을 이용한 수인성 사람 노로바이러스 gi 및 gii의 동시진단 | |
Liu et al. | Development of reverse transcription loop-mediated isothermal amplification for rapid detection of Batai virus in cattle and mosquitoes | |
Luo et al. | Development of a loop-mediated isothermal amplification assay for rapid detection of bovine parvovirus |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
E902 | Notification of reason for refusal |