CN111321102A - 一种生产l-组氨酸的基因工程菌及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种生产L‑组氨酸的基因工程菌及其应用，该菌是在大肠杆菌的基因组上整合了核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示的谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*并使其强表达，以增强组氨酸合成关键酶HisG的活性；还在基因组上增加了大肠杆菌自身组氨酸操纵子基因hisDBCHAFI的拷贝数，从而增强组氨酸的终端合成途径；还在基因组上整合了来源于谷氨酸棒杆菌的精氨酸/赖氨酸转运蛋白的编码基因lysE并使其强表达，以促进胞内组氨酸的向胞外分泌；还在基因组上整合了枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶编码基因rocG并使其强表达，以促进组氨酸的生成。

Description

一种生产L-组氨酸的基因工程菌及其应用
技术领域
本发明属于基因工程技术领域，具体涉及一种生产L-组氨酸的基因工程菌及其构建方法和应用。
背景技术
L-组氨酸(以下简称“组氨酸”)是一种重要的功能氨基酸，参与机体发育，抗氧化和免疫调节等多种生理生化过程。其主要应用于食品、饲料和医药行业，可作为营养强化剂和饲料添加剂以及用于生产氨基酸输液及综合氨基酸制剂，辅助治疗心脏病，贫血和胃肠溃疡等疾病，具有很高的经济和社会价值。
目前组氨酸主要通过从蛋白水解液中提取的方法生产，但此法损失率高，设备腐蚀严重，分离成本高，并不是最佳的组氨酸生产方法。微生物发酵法生产组氨酸，原料成本低廉，环境友好，操作简单，周期短，适合工业化生产，成为当前组氨酸生产研究的热点。微生物发酵法生产组氨酸的瓶颈在于缺乏高效生产组氨酸的菌株，主要原因在于组氨酸的生物合成途径长，且受到严谨复杂的反馈调控；需要多种前提物的协调供应，特别是大量的能量供应，造成了菌体难以大量积累组氨酸。为了获得高产组氨酸的生产菌株，研究者运用多种技术手段，包括传统诱变筛选、基因工程、代谢工程等，改造了不同种属的菌株并取得了一系列的成果。虽然这些研究所用技术手段不同，但是方法策略大体如下：解除组氨酸合成途径所受的反馈抑制；增强组氨酸的合成途径；增加前体物的供应；阻断组氨酸的代谢途径；以及促进组氨酸向胞外分泌等。
目前所报道的组氨酸发酵水平最高的菌株是E.coli WHY3(CN 110184230A)，该菌是以E.coli W3110为出发菌株，通过解除组氨酸合成的反馈调控，增强组氨酸合成途径以及促进组氨酸的胞外分泌三个方面入手构建而成，其在5L发酵罐发酵40-50h可生产组氨酸40-55g/L，平均生产强度为1.0-1.5g/(L×h)，转化率为0.18-0.22g组氨酸/g葡萄糖。但是其组氨酸产量及转化率仍有很大的提升空间。
发明内容
针对现有技术的不足，本发明目的是提供一种提高组氨酸发酵产量的方法，并且提供一株新的组氨酸发酵生产菌株。
本发明技术方案概述如下：
本发明提供一株高产L-组氨酸的基因工程菌E.coli WHY3-1，该菌是在大肠杆菌的基因组上整合了核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示的谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*并使其强表达，以增强组氨酸合成关键酶HisG的活性；还在基因组上增强了大肠杆菌组氨酸操纵子基因hisDBCHAFI的表达，从而增强组氨酸的终端合成途径；还在基因组上整合了来源于谷氨酸棒杆菌的精氨酸/赖氨酸转运蛋白的编码基因lysE并使其强表达，以促进胞内组氨酸的向胞外分泌；还在基因组上整合了枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶编码基因rocG并使其强表达，以促进组氨酸的生成。
进一步地，所述大肠杆菌为E.coli W3110。
进一步地，所述组氨酸操纵子基因hisDBCHAFI，包含hisD、hisB、hisC、hisH、hisA、hisF和hisI七个基因，增加了所述七个基因在大肠杆菌基因组上的拷贝数。
进一步地，所述谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*整合在大肠杆菌基因组上至少两个基因位点处。
进一步地，可以通过构建强启动子实现外源基因的强表达。
作为本发明一种较佳实施方式，所述谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*分别整合在大肠杆菌基因组tdcD和ylbE基因位点，并由启动子Ptrc启动。
作为本发明一种较佳实施方式，所述谷氨酸脱氢酶编码基因rocG整合到大肠杆菌基因组上的yjhE基因位点，并由启动子Ptrc控制其转录表达。
作为本发明一种较佳实施方式，所述基因工程菌E.coli WHY3-1是采用CRISPR/Cas9介导的基因编辑技术对E.coli W3110进行定向改造所得，具体包括如下步骤：
(1)构建启动子Ptrc与核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示的基因hisG*的连接片段Ptrc-hisG*，并将其分别整合在基因组上tdcD和ylbE基因位点；
(2)构建启动子Ptrc与大肠杆菌组氨酸操纵子基因的连接片段Ptrc-hisD-hisC-hisB-hisH-hisA-hisF-hisI，并用分段整合的方法将其整合在基因组上yghX基因位点；
(3)构建启动子Ptrc与来源于谷氨酸棒杆菌的lysE基因的连接片段Ptrc-lysE，并将其整合在基因组上yjiT基因位点；
(4)构建启动子Ptrc与来源于枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶编码基因rocG连接片段Ptrc-rocG，并将其整合在基因组上的yjhE基因位点。
本发明还提供了一种制备L-组氨酸的方法，所述方法是在适宜条件下培养所述基因工程菌E.coli WHY3-1，并从其培养物中收集组氨酸。
有益效果：
目前提高组氨酸产量的方法都集中在解除组氨酸合成途径所受的反馈抑制；增强组氨酸的合成途径；增加前体物的供应；阻断组氨酸的代谢途径；以及促进组氨酸向胞外分泌等方面。本发明首次通过在组氨酸产生菌中引入枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶，枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶以NADH为辅酶，催化α-酮戊二酸生成谷氨酸的反应，可同时介导谷氨酸和NAD+的再生，而谷氨酸和NAD+分别是组氨酸合成过程中的氨供体和辅酶，从而进一步提高了组氨酸的生产效率。WHY3-1用于发酵法生产组氨酸，利用5L发酵罐发酵36-48小时，可产组氨酸50-65g/L，平均生产强度1.5-2.0g/L/h，最高值达到2.5g/L/h，转化率为0.2-0.24g组氨酸/g葡萄糖。
附图说明
图1：(a)pREDCas9质粒图谱，(b)pGRB质粒图谱。
图2：在tdcD基因位点整合hisG*时整合片段构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNAmarker；1：上游同源臂；3：hisG*基因片段；3：下游同源臂；4：重叠片段；5：原菌对照；6：阳性菌的鉴定片段。
图3：在ylbE基因位点整合hisG*时整合片段构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNAmarker；1：上游同源臂；3：hisG*基因片段；3：下游同源臂；4：重叠片段；5：原菌对照；6：阳性菌的鉴定片段。
图4：hisD整合片段构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNA marker；1：上游同源臂；3：hisD基因片段；3：下游同源臂；4：重叠片段；5：原菌对照；6：阳性菌的鉴定片段。
图5：hisC-hisB整合片段构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNA marker；1：hisC上游序列-hisC-hisB片段；2：下游同源臂；3：重叠片段；4：原菌对照；5：阳性菌的鉴定片段。
图6：hisH-hisA-hisF-hisI整合片段构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNAmarker；1：hisH上游序列-hisH-hisA-hisF-hisI片段；2：下游同源臂；3：重叠片段；4：原菌对照；5：阳性菌的鉴定片段。
图7：Ptrc-lysE整合片段的构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNA marker；1：上游同源臂；2：lysE基因片段；3：下游同源臂；4：重叠片段；5：原菌对照；6：阳性菌鉴定片段。
图8：在yjhE基因位点整合rocG时整合片段构建及验证电泳图。其中：M：1kb DNAmarker；1：上游同源臂；3：下游同源臂；3：rocG基因片段；4：重叠片段；5：原菌对照；6：阳性菌的鉴定片段。
图9：E.coli WHY3-1在5L罐上的发酵结果。
具体实施方式
下面通过具体的实施方案叙述本发明。除非特别说明，本发明中所用的技术手段均为本领域技术人员所公知的方法。另外，实施方案应理解为说明性的，而非限制本发明的范围，本发明的实质和范围仅由权利要求书所限定。对于本领域技术人员而言，在不背离本发明实质和范围的前提下，对这些实施方案中的物料成分和用量进行的各种改变或改动也属于本发明的保护范围。
以下实施例中涉及到的百分号“％”，如果没有本领域公知的定义也未特别说明，指的是体积百分比；溶液的百分比“％(m/v)”指的是100mL溶液中含有溶质的克数。
实施例1：
菌株E.coli WHY3-1的构建。
1基因编辑的方法
本发明中采用的基因编辑方法参照文献(Li Y,Lin Z,Huang C,et al.Metabolicengineering of Escherichia coli using CRISPR–Cas9 meditated genomeediting.Metabolic engineering,2015,31:13-21.)进行，该方法所用的两个质粒图谱见附图1。其中pREDCas9携带gRNA表达质粒pGRB的消除***，λ噬菌体的Red重组***及Cas9蛋白表达***，奇霉素抗性(工作浓度：100mg/L)，32℃培养；pGRB以pUC18为骨架，包括启动子J23100，gRNA-Cas9结合区域序列和终止子序列，氨苄青霉素抗性(工作浓度：100mg/L)，37℃培养。
该方法的具体步骤如下：
1.1pGRB质粒构建
构建质粒pGRB的目的是为了转录相应的gRNA，从而与Cas9蛋白形成的复合体，并通过碱基配对和PAM识别目的基因靶位点，实现目的DNA双链断裂。采用包含靶序列的DNA片段与线性化的载体片段重组的方法构建pGRB质粒。
1.1.1靶序列设计
使用CRISPR RGEN Tools设计靶序列(PAM:5’-NGG-3’)
1.1.2包含靶序列的DNA片段的制备
设计引物：5’-线性化载体末端序列(15bp)-酶切位点-靶序列(不包括PAM序列)-线性化载体末端序列(15bp)-3’及其反向互补的引物，通过单链DNA的退火制备包含靶序列的DNA片段。反应条件：预变性95℃，5min；退火30-50℃，1min。退火体系如下：
退火体系
Figure BDA0002402509330000051
1.1.3线性载体的制备
载体的线性化采用反向PCR扩增的方法。
1.1.4重组反应
重组体系如下表。所用重组酶均为
Figure BDA0002402509330000052
II One Step Cloning Kit系列的酶，重组条件：37℃，30min。
重组体系
Figure BDA0002402509330000053
1.1.5质粒的转化
取10μL反应液，加入到100μL DH5α化转感受态细胞中，轻轻混匀后冰浴20min，42℃热激45-90s，立即冰浴2-3min，加入900μL SOC，于37℃复苏1h。8000rpm离心2min，弃部分上清，留200μL左右将菌体重悬后涂布到含有100mg/L氨苄青霉素的平板，将平板倒置，于37℃过夜培养。待平板长出单菌落后通过菌落PCR鉴定，挑选阳性重组子。
1.1.6克隆鉴定
将PCR阳性菌落接种至含有100mg/L氨苄青霉素的LB培养基中过夜培养后保菌，提取质粒，酶切鉴定。
1.2重组DNA片段的制备
用于敲除的重组片段由需敲除基因的上下游同源臂组成(上游同源臂-下游同源臂)；用于整合的重组片段以整合位点的上下游同源臂及待整合的基因片段组成(上游同源臂-目的基因-下游同源臂)。利用引物设计软件primer5，以待敲除基因或待整合位点的上下游序列为模板，设计上下游同源臂引物(扩增长度约400-500bp)；以待整合基因为模板，设计整合基因的扩增引物。通过PCR的方法分别扩增上下游同源臂和目的基因片段后，再经过重叠PCR制备重组片段。PCR的体系和方法如下表：
PCR扩增体系
Figure BDA0002402509330000061
重叠PCR的体系如下表：
重叠PCR扩增体系
Figure BDA0002402509330000062
Figure BDA0002402509330000071
注：模板由上下游同源臂的扩增片段和目的基因等摩尔组成，且总量不超过10ng。
PCR反应条件(宝生物PrimeSTAR HS酶)：预变性(95℃)5min；然后进行30轮循环：变性(98℃)10s，退火((Tm-3/5)℃)15s，72℃延伸(此酶活力1min延伸约1kb)；72℃继续延伸10min；维持(4℃)。
1.3质粒和重组DNA片段的转化
1.3.1pREDCas9的转化
利用电转的方法将pREDCas9质粒电转至W3110的电转感受态中，将菌体复苏培养后涂布于含奇霉素的LB平板上，32℃过夜培养。抗性平板上生长单菌落用鉴定引物进行菌落PCR,筛选阳性重组子。
1.3.2含pREDCas9的目的菌株电转化感受态制备
32℃培养至OD600＝0.1～0.2时，添加0.1M的IPTG(使其终浓度为0.1mM)，继续培养至OD600＝0.6～0.7时进行感受态制备。添加IPTG的目的是使pREDCas9质粒上的重组酶诱导表达。感受态制备所需培养基及制备过程参照常规标准操作。
1.3.3pGRB和重组DNA片段的转化
将pGRB和供体DNA片段同时电转化至含有pREDCas9的电转感受态细胞中。将电转化后复苏培养的菌体涂布于含氨苄青霉素和奇霉素的LB平板上，32℃过夜培养。用上游同源臂上游引物和下游同源臂的下游引物，或设计专门的鉴定引物，进行菌落PCR验证，筛选阳性重组子并保菌。
1.4质粒的消除
1.4.1pGRB的消除
将阳性重组子置于含有0.2％***糖的LB培养基中过夜培养，适量稀释后涂布于含有奇霉素抗性的LB平板上，32℃过夜培养。对点含有氨苄青霉素和奇霉素抗性的LB平板，挑选氨苄青霉素平板不生长，奇霉素抗性平板生长的单菌落保菌。
1.4.2pREDCas9质粒的消除
将阳性重组子转接到无抗性的LB液体培养基中，42℃过夜培养，适量稀释后涂布于无抗性的LB平板上，37℃过夜培养。对点含有奇霉素抗性和无抗性的LB平板，挑选奇霉素抗性平板不生长，无抗性平板生长的单菌落保菌。
2.菌株构建过程中所涉及的所有引物见下表：
Figure BDA0002402509330000081
Figure BDA0002402509330000091
3菌株构建的具体过程
3.1解除HisG所受的反馈抑制并使其强表达
3.1.1将Ptrc-hisG*整合在tdcD基因位点
以E.coli W3110(ATCC 27325)基因组为模板，根据其tdcD基因的上、下游序列设计上游同源臂引物(UP-tdcD-S、UP-tdcD-A)和下游同源臂引物(DN-tdcD-S、DN-tdcD-A)，并PCR扩增其上下游同源臂片段；根据hisG*基因(核苷酸序列如SEQ ID No.2所示)设计引物(hisG*-S、hisG*-A)，然后再扩增hisG*基因片段。启动子Ptrc则设计在上游同源臂的下游引物和hisG*基因的上游引物中。上述片段通过重叠PCR的方法获得hisG*基因的整合片段(上游同源臂-Ptrc-hisG*-下游同源臂)，构建pGRB-tdcD使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-tdcD-S和gRNA-tdcD-A的退火制得。制备E.coli W3110的感受态细胞，按照1.3和1.4所示的方法操作，最终获得菌株E.coli WHY1-1。Ptrc-hisG*整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图2。其中，上游同源臂的长度应为496bp，所扩增的hisG*基因片段长度应为627bp，下游同源臂的长度应为1902bp，整合片段的总长应为3024bp，用鉴定引物进行PCR验证时，阳性菌PCR扩增片段长度应为627bp，原菌无条带。
3.1.2将Ptrc-hisG*整合在ylbE基因位点
以E.coli W3110(ATCC 27325)基因组为模板，根据其ylbE基因的上下游序列设计上游同源臂引物(UP-ylbE-S、UP-ylbE-A)和下游同源臂引物(DN-ylbE-S、DN-ylbE-A)，并PCR扩增其上下游同源臂片段；用引物(hisG*-S、hisG*-A)，扩增hisG*基因片段。上述片段通过重叠PCR的方法获得hisG*基因的整合片段(上游同源臂-Ptrc-hisG*-下游同源臂)，构建pGRB-ylbE使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-ylbE-S和gRNA-ylbE-A的退火制得。制备E.coli WHY1-1的感受态细胞，按照1.3和1.4所示的方法操作，最终获得菌株E.coliWHY1-2。Ptrc-hisG*整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图3。其中，上游同源臂的长度应为601bp，所扩增的hisG*基因片段长度应为627bp，下游同源臂的长度应为547bp，整合片段的总长应为1815bp，用鉴定引物进行PCR验证时，阳性菌PCR扩增片段长度应为903bp，原菌无条带。
3.2将E.coli W3110的组氨酸操纵子基因整合在yghX基因位点
本发明中将E.coli W3110中的组氨酸操纵基因(hisDBCHAFI，包含hisD、hisB、hisC、hisH、hisA、hisF和hisI七个基因)按顺序依次整合在E.coli WHY1-2基因组上的假基因yghX位点处，并由启动子Ptrc启动该操纵子的转录表达，构建了菌株E.coli HIS3-3。
组氨酸操纵子基因的整合共分了三段。
3.2.1Ptrc-hisD的整合
以E.coli W3110(ATCC27325)基因组为模板，根据其yghX基因的上下游序列设计上游同源臂引物(UP-yghX-S、UP-yghX-A)和下游同源臂引物(DN-yghX-S1、DN-yghX-A)，并PCR扩增其上下游同源臂片段；根据hisD基因序列设计引物(hisD-S、hisD-A)，并PCR扩增hisD片段；启动子Ptrc则设计在上游同源臂的下游引物和hisD基因的上游引物中。上述片段通过重叠PCR的方法融合，获得Ptrc-hisD基因的整合片段(上游同源臂-Ptrc-hisD-下游同源臂)，构建pGRB-yghX使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-yghX-S和gRNA-yghX-A的退火制得。制备E.coli WHY1-2的感受态细胞，按照1.3和1.4所示的方法操作，最终获得菌株E.coli WHY2-1。Ptrc-hisD片段整合过程中，整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图4。其中上游同源臂长度为602bp，hisD基因片段长度为1305bp，下游同源臂长度为561bp，重叠片段的长度为2542bp，设计鉴定引物并进行PCR验证，阳性重组子所扩增的片段长度应为1208bp，原菌无条带。
3.2.2hisB-hisC的整合
以E.coli W3110(ATCC27325)基因组为模板，根据hisB-hisC及其上游序列设计上游同源臂引物(UP-hisBC-S、UP-hisBC-A)，并PCR扩增其上游同源臂片段；以E.coli HIS3-1基因组为模板，根据其yghX基因的下游序列设计下游同源臂引物(DN-yghX-S2、DN-yghX-A)，并PCR扩增其下游同源臂片段。上述片段通过重叠PCR的方法融合，获得hisB-hisC的整合片段(hisB的上游片段-hisB-hisC-下游同源臂)。构建pGRB-his1使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-his1-S和gRNA-his1-A的退火制得。制备E.coli WHY2-1的感受态细胞，按照1.3和1.4所示的方法操作，最终获得菌株E.coli WHY2-2。hisB-hisC片段整合过程中，整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图4。其中hisB的上游片段-hisB-hisC的总长度为2696bp，下游同源臂长度为561bp，重叠片段的长度为3317bp，设计鉴定引物并进行PCR验证，阳性重组子扩增片段的长度为1118bp，原菌无条带。
3.2.3hisH-hisA-hisF-hisI的整合
以E.coli W3110(ATCC27325)基因组为模板，根据hisH-hisA-hisF-hisI及其上游序列设计上游同源臂引物(UP-hisHAFI-S、UP-hisHAFI-A)，并PCR扩增其上游同源臂片段；以E.coli HIS3-2基因组为模板，根据其yghX基因的下游序列设计下游同源臂引物(DN-yghX-S3、DN-yghX-A)，并PCR扩增其下游同源臂片段。上述片段通过重叠PCR的方法融合，获得hisH-hisA-hisF-hisI的整合片段(hisH的上游片段-hisH-hisA-hisF-hisI-下游同源臂)。构建pGRB-his2使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-his2-S和gRNA-his2-A的退火制得。制备E.coli WHY2-2的感受态细胞，按照1.3和1.4所示的方法操作，最终获得菌株E.coli WHY2-3。hisH-hisA-hisF-hisI的整合过程中，整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图6。其中hisH的上游片段-hisH-hisA-hisF-hisI的总长度为3265bp，下游同源臂长度为561bp，重叠片段总长度为3317bp，设计鉴定引物并进行PCR验证，阳性重组子扩增片段的长度为1136bp，原菌无条带。
3.3Ptrc-lysE的整合
以E.coli W3110(ATCC27325)基因组为模板，根据其yjiT基因的上下游序列设计上游同源臂引物(UP-yjiT-S、UP-yjiT-A)和下游同源臂引物(DN-yjiT-S1、DN-yjiT-A)，并PCR扩增其上下游同源臂片段；以谷氨酸棒杆菌(ATCC 13032)的基因组为模板，根据lysE(NCBI-GeneID:1019244)基因序列设计引物(lysE-S、lysE-A)，并PCR扩增lysE片段；启动子Ptrc则设计在上游同源臂的下游引物和lysE基因的上游引物中。上述片段通过重叠PCR的方法融合，获得Ptrc-lysE的整合片段(上游同源臂-Ptrc-lysE-下游同源臂)，构建pGRB-yjiT使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-yjiT-S和gRNA-yjiT-A的退火制得。制备E.coliWHY2-3的感受态细胞，按照1.3和1.4所示的方法操作，最终获得菌株E.coli WHY3。Ptrc-lysE片段整合过程中，整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图7。其中上游同源臂长度为372bp，lysE基因片段长度为834bp，下游同源臂长度为530bp，重叠片段的长度为1655bp，设计鉴定引物并进行PCR验证，阳性重组子所扩增的片段长度应为1429bp，原菌则无条带。
3.4Ptrc-rocG的整合
以E.coli W3110基因组为模板，根据其yjhE基因的上下游序列设计上游同源臂引物(UP-yjhE-S、UP-yjhE-A)和下游同源臂引物(DN-yjhE-S、DN-yjhE-A)，并PCR扩增其上下游同源臂片段；以B.subtilis 168基因组为模板，根据rocG基因序列(NCBI-GeneID:937066)设计引物(rocG-S、rocG-A)，并PCR扩增rocG基因片段；启动子Ptrc则设计在上游同源臂的下游引物和rocG基因的上游引物中。上述片段通过重叠PCR的方法融合，获得Ptrc-rocG基因的整合片段(上游同源臂-Ptrc-rocG-下游同源臂)，构建pGRB-yjhE使用的含靶序列的DNA片段通过引物gRNA-yjhE-S和g RNA-yjhE-A的退火制得。制备E.coli WHY3的感受态细胞，按照1.3和1.4中所示的方法操作，最终获得菌株E.coli WHY3-1。Ptrc-rocG片段整合过程中，整合片段的构建和阳性菌株的PCR验证的电泳图见附图8。其中上游同源臂长度为602bp，rocG基因片段长度为503bp，下游同源臂长度为491bp，重叠片段的长度为2419bp，用引物UP-yjhE-S和DN-yjhE-A进行PCR验证，阳性重组子所扩增的片段长度应为2419bp，原菌为1547bp。
实施例2：
利用所述基因工程菌E.coli WHY3-1发酵生产组氨酸如下：
(1)采用摇瓶培养
斜面培养：取-80℃保藏菌种划线接种于活化斜面，37℃培养12h，并传代一次；
摇瓶种子培养：用接种环刮取一环斜面种子接种于装有30mL种子培养基的500mL三角瓶中，九层纱布封口，37℃，200rpm培养6-8h；
摇瓶发酵培养：按10-15％接种量接种到装有发酵培养基的500mL三角瓶中(终体积为30mL)，九层纱布封口，37℃，200r/min振荡培养，发酵过程中通过补加氨水维持pH在7.0-7.2；补加60％(m/v)葡萄糖溶液维持发酵进行；
斜面培养基组成为：葡萄糖1-5g/L，蛋白胨5-10g/L，牛肉膏5-10g/L，酵母粉1-5g/L，NaCl 1-2.5g/L，琼脂20-25g/L，其余为水，pH 7.0-7.2；
种子培养基组成为：葡萄糖15-30g/L，酵母提取物5-10g/L，蛋白胨5-10g/L，KH2PO4 5-15g/L，MgSO4·7H2O 2-5g/L，FeSO4·7H2O 5-20mg/L，MnSO4·H2O 5-20mg/L，VB1 1-3mg/L，VH 0.1-1mg/L，消泡剂2滴，其余为水，pH 7.0-7.2；
发酵培养基组成为：葡萄糖20-30g/L，酵母提取物2-5g/L，蛋白胨2-4g/L，KH2PO41-3g/L，MgSO4·7H2O 1-2g/L，FeSO4·7H2O 5-20mg/L，MnSO4·7H2O 5-20mg/L，VB1、VB3、VB5、VB12、VH各1-3mg/L，其余为水，pH 7.0-7.2。
(2)或者采用发酵罐培养
斜面活化培养：从-80℃冰箱保菌管中刮一环菌种，均匀涂布于活化斜面，37℃培养12-16h，转接茄形瓶继续培养12-16h；
种子培养：取适量无菌水于茄形瓶中，将菌悬液接入种子培养基中，pH稳定在7.0左右，温度恒定在37℃，溶氧在25-35％之间，培养至发酵液OD600值达10-15；
按照15-20％接种量接入新鲜的发酵培养基，开始发酵，发酵过程中控制pH稳定在7.0左右，温度维持在37℃，溶氧在25-35％之间；当培养基中的葡萄糖消耗完之后，流加80％(m/v)的葡萄糖溶液，维持发酵培养基中的葡萄糖浓度在0.1-5g/L；
斜面培养基组成为：葡萄糖1-5g/L，蛋白胨5-10g/L，牛肉膏5-10g/L，酵母粉1-5g/L，NaCl 1-2.5g/L，琼脂20-25g/L，其余为水，pH 7.0-7.2；
种子培养基组成为：葡萄糖15-30g/L，酵母提取物5-10g/L，蛋白胨5-10g/L，KH2PO45-15g/L，MgSO4·7H2O 2-5g/L，FeSO4·7H2O 5-15mg/L，MnSO4·H2O 5-15mg/L，VB1 1-3mg/L，VH 0.1-1mg/L，消泡剂2滴，其余为水，pH 7.0-7.2；
发酵培养基组成为：葡萄糖10-25g/L，酵母提取物1-5g/L，蛋白胨1-5g/L，K2HPO41-5g/L，MgSO4·7H2O 1-3g/L，FeSO4·7H2O 10-30mg/L，MnSO4·H2O 10-30mg/L，VB1、VB3、VB5、VB12、VH各1-3mg/L，其余为水，pH 7.0-7.2。
实施例3：
E.coli WHY3-1在5L罐上的发酵实验。
以实施例1构建的菌株E.coli WHY3-1作为生产菌株生产组氨酸：
斜面活化：取甘油保存菌种划线接种于试管斜面培养基，37℃培养12；再将斜面保存菌种划线接种于茄形瓶斜面培养基，37℃培养14h；
种子培养：取活化的新鲜茄形瓶斜面1一支，用150mL无菌水洗下，在火焰保护下接种到发酵罐中，温度控制37℃，自动流加氨水控制pH在7.0，初始通气速率为2L/min，初始搅拌转速为200rpm，培养过程中维持DO值在20-30％之间，种子培养至OD600为15左右；
发酵罐培养：发酵罐种子以15％接种量接入种子液(放料至450mL，在火焰保护下倒入灭菌的发酵培养基)，温度控制35℃，自动流加氨水(或20％硫酸)控制pH在7.0，初始通气速率为2L/min，通气比为0.667vvm，初始搅拌转速为400rpm，通过调整转速和风量控制溶氧在20-30％，通过手动滴加泡敌消泡，发酵过程中流加80％的葡萄糖溶液，保证充足的糖供应并且糖浓度不高于5g/L；
斜面培养基组成为：葡萄糖1g/L，蛋白胨10g/L，牛肉膏10g/L，酵母粉5g/L，NaCl2.5g/L，琼脂25g/L，其余为水，pH 7.0-7.2；
种子培养基组成为：葡萄糖10g/L，酵母提取物5g/L，蛋白胨5g/L，KH2PO4 5g/L，MgSO4·7H2O 2g/L，FeSO4·7H2O 10mg/L，MnSO4·H2O 10mg/L，VB1 2mg/L，VH 1mg/L，消泡剂2滴，其余为水，pH 7.0-7.2；
发酵培养基组成为：葡萄糖10g/L，酵母提取物5g/L，胰蛋白胨4g/L，K2HPO4 3g/L，MgSO4·7H2O 1.5g/L，FeSO4·7H2O 20mg/L，MnSO4·H2O 20mg/L，VB1、VB3、VB5、VB12、VH各2mg/L，其余为水，pH 7.0-7.2。
E.coli WHY3-1在5L发酵罐上的发酵曲线如图9。
从发酵曲线上可以看出，菌体在发酵4小时后开始进入对数生长期，32小时OD600达到最大值后进入稳定期。发酵8小时后开始进入组氨酸的快速积累阶段，发酵44小时组氨酸产量最高为65g/L。最终的转化率为0.223g组氨酸/g葡萄糖。与相同发酵条件下的WHY3相比，WHY3-1在生物量上有所下降，但是组氨酸的产量及生产强度均提高了18.2％，转化率提高了11.5％。可见E.coli WHY3-1作为组氨酸生产菌的优势极为显著。
Figure BDA0002402509330000161
序列表
<110> 浙江震元制药有限公司、天津科技大学
<120> 一种生产L-组氨酸的基因工程菌及其应用
<130> 2020
<141> 2020-03-06
<160> 1
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 627
<212> DNA
<213> 人工序列()
<400> 1
atgttgaaaa tcgctgtccc aaacaaaggc tcgctgtccg agcgcgccat ggaaatcctc 60
gccgaagcag gctacgcagg ccgtggagat tccaaatccc tcaacgtttt tgatgaagca 120
aacaacgttg aattcttctt ccttcgccct aaagatatcg ccatctacgt tgctggtggc 180
cagctcgatt tgggtatcac cggccgcgac cttgctcgcg attcccaggc tgatgtccac 240
gaagttcttt ccctcggctt cggttcctcc actttccgtt acgcagcacc agctgatgaa 300
gagtggagca tcgaaaagct cgacggcaag cgcatcgcta cctcttaccc caaccttgtt 360
cgcgatgacc tcgcagcacg tgggctttcc gctgaggtgc tccgcctcga cggtgcagta 420
gaggtattca tcaagcttgg tgtcgcagat gccatcgccg atgttgtatc caccggccgc 480
acgctgcgtc agcaaggtct tgcacctttc ggcgaggttc tgtgcacctc tgaggctgtc 540
attgttggcc gcaaggatga aaaggtcacc ccagagcagc agatcctgct tcgccgcatc 600
cagggaattt tgcacgcgca gaactag 627

Claims (9)

1.一种生产L-组氨酸的基因工程菌，其特征在于，所述基因工程菌是在大肠杆菌的基因组上整合了核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示的谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*并使其强表达；还在基因组上增强了大肠杆菌组氨酸操纵子基因hisD、hisB、hisC、hisH、hisA、hisF和hisI的表达；还在基因组上整合了来源于谷氨酸棒杆菌的精氨酸/赖氨酸转运蛋白的编码基因lysE并使其强表达；还在基因组上整合了枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶编码基因rocG并使其强表达。
2.如权利要求1所述的基因工程菌，其特征在于，所述大肠杆菌为E.coliW3110。
3.如权利要求1或2所述的基因工程菌，其特征在于，所述谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*整合在基因组上至少两个基因位点处，并由强启动子启动。
4.如权利要求1或2所述的基因工程菌，其特征在于，所述谷氨酸棒杆菌ATP转磷酸核糖基酶HisG突变体编码基因hisG*分别整合在基因组上tdcD和ylbE基因位点，并由启动子Ptrc启动；所述大肠杆菌组氨酸操纵子基因hisD、hisB、hisC、hisH、hisA、hisF和hisI按顺序依次整合在基因组上yghX基因位点，并由启动子Ptrc启动；所述精氨酸/赖氨酸转运蛋白的编码基因lysE整合在基因组上yjiT基因位点，并由启动子Ptrc启动；所述谷氨酸脱氢酶编码基因rocG整合到大肠杆菌基因组上的yjhE基因位点，并由启动子Ptrc启动。
5.权利要求1-4任一项所述基因工程菌用于发酵生产L-组氨酸的用途。
6.一种产L-组氨酸的基因工程菌的构建方法，其特征在于，所述基因工程菌是采用CRISPR/Cas 9介导的基因编辑技术对E.coli W3110进行定向改造所得，包括如下步骤：
(1)构建启动子Ptrc与核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示的基因hisG*的连接片段Ptrc-hisG*，并将其分别整合在基因组上tdcD和ylbE基因位点；
(2)构建启动子Ptrc与大肠杆菌组氨酸操纵子基因的连接片段Ptrc-hisD-hisC-hisB-hisH-hisA-hisF-hisI，并用分段整合的方法将其整合在基因组上yghX基因位点；
(3)构建启动子Ptrc与来源于谷氨酸棒杆菌的lysE基因的连接片段Ptrc-lysE，并将其整合在基因组上yjiT基因位点；
(4)构建启动子Ptrc与来源于枯草芽孢杆菌的谷氨酸脱氢酶编码基因rocG连接片段Ptrc-rocG，并将其整合在基因组上的yjhE基因位点。
7.一种制备L-组氨酸的方法，其特征在于，所述方法是在适宜条件下培养权利要求1-4任一项所述基因工程菌，并从其培养物中收集组氨酸。
8.如权利要求7所述的方法，其特征在于，采用摇瓶培养：将所述基因工程菌活化后制备种子液，按10-15％接种量接种到装有发酵培养基的500mL三角瓶中，九层纱布封口，37℃，200r/min振荡培养，发酵过程中通过补加氨水维持pH在7.0-7.2；补加60％(m/v)葡萄糖溶液维持发酵进行；所述发酵培养基的组成：葡萄糖20-30g/L，酵母提取物2-5g/L，蛋白胨2-4g/L，KH2PO4 1-3g/L，MgSO4·7H2O 1-2g/L，FeSO4·7H2O 5-20mg/L，MnSO4·7H2O 5-20mg/L，VB1、VB3、VB5、VB12、VH各1-3mg/L，其余为水，pH 7.0-7.2。
9.如权利要求7所述的方法，其特征在于，采用发酵罐培养：将所述基因工程菌活化后制备种子液，按照15-20％接种量接入新鲜的发酵培养基，开始发酵，发酵过程中控制pH稳定在7.0左右，温度维持在37℃，溶氧在25-35％之间；当培养基中的葡萄糖消耗完之后，流加80％(m/v)的葡萄糖溶液，维持发酵培养基中的葡萄糖浓度在0.1-5g/L；所述发酵培养基的组成：葡萄糖10-25g/L，酵母提取物1-5g/L，蛋白胨1-5g/L，K2HPO4 1-5g/L，MgSO4·7H2O1-3g/L，FeSO4·7H2O 10-30mg/L，MnSO4·H2O 10-30mg/L，VB1、VB3、VB5、VB12、VH各1-3mg/L，其余为水，pH 7.0-7.2。
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