JPWO2018143312A1 - 多能性幹細胞の分化制御方法 - Google Patents
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Abstract
Description
〔1〕 多能性幹細胞との結合親和性を指標としてラミニン又はそのフラグメントを選択し、該ラミニン又はそのフラグメントの存在下に多能性幹細胞を分化誘導することを特徴とする、多能性幹細胞の分化制御方法。
〔2〕 ラミニン332又はラミニン332E8フラグメントの存在下に角膜上皮細胞への分化を制御する、前記〔1〕記載の分化制御方法。
〔3〕 ラミニン111又はラミニン111E8フラグメントの存在下に神経細胞への分化を制御する、前記〔1〕記載の分化制御方法。
〔4〕 ラミニン211又はラミニン211E8フラグメントの存在下に神経堤細胞への分化を制御する、前記〔1〕記載の分化制御方法。
〔5〕 ラミニン411又はラミニン411E8フラグメントの存在下に網膜細胞への分化を制御する、前記〔1〕記載の分化制御方法。
〔6〕 ラミニン411又はラミニン411E8フラグメントの存在下に神経堤細胞への分化を制御する、前記〔1〕記載の分化制御方法。
〔7〕 前記〔1〕〜〔6〕いずれかに記載の分化制御方法により誘導された多能性幹細胞の分化細胞を培養する、眼周囲細胞集団の製造方法。
〔8〕 得られる細胞集団が角膜上皮細胞集団である、前記〔7〕記載の製造方法。
〔9〕 前記〔8〕記載の製造方法により得られた角膜上皮細胞集団を使用することを特徴とする、移植用角膜上皮細胞シートの製造方法。
〔10〕 ラミニン111、ラミニン211、ラミニン332、ラミニン411及びラミニン511からなる群より選ばれるラミニン又はそのE8フラグメントを含有してなる、多能性幹細胞の分化制御剤。
〔11〕 多能性幹細胞の分化を制御するための、ラミニン111、ラミニン211、ラミニン332、ラミニン411及びラミニン511からなる群より選ばれるラミニン又はそのE8フラグメントの使用。
〔12〕 多能性幹細胞の分化制御において使用するための、ラミニン111、ラミニン211、ラミニン332、ラミニン411及びラミニン511からなる群より選ばれるラミニン又はそのE8フラグメント。
細胞集団(1):網膜細胞含有率が高い細胞集団
細胞集団(2):神経堤細胞含有率が高い細胞集団
細胞集団(3):神経細胞含有率が高い細胞集団
細胞集団(4):角膜上皮細胞含有率が高い細胞集団
iPS細胞から眼周囲細胞の分化誘導には、self-formed ectodermal autonomous multi-zone(SEAM)法を用いた(Hayashi et al. Nature. 2016 Mar 17;531(7594):376-80.)。分化誘導の工程概略を図1に示す。なお、用いたラミニンアイソフォームは、ラミニン111のE8フラグメント(ラミニン111E8)、ラミニン211のE8フラグメント(ラミニン211E8)、ラミニン332のE8フラグメント(ラミニン332E8)、ラミニン411のE8フラグメント(ラミニン411E8)及びラミニン511のE8フラグメント(ラミニン511E8)であり、いずれも公知技術に従って調製したものである。
実施例1と同様の方法で分化誘導し、開始から適切な期間培養した細胞を、培養液を除去し、PBSで洗浄した後、4% paraformaldehyde/PBS又は冷メタノールにて固定した。次いで、TBSで3回洗浄し、5%ロバ正常血清及び0.3%Triton-X100含有TBSで室温にて1時間ブロッキングした後、一次抗体を加え室温で1時間又は4℃で一晩反応させた。その後、TBSで3回洗浄した後、二次抗体を加え室温で1時間反応させた。なお、一次抗体として、神経堤細胞の検出には、抗p75抗体(Mouse monoclonal; ME20.4、ADVANCED TRGETING SYSTEMS)及び抗SOX10抗体(Goat polyclonal; N-20、Santa Cruz Biotechnology)を用いた。神経細胞の検出には、抗TUBB3抗体(Rabbit polyclonal; T2200、Sigma-Aldrich)を用いた。上皮細胞及び網膜細胞の検出には、それぞれ、抗E-cadherin抗体(Mouse monoclonal; 180215、R&D systems)及び抗CHX10抗体(Goat polyclonal; N-18、Santa Cruz Biotechnology)を用いた。角膜上皮細胞の検出には、抗PAX6抗体(Rabbit polyclonal; ab97866、Abcam)及び抗p63抗体(Mouse monoclonal; 4A4、Santa Cruz Biotechnology)を用いた。二次抗体には,Alexa Fluor(登録商標)488、567又は647標識抗マウス、ウサギ又はヒツジIgG抗体(Invitrogen)を使用した。抗体はいずれも1%ロバ正常血清及び0.3%Triton-X100含有TBSで希釈して使用した。核の染色は、100倍希釈濃度のHoechst 33342で室温にて10分間処理をすることで行った。観察にはAxio Observer.D1(Carl Zeiss)を使用した。結果を図3に示す。
実施例1と同様の方法で分化誘導し、分化培養の開始直前(0週)、4、6、12週後の細胞について、培養液を除去し、PBSで洗浄した後、QIAzol Lysis Reagent(QIAGEN)を用いて精製し、総量20μLの反応系にて,SuperScript(登録商標) III First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR(Invitrogen)により逆転写を行い、作製したcDNAを鋳型に用いて、ABI Prism 7500 Fast Sequence Detection System(Life Technologies)により定量的リアルタイムPCR(qRT-PCR)を行った。結果を図4に示す。
「332」又は「511」(共に0.5μg/cm2)でコーティングした培養容器に、iPS細胞を播種し、IncuCyte(登録商標) Live Cell Analysis System(Essen BioScience)にてタイムラプス撮影後の各培養日数の位相差像を取得した。結果を図5に示す。
「332」又は「511」(いずれも0.5μg/cm2)でコーティングした培養容器にiPS細胞を播種し、10日間StemFit(登録商標)培地(味の素)で培養後の細胞又は10日間のStemFit(登録商標)培地で培養後に実施例1で用いた分化培地(DM)と同じ培地に交換して3日間培養した細胞を、培養液を除去した後、TBSで洗浄し、4% paraformaldehyde/PBS又は冷メタノールにて固定した。次いで、TBSで洗浄後、膜透過処理のため、1% NST/TBS(1% normal donkey serum、0.3% Triton-X100)に交換後、4℃で一晩静置した。更に、5%ロバ正常血清及び0.3%Triton-X100含有TBSで室温にて1時間ブロッキングした後、一次抗体を加え室温で1時間又は4℃で一晩反応させた。その後、PBSで3回洗浄した後、二次抗体を加え室温で1時間反応させた。一次抗体は、抗YAP抗体(Mouse monoclonal; 63.7、Santa Cruz Biotechnology)及び抗N-cadherin抗体(Rabbit monoclonal; EPR1791-4、Abcam)を用いた。二次抗体には、Alexa Fluor(登録商標)488又は594標識の抗マウス又はウサギIgG抗体(Invitrogen)を使用した。抗体はいずれも1% NST/TBSで希釈して使用した。核の染色は、Hoechst 33342で室温にて10分間処理をすることで行った。観察にはAxio Observer.D1(Carl Zeiss)を使用した。結果を図6に示す。左がiPS細胞培養10日後のYAPの染色結果、右が分化培養3日後のもので上段がYAPの染色結果、中段がN-cadherinの染色結果、下段が両者を重ねた結果である。
「111」、「211」、「332」、「411」又は「511」(いずれも0.5μg/cm2)でコーティングした培養容器にiPS細胞を播種し、実施例1と同様の方法で分化誘導した細胞を、Accutase (Life Technologies)にて処理後、KCM培地(5% FBS(Japan Bio Serum)、0.4μg/mL hydrocortisone succinate(Wako)、2nM 3,3′,5-Triiodo-l-thyronine sodium salt (MP biomedicals)、1nM cholera toxin(List Biological Laboratory)、2.25μg/mL 1 bovine transferrin HOLO form(Life Technologies)、2mM l-glutamine、0.5% insulin transferrin selenium solution(Life Technologies)、1% penicillin-streptomycinを含有させたDMEM without glutamine/Nutrient Mixture F-12 Ham培地(3:1(v/v)、Life Technologies))に再懸濁し、セルストレイナー(40μm、BD Biosciences)を通過させた後、抗SSEA-4抗体(MC813-70、Biolegend)、CD104抗体(ITGB4; 58XB4、Biolegend又は624024、BD Pharmingen)及びCD200抗体(624052、BD Pharmingen)にて氷上にて1時間染色後、PBSにて洗浄後、セルソーターSH800(SONY)又はFACS Verse(BD Biosciences)にて解析を行った。データ解析にはFlowJo(TreeStar)を用いた。結果を図7に示す。
「332」又は「511」(いずれも0.5μg/cm2)でコーティングした培養容器にiPS細胞を播種し、実施例1と同様の方法で分化誘導後4、6、12週後の細胞中の未分化マーカーLIN28Aの遺伝子発現を実施例3に記載の方法にて解析した。
実施例1と同様の方法で「511」を用いてiPS細胞より分化誘導6週後に形成されたSEAM構造中の第1〜4層の細胞をマニュアルピペッティングで回収後、StemPro(登録商標) Accutase(登録商標)(Thermo Fisher Scientific)にて解離又は実施例7に記載のFACS sortingにて単離したものを、同じ細胞数ずつ、「111」、「211」、「332」、「411」又は「511」(いずれも0.5μg/cm2)でコーティングした細胞培養プレートに播種した。播種後の細胞はCDM培地にて6週間培養後、細胞数をCell Counting Kit-8(同仁化学)により測定し、「511」に対する相対細胞生存率として算出した。結果を図9に示す。
実施例3において分化誘導細胞における遺伝子発現を検討したが、その際の発現量について詳細に対比を行った。具体的には、分化誘導4週目の神経堤マーカー遺伝子発現結果について、「211」上で分化誘導したものと「511」上で分化誘導したものを抽出した。また、同様に分化誘導12週におけるN-cadherin遺伝子の「411」と「511」の発現解析結果を抽出した。更に、実施例6において定量した角膜上皮マーカー陽性率を対比した結果も抽出した。結果を図10にまとめて示す。
「111」、「211」、「332」、「411」又は「511」(いずれも0.5μg/cm2)でコーティングした培養容器にiPS細胞を播種し、実施例1と同様の方法で分化誘導3日目のiPS由来細胞のWntシグナルの標的遺伝子の発現解析を行った。結果を図11に示す。
「511」のコーティング濃度を0.5、1.0、1.5(μg/cm2)にした状態で、実施例1と同様の方法で分化誘導を行い12週後の遺伝子発現解析を行った。結果を図12に示す。
「111」、「211」、「332」、「411」、「511」又は「VN」のコーティング濃度を0.5、1.0、1.5(μg/cm2)にした状態で、実施例1と同様の方法で分化誘導を行い、実施例6と同様にしてFACS解析にて、角膜上皮細胞画分を定量した。結果を図13に示す。
「111」、「211」、「332」、「411」又は「511」のコーティング濃度を0.5〜1.0(μg/cm2)にした状態で、実施例1と同様の方法で分化誘導3日目のiPS由来細胞から、公知の方法に従ってRNAを回収した。得られたRNAは、RNeasy Plus micro kit(Qiagen)を用いて精製し、Sure Print G3 human 8×60K slides(Agilent Technologies、Palo Alto、CA、USA)を用いてマイクロアレイ解析を行い(タカラバイオ)、GeneSpring GX software(Agilent Technologies)を用いて、神経堤細胞マーカー遺伝子のヒートマップを作製した。結果を図14に示す。
「211」のコーティング濃度を0.5〜1.0(μg/cm2)にした状態で、実施例1と同様の方法で4週間分化誘導した細胞を、実施例2と同様の方法で抗体と反応させた。一次抗体には、抗PITX2抗体(Abcam、Ab55599)及び抗FOXC1抗体(Cell Signaling Technology、8758)を用いた。二次抗体には、Alexa Fluor(登録商標)488、594標識抗マウス又はウサギIgG抗体(Invitrogen)を使用した。抗体はいずれも1% NST/TBS(1% normal donkey serum、0.3% Triton-X100含有TBS)で希釈して使用した。核の染色及び細胞の観察は、実施例2と同様にして行った。結果を図15に示す。
「111」、「211」、「332」、「411」又は「511」でコーティングした培養容器を用いて、実施例13と同様にして、Wntシグナル経路関連遺伝子のヒートマップを作製した。結果を図16に示す。
「211」を1.0μg/cm2又は「511」を0.5μg/cm2でコーティングした培養容器を用いて、実施例1と同様の方法で2週間分化誘導する際に、最初の3日間Wntシグナル経路阻害剤であるIWP-2又はWntシグナル経路促進剤であるCHIR99021で処理を行い、実施例6と同様にしてFACS解析を行った。FACSは、CD271(p75、C40-1457; BD Pharmingen、Franklin Lakes、NJ、USA)とCD40d(ITGA4、9F10; BioLegend)に対する抗体を用いて行った。なお、各ControlにはDMSOを添加した系を用いた。結果を図17に示す。なお、図中、上段には本実施例での分化誘導過程の概略図を示す。
実施例16で分化誘導された細胞について、p75抗体(ADVANCED TRGETING SYSTEMS、AB-N07)とSOX10抗体(Santa Cruz Biotechnology、sc-17342)を用いて、実施例2と同様にして免疫染色を行った。結果を図18に示す。
「211」を1.0μg/cm2、「332」を0.5μg/cm2又は「511」を0.5μg/cm2でコーティングした培養容器を用いて、実施例1と同様の方法で3日間iPS細胞を培養し、固定後、Myosin light chain (phospo S20)抗体(Abcam、ab2480)を用いて、実施例2と同様にして免疫染色を行った。結果を図19に示す。
実施例と18と同様にして10日間培養後のiPS細胞について、RIPA buffer(Thermo)で細胞抽出後、Pierce(登録商標)BCA Protein Assay Kit(Thermo Fisher Scientific)を用いてタンパク量を定量後、同タンパク量になるようにSDS-PAGEを行った。SDS-PAGE後は、iBlot system(Invitrogen、Waltham、MA、USA)を用いてメンブレンに転写し、p-MLC(ab2480、1:1000; Abcam、Cambridge、UK)、p-Vinculin(V4889、1:1,000; Sigma-Aldrich)Vinculin(ab18058; Abcam)又はGAPDH(ab8245、1:5,000; Abcam)に対する一次抗体、horseradish peroxidase-conjugated anti-mouse IgG(ab6789、1:5,000; Abcam)又はanti-rabbit IgG(ab97051、1:5,000; Abcam)に対する二次抗体を用いて抗体反応を行った。ECL Prime reagent(GE Healthcare、Little Chalfont、UK)を用いて検出し、ChemiDoc XRS+ imaging system(Bio-Rad、Hercules、CA、USA)を用いてスキャンした。結果を図20に示す。
「332」を0.5μg/cm2又は「511」を0.5μg/cm2でコーティングした培養容器を用いて、実施例1と同様の方法で10日間培養したiPS細胞について、実施例2と同様にしてブロッキングと核染色を行って、細胞数をカウントし、1mm2あたりの細胞密度を算出した。結果を図21に示す。
「332」を0.5μg/cm2又は「511」を0.5μg/cm2でコーティングした培養容器を用いて、実施例1と同様の方法で10日間培養したiPS細胞について、実施例3と同様にして遺伝子発現を解析した。結果を図22に示す。
「511」を0.25〜1μg/cm2でコーティングした培養容器を用いて、実施例1と同様の方法で10日間培養したiPS細胞について、コロニーの直径をEVOS FL Auto system(Life Technologies)にて定量した。また、前記とは別に、そのまま分化誘導させた分化3日目の細胞について、実施例2と同様にして免疫染色を行った。結果を図23に示す。
「511」を0.5μg/cm2でコーティングした培養容器を用いて、実施例1と同様の方法で10日間iPS細胞を培養後、Verteporfin(VP)又はDMSOを添加した分化培地で3日間培養し、抗PAX6抗体(BioLegend、PRB-278P)を用いて実施例2と同様にして免疫染色を行った。また、実施例21と同様にして遺伝子発現も解析した。結果を図24に示す。
Claims (12)
- 多能性幹細胞との結合親和性を指標としてラミニン又はそのフラグメントを選択し、該ラミニン又はそのフラグメントの存在下に多能性幹細胞を分化誘導することを特徴とする、多能性幹細胞の分化制御方法。
- ラミニン332又はラミニン332E8フラグメントの存在下に角膜上皮細胞への分化を制御する、請求項1記載の分化制御方法。
- ラミニン111又はラミニン111E8フラグメントの存在下に神経細胞への分化を制御する、請求項1記載の分化制御方法。
- ラミニン211又はラミニン211E8フラグメントの存在下に神経堤細胞への分化を制御する、請求項1記載の分化制御方法。
- ラミニン411又はラミニン411E8フラグメントの存在下に網膜細胞への分化を制御する、請求項1記載の分化制御方法。
- ラミニン411又はラミニン411E8フラグメントの存在下に神経堤細胞への分化を制御する、請求項1記載の分化制御方法。
- 請求項1〜6いずれかに記載の分化制御方法により誘導された多能性幹細胞の分化細胞を培養する、眼周囲細胞集団の製造方法。
- 得られる細胞集団が角膜上皮細胞集団である、請求項7記載の製造方法。
- 請求項8記載の製造方法により得られた角膜上皮細胞集団を使用することを特徴とする、移植用角膜上皮細胞シートの製造方法。
- ラミニン111、ラミニン211、ラミニン332、ラミニン411及びラミニン511からなる群より選ばれるラミニン又はそのE8フラグメントを含有してなる、多能性幹細胞の分化制御剤。
- 多能性幹細胞の分化を制御するための、ラミニン111、ラミニン211、ラミニン332、ラミニン411及びラミニン511からなる群より選ばれるラミニン又はそのE8フラグメントの使用。
- 多能性幹細胞の分化制御において使用するための、ラミニン111、ラミニン211、ラミニン332、ラミニン411及びラミニン511からなる群より選ばれるラミニン又はそのE8フラグメント。
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