JPH08277303A - 分岐多糖類、それを生産する微生物とそれらを含有する組成物 - Google Patents
分岐多糖類、それを生産する微生物とそれらを含有する組成物Info
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 本発明はβ−ガラクトシド・レクチンとそ
の受容体の間の結合を阻止するのに使用できる、新規な
分岐多糖類および/またはそれを生産する微生物を提供
する。 【解決手段】 本発明は置換可能なラクトース単位だけ
から成る反復側鎖を有する主鎖を含む新規な天然の可溶
性分岐多糖類にかかわるものである。本発明はさらにこ
の分岐多糖類が得られる微生物と、前記分岐多糖類およ
び/または微生物を含有する食品組成物、化粧品組成物
および薬剤組成物にかかわるものである。
の受容体の間の結合を阻止するのに使用できる、新規な
分岐多糖類および/またはそれを生産する微生物を提供
する。 【解決手段】 本発明は置換可能なラクトース単位だけ
から成る反復側鎖を有する主鎖を含む新規な天然の可溶
性分岐多糖類にかかわるものである。本発明はさらにこ
の分岐多糖類が得られる微生物と、前記分岐多糖類およ
び/または微生物を含有する食品組成物、化粧品組成物
および薬剤組成物にかかわるものである。
Description
【0001】
【0002】本発明は新規な分岐多糖類、それを生産す
る微生物と、それらを含有する食品組成物、薬剤組成物
および化粧品組成物に関する。
る微生物と、それらを含有する食品組成物、薬剤組成物
および化粧品組成物に関する。
【0003】
【0004】生物伝達(細胞が分子または別の細胞を認
識する可能性)は病理状態でも正常な状態でも中心的現
象である。
識する可能性)は病理状態でも正常な状態でも中心的現
象である。
【0005】細胞間、および/または細胞と分子の間の
分子認識の様々な機構の中で、特殊タンパク(レクチ
ン)による特定のグリコシド構造の結合は今日主要な分
子認識システムと見なされている。
分子認識の様々な機構の中で、特殊タンパク(レクチ
ン)による特定のグリコシド構造の結合は今日主要な分
子認識システムと見なされている。
【0006】レクチンは特に、また非共有結合で、明確
なグリコシド配列に結合される。
なグリコシド配列に結合される。
【0007】レクチンによっては、高いマンノース含有
率のオリゴ糖、シアル酸を担持する構造、フコース化グ
リコシド、などに結合されるものがある。
率のオリゴ糖、シアル酸を担持する構造、フコース化グ
リコシド、などに結合されるものがある。
【0008】他のレクチンはβ−ガラクトシドとラクト
ースを結合することができる。
ースを結合することができる。
【0009】凝集して、歯垢として網目構造を形成する
口腔バクテリア細胞[アクチノミセス・ネスランディイ
(Actinomyces naeslundii)またはビスコスス(viscosu
s)、ストレプトコッカス・ミティス(Streptococcus mit
is)またはサングイス(sanguis)、フゾバクテリウム・ヌ
クレアトゥム(Fusobacterium nucleatum)、ポルフィロ
モナス・ジンジバリス(Porphyromonas gingivalis)、バ
クテリオデス・インテルメディウス(Bacteriodes inter
medius)、・・・]の間には多属共凝集が存在する。
口腔バクテリア細胞[アクチノミセス・ネスランディイ
(Actinomyces naeslundii)またはビスコスス(viscosu
s)、ストレプトコッカス・ミティス(Streptococcus mit
is)またはサングイス(sanguis)、フゾバクテリウム・ヌ
クレアトゥム(Fusobacterium nucleatum)、ポルフィロ
モナス・ジンジバリス(Porphyromonas gingivalis)、バ
クテリオデス・インテルメディウス(Bacteriodes inter
medius)、・・・]の間には多属共凝集が存在する。
【0010】これらのバクテリア細胞の間では、一方の
細胞上のβ−ガラクトシド・レクチンと別の細胞上のグ
リコシド受容体の間の非共有結合による相互作用が得ら
れることが多い(参考文献1:参考文献のリストは、発
明の詳細な説明の欄の最後に添付する)。
細胞上のβ−ガラクトシド・レクチンと別の細胞上のグ
リコシド受容体の間の非共有結合による相互作用が得ら
れることが多い(参考文献1:参考文献のリストは、発
明の詳細な説明の欄の最後に添付する)。
【0011】大半の感染症は病原体[アクチノミセス・
ネスランディイ、フゾバクテリウム・ヌクレアトゥム、
バクテリオデス・インテルメディウス、サルモネラ・テ
ィフィムリウム(Salmonella typhimurium)、ビブリオ・
コレラ(Vibrio Cholera)、カンピロバクテル・ジェジュ
ニ(Campylobacter jejuni)、バクテリオデス(Bacteriod
es)、フゾバクテリア(Fusobacteria)、クロストリディ
ア(Clostridia)、シゲッラ(Shigella)、イェルシニア(Y
ersinia)、およびヘリコバクテル・ピロリ(Helicobacte
r pylori)、・・・]が寄主の粘膜の上皮細胞に付着し
て開始され、それによって動物組織のコロニー形成が可
能になる。
ネスランディイ、フゾバクテリウム・ヌクレアトゥム、
バクテリオデス・インテルメディウス、サルモネラ・テ
ィフィムリウム(Salmonella typhimurium)、ビブリオ・
コレラ(Vibrio Cholera)、カンピロバクテル・ジェジュ
ニ(Campylobacter jejuni)、バクテリオデス(Bacteriod
es)、フゾバクテリア(Fusobacteria)、クロストリディ
ア(Clostridia)、シゲッラ(Shigella)、イェルシニア(Y
ersinia)、およびヘリコバクテル・ピロリ(Helicobacte
r pylori)、・・・]が寄主の粘膜の上皮細胞に付着し
て開始され、それによって動物組織のコロニー形成が可
能になる。
【0012】この付着はこの病原体の表面に位置するβ
−ガラクトシド・レクチンと上皮細胞の表面に位置する
グリコシド受容体の間の結合によって得られることが多
い(参考文献2)。
−ガラクトシド・レクチンと上皮細胞の表面に位置する
グリコシド受容体の間の結合によって得られることが多
い(参考文献2)。
【0013】免疫系の各種の細胞(TおよびBリンパ
球,マクロファージ,好中球)はβ−ガラクトシド・レ
クチンを結合できるか、その表面にガレクチン科のかか
るレクチンを発現できることが知られている。
球,マクロファージ,好中球)はβ−ガラクトシド・レ
クチンを結合できるか、その表面にガレクチン科のかか
るレクチンを発現できることが知られている。
【0014】加えて、腸管細胞またはケラチン生成細胞
などの一部の上皮細胞は同じくランゲルハンス(Langerh
ans)細胞を被おうことのできるこれらのガレクチンを生
成し、IgEなどの免疫グロブリンは特にガレクチンと
結合することができる(参考文献3,4および5)。
などの一部の上皮細胞は同じくランゲルハンス(Langerh
ans)細胞を被おうことのできるこれらのガレクチンを生
成し、IgEなどの免疫グロブリンは特にガレクチンと
結合することができる(参考文献3,4および5)。
【0015】微生物によって生成される多糖類について
は過去に多数の研究がなされ、近年、乳酸バクテリアに
よって得られた細胞外多糖類の構造と、その生物活性に
関する研究について数多くの報告がなされている。
は過去に多数の研究がなされ、近年、乳酸バクテリアに
よって得られた細胞外多糖類の構造と、その生物活性に
関する研究について数多くの報告がなされている。
【0016】ガラクトース、グルコースおよびN−アセ
チルガラクトサミン(2:1:1)から成る多糖類がス
トレプトコッカス・テルモフィラス(Streptococcus the
rmophilus)CNCM I−733,CNCM I−734
およびCNCM I−735の菌株によって得られた
(参考文献6および7);
チルガラクトサミン(2:1:1)から成る多糖類がス
トレプトコッカス・テルモフィラス(Streptococcus the
rmophilus)CNCM I−733,CNCM I−734
およびCNCM I−735の菌株によって得られた
(参考文献6および7);
【0017】ガラクトース単体から成る多糖類がラクト
コッカス・クレモリス(Lactococcuscremoris)H414
の菌株によって得られた(参考文献8);
コッカス・クレモリス(Lactococcuscremoris)H414
の菌株によって得られた(参考文献8);
【0018】ガラクトース、グルコース、ラムノースお
よびリン酸塩(2:2:1:1)から成る多糖類がラク
トコッカス・クレモリスSBT0495の菌株によって
得られた(参考文献9);
よびリン酸塩(2:2:1:1)から成る多糖類がラク
トコッカス・クレモリスSBT0495の菌株によって
得られた(参考文献9);
【0019】ガラクトース、グルコースおよびラムノー
ス(5:1:1)から成る多糖類はラクトバチルス・ブ
ルガリクスrr (Lactobacillus bulgaricus rr)の菌株に
よって得られた(参考文献10);
ス(5:1:1)から成る多糖類はラクトバチルス・ブ
ルガリクスrr (Lactobacillus bulgaricus rr)の菌株に
よって得られた(参考文献10);
【0020】グルコース、ラムノース、1−ホスホグリ
セロールおよびO−アセチル基(3:2:1:0.8
5)から成る多糖類はラクトバチルス・サケ(Lactobaci
llus sake)0−1の菌株によって得られた(参考文献1
1)。
セロールおよびO−アセチル基(3:2:1:0.8
5)から成る多糖類はラクトバチルス・サケ(Lactobaci
llus sake)0−1の菌株によって得られた(参考文献1
1)。
【0021】他方、ラクトバチルス・ヘルベチクス(Lac
tobacillus helveticus)の少数の菌株によって得られた
他の多糖類が研究されたが、その構造の特性化は実現さ
れたことがない。例えば、抗腫瘍剤として使用されるグ
ルコースおよびガラクトース(2:1)から成る未知の
構造の多糖類はラクトバチルス・ヘルベチクス・バル.
ジュグルティ(Lactobacillus helveticus var. jugurt
i) No.851”FERM BP−66(FERM−P
No.5851)”の菌株によって得られた(参考文
献12および13)。同様に、炎症の治療と骨髄の成長
促進に用いられるガラクトース、グルコースおよびN−
アセチルグルコサミン(2.5−3.5:2.5−3.
5:1)から成る未知の構造の多糖類はラクトバチルス
・ヘルベチクス MIKI−010の菌株から得られた
(参考文献14)。
tobacillus helveticus)の少数の菌株によって得られた
他の多糖類が研究されたが、その構造の特性化は実現さ
れたことがない。例えば、抗腫瘍剤として使用されるグ
ルコースおよびガラクトース(2:1)から成る未知の
構造の多糖類はラクトバチルス・ヘルベチクス・バル.
ジュグルティ(Lactobacillus helveticus var. jugurt
i) No.851”FERM BP−66(FERM−P
No.5851)”の菌株によって得られた(参考文
献12および13)。同様に、炎症の治療と骨髄の成長
促進に用いられるガラクトース、グルコースおよびN−
アセチルグルコサミン(2.5−3.5:2.5−3.
5:1)から成る未知の構造の多糖類はラクトバチルス
・ヘルベチクス MIKI−010の菌株から得られた
(参考文献14)。
【0022】
【0023】本発明はβ−ガラクトシド・レクチンとそ
の受容体の間の結合を阻止するのに使用できる、新規な
分岐多糖類および/またはそれを生産する微生物を提供
することを目的とする。
の受容体の間の結合を阻止するのに使用できる、新規な
分岐多糖類および/またはそれを生産する微生物を提供
することを目的とする。
【0024】本発明の別の目的は感覚受容性と質感特性
が改善された前記分岐多糖類および/または微生物を含
有する食品組成物を提供することである。
が改善された前記分岐多糖類および/または微生物を含
有する食品組成物を提供することである。
【0025】本発明のさらに別の目的は前記多糖類およ
び/または微生物を含有する薬剤組成物および/または
化粧品組成物を提供することである。
び/または微生物を含有する薬剤組成物および/または
化粧品組成物を提供することである。
【0026】本発明の最後の目的は、ガングリオトリオ
ース、Sd−a血液グループ、またはシアリル−および
硫酸−Lewis Xの重合した誘導体の生産のための
中間生成物として用いることのできる多糖類を提供する
ことである。
ース、Sd−a血液グループ、またはシアリル−および
硫酸−Lewis Xの重合した誘導体の生産のための
中間生成物として用いることのできる多糖類を提供する
ことである。
【0027】
【0028】本発明は置換可能なラクトース単位だけか
ら成る反復側鎖を有する主鎖を含む新規な天然の可溶性
分岐多糖類にかかわるものである。
ら成る反復側鎖を有する主鎖を含む新規な天然の可溶性
分岐多糖類にかかわるものである。
【0029】本発明の推奨実施態様によれば、分岐多糖
類の化学式は次の通りである。
類の化学式は次の通りである。
【0030】
【化2】
【0031】ここで、n>1 Gal=ガラクトース Glc=グルコース R1=水素またはGalNAcβ1(N−アセチルガラ
クトサミン) R2=水素、NeuNAcα2(N−アセチルノイラミ
ン酸)またはHSO3 R3=水素またはFucα1(フコース)
クトサミン) R2=水素、NeuNAcα2(N−アセチルノイラミ
ン酸)またはHSO3 R3=水素またはFucα1(フコース)
【0032】R1=R2=R3=水素であるとき、分岐多
糖類は下記の物理化学的特性を特徴とする。
糖類は下記の物理化学的特性を特徴とする。
【0033】・分子量が2000000をこえる。 ・水溶性であり、溶液のトリクロロ酢酸含有率は20%
未満である。 ・アルコールやアセトンに溶けない。 ・中性。 ・凍結乾燥製品は白粉末状である。 ・成分糖と組成比が、グルコース:ガラクトース=1:
1.1である。
未満である。 ・アルコールやアセトンに溶けない。 ・中性。 ・凍結乾燥製品は白粉末状である。 ・成分糖と組成比が、グルコース:ガラクトース=1:
1.1である。
【0034】R1がGalNAcβ1(N−アセチルガ
ラクトサミン)であり、R2=R3=水素であるとき、分
岐多糖類は参考文献15および16に記載の方法によっ
て、中間生成物(R1=R2=R3=水素のある多糖類)
から有利に得られた限定ガングリオトリオースの誘導体
である。
ラクトサミン)であり、R2=R3=水素であるとき、分
岐多糖類は参考文献15および16に記載の方法によっ
て、中間生成物(R1=R2=R3=水素のある多糖類)
から有利に得られた限定ガングリオトリオースの誘導体
である。
【0035】R1がGalNAcβ1(N−アセチルガ
ラクトサミン)であり、R2がNeuNAcα2(N−
アセチルノイラミン酸)であり、R3が水素であると
き、分岐多糖類は参考文献17および18に記載の方法
によって、中間生成物(R1=R2=R3=水素のある多
糖類)から有利に得られた限定Sd−a血液グループの
誘導体である。
ラクトサミン)であり、R2がNeuNAcα2(N−
アセチルノイラミン酸)であり、R3が水素であると
き、分岐多糖類は参考文献17および18に記載の方法
によって、中間生成物(R1=R2=R3=水素のある多
糖類)から有利に得られた限定Sd−a血液グループの
誘導体である。
【0036】R1が水素であり、R2がNeuNAcα2
(N−アセチルノイラミン酸)またはHSO3であり、
R3がFucα1(フコース)であるとき、分岐多糖類
は参考文献19および20に記載の医薬品シアリル−ま
たは硫酸−Lewis Xの誘導体である。
(N−アセチルノイラミン酸)またはHSO3であり、
R3がFucα1(フコース)であるとき、分岐多糖類
は参考文献19および20に記載の医薬品シアリル−ま
たは硫酸−Lewis Xの誘導体である。
【0037】Galβ1−4GlcとR1,R2の間の結
合は好適には参考文献17に記載の方法によって中間生
成物(R1=R2=R3=水素である多糖類)から得られ
る。
合は好適には参考文献17に記載の方法によって中間生
成物(R1=R2=R3=水素である多糖類)から得られ
る。
【0038】本発明は、R1=R2=R3=水素を有する
分岐多糖類を生成する微生物にも関する。
分岐多糖類を生成する微生物にも関する。
【0039】好適には、前記微生物はラクトバチルス・
ヘルベチクスの菌株、望ましくはラクトバチルス・ヘル
ベチクスCNCM I−1449の菌株に対応する。
ヘルベチクスの菌株、望ましくはラクトバチルス・ヘル
ベチクスCNCM I−1449の菌株に対応する。
【0040】この微生物はブダペスト条約に従って19
94年7月27日に国立微生物培養保管所(CNC
M)、パスツール研究所、28 rue du Doc
teurRoux, 75724 PARIS CED
EX 15, FRANCEに寄託された。
94年7月27日に国立微生物培養保管所(CNC
M)、パスツール研究所、28 rue du Doc
teurRoux, 75724 PARIS CED
EX 15, FRANCEに寄託された。
【0041】本発明は、本発明による多糖類および/ま
たは微生物を含有する感覚受容性および質感特性が改善
された食品にも関する。
たは微生物を含有する感覚受容性および質感特性が改善
された食品にも関する。
【0042】好適には、前記食品組成物は凝固した酸敗
乳または攪拌された酸敗乳である。
乳または攪拌された酸敗乳である。
【0043】本発明の別の態様は本発明による多糖類お
よび/または微生物を含有する化粧品組成物にも関す
る。
よび/または微生物を含有する化粧品組成物にも関す
る。
【0044】本発明の推奨実施態様によれば、前記化粧
品組成物は練り歯磨き、歯科ゲル、口腔洗浄液、チュー
インガムおよび/または錠剤から成る群から選ばれた口
腔衛生のための化粧品である。
品組成物は練り歯磨き、歯科ゲル、口腔洗浄液、チュー
インガムおよび/または錠剤から成る群から選ばれた口
腔衛生のための化粧品である。
【0045】本発明の別の推奨実施態様によれば、前記
化粧品組成物はクリーム、軟膏または香膏から成る群か
ら選ばれた皮膚衛生のための製品である。
化粧品組成物はクリーム、軟膏または香膏から成る群か
ら選ばれた皮膚衛生のための製品である。
【0046】本発明の別の態様は本発明による多糖類お
よび/または微生物を含有する薬剤組成物に関する。
よび/または微生物を含有する薬剤組成物に関する。
【0047】有益には、前記組成物はカプセル、シロッ
プ、粉末および/または錠剤から成る群から選ばれた止
瀉薬製品である。
プ、粉末および/または錠剤から成る群から選ばれた止
瀉薬製品である。
【0048】本発明の最後の態様は特定の分子および/
または微生物を取り出すための本発明による分岐多糖類
を含有する診断および/または分析装置に関するもので
ある。
または微生物を取り出すための本発明による分岐多糖類
を含有する診断および/または分析装置に関するもので
ある。
【0049】
【0050】本発明はラクトース単位だけから成る反復
側鎖を有する主鎖を備えた新規な天然の可溶性分岐多糖
類にかかわるものである;前記ラクトースは置換可能で
ある。
側鎖を有する主鎖を備えた新規な天然の可溶性分岐多糖
類にかかわるものである;前記ラクトースは置換可能で
ある。
【0051】本発明による「分岐多糖類」は10をこえ
る反復単位、好適には40をこえる反復単位を有する糖
類である。
る反復単位、好適には40をこえる反復単位を有する糖
類である。
【0052】前記分岐多糖類は好適には下記のごとく主
鎖1から分岐した一つの側鎖2を含む同一の単一「単
位」の反復から成る「重合体」の構造を有する。
鎖1から分岐した一つの側鎖2を含む同一の単一「単
位」の反復から成る「重合体」の構造を有する。
【0053】
【化3】
【0054】本発明による多糖類の生成と物理化学的構
造を以下に説明する。
造を以下に説明する。
【0055】1.ラクトバチルス・ヘルベチクスCNC
M I−1449によって生成されるエキソ多糖類の調
製と精製
M I−1449によって生成されるエキソ多糖類の調
製と精製
【0056】1.1.発酵条件
【0057】ラクトバチルス・ヘルベチクスCNCM
I−1449はネスレの菌株収蔵品からの粘着性菌株で
あった。ネスレの収集の168のL.ヘルベチクス菌株
の中で、2つの菌株だけがエキソ多糖類を生成する。
I−1449はネスレの菌株収蔵品からの粘着性菌株で
あった。ネスレの収集の168のL.ヘルベチクス菌株
の中で、2つの菌株だけがエキソ多糖類を生成する。
【0058】生長媒体は発酵に先立って殺菌のために加
熱処理した(115℃、35分)10%の再生脱脂乳と
した。磁気攪拌機付きの1リットル目盛りの発酵器を用
いて、発酵の間pHを調整した。pHは2Nの水酸化ナ
トリウムを用いて5.5に維持した。攪拌速度は毎分6
0回転に維持した。40℃で培養した。媒質に植えた開
始培養物の量は1%であった。発酵の間(時間=6時
間、9時間と24時間)、いくつかのサンプルを抜き出
し、凍結して分析し、多糖類を抽出した。
熱処理した(115℃、35分)10%の再生脱脂乳と
した。磁気攪拌機付きの1リットル目盛りの発酵器を用
いて、発酵の間pHを調整した。pHは2Nの水酸化ナ
トリウムを用いて5.5に維持した。攪拌速度は毎分6
0回転に維持した。40℃で培養した。媒質に植えた開
始培養物の量は1%であった。発酵の間(時間=6時
間、9時間と24時間)、いくつかのサンプルを抜き出
し、凍結して分析し、多糖類を抽出した。
【0059】1.2.多糖類の抽出
【0060】等量のトリクロロ酢酸(40%)をサンプ
ルに添加し、沈殿、ついで遠心分離(17000g、2
0分)によってタンパク質を除去した。多糖類を含む上
澄みの分画に同じ量のアセトンを添加した。沈殿した多
糖類は遠心分離(17000g、20分)で分離した。
ルに添加し、沈殿、ついで遠心分離(17000g、2
0分)によってタンパク質を除去した。多糖類を含む上
澄みの分画に同じ量のアセトンを添加した。沈殿した多
糖類は遠心分離(17000g、20分)で分離した。
【0061】結果として沈殿した分画は蒸留水に溶かし
pHは水酸化ナトリウム溶液で7.0に調整した。蒸留
水で透析した後(一夜)、溶けなかった物質を超遠心分
離(110000g,1時間)で除去した。
pHは水酸化ナトリウム溶液で7.0に調整した。蒸留
水で透析した後(一夜)、溶けなかった物質を超遠心分
離(110000g,1時間)で除去した。
【0062】多糖類を含有する上澄み分画は凍結乾燥さ
れ、粗脱水多糖類が最終的に得られた。総中性糖含有率
はフェノール−硫酸法で決定した。
れ、粗脱水多糖類が最終的に得られた。総中性糖含有率
はフェノール−硫酸法で決定した。
【0063】1.3.エキソ多糖類の大きさ
【0064】濾過は純度を確認し、FPLCシステム
(Pharmacia)を用いて多糖類の分子量を求め
るために実施した。使用したカラムはSuperose
6(1.0cm×30cm)であった(図1)。200
〜400μgの脱水多糖類を含む200μlのサンプル
をカラムに充填し、毎分0.5mlの速度でpH7.2
で50mMのリン酸塩緩衝液で溶出した。分画(1.0
ml)は試験管内に収集した。それぞれの試験管内の多
糖類含有率はフェノール−硫酸法によって総中性糖とし
て決定した。
(Pharmacia)を用いて多糖類の分子量を求め
るために実施した。使用したカラムはSuperose
6(1.0cm×30cm)であった(図1)。200
〜400μgの脱水多糖類を含む200μlのサンプル
をカラムに充填し、毎分0.5mlの速度でpH7.2
で50mMのリン酸塩緩衝液で溶出した。分画(1.0
ml)は試験管内に収集した。それぞれの試験管内の多
糖類含有率はフェノール−硫酸法によって総中性糖とし
て決定した。
【0065】1.4.単糖類の組成
【0066】凍結乾燥多糖類の単糖類組成は気体液体ク
ロマトグラフィー技術を用いて分析した(参考文献2
1)。
ロマトグラフィー技術を用いて分析した(参考文献2
1)。
【0067】消費された培養液から得られたエキソ多糖
類は3つのサンプル(時間=6時間、9時間と24時
間)から抽出した後に検査した。その結果を表1に示
す。収率は発酵時間に応じて増加するが、重合体の大き
さと単糖類の組成は変化しないことがわかった。
類は3つのサンプル(時間=6時間、9時間と24時
間)から抽出した後に検査した。その結果を表1に示
す。収率は発酵時間に応じて増加するが、重合体の大き
さと単糖類の組成は変化しないことがわかった。
【0068】
【表1】
【0069】図1はFPLC分析(Superose6
のカラムで)t=24時間で得られた多糖類の溶出と純
度を示している。多糖類は排除限度(およそ2×106
M.W.)の前後で溶出した。
のカラムで)t=24時間で得られた多糖類の溶出と純
度を示している。多糖類は排除限度(およそ2×106
M.W.)の前後で溶出した。
【0070】1.5.非調節発酵で得られた多糖類の収
率
率
【0071】上述の多糖類はラクトバチルス・ヘルベチ
クスCNCM I−1449単体で、或いはストレプト
コッカス・テルモフィルス(たとえば、S.テルモフィ
ルスYS4)の菌株と共に用いられたこの菌株によっ
て、凝固条件での発酵の間にも生成された。
クスCNCM I−1449単体で、或いはストレプト
コッカス・テルモフィルス(たとえば、S.テルモフィ
ルスYS4)の菌株と共に用いられたこの菌株によっ
て、凝固条件での発酵の間にも生成された。
【0072】この目的のために、生長媒体は発酵に先立
って殺菌のために加熱処理した(115℃、35分)1
0%の再生MSK(脱脂粉乳:100g/lと酵母抽出
物:1g/l)とした。典型的なサンプルの大きさは2
50ml、40℃で培養、媒質に植えた開始培養物の量
は1%であった。この条件で得られた純粋な多糖類の収
率は下記の表2のとおりであった。
って殺菌のために加熱処理した(115℃、35分)1
0%の再生MSK(脱脂粉乳:100g/lと酵母抽出
物:1g/l)とした。典型的なサンプルの大きさは2
50ml、40℃で培養、媒質に植えた開始培養物の量
は1%であった。この条件で得られた純粋な多糖類の収
率は下記の表2のとおりであった。
【0073】
【表2】
【0074】2.ラクトバチルス・ヘルベチクスCNC
M I−1449によって生成されたエキソ多糖類の構
造特性化に用いた方法
M I−1449によって生成されたエキソ多糖類の構
造特性化に用いた方法
【0075】2.1.単糖類の分析
【0076】多糖類(0.1mg)はメタノール化(メ
タノール性0.5M HCl,24時間、80℃)し、
N−リアセチル化された(室温で一晩)。トリメチルシ
リル化したメチルグリコシドをBP1溶融シリカ毛細管
カラム(25m×0.32mm、SGE)を用いて気相
クロマトグラフィー(Varian3400)で分析し
た。溶出はカラムに毎分2℃で120℃から240℃の
温度勾配をかけて実施した。単糖類の絶対形状はトリメ
チルシリル化(N−リアセチル化)(−)−2−ブチル
グリコシドのGLCによって決定した。
タノール性0.5M HCl,24時間、80℃)し、
N−リアセチル化された(室温で一晩)。トリメチルシ
リル化したメチルグリコシドをBP1溶融シリカ毛細管
カラム(25m×0.32mm、SGE)を用いて気相
クロマトグラフィー(Varian3400)で分析し
た。溶出はカラムに毎分2℃で120℃から240℃の
温度勾配をかけて実施した。単糖類の絶対形状はトリメ
チルシリル化(N−リアセチル化)(−)−2−ブチル
グリコシドのGLCによって決定した。
【0077】2.2.メチル化分析
【0078】サンプル(天然多糖類とオリゴ糖類アルジ
トール)は過メチル化し、メチル化生成物はメタノール
分解または酸加水分解(トリフルオロ酢酸4N,4時
間、100℃)にかけ、その後BD4Naで還元した。
トール)は過メチル化し、メチル化生成物はメタノール
分解または酸加水分解(トリフルオロ酢酸4N,4時
間、100℃)にかけ、その後BD4Naで還元した。
【0079】部分的にメチル化しアセチル化(ピリジ
ン.無水酢酸1:1)メチルグリコシドとアルジトール
は70evの電子エネルギーと0.2mAのイオン化電
流を用いてNermag R10−10S質量分析計で
e.i.モードでGLC(BP1カラム)とGLC M
Sで識別した。
ン.無水酢酸1:1)メチルグリコシドとアルジトール
は70evの電子エネルギーと0.2mAのイオン化電
流を用いてNermag R10−10S質量分析計で
e.i.モードでGLC(BP1カラム)とGLC M
Sで識別した。
【0080】2.3.部分酸加水分解
【0081】多糖類(40mg)を4mlの0.5Mト
リフルオロ酢酸内で1時間30分、100℃で加水分解
した。完全な加水分解と低質量のオリゴ糖の獲得はブタ
ノール/水/酢酸2:1:1.5溶剤を用いるシリカゲ
ル60 F254アルミシート(Merck)上の薄膜
クロマトグラフィーとオルシノール−硫酸による検出で
監視した。
リフルオロ酢酸内で1時間30分、100℃で加水分解
した。完全な加水分解と低質量のオリゴ糖の獲得はブタ
ノール/水/酢酸2:1:1.5溶剤を用いるシリカゲ
ル60 F254アルミシート(Merck)上の薄膜
クロマトグラフィーとオルシノール−硫酸による検出で
監視した。
【0082】2.4.H.p.a.e−p.a.d.ク
ロマトグラフィー
ロマトグラフィー
【0083】HW40ピークの分別はDionex B
io−LC4成分勾配モジュール、モデルp.a.d.
2検出器とCarbopac PA−1ペリキュラーア
ニオン交換カラム(250×9mm)から成るHPAE
−PAD Dionex LCシステムで実施した。
io−LC4成分勾配モジュール、モデルp.a.d.
2検出器とCarbopac PA−1ペリキュラーア
ニオン交換カラム(250×9mm)から成るHPAE
−PAD Dionex LCシステムで実施した。
【0084】2つの溶出プログラムを用いた:
【0085】・プログラム1:
【0086】99:1溶離剤A(0.1M NaOH)
−溶離剤B(M CH3COONaを含有する0.1M
NaOH)で0.2分間、ついで65:35溶離剤A
(MCH3COONaを含有する0.1M NaOH)
毎分3mlで60分。
−溶離剤B(M CH3COONaを含有する0.1M
NaOH)で0.2分間、ついで65:35溶離剤A
(MCH3COONaを含有する0.1M NaOH)
毎分3mlで60分。
【0087】・プログラム2:
【0088】98:2溶離剤A−溶離剤B、ついで7
0:30溶離剤A−溶離剤Bで60分。
0:30溶離剤A−溶離剤Bで60分。
【0089】溶出した分画はただちにM酢酸で中和し、
凍結乾燥した。分画は消イオン水を溶離剤として用い
て、Dowex 50X8(H’)樹脂のカラム(6×
1cm)とFractogelのカラム(55×2c
m)で連続的に脱塩した。
凍結乾燥した。分画は消イオン水を溶離剤として用い
て、Dowex 50X8(H’)樹脂のカラム(6×
1cm)とFractogelのカラム(55×2c
m)で連続的に脱塩した。
【0090】2.5.1H−核磁気共鳴分光測定
【0091】1H−NMR測定において、重水素−交換
オリゴ糖は0.5mlの 2H2O(99.96% 原子
2H、Aldrich)内に溶解した。400MHz 1
H−NMR実験は5mm 1H−/13C 混合探子ヘッ
ドを備えた、脈動フーリエ変換モードで運転され、As
pect3000コンピュータ(共同測定センター、リ
ル・フランドル・アルトワ大学)によって制御されるB
ruker AM−400WB分光計で実施した。
オリゴ糖は0.5mlの 2H2O(99.96% 原子
2H、Aldrich)内に溶解した。400MHz 1
H−NMR実験は5mm 1H−/13C 混合探子ヘッ
ドを備えた、脈動フーリエ変換モードで運転され、As
pect3000コンピュータ(共同測定センター、リ
ル・フランドル・アルトワ大学)によって制御されるB
ruker AM−400WB分光計で実施した。
【0092】すべてのスペクトルは探子温度353°K
で得られた。1次元のスペクトルは16K周波数−ドメ
インポイントと時間−ドメインデータポイントについて
3000Hzのスペクトル幅で得られ、最終デジタル解
像度は0.365Hz/ポイントであった。
で得られた。1次元のスペクトルは16K周波数−ドメ
インポイントと時間−ドメインデータポイントについて
3000Hzのスペクトル幅で得られ、最終デジタル解
像度は0.365Hz/ポイントであった。
【0093】100MHz 13C−NMR実験は 1H複
合パルス減結合で標準Bruckerパルスプログラム
Powgateで得られた。スペクトル幅は32K周波
数−ドメインポイントと時間−ドメインデータについて
22.727Hzであり、最終デジタル解像度は1.3
87Hz/ポイントであった;90度パルス(6μs)
と1sのリサイクル遅延を用いた。薬品はアセトンのメ
チル基の信号に対して与えられた( 1Hではδ2.22
5、13Cについてはδ31.55)。
合パルス減結合で標準Bruckerパルスプログラム
Powgateで得られた。スペクトル幅は32K周波
数−ドメインポイントと時間−ドメインデータについて
22.727Hzであり、最終デジタル解像度は1.3
87Hz/ポイントであった;90度パルス(6μs)
と1sのリサイクル遅延を用いた。薬品はアセトンのメ
チル基の信号に対して与えられた( 1Hではδ2.22
5、13Cについてはδ31.55)。
【0094】2D−同一核分子COSY45、単一、二
重、三重中継転位COSYは標準Brukerパルスプ
ログラムライブラリまたはB.Perlyによって与え
られたプログラム(C.E.A.,Saclay)によ
って実施された。すべてのRCT実験について、35m
sの再合焦遅延を選定し、緩和遅延を2sとした。これ
らすべての実験において、スペクトル幅は1840Hz
で、1H90度パルスは10.6μsであった、256
W×2Kのデータマトリクスが得られ、フーリエ変換に
先立って0を代入し、1K×2Kスペクトルデータマト
リクスが得られ、両方の次元について正弦ベル平方関数
を使用した。
重、三重中継転位COSYは標準Brukerパルスプ
ログラムライブラリまたはB.Perlyによって与え
られたプログラム(C.E.A.,Saclay)によ
って実施された。すべてのRCT実験について、35m
sの再合焦遅延を選定し、緩和遅延を2sとした。これ
らすべての実験において、スペクトル幅は1840Hz
で、1H90度パルスは10.6μsであった、256
W×2Kのデータマトリクスが得られ、フーリエ変換に
先立って0を代入し、1K×2Kスペクトルデータマト
リクスが得られ、両方の次元について正弦ベル平方関数
を使用した。
【0095】2D−13C/1H COSY実験は標準Br
ukerパルスプログラムXHCORRDを用いて1H
同一核分子結合を同時に抑圧して実施した。再合焦遅延
は150KHzの平均 1jC.H 結合定数に調節した。1
Hと13C90度パルス幅は10.6と6μsであった。
緩和遅延は0.8sであった。128W×4Kのデータ
マトリクスが得られ、それに0を入れてからフーリエ変
換を実施し、512W×4Kのスペクトルデータマトリ
クスが得られた。13C−サブスペクトルのための対数関
数(LB=1Hz)と1H−スペクトルのための正弦ベ
ル関数はSN比を上げるのに適用した。
ukerパルスプログラムXHCORRDを用いて1H
同一核分子結合を同時に抑圧して実施した。再合焦遅延
は150KHzの平均 1jC.H 結合定数に調節した。1
Hと13C90度パルス幅は10.6と6μsであった。
緩和遅延は0.8sであった。128W×4Kのデータ
マトリクスが得られ、それに0を入れてからフーリエ変
換を実施し、512W×4Kのスペクトルデータマトリ
クスが得られた。13C−サブスペクトルのための対数関
数(LB=1Hz)と1H−スペクトルのための正弦ベ
ル関数はSN比を上げるのに適用した。
【0096】3.ラクトバチルス・ヘルベチクスCNC
M I−1449によって生成されたエキソ多糖類の構
造
M I−1449によって生成されたエキソ多糖類の構
造
【0097】3.1.多糖類の単離と組成分析
【0098】トリメチルシリル化グリコシドと(−)−
2−ブチルグリコシドのGLC.分析はD−ガラクトー
スとD−グルコースがモル比1:1で存在することによ
って確認された。
2−ブチルグリコシドのGLC.分析はD−ガラクトー
スとD−グルコースがモル比1:1で存在することによ
って確認された。
【0099】NMR分光測定
【0100】D2O、80℃で記録された天然多糖類の
400MHz 1H n.m.r.スペクトルは1:2:2:1
の比率でアノマー陽子に特徴的な5.201、5.15
8、4.568と4.350ppmで4つの信号を示し
6価の多糖類の反復単位を示唆している(表3)。
400MHz 1H n.m.r.スペクトルは1:2:2:1
の比率でアノマー陽子に特徴的な5.201、5.15
8、4.568と4.350ppmで4つの信号を示し
6価の多糖類の反復単位を示唆している(表3)。
【0101】これは6つのアノマー炭素信号(108.
95、103.74、103.8、102.52、10
0.26と99.87ppm)を示す100MHz 13
Cスペクトル(表3)によって確認された。
95、103.74、103.8、102.52、10
0.26と99.87ppm)を示す100MHz 13
Cスペクトル(表3)によって確認された。
【0102】1Hスピンシステムによれば、2つのセタ
ップス(setaps)中継COSYスペクトル上に描かれた個
々の糖単位上で、単糖類はそれぞれβ−Galf(残留
物A)、β−D−Glcp(残留物BとE)、α−D−
Glcp(残留物C),α−D−Galp(残留物D)お
よびβ−D−Galp(残留物F)として識別されるだ
ろう。
ップス(setaps)中継COSYスペクトル上に描かれた個
々の糖単位上で、単糖類はそれぞれβ−Galf(残留
物A)、β−D−Glcp(残留物BとE)、α−D−
Glcp(残留物C),α−D−Galp(残留物D)お
よびβ−D−Galp(残留物F)として識別されるだ
ろう。
【0103】部分酸加水分解(後述)によって得られたオ
リゴ糖アルジトールIV BとIIAの中継COSYス
ペクトルの検査によってβ−D−Galpが明らかに識
別された。多糖類のCOSYスペクトルによって示され
たようにβ−D−Galp F残留物のH−2とH−3は
強い結合定数を示し、その多数のパターンを分析できな
い。
リゴ糖アルジトールIV BとIIAの中継COSYス
ペクトルの検査によってβ−D−Galpが明らかに識
別された。多糖類のCOSYスペクトルによって示され
たようにβ−D−Galp F残留物のH−2とH−3は
強い結合定数を示し、その多数のパターンを分析できな
い。
【0104】1H−13Cヘテロ核COSYスペクトル内
に認められた相関のピークは陽子共鳴の1つ(5.15
8ppm)が108.95ppmでデシールドされた(d
eshielded)炭素共鳴に結びつけられることを示し、その
ことはGalf A残留物についてβ−アノマー配置を証
明している。
に認められた相関のピークは陽子共鳴の1つ(5.15
8ppm)が108.95ppmでデシールドされた(d
eshielded)炭素共鳴に結びつけられることを示し、その
ことはGalf A残留物についてβ−アノマー配置を証
明している。
【0105】大半の陽子共鳴は、β−D−Galp F残
留物のH−5とH−6スピンシステムを除いて同一核分
子COSYスペクトルに割り当てることができる。炭素
共鳴も直接相関によってその付着陽子に割り当てられ
る。
留物のH−5とH−6スピンシステムを除いて同一核分
子COSYスペクトルに割り当てることができる。炭素
共鳴も直接相関によってその付着陽子に割り当てられ
る。
【0106】73.52と61.12ppmの2つの残
った非帰属炭素はβ−D−GalpF残留物のC−5お
よびC−6原子共鳴に対応すると演繹された。
った非帰属炭素はβ−D−GalpF残留物のC−5お
よびC−6原子共鳴に対応すると演繹された。
【0107】要約すると、これらすべての帰属はそれら
のダウンフィールドへ変位した炭素共鳴にしたがって、
それぞれの糖単位の置換パターンを明確に提供する:
のダウンフィールドへ変位した炭素共鳴にしたがって、
それぞれの糖単位の置換パターンを明確に提供する:
【0108】β−D−Galf AについてはC−3とC
−5、α−D−Glcp CについてはC−3、α−D−
Galp DについてはC−3、β−D−Glcp Bにつ
いてはC−3、またβ−D−Glcp EについてはC−
4。
−5、α−D−Glcp CについてはC−3、α−D−
Galp DについてはC−3、β−D−Glcp Bにつ
いてはC−3、またβ−D−Glcp EについてはC−
4。
【0109】ダウンフィールド変位 13C共鳴を持たな
い6番目の糖単位β−D−GalpFは、従って、非還
元位置で発生する。
い6番目の糖単位β−D−GalpFは、従って、非還
元位置で発生する。
【0110】3.2.メチル化分析
【0111】NMRの結果は部分的にメチル化された酢
酸アルジトールとペルメチル化多糖類から得られたメチ
ルグリコシド(表4)のGLC MS分析によって裏付
けされ、確認された。実際それは末端ガラクトシル残留
物の存在を示している。3−連結グルコシル残留物、4
−連結グルコシル残留物、3−連結ガラクトシル残留物
と3,5連結ガラクトシル残留物の比はそれぞれ1:
2:1:1:1。
酸アルジトールとペルメチル化多糖類から得られたメチ
ルグリコシド(表4)のGLC MS分析によって裏付
けされ、確認された。実際それは末端ガラクトシル残留
物の存在を示している。3−連結グルコシル残留物、4
−連結グルコシル残留物、3−連結ガラクトシル残留物
と3,5連結ガラクトシル残留物の比はそれぞれ1:
2:1:1:1。
【0112】3.3.部分酸加水分解
【0113】分岐末端ガラクトシル残留物の位置を明ら
かにするために、オリゴ糖が天然多糖類の部分酸加水分
解によって生成された。加水分解物からFractog
elHW40 F上でのゲル濾過によって6つの主要分
画が分離された(図2)。
かにするために、オリゴ糖が天然多糖類の部分酸加水分
解によって生成された。加水分解物からFractog
elHW40 F上でのゲル濾過によって6つの主要分
画が分離された(図2)。
【0114】そのうち2つ(分画IIとIV)がHPA
E−PADクロマトグラフィーにかけられ(図3、図4
と表5)、II A、IV AとIV Bで示した副分画
の構造はNMRとメチル化分析の両方によって調査され
た。
E−PADクロマトグラフィーにかけられ(図3、図4
と表5)、II A、IV AとIV Bで示した副分画
の構造はNMRとメチル化分析の両方によって調査され
た。
【0115】オリゴ糖・アルジトールIV Aは2段階
中継COSYスペクトルに描かれた1Hスピンシステム
によって示されたごとく2つのGlc残留物と1つのヘ
キシトール残留物を含んでいる。2つのGlc残留物
は,2,3,4,6−テトラ−O−メチルグルシトール
を提供したメチル化分析によって確認されたごとく、非
還元末端位置で発生する。最後の誘導体はフラン糖のC
−3およびC−5置換特性に対応するパターンを示して
いる。以前のn.m.r.データから、このヘキシトールはβ
−D−Galf A単位に由来している。これらの所見か
らつぎの構造が導かれる。
中継COSYスペクトルに描かれた1Hスピンシステム
によって示されたごとく2つのGlc残留物と1つのヘ
キシトール残留物を含んでいる。2つのGlc残留物
は,2,3,4,6−テトラ−O−メチルグルシトール
を提供したメチル化分析によって確認されたごとく、非
還元末端位置で発生する。最後の誘導体はフラン糖のC
−3およびC−5置換特性に対応するパターンを示して
いる。以前のn.m.r.データから、このヘキシトールはβ
−D−Galf A単位に由来している。これらの所見か
らつぎの構造が導かれる。
【0116】
【化4】
【0117】ここで注意するのは、ガラクチトールの1
Hスピンシステムは対称性を示すので、化合物の1H N
MR割り当ては化合物のIV B構造が解明された後に
達成されることである。
Hスピンシステムは対称性を示すので、化合物の1H N
MR割り当ては化合物のIV B構造が解明された後に
達成されることである。
【0118】オリゴ糖−アルジトールIV Bは、隣接
結合定数のパターンによって明らかに示されるごとくβ
−D−Galp とβ−D−Glcp を1:1の比率で含
んでいる。メチル化分析(表6)は2,3,4,6−テ
トラ−O−メチルガラクトース、2,3,6−トリ−O
−メチルグルコースおよび1,2,4,5,6−ペンタ
−O−メチルガラクチトールの存在を示した。従って、
オリゴ糖アルジトール2は次の構造を持っている:
結合定数のパターンによって明らかに示されるごとくβ
−D−Galp とβ−D−Glcp を1:1の比率で含
んでいる。メチル化分析(表6)は2,3,4,6−テ
トラ−O−メチルガラクトース、2,3,6−トリ−O
−メチルグルコースおよび1,2,4,5,6−ペンタ
−O−メチルガラクチトールの存在を示した。従って、
オリゴ糖アルジトール2は次の構造を持っている:
【0119】
【化5】
【0120】Gal−olのC−3にβ−D−Glcp
が付着しても、化合物IV AからのNMRデータに比
較して、ヘキシトールのH−1およびH−2共鳴の化学
変位を劇的に変えるとは思われない。従って、3.77
と4.056ppmの2つの信号はGal−olのH−
1とH−2に割り当てられ、他方H−5とH−6原子共
鳴は化合物IV Aと比較して4.149と3.68p
pmにアップフィールド変位している(表5)。
が付着しても、化合物IV AからのNMRデータに比
較して、ヘキシトールのH−1およびH−2共鳴の化学
変位を劇的に変えるとは思われない。従って、3.77
と4.056ppmの2つの信号はGal−olのH−
1とH−2に割り当てられ、他方H−5とH−6原子共
鳴は化合物IV Aと比較して4.149と3.68p
pmにアップフィールド変位している(表5)。
【0121】IV AとIV BのNMRスペクトルに
おいて、Gal−olのH−5共鳴は分子の原子共鳴の
中でもっともアップフィールド変位し、この所見は他者
によって提議されている割り当てに一致している。
おいて、Gal−olのH−5共鳴は分子の原子共鳴の
中でもっともアップフィールド変位し、この所見は他者
によって提議されている割り当てに一致している。
【0122】オリゴ糖アルジトールII A(表4)は
2 β−D−Glcp、1 β−D−Galp と1 α−D
−Glcp 残留物を含んでいるが、C−3およびC−5
置換Gal−olの存在は化合物1内のGal−olの
H−1からH−6への化学変位の類似性によって容易に
演繹できる。2つのβ−D−Glcp 単位と非還元性末
端β−D−Galp はすでにオリゴ糖アルジトールIV
AおよびIV B内に位置するので、またβ−D−Gl
cp B残留物がC−3置換体であるという事実から、オ
リゴ糖アルジトールII Aは次の構造をもっている。
2 β−D−Glcp、1 β−D−Galp と1 α−D
−Glcp 残留物を含んでいるが、C−3およびC−5
置換Gal−olの存在は化合物1内のGal−olの
H−1からH−6への化学変位の類似性によって容易に
演繹できる。2つのβ−D−Glcp 単位と非還元性末
端β−D−Galp はすでにオリゴ糖アルジトールIV
AおよびIV B内に位置するので、またβ−D−Gl
cp B残留物がC−3置換体であるという事実から、オ
リゴ糖アルジトールII Aは次の構造をもっている。
【0123】
【化6】
【0124】6番目の糖単位、α−D−Galp は部分
加水分解生成物の中には認められなかった。それにもか
かわらず、α−D−Glcp 単位CがC−3置換体であ
り、多糖類内に存在するβ−D−Galp だけが非還元
位置を占める(NMRデータから)という事実から、α
−D−Galp がこのα−D−Glcp 残留物に付着す
るという結論が導かれる。
加水分解生成物の中には認められなかった。それにもか
かわらず、α−D−Glcp 単位CがC−3置換体であ
り、多糖類内に存在するβ−D−Galp だけが非還元
位置を占める(NMRデータから)という事実から、α
−D−Galp がこのα−D−Glcp 残留物に付着す
るという結論が導かれる。
【0125】従って、多糖類の構造単位は下記のように
定義された:
定義された:
【0126】
【化7】
【0127】表3は、80℃でのD2O内からの多糖類
のNMR化学変位(内部標準:アセトン)を示す。
のNMR化学変位(内部標準:アセトン)を示す。
【0128】
【表3】
【0129】表4は、天然多糖類のメチル化分析を示
す。
す。
【0130】
【表4】
【0131】表5は、353゜KでD2O内のラクトバチ
ルス・ヘルベチクスから多糖類の酸部分加水分解によっ
て得られたオリゴ糖アルジトールのNMR化学変位を示
す。
ルス・ヘルベチクスから多糖類の酸部分加水分解によっ
て得られたオリゴ糖アルジトールのNMR化学変位を示
す。
【0132】
【表5】
【0133】表6は、天然多糖類の部分酸加水分解で得
られたオリゴ糖アルジトール(部分メチル化およびアセ
チル化メチルグリコシド)IV A、IV BとII A
のメチル化分析を示す。
られたオリゴ糖アルジトール(部分メチル化およびアセ
チル化メチルグリコシド)IV A、IV BとII A
のメチル化分析を示す。
【0134】
【表6】 (*):揮発性が高いために値は期待値よりも低い。
【0135】本発明による多糖類および/または微生物
を含む組成物は下記に例を挙げるがこれらに限定されな
い。
を含む組成物は下記に例を挙げるがこれらに限定されな
い。
【0136】
【実施例1】:凝固酸敗乳
【0137】本発明によるL.ヘルベチクス菌株と凝固
したヨーグルトの生産に伝統的に使用されている2つの
S.テルモフィラス菌株を含む凝固した酸敗乳は次の方
法で得られた。3.7%の脂肪分を含む全乳に2.5%
の脱脂粉乳を加えた。40リットルのこの乳を92℃で
6分間低温殺菌し、75℃、150バールで均質化(2
レベル)し、42℃前後で冷却した。凍結乾燥したS.
テルモフィラスCNCM I−1422、S.テルモフ
ィラスCNCM I−1424とL.ヘルベチクスCN
CM I−1449の菌株を殺菌MSK媒質(市販の酵
母抽出物を0.1%含有する、10%で戻した脱脂粉
乳)内でいくつかの連続する培養液で再活性化した。微
生物はブダペスト条約に従ってストレプトコッカス菌株
は1994年5月18日に、ラクトバチルス菌株は19
94年7月27日に国立微生物培養保管所(CNC
M)、パスツール研究所、28 rue du Doc
teur Roux, 75724 PARIS CE
DEX 15, FRANCE に寄託された。殺菌し
た乳はそれぞれS.テルモフィラス菌株の第3の培養菌
1%と媒質凝固段階で取られたL.ヘルベチクス菌株の
第2の培養菌2%を植えられた。乳は42℃、pHは
4.65前後で保温し、ついで4℃で冷却した。
したヨーグルトの生産に伝統的に使用されている2つの
S.テルモフィラス菌株を含む凝固した酸敗乳は次の方
法で得られた。3.7%の脂肪分を含む全乳に2.5%
の脱脂粉乳を加えた。40リットルのこの乳を92℃で
6分間低温殺菌し、75℃、150バールで均質化(2
レベル)し、42℃前後で冷却した。凍結乾燥したS.
テルモフィラスCNCM I−1422、S.テルモフ
ィラスCNCM I−1424とL.ヘルベチクスCN
CM I−1449の菌株を殺菌MSK媒質(市販の酵
母抽出物を0.1%含有する、10%で戻した脱脂粉
乳)内でいくつかの連続する培養液で再活性化した。微
生物はブダペスト条約に従ってストレプトコッカス菌株
は1994年5月18日に、ラクトバチルス菌株は19
94年7月27日に国立微生物培養保管所(CNC
M)、パスツール研究所、28 rue du Doc
teur Roux, 75724 PARIS CE
DEX 15, FRANCE に寄託された。殺菌し
た乳はそれぞれS.テルモフィラス菌株の第3の培養菌
1%と媒質凝固段階で取られたL.ヘルベチクス菌株の
第2の培養菌2%を植えられた。乳は42℃、pHは
4.65前後で保温し、ついで4℃で冷却した。
【0138】
【実施例2】:酸敗乳清
【0139】本発明によるL.ヘルベチクス菌株とヨー
グルトの生産に伝統的に使用されている2つのS.テル
モフィラス菌株を含む乳清は次の方法で得られた。甘い
乳漿(lactoserum)粉を水中で12.5%で戻した。40
リットルのこの乳清を92℃で6分間低温殺菌し、75
℃、150バールで均質化(2レベル)し、42℃前後
で冷却した。凍結乾燥したS.テルモフィラスCNCM
I−1422、S.テルモフィラスCNCM I−14
24とL.ヘルベチクスCNCM I−1449の菌株
を殺菌MSK媒質(市販の酵母抽出物を0.1%含有す
る、10%で戻した脱脂粉乳)内でいくつかの連続する
培養液で再活性化した。微生物はブダペスト条約に従っ
てストレプトコッカス菌株は1994年5月18日に、
ラクトバチルス菌株は1994年7月27日に国立微生
物培養保管所(CNCM)、パスツール研究所、28
rue du Docteur Roux, 7572
4 PARIS CEDEX 15, FRANCE
に寄託された。殺菌した乳はそれぞれのS.テルモフィ
ラス菌株の第3の培養菌1%と媒質凝固段階で取られた
L.ヘルベチクス菌株の第2の培養菌2%を植えられ
た。乳清は42℃、pHは4.65前後で保温し、つい
で4℃で冷却した。
グルトの生産に伝統的に使用されている2つのS.テル
モフィラス菌株を含む乳清は次の方法で得られた。甘い
乳漿(lactoserum)粉を水中で12.5%で戻した。40
リットルのこの乳清を92℃で6分間低温殺菌し、75
℃、150バールで均質化(2レベル)し、42℃前後
で冷却した。凍結乾燥したS.テルモフィラスCNCM
I−1422、S.テルモフィラスCNCM I−14
24とL.ヘルベチクスCNCM I−1449の菌株
を殺菌MSK媒質(市販の酵母抽出物を0.1%含有す
る、10%で戻した脱脂粉乳)内でいくつかの連続する
培養液で再活性化した。微生物はブダペスト条約に従っ
てストレプトコッカス菌株は1994年5月18日に、
ラクトバチルス菌株は1994年7月27日に国立微生
物培養保管所(CNCM)、パスツール研究所、28
rue du Docteur Roux, 7572
4 PARIS CEDEX 15, FRANCE
に寄託された。殺菌した乳はそれぞれのS.テルモフィ
ラス菌株の第3の培養菌1%と媒質凝固段階で取られた
L.ヘルベチクス菌株の第2の培養菌2%を植えられ
た。乳清は42℃、pHは4.65前後で保温し、つい
で4℃で冷却した。
【0140】
【実施例3】:攪拌酸敗乳
【0141】本発明によるL.ヘルベチクスCNCM
I−1449菌株と攪拌ヨーグルトの生産に伝統的に使
用されている2つの市販のS.テルモフィラス菌株を含
む撹拌した酸敗乳は次の方法で得られた。乳は、2.5
%の脱脂粉乳を添加して、3.7%の脂肪を含む全乳か
ら得られた。40リットルのこの乳を105℃で2分間
低温殺菌し、75℃、300バールで均質化(1レベ
ル)し、43℃前後で冷却した。凍結乾燥したS.テル
モフィラスCNCM I−1421、S.テルモフィラ
スCNCM I−1423とL.ヘルベチクスCNCM
I−1449の菌株を殺菌MSK媒質内でいくつかの連
続する培養液で再活性化した。微生物はブダペスト条約
に従ってストレプトコッカス菌株は1994年5月18
日に、ラクトバチルス菌株は1994年7月27日に国
立微生物培養保管所(CNCM)、パスツール研究所、
28 rue du Docteur Roux, 7
5724 PARIS CEDEX 15, FRAN
CE に寄託された。殺菌した乳はそれぞれS.テルモ
フィラス菌株の第3の培養菌1%と媒質凝固段階で取ら
れたL.ヘルベチクス菌株の第3の培養菌2%を植えら
れた。乳は43℃、pHは4.65前後で保温し、つい
で撹拌している間4℃で冷却した。次の表7は得られた
製品の特性を表している。
I−1449菌株と攪拌ヨーグルトの生産に伝統的に使
用されている2つの市販のS.テルモフィラス菌株を含
む撹拌した酸敗乳は次の方法で得られた。乳は、2.5
%の脱脂粉乳を添加して、3.7%の脂肪を含む全乳か
ら得られた。40リットルのこの乳を105℃で2分間
低温殺菌し、75℃、300バールで均質化(1レベ
ル)し、43℃前後で冷却した。凍結乾燥したS.テル
モフィラスCNCM I−1421、S.テルモフィラ
スCNCM I−1423とL.ヘルベチクスCNCM
I−1449の菌株を殺菌MSK媒質内でいくつかの連
続する培養液で再活性化した。微生物はブダペスト条約
に従ってストレプトコッカス菌株は1994年5月18
日に、ラクトバチルス菌株は1994年7月27日に国
立微生物培養保管所(CNCM)、パスツール研究所、
28 rue du Docteur Roux, 7
5724 PARIS CEDEX 15, FRAN
CE に寄託された。殺菌した乳はそれぞれS.テルモ
フィラス菌株の第3の培養菌1%と媒質凝固段階で取ら
れたL.ヘルベチクス菌株の第3の培養菌2%を植えら
れた。乳は43℃、pHは4.65前後で保温し、つい
で撹拌している間4℃で冷却した。次の表7は得られた
製品の特性を表している。
【0142】
【表7】
【0143】
【実施例4】:口腔衛生のための化粧品組成
【0144】
【表8】
【0145】
【実施例5】:皮膚衛生のための化粧品組成
【0146】
【表9】
【0147】
【実施例6】:下痢止め用途の薬剤組成物
【0148】薬剤組成物はゼラチンと水で作られ、本発
明によるエキソ多糖類を5から50mg含むカプセルの
形で得られた。代案として、上記実施例1、2と3に記
載の酸化した培養乳から、これらの発酵乳及び乳清を凍
結乾燥して、粉末錠剤配合を直接得ることができる。
明によるエキソ多糖類を5から50mg含むカプセルの
形で得られた。代案として、上記実施例1、2と3に記
載の酸化した培養乳から、これらの発酵乳及び乳清を凍
結乾燥して、粉末錠剤配合を直接得ることができる。
【0149】
【0150】
【表10】
【0151】
【表11】
【0152】
【表12】
【0153】
【表13】
【図1】本発明による多糖類のクロマトグラフィー(F
PLC)分析を示している。
PLC)分析を示している。
【図2】多糖類の加水分解物からゲル濾過で分離した6
つの主要な分画を示している。
つの主要な分画を示している。
【図3】分画IIのクロマトグラフィー(HPAE−P
AD)分析を示している。
AD)分析を示している。
【図4】分画IVのクロマトグラフィー(HPAE−P
AD)分析を示している。
AD)分析を示している。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 A61K 7/00 A61K 7/00 W 7/16 7/16 9/08 9/08 E 9/14 9/20 B 9/20 9/48 C 9/48 F 31/715 ACR 31/715 ACR 8828−4B C12N 1/20 A C12N 1/20 C12P 19/04 C C12P 19/04 A61K 9/14 L //(C12N 1/20 C12R 1:225) (C12P 19/04 C12R 1:225) (72)発明者 ルモワンヌ ジェローム フランス共和国,エフ−59000 リール, リュ ダラス 200 (72)発明者 ニセール ジョン−リシャール スイス,セーアッシュ−1073 サヴィニ ー,ソンチエール ドゥ クータレ 6
Claims (10)
- 【請求項1】 置換可能なラクトース単位だけから成る
反復側鎖を有する主鎖を含むことを特徴とする天然の可
溶性分岐多糖類。 - 【請求項2】 下記の化学式に対応する、請求項1に記
載の分岐多糖類。 【化1】 ここで n>1、 Gal=ガラクトース、 Glc=グルコース、 R1=水素またはGalNAcβ1(N−アセチルガラ
クトサミン) R2=水素、NeuNAcα2(N−アセチルノイラミ
ン酸)またはHSO3 R3=水素またはFucα1(フコース) - 【請求項3】 請求項1または2に記載の分岐多糖類を
生成する微生物。 - 【請求項4】 ラクトバチルス・ヘルベチクス(Lactoba
cillus helveticus)の菌株、好ましくはラクトバチルス
・ヘルベチクスCNCM I−1449の菌株であるこ
とを特徴とする、請求項3に記載の微生物。 - 【請求項5】 前記請求項1から4のいずれかに記載の
分岐多糖類および/または微生物を含む食品組成物。 - 【請求項6】 凝固または攪拌した酸敗乳または乳清か
ら成る群から選ばれることを特徴とする、請求項5に記
載の食品組成物。 - 【請求項7】 前記請求項1から4のいずれかに記載の
分岐多糖類および/または微生物を含む化粧品組成物。 - 【請求項8】 請求項7に記載の化粧品組成物におい
て、口腔洗浄液、練り歯磨き、歯科ゲル、チューインガ
ム、錠剤、クリーム、軟膏、香膏から成る群から選ばれ
ることを特徴とする化粧品組成物。 - 【請求項9】 前記請求項1から4のいずれかに記載の
分岐多糖類および/または微生物を含む薬剤組成物。 - 【請求項10】 請求項9に記載の薬剤組成物におい
て、カプセル、シロップ、粉末、錠剤から成る群から選
ばれることを特徴とする、薬剤組成物。
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JPH0539304A (ja) * | 1991-08-05 | 1993-02-19 | Glyco Kyodo Nyugyo Kk | 可溶性食物繊維及びその製造方法 |
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