DE3028594A1 - Neue planothiocin-antibiotika - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft neue, Schwefel enthaltende Antibiotika der Planothiocin-Reihe, ausgewählt aus der Gruppe Planothiocin-Af
-B, -C, -D, -E, -F und -G.
Die physiko-chemischen Eigenschaften der Planothiocine sind
in der folgenden Tabelle 1 angegeben. Die biologischen Eigenschaften der Planothiocine sind in Tabelle 2 aufgeführt.
Wie angegeben, sind Planothiocine Schwefel enthaltende Antibiotika.
Schwefel enthaltende Antibiotika sind Thiostrepton, Thiopeptine, Sulfomycine, Siomycine, A-59, Pepthiomycine,
Thermothiocin, Sporangiomycine, Althiomycin, A-7413, Nosiheptid,
L-13365, Actinothiocin, A-10947 und 35665RP u.a.
Nosiheptid hat die identische Aminosäurezusammensetzung, verglichen
mit Planothiocin-A. Keine anderen Antibiotika mit der gleichen Aminosäurezusammensetzung wie Planothiocin-B
sind bekannt. Nosiheptid besitzt einen maximalen Al s.orptionspeak
bei 416 m/U (E^cm = 124) und 440 m/U (E^0n = 104,8),
Jedoch zeigt Planothiocin-A keine solchen Absorptionspeaks. Nosiheptid liegt in Form hellgelblicher Kristalle vor, wohingegen
Planothiocin-A in Form farbloser oder weißer Kristalle vorliegt. Die Rf-Werte bei der Silikagelchromatographie
unterscheiden sich voneinander, d.h. Rf « 0,87 mit
CHCl^/Methandl (3:1) und Rf = 0,71 mit Ä'thylacetat/Methanol/
Wasser CiO:2:1) für Nosiheptid.
Wie angegeben, sind Planothiocin-A und -B neu und nicht identisch mit anderen bekannten, Schwefel enthaltenden
Antibiotika.
Substanzen mit der gleichen Aminosäurezusammensetzung, verglichen mit Pianothiocin-C, -D und -E sind Nosiheptid und
Planothiocin-A. Eine Substanz mit der gleichen Aminosäurezusammensetzung, verglichen mit Planothiocin-F und -G ist
Pianothio cin-B.
1 30009/0750
Pianothio cin-B
(1) Schmelzpunkt
266 bis 269 C (Zers.)
259 bis 262°C (Zers.)
(2) Elementaranalyse
C 49,4796 H 3,5396
N 13,2596 S 13,7396
N 13,2596 S 13,7396
C 49,3796
N 13,3096
N 13,3096
H 3,4596 S 14,1996
(3) Molekulargewicht
1438 (minimales Molekulargew, durch Aminosäureanalyse;
1 Molekül Threonin ist in 1 Molekül der Verbindung enthalten)'
1350 (minimales Molekulargew, durch Aminosäureanalyse;
1 Molekül Threonin ist in 1 Molekül der Verbindung enthalten)
(4) optische Drehung
+19,6 (C=O,7, Pyridin) [a]§3_ +95,4 (C=O,5, Pyridin)
Ultraviolett-Absorptionsspektr.
(Sch)
( )
( )
Schulter
E1 cm
E1 cm
Fig. 1, in Methanol, maximale Absorptionspeaks bei 217 m/U
(629,5), 239 m/u(Sch)(487,7) ,260 m/u (Sch)(347,4), '330 iyi (317,9) '
Fig. 2, in angesäuertem Methanol (1 Tropfen 0,1 N HCl), maximale Absorptionspeaks
bei 219 m/i (Sch) (644,9), 240 m/u(Sch)(508,8),259 m/u
(Sch)(371,9), 330 m/u(323,5) '
Fig. 3, in alkalischem Methanol (1 Tropfen 0,1N NaOH) max.Absorptionspeaks
bei 234 m/u(Sch)(589,5), 299 m/u(Sch) (284,2)/328 m/U (Sch)
(231,6) '
Fig. 5,in Methanol, maximale Absorptionspeaks bei 218 m/u
(540,4), 239 mAi(Sch)(423,8), « 260 m/i(Sch) (294,5), 330 m yu -*a
(276,6) ,
Fig. 6, in angesäuertem Methanol (1 Tropfen 0,1N HCl), max.Absorptionspeaks
bei 219 m/u(566,O), 239 m/u(Sch)(468,1),'259 m/u(Sch)
(335,3), 331 nyu (302,1) Fig. 7, in alkalischem Methanol
(1 Tropfen 0,1N NaOH) max.Absorptionspeaks bei 239 m/u (Sch)(5i4,0),
297 m/u(263,8), 329 hfl (262,1) ^
Tabelle 1 (Fortsetzung)
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum (KBr-Tablette)
Fig. 4; 3380, 3110, 2980, 1730, 1650, 1520, 1480, 1410, 1380, 1330, 1300, 1230, 1160,
1150, 1100, 1060, 1020, 990, 930, 910, 830, 780, 750 und 700 cm-1
Fig. 8; 3380, 3110, 2980, 1720,
1650, 1520, 1480, 1410, 1370, 1330, 1300, 1230, 1160, 1145, 1060, 1020, 990, 930, 910, 830, 780, 740 und
700 cm~1
1650, 1520, 1480, 1410, 1370, 1330, 1300, 1230, 1160, 1145, 1060, 1020, 990, 930, 910, 830, 780, 740 und
700 cm~1
(7) Farbreaktion
positiv: entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ: Bisen(III)-Chlorid,
Ninhydrin und Molisch
positiv: entfärbt Kaliumpermanganat und Jod;
negativ: Eisen(IIl)-chlorid,
Ninhydrin und Molisch
negativ: Eisen(IIl)-chlorid,
Ninhydrin und Molisch
ο(8) Löslichkeit
löslich in CHCI3-Methanol,
Pyridin, DMSO und Eisessig; unlöslich in Benzol, Aceton, Petroläther und Hexan
löslich in CHCl3-Methanol,
Pyridin, DMSO und Eisessig;
unlöslich in Benzol, Aceton,
Petroläther und Hexan
Pyridin, DMSO und Eisessig;
unlöslich in Benzol, Aceton,
Petroläther und Hexan
weiße Kristalle (nadeiförmig) weiße Kristalle (nadeiförmig)
S(9) Natur
cn ι. ■ ■ ι
o(i0)Farbe
(11)Aminosäureanalyse (bestimmt
durch einen
Aminosäureautoanalyzer,
ninhydrinpositive Fraktionen von 6N HCl bei
1050C während 20 h
Hydrolysat)
Aminosäureautoanalyzer,
ninhydrinpositive Fraktionen von 6N HCl bei
1050C während 20 h
Hydrolysat)
schwach sauer
schwach sauer
Threonin und 2 Komponenten ninhydrinpo s i tiv
Threonin und 1 Komponente
ninhydrinpositiv
ninhydrinpositiv
Tabelle 1 (Fortsetzung)
OO CD O O CD
Ol O
(12) Rf-Werte (Silikagel-f, Produkt
der Tokyo Kasei Co.)
der Tokyo Kasei Co.)
CHCl^/Methanol/Essigsäure(10:1:O,1) Rf = 0,26 Rf = 0,42
CHCl^/Methanol (3:1) Rf=O,2 Rf=O,27
Äthylacetat/foethanol/Wasser(10:2:1) Rf = 0,15 Rf = O,15
Acetonitril/Wasser (10:2) Rf = 0,43 Rf = 0,55
Butanol/Essigsäure/Wasser (3:1:1) Rf = 0,80 Rf = 0,83
(13) Stabilität stabil bei sauren und stabil bei sauren und
neutralen Bedingungen; neutralen Bedigungen;
instabil bei alkalischen instabil bei alkalischen
Bedingungen Bedingungen
CD K) OO
Tabelle 1 (Fortsetzung)
(6) IR-Absorptionsspektrum (KBr-Tablette)
Fig.12
3360,3100,1730,
1650,1520,1470,
1410,1375,1330,
1300,1230,1160,
1140,1100,1050,
1010 980,930,
910,830.780,
740 cm-"1
1160,1140,110C 1060,1020,990,
940,910,840. 780,750 cm"1
Fig.20
j3100,1730,
1650:1520,1470,
1410I1360,1330,
130011230,1160,
114OJ1O9O,1O1O,
980,$60,940,
910,^30.780,
cfm"1
Fig.24
3380,3100,
1720,1650,
1520,1470,
1410,1370,
1330,1300,
1230,1160,
1140,1060,
1020,980,
960,930,
900,830,
780,750cm
Ί
Fig.28
3380,3100,1710, 1650,1570,1520, 1470,1410,1360, 1330,1230,1150, 1140,1060,1010,
980,940,910, 820,780,740 cm"'
(7) Farbreaktion
po sitiv:entfärbt
Kaliumpermanganat: negativ:Eisen(III)·
chlo rid,Ninhydrin,
Molisch
dito
dito
dito
dito
(8) Löslichkeit
löslich in CHCl*, Pyridin, DMF,DMSO; unlöslich in Benzol,
Aceton,Petrolather, Wasser
dito
dito
dito
dito
(9) Natur | schwach sauer | dito | dito | dito | dito |
(10) Farbe | weiß | dito | dito | dito | dito |
(11) Aminosäure- Threonin und 2 ninanalyse(bestimmt
hydrinpositive Kommit
einem Amino- ponenten säureautoanalyzer,
ninhydrinpositive
Fraktionen von 6N
HCl bei 1050C,währ.
20 h Hydrolysat;
ninhydrinpositive
Fraktionen von 6N
HCl bei 1050C,währ.
20 h Hydrolysat;
dito
dito
Threonin und 2 ninhydrinpo sitive Komponente
dito
Tabelle 1 (Fortsetzung)
Pianothiocin-C
Pianothiocin-D Planothiocin-E Planothiocin-F Planothiocin-G
(1)Schmelzpunkt
247-251 C(Zers.) 254-258°C(Zers.) 245-247 C(Zers.)258-26O°C(Z.) 262-2640C(Z)
(2) | Elementaranalys e | 47,8196 | 48,1896 | 48,3196 |
C: | 3,42 | 3,58 | 3,36 | |
H: | 13,62 | 13,26 | 13,41 | |
N: | 13,85 | 15,61 | 13,92 | |
S: | ||||
49,8396 | 49,2696 |
3,54 | 3,42 |
14,70 | 13,70 |
15,29 | 15,96 |
(3) Molekulargew. (Aminosäureanalyse)
1200-1500
1200-1500 1200-1500
1200-1500
1200-1500
(4)opt.Drehung[a]i (Pvridin) u
20
+28,4(C=O,9)
+31,4(C=O,7) +45,5(C=O,7) +107,8(C=O,8) +122,4
(C=O,4)
^- (5) UV-Absorptions- ° spektrum
"-J A ft/
cn ( ) — E
o v ' - 1cm
o v ' - 1cm
(Sch)=Schulter
alkalisches Methanol = 1 Tropfen
0,1N NaOH in
Methanol
0,1N NaOH in
Methanol
angesäuertes Methanol = 1 Tropfen
0,1 N HCl in Methanol
0,1 N HCl in Methanol
Fig.9,max.Abs. Peak b.218(721),
240(Sch)(499 260(Sch)(322 u. 330 in/u (327 (in Methanol
Fig.11,in alk. Methanol,max.
Abs.P.b.233 (Sch)(611),299
(271),329ημ (241) Γ
Fig.13,in Methanol ,max.Abs.Peak
b.217(764),240 (Sch)(502),260
(Sch)(276)und 330 m/U(343)
Fig.15,in alk. Meth.,max.Abs.P.
b.232(Sch)(676), 300(282) und 329 m/u(248)
Fig.10, in ange- Fig.14, in anges. säuertem Methanol,Methanol,gleiche
gleiche Werte wie Werte wie die in die in Methanol Methanol Fig.17,in Methanol,
max. Abs.Peak b. 217(756),240 (Sch)(534),
260(Sch)(308), 329 m/U(207) Fig.19,in alk.
Meth.,max.Abs. P.b.233(Sch)
(662),299(272), 329 nyu (207)
Fig.18, in anges. Methanol, gleiche Werte wie die in
Methanol
Fig.21, in Methanol, max.Abs.P.
b.217(744) 4()6i
Fig.25, in Methanol, max.Abs.P. ^
b.217(770). 240(Sch) ' 522)und
33Om,u(35O) Fig.27,in
alk.Meth., max.Abs.P.b.
240(519), 299(247)und 329 uyi(284)
Fig.22,in an-Fig.26,in anges.Methanol,ges
.Methanol, gleiche Werte gleiche Werwie die in te wie die
Methanol in Methanol
() 260m/i (333) 33OnAi (333)
Fig. £3,in alk.Meth.,
max.Abs.P. b.240(515), 330 m/U(291)
Tabelle 1 (Fortsetzung)
(12) Rf-Wert (Silikagel-f, Produkt
der Tokyo Kasei Co.)
der Tokyo Kasei Co.)
CHC^/Methanol/Essigsäure
(20:1:0,1) Rf = 0,43 Rf = 0,57 Äthylacetat/Methanol/Essigsäure
(10:1:0,2) Rf = 0,49 Rf = 0,41 Acetonitril/Wasser(iO:i) Rf = 0,42 Rf = 0,37
Chloroform/Methanol(iO:i) Rf = 0,85 Rf = 0,87
Rf s 0,57 Rf = 0,67 Rf = 0,79
Rf
Rf
Rf
Rf
Rf
0,55
0,49
0,92
0,49
0,92
Rf
Rf
Rf
Rf
Rf
0,65 0,49 0,92
Rf Rf
Rf
0,49 0,41 0,94
Akute | Toxizität (Maus. i.p. mg/kg) |
1 | PTC-A PTC-B | Tabelle 2 | PTC-E | PTC-F | PTC-G | |
O | 500 500 es traten keine |
PTC-C PTC-D | 500 | 500 | 500 | |||
O | 500 500 Todesfälle auf |
|||||||
PTC = Planothiocin
Tabelle 2 (Fortsetzung)
Minimale Hemmkonzentration (MIC; γ/ml)
PTC-A
PTC-B
PTC-C
PTC-D
PTC-E
PTC-F
PTC-G
Staphylococcus aureus ATCC 6538p | 0,008 | 0,016 | 0,008 | < | 0,004 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | I | |
" " MS353 | 0,016 | 0,031 | 0,008 | 0,004 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | |||
" " MS353 C36 | 0,016 | 0,031 | 0,008 | 0,004 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | |||
" " MS353 AO | 0,008 | 0,031 | 0,008 | 0,004 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | |||
" » 0116 | 0,008 | 0,031 | 0,008 | < | 0,008 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | ||
tr η 0119 | 0,008 | 0,016 | 0,008 | < | 0,004 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | ||
co
CJ |
" " 0126 | 0,016 | 0,031 | 0,008 | < | 0,004 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | |
CJ
CD |
η π 0127 | 0,016 | 0,031 | 0,008 | 0,008 | 0,016 | 0,031 | 0,016 | ||
CD | " epidermidis sp.al-1 | 0,031 | 0,063 | 0,016 | > | 0,016 | 0,063 | 0,125 | 0,016 | |
CD | Streptococcus pyogenes N.Y.5 | < 0,002 | 0,004 | <0,002 |
"7
7 |
0,002 | 0,004 | <0,002 | <0,002 |
co
O |
cn | ti η -y 022 | 0,004 | 0,008 | 0,004 | 7 | 0,004 | 0,008 | 0,004 | 0,004 |
NJ
OO |
O | " faecalis 1501 | 0,25 | >1 | 0,5 | 1 | 71 | 71 | 71 |
U I
CO |
|
" agalactiae 1020 | 0,063 | 1 | 0,25 | 1 | 1 | >1 | 0,5 | |||
Sarcina lutea ATCC 9341 | 0,004 | 0,008 | <0,002 | 0,002 | 0,008 | 0,008 | 0,002 | |||
Micrococcus flavus ATCC 10240 | 0,004 | 0,008 | <0,002 | 0,002 | 0,008 | 0,008 | 0,002 | |||
Corynebacterium diphtheriae P.W. | 8 0,004 | < 0,002 | <0,002 | 0,002 | 0,004 | 0,004 | 0,002 | |||
Bacillus subtilis ATCC 6633 | 0,031 | 0,063 | 0,031 | 0,016 | 0,031 | >1 | 0,063 | |||
Escherichia coIi NIHJ-JC2 π "Β |
71 | 71 | >1 | ι | 71 | >i | ||||
Klebsiella pneumoniae ATCC10031 | 71 | y 1 | •1 | >1 | ^1 | 71 | ||||
Salmonella typhosa H901 | 71 | >^ | 71 | 1 | 71 | 71 | 71 | |||
Vergleicht man Nosiheptid mit Planothiocin-C, -D- und -E,
so besitzt Nosiheptid die zuvor erwähnten Eigenschaften, wohingegen Planothiocin-C, -D und -E keine Absorptionspeaks
im sichtbaren Bereich zeigen und in Form weißer Kristalle vorliegen. 35665RP-Substanz ist ein Derivat von
Nosiheptid und besitzt einen Absorptionspeak von 405 m/u
Die Rf-Werte an Silikagel-Dünnschichtchromatographie für
Planothiocin-C, -D, -E, -F und -G unterscheiden sich von denen für Nosiheptid, Planothiocin-A und -B wie folgt:
Nosiheptid: (1)+ Rf = 0,35, (2)** Rf = 0,27,
(3)+++ Rf = 0,29, (4)++++ Rf = 0,62;
Planothiocin-A: (I)+ Rf = 0,2, (2)++ Rf = 0,13,
(3)+++ Rf = 0,19, (4)++++ Rf = 0,05;
Planothiocin-B: (I)+ Rf = 0,43, (2)++ Rf = 0,22,
(3)+++ Rf = 0,18, (4)++++ Rf = 0,05;
Lösungsmittelsysteme:
+ CHCl-z/Methanol/Essigsäure = 20:1:0,1;
++ Äthylacetat/Methanol/Es sigsäure = 10:1:0,2;
+++ Acetonitril/Wasser = 10:1; ++++ CHCl,/Methanol = 10:1.
Andere physikalisch-chemische Eigenschaften, wie die optische
Drehung, unterscheiden sich von denen bekannter, Schwefel enthaltender Antibiotika. Als Ergebnis sind somit
Planothiocin-C, -D, -E, -F und -G nicht mit bekannten, Schwefel enthaltenden Antibiotika identisch. Die erfindungsgemäßen
Planothiocine sind somit neue Antibiotika.
Ein Planothiocin liefernder Mikroorganismus ist Actinomycetales, isoliert aus einer Bodenprobe eines Paprikafelds
in Mihama-cho, Mikata-gun, Fukui-ken, Japan, und wird dem Genus Actinoplanes zugeordnet und als Actinoplanes sp.
A12526 bezeichnet. Dieser Stamm wurde im Institute for
130009/0750
Microbiological Industry and Technology, M.I.T.I., Japan,
unter der Nummer FERM-P Nr. 5063 hinterlegt.
Die taxonomischen Eigenschaften dieses Stammes sind wie folgt.
(I) Morphologische Eigenschaften
Beobachtungen auf Stärke-anorganischem Salzagarmedium bei der Züchtung bei 30°C während 1 bis 14 Tagen sind wie folgt.
Das Substratmycelium ist wellenförmig oder gewunden, verzweigt, hat einen Durchmesser von 0,8 bis 1,0/um und zeigt
keine Bildung von Lufthyphen.
Sporangien werden an der kurzen Sporangiophore gebildet, die von dem Substratmycelium ausgeht. Die Formen der Sporangien
sind kugelförmig oder elliptisch, 5 bis 10 χ 5 bis 15/um in der Größe und enthalten viele Sporangiosporen. Die
Sporangiosporen sind fast kugelförmig oder subkugelförmig,
haben einen Durchmesser von 1 bis 1,5/um und durch viele
Härchen enthaltende Flagella frei beweglich.
(II) Zusammensetzung der Diaminopimelinsäure
Die Diaminopimelinsäure, die durch Analyse der gesamten Zelle festgestellt wurde, liegt als Hauptkomponente im meso-Typ
und als Nebenkomponente im Hydroxy-Typ vor.
(III) Kultureigenschaften auf verschiedenen Medien
Die Beobachtungen, die man bei Bestimmung der Kultureigenschaften in verschiedenen Medien bei 30°C während 14 Tage-Kulturen
macht, sind in der folgenden Tabelle 3 aufgeführt. Man beobachtet eine geringfügige Bildung von nichtgereiften,
gewachsenen Luftmycelia auf vielen Medien. Die Angabe der Farbe beruht auf dem Anzeigesystem in "Color Harmony Manual",
4. Ed., 1958, publiziert von Container Corporation of America.
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Tabelle 3 Kultureigenschaften auf verschiedenen Medien
Medium
Wachsturn
Sporangium Farbe des Substratmyceliums Losliches Pigment
Saccharose- gut Nitratagar
Glucose-Asparagin-schlecht agar
Glycerin-Asparaginagar geringf.
schlecht leichtes Melonengelb (3ea) geringfügig helle Weizenfarbe (2ea)
keins
If
OJ O |
anorganische SaI- ze-Stärkeagar |
gut | gut | mittel |
CD CD to |
Tyrosinagar schlecht bis geringf, |
Il | geringfügig » |
|
CD | Hafermehlagar | η | schlecht | |
cn | Hefe-Malzagar | It | Il | |
Bennett's Agar | schlecht | geringfügig | ||
Emerson's Agar | mittel | schlecht | ||
Nähragar | gut | keins | ||
Hickey und Tresner-Agar |
mittel bis schlecht |
|||
Pepton Czapeck's Agar |
mittel |
farblos
bernsteinfarben (31c) bis hellbernsteinfarben (3ic)
farblos bis hellelfenbeinfarben(2ca)
bernsteinfarben (3nc-31c)
goldfarben(3ne)bis zlmtfarben(31e)
topasfarben (3ne)
bernsteinfarben (3pc - 3nc)
farblos
goldfarben(3ne)bis zlmtfarben(31e)
topasfarben (3ne)
bernsteinfarben (3pc - 3nc)
farblos
ti
korkfarbenes Dunkelgelb
ro s tbraun-o rangefarben (4nc)
korkfarbener Dunkelgelb (4ie)
keins
(IV) Physiologische Eigenschaften
Die physiologischen Eigenschaften werden im folgenden aufgeführt.
(1) Ausnutzung von Kohlenstoffquellen
Kohlenstoff- | Ausnutzung | Kohlenstoff- Ausnutzung |
quelle | quelle | |
L-Arabinose | + | Salicin + |
D-XyIose | + | D-Galactose + |
D-Glucose | + | Glycerin + |
D-Fructose | + | L-Sorbose |
D-Mannose | + | Trehalose + |
D-Mannit | + | a-Melibiose + |
Inosit | + | D-Ribose + |
L-Rhamnose | + | Maltose + |
Saccharose | + | Melezitose + |
ß-Lactose | + | D-Cellobiose + |
Raffinose | - | D-Sorbit |
Cellulose | - | Dulcit |
Stärke | + |
+ = positiv; - = negativ; + = schwach positiv
(2) Wachstumstemperatur: 7 bis 40°C,
(3) Peptonisierung und Koagulation von Magermilch: positif,
(4) Melaninbildung: Tyrosinagarmedium - negativ; Pepton-Hefe-Eisenagannedium - positiv,
(5) Stärkehydrolyse: positiv,
(6) Cellulosezersetzung: negativ,
(7) Caseinhydrolyse: positiv,
(8) Tyrosinzersetzung: positiv,
(9) Gelatineverflüssigung: positiv
(10) Xanthinzersetzung: negativ,
(11) Hypoxanthinzersetzung: negativ,
(12) Bildung von Schwefelwasserstoff: positiv,
(13) Nitratreduktion: positiv.
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Entsprechend den obigen taxonomisehen Angaben, gemäß denen
der Stamm A12526 Sporangia tragende Sporangiophoren enthält,
die auf dem verzweigenden Substratmycelium wachsen, kugelförmig oder elliptisch geformte Sporangien aufweist, sphärisch
oder subsphärisch geformte Sporangiosporen mit leicht
beweglichen, polaren Flagella besitzt und meso-Diaminopimelinsäure
enthält, gehört dieser Stamm zum Genus Actinoplanes.
Planothiocine können bevorzugt aus Kulturbrühe des obigen Stammes Actinoplanes sp.A12526 erhalten werden. Der obige
Stamm ist nur ein Beispiel und Planothiocine einschließlich Planothiocin-A, -B, -C, -D, -E, -F und -G erzeugende
Mikroorganismen können verwendet werden. Beispielsweise können Planothiocine erzeugende Mikroorganismen, die zum Genus
Actinoplanes gehören, oder ihre Mutanten verwendet werden.
Planothiocine können durch aerobe Kultur von Planothiocine liefernden Stämmen, die zum Genus Actinoplanes gehören, in
an sich bekannten, Antibiotika ergebenden Medien gezüchtet werden. Man kann feste oder flüssige Medien verwenden, und
für die Herstellung in industriellem Maßstab ist eine submerse Belüftungskultur bevorzugt.
An sich bekannte Nährmedien für Mikroorganismen, die assimilierbare
Kohlenstoffquellen, wie Glucose, Saccharose, Lactose,
Maltose, Stärke, Melasse oder Glycerin, und assimilierbare Stickstoffquellen, wie Maisquellwasser, Sojabohnenpulver,
Baumwollsamenpulver, Weizengluten, Pepton, Fleischextrakt, Hefeextrakt, Trockenhefe, Caseinhydrolysat, Ammoniumsalze
oder Nitrat, enthalten, können verwendet werden. Zu dem Medium können je nach Bedarf Phosphat, Carbonat, Sulfat
und Salze von Magnesium, Calcium, Kalium, Natrium, Kobalt, Eisen(II) oder Mangan zugegeben werden.
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Die Züchtungstemperatur hängt von dem Wachstum der Mikroorganismen
und der Bildung der Planothiocine ab. Bevorzugt beträgt die Temperatur 25 bis 3O0C. Die Züchtungszeit hängt
von den Bedingungen ab und beträgt normalerweise 2 bis 4 Tage. Die Züchtung wird beendigt, wenn die maximale Potenz
der Planothiocine in dem Medium erreicht worden ist.
Planothiocine werden hauptsächlich in dem Mycelium und teilweise in dem KuIturfiltrat hergestellt.
Ein Verfahren zur Isolierung und Reinigung der Planothiocin-A,
-B, -C, -D, -E, -F und -G-Komponenten aus Pianothioeinen
ist wie folgt. Gezüchtete, nasse Mycelia und Filtrat werden erhalten, indem man die Kulturbrühe des obigen, Planothiocine
bildenden Stamms filtriert oder zentrifugiert.
Das Kulturfiltrat enthält geringe Mengen an Planothiocinen und bevorzugt können die Antibiotika aus den Kulturmycelia
isoliert werden. Planothiocine können aus nassen Mycelia durch Zugabe von Aceton extrahiert werden. Der Acetonextrakt
wird im Vakuum konzentriert und erneut durch Zugabe von Äthylacetat extrahiert. Der Äthylacetatextrakt wird im Vakuum
konzentriert, wobei man einen braunlichen, öligen Sirup erhält. Ein bräunliches Präzipitat wird erhalten, indem
man Hexan zugibt. Das Präzipitat wird in einem Gemisch aus Chloroform und Methanol aufgelöst und im Vakuum unter Bildung
eines hellbräunlichen Präzipitats nach der Entfernung des Chloroforms konzentriert. Dieser Vorgang wird wiederholt,
wobei man ein gräulich-weißes Präziptit erhält, welches rohes Pianothiocin. ist und Planothiocin-A, -B, -C, -D, -E,
-F und -G enthält. Das Rohprodukt wird in einem Gemisch aus Chloroform und Methanol (3:1) gelöst und durch Zugabe von
Silikagelpulver getrocknet. Das Gemisch wird der Silikagel-Säulenchromatographie
unterworfen und mit Chloroform/Methanol/Essigsäure (20:1:0,1) entwickelt.
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Eine Gruppe aktiver Fraktionen, die hauptsächlich Planothiocin-F und -G; Piano thiocin-D und -E; Piano thiocin-B und -C;
und Planothiocin-A enthalten, wird erhalten.
Eine aktive Fraktion, die Pianothiocin-F und -G enthält,
wird im Vakuum konzentriert, wobei man ein weißes Pulver erhält, das gereinigt wird,indem man es der Silikagel-Säulenchromatographie
unterwirft und mit einem Gemisch aus Chloroform und Methanol (25:1) eluiert. Eine aktive Fraktion,
die Piano thiocin-E und -D enthält, kann gereinigt werden, indem man konzentriert und an einer Silikagelsäule
chromatographiert, wobei man mit einem Gemisch aus Äthylacetat/Methanol/Essigsäure
(20:1:0,2) entwickelt. Eine aktive Fraktion, die Pianothiocin-B und -C enthält, kann nach
dem gleichen, oben beschriebenen Verfahren gereinigt werden. Weiße Kristalle von Planothiocin-A werden erhalten, indem
man das Konzentrat der aktiven Fraktion, die Planothiocin-A enthält, in einem Gemisch aus Chloroform und Methanol (2:1)
löst und das Chloroform für die Umkristallisation entfernt.
Die so erhaltenen Planothiocine können für therapeutische oder prophylaktische, antibakterielle Mittel oder als Futterzusatzstoffe
für Viehbestände, Geflügel oder Fisch verwendet werden.
Futterzusatzstoffe für eine .wachstumsaktivierende Wirkung,
wie eine Erhöhung der Futterausbeute und . des Wachstums beim Schwein, enthalten bevorzugt 1 bis 20 ppm Planothiocine.
Eine wachstumsaktivierende Wirkung kann bei Geflügel erreicht werden, indem man 1 bis 10 ppm Futterzusatzstoffe
zugibt. Bei Fischen werden 0,1 bis 100 ppm zu dem Futter zugegeben.
Für die Zugabe der Planothiocine kann im Handel erhältliches Futter verwendet werden.
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Für eine antibakterielle therapeutische oder prophylaktische
Verwendung können 1 bis 500 ppm eingesetzt werden. Planothiocine enthaltendes Futter kann in Form eines Gemisches,
einer Paste, einer Tablette, eines Granulats, in Form von Pellets oder als Sirup vorliegen. Antibakterielle
therapeutische oder prophylaktische Wirkungen und eine das Wachstum begünstigende Wirkung werden erhalten, wenn man
die Zusammensetzungen an Vieh, Geflügel oder Fische verfüttert. Weiterhin wird eine Erhöhung in der Vermehrungswirkung bzw. Zeit für die Empfängnis und Laichzeit beobachtet
.
Planothiocine verbleiben nicht in den Organen und Geweben des Viehs, des Geflügels und der Fische nach der Verabreichung.
Man beobachtet keine akuten toxischen Symptome und teratogenen Wirkungen.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung. In der Beschreibung
und den Ansprüchen sind die Prozentgehalte durch das Gewicht ausgedrückt.
Ein Medium (pH 6,5, 100 ml), das 296 Glucose, 2% lösliche
Stärke, 1% Caseinhydrolysat, 1% Hefeextrakt und 0,296 CaI-ciumcarbonat
enthält, wird 20 min bei 1200C in einem 500 ml Erlenmeyerkolben sterilisiert. Eine öse voll Actinoplanes sp.
A12526 in Agarschrägmedium wird zum Inokulieren dieses sterilisierten
Mediums verwendet und dann wird 4 Tage bei 300C unter Schütteln bei 250 U/min geschüttelt. Das gleiche Kulturmedium
wird hergestellt und unter gleichen Bedingungen wird kultiviert. Diese Impfkultür (insgesamt 200 ml) wird zum Inokulieren
eines sterilisierten Mediums der gleichen .Zusammensetzung (20 1) in einer 30 1 Kolben-Fermentationsvorrichtung
verwendet und 2 Tage bei 300C und 300 U/min und 20 l/min Belüftung
kultiviert. 10 1 dieses Kulturmediums werden zum In-
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okulieren eines sterilisierten Mediums verwendet, das 3% Saccharose, 2% Sojabohnenpulver, O,3# CaCO,, 0,00196
CoCl2.6H2O und 0,001% MgSO4.7Η£0 enthält (pH 6,5, 200 ml), und
in einem 250 1 Tank 3 Tage bei 3O0C, 200 U/min und einer
Belüftungsrate von 200 l/min kultiviert. Nach der Zugabe von 5 kg Filterhilfsmittel "Perlite" wird das so erhaltene
Kulturmedium zur Abtrennung von nassen Mycelia und Filtrat filtriert. Die Antibiotika sind sowohl im Mycelium als auch
im Filtrat, hauptsächlich im Mycelium, enthalten.
80 1 Aceton werden zu den nassen Mycelia zugegeben, dann wird 3 h heftig gerührt und filtriert. Der Acetonextrakt
wird im Vakuum bis auf 20 1 konzentriert. 20 1 Äthylacetat werden zugegeben und dann wird der pH-Wert der wäßrigen
Schicht auf 3»0 eingestellt. Nach heftigem Rührem wird die Äthylacetatschicht abgetrennt. 10 1 Äthylacetat werden weiter
in die verbleibende, wäßrige Schicht gegeben, dann wird heftig gerührt und die Äthylacetatschicht abgetrennt. Die
Äthylacetats chi chten werden vereinigt. 30 1 der vereinigten organischen Schicht werden im Vakuum konzentriert;
man erhält einen bräunlichen, öligen Sirup. 2 1 Hexan werden zu diesem Sirup zugesetzt, um eine bräunliche Substanz
auszufallen, die durch Zentrifugieren gesammelt wird. Der Niederschlag wird in 1500 ml eines Gemisches aus Chloroform
und Methanol (5:2) gelöst und zur Ausfällung einer hellbräunlichen Substanz konzentriert, welche durch Zentrifugieren
gesammelt wird. Der Niederschlag wird erneut in einem Gemisch aus Chloroform und Methanol (5:2) gelöst und
im Vakuum zur Ausfällung einer gräulichen Substanz konzentriert.
Nach der Filtration wird die Substanz im Vakuum getrocknet; man erhält ein rohes Pulver (15,2 g), das Pianothiocin-A,
-B, -C, -D, -E, -F und -G enthält.
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3023594
15 g des in Beispiel 1 erhaltenen rohen Pulvers werden in 2 1 eines Gemisches aus Chloroform und Methanol (3:1) gelöst.
300 g Silikagelpulver werden zu der Lösung zugesetzt und dann wird im Vakuum getrocknet, wobei man ein Gemisch
aus Silikagel erhält. Dieses Silikagelgemisch wird auf den oberen Teil einer Silikagelsäule (1500 ml) gegeben, die mit
einem Lösungsmittelgemisch aus Chloroform/Methanol/Essigsäure (20:1:0,1) gepackt ist. Die Eluierung erfolgt mit
dem gleichen Lösungsmittelgemisch. Die aktiven Fraktionen, die Pianothiocinkomponenten enthalten, werden wie folgt
eluiert.
Fraktionen Nr. 11 - 13: Pianothiocin-F und -G
Fraktionen Nr. 14 - 16: Planothiocin-D und -E
Fraktionen Nr. 17 - 24: Pianothiocin-B und -C
Fraktionen Nr. 46 - 60: Planothiocin-A.
Die aktiven Fraktionen Nr. 46-60 werden gesammelt und im Vakuum zur Ausfällung von Planothiocin-A konzentriert. Die Niederschläge
werden durch Zentrifugieren gesammelt, in einem Gemisch aus Chloroform und Methanol (2:1) gelöst und bei
Zimmertemperatur zur Entfernung des Chloroforms stehengelassen. Man erhält gereinigtes Planothiocin-A in Form
weißer Kristalle (6,9 g).
Die aktiven Fraktionen Nr. 11-13, die Pianothiocin-F und -G
enthalten, werden gesammelt und im Vakuum unter Bildung eines weißen Pulvers (80 mg) konzentriert. Das Pulver wird in
einem Lösungsmittelgemisch aus Chloroform und Methanol (25:1) gelöst und auf eine Säule aus Silikagel (150 ml) gegeben,
die mit dem gleichen Lösungsmittelgemisch gepackt ist, und dann wird mit dem gleichen Lösungsmittel eluiert.
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3028534
Das Eluat wird in je 7 g-Fraktionen fraktioniert» Pianothiocin-G
wird in den aktiven Fraktionen Nr. 23-2? festgestellt. Pianothiocin-F wird in den aktiven Fraktionen Rr.
30-37 festgestellt. Jede der aktiven Fraktionen wird gesammelt
und im Vakuum konzentriert, wobei man weiße, feine Nadelkristalle erhält. Die filtrierten Kristalle werden in
Chloroform gelöst und bei Umgebungstemperatur stehengelassen. Dabei kristallisieren weiße, feine Kristalle aus Planothiocin-G
und -F. Die Kristalle werden abfiltriert und getrocknet; man erhält gereinigtes Piano thiocin-G (6 mg) und Planothiocin-F
(22 mg).
Die aktiven Fraktionen Nr. 14-16, die Pianothiocin-D und -E
enthalten, werden gesammelt, im Vakuum konzentriert und auf eine Säule aus Silikagel (150 ml) gegeben, die zuvor mit
Äthylacetat/Methanol/Essigsäure (20:1:0,2) gepackt worden war. Die Elution erfolgt mit dem gleichen Lösungsmittelgemisch
(11 g/1 Fraktion). Die Fraktionen Nr. 23-29 werden als aktive Fraktion, die Pianothiocin-E enthält, gesammelt.
Piano thiocin-D wird in den Fraktionen Nr. 35-49 festgestellt, Jede der aktiven Fraktionen wird im Vakuum konzentriert und
dann wird zur Ausfällung von Planothiocin-E und -D Hexan zugegeben.
Jeder Niederschlag wird in einem Gemisch aus Chloroform/Methanol (5:3) gelöst und Chloroform wird durch Konzentration
entfernt, wobei Planothiocin-E und -D in Form weißer, feiner Nadelkristalle ausfällt. Die Kristalle werden
filtriert und getrocknet; man erhält gereinigtes Planothiocin-E 683 mg) und Planothiocin-D (74 mg).
Die aktiven Fraktionen Nr. 17-24, die Pianothiocin-B und -C
enthalten, werden gesammelt, im Vakuum konzentriert und auf eine Silikagelsäule (200 ml) gepackt, die zuvor mit Äthylacetat/Methanol/Essigsäure
(20:1:0,2) gepackt worden war.
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Die Elution erfolgt mit dem gleichen Lösungsmittelgemisch (15 g/1 Fraktion). Pianothiocin-C wird in den Fraktionen
Nr. 30-47 und Pianothiocin-B in den Fraktionen Nr. 70-88 festgestellt. Jede der aktiven Fraktionen wird im Vakuum
konzentriert und zur Ausfällung von Planothiocin-C und -B mit Hexan versetzt. Jedes Präzipitat wird in einem Gemisch
aus Chloroform/Methanol (5:3) gelöst und zur Entfernung von Chloroform und zur Ausfällung von weißem, kristallinem
Planothiocin-C und -B konzentriert. Die Kristalle werden filtriert und getrocknet; man erhält gereinigtes
Planothiocin-C (137 mg) und Pianothiocin-B (160 mg) in Form weißer, feiner Nadelkristalle.
Ein Medium (pH 7|O, 100 ml), das 196 Dextrin, 2% Glucose,
2% lösliche Stärke, 196 Caseinhydrolysat (Warenzeichen:
NZ-Amine Type A), 1% Hefeextrakt und 0,2% CaCO, in einem
500 ml Erlenmeyerkolben enthält, wird 20 min bei 1200C sterilisiert.
Eine ösevoll Actinoplanes sp. A12526 in Agarschrägkulturmedium
wird zur Inokulierung dieses sterilisierten Mediums verwendet und dann wird 4 Tage bei 250 U/min
und 30°C unter Schütteln kultiviert. Diese Impfkultür
(200 ml) wird zur Inokulierung eines sterilisierten Mediums verwendet, das 396 Saccharose, 296 Sojabohnenpulver,
0,396 CaCO,, 0,001% CoCl2.6H2O und 0,00196 MgSO^.7H2O (20 l)
in einer 30 1 Kolbenfermentationsvorrichtung enthält, und dann wird 4 Tage bei 300C und 200 U/min und 20 l/min Belüftung
kultiviert.
Die so erhaltene Kulturbrühe wird zur Abtrennung der Mycelia und der überstehenden Flüssigkeit zentrifugiert.
10 1 Aceton werden zu den nassen Mycelia zugegeben, dann wird 3 h gerührt und anschließend filtrL ert. Der Acetonextrakt
wird auf 2 1 konzentriert, dann wird der pH-Wert auf 6,5 eingestellt, 2 1 Äthylacetat werden zugegeben und
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dann wird heftig gerührt. Die Äthylacetatschicht wird konzentriert;
man erhält einen bräunlichen, öligen Sirup. 200 ml Hexan werden zu dem Sirup gegeben. Die ausgefallene,
bräunliche Substanz wird zentrifugiert und in einem Gemisch aus Chloroform und Methanol (5:1)(200 ml gelöst. Die Lösung
wird zur Abdestillation des Chloroforms konzentriert. Ein gräulich-weißer Niederschlag wird durch Zentrifugieren gesammelt
und getrocknet; man erhält ein Gemisch (240 mg, Reinheit » 60#), das Planothiocin-A und -B enthält.
170 mg des Gemisches werden in Chloroform/Methanol/Essigsäure (13:1:0,1) gelöst und auf eine Säule aus Silikagel
(120 ml) gegeben, die zuvor mit dem gleichen Lösungsmittelgemisch gepackt worden war. Die Eluierung erfolgt mit dem
gleichen Lösungsmittelgemisch für je 18 g/1 Fraktion. Die
aktiven Fraktionen, die Pianothiocin-B enthalten, werden in
den Fraktionen Nr. 9-15 festgestellt. Planothiocin wird in den aktiven Fraktionen bei den Fraktionen Nr. 16-46 festgestellt.
Jede Fraktion wird gesammelt, zur Ausfällung weißer Kristalle konzentriert, die durch Zentrifugieren gesammelt
werden. Die Kristalle werden in 20 ml eines Gemisches aus Chloroform/Methanol (2:1) gelöst und zur Entfernung des
Chloroforms bei Umgebungstemperatur stehengelassen. Dabei kristallisieren Planothiocin-A- und -B in Form weißer
Nadelkristalle aus-. Die so gebildeten Kristalle werden abfiltriert
und getrocknet; man erhält Planothiocin-A (59 mg) und Planothiocin-B (23 mg).
Weiße nadeiförmige Kristalle von Planothiocin-A (50 mg),
die bei dem obigen Verfahren erhalten wurden, werden in 10 ml einer Lösungsmittelmischung aus Essigsäure/Chloroform/
Methanol (3:1:1) gelöst. Die so ausgefällten, farblosen, prismenartigen Kristalle werden abfiltriert und getrocknet;
man erhält Planothiocin-A in Form farbloser, prismenartiger Kristalle (29 mg).
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Das Gemisch aus Pianothiocin-A und Pianothiocin-B (Planothiocin-A:Planothiocin-B
= 93:7) wird mit einem Futter (künstliche Milch für Ferkel), welches 22,44% Rohprotein,
5,14% Rohfett, 0,74% rohe Cellulose, 6,16% rohe Asche,
1,25% Calcium und 0,95% Phosphor; DCP 21,38%, TDN 87,41%, enthält, vermi seht.
Zwei Gruppen von Ferkeln, je 10 in einer Gruppe, die 25 Tage
alt sind, werden 4 Wochen gefüttert, wobei eine Gruppe mit dem Vergleichsfutter (keine Zugabe von Antibiotika),
0,5 ppm zugegebenem Futter (Futter, das 0,5 ppm Antibiotika enthält) und 5 ppm zugegebenem Futter gefüttert wurde. Die
andere Gruppe wurde mit einem Vergleichsfutter (ohne Zugabe von Antibiotika), 10 ppm zugegebenem Futter (Futter,
das 10 ppm Antibiotika enthält) und 20 ppm zugegebenem Futter gefüttert.
Die Ergebnisse des mittleren Körpergewichts, die Zunahme des mittleren Körpergewichts und das Verhältnis der Zunahme
des mittleren Korpergewichts sind in Tabelle 4 angegeben. Wie aus der Tabelle folgt, beobachtet man wachstumsfördernde
Wirkungen.
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Körpergewicht
Tabelle 4
Vergleich
Vergleich
0,5 ppm zugegeben
5 ppm zugegeben
Gruppe 1
zu Beginn
-1
am Ende Erhöhung2
Verhältnis der Erhöhung
5,5+1,08 5,6+1,26 5,4+1,39 15,1 + 2,76 16,2 +2,32 16,6 + 2,15
9,5+1,97 10,6+1,32 11,2+1,21*
100
110
118
Körpergewicht
Vergleich
10 ppm zugegeben
20 ppm zugegeben
Gruppe 2
zu Beginn
am Ende
ρ Erhöhung
5,8+1,07 5,8+0,87 5,7+1,15
15,4+2,14 17,2+1,95 16,8+2,33 9,7 + 1,33 11,5+1,27++ 11,1 +1,27+
Verhältnis der Erhöhung
100
119
114
(1) mittleres Körpergewicht + Standardabweichung(kg)
(2) mittleres erhöhtes Körpergewicht + Standardabweichung (kg)
++ signifikante Differenz mit 1% Abweichung + signifikante Differenz mit 5% Abweichung.
Ein Gemisch aus Planothiocin-A und -B (Verhältnis = 93:7)
wird mit einem Geflügelfutter vermischt, das 20,096 Rohprotein, 3,4% Rohfett, 3,4% rohe Cellulose, 5,5% Rohasche,
1,03% Calcium, 0,83% Phosphor und 0,43% anorganisches Phosphat enthält und 70,3% TDN und eine Gesamtenergie von
34 cal/1000 g aufweist.
Zwei Gruppen von Küken, jeweils eine männliche und eine weibliche Gruppe, 25 Küken in jeder Gruppe, werden 4 Wochen
mit einem Kontrollfutter (keine Zugabe von Antibiotika), mit einem Futter, dem 0,5 ppm Antibiotika zugegeben sind
(Futter, das 0,5 ppm Antibiotika enthält), einem Futter,
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das 10 ppm Antibiotika enthält, und einem Futter, das 20 ppm Antibiotika enthält, gefüttert.
Wie aus der folgenden Tabelle 5 hervorgeht, wurde eine das
Wachstum begünstigende Wirkung beobachtet.
In der Tabelle wurden bei der männlichen Gruppe signifikante Unterschiede beobachtet.
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Körpergewicht Vergleich 0,5 ppm 5 ppm 10 ppm 20 ppm
weiblichezu Beginn144,32+2,9444,12+2,6544,32+2,4844,0+2,47 44,16+2,67
Gruppe ^n J1n^I 720,5+60,3 769,6+55,0 759,0+63,2 787,8+69,2 806,0+53,1
mittlere ,Er- . . , . , ,
höhung 676,2+60,0 725,4+54,5 714,7+62,4 743,7+68,5 761,8+52,9
männlichezu Beginn144,20+2,9644,20+3,2144,48+2,5244,32+3,1644,48+2,97
Gruppe am Ende1 784,4+70,9 823,1+45,6 839,2+62,7 868,7+61,6 863,2+47,7
co mittlere Er- . ,^ ,
ο höhung 742,2+71,1 778,9+45,0 794,7+63,3 824,4+61,9 818,8+48,6
(1) mittleres Körpergewicht + Standardabweichung (g) '
° (2) mittleres erhöhtes Körpergewicht + Standardabweichung (g) ο
+ signifikante Differenz mit einer Abweichung von 1% '
++ signifikante Differenz mit einer Abweichung von 5%
D1W
5 pu
(fö φ
8·
<D
■ - 34-
L e e r s e 11
Claims (8)
1. Planothiocin-AntiMotika, ausgewählt aus der Gruppe Pianothiocin-A, Planothiocin-B, Planothiocin-C,
Planothiocin-D, Pianothiocin-E, Pianothiocin-F und Planothiocin-G.
2. Pianothiocin-A mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 266 bis 269°C (Zers.),
(2) Elementaranalyse: C 49,47%, H 3,53%, N 13,25%,
S 13,73%,
(3) Molekulargewicht: 1438 (minimales Molekulargewicht, berechnet durch Aminosäureanalyse unter der Annahme,
daß 1 Molekül Threonin in 1 Molekül der Verbindung vorhanden ist),
(4) optische Drehung: [«]q = +19,6 (c = 0,7,
Pyridin)
130009/0750
(5) Ultraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 1 (in
Methanol), Fig. 2 (in angesäuertem Methanol), Fig. 3 (in alkalischem Methanol),
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 4,
(7) Farbreaktion: positiv - entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ - Eisen(IIl)-Chlorid, Ninhydrin
und Molisch,
(8) Löslichkeit: löslich in einem Gemisch aus CHCl,-Methanol,
Pyridin, DMSO, Eisessig; unlöslich in Benzol, Aceton, Petrolather und Hexan,
(9) Natur: schwach sauer, (10) Farbe: weiße Kristalle.
3. Planothiocin-B mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 259 bis 262°C (Zers.),
(2) Elementaranalyse: C 49,3796, H 3,4596, N 13,3090,
S 14/1996,
(3) Molekulargewicht: 1350 (minimales Molekulargewicht, berechnet durch Aminosäureanalyse unter der Annahme,
daß 1 Molekül Threonin in 1 Molekül der Verbindung vorhanden ist),
(4) optische Drehung: [oc]Jp = +95,4 (c = 0,5,
Pyridin),
(5) Ultraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 5 (in Methanol), Fig. 6 {in angesäuertem Methanol), Fig. 7 (in
alkalischem Methanol),
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 8,
(7) Farbreaktion: positiv - entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ - Eisen(III)-chlorid, Ninhydrin und
Molisch,
(8) Löslichkeit: löslich in einem Gemisch aus CHCl,-Methanol, Pyridin, DMSO und Eisessig; unlöslich in Benzol,
Aceton, Petroläther und Hexan,
(9) Natur: schwach sauer, (10) Farbe: weiße Kristalle.
130009/0750
4. Pianothiocin-C mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 247 bis 251°C (Zers.)»
(2) Elementaranalyse: C 47,81%, H 3,42%, N 13,62%,
S 13,85%,
(3) Molekulargewicht: 1200 bis 1500 (bestimmt
durch Aminosäureanalyse),
(4) optische Drehung: [cc]q = +28,4 (c = 0,9,
Pyridin),
(5) tlltraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 9 (in Methanol), Fig. 11 (in alkalischem Methanol),
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 12,
(7) Farbreaktion: positiv - entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ - Eisen(lII)-chlorid, Ninhydrin und
Molisch,
(8) Löslichkeit: löslich in CHCl3, Pyridin, DMF
und DMSO; unlöslich in Benzol, Aceton, Petroläther und Hexan sowie Wasser;
(9) Natur: schwach sauer, (10) Farbe: weiße Kristalle.
5. Planothiocin-D mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 254 bis 258°C (Zers.),
(2) Elementaranalyse: C 48,18%, H 3,58%, N 13,26%, S 15,61%,
(3) Molekulargewicht: 1200 bis 1500 (bestimmt durch Aminosäureanalyse),
(4) optische Drehung: [oc]q° = +31,4 (c = 0,7,
Pyridin),
(5) Ultraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 13 (in Methanol), Fig. 15 (in alkalischem Methanol),
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 16,
(7) Farbreaktion: positiv - entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ - Eisen(IIl)-chlorid, Ninhydrin und
Molisch,
130009/0750
(8) Löslichkeit: löslich in CHCl3, Pyridin, DMF
und IMSO; unlöslich in Benzol, Aceton, Petroläther und Wasser,
(9) Natur: schwach sauer,
(10) Farbe: weiße Kristalle.
(10) Farbe: weiße Kristalle.
6. Planothiocin-E mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 245 bis 247°C (Zers.),
(2) Elementaranalyse: C 48,31%, H 3,3696, N 13,41%,
S 13,92%,
(3) Molekulargewicht: 1200 bis 1500 (bestimmt durch Aminosäureanalyse),
(4) optische Drehung: U0Oq = +45,5 (c =0,7,
Pyridin),
(5) Ultraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 17 (in Methanol), Fig. 19 (in alkalischem Methanol),
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 20,
(7) Farbreaktion: positiv - entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ - Eisen(III)chlorid, Ninhydrin, Molisch,
(8) Löslichkeit: löslich in CHCl5, Pyridin, DMF
und DMSOj unlöslich in Benzol, Aceton, Petroläther und
Vasser,
(9) Natur: schwach sauer,
(10) Farbe: weiße Kristalle.
(10) Farbe: weiße Kristalle.
7. Planothiocin-F mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 258 bis 260°C (Zers.),
(2) Elementaranalyse: C 49,83%, H 3,54%, N 14,70%, S 15,29%,
(3) Molekulargewicht (1200 bis 1500 (bestimmt durch Aminosäureanalyse),
(4) optische Drehung: O]^0 = +107,8 (c = 0,8,
Pyridin),
(5) Ultraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 21 (in Methanol), Fig. 23 (in alkalischem Methanol),
130Q09/0750
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 24,
(7) Farbreaktion: positiv - entfärbt Kaliumpermanganat und Jod; negativ - Eisen(III)-chlorid, Ninhydrin und
Molisch,
(8) Löslichkeit: löslich in CHCl3, Pyridin, DMF
und IMSO; unlöslch in Benzol, Aceton, Petroläther und Wasser,
(9) Natur: schwach sauer, (10) Farbe: weiße Kristalle.
8. Pianothtocin-G mit den folgenden Eigenschaften:
(1) Schmelzpunkt: 262 bis 264° C (Zers.),
(2) Elementaranalyse: C 49,2696, H 3,4296, N 13,7096,
S 15,9696,
(3) Molekulargewicht: 1200 bis 1500 (bestimmt durch Aminosäureanalyse),
(4) optische Drehung: [a]g° = +122,4 (c = 0,4,
Pyridin),
(5) Ultraviolett-Absorptionsspektrum: Fig. 25 (in Methanol), Fig. 27 (in alkalischem Methanol),
(6) Infrarot-Absorptionsspektrum: Fig. 28,
(7) Farbreaktion: positiv - ßntfärbt Kaliumpermanganat
und Jod; negativ - Eisen(III)-chlorid, Ninhydrin und Molisch,
(8) Löslichkeit: löslich in CHCl3, Pyridin, DMF
und DMSO; unlöslich in Benzol, Aceton, Petroläther und Wasser,
(9) Natur: schwach sauer, (10) Farbe: weiße Kristalle.
130009/0750
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D2 | Grant after examination | ||
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