HU226975B1 - Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermantation - Google Patents
Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermantation Download PDFInfo
- Publication number
- HU226975B1 HU226975B1 HU0301388A HUP0301388A HU226975B1 HU 226975 B1 HU226975 B1 HU 226975B1 HU 0301388 A HU0301388 A HU 0301388A HU P0301388 A HUP0301388 A HU P0301388A HU 226975 B1 HU226975 B1 HU 226975B1
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- ethanol
- gas
- bioreactor
- cell
- rate
- Prior art date
Links
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 633
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 164
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 73
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 title description 3
- UGFAIRIUMAVXCW-UHFFFAOYSA-N Carbon monoxide Chemical compound [O+]#[C-] UGFAIRIUMAVXCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 345
- 229910002091 carbon monoxide Inorganic materials 0.000 claims description 345
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 324
- 239000007789 gas Substances 0.000 claims description 239
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M Acetate Chemical compound CC([O-])=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 102
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 claims description 100
- 239000010941 cobalt Substances 0.000 claims description 99
- 229910017052 cobalt Inorganic materials 0.000 claims description 99
- GUTLYIVDDKVIGB-UHFFFAOYSA-N cobalt atom Chemical compound [Co] GUTLYIVDDKVIGB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 99
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 claims description 98
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 68
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 65
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 claims description 61
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 46
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 39
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 38
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 claims description 38
- FAPWYRCQGJNNSJ-UBKPKTQASA-L calcium D-pantothenic acid Chemical compound [Ca+2].OCC(C)(C)[C@@H](O)C(=O)NCCC([O-])=O.OCC(C)(C)[C@@H](O)C(=O)NCCC([O-])=O FAPWYRCQGJNNSJ-UBKPKTQASA-L 0.000 claims description 33
- 229960002079 calcium pantothenate Drugs 0.000 claims description 32
- 238000013019 agitation Methods 0.000 claims description 30
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 claims description 30
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 25
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 23
- 239000012071 phase Substances 0.000 claims description 22
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 21
- 238000004821 distillation Methods 0.000 claims description 15
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 14
- VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N methane Chemical compound C VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 12
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 claims description 9
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 claims description 8
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims description 8
- UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N Hydrogen Chemical compound [H][H] UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 claims description 7
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 239000013028 medium composition Substances 0.000 claims description 4
- 241000193403 Clostridium Species 0.000 claims description 3
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 claims description 2
- 150000002431 hydrogen Chemical class 0.000 claims description 2
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 claims 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 174
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 98
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 75
- 239000000047 product Substances 0.000 description 75
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 69
- GHOKWGTUZJEAQD-ZETCQYMHSA-N (D)-(+)-Pantothenic acid Chemical compound OCC(C)(C)[C@@H](O)C(=O)NCCC(O)=O GHOKWGTUZJEAQD-ZETCQYMHSA-N 0.000 description 68
- 229940014662 pantothenate Drugs 0.000 description 68
- 239000011713 pantothenic acid Substances 0.000 description 68
- 235000019161 pantothenic acid Nutrition 0.000 description 68
- 230000000670 limiting effect Effects 0.000 description 64
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 63
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 32
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 29
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 28
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 28
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 28
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 28
- 210000000712 G cell Anatomy 0.000 description 25
- ZSLZBFCDCINBPY-ZSJPKINUSA-N acetyl-CoA Chemical compound O[C@@H]1[C@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OCC(C)(C)[C@@H](O)C(=O)NCCC(=O)NCCSC(=O)C)O[C@H]1N1C2=NC=NC(N)=C2N=C1 ZSLZBFCDCINBPY-ZSJPKINUSA-N 0.000 description 24
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 22
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 21
- 239000011573 trace mineral Substances 0.000 description 20
- 235000013619 trace mineral Nutrition 0.000 description 20
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 19
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 18
- 102100030787 ERI1 exoribonuclease 2 Human genes 0.000 description 16
- 101000938751 Homo sapiens ERI1 exoribonuclease 2 Proteins 0.000 description 16
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 16
- 241000186566 Clostridium ljungdahlii Species 0.000 description 15
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 15
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 description 14
- 108010074122 Ferredoxins Proteins 0.000 description 13
- 230000008236 biological pathway Effects 0.000 description 13
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 12
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 12
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 11
- 125000000218 acetic acid group Chemical group C(C)(=O)* 0.000 description 10
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 10
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 10
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 10
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 9
- 239000012466 permeate Substances 0.000 description 9
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 9
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 8
- XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N Ethyl acetate Chemical compound CCOC(C)=O XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 230000008859 change Effects 0.000 description 7
- 238000004064 recycling Methods 0.000 description 7
- 150000003722 vitamin derivatives Chemical class 0.000 description 7
- LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N N-Butanol Chemical compound CCCCO LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000004817 gas chromatography Methods 0.000 description 6
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N (+)-Biotin Chemical compound N1C(=O)N[C@@H]2[C@H](CCCCC(=O)O)SC[C@@H]21 YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N 0.000 description 5
- 230000000789 acetogenic effect Effects 0.000 description 5
- FAPWYRCQGJNNSJ-CTWWJBIBSA-L calcium;3-[[(2s)-2,4-dihydroxy-3,3-dimethylbutanoyl]amino]propanoate Chemical compound [Ca+2].OCC(C)(C)[C@H](O)C(=O)NCCC([O-])=O.OCC(C)(C)[C@H](O)C(=O)NCCC([O-])=O FAPWYRCQGJNNSJ-CTWWJBIBSA-L 0.000 description 5
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 5
- 229940068840 d-biotin Drugs 0.000 description 5
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 5
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 5
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 5
- 125000000896 monocarboxylic acid group Chemical group 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 description 5
- DPJRMOMPQZCRJU-UHFFFAOYSA-M thiamine hydrochloride Chemical compound Cl.[Cl-].CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N DPJRMOMPQZCRJU-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 5
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 159000000021 acetate salts Chemical class 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 4
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- 230000001276 controlling effect Effects 0.000 description 4
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 4
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 4
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 4
- 230000007257 malfunction Effects 0.000 description 4
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 4
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 4
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 4
- 108010020056 Hydrogenase Proteins 0.000 description 3
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 3
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 3
- 230000030833 cell death Effects 0.000 description 3
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 3
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 3
- 239000000446 fuel Substances 0.000 description 3
- 238000009630 liquid culture Methods 0.000 description 3
- 239000012263 liquid product Substances 0.000 description 3
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 3
- 239000002808 molecular sieve Substances 0.000 description 3
- 238000011027 product recovery Methods 0.000 description 3
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 description 3
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 3
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 3
- URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N sodium aluminosilicate Chemical compound [Na+].[Al+3].[O-][Si]([O-])=O.[O-][Si]([O-])=O URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- 239000002912 waste gas Substances 0.000 description 3
- FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N Butyric acid Chemical compound CCCC(O)=O FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 2
- ZRALSGWEFCBTJO-UHFFFAOYSA-N Guanidine Chemical compound NC(N)=N ZRALSGWEFCBTJO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PPWHTZKZQNXVAE-UHFFFAOYSA-N Tetracaine hydrochloride Chemical compound Cl.CCCCNC1=CC=C(C(=O)OCCN(C)C)C=C1 PPWHTZKZQNXVAE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000001400 Tryptase Human genes 0.000 description 2
- 108060005989 Tryptase Proteins 0.000 description 2
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 2
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 2
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 2
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 2
- 239000012159 carrier gas Substances 0.000 description 2
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 2
- OPTASPLRGRRNAP-UHFFFAOYSA-N cytosine Chemical compound NC=1C=CNC(=O)N=1 OPTASPLRGRRNAP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 2
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000001627 detrimental effect Effects 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- -1 media feed rate Substances 0.000 description 2
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 2
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 2
- 125000002496 methyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 2
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 2
- BDERNNFJNOPAEC-UHFFFAOYSA-N propan-1-ol Chemical compound CCCO BDERNNFJNOPAEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000003134 recirculating effect Effects 0.000 description 2
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 2
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 2
- 241001148471 unidentified anaerobic bacterium Species 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- FPIPGXGPPPQFEQ-UHFFFAOYSA-N 13-cis retinol Natural products OCC=C(C)C=CC=C(C)C=CC1=C(C)CCCC1(C)C FPIPGXGPPPQFEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241001223493 Acetoanaerobium noterae Species 0.000 description 1
- 241001468163 Acetobacterium woodii Species 0.000 description 1
- 235000009434 Actinidia chinensis Nutrition 0.000 description 1
- 244000298697 Actinidia deliciosa Species 0.000 description 1
- 235000009436 Actinidia deliciosa Nutrition 0.000 description 1
- 241001464894 Blautia producta Species 0.000 description 1
- 241001656810 Clostridium aceticum Species 0.000 description 1
- 241000193401 Clostridium acetobutylicum Species 0.000 description 1
- 229910021591 Copper(I) chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- OTMSDBZUPAUEDD-UHFFFAOYSA-N Ethane Chemical compound CC OTMSDBZUPAUEDD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000186398 Eubacterium limosum Species 0.000 description 1
- 241000192125 Firmicutes Species 0.000 description 1
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 1
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-M Lactate Chemical compound CC(O)C([O-])=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- NPPQSCRMBWNHMW-UHFFFAOYSA-N Meprobamate Chemical compound NC(=O)OCC(C)(CCC)COC(N)=O NPPQSCRMBWNHMW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000193459 Moorella thermoacetica Species 0.000 description 1
- CHJJGSNFBQVOTG-UHFFFAOYSA-N N-methyl-guanidine Natural products CNC(N)=N CHJJGSNFBQVOTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000186339 Thermoanaerobacter Species 0.000 description 1
- FPIPGXGPPPQFEQ-BOOMUCAASA-N Vitamin A Natural products OC/C=C(/C)\C=C\C=C(\C)/C=C/C1=C(C)CCCC1(C)C FPIPGXGPPPQFEQ-BOOMUCAASA-N 0.000 description 1
- 229930003270 Vitamin B Natural products 0.000 description 1
- CDXSJGDDABYYJV-UHFFFAOYSA-N acetic acid;ethanol Chemical compound CCO.CC(O)=O CDXSJGDDABYYJV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- FPIPGXGPPPQFEQ-OVSJKPMPSA-N all-trans-retinol Chemical compound OC\C=C(/C)\C=C\C=C(/C)\C=C\C1=C(C)CCCC1(C)C FPIPGXGPPPQFEQ-OVSJKPMPSA-N 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 description 1
- 150000001540 azides Chemical class 0.000 description 1
- 239000011942 biocatalyst Substances 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- VNWKTOKETHGBQD-YPZZEJLDSA-N carbane Chemical compound [10CH4] VNWKTOKETHGBQD-YPZZEJLDSA-N 0.000 description 1
- 108010031234 carbon monoxide dehydrogenase Proteins 0.000 description 1
- 239000013592 cell lysate Substances 0.000 description 1
- 230000006037 cell lysis Effects 0.000 description 1
- 230000019522 cellular metabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 1
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 1
- 239000003245 coal Substances 0.000 description 1
- 238000002485 combustion reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 238000011437 continuous method Methods 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- OXBLHERUFWYNTN-UHFFFAOYSA-M copper(I) chloride Chemical compound [Cu]Cl OXBLHERUFWYNTN-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 1
- 229940104302 cytosine Drugs 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- SWSQBOPZIKWTGO-UHFFFAOYSA-N dimethylaminoamidine Natural products CN(C)C(N)=N SWSQBOPZIKWTGO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000011067 equilibration Methods 0.000 description 1
- 235000020774 essential nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 238000002309 gasification Methods 0.000 description 1
- 239000001307 helium Substances 0.000 description 1
- 229910052734 helium Inorganic materials 0.000 description 1
- SWQJXJOGLNCZEY-UHFFFAOYSA-N helium atom Chemical compound [He] SWQJXJOGLNCZEY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000001822 immobilized cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000002440 industrial waste Substances 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000002386 leaching Methods 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 238000005374 membrane filtration Methods 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- VUZPPFZMUPKLLV-UHFFFAOYSA-N methane;hydrate Chemical compound C.O VUZPPFZMUPKLLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 1
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 1
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 1
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 1
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000012809 post-inoculation Methods 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 238000010926 purge Methods 0.000 description 1
- 230000009722 regulation of fermentation Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000008844 regulatory mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 description 1
- 239000007320 rich medium Substances 0.000 description 1
- 230000000630 rising effect Effects 0.000 description 1
- 238000007493 shaping process Methods 0.000 description 1
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 239000013589 supplement Substances 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 description 1
- 235000019155 vitamin A Nutrition 0.000 description 1
- 239000011719 vitamin A Substances 0.000 description 1
- 235000019156 vitamin B Nutrition 0.000 description 1
- 239000011720 vitamin B Substances 0.000 description 1
- 229940045997 vitamin a Drugs 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage
- C12P7/065—Ethanol, i.e. non-beverage with microorganisms other than yeasts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M21/00—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
- C12M21/04—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for producing gas, e.g. biogas
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M21/00—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
- C12M21/12—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for producing fuels or solvents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M29/00—Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
- C12M29/02—Percolation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M29/00—Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
- C12M29/18—External loop; Means for reintroduction of fermented biomass or liquid percolate
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M43/00—Combinations of bioreactors or fermenters with other apparatus
- C12M43/02—Bioreactors or fermenters combined with devices for liquid fuel extraction; Biorefineries
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/30—Fuel from waste, e.g. synthetic alcohol or diesel
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
A találmány tárgyköre
A találmány etanol gázfázisú, legalább egy redukáló gázt tartalmazó szubsztrátból anaerob (vagy fakultatív anaerob) acetogén baktériumok felhasználásával mikrobiális fermentációs úton történő előállítási eljárásának javítására vonatkozik.
A találmány háttere
Etanol - más alkoholok, szerves savak, hidrogén és szerves savak sói mellett - mikrobiális fermentációval, gázfázisú szubsztrátból, alkalmas tápanyagokat és nyomelemeket tartalmazó tápközegben, bizonyos anaerob baktériumok segítségével történő előállítását a jelen találmány feltalálói már ismertették. így például leírták, hogy hígított gázkeveréket vezetnek egy bioreaktorba, amely egy vagy több olyan anaerob baktériumtörzset tartalmaz, amelyek hulladékgáz-komponenseket hasznosítanak a kívánt vegyület termelésére, közvetlen reakcióúton. A terméket a vizes fázisból nyerik ki egy vagy több másik edényben, a termelt vegyületnek megfelelő, alkalmas kinyerési módszerrel. Ilyen kinyerési módszerek például az extrakció, desztilláció vagy ezek kombinációja, vagy pedig más hatékony kinyerési módszerek. A baktériumok a vizes fázisból eltávolíthatók, és visszavezethetők a biorekatorba, a nagy sejtkoncentráció fenntartására, és így a termelékenység maximalizálására. A sejtek kívánt esetben történő elválasztását centrifugálással, membránszűréssel vagy más módszerrel lehet végezni [lásd például WO 98/00558, US-5 807 722, US-5 593 886 és US-5 821 111 számú dokumentumokat].
Az anaerob Clostridium ljungdahlii baktérium törzsei fő termékük, az ecetsav mellett etanolt is képesek termelni szén-monoxid (CO), hidrogén (H2) és szén-dioxid (CO2) konverziójával. Az ecetsav (CH3COOH) és etanol (C2H5OH) termelését CO, CO2 és H2 keverékéből a következő általános sztöchiometriai egyenletek szemléltetik:
CO+2 H2O >CH3COOH+2 CO2 (1)
H2+2 CO2 >CH3COOH+2 H2O (2)
CO+3 H2O>C2H5OH+4 CO2 (3)
H2+2 CO2 >C2H5OH+3 H2O (4)
C. ljungdahlii törzsek például a PECT jelű (US-5 173 429), ERI2 jelű (US-5 593 886), valamint a C-01 és 0-52 jelű törzsek (US-6 136 577). Ezek a törzsek az American Type Culture Collection (10801 University Boulvard, Manassas, VA 20110-2209) intézetnél 55383 (korábban ATCC 49587), 55380, 55988 és 55989 számon vannak letétbe helyezve. A C. ljungdahlii törzsek anaerob, Gram-pozitív baktériumok, mintegy 22 mol% guanidin és citozin (G+C) nukleotidtartalommal. E baktériumok számos szubsztrátot hasznosítanak növekedésükhöz, de metanolt és laktátot nem. A törzsek CO-toleranciájuk, specifikus gázfelvételük aránya és fajlagos termelékenységük tekintetében eltérnek egymástól. A természetben található „vad” törzsek esetében nagyon csekély etanoltermelés figyelhető meg. A C. ljungdahlii törzsek ideálisan 37 °C-on működnek, és „vad” állapotban tipikusan 1:20 arányú etanol- és acetiltermelést (1 rész etanol 20 rész acetilrészre vonatkoztatva) mutatnak (ahol az „acetil” kifejezésen szabad vagy molekuláris ecetsavat és acetátsókat értünk). Az etanolkoncentráció tipikusan csupán 1-2 g/l. Ez az etanoltermelő képesség fontos ugyan, de a „vad” baktériumok segítségével - alacsony termelékenységük miatt - nem lehet etanolt gazdaságosan előállítani.
A tápanyagok kisebb manipulálásával az említett C. ljungdahlii törzseket alkalmazzák etanol és acetil 1:1 arányú (azaz etanol és acetil azonos mennyiségű) előállítására, azonban az etanolkoncentráció 10 g/l-nél alacsonyabb, ami alacsony, napi 10 g/l termelékenységet eredményez. Emellett a tenyészet stabilitása olyan tényező, amely elsődlegesen a viszonylag magas (8-10 g/l) acetilkoncentráció (2,5-3 g/l molekuláris ecetsav) és az etanol jelenléte kombinációjának a következménye. Ezenkívül, ahogyan a gázadagolás sebességét az etanoltermelés fokozása érdekében növelik, a tenyészet gátlódik, elsősorban a molekuláris ecetsav, másrészt a CO hatására. Következésképpen a tenyészet instabillá válik, nem veszi fel a gázt, és nem termel további terméket. Ezenkívül a jelen találmány feltalálói egy korábbi munkában kimutatták, hogy nehézségekbe ütközik az etanol és acetil 2:1 -nél nagyobb arányban, folyamatos üzemmódban történő előállítása [lásd például: Kiásson et al., Applied Biochemistry and Biotechnology, Proceedings of the 11th Symposium on Biotechnology fór Fuels and Chemicals, 24/25:857 (1990); Philips et al., Applied Biochemistry and Biotechnology, Proceedings of the 14th Symposium on Biotechnology fór Fuels and Chemicals, 39/40:559 (1993)].
Számos dokumentum ismerteti olyan anaerob, C. Ijungdahlii-töl eltérő baktériumok alkalmazását oldószerek termelésére cukrok fermentációjával, amelyek nem hasznosítanak CO-, CO2- és H2-gázokat. Az etanol nagy mennyiségben való termelésére tett egyik kísérletben különböző paramétereket változtattak, így a tápanyagok típusát, a mikroorganizmusokat, redukálószerek megadott adagolását, pH-t és exogén gázok adagolását [lásd például: Rothstein ef al., J. Bacteriol., 165(1):319-320 (1986); Lovitt et al., J. Bacteriol., 170(6):2809 (1988); Taherzadeh et al., Appl. Microbiol. Biotechnoi., 46:176 (1996)].
Továbbra is szükség van azonban gázfázisú ipari szubsztrátok feldolgozására annak érdekében, hogy értékes anyagokat nyerjünk az ilyen gázokból, különösen hulladék gázokból, például H2-, CO- és CO2-tartalmú gázokból. Szükség van továbbá az etanol termelésének a fokozására a többi termékhez viszonyítva, amelyek az ilyen gázok acetogén baktériumokkal történő fermentációja során képződnek.
A találmány összefoglalása
A fenti szükségletek kielégítésére új, folyamatos, stacioner módszereket dolgoztunk ki, amelyek 10 g/l-nél nagyobb etanolkoncentrációt és 8-10 g/l-nél kisebb acetilkoncentrációt eredményeznek, miközben fenntartjuk a tenyészet növekedését és a tenyészet jó stabilitását.
HU 226 975 Β1
A jelen találmányt az Amerikai Egyesült Államok kormányának Energiaügyi Osztálya által DE-FC04-94AL98770, 85X-TA046V és 85X-SX613V számon, valamint a Mezőgazdasági Osztály által 96-AARC-1-0077 számon nyújtott kormánytámogatása segítségével dolgoztuk ki. Az Amerikai Egyesült Államok kormánya bizonyos jogokkal rendelkezik a jelen találmánnyal kapcsolatosan.
A találmány tárgya tehát egyrészt folyamatos eljárás etanol termelésére gázfázisú, szén-monoxidot tartalmazó szubsztrát anaerob bakteriális fermentációjával, amelynek során fermentáló bioreaktorban, kalcium-pantotenátot tartalmazó folyékony tápközegben, 5,5-nél alacsonyabb pH-nál etanolt termelni képes Clostridium ljungdahlii baktériumot tenyésztünk, a fermentáló bioreaktorban a szabad ecetsavkoncentráció 5 g/l-nél alacsonyabb, és a bioreaktorban levő fermentlében az etanol és acetát aránya 1:1-20:1. Atalálmány értelmében a fermentáló bioreaktorba kalcium-pantotenátot adagolunk, a bioreaktorban termelődött baktérium száraz sejttömegére vonatkoztatva 0,5-50 pg/g mennyiségben, a bioreaktorban a fajlagos szén-monoxid-felvételt a baktérium száraz sejttömegére vonatkoztatva percenként legalább 0,3 mmol/g értéken tartjuk, és az etanolt 10 g/l/nap értéknél nagyobb termelékenységgel termeljük.
A találmány szerinti megoldás egy megvalósítási módja értelmében a manipulációs lépésben a következők közül egy vagy több, de legalább egy paramétert változtatunk meg: a tápközeg összetétele, tápanyagadagolás sebessége, vízadagolás sebessége, nyomás, pH, gázfázisú szubsztrát mennyisége, gázadagolás sebessége, a fermentlé keverésének a sebessége, termékgátlás lépése, sejtsűrűség és szubsztrátgátlás.
A találmány szerinti megoldás egy másik megvalósítási módja értelmében a manipulációs lépésben a bioreaktorba redukáló gázt - CO-ot - tartalmazó gázfázisú szubsztrátot vezetünk, a felvételnek megfelelő kívánt sebességgel. Ez a sebesség kívánatosán a bioreaktorban levő baktériumsejtek szárazanyag-tartalmának grammjaira vonatkoztatva percenként 0,3-2 mmol CO.
A találmány szerinti megoldás egy további megvalósítási módja értelmében a manipulációs lépésben a fermentáló bioreaktorba olyan tápközeget adagolunk, amely a kalcium-pantotenát limitáló mennyiségét tartalmazza. A kalcium-pantotenát mennyisége a bioreaktorban termelt baktériumsejtek szárazanyag-tartalmára vonatkoztatva kívánatosán 0,5-50 pg/g.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében fölösleges mennyiségű H2 redukáló gázt vezetünk a bioreaktorba, mielőtt a kalcium-pantotenát limitáló mennyiségét adagolnánk.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében a manipulációs lépésben a fermentáló bioreaktorba olyan tápközeget vezetünk, amely a kobalt limitáló mennyiségét tartalmazza. A kobalt mennyisége a bioreaktorban termelt baktériumsejtek szárazanyag-tartalmára vonatkoztatva kívánatosán 5-100 pg/g.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében megakadályozzuk, hogy a baktériumok a bioreaktorban hozzászokjanak a kobalt említett mennyiségéhez, oly módon, hogy konstans kobaltkoncentrációt tartunk fenn, és egy vagy több paramétert, így a gázadagolás sebességét, a folyadékadagolás sebességét, a keverés sebességét és a H2gáz parciális nyomását állítjuk be.
A módszer további adott esetben végzett lépésében a fermentléből vett mintából centrifugálással eltávolítjuk a sejteket, és gázkromatográfiás úton ellenőrizzük a sebesség- és/vagy termelékenységi értékek fenntartását.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében a gázfázisú szubsztrátban a H2 olyan mennyiségét adagoljuk, amely enyhén meghaladja az etanol termeléséhez szükséges sztöchiometrikus mennyiséget.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében a gázfázisú szubsztrát a CO olyan mennyiségét tartalmazza, amely enyhén meghaladja a baktériumok által megkívánt mennyiséget, így a baktériumok H2-felvétele gátlódik, és a fermentlében a NAD(P)H:NAD(P) arány emelkedik.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében az eljárás magában foglal egy olyan lépést, amelynek során csökkentjük a molekuláris ecetsav által kifejtett gátlást a vizes fázis adagolási sebességének növelésével, amikor a fermentlében jelen levő molekuláris ecetsav mennyisége eléri vagy meghaladja a 2 g/l értéket.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében a manipulációs lépésben a bioreaktorban levő tápközeget, a baktériumokat és a gázfázisú szubsztrátot megválasztott sebességgel keverhetjük. így például a keverési sebesség csökkentésével csökken a fermentlébe jutó CO mennyisége. A CO-adagolás ilyen csökkentése a H2-konverzió fokozódását eredményezi, hogy a redukáló gáz, H2 a bioreaktorban a baktériumok növekedéséhez szükséges mennyiséget meghaladja. A CO-adagolás csökkentésére hasonlóképpen csökkenthető a gázadagolás sebessége, ami a H2-konverzió fokozódását eredményezi, hogy a redukáló gáz, H2 a bioreaktorban a baktériumok növekedéséhez szükséges mennyiséget meghaladja.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében a baktériumtenyészet sejtkoncentrációját a bioreaktorban kívánt értékre beállítjuk, mielőtt a tápközegben limitálnánk a kalcium-pantotenát vagy a kobalt koncentrációját.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében kétfokozatú CSTR-t (bioreaktort) alkalmazunk, amely növesztőreaktorból és termelőreaktorból áll, a növesztőreaktorból juttatjuk a fermentlét a termelőreaktorba, amelyben az etanol fő tömege képződik.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében adott esetben a következő lépéseket végezzük: kinyerjük az etanolt, a fer3
HU 226 975 Β1 mentiének a bioreaktorból történő elvételével; a fermentléből ledesztilláljuk az etanolt; és kinyerjük az etanolt. Ezenkívül előnyösen a fermentléből vett mintából centrifugálással eltávolítjuk a sejteket, és gázkromatográfiás úton ellenőrizzük az arányok fenntartását.
A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja értelmében az etanol termelése során nyert vizet (amely 5 g/l-ig terjedő mennyiségű acetilt tartalmaz) visszavezetjük a reaktorba, hogy egyensúly legyen a reaktorban az etanol és az acetil között. Ennek eredményeképpen a reaktorba adagolt és termékké alakított CO, CO2 és H2 nagyobb mennyisége fordítódik etanoltermelésre.
A találmány szerinti megoldás további megvalósítási módjait és előnyeit az alábbiakban részletesen ismertetjük.
A rajzok rövid ismertetése
Az 1. ábra a találmány szerinti folyamatos, a termék kinyerését magában foglaló fermentációs módszer folyamatábrája. Az
I gázfázisú szubsztrátot és a 2 folyékony fázisú tápközeget a 3 bioreaktorba vezetjük, amely az alkalmazott baktériumok tenyészetét tartalmazza. A gázfázisú szubsztrát etanollá és ecetsavvá történő konverziója a 3 bioreaktorban történik. A 3 bioreaktorból eltávozó 4 kilépő gázt, amely CO-tól, CO2-tól és H2-től eltérő gázokat, valamint nem konvertált CO-ot, CO2-ot és H2-t tartalmaz, lefúvatjuk és fűtőanyagként vagy egyéb módon elégetjük. A sejtek visszavezetéséhez az 5 effluenst a 6 sejtleválasztó egységbe juttatjuk, ahol a 7 sejteket és a sejtmentes 8 permeátumot elválasztjuk. A 7 sejteket visszavezetjük a 3 bioreaktorba, és a 8 permeátumot elvezetjük a termék kinyeréséhez. Az etanolt a 8 permeátumból nyerjük ki (vagy más módon az 5 effluensből, ha nem alkalmazunk sejtleválasztó egységet). A 8 permeátumot a desztillálóoszlopban szeparáljuk, ahol 95%-os etanol 10 fejterméket, valamint
II vizet kapunk, amely utóbbit visszavezetjük a 3 bioreaktorba. A 95%-os etanol fejterméket egy 12 molekulaszűrőre vezetjük, ahol a kívánt terméket, 13 vízmentes etanolt elválasztjuk a 14 híg etanoltól, amelyet visszavezetünk a 9 desztillálóoszlopra.
A 2. ábra egy kétfokozatú, folyamatosan kevert reaktor (CSTR) rendszer folyamatábrája, javított tenyészetstabilitáshoz. A növesztés! fázisú 1 CSTR-be 2 folyékony tápközeget vezetünk. A termelési fázisú 4 CSTR-ből a 3 nem konvertált gázt a növesztés! fázisú 1 CSTR-be vezetjük. A termelési fázisú 4 CSTR-t friss 5 gázbetáplálással és friss 6 tápközeggel, valamint a növesztés! fázisú 1 CSTR-ből elvezetett 7 sejttenyészettel tápláljuk. A 8 sejtvisszavezető egységet azért alkalmazzuk, hogy a legtöbb terméket tudjuk elválasztani a 9 sejtektől, amelyeket a termelőfázisú 4 CSTR-be visszavezetünk. A 10 folyékony terméket, amely a híg etanolt tartalmazó fermentumból áll, az 1. ábrán bemutatott módon vízmentes etanollá dolgozzuk fel.
A találmány részletes ismertetése
A találmány tárgya tehát eljárás olyan gázfázisú szubsztrátok anaerob fermentációjára etanol termelése céljából, amelyek legalább egy redukáló gázt, különösen ipari hulladék és szintézisgázokat (például CO-ot, CO2-ot és H2-t) tartalmaznak. A módszerrel - az alkalmazott baktériumok biológiai útvonalainak manipulálásával - az etanolt napi 10 g/l-nél nagyobb termelékenységgel lehet előállítani. A találmány szerinti megoldás egyik módszerével a NAD(P)H fölöslegbe kerül a NAD(P)-hez viszonyítva. A NAD(P)H oxidálása NAD(P)-vé azt eredményezi, hogy a tenyészet által termelt ecetsav etanollá redukálódik. Etanol nagy koncentrációban anaerob fermentációval történő előállítása érdekében eljárhatunk úgy is, hogy csökkentjük a fermentlé redoxpotenciálját, és így az ecetsavat etanollá redukáljuk. A találmány szerinti módszerekkel etanolt nagy koncentrációban (azaz mintegy 10 g/l-nél nagyobb, előnyösen 15 g/l-nél nagyobb koncentrációban) és az ecetsavat/acetátot kis koncentrációban (azaz mintegy 5 g/l-nél kisebb koncentráció a szabad ecetsavra nézve a bioreaktorban) állítunk elő. Ezekkel a módszerekkel fenntartjuk és szabályozzuk az etanol és ecetsav folyamatos termelésének körülményeit is, hogy elősegítsük a rendszer gyors helyreállítását az esetleges működési zavarokból. Ezenkívül a találmány szerinti módszerekkel megelőzhető, hogy a tenyészet akklimatizálódjon az alacsony tápanyag-koncentrációhoz, ami káros lehet a tenyészet termelőképességére nézve. A találmány tehát hasznos ipari megoldást biztosít etanol előállítására.
I. Definíciók
Hacsak másképpen nem jelezzük, a leírásunkban alkalmazott kifejezések jelentése a következő.
A „folyamatos eljárás” kifejezésen olyan fermentációs módszert értünk, amely magában foglalja a tápanyagok és szubsztrát folyamatos betáplálását a bioreaktorba, a sejtek folyamatos termelődését a bioreaktorban, valamint a sejtek és a termék folyamatos elvételét (vagy kiürítését) a bioreaktorból. Ez a folyamatos betáplálás, eltávolítás és sejttermelés történhet azonos vagy különböző áramokban. Egy folyamatos eljárás azt eredményezi, hogy stacioner állapotot érünk el a bioreaktoron belül. A „stacioner állapot” kifejezésen azt értjük, hogy a mérhető változók mindegyike (azaz a betáplálás sebessége, a szubsztrát és a tápanyagok bioreaktorban fenntartott koncentrációja, a sejtkoncentráció a bioreaktorban és a sejtek elvétele a bioreaktorból,
HU 226 975 Β1 a termék elvétele a bioreaktorból, valamint a szokásos változók, például a hőmérséklet és nyomás) állandó, azaz az idő változásával nem változnak.
A „gázfázisú szubsztrát” kifejezésen önmagában CO-ot, CO és H2 keverékét, CO2 és H2 keverékét, valamint CO, CO2 és H2 keverékét értjük, adott esetben más elemekkel vagy vegyületekkel, például nitrogénnel és metánnal keverve, gáz formájában. Az ilyen gázfázisú szubsztrát lehet olyan gáz vagy gázáram, amelyet tipikusan közvetlenül vagy égetéssel kijuttatnak vagy kiszellőztetnek a légtérbe. A találmány szerinti megoldás egyes megvalósítási módjai esetén a gázfázisú szubsztrát CO-ot tartalmaz. Más megvalósítási módok esetén a gázfázisú szubsztrát CO2-ot és H2-t tartalmaz. Még további megvalósítási módok esetén a gázfázisú szubsztrát CO-ot és H2-t tartalmaz. Egy különösen előnyös megvalósítási mód esetén a gázfázisú szubsztrát CO-ot, CO2-ot és H2-t tartalmaz. A találmány szerinti megoldásban alkalmazhatók olyan szubsztrátok is, amelyek a fent említett komponenseken kívül nitrogén, szén-monoxid, etán és metán közül legalább egy gázt tartalmaznak. Az ilyen szubsztrát tehát lehet a szokásosan „szingáz” vagy szintézisgáz néven említett, széntermékek (például metán) elgázosításából származó gáz, valamint különböző ipari módszerekből származó hulladék gázok.
A „redukáló gáz” kifejezésen CO-ot vagy H2-t, vagy pedig mindkettőt értjük. A „baktériumok növekedéséhez szükségesnél nagyobb mennyiségű redukáló gáz” kifejezésen azt értjük, hogy a redukáló gáz mennyisége meghaladja azt a mennyiséget, amennyit a baktériumok a tápközeg adott összetétele esetén növekedésükhöz vagy metabolizmusukhoz fel tudnak használni. Ez a nagyobb mennyiség elérhető úgy, hogy növeljük a redukáló gáz nettó mennyiségét, vagy pedig csökkentjük a tápanyagkomponenseket, hogy a gáz fölöslegét mennyiségének növelése nélkül érjük el, vagy pedig növeljük a gáz betáplálásának sebességét. Ha a baktériumok több redukáló gáznak vannak kitéve, mint amennyi növekedésükhöz szükséges, etanol termelésének fokozásával válaszolnak.
Az „alkalmazott baktériumok” kifejezésen acetogén anaerob (vagy fakultatív anaerob) baktériumokat értünk, amelyek képesek a CO-ot és vizet, vagy pedig H2-t és CO2-ot etanollá és ecetsavvá alakítani. A találmány szerinti megoldásban alkalmazható baktériumok például - de nem kizárólag - Acetogenium kivui, Acetobacterium woodii, Acetoanaerobium noterae, Clostridium aceticum, Butyríbacteríum methylotrophicum, C. acetobutylicum, C. thermoaceticum, Eubacterium limosum, C. Ijungdahlii PECT, C. Ijungdahlii ERI2, C. Ijungdahlii C-01, C. Ijungdahlii 0-52 és Peptostreptococcus productus. Más acetogén baktériumok szintén alkalmazhatók a találmány szerinti megoldásban.
A „törzskeverék” kifejezésen két vagy több alkalmazott baktérium tenyészetének keverékét értjük. A fent felsorolt baktériumok ilyen „törzskeverékét” alkalmazzuk a találmány szerinti módszerekben.
A „bioreaktor”, „reaktor” és „fermentációs bioreaktor” kifejezéseken olyan fermentálóegységet értünk, amely egy vagy több edényből és/vagy toronyból vagy csőelrendezésből áll, ilyen a folyamatosan kevert tankreaktor (CSTR), immobilizált sejtreaktor (ICR), szivárgóágyas reaktor (TBR), buborékoszlop, gázliftes fermentor, sztatikus keverő vagy más, gáz/folyadék érintkeztetésre alkalmas berendezés. A találmány szerinti megoldás esetén a fermentációs bioreaktor előnyösen magában foglal egy növesztőreaktort, amelyből a fermentlét egy második fermentációs bioreaktorba tápláljuk, amelyben a termék, az etanol legnagyobb része képződik.
A „tápközeg” kifejezést általában a szokásos baktériumnövesztő tápközegek leírására alkalmazzuk, amelyek az adott, alkalmazott baktériumok növekedéséhez elegendő vitaminokat és ásványi anyagokat tartalmaznak. Ezek a tápközegek cukrot nem tartalmaznak. A találmány szerinti megoldásban alkalmazható különböző tápközegek komponensei ismertek, például a jelen találmány feltalálói által korábban publikált közleményekből (lásd például a WO 98/00558; US-5 807 722; US-5 593 886; US-5 821 111 számú iratokat és az ezekben idézett publikációkat). A találmány szerinti megoldás értelmében egy tipikus, CO, CO2 és H2 keverékéből acetát termelésére szolgáló laboratóriumi tápközeg 0,9 mg/l kalcium-pantotenátot tartalmaz. Egy tipikus, CO, CO2 és H2 keverékéből etanol termelésére szolgáló laboratóriumi tápközeg viszont 0,02 mg/l kalcium-pantotenátot tartalmaz.
A „limitáló szubsztrát” és „limitáló tápanyag” kifejezésen olyan anyagot értünk a tápközegben vagy a gázfázisú szubsztrátban, amelyet a baktériumtenyészet növekedése során a bioreaktorban olyan mértékben elfogyaszt, ami már nem biztosítja a stacioner állapotot vagy a stabil baktériumnövekedést a bioreaktorban. A tápközegben vagy a gázfázisú szubsztrátban ezáltal az összes többi anyag fölöslegben, „nem limitáló” mennyiségben lesz jelen. A limitálás bizonyítéka, hogy a limitáló szubsztrát tenyészethez való adagolási sebességének fokozása, azaz a tápanyag-betáplálás sebességének fokozása vagy a gázbevezetés sebességének fokozása a gázfelvétel sebességének (gáz mmol/perc) megfelelő emelkedését eredményezi, ami a sejtsűrűség emelkedésének a következménye.
Hacsak másképpen nem jelezzük, az „acetát kifejezésen a fermentlében jelen levő molekuláris vagy szabad ecetsav és acetátsók keverékét értjük. A molekuláris ecetsav és az acetátsók aránya a rendszer pH-jától függ, azaz konstans „acetát”-koncentráció esetén minél alacsonyabb a pH, annál nagyobb a molekuláris ecetsav koncentrációja az acetátsókhoz képest.
A „sejtkoncentráció” kifejezésen baktériumok szárazanyag-tartalmának tömegét értjük a minta 1 literére számítva. A sejtkoncentrációt mérhetjük közvetlenül, vagy pedig az optikai sűrűségnek megfelelő kalibrációval.
A „természetes állapot” kifejezésen a vegyületek, elemek vagy biológiai útvonalak olyan állapotát értjük, amikor ezek a normálisan jelen levőkhöz képest nem tartalmaznak további elektronokat vagy protonokat.
HU 226 975 Β1
Fordítva, a „redukált állapot” kifejezésen a vegyületek, elemek vagy biológiai útvonalak olyan állapotát értjük, amikor ezek a normálisan jelen levőkhöz képest további egy vagy több elektront tartalmaznak. A redukált állapotot úgy érjük el, hogy egy vagy több elektront adunk a „természetes állapot-hoz, azaz csökkentjük a fermentlé redoxpotenciálját.
A „termelékenység etanolra nézve” kifejezésen az etanol termelésének térfogat szerinti hatékonyságát értjük, amelyet a stacioner állapot etanolkoncentrációja és folyamatos rendszerek folyadék retenciós ideje (LRT) arányaként, vagy pedig az etanol koncentrációja és a szakaszos üzemmódban e koncentráció eléréséhez szükséges idő arányaként számolunk. A „nagy termelékenység etanolra nézve” kifejezésen napi 10 g/l-nél nagyobb termelékenységet értünk.
A „nagy etanolkoncentráció” kifejezésen a fermentlében mintegy 10 g/l-nél nagyobb, előnyösen 15 g/l-nél nagyobb koncentrációt, vagy 5:1 vagy ennél nagyobb etanol/acetát termékarányt értünk.
A „H2-fölösleg” vagy „fölös H2” kifejezés az etanoltermelés esetén azt jelenti, hogy a betáplált gázban a H2 móljai, valamint az átalakított CO móljai kétszerese és az átalakított CO2 móljai háromszorosa összegének az aránya 1,0 értéknél nagyobb. Ha ez az arányszám 1,0 értéknél kisebb, nincs H2-fölösleg, és az etanol csak más szabályozómechanizmuson keresztül termelődik.
//. A találmány szerinti megoldásban hasznosított biológiai útvonalak
Anélkül, hogy bármely elmélethez ragaszkodnánk, feltételezzük, hogy az etanol anaerob termelésének fokozására szolgáló ismertetett eljárások azon biológiai útvonalakon alapszanak, amelyek magukban foglalják a NAD(P)H->NAD(P) átalakítást az autotróf növekedéshez szolgáló acetogén útvonal alap-útvonalciklusaiban. A találmány szerinti módszerben manipuláljuk ezeket az útvonalakat, hogy lehetővé tegyük a folyamatos termelést, és magas etanolkoncentrációt alakítsunk ki alacsony acetátkoncentráció mellett, stabil működési körülmények között, és ezzel kereskedelmileg hasznosítható módszereket biztosítsunk etanol termelésére ipari gázokból.
A NAD(P)H->NAD(P) átalakítás biológiai útvonalakban való alapvető részesedése a következő. Az etanol gáznemű komponensekből, így CO, CO2 és H2 keverékéből való termelése egy háromlépéses folyamatban történik. Az első lépésben a CO- és H2-szubsztrátok oxidálódnak, amelynek során NAD(P)H szabadul fel:
NAD(P) >NAD(P)H CO+H2+H2O >CO2+4H+
Az első lépés termékei azután ecetsavvá alakulnak egy olyan lépésben, amely NAD(P)H-t igényel:
NAD(P)H >NAD(P)
CO+CO2+6H+ >CH3COOH+H2O
Végül, ha a NAD(P)H fölöslegben van jelen, mivel az első lépés reakciója gyorsabban megy végbe, mint a 2. lépés reakciója, az ecetsav etanollá redukálódik:
NAD(P)H >NAD(P)
CH3COOH+4H+ >C2H5OH+H2O így a szubsztrát oxidációjából származó NAD(P)H fölöslegének hozzáférhetősége etanol ecetsavból való képződéséhez vezet.
Két alapvető útvonalciklus ismeretes az acetogén útvonalban: (1) az acetil-CoA-ciklus és (2) a THF-ciklus, amelyben a CO2 metilcsoporttá redukálódik. Az etanol és abból az ecetsav képződésének reakciósorát a következő szakirodalmi helyen ismertetik: L. R. Phillips et al., Applied Biochemistry and Biotechnology, 45/46:145 (1994). Az acetil-CoA-ciklusnak van egy belső ciklusa, amelyet a továbbiakban CO-ciklusnak nevezünk. Ahogyan a CO-ciklus normálisan óramutató járásával egyezően megy végbe, ferredoxin redukálódik. A ferredoxin H2-nel is redukálódhat, ahogyan hidrogenáz enzimen oxidálódik. Ennek eredményeképpen az acetil-CoA-ciklus szintén óramutató járásával megegyezően megy végbe, és ferredoxin oxidálódik. Ha a belső CO-ciklus és az acetil-CoA-ciklus azonos sebességgel megy végbe, a ferredoxin egyensúlyi redox állapotban van. Ha azonban e két ciklus nem azonos sebességben fut le, azaz a CO-ciklus gyorsabban megy végbe, mint az acetil-CoA-ciklus, redukált ferredoxin halmozódik fel. Fölösleges H2-nel szintén ferredoxin termelhető fölöslegben. Ez a fölöslegben levő ferredoxin eredményezi, hogy a NAD(P) regenerálódik (redukálódik) NAD(P)H-vá, ami fölösleget képez, amelyet az egyensúly elérése érdekében el kell szállítani, és ennek során az ecetsav etanollá redukálódik.
A THF-ciklus a sejtnövekedés érdekében működik, és a folyamatos sejtnövekedéshez van rá szükség, ezért nem állítható le teljesen. A THF-ciklus sebességének csökkentése szintén a NAD(P)H >NAD(P) átalakulás nagyobb arányának kialakítására szolgál. A NAD(P)H két helyen oxidálódik. Ezen oxidáció korlátozásával, amely egyensúlyban tartaná a teljes celluláris NAD(P)H->NAD(P) átalakulási arányt, a NAD(P)H-t az ecetsav etanollá való redukálására használjuk.
Az ecetsav etanollá való redukálásának másik alapvető módszere a fermentlé redoxpotenciáljának közvetlen csökkentése. Egy olyan redukciós állapot, amely kellő mértékben alacsonyabb, mint a tenyészet természetes állapota, azt okozza, hogy a NAD(P)H fölöslegben van, és elősegíti az ecetsav etanollá történő redukálását.
///. A találmány szerinti módszerek
A módszer alapvető lépései a következők: folyamatos fermentációs eljárás termékkinyeréssel, amelyet az
1. ábrán és az 1. példában mutatunk be. Egy, alkalmazott baktériumok tenyészetét tartalmazó 3 fermentációs bioreaktorba megválasztott betáplálási sebességgel 1 gázfázisú szubsztrát folyamatos áramát, amely legalább egy redukáló gázt, például CO-ot vagy H2-t tartalmaz, valamint megválasztott betáplálási sebességgel folyékony fázisú 2 tápközeg folyamatos áramát tápláljuk. A 3 bioreaktorban a tápközeget és a gázfázisú szubsztrátot baktériumokkal fermentáljuk, így etanolt és ecetsavat kapunk. Ha stacioner körülmények között stabil sejtkoncentrációt értünk el, a folyamatos rendszer komponenseit úgy manipuláljuk, hogy csökkenjen a redoxpo6
HU 226 975 Β1 tendál, vagy emelkedjék a NAD(P)H->NAD(P) átalakulás aránya a fermentlében, miközben a bioreaktorban a szabad ecetsav koncentrációját 5 g/l érték alatt tartjuk. A találmány szerinti módszereket úgy terveztük, hogy lehetővé tegyék és fenntartsák az etanol és acetát termelését a fermentlében úgy, hogy a termelékenység etanolra nézve - 1:1 és 1:20 etanol/acetát arány mellett 10 g/l-nap értéknél nagyobb legyen. A találmány szerinti megoldás egy megvalósítási módja esetén az arány nagyobb, mint 3:1. A találmány szerinti megoldás egy másik megvalósítási módja esetén az arány nagyobb, mint 5:1. A találmány szerinti megoldás egy további megvalósítási módja esetén az arány nagyobb, mint 10:1. A találmány szerinti megoldás egy még további megvalósítási módja esetén az arány nagyobb, mint 15:1. A találmány szerinti módszer ezenkívül elősegíti, hogy CO, CO2 és H2 elegyéből etanolt nagy koncentrációban (15-35 g/l etanol) alacsony acetátkoncentráció mellett (0-5 g/l) stabilan, folyamatosan (azaz stacioner módon) állítsunk elő, azaz az etanol és az acetát termékek aránya stabil módon 3:1 vagy ennél nagyobb legyen.
A találmány szerinti eljárás során valamely szokásos módszerrel periodikusan mintát veszünk a fermentléből az arányok meghatározására. így például a sejteket elválasztjuk a mintából, például centrifugálással, és a sejtmentes mintát vetjük alá elemzésnek, például gázkromatográfiának. Szakember azonban más szokásos elemző módszert is választhat. Ezenkívül adott esetben további lépések végezhetők az arány elérésére és/vagy fenntartására. A 2. példában ilyen elemző módszert mutatunk be.
A rendszer komponenseinek manipulálása és a kívánt etanoltermelés vagy etanol/acetát arány fenntartása és/vagy elérése érdekében legalább egy, de kívánt esetben több következő lépést teszünk: megváltoztatjuk a tápközeg összetételét, a tápközeg betáplálásának a sebességét, a vizes közeg betáplálásának a sebességét, a nyomást, pH-t, a gázfázisú szubsztrát összetételét, a gáz betáplálási sebességét, a fermentlé keverési sebességét, kiküszöböljük a termékgátlást, csökkentjük a sejtsűrűséget a bioreaktorban, megelőzzük a szubsztrátgátlást. Előnyös manipulációk például: a bioreaktort folyékony fázisú, limitáló tápanyaggal (pantotenát vagy kobalt) látjuk el, a betáplált gázban kis fölöslegben alkalmazzuk a CO-ot és H2-t, minimalizáljuk az acetátkoncentrációt, megakadályozzuk, hogy a tenyészet akklimatizálódjon a folyékony fázisú tápanyagok alacsony koncentrációjához, a tenyészetet viszonylag gyorsan egy alkalmas sejtkoncentrációra állítjuk be, a tenyészet pH-ját 4,5 érték fölé emeljük, a bioreaktorból baktériumsejteket távolítunk el olyan sejtkoncentrációig, amely alacsonyabb, mint a stacioner állapotnak megfelelő, amikor az összes redukáló gáz vagy tápanyag hasznosul a bioreaktorban, és emeljük a vizes fázis betáplálási sebességét, amikor a fermentációs bioreaktorban levő fermentlében jelen levő acetát szabad ecetsavrészaránya meghaladja a 2 g/l értéket, ezzel a szabad ecetsav koncentrációjának bármilyen nemkívánatos emelkedését meggátoljuk. Ezeket a lépéseket részletesen ismertetjük a későbbiekben.
A 4 kilépő gázt - amely a CO, CO2 és H2 keveréktől eltérő gázokat, valamint a reaktorból származó nem konvertált CO, CO2 és H2 keveréket tartalmaz - lefúvatjuk a reaktorból, és fűtőértékét hasznosítjuk. Ha szabályozómechanizmusként H2-fölösleget használunk, akkor a kilépő gázban a H2 parciális nyomását, valamint a kilépő gázban a H2 parciális nyomásának és a CO2 parciális nyomásának arányát alkalmazzuk az ezen lépésben termelt etanol és acetát arányának meghatározására és szabályozására. A sejtek visszacirkuláltatását alkalmazzuk (de nem szükségszerűen) a sejtkoncentráció növelésére a bioreaktorban, és ezzel több biokatalizátort biztosítunk a CO, CO2 és H2 konverziójához. A sejtek cirkuláltatásával a reaktorból elfolyó 5 effluenst a 6 sejtszeparátorba juttatjuk, ahol elválasztjuk a 7 sejteket és a 8 (sejtmentes folyékony) permeátumot. A 7 sejteket visszaküldjük a bioreaktorba, és a 8 permeátumot termékkinyerésre.
A sejtek elválasztását folyamatos centrifuga, szűrő vagy felcsévélt spirál szűrőrendszer, kerámia szűrőrendszer vagy más szilárd/folyadék elválasztó berendezés alkalmazásával végezzük. Az etanolt a permeátumból (vagy pedig az 5 reaktorból elfolyó effluensből, ha nem alkalmazunk sejtelválasztást) különböző módszerekkel nyerhetjük ki, beleértve a desztillációt és adszorpciót. A 8 permeátumot egy desztillálóoszlopban választjuk el, így 95%-os etanol 10 fejpárlatot és 11 vizet kapunk, amelyet visszavezetünk a 3 reaktorba. A visszavezetett 11 víz a fermentációban el nem fogyasztott fölösleges tápanyagokat tartalmazza, azonban a fermentációból vagy sejtlizátumból származó bármilyen fölösleges vitamin elbomlik a desztilláció hőhatására. A 95%-os etanol 10 fejpárlatot a 12 molekulaszűrőre juttatjuk, ahol 13 vízmentes etanolt, a kívánt terméket elválasztjuk a 14 híg etanoltól, amelyet visszavezetünk a 9 desztillálóoszlopra.
A sejtek növekedésének, elhalásának és elvételének folyamatos kombinálása konstans sejtkoncentrációt tart fenn, így az etanol (és kis mennyiségű ecetsav) termelésére alkalmazott folyamatos módszer több hónapon keresztül működtethető CO, CO2 és H2, valamint tápanyagok adagolásával, anélkül hogy a tenyészetet ki kellene egészíteni. A találmány szerinti módszerrel fenntartjuk és szabályozzuk az etanol és ecetsav folyamatos termelését, és megakadályozzuk vagy gyorsan korrigáljuk a folyamat zavarait. A találmány szerinti módszer ezenkívül elősegíti, hogy megakadályozzuk, hogy a tenyészet akklimatizálódjon a tápanyagok alacsony koncentrációjához, ami káros lehet a tenyésztés végbemenetelére nézve. Az alábbiakban és a példákban ismertetett eljárásokban a nyomás 101,3 kPa és a hőmérséklet 36—41 °C, hacsak nem jelezzük másképpen. A kívánatos nyomás- és hőmérsékletértékeket szakember egyszerűen meghatározhatja a bioreaktorban alkalmazott mikroorganizmustól függően.
Az alábbiakban ismertetett, az alapvető lépéseken túlmenően alkalmazott különböző manipulációk lehetővé teszik az etanol fokozott termelését. Előnyösen folyékony fázisban tápanyag- (pantotenát- vagy kobalt-)
HU 226 975 Β1 limitálást, vagy pedig a H2 vagy CO fölöslegét alkalmazzuk - az alábbiakban ismertetett módon - az etanoltermelés kívánt hatékonyságának elérésére és fenntartására, valamint az etanol és acetát stabil koncentrációban és arányokban történő termelésének lehetővé tételére a fermentlében. Ezek a körülmények az etanol és acetát stabil koncentrációban történő termelését teszik lehetővé a fermentlében. Egy előnyös megvalósítási mód szerint az etanol és acetát termelésének aránya a fermentlében 10:1 értéknél nagyobb, és az etanol koncentrációja 15 g/l értéknél nagyobb.
A) Kalcium-pantotenát limitálása
A találmány szerinti megoldás egy megvalósítási módja értelmében a biológiai útvonalaknak az etanoltermelés elősegítése és az ecetsavtermelés korlátozása érdekében végzett manipulálása során a tápközegben olyan mértékre korlátozzuk a kalcium-pantotenátot, amely kevesebb mint amennyi a baktériumok olyan stabil, stacioner koncentrációban való tartásához szükséges, amellyel a rendelkezésre álló kalcium-pantotenát teljes mértékben felhasználódna. A pantotenát az acetil-CoA-ciklus egy komponense, így a tápközegben a kalcium-pantotenát korlátozásával az acetil-CoA-ciklus sebessége a CO-ciklus sebességéhez képest csökken. Ez a redukált ferredoxin felszaporodásához és a NAD(P)->NAD(P)H átalakulás csökkenéséhez vezet, és így az etanol végtermék termelését fokozza.
A pantotenátlimitálás akkor figyelhető meg, ha a reaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva az adagolt kalcium-pantotenát mennyisége 0,5-100 pg. Az adagolt kalcium-pantotenát mennyisége előnyösen 2-75 pg a reaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva. Az adagolt kalcium-pantotenát mennyisége még előnyösebben 0,5-50 pg a reaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva. Egy másik megvalósítási mód szerint az adagolt kalcium-pantotenát mennyisége mintegy 1-25 pg a reaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva. Egy további megvalósítási mód szerint az adagolt kalcium-pantotenát mennyisége mintegy 10-30 pg a reaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva. A tápanyag ilyen mennyisége fenntartja, hogy az etanoltermelés kerüljön előtérbe az acetáttermeléssel szemben. Egy ilyen megvalósítási módot ismertetünk a 4. példában.
A találmány egy másik szempontja szerint a fermentáló bioreaktorban levő baktériumok alacsony, limitáló kalcium-pantotenát-koncentrációhoz való akklimatizálódását úgy akadályozzuk meg, hogy a fermentációs paramétereket úgy szabályozzuk, hogy konstans kalcium-pantotenát-koncentrációt tartunk fenn, miközben a gázbevezetés sebessége, folyadékadagolás sebessége, keverési sebesség és H2 parciális nyomás közül legalább egy, de néha több paramétert állítunk. A tápanyagokban történő nagyobb változtatásokat elkerüljük, viszonylag konstans tápanyagkoncentrációadagolást tartunk fenn. Ha a tenyészetet hagyjuk akklimatizálódni a folyadékfázis alacsony limitáló tápanyagkoncentrációjához, gyenge, 0,1 g-etanol/g-acetát vagy ennél alacsonyabb termékkihozatalt kapunk, irreverzíbilis módon. így a reaktor leeresztése és újrainokulálása válik szükségessé. A biológiai útvonalat előnyösen úgy szabályozzuk, hogy az elősegítse az etanol termelését, és korlátozza az ecetsav termelését, először a betáplált gázban a H2 fölöslegének adagolásával a bioreaktorba, és azután a kalcium-pantotenát korlátozásával a tápközegben, amint az alábbiakban ismertetjük.
Valójában úgy járunk el, hogy induláskor a normálisan korlátozó, folyadékfázisbeli tápanyagot, a kalciumpantotenátot fölöslegben tartjuk, hogy megakadályozzuk az alacsony koncentrációhoz való akklimatizálódást, egy olyan állapotot, ami nagyon gyenge hozamot és a tenyészet azon képességének elvesztését okozhatja, hogy 10 g/l-nap értéknél magasabb etanoltermelést érjen el, ha a H2-t nem fölöslegben adagoljuk. A fermentációs paraméterek ilyen szabályozását mutatjuk be a 17. példában egy adott baktériumtenyészet esetén.
B) Kobalt limitálása
A találmány szerinti megoldás egy másik megvalósítási módja értelmében a biológiai útvonalaknak az etanoltermelés elősegítésére és az ecetsavtermelés korlátozására szolgáló manipulálása során a kobalt mennyiségét a tápközegben olyan értékre korlátozzuk, amely kevesebb mint amennyi a baktériumok stabil stacioner állapotban való tartásához szükséges, amellyel a rendelkezésre álló kobalt teljes mértékben felhasználódna. A kobaltlimitálás akkor figyelhető meg, ha a bioreaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva az adagolt kobalt mennyisége 5-100 pg. Az adagolt kobalt mennyisége előnyösen 20-50 pg a reaktorban termelt sejtek száraz tömegének grammjaira számítva. Ilyen mennyiségű kobalt elősegíti az etanol termelését az eljárásban az acetáthoz képest. A 18. példában bemutatunk egy ilyen megvalósítási módot, a kobalt limitálását a reaktorban.
A kobalt limitálása a fermentlében csökkentheti az acetil-CoA-ciklus sebességét is. Mivel a kobalt visz át egy metilcsoportot a THF-ciklusból az acetil-CoA-ciklusba, a fermentlében a kobalt limitálása csökkenti a THF-ciklus funkcióját is az átvitel gátlásával. A kobalt limitálása csökkenti a THF-ciklus sebességét, ami magasabb NAD(P)H:NAD(P) arányt, és így etanoltermelést eredményez.
Az eljárásban további manipulációt végzünk oly módon, hogy megakadályozzuk az alacsony kobaltkoncentrációhoz való akklimatizálódást. Ugyanolyan módon, ahogyan az alacsony pantotenátkoncentrációhoz való akklimatizálódást megakadályozzuk, állandó kobaltkoncentrációt tartunk fenn, miközben egy vagy több fermentációs paramétert (gázadagolás sebessége, folyadékadagolás sebessége, keverés sebessége, CO2-tartalom, H2 parciális nyomása) állítunk. A tápanyagokban történő nagyobb változtatásokat elkerüljük, viszonylag konstans tápanyag-koncentrációt tartunk fenn. A fermentációs paraméterek ilyen szabályozásának egy példáját a 19. példában mutatjuk be, egy adott baktériumtenyészethez.
HU 226 975 Β1
Előnyösen úgy járunk el, hogy a biológiai útvonalat az etanoltermelés elősegítése és az acetáttermelés korlátozása révén szabályozzuk, elsősorban úgy, hogy a reaktorba a H2-t fölöslegben adagoljuk, majd a kobaltot limitáljuk a tápközegben, ahogyan az előbbiekben ismertettük. Induláskor a folyadékfázisú tápközegben a kobalt mennyiségét fölöslegben tartjuk, hogy megakadályozzuk az alacsony koncentrációkhoz való akklimatizálódást, egy olyan állapotot, ami a tenyészet nagyon gyenge termelékenységét és a tenyészet azon képességének elvesztését okozhatja, hogy a termékeket 1:1 aránynál nagyobb arányban termelje.
C) Hidrogén túladagolása
A találmány szerinti megoldás egy további megvalósítási módja értelmében a biológiai útvonalat az etanoltermelés elősegítése és az acetáttermelés korlátozása révén úgy manipuláljuk, hogy a H2-t fölöslegben alkalmazzuk az adagolt gázban, vagy pedig korlátozzuk a széntartalmú gázok adagolását, ezzel a H2 fölöslegbe kerül, amit a biológiai útvonal hasznosít. Előnyösen úgy járunk el, hogy a H2 redukáló gázt fölöslegben alkalmazzuk a CO-hoz képest, és a fölöslegben vett H2 a baktériumokat arra készteti, hogy a fermentlében az etanolt nagyobb arányban termeljék az acetáthoz képest. Ha a H2 aránya (mol-ban kifejezve a betáplált gázban) a CO konvertált mennyiségének kétszerese (mol-ban kifejezve a gázban) és a CO2 konvertált mennyiségének háromszorosa (mol-ban kifejezve a gázban) összegéhez viszonyítva nagyobb, mint 1, a fermentort szénre nézve limitáltnak nevezzük. A H2 parciális nyomása a kilépő gázban előnyösen
40,5 kPa-nál nagyobb érték. A H2 parciális nyomása és a CO2 parciális nyomása arányának 3,0 értéknél nagyobbnak kell lennie ahhoz, hogy elegendő H2 legyen jelen az összes CO2 felhasználásához. Ha a CO2 parciális nyomásának értéke 10,13 kPa-nál nagyobb érték, akkor valószínű, hogy a növekedés más módon korlátozódik. A 20. példában illusztráljuk a módszer ezen lépését.
Induláskor a H2 fölöslegének az alkalmazása előnyösebb, mint a tápanyag-limitálás, főleg azért, mert ezt könnyebb szabályozni. A H2 fölöslegének alkalmazása azzal az előnnyel jár, hogy ezzel kiküszöböljük az ecetsav fölös termelődését, ami gyenge termékarányokhoz és potenciális ecetsavgátláshoz, valamint az alacsony tápanyag-koncentrációhoz való akklimatizálódáshoz vezethet.
D) Szén-monoxid túladagolása
A módszer komponensei manipulálásának egy másik módja a redukáló gáz CO túladagolása a biológiai útvonalban alkalmazott, gázfázisú szubsztrátban, ami közvetlenül csökkenti a fermentlé redoxpotenciálját. Ennek megfelelően ezen megvalósítási mód értelmében a bioreaktorba CO-ot tartalmazó gázfázisú szubsztrátot vezetünk, a bioreaktorban jelen levő CO mennyisége nagyobb, mint amennyi a baktériumok olyan stabil állandó koncentrációban való tartásához szükséges, hogy a biztosított CO teljes mértékben felhasználódjon.
A CO-túladagolás - mint az ecetsavtermeléssel szemben az etanoltermelés biztosításának módszere - akkor valósul meg, ha a CO felvételének fajlagos aránya (millimól CO per gramm sejt száraz tömeg percenként a reaktorban, vagyis mmol/g-sejt/perc) 0,3 értéknél nagyobb. Még előnyösebb, ha ebben a lépésben a CO felvételének fajlagos aránya 0,5 értéknél nagyobb. Ez azt jelenti, hogy a CO-ot átlagosan minden sejt metabolizmusa során legalább 0,3 mmol/g/perc sebességgel, vagy még ideálisabb esetben legalább 0,5 mmol/g/perc sebességgel hasznosítja. A CO-ot előnyösen olyan sebességgel adagoljuk, hogy a CO-felvétel 0,3-2 mmol CO/g-baktériumsejt-száraz tömeg/perc érték legyen. Egy másik megvalósítási mód értelmében CO-ot olyan sebességgel adagoljuk, hogy a CO-felvétel 0,5-1,5 mmol CO/g-baktériumsejt-száraz tömeg/perc érték legyen. Egy további megvalósítási mód értelmében a CO-ot olyan sebességgel adagoljuk, hogy a CO-felvétel mintegy 1 mmol CO/g-baktériumsejt-száraz tömeg/perc érték legyen. A 24. példában e módszer egy megvalósítási módját mutatjuk be.
A CO-felvétel ilyen sebessége biztosítja, hogy etanol termelődjön acetáttal szemben. Ha a CO-ot a gáz nyomása vagy a különösen jó tömegátadás segítségével úgy adagoljuk, hogy az oldott CO a fermentlében jelentős mennyiségben legyen jelen, a fermentlé redukáltabbá válik. A CO túladagolásának két további előnye van. A CO fölöslege azt okozhatja, hogy a CO-ciklus gyorsabban megy végbe, és ha az acetil-CoA-ciklus más módon korlátozódik, és nem tud lépést tartani a CO-ciklussal, a redukált ferredoxin felszaporodik. A CO a teljes háromlépéses módszerben szubsztrátgátlással lelassíthatja a 2. lépést is (az intermedier ecetsav termelését). A 2. lépésnek az 1. lépéshez viszonyított ilyen csökkent sebessége a NAD(P)H fölöslegét eredményezi, ami elősegíti az etanoltermelést az ecetsavtermeléshez viszonyítva.
Bár a CO fölöslege fokozhatja az etanoltermelést azáltal, hogy közvetlenül csökkenti a fermentlé redoxpotenciálját, a CO fölöslegének jelenléte gátolja a növekedést is a CO-dehidrogenáz, és így a H2 felvételének gátlásával. A CO fölöslegének jelenléte sajnos gyenge H2-konverziót is okoz, ami gazdaságilag nem előnyös. A szubsztrátgátlás alatt történő kiterjedt működés következménye a gyenge H2-felvétel. Ez nyilvánvalóan sejtlízist okoz, és szükségessé teszi a reaktor újraindítását. Ha a módszer következménye véletlenül bekövetkező szubsztrátgátlás (túl sok CO jelenléte a rendelkezésre álló sejtek számára) a tenyészet kezdeti növekedése során vagy később, a gázadagolás és/vagy a keverés sebességét csökkentjük, amíg a szubsztrátgátlás nem enyhül. A 21. példában bemutatjuk a gázadagolás vagy a keverés sebességének csökkentését az említett hatás elérésére.
E) További manipulációs lépések
A fent ismertetett főbb, az eljárást elősegítő lépések mellett kívánatos további néhány lépést elvégezni az etanol termelésére szolgáló eljárásban.
HU 226 975 Β1
1. Tömegátadás fokozása
Egy ilyen további lépés annak biztosítása, hogy a CO és H2 tömegátadása a betáplált gázból a folyékony fermentlébe gyorsabb legyen, mint ahogyan a baktériumok oldott gázt hasznosítani képesek. így például ha a C. Ijungdahlii tenyészetet tartalmazó bioreaktorba CO, CO2 és H2 keverékét adagoljuk, és tápanyagok (például pantotenát és kobalt) limitációja vagy fölösleges mennyiségű H2 jelenléte nélkül működtetjük, a sejtek növekedését a gáz mennyiségének a folyadékfázisba való bejutása korlátozza, és a rendszer ecetsavat termel. Ha a tenyészetet a növekedéséhez szükségeshez képest CO vagy H2 enyhe fölöslegével látjuk el, akkor etanolt termel. Ha azonban túl sok gáz jut a folyadékfázisba, szubsztrátgátlás következik be, ami a tenyészet egyensúlyának felborulásához és a sejtek pusztulásához vezet. A fölös tömegátadással való működtetésnek tehát nagyon szűk tartománya van. A 22. példában ezt a módszert mutatjuk be.
Az acetil-CoA-ciklus esetén a redukált ferredoxin fölöslegben való termeléséhez a CO-ciklusnak vagy a ferredoxin hidrogenázok által való redukciójának gyorsabban kell végbemennie, mint az acetil-CoA-ciklusnak. Az említett módszerek korlátozzák azt a sebességet, amellyel az organizmusok hasznosítják az oldott gázokat, oly módon, hogy korlátozzuk azt a sebességet, ahogyan az esszenciális tápanyagok, például a kalcium-pantotenát vagy a kobalt vagy más szubsztrátok, például a CO2-gáz hozzáférhetők a baktériumok számára, vagy pedig fölösleges mennyiségű szubsztrátot, így H2-t vagy CO-ot juttatunk a tenyészetbe.
A tömegátadás elméleti sebessége, ami gyorsabb, mint ahogyan a baktériumok - egyéb korlátozás nélkül - felhasználják a szubsztrátot, számolható. Ezt a sebességet, ha elérjük, korlátozza az organizmusok természetes növekedési sebessége. Ezért a leghatékonyabb kiviteli mód az, ha a tömegátadás (gázadagolás vagy a keverés sebessége) gyorsabb, mint az a sebesség, amelynél a legmagasabb sejtkoncentráció a szubsztrátot egyéb korlátozás nélkül hasznosítja. Ez nagyon szűk működési tartomány, mivel a szubsztrátgátlás nagyon gyorsan sejtpusztulást okozhat, és olyan melléktermék képződhet, amely toxikus a tenyészetre nézve.
2. CO és H2 fölöslegének biztosítása
A találmány szerinti megoldás egy további megvalósítási módja esetén a magas etanolkoncentráció/korlátozott ecetsavtermelés stabilitását olyan módszerrel érjük el, amelyben korlátozzuk a kobalt vagy kalcium-pantotenát adagolását, vagy pedig a H2-t vagy CO-ot fölöslegben alkalmazzuk. E lépés szerint - mivel a tenyészet a CO, H2 és CO2 gázfázisú szubsztrátokat szén- és energiaforrásként használja - a CO-ot és H2-t enyhe fölöslegben alkalmazzuk. A CO és H2 enyhe fölöslegét úgy alkalmazzuk, hogy egyenletes működést érünk el, majd fokozatosan emeljük a gázadagolás sebességét és/vagy a keverés sebességét (10%-kal vagy ennél kisebb mértékben), amíg a CO és H2 konverziója éppen el nem kezd csökkenni. Ez az egyik eszköze annak, hogy megelőzzük a korlátozott tömegátadást, ami az ecetsavtermelést segíti elő, fölösleges mennyiségű redukált ferredoxint biztosítsunk a NAD(P)->NAD(P)H redukáláshoz, valamint az etanoltermeléshez. Ha a CO-ot és H2-t nem alkalmazzuk enyhe fölöslegben, korlátozott tömegátadás következik be, és az útvonal kiegyensúlyozódik. Ez az etanol- és acetáttermelés gyenge arányát (magas acetátkoncentrációt) eredményezi. A magas acetátkoncentráció azután ecetsavgátlást okozhat, ami korlátozza a baktériumok H2-felvevő képességét, és végső fokon a tenyésztés sikertelenségéhez vezet.
A korlátozott tömegátadás megelőzésére tett lépések közé tartozik a keverés sebességének vagy a gázadagolás sebességének fokozása annak érdekében, hogy több CO-ot és H2-t juttassunk a folyadékfázisba, és így visszatérjünk az enyhe CO- és H2-fölösleghez. Ha a korlátozott tömegátadás következtében termékgátlás jön létre, a folyadékadagolás sebességét kell növelni, hogy hígítással csökkentve az acetátkoncentrációt megszüntessük az ecetsavgátlást. Mivel a tápközeg adagolási sebességének növelésével emelkedne a pantotenátnak vagy kobaltnak a termelt sejtek grammjaira vonatkoztatott értéke pg-ban kifejezve, ezt a sebességnövelést csak rövid ideig szabad végezni, vagy pedig a pantotenát vagy kobalt fölöslegét meg kell szüntetni a koncentráció beállításával a tápközegben vagy a vízbevezetés sebességének a növelésével.
3. Az ecetsavgátlás szabályozása
A fent ismertetett módszerek esetén ecetsav által okozott termékgátlás következhet be, ha túl sok, azaz >2 g/l molekuláris ecetsav szaporodik fel a bioreaktorban, ami gátolja a sejtnövekedést és a további etanoltermelést. Egy másik manipulációs lépést alkalmazunk a tenyésztés sikertelenségének megelőzésére. Egyfajta módosítás abban áll, hogy rövid ideig növeljük a folyadék- vagy vizes fázis betáplálási sebességét, a gátló ecetsavkoncentráció 2 g/l érték alá történő csökkentésére a folyadékfázisban. E lépést egy adott tenyészet esetén a 23. példában mutatjuk be.
4. A víz cirkuláltatása
Egy további adott esetben végzett lépés a találmány szerinti módszer esetén az olyan stabil tenyészet fenntartására, amely etanolt termel egyedüli termékként, ecetsav termelése nélkül, hogy a desztillálással kapott vizet visszavezetjük a bioreaktorba (lásd például a 15. példát). Amint korábban megjegyeztük, a víz (legfeljebb 5 g/l acetáttartalommal) visszavezetése azzal az előnnyel jár, hogy az acetát terméket visszavezetjük a reaktorba, így tiszta ecetsavat nem termelünk. így a reaktorban egyensúlyt hozunk létre az etanol és az acetát között. Ennek eredményeképpen a reaktorba betáplált és termékké alakított összes CO, CO2 és H2 etanoltermelést eredményez, kivéve, ami a tenyészet fenntartására használódik el.
5. A sejtsűrűség csökkentése
Az eljárásban alkalmazható, egy további manipulációs lépés szerint periodikusan vagy folyamatosan bak10
HU 226 975 Β1 tériumsejteket veszünk el a bioreaktorból, hogy csökkentsük a sejtkoncentrációt. Ez a manipulációs lépés arra szolgál, hogy a sejtkoncentrációt alacsonyabb értékre csökkentsük, mint a stabil, stacioner állapot azon sejtkoncentrációja, ahol a redukáló gáz vagy a bioreaktorban levő tápanyagok teljes mértékben felhasználódnak. Ezáltal a sejtsűrűség megváltozatásával elősegítjük az etanol termelését az acetáttal szemben. Lásd például a 25. példát.
6. Kétfokozatú CSTR
Az etanol tápközeg-limitációval történő előállításával kapcsolatos egyik probléma az, hogy a tenyészet képes vagy hajlamos végül adaptálódni a korlátozó körülményekhez, és néhány hónapig tartó működés után nem termel tovább etanoit. Ehelyett végül az acetát lesz a domináns termék. Ez a korlátozó tápanyaghoz való akklimatizálódás olyan tenyészetet eredményez, amely több ecetsavat termel, mint etanoit (etanol/acetát termékarány 1,0 vagy ennél kisebb), és alacsony etanolkoncentrációt (néha csupán 1 g/l) eredményez. Az adaptálódás leginkább akkor alakul ki, ha a tenyészet induláskor nincs ellátva elegendő tápanyaggal, amikor a növekedési sebesség fontosabb, mint az etanoltermelés aránya. Emellett fennáll az a veszély, hogy a tenyészet akklimatizálódhat az alacsony tápanyagkoncentrációhoz a stacioner fázisban, különösen mivel a tápanyag-koncentrációkat lefelé szorítjuk, hogy a reakciórendszert megszabadítsuk az acetáttól.
Az adaptáció és az említett veszély megelőzésére a pantotenát- vagy kobaltlimitáló lépés alkalmazásakor - ahelyett, hogy a tenyészetet a rendelkezésre álló tápanyagokkal hagynánk növekedni - a módszer egy másfajta módosítását végezhetjük. így kétfokozatú CSTR rendszert alkalmazunk, amelyben elsődlegesen jó tenyészetnövekedés következik be az első fokozatban a korlátozó tápanyagok enyhe fölöslegén (esetleg ecetsavtermeléssel társulva), majd a termelőfokozatban az első fokozatból származó tenyészetet a korlátozó tápanyaggal korlátozzuk és etanol nagy koncentrációjának termelésére használjuk. Ez a módosítás lehetővé teszi, hogy stabil tenyészetet tartsunk fenn, amely nem akklimatizálódik a csökkent pantotenát- vagy kobaltkoncentrációhoz. Ez a módosítás magában foglal egy kétfokozatú CSTR-t, amelyben egy növesztőreaktorból (1. fokozat) tápláljuk a termelőreaktort (2. fokozat), ahol az etanol fő tömegének termelése történik. A növesztőreaktorban nem alkalmazzuk a fent említett tápanyag-limitáló lépést, így a tenyészet nem olyan érzékeny a korlátozó körülményekhez való akklimatizálódásra.
Egy kétfokozatú CSTR rendszert a 2. ábrán mutatunk be sematikusan, és az alábbi leírásban erre az ábrára hivatkozunk. E megvalósítási mód szerint a növesztőfokozatot körülbelül 24 óra folyadék retenciós idővel (LRT) működtetjük. Az 1 növesztőfokozatú CSTR-be a 2 tápközegben elegendő mennyiségű pantotenátot és kobaltot adagolunk, hogy egészséges tenyészetet kapjunk (és kevés ecetsavat is termelhetünk). így fölös mennyiségű ecetsavat termelünk a reaktorban, de fokozott stabilitással. Ez a pantotenátés kobaltkoncentráció több annál, mint amennyit egy etanoit termelő egyedüli CSTR-be táplálnánk. Az e reaktorba táplált gáz a 4 termelőfokozatból származó 3 nem konvertált gáz, a betáplált folyadék pedig friss 2 tápközeg. A növesztési fokozatú CSTR-t sejt-visszacirkuláltatás nélkül működtetjük. E növesztőfokozatú reaktor alkalmazásának célja, hogy a későbbi etanoltermelést egészséges tenyészettel lássuk el, amely nem akklimatizálódik az alacsony pantotenátkoncentrációhoz.
A 4 termelési fokozatú reaktort 20 óránál rövidebb nominális LRT-vel működtetjük. Ezt a sejt-visszacirkuláltatással működtetett CSTR-t 5 friss gázbetáplálással látjuk el, és itt a konverzió alacsony lehet. Friss 6 tápközeg-betáplálással és a növesztőfokozatból származó 7 tenyészetbetáplálással tápláljuk. Ebbe a reaktorba minimális pantotenátot és kobaltot juttatunk, mivel a fölösleg a növesztőfokozatból hozzáférhető. Ennél a reaktornál 8 sejt-visszacirkuláltatást alkalmazunk, hogy a 9 reaktorba visszajuttatott sejtekkel a legnagyobb kihozatalt érjük el. A 10 folyékony termék kilépő etanoltartalmának 20 g/l-nél nagyobbnak kell lennie. A kétfokozatú CSTR rendszerre jellemző, hogy az alacsony pantotenát- vagy kobaltkoncentrációhoz való akklimatizálódásban csekély a változás; az átlagos LRT 30 óra vagy kevesebb; várható nagyobb az etanoltermelékenység és magasabb az etanolkoncentráció, mint azonos méretű egyedüli CSTR esetén.
7. Módosítás az indításnál
A találmány szerinti módszerben előnyösen alkalmazható további lépés szerint a fermentációs tenyésztés kezdetén sejtszaporítást végzünk. Az etanol és ecetsav termeléséhez CO-dal, CO2-dal és H2-nel táplált bioreaktor indítását úgy végezzük, hogy törzssejttenyészetből adagonként beoltjuk (11. példa), vagy pedig egy meglevő reaktorból folyamatosan beoltjuk tenyészetbetáplálás formájában (12. példa). Amint a fentiekben, a tenyészet alacsony pantotenát- vagy kobaltkoncentrációkhoz való akklimatizálódásának megelőzése kapcsán említettük, kívánatos, hogy a tenyészetet nagy sejtkoncentrációra állítsuk be, mielőtt a tápanyagkorlátozást beállítanánk, és fölösleges mennyiségű H2-t adagolnánk. Ez a gyors indulás megelőzi, hogy a tenyészet akklimatizálódjon, és jó termékarányt (magas etanol- és alacsony acetátkoncentrációt) eredményez. Ha nem alkalmazzuk a gyors indítást, gyenge termékarányok alakulhatnak ki, és a tenyészet akklimatizálódhat a folyadékfázis alacsony tápanyag-koncentrációihoz, és így a reaktort újra kell indítani.
A reaktort egy adag folyadékfázissal indítjuk (a folyékony fázist induláskor nem adagoljuk folyamatosan a reaktorba), alacsony keverési sebességnél (mintegy 400-600 rpm laboratóriumi New Brunswick Scientific Bioflo® reaktorban) és a kívánt pH-nál. így a folyadékfázis a reaktorban vitaminokat és sókat tartalmazó tápközeg egy adagjából áll, a korlátozó tápanyagok - akár a kalcium-pantotenát, akár a kobalt - nominális koncentrációjával (például 20 pg/l pantotenát vagy 75 ppb
HU 226 975 Β1 kobalt). Ha egy meglévő reaktorból származó folyamatos beoltást alkalmazunk, nem szükséges az adagonként! folyadékfázissal való működtetést alkalmazni. Ebben az esetben induláskor a gázt folyamatosan, kis sebességgel tápláljuk a reaktorba. Ideális esetben induláskor a gázfázisban nincs CO2, H2-ben gazdag, és a gázadagolás és a keverés sebessége alacsony, hogy megakadályozzuk a CO szubsztrátgátlást.
Az etanolkoncentráció CO, CO2 és H2 keverékéből gazdaságilag életképes módon történő termelésének és fenntartásának általános indulási eljárása például három elkülönülő fázisból áll: (a) kezdeti indulás, ahol a sejtszaporítás kritikus; (b) felfutás, ahol a termelési arány válik kritikussá, és (c) stacioner működés. A kezdeti indulásra lényegében véve az jellemző, hogy egy adag folyadékkal oltunk be, amely nominális koncentrációban tartalmazza a kobaltot (75 ppb) vagy a kalcium-pantotenátot (20 pg/l), kívánt pH-nál (tipikusan 4,5-5,5 értéknél). A felfutás elősegítésére a gázbevezetés sebességét és a keverési sebességet előnyösen alacsony értéken tartjuk, miközben a H2-t fölöslegben adagoljuk. A felfutás során az etanoltermelés oka a fölöslegben adagolt H2; a tápanyag-korlátozást a későbbiekben alkalmazzuk. így a folyékony tápanyagok fölöslege jelen van a felfutás során, hogy a tenyészet ne akklimatizálódjon nemkívánatos módon az alacsony tápanyag-koncentrációkhoz. Ahogyan a fermentáció előrehalad a beoltástól számítva néhány órán át, CO2 termelődik, és a H2 fogy. Ezek arányának változása figyelmeztet, hogy a keverés nominális sebességét lassan emelni kell (talán 200-300 rpm-mel egy laboratóriumi reaktorban, 2-3 napon át), a korlátozott tömegátadás miatt.
A CO2-képződés ilyen megindulása sokkal gyorsabban következik be olyan rendszerekben, amelyeknél folyamatos inokulálást végzünk, mint az olyanoknál, ahol szakaszos inokulálást tenyészet-törzsszuszpenzióból. Ha azonban a keverési sebességet túl gyorsan emeljük, CO szubsztrátgátlás következik be. A H2konverzió (vagy CO2-termelés) figyelése, miközben a keverési sebességet nominális emeljük, viszonylag rövid ideig szükséges, míg a kívánt keverési sebességet el nem érjük. A szakaszos tenyésztésben a keverési sebesség emelésének ezen ideje alatt a legfontosabb a sejtszaporítás, a termékképződéssel szemben.
Ha elértük a megcélzott keverési sebességet (800-1000 rpm laboratóriumi New Brunswick Scientific Bioflo® reaktornál), hagyjuk, hogy a tenyészet H2-felvétele állandósuljon. A kezdeti állapot átmegy egy olyan módozatba, ahol a termelési arány fontossá válik. Kívánatos, hogy a CO-konverzió meghaladja a 80%-ot, és a kilépő gázban a H2 parciális nyomása nagy (legalább 55,7 kPa) legyen, hogy biztosítsuk az etanoltermelést, miközben korlátozzuk az acetát- és szabad ecetsavkoncentrációt. Ezután beindítjuk a folyékony tápoldat adagolását (olyan rendszerek esetén, amelyeket szakaszosan inokulálunk tenyészet-törzsszuszpenzióból) a folyamatos adagoláshoz, és a gázadagolás sebességét 10%-os lépésekkel növeljük a kívánt átfolyási sebesség eléréséig. A H2-adagolást fölöslegben tartjuk, hogy megelőzzük a fölösleges ecetsavtermelést. Ahogyan a gázadagolást növeljük, a folyékony tápanyagokat (kalcium-pantotenát vagy kobalt) limitáljuk, és az ilyen limitálás hatására kismértékben csökken a termékképződésben megnyilvánuló H2-konverzió.
Stacioner működtetés esetén 15-35 g/l etanol és 0-5 g/l acetát termelését érjük el. Ebben a fokozatban a korlátozó tápanyagok, a folyadékadagolás és a gázadagolás sebességének kismértékű igazítása szükséges, ezt szakember a technika állása és az itt közölt ismeretek alapján meg tudja határozni. Ha az etanoltermeléshez sejt-visszacirkuláltatást is alkalmazunk, akkor ezt a gázadagolás sebességének (emelésével) és a tápanyag-koncentráció (csökkentésével) beállításával együtt végezzük.
Az etanol folyamatos termelésének és magas szinten való tartásának fent ismertetett módszere, egyidejűleg a melléktermék acetát alacsony koncentrációban történő termelésével, stabil működési körülmények között, elősegíti az alkalmazott baktériumok ipari méretekben etanol termelésére való hasznosítását. A fent ismertetett módszer lépéseivel kiküszöböljük az alkalmazott baktériumok ipari méretekben történő hasznosításának korlátáit etanol CO, CO2 és H2 keverékéből való előállításában. A módszerben előnyösen folyamatos bioreaktort alkalmazunk, azonban szakaszos reaktort és szakaszos adagolással végzett fermentációs módszert is alkalmazhatunk, amelyek azonban nagy léptékű etanoltermelésre nem annyira gazdaságosak.
A találmány szerinti megoldást a következő példákkal szemléltetjük, a korlátozás szándéka nélkül. A példákban a gáz összetételének megadásánál alkalmazott „%” értékek térfogatszázalékot jelentenek; „rpm” jelentése fordulat/perc.
1. példa
Egy találmány szerinti megoldás
CO-ot és/vagy CO2/H2-t tartalmazó szintézisgázt vagy hulladék gázt vezetünk folyamatosan egy C. Ijungdahlii törzset tartalmazó, kevert bioreaktorba, vitaminokat, nyomelemeket és sókat tartalmazó szokásos folyékony tápközeggel együtt. Egy szokásos folyékony tápközeg összetételét az 1. táblázatban adjuk meg.
Az eljárás indításakor, 10% vagy ennél kevesebb inokulum alkalmazása mellett, a reaktort a folyadékfázis szakaszos adagolásával működtetjük. így a reaktorban a folyadékfázis egy adag olyan tápközeg, amely a korlátozó tápanyagokat - akár a kalcium-pantotenátot, akár a kobaltot - nominális koncentrációban tartalmazza. Eljárhatunk úgy is, hogy élesztőkivonatot, triptikázt vagy más komplex tápanyagokat tartalmazó, gazdag tápközeget alkalmazunk.
Ideális esetben induláskor a gázfázis CO2-tól mentes, és a H2-t fölöslegben tartalmazza. A gázadagolás és a keverés sebességét alacsonyan (500 rpm-nél alacsonyabb értéken, egy New Brunswick Scientific Bioflo® fermentációs bioreaktorban) tartjuk, hogy a CO és H2 enyhe fölöslegben legyen, de ugyanakkor megelőzzük a CO szubsztrátgátlást. Egy 1 literes New Bruns12
HU 226 975 Β1 wick Scientific Bioflo® fermentációs bioreaktorban például - amelyet 63% H2, 32% CO és 5% CH4 összetételű gázzal táplálunk - a kezdeti szakaszban a keverés sebessége 400 rpm, és a gázadagolás sebessége 20 ml/perc. Az indulási szakaszban az etanoltermelés a fölöslegben levő H2 hatására következik be, a tápanyag-korlátozás később történik. A kezdeti szakaszban tehát fölös mennyiségű folyékony tápközeg (pantotenát és kobalt) van jelen, hogy megelőzzük a tenyészet nem kívánt akklimatizálódását az alacsony tápanyag-koncentrációhoz.
Ahogyan a fermentáció folyik az inokulálás után néhány órán át, CO2 képződik a CO konverziójával, és a H2 a CO2-dal együtt fogy, ami azt jelzi, hogy a keverés sebességét nominálisan fokozni kell, hogy elkerüljük a korlátozott tömegátadást. A New Brunswick Scientific Bioflo® CSTR esetén a kilépő gáz összetétele: 25% CO, 67% H2, 2% CO2 és 6% CH4. Ha a keverés sebességét túlságosan fokozzuk, CO szubsztrátgátlás következik be, amit a metánkoncentráció csökkenése jelez a keverés sebességének fokozása után. A keverés sebességét tipikusan 24 óra alatt 200 rpm-mel fokozzuk. A CO2-termelés (vagy H2-konverzió) ellenőrzése - miközben a keverés sebességét nominálisan fokozzuk viszonylag gyors ütemben történik, míg a kívánt keverési sebességet el nem érjük. Egy New Brunswick Scientific Bioflo® fermentációs bioreaktorban a kívánt keverési sebesség tipikusan 900 rpm. A szakaszosan táplált folyékony tenyészet keverési sebességének emelése idején a sejtszaporítás a legfontosabb, a termékképződés helyett. így körülbelül 1,5 g/l sejtkoncentrációt érünk el, miközben a szakaszos tenyészetből a tipikus termékkoncentráció 10 g/l etanol és 2 g/l acetát.
Ha elértük a kívánt keverési sebességet, a rendszert hagyjuk növekedni a maximális H2-felvételig. Kívánatos, hogy a kilépő H2-koncentráció nagyon magas legyen (tipikusan >60%), hogy biztosítsuk az etanoltermelést, miközben korlátozzuk az ecetsavtermelést. A folyékony tápközeg adagolásával ezután (az olyan rendszerek esetén, ahol szakaszos inokulumadagolást alkalmazunk tenyészet-törzsszuszpenzióból) folyamatos módra térünk át, és a gázadagolás sebességét a kívánt átfolyási sebességre fokozzuk. Egy New Brunswick Scientific Bioflo® fermentációs bioreaktorban a folyadékadagolási sebesség tipikusan 0,5 ml/perc, miközben a gáz átfolyási sebességét 24 óránként 10—15%-kal emeljük, a kívánt 125 ml/perc értékig.
Fontos, hogy a H2 fölöslegben legyen a betáplált gázban, hogy elkerüljük a fölös ecetsavtermelést. Ahogyan a gáz átfolyási sebességét fokozzuk, a sejtszaporodás fokozódik, amíg a reaktorban a folyadékfázis tápanyagai (kalcium-pantotenát vagy kobalt) nem korlátozzák, amit a H2-konverzió kis csökkenése jelez a kívánt termelékenységnél. A New Brunswick Scientific Bioflo® CSTR-ben ez a H2-konverzió 10%-os csökkenéséből észlelhető, 20 g/l-nap kívánt termelékenység mellett.
Az eljárást és a reaktort ezután stacioner módon működtetjük, 15-35 g/l etanolt és 0-5 g/l acetátot termelünk, a korlátozó tápanyagok, folyadék- és gázadagolási sebesség esetenkénti kisebb utánállításával. Egy New Brunswick Scientific Bioflo® laboratóriumi fermentációs bioreaktor esetén - sejt-visszacirkuláltatás nélkül - a tipikus stacioner körülmények a következők: gáz retenciós idő (gázátáramlási sebesség/reaktor folyadéktérfogata) 20 perc, folyadék retenciós idő (folyadékátáramlási idő/reaktor folyadéktérfogata) 30 óra, keverési sebesség 900 rpm, így 92% CO-konverziót és 60% H2-konverziót érünk el, pantotenátlimitálással.
E módszer egy másik megvalósítási módja szerint, melyben sejt-visszacirkuláltatást is végzünk, ezt a gázadagolás sebességének (emelésével) és a tápanyagkoncentrációk (csökkentésével) egyidejű beállításával végezzük. A sejt-visszacirkuláltatással működtetett New Brunswick Scientific Bioflo® CSTR esetén a gáz retenciós ideje tipikusan 8 perc, a folyadék retenciós ideje 12 óra, a sejtek retenciós ideje 40 óra, és a keverési sebesség 900 rpm. így tipikusan 92% CO-konverziót és 50% H2-konverziót érünk el, pantotenátlimitálással.
2. példa
Gázkromatográfiás mintaelemzés
Ahhoz, hogy megfelelő termelékenységet és arányt érjük el és/vagy tartsunk fenn, a fermentációs bioreaktorból vett fermentléből időközönként mintát kell venni. A bioreaktorban levő tenyészetből 1,5 ml-nél nagyobb mintát veszünk. A mintát mikrocentrifugacsőbe helyezzük, és a csövet egy Fisher Scientific Micro 14 jelű centrifugába tesszük, a kiegyensúlyozáshoz szükséges ballaszttal. A mintát 1,5 percig 8000 rpm-mel centrifugáljuk. A felülúszó 0,500 ml mintáját egy 1,5 ml-es, gázkromatográfiás mintázáshoz tervezett fiolába visszük. Belső standardként 5 g/l n-propanol és 5 térfogat% 85%-os foszforsav ionmentesített vízzel készült 0,500 ml oldatát alkalmazzuk. A foszforsav biztosítja, hogy az összes acetát ecetsavvá alakuljon, és a gázkromatográfiával detektálásra kerüljön.
Az elkészített minta 1 μΙ-ét egy, 007 FFA Quadrex jelű, 25 mx0,53 mm méretű, alaktartó, szilícium-oxidkapillárissal felszerelt Hewlett-Packard 5890 Series II gázkromatográfba injektáljuk. Az elemzést hélium vivőgázzal, osztott gázáram módozatban, 66 ml/perc osztott gázárammal és 7,93 ml/perc injektoröblítéssel folytatjuk. Az oszlop fejnyomása 27,6 kPa, ez az oszlop vivőgázának 7 ml/perc sebességű áramlását eredményezi. A hőmérsékletprofil: 0,2 perc 75 °C, emelkedés 30 °C/perc sebességgel 190 °C-ra, és tartás 190 °C-on 5,17 percig. így a futtatási idő 8 perc. A berendezést etanolra (0-25 g/l), ecetsavra (0-25 g/l), n-butanolra (0-5 g/l) és vajsavra (0-5 g/l) kalibráljuk. A kalibráláshoz reagens tisztasági fokozatú anyagokból készített öt mintát alkalmazunk. Ha a minta kívül esik a kalibrációs koncentrációtartományon (például >25 g/l etanol), a fiolába 0,250 ml mintát és 0,250 ml ionmentesített vizet mérünk be, 0,500 ml belső standarddal, és a hígítási faktort figyelembe vesszük az elemzésnél.
HU 226 975 Β1
3. példa
Savtermelés laboratóriumi CSTR-ben sejtvisszacirkuláltatással
Egy New Brunswick Scientific Bioflo® fermentációs bioreaktort sejt-visszacirkuláltatással működtettünk, Clostridium ljungdahlii ERI2 (ATCC 55380) törzs alkalmazásával ecetsav előállítására CO, CO2 és H2 keverékéből. A betáplált gáz 40% H2-t, 50% CO-ot és 10% N2-t tartalmazott, a gáz retenciós ideje egy 1 literes reaktor esetén 7,7-8,6 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket tartalmazó folyékony tápközeget
2,6-2,9 óra retenciós idővel tápláltuk be. A pH-t 5,1-5,2 értékre állítottuk, a keverést 1000 rpm-mel végeztük, és a sejtek retenciós ideje körülbelül 40 óra volt. A tömegátadás (és nem a tápanyag) ilyen korlátozott körülményei között a CO-konverzió 94-98%, és a H2-konverzió 80-97% volt. A sejtkoncentráció 4-8 g/l, és az acetáttermelés 10-13 g/l volt. Etanol nem képződött. Bár a reaktort tömegátadás korlátozásával működtettük (a gáz tenyészethez való odajutásának korlátozásával), és így termékként csak ecetsavat kaptunk, az etanoltermeléshez szolgáló, pantotenátlimitálás, kobaltlimitálás vagy H2- vagy CO-fölösleg jelenlétének paramétereit nyomon követtük, hogy összehasonlító adatokat kapjunk arra az esetre, amikor az etanol a fő termék.
Amint a 2. táblázatban látható, az egységnyi termelt sejtre számított adagolt Ca-d-pantotenát mennyisége 1575-3150 pg/g termelt sejt volt. Hasonlóképpen az egységnyi termelt sejtre számított adagolt kobalt mennyisége 1734-3468 pg/g termelt sejt volt. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,35-0,61 mmol/g-sejt volt. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva kevesebb mint 0,46 mól volt. Vagyis a paraméterek egyike sem volt a kívánt működési tartományban, ahol a tenyészet etanolt termel.
Amint látható, pantotenátot és kobaltot nagy fölöslegben adagoltunk, amikor ecetsav volt a fő termék, tömegátadás korlátozása mellett. Ez azt jelenti, hogy a pantotenát- és/vagy kobaltszint jelentősen csökkenthető, és még mindig a pantotenát- vagy kobaltlimitálás szintje fölött leszünk. Ennek illusztrálására az 1 literes New Brunswick Scientific Bioflo® fermentációs bioreaktorba adagolt tápközeg összetételét módosítottuk, jelentősen csökkentve az adagolt kobalt mennyiségét, olyan szintre, amely éppen valamivel a kobaltlimitálás szintje fölött volt. A reaktor szintén C. ljungdahlii ERI2 törzset tartalmazott, ecetsav termeléséhez CO, CO2 és H2 keverékéből. A betáplált gáz 55% H2-t, 25% CO-ot, 15% CO2-ot és 5% CH4-t (referenciagáz) tartalmazott, a gáz retenciós ideje 7,5-8,0 perc volt. Vitaminokat, sókat és nyomelemeket tartalmazó folyékony tápközeget adagoltunk 3,0-3,5 óra retenciós idővel, és a sejtek retenciós ideje 40 óra volt. A pH 5,0-5,3 érték, a keverés sebessége 900-1000 rpm volt. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 95-99%, és a H2-konverzió 94-98% volt. A sejtkoncentráció 2,5-4,0 g/l volt, és az egyedüli termékként képződött acetát 10-14 g/l volt.
A sejtgrammonként adagolt Ca-d-pantotenát mennyisége 2250-3600 pg/g termelt sejt volt. Az egységnyi termelt sejtre számított adagolt kobalt mennyisége 62,0-99,2 pg/g termelt sejt volt. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,325-0,4 mmol/g-sejt volt. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 0,875 mól volt.
4. példa
Etanol termelése laboratóriumi CSTR-ben, pantotenátlimitálással
Egy New Brunswick Scientific Bioflo® II laboratóriumi fermentációs bioreaktort egyenáramban átfolyó CSTR-ként (sejt-visszacirkuláltatás nélkül) működtettünk, C. ljungdahlii C-01 (ATCC 55988) törzs használatával etanol termelésére CO, CO2 és H2 keverékéből, pantotenátlimitálással. A betáplált gáz 63,3% H2-t, 31,4% CO-ot és 5,3% C2H5-t (referenciagáz) tartalmazott, a gáz retenciós ideje 27 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket, valamint limitált mennyiségű pantotenátot tartalmazó folyékony tápközeget az 1,55 literes reaktorba 31,4 óra retenciós idővel tápláltuk be. A pH-t 4,6-4,7 értékre állítottuk, a keverést 650 rpm-mel végeztük. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 98%, a H2-konverzió 83% és a sejtkoncentráció 1,5-2,0 g/l volt. Az etanoltermelés 15-19 g/l, és az acetáttermelés 1,5 g/l volt. Etanolra nézve a termelékenység 11,5-14,5 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során a pantotenátlimitálást a termelt sejtekre számított 17,7-23,6 pg/g termelt sejt értéknél történő működtetés esetén figyeltük. Ezt az értéket a 3. példa szerinti savtermelés során alkalmazott 2250-3600 pg/g termelt sejt és 1575-3150 pg/g termelt sejt értékkel vetettük össze. A betáplált kobalt mennyisége 5000-600 pg/g termelt sejt volt, ami magasabb a 3. példában alkalmazott értéknél, és biztosítja, hogy ne legyen kobaltlimitálás. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,23-0,30 mmol/g-sejt volt. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 1,03 mól volt, és a H2 parciális nyomása a kilépő gázban 55,7-64,8 kPa volt. Az etanoltermelést akár a fölösleges H2, akár a pantotenát limitált jelenléte okozhatta.
Az etanol pantotenátlimitálással történő termelését egy másik New Brunswick Scientific Bioflo® II laboratóriumi fermentációs bioreaktorban is végeztük, amelyet C. ljungdahlii C-01 (ATCC 55988) törzs visszacirkuláltatásával működtettünk. A reaktorba 61,7% H2-t, 30,6% CO-ot és 5,2% C2H6-t (referenciagáz) tartalmazó keveréket tápláltunk, 12,3 perc retenciós idővel. A limitált mennyiségű pantotenátot, fölös mennyiségű sókat és nyomelemeket tartalmazó folyékony tápközeget a 2,4 literes reaktorba 24,8 óra retenciós idővel tápláltuk. A sejtek visszacirkuláltatásához egy 0,2 pm pórusméretű membránt alkalmaztunk, a sejtek retenciós ideje 69 óra volt. A pH 4,6 érték és a keverés sebessége 650 rpm volt. Ilyen körülmények között a CO-konverzió
HU 226 975 Β1
90%, a H2-konverzió 53% és a sejtkoncentráció 2,5 g/I volt. Az etanol koncentrációja 18 g/I, és az acetát koncentrációja 3 g/I volt. Etanolra nézve a termelékenység 17,4 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során (2. táblázat) az adagolt pantotenát mennyisége a termelt sejtekre számított 8,08 pg/g termelt sejt érték volt. A pantotenátlimitálással biztosítottuk, hogy az acetáttermeléshez szükséges értéknél lényegesen alacsonyabb értéknél dolgozzunk. A betáplált kobalt mennyisége 3960 pg/g termelt sejt volt. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,33 mmol/g-sejt volt. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 1,14 mól volt, és a H2 parciális nyomása a kilépő gázban 60,8-65,8 kPa volt. Az etanoltermelést a fölösleges H2 jelenléte okozhatta, azonban a kilépő gáz nagy CO2-tartalma (14,2 kPa) azt mutatja, hogy a sejtnövekedést a pantotenáttartalom korlátozta.
Egy másik kísérletben C. Ijungdahlii ERI2 törzset 1500-3600 pg/g termelt sejt mennyiségű pantotenáttal láttunk el az acetát CO, CO2 és H2 keverékéből történő előállítása során, amikor a reaktort nem korlátoztuk pantotenátra nézve (vagy más tényezőre nézve, kivéve a tenyészet gázzal való ellátását), így a termékben nem volt jelen etanol.
Az etanol CO, CO2 és H2 keverékéből C. Ijungdahlii C-01 törzs segítségével pantotenátlimitálás mellett történő előállítása során 8-24 pg/g termelt sejt mennyiségű pantotenátot adagoltunk, miközben minden más tápanyagot fölöslegben tartottunk. Ilyen körülmények között a C-01 törzs 15-19 g/I etanolt és 1,5-3,0 g/I acetátot termelt.
5. példa
Etanol termelése laboratóriumi CSTR-ben, kobaltkorlátozással
Egy New Brunswick Scientific Bioflo® II laboratóriumi fermentációs bioreaktort egyenáramban átfolyó CSTR-ként (sejt-visszacirkuláltatás nélkül) működtettünk, C. Ijungdahlii C-01 (ATCC 55988) törzs használatával etanol termelésére CO, CO2 és H2 keverékéből, kobaltlimitálással. A betáplált gáz 60% H2-t, 35% CO-ot és 5% CH4-t (referenciagáz) tartalmazott, a gáz retenciós ideje 14 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket (kivéve a kobaltot, amely a korlátozó tényező volt) fölöslegben tartalmazó folyékony tápközeget a 2,5 literes reaktorba 40 óra retenciós idővel tápláltuk be. A pH-t 4,9 értékre állítottuk, a keverést 650 rpm-mel végeztük. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 91% és a H2-konverzió 20 és 80% között változott, normális esetben azonban 55% volt. Az etanoltermelés 26 g/I és az acetáttermelés 4 g/I volt, és a sejtkoncentráció 2,5-2,0 g/I volt. Etanolra nézve a termelékenység 15,6 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során a pantotenátot a sejtszaporításnál 15,2 pg/g termelt sejt értékkel adagoltuk. Ez az érték olyan alacsony, hogy kobaltlimitálás nem biztosítható a pantotenátlimitálással szemben. A kobaltlimitálást 33,3 pg/g termelt sejt értéknél figyeltük meg, ez a szint 100-szor alacsonyabb, mint a kobaltlimitálás nélkül működtetett reaktorok esetén alkalmazott. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 0,94 mól volt. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,37 mmol/g-sejt volt.
Az etanol kobaltlimitálással történő termelését egy CSTR-ben, C. Ijungdahlii C-01 (ATCC 55988) törzs visszacirkuláltatásával is végeztük. Ezt a kísérletet az előző példa szerinti módszerrel ellentétben a kobaltlimitálás pantotenát fölöslege jelenlétében való alkalmazásának bemutatására végeztük. A 0,2 pm pórusméretű membrán sejt-visszacirkuláltatóval felszerelt New Brunswick Scientific Bioflo® 2000 laboratóriumi fermentációs bioreaktorba 60% H2-t, 35% CO-ot és 5% CH4-t (referenciagáz) tartalmazó keveréket tápláltunk, 5 perc retenciós idővel. A fölös mennyiségű sókat, vitaminokat és nyomelemeket (ismét kivéve kobaltot) tartalmazó folyékony tápközeget az 1,2 literes reaktorba 16 óra retenciós idővel tápláltuk. A pH 5,1 érték és a keverés sebessége 825 rpm volt. A sejtek retenciós ideje ebben a CSTR-ben 40 óra volt. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 83%, a H2-konverzió 50% és a sejtkoncentráció 4,2 g/I volt. Az etanol koncentrációja 18 g/I és az acetát koncentrációja 4 g/I volt. Etanolra nézve a termelékenység 27 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során (2. táblázat) az adagolt pantotenát mennyisége a termelt sejtekre számított 85,7 pg/g termelt sejt érték volt, ami 5,5-szer magasabb érték, mint amennyit az előző reaktorban alkalmaztunk. A kobaltlimitálást 47,6 pg/g termelt sejt értéknél vizsgáltuk. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 1,03 mól volt, és a H2 parciális nyomása a kilépő gázban 60,78 kPa volt. Az etanoltermelést a fölösleges H2 jelenléte okozhatta, azonban a kilépő gáz nagy CO2-tartalma (10,1-15,2 kPa) azt mutatja, hogy a sejtnövekedést a kobalttartalom korlátozta. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,50 mmol/g-sejt volt.
6. példa
Etanol termelése laboratóriumi CSTR-ben, CO fölöslegének jelenlétében
Egy nagynyomású AUTOKLÁV™ reaktort (Buchi) CSTR-ként működtettünk, sejt-visszacirkuláltatással, C. Ijungdahlii C-01 törzs használatával etanol termelésére CO, CO2 és H2 keverékéből, CO-fölösleg jelenlétében 50 óra hosszat. A reaktort 172,25 kPa-nál működtettük, a betáplált gáz 57% H2-t, 36% CO-ot és 6% C2H6-t tartalmazott. A gáz retenciós ideje változó, normálisan azonban 3,0 perc volt. A vitaminokat (beleértve a pantotenátot is), sókat és nyomelemeket fölöslegben tartalmazó folyékony tápközeget a 600 milliliteres reaktorba 8,2 óra retenciós idővel tápláltuk be. A sejtek retenciós ideje 18,5 óra volt, amelyet a reaktor effluensének kerámiaszűrőn történő átvezetésével kaptunk. A pH-t 4,5 értékre állítottuk, a keverést 450 rpm-mel végeztük, és a folyadék visszacirkuláltatásának aránya
HU 226 975 Β1
0,4-0,5 gpm volt. Ilyen körülmények között a gázkonverzió változó volt, a CO-konverzió normálisan 72% és a H2-konverzió 12% volt. A sejtkoncentráció 2,7 g/l volt. Az etanoltermelés 9,9 g/l és az acetáttermelés
2,6 g/l volt. Etanolra nézve a termelékenység 29,0 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során a pantotenátot a sejtszaporításnál 97 pg/g termelt sejt értékkel adagoltuk. Ez az érték elég magas ahhoz, hogy a pantotenáttartalom ne legyen korlátozó tényező. A betáplált kobalt mennyisége a sejtszaporításnál 836 pg/g termelt sejt volt, ami szintén elég magas ahhoz, hogy a kobalttartalom ne legyen korlátozó tényező. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 1,09 mól, a H2 parciális nyomása 162 kPa volt. A kilépő gáz nagy CO2-tartalma (50,65 kPa) azt mutatja, hogy a H2 fölöslege nem eredményezett etanoltermelést. A fajlagos CO-felvétel percenként 1,34 mmol/g-sejt volt, ez a szint CO-fölösleget jelent az etanoltermelés biztosítására.
Az etanol CO-fölösleg alkalmazásával történő termelését egy másik kísérletben is vizsgáltuk, C. Ijungdahlii C-01 törzs alkalmazásával, AUTOKLÁV™ reaktorban (Buchi), szintén sejt-visszacirkuláltatással, 24 óra hosszat. Ebben a kísérletben egy 600 ml-es reaktorba 15,8% H2-t, 36,5% CO-ot, 38,4% N2-t és 9,3% CO2-ot tartalmazó keveréket tápláltunk, 1,4 perc retenciós idővel. A reaktor nyomását 275,6 kPa értéken tartottuk. A fölös mennyiségű sókat, vitaminokat és nyomelemeket tartalmazó folyékony tápközeget 4,8 óra retenciós idővel tápláltuk be, a sejtek retenciós ideje 19,2 óra volt, amelyet az effluens kerámiaszűrőn való átvezetésével kaptunk. A pH 4,5 érték, a keverés sebessége 1000 rpm és a folyadék visszacirkuláltatási aránya 0,4-0,5 gpm volt. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 71,6% és a H2-konverzió 11,8% volt. A sejtkoncentráció 7,1 g/l volt, a termelt etanol koncentrációja 12,0 g/l és az acetát koncentrációja 2,7 g/l volt. Etanolra nézve a termelékenység 60 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során (2. táblázat) az adagolt pantotenát mennyisége a sejtszaporításnál 294 pg/g termelt sejt érték volt. Ez a szint messze meghaladja azt a minimális szintet, amely a pantotenátlimitálással történő etanoltermeléshez szükséges. A betáplált kobalt mennyisége 735 pg/g termelt sejt érték volt, amely szintén olyan mennyiség, ami a kobalt fölöslegben való jelenlétét biztosítja. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 0,3 mól volt. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,67 mmol/g-sejt volt, amely szintén olyan mennyiség, ami biztosítja, hogy a CO fölöslegben legyen az etanoltermelés elősegítésére.
7. példa
Etanol termelése H2 fölöslegének jelenlétében
Egy New Brunswick Scientific Bioflo laboratóriumi fermentációs bioreaktort egyenáramban átfolyó CSTRként (sejt-visszacirkuláltatás nélkül) működtettünk, C.
Ijungdahlii C-01 (ATCC 55988) törzs használatával etanol termelésére CO, CO2 és H2 keverékéből, H2-fölösleg jelenlétében. A betáplált gáz 77% H2-t, 19% CO-ot és 4% CH4-t (referenciagáz) tartalmazott, a gáz retenciós ideje 30 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket fölöslegben tartalmazó folyékony tápközeget a reaktorba 36 óra retenciós idővel tápláltuk be. A pH-t 5,0 értékre állítottuk, a keverést 1000 rpm-mel végeztük. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 97-99% és a H2-konverzió 60-80% volt. A sejtkoncentráció 0,8-1,0 g/l, az etanoltermelés 10 g/l és az acetáttermelés 3,3 g/l volt. Etanolra nézve a termelékenység
6,7 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során a pantotenátot a sejtszaporításnál 900-1125 pg/g termelt sejt értékkel adagoltuk, ezzel biztosítottuk, hogy fölös mennyiségű pantotenát legyen jelen. Hasonlóképpen, a betáplált kobalt mennyisége a sejtszaporításnál 991-1239 pg/g termelt sejt érték volt, ami szintén azt biztosította, hogy fölös mennyiségű kobalt legyen jelen. A fajlagos CO-felvétel percenként 0,28-0,35 mmol/g-sejt volt, ez olyan szint, ami nem jelent elég fölösleget ahhoz, hogy etanoltermelést okozzon. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére számítva 1,96 mól volt, azaz 1,0 fölötti arány, ahol fölösleges H2 van jelen, ami az etanoltermelést szabályozhatja. A H2 parciális nyomása a kilépő gázban 70,9-88,1 kPa, és a H2 és CO2 parciális nyomásának aránya a kilépő gázban 65 volt. így a reaktor a H2 fölöslegének jelenléte következtében etanolt termelt. Egy másik kísérletben egy nagynyomású AUTOKLÁV™ reaktort (Buchi) CSTR-ként működtettünk, sejt-visszacirkuláltatással, C. Ijungdahlii C-01 törzs alkalmazásával etanol termelésére CO, CO2 és H2 keverékéből, H2-fölösleg jelenlétében. A betáplált gáz 81% H2-t, 16% CO-ot és 3% CH4-t (referenciagáz) tartalmazott, a gáz retenciós ideje 2,21 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket fölöslegben tartalmazó folyékony tápközeget 8,91 óra retenciós idővel tápláltuk a reaktorba. A sejtek retenciós ideje 22,7 óra volt. A pH-t 4,5 értékre állítottuk, a keverést 800 rpm-mel végeztük. Ilyen körülmények között a CO-konverzió 91,5% és a H2-konverzió 43,4% volt. A sejtkoncentráció 5,5 g/l és az acetátkoncentráció 2,85 g/l volt. Etanolra nézve a termelékenység 215-240 g/l-nap volt.
Az etanoltermelés paramétereinek elemzése során a pantotenátot a sejtszaporításnál 46 pg/g termelt sejt értékkel adagoltuk, ami pantotenátlimitálást iniciálhat. A betáplált kobalt mennyisége a sejtszaporításnál 460 pg/g termelt sejt volt, ami elég magas ahhoz, hogy a kobalttartalom ne legyen korlátozó tényező. A fajlagos CO-felvétel percenként 1,68 mmol/g-sejt volt, ez a szint arra utalhat, hogy CO-fölösleg volt jelen, ha ezt nem támogatta a magas, percenként 4,14 mmol/g-sejt H2-felvétel, ami azt jelzi, hogy a H2-konverzióra nézve szubsztrátgátlás nem következett be. A betáplált H2 mennyisége a konvertált CO móljainak kétszerese és a konvertált CO2 móljainak háromszorosa összegére
HU 226 975 Β1 számítva 5,67 mól volt, ami lényegesen több annál, mint amennyi a H2-fölösleg jelenlétére utaló 1,0 arány. A kilépő gázban a H2 parciális nyomása 264,4 kPa, és a H2 és CO2 parciális nyomásának aránya 10,9 volt. A reaktor így, a H2-fölösleg jelenlétének eredményeképpen etanolt termelt.
A 3-7. példákban bemutatott módszerek paramétereinek és eredményeinek összehasonlítását a 2. táblázatban foglaltuk össze.
8. példa
A termék eltolódása C. Ijungdahlii ERI2, C-01 és
PETC törzsek alkalmazása esetén, a tápközeg változtatásával
A találmány szerinti módszert bármely C. Ijungdahlii törzsre alkalmazhatjuk. Az ERI2, C-01 és PETC törzsek alkalmazásával végzett tápközeg-manipulációs kísérletek eredményét a 3. táblázatban foglaltuk össze. E kísérletek célja annak bemutatása volt, hogy mindegyik törzs esetén eltolható az ecetsavtermelés az etanoltermelés irányába, csupán a tápközeg manipulálásával. A tenyészet számára tehát fölös mennyiségű tápközeget biztosítottunk (beleértve a pantotenátot és a kobaltot is), hogy fő termékként ecetsavat termeljen, majd a pantotenát vagy a kobalt mennyiségét korlátoztuk, hogy fő termékként etanol képződjön. Hangsúlyozzuk, hogy e kísérletek egyetlen célja annak bemutatása volt, hogy a tápközeg manipulálása minden törzs esetén a termék eltolódását eredményezheti. Magas termékkoncentrációk és magas termelékenységek elérése tehát nem volt célja a kísérleteknek.
A reaktort egyenáramban átfolyó CSTR-ként (sejtvisszacirkuláltatás nélkül) működtettük minden tenyésztési kísérletben. Normálesetben a gáz retenciós idejét 50 percre, a folyadék retenciós idejét 40 órára és a keverés sebességét 1000 rpm-re állítottuk be. Ezeket a körülményeket a törzsek összehasonlításához, és nem a nagy termelékenység eléréséhez választottuk meg.
Amint a 3. táblázatból látható, az ERI2 törzs esetén a tápközegen öt változtatást végeztünk, ami a fő termékként kapott etanol és ecetsav közötti ide-oda tolódást eredményezte. Mind a pantotenátlimitálás, mind a kobaltlimitálás etanoltermelést eredményezett ennél a törzsnél. A C-01 törzs esetén háromféle tápközeg-manipulációt végeztünk, itt szintén az etanoltermelés elősegítésére szolgáló mechanizmusnak bizonyult mind a pantotenátlimitálás, mind a kobaltlimitálás. A PETC törzs esetén csak egyféle manipulációt hajtottunk végre, az etanoltermelést kobaltlimitálással segítettük elő. Mindegyik törzs magas H2-konverziót mutatott, amikor inkább ecetsavat, mint etanolt termelt fő termékként. Ez azért lehetséges, mert az ecetsavtermelés tömegátadás-korlátozás közben megy végbe (korlátozott mennyiségű gáz jut a tenyészethez), míg etanol akkor képződik, amikor a tápanyagokat korlátozzuk, és így fölös mennyiségű gáz van jelen, ami negatív módon befolyásolhatja a gázkonverziót. Kis mennyiségű acetát mindig jelen van a termékáramban, ha a fő termék etanol. Ha azonban az ecetsav a fő termék, etanol rendszerint nincs jelen mérhető koncentrációban. Amikor a fő terméket a tápközeg manipulálásával etanol felől ecetsav irányába toltuk el, úgy találtuk, hogy nagyon nehéz az etanolnyomokat teljesen eltávolítani. Az etanol teljes eltávolítása csak akkor következett be, amikor néhány héten át dolgoztunk ecetsavtermelést elősegítő tápközegen.
9. példa
Stacioner működtetés sejt-visszacirkuláltatással és anélkül
Az etanol CO, CO2 és H2 keverékéből történő előállításának végső kereskedelmi célja az, hogy állandó magas etanolkoncentrációt érjünk el, magas etanol/acetát aránnyal és magas termelékenységgel. A 4. táblázatban összefoglaltuk a stacioner állapot adatait az etanol CO-ban gazdag gázból történő előállításához, amelynek során 20% H2-t, 65% CO-ot, 10% CO2-ot és 5% CH4-t tartalmazó gázt és C. Ijungdahlii C-01 törzset alkalmaztunk egyenáramban átfolyó CSTR-ben (sejt-visszacirkuláltatás nélkül). A táblázatban „GRT” jelentése gáz retenciós idő (a folyadék térfogatának és a bevezetett gáz áramlási sebességének az aránya), „LRT” jelentése folyadék retenciós idő (a folyadék térfogatának és a folyadék átfolyási sebességének az aránya) és „XRT” jelentése sejt retenciós idő (a sejtek átlagos tartózkodási ideje a reaktorban). Amint a 4. táblázatból látható, 17,5-33 g/l etanolkoncentrációt és 14,4-21,1 g/l-nap etanoltermelékenységet kaptunk.
Hasonló eredményeket kaptunk etanol előállítása esetén olyan gázból, amely CO-ban gazdag. A C. Ijungdahlii C-01 törzs alkalmazásával sejt-visszacirkuláltatás nélkül végzett kísérletben - amelynek eredményeit az 5. táblázatban foglaltuk össze - alkalmazott gáz összetétele: 16% H2, 27% CO, 6% CO2 és 51% N2. A kapott etanolkoncentráció 11-26 g/l volt, 2,0-5,0 g/l acetát melléktermékkel. Az etanoltermelékenység 11,1-20,1 g/l-nap volt. A táblázatban jelentése: sejtkoncentráció a száraz sejttömeg alapján.
Végül a 6. táblázatban összefoglaltuk egy stacioner művelet adatait olyan gáz alkalmazásával, amelynek összetétele: 50% H2, 45% CO és 5% CH4, CSTR-ben C. Ijungdahlii 0-52 (ATCC 55989) törzs alkalmazásával sejt-visszacirkuláltatás nélkül. A kapott etanolkoncentráció 18-23,5 g/l, acetátkoncentráció 3,0-5,7 g/l, az etanoltermelékenység 21,1-39,0 g/l-nap.
10. példa
Magas etanoltermelékenység, CSTR-ben sejtvisszacirkuláltatással, nyomás alatt
Egy nagynyomású AUTOKLÁV™ reaktort (Buchi)
CSTR-ként működtettünk, sejt-visszacirkuláltatással, C. Ijungdahlii C-01 törzs használatával etanol termelésére CO, CO2 és H2 keverékéből. A reaktort
206,7 kPa-nál működtettük, a betáplált gáz 62% H2-t, 31% CO-ot és 5% C2H6-t tartalmazott. A gáz retenciós ideje (atmoszferikus alapon) 1,14 perc, ténylegesen
3,5 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket fölöslegben tartalmazó folyékony tápközeget a 600 millili17
HU 226 975 Β1 teres reaktorba 3,6 óra retenciós idővel tápláltuk be. A pH-t 4,5 értékre állítottuk, a keverést 825 rpm-mel végeztük. Ilyen körülmények között a sejtkoncentráció 8 g/l, a CO-konverzió 90% és a H2-konverzió 40% volt. A termékáram 20 g/l etanolt és 2,75 g/l acetátot tartalmazott. Etanolra nézve a termelékenység 150 g/l-nap volt.
Egy másik nagynyomású AUTOKLÁV™ reaktort (Buchi) CSTR-ként működtettünk, sejt-visszacirkuláltatással, C. Ijungdahlii C-01 törzs használatával, 600 kPa-nál, a betáplált gáz 55% H2-t, 30% CO-ot, 5% CH4-t és 10% CO2-ot tartalmazott. A gáz retenciós ideje (atmoszferikus alapon) 1 perc, ténylegesen 6,0 perc volt. A vitaminokat, sókat és nyomelemeket fölöslegben tartalmazó folyékony tápközeget 1,62 óra retenciós idővel tápláltuk a reaktorba. A sejtek retenciós ideje 24 óra volt, a pH-t 4,5 értékre állítottuk, a keverést 800 rpm-mel végeztük. Ilyen körülmények között a sejtkoncentráció 2,0 g/l, a CO-konverzió 95% és a H2-konverzió 60% volt. A termékáram 25 g/l etanolt és 3 g/l acetátot tartalmazott. Etanolra nézve a termelékenység 369 g/l-nap volt.
11. példa
Kiindulás tenyészet-törzsszuszpenzióból, H2fölösleg jelenlétében
A szakaszosan alkalmazott, tenyészet-törzsszuszpenzióból származó inokulummal való indulás biztosítja az egészséges, szennyezéstől mentes inokulumot, azonban beoltási módszerként nem mindig sikeres a meglehetősen alacsony alkalmazott sejtsűrűség miatt, különösen ha a működési paramétereket, például a gázadagolást és a keverés sebességét túl gyorsan emeljük hamarosan az inokulálás után.
Ebben a példában bemutatjuk a szakaszosan alkalmazott, tenyészet-törzsszuszpenzióból származó inokulummal való indulást. A reaktor inokulálásához alkalmazandó tenyészet-törzsszuszpenzió előállításához C. Ijungdahlii C-01 (ATCC55988) törzset 150 ml-es szérumpalackokban, CO, CO2 és H2 keverékében, 1 g/l élesztökivonatot és 1 g/l triptikázt, valamint sókat és vitaminokat tartalmazó tápközegen növesztettünk. A 0,4 ml/l mennyiségben alkalmazott vitaminkoncentrátum összetétele: 50,5 mg/l kalcium-pantotenát, 20,6 mg/l d-biotin és 50,6 mg/l tiamin-HCI vizes oldatban. A palackokat 37 °C-on, rázatóinkubátorban inkubáltuk. A tenyészeteket exponenciális növekedési fázisig növesztettük, vizuális megfigyelés alapján. Az egyes inokulálások alkalmával mintegy 90 ml tenyészet-törzsszuszpenziót vittünk át a szérumpalackokból 1 liter tápközegbe, ami 9 térfogat%-os inokulálást képvisel. Egy sikeres inokulálást az alábbiakban ismertetünk. A vázolt módszer néhányszor ismételhető, a sikeres inokulálás biztosítása érdekében.
Sikeres inokuláláshoz 90 ml/l inokulumot adtunk 1 liter alaptápközeghez (1. táblázat), amely 0,4 ml/l vitaminokat és sókat tartalmazott (t=0). A keverési sebesség 240 rpm, pH=5,3, hőmérséklet 38,5 °C, és a gáz retenciós ideje (folyamatos gázáramlás) 110 perc volt. A betáplált gáz 62% H2-t, 31% CO-ot és 7%
C2H6-t tartalmazott. 13 óra múlva (t=13 óra) némi CO-konverzió volt megfigyelhető, és a t=23 óra időpontban a keverési sebességet 240 rpm-ről 300 rpm-re emeltük. A gáz retenciós idejét a t=27 óra időpontban 100 percre, míg a t=46 óra időpontban tovább csökkentettük. A keverési sebességet szintén emeltük 100 rpm-es fokozatokban a t=28 óra, 59 óra, 72 óra és 85 óra időpontokban.
A t=110 óra időpontban a rendszer 80 perc gáz retenciós idővel és 600 rpm keverési sebességgel működött. A sejtkoncentráció 0,5 g/l és a CO-konverzió 35% volt. H2-konverzió még nem volt, azonban kis mennyiségű etanol és acetát (-1 g/l mindegyikből) felszaporodott a szakaszos tenyészlében. Az eddig tett erőfeszítések a reaktorban a sejtszaporodást szolgálták.
A tápközeg adagolását a t=120 óra időpontban kezdtük meg, 0,4 ml/perc sebességgel, az alaptápközegnek megfelelő koncentrációval. Ezután megkezdtük a gázadagolás sebessége, keverés sebessége és tápközeg-adagolás sebessége emelésének programját, miközben gondosan ügyeltünk, hogy a rendszerben H2-fölösleget tartsunk fenn. A t=210 óra időpontra az etanol koncentrációja 17 g/l, az acetátkoncentráció 1 g/l, a sejtkoncentráció 1,6 g/l, a CO-konverzió közel 100% és a H2-konverzió 90% volt. A termelékenység etanolra nézve elérte a 11,4 g/l-nap értéket.
Ismét elkezdtük a gázadagolás sebességének fokozatos emelését. Ezzel párhuzamosan a vitaminkoncentrációt is emeltük (lásd az 1. táblázatot) 0,7 ml/l tápközeg értékre. A t=610 óra időpontban a reaktor 20 g/l etanolt és körülbelül 2 g/l acetátot termelt. A CO-konverzió közel 100% és a H2-konverzió 85% volt. A termelékenység etanolra nézve 14 g/l-nap volt.
12. példa
Indulás meglevő CSTR-ből származó inokulummal
Egy CSTR folyamatos, egy másik működő CSTRből származó inokulummal történő indítása sokkal gyorsabb és megbízhatóbb módszer, mint a tenyészettörzsszuszpenziókból szakaszosan történő indítás. Egy C. Ijungdahlii C-01 (ATCC 55988) törzset tartalmazó CSTR-t, amelyben már majdnem megszűnt az etanoltermelés, és amely folyékony termékként 2-3 g/l etanolt, 7-8 g/l acetátot és körülbelül 0,3 g/l butanolt termelt, újraindítottunk egy másik CSTR-ből származó folyamatos inokulummal.
A másik CSTR, amelyből az inokulum származott, körülbelül 17 g/l etanolt és 1-2 g/l acetátot termelt, és 25 perc gáz retenciós idővel, 32 óra folyadék retenciós idővel, 650 rpm keverési sebességgel működött,
38,5 °C-on, pH=4,66 értéknél. A sejtkoncentráció
1,7 g/l, a CO-konverzió lényegében véve 100% és a H2-konverzió 85% volt.
A folyamatos inokulumadagolást indítottuk (t=0), és ekkor a keverési sebességet 500 rpm-re csökkentettük, míg a gáz retenciós idejét 38 percre állítottuk. A termelő reaktorból származó effluens (0,5 ml/perc) szolgált inokulumként az inokulálandó CSTR-hez, néhány órán át tartó folyamatos inokuláláshoz. A t=5 óra időpontra (5 órával a folyamatos inokulálás megkezdé18
HU 226 975 Β1 se után) ellenőriztük a gázkonverziót, és a keverési sebességet 700 rpm-re emeltük. A folyamatos inokulálást a t=28 óra időpontban kikapcsoltuk. A gázkonverzió folyamatosan javult, ami lehetővé tette a gázadagolás sebességének fokozását (a gáz retenciós idő csökkentését) és a keverési sebesség 750 rpm-re való növelését. A t=30 óra időpontban a CO-konverzió 95% és a H2-konverzió 80% volt. Az etanolkoncentráció 13 g/l, az acetátkoncentráció 1,5 g/l volt, és jó 100 órán át 1,4 g/l értéken állandósult. Ezen idő alatt a termelékenység etanolra nézve 10-15 g/l-nap volt.
13. példa
A módszer súlyos működési zavarának rendbehozatala
C. Ijungdahlii C-01 törzset tartalmazó, folyamatos gáz- és tápközeg-betáplálással és sejt-visszacirkuláltatással működtetett, stacioner módon 15-35 g/l etanolt és 0-5 g/l acetátot termelő (például az 1. példa szerinti) CSTR működésében az eljárási körülményekben - például a reaktor mechanikai problémái miatt - bekövetkezett, előre nem várt változások miatt zavar állhat be. A reaktorrendszer zavara lehet kisebb mértékű, például a gázadagolás sebességének rövid ideig történő emelkedése, ami rövid ideig tartó szubsztrátgátlást okoz, vagy pedig nagyobb mérvű, például a gázadagolás sebességének hosszabb ideig tartó növekedése, ami esetleg több ecetsav termeléséhez vagy molekuláris ecetsav hatására fellépő súlyosabb termékgátláshoz vezet.
Rövid ideig tartó zavarok könnyen korrigálhatók oly módon, hogy a paramétereket csupán újraállítjuk (például a gázadagolás sebességét visszaállítjuk az eredeti szintre), és megfigyeljük a reaktorban bekövetkező változásokat, annak biztosítására, hogy a zavar ne okozzon hosszabb ideig fennálló problémákat.
Az ecetsav hatására fellépő termékgátlás azonban súlyosabb probléma. Ha a tenyészet fölösleges mennyiségű ecetsavat termel a hosszú ideig fennálló szubsztrátgátlás, a fölös tápközeg-adagolás, CO2 felszaporodása vagy különféle mechanikai problémák következtében, először a fölös ecetsav következtében fellépő problémát kell korrigálni. A fölös mennyiségű ecetsavat, amely gyorsan termékgátláshoz vezet, kiiktatjuk a rendszerből, oly módon, hogy fokozzuk a folyadékadagolást az ecetsavnak a rendszerből történő kimosása céljából (ami sajnos egyúttal etanol eltávolításával is jár). Ha az acetátkoncentráció már 3-5 g/l alatt van, a folyadékadagolás sebességét visszaállítjuk, és a reaktort újra H2-fölösleg, vagy pedig vitamin- vagy kobaltlimitálás alá helyezzük (sejt-visszacirkuláltatással vagy anélkül). A reaktor visszaállítása magában foglalja a gázadagolás sebességének a csökkentését is, hogy megelőzzük a szubsztrátgátlást és/vagy a keverés sebességének a csökkentését, mielőtt a sejtek kimosódása és lízise bekövetkezne. A keverés és a gázadagolás sebességét az 1. példában megadott mértékre állítjuk.
Egy konkrét esetben egy C. Ijungdahlii C-01 törzset tartalmazó, sejt-visszacirkuláltatással működtetett, CO,
CO2 és H2 keverékéből etanolt termelő CSTR mechanikai problémák következtében elkezdett ecetsavat termelni. A 2100 ml-es reaktorba 62% H2-t, 31% CO-otés 7% C2H6-t tartalmazó gázt adagoltunk 15 perc retenciós idővel, és 600 rpm keverési sebességgel 4,86 pH-nál működtettük. A folyadék retenciós ideje 23 óra, és a sejtek retenciós ideje 68 óra volt. A folyékony tápközegben, amely sókat és vitaminokat tartalmazott, literenként 0,4 ml B-vitamin-oldat (50,5 mg/l kalcium-pantotenátot, 20,6 mg/l d-biotint és 50,6 mg/l tiamin-HCI-ot tartalmazó vizes oldat) volt jelen (lásd a
2. táblázatot). Az etanolkoncentráció 7 g/l-re esett, miközben az acetátkoncentráció 7 g/l-re emelkedett, ami olyan állapot, amely se nem stabil a reaktor működése szempontjából, se nem gazdaságos az etanol termeléséhez. A sejtkoncentráció 2,4 g/l volt, a CO-konverzió 85%-os és a H2-konverzió 25%-os volt.
A reaktor működésének rendbehozatalához alkalmazott stratégia abban állt, hogy először igen jelentősen csökkentettük a gázadagolás sebességét, majd fokozatosan korrigáltuk a működést fölös H2 jelenlétében. A folyadékadagolást nem csökkentettük a termékgátlás megszüntetésére, mert az acetátkoncentráció nem volt túlságosan magas. Ehelyett a gázadagolás csökkentésével és azután fölös H2 jelenlétében való működtetéssel hagytuk, hogy az acetátkoncentráció fokozatosan csökkenjen a nem gátló szintre. A reaktor rendbehozatalához alkalmazott konkrét módszert az alábbiakban ismertetjük.
A sejt-visszacirkuláltatást kikapcsoltuk, és a gázadagolást 70%-kal csökkentettük 62 perc gáz retenciós idő eléréséig, miközben a folyadék retenciós idejét enyhén emeltük 23 óráról 30 óra retenciós időre (t=0). A tápközeg vitaminkoncentrációját nem változtattuk. A gázadagolás ilyen változtatásával a CO-konverzió 98%-ra és a H2-konverzió 80%-ra emelkedett. Még fontosabb, hogy a rendszerben H2-fölösleg volt, amint a kilépő gázban a CO2 19%-ról 5%-ra történt csökkenése mutatta. A H2 fölöslegének megjelenésével az acetátkoncentráció csökkent, és az etanolkoncentráció emelkedett. A t=66 óra időpontban (66 órával a sejtvisszacirkuláltatás kikapcsolása után) például az acetátkoncentráció 4 g/l-re esett, és az etanolkoncentráció enyhén, 7,5 g/l-re emelkedett.
A H2-fölösleg jelenléte (és a csökkent acetátkoncentráció) azután lehetővé tette a gázadagolás sebességének emelését, először lassan, majd gyorsabban. A t=215 óra időpontban a gáz retenciós ideje 29 perc, az etanolkoncentráció 12 g/l és az acetátkoncentráció 3 g/l volt. A termelékenység etanolra nézve 8 g/l-nap volt. A kilépő gázban 6% CO2 volt jelen, a CO-konverzió 98% és a H2-konverzió 80% volt. A t=315 óra időpontban az etanolkoncentráció 16 g/l és az acetátkoncentráció 4 g/l volt, szintén jó konverziófokkal és 20 perc gáz retenciós idővel. A termelékenység etanolra nézve 11 g/l-nap volt. A t=465 óra időpontban az etanolkoncentráció 20 g/l értéket ért el, és az acetátkoncentráció 3,5-4 g/l volt. A termelékenység etanolra nézve 16 g/l-nap volt. A gáz retenciós ideje 16 percre esett, a CO- és H2-konverzió 95%, illetve 73% volt. Ezt
HU 226 975 Β1 az állapotot közel 200 óra hosszat sikerült tartani, folyamatos működtetés mellett, ami azt mutatta, hogy a reaktorrendszer működési zavarát sikerült kiiktatni, és az etanoltermelő képesség rendbe jött, és a rendszer lényegében véve visszatért az előző működési feltételekhez.
14. példa
Etanol termelése CO-túladagolással
Egyszerű kísérletet folytattunk egy nagynyomású, kevert, folyamatos, sejt-visszacirkuláltatással működtetett tankreaktorban annak bemutatására, hogy az ecetsavtermelés nagy CO-koncentrációval az etanoltermelés irányába eltolható. A kísérlet előtt a C. Ijungdahlii C-01 törzset tartalmazó reaktort 137,8-172,25 kPa nyomáson, 57% H2-t, 36% CO-ot és 7% C2H6-t tartalmazó gáz betáplálással működtettük. A gáz retenciós ideje 2 percnél kisebb, a folyadék retenciós ideje 28 óra, a keverés sebessége 600 rpm és a hőmérséklet 38 °C volt. Ilyen körülmények között a CO-konverzió változó, átlagosan 85%, és a H2-konverzió változó, átlagosan 2% volt. A sejtkoncentráció körülbelül 2,5 g/l volt, és a termékáram 9 g/l etanolt és 3 g/l acetátot tartalmazott.
Első lépésben próbaképpen a gáz retenciós idejét növeltük, hogy CO-fölösleg ne legyen jelen. A nyomást 158,5-165,4 kPa értéken tartottuk. A pH-t elég hosszú ideig figyeltük ahhoz, hogy stabilan a normál működési tartományban, 4,5-4,6 értéken legyen. Ezután tiszta CO-ot kevertünk a szokásosan betáplált gázhoz, így 47% H2-t, 47% CO-ot és 6% C2H6-t tartalmazó keveréket adagoltunk, 2,3 perc retenciós idővel. Ezután az idő függvényében figyeltük a reaktorban a pH-t, valamint a kilépő gáz és a termékáram összetételét.
A 7. táblázatban látható a pH-változás és a termék összetétele az idő függvényében, a hozzáadott CO rendszerbe történő adagolásától kezdődően. A CO adagolásától számított 30 perc múlva a pH 5,25 értékre emelkedett, és a termék 1,54 g/l (0,0257 mol/l) acetátot és 1,12 g/l (0,0243 mol/l) etanolt tartalmazott. A pH-változás a szabad ecetsav etanollá történő változásának a következménye. E változást a CO-konverzió 91%-ról 71%-ra való csökkenése kísérte. A tenyészet visszacirkuláltatásának 0,4 gpm-ről 0,15 gpm-re való csökkentésével a pH értéke csökkent, de az etanol- és az acetátkoncentráció megmaradt.
A CO adagolása után ötven perccel az etanolkoncentráció 11,29 g/l és az acetátkoncentráció 1,75 g/l volt. Ekkor a fölös CO adagolását kikapcsoltuk, ezért az etanolkoncentráció és a pH elkezdett esni, míg az acetátkoncentráció emelkedni. A pH csökkenése az etanol molekuláris ecetsavvá történő alakulásának volt a következménye. A CO túladagolásának hatására bekövetkező etanol/ecetsav eltolódás tehát reverzibilis.
15. példa
A víz cirkuláltatása az acetáttermelés minimalizálására
A víz visszacirkuláltatása a fermentáló bioreaktorba az etanol kinyerésére végzett desztilláció után azért fontos, hogy minimalizáljuk az effluenstermelést, és maximalizáljuk az etanolkihozatalt, ugyanakkor korlátozzuk az ecetsavtermelést. Úgy találtuk, hogy a desztillálás a leggazdaságosabb módszer arra, hogy a reaktorban kapott 15-35 g/l-es etanolt 95%-os etanollá koncentráljuk. Utána még molekulaszűrővel történő adszorpciót végzünk az etanol további, kívánt koncentrációra való töményítésére. A desztillálás során tejtermékként 95%-os vizes etanolt kapunk. A vizet maradékként kapjuk a desztillálás során. A maradék tartalmazza a fermentáció során a reaktorban képződött (3-5 g/l acetát) ecetsavat és a fermentáció során el nem használt, illetve a desztillációban hőhatásra elbomlott tápanyagokat, így a nyomelemeket és más anyagokat. A tápanyagok visszatáplálása csökkenti a kezelendő effluens és később a fermentációs bioreaktorba adagolandó tápanyagok mennyiségét. Az acetát visszacirkuláltatása megakadályozza további ecetsav képződését azzal, hogy egyensúlyt alakít ki az etanol és az ecetsav között. így a víz visszacirkuláltatásával nettó ecetsav nem képződik. 3-5 g/l-nél több acetát visszacirkuláltatása ecetsavgátlást okozhat a reaktorban. így a visszacirkuláltatott acetátot tartalmazó víz hatására a CO, CO2 és H2 szubsztrát egyetlen termékként etanollá konvertálható.
A 8. táblázat egy olyan gáz fermentálásának eredményét mutatja, amely 50% CO-ot, 45% H2-t és 5% CH4-t tartalmazott, C. Ijungdahlii 0-52 törzs felhasználásával és víz visszacirkuláltatásával. E kísérletekben a sejt-visszacirkuláltatásra alkalmazott szűrőn végzett szűréssel kapott permeátumot vittük desztillációra. Az etanol eltávolítása után a vizet 0,2 pm-es szűrőn átszűrtük, hogy a kicsapódott melléktermékeket kiszűrjük. A visszacirkuláltatott víz és a reaktorba betáplált összes víz (tápközeg) aránya ezekben a kísérletekben 25-100% volt. A 100% visszacirkuláltatott vízzel végzett kísérlet közel 500 óra hosszat vagy körülbelül 20 folyadék retenciós időn át tartott. A 100% vízvisszacirkuláltatással nettó ecetsav nem termelődött. Valójában kevés ecetsav végül is elfogyott. A termelékenység etanolra nézve 12-27 g/l-nap volt.
16. példa
Kétfokozatú CSTR rendszer pantotenátadagolással a növesztési fokozatban A növesztési fokozatban a megfelelő pantotenátbetáplálás változó, amelyet optimalizálni kell. Egy tipikus, C. Ijungdahlii C-01 törzset tartalmazó növesztési fokozatú reaktorral kapott eredményeket ismertettünk a 11. és 12. példában, azzal az eltéréssel, hogy egy kicsivel több ecetsav termelődne a reaktorban, mivel további pantotenátot vagy kobaltot adagolunk a növesztési fokozatban, hogy egészséges és stabil tenyészetet biztosítsunk. Az alkalmazott vitaminkoncentráció 0,7-0,8 ml/l tápközeg, 50,5 mg/l kalcium-pantotenátot, 20,6 mg/l d-biotint és 50,6 mg/l tiamin-HCI-ot tartalmazó vizes oldatból. A sejt-visszacirkuláltatással működtetett, termelési fokozatú CSTR-t a növesztési fokozatú reaktorból származó effluenssel tápláljuk, és így fő termékként etanolt kapunk. A reaktorba adagolt pantotenát kon20
HU 226 975 Β1 centrációja sokkal alacsonyabb, mint a növesztési fokozat esetén, csupán 0,1-0,2 ml összes vitamin a tápközeg literjeire számítva, 50,5 mg/l kalcium-pantotenátot,
20,6 mg/l d-biotint és 50,6 mg/l tiamin-HCI-ot tartalmazó oldatból. A gáz retenciós ideje a termelési fokozatban 11-30 perc, a folyadék retenciós ideje körülbelül 20 óra, a sejtek retenciós ideje 30-50 óra, a keverés sebessége 800-900 rpm. A pH értéke 5,0, és a hőmérséklet 38 °C. Ha a reaktor elérte a stacioner állapotot, a gáz retenciós idejét állandó 11 perc értéken tartjuk, a folyadék retenciós idejét 19 óra értékre állítjuk, a sejtek retenciós idejét állandó 37 óra és a keverés sebességét 900 rpm értéken tartjuk. A CO-konverzió átlagosan 96% és a H2-konverzió átlagosan 60%. Az etanolkoncentráció 25-30 g/l, körülbelül 3 g/l ecetsavtartalommal. A termelékenység etanolra nézve 31,6-37,9 g/l-nap.
17. példa
A fermentációs paraméterek szabályozása a limitáló, alacsony kalcium-pantotenátkoncentrációhoz való akklimatizálódás elkerülésére A tenyészetnek a limitáló, alacsony kalcium-pantotenát-koncentrációhoz való akklimatizálódását a bioreaktorban úgy kerüljük el, hogy a fermentációs paramétereket (gázadagolás, folyadékadagolás és keverés sebessége, H2 parciális nyomása) szabályozzuk, miközben elkerüljük a nagyobb változásokat a tápközegben, ehelyett viszonylag állandó tápközeg-koncentráció adagolását tartjuk fenn, a következőképpen.
Egy, C. ljungdahlii C-01 törzset tartalmazó, laboratóriumi New Brunswick Scientific Bioflo® CSTR-be kezdéskor a tenyészet táplálásához szükséges, vitaminokat, nyomelemeket és sókat tartalmazó folyékony tápközeget adagoltunk. A tápközegben a pantotenátkoncentráció 20 pg/l volt. Ez a koncentráció - a tápközeg lassú adagolásával - biztosítja a termelt sejtek grammjaira számítva több mint 100 pg kalcium-pantotenát (fölös pantotenát) adagolását a bioreaktorban a sejtek lassú termelődése következtében. Hasonlóképpen a kobalt koncentrációja a tápközegben 1 ppm volt, ami biztosítja, hogy szintén fölös kobalt legyen jelen. A H2 parciális nyomását a kilépő gázban 55,7 kPa fölöslegben tartottuk, oly módon, hogy CO2-ot nem, 63,3% H2-t, 31,4% CO-ot és 5,3% C2H6-t tartalmazó gázt adagoltunk, így a betáplált H2 és a konvertált CO kétszerese plusz a konvertált CO2 háromszorosa összegének arányában 1-nél nagyobb értéket értünk el, és a gázadagolás és a keverés sebességének óvatos szabályozásával 95%-nál nagyobb CO-konverziót és 80%-nál nagyobb H2-konverziót értünk el. Ahogyan ezt a magas konverziófokot elértük, a sejtkoncentráció a kezdeti 0 g/l értékről körülbelül 1,5 g/l értékre emelkedett.
Mivel a pantotenátkoncentrációt konstans értéken tartottuk a kezdésnél, a termelt sejtek grammjaira számított pantotenát mennyisége fokozatosan csökkent, míg a 15 pg/g-sejt értéket el nem érte, azaz olyan értéket, amely limitáló. Tehát a rendszer pantotenátlimitálttá alakul. A kezdésnél a fölös H2 hatására magas etanol/acetát termelési arányokat értünk el. Eljárhatunk úgy is, hogy a kezdés korai szakaszában hagyjuk, hogy a reaktor ecetsavat termeljen, és a termelési arányt később vonjuk szabályozás alá pantotenátlimitálással.
18. példa
Kobalt limitálása a reaktorban
C. ljungdahlii ERI2 törzset 62-3500 pg/g-sejt kobalttal tápláltunk ecetsav CO, CO2 és H2 keverékéből történő előállítása során, olyan körülmények között, amelyek a reaktorra nézve nem kobaltlimitáltak (vagy bármilyen más limitáló tényező nem áll fenn, kivéve a gáz tenyészethez való szállítódásának képességét), és a termékáramban nem volt jelen etanol. Az etanol CO, CO2 és H2 keverékéből való előállítása érdekében történt kobaltlimitálás során C. ljungdahlii C-01 törzset 33-48 pg/g-sejt kobalttal tápláltunk, miközben az összes többi tápanyagot fölöslegben tartottuk. Ilyen körülmények között a C-01 törzs 18-26 g/l etanolt és körülbelül 4 g/l acetátot termelt.
19. példa
Az alacsony, limitáló kobaltkoncentrációhoz való akklimatizálódás elkerülése A tenyészetnek a limitáló alacsony kobaltkoncentrációhoz való akklimatizálódását a bioreaktorban úgy kerüljük el, hogy a fermentációs paramétereket (gázadagolás, folyadékadagolás és keverés sebessége, H2 parciális nyomása) szabályozzuk, miközben elkerüljük a nagyobb változásokat a tápközegben, ehelyett viszonylag állandó tápközeg-koncentráció adagolását tartjuk fenn, a következőképpen.
Egy, C. ljungdahlii C-01 törzset tartalmazó, laboratóriumi New Brunswick Scientific Bioflo® CSTR-be kezdéskor a tenyészet táplálásához szükséges, vitaminokat, nyomelemeket és sókat tartalmazó folyékony tápközeget adagoltunk. A tápközegben a kobaltkoncentráció 75 ppb volt. Ez a koncentráció - a tápközeg lassú adagolásával - biztosítja a termelt sejtek grammjaira számítva több mint 50 pg kobalt (fölös kobalt) adagolását a bioreaktorban a sejtek lassú termelődése következtében. Hasonlóképpen a pantotenát koncentrációja a tápközegben 20 pg/l volt, ami biztosítja, hogy szintén fölös pantotenát legyen jelen. A H2 parciális nyomását a kilépő gázban 55,7 kPa fölöslegben tartottuk, oly módon, hogy nagy mennyiségű H2-t, és CO2-ot nem tartalmazó gázt adagoltunk, és óvatosan szabályoztuk a gázadagolás és a keverés sebességét, így 95%-nál nagyobb CO-konverziót és 80%-nál nagyobb H2-konverziót értünk el. Ahogyan ezt a magas konverziófokot elértük, a sejtkoncentráció a kezdeti 0 g/l értékről körülbelül 1,5 g/l értékre emelkedett. Mivel a kobaltkoncentrációt konstans értéken tartottuk a kezdésnél, a termelt sejtek grammjaira számított kobaltmennyiség fokozatosan csökkent, míg az 50 pg/g-sejt értéket el nem érte, azaz olyan értéket, amely limitáló. Tehát a rendszer kobaltlimitálttá alakul. A kezdésnél a fölös H2 hatására magas etanol/acetát termelési arányokat értünk el. Eljárhatunk úgy is, hogy a kezdés korai szakaszában hagyjuk, hogy a reaktor ecetsavat termeljen, és a ter21
HU 226 975 Β1 melési arányt később vonjuk szabályozás alá kobaltlimitálással.
20. példa
Hidrogén túladagolása
Egy folyadék- és sejt-visszacirkuláltatással CSTRként működtetett laboratóriumi AUTOKLÁV™ reaktorban (Buchi) C. Ijungdahlii sejteket a tenyésztéshez szükséges vitaminokkal, nyomelemekkel és sókkal láttunk el. A reaktorba fölös mennyiségű H2-t tartalmazó gázt adagoltunk, annyit, hogy a betáplált H2 móljainak és a konvertált CO móljai kétszerese, valamint a konvertált CO2 móljai háromszorosa összegének aránya 5,67 volt. Ha ez az arány 1,0 értéknél nem magasabb, nincs ^-fölösleg jelen a reaktorban, és etanoltermelés a H2-fölösleg hatására nem tud bekövetkezni. Ezenkívül a H2 parciális nyomása a kilépő gázban 264,4 kPa volt, ami meghaladja az etanoltermeléshez szükséges 40,5 kPa H2-fölösleg értéket. Végül a H2 parciális nyomásának és a CO2 parciális nyomásának aránya a kilépő gázban 10,88 érték volt, ami nagyobb, mint a 3,0 érték, és biztosítja, hogy elég H2 legyen jelen az összes jelen levő szén hasznosítása érdekében. Ilyen körülmények között a reaktor közel 26 g/l etanolt és kevesebb mint 3 g/l acetátot termelt. A termelékenység etanolra nézve 200 g/l nap volt. Ha a fenti kritériumok közül bármelyik nem teljesül, a reaktor nem tud etanolt termelni a H2-fölösleg jelenlétének következtében. Egy másik szempont, hogy a H2-fölösleg további redukált ferredoxint eredményez a hidrogenázzal való oxidáció hatására.
21. példa
A CO szubsztrátgátlás csökkentése
Egy 800 rpm keverési sebességgel működtetett laboratóriumi New Brunswick Scientific Bioflo® CSTR esetén a CO-kibocsátás a kilépő gázban 10%, amely korábban mindössze 5% volt. A keverési sebesség 600 rpm-re való csökkentésével a CO-gátlást megszüntetjük, így a CO-kibocsátás visszaáll 5%-ra. Ez fokozott H2-felvételt eredményez, ami a reaktorba táplált gáz hatékony hasznosításának szükséges feltétele.
22. példa
Tömegátadás
Egy sejt-visszacirkuláltatással, tápanyag-limitálással vagy a betáplált gázban H2- vagy CO-fölösleg nélkül működtetett, C. Ijungdahlii ERI2 törzset tartalmazó, laboratóriumi CSTR esetén, amelybe tehát több mint 100 pg/g-sejt kalcium-pantotenátot és több mint 100 pg/g-sejt kobaltot adagolunk, a kilépő gázban a H2 parciális nyomása 20,3 kPa, a fajlagos CO-felvétel kevesebb mint 0,3 mmol/g-sejtperc. A keverési sebesség 800 rpm. Ilyen körülmények között a tenyészet csak ecetsavat termel (a termékáramban nincs jelen etanol). Ha a keverési sebességet gyorsan 900 rpm-re növeljük, vagy a gázadagolás sebességét körülbelül 10%-kal növeljük, a termékáramban etanol figyelhető meg, amíg a sejtkoncentráció emelkedik, hogy felvegye a gázt, vagy amíg a tenyészet el nem pusztul a szubsztrátgátlás következtében.
23. példa
Ecetsav termékgátlás szabályozása
Egy 8 g/l ecetsavat és 10 g/l etanolt termelő laboratóriumi CSTR esetén a folyadék retenciós időt 24 óráról 12 órára csökkentjük 36 óra hosszat, annak érdekében, hogy a fölös ecetsavat - amely korlátozza a tenyészetet abban, hogy több etanolt termeljen - kimossuk a reaktorból. A reaktor működtetésének többi paraméterét és a tápközeggel kapcsolatos körülményeket állandó értéken tartjuk. Az említett idő után a folyadék retenciós idejét visszaállítjuk 24 órára, és így a termékáram 3 g/l acetátot és 15-25 g/l etanolt tartalmaz. A folyadék retenciós idő csökkentést néhányszor ismételni kell, a termékgátlás megszüntetése érdekében. Eljárhatunk úgy is, hogy a betáplált gázhoz H2-t adagolunk, így H2-fölösleggel történő szabályozást alakítunk ki, mivel a CO2-fölösleg szintén ecetsavtermeléshez vezethet az etanoltermelés kárára. Ez a módosítás megakadályozza a fölös ecetsav termelését, és így megelőzi, hogy gyenge termelési arány és alacsony etanoltermelékenység alakuljon ki. Ezután folytatjuk a fölös H2 alkalmazását a betáplált gázban, illetve a korlátozó tápanyag-koncentráció alkalmazását a folyadékfázisban.
24. példa
Szén-monoxid túladagolása
A C. Ijungdahlii ERI2 törzs fölös tápanyaggal (fölös pantotenáttal vagy kobalttal), H2-fölösleg nélkül ellátva 0,23-0,48 mmol/gperc fajlagos CO-felvételt mutat, és a termékáramban nincs jelen etanol. A C. Ijungdahlii C-01 törzs azonban hasonlóképpen fölös tápanyaggal ellátva, H2-fölösleg nélkül, olyan körülmények között, ahol CO-túladagolás következtében etanoltermelés jelentkezett, 0,67-1,34 mmol/g perc fajlagos CO-felvételt mutatott. Ilyen körülmények között a tenyészet 9,9-12,0 g/l etanolt és 2,6-2,7 g/l acetátot termelt.
25. példa
A termékarány szabályozása a sejtek kihajtásával
Gázfázisú szubsztrát (30% CO, 15% H2, 10% CO2, 45% N2) fermentációját végezzük C. Ijungdahlii C-01 törzs alkalmazásával, sejt-visszacirkuláltatással működtetett CSTR-ben (pH=5,0, hőmérséklet: 38 °C, nyomás: 137,8 kPa, a sejtek retenciós ideje 40 óra, a folyadék retenciós ideje 6 óra), a tenyészet növekedését nem korlátozzuk kobalt, pantotenát vagy bármely más tápanyag-limitálással. Ahogyan a sejtek szaporodnak, a sejtsűrűség olyan értéket ér el, hogy a fajlagos felvétel (CO mmol/gramm száraz sejttömeg/perc) 0,5 érték alatt van, és elsősorban ecetsav termelődik etanollal szemben. E jelenség megelőzésére a sejtek kihajtási sebességét fokozzuk, hogy a sejtsűrűség növekedését megelőzzük, amíg a sejtkoncentráció elég alacsony nem lesz ahhoz, hogy a fajlagos CO-felvétel 0,5 mmol/g perc érték fölött legyen. Ennek érdekében a sejtek retenciós idejét 6 és 25 óra közötti értékre csökkentjük.
HU 226 975 Β1
1. táblázat
Tápközeg etanol termeléséhez
Komponens | Mennyiség literenként |
2 g/l-es FeCI2-4H2O | 10 ml |
85%-os H3PO4 | 0,05 ml |
MPFN nyomelemek8 | 20 ml |
(NH4)2HPO4 | 0,60 g |
NH4CI | 2,00 g |
NaCI | 0,20 g |
KCI | 0,15 g |
MgCI2-6H2O | 0,50 g |
Komponens | Mennyiség literenként |
CaCI2-2H2O | 0,20 g |
Cisztein-HCIH2O | 0,25 g |
Vitaminoldatb | változó8 |
a MPFN nyomelemek oldatának összetétele literenként: 10 ml 85%-os H3PO4, 0,10 g ZnSO4-7H2O, 0,03 g MnCI2-4H2O,
0,3 g H3BO3, 0,20 g CoCI2-6H20, 0,02 g CuCI2-H2O, 0,04 g NiCI2-6H2O, 0,03 g NaMoO4-2H2O, 2,00 g FeCI2-4H2O, 0,01 g Na2SeO3 és 0,10 g Na2WO4-2H2O b Vitaminoldat összetétele: 20,6 mg/l d-biotin, 50,6 mg/l tiamin-HCI és 50,5 mg/l d-pantoténsav-kalciumsó 8 0,3-0,5 ml érték beoltáskor, és a nagy gázadagolási sebességeknél 0,7-0,8 ml értékig emelkedik
2. táblázat
A példák szerinti és a kontrollmódszerek paraméterei és eredményei összehasonlításának összefoglalása
Példa száma | Szabályo- zómecha- nizmus | Termék koncentrációja | Etanolter- melékeny- ség (g/l-nap) | Adagolt pantotenát (pg pant./g termelt sejt) | Adagolt kobalt (pg kobalt/g termelt sejt) | H2 adagolt (2COkonv+8CO2 konv) | H2 parciális nyomása a kilépő gázban (atm) | Fajlagos CO-felvétel (mmol/ g-sejt-perc) | |
Etanol (g/i) | Acetát (g/i) | ||||||||
3. | Tömeg- átadás | 0 | 10-13 | 0 | 1575-3150 | 1734-3468 | 0,46 | 0,06-0,07 | 0,275-0,48 |
3. | Tömeg- átadás | 0 | 10-14 | 0 | 2250-3600 | 62-99 | 0,875 | 0,11-0,20 | 0,33-0,40 |
4. | Pantotenát | 15-19 | 1,5 | 11,5-14,5 | 18-24 | 5000-6660 | 1,03 | 0,55-0,64 | 0,23-0,30 |
4. | Pantotenát | 18 | 3 | 17,4 | 8,1 | 3960 | 1,14 | 0,60-0,65 | 0,33 |
5. | Kobalt | 26 | 4 | 15,6 | 15,2 | 33 | 0,94 | 0,63 | 0,37 |
5. | Kobalt | 18 | 4 | 27,0 | 85,7 | 47,6 | 1,03 | 0,60 | 0,50 |
6. | Fölös CO | 9,8 | 2,6 | 29,0 | 97 | 83,6 | 1,09 | 1,6 | 1,34 |
6. | Fölös CO | 12,0 | 2,7 | 60,0 | 294 | 735 | 0,30 | 0,6 | 0,67 |
7. | Fölös H2 | 10,0 | 3,3 | 6,7 | 900-1125 | 991-1239 | 1,96 | 0,7-0,87 | 0,28-0,35 |
7. | Fölös H2 | 25,96 | 2,85 | 215-240 | 46 | 460 | 5,67 | 2,61 | 1,68 |
3. táblázat
Termékeltolódás különböző Clostridium ljungdahlii törzsek esetén
C. ljungdahlii törzs | Tápközeg-korlátozás | Sejtkonc. (g/l) (száraz sejttömeg) | Gázkonverzió | Termékkonc. | ||
CO | h2 | Etanol | Acetát | |||
ERI2 | ecetsavfokozás | 1,1 | 90 | 80 | 0 | 10 |
ERI2 | pantotenátkorlátozás | 0,3 | 88 | 20 | 2,5 | 0 |
ERI2 | ecetsavfokozás | 0,55 | 90 | 85 | 1,0 | 5,5 |
ERI2 | pantotenátkorlátozás | 0,5 | 90 | 20 | 10 | 1,0 |
ERI2 | ecetsavfokozás | 0,8 | 100 | 93 | 1 | 7 |
ERI2 | kobaltkorlátozás | 1,3 | 80 | 20 | 9 | 3 |
C-01 | ecetsavfokozás | 1,2 | 96 | 90 | 1 | 8 |
C-01 | pantotenátkorlátozás | 0,8 | 60 | 30 | 4 | 0 |
C-01 | ecetsavfokozás | 1,2 | 96 | 90 | <1 | 9 |
C-01 | kobaltkorlátozás | 2,5 | 80 | 20 | 17 | 2 |
HU 226 975 Β1
3. táblázat (folytatás)
C. Ijungdahlii törzs | Tápközeg-korlátozás | Sejtkonc. (g/l) (száraz sejttömeg) | Gázkonverzió | Termékkonc. | ||
CO | h2 | Etanol | Acetát | |||
PETC | ecetsavfokozás | 0,8 | 65 | 55 | 2 | 10 |
PETC | kobaltkorlátozás | 1,0 | 95 | 55 | 8 | 1 |
4. táblázat
A stacioner állapot adatai CO-ban gazdag gáz etanollá történő alakításában, C. Ijungdahlii C-01 törzs alkalmazásával
GRT (perc) | LRT (óra) | Keverés sebessége (ford./perc) | Sejtkonc.* (g/i) | Gázkonverzió (%) | Termék (g/l) | Etanoltermelékenység (g/l-nap) | ||
CO | h2 | Etanol | Acetát | |||||
13 | 32,4 | 700 | 2,44 | 91 | 57 | 21,6 | 3,9 | 16,0 |
11,93 | 25,7 | 750 | 2,51 | 92 | 54 | 20,6 | 3,6 | 19,2 |
12,67 | 25,6 | 750 | 2,60 | 93 | 61 | 18,7 | 4,7 | 17,6 |
10 | 24,5 | 750 | 2,75 | 92 | 43 | 20,4 | 6,1 | 20,0 |
11,54 | 23,8 | 750 | 2,65 | 92 | 40 | 20,4 | 5,3 | 20,6 |
12,10 | 23,8 | 750 | 2,77 | 88 | 18 | 21 | 3,1 | 21,1 |
13,8 | 23,8 | 750 | 2,70 | 90 | 25 | 18 | 2,5 | 18,2 |
12,7 | 23,8 | 750 | 2,70 | 92 | 35 | 20 | 3,8 | 20,2 |
13,3 | 24,0 | 800 | 2,70 | 85 | 10 | 17,5 | 5,0 | 17,5 |
14,81 | 31 | 750 | 2,50 | 92 | 30 | 25 | 2,5 | 19,4 |
16,9 | 31 | 750 | 3,60 | 90 | 18 | 23 | 3,0 | 17,8 |
18,5 | 33 | 750 | 2,60 | 94 | 50 | 24 | 3,5 | 17,5 |
17,2 | 34 | 750 | 2,50 | 91 | 40 | 24 | 3,5 | 16,9 |
18,5 | 34 | 750 | 2,30 | 95 | 63 | 23 | 4,0 | 16,2 |
19,2 | 40,6 | 750 | 2,70 | 94 | 50 | 28,5 | 4,0 | 17,4 |
19,0 | 55 | 750 | 2,70 | 94 | 20 | 33 | 4,0 | 14,4 |
* Száraz sejttömeg alapján
5. táblázat
A stacioner állapot adatai 27 térfogat% CO-ot, 16 térfogat% H2-t és 51 térfogat% N2-t tartalmazó gáz etanollá történő alakításában, C. Ijungdahlii C-01 törzs alkalmazásával, a sejtek visszacirkuláltatása nélkül
GRT (perc) | LRT (óra) | Keverés sebessége (ford./perc) | Sejtkonc.* (g/i) | Gázkonverzió (%) | Termék (g/l) | Etanoltermelékenység (g/l-nap) | ||
CO | h2 | Etanol | Acetát | |||||
8,89 | 23,8 | 750 | 2,3 | 84 | 57 | 11 | 2,5 | 11,1 |
8,3 | 23,8 | 900 | 2,6 | 89 | 55 | 12 | 2,0 | 12,1 |
8,3 | 27,7 | 900 | 2,7 | 89 | 47 | 15 | 3,0 | 13,0 |
7,1 | 33,3 | 900 | 3,0 | 86 | 37 | 19 | 3,0 | 13,7 |
7,4 | 33,3 | 900 | 3,0 | 87 | 40 | 19,5 | 3,0 | 14,1 |
6,34 | 33,3 | 900 | 3,0 | 86 | 37 | 21 | 3,5 | 15,1 |
6,18 | 33,3 | 900 | 3,0 | 86 | 41 | 20,9 | 3,1 | 15,1 |
5,72 | 34,3 | 900 | 3,0 | 85 | 40 | 22,1 | 3,8 | 15,5 |
5,12 | 33 | 900 | 3,7 | 85 | 40 | 25,0 | 4,0 | 18,2 |
4,59 | 33 | 900 | 4,1 | 83 | 33 | 25 | 3,5 | 18,2 |
4,59 | 29 | 900 | 4,0 | 80 | 35 | 23 | 4,0 | 19,0 |
HU 226 975 Β1
5. táblázat (folytatás)
GRT (perc) | LRT (óra) | Keverés sebessége (ford./perc) | Sejtkonc.* (g/i) | Gázkonverzió (%) | Termék (g/l) | Etanoltermelékenység (g/l-nap) | ||
CO | h2 | Etanol | Acetát | |||||
4,76 | 29 | 900 | 3,9 | 90 | 35 | 19 | 5,0 | 15,7 |
4,25 | 28 | 900 | 4,2 | 80 | 30 | 23 | 3,0 | 19,7 |
5,5 | 37 | 900 | 3,4 | 84 | 40 | 23 | 3,0 | 14,9 |
5,26 | 31 | 900 | 3,8 | 84 | 50 | 23 | 3,5 | 17,8 |
5,71 | 31 | 900 | 3,7 | 80 | 28 | 26 | 3,0 | 20,1 |
6,25 | 31 | 900 | 3,75 | 82 | 30 | 25,5 | 3,0 | 19,7 |
6,66 | 31 | 900 | 3,6 | 86 | 64 | 22 | 4,0 | 17,0 |
* Száraz sejttömeg alapján
6. táblázat
A stacioner állapot adatai 50 térfogat% H2-t, 45 térfogat% CO-ot és 5 térfogat% CH4-t tartalmazó gáz etanollá történő alakításában, 0-52 izolátum alkalmazásával, CSTR-ben, a sejtek visszacirkuláltatásával
GRT (perc) | LRT (óra) | Keverés sebessége (ford./perc) | Sejtkonc.* (g/i) | Gázkonverzió (%) | Termék (g/l) | Etanoltermelékenység (g/l-nap) | ||
CO | h2 | Etanol | Acetát | |||||
12,5 | 46,4 | 23,2 | 3,8 | 96,3 | 81,2 | 20,4 | 4,4 | 21,1 |
9,7 | 43,2 | 17,3 | 4,9 | 86,7 | 49,9 | 21,1 | 3,5 | 29,3 |
9,2 | 43,2 | 17,3 | 4,6 | 89,4 | 64,5 | 20,5 | 5,1 | 28,4 |
7,5 | 43,2 | 17,3 | 5,0 | 81,8 | 42,1 | 22,2 | 3,7 | 30,8 |
9,2 | 49,4 | 17,3 | 4,6 | 85,3 | 52,1 | 21,1 | 4,4 | 29,3 |
8,4 | 46,0 | 16,1 | 4,5 | 85,2 | 61,4 | 20,8 | 5,1 | 31,0 |
6,8 | 54,3 | 16,3 | 4,7 | 84,7 | 57,7 | 23,4 | 5,7 | 34,5 |
7,2 | 54,3 | 16,3 | 4,0 | 83,1 | 55,2 | 19,0 | 4,4 | 28,0 |
7,4 | 54,3 | 16,3 | 5,0 | 86,6 | 66,7 | 21,9 | 5,5 | 32,2 |
6,4 | 55,6 | 16,7 | 5,6 | 83,3 | 53,1 | 23,5 | 4,9 | 33,8 |
6,2 | 41,6 | 14,5 | 5,7 | 82,5 | 55,0 | 20,1 | 5,0 | 33,3 |
6,0 | 41,6 | 14,5 | 6,0 | 82,5 | 50,0 | 21,5 | 3,0 | 35,6 |
6,0 | 34,2 | 12,0 | 5,7 | 84,0 | 56,0 | 19,5 | 4,5 | 39,0 |
5,7 | 34,2 | 12,0 | 5,7 | 81,0 | 45,0 | 18,0 | 4,5 | 36,0 |
* Száraz sejttömeg alapján
7. táblázat pH és folyadékminta elemzése az acetát-etanol eltolódásban, fölös mennyiségű CO jelenlétében
Idő | pH | Sejtkoncentráció* (g/i) | Etanol (g/l) | Acetát (g/l) | Butanol (g/l) |
0 | 4,69 | 2,4 | 10,3 | 3,1 | 0,3 |
30 | 5,28 | 11,4 | 1,5 | 0,3 | |
35 | 5,28 | 2,4 | 11,6 | 1,6 | 0,3 |
50 | 4,98 | 11,3 | 1,8 | 0,3 | |
80 | 4,73 | 2,4 | 10,9 | 2,9 | 0,3 |
* Száraz sejttömeg alapján
HU 226 975 Β1
8. táblázat
0-52 izolátum gázfermentációjának adatai sejt- és víz-visszacirkuláltatással
Idő (óra) | Keverés sebessége (ford./perc) | Sejtkonc.* (g/i) | Gázkonverzió (%) | Termék (g/l) | Etanoltermelékenység (g/l-nap) | |||
CO | h2 | Etanol | Acetát | Nettó acetát | ||||
0-75 | 25 | 2,1 | 95 | 68 | 12 | 4 | 4 | 12 |
75-193 | 50 | 2,1 | 95 | 75 | 15 | 6 | 5 | 15 |
193-462 | 75 | 2,1 | 92 | 60 | 17 | 5 | 4 | 17 |
462-554 | 50 | 1,6 | 85 | 30 | 17—>13 | 5 | 3 | 12-16 |
554-669 | 75 | 2,6 | 92 | 75 | 13—>19 | 5 | 3 | 12-18 |
669-943 | 100 | 3,0 | 92 | 70 | 23 | 6 | 3 | 23 |
943-1087 | 100 | 3,0 | 92 | 60 | 23 | 6 | 0 | 23 |
1087-1232 | 100 | 2,7 | 92 | 60 | 23 | 6 | -0 | 23 |
1232-1375 | 100 | 3,0 | 91 | 60 | 27 | 6 | -1 | 27 |
1375-1534 | 100 | 3,5 | 88 | 35 | 23 | 5 | 0 | 23 |
* Száraz sejttömeg alapján
Claims (10)
- SZABADALMI IGÉNYPONTOK1. Folyamatos eljárás etanol termelésére gázfázisú, szén-monoxidot tartalmazó szubsztrát anaerob bakteriális fermentációjával, amelynek során fermentáló bioreaktorban, kalcium-pantotenátot tartalmazó folyékony tápközegben, 5,5-nél alacsonyabb pH-nál etanolt termelni képes Clostridium Ijungdahlii baktériumot tenyésztünk, a fermentáló bioreaktorban a szabad ecetsavkoncentráció 5 g/l-nél alacsonyabb, és a bioreaktorban levő fermentlében az etanol és acetát aránya 1:1-20:1, azzal jellemezve, hogy a fermentáló bioreaktorba kalcium-pantotenátot adagolunk, a bioreaktorban termelődött baktérium száraz sejttömegére vonatkoztatva 0,5-50 pg/g mennyiségben, a bioreaktorban a fajlagos szén-monoxid-felvételt a baktérium száraz sejttömegére vonatkoztatva percenként legalább 0,3 mmol/g értéken tartjuk, és az etanolt 10 g/l/nap értéknél nagyobb termelékenységgel termeljük.
- 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fermentáló bioreaktorként egy növesztőreaktort alkalmazunk, amelyből egy második bioreaktort táplálunk fermentlével, ahol az etanol fő tömege képződik.
- 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy még a következő lépéseket végezzük: a bioreaktorból eltávolítjuk a fermentlét, ledesztilláljuk, és kinyerjük belőle az etanolt.
- 4. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a desztillációval kapott, acetátot tartalmazó vizet visszacirkuláltatjuk a bioreaktorba.
- 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a Clostridium Ijungdahlii baktériumokat a következő törzsek közül választjuk: PECT, ERI2, 0-52 és/vagy C-01.
- 6. Az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a gázfázisú szubsztrátot a következők közül választjuk: (a) szén-monoxid, (b) szénmonoxid és hidrogén, (c) szén-monoxid, szén-dioxid és hidrogén, valamint (d) az (a)-(c) pontok bármelyike nitrogénnel vagy metánnal.
- 7. Az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy még a következő lépéseket végezzük:(a) a következő paraméterek közül legalább egyet megváltoztatunk: tápközeg összetétele, tápközeg adagolási sebessége, vizes fázis adagolási sebessége, működési nyomás, működési pH, gázfázisú szubsztrát összetétele, gázadagolás sebessége, fermentlé keverési sebessége, termék koncentrációja, sejtsűrűség, szubsztrátgátlás és ezek kombinációja;(b) a fermentáló bioreaktorból periodikusan baktériumsejteket hajtunk ki olyan sejtkoncentrációig, amely alacsonyabb, mint a bioreaktorban levő összes redukáló gázt vagy szubsztrátot felhasználó stabil koncentráció;(c) a vizes fázis adagolási sebességét növeljük, amikor a fermentlében jelen levő acetát szabad ecetsavtartalma a 2 g/l értéket meghaladja, ezzel csökkentjük a szabad ecetsav koncentrációjának nem kívánt növekedését;(d) a gázfázisú szubsztrát adagolási sebességének csökkentésével enyhítjük a szubsztrátgátlást, és fenntartjuk a termelékenységet;(e) a keverési sebesség csökkentésével enyhítjük a szubsztrátgátlást, és fenntartjuk a termelékenységet;(f) a fermentáló bioreaktorba a gázfázisú szubsztrátot a száraz sejttömegre vonatkoztatva percenként 0,3-2 mmol CO sebességgel adagoljuk;(g) a fermentáló bioreaktorban jelen levő szénmonoxid mennyiségét úgy növeljük, hogy a szén-monoxid mennyisége nagyobb annál a mennyiségnél, amely a baktérium stabil koncentrációjának fenntartásához szükséges, amely az összes adagolt szén-monoxidot felhasználná;(h) a fermentáló bioreaktorban a szén-monoxid mennyiségét olyan szinten tartjuk, amely az acetát termelésével szemben az etanol termelését tartja fenn;HU 226 975 Β1 (i) a fermentáló bioreaktorba olyan tápközeget adagolunk, amely még kobaltot is tartalmaz, a kobalt koncentrációját a termelt baktérium száraz sejttömegére vonatkoztatva 5-100 pg/g értéken tartjuk; és (j) a tenyészet pH-ját 4,5 érték fölé emeljük.
- 8. Az 1-7. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a következő paraméterek beállításával megelőzzük, hogy a baktériumok akklimatizálódjanak a kalcium-pantotenát fermentáló bioreaktorban levő mennyiségéhez: gázadagolás sebessége, folyadékadagolás sebessége, keverési sebesség, tápközeg adagolásának sebessége és a hidrogén parciális nyomása.
- 9. A 8. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fölös mennyiségű hidrogén redukáló gázt adagolunk a fermentáló bioreaktorba.
- 10. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemez5 ve, hogy a 7. igénypont szerinti (i) lépést hajtjuk végre, és konstans kobaltkoncentráció fenntartásával és az alábbi paraméterek beállításával megelőzzük, hogy a baktériumok akklimatizálódjanak a kobalt bioreaktorban levő mennyiségéhez: gázadagolás sebessége, fo10 lyadékadagolás sebessége, keverési sebesség, tápközeg adagolási sebessége és a hidrogén parciális nyomása.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US22079400P | 2000-07-25 | 2000-07-25 | |
PCT/US2001/023149 WO2002008438A2 (en) | 2000-07-25 | 2001-07-23 | Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermentation |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HUP0301388A2 HUP0301388A2 (hu) | 2003-08-28 |
HUP0301388A3 HUP0301388A3 (en) | 2005-11-28 |
HU226975B1 true HU226975B1 (en) | 2010-03-29 |
Family
ID=22825008
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU0301388A HU226975B1 (en) | 2000-07-25 | 2001-07-23 | Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermantation |
Country Status (25)
Country | Link |
---|---|
US (11) | US7285402B2 (hu) |
EP (1) | EP1303629B1 (hu) |
JP (1) | JP4883872B2 (hu) |
KR (1) | KR100879577B1 (hu) |
CN (1) | CN1223679C (hu) |
AT (1) | ATE332390T1 (hu) |
AU (1) | AU7710301A (hu) |
BR (1) | BR0112251B1 (hu) |
CA (1) | CA2416500C (hu) |
CR (1) | CR6891A (hu) |
CY (1) | CY1106177T1 (hu) |
DE (1) | DE60121335T2 (hu) |
DK (1) | DK1303629T3 (hu) |
EA (1) | EA006106B1 (hu) |
EC (1) | ECSP034418A (hu) |
ES (1) | ES2267794T3 (hu) |
HU (1) | HU226975B1 (hu) |
IL (3) | IL153876A0 (hu) |
MX (1) | MXPA03000711A (hu) |
NZ (1) | NZ523484A (hu) |
PL (1) | PL205622B1 (hu) |
PT (1) | PT1303629E (hu) |
UA (1) | UA76117C2 (hu) |
WO (1) | WO2002008438A2 (hu) |
ZA (1) | ZA200300325B (hu) |
Families Citing this family (246)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
UA76117C2 (en) | 2000-07-25 | 2006-07-17 | Emmaus Foundation Inc | A process for a stable producing ethanol |
JP2003339371A (ja) * | 2002-05-29 | 2003-12-02 | Cosmo Oil Co Ltd | 新規エタノール生産菌及びエタノールの生産法 |
EP1751294A1 (en) * | 2004-05-26 | 2007-02-14 | Novus Energy, LLC | Ethanol production from biological wastes |
BE1016178A3 (fr) * | 2004-09-06 | 2006-04-04 | Debailleul Gerard | Procede et installation pour fabriquer du carburant vert economiquement. |
US7608438B2 (en) * | 2005-04-05 | 2009-10-27 | Jessica Laviolette | Process for the continuous production of ethanol |
US20090038701A1 (en) | 2006-01-17 | 2009-02-12 | Baxter International Inc. | Device, system and method for mixing |
NZ546496A (en) * | 2006-04-07 | 2008-09-26 | Lanzatech New Zealand Ltd | Gas treatment process |
CN104962586A (zh) | 2006-07-21 | 2015-10-07 | 希乐克公司 | 生物质转化*** |
BRPI0719435A2 (pt) * | 2006-12-01 | 2013-12-10 | Texas A & M Univ Sys | Método de conversão de biomassa em alcóois mistos. |
WO2008091627A2 (en) * | 2007-01-22 | 2008-07-31 | Genomatica, Inc. | Methods and organisms for growth-coupled production of 3-hydroxypropionic acid |
NZ553984A (en) * | 2007-03-19 | 2009-07-31 | Lanzatech New Zealand Ltd | Alcohol production process |
US8026095B2 (en) * | 2007-06-02 | 2011-09-27 | Ingo Krieg | Biological production of ethanol from waste gases |
US20080305540A1 (en) * | 2007-06-08 | 2008-12-11 | Robert Hickey | Membrane supported bioreactor for conversion of syngas components to liquid products |
US8329456B2 (en) * | 2008-02-22 | 2012-12-11 | Coskata, Inc. | Syngas conversion system using asymmetric membrane and anaerobic microorganism |
US7923227B2 (en) * | 2007-06-08 | 2011-04-12 | Coskata, Inc. | Method of conversion of syngas using microorganism on hydrophilic membrane |
US20080305539A1 (en) | 2007-06-08 | 2008-12-11 | Robert Hickey | Membrane supported bioreactor for conversion of syngas components to liquid products |
US8828692B2 (en) * | 2007-06-08 | 2014-09-09 | Coskata, Inc. | Membrane supported bioreactor for conversion of syngas components to liquid products |
US8198055B2 (en) | 2007-06-08 | 2012-06-12 | Coskata, Inc. | Process for converting syngas to liquid products with microorganisms on two-layer membrane |
US8101387B2 (en) * | 2007-06-08 | 2012-01-24 | Coskata, Inc. | Process to sequence bioreactor modules for serial gas flow and uniform gas velocity |
US8425734B2 (en) * | 2007-07-02 | 2013-04-23 | I3 Nanotec Llc | Membrane-based hybrid process for separation of mixtures of organics, solids, and water |
EP2017346A1 (en) * | 2007-07-19 | 2009-01-21 | Ineos Europe Limited | Process for the production of alcohols |
US8563299B2 (en) * | 2007-08-03 | 2013-10-22 | Coskata, Inc. | Moving bed biofilm reactor (MBBR) process for conversion of syngas components to liquid products |
US20090035848A1 (en) * | 2007-08-03 | 2009-02-05 | Robert Hickey | Moving bed biofilm reactor (mbbr) system for conversion of syngas components to liquid products |
TWI453284B (zh) * | 2007-08-10 | 2014-09-21 | Genomatica Inc | 合成烯酸及其衍生物之方法 |
CN102016052B (zh) * | 2007-08-15 | 2015-04-29 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 生产醇的工艺 |
WO2009021503A2 (de) * | 2007-08-16 | 2009-02-19 | Georg Fritzmeier Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur herstellung von ethanol / butanol und/oder methan |
NZ560757A (en) | 2007-10-28 | 2010-07-30 | Lanzatech New Zealand Ltd | Improved carbon capture in microbial fermentation of industrial gases to ethanol |
US8489340B2 (en) * | 2007-11-02 | 2013-07-16 | Ceres, Inc. | Method for predicting the amount of accessible carbohydrate in a feedstock sample using a near-infrared model |
US8222013B2 (en) * | 2007-11-13 | 2012-07-17 | Lanzatech New Zealand Limited | Bacteria and methods of use thereof |
US7960153B2 (en) * | 2007-12-31 | 2011-06-14 | Church & Dwight Co., Inc. | Glucose conversion to ethanol via yeast cultures and bicarbonate ions |
CA2712779C (en) | 2008-01-22 | 2021-03-16 | Genomatica, Inc. | Methods and organisms for utilizing synthesis gas or other gaseous carbon sources and methanol |
US8211679B2 (en) * | 2008-02-25 | 2012-07-03 | Coskata, Inc. | Process for producing ethanol |
ES2703775T3 (es) | 2008-03-05 | 2019-03-12 | Genomatica Inc | Organismos productores de alcoholes primarios |
US9034618B2 (en) * | 2009-03-09 | 2015-05-19 | Ineos Bio Sa | Method for sustaining microorganism culture in syngas fermentation process in decreased concentration or absence of various substrates |
CA2718132A1 (en) * | 2008-03-10 | 2009-09-17 | Ineos Usa Llc | Method for sustaining microorganism culture in syngas fermentation process in decreased concentration or absence of various substrates |
US8586335B2 (en) | 2008-03-11 | 2013-11-19 | Ineos Bio Sa | Process for the production of ethanol and butanol |
EP2123766A1 (en) | 2008-05-19 | 2009-11-25 | Ineos Europe Limited | Process for the production of ethanol |
EP2336345B1 (en) * | 2008-03-11 | 2012-02-08 | INEOS Bio Limited | Process for the production of ethanol |
AU2009224112B9 (en) * | 2008-03-12 | 2013-01-31 | Lanzatech Nz, Inc. | Microbial alcohol production process |
CN106119112B (zh) * | 2008-03-27 | 2021-07-13 | 基因组股份公司 | 用于产生己二酸和其他化合物的微生物 |
US8119844B2 (en) * | 2008-05-01 | 2012-02-21 | Lanzatech New Zealand Limited | Alcohol production process |
WO2009135074A2 (en) | 2008-05-01 | 2009-11-05 | Genomatica, Inc. | Microorganisms for the production of methacrylic acid |
US8058058B2 (en) | 2008-05-19 | 2011-11-15 | Coskata, Inc. | Submerged membrane supported bioreactor for conversion of syngas components to liquid products |
EP2307556B1 (en) * | 2008-06-09 | 2020-08-05 | Lanzatech New Zealand Limited | Production of butanediol by anaerobic microbial fermentation |
WO2009155382A1 (en) * | 2008-06-17 | 2009-12-23 | Genomatica, Inc. | Microorganisms and methods for the biosynthesis of fumarate, malate, and acrylate |
US8592190B2 (en) * | 2009-06-11 | 2013-11-26 | Ineos Bio Limited | Methods for sequestering carbon dioxide into alcohols via gasification fermentation |
WO2009154788A2 (en) * | 2008-06-20 | 2009-12-23 | Ineos Usa Llc | Methods for sequestering carbon dioxide into alcohols via gasification fermentation |
US20100021978A1 (en) * | 2008-07-23 | 2010-01-28 | Genomatica, Inc. | Methods and organisms for production of 3-hydroxypropionic acid |
US8211692B2 (en) * | 2008-10-24 | 2012-07-03 | Coskata, Inc. | Bioconversion process using liquid phase having to enhance gas phase conversion |
US20130078690A1 (en) * | 2008-11-06 | 2013-03-28 | Kiverdi, Inc. | Biological and chemical process utilizing chemoautotrophic microorganisms for the chemosythetic fixation of carbon dioxide and/or other inorganic carbon sources into organic compounds, and the generation of additional useful products |
US20130149755A1 (en) | 2008-11-06 | 2013-06-13 | Kiverdi ,Inc. | Use of oxyhydrogen microorganisms for non-photosynthetic carbon capture and conversion of inorganic and/or c1 carbon sources into useful organic compounds |
WO2010064933A1 (en) * | 2008-12-01 | 2010-06-10 | Lanzatech New Zealand Limited | Optimised fermentation media |
EP2361312B1 (en) * | 2008-12-01 | 2014-10-22 | Lanzatech New Zealand Limited | Optimised fermentation media |
AU2009327490A1 (en) | 2008-12-16 | 2011-07-28 | Genomatica, Inc. | Microorganisms and methods for conversion of syngas and other carbon sources to useful products |
CA2751060C (en) * | 2009-01-29 | 2014-04-08 | Lanzatech New Zealand Limited | Alcohol production process |
CN106190846A (zh) | 2009-02-26 | 2016-12-07 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 维持培养物的存活力的方法 |
US8178329B2 (en) | 2009-04-01 | 2012-05-15 | Richard Allen Kohn | Process to produce organic compounds from synthesis gases |
DE102009002583A1 (de) | 2009-04-23 | 2010-10-28 | Evonik Degussa Gmbh | Zellen und Verfahren zur Herstellung von Aceton |
ES2547428T3 (es) | 2009-04-29 | 2015-10-06 | Lanzatech New Zealand Limited | Mejora de la captura del carbono en la fermentación |
KR102115497B1 (ko) | 2009-04-30 | 2020-05-26 | 게노마티카 인코포레이티드 | 1,3-부탄다이올 생산 유기체 |
BRPI1013505A2 (pt) | 2009-04-30 | 2018-02-14 | Genomatica Inc | organismos para a produção de isopropanol, n-butanol, e isobutanol |
BRPI1011227A8 (pt) | 2009-05-07 | 2019-02-26 | Genomatica Inc | microorganismos e métodos para a biossíntese de adipato, hexametilenodiamina e ácido 6-aminocapróico. |
BRPI1012877A2 (pt) * | 2009-05-15 | 2016-04-05 | Genomatica Inc | organismo para produção de ciclohexanona |
US8212093B2 (en) * | 2009-05-19 | 2012-07-03 | Coskata, Inc. | Olefin production from syngas by an integrated biological conversion process |
JP2012529889A (ja) | 2009-06-10 | 2012-11-29 | ゲノマチカ, インク. | Mek及び2−ブタノールの炭素効率のよい生合成のための微生物及び方法 |
ES2827845T3 (es) * | 2009-07-02 | 2021-05-24 | Lanzatech New Zealand Ltd | Proceso de producción de alcohol |
CA2803091C (en) | 2009-07-27 | 2018-05-22 | The University Of Wyoming Research Corporation D/B/A/ Western Research Institute | Biological clean fuel processing systems and methods |
EP3190174A1 (en) | 2009-08-05 | 2017-07-12 | Genomatica, Inc. | Semi-synthetic terephthalic acid via microorganisms that produce muconic acid |
US20110053204A1 (en) * | 2009-09-01 | 2011-03-03 | EcoSphere Energy, LLC. | Use of an adaptive chemically reactive plasma for production of microbial derived materials |
NZ598279A (en) * | 2009-09-06 | 2012-12-21 | Lanzatech New Zealand Ltd | Improved fermentation of gaseous substrates |
WO2011031897A1 (en) | 2009-09-09 | 2011-03-17 | Genomatica, Inc. | Microorganisms and methods for the co-production of isopropanol with primary alcohols, diols and acids |
US8759047B2 (en) * | 2009-09-16 | 2014-06-24 | Coskata, Inc. | Process for fermentation of syngas from indirect gasification |
JP2013506717A (ja) * | 2009-10-06 | 2013-02-28 | ジーヴォ,インコーポレイテッド | 再生可能なイソブタノールをp−キシレンに選択的に変換するための総合プロセス |
CA2777459A1 (en) | 2009-10-13 | 2011-04-21 | Genomatica, Inc. | Microorganisms for the production of 1,4-butanediol, 4-hydroxybutanal, 4-hydroxybutyryl-coa, putrescine and related compounds, and methods related thereto |
EP2491125A4 (en) | 2009-10-23 | 2014-04-23 | Genomatica Inc | MICROORGANISMS FOR ANILINE PRODUCTION |
US8303849B2 (en) * | 2009-10-27 | 2012-11-06 | Coskata, Inc. | HCN removal from syngas using chemical and biological treatment |
US7927513B1 (en) | 2009-10-27 | 2011-04-19 | Coskata, Inc. | Method of treating a hot syngas stream for conversion to chemical products by removing ammonia and COS |
US8597934B2 (en) * | 2009-10-30 | 2013-12-03 | Coskata, Inc. | Process for controlling sulfur in a fermentation syngas feed stream |
JP5956927B2 (ja) * | 2009-11-06 | 2016-07-27 | キベルディ インコーポレーテッドKiverdi, Inc. | 二酸化炭素および/または他の無機炭素源の有機化合物への化学合成固定のために化学合成独立栄養微生物を利用する生物学的および化学的プロセス、および付加的有用生成物の産出 |
US9290734B2 (en) | 2013-03-15 | 2016-03-22 | Richard Allen Kohn | Process and composition for production of organic products |
US20110136211A1 (en) * | 2009-12-08 | 2011-06-09 | Qi Zhong | Mist or Spray Microorganism Cultivation and Related Methods |
JP2013513384A (ja) | 2009-12-10 | 2013-04-22 | ジェノマティカ・インコーポレイテッド | 合成ガスまたは他のガス状の炭素源およびメタノールを1,3−ブタンジオールへ変換するための方法および生物 |
US8354257B2 (en) * | 2010-01-08 | 2013-01-15 | Coskata, Inc. | Integrated process for production of alcohol from syngas and removal of CO2 |
KR101317447B1 (ko) | 2010-01-14 | 2013-10-11 | 란자테크 뉴질랜드 리미티드 | 알코올 제조 방법 |
US20110177564A1 (en) | 2010-01-15 | 2011-07-21 | Massachusetts Institute Of Technology | Bioprocess and microbe engineering for total carbon utilization in biofuel production |
BR112012018620A2 (pt) | 2010-01-29 | 2015-09-15 | Genomatica Inc | organismo microbiano de ocorrência não-natural, método para produzir (2-hidroxi-3-metil-4-oxobutoxi) fosfonato, método para produção de p-toluato, método para produzir tereftalato |
US8637286B2 (en) | 2010-02-23 | 2014-01-28 | Genomatica, Inc. | Methods for increasing product yields |
US8048661B2 (en) | 2010-02-23 | 2011-11-01 | Genomatica, Inc. | Microbial organisms comprising exogenous nucleic acids encoding reductive TCA pathway enzymes |
CN102791869B (zh) | 2010-03-10 | 2015-08-19 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 通过发酵的酸产生 |
US8143037B2 (en) * | 2010-03-19 | 2012-03-27 | Coskata, Inc. | Ethanologenic Clostridium species, Clostridium coskatii |
US20110236919A1 (en) * | 2010-03-24 | 2011-09-29 | James Allen Zahn | Process for restricting carbon monoxide dissolution in a syngas fermentation |
US8580152B2 (en) | 2010-04-13 | 2013-11-12 | Ineos Usa Llc | Methods for gasification of carbonaceous materials |
US8585789B2 (en) | 2010-04-13 | 2013-11-19 | Ineos Usa Llc | Methods for gasification of carbonaceous materials |
US8999021B2 (en) | 2010-04-13 | 2015-04-07 | Ineos Usa Llc | Methods for gasification of carbonaceous materials |
MY165658A (en) * | 2010-04-27 | 2018-04-18 | Kiverdi Inc | Use of oxyhydrogen microorganisms for non-photosynthetic carbon capture and conversion of inorganic and/or c1 carbon sources into useful organic compounds |
US9023636B2 (en) | 2010-04-30 | 2015-05-05 | Genomatica, Inc. | Microorganisms and methods for the biosynthesis of propylene |
CN103038353A (zh) * | 2010-05-04 | 2013-04-10 | 新西兰郎泽科技公司 | 改良的废气发酵 |
BR112012028049A2 (pt) | 2010-05-05 | 2015-11-24 | Genomatica Inc | organismo microbiano de ocorrência não natural e método para produzir butadieno, meio de cultura, butadieno biossintetizado, composição, produto químico orgânico, polímero e uso de butadieno biossintetizado |
WO2011140560A1 (en) | 2010-05-07 | 2011-11-10 | Gevo, Inc. | Renewable jet fuel blendstock from isobutanol |
AU2011255662B2 (en) * | 2010-05-21 | 2014-12-11 | Lanzatech Nz, Inc. | Alcohol production process |
US8535919B2 (en) | 2010-06-30 | 2013-09-17 | Coskata, Inc. | Process for converting gas stream comprising CO, CO2 and H2 to liquid products by fermentation |
US8795995B2 (en) | 2010-06-30 | 2014-08-05 | Coskata, Inc. | Method for injecting a feed gas stream into a vertically extended column of liquid |
AU2011286199A1 (en) | 2010-07-26 | 2013-02-14 | Genomatica, Inc. | Microorganisms and methods for the biosynthesis of aromatics, 2,4-pentadienoate and 1,3-butadiene |
CN103415612B (zh) * | 2010-07-28 | 2016-01-20 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 新细菌及其使用方法 |
EP2609206A4 (en) * | 2010-08-26 | 2014-07-09 | Lanzatech New Zealand Ltd | PROCESS FOR THE PRODUCTION OF ETHANOL AND ETHYLENE BY FERMENTATION |
EP2450449A1 (en) | 2010-11-09 | 2012-05-09 | Ineos Commercial Services UK Limited | Process and apparatus for the production of alcohols |
US20110236941A1 (en) * | 2010-10-22 | 2011-09-29 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganism and methods of production thereof |
US20130316411A1 (en) * | 2010-10-22 | 2013-11-28 | Michael Anthony Schultz | Methods and Systems for the Production of Alcohols and/or Acids |
CN103270163A (zh) | 2010-10-22 | 2013-08-28 | 新西兰郎泽科技公司 | 产生烃产物的方法和*** |
US20130203143A1 (en) * | 2010-10-29 | 2013-08-08 | Lanza Tech New Zealand Limited | Methods and Systems for the Production of Hydrocarbon Products |
EP2450450A1 (en) | 2010-11-09 | 2012-05-09 | Ineos Commercial Services UK Limited | Process and apparatus for producing ethylene via preparation of syngas |
KR101950042B1 (ko) * | 2010-12-03 | 2019-02-19 | 이네오스 바이오 에스에이 | 비 co-흡수 조절을 포함하는 발효 방법 |
WO2012074545A1 (en) | 2010-12-03 | 2012-06-07 | Ineos Bio Sa | Method of operation of fermentation of gaseous substrate comprising hydrogen |
RU2566565C2 (ru) * | 2010-12-03 | 2015-10-27 | Инеос Био Са | Способ ферментации газообразного субстрата, содержащего монооксид углерода и водород |
CA2820941C (en) | 2010-12-20 | 2018-03-06 | Lanzatech New Zealand Limited | A fermentation method |
US9410130B2 (en) | 2011-02-25 | 2016-08-09 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganisms and uses therefor |
BR112013021524A2 (pt) | 2011-02-25 | 2017-06-13 | Lanzatech New Zealand Ltd | micro-organismos recombinantes e usos dos mesmos |
TWI537389B (zh) * | 2011-03-31 | 2016-06-11 | 藍瑟科技紐西蘭有限公司 | 用於控制丁二醇生產之發酵方法 |
US9028571B2 (en) | 2011-04-06 | 2015-05-12 | Ineos Bio Sa | Syngas cooler system and method of operation |
EP2707475B1 (en) * | 2011-05-09 | 2015-09-30 | Amyris, Inc. | Production of acetyl-coenzyme a derived compounds |
WO2013000088A1 (en) | 2011-06-28 | 2013-01-03 | Iogen Energy Corporation | Method for reducing water usage in a cellulosic conversion process |
US20130005010A1 (en) | 2011-06-30 | 2013-01-03 | Peter Simpson Bell | Bioreactor for syngas fermentation |
US8580219B2 (en) | 2011-07-25 | 2013-11-12 | Coskata, Inc. | Ammonium recovery methods |
US8486359B2 (en) | 2011-07-25 | 2013-07-16 | Coskata, Inc. | Ammonium recovery from waste water using CO2 acidified absorption water |
AU2012305021B2 (en) | 2011-09-08 | 2016-06-09 | Lanzatech Nz, Inc. | A fermentation process |
US8551746B2 (en) | 2011-09-21 | 2013-10-08 | Coskata, Inc. | Method for controlling undesirable byproducts formation caused by contaminating organisms in the production of ethanol from syngas |
US20160010119A1 (en) * | 2014-07-09 | 2016-01-14 | Coskata, Inc. | Processes for the acidic, anaerobic conversion of hydrogen and carbon oxides to oxygenated organic compound |
US20150132810A1 (en) * | 2011-09-23 | 2015-05-14 | Coskata, Inc. | Integrated processes for anaerobically bioconverting hydrogen and carbon oxides to oxygenated organic compounds |
US8936927B2 (en) * | 2011-09-23 | 2015-01-20 | Coskata, Inc. | Processes for starting up deep tank anaerobic fermentation reactors for making oxygenated organic compound from carbon monoxide and hydrogen |
US8771999B2 (en) | 2011-09-23 | 2014-07-08 | Coskata, Inc. | Low energy, high substrate efficiency, anaerobic, deep, bubble column fermentation processes |
US8980597B2 (en) * | 2011-09-23 | 2015-03-17 | Coskata, Inc. | From carbon monoxide and hydrogen anaerobic fermentation processing using a pre-reactor/deep tank reactor system |
KR101331119B1 (ko) * | 2011-11-21 | 2013-11-19 | 명지대학교 산학협력단 | 신규한 클로스트리디움속 미생물 및 이를 이용한 에탄올 생산 방법 |
US8895274B2 (en) | 2011-11-28 | 2014-11-25 | Coskata, Inc. | Processes for the conversion of biomass to oxygenated organic compound, apparatus therefor and compositions produced thereby |
US20130149693A1 (en) * | 2011-12-12 | 2013-06-13 | Ineos Bio Sa | Management of ethanol concentration during syngas fermentation |
US9157058B2 (en) | 2011-12-14 | 2015-10-13 | Kiverdi, Inc. | Method and apparatus for growing microbial cultures that require gaseous electron donors, electron acceptors, carbon sources, or other nutrients |
US8609380B2 (en) | 2012-01-06 | 2013-12-17 | Coskata, Inc. | Sulfide generation process and system for syngas fermentation |
CA2862554C (en) * | 2012-02-09 | 2015-08-18 | Lanzatech New Zealand Limited | Improved carbon capture in fermentation |
PL222528B1 (pl) * | 2012-03-30 | 2016-08-31 | Inst Biotechnologii Przemysłu Rolno Spożywczego Im Prof Wacława Dąbrowskiego | Sposób uruchomienia fermentacji octowej w warunkach przemysłowych |
US8735115B2 (en) | 2012-03-30 | 2014-05-27 | Lanzatech New Zealand Limited | Method for controlling the sulphur concentration in a fermentation method |
NZ700609A (en) | 2012-04-05 | 2016-07-29 | Lanzatech New Zealand Ltd | Enzyme-altered metabolite activity |
US10100336B2 (en) * | 2012-05-22 | 2018-10-16 | Ineos Bio S.A. | Syngas fermentation process and medium |
US9193947B2 (en) | 2012-05-22 | 2015-11-24 | Ineos Bio Sa | Process for culturing microorganisms on a selected substrate |
US10100338B2 (en) * | 2012-05-22 | 2018-10-16 | Ineos Bio S.A. | Method of operation of a syngas fermentation process |
KR102098843B1 (ko) | 2012-05-23 | 2020-04-09 | 란자테크 뉴질랜드 리미티드 | 발효 및 모사 이동층 공정 |
US20130316364A1 (en) | 2012-05-23 | 2013-11-28 | Lanzatech New Zealand Limited | Selection Method and Recombinant Microorganisms and uses Therefor |
CA2874832C (en) | 2012-05-30 | 2016-02-02 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganisms and uses therefor |
US20130323820A1 (en) | 2012-06-01 | 2013-12-05 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganisms and uses therefor |
EP2859089B1 (en) | 2012-06-08 | 2017-03-22 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganisms and uses therefor |
US9347076B2 (en) | 2012-06-21 | 2016-05-24 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganisms that make biodiesel |
US9212375B2 (en) | 2012-07-11 | 2015-12-15 | Coskata, Llc | Method for producing C2 oxygenates by fermentation using high oxidation state sulfur |
WO2014025992A1 (en) * | 2012-08-08 | 2014-02-13 | Cornell University | Methods for production of alcohols from carboxylic acids via fermentation |
CN105051179B (zh) | 2012-08-28 | 2018-06-15 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 重组微生物和其用途 |
US10233478B2 (en) | 2012-09-19 | 2019-03-19 | Ineos Bio Sa | Process for reducing CO2 emissions and increasing alcohol productivity in syngas fermentation |
CN112899312A (zh) * | 2012-11-12 | 2021-06-04 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 生物质液化到气体发酵 |
EP4234706A3 (en) | 2012-11-19 | 2023-11-15 | LanzaTech NZ, Inc. | A fermentation process |
WO2014085756A1 (en) | 2012-11-30 | 2014-06-05 | Lanzatech New Zealand Limited | A fermentation process |
KR102004584B1 (ko) * | 2012-12-05 | 2019-07-26 | 란자테크 뉴질랜드 리미티드 | 발효 공정 |
US9469860B2 (en) * | 2013-01-18 | 2016-10-18 | Synata Bio, Inc. | Method for production of n-butanol from syngas using syntrophic co-cultures of anaerobic microorganisms |
US9327251B2 (en) | 2013-01-29 | 2016-05-03 | Lanzatech New Zealand Limited | System and method for improved gas dissolution |
AU2014212462B2 (en) | 2013-01-30 | 2019-01-31 | Lanzatech Nz, Inc. | Recombinant microorganisms comprising NADPH dependent enzymes and methods of production thereof |
US9528130B2 (en) * | 2013-02-08 | 2016-12-27 | Synata Bio, Inc. | Processes and control systems for high efficiency anaerobic conversion of hydrogen and carbon oxides to alcohols |
US9365870B2 (en) * | 2013-02-08 | 2016-06-14 | Synata Bio, Inc. | Integrated processes for anaerobic conversion of hydrogen and carbon oxides to alcohol |
US10100337B2 (en) | 2013-02-14 | 2018-10-16 | Ineos Bio Sa | Process for fermenting co-containing gaseous substrates |
US10557155B2 (en) | 2013-03-14 | 2020-02-11 | The University Of Wyoming Research Corporation | Methods and systems for biological coal-to-biofuels and bioproducts |
JP2016513977A (ja) | 2013-03-14 | 2016-05-19 | ザ ユニバーシティ オブ ワイオミング リサーチ コーポレーション | 化学合成独立栄養細菌を利用した二酸化炭素の変換システムおよび方法 |
EP2970868A4 (en) | 2013-03-15 | 2016-09-28 | Lanzatech New Zealand Ltd | SYSTEM AND METHOD FOR CONTROLLING METABOLITE PRODUCTION IN MICROBIAL FERMENTATION |
JP2016520325A (ja) | 2013-06-05 | 2016-07-14 | ランザテク・ニュージーランド・リミテッド | 発酵経路を通る流束の増加を示す、組換え微生物 |
US9885063B2 (en) * | 2013-06-10 | 2018-02-06 | Ineos Bio Sa | Process for fermenting co-containing gaseous substrates in a low phosphate medium effective for reducing water usage |
US9850503B2 (en) | 2013-06-10 | 2017-12-26 | Ineos Bio Sa | Control of conductivity in anaerobic fermentation |
US9340802B2 (en) | 2013-06-20 | 2016-05-17 | Lanzatech New Zealand Limited | Fermentation of gaseous substrates |
EA031512B1 (ru) | 2013-07-04 | 2019-01-31 | Ланцатек Нью Зилэнд Лимитед | Многореакторная система и способ непрерывной ферментации газов |
US10760101B2 (en) * | 2013-07-22 | 2020-09-01 | Ineos Bio Sa | Process and medium for reducing selenium levels in biomass from fermentation of co-containing gaseous substrates |
US9617509B2 (en) | 2013-07-29 | 2017-04-11 | Lanzatech New Zealand Limited | Fermentation of gaseous substrates |
CN103409469B (zh) * | 2013-08-16 | 2015-05-20 | 农业部沼气科学研究所 | 促进纤维素厌氧降解产甲烷的方法 |
BR102013022434B8 (pt) * | 2013-09-02 | 2022-06-21 | Advel Tecnologia E Comercio Eireli | Processo para fermentação microbiana de substratos açucarados |
US20150075062A1 (en) | 2013-09-13 | 2015-03-19 | Ineos Bio Sa | Alcohol compositions and a process for their production |
EA033071B1 (ru) | 2013-09-22 | 2019-08-30 | Ланцатек Нью Зилэнд Лимитед | Способ увеличения выхода продуктов из ацетолактата |
EA033669B1 (ru) * | 2013-10-17 | 2019-11-14 | Lanzatech New Zealand Ltd | Улучшенное улавливание углерода при ферментации |
EP3058077A4 (en) | 2013-10-18 | 2017-09-27 | Lanzatech New Zealand Limited | Microbial conversion of methane |
FR3012446B1 (fr) * | 2013-10-24 | 2017-05-26 | Commissariat Energie Atomique | Procede de production d'un produit organique a partir d'une charge de matiere carbonee mettant en oeuvre une gazeification suivie d'une fermentation du gaz de synthese. |
HUE051262T2 (hu) | 2014-01-28 | 2021-03-01 | Lanzatech New Zealand Ltd | Módszer rekombináns mirkoorganizmus elõállítására |
EP3099783A4 (en) | 2014-01-30 | 2017-09-20 | Lanzatech New Zealand Limited | Recombinant microorganisms and methods of use thereof |
US9701987B2 (en) * | 2014-05-21 | 2017-07-11 | Lanzatech New Zealand Limited | Fermentation process for the production and control of pyruvate-derived products |
JP6316119B2 (ja) * | 2014-06-30 | 2018-04-25 | 積水化学工業株式会社 | 嫌気性処理方法及び装置 |
US9617566B2 (en) * | 2014-07-11 | 2017-04-11 | Lanzatech New Zealand Limited | Control of bioreactor processes |
US10619173B2 (en) | 2014-07-22 | 2020-04-14 | Iogen Corporation | Process for using biogenic carbon dioxide derived from non-fossil organic material |
US10640793B2 (en) | 2014-07-22 | 2020-05-05 | Iogen Corporation | Process for using biogenic carbon dioxide derived from non-fossil organic material |
US9108894B1 (en) | 2014-07-22 | 2015-08-18 | Iogen Corporation | Process for using biogenic carbon dioxide derived from non-fossil organic material |
CA2957920A1 (en) | 2014-08-11 | 2016-02-18 | Butamax Advanced Biofuels Llc | Yeast preparations and methods of making the same |
ES2946783T3 (es) | 2014-10-22 | 2023-07-26 | Lanzatech Nz Inc | Unidad de pruebas de gas y método |
EP3209786B1 (en) | 2014-10-22 | 2023-03-29 | LanzaTech NZ, Inc. | Multi-stage bioreactor processes |
US10570427B2 (en) | 2014-10-31 | 2020-02-25 | Lanzatech New Zealand Limited | Fermentation process for the production of lipids |
WO2016077778A1 (en) * | 2014-11-13 | 2016-05-19 | The Board Of Regents For Oklahoma State University | Fermentation control for optimization of syngas utilization |
AU2015360786B2 (en) | 2014-12-08 | 2021-10-21 | Lanzatech Nz, Inc. | Recombinant microorganisms exhibiting increased flux through a fermentation pathway |
US11434509B2 (en) | 2014-12-08 | 2022-09-06 | Iogen Corporation | Process for using biogenic carbon dioxide derived from non-fossil organic material |
EP3037519A1 (en) * | 2014-12-22 | 2016-06-29 | Evonik Degussa GmbH | Fermentations of acetogenic bacteria with specific cysteine concentrations |
US9145300B1 (en) * | 2015-01-20 | 2015-09-29 | Iogen Corporation | Integrated hydrogen production process |
US9605286B2 (en) * | 2015-01-20 | 2017-03-28 | Iogen Corporation | Integrated hydrogen production process |
JP6518070B2 (ja) * | 2015-01-22 | 2019-05-22 | 積水化学工業株式会社 | エタノール合成方法及び装置 |
TWI739734B (zh) | 2015-02-23 | 2021-09-21 | 紐西蘭商藍瑟科技紐西蘭有限公司 | 用於將甲烷轉化為產物之重組產醋酸細菌 |
CN104694582A (zh) * | 2015-02-28 | 2015-06-10 | 江苏高科物流科技股份有限公司 | 厌氧微生物的发酵方法 |
CA2979782A1 (en) * | 2015-03-20 | 2016-09-29 | Sekisui Chemical Co., Ltd. | Method and apparatus for producing organic substances |
US10017789B2 (en) * | 2015-03-25 | 2018-07-10 | The Board Of Regents For Oklahoma State University | System and method for feedback control of gas supply for ethanol production via syngas fermentation using pH as a key control indicator |
CN105177058B (zh) * | 2015-08-27 | 2020-03-17 | 中国科学院天津工业生物技术研究所 | 一种调节厌氧食气微生物发酵产物中酸醇比例的方法 |
CN108603205B (zh) | 2016-02-04 | 2022-06-17 | 朗泽科技新西兰有限公司 | 具有内部分隔器的低压分离器及其用途 |
AU2017236795A1 (en) | 2016-03-19 | 2018-09-27 | Kiverdi, Inc. | Microorganisms and artificial ecosystems for the production of protein, food, and useful co-products from C1 substrates |
AU2017236342A1 (en) * | 2016-03-22 | 2019-09-12 | Shell Internationale Research Maatschappij B.V. | A process for preparing a paraffin product |
US10316336B2 (en) * | 2016-05-26 | 2019-06-11 | Api Intellectual Property Holdings, Llc | Systems and methods for continuously fermenting C5 and C6 saccharides |
FR3051799B1 (fr) | 2016-05-31 | 2018-06-15 | IFP Energies Nouvelles | Procede de production de btx par pyrolyse catalytique a partir de biomasse avec injection de composes oxygenes |
FR3051800B1 (fr) | 2016-05-31 | 2018-06-15 | IFP Energies Nouvelles | Procede de production de btx par pyrolyse catalytique a partir de biomasse sans recycle de composes oxygenes |
WO2017210296A1 (en) * | 2016-06-01 | 2017-12-07 | White Dog Labs, Inc. | Supplemented mixotrophic fermentation method |
CN110462050A (zh) * | 2016-12-22 | 2019-11-15 | 赛纳塔生物有限公司 | 使用离子载体以控制气态底物发酵中的污染的方法及*** |
EA201891926A1 (ru) | 2017-02-03 | 2019-04-30 | Киверди, Инк. | Микроорганизмы и искусственные экосистемы для производства белка, продуктов питания и полезных побочных продуктов из субстратов c1 |
JP6682172B2 (ja) | 2017-03-03 | 2020-04-15 | 富士フイルム株式会社 | 細胞培養装置及び細胞培養方法 |
KR102572451B1 (ko) * | 2017-06-13 | 2023-08-29 | 란자테크, 인크. | 생물학적 전환 및 생성물 회수 공정의 개선 |
WO2019006301A1 (en) | 2017-06-30 | 2019-01-03 | Massachusetts Institute Of Technology | REGULATION OF METABOLISM BY CO-SUPPLYING SUBSTRATE |
CA3074292C (en) * | 2017-09-08 | 2021-08-24 | Lanzatech, Inc. | Processes and systems for metabolite production using hydrogen rich c1-containing substrates |
FR3075819A1 (fr) * | 2017-12-22 | 2019-06-28 | Compagnie Generale Des Etablissements Michelin | Nouvelles souches de bacteries acetobacterium sp |
RU2663723C1 (ru) * | 2018-02-08 | 2018-08-08 | Общество с ограниченной ответственностью "АГ ОРГАНИКС" | Способ повышения эффективности переработки зерновой бражки в производстве ректификованного спирта |
US20190352676A1 (en) | 2018-05-21 | 2019-11-21 | Jupeng Bio, Inc. | Process for Obtaining Protein-Rich Nutrient Supplements from Bacterial Fermentation Process |
AU2019319672A1 (en) | 2018-08-08 | 2021-01-14 | Jupeng Bio (Hk) Limited | Carbon monoxide and carbon dioxide bioconversion process |
WO2020129342A1 (ja) * | 2018-12-18 | 2020-06-25 | 積水化学工業株式会社 | 有機物質生成システム |
DE102019124650A1 (de) * | 2019-09-13 | 2021-03-18 | Karlsruher Institut für Technologie | Vorrichtung und Verfahren zur kontinuierlichen Fermentation von Synthesegas |
BR112022014752A2 (pt) | 2020-01-29 | 2022-10-11 | Jupeng Bio Hk Ltd | Processo para controlar proporções de ácidos orgânicos em processo de bioconversão de dióxido de carbono |
FR3114596B1 (fr) | 2020-09-29 | 2023-11-24 | Ifp Energies Now | Production d’aromatiques par conversion de gaz à l'eau inversée, fermentation et recyclage vers pyrolyse. |
FR3114595B1 (fr) | 2020-09-29 | 2023-11-24 | Ifp Energies Now | Production d’aromatiques par conversion de gaz à l'eau inversée, fermentation et aromatisation. |
FR3114594B1 (fr) | 2020-09-29 | 2023-11-10 | Ifp Energies Now | Production d’aromatiques et d'éthanol par pyrolyse, conversion de gaz à l'eau inversée, et fermentation. |
WO2022125362A1 (en) | 2020-12-08 | 2022-06-16 | Jupeng Bio (Hk) Limited | Process and composition for controlling ethanol production |
US11788092B2 (en) | 2021-02-08 | 2023-10-17 | Lanzatech, Inc. | Recombinant microorganisms and uses therefor |
US20240199985A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-06-20 | Conopco, Inc., D/B/A Unilever | Composition |
EP4323481A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-02-21 | Unilever IP Holdings B.V. | Solid composition |
CN117561321A (zh) | 2021-04-15 | 2024-02-13 | 联合利华知识产权控股有限公司 | 组合物 |
BR112023021000A2 (pt) | 2021-04-15 | 2023-12-12 | Unilever Ip Holdings B V | Composição sólida em dose unitária para lavagem de roupas, método de preparação de uma composição sólida em dose unitária para lavagem de roupas e uso de uma composição sólida para lavagem de roupas |
EP4323492A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-02-21 | Unilever IP Holdings B.V. | Composition |
EP4323493A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-02-21 | Unilever IP Holdings B.V. | Composition |
EP4323483A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-02-21 | Unilever IP Holdings B.V. | A hard surface cleaning composition |
EP4323482A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-02-21 | Unilever IP Holdings B.V. | Composition |
FR3126993A1 (fr) | 2021-09-10 | 2023-03-17 | IFP Energies Nouvelles | Production d'éthanol par combustion en boucle chimique, conversion de gaz à l'eau inversée, et fermentation. |
FR3126992A1 (fr) | 2021-09-10 | 2023-03-17 | IFP Energies Nouvelles | Production d'éthanol par oxycombustion, conversion de gaz à l'eau inversée, et fermentation. |
CA3235665A1 (en) | 2021-10-29 | 2023-05-04 | Synata Bio, Inc. | Method of dewatering |
CN218561429U (zh) | 2021-11-03 | 2023-03-03 | 朗泽科技有限公司 | 一种用于将气泡注入液体的喷射器*** |
FR3133196A1 (fr) | 2022-03-07 | 2023-09-08 | Totalenergies One Tech | Procede de fabrication d’un carbureacteur a partir de charges d’origine renouvelable |
FR3135264A1 (fr) | 2022-05-06 | 2023-11-10 | Totalenergies Onetech | Procédé de fabrication d’un carburéacteur, carburéacteur et installation associés |
FR3135265A1 (fr) | 2022-05-06 | 2023-11-10 | Totalenergies Onetech | Procédé d’obtention d’hydrocarbures, et installation associée |
FR3135263A1 (fr) | 2022-05-06 | 2023-11-10 | Totalenergies Onetech | Procédé de fabrication d’un carburéacteur comprenant une étape de conversion d’un flux d’alcool dans un lit fluidisé, carburéacteur et installation associés |
FR3135986A1 (fr) | 2022-05-30 | 2023-12-01 | Totalenergies Onetech | Procede de fabrication de fluides hydrocarbones a partir de charges d’origine renouvelable |
Family Cites Families (24)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3976442A (en) * | 1974-12-18 | 1976-08-24 | Texaco Inc. | Synthesis gas from gaseous CO2 -solid carbonaceous fuel feeds |
US4017271A (en) * | 1975-06-19 | 1977-04-12 | Rockwell International Corporation | Process for production of synthesis gas |
CA1177003A (en) * | 1980-07-08 | 1984-10-30 | Peter S.J. Cheetham | Bacterial ethanol production |
US4351905A (en) * | 1980-12-15 | 1982-09-28 | Clyde Robert A | Horizontal fermenter |
US4400470A (en) * | 1981-01-14 | 1983-08-23 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Use of co-cultures in the production of ethanol by the fermentation of biomass |
US4737459A (en) * | 1984-09-18 | 1988-04-12 | Michigan Biotechnology Institute | Regulation and enhancement of enzyme production |
US4654123A (en) * | 1985-07-08 | 1987-03-31 | Lloyd Berg | Dehydration of ethanol by extractive distillation |
SE450897B (sv) * | 1986-01-31 | 1987-08-10 | Nobel Chematur Ab | Forfarande for framstellning av etanol genom melassjesning |
US5182199A (en) * | 1987-05-27 | 1993-01-26 | Hartley Brian S | Thermophilic ethanol production in a two-stage closed system |
US5173429A (en) * | 1990-11-09 | 1992-12-22 | The Board Of Trustees Of The University Of Arkansas | Clostridiumm ljungdahlii, an anaerobic ethanol and acetate producing microorganism |
US5821111A (en) * | 1994-03-31 | 1998-10-13 | Bioengineering Resources, Inc. | Bioconversion of waste biomass to useful products |
US5807722A (en) * | 1992-10-30 | 1998-09-15 | Bioengineering Resources, Inc. | Biological production of acetic acid from waste gases with Clostridium ljungdahlii |
US6136577A (en) * | 1992-10-30 | 2000-10-24 | Bioengineering Resources, Inc. | Biological production of ethanol from waste gases with Clostridium ljungdahlii |
US5593886A (en) * | 1992-10-30 | 1997-01-14 | Gaddy; James L. | Clostridium stain which produces acetic acid from waste gases |
DE69638265D1 (de) * | 1996-07-01 | 2010-11-11 | Emmaus Foundation Inc | BIOLOGISCHE HESTELLUNG VON ESSIGSäURE AUS ABGASEN |
US5930769A (en) * | 1996-10-07 | 1999-07-27 | Rose; Andrea | System and method for fashion shopping |
US6043392A (en) * | 1997-06-30 | 2000-03-28 | Texas A&M University System | Method for conversion of biomass to chemicals and fuels |
KR100365131B1 (ko) * | 1998-12-31 | 2003-03-28 | 바이오 엔지니어링 리소스 인코포레이티드 | 폐가스로부터의아세트산의생물학적제조방법 |
WO2000068407A1 (en) * | 1999-05-07 | 2000-11-16 | Bioengineering Resources, Inc. | Clostridium strains which produce ethanol from substrate-containing gases |
US7174306B1 (en) * | 1999-12-02 | 2007-02-06 | Haseltine Systems, Inc. | Providing electronic access to consumer-customized nonverbal information regarding products and services |
US6901379B1 (en) * | 2000-07-07 | 2005-05-31 | 4-D Networks, Inc. | Online shopping with virtual modeling and peer review |
UA76117C2 (en) * | 2000-07-25 | 2006-07-17 | Emmaus Foundation Inc | A process for a stable producing ethanol |
US7194428B2 (en) * | 2001-03-02 | 2007-03-20 | Accenture Global Services Gmbh | Online wardrobe |
AU2003229445A1 (en) * | 2002-05-20 | 2003-12-02 | Woodland Chemical Systems Inc. | A process for producing ethanol from organic material |
-
2001
- 2001-07-23 UA UA2003021486A patent/UA76117C2/uk unknown
- 2001-07-23 IL IL15387601A patent/IL153876A0/xx active IP Right Grant
- 2001-07-23 CN CNB01813372XA patent/CN1223679C/zh not_active Expired - Lifetime
- 2001-07-23 NZ NZ523484A patent/NZ523484A/en not_active IP Right Cessation
- 2001-07-23 ES ES01954884T patent/ES2267794T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2001-07-23 JP JP2002513921A patent/JP4883872B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2001-07-23 US US10/311,655 patent/US7285402B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-07-23 WO PCT/US2001/023149 patent/WO2002008438A2/en active Application Filing
- 2001-07-23 PL PL368906A patent/PL205622B1/pl unknown
- 2001-07-23 PT PT01954884T patent/PT1303629E/pt unknown
- 2001-07-23 CA CA2416500A patent/CA2416500C/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-07-23 EA EA200300158A patent/EA006106B1/ru not_active IP Right Cessation
- 2001-07-23 EP EP01954884A patent/EP1303629B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-07-23 AT AT01954884T patent/ATE332390T1/de active
- 2001-07-23 MX MXPA03000711A patent/MXPA03000711A/es active IP Right Grant
- 2001-07-23 DK DK01954884T patent/DK1303629T3/da active
- 2001-07-23 HU HU0301388A patent/HU226975B1/hu not_active IP Right Cessation
- 2001-07-23 DE DE60121335T patent/DE60121335T2/de not_active Expired - Lifetime
- 2001-07-23 AU AU7710301A patent/AU7710301A/xx active Pending
- 2001-07-23 BR BRPI0112251-7A patent/BR0112251B1/pt not_active IP Right Cessation
- 2001-07-23 KR KR1020037001116A patent/KR100879577B1/ko active IP Right Grant
-
2003
- 2003-01-09 IL IL153876A patent/IL153876A/en not_active IP Right Cessation
- 2003-01-09 EC EC2003004418A patent/ECSP034418A/es unknown
- 2003-01-13 ZA ZA200300325A patent/ZA200300325B/en unknown
- 2003-01-24 CR CR6891A patent/CR6891A/es unknown
-
2006
- 2006-09-28 CY CY20061101412T patent/CY1106177T1/el unknown
-
2007
- 2007-10-22 US US11/876,312 patent/US20080213848A1/en not_active Abandoned
-
2008
- 2008-08-25 IL IL193679A patent/IL193679A0/en unknown
-
2011
- 2011-12-07 US US13/313,136 patent/US8642301B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2011-12-08 US US13/314,862 patent/US8647851B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2011-12-12 US US13/316,963 patent/US8642302B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2011-12-13 US US13/323,913 patent/US20120122173A1/en not_active Abandoned
- 2011-12-14 US US13/325,149 patent/US8574879B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2011-12-19 US US13/330,442 patent/US20120088282A1/en not_active Abandoned
- 2011-12-20 US US13/331,192 patent/US20120088284A1/en not_active Abandoned
- 2011-12-20 US US13/331,182 patent/US20120088283A1/en not_active Abandoned
- 2011-12-20 US US13/331,156 patent/US20120115198A1/en not_active Abandoned
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
HU226975B1 (en) | Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermantation | |
JP5777889B2 (ja) | 種々の基質が低濃度であるか又は存在しない合成ガス発酵プロセスにおいて微生物培養を持続させるための方法 | |
US9034618B2 (en) | Method for sustaining microorganism culture in syngas fermentation process in decreased concentration or absence of various substrates | |
BRPI0909334B1 (pt) | método para a conversão de ácido em álcool correspondente | |
RU2644239C2 (ru) | Способ продуцирования с2-оксигенатов путем ферментации с использованием серы с высокой степенью окисления | |
AU2001277103B2 (en) | Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermentation | |
AU2001277103A1 (en) | Methods for increasing the production of ethanol from microbial fermentation |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
TH4A | Erratum | ||
MM4A | Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees |