CZ286950B6 - Dictyostelium dipeptidylaminopeptidase, process of its preparation and use - Google Patents

Dictyostelium dipeptidylaminopeptidase, process of its preparation and use Download PDF

Info

Publication number
CZ286950B6
CZ286950B6 CZ19932033A CZ203393A CZ286950B6 CZ 286950 B6 CZ286950 B6 CZ 286950B6 CZ 19932033 A CZ19932033 A CZ 19932033A CZ 203393 A CZ203393 A CZ 203393A CZ 286950 B6 CZ286950 B6 CZ 286950B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
ddap
met
arg
dap
enzyme
Prior art date
Application number
CZ19932033A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ203393A3 (en
Inventor
Paul Robert Atkinson
Matthew Dale Hilton
Peter Karl Lambooy
Original Assignee
Lilly Co Eli
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lilly Co Eli filed Critical Lilly Co Eli
Publication of CZ203393A3 publication Critical patent/CZ203393A3/cs
Publication of CZ286950B6 publication Critical patent/CZ286950B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/06Preparation of peptides or proteins produced by the hydrolysis of a peptide bond, e.g. hydrolysate products
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/485Exopeptidases (3.4.11-3.4.19)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/18Ion-exchange chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/20Partition-, reverse-phase or hydrophobic interaction chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/36Extraction; Separation; Purification by a combination of two or more processes of different types
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/58Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from fungi
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/11Aminopeptidases (3.4.11)
    • C12Y304/11005Prolyl aminopeptidase (3.4.11.5)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/815Enzyme separation or purification by sorption

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Escalators And Moving Walkways (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Detergent Compositions (AREA)
  • Polyamides (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Polyesters Or Polycarbonates (AREA)
  • Purification Treatments By Anaerobic Or Anaerobic And Aerobic Bacteria Or Animals (AREA)
  • Noodles (AREA)
  • Chemical Or Physical Treatment Of Fibers (AREA)
  • Fats And Perfumes (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

Dictyostelium dipeptidylaminopeptidáza, způsob její přípravy a její použití
Oblast techniky
Vynález se týká Dictyostelium dipeptidylaminopeptidázy, způsobu její přípravy a jejího použití. Dipeptidylaminopeptidáza, izolovaná ze slizovky Dictyostelium discoideum je užitečná při zpracování rekombinantně produkovaných biologických sloučenin.
Dosavadní stav techniky
Dictyostelium discoideum je primitivní eukaryotický mikroorganismus běžně nazývaný slizovka nebo lépe buněčná slizovka. Označení je odvozeno od dvou extrémních stavů mikroorganismu z makroskopické perspektivy. Při skutečném růstu roste Dictyostelium discoideum jako jednobuněčná amoeba. V tomto stupni nemá žádnou buněčnou stěnu a její vzhled proto připomíná tenký film (nebo sliz). Po vyhladovění na pevném médiu se nezávislé buňky agregují za vytvoření kolonie. Tato kolonie má charakter multibuněčného organismu tím, že migruje ve formě označované jako slimák, a pak se diferencuje s pozdějšími buňkami slizu tvořícího nohu, přičemž přední buňky vytvářejí nožku a střední buňky vytvářejí plodnici. Organismus se v přírodě vyskytuje na povrchu půdy a hnoje. Divoký typ amoeby získává živiny výlučně vstřebáváním (fagocytosou) celou baktérií; proto se někdy označuje jako masožravý. Byly isolovány axenické mutanty Dictyostelium discoideum, které jsou schopny růstu bez současné kultivace „potravinových“ baktérií, a které proto mohou růst na rozpustném prostředí. Vynález se především týká novédipeptidylaminopeptidázy, izolované z Dictyostelium discoideum.
Dipeptidylaminopeptidázy (DAP) jsou enzymy, které hydro lyžují předposlední aminokoncovou peptidovou vazbu za uvolňování dipeptidu z neblokovaného aminozakončení peptidů a bílkovin. V současně době jsou známy čtyři dipeptidylaminopeptidázy (označované jako DAP-I, DAP-I, DAP-II, DAP-III, DAP-IV), které se rozlišují na základě svých fyzikálních charakteristik a míry, kterou katalyzují štěpení s různými peptidovými sekvencemi a aminozakončenin,. Dipeptidylaminopeptidáza DAP-I je poměrně nespecifická DAP, která katalyzuje uvolňování mnohých dipeptidových kombinací z neblokovaného aminozakončení peptidů a bílkovin. Dipeptidylaminopeptidáza DAP-I vykazuje malou aktivitu nebo nevykazuje žádnou aktivitu, když je vznikajícím dipeptidem X-Pro, Arg-X nebo Lys-X (kde X znamená aminokyselinu). Dipeptidylaminopeptidáza DAP-II vykazuje preferenci pro aminozakončené dipeptidové sekvence, které začínají Arg-X nebo Lys-X a v menší míře X-Pro. DAP-II vykazuje výrazně nižší míru štěpení proti většině jiných dipeptidových kombinací. Zdá se, že dipeptidylaminopeptidáza DAP-III má sklon k aminokyselinovému zakončení dipeptidových sekvencí formy Arg-Arg a Lys-Lys. Dipeptidylaminopeptidáza DAP-IV vykazuje nejvyšší stupeň hydrolytické aktivity se zřetelem na dipeptidové sekvence formy X-Pro. Dipeptidylaminopeptidázové (DAP) enzymy, zejména DAP-I a DAP-IV jsou užitečné při zpracování bílkovin. Vynález se týká nových DAP z Dictyostelium discoideum, které jsou užitečné při zpracování rekombinantních bílkovin se stejně číslovaným aminokyselinovým Nkoncovým prodloužením.
Podstata vynálezu
Podstatou předloženého vynálezu je dipeptidylaminopeptidáza, enzym dDAP, o molekulové hmotnosti 225 000, s optimální hodnotou pH 3,5; izolovaná z Dictyostelium discoideum.
Předložený vynález se tedy týká nové dipeptidylaminopeptidázy izolované z buněčné slizovky Dictyostelium discoideum. Nový dipeptidylaminopeptidázový enzym dDAP vykazuje účinnost,
-1 CZ 286950 B6 která je poněkud podobná účinnost DAP-I a DAP-III, je však vysoce odlišná od těchto enzymů svými fyzikálními a jinými enzymatickými charakteristikami. Vynález se týká způsobu použití DAP enzymu k odstraňování dipeptidů zN-zakončení rekombinantně produkovaného prekurzoru bílkovin nebo peptidů. Enzym dDAP podle předloženého vynálezu se může používat pro odstraňování jednotlivých dipeptidů zN-zakončení polypeptidů a také se ho může používat k sekvenčnímu odstraňování více než jednoho dipeptidů z N-zakončení prekurzorových polypeptidů. Kromě toho se vynález týká způsobů izolace a čištění dDAP enzymu z kultury dictyostelium discoideum.
Zde používané symboly a zkratky mají následující významy:
dDAP - dipeptidylaminopeptidáza, izolovaná z Dictyostelium discoideum, která vykazuje optimum hodnoty pH přibližně 3,5 s GFpNA jakožto substrátem a má nativní molekulovou hmotnost přibližně 225 000 měřeno analytickým ultraodstřeďováním a subjednotkovou molekulovou hmotnost přibližně 66 000 měřeno SDS polyakrylamidovou gelovou elektroforézou.
GFpNA - Gly-Phe p-nitroanilid.
Prekurzorový polypeptid - rekombinantně produkovaný polypeptid, který obsahuje stejný počet aminokyselin za aminovým zakončením žádaného polypeptidů.
Zpracovaný polypeptid - polypeptid, přičemž N-koncový dipeptid nebo dipeptidy jsou odstraněny k získání žádaného polypeptidů.
TTBNA - Arg-Arg-(3-naftylamid.
Všechny používané zkratky aminokyselin jsou podle amerického úřadu pro patenty a obchodní známky, uvedené v 37 C.F.R- 1.822 (b) (2) (1990).
Vynález se týká dDAP, dipeptidylaminopeptidázy izolované z buněčné slizovky Dictyostelium discoideum. Enzym dDAP má sklon štěpit neblokované aminokoncové sekvence tradičně spojené jak s DAP-I, tak DAP-III, avšak pDAP je vysoce odlišný od těchto obou enzymů svými fyzikálními a jinými enzymatickými vlastnostmi. dDAP vykazuje optimum hodnoty pH přibližně 3,5 s GFpNA jakožto substrátem a má nativní molekulovou hmotnost přibližně 225000 a subjednotkovou molekulovou hmotnost přibližně 66000. Lecitinová afmitní chromatografie dokládá, že dDAP enzym je pravděpodobně glykoprotein. dDAp má schopnost odstraňovat dipeptidy ze syntetických substrátů, Gly-Phe paranitroanilidu (GFpNA) a Arg-Arg-βnaftylamidu (RRBNA) jakož také z Četných jiných syntetických a rekombinantně produkovaných dipeptidů.
Známé enzymy dipeptidylaminopeptidázy DAP-I byly izolovány z nejrůznějších živočišných a rostlinných tkání. Nový enzym dDAP se izoluje z kultivační půdy Dictyostelium discoideum. Enzymy DAP-I vyžadují pro svoji aktivitu halogenid a redukční činidla. Redukční činidla, například jodacetát, který modifikuje cysteinové sulfhydryly, inakativuje DAP-I enzymy. Enzym DAP-I má optimální účinnost při hodnotě pH 5 až 6. Na rozdíl od toho enzym dDAP má optimum hodnoty pH přibližně 3,5 s Gly-Phe-pNA nebo s Gly-Arg-pNA jakožto se substráty a vykazuje význačnou účinnost se zřetelem na peptidy a bílkoviny při hodnotě pH 3,5. Enzym dDAP je prost významné účinnosti při hodnotě pH nad 6. Enzym dDAP nevyžaduje žádné přidávání redukčních činidel a je plně aktivní v přítomnosti cysteinových modifikátorů, jako je jodacetát nebo tetrathionát. Enzym dDAP je podobný hovězímu DAP-I v tom, že je neschopen štěpit peptidy s blokovaným N-zakončením, avšak dDAP na rozdíl od hovězího DAP-I je účinný se zřetelem na substráty, které mají oxidovaný methionin na N-zakončení. Hovězí DAP-I je
-2CZ 286950 B6 neschopen štěpit substráty s oxidovanými methioniny na N-zakončení. Kromě toho na rozdíl od hovězího DAP-I je enzym, dDAP schopen snadno štěpit Arg-Arg-P-naftylamidový substrát. Tato schopnost štěpit aminem zakončený Arg-Arg-dipeptidyl obsahující substrát je mnohem podrobnější aktivitě DAP-III enzymů ze savčích a mikrobiálních zdrojů, jakkoliv DAP-III enzym má optimum hodnoty pH v alkalické oblasti, zatímco dDAP působí nejúčinněji v kyselých oblastech. Subjednotková molekulová hmotnost, stanovená SDS PAGE, je přibližně 66 000 zatímco subjednotková molekulová hmotnost savčího DAP-I je přibližně 22 000.
Enzym dDAP podle vynálezu je nej užitečnější pro převádění prekurzorových polypeptidů na zpracované peptidy. Například pokud je lidský růstový hormon žádaným polypeptidem, vytlačuje se pouze prekurzor lidského růstového hormonu (v jednom případě Met-Asp-lidský růstový hormon), pak se tento prekurzor podrobuje působení sDAP k uvolnění dipeptidu Met-Asp a žádaného zpracovaného polypeptidů, lidského růstového hormonu. Zpracovávaným peptidem nemusí být „přirozený“ polypeptid divokého typu, jak je často žádoucí pro produkci analogů nebo meziproduktů. Vynález se také týká způsobu zpracování prekurzorového polypeptidů. Jakožto jiné prekurzorové peptidy, které se mohou zpracovávat enzymem dDAP, se uvádějí Met-Arg-hGH, Met-Tyr-proinzulin, Met-Arg-proinzulin, Met-Arg-proinzulinový analog (B28 Lys, B29 Pro), Met-Tyr-proinzulinový analog (B28 Lys, B29 Pro), Met-Arg-proinzulinový analog (BIO Asp, des B28-30), Met—Tyr-proinzulinový analog (BIO Asp, des B28-30). Inzulínový analog (B28 Lys, B29 Pro) je popsán v evropské přihlášce vynálezu číslo 90301224.3, zatím co inzulínový analog (BIO Asp, des B28-30) je popsán v evropské přihlášce vynálezu číslo 92305678.2. Kromě toho se může enzym dDAP používat k sekvenciálnímu odstraňování více než jedné sady dipeptidů z N-zakončení prekurzorových polypeptidů. Zpracování Met-Arg-proinzulinu a Met-Arg-proinzulinových analogů popsali Becker a kol. v americkém patentovém spise číslo 5 126249 (30. 6. 1992).
Použití enzymu dDAP k odstranění dipeptidů z prekurzorových bílkovin je výhodné v tom, že dDAP má optimum při hodnotě pH 3,5, která umožňuje provádění reakce v kyselé oblasti, kdy jsou četné prekurzorové polypeptidy rozpustné. Kromě toho konverze některých prekurzorových polypeptidů při neutrální hodnotě pH nebo větší může vést k vyšší míře meziřetězcových disulfidických dimerů nebo polymerů substrátu s doprovodnou ztrátou výtěžku produktu. Tento jev, známý jakožto disulfídické „scrambling“ je obzvláště nepříjemné, když se používá hovězího DAP-I, jelikož DAP-I vyžaduje přidávání redukčních činidel, například β-merkaptoethanolu nebo cysteinu, do reakční směsi. V kyselé oblasti hodnot pH dochází rovněž k oxidaci methioninových zbytků nižší měrou. Kromě toho je ekonomicky snadnější používat enzymu z fermentační kultury Dictyostelium discoideum, než se spoléhat na provozní produkci enzymů z živočišných zdrojů, jelikož fermentační technologie umožňuje větší konsistenci produktu a reprodukovatelnost enzymu. Vyloučení enzymů na živočišné bázi představuje konstantní zdroj vysoce čistého základního materiálu. Fermentace Dictyostelium discoideum Ax3 (ATCC 28368) následovaná odstředěním, ionexovou chromatografii, hydrofóbní interakční chromatografii a chromatografii „size exclusion chromatography“ vede k vysoce vyčištěnému roztoku dDAP enzymu, který se může ukládat nebo bezprostředně používat pro zpracování prekurzorových polypeptidů. Vynález se rovněž týká izolace a čištění dDAP z fermentační půdy.
Konverze prekurzorových polypeptidů na zpracované polypeptidy se může provádět v širokém rozmezí teplot, hodnot pH a v širokém rozmezí doby. Reakce se zpravidla provádí ve vodném prostředí vhodně pufrovaném k získání a k udržení hodnoty pH přibližně 2,5 až přibližně 5,5. S výhodou je hodnota pH prostředí přibližně 3,0 až přibližně 4,5 a především přibližně 3,0 až přibližně 3,5. Optimální hodnota pH se může mírně měnit podle substrátu. Například zpracování Gly-Phe-pNA a Gly-Arg-pNA probíhá nejrychleji při hodnotě pH přibližně 3,5, zatímco rychlost zpracování Met-Asp-hGH probíhá ochotněji při hodnotě pH přibližně 3,0 až přibližně 3,5. Zpracování Arg-Arg-βρΝΑ probíhá nejrychleji při hodnotě pH přibližně 4,5. Pracovník v oboru snadno stanoví optimální hodnotu pH pro každou specifickou reakci na základě
-3CZ 286950 B6 charakteristik, jako je stabilita a rozpustnost daného prekurzorového polypeptidu a enzymu. V některých případech se může použít solubilizačního činidla, jako je například močovina, dodecylsulfát sodný a guanidin.
Reakce zpracování se může nechat probíhat po jakoukoliv danou dobu od několika sekund po několik dnů. S výhodou se reakce nechává probíhat po dobu přibližně 1 minuty až přibližně 24 hodin a především po dobu přibližně 1 minuty až přibližně 8 hodin. Pracovníkovi v oboru je zřejmé, že se reakce snadno nastaví ke splnění všech potřebných parametrů pro jakýkoliv žádaný prekurzorový polypeptid nebo zpracovaný polypeptid.
Teplota při zpracování se může také nastavit podle jakéhokoliv substrátu. S výhodou se reakce nechá probíhat při teplotě přibližně 15 až přibližně 45 °C. Zvláště je teplota reakční směsi přibližně 20 až přibližně 37 °C a především je teplota reakční směsi přibližně 25 až přibližně 37 °V. Opět pracovník v oboru snadno určí reakční parametry, jako je doba, teplota a hodnota pH, které se mohou měnit podle potřeby v souhlase se žádaným prekurzorem nebo zpracovávaným polypeptidem.
Při reakcích se může použít nejrůznějších pufrů, přičemž je v tomto případě jediným požadavkem udržení hodnoty pH v žádaném rozmezí. Jakožto typické příklady pufrů se uvádějí příkladně fosfát sodný, acetát sodný, citrát sodný a glycin. Jakožto výhodné pufry se uvádějí acetát sodný, fosfát sodný a glycin.
Prekurzorové polypeptidy pro použití podle vynálezu se obecně připravují rekombinantní DNA technologií. Při jejich přípravě se připravuje nukleotidová sekvence kódující pro žádaný prekurzorový polypeptid o sobě známými způsoby pro takové syntézy. Tyto způsoby obecně zahrnují přípravu oligonukleotidů kódujících jak pro fragmenty žádané kódující sekvence, tak pro jejich komplementární sekvence. Oligonukleotidy jsou určeny pro překrytí fragmentu kódující sekvence se dvěma fragmenty komplementární sekvence a naopak. Oligonukleotidy se párují a spojují za konečného vytvoření žádané genové sekvence.
Sekvence se včlení do klonovacího vektoru v místě, které umožňuje produkt, pro který kóduje, aby došlo k expresi. Vhodný klonovací vektor obsahuje alespoň část expresní řídicí sekvence.
Následující příklady vynález objasňují, nijak jej však neomezují.
Příklady provedeni vynálezu
Příklad 1
Fermentace Dictyostelium discoideum
Lyofilizované kultury Dictyostelium discoideum Ax3, dodávané společností Američan Type Culture Collection, Rockville, Maryland pod objednacím číslem ATCC 28368, se nanesou v různé hustotě na agarové destičky (1,2% Difco Bacto Agar) obsahující pufrované prostředí kvasničný extrakt - pepton o složení (uváděném v g/1): Difco Yest Extract (kvasničný extrakt Difco) (7,15), Difco Bacto Pepton (14,3), dinatriumhydrogenfosfát (0,51) a kaliumdihydrogenfosfát (0,49), do kterého se přidá asepticky glukosa (10 g/1) po oddělené sterilizaci a s nastavenou hodnotou pH na 6,5 (± 0,1) hydroxidem sodným nebo kyselinou sírovou. Téhož prostředí (bez agaru) se používá pro růst kapalné kultury v objemech menších než přibližně jeden litr. Agarové destičky se inkubují po dobu 3 až 5 dní při teplotě 21 až 24 °C. Z destiček se sklidí spory, které se opatrují k předcházení snímání „potravinového bakteria“
-4CZ 286950 B6 lyofilizovaného s Ax3 kulturou, pak se naočkují do 3 ml pufrované peptonové půdy s kvasničným extraktem a inkubují se za mírného protřepávání při teplotě 21 až 24 °C. Pak se násobí buňky Dictyostelium discoideum sériovým přenosem postupně větších objemů pufrované půdy pepton - kvasničný extrakt. Každý sériový stupeň přenosu je za přibližně 10 až 25 násobného zředění a probíhá, když hustota buněk překročí přibližně 2 x 106/ml. Půdy se vždy inkubují při teplotě 21 až 24 °C za mírného míchání.
Míchané fermentace se zpravidla provádějí v podobném prostředí se sójovým peptonem (například Phytone Peptone nebo Marcor Soy Peptone) o koncentraci 2 až 14, g/1 místo peptonu Bacto Peptone v počátečním prostředí pepton - kvasničný extrakt. Sklízí se zpravidla zfermentorů s pracovním objemem 10 až 5000 litrů, vybaveném 1 až 3 turbinovými míchadly Rushton o počtu otáček 40 až 150/min. Pracuje se při teplotě 22 ± 1 °C za řízeného průtoku vzduchu 0,1 až 0,5 objemů vzduchu na objem kapalné půdy a za tlaku 20,7 až 34,4 kPa. Některé fermentace se provádějí při hodnotě pH 6,4 nastavené kyselinou sírovou a některé s rozpuštěným kyslíkem řízeným na 40 až 60 % řízením míchání a průtoku vzduchu. Dbá se toho, aby docházelo k minimálnímu střihu při manipulaci a fermentaci buněk, aby amoebv byly prosty stěn v průběhu růstu.
Obecně rostou míchané kultury Dictyostelium discoideum Ax3 za zdvojnásobení průběhu 12 až 36 hodin. Postupně se snižuje obsah rozpuštěného kyslíku (když tento obsah není řízen) a pak začne stoupat když přestane vzrůstat hustota buněk. Konečné hustoty buněk 3 x 106ml až 5 x 107 ml zřejmě omezují přenos kyslíku v takových fermentacích s nižšími hustotami buněk.
Občas se odebírají vzorky a analyzují se se zřetelem na hustotu buněk a na aktivitu GF-pNAse (příklad 3 níže). Používá se čítači komůrky Petroff-Hauser ke stanovení hustoty buněk nad přibližně 5 x 105/ml. Obecně GFpNA hydrolyzační aktivita vzrůstá v průběhu fermentace. Maximální dDAP aktivita se pozoruje za 2 až 4 dny po dosažení maximální hustoty buněk. Veškerá půda se ukládá při teplotě 4° nebo se zmrazí na teplotu -20 °C a pak se nechá roztát a analyticky se zjišťuje aktivita. Fermentace se sklízí ochlazením na méně než 20° a oddělením buněk za použití odstředivky s kontinuálním průtokem.
Příklad 2
Příprava dDAP
A. Odstraňování a koncentrace buněk
Počáteční oddělování dDAP od živného prostředí obsahujícího Dictyostelium discoideum zahrnuje oddělení buněk a odstředění. Oddělení buněk se provádí za použití odstředivky Western States centrifuge s kontinuálním průtokem. Živné prostředí, prosté buněk se zkoncentruje přibližně 20 x ultrafiltrací s tangenciálním průtokem za použití membrány o molekulové hmotnosti 50 000. Zbytek se vylije z ultrafiltrační jednotky a jednotka se promyje 50 mM tris pufrem o hodnotě pH 7 k získání další dDAP. Zbytek a promývací kapaliny se spojí k získání konečného koncentrátu, který se skladuje ve zmrazeném stavu při teplotě -20 °C po dobu několika měsíců před dalším zpracováním.
B. Čeření
Zmrazený konečný koncentrát se nechá roztát v průběhu 12 hodin při teplotě místnosti. Jakmile dojde k roztáni, čeří se konečný koncentrát před prvním stupněm sloupcové chromatografie. Čeření se dosahuje kombinací odstřeďování následovaného filtrací přes 5 mikrometrovou
-5CZ 286950 B6 membránu. Vyčeřený konečný koncentrát se nastavuje na hodnotu pH 7,0 a udržuje se na teplotě 4 až 10 °C po dobu méně než 12 hodin před anexovou chromatografií.
C. Anexová chromatografie
Prvním chromatografíckým stupněm dDAP čisticího postupu je anexová chromatografie za použití pryskyřice Pharmacia Q-Sepharose Fast Flow (FFQ). Sloupec se vyváží 50 mM tris pufrem o hodnotě pH 7. Čeřený koncentrát, prostý buněk, se nanáší lineární průtokovou rychlostí 50 cm/h při poměru 60 litrů nekoncentrovaného fermentačního prostředí na litr pryskyřice. To znamená 60 g bílkoviny na litr pryskyřice (kvantitativní hodnocení bílkovin je založeno na zkoušce Pierce BCA Protein Assay proti standardu hovězího sériového albuminu). Přibližně 250 jednotek dDAP aktivity se nanáší na litr FFQ piyskyřice. Vodivost koncentrátu prostého buněk je přibližně 5 mMHOS na cm. Po ukončeném dávkování vzorku se FFQ pryskyřice promyje třemi objemy sloupce vyvažovacího pufru. dDAP aktivita se eluuje z pryskyřice za použití lineárního gradientu 0 až 1 m chloridu sodného, 50 mM tris za hodnoty pH 7,0 nanesených na 10 sloupcových objemů za průtokové rychlosti 50 cm/h. Velikost frakce je 0,1 objemů sloupce. Sloupec FFQ se dále eluuje třemi objemy sloupce 1,0 M chloridu sodného v 50 mM tris o hodnotě pH 7. Výtok se monitoruje podle vodivosti a absorbance při 280 nm a frakce se zkoušejí na dDAP aktivitu podle jejich schopnosti štěpit kolorimetrický substrát Gly-Phe para-nitroanilid (GFpNA) při hodnotě pH 3,5. Soubor hlavního proudu („the mainstream pool“) se připraví spojením frakcí obsahujících přibližně 90 % veškeré eluované dDAP aktivity. dDAP aktivita se eluuje jakožto jediný pík o objemu přibližně dvou objemů sloupce. Soubor hlavního proudu se okyselí na hodnotu pH 3,5 za použití 10% (objem/objem) kyseliny chlorovodíkové. FFQ okyselený soubor hlavního proudu se udržuje na teplotě 4 °C po dobu kratší než dvou dnů.
D. Hydrofóbní interakční chromatografie
FFQ okyselený soubor hlavního proudu se nejdříve čistí hydrofóbní interakční chromatografií (HIC) na pryskyřici Pharmacia Phenyl Sepharose Fast flow. Sloupec má třetinu objemu anexového sloupce. Přibližně 650 jednotek aktivity se nanáší na litr pryskyřice a bílkovinovou dávkou je 4 g na litr pryskyřice (1 absorbační jednotka při 280 nm je rovna 1 mg/ml bílkoviny). FFQ okyselený soubor hlavního proudu se připravuje pro nanesení na HIC sloupce přidáním 140 g na litr síranu amonného. Hodnota pH dávky se nastaví na 3,5 a konečná vodivost je přibližně 90 mMHOS na cm. Sloupec HIC se vyváží 50 mM citrátu o hodnotě pH 3,5, obsahujícího alespoň 140 g na litr síranu amonného. Dávka se nanáší lineární rychlostí 40 cm/h a pryskyřice se promývá alespoň třemi objemy sloupce vyváženého pufru. Eluuje se dDAP aktivita z pryskyřice za použití lineárního gradientu 140 g na litr až 0 g na litr síranu amonného v 50 mM citrátu za hodnoty pH 3,5 při nanášení přes 10 objemů sloupce rychlostí 40 cm/h. Sloupec se dále eluuje alespoň třemi objemy sloupce 50 mM citrátu o hodnotě pH 3,5. Velikost frakce je 0,1 objemu sloupce. Výtok se monitoruje vodivostí a absorbancí při 280 nm a frakce se zkoušejí na dDAP aktivitu podle své schopnosti štěpit GFpNA při hodnotě pH 3,5. Soubor hlavního proudu se připravuje spojením frakcí obsahujících přibližně 90 % veškeré dDAP eluované aktivity. DDAP aktivita se eluuje jakožto jeden pík o objemu přibližně dvou sloupců. Hodnota pH hlavního proudu se nastaví na 3,5 za použití 10% (objem/objem) kyseliny chlorovodíkové nebo 10% (hmotnost/hmotnost) roztoku hydroxidu sodného. HIC soubor hlavního proudu se udržuje na teplotě 4 °C po dobu kratší než jeden den před dalším zpracováním.
E. Chromatografie, která vylučuje velikost („size exclusion chromatography“) (SEC)
Hlavní proud z HIC se dále zpracovává chromatografií SEC na s-200 Sepharose HR. Sloupec má dvojnásobek objemu sloupce HIC a má vrstvu o výšce 78 cm. Hlavní proud z HIC se připravuje pro SEC zkoncentrováním hlavního proudu z HIC na ultrafiltrační jednotce za použití membrány o molekulové hmotnosti řezu 10 000. HIC hlavní proud se koncentruje na 2,5 % objemu SEC sloupce a zadržený podíl se z jednotky vylije. Ultrafiltrační jednotka se promyje objemem
-6CZ 286950 B6 mM citrátového pufru o hodnotě pH 3,5 rovné 2,5 % objemu SEC slupce. Zadržený podíl a promývací vody se spojí, čímž se získá konečný koncentrát a jeho hodnota pH se nastaví na 3,5 za použití 10% (objem/objem) kyseliny chlorovodíkové nebo 10% (hmotnost/hmotnost) roztoku hydroxidu sodného. Vodivost konečného koncentrátu je přibližně 30 mMHO na cm. SEC sloupec se vyváží 50 mM kyseliny octové, 20 mM chloridu sodného za hodnoty pH 3,5, přičemž vodivost je přibližně 2 mMHO na cm. Konečný koncentrát se nanáší na SEC sloupec za lineárního průtoku 15 cm/h a dDAP aktivita se eluuje nanášením jednoho objemu sloupce vyváženého pufru. Velikost frakce je 0,02 objemy sloupce. Výtok se monitoruje vodivostí a absorbancí při 280 nm a frakce se zkouší na dDAP aktivitu podle jejich schopností štěpit GFpNA při hodnotě pH 3,5. Soubor hlavního proudu se připravuje spojením frakcí, obsahujících přibližně 90 % celkové eluované dDAP aktivity. DDAP aktivita se eluuje jako jeden pík o objemu přibližně 0,08 objemů sloupce. Soubor hlavního proudu SEC se může udržovat na teplotě 4 °C po dobu několika měsíců.
Čištěním dDAP za použití kombinace anexové chromatografie, hydrofóbní interakční chromatografie a chromatografie, která vylučuje velikost se získá materiál, který migruje jakožto hlavní pás na SDS-PAGE. Pás migruje k poloze na gelovém ekvivalentu ke standardu molekulové hmotnosti hovězího sérového albuminu (66 000). Bílkovina se zabarvuje za použití ISS Pro-blue skvrny. Obrazec migrace není ovlivněn přítomností nebo nepřítomností 0,1 M DTT (plus 100 °C po dobu pěti minut) v průběhu přípravy vzorku. Subjednotková molekulová hmotnost DAP-I (hovězí zdroj) se stanovuje SDS-PAGE jakožto 22 000.
Příklad 3
Aktivita dDAP
1. Štěpení GF-pNA
Enzym dDAP se normálně monitoruje podle štěpení chromogenního substrátu Gly-Phe paranitroanilid (GF-pNA). Zpravidla se zkouška provádí zředěním enzymu 11 krát na 1,0 ml 4 mM GFpNA nastaveného na hodnotu pH 3,5. Rychlost štěpení GF dipeptidu se monitoruje při teplotě 37 °C měřením vzrůstu absorbance při 405 nm. Jedna jednotka aktivity vede k 0,90 OD změně za minutu za těchto podmínek. Stanovení jednotky za minutu je možné za předpokladu extinkčního koeficientu pro volnou pNA 9,9 mM-Ι cm-1 při 405 nm.
Inhibiční profil enzymu dDAP se zřetelem na substrát GFpNA se porovnává s hovězím DAP-I za použití jodacetamidu a tetrathionátu draselného, sulfhydrylových modifíkačních činidel známých k inhibici aktivity DAP-I. Vzorky dDAP nebo hovězího slezinového DAP-I se inkubují po dobu 15 minut při teplotě místnosti v konečných koncentracích 0, 0,5, 5,0 nebo 50 mM každého inhibitoru při hodnotě pH 7 ve 100 mM pufru Tris. Inkubované roztoky se pak zředí 21 krát použitím 4 mM GFpNA za hodnoty pH 3,5. Rychlost štěpení se monitoruje měřením vzrůstu absorbance při 405 nm při teplotě 37 °C. Rychlost DAP-I štěpení GFpNA se snižuje více než o 90 % při vystavení 5 mM jodacetamidu a z 95 % se inhibuje 5 mM tetrathionátem draselným. Není žádných známek významné inhibice dDAP při žádné z testovaných koncentrací jodacetamidu nebo tetrathionátu draselného.
Optima hodnoty pH pro GFpNA schopnost štěpení dDAP se stanovují nastavením pufru sestávajícího z 0,5 Tris, fosfátu a citrátu použitím 10% kyseliny chlorovodíkové nebo 10% roztoku hydroxidu sodného na hodnotu pH 3 až 8. Enzym dDAP se zředí 20 krát v pufru obsahujícím 100 mM cysteaminu a 10 mM chloridu sodného. Hovězí DAP-I se zředí 200 krát v témže pufru. Substrátový roztok GFpNA (4 mM) se připravuje v 2% dimethylformamidu. V mikrotitrové destičce se smíchá 0,025 ml pufru Tris/fosfát/citrát o různé hodnotě pH s 0,1 ml zředěného enzymu a s 0,1 ml substrátového roztoku. Míra vzrůstu absorbance při 410 nm se
-7CZ 286950 B6 stanovuje na deskovém čítači („plate reader“) v průběhu 30 minut. Výsledky naznačují, že optima hodnoty pH dDAP štěpení GFpNA jsou 3,5 až 4,0.
2. Štěpení Gly-Arg-pNA
Připraví se čtyři vzorky mM Gly-Arg-pNA (Gr-NA) v 50 mM kyseliny octové, v 50 mM glycinového pufru při hodnotě pH 5. K nastavení hodnot pH 5,1 až 2,3 se používá kyseliny chlorovodíkové nebo roztoku hydroxidu sodného. Do 180 μΐ shora uvedeného pufrovaného substrátu se přidá 5 μΐ dDAP (49 milijednotek/ml konečných). Míra vzrůstu absorbance při 410 nm se monitoruje (za použití deskového čítače) a míra vzrůstu se porovnává s hodnotou pH reakčního roztoku. Jako sGF-pNA má GR-pNA substrát optimum hodnoty pH přibližně 3,5. Enzym má malou aktivitu při hodnotě pH pod 2,5 nebo nad 5 za použití tohoto substrátu.
3. Štěpení Arg-Arg-B-naftylamidu (RR-BNA)
Připraví se přibližně 0,25 mM (RR-BNA) buď ve 100 mM kyseliny octové, hodnota pH 3,5, nebo ve 100 mM citrátového pufru při hodnotě pH 5. Do 2 ml substrátu se přidá dDAP nebo hovězí DAP-I (přibližně 15 milijednotek/ml roztoku). Míra štěpení (monitorovaná vzrůstem fluorescence při 410 nm za excitace při 340 nm) se monitoruje. Hovězí DAP-I není schopen štěpit žádný substrát. S překvapením dDAP je schopen účinně štěpit RR-BNA substrát. Enzym dDAP není schopen štěpit blokovanou aminoskupinu Z-RR-BNA substrátu, což potvrzuje pozorování, že dDAP je DAP enzym. Optimální hodnota pH pro štěpení RR-BNA se zkouší monitorováním rychlosti RR-BNA štěpení za použití systému pufru sestávajícího z 50 mM kyseliny octové a 50 mM citrátu. Různé hodnoty pH se nastavují použitím kyseliny chlorovodíkové nebo roztoku hydroxidu sodného a 1,5 ml objemy se upravují na 2,0 s 0,5 ml lmM zásobního roztoku RR-BNA (konečná koncentrace přibližně 0,25 mM). Enzym dDAP se přidává (do přibližně 15 mU/ml) a stanovuje se míra štěpení. Optimální hodnota pro štěpení RRBNA je přibližně 4,5 s výraznou aktivitou v celém zkoušeném oboru (hodnota pH 3,5 až 5,7). Tento překvapivý výsledek naznačuje, že enzym dDAp má některé vlastnosti DAP III.
Pracovníkovi v oboru je jasné, že optimální hodnota pH pro štěpení substrátu závisí nejen na enzymu avšak rovněž na samotném substrátu, to znamená, na konstituci odstraňovaného dipeptidu jakož také na samotné indikátorové skupině. Například za použití enzymu dDAP, má Gly-Arg-pNA optimální hodnotu pH přibližně 3,5 zatím co optimální hodnota pH pro štěpení Gly-Arg-7-amino-4-methylkumarinu (GR-AMC) je přibližně 5, což znamená, že příslušná skupina může ovlivňovat vlastnosti štěpení.
B. Konverze syntetických oktapeptidů a dekapeptidů
Oktapeptid Met-Asp-Phe-Pro-Ala-Met-Ser-Leu se rozpustí na koncentraci 4 mM s 50 mM octové kyseliny za hodnoty pH 3,5. Roztok se zředí na 1 : 1 dDAp (10 ml/ml) a inkubuje se při teplotě místnosti po dobu šesti hodin. Reakce se ukončí zředěním 20 násobek v 7 M močovině obsahující 1 % kyseliny fosforečné. Vzorek s ukončenou reakcí se analyzuje vysokovýkonnou reverzní fázovou chromatografií (HPLC). Štěpné produkty se porovnávají se standardním oktapeptidem, Met-Asp dipeptidem a se Phe-Pro-Ala-Met-Ser-Leu hexapeptidem. DDAP ochotně odstraňuje Met-Asp dipeptid z neblokovaného aminozakončení oktapeptidů, není však schopen snadno štěpit objevený dipeptid Phe-Pro.
Syntetizovaný dekapeptid Met-Arg-Met-Tyr-Phe-Val-Asn-Gln-His-Leu se připravuje jakožto 1,7 mM zásobní roztok ve 100 mM glycinu za hodnoty pH 3,5. Do 0,5 mililitrů tohoto roztoku se přidá 8 mikrolitrů 6,4 mU/ml dDAP (připraveno ve 100 mM glycinu, hodnota pH 3,5). Každou hodinu se 5 mikrolitrů tohoto roztoku přímo vstřikuje do reverzního fázového chromatografického systému HPCL k monitorování štěpných produktů. Pro srovnání se nezávisle
-8CZ 286950 B6 vstřikují Met-Arg a Met-Tyr dipeptidy jakož také Met-Tyr-Phe-Val-Asn-Gln-His-Leu a PheVal-Asn-Gin-His-Leu. Enzym dDAP ochotně štěpí Met-Arg dipeptid z dekapeptidu stejně jako vzniklý Met-Tyr dipeptid. To znamená, že dipeptidy se mohou sekvencionálně odstraňovat z aminozakončení použitím dDAP.
C. Konverze Met-Asp-lidského růstového hormonu
Met-Asp-lidský růstový hormon (Met-Asp-hGH) se produkuje jako nerozpustná bílkovina vcytoplazmě E. coli. Nerozpustná bílkovina se solubilizuje, ohýbá k vytvoření vhodně disulfídicky párovaných Met-Asp-hGH a čistí se ionexovou chromatografíí. Takový prostředek se rozpouštědlově vyměňuje a hodnota pH se nastaví na 3,5. Met-Asp-hGH se ohřeje na teplotu 37 °C a stanoví se absorbance při 280 nm. Přidá se dDAp v množství 6 milijednotek na mg MetAsp-hGH. Konverzní reakce se nechá probíhat při teplotě 37 °C za míchání přibližně 4 až přibližně 6 hodin. Reakce se může zpomalit bez nepříznivého ovlivnění použitím méně enzymu, nižší teploty nebo nižší koncentrace Met-Asp-hGH. Reakční rychlost se může zvýšit přidáním většího množství enzymu, zvýšením koncentrace Met-Asp-hGH nebo zvýšením reakční teploty. Postup konverzní reakce se monitoruje reverzní fázovou chromatografíí. Konverzní reakce se ukončí rychlým přidáním hydroxidu sodného za míchání při hodnotě pH 8 a přidáním 30% (objem/objem) acetonitrilu. Reakční produkt lidského růstového hormonu, produkovaný zpracováním enzymem dDAP, se podrobuje extenzivní baterii analytických procedur včetně mapování peptidu, N-koncového sekvencování, hmotové spektroskopie, aminokyselinové analýzy a reverzní fázové chromatografíi (HPLC). Všechny hodnoty potvrzují, že se použitím enzymu dDAp získá autentický lidský růstový hormon.
D. Konverze Met-Arg-lidského proinzulinu
Met-Arg-lidský proinzulin (met-Arg-hPI) se produkuje jako nerozpustná bílkovina v cytoplazmě E. coli. Nerozpustná bílkovina se solubilizuje v 7 M močovině. Bílkovina se čistí ionexovou chromatografíí. Met-Arg-hPI se sulfítolyzuje, rozpouštědlo se zamění a ohýbá se k vytvoření nativních disulfídických vazebných párů a nativní terciární struktury. Materiál se dále čistí za použití reverzní fázové chromatografie. Vytvoří se oxidovaný methionyl (Met (O))— Arg-hPI z Met-Arg-hPI za použití peroxidu vodíku a následně se čistí za použití reverzní fázové chromatografie a lyofílizuje se.
Met-Arg-hPI je přibližně 24 mg/ml (v přibližně 20 mM glycinovém pufru, hodnota pH 3,5). Přibližně 2,4 mg tohoto materiálu se inkubuje s 0,19 milijednotkami enzymu dDAP při hodnotě pH 3,5. Reakce se nechá probíhat při teplotě místnosti. Periodicky se odebírají podíly a zředí se 10% kyselinou fosforečnou. Tento materiál se vstřikuje na neutrální reverzní fázový chromatografícký HPLC systém k monitorování zániku Met-Arg-hPI nebo (Met (O))-Arg-hPI za produkce hPI. Kromě toho se podíly ředí vhodným ředidlem k umožnění HPLC monitorovat objevení buď Met-Arg, nebo (Met (O)-Arg dipeptid. Přibližně 60 % Met-Arg hPI se v průběhu 8 hodin převede na hPI. Podobné výsledky se neočekávatelně pozorují pro konverzi (Met (O))— Arg-hPI; to znamená, že se vytváří hPI. Míra štěpení obou substrátů je podobná. Tento výsledek je překvapivý, jelikož hovězí DAP-I se jeví jako neschopný štěpit Met-(O)-X-deriváty hPI, kde znamená X Arg, Phe a Tyr. Reverzní fázová analýza také dokládá, že Met-Arg dipeptid se uvolňuje z Met-Arg-hPI ve srovnání s dipeptidem Met-Arg a pík se jeví v oblasti Met-Arg dipeptidu pro zkoušku s (Met (O)-Arg-hPI substrátem, kterým může být dipeptid Met(O)-Arg. Schopnost dDAP štěpit oxidovaný Met(O)-X substrát je výraznou zpracovatelskou předností před enzymy, které nejsou schopny převádět tuto vazbu.
-9CZ 286950 B6
E. D. Konverze Met-Arg-iidský proinzulinových analogů
Enzymu dDAP se také používá k účinné konverzi ohýbaného Met-Arg-proinzulinového analogu (B28 Lys, B29 Pro) a ohýbaného Met-Arg-proinzulinového analogu (BIO Asp, des B28-B30).
Tyto reakce se provádějí v podstatě stejně jako je vysvětleno pro konverzi Met-Arg-hPI.
Průmyslová využitelnost
Nová dipeptidylaminopeptidáza se získá izolací a čištěním z buněčné slizovky Dictyostelium discoideum. Nový DAP enzym, dDAP, má aktivitu poněkud podobnou jako DAP-I a DAP-III, avšak vysoce se od nich liší svými fyzikálními a jinými enzymatickými charakteristikami. DDAP se může používat k odstraňování dipeptidů z N-zakončení rekombinantně produkovaných prekurzorových bílkovin nebo peptidů.

Claims (3)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Dipeptidylaminopeptidáza, enzym dDAP, o molekulové hmotnosti 225 000, s optimální hodnotou pH 3,5, izolovaná z Dictyostelium discoideum.
  2. 2. Způsob přípravy enzymu dDAP podle nároku 1, izolací z kultury Dictyostelium discoideum, 25 vyznačující se tím, že
    a) se připraví prostředí prosté buněk z kultivační kapaliny,
    b) toto prostředí se zpracuje ionexovou chromatografií,
    c) eluát ze stupně podle odstavce b) se podrobí hydrofóbní interakční chromatografíi,
    d) eluát ze stupně podle odstavce c) se podrobí vylučovací chromatografíi podle velikosti.
  3. 3. Použití dipeptidylaminopeptidázy podle nároku 1 pro přípravu polypeptidového produktu.
CZ19932033A 1992-10-01 1993-09-29 Dictyostelium dipeptidylaminopeptidase, process of its preparation and use CZ286950B6 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US95553992A 1992-10-01 1992-10-01

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ203393A3 CZ203393A3 (en) 1994-04-13
CZ286950B6 true CZ286950B6 (en) 2000-08-16

Family

ID=25496954

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19932033A CZ286950B6 (en) 1992-10-01 1993-09-29 Dictyostelium dipeptidylaminopeptidase, process of its preparation and use
CZ2000793A CZ287066B6 (cs) 1992-10-01 2000-03-03 Způsob přípravy polypeptidového produktu

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2000793A CZ287066B6 (cs) 1992-10-01 2000-03-03 Způsob přípravy polypeptidového produktu

Country Status (26)

Country Link
US (2) US5565349A (cs)
EP (2) EP1094118A1 (cs)
JP (1) JP3550409B2 (cs)
KR (1) KR100291528B1 (cs)
CN (1) CN1060212C (cs)
AT (1) ATE211169T1 (cs)
AU (1) AU669735B2 (cs)
BR (1) BR9303949A (cs)
CA (1) CA2107279A1 (cs)
CZ (2) CZ286950B6 (cs)
DE (1) DE69331371T2 (cs)
DK (1) DK0595476T3 (cs)
ES (1) ES2169036T3 (cs)
FI (1) FI934305A (cs)
HU (1) HU219771B (cs)
IL (1) IL107123A (cs)
MX (1) MX9306021A (cs)
MY (1) MY113378A (cs)
NO (1) NO933503L (cs)
NZ (1) NZ248810A (cs)
PL (1) PL176930B1 (cs)
PT (1) PT595476E (cs)
RU (1) RU2096455C1 (cs)
TW (1) TW257792B (cs)
UA (1) UA27718C2 (cs)
ZA (1) ZA937243B (cs)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5573923A (en) * 1993-12-22 1996-11-12 Eli Lilly And Company Method for removing N-terminal dipeptides from precursor polypeptides with immobilized dipeptidylaminopeptidase from dictyostelium discoideum
US5614379A (en) * 1995-04-26 1997-03-25 Eli Lilly And Company Process for preparing anti-obesity protein
EP1141263A4 (en) * 1998-09-21 2002-08-28 Lilly Co Eli PRODUCTION OF SOLUBLE RECOMBINANT TRYPSIN ANALOGS
US6794159B1 (en) 1999-04-30 2004-09-21 Pharmacia Corporation Method of removing n-terminal alanine residues from polypeptides with aeromonas aminopeptidase
US6743600B1 (en) 1999-04-30 2004-06-01 Monsanto Technologies Llc Method of removing N-terminal alanine residues from polypeptides with Aeromonas aminopeptidase
US8129139B2 (en) 2009-07-13 2012-03-06 Allergan, Inc. Process for obtaining botulinum neurotoxin
EP2536749A1 (en) * 2010-02-17 2012-12-26 Elona Biotechnologies Methods for preparing human growth hormone
US11427814B2 (en) 2019-03-26 2022-08-30 Encodia, Inc. Modified cleavases, uses thereof and related kits
AU2020247918B2 (en) * 2019-03-26 2022-06-30 Encodia, Inc. Modified cleavases, uses thereof and related kits

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK55685A (da) * 1985-02-07 1986-08-08 Nordisk Gentofte Enzym eller enzymkompleks med proteolytisk aktivitet
DE3519218A1 (de) * 1985-05-29 1986-12-04 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim H(pfeil abwaerts)2(pfeil abwaerts)o(pfeil abwaerts)2(pfeil abwaerts)-bildende sarcosinoxidase, ihre herstellung und verwendung
US4894439A (en) * 1986-05-22 1990-01-16 Cetus Corporation N-terminal derivatives of tumor necrosis factor purified by microporous PTFE membranes
US4929700A (en) * 1987-04-16 1990-05-29 Cetus Corporation Production of purified, biologically active, bacterially produced recombinant human CSF-1
US5177003A (en) * 1987-04-16 1993-01-05 Phillips Petroleum Company Flavored protein products derived from Candida utilis
US5075222A (en) * 1988-05-27 1991-12-24 Synergen, Inc. Interleukin-1 inhibitors
JPH023698A (ja) * 1988-06-20 1990-01-09 Denki Kagaku Kogyo Kk ヒトリンホトキシンに対するモノクローナル抗体及びそれら抗体を産生するハイブリドーマ、並びにそれら抗体を用いたヒトリンホトキシンの精製方法、測定方法及び測定試薬
US5208218A (en) * 1988-09-19 1993-05-04 Ludwig Institute For Cancer Research T cell growth factor glycoproteins
US5179196A (en) * 1989-05-04 1993-01-12 Sri International Purification of proteins employing ctap-iii fusions
US5175251A (en) * 1989-05-04 1992-12-29 Sri International Antimetastatic peptides with laminin activity
US5126249A (en) * 1989-05-09 1992-06-30 Eli Lilly And Company Enzymatic removal of a protein amino-terminal sequence
US5173409A (en) * 1989-12-08 1992-12-22 Ecogen Inc. Recovery of bt endotoxin protein from lysed cell mixtures

Also Published As

Publication number Publication date
DE69331371D1 (de) 2002-01-31
EP0595476A2 (en) 1994-05-04
CN1060212C (zh) 2001-01-03
IL107123A0 (en) 1993-12-28
HU219771B (hu) 2001-07-30
EP1094118A1 (en) 2001-04-25
RU2096455C1 (ru) 1997-11-20
DK0595476T3 (da) 2002-02-11
KR100291528B1 (ko) 2001-06-01
ATE211169T1 (de) 2002-01-15
CZ287066B6 (cs) 2000-08-16
HUT70299A (en) 1995-09-28
TW257792B (cs) 1995-09-21
US5565349A (en) 1996-10-15
PT595476E (pt) 2002-06-28
ZA937243B (en) 1995-03-29
MX9306021A (es) 1994-05-31
CA2107279A1 (en) 1994-04-02
EP0595476B1 (en) 2001-12-19
NO933503D0 (no) 1993-09-30
AU669735B2 (en) 1996-06-20
US5565330A (en) 1996-10-15
KR940009329A (ko) 1994-05-20
AU4871993A (en) 1994-04-14
MY113378A (en) 2002-02-28
IL107123A (en) 1998-07-15
CN1085253A (zh) 1994-04-13
DE69331371T2 (de) 2002-08-14
FI934305A (fi) 1994-04-02
PL300537A1 (en) 1994-04-05
JP3550409B2 (ja) 2004-08-04
HU9302773D0 (en) 1994-01-28
UA27718C2 (uk) 2000-10-16
NZ248810A (en) 1994-12-22
NO933503L (no) 1994-04-05
FI934305A0 (fi) 1993-09-30
JPH06197759A (ja) 1994-07-19
ES2169036T3 (es) 2002-07-01
EP0595476A3 (en) 1994-07-06
CZ203393A3 (en) 1994-04-13
PL176930B1 (pl) 1999-08-31
BR9303949A (pt) 1994-04-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5614379A (en) Process for preparing anti-obesity protein
EP0746611B1 (en) Method for increasing production of disulfide bonded recombinant proteins by (saccharomyces cerevisiae)
CA2153254C (en) Cloning of enterokinase and method of use
US6333175B1 (en) Yield when disulfide-bonded proteins are secreted
US4987070A (en) Use of a 97 amino acid leader sequence from the E. coli B-galactosidase gene for the production of hanp and hptc as fusion proteins
CZ286950B6 (en) Dictyostelium dipeptidylaminopeptidase, process of its preparation and use
KR20010083900A (ko) 활성 β-NGF의 제조방법
IE56372B1 (en) Microbially produced rennet methods for its production and plasmids used for its production
Bourbonnais et al. Cleavage of prosomatostatins by the yeast Yap3 and Kex2 endoprotease
Ledgerwood et al. Endoproteolytic processing of recombinant proalbumin variants by the yeast Kex2 protease
Nomura et al. Characterization and crystallization of recombinant human cathepsin L
Gabrijelcic-Geiger et al. Human-calpain: simple isolation from erythrocytes and characterization of autolysis fragments
EP0267692B1 (en) Production of recombinant human PSTI.
KR100714116B1 (ko) 췌장의 프로카복시펩티다제 b를 사용한 인슐린의 제조
NZ272121A (en) Recombinant preparation of aprotinin and variants
JP3518868B2 (ja) バシラスリケニフォーミス菌株から由来したアミノペプチダーゼ及び天然蛋白質の製造方法
Inoue et al. Heterologous expression and site‐directed mutagenesis studies on the activation mechanism and the roles of the basic residues in the prosegment of aspergillopepsinogen I
KR0132003B1 (ko) 스트렙토마이세스 써모니트리피컨스 아미노펩티다제를 이용한 천연형 재조합 단백질의 제조방법
MXPA01009979A (en) Production of pancreatic procarboxy-peptidase b, isoforms and muteins thereof, and their use
EP1334183A2 (en) NOVEL SOLUBLE ENDOPROTEASES FOR THE i IN VITRO /i PROCESSING OF RECOMBINANT PROTEINS

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20020929