JP6420270B2 - 遺伝子改変生物における導入遺伝子の切除 - Google Patents

Description

優先権の主張
本出願は、「Excision of Transgenes in Genetically Modified Organisms.」という
表題の２０１０年１月２２日に出願された米国仮特許出願第６１／２９７，６２８号の利
益を主張するものである。

本発明は概して、トランスジェニック植物を作出するための組成物および方法に関する
。特定の実施形態では、トランスジェニック植物は、１つまたは複数の対象の導入遺伝子
（transgene of interest）を含む。特定の実施形態では、（１つまたは複数の）導入遺
伝子の切除は、花粉および／または種子を対象とし、本発明のトランスジェニック植物に
よって作出される花粉および／または種子は（１つまたは複数の）導入遺伝子を実質的に
含まない。いくつかの実施形態では、本発明のトランスジェニック植物は、例えばトラン
スジェニック植物における対象の（１つまたは複数の）導入遺伝子のバイオコンファイン
メントを得る際に有用である。他の実施形態では、導入遺伝子の切除は、選択マーカーな
どの特定発現カセットを対象とし、その発現カセットのみがトランスジェニック植物およ
び／またはトランスジェニック植物の子孫から除去される。

多くの植物は、望ましい形質を導入するため、例えば、栄養価の質の改善、収量の増大
、病虫害抵抗性または疾患抵抗性の伝達、干ばつ耐性およびストレス耐性の増大、色素沈
着および成長などの園芸的質の改善、および／または除草剤抵抗性の伝達によって農業的
価値を改善するため他種由来の遺伝子で遺伝的に形質転換して、植物からの産業上有用な
化合物および／または物質の生産を可能にし、および／または医薬品の生産を可能にする
。植物細胞へのクローニング遺伝子の導入および安定した多産のトランスジェニック植物
の回収を使用して、このような植物の変形を作製することができ、（例えば、作物改良の
ために）遺伝子操作によって植物に取り込まれる対象の望ましい形質または性質を可能に
している。これらの方法では、外来ＤＮＡは典型的には真核植物細胞の核またはプラスチ
ドＤＮＡ中に導入され、次に細胞のＤＮＡ中に組み込まれた外来ＤＮＡを含有する細胞を
単離して、安定的に形質転換された植物細胞を作出する。

トランスジェニック植物の使用に関して生じる１つの欠点は、野生種および非形質転換
種に導入遺伝子が漏出する（escape）可能性である。これらの形質は、隣接集団への導入
遺伝子の異系交配、持続、および移入のリスクを高める可能性がある。遺伝子改変（ＧＭ
）作物からの導入遺伝子の漏出は、通常は遺伝子流動（gene flow）を介して、主に異花
受粉によって起こるが（Lu (2003) Eviron. Biosafety Res. 2:3-8）、遺伝子移入（intr
ogression）を介して起こる可能性もある。Stewart Jr.et al.(2003) Nat. Reviews Gen.
4:806-17。作物から作物への遺伝子流動は非ＧＭ品種の汚染をもたらし、所与の農業シ
ステムにおけるトランスジェニックおよび非トランスジェニック作物品種の戦略展開に影
響を与える。トランスジェニック物質による非ＧＭ作物の相当な汚染は、多くの国による
トランスジェニック産物の輸入に関する法的規制のため、国際貿易において難点を示す。
作物から作物への遺伝子流動は、導入遺伝子が（例えば、除草剤、病虫害、および／また
は疾患に対する）多剤耐性を与える場合、おそらく雑集団になり得るハイブリッドで導入
遺伝子のスタッキングを引き起こす可能性がある。さらに、作物から作物への遺伝子流動
は、雑集団または関連野生種への導入遺伝子の漏出をもたらし、導入遺伝子が有性生殖お
よび／または栄養繁殖によって雑／野生集団中で持続および確立する場合、重大な雑問題
および他の生態学的リスクを提起し得る。漏出した遺伝子が雑／野生種の生態学的適合性
を高めるときに、これは特に懸念される。作物導入遺伝子の遺伝子移入は、数回の連続し
たハイブリッド生成を含むステップで行う。遺伝子移入は、導入遺伝子がレシピエント種
の遺伝的背景で固定されるまでに多くの年数および世代を要し得る動的プロセスであり、
したがって検出およびモニタリングの難点を示す。しかしながら、淘汰が強いおよび／ま
たは集団の大きさが小さい場合、移入遺伝子の固定は急速に起こり得る。

遺伝子改変植物内の特異的発現カセット、特に選択マーカー発現カセットの封じ込めは
、とらえ所のない目標である。選択マーカー遺伝子は通常抗生物質抵抗性または除草剤耐
性遺伝子であるが、レポーター遺伝子を含み得る（すなわち、β−グルクロニダーゼ（Gr
aham et al. (1989) Plant Cell Tiss. Org. 20(1):35-39）。植物のゲノム中に同時に導
入される選択マーカーは選択的利点を与え、安定的に形質転換されたトランスジェニック
植物の同定を可能にする。植物の形質転換に使用することができる機能的選択マーカー遺
伝子の利用能は、幾分限られている。トランスジェニック作物植物に関する公開済みの科
学文献の総説は、最も広く使用されている抗生物質抵抗性の選択剤はカナマイシン（ネオ
マイシンホスホトランスフェラーゼＩＩ型遺伝子によってコードされる（Bevan et al. (
1983) Nature 304:184-187））またはヒグロマイシン（ヒグロマイシンホスホトランスフ
ェラーゼ遺伝子によってコードされる（Waldron et al., Plant Mol. Biol. 5:103-108）
）であり、除草剤耐性はホスフィノトリシン抵抗性（ｐａｔ（Wohlleben et al.(1988)Ge
ne70:25-37）またはｂａｒ遺伝子（DeBlock et al. (1987), EMBO J. 6(9):2513-2518）
によってコードされる）であることを明らかにしている。Sundar et al. (2008) J. Plan
t Physiol. 165:1698-1716を参照されたい。選択マーカー遺伝子の限られた数およびこれ
らの形質の部分集合の一般的利用を考慮すると、トランスジェニック植物内の選択マーカ
ーの切除および再利用を可能にする解決策は、後の数ラウンドの同じ植物への遺伝子導入
または遺伝子スタッキングにおける追加選択マーカーの必要性を除去し得る。さらに、選
択マーカーを切除する能力は、マーカーの発現によって引き起こされる植物トランスクリ
プトームに対する偶然の変化を克服し得る（Abdeen et al. (2009) Plant Biotechnol. J
. 7(3):211-218）。

ＧＭ作物と他種および品種の間の遺伝子流動を予防または最小化する現在の戦略には、
（１）トランスジェニック作物の物理的単離、（２）葉緑体導入遺伝子操作、（３）移動
遺伝子と導入遺伝子の同時操作、（４）遺伝子利用制限技術（ＧＵＲＴ）、（５）ＣＲＥ
／ｌｏｘＰおよびＦＬＰ／ＦＲＴリコンビナーゼ仲介遺伝子欠失、例えば、LeeおよびNat
esan (2006) TRENDS Biotech. 24(3):109-14、Lu (2003)、上記、およびLuo et al. (200
7), Plant Biotech. J. 5:263-74を参照、および（６）メガヌクレアーゼ仲介遺伝子欠失
、例えば、米国特許出願第１１／９１０，５１５号、および米国特許出願第１２／６００
，９０２号を参照がある。

ＣＲＥ、ＦＬＰ、およびＲリコンビナーゼは、植物からの望ましくない遺伝物質の切除
に利用されている。HareおよびChua (2002) Nat. Biotech. 20:575-80. Luo et al. (200
7)、花粉および種子特異的「ＧＭ−遺伝子−欠失剤」系を報告し、そこでは、ＣＲＥまた
はＦＬＰリコンビナーゼによる導入遺伝子の切除に関する認識部位としてのｌｏｘＰ-Ｆ
ＲＴ融合配列の使用が、トランスジェニックタバコ植物の花粉から、または花粉と種子の
両方からの導入遺伝子の欠失をもたらした。植物において機能することが示されている全
てのこれらの部位特異的リコンビナーゼ系は、インテグラーゼファミリーのメンバーであ
る。これらの系は、他のリコンビナーゼが補助タンパク質、および組換え効率に関する形
態的制約を与える可能性があるより複雑な認識部位を必要とし得るという事実が少なくと
も一部分が原因で、使用に選択されている。同文献。これらの系にはいくつかの重大な欠
点がある。インテグラーゼ型リコンビナーゼは特異的標的配列から大きく分岐した可能性
がある「偽配列」も認識し、したがって望ましくない非特異的ＤＮＡ欠失をもたらす可能
性があり、標的配列の切除は、リコンビナーゼへの後の曝露の際の染色体再配置、または
活性遺伝子サイレンシング機構の部位であり得る残りの認識配列を残す。同文献。さらに
、これらの系はさらに制約を受ける。機能的リコンビナーゼが親植物の１つに存在し発現
しなければならず、その存在は花粉および／または種子内の追加的欠失戦略を必要とする
からである。これらの制約にもかかわらず、ＣＲＥ／ｌｏｘＰ系は、植物における遺伝子
欠失の最適化に最も適した戦略として認められている。同文献。

注文設計のジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）は、ＤＮＡ中の標的部位特異的二
本鎖破壊への送達、および切断末端の後の組換えのために設計されたタンパク質である。
ＺＦＮは、ＦｏｋＩ制限エンドヌクレアーゼの非特異的切断ドメインと、ジンクフィンガ
ーＤＮＡ結合タンパク質を組み合わせる。例えば、Huang et al. (1996) J. Protein Che
m. 15:481-9、Kim et al. (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:3616-20、Kim et al.
(1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:1156-60、Kim et al. (1994) Proc Natl. Acad
. Sci. USA 91:883-7、Kim et al. (1997b) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:12875-9、K
im et al. (1997c) Gene 203:43-9、Kim et al. (1998) Biol. Chem. 379:489-95、Nahon
およびRaveh (1998) Nucleic Acids Res. 26:1233-9、Smith et al. (1999) Nucleic Aci
ds Res. 27:674-81を参照されたい。個々のジンクフィンガーモチーフは、広範囲のＤＮ
Ａ部位を標的としそれらと結合するように設計することができる。Ｃｙｓ_２Ｈｉｓ_２ジン
クフィンガータンパク質は、二重らせんの主溝にα−らせんを挿入することによりＤＮＡ
と結合する。ジンクフィンガーによるＤＮＡの認識はモジュラーであり、それぞれのフィ
ンガーは標的中の主に３個の連続塩基対、およびタンパク質媒介認識中に数個の重要残基
と接触する。ＦｏｋＩ制限エンドヌクレアーゼは、ＤＮＡを切断し、二本鎖破壊を誘導す
るために、ヌクレアーゼドメインを介して二量体化しなければならないことが示されてい
る。同様にＺＦＮも、ＤＮＡを切断するためにヌクレアーゼドメインの二量体化を必要と
する。Mani et al. (2005) Biochem. Biophys. Res. Commun. 334:1191-7、Smith et al.
(2000) Nucleic Acids Res. 28:3361-9。ＺＦＮの二量体化は、２つの隣接し反対を向く
結合部位によって助長される。同文献。さらに、ジンクフィンガーヌクレアーゼによって
引き起こされる二本鎖破壊は、非相同性末端結合（ＮＨＥＪ）または相同性指向型修復（
homology directed repair）（ＨＤＲ）のいずれかを介した植物ＤＮＡ修復機構によって
解明され、これによって残りの認識配列を含まない植物をもたらす。

［１］植物中のＤＮＡの領域を欠失させるための方法であって、
上記ＤＮＡの領域を含むゲノムＤＮＡを含有する生育能力のある植物を提供する工程、
および
認識配列において上記ゲノムＤＮＡを切断するように操作されたジンクフィンガーヌク
レアーゼを、上記ゲノムＤＮＡを含有する生育能力のある植物において導入する、または
発現させる工程
を含み、認識配列における上記ゲノムＤＮＡの切断および上記ゲノムＤＮＡの切除をもた
らし、上記ＤＮＡの領域が上記ゲノムＤＮＡに存在しない方法。
［２］上記［１］に記載の方法によって作出されるトランスジェニック植物。
［３］植物中のＤＮＡの領域を欠失させるための方法であって、
上記ＤＮＡの領域と、上記ＤＮＡの領域の３’末端に隣接する第一の認識配列と、上記
ＤＮＡの領域の５’末端に隣接する第二の認識配列とを含むゲノムＤＮＡを含有する第一
の生育能力のある植物を提供する工程、
上記認識配列において上記ゲノムＤＮＡを切断するように操作されたジンクフィンガー
ヌクレアーゼをコードするＤＮＡを含むゲノムＤＮＡを含有する第二の生育能力のある植
物を提供するゲノムＤＮＡを含有する第二の生育能力のある植物を提供する工程、
上記第一の生育能力のある植物または第二の生育能力のある植物のいずれかにおいてＦ
１種子が作出されるように、上記第一の生育能力のある植物と第二の生育能力のある植物
を交配させる工程、および
上記ＤＮＡの領域が上記ゲノムＤＮＡに存在しない、ゲノムＤＮＡを含有する生じたＦ
１植物を成長させる工程
を含む方法。
［４］上記第一の認識配列と第二の認識配列が同一である、上記［３］に記載の方法。
［５］上記［３］に記載の方法によって作出されるトランスジェニック植物。
［６］ジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される第一の核酸配列
対象の遺伝子、および
ジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される第二の核酸配列
を含み、上記対象の遺伝子にジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される上記第一
および第二の核酸配列が隣接する、単離核酸分子。
［７］上記対象の遺伝子と作動可能に連結したプロモーターをさらに含む、上記［６］に
記載の単離核酸分子。
［８］上記第一の核酸配列および上記第二の核酸配列に相同配列が隣接する、上記［６］
に記載の単離核酸分子。
［９］トランスジェニック植物を作出するための方法であって、
上記［１］に記載の単離核酸分子で植物細胞または植物組織を形質転換する工程、およ
び
全植物を再生する工程
を含む方法。
［１０］上記［９］に記載の方法によって作出されるトランスジェニック植物。
［１１］プロモーター、および
ジンクフィンガーヌクレアーゼをコードする核酸配列
を含み、上記プロモーターが上記ジンクフィンガーヌクレアーゼをコードする核酸配列と
作動可能に連結し、上記核酸配列にジンクフィンガーヌクレアーゼ切断部位が隣接する、
単離核酸分子。
［１２］トランスジェニック植物を作出するための方法であって、
上記［１１］に記載の単離核酸分子で植物細胞または植物組織を形質転換する工程、お
よび
全植物を再生する工程
を含む方法。
［１３］上記プロモーターが花粉特異的プロモーター、種子特異的プロモーター、および
発生段階特異的プロモーターからなる群から選択される、上記［１１］に記載の単離核酸
分子。
［１４］植物中の対象の遺伝子を切除する方法であって、
上記［９］に記載の植物と上記［１１］に記載の植物を交配させる工程を含み、上記交
配から生じた子孫がジンクフィンガーヌクレアーゼを介した上記対象の遺伝子の切除を示
す方法。
［１５］他の植物への対象の遺伝子の伝達を減らすための方法であって、
上記［９］に記載の植物と、ジンクフィンガーヌクレアーゼと作動可能に連結した花粉
特異的プロモーターを含む単離核酸分子で形質転換した植物細胞または組織から再生した
植物とを交配させる工程であって、上記交配から生じた子孫の花粉中の上記対象の遺伝子
を特異的に切除し、対象の天然遺伝子を切除する工程、および
上記交配から生じた子孫を培養する工程を含む方法。
［１６］植物中の対象の天然遺伝子を切除する方法であって、
対象の遺伝子を含む植物細胞または組織を、ジンクフィンガーヌクレアーゼをコードす
る核酸配列またはジンクフィンガーヌクレアーゼをコードする単離タンパク質配列を含む
単離核酸分子で形質転換する工程であって、上記ジンクフィンガーヌクレアーゼが上記対
象の天然遺伝子に隣接する核酸配列を認識する工程、および
全植物を再生する工程を含む方法。
［１７］核酸分子を含有する植物中のＤＮＡの領域を欠失させるための方法であって、
ジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される第一の核酸配列を提供する工程、
選択マーカー遺伝子発現カセットを提供する工程、および
ジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される第二の核酸配列を提供する工程
を含み、上記選択マーカーにジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される上記第一
および第二の核酸配列が隣接する方法。
［１８］上記第一の核酸配列および上記第二の核酸配列に相同配列が隣接する、上記［１
７］に記載の方法。
［１９］認識配列においてゲノムＤＮＡを切断するように操作されたジンクフィンガーヌ
クレアーゼを生育能力のある植物細胞中で発現させる、または導入し、それによって認識
配列における上記ゲノムＤＮＡの切断をもたらし、上記ゲノムＤＮＡの切除をもたらし、
上記選択マーカーが上記ゲノムＤＮＡに存在しない、上記［１７］に記載の方法。
［２０］ジンクフィンガーヌクレアーゼモノマーのそれぞれ半分が別々に発現され、互い
に協働して対をなすとき機能的複合体を形成する、上記［１７］に記載の方法。

本発明の一実施形態によれば、植物、ＤＮＡの領域を含むゲノムＤＮＡを含有する生育
能力のある植物中のＤＮＡの領域を欠失させるための方法を提供し、認識配列においてゲ
ノムＤＮＡを切断するように操作されたジンクフィンガーヌクレアーゼを、ゲノムＤＮＡ
を含有する生育能力のある植物において発現させる、または導入し、それによって認識配
列におけるゲノムＤＮＡの切断をもたらし、ゲノムＤＮＡの切除をもたらし、ＤＮＡの領
域はゲノムＤＮＡに存在しない。

別の実施形態において、植物中のＤＮＡの領域を欠失させるための方法は、ＤＮＡの領
域と、ＤＮＡの領域の３’末端に隣接する第一の認識配列と、ＤＮＡの領域の５’末端に
隣接する第二の認識配列とを含むゲノムＤＮＡを含有する第一の生育能力のある植物を提
供することを含む。認識配列においてゲノムＤＮＡを切断するように操作されたジンクフ
ィンガーヌクレアーゼをコードするＤＮＡを含むゲノムＤＮＡを含有する第二の生育能力
のある植物を提供する。第一の生育能力のある植物または第二の生育能力のある植物のい
ずれかにおいてＦ１種子が作出されるように、第一の生育能力のある植物と第二の生育能
力のある植物を交配させる。そのＤＮＡの領域がゲノムＤＮＡに存在しない、ゲノムＤＮ
Ａを含有する生じたＦ１植物を成長させる。特定の実施形態において、第一の認識配列と
第二の認識配列は同一であってよい。

特定の実施形態において、単離核酸分子は、ジンクフィンガーヌクレアーゼによって認
識される第一の核酸配列、対象の遺伝子、およびジンクフィンガーヌクレアーゼによって
認識される第二の核酸配列を含み、対象の遺伝子に、ジンクフィンガーヌクレアーゼによ
って認識される第一および第二の核酸配列が隣接する。別の実施形態において、第一の認
識配列および第二の認識配列に、相同配列が隣接してもよい。さらに別の実施形態におい
て、トランスジェニック植物を作出する方法は、単離核酸分子で植物細胞または植物組織
を形質転換すること、および全植物（whole plant）を再生することを含む。

他の実施形態において、他の植物への対象の遺伝子の伝達を減らすための方法は、全植
物と、ジンクフィンガーヌクレアーゼと作動可能に連結した花粉特異的プロモーターを含
む単離核酸分子で形質転換した植物細胞または組織から再生した植物とを交配させること
を含み、ここで、交配から生じた子孫の花粉中で対象の遺伝子が特異的に切除される。交
配から生じた子孫を培養する。このような実施形態において、単離核酸分子はプロモータ
ーおよびジンクフィンガーヌクレアーゼをコードする核酸配列を含み、プロモーターはジ
ンクフィンガーヌクレアーゼをコードする核酸配列と作動可能に連結し、トランスジェニ
ック植物を作出する方法は、単離核酸分子で植物細胞または植物組織を形質転換すること
、および全植物を再生することを含む。

一実施形態において、ジンクフィンガーヌクレアーゼによって認識される第一の核酸配
列、選択マーカー遺伝子発現カセット、およびジンクフィンガーヌクレアーゼによって認
識される第二の核酸配列を含む核酸分子を含有する植物中のＤＮＡの領域を欠失させるた
めの方法が提供され、ここで、選択マーカーは、ジンクフィンガーヌクレアーゼによって
認識される第一および第二の核酸配列に隣接する。別の実施形態において、第一の認識配
列および第二の認識配列が相同配列に隣接する。さらに、認識配列においてゲノムＤＮＡ
を切断するように操作されたジンクフィンガーヌクレアーゼを生育能力のある植物細胞中
で発現させる、または導入し、それによって認識配列におけるゲノムＤＮＡの切断をもた
らし、ゲノムＤＮＡの切除をもたらし、選択マーカーはゲノムＤＮＡに存在しない。

別の実施形態において、ジンクフィンガーヌクレアーゼモノマーのそれぞれ半分が別々
に発現され、互いに協働して対をなすとき機能的複合体を形成する。例えば、１つのジン
クフィンガーヌクレアーゼモノマー（ＦｏｋＩエンドヌクレアーゼと作動可能に連結した
ジンクフィンガー結合モチーフからなる）を発現する植物転写ユニットを１つの親Ｐ１に
安定的に組み込み、第二のモノマーを発現する植物転写ユニットは第二の親Ｐ２に安定的
に組み込む。Ｐ１とＰ２の性的交配は、両方のジンクフィンガーモノマーを含有する子孫
植物をもたらす。生成するジンクフィンガーヌクレアーゼダイマーはジンクフィンガー結
合部位と結合し、切断活性を有する複合体を形成することができる。ＦｏｋＩエンドヌク
レアーゼがダイマーとして活性があることを考慮すると（Bitinaite et al. (1998) Proc
. Natl. Acad. Sci. USA 95:10,570-10,575）、切断活性は両方の機能的発現モノマーを
含有する子孫内のみに存在し得る。

別の実施形態において、認識配列でのジンクフィンガーヌクレアーゼによる切除は、残
りの認識配列を含まない切断結合部の形成をもたらす。その切断結合部は、（１つまたは
複数の）原型ジンクフィンガーヌクレアーゼによって結合および切断することはできない
。さらに切断結合部は、非相同性末端結合（ＮＨＥＪ）の結果、または５’認識配列上流
および３’認識配列下流に位置するＤＮＡの２箇所の相同領域の間の相同性指向型修復の
結果、または別の望ましくないＤＮＡ修復機構の結果である可能性がある。切断後に相同
性対象修復が起こり得るように、相同配列は結合部位の外側に位置してよい。これは、切
除を得るために使用された残存部位を常にあとに残すリコンビナーゼ系に対する改善点で
ある。

さらに別の実施形態において、植物中の対象の天然遺伝子を切除する方法は、対象の遺
伝子を含む植物細胞または組織を、ジンクフィンガーヌクレアーゼをコードする核酸配列
またはジンクフィンガーヌクレアーゼをコードする単離タンパク質配列を含む単離核酸分
子で形質転換することであって、ジンクフィンガーヌクレアーゼが対象の天然遺伝子に隣
接する核酸配列を認識し、対象の天然遺伝子が特異的に切除されることを含む。次いで全
植物が再生される。他の実施形態において、ジンクフィンガーヌクレアーゼを発現する植
物と標的植物を交配させることによって、内在性遺伝子の切除を実施することができる。

プラスミドｐＤＡＳ５３８０に関するプラスミドマップを示す図である。 プラスミドｐＤＡＳ５３８１に関するプラスミドマップを示す図である。 図３ａは、Ｔ-ＤＮＡ挿入の概略図および制限酵素切断地図である。図３ｂは、本発明の一実施形態によるプラスミドｐＤＡＳ５３８０由来の完全長の完全ＰＴＵを含有したイベントを同定するために使用した、Ｔ_０サザンブロット解析を示すいくつかの図を示す。ｐＤＡＳ５３８０イベントを消化するために制限酵素ＭｆｅＩおよびＮｓｉＩを使用したＴ_０サザンブロット解析の画像は、ＧＵＳとＰＡＴの同時ハイブリダイゼーションによる完全なＴ-ＤＮＡ挿入を示した。 図３ａは、Ｔ-ＤＮＡ挿入の概略図および制限酵素切断地図である。図３ｂは、本発明の一実施形態によるプラスミドｐＤＡＳ５３８０由来の完全長の完全ＰＴＵを含有したイベントを同定するために使用した、Ｔ_０サザンブロット解析を示すいくつかの図を示す。ｐＤＡＳ５３８０イベントを消化するために制限酵素ＭｆｅＩおよびＮｓｉＩを使用したＴ_０サザンブロット解析の画像は、ＧＵＳとＰＡＴの同時ハイブリダイゼーションによる完全なＴ-ＤＮＡ挿入を示した。 図４ａは、Ｔ-ＤＮＡ挿入の概略図および制限酵素切断地図である。図４ｂは、本発明の一実施形態によるプラスミドｐＤＡＳ５３８１由来の完全長の完全ＰＴＵを含有したイベントを同定するために使用した、Ｔ_０サザンブロット解析を示すいくつかの図を示す。ｐＤＡＳ５３８１イベントを消化するために制限酵素ＭｆｅＩおよびＮｓｉＩを使用したＴ_０サザンブロット解析の画像は、ＨｐｔＩＩのハイブリダイゼーションによる完全なＴ-ＤＮＡ挿入を示した。 図４ａは、Ｔ-ＤＮＡ挿入の概略図および制限酵素切断地図である。図４ｂは、本発明の一実施形態によるプラスミドｐＤＡＳ５３８１由来の完全長の完全ＰＴＵを含有したイベントを同定するために使用した、Ｔ_０サザンブロット解析を示すいくつかの図を示す。ｐＤＡＳ５３８１イベントを消化するために制限酵素ＭｆｅＩおよびＮｓｉＩを使用したＴ_０サザンブロット解析の画像は、ＨｐｔＩＩのハイブリダイゼーションによる完全なＴ-ＤＮＡ挿入を示した。 本発明の一実施形態による大サンプルの代表的なイベントの選択群のサザンブロット解析を示す図である。これらのサンプルは、切除断片（すなわち、低分子量断片）、非切除断片（すなわち、高分子量断片）、および切除断片と非切除断片の両方を含有したキメライベントを例示するために選択した。さらに、野生型ゲノムＤＮＡおよび１００ｐｇのｐＤＡＳ５３８０プラスミドの対照を含めた。このデータはＧＵＳの発現データと関連付けた。ＧＵＳに関する組織化学的染色により陽性染色されなかったイベントは、完全長の完全ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットを含有していなかった。 本発明の一実施形態によるサザンブロット実験中で使用した、ゲノムＤＮＡサンプルのＰＣＲ増幅断片を含有するアガロースゲルの画像を示す図である。これらのＰＣＲアンプリコンは、切除断片（すなわち、低分子量断片）、非切除断片（すなわち、高分子量断片）、および切除断片と非切除断片の両方を含有したキメライベントを例示する。さらに、野生型Ｔ_０植物の対照が含まれ、大きな完全ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットをこれらの反応中で増幅させた。ＰＣＲ反応に野生型ゲノムＤＮＡおよび無ＤＮＡ（Ｈ_２Ｏ）を使用した陰性対照も含める。このデータは、ＧＵＳの発現データおよびサザンブロットのデータと関連付けた。 図７ａおよび７ｂは、本発明の一実施形態によるＧＵＳ発現カセットの欠失を示す、２．４ｋｂバンドの配列アラインメントの分析を示す図である。太字配列は、ＡｔアクチンプロモーターおよびＭＡＲ遺伝子エレメントを示す。ＣＣＲ５結合部位は下線およびイタリックで確認される。イベント当たりで多数のアンプリコンが生成しそれらを配列決定したが、１つのアンプリコンのみを図中に一直線に並べた。 図７ａおよび７ｂは、本発明の一実施形態によるＧＵＳ発現カセットの欠失を示す、２．４ｋｂバンドの配列アラインメントの分析を示す図である。太字配列は、ＡｔアクチンプロモーターおよびＭＡＲ遺伝子エレメントを示す。ＣＣＲ５結合部位は下線およびイタリックで確認される。イベント当たりで多数のアンプリコンが生成しそれらを配列決定したが、１つのアンプリコンのみを図中に一直線に並べた。 図７ａおよび７ｂは、本発明の一実施形態によるＧＵＳ発現カセットの欠失を示す、２．４ｋｂバンドの配列アラインメントの分析を示す図である。太字配列は、ＡｔアクチンプロモーターおよびＭＡＲ遺伝子エレメントを示す。ＣＣＲ５結合部位は下線およびイタリックで確認される。イベント当たりで多数のアンプリコンが生成しそれらを配列決定したが、１つのアンプリコンのみを図中に一直線に並べた。 本発明の一実施形態による「完全」Ｆ_１ハイブリッドのＦ_２子孫のＰＣＲ解析を示す図である。 本発明の一実施形態による、「完全」Ｆ_１ハイブリッドのＦ_２子孫のサザンブロット解析を示す図である。 本発明の一実施形態による、「切除」Ｆ_１ハイブリッドのＦ_２子孫のＰＣＲ解析を示す図である。 本発明の一実施形態による、「切除」Ｆ_１ハイブリッドのＦ_２子孫のサザンブロット解析を示す図である。 本発明の一実施形態による、「キメラ」Ｆ_１ハイブリッドのＦ_２子孫のＰＣＲ解析を示す図である。 本発明の一実施形態による、「キメラ」Ｆ_１ハイブリッドのＦ_２子孫のサザンブロット解析を示す図である。

配列表
添付の配列表中に列挙する核酸配列は、ヌクレオチド塩基に関する標準的な文字略語を
使用して示す。各核酸配列の一本の鎖のみを示すが、相補鎖は示した鎖に対する任意の参
照によって含まれると理解される。添付の配列表中：
配列番号１はＣＣＲ５ＺＦＮ結合部位を示す。
配列番号２はＣＣＲ５ジンクフィンガーヌクレアーゼ遺伝子配列を示す。
配列番号３はＴＱＰＡＴＳプライマーを示す。
配列番号４はＴＱＰＡＴＡプライマーを示す。
配列番号５はＴＱＰＡＴＦＱプライマーを示す。
配列番号６はＴＱＰＡＬＳプライマーを示す。
配列番号７はＴＱＰＡＬＡプライマーを示す。
配列番号８はＴＱＰＡＬＦＱプライマーを示す。
配列番号９はＨＰＴ２Ｓプライマーを示す。
配列番号１０はＨＰＴ２Ａプライマーを示す。
配列番号１１はＨＰＴＦＱプライマーを示す。
配列番号１２はＦｏｋ１＿ＵＰＬ＿Ｆプライマーを示す。
配列番号１３はＦｏｋ１＿ＵＰＬ＿Ｒプライマーを示す。
配列番号１４はＢＹ２ＡＣＴ８９Ｓプライマーを示す。
配列番号１５はＢＹ２ＡＣＴ８９Ａプライマーを示す。
配列番号１６はＰＴＵ ＰＣＲ解析用のフォワードＰＣＲプライマーを示す。
配列番号１７はＰＴＵ ＰＣＲ解析用のリバースＰＣＲプライマーを示す。
配列番号１８はＢＹＡＣＴＦＱプライマーを示す。

遺伝子改変生物において特異的植物組織から遺伝子を切除するための方法を本明細書で
開示する。いくつかの実施形態において、非ＧＭ作物への遺伝子流動を低減する手段とし
て１つまたは複数のＺＦＮ（ジンクフィンガーヌクレアーゼ）を使用して、特異的植物組
織から導入遺伝子を除去する。いくつかの実施形態において、除去される導入遺伝子は選
択マーカー遺伝子カセットである。特定の実施形態において、特異的植物組織は花粉であ
る。

いくつかの実施形態において、１つまたは複数のＺＦＮを異なる組織特異的プロモータ
ーと作動可能に連結させることが可能である。これらおよびさらなる実施形態において、
組織特異的プロモーターと作動可能に連結した１つまたは複数のＺＦＮの１つは１つの親
植物系に形質転換することができ、異なる組織特異的プロモーターと作動可能に連結した
１つまたは複数のＺＦＮの他方は第二の親植物系に形質転換することができる。１つまた
は複数のＺＦＮの各々を含有する親系列間の交配は、認識配列でＤＮＡを切断する機能性
ＺＦＮを含有するＦ_１系を作出する可能性がある。認識配列は植物のＤＮＡ中の導入遺伝
子に隣接してもよい。

組織特異的遺伝子切除は、ＺＦＮと組織特異的植物プロモーターの作動可能な連結によ
って実施することができる。いくつかの実施形態において、１つまたは複数のＺＦＮと組
織特異的プロモーターの作動可能な連結は１つまたは複数のＺＦＮの組織特異的発現をも
たらし、それによってＺＦＮ、選択マーカー、および／または特異的組織中の認識配列間
に位置する任意の遺伝子もしくは核酸配列を切除する。

特定の実施形態において、１つまたは複数のＺＦＮは同じ植物内で発現される。ＺＦＮ
は、植物の後期発生段階中にＺＦＮの発現を誘導するプロモーターと作動可能に連結させ
ることが可能である。これらおよび他の実施形態において、１つまたは複数の機能性ＺＦ
Ｎは１つまたは複数の導入遺伝子に隣接する特異的認識配列を切断することができ、それ
によって植物発生の後期段階中に植物組織から１つまたは複数の導入遺伝子を除去するこ
とができる。

略語
ＧＭ 遺伝子改変
ＰＴＵ 植物転写ユニット
ＺＦ ジンクフィンガー
ＺＦＮ ジンクフィンガーヌクレアーゼ
ＺＦＰ ジンクフィンガータンパク質

用語
遺伝子発現：それによって核酸転写ユニット（例えばゲノムＤＮＡまたはｃＤＮＡを含
む）のコード情報が、細胞の作動的、非作動的、または構造的な部分（タンパク質の合成
を含むことが多い）に変換されるプロセスである。遺伝子発現は、外部シグナル、例えば
、遺伝子発現を増大または低下させる物質への細胞、組織、または生物の曝露によって影
響を受ける可能性がある。遺伝子の発現は、ＤＮＡからＲＮＡそしてタンパク質への経路
中の任意の場所で制御することもできる。遺伝子発現の制御は、例えば、転写、翻訳、Ｒ
ＮＡ輸送およびプロセシング、ｍＲＮＡなどの中間分子の分解に作用する調節によって、
またはそれらが生成した後の特定タンパク質分子の活性化、不活性化、区画化、もしくは
分解によって、またはこれらの組合せによって起こる。遺伝子発現は、ノーザンブロット
、ＲＴ−ＰＣＲ、ウエスタンブロット、またはｉｎ ｖｉｔｒｏ、ｉｎ ｓｉｔｕ、また
はｉｎ ｖｉｖｏタンパク質活性アッセイ（１つまたは複数）を非制限的に含む当技術分
野で知られている任意の方法により、ＲＮＡレベルまたはタンパク質レベルで測定するこ
とができる。

ハイブリダイゼーション：オリゴヌクレオチドとそれらのアナログは水素結合によって
ハイブリダイズし、その水素結合には、相補的塩基間のワトソン−クリック型、フーグス
ティーン型または逆フーグスティーン型水素結合が含まれる。一般に、核酸分子は、ピリ
ミジン（シトシン（Ｃ）、ウラシル（Ｕ）、およびチミン（Ｔ））またはプリン（アデニ
ン（Ａ）およびグアニン（Ｇ））のいずれかである窒素含有塩基からなる。これらの窒素
含有塩基はピリミジンとプリンの間で水素結合を形成し、ピリミジンとプリンの結合は「
塩基対形成」と呼ばれる。より具体的には、ＡはＴまたはＵと水素結合し、ＧはＣと結合
する。「相補的な」は、２つの異なる核酸配列または同じ核酸配列の２つの異なる領域間
で起こる塩基対形成を指す。

「特異的にハイブリダイズ可能な」および「特異的に相補的な」は、安定的および特異
的結合がオリゴヌクレオチドとＤＮＡまたはＲＮＡ標的の間で起こるような十分な程度の
相補性を示す用語である。オリゴヌクレオチドは、特異的にハイブリダイズ可能であるそ
の標的配列と１００％相補的である必要はない。オリゴヌクレオチドと標的ＤＮＡまたは
ＲＮＡ分子の結合が標的ＤＮＡまたはＲＮＡの正常機能に干渉し、特異的結合が望ましい
条件下、例えばｉｎ ｖｉｖｏアッセイまたは系の場合生理的条件下でのオリゴヌクレオ
チドと非標的配列の非特異的結合を回避するほど十分な程度の相補性が存在するとき、オ
リゴヌクレオチドは特異的にハイブリダイズ可能である。このような結合は特異的ハイブ
リダイゼーションと呼ばれる。

特定の程度のストリンジェンシーをもたらすハイブリダイゼーション条件は、選択した
ハイブリダイゼーション法の性質ならびにハイブリダイズする核酸配列の組成および長さ
に応じて変わる。一般に、ハイブリダイゼーションの温度およびハイブリダイゼーション
バッファーのイオン強度（特にＮａ^＋および／またはＭｇ^２＋濃度）はハイブリダイゼー
ションのストリンジェンシーに貢献するが、洗浄時間もストリンジェンシーに影響を与え
る。特定の程度のストリンジェンシーを得るのに必要とされるハイブリダイゼーション条
件に関する計算は、Sambrook et al. (ed.), Molecular Cloning: A Laboratory Manual,
2nd ed., vol. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New
York, 1989, chs. 9および11中で論じられている。

本開示の目的で、「ストリンジェントな条件」は、ハイブリダイゼーション分子と標的
配列の間に２５％未満のミスマッチが存在する場合、その下でハイブリダイゼーションが
起こる条件を包含する。「ストリンジェントな条件」は、特定のレベルのストリンジェン
シーにさらに定義することができる。したがって、本明細書で使用する「適度なストリン
ジェンシー」条件は、その下で２５％を超えるミスマッチを有する分子がハイブリダイズ
しない条件であり、「中間ストリンジェンシー」の条件は、その下で１５％を超えるミス
マッチを有する分子がハイブリダイズしない条件であり、「高ストリンジェンシー」の条
件は、その下で１０％を超えるミスマッチを有する配列がハイブリダイズしない条件であ
る。「非常に高いストリンジェンシー」の条件は、その下で６％を超えるミスマッチを有
する配列がハイブリダイズしない条件である。

特定の実施形態において、ストリンジェントな条件は、６５℃でのハイブリダイゼーシ
ョン、次に４０分間の０．１×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳを用いた６５℃での連続洗浄であ
る。

単離された：「単離された」生物学的構成成分（核酸またはタンパク質など）は、その
構成成分が本来存在する生物の細胞内の他の生物学的構成成分、すなわち他の染色体およ
び染色体外ＤＮＡおよびＲＮＡ、およびタンパク質から実質的に分離、生成、または精製
されている。「単離された」状態である核酸分子およびタンパク質は、標準的な精製法に
よって精製された核酸分子およびタンパク質を含む。この用語は、宿主細胞中での組換え
発現により調製された核酸およびタンパク質、および化学的に合成された核酸分子、タン
パク質、およびペプチドも包含する。

核酸分子：ヌクレオチドのポリマー形態であり、ＲＮＡ、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡのセ
ンス鎖とアンチセンス鎖の両方、ならびに前述の合成形態および混合ポリマーを含み得る
。ヌクレオチドは、リボヌクレオチド、デオキシヌクレオチド、またはいずれかの型のヌ
クレオチドの修飾型を指す。本明細書で使用する「核酸分子」は、「核酸」および「ポリ
ヌクレオチド」と同義である。この用語は、一本鎖および二本鎖型のＤＮＡを含む。核酸
分子は、天然に存在するおよび／または非天然ヌクレオチド結合により１つに結合した、
天然に存在するヌクレオチドと修飾ヌクレオチドの一方または両方を含み得る。

当業者によって容易に理解されるように、核酸分子は化学的または生化学的に修飾する
ことができ、または非天然または誘導体ヌクレオチド塩基を含有することができる。この
ような修飾には、例えば、標識、メチル化、１つまたは複数の天然に存在するヌクレオチ
ドとアナログの置換、非荷電結合（例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、
ホスホロアミデート、カルバメートなど）、荷電結合（例えば、ホスホロチオエート、ホ
スホロジチオエートなど）などのヌクレオチド間修飾、ペンダント成分（例えば、ペプチ
ド）、インターカレーター（例えば、アクリジン、ソラレンなど）、キレート剤、アルキ
ル化剤、および修飾結合（例えば、αアノマー核酸など）がある。用語「核酸分子」は、
一本鎖、二本鎖、部分的デュプレックス、トリプレックス、ヘアピン、環状、およびパド
ロック形状を含めた任意の位相幾何学的形状も含む。

作動可能に連結した：第一の核酸配列が第二の核酸配列と機能的関係があるとき、第一
の核酸配列は第二の核酸配列と作動可能に連結している。例えば、プロモーターがコード
配列の転写または発現に影響を与えるとき、プロモーターはコード配列と作動可能に連結
している。組換えにより生成するとき、および同一リーディングフレームで２つのタンパ
ク質コード領域を接合することが必要である場合、作動可能に連結した核酸配列は一般に
隣接している。しかしながら、エレメントは、作動可能に連結するように互いに隣接して
いる必要はない。

プロモーター：転写に必要とされる（遺伝子の５’領域に向かって）一般に上流に位置
するＤＮＡの領域。プロモーターは、それらが制御する遺伝子の正確な活性化または抑制
を可能にする。プロモーターは、転写因子によって認識される特異的配列を含有する。こ
れらの因子はプロモーターＤＮＡ配列と結合し、ＲＮＡポリメラーゼ（遺伝子のコード領
域からＲＮＡを合成する酵素）の動員をもたらす。いくつかの実施形態において、本発明
の方法において、組織特異的プロモーター、例えば花粉特異的プロモーターを使用する。
組織特異的プロモーターは、生物の他の組織と比較してプロモーターが特異的である組織
中の、関連遺伝子の高レベルの転写を誘導するＤＮＡ配列である。組織特異的プロモータ
ーの例には、タペート組織特異的プロモーター、葯特異的プロモーター、花粉特異的プロ
モーター（例えば、米国特許第７，１４１，４２４号、および国際ＰＣＴ公開Ｎｏ．ＷＯ
９９／０４２５８７参照）、胚珠特異的プロモーター（例えば、米国特許出願Ｎｏ．２０
０１／０４７５２５Ａ１参照）、果実特異的プロモーター（例えば、米国特許第４，９４
３，６７４号、および同第５，７５３，４７５号参照）、および種子特異的プロモーター
（例えば、米国特許第５，４２０，０３４号、および同第５，６０８，１５２号参照）が
ある。いくつかの実施形態において、本発明の方法において、発生段階特異的プロモータ
ー、例えば発生中の後期段階で活性があるプロモーターを使用する。

形質転換：ウイルスまたはベクターは、それが細胞に核酸分子を移すとき、細胞を「形
質転換」または「形質導入」する。細胞ゲノム中への核酸分子の取り込み、またはエピソ
ーム複製のいずれかによって、核酸分子が細胞により安定的に複製された状態になるとき
、細胞に形質導入された核酸分子によって細胞は「形質転換」される。本明細書で使用す
る用語「形質転換」は、それによって核酸分子をこのような細胞中に導入することができ
る全ての技法を包含する。例には、ウイルスベクターによるトランスフェクション、プラ
スミドベクターによる形質転換、エレクトロポレーション（Fromm et al. (1986) Nature
319:791-3）、リポフェクション（Felgner et al. (1987) Proc. Natl. Acad. Sci. USA
84:7413-7）、マイクロインジェクション（Mueller et al. (1978) Cell 15:579-85）、
アグロバクテリウム（Agrobacterium）媒介導入（Fraley et al. (1983) Proc. Natl. Ac
ad. Sci. USA 80:4803-7）、直接的なＤＮＡの取り込み、およびマイクロプロジェクタイ
ルボンバードメント（Klein et al. (1987) Nature 327:70）があるが、これらに限定さ
れない。

導入遺伝子：外来核酸配列。一例では、導入遺伝子は、遺伝子配列（例えば、除草剤耐
性遺伝子）、産業上もしくは薬学上有用な化合物をコードする遺伝子、または望ましい農
業的形質をコードする遺伝子である。さらに別の例では、導入遺伝子はアンチセンス核酸
配列であり、アンチセンス核酸配列の発現は標的核酸配列の発現を阻害する。導入遺伝子
は、導入遺伝子と作動可能に連結した制御配列（例えば、プロモーター）を含有すること
ができる。

ベクター：細胞中に導入し、それによって形質転換細胞を生成する核酸分子。ベクター
は、複製起点などの、宿主細胞中でのその複製を可能にする核酸配列を含むことができる
。例には、細胞中に外来ＤＮＡを運ぶ、プラスミド、コスミド、バクテリオファージ、ま
たはウイルスがあるが、これらに限定されない。ベクターは、当技術分野で知られている
、１つまたは複数の遺伝子、アンチセンス分子、および／または選択可能なマーカー遺伝
子および他の遺伝子エレメントも含むことができる。ベクターは細胞に形質導入、形質転
換、または感染し、それによってベクターによってコードされる核酸分子および／または
タンパク質を細胞に発現させることが可能である。ベクターは、細胞中への核酸分子の進
入の実施を容易にする物質（例えば、リポソーム、コードタンパク質など）を場合によっ
ては含む。

ジンクフィンガーヌクレアーゼを介した植物からの導入遺伝子の切除
少ない導入遺伝子の漏出を有する植物を作出するための方法、およびこのような方法に
よって生じる植物、およびそれに由来する植物材料、例えば種子を本明細書で開示する。
一実施形態において、方法は植物とベクターを接触させることを含み、ベクターは１つま
たは複数の組織特異的プロモーター（例えば、花粉特異的プロモーター）と作動可能に連
結した１つまたは複数のジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）を含む。このベクター
の発現は、特異的組織中でその作動可能に連結したプロモーターが活性状態である（１つ
または複数の）ＺＦＮの生成をもたらす。（１つまたは複数の）ＺＦＮは、その切除が望
ましい核酸配列に隣接する切断配列を認識するように設計または操作することができる。
したがって、プロモーターが活性状態である特異的組織中での（１つまたは複数の）ＺＦ
Ｎの生成は、（１つまたは複数の）ＺＦＮによって認識される切断配列の間の核酸配列の
切除をもたらし、それによって残りの認識配列を含まない切断結合部を含有する核酸配列
を生成する。

別の実施形態において、方法は植物とベクターを接触させることを含み、ベクターは組
織特異的プロモーターと作動可能に連結した１つまたは複数のＺＦＮ、対象の遺伝子、場
合によっては対象の遺伝子と作動可能に連結することができる１つまたは複数の制御エレ
メント、ならびに対象の遺伝子および１つまたは複数の制御エレメントに隣接する（１つ
または複数の）ＺＦＮによって認識される１つまたは複数の切断配列を含む。このベクタ
ーの発現は、特異的組織中でその作動可能に連結したプロモーターが活性状態である（１
つまたは複数の）ＺＦＮの生成をもたらす。したがって、プロモーターが活性状態である
特異的組織中での（１つまたは複数の）ＺＦＮの生成は、対象の遺伝子、および場合によ
っては１つまたは複数の制御エレメントを含む（１つまたは複数の）ＺＦＮによって認識
される切断配列間の核酸配列の切除をもたらす。

さらなる実施形態において、方法は植物とベクターを接触させることを含み、ベクター
は、植物発生の特定時期に活性状態である１つまたは複数のプロモーター（例えば、発生
の比較的後期段階で発現を誘導するプロモーター）と作動可能に連結した１つまたは複数
のジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）を含む。このベクターの発現は、発生の特定
段階中にその作動可能に連結したプロモーターが活性状態である（１つまたは複数の）Ｚ
ＦＮの生成をもたらす。（１つまたは複数の）ＺＦＮは、その切除が望ましい核酸配列に
隣接する切断配列を認識するように設計または改変することができる。プロモーターが活
性状態である発生段階での（１つまたは複数の）ＺＦＮの生成は、（１つまたは複数の）
ＺＦＮによって認識される切断配列間の核酸配列の切除をもたらす。

他の実施形態において、方法は植物とベクターを接触させることを含み、ベクターは、
植物発生の特定時期に活性状態であるプロモーターと作動可能に連結した１つまたは複数
のＺＦＮ、対象の遺伝子、場合によっては対象の遺伝子と作動可能に連結することができ
る１つまたは複数の制御エレメント、ならびに対象の遺伝子および１つまたは複数の制御
エレメントに隣接する（１つまたは複数の）ＺＦＮによって認識される１つまたは複数の
切断配列を含む。このベクターの発現は、発生の特定段階中にその作動可能に連結したプ
ロモーターが活性状態である（１つまたは複数の）ＺＦＮの生成をもたらす。その作動可
能に連結したプロモーターが活性状態である発生の特定時期中の（１つまたは複数の）Ｚ
ＦＮの生成は、対象の遺伝子、および１つまたは複数の制御エレメントを含む（１つまた
は複数の）ＺＦＮによって認識される切断配列間の核酸配列の切除をもたらす。

ＺＦＮヌクレアーゼ
特定の実施形態において、形質転換植物中の核酸分子からＺＦＮを発現させて、形質転
換植物中の核酸配列の切除を誘導する。特定核酸配列（例えば、導入遺伝子、対象の遺伝
子、または選択マーカー遺伝子）に隣接するように操作された認識配列をターゲティング
するＺＦＮを使用することができ、またはＺＦＮは、切除される特定核酸配列と隣接する
天然に存在する核酸配列をターゲティングするように設計することができる。ＺＦＮ系の
優れた柔軟性および特異性は、知られているリコンビナーゼ仲介型の遺伝子切除戦略によ
って以前は得られなかった一定レベルの制御をもたらす。

ＺＦＮの認識特異性は実験により容易に操作することができる。Wu et al. (2007) Cel
l. Mol. Life Sci. 64:2933-44。ジンクフィンガー認識残基に関するコドンのランダム化
は、任意選択したＤＮＡ配列に対して高い親和性を有する新たなフィンガーの選択を可能
にする。さらに、ジンクフィンガーは天然ＤＮＡ結合分子であり、操作されたジンクフィ
ンガーは生きた細胞中のそれらの設計標的に作用することが示されている。したがって、
ジンクフィンガーベースのヌクレアーゼは特異的であるが任意の認識部位をターゲティン
グすることができる。

キメラジンクフィンガーヌクレアーゼの切断ドメインの二量体化に関する要件は、高レ
ベルの配列特異性をもたらす。３フィンガーの各組は９連続塩基対と結合するので、各ジ
ンクフィンガードメインが完全な特異性を有する場合、２キメラヌクレアーゼは１８ｂｐ
の標的を効果的に必要とする。この長さの任意の所与の配列は、一ゲノム内に特有である
と予想される（約１０^９ｂｐと仮定）。Bibikova et al. (2001) Mol. Cell. Biol. 21(1
):289-97、Wu et al. (2007)、上記。さらに、他のフィンガーはより高い特異性をもたら
すので、Beerli et al. (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. USA95:14628-33、KimおよびPab
o (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. USA95:2812-7、Liu et al. (1997) Proc. Natl. Acad
. Sci. USA 94:5525-30、したがって各ＤＮＡ結合ドメイン中のジンクフィンガーの数を
増大させてさらに高い特異性をもたらすことが可能である。例えば、２４ｂｐの配列を認
識する一対の４フィンガーＺＦＮを使用することによって、特異性をさらに増大すること
が可能である。Urnov et al. (2005) Nature 435:646-51。

α−ヘリックスの開始部位と比較した位置−１、２、３、および６におけるＺＦＮ中の
重要なアミノ酸は、ジンクフィンガーモチーフによる特異的相互作用の大部分に貢献する
。PavletichおよびPabo (1991) Science 252:809-17、ShiおよびBerg (1995) Chem. Biol
. 2:83-9。これらのアミノ酸を、共通の骨格として残りのアミノ酸を維持しながら変更し
て、異なるおよび／または新規の配列特異性を有するＺＦＰを生成することができる。例
えば、ChooおよびKlug (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:11163-7、Desjarlaisお
よびBerg (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:7345-9、DesjarlaisおよびBerg (1993
) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:2256-60、GreismanおよびPabo (1997) Science 275:6
57-61、Isalan et al. (1998) Biochemistry 37:12026-33、Jamieson et al. (1994) Bio
chemistry 33:5689-95、RebarおよびPabo (1994) Science 263:671-3、Segal et al. (19
99) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96:2758-63、Wolfe et al. (1999) J. Mol. Biol. 285
:1917-34、Wu et al. (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92:344-8を参照されたい。さ
らに、それらが共同して切断をもたらすように、異なる配列特異性を有する少なくとも２
つの３フィンガーＺＦＮを設計することができる。Smith et al. (2000)、前出。

本発明のＺＦＮを構築するための設計および選択手法は、特異的核酸配列を認識するの
に適した１つまたは複数のＺＦモチーフを決定することによって始めることができる。あ
るいは、特異的核酸配列を認識するＺＦＮを使用して、特異的核酸配列（例えば、特異的
核酸配列が対象の遺伝子に隣接する場合）および必要に応じて他のエレメントを含む核酸
分子を構築することができる。ファージディスプレイ法を含めた、ＺＦＮに関する設計お
よび様々な選択手法が概説されている。Mani et al. (2005)、上記。Durai et al. (2005
) Nucleic Acids Res. 33:5978-90、Isalan et al. (2001) Nat. Biotechnol. 19:656-60
、Kandavelou et al. (2005) Nat. Biotechnol. 23:686-87、Pabo et al. (2001) Annu.
Rev. Biochem. 70:313-40、Segal et al. (2003) Biochemistry 42:2137-48。当技術分野
で知られている任意の設計および／または選択手法を使用して、本発明の実施形態中で使
用するためのＺＦＮに到達することができる。例えば、細菌のワンハイブリッドおよびツ
ーハイブリッド系を使用する細胞ベースの選択戦略を使用して、高度に特異的なＺＦＰを
生成することができる。Durai et al. (2006) Comb. Chem. High Throughput Screen. 9:
301-11、Hurt et al. (2003) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:12271-6、Joung et al.
(2000) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 97:7382-7。高度に特異的なＺＦＰは指定ドメイン
シャッフリングおよび細胞ベースの選択によって得ることもでき、マルチフィンガーＺＦ
Ｐを最適化するための一般的手法をもたらす。Hurt et al. (2003)、上記。

設計およびファージディスプレイ法に基づく多量のデータが５’ＧＮＮ３’および５’
ＡＮＮ３’トリプレットを特異的に認識するＺＦモジュールに関して利用可能であり、低
い程度で、５’ＣＮＮ３’および５’ＴＮＮ３’トリプレットに関するＺＦモチーフ優先
性は知られている。例えば、Durai et al. (2005)、上記。Dreier et al. (2001) J. Bio
l. Chem. 276:29466-78、Dreier et al. (2005) J. Biol. Chem. 280:35588-97、Dreier
et al. (2000) J. Mol. Biol. 303:489-502、Liu et al. (2002) J. Biol. Chem. 277:38
50-6を参照されたい。現在、２つのウエブベースのＺＦ設計ソフトウエアパッケージが利
用可能である（例えば、ｚｉｎｃｆｉｎｇｅｒｔｏｏｌｓ．ｏｒｇで）。前述のものによ
って、ゲノム中にコードされるほぼ全ての遺伝子がＺＦＮを介した遺伝子ターゲティング
の影響を受けやすくなる。KatadaおよびKomiyama (2009) Chembiochem. 10(8):1279-88。

特定の実施形態において、ＨＩＶコレセプターＣＣＲ５と結合するＺＦＮを使用する。
Perez et al. (2008) Nat. Biotechnol. 26:808-16。このＺＦＮは「ＣＣＲ５ＺＦＮ」と
呼ばれる。特定の実施形態において、ＣＣＲ５ＺＦＮコード領域は、オペーク−２核局在
化配列（Maddaloni et al. (1989) Nucleic Acids Res. 17(18):7532）、ｒ１６２ｙ１１
ジンクフィンガー結合ドメイン、ＦｏｋＩヌクレアーゼドメイン（Looney et al. (1989)
Gene 80:193-208）、テソア・アシニア（Thesoa assigna）ウイルス由来のＴ２Ａスタッ
ター配列（Mattion et al. (1996) J. Virol. 70:8124-7）、第二のオペーク−２核局在
化配列、１６８ＦＡｖＥジンクフィンガー結合ドメイン、および第二のＦｏｋＩヌクレア
ーゼドメインを含む。

核酸分子
いくつかの実施形態において、方法は、（望ましい形質または表現型を与えることがで
きる）１つまたは複数の対象の遺伝子、２つ以上の対象の遺伝子などを有する第一の植物
と、第二の植物を交配させることを含む。第二の植物も、１つまたは複数の対象の遺伝子
を有し得る。第一の植物はベクターを含むことができ、ベクターは１つまたは複数の対象
の遺伝子と作動可能に連結したプロモーターを含む。プロモーターは構成性または誘導性
プロモーターであってよい。（１つまたは複数の）対象の遺伝子をコードする核酸配列に
ＺＦＮ認識部位が隣接してよい。場合によっては、（１つまたは複数の）対象の遺伝子と
作動可能に連結したプロモーター、および任意の他の核酸配列（例えば、制御配列）にＺ
ＦＮ認識部位が隣接してもよい。第二の植物は別のベクターを含むことができ、これはＺ
ＦＮをコードする核酸配列と作動可能に連結した組織特異的または発生段階特異的プロモ
ーターを含むことができる。ベクターは両植物のゲノムに安定的に組み込むことができる
。第一の植物と第二の植物の交配後、組織特異的または発生段階特異的プロモーターは、
このような交配の結果として生じた子孫においてＺＦＮの発現を特異的に誘導する。これ
らの子孫におけるＺＦＮの発現はＺＦＮ認識部位が隣接した核酸配列の切除をもたらし、
それによって子孫の特異的組織および／または発生段階で対象の遺伝子、および場合によ
っては他の配列（選択マーカー遺伝子など）を低減または除去する。いくつかの実施形態
において、ＺＦＮ認識部位に相同核酸配列をさらに隣接させて、相同的ＤＮＡ組換えをさ
らに助長することが可能である。

対象の遺伝子は、典型的には望ましい形質または表現型を与えるのに十分な量の遺伝子
の発現を誘導する、１つまたは複数の植物プロモーター（１つまたは複数）と作動可能に
連結される。この使用および他の使用に適したプロモーターは当技術分野でよく知られて
いる。このようなプロモーターを記載する非制限的な例には、米国特許第６，４３７，２
１７号（メイズＲＳ８１プロモーター）、同第５，６４１，８７６号（イネアクチンプロ
モーター）、同第６，４２６，４４６号（メイズＲＳ３２４プロモーター）、同第６，４
２９，３６２号（メイズＰＲ−１プロモーター）、同第６，２３２，５２６号（メイズＡ
３プロモーター）、同第６，１７７，６１１号（構成的メイズプロモーター）、同第５，
３２２，９３８号、同第５，３５２，６０５号、同第５，３５９，１４２号、および同第
５，５３０，１９６号（３５Ｓプロモーター）、同第６，４３３，２５２号（メイズＬ３
オレオシンプロモーター）、同第６，４２９，３５７号（イネアクチン２プロモーター、
およびイネアクチン２イントロン）、同第５，８３７，８４８号（根特異的プロモーター
）、同第６，２９４，７１４号（光誘導性プロモーター）、同第６，１４０，０７８号（
塩誘導性プロモーター）、同第６，２５２，１３８号（病原体誘導性プロモーター）、同
第６，１７５，０６０号（リン欠乏誘導性プロモーター）、同第６，３８８，１７０号（
双方向性プロモーター）、同第６，６３５，８０６号（γ−コイキシンプロモーター）、
および米国特許出願第０９／７５７，０８９号（メイズ葉緑体アルドラーゼプロモーター
）がある。他のプロモーターには、ノパリンシンターゼ（ＮＯＳ）プロモーター（Ebert
et al. (1987) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84(16):5745-9）、オクトパインシンターゼ
（ＯＣＳ）プロモーター（これはアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacteriu
m tumefaciens）の腫瘍誘発プラスミドで実施される）、カリフラワーモザイクウイルス
（ＣａＭＶ）１９Ｓプロモーターなどのカリモウイルスプロモーター（Lawton et al. (1
987) Plant Mol. Biol. 9:315-24）、ＣａＭＶ３５Ｓプロモーター（Odell et al. (1985
) Nature 313:810-2、ゴマノハグサモザイクウイルス３５Ｓ−プロモーター（Walker et
al. (1987) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84(19):6624-8）、スクロースシンターゼプロ
モーター（YangおよびRussell (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:4144-8）、Ｒ遺
伝子複合体プロモーター（Chandler et al. (1989) Plant Cell 1:1175-83）、クロロフ
ィルａ／ｂ結合タンパク質遺伝子プロモーター、ＣａＭＶ３５Ｓ（米国特許第５，３２２
，９３８号、同第５，３５２，６０５号、同第５，３５９，１４２号、および同第５，５
３０，１９６号）、ＦＭＶ３５Ｓ（米国特許第６，０５１，７５３号、および同第５，３
７８，６１９号）、ＰＣ１ＳＶプロモーター（米国特許第５，８５０，０１９号）、ＳＣ
Ｐ１プロモーター（米国特許第６，６７７，５０３号）およびＡＧＲｔｕ．ｎｏｓプロモ
ーター（ＧｅｎＢａｎｋ受託番号Ｖ０００８７、Depicker et al. (1982) J. Mol. Appl.
Genet. 1:561-73、Bevan et al. (1983) Nature 304:184-7）などがある。

対象の遺伝子と場合によっては作動可能に連結されうる他の遺伝子エレメントには、輸
送ペプチドをコードする配列がある。例えば、Ａ．タリアナ（A.thaliana）のＥＰＳＰＳ
ＣＴＰ（Klee et al. (1987) Mol. Gen. Genet. 210:437-42）、およびペチュニアハイブ
リダ（Petunia hybrida）のＥＰＳＰＳＣＴＰ（della-Cioppa et al. (1986) Proc. Natl
. Acad. Sci. USA 83:6873-7）などの適切な葉緑体輸送ペプチドの取り込みは、異種のＥ
ＰＳＰＳタンパク質配列をトランスジェニック植物中の葉緑体にターゲティングすること
が示されている。国際ＰＣＴ公開Ｎｏ．ＷＯ２００８／１０５８９０中に記載されたよう
に、ジカンバモノオキシゲナーゼ（ＤＭＯ）も葉緑体にターゲティングすることができる
。

対象の遺伝子と場合によっては作動可能に連結することができる他の遺伝子エレメント
は、翻訳リーダー配列として機能するプロモーター配列とコード配列の間に位置する５’
ＵＴＲも含む。翻訳リーダー配列は、翻訳開始配列上流の完全にプロセシングされたｍＲ
ＮＡ中に存在する。翻訳リーダー配列は、ｍＲＮＡへの一次転写産物のプロセシング、ｍ
ＲＮＡの安定性、および／または翻訳効率に影響を与えることができる。翻訳リーダー配
列の例には、メイズおよびペチュニア熱ショックタンパク質リーダー（米国特許第５，３
６２，８６５号）、植物ウイルスコートタンパク質リーダー、植物ルビスコリーダー、お
よびその他がある。例えば、TurnerおよびFoster (1995) Molecular Biotech. 3(3):225-
36を参照。５’ＵＴＲの非制限的な例には、ＧｍＨｓｐ（米国特許第５，６５９，１２２
号）、ＰｈＤｎａＫ（米国特許第５，３６２，８６５号）、ＡｔＡｎｔ１；ＴＥＶ（Carr
ingtonおよびFreed (1990) J. Virol. 64:1590-7）、およびＡＧＲｔｕｎｏｓ（ＧｅｎＢ
ａｎｋ受託番号Ｖ０００８７、およびBevan et al. (1983) Nature 304:184-7）がある。

対象の遺伝子と場合によっては作動可能に連結することができる他の遺伝子エレメント
は、３’非翻訳配列、３’転写終結領域、またはポリアデニル化領域も含む。これらはポ
リヌクレオチド分子の下流に位置する遺伝子エレメントであり、ポリアデニル化シグナル
、および／または転写、ｍＲＮＡプロセシング、または遺伝子発現に影響を与えることが
できる他の制御シグナルを与えるポリヌクレオチドを含む。ポリアデニル化シグナルは植
物中で機能して、ｍＲＮＡ前駆体の３’末端へのポリアデニレートヌクレオチドの付加を
引き起こす。ポリアデニル化配列は、天然遺伝子、様々な植物遺伝子、またはＴ−ＤＮＡ
遺伝子に由来してよい。３’転写終結領域の非制限的な一例は、ノパリンシンターゼ３’
領域である（ｎｏｓ３’、Fraley et al. (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80:4803-
7）。異なる３’非翻訳領域の使用の一例はIngelbrecht et al., (1989) Plant Cell 1:6
71-80中に与えられる。ポリアデニル化シグナルの非制限的な例には、ピスム・サティブ
ム（Pisum sativum）ＲｂｃＳ２遺伝子からのポリアデニル化シグナル（Ps.RbcS2-E9、Co
ruzzi et al. (1984) EMBO J. 3:1671-9）、およびＡＧＲｔｕ．ｎｏｓ（ＧｅｎＢａｎｋ
受託番号Ｅ０１３１２）がある。

植物の形質転換
植物に導入遺伝子を導入するための当技術分野で知られている任意の技法を使用して、
本発明による形質転換植物を作出することができる。植物の形質転換に適した方法には、
米国特許第５，３８４，２５３号中に例示されたエレクトロポレーションによる方法、米
国特許第５，０１５，５８０号、同第５，５５０，３１８号、同第５，５３８，８８０号
、同第６，１６０，２０８号、同第６，３９９，８６１号、および同第６，４０３，８６
５号中に例示されたマイクロプロジェクタイルボンバードメントによる方法、米国特許第
５，６３５，０５５号、同第５，８２４，８７７号、同第５，５９１，６１６号、同第５
，９８１，８４０号、および同第６，３８４，３０１号中に例示されたアグロバクテリウ
ム（Agrobacterium）媒介形質転換による方法、および米国特許第５，５０８，１８４号
中に述べられたプロトプラスト形質転換による方法などの、それによってＤＮＡを細胞中
に導入することができるほぼ任意の方法が含まれると考えられている。これらの技法など
の技法の施用によって、ほぼ任意の植物種の細胞を安定的に形質転換することができ、当
業者に知られている技法によって、これらの細胞をトランスジェニック植物に成長させる
ことが可能である。綿花形質転換の状況で特に有用である可能性がある技法は米国特許第
５，８４６，７９７号、同第５，１５９，１３５号、同第５，００４，８６３号、および
同第６，６２４，３４４号中に開示され、特にアブラナ属（Brassica）植物を形質転換す
るための技法は例えば米国特許第５，７５０，８７１号中に開示され、ダイズを形質転換
するための技法は例えば米国特許第６，３８４，３０１号中に開示され、コーンを形質転
換するための技法は例えば米国特許第７，０６０，８７６号、米国特許第５，５９１，６
１６号、および国際ＰＣＴ公開ＷＯ９５／０６７２２中に開示される。

レシピエント細胞への外来ＤＮＡの送達の実施後、次のステップは一般に、さらなる培
養および植物再生用の形質転換細胞の確認に関する。形質転換体を同定する能力を向上さ
せるために、形質転換体を作製するために使用する、選択可能またはスクリーニング可能
なマーカー遺伝子および形質転換用ベクターを利用することが所望されうる。この場合、
おそらく形質転換された細胞集団は、１つまたは複数の選択剤に細胞を曝すことによりア
ッセイすることができ、または望ましいマーカー遺伝子形質に関して細胞をスクリーニン
グすることができる。

選択剤への曝露に対して生存する細胞、またはスクリーニングアッセイ中で陽性と記録
された細胞は、植物の再生を促進する培地中で培養することができる。いくつかの実施形
態において、任意の適切な植物組織培養培地（例えば、ＭＳおよびＮ６培地）は、成長調
節物質などのさらなる物質を含めることによって改変することができる。植物再生作業を
始めるのに十分な組織が得られるまで、または、反復した数ラウンドの手作業による選択
後、組織の形態が再生に適した状態になり（例えば、少なくとも２週間）、次いで苗条形
成を促進する培地に移すまで、成長調節物質を含む基本培地上に組織を維持することがで
きる。十分な苗条形成が起こるまで、培養物は定期的に移動させる。苗条が形成された後
、それらは苗条形成を促進する培地に移す。十分な根が形成された後、さらなる増殖およ
び成熟のため植物を土壌に移すことができる。

再生植物中の対象の遺伝子（例えば、導入遺伝子）の存在を確認するために、様々なア
ッセイを実施することができる。このようなアッセイには、例えば、サザンおよびノーザ
ンブロッティングおよびＰＣＲなどの分子生物学的アッセイ、例えば免疫学的手段（ＥＬ
ＩＳＡおよび／またはウエスタンブロット）または酵素機能による、タンパク質産物の存
在の検出などの生化学的アッセイ、葉または根のアッセイなどの植物部分アッセイ、およ
び再生植物全体の表現型の分析がある。

トランスジェニック植物の栽培および使用
本発明により核酸切除を示す植物は、１つまたは複数の望ましい形質、２つ以上の望ま
しい形質などを有する可能性がある。このような形質は、例えば、昆虫および他の病虫害
、および病原因子に対する抵抗性、除草剤に対する耐性、高い安定性、収率、または貯蔵
寿命、環境耐性、医薬品生産、工業製品生産、および栄養価向上を含むことができる。望
ましい形質は、植物中での（１つまたは複数の）ＺＦＮの発現が、その基礎遺伝子の封じ
込めによって、他の植物または次世代の植物への形質の伝達を低減または排除するように
望ましい形質を示す植物中で発現される、（１つまたは複数の）ＺＦＮにより認識される
核酸配列が隣接する遺伝子によって与えられる可能性がある。したがって、一実施形態に
おいて、望ましい形質は、ＺＦＮ認識配列が隣接し得る植物中の（１つまたは複数の）導
入遺伝子の存在に原因がある可能性がある。他の一実施形態において、望ましい形質は従
来の品種改良によって得ることができ、その形質はＺＦＮ認識配列が隣接する１つまたは
複数の遺伝子によって与えられる可能性がある。

本発明による核酸切除を示す植物は、本発明の核酸分子で形質転換することができる任
意の植物であってよい。したがって、植物は双子葉植物または単子葉植物であってよい。
本発明の方法中で有用な双子葉植物の非制限的な例には、アルファルファ、マメ、ブロッ
コリ、キャベツ、ニンジン、カリフラワー、セロリ、ハクサイ、綿花、キュウリ、ナス、
レタス、メロン、エンドウ、コショウ、ピーナッツ、ジャガイモ、パンプキン、ラディッ
シュ、ナタネ、ホウレンソウ、ダイズ、カボチャ、テンサイ、ヒマワリ、タバコ、トマト
、およびスイカがある。本発明の方法中で有用な単子葉植物の非制限的な例には、コーン
、タマネギ、イネ、モロコシ、コムギ、ライムギ、キビ、サトウキビ、オートムギ、ライ
コムギ、スイッチグラス、およびターフグラスがある。

本発明による核酸切除を示す植物は任意の形式で使用または栽培することができ、他の
植物への切除核酸配列の伝達は望ましくない。したがって、特に１つまたは複数の望まし
い形質を有するように操作されたＧＭ植物は、本発明による核酸分子で形質転換すること
ができ、当業者に知られている任意の方法によって収穫および栽培することができる。

以下の実施例は、本発明の実施形態を例証するために含まれる。実施例中に開示する技
法は、本発明の実施において十分機能することが本発明者らにより発見された技法を表す
ことは、当業者によって理解される。しかしながら当業者は、本開示に照らして、開示す
る具体的な実施形態において多くの変形を作製することができ、本発明の範囲から逸脱せ
ずに同様または類似の結果をさらに得ることができることを理解する。より具体的には、
同様または類似の結果を得ながら、化学的かつ生理的に関係がある特定の作用物質を、本
明細書に記載する作用物質に置換することができることは明らかである。当業者には明ら
かである全てのこのような類似の代替および変更形態は、添付の特許請求の範囲によって
定義する本発明の範囲内にあると考えられる。

プラスミドの設計および構築。
ジンクフィンガー結合部位が隣接する標的レポーター遺伝子発現カセットを含有する標
的構築物（ｐＤＡＳ５３８０）、およびジンクフィンガーヌクレアーゼ遺伝子発現カセッ
トを含有する切除構築物（ｐＤＡＳ５３８１）を設計し構築した。タバコに別々に形質転
換されるようにこれらの構築物を設計した。標的レポーター遺伝子の切除は２タバコ系の
交配により実施し、機能性ジンクフィンガーヌクレアーゼは標的レポーター遺伝子カセッ
トに隣接するジンクフィンガー結合部位を認識し、ゲノムＤＮＡを切断した。標的レポー
ター遺伝子構築物を含有する植物系と、切除構築物を含有する植物系の交配は、植物ゲノ
ムからのレポーター遺伝子の除去／欠失をもたらした。

標的構築物ｐＤＡＳ５３８０の構築および設計。
ｐＤＡＳ５３８０（図１）はバイナリープラスミドベクターとして構築した。この構築
物は、以下の植物転写ユニット（ＰＴＵ）発現カセットおよび遺伝子エレメント、ＲＢ７
ＭＡＲ（（マトリックス結合領域（Thompson et al. (1997) ＷＯ９７２７２０７））、
ＣＣＲ５結合部位反復４×（Perez et al. (2008) Nat. Biotechnol. 26:808-16）、Ａｔ
ｕＯＲＦ１３’ＵＴＲ（アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefa
ciens）のオープンリーディングフレーム−１，３’非翻訳領域（Huang et al. (1990) J
. Bacteriol. 172:1814-22））／ＧＵＳ（β-Ｄ-グルクロニダーゼ（Jefferson (1989) N
ature 342:837-8））／ＡｔＵｂｉ１０（シロイヌナズナ（Arabidopsis thaliana）のユ
ビキチン−１０プロモーター（Callis et al. (1990) J. Biol. Chem. 265:12486-93））
、ＣＣＲ５結合部位反復４×：：ＡｔＡｃｔ２（Ａ．タリアナ（A. thaliana）のアクチ
ン−２プロモーター（An et al. (1996) Plant J. 10:107-21））／ＴｕｒｂｏＧＦＰ（
ｔｕｒｂｏ−緑色蛍光タンパク質（Evdokimov et al. (2006) EMBO Rep. 7(10):1006-12
））／ＡｔｕＯＲＦ２３の３’ＵＴＲ（アグロバクテリウム・ツメファシエンス（A. tum
efaciens）のオープンリーディングフレーム−２３，３’非翻訳領域（Gelvin et al. (1
987) ＥＰ２２２４９３））、ＡｔＵｂｉ１０／ＰＡＴ（ホスフィノトリシンアセチルト
ランスフェラーゼ（Wohlleben et al. (1988) Gene 70:25-37））／ＡｔｕＯＲＦ１の３
’ＵＴＲを含有する。ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットは、ＧＦＰおよびＰＡＴ ＰＴＵ発現カ
セットとトランスで置いた。さらに、ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットにＣＣＲ５ジンクフィ
ンガーヌクレアーゼ結合部位が隣接していた。この配列（配列番号１）は、ＧＵＳ ＰＴ
Ｕ発現カセットの上流および下流で直接４回反復した。ジンクフィンガー結合部位の位置
は図１中で「ＣＣＲ５結合部位」と確認した。これらの部位は認識され、切除構築物、ｐ
ＤＡＳ５３８１によってコードされるジンクフィンガーヌクレアーゼタンパク質と結合す
る。このバイナリーベクターの構築は、標準的な分子生物学の技法を使用して実施した。
最終プラスミドは、制限酵素の消化およびＤＮＡ配列決定によって確認した。

切除構築物、ｐＤＡＳ５３８１の構築および設計。
ＣＣＲ５結合部位と結合するように具体的に設計したジンクフィンガーヌクレアーゼ遺
伝子を含有するバイナリープラスミド（配列番号２）は、Perez et al.,(2008)Nature Bi
otechnol. 26:808-16中に記載されたように設計および構築した。ｐＤＡＳ５３８１（図
２）は、以下のＰＴＵ発現カセット、ＣｓＶＭＶ（キャッサバ葉脈モザイクウイルス（Ca
ssava Vein Mosaic virus）由来のプロモーター（Verdaguer et al. (1996) Plant Mol.
Biol. 31:1129-39））／ＣＣＲ５ジンクフィンガーヌクレアーゼコード領域（オペーク−
２核局在化配列を含有（Maddaloni et al. (1989) Nucleic Acids Res. 17(18):7532）、
ｒ１６２ｙ１１ジンクフィンガー結合ドメイン、ＦｏｋＩヌクレアーゼドメイン（Looney
et al. (1989) Gene 80:193-208）、テソア・アシニア（Thesoa assigna）ウイルス由来
のＴ２Ａスタッター配列（Mattion et al. (1996) J. Virol. 70:8124-7）、第二のオペ
ーク−２核局在化配列、１６８ＧＡｖＥジンクフィンガー結合ドメイン、および第二のＦ
ｏｋＩヌクレアーゼドメイン）／Ａｔｕ ＯＲＦ２３の３’ＵＴＲ、ＡｔＵｂｉ３プロモ
ーター（Ａ．タリアナ（A.thaliana）のユビキチン−３プロモーター（Callis et al. (1
995) Genetics 139(2):921-39））／ＨＰＴＩＩ（ヒグロマイシンホスホトランスフェラ
ーゼＩＩ（Gritz et al. (1983) Gene 25(2-3):179-88））／Ａｔｕ ＯＲＦ２４の３’
ＵＴＲ（アグロバクテリウム・ツメファシエンス（A. tumefaciens）のオープンリーディ
ングフレーム−２４，３’非翻訳領域（Gelvin et al. (1987) ＥＰ２２２４９３））を
含有する。このバイナリーベクターの構築は、標準的な分子生物学の技法を使用して実施
した。最終プラスミドは、制限酵素の消化およびＤＮＡ配列決定によって確認した。

アグロバクテリウム（Agrobacterium）媒介の植物形質転換。
ｐＤＡＳ５３８０およびｐＤＡＳ５３８１によるアグロバクテリウム（Agrobacterium
）の形質転換。
エレクトロコンピテントアグロバクテリウム・ツメファシエンス（A.tumefaciens）（
株ＬＢＡ４４０４）細胞をＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）から得て、
WeigelおよびGlazebrook (2002)「How to Transform Arabidopsis」、in Arabidopsis: A
Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New
York, U.S.Aから改変したエレクトロポレーション法を使用して形質転換した。形質転換
コロニーは、スペクチノマイシン（５０μｇ／ｍＬ）およびストレプトマイシン（１２５
μｇ／ｍＬ）を含有する酵母エキスペプトン培地（ＹＥＰ）で得て、制限酵素の消化によ
って確認した。正確な制限酵素バンドパターンを示したクローンは、グリセロールストッ
クとして−８０℃で保存した。

アグロバクテリウム（Agrobacterium）媒介のタバコ（Nicotiana tabacum）の形質転換
。
タバコ（ペティットハバナ（Petit Havana）種）のリーフディスクを、ｐＤＡＳ５３８
１およびｐＤＡＳ５３８０を含有するアグロバクテリウム・ツメファシエンス（A.tumefa
ciens）（株ＬＢＡ４４０４）を使用して形質転換した。これらのプラスミドを含有する
アグロバクテリウム（Agrobacterium）の単コロニーを、スペクチノマイシン（５０μｇ
／ｍＬ）およびストレプトマイシン（１２５μｇ／ｍＬ）を含有する４ｍＬのＹＥＰに接
種し、１９０ｒｐｍでシェイカーにおいて、２８℃において一晩インキュベートした。４
ｍＬの種培養液を後に使用して、スペクチノマイシン（５０μｇ／ｍＬ）およびストレプ
トマイシン（１２５μｇ／ｍＬ）を含有するＹＥＰ培地の２５ｍＬ培養液を接種し、１２
５ｍＬのバッフル付きエルレンマイヤーフラスコ中で増殖させた。この培養液は、それが
約１．２のＯＤ_６００に達するまで、１９０ｒｐｍで攪拌しながら２８℃においてインキ
ュベートした。１０ｍＬのアグロバクテリウム（Agrobacterium）縣濁物を滅菌６０×２
０ｍｍペトリ皿に置いた。

３０ｇ／Ｌスクロースを含むＭＳ培地（Ｐｈｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌａｂｓ、
Ｓｈａｗｎｅｅ Ｍｉｓｓｉｏｎ、ＫＳ、＃Ｍ５２４）上、ＰｈｙｔａＴｒａｙｓ（商標
）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）中で無菌増殖した植物から切断した２５の新
たな切断リーフディスク（０．５ｃｍ^２）を数分間アグロバクテリウム（Agrobacterium
）の１０ｍＬ一晩培養液に浸し、滅菌濾過紙上で乾燥状態にし、次いで１ｍｇ／Ｌのイン
ドール酢酸および１ｍｇ／Ｌのベンジアミノプリン（benzyamino purine）を加えた同じ
培地上に置いた。４８時間の同時培養後、ｐＤＡＳ５３８０含有アグロバクテリウム（Ag
robacterium）と同時培養したリーフディスクを、５ｍｇ／ＬのＢａｓｔａ（登録商標）
および２５０ｍｇ／Ｌのセフォタキシムを含む同じ培地に移した。ｐＤＡＳ５３８１含有
アグロバクテリウム（Agrobacterium）と同時培養したリーフディスクは、１０ｍｇ／Ｌ
のヒグロマイシンおよび２５０ｍｇ／Ｌのセフォタキシムを含む同じ培地に移した。３週
間後、個々のＴ_０植物を、ｐＤＡＳ５３８０用の１０ｍｇ／ＬのＢａｓｔａ（登録商標）
および２５０ｍｇ／Ｌのセフォタキシムを含むＭＳ培地、またはｐＤＡＳ５３８１用の１
０ｍｇ／Ｌのヒグロマイシンおよび２５０ｍｇ／Ｌのセフォタキシムを含むＭＳ培地のい
ずれかに移し、土壌への移植前にさらに３週間、温室に移した。

Ｔ_０植物のコピー数、完全長ＰＴＵおよび発現分析。
コピー数アッセイ
Ｉｎｖａｄｅｒ（登録商標）および加水分解プローブアッセイを実施してＢａｓｔａ（
登録商標）耐性植物のサンプルをスクリーニングし、ｐＤＡＳ５３８０およびｐＤＡＳ５
３８１中にＴ−ＤＮＡの単一コピー組み込みを含有するサンプルを同定した。遺伝子発現
カセットに特異的なプライマーおよびプローブを使用して、詳細な分析を行った。他の分
析用の単一コピーイベントを同定した。

組織サンプルを９６ウエルプレート中に回収し、２日間凍結乾燥させた。組織解離を、
Ｋｌｅｃｏ（商標）組織粉砕機およびタングステンビーズ（Ｖｉｓａｌｉａ、ＣＡ）を用
いて実施した。組織解離後、製造者の示したプロトコールに従いＤＮｅａｓｙ９６Ｐｌａ
ｎｔキット（商標）（Ｑｉａｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＭＤ）を使用して、ハイス
ループット形式でゲノムＤＮＡを単離した。Ｑｕａｎｔ-ＩＴ Ｐｉｃｏ Ｇｒｅｅｎ
ＤＮＡアッセイキット（商標）（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇ
ｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）によって、ゲノムＤＮＡを定量化した。定量化したゲノ
ムＤＮＡは、Ｂｉｏｒｏｂｏｔ３０００（商標）自動液体ハンドラー（Ｑｉａｇｅｎ、Ｇ
ｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＭＤ）を使用して、Ｉｎｖａｄｅｒ（登録商標）アッセイ用に９ｎ
ｇ／μＬに、または加水分解プローブアッセイ用に５ｎｇ／μＬに調節した。

Ｃｕｓｔｏｍ Ｉｎｖａｄｅｒ（登録商標）アッセイは、Ｈｏｌｏｇｉｃ（Ｍａｄｉｓ
ｏｎ、ＷＩ）によりタバコにおけるＰＡＴ遺伝子分析用に開発された。ゲノムＤＮＡサン
プル（９ｎｇ／μＬで７．５μＬ）を、１０分間９５℃でのインキュベーションによって
９６ウエルプレート形式で最初に変性させ、次いで氷上で冷却した。次に、７．５μＬの
マスター混合物（ｐａｔと内部参照遺伝子（フェニルアラニンアンモニウムリアーゼ（ｐ
ａｌＡ）；ＧｅｎＢａｎｋ ＩＤ：ＡＢ００８１９９）の３μＬプローブ混合物、３．５
μＬのＣｌｅａｖａｓｅ（登録商標）ＸＩ ＦＲＥＴ混合物、および１μＬのＣｌｅａｖ
ａｓｅ（登録商標）ＸＩ酵素／ＭｇＣｌ_２溶液）をそれぞれのウエルに加え、サンプルに
は鉱油を塗った。プレートは密閉し、ＢｉｏＲａｄ Ｔｅｔｒａｄ（登録商標）サーモサ
イクラーにおいて１時間６３℃でインキュベートした。蛍光プレートリーダーで読み取る
前に、プレートは周囲温度に冷却した。全てのプレートは１コピー、２コピーおよび４コ
ピー標準、ならびに野生型対照サンプルを含有し、ブランクウエルはサンプルを含有して
いなかった。ＦＡＭ（λ４８５〜５２８ｎｍ）とＲＥＤ（λ５６０〜６２０ｎｍ）チャン
ネル両方に関する読み取り値を回収し、これらから、各チャンネルに関するゼロ（すなわ
ち、バックグラウンド）を超える倍数値は、鋳型なし未処理シグナルで割ったサンプルの
未処理シグナルにより各サンプルに関して決定した。このデータから、標準曲線を構築し
、線形回帰分析により最適性を決定した。この適性から確認したパラメーターを使用して
、見かけのｐａｔコピー数を次いで各サンプルに関して推定した。

ＴａｑＭａｎ（登録商標）アッセイと類似した加水分解プローブアッセイによる導入遺
伝子コピー数の決定を、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）システム（Ｒｏｃｈ
ｅ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を使用してリ
アルタイムＰＣＲにより実施した。アッセイは、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）プ
ローブ設計ソフトウエア２．０を使用して、ＨＰＴＩＩ、ＰＡＴおよび内部標準遺伝子フ
ェニルアラニンアンモニウムリアーゼ（ｐａｌＡ）用に設計した。増幅用に、Ｌｉｇｈｔ
Ｃｙｃｌｅｒ（登録商標）４８０プローブマスター混合物（Ｒｏｃｈｅ Ａｐｐｌｉｅｄ
Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を、０．４μＭの各プライマーお
よび０．２μＭの各プローブを含有する１０μＬ体積の多重反応混合物中に１×最終濃度
に調製した(表１)。２ステップの増幅反応を３８秒間５８℃において延長部分で実施し蛍
光を得た。全てのサンプルは三連で施用し、平均サイクル閾値（Ｃｔ）を各サンプルの分
析用に使用した。リアルタイムＰＣＲデータの分析は、相対定量モジュールを使用してＬ
ｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）ソフトウエアリリース１．５を使用して実施し、ΔΔ
Ｃｔ法に基づく。このため、シングルコピーカリブレーターからのゲノムＤＮＡのサンプ
ルおよび知られている２コピーチェックをそれぞれの施用に含めた（前述のＩｎｖａｄｅ
ｒ（登録商標）アッセイに使用したものと同一）。

サザンブロット解析による完全長ＰＴＵアッセイ。
サザンブロット解析を使用して、挿入ＤＮＡ断片の組み込みパターンを確定し、完全長
ＰＴＵを含有したｐＤＡＳ５３８０およびｐＤＡＳ５３８１イベントを同定した。データ
を作成して、タバコゲノム中に挿入した導入遺伝子の組み込みおよび完全性を実証した。
サザンブロットのデータを使用して、ｐＤＡＳ５３８０およびｐＤＡＳ５３８１由来のＴ
−ＤＮＡの完全コピーの単純な組み込みを確認した。詳細なサザンブロット解析は、遺伝
子発現カセットに特異的なプローブを使用して実施した。これらのプローブと特異的制限
酵素で消化したゲノムＤＮＡのハイブリダイゼーションによって、そのパターンを分析し
てＴ_１に進行するイベントを同定することが可能である、いくつかの分子量のゲノムＤＮ
Ａ断片を同定した。これらの解析は、プラスミド断片がＰＴＵの再編成なしでタバコゲノ
ムＤＮＡに挿入されたことも示した。

組織サンプルを５０ｍＬの円錐形チューブ（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｐ
ｉｔｔｓｂｕｒｇｈ、ＰＡ）中に回収し、２日間凍結乾燥させた。組織解離を、ペイント
ミキサー組織粉砕機およびタングステンビーズを用いて実施した。組織解離後、製造者の
示したプロトコールに従いＤＮｅａｓｙ（商標）Ｐｌａｎｔ Ｍａｘｉキット（Ｑｉａｇ
ｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＭＤ）を使用してゲノムＤＮＡを単離した。精製したゲノ
ムＤＮＡを沈殿させ、５００μＬのＴＥバッファーに再縣濁した。ゲノムＤＮＡは、Ｑｉ
ａｇｅｎ Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｔｉｐｓ（商標）キットを使用してさらに精製した。ゲノム
ＤＮＡは、Ｑｕａｎｔ−ＩＴ Ｐｉｃｏ Ｇｒｅｅｎ（商標）ＤＮＡアッセイキット（Ｍ
ｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）に
よって定量化した。定量化したゲノムＤＮＡは一定体積で８μｇに調整した。

それぞれのサンプルに関して、８μｇのゲノムＤＮＡを、制限酵素ＭｆｅＩおよびＮｓ
ｉＩ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ、Ｂｅｖｅｒｌｅｙ、ＭＡ）で完全に消
化した。サンプルは一晩３７℃でインキュベートした。消化したＤＮＡは、製造者の示し
たプロトコールに従いＱｕｉｃｋ Ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（商
標）（Ｅｄｇｅ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を用いた沈
殿によって濃縮させた。次いでゲノムＤＮＡは、１時間６５℃で２５μＬの水に再縣濁し
た。再縣濁したサンプルは１×ＴＡＥ中で調製した０．８％アガロースゲル上に載せ、１
×ＴＡＥバッファーにおいて１．１Ｖ／ｃｍで一晩電気泳動にかけた。ゲルには連続的に
３０分間の変性（０．２ＭのＮａＯＨ／０．６ＭのＮａＣｌ）、および３０分間の中和（
０．５Ｍのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）／１．５ＭのＮａＣｌ）を施した。

ＤＮＡ断片の移動は、クロマトグラフィー用ペーパーウィックおよびペーパータオルを
使用することにより、処理済Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ（商標）ＮＹ＋移動膜（Ｍｉｌｌｉｐｏ
ｒｅ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）上のゲルを介して、一晩２０×ＳＳＣ溶液を受動的に
運ぶことによって実施した。移動後、膜は２×ＳＳＣで軽く洗浄し、Ｓｔｒａｔａｌｉｎ
ｋｅｒ（商標）１８００（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、ＬａＪｏｌｌａ、ＣＡ）で架橋状態に
し、３時間８０℃で真空ベーク状態にした。

モデル４００ハイブリダイゼーションインキュベーター（Ｒｏｂｂｉｎｓ Ｓｃｉｅｎ
ｔｉｆｉｃ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ）を使用してガラス製ローラーボトルにおいて、
６５℃で１時間プレハイブリダイゼーション溶液（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｈｙｂ ｐｌｕｓ（
商標）、Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）とブロットをインキュベートした。プロ
ーブはコード配列全体を含有するＰＣＲ断片から調製した。ＰＣＲアンプリコンはＱＩＡ
ＥＸ ＩＩ（商標）ゲル抽出キットを使用して精製し、Ｒａｎｄｏｍ ＲＴ Ｐｒｉｍｅ
ＩＴ（商標）標識キット（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）によりα
^３２Ｐ-ｄＣＴＰで標識した。ブロットはハイブリダイゼーションバッファーに直接加え
た変性プローブと６５℃で一晩ハイブリダイズさせて、ブロット１ｍＬ当たり約２百万数
にした。ハイブリダイゼーション後、ブロットは６５℃において４０分間０．１×ＳＳＣ
／０．１％ＳＤＳで連続的に洗浄した。最後に、ブロットは化学発光フィルム（Ｒｏｃｈ
ｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）において露光させ、Ｍ
ｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｙｎａｍｉｃｓ Ｓｔｏｒｍ８６０（商標）イメージングシステム
を使用し画像化した。

ｐＤＡＳ５３８０またはｐＤＡＳ５３８１断片の知られている制限酵素部位に基づいた
、特定消化酵素およびプローブでの予想および実測断片サイズは、図３および４中に示す
。この試験で実施したサザンブロット解析を使用して、タバコゲノムに挿入したプラスミ
ドｐＤＡＳ５３８０またはｐＤＡＳ５３８１由来の完全長の完全ＰＴＵを含有したイベン
トを同定した（それぞれ図３および４）。

ＧＵＳ発現アッセイ。
ｐＤＡＳ５３８０トランスジェニック植物が機能性ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットを含有
したかどうか試験するために、葉サンプルを採取し、ＧＵＳ発現に関して組織化学的に染
色した。リーフディスク（約０．２５ｃｍ^２）を切断し、２５０μＬのＧＵＳアッセイ溶
液を含有する２４ウエルトレイ中に置いた（ウエル当たり１リーフディスク）（Jefferso
n (1989) Nature 342:837-8）。２４ウエル皿はＮｅｓｃｏｆｉｌｍ（登録商標）（Ｆｉ
ｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇｈ、ＰＡ）で覆い、２４時間３７
℃でインキュベートした。２４時間後、ＧＵＳアッセイ溶液はそれぞれのウエルから除去
し、２５０μＬの１００％エタノールと交換した。皿はＮｅｓｃｏｆｉｌｍ（登録商標）
で覆い、２〜３時間室温でインキュベートした。このエタノールは除去し、新しいエタノ
ールと交換した。次いでリーフディスクを解剖顕微鏡下で観察した。青色に染色されたリ
ーフディスクは、機能性ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットを含有するとして記録した。

ＧＦＰ発現アッセイ。
タバコ葉サンプルを、ＥＬＩＳＡを使用しＧＦＰ発現に関して分析した。プレートは、
精製ウサギ抗ＧＦＰ抗体を用いて４℃で一晩コーティングした。分析の日に、プレートを
０．５％ＢＳＡ、ＰＢＳＴ中でブロッキングした。最大速度で３分間Ｋｌｅｃｏ（商標）
組織粉砕機において２つのステンレススチールビーズを用いた、ビーズによる凍結葉切片
の破砕によって、二連の葉サンプルを抽出した。サンプルは１０分間３０００ｒｃｆで遠
心分離し、上清は回収した。抽出サンプルは１：５および１：５０希釈でＥＬＩＳＡプレ
ート上に載せた。大腸菌（E.coli）組換えＧＦＰの標準曲線を、１２．５ｎｇ／ｍＬ〜０
．１９５ｎｇ／ｍＬの濃度でそれぞれのプレートにおいて作成した。標準およびサンプル
はＥＬＩＳＡプレート上で１時間インキュベートした。プレートは洗浄し、ホースラディ
ッシュペルオキシダーゼ結合ウサギ抗ＧＦＰ抗体を加えた。１時間のインキュベーション
後、プレートは洗浄し基質を加えた。Ｈ_２ＳＯ_４を用いて反応を停止させる前に色を発色
させた。４５０ｎｍおよび６５０ｎｍ参照フィルターでプレートリーダーにおいて吸光度
を読み取った。二次標準曲線は、ＯＤに対して大腸菌（E.coli）標準の濃度を適合させる
ことによって作成した。未知のサンプルの濃度は線形回帰分析により決定した。

標的Ｔ_１作出用のＴ_０植物の選択。
合計６８のＢａｓｔａ（登録商標）耐性、ＧＵＳ＋／ＧＦＰ＋植物を再生し、ＰＡＴ
Ｉｎｖａｄｅｒ（登録商標）アッセイに基づいて、３８の植物が１〜２の導入遺伝子コピ
ーを有することが分かった。サザンブロット解析によって１４の単一コピーイベントを同
定し、その８個が完全ＰＡＴ、ＧＵＳおよびＧＦＰ ＰＴＵと一致するバンドを示した。
単一コピー、完全長ＰＴＵを示し、ＧＵＳおよびＧＦＰを発現する３個のｐＤＡＳ５３８
０イベント、ｐＤＡＳ５３８０−３、ｐＤＡＳ５３８０−１８およびｐＤＡＳ５３８０−
４６を自家受粉させてＴ_１種子を作出した。

ＦｏｋＩ発現アッセイ。
定量リアルタイムＰＣＲ（ｑＲＴ−ＰＣＲ）を使用して、ｐＤＡＳ５３８１で形質転換
したＴ_０タバコ植物におけるジンクフィンガーヌクレアーゼのｍＲＮＡ発現を定量化した
。インプットｍＲＮＡからのｍＲＮＡ発現に対してこれらのレベルを標準化することによ
って、タバコの葉のサンプルからの相対的ＦｏｋＩ ｍＲＮＡ発現を定量化するために、
このアッセイを開発した。総ｍＲＮＡに対するＦｏｋＩ ｍＲＮＡの標準化は異なるサン
プル間のＦｏｋＩ発現の比較を可能にし、これを使用して高度に発現する可能性があるイ
ベントを同定することができる。相対的なＺＦＮの発現を表１．１に列挙する。

ｐＤＡＳ５３８１で形質転換したＴ_０タバコ植物由来の葉材料を回収し、氷上に置いた
。ＱｉａｇｅｎのＲＮｅａｓｙ（登録商標）Ｐｌａｎｔ Ｍｉｎｉキット（Ｑｉａｇｅｎ
、Ｇｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＭＤ）を使用して全ＲＮＡを単離した。全ｍＲＮＡを製造者の
勧めに従いＲＮａｓｅを含まないＤＮａｓｅで処理して、定量ＲＴ−ＰＣＲ中に増幅する
可能性がある任意の汚染ＤＮＡを除去した。第一鎖合成はＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ ＩＩ
Ｉ（商標）逆転写酵素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）の製造者の説
明書に従い設定し、ランダムヘキサマーを使用してプライマー処理した。合成したｃＤＮ
Ａ鎖は１：１０および１：５０の比で水に希釈した。それぞれのアリコートは−２０℃で
保存した。

ｑＲＴ-ＰＣＲ反応は以下のように実施した。１５μＬの反応液中フォワードプライマ
ーＦｏｋ１＿ＵＰＬ＿Ｆ（配列番号１２）、リバースプライマーＦｏｋ１＿ＵＰＬ＿Ｒ（
配列番号１３）、プローブＵＰＬ番号１３０（カタログ番号０４６９３６６３００１、Ｒ
ｏｃｈｅ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）、１×ＬＣ４８０プローブマスターバッフ
ァー（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）、および
１．５μＬの合成ｃＤＮＡ。合成ｃＤＮＡの段階希釈を行い反復してアッセイした。Ｌｉ
ｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）４８０プローブマスターキット番号０４７０７４９４０
０１（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を使用
して、カクテルを増幅した。９６ウエルマイクロプレートを境界線確定および標識し、１
３．５μＬのマスター混合物をウエル毎に加えた。密封ホイルをマイクロプレートに軽く
取り付けた。Ｑｉａｇｅｎマイクロプレート遠心分離機において３，０００ｒｐｍで１分
間、プレートを遠心分離した。密封ホイルを除去し、１．５μＬの解凍、希釈合成ｃＤＮ
Ａ鎖を加えた。密封ホイルをプレートに確実に固定し、前に記載したように遠心分離した
。ＰＣＲプログラムは以下のように実施した。ｉ）９５℃で５分間活性化、ｉｉ）９５℃
で１０秒間変性（４．８℃／秒）、ｉｉｉ）６０℃で２５秒間アニーリング／延長（２．
５℃／秒）、ｉｖ）７２℃で１秒間取り込み（４．８℃／秒）。ステップｉｉ〜ｉｖはさ
らに４５回反復した、ｖｉ）３８℃で５秒間冷却。

内部参照遺伝子のｍＲＮＡ発現を定量化するためのｑＲＴ-ＰＣＲアッセイを別の方法
として実施して、ジンクフィンガーヌクレアーゼのｍＲＮＡ発現を標準化した。アクチン
ｑＲＴ-ＰＣＲ反応は以下のように実施した。１０μＬの反応液中、フォワードプライマ
ーＢＹ２ＡＣＴ８９Ｓ（配列番号１４）、リバースプライマーＢＹ２ＡＣＴ８９Ａ（配列
番号１５）、プローブＢＹＡＣＴＦＱ（配列番号１８）、１×ＬＣ４８０プローブマスタ
ーバッファー、および２．０μＬの合成ｃＤＮＡ。合成ｃＤＮＡの段階希釈を行い反復し
てアッセイした。さらに、２μＬのプラスミドＤＮＡコピー数標準を最小濃度から最高濃
度の希釈系で別々のウエルに加え、これらの標準を（全ｍＲＮＡから合成した）アクチン
ｃＤＮＡと比較してコピー数を標準化した。アクチンＤＮＡコピー数標準系を、コピー数
を定量化するために、標的アンプリコンをｐＣＲ２．１プラスミド（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅ
ｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）にクローニングすること、および希釈バッファー（１０ｍ
Ｍのトリス−ＨＣｌ［ｐＨ８．０］、１００μｇ／ｍＬの酵母ｔＲＮＡ）において調製し
た希釈系を作製することによって作製した。ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）４８０
プローブマスターキット番号０４７０７４９４００１（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉ
ｃｓ、ＵＳＡ）を使用して、カクテルを増幅した。９６ウエルマイクロプレートを境界線
確定および標識し、８．０μＬのマスター混合物をウエル毎に加えた。密封ホイルをマイ
クロプレートに軽く取り付けた。Ｑｉａｇｅｎマイクロプレート遠心分離機において３，
０００ｒｐｍで１分間、プレートを遠心分離した。密封ホイルを除去し、２．０μＬの解
凍、希釈合成ｃＤＮＡ鎖またはプラスミドＤＮＡを加えた。密封ホイルをプレートに確実
に固定し、前に記載したように遠心分離した。ＰＣＲプログラムは以下のように実施した
。ｉ）９５℃で１０分間活性化、ｉｉ）９５℃で１０秒間変性（４．８℃／秒）、ｉｉｉ
）５６℃で４０秒間アニーリング／延長（２．５℃／秒）、ｉｖ）７２℃で１秒間取り込
み（４．８℃／秒）。ステップｉｉ〜ｉｖはさらに４５回反復した、ｖｉ）３８℃で５秒
間冷却。

切除Ｔ_１作出用のＴ_０植物の選択。
合計５４のヒグロマイシン耐性植物を再生し、加水分解プローブアッセイに基づいて、
３４の植物が１〜２の導入遺伝子コピーを有することが分かった。サザンブロット解析に
よって１２の単一コピーイベントを同定し、その７個が完全ＨＰＴおよびＺＦＮ ＰＴＵ
と一致するバンドを示した。単一コピー導入遺伝子、完全長ＰＴＵを示し、Ｆｏｋ１を発
現するＴ_０ｐＤＡＳ５３８１イベント、ｐＤＡＳ５３８１−１８、ｐＤＡＳ５３８１−４
９およびｐＤＡＳ５３８１−５６を自家受粉させてＴ_１種子を作出した。

Ｔ_１植物の作製および選択。
同型接合体Ｔ_１植物を作出するためのＴ_０植物の自家受粉。
以下のＴ_０植物イベント、ｐＤＡＳ５３８０−３、ｐＤＡＳ５３８０−１８、ｐＤＡＳ
５３８０−４６、ｐＤＡＳ５３８１−１８、ｐＤＡＳ５３８１−４９およびｐＤＡＳ５３
８１-５６を成熟状態まで成長させ、自花受精させてＴ_１種子を作出した。発芽後、ｐＤ
ＡＳ５３８０およびｐＤＡＳ５３８１構築物の同型接合体であったＴ_１植物は導入遺伝子
欠失に使用した。メンデルの遺伝の法則に従うと、ｐＤＡＳ５３８１同型接合体単一コピ
ーＴ_１植物とｐＤＡＳ５３８０同型接合体単一コピーＴ_１植物の交配は、ｐＤＡＳ５３８
１構築物とｐＤＡＳ５３８０構築物の両方の異型接合体単一コピーを含有するＦ_１集団を
もたらす。この交配の子孫は、ＧＵＳレポーター遺伝子の１コピーを含有すると予想した
。このように、ＧＵＳを発現しないＦ_１植物は、ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットが切除され
ていることを示す。

１６：８時間の光周期下、日中および夜間温度２２〜２４℃で、Ｔ_０植物を成長させた
。一次花茎が伸長し花芽を形成し始めたとき、植物全体を自花受粉バッグで覆い、異系交
配を予防した。自家受粉由来の種子は移植後約８週間で採取した。自花受精植物由来の種
子を回収し土壌にまいた。生成したＴ_１集団は、前に記載した条件下において温室中で成
長させた。

Ｔ_１植物の分子学的スクリーニング。
接合生殖性アッセイ。
Ｔ_１植物の接合生殖性を定量化するためのアッセイを、前に記載した加水分解プローブ
法（コピー数アッセイ）を使用して実施した。リアルタイムＰＣＲデータの分析を実施し
、Ｔ_１植物中に含有された導入遺伝子コピーの数はコピー数対照との比較によって決定し
た。このため、単一コピーキャリブレーターを含有することが事前に示された親Ｔ_０植物
由来のゲノムＤＮＡのサンプルを含めた。同型接合体ｐＤＡＳ５３８０およびｐＤＡＳ５
３８１Ｔ_１植物を同定した。

ＧＵＳ発現アッセイ。
交配実験に進むために発現イベントを同定することが重要であった。ｐＤＡＳ５３８０
Ｔ_１植物を、前に記載したプロトコールを使用してアッセイした（ＧＵＳ発現アッセイ）
。上記の接合生殖性アッセイからｐＤＡＳ５３８０構築物の同型接合体として選択した、
ｐＤＡＳ５３８０植物を試験した。全ての植物が青色に染色された。

ＧＦＰ発現アッセイ。
ｐＤＡＳ５３８０Ｔ_１植物を、前に記載したプロトコールを使用してアッセイした（Ｇ
ＦＰ発現アッセイ）。上記の接合生殖性アッセイからｐＤＡＳ５３８０構築物の同型接合
体として選択した、ｐＤＡＳ５３８０植物を試験した。試験した全ての植物がＧＦＰ発現
に関して陽性であった。

ＦｏｋＩ発現アッセイ。
定量リアルタイムＰＣＲ（ｑＲＴ−ＰＣＲ）を使用して、ｐＤＡＳ５３８１で形質転換
した同型接合体ｐＤＡＳ５３８１Ｔ_１タバコ植物におけるジンクフィンガーヌクレアーゼ
のｍＲＮＡ発現を定量化した。前に記載したプロトコール（ＦｏｋＩ発現アッセイ）をＴ
_１植物のスクリーニングに使用して、ジンクフィンガーヌクレアーゼが発現されていたこ
とを確認し、ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットを切除する多量のジンクフィンガーヌクレアー
ゼを生成し得るイベントを同定した。

Ｔ_１植物の選択。
Ｔ_１ｐＤＡＳ５３８０イベントをＧＵＳおよびＧＦＰの接合生殖性および発現に関して
スクリーニングした。Ｔ_１ｐＤＡＳ５３８１イベントはＦｏｋｌの接合生殖性および発現
に関してスクリーニングした。これらの結果に基づいて、Ｔ_１イベントを交配用に選択し
た。これらのイベントが最適であると確認した。それらが同型接合体、単一コピー、完全
長、導入遺伝子発現イベントであったからである。さらに、無同胞種ｐＤＡＳ５３８１植
物は対照として使用するために保持した。これらのイベントは、ジンクフィンガーヌクレ
アーゼＰＴＵ発現カセットを含有しない。導入遺伝子分離の結果として、導入遺伝子はこ
れらのＴ_１植物によって遺伝しなかった。選択したイベントは成熟状態まで成長させ、交
配させてＦ_１植物を生成し、ジンクフィンガーヌクレアーゼによる導入遺伝子切除を試験
した。交配戦略は以下に述べる。

Ｆ_１を作出するための同型接合体Ｔ_１植物の交配。
選択したｐＤＡＳ５３８０植物は選択ｐＤＡＳ５３８１植物と交配させた。さらに、両
親が雄と雌の両方であるように逆交配を行った（表２）。植物は手作業によって交配させ
た。成熟した雄親植物の葯由来の花粉を成熟した雌親植物の柱頭に導入した。交配の準備
ができた植物は他の植物から除去して、目的外の花粉が雌のタバコ植物に受粉する可能性
を減らした。雄花による受粉前に約１５〜３０分間ピンセットを使用して、雌植物を去勢
した（裂開前に葯を除去した）。葯および花の色を観察することによって、去勢用の花を
選択した。新たに開いた花は縁の周りが鮮やかなピンク色であり、葯は依然閉じていた。
開放または部分的に開放していた葯を含有する花は使用しなかった。タバコ植物の茎由来
の多数の花を去勢し受粉させた。茎上の他の花（例えば、すでに受粉した莢、後期の花、
非常に初期の芽など）はピンセットで除去して、枝を形成する莢のみが制御交配に由来す
ることを確実にした。実施した交配、何回交配を実施したか、および受粉日を示す受粉タ
グを枝に貼った。雄親由来の葯は、ピンセットを使用して雄植物から完全に除去し、去勢
した雌に受粉するためにこれらを使用した。柱頭が花粉で覆われるまで、裂開した雄葯を
粘着性がある受け手側の雌柱頭にこすりつけた。柱頭は数回覆い、任意の目的外の花粉が
受粉のため雌柱頭に近づく可能性を減らした。受粉した植物由来の種子を回収し、土壌に
まいた。生成したＦ_２子孫植物は、前に記載した条件下において温室中で成長させた。

ＺＦＮを介した導入遺伝子欠失に関するＦ_１植物の分析。
ＧＵＳアッセイ。
葉材料を組織化学的に染色することによって、ＧＵＳ発現に関してＦ_１植物を試験した
。ＧＵＳスクリーニングは、ＺＦＮを介した導入遺伝子欠失を経たイベントを同定するた
めの予備試験であった。ＧＵＳスクリーニングの結果は決定的であることを意味するもの
ではなく、しかしながらさらなる分子分析用の植物を同定した指標であった。Ｆ_１植物は
前に記載したプロトコールを使用してアッセイした（ＧＵＳ発現アッセイ）。結果は表３
中に列挙する。

サザンブロット解析。
サザンブロット解析を使用して、ジンクフィンガーヌクレアーゼによるＧＵＳ ＰＴＵ
発現カセットの切除の分子学的特性を得た。このデータは、イベントの部分集合中のＧＵ
Ｓ ＰＴＵ発現カセットの切除、イベントの別の部分集合中のＧＵＳ ＰＴＵ発現カセッ
トの非切除、および切除と非切除ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットの両方を含有したキメライ
ベントの部分集合を実証した。詳細なサザンブロット解析は、ＧＦＰ ＰＴＵ発現カセッ
トに特異的なプローブを使用して実施した。このプローブと特異的制限酵素で消化したゲ
ノムＤＮＡのハイブリダイゼーションによって、特定分子量のＤＮＡ断片を同定した。こ
れらのパターンを分析して、切除ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットを含有した、完全ＧＵＳ
ＰＴＵ発現カセットを含有した、またはキメラであった、および切除と完全ＧＵＳ ＰＴ
Ｕ発現カセットの両方を含有した、イベントを同定することが可能である。

１０倍を超える消化で３５０μＬの最終体積において、１×バッファー４および１００
単位のＮｄｅＩ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂｓ、Ｉｐｓｗｉｃｈ、ＭＡ）中
の１０μｇの各サンプルに制限酵素による消化を実施した。サンプルは一晩３７℃でイン
キュベートした。消化したＤＮＡは、製造者の示したプロトコールに従いＱｕｉｃｋ Ｐ
ｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（商標）（Ｅｄｇｅ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ
ｓ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を用いた再沈殿によって濃縮させた。回収した消
化産物は３０μＬの１×ローディングバッファー中に再縣濁し、３０分間６５℃でインキ
ュベートした。再縣濁したサンプルは１×ＴＡＥ（０．８Ｍトリス−酢酸［ｐＨ８．０］
／０．０４ｍＭのＥＤＴＡ）中で調製した０．８％アガロースゲル上に載せ、１×ＴＡＥ
バッファーにおいて１．１Ｖ／ｃｍで一晩電気泳動にかけた。ゲルには連続的に３０分間
の変性（０．２ＭのＮａＯＨ／０．６ＭのＮａＣｌ）、および３０分間の中和（０．５Ｍ
のトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）／１．５ＭのＮａＣｌ）を施した。ＤＮＡ断片の移動は
、クロマトグラフィー用ペーパーウィックおよびペーパータオルを使用することにより、
処理済Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ（商標）ＮＹ＋（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、
ＭＡ）上のゲルを介して、一晩２０×ＳＳＣ溶液を受動的に運ぶことによって実施した。
移動後、膜は２×ＳＳＣで軽く洗浄し、Ｓｔｒａｔａｌｉｎｋｅｒ（商標）１８００（Ｓ
ｔｒａｔａｇｅｎｅ、ＬａＪｏｌｌａ、ＣＡ）で架橋状態にし、３時間８０℃で真空ベー
ク状態にした。ハイブリダイゼーションインキュベーターを使用してガラス製ローラーボ
トルにおいて、６５℃で１時間プレハイブリダイゼーション溶液とブロットをインキュベ
ートした。Ｑｉａｇｅｎゲル抽出キットを使用して精製し標識キットを使用して５０μＣ
ｉのα^３２Ｐ-ｄＣＴＰで標識したｇｆｐコード配列を含有するＰＣＲ断片からプローブ
を調製した。ブロットはハイブリダイゼーションバッファーに直接加えた変性プローブと
６５℃で一晩ハイブリダイズさせて、ブロット１ｍＬ当たり約２百万数にした。ハイブリ
ダイゼーション後、ブロットは６５℃において４０分間０．１×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳ
で連続的に洗浄した。ブロットはホスファーイメージャースクリーン（phosphor imager
screen）を使用して露光させ、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｙｎａｍｉｃｓ Ｓｔｏｒｍ８６
０（商標）イメージングシステムを使用して画像化した。ブロットの結果は図５中に示す
。

植物転写ユニットのＰＣＲ分析。
ＰＣＲ反応を実施してＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットの切除を特徴付けした。ＭＡＲ配列
およびＯＲＦ２３の３’ＵＴＲ配列（ＧＦＰ ＰＴＵ発現カセットに関する３’ＵＴＲ）
と結合するプライマーを設計した。このＰＣＲアンプリコンは、切除が予想されるＧＵＳ
ＰＴＵ発現カセット領域に広がる。このように、これらのＰＣＲプライマーの使用によ
って、その中でＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットが切除されたイベント、その中で切除が起こ
らなかったイベント、およびその中でイベント内のＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットが均一に
除去されなかったキメライベントを検出することができる。６．７ｋｂ断片の増幅は切除
がないことを示し、一方２．４ｋｂ断片の増幅はＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットが切除され
たことを示唆する。両サイズの断片を含有するアンプリコンは、ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセ
ットが完全に除去されたわけではないことを示す。

ゲノムＤＮＡはＤＮｅａｓｙ（商標）Ｐｌａｎｔ Ｍａｘｉキットを使用してタバコ葉
組織から単離し、前に記載したようにＱｕａｎｔ-ＩＴ（商標）Ｐｉｃｏ Ｇｒｅｅｎ
ＤＮＡアッセイキットを使用して定量化した。植物転写ユニットのＰＣＲ（ＰＴＵのＰＣ
Ｒ）は、Ｔｅｔｒａｄ２（商標）サーモサイクラー（ＢｉｏＲａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、
ＣＡ）を使用して実施した。ＶｅｃｔｏｒＮＴＩ（商標）ソフトウエアを使用してＰＴＵ
を増幅するためのオリゴヌクレオチドプライマーを設計した。増幅用に、Ｅｘ Ｔａｑポ
リメラーゼ（商標）（ＴａＫａｒａ、Ｏｔｓｕ、Ｓｈｉｇａ、Ｊａｐａｎ）を、４ｎｇの
ｇＤＮＡ鋳型を使用して、１．２μＭの各プライマー（配列番号１６および１７）、０．
２ｍＭのｄＮＴＰ、２％のＤＭＳＯ、１．２５単位のＴＡＱを含有する２５μＬ体積のシ
ングルプレックス反応混合物において１×最終濃度で調製した。３ステップの増幅反応を
以下のように実施した。９４℃で３分間の初期変性、および９４℃の３０秒間、６５．５
℃の６分間、７２℃の３０秒間の３３サイクル、および７２℃で１０分間の最終延長。Ｐ
ＣＲ産物のアリコートは、１Ｋｂ＋マーカー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ
、ＣＡ）を使用して臭化エチジウムを含む１％ゲルに施して、産物の大きさを決定した。
ＰＴＵのＰＣＲ反応の結果は図６中に示す。

ＰＴＵのＰＣＲ産物の配列決定。
ＰＴＵのＰＣＲ反応由来の２．４ｋｂバンドをゲルから切除し、Ｑｉａｇｅｎ Ｑｉａ
ｅｘ ＩＩ（商標）ゲル抽出キット（Ｑｉａｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｔｏｗｎ、ＭＤ）を使
用してＤＮＡを精製した。精製した断片は、ｐＣＲ２．１ＴＯＰＯ-ＴＡ（商標）クロー
ニングベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）に連結させた。制限
酵素による消化によって、ｐＣＲ２．１ベクター内のクローニングＰＣＲアンプリコンの
存在を確認した。増幅バンドを含有するクローンを配列決定した。ＧＵＳ ＰＴＵ発現カ
セットの除去から生じた結合部の配列は、図７ａおよび７ｂ中に列挙する。ＰＴＵ発現カ
セット全体を除去した。残存した唯一の配列は、ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットに隣接した
再編成ジンクフィンガー結合部位である。さらに、いくつのＰＣＲアンプリコンは、ＧＦ
Ｐ ＰＴＵ発現カセットのアクチン２プロモーターに延長した欠失を含有していた。

６．７ｋｂバンドの制限酵素による分析。
大きな６．７ｋｂバンドのＰＣＲアンプリコンを制限酵素による消化によって分析した
。これらの断片は、ＥｃｏＲＩ、およびＮｃｏＩ／ＳａｃＩ制限酵素（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌ
ａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ、Ｉｐｓｗｉｃｈ、ＭＡ）で消化した。生成したバンドの大きさ
を分析して、増幅断片が非切除ｐＤＡＳ５３８０導入遺伝子ゲノム挿入体に広がっていた
ことを確認した。

Ｆ_２子孫を作出するためのＦ_１植物の自花受精。
前に記載した代表群のＦ_１植物を自花受精させＦ_２子孫を作出した。表５は、選択した
植物ならびにそれらのＦ_１表現型および遺伝子型を列挙する。１６：８時間の光周期下、
日中および夜間温度２２〜２４℃で、温室内において選択したＦ_１植物を成長させた。一
次花茎が伸長し花芽を形成し始めたとき、植物全体を自花受粉バッグで覆い、異系交配を
予防した。自家受粉由来の種子は移植後約８週間で採取した。自花受精植物由来の種子を
回収し土壌にまいた。生成したＦ_２集団は、前に記載した条件下において温室中で成長さ
せた。Ｆ_２植物は、Ｆ_１植物内で特徴的であったさらなる導入遺伝子欠失および欠失の遺
伝性に関して分析した。

Ｔ_１植物の作製および選択。
導入遺伝子および欠失の遺伝性に関するＦ_２子孫の分析。
ＧＵＳ分析。
葉材料を組織化学的に染色することによって、ＧＵＳ発現に関してＦ_２植物を試験した
。植物は前に記載したプロトコールを使用してアッセイした（ＧＵＳ発現アッセイ）。結
果は表５中に列挙する。Ｆ_２植物からのＧＵＳ発現データは予想通りであった。組織化学
染色により確認して、切除ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットを含有すると確認したＦ_１植物は
、１００％ＧＵＳ陰性であったＦ_２植物を作出した。これらのＦ_２植物内でのＧＵＳ発現
の不在によって、ジンクフィンガーヌクレアーゼを介した導入遺伝子欠失によってＧＵＳ
ＰＴＵ発現カセットが切除されたことを示唆するＦ_１データを確認する。さらに、この
データは、次世代への欠失導入遺伝子の遺伝性を例証する。

Ｆ_２世代の約７５％において、無同胞種対照植物はＧＵＳを発現した。組織化学染色に
よりＧＵＳを検出しなかった残りの植物（約２５％）は予想した。ＧＵＳ ＰＴＵ発現カ
セットは予想３：１比でＦ_２集団内において分離すると予想される。Ｆ_１において切除と
非切除ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセットの両方を含有したキメライベントはＦ_２内で分離した
。大部分の植物がＧＵＳを発現した。

緑色蛍光タンパク質のＥＬＩＳＡ分析。
選択したＦ_２植物は、前に記載したプロトコールを使用しＥＬＩＳＡによってＧＦＰ発
現に関して試験した（ＧＦＰ発現アッセイ）。Ｆ_２植物からのＧＦＰ発現データは予想通
りであった。Ｆ_２世代の約７５％においてＦ_１植物はＧＦＰを発現した。ＥＬＩＳＡによ
りＧＦＰを検出しなかった残りの植物（約２５％）は予想した。ＧＦＰ ＰＴＵ発現カセ
ットは予想３：１比でＦ_２集団内において分離すると予想される。Ｆ_１において切除と非
切除ＧＦＰ ＰＴＵ発現カセットの両方を含有したキメライベントはＦ_２内で分離した。
大部分の植物がＧＦＰを発現した。

Ｆ_２子孫のＰＣＲ、サザンブロット、およびＧＦＰ分析。
（切除、完全、およびキメラ子孫を表す）表５中に列挙した３交配由来の１６の植物を
さらなる分子分析用に保存した。これらの１６の植物は、無同胞種対照およびキメラ植物
に関してＧＵＳ陽性であった８の植物とＧＵＳ陰性であった８の植物からなっていた。前
に記載したプロトコール（サザンブロット解析、および植物転写ユニットのＰＣＲ分析）
を、Ｆ_２植物由来のゲノムＤＮＡで反復した。選択したＦ_２植物は、前に記載したプロト
コールを使用しＥＬＩＳＡによってＧＦＰ発現に関して試験した（ＧＦＰ発現アッセイ）
。分子データによって、ＧＵＳを発現しなかった植物は完全ＧＵＳ ＰＴＵ発現カセット
を含有しないことを確認する。ＧＦＰ発現カセットは予想通り分離した。結果は図８〜１
３中に要約する。

いくつかの例示的な態様および実施形態を前で論じてきたが、当業者は、これらの特定
の修正、変更、追加および部分的組合せを理解している。したがって、以下の添付の特許
請求の範囲および後に組み込まれた特許請求の範囲は、それらの真の精神および範囲内に
ある全てのこのような修正、変更、追加および部分的組合せを含むと解釈されると考えら
れる。

本明細書で論じた参照文献は、単に本出願の出願日より前のそれらの開示に関して提供
する。本明細書中のいかなる事項も、本発明者らが先行発明によるこのような開示に先立
つ資格がないことを認めるものとして解釈すべきではない。

Claims (8)

1. 植物中の標的ポリヌクレオチドを欠失させるための方法であって、
   組織特異的プロモーター、およびジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）をコードするヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドを含む第一の生育能力のある植物を提供する工程であって、前記プロモーターが前記ＺＦＮをコードする前記核酸配列に作動可能に連結し、前記第一の生育能力のある植物が、前記ジンクフィンガーヌクレアーゼを花粉および／または種子において特異的に発現する、工程、
   ５’から３’の向きに、前記ＺＦＮの第一の切断部位、前記標的ポリヌクレオチド、および前記ＺＦＮの第二の切断部位を含むゲノムＤＮＡを含む第二の生育能力のある植物を提供する工程、ならびに
   第一の生育能力のある植物または第二の生育能力のある植物のいずれかにおいてＦ１種子が作出されるように、前記第一の生育能力のある植物と第二の生育能力のある植物を交配させる工程であって、前記標的ポリヌクレオチドが前記Ｆ１種子の前記ゲノムＤＮＡに存在しない、工程、を含む方法。
2. 前記ＺＦＮの第一の切断部位と前記ＺＦＮの第二の切断部位が同一である、請求項１に記載の方法。
3. 請求項１に記載の方法によって作出される生育能力のある植物であって、前記植物が花粉および／または種子以外の組織のゲノムＤＮＡ中に前記標的ポリヌクレオチドを含み、前記標的ポリヌクレオチドが前記植物の種子のゲノムＤＮＡに存在しない、植物。
4. 植物中のＤＮＡの領域を欠失させるための方法であって、
   ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）によって認識され、切断される第一のポリヌクレオチド、ＤＮＡの領域、および前記ＺＦＮによって認識され、切断される第二のポリヌクレオチドを含むゲノムＤＮＡを含む植物を提供する工程であって、前記ＤＮＡの領域に前記第一および第二のポリヌクレオチドが隣接する、工程、
   前記植物に、花粉および／または種子において作動可能に連結したヌクレオチド配列の発現を誘導する組織特異的プロモーター、および前記ＺＦＮをコードするヌクレオチド配列を含む核酸分子を導入する工程であって、前記プロモーターが前記ＺＦＮをコードするヌクレオチド配列と作動可能に連結している、工程、ならびに
   前記ＺＦＮを花粉および／または種子において特異的に発現する工程であって、前記ＤＮＡの領域が、前記植物の前記花粉および／または種子の前記ゲノムＤＮＡに存在せず、前記植物が、花粉および／または種子以外の組織中に前記ＤＮＡの領域を含む、工程、を含む、方法。
5. 前記第一のポリヌクレオチドおよび前記第二のポリヌクレオチドに、互いに相同組換えが可能な相同配列が隣接する、請求項４に記載の方法。
6. 前記第一および第二のポリヌクレオチドが同一である、請求項４に記載の方法。
7. 前記ジンクフィンガーヌクレアーゼの前記第一および第二の切断部位に、互いに相同組み換えが可能なポリヌクレオチドが隣接する、請求項１に記載の方法。
8. 前記Ｆ１種子から生じたトランスジェニックＦ１植物を成長させる工程をさらに含み、前記ＤＮＡの領域が前記Ｆ１植物の前記ゲノムＤＮＡに存在しない、請求項１に記載の方法。