DE3532794A1 - Antibiotika, verfahren zu deren herstellung und diese verbindungen enthaltende mittel - Google Patents
Antibiotika, verfahren zu deren herstellung und diese verbindungen enthaltende mittelInfo
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Description
RtlTSTÖTTER. KINZIBACH ft PARTNER L
PATENTANWÄLTE
POSTFACH 7SO. OSOOO MÜNCHEN 43 "V
ZUGELASSENE VERTRETER BEIM
EUROPAISCHEN PATENTAMT EUROPEAN PATENT ATTORNEYS
München, 13. September I985
BETREFF:
RE
Clarges House, 6-12 Clarges Street,
London WlY 8DH, Großbritannien
London WlY 8DH, Großbritannien
Antibiotika, Verfahren zu deren Herstellung und diese Verbindungen enthaltende Mittel
" 3532734
-Τι ο Die Erfindung betrifft antibiotisch wirkende Verbindungen
und Verfahren zu deren Herstellung. Die Erfindung betrifft insbesondere Antibiotika, die durch Fermentation
von Streptomyces-Organismen erhalten werden können.
Erfindungsgemäß wird eine neue Substanzklasse bereitgestellt,
die mit Antibiotika S541 bezeichnet ist. Diese Substanzen können durch Züchtung eines bisher nicht beschriebenen
Mikroorganismus-Stammes bei kontrollierten Bedingungen hergestellt werden. Die Antibiotika S541
besitzen antibiotische und insbesondere anti-endoparasitische, anti-ectoparasitiscbe, insektizide und nematizide
Eigenschaften. Sie wirken ferner gegen Pilze und Milben. Diese Substanzen sind für die Landwirtschaft und für den
Gartenbau sowie für die Tier- und Humanmedizin von Interesse. Die Verbindungen können auch als Zwischenverbindungen
zur Herstellung weiterer wirksamer Verbindungen eingesetzt werden. Man kann die Verbindungen durch Fermentation
erhalten und im wesentlichen in reiner Form gewinnen, wie dies nachstehend beschrieben ist..
Die Antibiotika S541 stellen eine Gruppe von verwandten
Verbindungen mit der folgenden Teilformel (I) dar:
OH
(I)
Die Antibiotika S541 besitzen insbesondere die folgende Teilformel (II):
OH
CH3
Sechs Verbindungen der Teilformel (II) sind nachstehend
näher beschrieben.
Erfindungsgemäß sind sowohl die einzelnen Verbindungen
der obigen Teilformeln als auch die Mischungen davon umfaßt. Für bestimmte Anwendungszwecke, beispielsweise
in der Landwirtschaft oder im Gartenbau bzw. in der Veterinärmedizin, kann es von Vorteil sein, die Antibiotika
S541 ohne Auftrennung in die einzelnen Bestand-
jQ teile einzusetzen. Für andere Anwendungszwecke hingegen,
beispielsweise in der Humanmedizin, kann es von Vorteil sein, einzelne Verbindungen einzusetzen. Die Erfindung
bezieht sich somit auch auf eine erfindungsgemäße Verbindung, die in Mischung mit mindestens einer weiteren
2g erfindungsgemäßen Verbindung vorliegt. Erfindungsgemäß
sind auch die einzelnen Verbindungen, beispielsweise in im wesentlichen reiner Form oder im wesentlichen in
Abwesenheit anderer Makrolide umfaßt.
2Q Die ursprünglich isolierten Antibiotika S541 können ohne
Schwierigkeiten durch Chromatographie an Silika (ist nachstehend beschrieben) in zwei Komponenten mit antibiotischen
Eigenschaften, z.B. Antihelminthika, aufgetrennt werden. Diese Komponenten quenchen UV-Fluoreszenz
2g bei 254 nm. Die Komponente I ist durch einen Rf-Wert
von 0,70 bis 0,75 gekennzeichnet. Die Komponente II besitzt einen Rf-Wert von 0,39 bis 0,46. Diese Rf-Werte
wurden dünnschichtchromatographisch an Merck 5735 Silika 60-Platten (Elution mit Chloroform:Ethylacetat;
2 nn 3:1) bestimmt. Die Komponenten I und II, worin R für
-CH3 bzw. -H steht, der Antibiotika S541 stellen ein weiteres erfindungsgemäßes Merkmal dar.
Die Komponenten I und II können wiederum weitergereinigt werden und führen zu sechs Verbindungen mit der Teil-
formel (I), die antibiotische Eigenschaften besitzen.
Sie stellen beispielsweise Antihelminthika dar.
Gegenstand der Erfindung sind somit Verbindungen der allgemeinen
Formel (III):
CH3
(III)
worin R eine Methyl-, Ethyl- oder Isopropylgruppe bedeutet und
2 R ein Wasserstoffatom oder eine Methylgruppe bedeutet.
Die sechs Verbindungen der allgemeinen Formel (III) sind
mit Faktor A (R = Isopropyl, R = Wasserstoff , Faktor B
(R1 = Methyl, R2 = Methyl), Faktor C (R1 = .Methyl,
R2 = Wasserstoff , Faktor D (R1 = Ethyl, R2= Wasserstoff),
Faktor E (R1 = Ethyl, R2 = Methyl) und Faktor F (R1 =
Isopropyl, R = Methyl) bezeichnet. Die Faktoren A und C sind insbesondere bevorzugt.
Die Faktoren B, E und F erhält man aus der Komponente I,
während man die Faktoren A, C und D aus der Komponente II
erhält.
Die erfindungsgemaßen Verbindungen besitzen eine antibiotische
Aktivität. Sie wirken beispielsweise gegen Würmer, beispielsweise gegen Nematoden. Sie besitzen
insbesondere anti-endoparasitische und anti-ektoparasitische Aktivität. Die Verbindungen sind im allgemeinen
zur Bekämpfung von Parasiten, wie Ektoparasiten und Endoparasiten, geeignet. Ektoparasiten und Endoparasiten
infizieren Menschen und viele Tiere und sind insbesondere auf Tierfarmen anzutreffen. Zu diesen Tieren
zählen Schweine, Schafe, Rinder, Ziegen, Geflügel, Pferde und Haustiere, wie Hunde und Katzen. Eine parasitische
Infektion des Viehbestandes, die zu Anämie, einer schlechten Ernährung und einen Gewichtsverlust
führt,stellt einen der Hauptgründe für die weltweit erlittenen wirtschaftlichen Verluste dar.
Als Beispiele für Genera an Endoparasiten, welche Tiere und/oder Menschen infizieren, kann man nennen:
Ancylostama, Ascaridia, Ascaris, Aspicularis, Bunostomun,
Capillaria, Chabertia, Cooperia, Dictyocaulus, Dirofilaria, Enterobius, Haeraonchus, Heterakis, Necator,
Nematodirus, Nematospiroides, Nippostrongylus, Oesophagostomum, Ostertagia, Oxyuris, Parascaris,
Strongylus, Strongyloides, Syphacia, Toxascaris, Toxocara, Trichonema, Trichostrongylus, Trichinella,
Trichuris und üncinaria.
Als Beispiele für Ektoparasiten, welche Tier und/oder Menschen infizieren, kann man arthropode Ektoparasiten
nennen, wie beißende Insekten, Schmeißfliegen,Fliegen,
Läuse, Milben, saugende Insekten, Zecken und andere zweiflügelige Schädlinge.
Als Beispiele für Genera dieser Ektoparasiten, welche Tiere und/oder Menschen infizieren, kann man nennen:
Ambylomma, Boophilus, Coroptes, Culliphore, Damodex, Damolinia, Gastrophilus, Haematobia, Haematopinus,
Haemophysalis, Hyalomma, Linognathus, Lucilia, Melophygus, Oestrus, Psorergates, Psoroptes,
Rhipicephalus, Sarcoptes und Stomoxys.
Es wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen
sowohl in vitro als auch in vivo gegen eine Vielzahl von Endoparasiten und Ektoparasiten wirksam sind. Insbesondere
wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen gegen parasitische Würmer, wie Haemonchus
contortus, Ostertagia circumcincta, Trichostrongylus colubiformis, Dictyocaulus viviparis, Cooperia oncophera,
Ostertagia ostertagi und Nippostrongylus braziliensis und parasitische Milben, wie Sarcoptes sp. und
Psoroptes sp. wirksam sind.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können daher zur Behandlung
von Menschen und Tieren mit endoparasitischen und/oder ektoparasitischen Infektionen eingesetzt werden.
Die Spezies des Parasiten hängt von dem Wirt und von der hauptsächlichen Infektionsstelle ab. So infizieren beispielsweise
Haemonchus contortus, Ostertagia circumcincta und Trichostrongylus colubiformis im allgemeinen Schafe
und sind vorwiegend im Magen und im Dünndarm zu finden, während Dictyocaulus viviparus, Cooperia oncophora und
Ostertagia ostertagi im allgemeinen Rinder infizieren und vorwiegend in der Lunge, im Darm oder im Magen zu
finden sind.
Ferner wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen gegen Pilze wirken, beispielsweise gegen
- S&-
Stämme von Candida sp., wie Candida albicans und Candida glabrata, und gegen Hefen, wie Saccharomyces carlsbergensis.
Stämme von Candida sp., wie Candida albicans und Candida glabrata, und gegen Hefen, wie Saccharomyces carlsbergensis.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen sind auch wirksam
gegen den freilebenden Nematoden Caenorhabditis elegans.
Ferner wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen
zur Bekämpfung von Insekten-, Milben- und Nematodenbefall
in der Landwirtschaft, im Gartenbau, in der Forstwirtschaft, im öffentlichen Gesundheitswesen
und bei gelagerten Produkten eingesetzt werden können.
Schädlinge für Boden- und Pflanzenfrüchte, einschließlich
Getreide (z.B. Weizen, Gerste, Mais und Reis), Gemüse (z.B. Soja), Früchte (z.B. Äpfel, Weintrauben
und Zitrusfrüchte) sowie Wurzelgemüse (z.B. Zuckerrübe, Kartoffeln) können bekämpft werden.
Es wurde insbesondere gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen wirksam sind beispielsweise gegen Fruchtmilben
und Blattläuse, wie Aphis fabae, Aulacorthum circumflexum, Myzus persicae, Nephotettix cincticeps,
Nilparvata lugens, Panonychus ulmi, Phorodon humuli, Phyllocoptruta oleivora, Tetranychus urticae und Mitgliedern
der Genera Trialeuroides; Nematoden, wie Mitgliedern der Genera Aphelencoides, Globodera, Heterodera,
Meloidogyne und Panagrellus; Lepidopteren, wie Heliothis, Plutella und Spodoptera; Getreidekäfer, wie
Anthonomus grandis und Sitophilus granarius; Schwarzkäfer,
wie Tribolium castaneum; Fliegen, wie Musca
domestica; beißende Ameisen; Meniermotten; Pear psylla; Thrips tabaci; Kakerlaken, wie Blatella germanica und
Periplaneta americana und Moskitos, wie Aedes aegypti.
Erfindungsgemäß werden Verbindungen mit der oben gezeigten
Teilformel (I) bereitgestellt, die als Antibiotika eingesetzt werden können. Sie können insbesondere zur
Behandlung von Tieren oder Menschen mit endoparasitisehen, ektoparasitischen und/oder Pilz-Infektionen und
in der Landwirtschaft, im Gartenbau oder in der Forstwirtschaft als Pestizide zur Bekämpfung von Insekten,
Milben der Ordnung Acarina und Nematoden eingesetzt werden. Sie können ferner als Pestizide zur Bekämpfung
oder Regulierung von Schädlingen in anderen Umgebungen, z.B. in Läden, Gebäuden und anderen öffentlichen Orten
eingesetzt werden. Im allgemeinen werden die Verbindungen entweder an den Wirt (Tier oder Mensch oder Pflanze
oder andere Art der Vegetation) oder an die Schädlinge selbst oder an den Ort gegeben, wo sie sich befinden.
Insbesondere bevorzugt sind die oben definierten Faktoren A, B, C, D, E und F. Die erfindungsgemäßen Verbindungen
können für eine Verabreichung auf jede für die Veterinär- oder Humanmedizin übliche Art formuliert werden.
Gegenstand der Erfindung sind daher auch pharmazeutische Mittel, die eine erfindungsgemäße Verbindung enthalten,
welche so bearbeitet wurde, daß sie in der Veterinär- oder Humanmedizin eingesetzt werden kann.
Diese Mittel werden in üblicher Weise eingesetzt und .
können einenoder mehrere geeignete Träger oder Exzipienten enthalten.
Die erfindungsgemäßen Mittel können so formuliert sein, daß sie für eine parenterale (einschließlich intramammäre),
orale, rektale oder topische Verabreichung oder für Implantate geeignet sind. Ist es erforderlich,
sterile Mittel zu formulieren, beispielsweise für Injektionen (einschließlich intramammäre Präparate),
Augentropfen, Salben und Implantate dann kann man den
-Ab-
Wirkstoff selbst aseptisch herstellen oder nach der Herstellung durch Verfahren, wie γ-Bestrahlung oder Behandeln
mit Ethylenoxid, sterilisieren.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können als Injektion
zur Verwendung in der Veterinär- oder Humanmedizin formuliert werden. Sie können in Form einer Einzeldosis,
in Ampullen oder in anderen Behältern für Einzeldosen oder in Mehrfachdosisbehältern vorliegen. Erforderlichenfalls
gibt man ein Konservierungsmittel zu. Die Mittel für Injektionszwecke können als Suspensionen, Lösungen
oder Emulsionen in öligen oder wäßrigen Trägern vorliegen und können Formulierungshilfen enthalten, wie
Suspendiermittel, Stabilisierungsmittel, Solubilisierungsmittel und/oder Dispergiermittel.
Der Wirkstoff kann in alternativer Weise auch in Form eines sterilen Pulvers vorliegen, das vor der Verwendung
mit einem geeigneten Träger, beispielsweise sterilem, pyrogenfreiem Wasser, rekonstituiert wird. Zu den öligen
Trägern zählen mehrwertige Alkohole und deren Ester, wie Glycerinester, Fettsäuren, pflanzliche öle, wie
Ednußöl oder Baumwollsamenöl, Mineralöle, wie flüssiges Paraffin, und Ethyloleat und andere ähnliche Verbindungen.
Man kann auch andere Träger, wie Propylenglykol, einsetzen.
Mittel für die Veterinärmedizin können auch als intramammäre Präparate formuliert sein, bei denen der Wirkstoff
aus der Grundlage entweder langsam oder schnell freigesetzt wird. Es kann sich dabei um sterile Lösungen
oder Suspensionen in wäßrigen oder öligen Trägern handeln. Die öligen Träger können beispielsweise diejenigen
sein, die oben beschrieben sind. Sie können ferner ein Verdickungs- oder Suspendiermittel enthalten, wie weiche
oder harte Paraffine, Bienenwachs, 12-Hydroxystearin,
hydriertes Castoröl, Aluminiumstearate oder Glycerylmonostearate.
übliche, nicht-ionische, kationische oder anionische grenzflächenaktive Mittel können alleine
oder in Kombination in den Mitteln eingesetzt werden.
Für die Veterinär- oder Humanmedizin können die erfindungsgemäßen Verbindungen auch in einer für die orale
Verabreichung geeigneten Form formuliert sein. So können
IQ sie beispielsweise als Lösungen, Sirupe oder Suspensionen
oder als Trockenpulver vorliegen, das vor der Verwendung mit Wasser oder einem anderen geeigneten Träger konstituiert
wird. Gewünschtenfalls können Geschmacksund Farbstoffe vorhanden sein. Man kann auch feste
!5 Mittel, wie Tabletten, Kapseln, Pastillen, Pillen,
große Pillen (Bolus), Pulver, Pasten oder Granulate einsetzen.
Oral anzuwendende flüssige oder feste Mittel stellt man auf übliche Weise her. Diese Mittel können auch einen
oder mehrere pharmazeutisch verträgliche Träger oder Exzipienten enthalten, die fest oder flüssig sein können.
Geeignete pharmazeutisch verträgliche Träger zur Verwendung in festen Dosierungsformen sind beispielsweise
Bindemittel (z.B. pregelatinierte Maisstärke, Polyvinylpyrrolidon oder Hydroxypropylmethylcellulose);
Füllstoffe (z.B. Lactose, mikrokristalline Cellulose oder Calciumphosphat); Gleitmittel (z.B. Magnesiumstearat,
Talk oder Silika); disintegrierende Mittel «Ο (z.B. Kartoffelstärke oder Natriumstärkeglycollat);
oder Benetzungsmittel (z.B. Natriumlaurylsulfat). Die Tabletten kann man auf übliche Weise mit einem überzug
ausstatten.
Geeignete pharmazeutisch verträgliche Additive zur Ver-
Wendung in flüssigen Dosierungsformen sind beispielsweise
Suspendiermittel (z.B. Sorbitsirup/ Methylcellulose oder hydrierte eßbare Fette); Emulgatoren (z.B. Lecithin
oder Acacia); nicht-wäßrige Träger (z.B. Mandelöl, ölige Ester oder Ethylalkohol); und Konservierungsmittel (z.B.
Methyl- oder Propyl-p-hydroxybenzoate oder Sorbinsäure).
Man kann auch Stabilisierungs- und Solubilisierungsmittel dazugeben.
Oral zu verabreichende Pasten kann man auf bekannte Weise formulieren. Für die Formulierung von Pasten geeignete
pharmazeutisch verträgliche Additive sind beispielsweise Suspendier- oder Gelierungsmittel, z.B.
Aluminiumdistearat oder hydriertes Castoröl; Dispergiermittel, z.B. Polysorbate; nicht-wäßrige Träger, z.B.
Erdnußöl oder ölige Ester; und Stabilisierungs- und Solubilisierungsmittel. Die erfindungsgemäßen Verbindungen
können in der Veterinärmedizin auch dadurch verabreicht werden, daß man sie der festen oder flüssigen
Nahrung für die Tiere einverleibt. So kann man sie beispielsweise der täglichen Nahrung für die Tiere oder
dem Trinkwasser zugeben.
Für eine bukale Verabreichung können die Mittel auf übliehe
Weise in Form von Tabletten, Pasten oder Pastillen formuliert werden.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können in der Veterinärmedizin auch oral in Form eines Arzneitranks
verabreicht werden, der beispielsweise als Lösung, Suspension oder Dispersion des Wirkstoffs zusammen mit
einem pharmazeutisch verträglichen Träger oder Exzipienten vorliegt.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können für die Ve-
- /4"
terinär- oder Humanmedizin auch beispielsweise als Suppositorien, z.B. solche mit üblichen Suppositorienbasen, formuliert sein.
terinär- oder Humanmedizin auch beispielsweise als Suppositorien, z.B. solche mit üblichen Suppositorienbasen, formuliert sein.
Für die topische Verabreichung können die erfindungsgemäßen
Verbindungen in der Veterinär- und Humanmedizin als Salben, Cremes, Lotionen, Pulver, Pessare, Sprays,
Dips, Aerosole oder Tropfen (z.B. Augen- oder Nasentropfen) formuliert sein. Salben und Cremes können beispielsweise
mit einer wäßrigen oder öligen Basis unter Hinzufügung geeigneter Verdickungs- und/oder Gelierungsmittel
formuliert sein. In die Augen zu verabreichende Salben kann man auf sterile Weise unter Verwendung
steriler Bestandteile herstellen.
Die Lotionen können mit einer wäßrigen oder öligen Basis formuliert sein und enthalten im allgemeinen ferner ein
oder mehrere Emulgiermittel, Stabilisierungsmittel, Dispergiermittel, Suspendiermittel, Verdickungsmittel oder
Färbemittel.
Die Pulver kann man mit Hilfe jeder geeigneten Pulverbasis herstellen. Die Tropfen kann man mit einer wäßrigen
oder nicht-wäßrigen Basis formulieren, die ferner ein oder mehrere Dispergiermittel, Stabilisierungsmittel,
Solubilisierungsmittel oder Suspendiermittel aufweisen. Sie können auch ein Konservierungsmittel enthalten.
Werden die erfindungsgemäßen Mittel in der Veterinär- oder Humanmedizin topisch durch Inhalieren verabreicht,
dann können sie in Form eines Aerosolsprays vorliegen. Sie können auch mittels eines Pulverzerstäubers verabreicht
werden.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können zusammen mit
anderen pharmazeutischen Wirkstoffen verabreicht werden. Die tägliche Gesamtdosis der erfindungsgemäßen Verbindungen
beträgt sowohl in der Veterinärmedizin als auch in der Humanmedizin etwa 1 - 2000 ug/kg Körpergewicht,
vorzugsweise 10 - 1000 ug/kg und insbesondere bevorzugt 100 - 500 μg/kg. Diese Gesamtdosis kann man auch in
mehreren Dosen verabreichen, z.B. 1- bis 4mal/Tag.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können auf jede Weise
formuliert sein, die für einen Einsatz in der Landwirtschaft oder im Gartenbau geeignet ist. Gegenstand der
Erfindung sind daher auch Mittel, die eine erfindungsgemäße Verbindung enthalten, welche für den Einsatz im
Gartenbau oder in der Landwirtschaft angepaßt wurde. Derartige
Formulierungen sind beispielsweise flüssiger oder trockener Art. Dazu zählen beispielsweise Stäube, einschließlich
Staubbasen oder Konzentrate, Pulver, einschließlich lösliche oder benetzbare Pulver, Granulate,
einschließlich Mikrogranulate und dispergierbare Granulate, Pellets, fließbare Formulierungen, Emulsionen,
wie verdünnte Emulsionen oder emulgierbare Konzentrate, Dips, wie Wurzeldips und Samendips, Samendressings,
Samenpellets, ölkonzentrate, öllösungen, Injektionen,
z.B. Injektionen in den Stamm, Sprays, Rauch und Nebel.
Diese Formulierungen enthalten die erfindungsgemäße
Verbindung im allgemeinen zusammen mit einem geeigneten Träger oder Verdünnungsmittel. Diese Träger können
flüssig oder fest sein und dienen dazu, die Anwendung der Verbindung zu erleichtern, indem sie diese dort
dispergieren, wo sie aufgetragen wird, oder indem sie eine Formulierung bereitstellen, die vom Verwender zu
einem dispergierbaren Präparat gemacht werden kann.
Derartige Formulierungen sind gutbekannt und können
auf übliche Weise hergestellt werden. Dazu zählt beispielsweise das Vermischen und/oder Zermahlen des (der)
Werkstoffe(s) zusammen mit dem Träger oder Verdünnungsmittel,
z.B. festen Träger, Lösungsmittel oder oberflächenaktivem Mittel.
Geeignete feste Träger zur Verwendung in Formulierungen, wie Stäuben, Granulaten und Pulver, sind beispielsweise
natürliche Mineralfüllstoffe, wie Diatomit, Talk,
IQ Kaolinit, Montmorillonit, Pyrophyllit oder Attapulgit.
Hochdispergierte Kieselsäure oder hochdispergierte absorbierende Polymere können gewünschtenfalls den Mitteln
einverleibt werden. Als granulierte Adsprptionsträger
kann man poröse (z.B. Bimsstein, Erdstein, Meerschaum oder Bentonit) oder nicht-poröse (wie Calcit
oder Sand) einsetzen. Geeignete, pregranulierte, einsetzbare Materialien können organischen oder anorganischen
Ursprungs sein. Dazu zählen Dolomit und Reste von Erdpflanzen.
Geeignete Lösungsmittel zur Verwendung als Träger oder Verdünnungsmittel sind aromatische Kohlenwasserstoffe,
aliphatische Kohlenwasserstoffe, Alkohole und Glykole oder Ether davon, Ester, Ketone, Säureamide, stark
polare Lösungsmittel, gewünschtenfalls epoxidierte pflanzliche öle und Wasser.
übliche, nicht-ionische, kationische oder anionische
grenzflächenaktive Mittel, z.B. ethoxylierte Alkyl-
Q0 phenole und Alkohole, Alkalimetall- oder Erdalkalimetallsalze
von Alkylbenzolsulfonsäuren, Lignosulfonsäuren oder Sulfobernsteinsäuren oder Sulfonate von
polymeren Phenolen mit guten emulgierenden, dispergierenden und/oder benetzenden Eigenschaften können
O5 entweder alleine oder in Kombination in den erfindungs-
gemäßen Mitteln eingesetzt werden.
Stabilisierungsmittel, Mittel, welche ein Zusammenbacken verhindern, Antischaummittel, Viskositätsregulatoren,
Bindemittel und Klebemittel, Photostabilisatoren sowie Düngemittel, die Futteraufnahme stimulierende Agentien
sowie andere Wirkstoffe können den erfindungsgemäßen Mitteln gewünschtenfalls einverleibt sein. Die erfindungsgemäßen
Verbindungen können auch in Mischung mit anderen Insektiziden, milbentötenden Mitteln und wurmtötenden
Mitteln formuliert sein.
In diesen Formulierungen beträgt die Konzentration an aktivem Material im allgemeinen von 0,01 - 99%
und vorzugsweise von 0,01 - 40 Gew.-%.
Handelsprodukte werden im allgemeinen als konzentrierte Mittel bereitgestellt, die vor der Verwendung auf eine
geeignete Konzentration des Wirkstoffs, beispielsweise von 0,001 - 0,0001 Gew.-%, verdünnt werden.
Zum Einsatz im Gartenbau und in der Landwirtschaft sowie in der Veterinärmedizin kann es wünschenswert sein,
die gesamte Fermentationsbrühe einzusetzen, ohne eine Auftrennung in die Komponente oder Faktoren vorzunehmen.
Die Brühe dient dann als Quelle für die Wirkstoffe. Man kann auch die getrocknete Brühe (enthält Myzele) einsetzen.
Es ist ferner möglich, lysierte Myzele oder lebende oder tote Myzele einzusetzen, die aus der Brühe
durch Fest/Flüssig-Trennung oder Verdampfungstechniken abgetrennt wurden. Man kann auch die nach der Abtrennung
der Myzele verbleibende Fermentationsbrühe verwenden. Die Myzele kann man gewünschtenfalls pasteurisieren
oder vorzugsweise trocknen, z.B. durch Sprühtrocknung oder Walzentrocknung. Gewünschtenfalls kann man die Brühe
-κ-
Brühe oder die Myzele zu Mitteln formulieren, welche
übliche inerte Träer, Exzipienten oder Verdünnungsmittel, wie oben beschrieben, enthalten.
Aus dem oben Gesagten geht hervor, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen im allgemeinen zur Bekämpfung von
Infektionen oder von Parasitenbefall eingesetzt werden können. Dazu trägt man eine wirksame Menge einer oder
mehrerer der genannten Verbindungen auf den für die jQ Infektion oder den Befall verantwortlichen Organismus
oder oder auf die befallene Stelle auf.
Gegenstand der Erfindung ist ferner ein Verfahren zur Herstellung der zuvor definierten Antibiotika S541 oder
jg einer Komponente oder eines Faktors davon. Dazu kultiviert
man einen Organismus des Genus Streptomyces, der in der Lage ist, mindestens eine der erfindungsgemäßen
Verbindungen zu produzieren. Dadurch erhält man mindestens eine der Verbindungen. Diese kann man gewünschten-
2Q falls davon abtrennen und isolieren. Bei dem Organismus
handelt es sich vorzugsweise um einen solchen, der im wesentlichen eine oder mehrere erfindungsgemäße Verbindungen
produziert.
Taxonomische Untersuchungen haben gezeigt, daß es sich bei dem bestimmten Mirkoorganismus, der obige Substanzen
produzieren kann, um eine neue Spezies des Genus Streptomyces handelt, Dieser Mikroorganismus wurde mit
Streptomyces thermoarchaensis bezeichnet. Eine Probe _ dieses Mikroorganismus, der aus dem Boden isoliert wurde,
ist bei der Hinterlegungsstelle "National Collections of Industrial and Marine Bacteria", Torry Research Station,
Aberdeen, United Kingdom, hinterlegt worden. Diesem Mikroorganismus wurde die Nr. NCIB 12015 zugeteilt .*Έ)ΐθ
morphologischen Charakteristika und die Kulturcharakteri-35
*) hinterlegt am 10. September 1984
stika von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 sind nachstehend beschrieben. Dieser Organismus sowie weitere
Antibiotika S541 produzierende Streptomyces-Stämme sind erfindungsgemäß umfaßt. Die Erfindung ist insbesondere
auf die neue Spezies von Streptomyces gerichtet, deren Mitglieder die gleichen wesentlichen morphologischen
und kulturellen Charakteristika wie Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 besitzen.
Zur Erfindung gehören auch alle Verbindungen, die durch
Fermentation von S. thermoarchaensis NCIB 12015 gewonnen werden können und welche optische Isomere der
Verbindungen der Formel (I) darstellen.
Bei dem Organismus vom Genus Streptomyces handelt es
sich vorzugsweise um Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 oder einen Mutanten davon.
Mutanten von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 können spontan entstehen oder können durch eine Vielzahl
von Verfahren produziert werden. Dazu gehören diejenigen, die beschrieben sind in "Techniques for the
Development of Micro-organisms by H.I.Adler in Radiation and Radioisotopes for Industrial Microorganisms",
Proceedings of the Symposium, Wien 1973,
S. 241, International Atomic Energy Authority. Zu diesera Verfahren gehören die Bestrahlung mit ionisierenden
Strahlen, chemische Verfahren, z.B. Behandlung mit N-Methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidin (NTG); Hitze;
go genetische Techniken, wie Rekombination, Transduktion,
Transformation, Lysogenisation und lysogene Umwandlung, und selektive Techniken für spontane Mutanten. So wurden
beispielsweise vier Mutantenstämme von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 erhalten. Jeder dieser Stämme
O5 wurde bei der Hinterlegungsstelle "National Collections
of Industrial and Marine Bacteria, Torry Research Station, Aberdeen, United Kingdom" hinterlegt.*' Diesen
Stämmen wurden die folgenden Hinterlegungsnummern zugeteilt: NCIB 12111, NCIB 12112, NCIB 12113 und
NCIB 12114. Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12111,
12112, 12113 und 12114 und die Mutanten davon stellen
somit einen weiteren Gegenstand der Erfindung dar.
Die Mutantenstämme NCIB 12111, 12112 und 12113 wurden
IQ durch Behandlung der Sporen von Streptomyces
thermoarchaensis NCIB 12015 mit NTG behandelt. Sie wurden dann nach dem Einstufenverfahren (one-step method)
von Holliday (R. Holliday (1956) Nature V78_ 987)
charakterisiert.
Der Mutantenstamm NCIB 12114 entstand durch spontane
Mutation von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015. Von diesem Stamm wurde festgestellt, daß er gegenüber
Streptomycin resistent ist, da er, nachdem er 100 μg/ml
Streptomycinsulfat 5 Tage bei 280C ausgesetzt gewesen
war, lebensfähig blieb.
Taxonomische Untersuchungen deuten darauf hin, daß Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 ein zuvor nicht
offenbarter Mikroorganismus einer neuen Spezies darstellt. Die Eigenschaften davon sind nachstehend beschrieben
und stellen im wesentlichen diejenigen der Spezies als Ganzes dar. Erfindungsgemäß sind alle
Mitglieder dieser Spezies umfaßt. Dazu zählen auch alle
go Organismen, welche in der Hauptsache ähnliche wesentliche
Charakteristika besitzen.
Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 wächst auf den bevorzugten Sporulationsmedien, Weizenmehl, Malz/Hefea5
Agar und anorganische Salze/Stärke-Agar (Shirling, E.B. und Gottlieb, D. (1966) Int. J. Syst. Bacteriol, 16,
*) hinterlegt am 26. Juni 1985 ' „.,-*,-,..-·, ρ\~~;ΙΟ"ΠΓΟ
-Χ
Ι 313-340) üppig und produziert ein stabiles Substratmyzel
und ein Luftmyzel, das Sporen in offenen Spiralenketten trägt, die Seitenzweige der Hauthyphen darstellen.
Auf diesen Medien ist die rückwärtige Pigmentation gelb/braun. Die Sporophoren sind grau. Bei einer 100-fachen
Vergrößerung zeigen die Sporophoren 2-5 Windungen pro Kette mit 5 - TO Sporen innerhalb jeder
Windung der Spirale. Die Sporophoren enthalten durchschnittlich 20 - 50 Sporen. Elektronenmikroskopische
Untersuchungen bei einer Vergrößerung von 12 000 zeigen, daß die Sporen glattwandig sind und Ellipsenform besitzen,
mit Maßen von 0,7 μια χ 1,4 um zwischen den am
weitesten entfernten Punkten. Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 ist gram-positiv und kann
bei Temperaturen zwischen 20°C und 500C wachsen und
Sporen bilden.
Ein Vergleich der zuvor genannten Daten mit den in Bergey's Manual of Determinative Bacteriology
(Eighth Edition) veröffentlichten Beschreibungen zeigt,
daß der Organismus Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 zum Genus Streptomyces gehört.
Die Zuordnung von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 zu einer Spezies-Untergruppe wurde mit Hilfe einer
computerisierten Identifikationsmatrix durchgeführt, die von Williams et al stammt (J. Gen. Microbiol (1983)
129, 1815-1830). Für Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 wurden in den von den oben genannten Autoren
gO beschriebenen 41 taxonomischen Tests folgende Ergebnisse
erhalten:
Merkmal ~~ Ergebnis
Sporenkette verticillati
Sporenkette retinaculiaperti
Sporenkette rectiflexibiles
Sporenkette spirales +
Sporenkette spirales +
Myzelfragmentation
Sporenoberfläche glatt +
Sporenoberfläche faltig
Sporenfarbe grau +
Sporenfarbe rot
Sporenfarbe grün
Rückseite gelb/braun +
Rückseite rot/orange
Melaninproduktion
Verwertung von Adonit
Verwertung von Adonit
Verwertung von Cellobiose +
Verwertung von D-Fructose +
Verwertung von meso-Inosit
Verwertung von Inulin +
Verwertung von Mannit
Verwertung von Raffinose +
Verwertung von Rhamnoee +
Verwertung von D-Xylose +
Verwertung von DL-c-Aminobuttersäure
Verwertung von L-Histidin . +
Verwertung von L-Histidin . +
Verwertung von L-Hydroxyprolin
Abbau von Allantoin +
Abbau von Arbutin +
Abbau von Xanthin +
go Abbau von Pectin +
Abbau von Lecithin
Nitratreduktion +
Schwefelwasserstoffproduktion +
Verträglichkeit von Natriumazid (0,01% G/V)
«κ Verträglichkeit von Natriumchlorid (7%
«κ Verträglichkeit von Natriumchlorid (7%
-24-
Merkmal Ergebnis
Verträglichkeit von Phenol (0,1% G/V) +
Wachstum bei 450C + Resistenz gegenüber Neomycin (50 ug-ml )
Resistenz gegenüber Refampicin (50 μg·ml ) +
Antibiose auf Aspergillus niger LIV 131 + Antibiose auf Bacillus subtilis NCIB 3610
Antibiose auf Streptomyces murinus ISP 5091 +
Der Organismus konnte keiner der 23 Hauptspeziesgruppen
(Williams, S.I. et al. (1983) J. Gen. Microbiol 129,
1815-1830) zugeordnet werden. Der Organismus konnte auch keiner der Nebenspeziesgruppen und einzelnen Mitgliedergruppen
(wie von Williams et al definiert;
J. Gen. Microbiol (1983) 129, 1743-1813) zugeordnet werden. Die Charakteristika von Streptomyces
thermoarchaensis NCIB 12015 wurden auch verglichen mit Beschreibungen bekannter Streptomyces Spezies in
Bergey's Manual of Determinative Bacteriology (Eigth Edition), in ISP Berichten von Shirling und
Gottlieb (Int. J.Syst. Bacteriol. (1968) J_8, 69-189;
Int. J. Syst. Bacteriol. (1968) 1_8, 279-392; Int. J. Syst. Bacteriol. (1969) 19, 391-512; Int. J. Syst.
Bacteriol. (1972) 2_2, 265-394). Ein weiterer Vergleich
wurde mit neuen Spezies durchgeführt, die im International Journal of Systematic Bacteriology seit
1980 in ausreichendem Maße beschrieben sind.
Es konnte keine Übereinstimmung zwischen Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 und einer beschriebenen
Spezies festgestellt werden. Es wird daher angenommen, daß Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 das erste
bekannte Mitglied einer neuen Spezies darstellt, die zum Genus Streptomyces gehört.
Alle Mutantenstämme NCIB 12111, 12112, 12113 und 12114
haben im wesentlichen ähnliche essentielle Charakteristika wie Streptomyces thermoarchaensis. Jedoch benötigt
NCIB 12111 zum Wachstum Adenin, NCIB 12112 benötigt zum
Wachstum Serin, NCIB 12113 benötigt zum Wachstum Histidin und NCIB 12114 ist gegenüber Streptomycin
resistent.
Die Herstellung von S541durch Fermentation eines geeigneten
Streptomyces-Organismus kann man auf übliche Weise durchführen, beispielsweise durch Kultivieren des
Streptomyces-Organismus in Gegenwart assimilierbarer Kohlenstoff- und Stickstoffquellen und in Anwesenheit
von anorganischen Salzen.
Die assimilierbaren Kohlenstoff- und Stickstoffquellen
und die Mineralien können als einfache oder komplexe Nährstoffe vorliegen. Als Kohlenstoffquellen kann man
im allgemeinen Glucose, Maltose, Stärke, Glycerin, Melassen, Dextrin, Lactose, Sucrose, Fructose,
Carbonsäuren, Aminosäuren, Glyceride, Alkohole, Alkane und pflanzliche öle einsetzen. Die Kohlenstoffquellen
machen im allgemeinen 0,5 - 10 Gew.-% des Fermentationsmediums aus.
Stickstoffquellen sind im allgemeinen Sojabohnenmehl,
Maisquellwasser, Maisschlämpe, Hefeextrakte, Baumwollsamenmehl, Peptone, gemahlenes Nußmehl, Malzextrakt,
Melassen, Casein, Aminosäuremischungen, Ammoniak (Gas oder Lösung), Ammoniumsalze oder Nitrate. Man kann
auch Harnstoff oder andere Amide einsetzen. Die Stickstoffquellen machen im allgemeinen 0,1 - 10 Gew.-%
des Fermentationsmediums aus.
Man kann auch mineralische Nährsalze zum Kulturmedium
geben. Im allgemeinen setzt man Salze ein, die Natrium-, Kalium-, Ammonium-, Eisen-, Magnesium, Zink-, Nickel-,
Kobalt-/ Mangan-, Vanadium-, Chrom-, Calcium-, Kupfer-, Molybdän-, Bor-, Phosphat-, Sulfat-, Chlorid- und
Carbonationen liefern können.
Auch ein Antischaummittel kann zugegen sein, um ein exzessives Schäumen zu vermeiden. Dies wird in den erforderlichen
Abständen zugegeben.
Die Kultivierung des Streptomyces-Organismus führt man im allgemeinen bei einer Temperatur von 20 - 500C,
vorzugsweise bei 25 - 40°C, und insbesondere bei etwa 340C durch. Es ist von Vorteil dabei zu belüften und
5 das Medium in Bewegung zu halten, beispielsweise durch
Schütteln oder Rühren. Das Medium kann man am Anfang mit einer kleinen Menge einer Suspension des Mikroorganismus
animpfen, der Sporen gebildet hat. Um jedoch eine Wachstumsverzögerung zu vermeiden, kann man ein
2Q vegetatives Inokulum des Organismus herstellen, indem
man eine geringe Menge des Kulturmediums mit der Sporenform des Organismus animpft und das erhaltene vegetative
Inokulum in das Fermentationsmedium transferiert. Man kann das vegetative Inokulum jedoch auch, was bevorzugt
ist, auf ein oder mehrere Samengebiete, wo weiteres Wachstum stattfindet, transferieren, bevor man
es in das hauptsächliche Fermentationsmedium überführt.
Die Fermentation führt man im allgemeinen bei einem pH von 5,5 - 8,5, vorzugsweise 5,5 - 7,5, durch.
Die Fermentation kann man während eines Zeitraums von
2-10 Tagen, z.B. während etwa 5 Tagen, durchführen.
Wünscht man, ein Material von der gesamten Fermentation g5 abzutrennen, das die Antibiotika S541 oder irgendeine
Komponente oder irgendeinen Faktor davon enthält, oder
möchte man irgendeinen der Komponenten oder Faktoren isolieren, dann kann man dies nach üblichen Isolierungsund
Auftrennverfahren durchführen. Die erfindungsgemäßen
Antibiotika S541 sind vorwiegend in den Myzelen der Zellen enthalten. Sie werden jedoch auch in der
Fermentationsbrühe gefunden. Die Fermentationsbrühe kann entweder vor oder nach dem Klarwerden diesen Isolierungsverfahren
unterzogen werden. Eine Vielzahl derartiger Isolierungsverfahren stehen zur Verfügung.
Die Antibiotika S541 können nach einer Vielzahl von Fraktionierungsverfahren isoliert und abgetrennt werden;
beispielsweise durch Adsorption-Eluierung, Präzipitation, fraktionierte Kristallisation und Lösungsmittelextraktion.
Man kann diese Verfahren auch auf verschiedene Weise miteinander kombinieren.
Es wurde gefunden, daß die erfindungsgemäßen Verbindungen
am besten durch Lösungsmittelextraktion, Chromatographie und fraktionierte Kristallisation isoliert und
abgetrennt werden können.
Nach der Fermentation gewinnt man die Myzele auf übliche Weise, beispielsweise durch Filtrieren oder Zentrifugieren.
Danach kann man das Material beispielsweise aus den Myzelen mit einem geeigneten organischen Lösungsmittel
extrahieren. Zu diesen Lösungsmitteln zählen Ketone, z.B. Aceton, Methylethylketon oder Methylisobutylketon;
Kohlenwasserstoffe, z.B. Hexan; halogenierte Kohlenwasserstoffe, z.B. Chloroform, Tetrachlorkohlenstoff
oder Methylenchlorid; Alkohole, z.B. Methanol oder Ethanol; Diole, z.B. Propan-1,2-diol; oder Ester, z.B.
Methylacetat oder Ethylacetat. Enthalten die Myzele signifikante Wassermengen, dann setzt man vorzugsweise
-23--ein wasserlösliches Lösungsmittel ein.
Im allgemeinen ist mehr als eine Extraktion wünschenswert, um eine optimale Ausbeute zu erzielen. Vorzugsweise führt
man die erste Extraktion unter Verwendung eines mit Wasser mischbaren Lösungsmittels, wie Methanol oder Aceton,
durch. Die Antibiotika kann man als Rohextrakt durch Entfernen des Lösungsmittels gewinnen. Die Lösungsmittelextrakte
kann man dann selbst, gewünschtenfalls nach Reduktion des Lösungsmittelvolumens, beispielsweise
durch Einengen, extrahieren. In dieser Stufe ist es bevorzugt, ein mit Wasser nicht mischbares Lösungsmittel,
wie Hexan, Chloroform, Methylenchlorid oder Ethylacetat
oder Mischungen davon einzusetzen, wobei man ausreichend Wasser zugibt, um eine ausreichende Trennung der antibiotischen
Verbindungen zu erzielen. Nach Entfernen der mit Wasser nicht mischbaren Phase erhält man ein Material,
das die Antibiotika S541 enthält. Gewünschtenfalls kann man den Faktor B durch Kristallisieren aus einem geeigneten
Lösungsmittel/ z.B. Isopropanol, abtrennen.
Die Reinigung und/oder Trennung der wirksamen Bestandteile und/oder der Faktoren (vollständig oder von anderen vorhandenen
Makroliden) kann man auf übliche Weise durchführen, beispielsweise chromatographisch (einschließlich
high performance liquid chromatography) an einem geeigneten Träger, wie Silika, einem nicht-funktionellen makronetzförmigen
Adsorptionsharz, wie beispielsweise vernetzte Polystyrolharze/ wie Amberlite XAD-2-/XAD-4- oder
XAD-1180-Harze (Rohm & Haas Ltd.) oder S112-Harz
(Kastell Ltd.) oder an einem organischen lösungsmittelkompatiblen vernetzten Dextran, wie Sephadex LH20
(Pharmacia UK Ltd.), oder im Falle von hplc an Umkehrphasenträgern,
wie durch Kohlenwasserstoffe verbundenes Silika, z.B. C1„-verbundenes Silika, durchführen. Der
ι ο
Träger kann in Form eines Bettes vorliegen. Vorzugsweise ist er in einer Säule gepackt. Setzt man nicht-funktionel·
Ie makrovernetzte Harze, wie XAD-1180 oder S112 ein, dann
kann man Mischungen organischer Lösungsmittel, wie Acetonitril/Wasser, für die Elution einsetzen.
Im allgemeinen gibt man eine Lösung der Verbindungen in einem geeigneten Lösungsmittel auf die Silika- oder
Sephadex-Säule, nachdem man gewünschtenfalls das Lösungsmittelvolumen
reduziert hat. Die Säule kann man gewünschtenfalls waschen. Dann eluiert man mit einem
Lösungsmittel geeigneter Polarität. Setzt man Sephadex und Silika ein, dann kann man Alkohole, wie Methanol;
Kohlenwasserstoffe, wie Hexan; Acetonitril; halogenierte
Kohlenwasserstoffe, wie Chloroform oder Methylenchlorid; oder Ester, wie Ethylacetat, als Lösungsmittel verwenden.
Man kann auch Kombinationen dieser Lösungsmittel untereinander oder mit Wasser einsetzen.
Die Elution und Trennung/Reinigung der erfindungsgemäßen
Verbindungen kann man auf übliche Weise überwachen, beispielsweise chromatographisch, z.B. dünnschichtchromatographisch,
und durch high performance liquid chromatography, oder indem man sich die zuvor beschriebenen
Eigenschaften der Verbindungen zunutze macht.
Bei der Chromatographie an Silika, vorzugsweise unter Verwendung eines Eluierungsmittels, wie Chloroform .'Ethylacetat,
trennen sich die Antibiotika S541 ohne Schwierigkeiten in die Komponenten I und II auf, wobei die Komponente
I zuerst eluiert wird. Die Faktoren B, E und F können dann ohne weiteres chromatographisch aus der
Komponente I erhalten werden, beispielsweise durch hplc. In ähnlicher Weise können die Faktoren A, C und D ohne
weiteres aus der Komponente II isoliert werden. In alter-
-2ή-
nativer Weise kann man den Faktor B von den Faktoren E
und F durch Kristallisierung aus einem Alkohol, wie Methanol oder Isopropanol, abtrennen. Die Mutterflüssigkeiten,
welche die Faktoren E und F enthalten, kann man gewünschtenfalls weiter reinigen, beispielsweise
chromatographisch an Silika. Die Faktoren E und F isoliert man mittels hplc. Hat man die Faktoren einmal erhalten,
dann kann man sie weiter durch Kristallisierung aus beispielsweise Methanol, Isopropanol oder einer
Methanol/Wasser-Mischung reinigen. Die Erfindung umfaßt somit auch die Verbindungen in kristalliner Form.
Durch eine geeignete Kombination der zuvor beschriebenen
Arbeitsweisen kann man die erfindungsgemäßen Verbindungen
als Feststoffe isolieren. Dabei kann man die Reihenfolge, in welcher man die oben beschriebenen Reinigungsstufen
durchführt, und auch die Art der Reinigung in einem großen Bereich variieren.
So wurde der Faktor B als kristalliner Feststoff mit einer Reinheit größer als 90% erhalten. In ähnlicher Weise wurden
die Faktoren A, C, D, E und F in einer Reinheit größer als 90% erhalten. Die Faktoren können jedoch, wie dies
oben ausgeführt ist, je nach dem beabsichtigten Einsatzgebiet in unterschiedlichen Reinheitsgraden eingesetzt
werden. Zum Einsatz in der Humanmedizin ist eine Reinheit von mindestens 90% und vorzugsweise von größer als
95% wünschenswert. Für die Verwendung in der Veterinärmedizin oder in der Landwirtschaft oder im Gartenbau
sind niedrigere Reinheitsgrade ausreichend, beispielsweise 50% oder niedriger.
Die nachfolgenden Beispiele dienen zur Erläuterung der Erfindung. Dabei werden folgende Abkürzungen benutzt:
tlc = Dünnschichtchromatographie (unter Verwendung von
Merck 5735 Sllika 60 Platten; entwickelt mit
CHCl3:Ethylacetat (3:1), soweit nichts anderes
angegeben ist);
CCM = Säulenchromatographie, gepackt mit Merck 7734 Silika 60 (200 χ 4 cm Säule, sofern nichts anderes
angegeben ist) und eluiert mit CHCl-:Ethylacetat (3:1), sofern nichts anderes angegeben
ist;
hplc = high performance liquid chromatography; PE = Petrolether (Siedepunkt 60 - 80°C, sofern nichts
anderes angegeben ist);
1 = Liter;
EA = Ethylacetat.
1 = Liter;
EA = Ethylacetat.
Bei den in den Beispielen genannten Medien A, B und C handelt es sich um folgende:
Medium A gl~*
D-Glucose 15,0
Glycerin 15,0
So j apepton 15,0 NaCl 3,0
CaCO3 1,0
Man füllt mit destilliertem Wasser auf 1 1 auf und stellt den pH mit einer wäßrigen NaOH-Lösung auf pH 7,0
ein, bevor man sterilisiert.
Medium B gl"1
D-Glucose 2,5
Malzdextrin MD 3OE (Roquette (UK)Ltd) 25,0
Arkasoy 50 (British Arkady Co. Ltd.) 12,5
Melassen 1,5
K2HPO4 0,125
Calciumcarbonat 1,25
MOPS (3-(N-Morpholino)-propansulfonsäure) 21,0
Man füllt mit destilliertem Wasser auf 1 1 auf und stellt den pH mit 5N NaOH auf 6,5 ein, bevor man sterilisiert.
Medium C | gi"1 |
D-Glucose | 2,5 |
Malzdextrin MD 3OE (Roquette (UK) Ltd.) | 25,0 |
Arkasoy 50 | 12,5 |
Zuckerrübenmelassen | 1,5 |
K2HPO4 | 0,125 |
CaCO3 | 1,25 |
Silikon 1520 (Dow Corning) | 0,625 |
Man füllt mit destilliertem Wasser bis 1 1 auf und stellt den pH auf 6,5 ein, bevor man sterilisiert.
Sporen von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 wurden durch Impfung auf Schrägagar übertragen, der aus
folgenden Bestandteilen aufgebaut war:
Hefeextrakt (Oxoid L21) 0,5
Maisextrakt (Oxoid L39) 30,0
mykologisches Pepton (Oxoid 40) 5,0
Agar Nr. 3 (Oxoid L13) 15,0
Mit destilliertem Wasser wurde auf 1 1 aufgefüllt, der pH auf etwa 5,4 eingestellt und 10 Tage bei 280C inkubiert.
Der entwickelte Schrägagar wurde dann mit einer 10%igen Glycerinlösung (6 ml) bedeckt und mit einem
sterilen Werkzeug gekratzt, um die Sporen und das Myzel zu lockern. 0,4 ml Aliquots der erhaltenen Sporensuspension
wurden in dünne sterile Polypropylenröhrchen überführt,die dann mit Hitze verschlossen wurden und im
Dampf vom flüssigen Stickstoff bis zur Verwendung gelagert wurden.
Der Inhalt eines einzelnen dünnen Röhrchens wurde verwendet, um 10 ml des Mediums A zu beimpfen, das dann
3 Tage auf einem Rotationsschüttler bei 250 UpM (Durchmesser der Umlaufbahn: 50 mm) bei 280C inkubiert wurde.
Dieses inkubierte Medium wurde eingesetzt, um 15 Röhrchen und zwei 250 ml Erlenmeyer-Kolben, die 10 ml bzw.
50 ml Medium B enthielten, anzuimpfen (Gehalt 2%).
Die Röhrchen und Kolben wurden 5 Tage bei 280C gehalten.
Die Kulturen wurden dann getrennt im Vakuum filtriert. Die Zellen wurden 30 min mit Methanol geschüttelt,
wobei das Methanolvolumen demjenigen des Kulturfiltrats entsprach.
Von den Extrakten der Zellen, die sowohl in den Röhrchen als auch in den Kolben gewachsen waren, wurde festgestellt,
daß sie gegen Caenorhabditis elegans wirksam sind. Diese Myzelextrakte wurden zusammengegeben, zur
Trockene eingeengt und mit Methanol zu einem Konzentrat (6 ml) reextrahiert, das auf eine Säule gegeben wurde,
die mit Sephadex LH20 (110 χ 2,5 cm) gepackt war. Es
wurde mit Methanol eluiert. Es wurden 10 ml Fraktionen gesammelt.
Die Fraktionen 21-28 wurden vereinigt und eingeengt, wobei ein öliger Rückstand (156 mg) erhalten wurde, der
QQ mit CHCl-:EA (3:1) extrahiert wurde. Es wurde ein
Extrakt (3 ml) erhalten, der einer CCM (55 χ 2,5cm Säule] unterworfen wurde. Es wurden 10 ml Fraktionen
gesammelt und mittels tlc unter Verwendung von Platten, die einen Fluoreszenzindikator enthielten, analysiert.
Die Fraktionen 20 bis 23 und 36 bis 44 führten zu zwei
-3h
Hauptflächen, welche die Fluoreszenz unterdrückten. Diese
wurden als Komponente I (Rf 0,70) und als Komponente II (Rf 0,43) identifiziert. Durch Abziehen der Fraktionen
20-23 wurde die Komponente I als Feststoff (9 mg) erhalten;
^^238 nm, Εχ34Ο; Amax245 nm, E*35O; und Amax254 nm,
E1 200.
Durch Einengen der Fraktionen 36 bis 44 wurde die Komponente II als Feststoff (11 mg) erhalten;
1 1
λ 238 nm, E1440; λ 245 nm, E1 460; und λ 254 nm,
max ι max i max
E1 280.
Zwei 250 ml Erlenmeyer-Kolben, die 50 ml Medium A enthielten,
wurden jeweils mit 0,2 ml einer Sporensuspension von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 angeimpft,
die aus dem dünnen Röhrchen stammte, das gemäß Beispiel 1 hergestellt worden war. Die Kolben wurden
3 Tage auf einem Rotationsschüttler bei 250 UpM (Durchmesser
der Umlaufbahn: 50 mm) bei 280C inkubiert. Der
Inhalt der beiden Kolben wurde zum Animpfen eines 20 1 Fermentergefäßes verwendet, das 12 1 Medium B enthielt.
Die Kultur wurde nach 5-tägigem Wachstum geerntet und
wie in Beispiel 3 beschrieben bearbeitet.
Nach einem 5-tägigen Wachstum bei 280C wurde die gemäß
Beispiel 2 erhaltene Fermentationsbrühe (12 1) geerntet und zentrifugiert (4 200 UpM bei 10°C und 15 min). Das
Zellpellet wurde mit 5 1 Methanol vermischt und 20 h bei 40C stehengelassen. Der Myzelextrakt wurde filtriert,
bei 40°C eingeengt und nach Zugabe von 100 ml Butan-1-ol
353279A
-W
einer azeotropen Destillation unterworfen. Der Extrakt wurde dann mit 5 χ 200 ml Methanol behandelt. Die vereinigten Extrakte wurden auf 100 ml eingeengt und auf eine Sephadex LH20-Säule (112 χ 5 cm) gegeben. Die Säule wurde mit Methanol eluiert. Nach einem Vorlauf von 200 ml wurden 50 ml Fraktionen gesammelt. Die Fraktionen 40-90 wurden vereinigt und zu einem öligen Rückstand (3,85 g) eingeengt. Dieser Rückstand wurde mit 77 ml. CHCl,:EA (3:1) extrahiert, filtriert und dann einer CCM unterworfen. Nach einem Vorlauf von 200 ml wurden etwa 15 ml Fraktionen gesammelt.
einer azeotropen Destillation unterworfen. Der Extrakt wurde dann mit 5 χ 200 ml Methanol behandelt. Die vereinigten Extrakte wurden auf 100 ml eingeengt und auf eine Sephadex LH20-Säule (112 χ 5 cm) gegeben. Die Säule wurde mit Methanol eluiert. Nach einem Vorlauf von 200 ml wurden 50 ml Fraktionen gesammelt. Die Fraktionen 40-90 wurden vereinigt und zu einem öligen Rückstand (3,85 g) eingeengt. Dieser Rückstand wurde mit 77 ml. CHCl,:EA (3:1) extrahiert, filtriert und dann einer CCM unterworfen. Nach einem Vorlauf von 200 ml wurden etwa 15 ml Fraktionen gesammelt.
Die Fraktionen 124 bis 142, welche die Komponente I enthielten, wurden vereinigt und zu einem Feststoff
(253 mg) eingeengt. Davon wurden 216 mg mittels hplc (Zorbax ODS, 25 χ 2,1 cm, 80% CH3CN/H2O) gereinigt.
Die Fraktionen 250 bis 320, welche die Komponente II enthielten, wurden vereinigt und zu einem Feststoff
(602 mg) eingeengt, von dem 540 mg mittels hplc (wie bei den Franktionen 124-142) gereinigt wurden. Es wurden
Fraktionen von verschiedenen Läufen gesammelt.
Das von der hplc-Süule eluierte Material wurde UV-spektroskopisch
bei 243 nm überwacht. Bei dieser Wellenlänge absorbierende Peaks (Fraktionen) wurden getrocknet und
i) auf Aktivität gegen Caenorhabditis elegans getestet und
ii) dünnschichtchromatographisch analysiert.
Vier Peaks, die gegen Caenorhabditis elegans aktiv waren, besaßen auch einen Rf-Wert in einem Bereich von 0,39 bis
0,46 oder 0,70 bis 0,75.
Die Komponente I führte zu einem Peak mit einem Rf-Wert von 0,70 bis 0,75. Dieser Peak wurde mit Faktor B be-
zeichnet. Die Komponente II ergab drei Peaks mit Rf-Wertenvon 0,39 bis 0,46. Diese Peaks wurden als
Faktoren A, C und D bezeichnet.
Der Faktor A wurde von der hplc-Säule von 260 bis 340 ml
nach Injektion der Probe eluiert und besaß einen Rf-Wert von 0,44 (dünnschichtchromatographisch). Der Faktor B
wurde von der hplc-Säule zwischen 270 bis 310 ml nach der Injektion der Probe eluiert und besaß einen Rf-Wert
von 0,72 (dünnschichtchromatographisch). Der Faktor C wurde von der hplc-Säule zwischen 160 bis 180 ml nach
der Injektion der Probe eluiert und besaß einen Rf-Wert von 0,4 (dünnschichtchromatographisch). Der Faktor D
wurde von der hplc-Säule zwischen 220 bis 250 ml nach Injektion der Probe eluiert und besaß einen Rf-Wert
von 0,42 (dünnschichtchromatographisch). Die weiteren
Charakteristika der Faktoren A, B, C und D sind nachfolgend beschrieben.
0,4 ml einer Sporensuspension des Organismus Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015, die von einem
gemäß Beispiel 1 hergestellten dünnen Röhrchen genommen wurde, wurde zum Animpfen eines 250 ml Erlenmeyer-Kolbens
verwendet, der 50 ml Medium A enthielt. Der Kolben wurde 4 Tage bei 28°C auf einem Rotationsschüttler bei 250 UpM inkubiert (Durchmesser der
Kreisbewegung: 50 mm). 8 ml Portionen wurden dann verwendet, um jeweils zwei 2 1 Kolben mit flachem Boden
anzuimpfen, die jeweils 400 ml desselben Mediums enthielten. Danach wurde 3 Tage bei denselben Bedingungen
inkubiert.
Der Inhalt der beiden Kolben wurde dann zum Impfen
eines 70 1 Fermentergefäßes verwendet, das 40 1 Medium B
enthielt, dem Silicone 525 (Dow-Corning; 0,0625% (v/v)) zugesetzt war. Die Fermentation wurde unter Rühren durchgeführt.
Dabei wurde so stark belüftet, daß der gelöste Sauerstoffgehalt größer als 20% der Sättigung war.
Silikon-Ant!schaummittel wurde zugegeben, wenn es erforderlich
war. Nach 10 Tagen wurde die Fermentation geerntet. Die Brühe (40 1) wurde mittels Zentrifugieren
(15 000 UpM) geklärt. Der überstehende Rest wurde mit Wasser (5 1) verdrängt. Die gewonnenen Zellen (1,4 kg)
wurden bei -20°C gefroren.
Nach 1 Woche wurden die gefrorenen Zellen aufgetaut, in 15 1 Methanol suspendiert und vorsichtig 15h gerührt.
Die Suspension wurde dann filtriert und der feste Rückstand wurde mit 10 1 Methanol reextrahiert.
Das vereinigte Filtrat (25 1) wurde mit 12 1 Wasser verdünnt und mit 25 1 PE extrahiert. Nach 30 min wurden
die Phasen durch Zentrifugieren getrennt.
Die untere, Methanolphase wurde dreimal mit PE (25 1, 15 1 und 15 1) reextrahiert. Die vereinigten PE-Phasen
(80 1) wurden konzentriert, indem sie dreimal durch einen Pfaudier 8.8-12V-27 wiped-film-Verdampfer (Dampfdruck
0,1 bar, Dampftemperatur 20°C, Wasserdampftemperatur 1270C) gegeben wurde. Das Konzentrat (8 1)
wurde über Natriumsulfat (1 kg) getrocknet und bei vermindertem Druck bei 400C in einem Rotationsfilmverdampfer
weiter konzentriert. Der ölige Rückstand (15 ml) wurde in einer Mischung von CHCl3 und EA (70 ml,
3:1 Volumen/Volumen) gelöst und einer CCM unterworfen. Es wurden Fraktionen von etwa 40 ml nach einem Vorlauf
von 1 400 ml gesammelt.
Die Fraktionen 45-65 wurden vereinigt und eingeengt,
wobei der Faktor B (940 mg; wie in Beispiel 3 definiert) erhalten wurde, der zweimal aus Methanol und schließlich
aus Nitromethan kristallisiert wurde. Die Kristalle wurden einer Einzelkristall-Röntgenstrukturanalyse unterworfen.
Es zeigte sich, daß sie orthorhombische, klare Prismen waren mit a = 10.171(3), b = 13.317(5),
c = 25.032 (7)Ä, V = 3391Ä3, Z = 4, Raumgruppe Ρ2<.212'1#
D =1,18 gem""3, R = 0,053 für 2169 beobachtete unabhängige
Reflexe (Θ ^i 58°), gemessen mit einem Diffrakto-
meter mit Kupfer-Ka-Strahlung (A= 1.54178A). Die
röntgenographisch bestimmte Kristallstruktur ist in Fig.5 gezeigt.
Ein Inokulum von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015
wurde wie in Beispiel 4 beschrieben hergestellt, wobei die Wachstumsperiode 2 Tage betrug. Dieses Inokulum wurde
zum Animpfen eines Fermentergefäßes (70 1) verwendet, das 40 1 Medium B enthielt, das anstelle von Silicone 525
mit Polypropylen 2000 (0,06% Volumen/Volumen) versetzt war. Polypropylen 2000 wurde erforderlichenfalls während
der Fermentation zugegeben, um die Schaumbildung unter Kontrolle zu halten. Die Fermentation wurde bei 280C
unter Rühren durchgeführt. Dabei wurde derart belüftet, daß der gelöste Sauerstoffgehalt größer war als 30% der
Sättigung. Nach 24-stündiger Fermentation wurde ein Teil der Brühe (9 1) in einen Fermenter (700 1) überführt,
der 450 1 eines Mediums enthielt, das sich wie folgt zusammensetzte:
D-Glucose | (MD 30E) · | 2,8 |
Malzdextrin | 27,8 | |
Arkasoy 50 | 13,9 | |
Melassen | 1,7 | |
K2HPO4 | 0,14 | |
CaCO3 | (Dow Corning) | 1,39 |
Silikon 525 | Vor der Sterilisierung auf pH 6, | 0,06% (v/v) |
5 eingestellt. |
Die Fermentation wurde bei 280C unter Schütteln durchgeführt.
Dabei wurde so stark belüftet, daß der gelöste Sauerstoffgehalt größer war als bei 20% Sättigung. Polypropylen
2000-Antischaum wurde erforderlichenfalls hinzugegeben. Nach 2 Tagen wurde der pH durch Zugabe von H-SO4
auf 7,2 eingestellt. Die Fermentation wurde nach 5 Tagen geerntet.
Die Brühe (450 1) wurde durch Zentrifugieren geklärt. Der überstehende Rest wurde mit 20 1 Wasser verdrängt. Die
gewonnen Zellen (25,5 kg) wurden 1 h in einem so großen Volumen Methanol gerührt, daß ein Gesamtvolumen von 75 1
erhalten wurde. Die Suspension wurde filtriert und der feste Rückstand wurde mit 35 1 Methanol reextrahiert und
filtriert. Das vereinigte Filtrat (87 1) wurde mit 40 1 Wasser verdünnt und mit PE extrahiert. Nach 30 min wurden
durch Zentrifugieren die Phasen getrennt. Die untere Methanolphase wurde mit 30 1 PE nach der Zugabe von 40 1
Wasser reextrahiert. Nach Abtrennen wurde die untere Phase wiederum mit 30 1 PE extrahiert. Die vereinigten
PE-Phasen (85 1) wurden konzentriert, indem sie dreimal durch einen Pfandler 8.8-12V-27 wiped-film-Verdampfer
(Dampfdruck 0,1 bar, Dampftemperatur 20°C, Wasserdampftemperatur
1270C) gegeben wurden. Das Konzentrat (9 1) wurde mit Natriumsulfat (2 Ig) getrocknet und bei ver-
minderten» Druck bei 40°C in einem Rota-Filmverdampfer
eingeengt. Der ölige Rückstand {130 g) wurde in CHClgelöst, so daß 190 ml erhalten wurden. Dies wurde einer
CCM unterworfen (gepackte Säule und gewaschen (500 ml) in CHCl3). Fraktionen von etwa 40 ml wurden nach einem
Vorlauf von 1 400 ml gesammelt.
Die Fraktionen 32-46 wurden vereinigt und zu einem öl
(21,2 g) eingeengt. Die Fraktionen 47-93 wurden vereinigt und zu einem öl (20,1 g) eingeengt, das in
CHCl3:EA (3:1) gelöst wurde (50 ml). Dann wurde eine CCM
durchgeführt, wobei Fraktionen von etwa 40 ml nach einem Vorlauf von 1 400 ml gesammelt wurden. Die Fraktionen
22-36 wurden vereinigt und zu einem öl (3,1 g) eingeengt, das zu dem aus den Fraktionen 32-46 von der
ersten Säule erhaltenen öl gegeben wurde. Die vereinigten öle wurden in siedendem Methanol (4 ml) gelöst, das
dann zu heißem Propan-2-ol (20 ml) gegeben wurde, wobei
nach Stehen kristalliner Faktor B (2,57 g) erhalten wurde.
Nach der Kristallisation des Faktors B wurde die Mutterflüssigkeit
zu einem öl eingeengt, das in einem gleichen Volumen CH2Cl2 gelöst und auf eine Säule (30 χ 2,2 cm)
von Merck Kieselgel 60 (70 - 230 mesh ASTM, Art.Nr. 7734; gepackt in CH-Cl-) gegeben wurde. Das Bett wurde mit
CH2Cl2 (2-Bettvolumen) gewaschen und mit CHCl3:EA (3:1)
(2-Bettvolumen) eluiert. Nach Abziehen des Eluats wurde ein öl erhalten, das in Methanol gelöst wurde und mit
dem eine präparative hplc an Spherisorb S5 ODS-2 (250 mm χ 20 mm, Phase Sep.Ltd.) durchgeführt wurde.
Die Probe (5 ml) wurde während eines Zeitraums von 1 min auf die Säule gepumpt. Die Säule wurde mit Acetonitril:
Wasser (7:3) bei den folgenden Bedingungen eluiert:
-3-8-
Zeit (min) | Fluß (ml/min) | ) } |
I ηjektions zeit |
0,00 1 ,00 |
0,00 0,00 |
||
1 , 10 | 30,00 | ||
39,5C | 30,00 | ||
40,00 | 35,00 | ||
75,00 | 35,00 |
Das von der hplc-Saule eluierte Material wurde UV-spextro~
skopisch bei 238 run überwacht. Einengen der vereinigten Fraktionen mit Peaks, die bei 26,3 min eiuj«rten,
ergab den Faktor E als Feststoff. Einenger der vereinigten Fraktionen :sit Peaks, die bei 36,4 κ-".η
eluierten, ergab den Faktor F als Feststoff. Die weiteren
Charakter istika der Faktoren E und F s.i:»d nachfolgend
beschrieben.
Eine nach 117 h geerntete Fermentationsbrühe {ähnlich der
in Beispiel 2 hergestellten wurde in einem Autoklaven
(1210C, 1 h) behandelt, auf Raumtemperatur gekühlt ü.-.d
mit einem Magnetrührer gerührt, so daß eine homogene Zeilsuspension erhalten wurde. Zwei Portionen (2 ml)
wurden zentrifugiert (12 0OC g; 2 min; Raumtemperatur .
Die überstehenden Flüssigkeiten wurden dexantieit un\
die zurückbleibenden Zellen wurden in 2 al Wasser suspendiert, gründlich gemischt und wiederur zentrifugiert
("12 000 g; 2 min; Raumtemperatur) . Nach ' bdekantierer
der überstehenden Flüssigkeiten wurden d e Zellen zweimal mit destilliertem Wasser (2 ; .1 Portionen' gewesenen. .-:.ie
gewaschenen Zellen wurden dar.n gründlich entweder mit 2 ml Wasser oder mit 2 ml Mehanol vermischt und bei
Raumtemperatur 1,5 h stehenc--lassen, wöbe", gelegentlich
geschüttelt wurde. Die Suspensionen wurde::, wiederum
BAD ORIGINAL
zentrifugiert (12 OOO g; 2 min; Raumtemperatur) und die überstehenden Flüssigkeiten wurden sequentiell in Wasser
verdünnt. Die Zellen von der wäßrigen Suspension wurden in Wasser resuspendiert und unmittelbar sequentiell in
Wasser verdünnt. Portionen (10 μΐ) jeder dieser Verdünnungen
wurden zu einer Suspension (200 μΐ) des Nematoden Caenorhabditis elegans in einer Pufferlösung
gegeben, die Na3HPO4 (6 g/l), K3HPO4 (3 g/l), NaCl (5 g/l)
und MgSO4-7H3O (0,25 g/l) enthielt und auf pH 7,0 eingestellt
war. Nach 4 h wurden die Nematodensuspensionen begutachtet, um festzustellen, welche Verdünnungen der
Testmischung eine völlige Inhibierung der Motalität (größer als 98%) der Nematoden in der Assay-Suspension
bewirkt hatten. Es wurde gefunden, daß 1 zu 5, 1 zu 25, 1 zu 250 und 1 zu 500 Verdünnungen des Methanolextrakts,
1 zu 5, 1 zu 25, 1 zu 250, 1 zu 500 und 1 zu 1000 Verdünnungen der Zellsuspension und 1 zu 2, 1 zu 4 und 1 zu
Verdünnungen des wäßrigen Extrakts eine derartige Inhibierung der Nematoden bewirkten, wenn 10 ul zu 200 μΐ der
Nematodensuspensionen gegeben wurden.
250 ml Erlenmeyer-Kolben, die entweder 50 ml Medium A oder 50 ml Medium B enthielten, wurden mit 0,4 ml einer
Sporensuspension von Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 geimpft, die aus einem gemäß Beispiel 1 hergestellten
dünnen Röhrchen stammte. Die das Medium A oder Medium B enthaltenden Kolben wurden 2 Tage bei 280C
QQ auf einem Rotationsschüttler bei 250 UpM (Durchmesser der
Kreisbewegung: 50 mm) inkubiert. 8 ml Portionen aus jedem Medium wurden dann zum Animpfen von 2 1 Kolben mit flachem
Boden eingesetzt, die 400 ml desselben Mediums (A bzw. B) enthielten. Diese Kolben wurden 2 Tage bei denselben
Bedingungen inkubiert.
-4Θ-
Zwei 70 ml Fermenter wurden jeweils mit zwei Kolben des Mediums A angeimpft und ein weiterer 70 1 Fermenter wurde
mit zwei Kolben des Mediums B angeimpft. Jeder Fermenter enthielt 40 1 des Mediums C.
Die Fermentationen wurden bei 340C unter Schütteln durchgeführt,
wobei so stark belüftet wurde, daß der gelöste Sauerstoffgehalt größer war als 30% des Sättigungsgehalts.
Nach einer etwa 24-stündigen Fermentation wurde der pH durch Zugabe wäßriger H_SO. auf 7,2 eingestellt. Erforderlichenfalls
wurde Polypropylenglykol 2000-Antischaummittel zugegeben. Nach 5 Tagen wurden diese Fermentationen
geerntet und vereinigt.
Ein weiterer 70 1 Fermenter, der Medium B enthielt, dem Silicone 1520 (0,06%) zugegeben worden war, wurde
ebenfalls mit zwei Medium B enthaltenden Kolben angeimpft. Die Fermentation wurde bei 280C unter Schütteln
durchgeführt. Dabei wurde so stark belüftet, daß der gelöste Sauerstoffgehalt größer war als 30% des Sättigungsgehalts.
Erforderlichenfalls wurde Polypropylenglykol 2000 zugegeben, um die Schaumbildung unter
Kontrolle zu halten. Nach 24 h wurde ein 9 1-Teil in
einen 700 1-Fermenter überführt, der 450 1 Medium C enthielt.
Die Fermentation wurde bei 340C unter Schütteln durchgeführt,
wobei so stark gelüftet wurde, daß der gelöste Sauerstoffgehalt größer war als 30% des Sättigungsgehalts.
Die Schaumbildung wurde durch Zugabe von Polypropylenglykol 2000 unter Kontrolle gehalten. Nach etwa
24 h wurde der pH durch Zugabe wäßriger H3SO4 auf 7,2
eingestellt. Die Fermentation wurde nach 4 Tagen geerntet und mit den drei oben beschriebenen 40 1 Fermentationen
vereinigt.
Die vereinigten geernteten Brühen wurden zentrifugiert, Sharpies AS16PY bei etwa 120 l/h. Die im Zentrifugengefäß
zurückbleibende überstehende Flüssigkeit wurde mit Wasser verdrängt.
5
5
Die gewonnenen Zellen {11,65 kg) wurden in Methanol
(33 1) mit einem Silverson-Mischer emulgiert. Nach 60 min wurde die Suspension durch ein Twilltuch filtriert. Der
Rückstand wurde erneut in Methanol (34 1) emulgiert. Nach 40 min wurde die Suspension erneut filtriert. Die
Filtrate der beiden Methanolextraktionen wurden vereinigt.
Die vereinigten Extrakte (53,5 1) wurden mit Wasser (27 1) und PE (27 1) vermischt. Nach 20-minütigem Rühren wurden
die beiden Phasen in einer Westfalia MEM 1256-Zentrifuge
getrennt. Die untere wäßrige Methanolphase (70 1) wurde mit Wasser (37 1) und PE (27 1) vermischt und gerührt
und wie zuvor getrennt. Die Grenzflächenemulsion in der PE-Phase wurde mit Aceton (4 1) gebrochen. Die untere
wäßrige Methanolphase (108 1) wurde dann mit Wasser (40 1) und PE (27 1) ein drittes Mal vermischt und gerührt und
wie zuvor getrennt, wobei Aceton (4 1) zum Klären der Grenzflächenemulsion eingesetzt wurde. Die drei Hexanextrakte
wurden dann vereinigt.
Der vereinigte PE-Extrakt (85 1) wurde mit einem wipedfilm-Verdampfer
(Dampfdruck 0,15 bar, Dampftemperatur 26°C) konzentriert. Das Konzentrat (3 1) wurde mit
Natriumsulfat (2 kg) getrocknet und dann weiter bei vermindertem Druck bei 40°C eingeengt. Das erhaltene öl
(639 g) wurde in 300 ml einer Mischung aus Chloroform und EA (3:1 Volumen/Volumen) gelöst und filtriert und
durch ein Glasfaserpapier gewaschen. Das FiItrat und die zum Waschen eingesetzten Lösungsmittel (1060 ml)
wurden einer CCM unterworfen (Durchmesser 1500 mm χ 100 mm),
wobei bei einer Flußrate von 6 l/h eluiert wurde.
Die zwischen 8,8 und 13,1 1 eluierte Fraktion wurde vereinigt und bei niedrigem Druck zu einem öl (56,3 g)
eingeengt, während die zwischen 13,1 1 und 24,6 1 eluierte Fraktion in ähnlicher Weise bei niedrigem Druck zu einem
hellgelben Feststoff (153,4 g) eingeengt wurde. Die erstere Fraktion enthielt im wesentlichen Faktor B,
während letztere Fraktion eine Mischung der Faktoren A, B, C und D enthielt. Der Faktor B in dieser letzteren
Fraktion wurde nach und nach entfernt, indem die zuvor beschriebene CCM-Chromatographie zweimal - das letzte
Mal an frischem Silika - bei ähnlichen Bedingungen wiederholt wurde, wobei jedoch die Durchflußrate auf 3 l/h
reduziert wurde.
Die die Faktoren A, C und D enthaltenden Peaks von der zweiten dieser Säulen wurden zwischen 8,8 und 17,6 1
eluiert, während der übrige Faktor B, der darin enthalten war, in der dritten Säule abgetrennt wurde, von der
die Faktoren A, C und D zwischen 14 und 28 1 eluiert wurden. Dieses letzte Bulk-Eluat wurde bei vermindertem
Druck zu einem Feststoff (114 g) eingeengt. Die den Faktor B von den beiden Säulen (7,5 - 8,8 1 bzw.
10,3 - 13,4 1) wurden zu ölen eingeengt (10,7 g bzw. 10 g) und mit dem von der ersten der drei Säulen erhaltenen
öl vereinigt.
Die den Faktor B enthaltenden öle wurden in siedendem
Methanol (25 ml) gelöst und mit siedendem Propan-2-ol (100 ml) vermischt. Nach Kühlen auf 40C kristallisierte
der Faktor B. Er wurde abfiltriert, mit 200 ml Methanol gewaschen, auf -20°C gekühlt und im Vakuum getrocknet.
Es wurden 25,3 g des Faktors B erhalten.
353279V
-#·
-#·
-43-
Der Feststoff von der dritten Silikasäule, der die
Faktoren A, C und D enthielt, wurde im Vakuum bis zur Gewichtskonstante (87 g) getrocknet. Proben (20 g)
dieses Feststoffs wurden in 190 ml Methanol gelöst und mit 7:3 (v/v) AcetonitrilrWasser auf 230 ml aufgefüllt.
5 ml Portionen dieser Lösung wurden dann chromatographiert an einer Säule (Durchmesser 250 mm χ 21,2 mm)
von Spherisorb ODS-2 (Partikeldurchmesser 5 μΐη) , wobei
7:3 Acetonitril:Wasser als Eluierungsmittel verwendet
wurde. Die Durchflußrate wurde für etwa 10 s bei 20 ml/ min gehalten. Dann wurde sie gleichmäßig während eines
Zeitraums von 22 min auf 34 ml/min erhöht und 3 min bei letzterem Wert gehalten. Die eluierten Faktoren wurden
bei 238 nm detektiert. Der Faktor C wurde zwischen 11,0 und 13,4 min, der Faktor D zwischen 13,4 und 17,4 min
und der Faktor A zwischen 17,4 und 23,0 min eluiert.
Die den Faktor C enthaltenden Fraktionen von jeder chromatographischen Trennung wurden vereinigt und bei
vermindertem Druck zu einem Feststoff eingeengt. Die den Faktor A enthaltenden Fraktionen wurden in ähnlicher
Weise zu einem Feststoff eingeengt. Die den Faktor D enthaltenden Fraktionen wurden vereinigt und zu einem
unreinen Feststoff (7 g) vereinigt. Dieser wurde in 65 ml Methanol wiederum gelöst, mit 7:3 Acetonitril:Wasser
vermischt und wiederum an der zuvor beschriebenen Spherisorb ODS2-Säule chromatographiert, wobei jedoch
die Durchflußrate bei 20 ml/min konstant gehalten wurde. Der Faktor D wurde nun zwischen 16 und 20 min eluiert.
Diese Fraktion von jedem Chromatographischen Lauf wurde
vereinigt. Das vereinigte Eluat wurde zu einem Feststoff eingeengt. Die drei die Faktoren A, C und D enthaltenden
Feststoffe wurden über P2°5 ^m Va^uum bis zur Gewichtskonstante getrocknet (55 g, 7,0 g bzw. 1,21 g).
-44-
Von den vier nach diesem Verfahren isolierten Feststoffen konnte gezeigt werden, daß sie mit den authentischen
Proben der Faktoren A, B, C und D übereinstimmen.
250 ml Erlenmeyer-Kolben, die 50 ml Medium B enthielten,
wurden mit 0,5 ml einer Sporensuspension von jeweils Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12111, 12112, 12113 und
IQ 12114 beimpft, welche von den gemäß Beispiel 1 hergestellten
dünnen Röhrchen genommen wurden.
Die Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12111, NCIB 12112
und NCIB 12113 enthaltenden Kolben wurden auf einem Drehschüttler bei 310C inkubiert. Der Streptomyces
thermoarchaensis NCIB 12114 enthaltende Kolben wurde 2 Tage bei 280C inkubiert. Dann wurde 1 ml der Brühe zu
einem weiteren 250 ml Erlenmeyer-Kolben transferiert, der 50 ml Medium B enthielt. Dieser Kolben wurde auf
einem Drehschüttler bei 310C inkubiert. Alle Kolben wurden
bei 250 UpM geschüttelt (Kreisdurchmesser 50 mm) .
Nach 4-tägiger Inkubation wurde ein 10 ml-Probe jeder
Brühe bei 1 250 g 45 min zentrifugiert und wie folgt weiterverarbeitet. Das Pellet wurde in 10 ml Methanol
resuspendiert. Die Suspension wurde heftig geschüttelt und 1 h stehengelassen, wobei gelegentlich gemischt
wurde. Die Suspension wurde dann bei 10 000 g 5 min zentrifugiert und die überstehende Flüssigkeit wurde
mittels hplc (S5 ODS-2, 10 cm χ 4,6 mm, 70% CH-jCN/0,1M
NH4H2PO4) analysiert. Die Peaks wurden bei 246 nm überwacht
.
Die hplc-Analyse zeigte, daß die Faktoren A, B, C und D
in jedem Fall vorhanden waren.
-4-5-•Βλ-
Es wurde festgestellt, daß die Faktoren A, B, C, D, E
und F die folgenden Charakteristika besitzen: 5
i) Sie enthalten lediglich Kohlenstoff, Wasserstoff und Sauerstoff.
ii) Die Elektronenstoß (E.I.)-Massenspektroskopie
der Faktoren A, B, C1 D, E und F führte zu folgenden
Ergebnissen:
Faktor | Molekülion | entspricht der Brutto- |
formel | ||
A | 612.37 | C36H52°8 |
B | 598.35 | C35H5O°8 |
C | 584.3 4 | C34H48°8 |
D | 598.35 | C35H5O°8 |
E | 612.3638 | C36H52°8 |
F | 626.3807 | C37H54°8 |
Die Fast Atom Bombardment (FAB)-Massenspektroskopie führte zu folgenden Ergebnissen:
25 | Faktor | +ve FAß | -ve | FAB | Molekular gewicht |
A | M/Z 635[M+Na]+ | Μ/Ζ | 611[M-HJ- | 612 | |
M/Z 613[M+H]+ | |||||
8 | M/Z 69i[M+H+qlycerol]+ | 598 | |||
30 | Μ/Ζ 599[M+H]+ | ||||
Μ/Ζ 581[MH-H2O]+ | |||||
Μ/Ζ 563[ΜΗ-2Η2θ]+ | |||||
35 | C | Μ/Ζ 607[M+Na]+ | Μ/Ζ | 583[M-H]- | 58Α |
0 | Μ/Ζ 621[M+Na]+ | Μ/Ζ | 597[M-Hj- | 598 |
Die Felddesorptionsmassenspektroskopie des Faktors E
führte zu: Μ/Ζ 612 M und die des Faktors F zu: M/Z 626 M+. Ein E.I.-Spektrum des Faktors A, wobei die
Masse genau gemessen wurde, ergab Ionen bei:
612.37 C36H52O8; 466.31 C30H142O,; 448.30 C30H140O3;
425.23 C26H33O5; 354.22 C23H30O3; 297.22 C21H29O;
278.11 C15H18O5; 247.17 C16H23O2; 219.18 C15H23O;
95.05 C6H7O.
10
10
Ein E.I.-Spektrum des Faktors B, wobei die Masse genau
gemessen wurde, ergab Ionen bei:
598.35 C35H50O8; 438.28 C28H38O14; 420.26 C28H36O3;
314.19 C20H26O3; 248.14 C15H20O3; 151.08 C9H11O2.
15
Ein E.I.-Spektrum des Faktors C, wobei die Masse genau
gemessen wurde, ergab Ionen bei:
584.34 C34H48O8; 566.33 C34H46O7; 438.28 C28H38O4.
Ein E.I.-Spektrum des Faktors D, wobei die Masse genau
gemessen wurde, ergab Ionen bei:
598.35 C35H50O8; 452.29 C39H40O4; 434.28 C29H33O3.
Ein genaue Messung der Masse des Faktors E bei der E.I.·
Ionisation ergab ein Ion bei: 452.2908 CnH.-Ό,; für
3 29 40 4
den Faktor F ergab sich ein Ion bei: 466.3067 C,_H„„O,.
30 24 4
iii) Die Faktoren A, B, C, D, E und F besitzen in Bromoform charakteristische IR-Spektren, wozu folgende
UW Peaks gehören:
Für Faktor A bei etwa 3510 (OH), 1712 (Ester) und 998 cm"1 (C-O);
für Faktor B bei etwa 3510 (OH), 1710 (Ester) und
996 cm"1 (C-O);
35
35
996 cm"1 (C-O); Faktor D zeigt Peaks bei etwa 3508 (OH), 1711 (Ester)
und 996 cm"1 (C-O); Faktor E zeigt Peaks bei etwa 3500 (OH), 1708 (Ester)
und 994 cm"1 (C-O); und Faktor F zeigt Peaks bei etwa 3500 (OH), 1708 (Ester)
und 997 cm"1 (C-O).
Die vollständigen Spektren für die Faktoren A, B, C, D
und F sind in den Figuren 1, 2, 3, 4, 6 und 7 der nachfolgenden Zeichnungen gezeigt.
Iv) Die Faktoren A, B, C, D, E und F besitzen in Methanol
(c= 0,002%) folgende UV-Spektren (I = Beugung und M = Maximum):
Faktor | Mnm) | (I) | £} | Faktor | λ(ηιη) | (I) | ü |
A | 252 | (M) | 318 | 0 | 252 | (M) | 263 |
244.5 | (I) | 468 | 244.5 | (I) | 393 | ||
239 | (I) | 430 | 239 | (I) | 362 | ||
B | 252 | (M) | 302 | * E | 252 | (M) | 266 |
244.5 | (I) | 426 | 244 | (M) | 402 | ||
239 | (I) | 394 | 238 | (I) | 373 | ||
C | 252 | (M) | 316 | * F | 252 | (M) | 285 |
244.5 | (D | 470 | 244,5 | (U) | 421 | ||
239 | 432 | 239 | 389 | ||||
*Methanol c = 0,001%
Es ist festzuhalten, daß die E^-Werte die Reinheit des
erhaltenen Materials wiederspiegelt, während die oben aufgeführten Xmax-Werte für jeden Faktor charakteristisch
sind. Jedoch sind die Verhältnisse der E: charakteristisch für die Verbindung per se.
v) Ein 200 MHz-Protonen-NMR-Spektrum einer Lösung jedes
Faktor in Deuterochloroform ergibt unter anderen folgende Signale [die Tl -Werte sind zusammen mit den
Multiplizitäten, den Koppelungskonstanten (Hz) und den Werten für die Integrale in Klammern angegeben]:
Faktor A : 4.1 to 4.4(m,2H);4.61 ( breit,s,1H);4.6 to 4.75(m,2H);
4.81(d,9,1H); 5.05(m,1H);5.34(s,2H);5.69(d,5,1H); 6.06(d,5,1H);
' 6.17(m,1H); 6.26(d,11,1H);6.37(m,1H);6.46(d,10,1H); 6.74(q,2,1H);
7.42(m,1H);7.7 - 7.9(m,5H); 8.14(s,3H); 8.40(s,3H); 8.47(s,3H);
8.61(t,11,1H); 8.96(d,7,3H); 9.06(d,7,3H); 9.02(d,7,3H);
9.13(q,11,1H); 9.21(d,7,3H).
faktor B : 4.2 - 4.4(m,2H); 4.55(q,7,1H); 4.65(breit ,s,1H); 4.6 -
2E
4.8(m,2H); 5.06(m,1H); 5.3 - 5.5(m,2H); 6.01(d5,1H); 6.07(df5,1H>;
6.12(s,1H); 6.24(d,11,1H); 6.24(m,1H); 6.3 to 6.5(m,2H); 6.53(s,3H);
6.73(q,2,1H); 7.62(m,1H); 7.6-8.0(m,4H); 8.22(s,3H); 8.35(d,7,3H);
8.41(s,3H); 8.49(s,3H); 8.62(t,11,1H); 9.03(d,6,3H); 9.12(q,11,1H);
9.22(d,7,3H).
Faktor C : 4.29(d,11,t,2,1H);4.4 - 4.6(m,3H);4.56(breit s,1H);
5.14(dd,i5,10,1H); 5.23(m,1H); 5.65 (breit,3,2H); 5.72(d,6,1H);
5.95(d,10,1H); 5.99(d,6,1H); 6.08foreit, s,1H); 6.1 - 6.4(m,3H);
6.62(q,3,1H); 7.7 - 8.1(m,ca7H);8.18(s,3H); 8.33(s,3H);
-SS- 8.48(d,7,3H);8.64(s,3H);8.68(t,11,1H);
9.00(d,7,3H); 9.08(d,7,3H);
9.12(q,12,lH).
Faktor 0 : A.18 - 4.4 (m,2H); 4.47 - 4.81 (m,4H); 5.04 (m,lH);
5.35 (s,2H); 5.72 (d,7,lH); 6.07 (d,7,lH); 6.15 - 6.45 (m,4H); 6.74
(q,4,lH)7.45 - 8.1 (m,8H); 8.16 (s,3H);8.41 (s,3H);8.49 (s,3H);8.62
(t, 11,IH); 8.92 - 9.05 (m,6H);9.21 (d,7,3H).
Faktor E: 4.1 - 4.3 (m,2H); 4.5 - 4.8 (m,4Hgesamt); 5.04 (m,1H);
5.2 - 5.5 (m,2H); 6.01 (d,5,1H);6.05 (d,5,1H); 6.11 (s,1H); 6.1 6.4
(m,3H);6.45 (d,10,1H); 6.51 (s,3H);6.70 (q,2,1H); 7.60 (m,1H);8.20
(s,3H); 8.41 (s,3H); 8.47 (s,3H); 8.60 (t,11,1H);9.00 (t,7,3H); 9.02
(d,6,3H);9.11 (q,11,1H);9.20 (d,7,3H).
Faktor F: 4.2 - 4.4 (m,2H); 4.62 (s,1H); ca 4.70 (m,2H);
4.80 (d,9,1H); 5.04 (m,1H); 5.2 - 5.5 (m,2H); 5.99 (d,5,1H); 6.05
(d,5,1H);6.11 (s,1H); 6.1 - 6.3 (m,2H); ca 6.36 (m,1H);6.45
(d,10,1H); 6.51 (s,3H); 6.70 (q,2,1H);7.42 (m,1H);7.58 (m,1H); 8.19
(st3H);8.40 (s,3H);8.47 (s,3H);8.60 (t,11,1H); 8.95 (d,7,3H);9.05
(d,7,3H);9.01 (d,7,3H); 9.10 (q,11,1H); 9.21 (d,6,3H).
vi) Ein rausch-entkuppeltes 25,05 MHz C-NMR-Spektrum
einer Lösung jedes Faktors in Deuterochloroform ergibt unter anderem folgende Peaks ί die δ-Werte sind mit den
Multiplizitäten der Signale im Off-Resonanzspektrum in Klammern angegeben]:
Faktor A: 173.2(s); 142.6(d); 139.2(s); 137.6(s); 137.Ks);
137.0(d); 130.4(s); 123.Kd); 120.Kd) ;117.8(d); 99.5(s); 80.0(s);
79.0(d); 76.5(d); 69.0(d); 68.3»; 67.4(d); 48.2(t>; 45.5(d); 40.9(t);
40.5(t); 35.8*; 34.5(t); 22.Kq); 34.5(t); 26.6(d); 22.6(q); 22.0(q);
19.7(q); 15.3(q); 13.7(q);10.8(q).
* fiiltiplizität unsicher
Faktor 8: 173.4(s); 142.Kd); 139.5(s); 137.Ks); 135.7(s);
133.7(s); 123.6(d); 123.3(d);12O.O(d);1i9.3(d); 118.2(d); 99.5(s);
80.Ks); 77.3(d);76.6(d);76.4(d); 69.0(d) ;68.3(d);67.9 »;67.6
*;57.5(q);48.2(t); 45.4(d); 40.7(t); 40.5(t); 35.8*; 34.5(t); 22.Kq);
19.6(q); 15.3(q);13.6(q); 12.9(q); 10.5(q).
Faktor C : 173.3(s); 142.2(d); 140.3(s); 138.5(s); 137.0(s);
134.9(s); 123.9(d); 121.Kd); 120.6(d); 118.Kd); 100.2(s); 80.6(s);
10
80.1(d); 77.4(d);69.2(d);69.0(d); 68.3 *;68.0(d); 67.9(d);48.6(t);
46.3(d);41.4(t); 36.5 *;36.3 *;36.1(d);35.0(t); 22.6(q);20.0(q);
15.4(q);14.3(q);13.1(q);10.8(q).
Faktor D; 173.2 (s); 142.5 (d); 139.1 (s); 137.5 (s); 137.1 (s);
132.1 (s); 131.4 (d); 123.1 (d);120.1 (d);1i7.8 (d); 99.5 (s); 79.9
(s); 79.2 (d); 76.5 (d);69.0 (d); 68.3*;68.1*;67.6·; 67.4 ♦; 48.2
(t);45.5 (d);40.8 (t); 40.5 (t);35.7 ·;34.5 (t);22.O (q);20.6 (t);19.6
(q). I5.3q);13.7 (q);13.6 (q);10.7 (q).
Multiplizität unsicher
vii) Zirkulardichroismoskurven für die Faktoren A, B, C
und D (ca. 0,1%-ige Lösungen in Methanol) sind in
Fig. 8 gezeigt. Die Kurven sind im Bereich von 230 bis 260 nm, sehr ähnlich. In diesem Bereich
absorbiert der Dienchromophor. Dies zeigt an, daß die absoluten Konfigurationen an C~, C7, C7 und
C.Q für alle Faktoren die gleichen sind.
Nachstehend sind Beispiele für erfindungsgemäße Formulierungen aufgeführt. Der verwendete Ausdruck
"Wirkstoff" bezeichnet eine erfindungsgemäße Verbindung und kann beispielsweise für einen der
5 Faktoren A, B, C, D, E oder F stehen.
Parenterale Multidosisinjektion
Wirkstoff Benzylalkohol Glyceryltriacetat Propylenglykol auf
% G/V
4,0 2,0 30,0 100
Bereich 1 - 5 % G /V
Man löst den Wirkstoff in Benzylalkohol und Glyceryltriacetat. Man gibt Propylenglykol bis zum gewünschten
Volumen zu. Man filtriert die Lösung, um partikelförmige Verunreinigungen zu entfernen. Das Produkt füllt man
aseptisch in Injektionsampullen und verschließt mit Gummiverschlüssen oder Gummistopfen, die mit Aluminiumdeckelverschlüssen
in Lage gehalten werden. Zum Schluß wird das Produkt durch Erhitzen in einem Autoclave sterilisiert.
Aerosolspray
% G/G
Wirkstoff | 0,1 |
Trichlorethan | 29,9 |
Trichlor fluorine than | 35,0 |
Dichlordifluormethan | 35,0 |
Bereich 0,1 - 0,50 % G/G
Man mischt den Wirkstoff mit Trichlorethan und füllt in einen Aerosolbehälter. Den Luftraum im Flüssigkeitsbehälter
spült man mit dem gasartigen Treibmittel. Dann befestigt man das Ventil. Man füllt das erforderliche Gewicht
des flüssigen Treibmittels unter Druck durch das Ventil ein. Man stattet mit einer Betätigungsvorrichtung
und mit Staubkappen aus.
Tablette
Herstellungsverfahren - Naßgranulierung
250,0 | |
1 ! | 4,5 |
5 '■ | 22,5 |
2 '■ | 9,0 |
1 ί | 4,5 |
i G/G | |
h G/G | |
t G/G | |
i G/G |
mg
Wirkstoff Magnesiumstearat
Maistärke Natriumstärkeglykolat Natriumlaurylsulfat
Mikrokristalline Cellulose bis zu einem Kerngewicht der
Tablette von 450 mg 25
Zu dem Wirkstoff gibt man eine so große Menge einer 10%-igen Stärkepaste, das man eine für die Granulierung
geeignete nasse Masse erhält. Man stellt die Kügelchen her und trocknet unter Verwendung eines Boden- oder Flüssig-
bettrockners. Man siebt durch ein Sieb, gibt die übrigen
Bestandteile zu und komprimiert zu Tabletten.
Erforderlichenfalls kann man die Tablettenkerne mit einem Film überziehen, wobei Hydroxypropylmethylcellulose oder
ein anderes ähnlich filmbildendes Material einsetzt, wobei
wobei man entweder ein wäßriges oder nicht-wäßriges Lösungsmittelsystem zur Anwendung bringt.
Der Lösung für den Filmüberzug kann ein Weichmacher oder
ein geeigneter Farbstoff einverleibt sein.
mg y
Wirkstoff 50,0.
Magnesiumstearat 7,5
Mikrokristalline Cellulose bis zu einen Gewicht des Tablettenkerns von 75,0
Man vermischt den Wirkstoff mit Magnesiumstearat und
mikrokristalliner Cellulose. Die Mischung kompaktiert man zu Rohlingen. Man zerbricht die Rohlinge, indem man
sie durch einen Rotationsgranulator gibt, um freifließende Tabletten zu produzieren. Man komprimiert
zu Tabletten. Die Tablettenkerne kann man gewünschtenfalls wie zuvor beschrieben mit einem Filmüberzug ausstatten.
Veterinäre intrammäre Injektion
mg/Dosis Bereich
Wirkstoff 150 mg 150 - 500 mg
Polysorbat 60 3,0% g/G bis 3 oder 5 g
3g weißes Bienenwachs 6,0% G/G bis 3 g bis 3 oder 5 g
Erdnußöl 91,0% G/G bis 3 oder 5 g
Man erhitzt das Erdnußöl, das Bienenwachs und PoIy-
sorbat 60 auf 1600C, wobei man rührt. Man hält 2 Stunden
bei 160 C und kühlt dann unter Rühren auf Raumtemperatur ab. Den Wirkstoff gibt man aseptisch zu dem Träger und
dispergiert unter Verwendung eines Hochgeschwindigkeitsmischers. Man macht das Produkt feiner, indem man es
durch eine Kolloidmühle gibt. Man füllt das Produkt aseptisch in sterile Plastikspritzen.
Veterinärer oraler Arzneitrank
% G/V Bereich
Wirkstoff 0,35 0,05 - 0,50 % G/V
Polysorbat 85 5,0
Benzylalkohol 3,0
Propylenglykol 30,0
Phosphatpuffer bis pH 6,0 - 6,5
Wasser auf 100,0
Man löst den Wirkstoff in Polysorbat 85, Benzylalkohol und Propylenglykol. Man gibt einen Teil des Wassers zu
und stellt erforderlichenfalls mit dem Phosphatpuffer auf
pH 6,0 bis 6,5 ein. Man gibt das restliche Wasser bis zum gewünschten Volumen zu. Man füllt das Produkt in Arzneitrankbehälter.
Veterinäre orale Paste
% G/G | Bereich | |
Wirkstoff | 7,5 | 1 - 10 % G/G |
Saccharin | 25,0 | |
Polysorbat 85 | 3,0 | |
Alumaniumdistearat | 5,0 | |
fraktioniertes Kokusnußöl | bis 100,0 |
Man dispergiert das Aluminiumstearat in dem fraktionierten Kokusnußöl und Polysorbat 85, wobei man erhitzt. Man
kühlt auf Raumtemperatur ab und dispergiert das Saccharin in dem öglichen Träger. Man dispensiert den
Wirkstoff in der Basis. Man füllt in Plastikspritzen.
Kügelchen zur Verabreichung an Tiere im Futter
% G/G Bereich
Wirkstoff 2,5 0,05 - 5 % G/G
!5 Kalksteinmehl bis 100,0
Man vermischt den Wirkstoff mit dem Kalksteinmehl. Man stellt Kügelchen nach einem Naßgranulierungs-Verfahren her.
Man trocknet unter Verwendung eines Boden- oder Flüssigbettrockners. Man füllt in die geeigneten Behälter.
Wirkstoff 50 g
Anionischen Emulgator 40 g
(z.B. Phenylsulfonat CALX)
nicht-ionische Emulgator 60 g (z.B. Syperonic NP13)
aromatisches Lösungsmittel
(z.B. Solvesso 100) bis 1 1
(z.B. Solvesso 100) bis 1 1
Man mischt alle Bestandteile und rührt, bis sich alles gelöst hat.
50 | g | 1 | kg |
40 | g | g | |
bis | g | ||
50 | 1 | kg | |
40 | |||
bis |
Granulat (Kügelchen)
a) Wirkstoff Baumharz Gipskügelchen (20 - 60 Mesh)
(z.B. Agsorb 100A) 10
b) Wirkstoff Syperonic NP Gipskügelchen (20 - 60 Mesh)
Man löst alle Bestandteile in einem flüchtigen Lösungsmittel, z.B. Methylenchlorid, und gibt zu den Kügelchen
im Trommelmischer. Man trocknet, um das Lösungsmittel zu entfernen.
Die Aktivität der Faktoren A, B, C, D und F wurde mit Hilfe einer Vielzahl von Schädlingen und deren Wirten
bestimmt. Dazu zählen die folgenden:
Tetranychus urticae (Feuerbohne und Myrobalan B Pflaume),
Myzus persicae (Chinakohl und Rettich), Heliothis 25
virescens (Baumwolle), Chilo portellus (Rapsbohne), Meloidogyne incognita (Mungobohne) , Panonchus ulmi
(Myrobalan B Pflaume), Phorodon humuli (Hopfen), Aulacorthum circiumflexum (Alpenveilchen).
Das Produkt wurde als Flüssigpräparat eingesetzt. Die Präparate wurden durch Lösen der Produkte in Aceton hergestellt.
Die Lösungen wurden dann mit Wasser verdünnt, das 0,1 % oder 0,01 Gew.-% eines Netzmittels enthielt,
bis die Flüssigpräparate die erforderliche Produkt-35
konzentration enthielt.
Die Testverfahren wurden dem jeweiligen Schädling angepaßt. Dazu wurden eine Anzahl von Schädlingen auf ein Medium
gegeben, das gewöhnlich eine Wirtspflanze darstellt. Dann wurde das Medium mit dem Präparat behandelt (Residualtest)
. Irn Fall von Tetranychus urticae wurden sowohl die
Schädlinge als auch das Medium mit dem Präparat behandelt (Kontakttest).
Bei diesen Tests wurde gefunden, daß die Faktoren A, B, C, D und F in Konzentrationen (bezogen auf das Gewicht des
Produktes) von 500 Teilen pro Million oder weniger wirksam waren.
- Leerseite -
Claims (24)
1. Verbindungen mit folgender Teilformel (I):
OH
( I
CH3
2. Verbindungen nach Anspruch 1 mit der folgenden Teilformel (II) :
OH
3. Verbindungen nach Anspruch 2 der folgenden allgemeinen
Formel (III):
CH3
[M)
worin R eine Methyl-, Ethyl- oder Isopropylgruppe
2
und R ein Wasserstoffatom oder eine Methylgruppe
und R ein Wasserstoffatom oder eine Methylgruppe
bedeuten.
4. Verbindung nach Anspruch 3, bei der R eine Iso-
2
propylgruppe und R ein Wasserstoffatom bedeuten.
propylgruppe und R ein Wasserstoffatom bedeuten.
5. Verbindung nach Anspruch 3, bei der R eine Methylgruppe und R ein Wasserstoffatom bedeuten.
6. Verbindungen nach einem der vorhergehenden Ansprüche im wesentlichen frei von anderen Makroliden.
7. Verbindungen nach einem der Ansprüche 1 bis 5 in im
wesentlichen reiner Form.
8. Verbindungen nach einem der Ansprüche 1 bis 3 in Mischung mit mindestens einer weiteren Verbindung nach
einem dieser Ansprüche; oder eine Mischung der Ver-
bindungen nach Anspruch 3, worin R ein Wasserstoffatom
bedeutet; oder eine Mischung der Verbindungen
2
nach Anspruch 3, worin R eine Methylgruppe bedeutet.
nach Anspruch 3, worin R eine Methylgruppe bedeutet.
9. Verbindungen nach einem der Ansprüche 1 bis 5 in Form der gesamten Fermentationsbrühe, die mindestens
eine solche Verbindung enthält; die Feststoffe der gesamten Fermentationsbrühe, die mindestens eine
solche Verbindung, die aus einer derartigen Brühe abgetrennten unze-rstörten oder lysierten Myzele
oder die Feststoffe einer solchen Brühe nach Abtrennung der unzerstörten oder lysierten Myzele enthält;
oder diese Brühe nach Abtrennung der Myzele.
10. Verwendung der Verbindungen nach Anspruch 3 als Antibiotika zur Behandlung von Mensch und Tier.
11. Schädlingsbekämpfungsmittel, enthaltend mindestens eine Verbindung nach den Ansprüchen 1 bis 9 zusammen
mit einem oder mehreren Trägern und/oder Exzipienten.
12. Mittel nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, daß es eine Verbindung nach Anspruch 3 gewünschtenfalls
zusammen mit einem oder mehreren grenzflächenaktiven Mitteln, Mitteln, welche ein Zusammenbacken
verhindern, Antischaummitteln, Viskositätsregulatoren, Bindemitteln, Klebemitteln, Düngemitteln, Stabilisierungsmitteln
oder anderen Additiven oder wirksamen Bestandteilen enthält.
13. Pharmazeutisches Mittel für die Human- oder Veterinärmedizin,
enthaltend mindestens eine Verbindung nach einem der Ansprüche 1 bis 9 zusammen mit einem oder
mehreren Trägern und/oder Exzipienten.
14. Mittel nach Anspruch 13 für die Veterinärmedizin,
dadurch gekennzeichnet, daß es eine oder mehrere der Verbindungen nach Anspruch 3 mit mindestens
50%iger Reinheit enthält und in einer für die parenterale (einschließlich intramammäre), orale,
rektale oder topische Verabreichung oder zur Verwendung als Implantat geeigneten Form vorliegt.
15. Mittel nach einem der Ansprüche 11 bis 14, dadurch
gekennzeichnet, daß es eine Mischung der wirksamen Verbindungen enthält, welche im wesentlichen aus
einer oder mehreren Verbindungen nach einem der Ansprüche 1 bis 5 bestehen.
16. Mittel nach einem der Ansprüche 11 bis 15, dadurch
gekennzeichnet, daß es die Verbindung nach Anspruch 4 oder Anspruch 5 enthält.
17. Verfahren zur Herstellung der Verbindungen nach Anspruch
1, dadurch gekennzeichnet, daß man einen Mikroorganismus des Genus Streptomyces unter Bildung
dieser Verbindungen kultiviert und gewünschtenfalls anschließend eine oder mehrere dieser Verbindungen
aus der Fermentationsbrühe abtrennt.
18. Verfahren nach Anspruch 17, dadurch gekennzeichnet,
daß man als Mikroorganismus Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 oder einen Mutanten davon
oder ein anderes Mitglied der Spezies Streptomyces thermoarchaensis einsetzt.
19. Verfahren nach Anspruch 17, dadurch gekennzeichnet,
daß man die Myzele des Mikroorganismus mit einem mit Wasser mischbaren Lösungsmittel in Kontakt bringt,
um eine oder mehrere Verbindungen nach Anspruch 1 daraus zu extrahieren.
1 20. Makrolide, die durch Fermentation von Streptomyces thermoarchaensis herstellbar sind.
21. Mikroorganismen der Spezies Streptomyces 5 thermoarchaensis.
22. Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12015 und Mutanten davon.
10 23. Streptomyces thermoarchaensis NCIB 12111, NCIB 12112,
NCIB 12113 und NCIB 12114 und Mutanten davon.
24. Verwendung der Verbindungen nach den Ansprüchen
bis 9 zur Bekämpfung von Infektionen oder von Schädel
5 lingsbefall, beispielsweise in der Landwirtschaft, im Gartenbau oder in der Forstwirtschaft.
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ZW (1) | ZW15585A1 (de) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3614549A1 (de) * | 1985-04-30 | 1987-01-02 | Glaxo Group Ltd | Makrolid-antibiotika und verfahren zu deren herstellung |
DE3718926A1 (de) * | 1986-06-06 | 1987-12-10 | Glaxo Group Ltd | Macrolid-verbindungen, verfahren zu deren herstellung und diese enthaltende mittel |
EP0281522A1 (de) * | 1987-03-06 | 1988-09-07 | Ciba-Geigy Ag | Insektizide und Parasitizide |
US4897416A (en) * | 1987-02-18 | 1990-01-30 | Ciba-Geigy Corporation | Insecticides and parasiticides |
US4954484A (en) * | 1987-03-27 | 1990-09-04 | Ciba-Geigy Corporation | Parasiticides and insecticides |
AT399441B (de) * | 1985-04-30 | 1995-05-26 | American Cyanamid Co | Schädlingsbekämpfungsmittel und verfahren zur bekämpfung von schädlingen |
Families Citing this family (63)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
LV5536A3 (lv) * | 1984-09-14 | 1994-03-10 | American Cyanamid Co | Panemiens antibiotikas s-541 iegusanai streptomicetu celmi-antibiotikas s-541 producenti |
US4696922A (en) * | 1984-11-26 | 1987-09-29 | Ciba-Geigy Corporation | 5-azolylacetoxymilbemycins as ecto- and endoparasites |
ES8800986A1 (es) * | 1985-07-27 | 1987-12-01 | Pfizer | Un procedimiento para la produccion de un nuevo derivado de avermectina |
ATE119905T1 (de) * | 1985-09-13 | 1995-04-15 | American Cyanamid Co | Makrolide antibiotika und verfahren zu deren herstellung. |
NZ219575A (en) * | 1986-03-12 | 1990-04-26 | Glaxo Group Ltd | Phosphate, substituted alkoxy, or amino-carbonyloxy derivatives of milbemycin, and pesticidal compositions |
GB8606120D0 (en) * | 1986-03-12 | 1986-04-16 | Glaxo Group Ltd | Process |
GR870397B (en) * | 1986-03-12 | 1987-07-10 | Glaxo Group Ltd | Macrolide compounds |
GB8606116D0 (en) * | 1986-03-12 | 1986-04-16 | Glaxo Group Ltd | Process |
AT398312B (de) * | 1986-03-12 | 1994-11-25 | American Cyanamid Co | Verfahren zur herstellung einer neuen makroliden verbindung |
GB8606105D0 (en) * | 1986-03-12 | 1986-04-16 | Glaxo Group Ltd | Chemical compounds |
GB8613790D0 (en) * | 1986-06-06 | 1986-07-09 | Glaxo Group Ltd | Chemical compounds |
US5840704A (en) * | 1986-07-16 | 1998-11-24 | Pfizer Inc. | Antiparasitic agents and process for their preparation |
NZ221077A (en) * | 1986-07-18 | 1990-06-26 | Ciba Geigy Ag | 13b-alkyl milbemycins and use as parasiticides |
EP0254583B1 (de) * | 1986-07-24 | 1994-09-07 | Beecham Group Plc | Milbemycin-Derivate mit parasitenabtötender Aktivität, ein Verfahren zu ihrer Herstellung und die sie enthaltenden Zusammensetzungen |
US5149832A (en) * | 1986-09-12 | 1992-09-22 | American Cyanamid Company | Mono and diacyl derivatives of ll-f28249 compounds |
US5019589A (en) * | 1986-09-12 | 1991-05-28 | American Cyanamid Company | Δ23 -LL-F28249 compounds |
EP0262384B1 (de) * | 1986-09-12 | 1992-11-04 | American Cyanamid Company | 23-Deoxy-Derivate von LL-F28249-Verbindungen |
US4916154A (en) * | 1986-09-12 | 1990-04-10 | American Cyanamid Company | 23-Imino derivatives of LL-F28249 compounds |
ES2058082T3 (es) * | 1986-09-12 | 1994-11-01 | American Cyanamid Co | Derivados 23-oxo (ceto) y 23-imino de compuestos ll-f28249. |
US4886828A (en) * | 1986-09-12 | 1989-12-12 | American Cyanamid Company | Δ22 -derivatives of LL-F28249 compounds |
US5525506A (en) * | 1987-01-23 | 1996-06-11 | Pfizer Inc. | Process for production of avermectins and cultures therefor |
US5238848A (en) * | 1987-01-23 | 1993-08-24 | Pfizer Inc | Cultures for production of avermectins |
US5234831A (en) * | 1987-01-23 | 1993-08-10 | Pfizer Inc | Cultures for production of B avermectins |
US5183749A (en) * | 1987-02-04 | 1993-02-02 | Sankyo Company, Ltd. | Microbial process for the preparation of milbemycin derivatives |
US4876272A (en) * | 1987-03-06 | 1989-10-24 | American Cyanamid Company | Mono- and diepoxide derivatives of LL-F28249 compounds |
US4886829A (en) * | 1987-03-06 | 1989-12-12 | American Cyanamid Company | 23-Oxo (keto) and 23-imino derivatives of mono- and diepoxy LL-F28249 compounds |
US4886830A (en) * | 1987-03-06 | 1989-12-12 | American Cyanamid Company | Mono- and diepoxide derivatives of 23-deoxyl-LL-F28249 compounds |
US4956479A (en) * | 1987-03-06 | 1990-09-11 | American Cyanamid Company | 23-deoxy-27-chloro derivatives of LL-F28249 compounds |
US4851428A (en) * | 1987-03-06 | 1989-07-25 | American Cyanamid Company | Mono- and diepoxide derivatives of Δ22-LL-F28249 compounds |
US4806527A (en) * | 1987-03-16 | 1989-02-21 | Merck & Co., Inc. | Avermectin derivatives |
US4871719A (en) * | 1987-03-24 | 1989-10-03 | Ciba-Geigy Corporation | Composition for controlling parasites in productive livestock |
GB8721375D0 (en) * | 1987-09-11 | 1987-10-21 | Glaxo Group Ltd | Chemical process |
GB8721378D0 (en) * | 1987-09-11 | 1987-10-21 | Glaxo Group Ltd | Chemical process |
GB8721377D0 (en) * | 1987-09-11 | 1987-10-21 | Glaxo Group Ltd | Chemical compounds |
GB8721647D0 (en) * | 1987-09-15 | 1987-10-21 | Pfizer Ltd | Antiparasitic agents |
US5240850A (en) * | 1987-10-23 | 1993-08-31 | Pfizer Inc. | Cultures for production of avermectin aglycones |
DE3880088T2 (de) * | 1987-11-09 | 1993-07-22 | Pfizer | Ethylierte avermectine. |
GB8726730D0 (en) | 1987-11-14 | 1987-12-16 | Pfizer Ltd | Antiparasitic agents |
GB8803836D0 (en) * | 1988-02-18 | 1988-03-16 | Glaxo Group Ltd | Compositions |
GB8804440D0 (en) * | 1988-02-25 | 1988-03-23 | Pfizer Ltd | Antiparasitic agents |
GB8805978D0 (en) * | 1988-03-14 | 1988-04-13 | Glaxo Group Ltd | Process |
GB8813760D0 (en) * | 1988-06-10 | 1988-07-13 | American Cyanamid Co | Chemical process |
NZ232422A (en) * | 1989-02-16 | 1992-11-25 | Merck & Co Inc | 13-ketal milbemycin derivatives and parasiticides |
US5322692A (en) * | 1989-02-28 | 1994-06-21 | American Cyanamid Company | Sustained release bolus effective for the prolonged prevention, treatment or control of nematode, acarid and endo- and ectoparasitic infestations of ruminants |
DK0393890T3 (da) * | 1989-04-11 | 1992-09-28 | Pfizer | Injicerbart præparat indeholdende 25-cyclohexyl-avermectin B1 |
US6001822A (en) * | 1989-04-11 | 1999-12-14 | Pfizer Inc. | Antiparasitic formulations |
DK0426948T3 (da) | 1989-08-11 | 1996-05-28 | American Cyanamid Co | Arylpyrroler som insekticide, acaricide og nematodicide midler samt fremgangsmåder til deres fremstilling |
NZ234802A (en) * | 1989-08-14 | 1992-11-25 | Merck & Co Inc | Long acting injectable formulations comprising an avermectin compound and triacetin. treatment for internal and external parasites of animals |
US5830875A (en) * | 1989-10-30 | 1998-11-03 | Merck & Co., Inc. | 24-and 25-substituted avermectin and milbemycin derivatives |
US5055454A (en) * | 1989-10-30 | 1991-10-08 | Merck & Co., Inc. | 13-epi-avermectin derivatives useful as antiparasitic agents |
US5208222A (en) * | 1991-03-28 | 1993-05-04 | Merck & Co., Inc. | 4"-and 4'-alkylthio avermectin derivatives |
US5262400A (en) * | 1991-06-20 | 1993-11-16 | Merck & Co., Inc. | 4α-substituted avermectin derivatives |
MD24B1 (ro) * | 1991-07-09 | 1994-05-31 | Parfumerii Si Cosmetice Vioric | Compozitie de substante odorante |
GB9205007D0 (en) * | 1992-03-07 | 1992-04-22 | Pfizer Ltd | Antiparasitic agents |
US5229415A (en) * | 1992-03-24 | 1993-07-20 | Merck & Co., Inc. | Alkylthio alkyl avermectins are active antiparasitic agents |
US6103504A (en) * | 1992-03-25 | 2000-08-15 | Pfizer Inc. | Process for production of avermectins and cultures therefor |
US6486195B1 (en) * | 1993-08-19 | 2002-11-26 | Merck & Co., Inc. | Thermodynamically stable crystal form of 4″-deoxy-4″-epi-methylamino avermectin B1a/B1b benzoic acid salt and processes for its preparation |
JP2855181B2 (ja) | 1993-12-10 | 1999-02-10 | 敏雄 鈴木 | 松類の枯損防止用組成物及び防止方法 |
AU9785698A (en) | 1997-10-02 | 1999-04-27 | Microcide Pharmaceuticals, Inc. | Fungal efflux pump inhibitors |
ATE320812T1 (de) | 2000-10-10 | 2006-04-15 | Wyeth Corp | Anthelmintika |
GB0205253D0 (en) * | 2002-03-06 | 2002-04-17 | Univ Gent | Immediate release pharmaceutical granule compositions and a continuous process for making them |
JP2008531553A (ja) * | 2005-02-25 | 2008-08-14 | メディジーンズ カンパニー リミテッド | 血漿または血清を含むアベリノ角膜ジストロフィー治療用の医薬組成物 |
CN100394983C (zh) * | 2006-01-09 | 2008-06-18 | 浙江海正药业股份有限公司 | 含有大豆油的多拉菌素注射液 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0008184A1 (de) * | 1978-08-04 | 1980-02-20 | Merck & Co. Inc. | Alkylierte Verbindungen von C-076-Verbindungen, Verfahren zu deren Herstellung und deren Verwendung als antiparasitische Mittel |
DE3519834A1 (de) * | 1984-06-05 | 1986-03-27 | American Cyanamid Co., Wayne, N.J. | Neue antibiotische wirkstoffe, verfahren zu ihrer gewinnung und ihre anwendung zur bekaempfung von infektionen bei tieren und pflanzen |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS4914624A (de) * | 1972-06-08 | 1974-02-08 | ||
SE434277B (sv) * | 1976-04-19 | 1984-07-16 | Merck & Co Inc | Sett att framstella nya antihelmintiskt verkande foreningar genom odling av streptomyces avermitilis |
US4173571A (en) * | 1977-12-19 | 1979-11-06 | Merck & Co., Inc. | 13-Halo and 13-deoxy derivatives of C-076 compounds |
US4171314A (en) * | 1977-12-19 | 1979-10-16 | Merck & Co., Inc. | 13-Halo and 13-deoxy C-076 compounds |
PH16612A (en) * | 1977-12-19 | 1983-11-28 | Merck & Co Inc | 13-halo and 13-deoxy derivatives of c-076 compounds |
NZ201681A (en) * | 1981-09-03 | 1985-11-08 | Merck & Co Inc | Avermectin derivatives and parasiticidal compositions |
ES8802229A1 (es) * | 1985-04-30 | 1988-04-16 | Glaxo Group Ltd | Un procedimiento para preparar nuevos derivados lactonicos macrociclicos. |
ES8800986A1 (es) * | 1985-07-27 | 1987-12-01 | Pfizer | Un procedimiento para la produccion de un nuevo derivado de avermectina |
-
1985
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- 1985-09-13 NZ NZ213463A patent/NZ213463A/xx unknown
- 1985-09-13 ZW ZW155/85A patent/ZW15585A1/xx unknown
- 1985-11-22 PH PH35113A patent/PH24247A/en unknown
-
1986
- 1986-12-01 ES ES557237A patent/ES8802555A1/es not_active Expired
-
1987
- 1987-03-25 US US07/029,885 patent/US4898821A/en not_active Expired - Lifetime
-
1988
- 1988-03-31 US US07/176,252 patent/US4935531A/en not_active Expired - Lifetime
- 1988-08-25 SE SE8802985A patent/SE469173B/sv not_active Application Discontinuation
-
1995
- 1995-01-05 JP JP7000317A patent/JP2566385B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0008184A1 (de) * | 1978-08-04 | 1980-02-20 | Merck & Co. Inc. | Alkylierte Verbindungen von C-076-Verbindungen, Verfahren zu deren Herstellung und deren Verwendung als antiparasitische Mittel |
DE3519834A1 (de) * | 1984-06-05 | 1986-03-27 | American Cyanamid Co., Wayne, N.J. | Neue antibiotische wirkstoffe, verfahren zu ihrer gewinnung und ihre anwendung zur bekaempfung von infektionen bei tieren und pflanzen |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
JP-Z: J.Antibiot., 1983, XXXVI/8, S. 980-990 * |
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3614549A1 (de) * | 1985-04-30 | 1987-01-02 | Glaxo Group Ltd | Makrolid-antibiotika und verfahren zu deren herstellung |
AT399441B (de) * | 1985-04-30 | 1995-05-26 | American Cyanamid Co | Schädlingsbekämpfungsmittel und verfahren zur bekämpfung von schädlingen |
DE3614549C2 (de) * | 1985-04-30 | 1998-03-12 | American Cyanamid Co | Makrolid-Verbindungen, Verfahren zu ihrer Herstellung und Mittel, die diese Verbindungen enthalten |
DE3718926A1 (de) * | 1986-06-06 | 1987-12-10 | Glaxo Group Ltd | Macrolid-verbindungen, verfahren zu deren herstellung und diese enthaltende mittel |
DE3745133C2 (de) * | 1986-06-06 | 1998-01-02 | American Cyanamid Co | Verwendung von Macrolid-Verbindungen zur Schädlingsbekämpfung |
DE3718926C2 (de) * | 1986-06-06 | 1998-01-15 | American Cyanamid Co | Macrolid-Verbindungen, Verfahren zu deren Herstellung und diese Verbindungen enthaltende Mittel |
US4897416A (en) * | 1987-02-18 | 1990-01-30 | Ciba-Geigy Corporation | Insecticides and parasiticides |
EP0281522A1 (de) * | 1987-03-06 | 1988-09-07 | Ciba-Geigy Ag | Insektizide und Parasitizide |
US4855317A (en) * | 1987-03-06 | 1989-08-08 | Ciba-Geigy Corporation | Insecticides and parasiticides |
US4954484A (en) * | 1987-03-27 | 1990-09-04 | Ciba-Geigy Corporation | Parasiticides and insecticides |
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---|---|---|
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