HU219771B - Dictyostelium dipeptidil-aminopeptidáz - Google Patents

Dictyostelium dipeptidil-aminopeptidáz Download PDF

Info

Publication number
HU219771B
HU219771B HU9302773A HU9302773A HU219771B HU 219771 B HU219771 B HU 219771B HU 9302773 A HU9302773 A HU 9302773A HU 9302773 A HU9302773 A HU 9302773A HU 219771 B HU219771 B HU 219771B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
ddap
dap
enzyme
arg
met
Prior art date
Application number
HU9302773A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT70299A (en
HU9302773D0 (en
Inventor
Paul Robert Atkinson
Matthew Dale Hilton
Peter Karl Lambooy
Original Assignee
Eli Lilly And Co.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Eli Lilly And Co. filed Critical Eli Lilly And Co.
Publication of HU9302773D0 publication Critical patent/HU9302773D0/hu
Publication of HUT70299A publication Critical patent/HUT70299A/hu
Publication of HU219771B publication Critical patent/HU219771B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/485Exopeptidases (3.4.11-3.4.19)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/06Preparation of peptides or proteins produced by the hydrolysis of a peptide bond, e.g. hydrolysate products
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/18Ion-exchange chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/20Partition-, reverse-phase or hydrophobic interaction chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/36Extraction; Separation; Purification by a combination of two or more processes of different types
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/58Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from fungi
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/11Aminopeptidases (3.4.11)
    • C12Y304/11005Prolyl aminopeptidase (3.4.11.5)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/815Enzyme separation or purification by sorption

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Escalators And Moving Walkways (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Detergent Compositions (AREA)
  • Polyamides (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Polyesters Or Polycarbonates (AREA)
  • Purification Treatments By Anaerobic Or Anaerobic And Aerobic Bacteria Or Animals (AREA)
  • Noodles (AREA)
  • Chemical Or Physical Treatment Of Fibers (AREA)
  • Fats And Perfumes (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

A találmány tárgya Dictyostelium discoideum tenyészetéből nyertdipeptidil-aminopeptidáz, illetve eljárás ezen enzimnek a tenyészetbőltörténő kinyerésére, amelynek során a tenyészetből először elkülönítika sejtmentes levet, majd azt különböző kromatográfiás eljárásoknakvetik alá. ŕ

Description

A találmány tárgya a Dictyostelium discoideum nyálkagombából nyert dipeptidil-aminopeptidáz-enzim, mely felhasználható a biológiai vegyületek rekombináns módszerekkel történő előállítási eljárásaikban.
A Dictyostelium discoideum a nyálkagombáknak, pontosabban sejtes nyálkagombáknak nevezett egyszerű eukariotikus mikroorganizmusoknak a csoportjába tartozik. A név a mikroorganizmus makroszkópos megjelenésének két, egymástól élesen elváló állapotából származik. Aktív növekedési szakaszában a D. discoideum egyetlen, amőbához hasonló sejtként növekszik. Ebben az életszakaszában nincs sejtfala, ezért a felületet bevonó vékony filmként (vagy nyálkaként) jelenik meg. Szilárd közegen való elégtelen táplálkozás következtében az egyes sejtek telepet alkotnak. A telep megjelenésében egy soksejtű szervezethez hasonló felépítettséget mutat, amennyiben egy csupasz csigához hasonló alakban mászik, majd a testtájai differenciálódnak; a hátsó sejtek alkotják a „csiga” talpát, az első sejtek egy nyelet és a kettő közöttiek a termőtestet. A szervezet természetes körülmények között a talaj és a trágya felszínén található. A vad típusú, amőbaszerű nyálkagomba táplálékát kizárólag teljes baktériumok bekebelezésével (fagocitózissal) szerzi meg, ezért néha „ragadozónak” nevezik. Elkülönítettük a D. discoideum olyan steril mutánsait, melyek képesek a velük együtt élő „tápbaktériumok” nélkül is növekedni, vagyis folyékony táptalajban. A találmány tárgya a D. discoideumból kinyert új dipeptidil-aminopeptidáz.
A dipeptidil-aminopeptidázok (DAP) olyan enzimek, melyek a peptidek és proteinek aminoterminális végén az utolsó előtti peptidkötést hidrolizálják, tehát egy dipeptidet lehasítva, amennyiben az aminoterminális vég nem védett. Jelenleg a dipeptidil-aminopeptidázok négy csoportját ismerjük (DAP-I, DAP-II, DAP-III és DAP-IV), melyek fizikai tulajdonságaikban és a különféle aminoterminális peptidszekvenciákat eltérően hidrolizáló képességében különböznek egymástól. A DAP-I egy viszonylag nemspecifikus DAP, minthogy sokféle dipeptidváltozatot képes lehasítani a peptidek és proteinek nem blokkolt aminoterminális végéről. A DAP-I nem, vagy csak gyenge aktivitást mutat, ha a lehasítandó dipeptid X-Pro, Arg-X vagy Lys-X (ahol az X bármilyen aminosav lehet) összetételű. A DAP-II különösen jól hasítja le az Arg-X vagy Lys-X dipeptidet, kevésbé az X-Pro dipeptidet. A DAP-II lényegesen gyengébb hasítóaktivitást mutat más összetételű aminoterminális dipeptidek esetében. A DAP-ΠΙ lehasítja az Arg-Arg és Lys-Lys aminoterminális dipeptideket. A DAP-IV legerősebb hasítóaktivitását az X-Pro dipeptidszekvenciánál mutatja. A DAP-enzimek, különösen a DAP-I és a DAP-IV felhasználhatók proteinek előállításánál. A jelen találmány olyan új, a Dictyostelium discoideumból származó DAP-enzimmel foglalkozik, mely alkalmas olyan rekombináns proteinek átalakítására, ahol a protein az aminoterminális végén páros számú aminosawal hosszabb a kívántnál.
A jelen találmány a Dictyostelium discoideumból, egy sejtes nyálkagombából nyert új dipeptidil-aminopeptidázzal foglalkozik. Az új DAP-enzim, vagyis a dDAP aktivitása valamennyire hasonlít a DAP-I és a DAP-III aktivitására, de fizikai és más enzimatikus tulajdonsága révén élesen megkülönböztethető azoktól. A dDAP-enzim felhasználásával dipeptideket lehet eltávolítani a proteinek és peptidek rekombinánsként előállított előanyagainak N-terminális végéről. A dDAPenzim segítségével eltávolíthatunk egyetlen dipeptidet a polipeptid N-terminális végéről, de egymást követően eltávolíthatunk az enzimmel egynél több dipeptidet is az előanyagról. A találmány módszert nyújt továbbá a dDAP-enzim D. discoideum-tenyészetből való kinyerésére és tisztítására is.
A találmányban használt kifejezéseket és rövidítéseket az alábbiak szerint értelmezzük:
dDAP - Dictyostelium discoideumból nyert dipeptidil-aminopeptidáz, melynek GFpNA-szubsztráttal mért pH-optimuma 3,5. Natív molekulasúlya analitikai ultracentrifúgálással mérve 225 000 D; az alegység molekulasúlya SDS-poliakrilamid gélelektroforézissel (SDS=nátrium-dodecil-szulfát) mérve 66 000 D.
GFpNA - Gly-Phe-p-nitro-anilid.
Polipeptid előanyag - rekombinációval előállított polipeptid, mely az illető kívánt polipeptidnél az aminoterminális végen páros számú aminosawal hosszabb.
Kialakított polipeptid - az a kívánt polipeptid, melyet úgy nyerünk, hogy az N-terminális végről egy vagy több dipeptidet eltávolítunk.
RR-βΝΑ - Arg-Arg^-naftil-amid.
A találmány a dDAP-enzimmel, a Dictyostelium discoideumból, egy sejtes nyálkagombából nyert dipeptidil-aminopeptidázzal foglakozik. A dDAP-enzim képes lehasítani a nem védett aminoterminális szekvenciákat, hasonlóan a DAP-I-hez és a DAP-III-hoz, de ezektől az enzimektől mégis élesen megkülönböztethető fizikai és enzimatikus tulajdonságait illetően. A dDAP pH-optimuma GFpNA-szubsztráttal meghatározva: 3,5; a natív molekulasúlya: 225 000 D; az alegység molekulasúlya: 66 000 D. A lektinaffinitási kromatográfia arra vall, hogy a dDAP-enzim valószínűleg egy glikoprotein. A dDAP-enzim képes dipeptideket eltávolítani szintetikus szubsztrátokról, Gly-Phe-p-nitroanilidról (GFpNA), Arg-Arg^-naftil-amidról (RR$NA), valamint számos szintetikus vagy rekombináns polipeptidről.
Az ismert DAP-I-enzimeket különféle állatokból és állati szövetekből izolálták. Az új enzimet, a dDAP-t a Dictyostelium discoideum tenyészetéből izoláltuk. A DAP-I-enzimek aktivitásukhoz halogenidet és redukálószert igényelnek. A cisztein szulfhidrilcsoportjával reagáló vegyületek, például a jód-acetát inaktiválja a DAP-I-enzimeket. A DAP-I optimális aktivitása pH 5 és 6 között van. Ezzel szemben a dDAP-enzim pHoptimuma 3,5 értéknél van Gly-Phe-pNA- vagy GlyArg-pNA-szubsztrátokkal meghatározva, és jelentős aktivitást mutat pH 3,5 kémhatásnál peptidek és proteinek esetében. A dDAP-enzimnek pH 6 felett jelentős aktivitása nincs. A dDAP-enzim nem igényli a redukálószer jelenlétét, és teljesen aktív szulfhidrilreagensek, például jód-acetát vagy tetrationát jelenlétében is. A dDAP hasonló a borjú-DAP-I-hez, amennyiben nem képes hasí2
HU 219 771 Β tani az olyan peptideket, melynek N-terminális vége blokkolt, eltér viszont a boqú-DAP-I-enzimtől annyiban, hogy aktív az olyan szubsztrátokkal szemben, melynek N-terminális végén oxidált metionin van. A borjú-DAP-I képtelen hasítani az ilyen szubsztrátot. Ezen túlmenően eltér a boíjú-DAP-I-től abban is, hogy a dDAP-enzim könnyen hasítja az Arg-Arg-p-naftilamid-szubsztrátot. Abból a szempontból viszont, hogy hasítja az aminoterminális végen lévő Arg-Arg dipeptidet tartalmazó szubsztrátot, hasonlít az emlősökből és a mikroorganizmusokból származó DAP-III-enzimekre, noha a DAP-III-enzimról leírták, hogy a pH-optimuma az alkalikus tartományban van, míg a dDAP sokkal aktívabb a savas kémhatásnál. A dDAP alegységének SDSpoliakrilamid elektroforézissel meghatározott molekulatömege: 66 000 D, míg az emlős-DAP-I-alegység molekulatömege: 22 000 D.
A jelen találmány szerinti dDAP-enzim a legalkalmasabb arra, hogy a polipeptidek előanyagát átalakítsuk kialakított polipeptidekké. így például, ha a kívánt polipeptid a humán növekedési hormon, elkészítjük az előanyagát (egyik esetben ez a Met-Asp-humán növekedési hormon), majd az előanyagot a dDAP-enzimnek tesszük ki, ami lehasítja a Met-Asp dipeptidet és megkapjuk a kívánt polipeptidet, a humán növekedési hormont. A kialakított peptid nem szükségszerűen azonos a „természetes” polipeptiddel, gyakran annak analógját vagy köztitermékét kívántuk előállítani.
A dDAP-enzimmel feldolgozható más polipeptid előanyagok: Met-Arg-hGH, Met-Tyr-proinzulin, MetArg-proinzulin, Met-Arg-proinzulin analóg (B28 Lys, B29 Pro), Met-Tyr-proinzulin analóg (B10 Asp, des B28-30) és a Met-Tyr-proinzulin analóg (B10 Asp, des B28-20). Az inzulinanalóg (B28 Lys, B29 Pro) a 383 472 számú európai szabadalomban, az inzulinanalóg (B10 Asp, des B28-30) az 519 750 számú európai szabadalomban szerepel. A dDAP-enzim egymás után több dipeptidet is képes lehasítani a polipeptid előanyag N-terminális végéről. A Met-Arg-proinzulin és a Met-Arg-proinzulin analógok a DAP-I-enzimmel való feldolgozását Becker és munkatársai igák le az 5 126 249 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalomban (közreadva: 1992. június 30-án).
A dipeptidek protein-előanyagról dDAP-enzimmel történő eltávolításának előnye abból áll, hogy dDAP pH-optimuma 3,5 értéknél van, ami lehetővé teszi, hogy a reakciót savas körülmények között hajtsuk végre, ahol sok polipeptid előanyag oldódik. Továbbá semleges vagy magasabb pH-értékű tartományban néhány előanyag diszulfidhidakon keresztül dimereket vagy polimereket képez, ami a termékhozam jelentős csökkenését eredményezi. Ez a diszulfídhidak kialakulásával járó jelenség különösen zavaró, ha borjú-DAP-I-enzimet használunk, minthogy az működéséhez redukálószer, például β-merkapto-etanol vagy cisztein jelenlétét igényli a reakcióelegyben. A metionin oxidációja ugyancsak kisebb mértékű a savas tartományban. A D. discoideum fermentlevéból nyert enzim használata gazdaságosabb is, mint az állati fonásokból nyert enzimtermékek alkalmazása, minthogy a fermentációs technológia nagyobb termékhozamot és enzimreprodukálhatóságot biztosít. Az állati eredetű enzimek elkerülését lehetővé teszi egy magas tisztaságfokú enzim forrásának megteremtése. A D. discoideum Ax3 törzs (ATCC 28368) fermentálása, majd az ezt követő centrifúgálás, anioncserélő kromatografálás, hidrofób kromatográfia és méretkizárásos kromatográfia egy magas tisztaságfokú dDAP-enzimoidatot eredményez, ami tárolható vagy közvetlenül felhasználható a polipeptid előanyagok feldolgozásához. A dDAP-enzim fermentléből való elkülönítése és tisztítása ugyancsak részét képezi a jelen találmánynak.
A polipeptid előanyagok kialakított polipeptidekké való átalakítása széles hőmérsékleti, pH- és időtartományban történhet. A reakciót általában vizes közegben végezzük, mely megfelelően pufferolt ahhoz, hogy a kémhatása pH 2,5 és 5,5 értékek között maradjon. Előnyös kémhatású tartomány a pH 3,0-4,5, még előnyösebb a pH 3,0-3,5. A pH-optimum kissé változhat a szubsztráttól függően. így például a Gly-Phe-pNA és Gly-Arg-pNA feldolgozása pH 3,5 értéknél, a MetAsp-hGH feldolgozása pH 3,0-3,5 értékek között történik meg a leggyorsabban. A szakemberek előtt nyilvánvaló, hogy bármelyik adott reakció pH-optimumát olyan tényezők határozzák meg, mint az adott polipeptid előanyag és az enzim stabilitása és oldhatósága. Bizonyos esetekben oldódást elősegítő anyagok, például karbamid, nátrium-dodecil-szulfát, guanidin stb., is alkalmazhatók.
A reakció különféle időtartamon át végezhető, néhány másodperctől néhány napig terjedően. Előnyös a reakciót 1 perc és 24 óra közötti időtartamban lejátszatni, még előnyösebb, ha a reakcióidő 1-8 óra. A szakemberek előtt nyilvánvaló, hogy a reakcióidő könnyen beállítható bármelyik polipeptid előanyaghoz vagy kialakított polipeptidhez.
A feldolgozási reakció hőmérséklete ugyancsak beállítható bármelyik adott szubsztráthoz. Előnyös a reakciót 15 °C és 45 °C közötti hőmérsékleten végezni, még előnyösebb a 20-37 °C közötti, legelőnyösebb a 25-37 °C közötti hőmérséklet-tartomány. Összefoglalva, a szakemberek előtt nyilvánvaló, hogy az olyan reakciótényezők, mint az idő, hőmérséklet és pH könynyen változtatható a kívánt előanyag vagy kidolgozott polipeptid tulajdonságainak figyelembevételével.
Bármelyik széles tartományú puffer alkalmazható, az egyetlen kívánalom, hogy képes legyen a kémhatást a kívánt pH-tartományon belül tartani. Tipikus puffervegyület például a nátrium-foszfát, nátrium-acetát, nátrium-citrát, glicin stb. Előnyös a nátrium-acetát, nátrium-foszfát és glicin alkalmazása.
A találmányban használt polipeptid elóanyagokat általában rekombináns DNS-technológiával állítjuk elő. A kívánt polipeptid előanyagot kódoló nukleotidszekvenciát a szokásos szintézises eljárásokkal állítjuk elő. Ezek a módszerek általában magukban foglalják mind a kívánt kódoló oligonukleotid, mind a komplementer szekvenciájának előállítását. Az oligonukleotidokat úgy tervezzük meg, hogy a kódolószekvencia egy fragmense átfedésben legyen a kiegészítőszekvencia két
HU 219 771 Β fragmensével és fordítva. Az oligonukleotidokat párosítjuk és összekapcsoljuk, kialakítva végűi a kívánt génszekvenciát.
A szekvenciát egy klónozóvektor olyan helyére építjük be, ami lehetővé teszi a kód kifejeződését. Az alkalmas klónozóvektor a kifejeződést szabályozó szekvenciának legalább egy részét tartalmazza.
Az elmondottak szemléltetésére az alábbiakban példákat adunk meg. A példák kizárólag szemléltető célzatúak, és a találmány oltalmi körét nem befolyásolják.
1. példa
A Dictyostelium discoideum fermentációja
Az ATCC 28368 nyilvántartási számon szereplő, az amerikai törzsgyűjteményből (American Type Culture Collection, Rockvilíe, Maryland, Amerikai Egyesült Államok) származó, fagyasztva szárított Dictyostelium discoideum Ax3 törzset különféle hígításban ráoltjuk pufferolt élesztőkivonat/peptont tartalmazó agarlemezekre (1,2% Difco Bacto Agár). A pufferolt közeg összetétele: Difco élesztőkivonat 7,15 g/1, Difco Bacto Peptone 14,3 g/1, dinátrium-hidrogén-foszfát 0,51 g/1, kálium-hidrogén-foszfát 0,49 g/1, melyhez aszeptikus körülmények között, 10 g/1 végkoncentrációban a sterilizálás után glükózt adunk; a táptalaj kémhatását nátrium-hidroxid-oldattal vagy kénsavval végső pH=6,5 (±0,1) értékre állítjuk be. Ugyanezt a tápközeget (agar nélkül) használjuk a folyékony tenyészetekhez, melyeknek térfogata egy liternél kevesebb. Az agarlemezeket 21-24 °C hőmérsékleten inkubáljuk 3-5 napon át. A spóratokokat óvatosan összegyűjtjük a lemezről, hogy ne kerüljenek bele az Ax3 törzzsel együtt liofilizált „tápbaktériumok”. A spórákkal beoltunk 3 ml pufferolt élesztőkivonat/pepton táptalajt és gyenge rázatás mellett 21-24 °C hőmérsékleten növesztjük. A D. discoideum-sejteket sorozatosan átvisszük fokozatosan növekvő térfogatú pufferolt élesztőkivonat/pepton tápközegbe. Mindegyik átviteli lépésnél 10-25-szörös hígítást végzünk, az átvitelt akkor végezzük, amikor a sejtsűrűség eléri a 2 χ 106/ml értéket. A tenyészeteket mindig 21 -24 °C hőmérsékleten inkubáljuk gyenge rázatás mellett.
A kevertetett fermentációkat a kezdeti élesztőkivonat/pepton tápközeghez hasonló táptalajon végezzük, melyben a Bacto Peptont 2-14,3 g/1 koncentrációban szójapeptonnal (például Phytone Peptone vagy Marcor Soy Peptone) helyettesítjük. A fermentlé feldolgozása általában 10-5000 literes fermentorokból történik, melyek 1-3 Rushton-turbinakeverővel vannak ellátva; a kevertetés 40-150 percenkénti fordulatszámmal történik. Hőmérséklet: 22 °C (±1 °C); az átáramoltatott levegő mennyisége a tenyészet térfogatának 0,1-0,5-e; nyomása: 20,68-34,47-103 Pa (3-5 psi). Néhány fermentálást úgy végeztünk, hogy a kémhatást pH=6,4 értéken tartottuk kénsav hozzáadásával; másoknál az oldott oxigén koncentrációját 40-60% között tartottuk a kevertetés és a légáram változtatásával. A tenyészet kezelésénél és a fermentációnál kellő óvatossággal igyekszünk elérni, hogy minimálisra csökkentsük a nyíróerőhatást, minthogy a sejtek a tenyésztés alatt sejtfal nélküli amőbaszerű állapotban vannak.
A kevert D. discoideum Ax3 tenyészet sejtsűrűsége 12 és 36 óra között kétszeresére növekszik. Amennyiben nincs szabályozva, az oldott oxigén koncentrációja progresszíven csökken; majd a sejtsűrűség növekedésének megállása után egy idővel növekedni kezd. A végső sejtsűrűség 3x 106-5xl07/ml; az alacsonyabb sejtszámmaximumot elérő fermentációknál az oxigéntranszfer a valószínű korlátozó tényező.
Időnként mintát veszünk és meghatározzuk a sejtsűrűséget és a GF-pNAáz-aktivitást (lásd 3. példa). 5xl05/ml felett a sejtszám meghatározására, a Petroff-Hauser-számlálókamrát használjuk. A fermentáció alatt a GFpNA-t hidrolizáló aktivitás általában növekszik. A dDAP-aktivitás maximumát a legmagasabb sejtsűrűség utáni 2-4. napon érjük el. A teljes fermentlevet 4 °C hőmérsékleten vagy -20 °C hőmérsékleten lefagyasztva tároljuk, később felolvasztjuk és aktivitását meghatározzuk. A fermentléből a sejteket folyamatos centrifúgálással 10 °C hőmérséklet alatt gyűjtjük össze.
2. példa dDAP kinyerése
A) Sejtek eltávolítása és betöményítés
A Dictyostelium discoideum fermentlévéből nyert dDAP tisztítása a sejtek eltávolításával és a betöményítésével kezdődik. A sejtek eltávolítása folyamatos centrifúgálással történik, egy Western States centrifuga felhasználásával. A sejtmentes tápközeg körülbelül húszszoros betöményítése tangenciális átfolyású ultraszűréssel történik 50 000-es molekulatömegnél elválasztómembrán alkalmazásával. A visszamaradt anyagot elvezetjük az ultracentrifugából, és a centrifúgát 50 mM trisz-pufferrel (pH=7) mossuk ki, hogy a maradék dDAP-t is kinyerjük. A betöményített levet és a mosólevet egyesítjük és ezt a készítményt -20 °C hőmérsékleten tartottuk néhány hónapon át a további feldolgozásig.
B) Tisztítás
A lefagyasztott koncentrátumot 20 óra alatt felolvasztjuk és szobahőmérsékletre melegítjük. A levet centrifúgáljuk, majd 5 mikronos membránon szűrjük. A tisztított lé kémhatását pH=7,0 értékre állítjuk be és 0-10 °C hőmérsékleten tartjuk legalább 12 órán át az anioncserés kromatografálás előtt.
C) Anioncserés kromatográfia
A dDAP tisztítási eljárásának első kromatográfiás lépése anioncserés kromatografálással történik Pharmacia Q-Sepharose Fást Flow-gyantát (FFQ). Az oszlopot pH=7 kémhatású 50 mM trisz-pufferral egyenlítjük ki. 60 liter nem koncentrált fermentlé/liter gyanta aránynál a sejtmentes koncentrátum átfolyási sebessége 50 cm/óra. Egy liter gyantán körülbelül 60 g fehérje kötődik meg (a fehérjemeghatározáshoz Pierce BCA Protein Assay készítményt használunk, a viszonyítási fehérje : borjú-szérumalbumin). 250 egységnyi dDAP-aktivitást viszünk rá egy liter FFQ-gyantára. A sejtmentes koncentrátum vezetőképessége 5 mMHOS centiméterenként. Miután a megkötés megtörtént, az FFQ-gyantát háromszoros térfogatú - a kiegyenlítéshez használt 4
HU 219 771 Β pufferral mossuk. A dDAP-aktivitást a gyantáról lineáris gradienssel eluáljuk. A lineáris gradienselúcióhoz tízszeres oszloptérfogatú 50 mM trisz-puffert, pH=7 használunk, melyben a nátrium-klorid-koncentráció nulláról 1 M-ra növekszik. Az átfolyási sebesség 50 cm/óra. Az oszloptérfogat egytizedének megfelelő frakciókat gyűjtünk. Az FFQ-oszlopot ezután háromszoros oszloptérfogatú 50 mM trisz-pufferrel, pH=7, mossuk, melyben a nátrium-klorid-koncentráció: 1,0 M. Az eluátumot vezetőképesség-méréssel és 280 nm-en mért fényelnyeléssel vizsgáljuk, a frakciók dDAP-aktivitását meghatározzuk. Az aktivitásmeghatározás a Gly-Phe-p-nitro-anilid (GFpNA) kolorimetriás szubsztrát pH=3,5 kémhatásnál történő hasításán alapszik. Egyesítjük azokat a frakciókat, melyek az eluált összes dDAP aktivitásának körülbelül 90%-át tartalmazzák. A dDAP-aktivitás egy csúcsban jelenik meg körülbelül két oszloptérfogatnyi méretben. Az egyesített frakciók kémhatását 10%-os (térfogat) sósavval pH=3,5 értékre állítjuk be, és 4 °C hőmérsékleten tartjuk kevesebb, mint két napig.
D) Hidrofób kromatográfia
Az FFQ savanyított egyesített frakcióját hidrofób interakciós kromatográfrával (HIC) tisztítjuk tovább, Pharmacia Phenyl Sepharose Fást Flow gyantát használva. Az oszlop térfogata egyharmada az anioncserélő oszlop térfogatának. Körülbelül 650 egység aktivitást viszünk 1 liter gyantára, és 4 g fehéije kötődik meg 1 liter gyantán. (280 nm-en mért 1 egységnyi abszorbancia megfelel 1 mg/ml fehérjének.) Az FFQ eluátumának egy literéhez hozzáadunk 140 g ammónium-szulfátot, a kémhatását pH=3,5 értékre beállítjuk; a végső vezetőképessége körülbelül 90 mMHOS centiméterenként. A HlC-oszlopot literenként legalább 140 g ammóniumszulfátot tartalmazó 50 mM citrátpufferral, pH=3,5, kiegyensúlyozzuk. A megkötés 40 cm/óra átfolyási sebességnél történik. Az oszlopot először háromszoros oszloptérfogatú kiegyenlitőpufferrel mossuk, majd a dDAP-aktivitást lineáris gradienselúcióval hozzuk le az oszlopról. A gradienselúcióhoz 50 mM citrátpuffert, pH=3,5, használunk, melyben az ammónium-szulfát koncentrációja 140 g/1 értékről nullára csökken. Körülbelül tízszeres oszloptérfogatnyi eluenst használunk, 40 cm/óra átfolyási sebességgel. Az oszlopot ezután három oszloptérfogatnyi 50 mM trisz-pufferral, pH=3,5, mossuk. Az oszloptérfogat egytizedének megfelelő térfogatú frakciókat gyűjtünk. Az elúciót vezetőképességméréssel és 280 nm-en mért fényelnyeléssel követjük nyomon, a frakciók dDAP-aktivitását pH=3,5 kémhatásnál mért GFpNA-hasítással határozzuk meg. Az eluált összes dDAP-aktivitás 90%-át tartalmazó frakciókat egyesítjük. A dDAP-aktivitás két oszloptérfogatnyi méretű csúcsban eluálódik a gyantáról. Az egyesített frakciók kémhatását 10%-os (térfogat) sósavval vagy 10%-os (tömeg) nátrium-hidroxid-oldattal pH=3,5 értékre állítjuk be.
E) Méretkizárásos kromatográfia
A HlC-eluátum további feldolgozása méretkizárásos kromatográfrával (SEC) történik S-200 Sepharose HR-gyantán. Az oszlop térfogata kétszerese a HIC-oszlop térfogatának, magassága 78 cm. A HlC-eluátumot ultraszűréssel betöményítjük 10 000 D molekulaegység felett visszatartó membrán alkalmazásával. A betöményített frakció térfogata a SEC-oszlop térfogatának 2,5%-a. A koncentrátum eltávolítása után ugyanilyen térfogatú 50 mM citrátpufferrel, pH=3,5, kimossuk a készüléket. A koncentrátumot és a mosólevet egyesítjük és a kémhatást 10%-os (térfogat) sósavval vagy 10%-os (tömeg/térfogat) nátrium-hidroxid-oldattal pH=3,5 értékre állítjuk be. A készítmény vezetőképessége ekkor 30 mMHO centiméterenként. A SEC-oszlopot 20 mM ecetsav/20 mM nátrium-klorid, pH=3,5, oldattal - melynek vezetőképessége 2 mMHO centiméterenként - kiegyenlítjük. A koncentrátumot 15 cm/óra lineáris áramlási sebességgel rávisszük az oszlopra. A dDAP-aktivitást egy oszloptérfogatnyi kiegyenlítőpufferral eluáljuk le. Az oszloptérfogat 0,02 részének megfelelő térfogatú frakciókat gyűjtünk. Az elúciót a vezetőképesség mérésével és a fényelnyelés 280 nmnél történő meghatározásával követjük nyomon. A frakciók dDAP-aktivitását a GFpNA hasításával határozzuk meg pH=3,5 kémhatásnál. Az eluált összaktivitás 90%-át kitevő frakciókat egyesítjük. A dDAP-aktivitás egy csúcsban jön le körülbelül az oszloptérfogat 0,08ának megfelelő térfogatban. Az egyesített frakciót 4 °C hőmérsékleten tartjuk néhány hónapon keresztül.
Az elmondottak szerint tisztított dDAP egy fősávként jelenik meg az SDS-PAGE (nátrium-dodecil-szulfát poliamid-gélelektroforézis) vizsgálatoknál. A sáv a molekulasúly viszonyítóanyagként használt borjú-szérumalbuminnal (66 kD) együtt mozdul el a gélen. A fehéije megfestéséhez ISS Pro-Blue festéket használunk. A migrációs képet 0,1 M DTT (ditiotreitol) mintában lévő jelenléte (és ötperces 100 °C-os kezelés) nem befolyásolja. Az SDS-PAGE meghatározás szerint a borjúDAP-I alegységének molekulatömege 22 000 D.
3. példa dDAP aktivitása
A) átalakítási reakciók
1. GF-pNA hasítása
A dDAP aktivitását általában a Gly-Phe-p-nitroanilid (GFpNA) kromogén szubsztrát hasításával határozzuk meg. A meghatározáshoz általában az enzimet 11szeresre hígítjuk 1,0 ml 4 mM GFpNA-oldatban, melynek kémhatása pH=3,5. A GF dipeptid 37 °C hőmérsékleten történő lehasadásának mértékét a 405 nm-en mért fényelnyelés növekedésével méijük. E körülmények között percenként 0,90 OD változás felel meg egy egységnyi aktivitásnak. A milliliterenkénti egység meghatározható, tudva, hogy a szabad pNA extinkciós együtthatója 405 nm-en mM-ként és centiméterenként 0,99.
A dDAP-aktivitás GFpNA-szubsztrátnál meghatározott gátlását összehasonlítjuk a DAP-I gátolhatóságával. A vizsgálathoz DAP-I-enzimet gátló szulfhidrilreagenseket használunk: jód-acetamidot és kálium-tetrationátot. A dDAP- vagy borjú-DAP-I-mintákat az egyes gátlókkal 100 mM trisz-pufferben, pH=7, szobahőmérsékleten inkubáljuk 15 percen át. A gátlóreagens végkoncentrációja: 0, 0,5, 5,0 vagy 50 mM. Az inku5
HU 219 771 Β bált oldatot 4 mM GFpNA-oldattal, pH=3,5, 21-szeresre hígítjuk. A hasítás sebességét 37 °C hőmérsékleten 405 nm hullámhosszú fény abszorpciójának növekedésével méijük. A DAP-I GFpNA-szubsztráttal szembeni aktivitása 90%-kal csökken 5 mM jód-acetamid és 95%-kal csökken 5 mM kálium-tetrationát esetében. Nem tapasztalunk jelentős dDAP-aktivitáscsökkenést sem a jód-acetamid, sem a kálium-tetrationát egyik vizsgált koncentrációjánál sem.
A dDAP GFpNA-szubsztráthasítás pH-optimumát 0,5 M trisz-, foszfát- és citrátpufferben határozzuk meg, melynek kémhatását 10%-os sósavval vagy 10%os nátrium-hidroxid-oldattal különféle értékre állítjuk be pH=3 és 8 között. A dDAP-enzimet 20-szorosra hígítjuk 100 mM ciszteamint és 10 mM nátrium-kloridot tartalmazó pufferrel. A borjú-DAP-I-enzimet ugyanezzel a pufferrel 200-szorosra hígítjuk. 2%-os dimetilformamidban 4 mM koncentrációjú GFpNA-oldatot készítünk. A mikrotiterlemezen a különböző pH-jú egyes pufferek 0,025 ml-ét 0,1 ml hígított enzimmel és 0,1 ml szubsztrátoldattal keveijük össze. 30 percen át meghatározzuk a 410 nm-en mért abszorbancianövekedés mértékét. Az eredmények azt mutatják, hogy a dDAP pHoptimuma GFpNA-szubsztrát esetében: 3,5-4,0.
2. Gly-Arg-pNA hasítása mM Gly-Arg-pNA- (GR-pNA-) oldatot készítünk 50 mM ecetsav, 50 mM glicinpufferben, pH=5. Sósavval és nátrium-hidroxid-oldattal különféle pH-értékeket állítunk be 5,1 és 2,3 érték között. 180 pl pufferolt szubsztrátoldathoz hozzáadunk 5 pl dDAP-oldatot (végkoncentráció 49 milliegység/ml). 410 nm-en mérjük (titerlemez leolvasásával) az abszorbancianövekedés sebességét. Mint a GFpNA esetében, a GR-pNAszubsztrátnál is az optimum pH=3,5 körül van. Az enzim aktivitása az adott szubsztrátnál: alacsony pH=2,5 alatt és pH=5 felett.
3. Arg-Arg-P-naftil-amid (RR-βΝΑ) hasítása
0,25 mM RR-βΝΑ- vagy 0,25 mM benzil-oxikarbonil-RR-βΝΑ- (Z-RR-βΝΑ-) oldatot készítünk 100 mM ecetsavban, pH=3,5 vagy 100 mM citromsavpufferben, pH=5,0. 2 ml szubsztráthoz adjuk hozzá a dDAP- vagy boíjú-DAP-I-enzimet (15 milliegység milliliterenként). Méijük a hasítás sebességét (340 nmes excitációnál 410 nm-en mért fluoreszcenciát). A DAP-I-enzim egyik szubsztrátot sem hasítja. Meglepő módon a dDAP viszont hatékonyan hidrolizálja az RR^-BNA-szubsztrátot, míg a védett aminocsoportú ZRR^NA-szubsztrátot nem hasítja, megerősítve azt a feltételezést, hogy a dDAP- egy DAP-enzim. Az RR-βΝΑ hasításának pH-optimumát 50 mM ecetsav és 50 mM citrátpufferekkel határozzuk meg, melyeknek a különféle kémhatását sósavval és nátrium-hidroxid-oldattal állítjuk be. 1,5 ml pufferhez adunk 0,5 ml RR^NA-oldatot (végkoncentráció 0,25 mM). 15 mM/ml dDAP-enzimet adunk az oldathoz és meghatározzuk a hasítás sebességét. RR-βΝΑ esetében a pH-optimum 4,5 értéknek adódik és lényeges aktivitás mutatható ki az egész vizsgált pH-tartományban (pH=3,5-5,7). Ez a meglepő eredmény feltételezi, hogy a dDAP bizonyos tulajdonságokban hasonlít a DAP-III-enzimhez.
A szakemberek előtt nyilvánvaló, hogy a szubsztráthasítás pH-optimuma nemcsak az enzimtől, hanem magától a szubsztráttól is függ, azaz a lehasított dipeptid összetételétől, valamint az indikátorcsoporttól. így például a dDAP pH-optimuma Gly-Arg-pNA-szubsztrát esetében 3,5 körül van, míg Gly-Arg-7-amido4-metil-kumarin- (GR-AMC-) szubsztrát hasításánál pH=5 értéknél jelentkezik, ami alapján feltételezhetjük, hogy az indikátorcsoport befolyásolhatja a hasítási tulajdonságokat.
B) Szintetikus oktapeptidek és dekapeptidek átalakítása
A Met-Asp-Phe-Pro-Ala-Met-Ser-Ler oktapeptid 4 mM-os oldatát 50 mM ecetsavoldatban, pH=3,5 készítjük el. Az oldathoz azonos térfogatban hozzáadunk milliliterenként 10 milliegységet tartalmazó dDAP-oldatot és szobahőmérsékleten inkubáljuk 6 órán át. A reakciót 1% foszforsavat tartalmazó 7 M karbamidoldattal való 20szoros hígítással leállítjuk. A mintát fordított fázisú HPLC-vel analizáljuk. Viszonyító vegyületekként az oktapeptidet, Met-Asp dipeptid és Phe-Pro-Ala-MetSer-Leu hexapeptidet használunk. A dDAP könnyen lehasítja a Met-Asp dipeptidet az oktapeptid nem védett aminocsoportot hordozó végéről, de nem képes eltávolítani a soron következő Phe-Pro dipeptidet.
A Met-Arg-Met-Tyr-Phe-Val-Asn-Glu-His-Leu dekapeptidből 1,7 mM koncentrációjú oldatot készítünk 100 mM glicinoldatban, pH=3,5. 0,5 ml oldathoz hozzáadunk 8 μΐ 6,4 mU/ml koncentrációjú dDAP-oldatot, amit szintén 100 mM glicinoldatban készítünk el, pH=3,5. Óránként 5 μΐ mintát közvetlenül vizsgálunk fordított fázisú HPLC-vel, hogy nyomon kövessük a reakciót. Viszonyító vegyületként Met-Arg és Met-Tyr dipeptidet, valamint Met-Tyr-Phe-Val-Asn-Glu-HisLeu és Phe-Val-Asn-Glu-His-Leu peptideket használunk. A dDAP könnyen lehasítja a Met-Arg dipeptidet a dekapeptidről, valamint a következő Met-Tyr dipeptidet. Ez azt mutatja, hogy a dDAP-enzimmel az egymást követő dipeptidek eltávolíthatók az aminoterminális végen.
C) Met-Asp-(humán növekedési hormon) átalakítása
A Met-Asp-(humán növekedési hormon) (MetAsp-hGH) oldhatatlan fehérjeként keletkezik az E. coli citoplazmájában. Az oldhatatlan proteint oldhatóvá tesszük, diszulfidhíddal összekapcsolt Met-Asp-hGHpárokat képezünk, amit ioncserélő kromatográfiával tisztítunk. A készítményben oldószercserét végzünk, a kémhatást beállítjuk pH=3,5 értékre. A Met-Asp-hGHkészítményt 37 °C hőmérsékletre melegítjük és 280 nm hullámhosszon megméijük a fényelnyelést. Hozzáadjuk a dDAP-enzimet 1 mg Met-Asp-hGH-ra 6 milliegység enzimet számolva. A reakciót 37 °C hőmérsékleten hajtjuk végre 4-6 órás kevertetés mellett. A reakciófolyamat hátrány nélkül lelassítható kevesebb enzimet használva, alacsonyabb hőmérsékleten vagy alacsonyabb Met-Asp-hGH-koncentráció mellett. A reakciósebesség növelhető több enzim hozzáadásával, a MetArg-hGH-koncentráció emelésével vagy a reakció-hőmérséklet emelésével. A reakció előrehaladtát fordított fázisú kromatográfiával követjük nyomon. A reakció le6
HU 219 771 Β állítására kevertetés mellett nátrium-hidroxid gyors hozzáadásával a kémhatást pH=8 értékre állítjuk be és 30% (térfogat) acetonitrilt adunk a reakcióelegyhez. A dDAP-kezelés után kapott terméket alapos vizsgálatnak vetjük alá, ami kiterjed a peptidösszetétel vizsgálatára, az N-terminális vég aminosavsorrendjének megállapítására, magában foglal tömegspektroszkópiát, aminosavanalízist, fordított fázisú HPLC-analízist. Valamennyi vizsgálat azt bizonyítja, hogy a dDAP-kezelés hatására autentikus humán növekedési hormonhoz jutunk.
D) Met-Arg-(humán proinzulin) átalakítása
A Met-Arg-(humán proinzulin) (Met-Arg-hPI) oldhatatlan fehérjeként keletkezik az E. coli citoplazmájában. Az oldhatatlan fehéijét 7 M karbamidoldatban oldjuk és ioncserélő kromatográfiával tisztítjuk. A MetArg-hPI-t szulfitkezeljük, az oldószert kicseréljük és kialakítjuk a natív diszulfidhíddal kötött párokat és a natív harmadlagos szerkezetet. Az anyagot tovább tisztítjuk fordított fázisú kromatografálással.
Az oxidált metionin Met(O)-Arg-hPI-terméket Met-Arg-hPI-ből állítjuk elő hidrogén-peroxiddal történő oxidálással.
mg/ml koncentrációjú Met-Arg-hPI-oldatot készítünk 20 mM glicinpufferben, pH=3,5. 2,4 mg szubsztrátot inkubálunk 0,19 milliegység dDAP-enzimmel pH=3,5 kémhatásnál. A reakciót szobahőmérsékleten hajtjuk végre. Időnként mintát veszünk és 10%-os foszforsavval meghígítjuk. Ezt a hígított mintát közvetlenül semleges, fordított fázisú HPLC-oszlopra visszük és vizsgáljuk a Met-Arg-hPI vagy Met(O)-Arg-hPI eltűnését és a hPI megjelenését. Emellett olyan hígításokat is végzünk a kivett mintákkal, ami lehetővé teszi a MetArg vagy Met(O)-Arg dipeptidek megjelenésének nyomon követését. 8 óra alatt a Met-Arg-hPI-fehérjének körülbelül 60%-a alakult át hPI-vé. A hasítás mértéke mindkét szubsztrátnál hasonló. Ez az eredmény meglepő, mert a borjú-dAP-I-enzim nem képes hasítani a hPI Met(O)-X származékát, ahol az X jelentése Arg, Phe vagy Tyr. A fordított fázisú analízis azt mutatja, hogy a Met-Arg-hPI-szubsztrátról Met-Arg dipeptid hasad le, a Met(O)-Arg-hPI-szubsztrát esetében egy csúcs jelenik meg a Met-Arg dipeptid megjelenési helyén, ami a Met(O)-Arg dipeptiddel lehet azonos. A dDAP-oxidált, Met(O)-X-szubsztrát hasítóképessége előnyt jelent más enzimekkel szemben, melyek képtelenek ezt a reakciót elvégezni.
E) Met-Arg-(humán proinzulin) analógok átalakítása
A dDAP-enzim ugyancsak hatékonyan felhasználható a hajtogatott Met-Arg-proinzuIin analógok (B28 Lys, B29 Pro), valamint a hajtogatott Met-Arg-proinzulin analógok (BIO Asp, des B28-B30) átalakítására is. Ezeket a reakciókat lényegében a Met-Arg-hPI átalakításánál ismertetett körülmények között hajtjuk végre.

Claims (2)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Dictyostelium discoideumból kinyert dDAPenzim.
  2. 2. Eljárás az 1. igénypont szerinti dDAP Dictyostelium discoideum tenyészetéből való kinyerésére, azzal jellemezve, hogy
    a) a tenyészetből elkülönítjük a sejtmentes levet,
    b) a sejtmentes levet anioncserélő kromatografálásnak vetjük alá,
    c) a b) lépés eluátumát hidrofób interakciós kromatografálásnak vetjük alá, és
    d) a c) lépés eluátumát méretkizárásos kromatografálásnak vetjük alá.
HU9302773A 1992-10-01 1993-09-30 Dictyostelium dipeptidil-aminopeptidáz HU219771B (hu)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US95553992A 1992-10-01 1992-10-01

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU9302773D0 HU9302773D0 (en) 1994-01-28
HUT70299A HUT70299A (en) 1995-09-28
HU219771B true HU219771B (hu) 2001-07-30

Family

ID=25496954

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9302773A HU219771B (hu) 1992-10-01 1993-09-30 Dictyostelium dipeptidil-aminopeptidáz

Country Status (26)

Country Link
US (2) US5565349A (hu)
EP (2) EP1094118A1 (hu)
JP (1) JP3550409B2 (hu)
KR (1) KR100291528B1 (hu)
CN (1) CN1060212C (hu)
AT (1) ATE211169T1 (hu)
AU (1) AU669735B2 (hu)
BR (1) BR9303949A (hu)
CA (1) CA2107279A1 (hu)
CZ (2) CZ286950B6 (hu)
DE (1) DE69331371T2 (hu)
DK (1) DK0595476T3 (hu)
ES (1) ES2169036T3 (hu)
FI (1) FI934305A (hu)
HU (1) HU219771B (hu)
IL (1) IL107123A (hu)
MX (1) MX9306021A (hu)
MY (1) MY113378A (hu)
NO (1) NO933503L (hu)
NZ (1) NZ248810A (hu)
PL (1) PL176930B1 (hu)
PT (1) PT595476E (hu)
RU (1) RU2096455C1 (hu)
TW (1) TW257792B (hu)
UA (1) UA27718C2 (hu)
ZA (1) ZA937243B (hu)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5573923A (en) * 1993-12-22 1996-11-12 Eli Lilly And Company Method for removing N-terminal dipeptides from precursor polypeptides with immobilized dipeptidylaminopeptidase from dictyostelium discoideum
US5614379A (en) * 1995-04-26 1997-03-25 Eli Lilly And Company Process for preparing anti-obesity protein
EP1141263A4 (en) * 1998-09-21 2002-08-28 Lilly Co Eli PRODUCTION OF SOLUBLE RECOMBINANT TRYPSIN ANALOGS
US6794159B1 (en) 1999-04-30 2004-09-21 Pharmacia Corporation Method of removing n-terminal alanine residues from polypeptides with aeromonas aminopeptidase
US6743600B1 (en) 1999-04-30 2004-06-01 Monsanto Technologies Llc Method of removing N-terminal alanine residues from polypeptides with Aeromonas aminopeptidase
US8129139B2 (en) 2009-07-13 2012-03-06 Allergan, Inc. Process for obtaining botulinum neurotoxin
EP2536749A1 (en) * 2010-02-17 2012-12-26 Elona Biotechnologies Methods for preparing human growth hormone
US11427814B2 (en) 2019-03-26 2022-08-30 Encodia, Inc. Modified cleavases, uses thereof and related kits
AU2020247918B2 (en) * 2019-03-26 2022-06-30 Encodia, Inc. Modified cleavases, uses thereof and related kits

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK55685A (da) * 1985-02-07 1986-08-08 Nordisk Gentofte Enzym eller enzymkompleks med proteolytisk aktivitet
DE3519218A1 (de) * 1985-05-29 1986-12-04 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim H(pfeil abwaerts)2(pfeil abwaerts)o(pfeil abwaerts)2(pfeil abwaerts)-bildende sarcosinoxidase, ihre herstellung und verwendung
US4894439A (en) * 1986-05-22 1990-01-16 Cetus Corporation N-terminal derivatives of tumor necrosis factor purified by microporous PTFE membranes
US4929700A (en) * 1987-04-16 1990-05-29 Cetus Corporation Production of purified, biologically active, bacterially produced recombinant human CSF-1
US5177003A (en) * 1987-04-16 1993-01-05 Phillips Petroleum Company Flavored protein products derived from Candida utilis
US5075222A (en) * 1988-05-27 1991-12-24 Synergen, Inc. Interleukin-1 inhibitors
JPH023698A (ja) * 1988-06-20 1990-01-09 Denki Kagaku Kogyo Kk ヒトリンホトキシンに対するモノクローナル抗体及びそれら抗体を産生するハイブリドーマ、並びにそれら抗体を用いたヒトリンホトキシンの精製方法、測定方法及び測定試薬
US5208218A (en) * 1988-09-19 1993-05-04 Ludwig Institute For Cancer Research T cell growth factor glycoproteins
US5179196A (en) * 1989-05-04 1993-01-12 Sri International Purification of proteins employing ctap-iii fusions
US5175251A (en) * 1989-05-04 1992-12-29 Sri International Antimetastatic peptides with laminin activity
US5126249A (en) * 1989-05-09 1992-06-30 Eli Lilly And Company Enzymatic removal of a protein amino-terminal sequence
US5173409A (en) * 1989-12-08 1992-12-22 Ecogen Inc. Recovery of bt endotoxin protein from lysed cell mixtures

Also Published As

Publication number Publication date
DE69331371D1 (de) 2002-01-31
EP0595476A2 (en) 1994-05-04
CN1060212C (zh) 2001-01-03
IL107123A0 (en) 1993-12-28
EP1094118A1 (en) 2001-04-25
RU2096455C1 (ru) 1997-11-20
DK0595476T3 (da) 2002-02-11
KR100291528B1 (ko) 2001-06-01
ATE211169T1 (de) 2002-01-15
CZ287066B6 (cs) 2000-08-16
HUT70299A (en) 1995-09-28
CZ286950B6 (en) 2000-08-16
TW257792B (hu) 1995-09-21
US5565349A (en) 1996-10-15
PT595476E (pt) 2002-06-28
ZA937243B (en) 1995-03-29
MX9306021A (es) 1994-05-31
CA2107279A1 (en) 1994-04-02
EP0595476B1 (en) 2001-12-19
NO933503D0 (no) 1993-09-30
AU669735B2 (en) 1996-06-20
US5565330A (en) 1996-10-15
KR940009329A (ko) 1994-05-20
AU4871993A (en) 1994-04-14
MY113378A (en) 2002-02-28
IL107123A (en) 1998-07-15
CN1085253A (zh) 1994-04-13
DE69331371T2 (de) 2002-08-14
FI934305A (fi) 1994-04-02
PL300537A1 (en) 1994-04-05
JP3550409B2 (ja) 2004-08-04
HU9302773D0 (en) 1994-01-28
UA27718C2 (uk) 2000-10-16
NZ248810A (en) 1994-12-22
NO933503L (no) 1994-04-05
FI934305A0 (fi) 1993-09-30
JPH06197759A (ja) 1994-07-19
ES2169036T3 (es) 2002-07-01
EP0595476A3 (en) 1994-07-06
CZ203393A3 (en) 1994-04-13
PL176930B1 (pl) 1999-08-31
BR9303949A (pt) 1994-04-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5614379A (en) Process for preparing anti-obesity protein
JP2551551B2 (ja) デスルファトヒルジン、その製造及びそれを含む製薬組成物
US8501439B2 (en) Method for obtaining active pro-NGF and beta-NGF
US4355104A (en) Bacteriolytic proteins
US4520016A (en) Bacteriolytic proteins
AU643822B2 (en) Process for the enzymatic preparation of basic fibroblast growth factor
IE66054B1 (en) Thermally stable cytosine deaminase
HU219771B (hu) Dictyostelium dipeptidil-aminopeptidáz
US6015685A (en) Ancrod proteins, their preparation and use
US7279309B2 (en) Process for manufacture of Nematode-extracted Anticoagulant Protein (NAP)
JP3518868B2 (ja) バシラスリケニフォーミス菌株から由来したアミノペプチダーゼ及び天然蛋白質の製造方法
Tsai et al. The primary structure of fulvocin C from Myxococcus fulvus
Hasegawa et al. Characterization of elastolytic proteinase from Aspergillus flavus: Comparison of biochemical properties to the elastolytic proteinase from Aspergillus fumigatus
EP0391407B1 (en) Polypeptide and antibacterial preparations containing the same
KR0132003B1 (ko) 스트렙토마이세스 써모니트리피컨스 아미노펩티다제를 이용한 천연형 재조합 단백질의 제조방법

Legal Events

Date Code Title Description
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee