CN102851369A - 用于实时pcr多重分析的***和方法 - Google Patents

Abstract

本发明提供了具有多重性能力的PCR实时测量的方法和***。一些实施方案包括这样的方法和***，其使用荧光编码超顺磁微球在PCR过程期间固定扩增产物，并使用还可进行可控式热循环的测量装置成像室来辅助PCR过程。

Description

用于实时PCR多重分析的***和方法

本申请是2007年12月13日提交的申请号为200780051297.2(PCT/US2007/087492)之申请“用于实时PCR多重分析的***和方法”的分案申请。

发明背景

本申请要求2006年12月13日提交的美国临时专利申请60/869,742的优先权，其全部公开内容通过引用并入本文。

1.技术领域

本发明一般地涉及用于进行DNA扩增(例如PCR)测量的***和方法。具体而言，本发明涉及具有多重性能力的PCR“实时”测量。一些实时方案涉及这样的***，其使用颗粒(例如顺磁性微球)和也能进行可控式热循环来辅助PCR过程的测量装置成像室。

2.背景技术

聚合酶链式反应(PCR)是无需使用活生物体而酶促复制DNA的分子生物学技术。PCR在医学和生物研究实验室中普遍用于多种任务，例如检测遗传疾病、鉴定基因指纹、诊断感染性疾病、克隆基因、亲子鉴定和DNA计算。由于其无与伦比的扩增和准确性能力，分子生物学家已将PCR作为核酸检测的首选方法。通常在PCR反应的终点或平台期进行DNA检测，这使得难于定量起始模板。实时PCR或动态PCR通过随着反应进程而记录扩增子浓度而提高了终点PCR分析的性能。扩增子浓度最常通过与被扩增靶标相关的荧光信号变化来记录。实时PCR优于终点检测还在于污染是有限的，这是因为前者可在封闭的***中进行。其它优点包括灵敏性更高、动态范围更宽、速度更快以及所需处理更少。

实时PCR检测方法中已使用一些测定化学技术。这些测定化学技术包括双链DNA结合染料、双标记的寡核苷酸例如发夹引物和发夹探针。另一些化学技术包括基于核酸外切酶的探针例如水解探针。多种PCR和实时PCR方法描述于美国专利No.5,656,493、5,994,056、6,174,670、5,716,784、6,030,787和6,174,670，其均通过引用并入本文。

目前实时PCR的缺点在于其有限的多重性。目前的实时PCR技术使用游离于溶液中的报告荧光染料。这种设计需要在多重反应中针对每个测定使用光谱不同的荧光染料。例如，设计用来检测4种靶序列的多重反应将需要能够通过光谱差异区分4种不同自由漂浮的荧光染料(不包括对照)的仪器。这些要求不仅限制了多重性的实际应用，而且由于这样的仪器通常需要多种激光和滤镜而增加了成本。目前的实时PCR技术具有约1～6的多重性。

发明内容

本发明涉及用于扩增和检测DNA的***和方法。具体而言，本发明提供了显著提高实时PCR多重性的***和方法。在一个实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、标记试剂以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针，其中所述探针固定于多种经编码的颗粒上，从而可以通过每种探针所固定的经编码颗粒来获知其身份；(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将所述扩增产物与固定于经编码颗粒上的探针进行杂交；(d)将经编码颗粒和与固定于该经编码颗粒上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自经编码颗粒的信号，并检测直接(例如，掺入扩增产物中的标记)或间接(例如，与扩增产物杂交的经标记互补核酸序列)来自扩增产物的检测信号；(f)使经编码颗粒和与固定于该经编码颗粒上之探针杂交的扩增产物从腔室表面分散，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增并检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

所述颗粒可以是具有磁性的颗粒和/或具有使其可以沉积于溶液中二维表面上之密度的颗粒。所述颗粒可通过以下任意方式沉积于二维表面：磁力、重力或离子力，或化学键合，或本领域技术人员已知的任何其它方法。颗粒可由玻璃、聚苯乙烯、胶乳、金属、量子点、聚合物、二氧化硅、金属氧化物、陶瓷或者适于与核酸结合的任何其它物质或者随后可附着于核酸的化学品或蛋白质。所述颗粒可以是棒状、球状或盘状，或包括任何其它形状。所述颗粒还可以通过其形状、大小或物理定位来区分。所述颗粒可由于具有含染料的组成或由于一种或多种染料或荧光染料的比例或浓度而从光谱上进行区分，或者可以通过条形码或全息图像或颗粒编码的其它印记形式来进行区分。当所述颗粒是磁性颗粒时，可以通过施加磁场将其吸引至腔室的表面。同样，可通过撤走磁场来使磁性颗粒从表面分散。磁性颗粒优选为顺磁或超顺磁的。当不存在磁场时，顺磁和超顺磁颗粒的磁性可忽略，但施加磁场诱使颗粒中的磁畴同向排列，导致颗粒被场源吸引。当撤走磁场时，磁畴回复至随机取向，于是颗粒间的磁性吸引或排斥就不存在了。在超顺磁性的情形中，这种回复至磁畴随机取向几乎是瞬时的，而顺磁物质则会在撤走磁场后保持磁畴同向排列一段时间。当所述颗粒具有足够的密度时，它们可被重力吸引至腔室的底面，并通过搅动腔室(例如通过振荡、超声处理或液体流动)使其从底面分散。搅动腔室还可用于在通过其它力(例如磁力或离子力、或抽吸力、或真空过滤、或亲和力、或亲水性或疏水性或者其任何组合)将颗粒吸引至腔室表面的方法和***中进一步帮助分散颗粒。

在一个实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、标记试剂以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而可以通过每种探针所固定的经编码磁珠来获知该探针的身份；(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将经标记的扩增产物与固定于经编码磁珠上的探针进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的经标记扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测经编码磁珠以及经标记的扩增产物；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的所述多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

标记试剂(也可称为“报告试剂”)是有助于检测其所附着分子(例如核酸序列)的分子。已知多种可用于标记核酸的报告分子。直接报告分子包括荧光团、生色团和放射性基团(radiophore)。荧光团的非限制性实例包括红色荧光方酸菁染料(squarine dye)(例如2，4-二[1，3，3-三甲基-2-亚吲哚啉基甲基环丁烯二基

-1，3-二氧环戊烷(2，4-Bis[1，3，3-trimethyl-2-indolinylidenemethyl]cyclobutenediylium-1，3-dioxolate)、红外染料(例如2，4-二[3，3-二甲基-2-(1H-苯并[e]亚吲哚啉基甲基环丁烯二基

-1，3-二氧环戊烷(2，4-Bis[3，3-dimethyl-2-(1H-benz[e]indolinylidenemethyl)]cyclobutenediylium-1，3-dioxolate))或橙色荧光方酸菁染料(例如2，4-二[3，5-二甲基-2-吡咯基]环丁烯二基

-1，3-二氧环戊烷(2，4-Bis[3，5-dimethyl-2-pyrrolyl]cyclobutenediylium-1，3-dioxolate))。荧光团的另一些非限制性实例包括量子点、Alexa

染料、AMCA、

630/650、

650/665、

CyDye^TM(包括但不限于Cy2^TM、Cy3^TM和Cy5^TM)、DNA嵌入染料、6-FAM^TM、荧光素、HEX^TM、6-JOE、俄勒冈绿(Oregon Green)488、俄勒冈绿

500、俄勒冈绿

514、Pacific Blue^TM、REG、藻胆蛋白(phycobilliprotein)(包括但不限于藻红蛋白和别藻蓝蛋白)。罗丹明绿^TM、罗丹明红^TM、ROX^TM、TAMRA^TM、TET^TM、四甲基罗丹明或得克萨斯红(Texas Red)

可使用信号放大试剂(例如酪胺(PerkinElmer))来放大荧光信号。间接报告分子包括生物素，其必须连接另一分子(例如链霉抗生物素蛋白-藻红蛋白)来进行检测。还可以应用成对的标记，例如荧光共振能转移对或染料-猝灭剂对。

经标记的扩增产物可以直接或间接来标记。直接标记可通过例如以下来实现：使用经标记引物，使用经标记dNTP，使用经标记核酸嵌入剂或以上的组合。间接标记可通过例如将扩增产物与经标记探针杂交来实现。

经编码颗粒(例如经编码磁珠)可用荧光染料进行编码。使用荧光染料进行编码时可使用具有不同荧光发射波长和/或不同荧光强度的荧光染料。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对(其中每对引物中的一个引物被标记)以及与所述多种核酸靶标互补的探针，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而可以通过每种探针固定的经编码磁珠来获知每种探针的身份；(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将所述经标记的扩增产物与固定于经编码磁珠上的探针进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的经标记扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测经编码磁珠以及经标记的扩增产物；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种分子信标(molecular beacon)，其中所述分子信标固定于多种经编码磁珠上，从而可以通过每种分子信标所固定的经编码磁珠来获知每种分子信标的身份；(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将扩增产物与固定于经编码磁珠上的分子信标进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之分子信标杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自经编码磁珠的信号以及来自该分子信标的信号；(f)在进行进一步扩增循环之前，从腔室表面撤走磁场；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

在一个实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针组，其中每个探针组包含第一探针和第二探针，所述第一探针用荧光能转移对的第一成员标记并固定于经编码磁珠上，从而可以通过所述第一探针所固定的经编码磁珠来获知该第一探针的身份，所述第二探针用荧光能转移对的第二成员标记；(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将所述扩增产物与所述探针组进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自经编码磁珠的信号以及来自与所述扩增产物杂交之荧光能转移对的信号；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。在一些方面，来自荧光能转移对的信号是荧光增强。在另一些方面，来自荧光能转移对的信号是荧光减弱。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有核酸靶标的样品、用于引发该核酸靶标扩增的引物对以及与该核酸靶标互补的探针组，其中所述探针组包含第一探针和第二探针，所述第一探针固定于磁珠上，所述第二探针包含标记；(b)进行扩增循环，以形成用所述引物对扩增的所述核酸靶标的扩增产物；(c)将所述扩增产物与所述探针组进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自与所述扩增产物杂交的第二探针的信号；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的核酸靶标。该方法可以一重或多重方式来进行。可通过在第二探针上使用不同的标记和/或通过标记或编码第一探针所固定的颗粒来实现多重性。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有核酸靶标的样品、用于引发该核酸靶标扩增的引物对、与猝灭剂分子偶联的dNTP以及与该核酸靶标互补的荧光标记探针，其中所述探针固定于磁珠上；(b)进行扩增循环，以形成所述核酸靶标的扩增产物，所述扩增产物包含猝灭剂分子；(c)将所述扩增产物与固定于磁珠上的所述探针进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自经标记探针的信号，其中来自经标记探针信号的减弱指示该经标记探针与含猝灭剂分子之扩增产物发生杂交；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的核酸靶标。该方法可以一重或多重方式来进行。可通过在探针上使用不同的标记和/或通过标记或编码探针所固定的颗粒来实现多重性。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针组，其中每个探针组包含第一探针和第二探针，所述第一探针固定于经编码磁珠上，从而可以通过第一探针所固定的经编码磁珠来获知第一探针的身份，所述第二探针包含标记；(b)进行扩增循环，以形成用多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将所述扩增产物与所述探针组进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自经编码磁珠的信号以及来自与扩增产物杂交之第二探针的信号；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在一个腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、与猝灭剂分子偶联的dNTP以及与所述多种核酸靶标互补的多种荧光标记探针，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而可以通过每种探针所固定的经编码磁珠来获知每种探针的身份；(b)进行扩增循环以形成针对用多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的包含猝灭剂分子的扩增产物；(c)将所述扩增产物与所述固定于经编码磁珠的探针进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测来自经编码磁珠的信号以及来自经标记探针的信号，其中来自经标记探针信号的减弱指示该经标记探针与含猝灭剂分子之扩增产物发生杂交；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对(其中每对引物包含第一引物和第二引物，所述第一引物含有靶标特异性序列、该靶标特异性序列5’的标签序列以及任选地位于所述靶标特异性序列和所述标签序列之间的间隔序列(blocker)，所述第二引物含有靶标特异性序列)、标记试剂以及与所述多种引物对中的标签序列互补的多种探针，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而可以通过每种探针所固定的经编码磁珠来获知每种探针的身份；(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的带标签的经标记扩增产物；(c)将所述带标签的经标记扩增产物与所述固定于经编码磁珠的探针进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的带标签的经标记扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测经编码磁珠以及带标签的经标记扩增产物；(f)从腔室表面撤走磁场，随后进行进一步的扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。在一些方面中，所述标记试剂是附着于所述引物对中第二引物上的报告分子。在另一些方面中，所述标记试剂是核酸嵌入染料。应注意，所述核酸嵌入剂即使在不扩增时也将标记已杂交的互补标签。这会给仅在终点检测的PCR带来问题，因为将会不清楚扩增是否成功或者所检测信号是否仅仅是来自于标记该互补标签的嵌入剂。利用本文公开之方法实时进行的PCR，随着成功扩增中扩增循环数的增加会观察到来自嵌入剂之信号的增强。从而允许区分成功扩增和仅对互补标签进行了标记。

本文公开的方法还可包括定量样品中核酸靶标的初始量。该定量可包括例如通过以对数标度将荧光对循环数作图来测定在实时PCR的指数期存在的DNA的相对浓度。然后，通过将所述结果与已知量DNA的连续稀释的实时PCR所得标准曲线进行比较来确定DNA的量。另外，还可将实时PCR与逆转录聚合酶链式反应联合来定量样品中的RNA，包括低丰度的RNA。

本文公开的方法提供了多重性能力，从而多种引物对可在单个PCR反应中扩增多种靶核酸。在一些实施方案中，在一个PCR反应中有至少6、7、8、9、10、11或12种不同的引物对。在一些实施方案中，在一个PCR反应中有8～100、8～80、8～60、8～40、8～20、8～18、8～16、8～12、10～100、10～80、10～60、10～40、10～20、10～18、10～16、10～12、12～100、12～80、12～60、12～40、12～20、12～18或12～16种不同的引物对。在一些实施方案中，在一个PCR反应中有至少6、7、8、9、10、11或12种不同的靶核酸。在一些实施方案中，在一个PCR反应中有8～100、8～80、8～60、8～40、8～20、8～18、8～16、8～12、10～100、10～80、10～60、10～40、10～20、10～18、10～16、10～12、12～100、12～80、12～60、12～40、12～20、12～18或12～16种不同的靶核酸。PCR反应中存在的探针可包含已封闭的3’羟基，以防止聚合酶延伸探针。所述3’羟基可通过例如磷酸基或3’反向dT来进行封闭。

所述靶核酸序列可以是任何目的序列。含有所述靶核酸序列的样品可以是含有核酸的任何样品。在本发明的一些方面，所述样品为例如筛查其是否存在一种或多种遗传突变或多态性的受试者。在本发明的另一方面，所述样品可以来自测试其是否存在病原体的受试者。当样品从受试者获得时，可通过本领域技术人员已知的方法来获取，例如抽吸、活检、擦拭、静脉穿刺、腰椎穿刺、粪便样品或尿样。在本发明的一些方面，所述样品是环境样品，例如水、土壤或空气样品。在本发明的另一些方面，所述样品来自植物、细菌、病毒、真菌、原生动物或后生动物。

每个扩增循环包括三个阶段：变性阶段、引物退火阶段和引物延伸阶段。可以重复扩增循环直至产生期望量的扩增产物。通常，扩增循环重复10～40次。对于实时PCR来说，通常在每个扩增循环之后检测扩增产物。然而，在本发明的一些方面中，也可以在每两个、每三个、每四个或每五个扩增循环之后检测扩增产物。还可以进行检测以分析或检测少至2个或更多个扩增循环。可以在检测扩增的同一腔室中进行扩增循环，在这种情况下该腔室将需要包含加热元件，从而使该腔室中的温度可被调整用于扩增循环的变性阶段、引物退火阶段和引物延伸阶段。所述加热元件通常受处理器的控制。然而，扩增循环还可以在与检测扩增不同的腔室中进行，在这种情况下“扩增”腔室需要包含加热元件，而“检测”或“成像”腔室不需要含有加热元件。当扩增和检测发生在不同腔室中时，可将发生扩增反应的液体在腔室间转移，其通过例如泵或活塞来实现。所述泵或活塞可以受处理器的控制。或者，可以手动将液体在腔室间转移，例如使用移液器来实现。

所述腔室可以是例如石英腔室。可以通过在腔室表面附近放置永磁体或者通过在腔室表面附近开启电磁体而向腔室施加磁场，以将腔室内的磁性颗粒吸引至腔室表面。所述磁体不需要与腔室物理接触，只要接近至其磁场足以将腔室内的磁性颗粒吸引至腔室表面即可。可通过将永磁体远离腔室或通过关闭电磁体来撤走磁场。当然，也可以如上永磁体中所述通过将开启的电磁体移近或远离腔室来施加或撤走电磁体。在扩增和检测发生在同一腔室中的实施方案中，可以在扩增循环的引物退火阶段、在扩增循环的引物延伸阶段或在扩增循环之后施加磁场。在扩增和检测发生在不同腔室中的实施方案中，通常在扩增循环之后扩增反应液体被移进检测腔室时施加磁场。

可使用成像***(例如上文所述的)来检测腔室表面上的经编码颗粒和扩增产物。例如，检测经编码磁珠和经标记扩增产物可包括使发射自经编码磁珠和经标记扩增产物的荧光波长和/或荧光强度成像。成像可包括获取解码图像来识别腔室表面上的微珠，以及获取测定图像来检测腔室表面上的扩增产物。对解码图像和测定图像的比较显示出哪些微珠结合有扩增产物。由于通过编码微珠可知附着在微珠上的探针身份，因此也可确定与探针杂交的扩增产物的身份。本发明的方法还可包括将来自直接或间接标记的扩增产物的信号与样品中的DNA或RNA浓度建立关联。这种关联可包括通过以对数标度将荧光对循环数作图来测定在实时PCR的指数期存在的DNA的相对浓度，并将该结果与通过已知量DNA或RNA的连续稀释的实时PCR得到的标准曲线进行比较。

在一个实施方案中，本发明提供了用于进行多重实时PCR的***，该***包含：热循环仪、与热循环仪偶联的成像***、适于引入热循环仪中的经编码磁性颗粒、用于将磁场选择性引入热循环仪以用于固定经编码磁性颗粒的磁体。

应当认为，本文所述的任何方法或组合物可以与本文所述的任何其它方法或组合物相组合。

权利要求书中的术语“或”用于指“和/或”，除非明确表示仅指可选方案之一或者可选方案是相互排斥的，尽管本公开内容支持仅指可选方案之一以及“和/或”的定义。

在整篇申请中，术语“约”用于指数值包括由测定该数值所用装置或方法引起的标准误差。

遵循长久以来的专利法，在权利要求书或说明书中与词语“包含(包括)”联用的无数值限定的术语表示一个或多个，特别说明的除外。

本发明的其它目的、特征和优点将通过以下详述而变得明显。然而，应理解的是，尽管指明本发明的具体实施例，但详述和具体实施例仅以举例说明的方式给出，因为鉴于该详述，本发明精神和范围内的各种变化和修改对本领域技术人员将是显而易见的。

附图说明

以下附图构成本发明说明书的一部分，并进一步展示本发明的某些方面。通过参考这些附图中的一幅或多幅连同本文具体实施方案的详述可以更好地理解本发明。

图1.图1是成像***的示意图。

图2.图2是显示图1所示***之功能细节的框图。

图3.图3是表示检测腔室中微球关系的示意图。

图4.图4是表示检测腔室中微球关系的另一示意图。

图5.图5示意发夹构象的分子信标探针以及与互补核酸序列杂交时开放构象的分子信标探针。

图6.图6示意与互补核酸序列杂交时开放构象的分子信标探针。由于分子信标探针附着于与磁性反应的微球，因此将磁体置于成像腔室附近会导致分子信标探针固定于成像腔室的表面上。

图7.图7示意FRET检测化学作用。

图8.图8示意猝灭剂分子掺入新合成DNA链以及用附着于微珠表面的荧光团来标记互补探针的检测化学作用。

图9.图9是成像***的框图。

图10.图10是用作成像***的流式细胞仪的框图。

图11.图11示意引物对中的一个引物在其5’端以报告分子标记的直接杂交检测化学作用。

图12.图12示意双探针检测化学作用。

图13.图13显示莱登凝血因子V(Factor V Leiden)的基因组基因序列(SEQ ID NO：6和7)。

图14.图14是PCR期间平均荧光强度(Median FluorescentIntensity，MFI)(y轴)和循环数(x轴)的图。

图15.图15显示多种囊性纤维化基因序列(SEQ ID NO：8-15)。

具体实施方式

A.成像***

应注意，附图中的图像并未按比例绘制。具体来说，图像中的某些元件的尺寸显著放大用以强调所述元件的特征。还应注意，图像并未按相同比例进行绘制。在多幅图像中显示的可类似构建的元件使用相同的附图标记来指示。

图1、2和9中成像***的实施方案包括使用两种常见成像方法的几种构造。对于荧光检测来说，根据所检测波长可使用单个传感器例如光电倍增管(photomultiplier tube，PMT)或雪崩光电二极管(avalanchephotodiode，APD)。或者，一维或二维电荷耦合器件(charge coupleddevice，CCD)或者其它合适的阵列检测器可用于荧光检测。激发源可使用光源(例如发光二极管(light emitting diodes，LED))所发射的光来构建以提供大面积的光照(即，同时向测量装置成像体积(例如测量装置的整个成像体积)的相对大的面积提供光照)，并直接地或通过光纤传递给测量装置成像体积中的一种或多种物质。或者，激发源可构建成向测量装置成像体积中相对较小的点区域提供光照，并且***可构建成扫描成像体积的相对较小点区域。以这种方式，可将光照构建成由一个或多个LED、一束或多束激光、一个或多个其它合适光源或其某种组合产生的聚焦光的相对“小的浮动光点”。

图1和图2示意构建成在测量装置的成像体积中使一种或多种物质成像的***的一个实施方案。该***的实施方案包括检测器34、36和38。检测器34、36和38可以是CCD照相机或任何其它合适的成像装置。每个检测器可以具有相同的构造或不同的构造。可将每个检测器构建成用于检测不同波长或波段的光(例如，由成像或检测腔室42限定的成像体积中颗粒40发出的荧光)。此外，可将每个检测器构建成产生成像腔室42中颗粒40(例如成像腔室42底部的颗粒)的图像或“捕获荧光图像”。

在图1和图2中，微球40被加入成像腔室中，该成像腔室可与热循环元件(未显示)偶联，从而使该微球在PCR反应期间包含在与PCR反应相同的溶液中。通过利用磁体264施加磁场可在PCR循环的任何阶段将微球40拉至成像腔室42的表面。可通过撤去磁场将微球40从所述表面释放。在下一检测阶段期间，所述微球将再次被拉至表面用于成像。在图1和图2中，还可以将微球40从热循环仪(未显示)直接加至成像腔室42。微球40可在PCR循环的任何阶段被引入成像腔室42以及被拉至表面。

图1和图2示意磁体264用于将磁性微球40选择性拉至表面。图1和图2的***还包括构建成发出具有不同波长或不同波段的光的光源44和46(例如，光源之一可构建成发红光，而另一光源可构建成发绿光)。光源44和46所发射的光可包括例如可见光波长范围中任意部分的光。光源44和46可包括LED或本领域已知的任何其它合适的光源。光源44和46被安置在成像腔室42周围的上方。此外，将光源安置在成像腔室上方，从而使每个光源将光从不同方向射向成像腔室42中的颗粒40。该***还包括分别与光源44和46偶联的滤光器48和50。滤光器48和50可以是带通滤光器或本领域已知的任何其它合适的滤光器。以该方式，所述***可使用光源44和46以及滤光器48和50依次以不同波长或不同波段的光来照射颗粒。例如，可使用红光来激发可存在于颗粒内部的分类染料(未显示)，可使用绿光来激发与颗粒表面偶联的报告分子(未显示)。由于在报告分子测量期间分类光照是暗的(即，在上述实例中，当向颗粒照射绿光时，红光不向颗粒照射)，因此该***的分析物测量灵敏度不会因为波段外光线的串扰而降低。

所述***还可包括单个透镜52，其位于光照“环”的中心(或大致在中心位置)。透镜52可包括本领域已知的任何合适的折射性光学元件。将透镜52构建成使从颗粒散射的光和/或发出的荧光经由一个或多个光学元件成像到一个或多个单色CCD检测器(例如，检测器34、36和38)上，所述光学元件可包括一个或多个二色滤光器(dichroic filter)和一个或多个光学带通滤光器。例如，从透镜52射出的光射向二色滤光器54，后者可包括本领域已知的任何合适的二色光学元件。二色滤光器54构建成反射一种波长或波段的光并使其它波长或波段的光通过。被二向色滤光器54反射的光射向滤光器56，后者可以是带通滤光器或其它合适的分光滤光器。从滤光器56射出的光射向检测器34。从二色滤光器54通过的光射向二色滤光器58，后者可包括本领域已知的任何合适的二色光学元件。二色滤光器58可构建成反射一种波长或波段的光而使其它波长或波段的光通过。从二色滤光器58通过的光射向滤光器60，后者可以是带通滤光器或其它合适的分光滤光器。从滤光器60射出的光射向检测器36。被二色滤光器58反射的光射向滤光器62，后者可以是带通滤光器或其它合适的分光滤光器。从滤光器62射出的光射向检测器38。

此外，尽管图1和图2中所示的***包括两个光源，但是应理解，该***可包括任何适当数目的光源。例如，该***可包括安置在透镜52周围的多个光源。以这种方式，可将光源构建成提供透镜52周围的光照“环”。尽管图1和图2中所示的***包括构建成使不同波长或波段的从颗粒散射的光和/或发出的荧光成像的三个检测器，但是应理解，该***可包括两个或更多个检测器。例如，该***可包括两个或更多个CCD检测器(以及任选地固定滤光器)，其可用于同时测量分类通道和报告分子通道，从而为测量提供更高通量以及额外的硬件花费。

所述成像***还可包含流体处理子***，其用于将流体(例如PCR反应物、清洗缓冲液)从储存容器转移进检测腔室，或者当检测腔室不能进行热循环时从热循环仪或其它加热腔室转移进检测腔室。所述储存容器可构建成离心管、注射器、微量滴定板或本领域已知的任何其它合适的样品容器。

所述流体处理子***还包含泵，其构建成将流体从储存容器、热循环仪或其它加热腔室转移至检测腔室。该泵可具有本领域已知的任何合适的构造。所述流体处理***还可包含构建成控制流体流过***的一个或多个阀。该流体处理子***还可包含用于存储淡水(或其它合适的试剂)的清洗池，所述淡水可被泵转移至检测腔室。所述泵还可构建成将检测腔室中的物质和任何其它流体转移至废物容器。该废物容器可具有本领域已知的任何合适的构造。所述流体处理子***的泵和阀可通过处理器来控制或人工操作。

因此，图1和图2中所示的***构建成生成代表颗粒40荧光发射(在几种目标波长下)的多幅或一系列图像。此外，该***可构建成为处理器(即影像处理引擎(processing engine))提供代表颗粒荧光发射的多幅或一系列数字图像。所述***可包含或不包含处理器(参见例如图9)。该处理器可构建成从检测器34、36和38获得(例如，接收)图像数据。例如，该处理器可与检测器34、36和38以本领域已知的任何合适的方式进行偶联(例如，通过各将一个检测器与处理器偶联的传输介质(未显示)；通过各将一个检测器与处理器偶联的一个或多个电子组件(未显示)例如模数转换器；等等)。优选地，该处理器构建成处理和分析这些图像以确定颗粒40的一种或多种特征(如该颗粒的分类)以及该颗粒表面上分析物有关的信息。所述一种或多种特征可通过处理器以任何合适的格式输出，例如具有针对每种颗粒、每个波长的荧光强度的条目的数据阵列。具体地，所述处理器可构建成进行处理和分析图像方法的一个或多个步骤。处理和分析由***(例如图1和图2所示的***)生成之图像的方法的实例举例说明于2006年9月21日由Roth提交的序列号为11/534,166的美国专利申请(题为“图像数据处理的方法和***”)中，其通过引用并入本文。

所述处理器可以是例如典型个人计算机、大型计算机***、工作站等中常包含的处理器。一般地，术语“计算机***”可广义地定义为涵盖包含一个或多个处理器的任何装置，所述处理器执行来自存储介质的指令。所述处理器还可用任何其它适当的功能性来实现。例如，处理器可包含固件中带有固定程序的数字信号处理器(digital signal processor，DSP)、现场可编程门阵列(field programmable gate array，FPGA)或使用时序逻辑“编写”的高级程序语言(例如超高速集成电路(very highspeed integrated circuit，VHSIC)硬件描述语言(VHSIC hardwaredescription language，VHDL))的其它可编程逻辑装置(programmablelogic device，PLD)。在另一实例中，可由处理器执行以实现上述专利申请中所述计算机实现方法中一个或多个步骤的程序指令(未显示)可以用高级语言编写，所述语言例如C#(酌情与C++中的部分联用)、ActiveX控件、JavaBeans、微软基础类库(Microsoft Foundation Classes，MFC)或期望的其它技术或方法。可以采用任意不同的方式来实施程序指令，包括基于过程的技术、基于组件的技术和/或面向对象的技术等。程序指令可传输或存储于载体介质(未显示)。载体介质可以是传输介质例如线、缆或无线传输连接。载体介质还可以是存储介质例如只读存储器、随机存取存储器、磁盘或光盘或者磁带。

图1-4的成像***的实施方案构建成将一种或多种颗粒40显著固定于测量装置的成像腔室42中。优选地，该***包括位于成像腔室42中***光学器件对侧的磁性元件264。磁性元件264可包括本领域已知的任何合适的磁性元件，例如可用于产生合适磁场的永磁体或电磁体。以这种方式，嵌有磁体的经染色颗粒可用于本文所述的一些实施方案中，这样通过使用位于腔室42背侧的磁体264产生的磁场而使所述颗粒可显著固定于成像腔室42中(例如在腔室的底部)。尽管在几幅图中显示磁性元件264与成像腔室之间有间隔，但是也可在成像腔室之***光学元件背侧将磁性元件264与成像腔室42进行接触(或偶联)。磁性元件264还可以如上所述进行构建。图3显示成像腔室与磁体264的侧视图，所述磁体的位置接近该腔室的表面，从而使珠40被显著固定于腔室的该表面上。图3示意了荧光团附着于珠表面的一个实施方案。图4也显示成像腔室与磁体264的侧视图，所述磁体的位置接近该腔室的表面从而使珠40被显著固定于腔室的该表面上。然而，在图4中，荧光团附着于核酸序列(例如PCR引物)上，所述核酸序列不与珠40直接偶联，而是通过与直接偶联该珠的序列杂交而与珠40结合。这在珠上的互补探针序列不能与荧光团所附着的核酸序列杂交时会导致出现“自由漂浮”的荧光团。当对固定于腔室表面上的珠成像时，来自这些自由漂浮荧光团的信号可增加背景噪声；然而，由于自由漂浮荧光团一般不在成像***的焦平面上，因此可实现成功的成像。此外，尽管多个图显示了位于成像腔室附近的一个磁性元件，但应理解，该***可包含多于一个磁性元件，其中每个磁性元件均位于成像腔室之***光学器件对侧附近。

所述***可包含能够相对于成像腔室42以各种距离移动的附属磁体。成像***获取信号后，可将磁场撤走(例如，通过使用线圈来移走永磁体或者通过使用开关打开或关闭电磁体)，随后颗粒40可撤出成像腔室，而来自下一样品的新的颗粒40被引入腔室中。可以将成像腔室42中的颗粒移走，并且可使用本文所述任何实施方案将颗粒引入成像腔室。在另一实施方案中，成像腔室42中的颗粒可从表面释放并保留在腔室中，从而与溶液中的其它元件相互作用，然后再次被拉至表面用于成像。

在一个实施方案中，成像腔室的设计是这样的成像腔室：在该成像腔室接近磁性元件264的一侧具有相对平滑的内表面，从而当磁体264将珠40拉至表面时珠40在该内表面上随机分布。然而，还可将成像腔室设计成在施加磁场时在特定点“保持”珠。例如，图1所示成像腔室的内表面可具有在其中形成的方形蚀刻凹槽，从而当施加上述磁场时珠40被置于所述蚀刻凹槽之一中。当施加磁场时，这样的蚀刻凹槽有助于使珠分开。可利用蚀刻工艺或本领域已知的任何其它合适方法形成“蚀刻”凹槽。另外，蚀刻凹槽的构造或安排可取决于例如珠40的尺寸以及珠之间所选间隔而变化。

在另一实例中，成像腔室42的内表面可具有三角形的蚀刻凹槽，从而当施加上述磁场时珠40被分配至所述蚀刻凹槽之一中。因此，当施加磁场时，蚀刻凹槽有助于使珠分开。另外，可利用蚀刻方法或本领域已知的任何其它合适方法形成“蚀刻”凹槽。此外，蚀刻凹槽的构造或安排可取决于例如珠的尺寸以及珠之间所选间隔而变化。尽管蚀刻凹槽优选是二维的，意即珠40被凹槽限制在二维空间中，但这些凹槽也可用构建成将珠限制在仅一个方向的沟或任何其它合适的凹槽来代替。

另一些实施方案涉及用于将一种或多种颗粒40基本上固定在测量装置的成像体积中的方法。可如本文所述使用磁性吸引、真空滤器基底(vacuum filter substrate)或本领域已知的其它方法对一种或多种颗粒进行基本固定。例如，将一种或多种颗粒基本上固定于测量装置的成像腔室中可包括在成像腔室的一侧施加磁场，所述成像腔室限定了测量装置的成像体积。此外，该方法可包括本文所述的任何其它步骤。

另外，可通过本文所述的任何***来实施该方法。用于定位微球用于成像的方法和***的实例在Pempsell于2005年11月9日提交的美国专利申请序列号11/270,786中说明，其通过引用并入本文。无论采用何种颗粒固定方法，优选将颗粒基本上固定从而使检测器积分期间(可能持续数秒钟)颗粒不发生可察觉的移动。

另一实施方案涉及这样的***，其构建成将一种或多种颗粒从一个或多个储存容器(例如，引入图10***的等份)转移至测量装置中的成像体积，对成像体积中的一种或多种颗粒进行成像，将一种或多种物质基本上固定于成像体积中，或其某种组合。所述***可构建成转移本文所述的一种或多种颗粒，对本文所述的一种或多种颗粒进行成像，基本上固定本文所述的一种或多种颗粒，或其某种组合。

本文所述的测量一般包括进行图像处理以分析一幅或多幅颗粒图像以确定所述颗粒的一种或多种特征，例如代表在多个检测波长处颗粒荧光发射强度的数值。对颗粒的一种或多种特征的后续处理，例如使用一个或多个数值来确定代表颗粒所属多重亚组的标记ID和/或代表与颗粒表面结合之分析物的存在和/或数量的报告值，可根据Fulton的美国专利No.5,736,330、Chandler等的美国专利No.5,981,180、Chandler等的美国专利No.6,449,562、Chandler等的美国专利No.6,524,793、Chandler的美国专利No.6,592,822和Chandler等的美国专利No.6,939,720中所述的方法来进行，所述专利文献通过引入并入本文。

在一个实例中，可以使用Chandler的美国专利No.5,981,180所述的技术与本文所述的荧光测量以多重方式一起使用，其中颗粒被分类成多个亚组，以用于分析单个样品中的多种分析物。可以如本文所述构建的***的另一些实例(例如通过包含本文所述光照子***的实施方案来实现)参见Chandler等的美国专利No.5,981,180、Chandler的美国专利No.6,046,807、Chandler的美国专利No.6,139,800、Chandler的美国专利No.6,366,354、Chandler的美国专利No.6,411,904、Chandler等的美国专利No.6,449,562和Chandler等的美国专利No.6,524,793，其通过引用并入本文。图10中所示***还可以进一步如这些专利中所述进行构建。图10中所示***可进一步如本文关于其它***和实施方案所述的进行构建。

构建成进行颗粒测量的图1和图2的成像***的另一实施方案示于图9。图9中所示***可用于诸如样品的多分析物测量的应用中。所述***的该实施方案构建成荧光成像***。该***包含构建成在测量期间为颗粒62提供光照的光照子***。在图9中，光照子***包含LED或LED晶粒(LED die)108。LED或LED晶粒108可包括本领域已知的任何合适的LED或LED晶粒。另外，光照子***可包含多于一个光源(未显示)，每个光源构建成发出具有至少一个波长或至少一个波段的光。用于图9所示***之光源的合适组合的一个实例包括但不限于两个或更多个LED或LED晶粒。应理解，单个LED晶粒可包含(任何形状的)单发射区域或者单个晶粒上的多个发射区域。通常，如果这些多发射区域是矩形的，则将其称为“柱”。然而，光源可包含至少一个LED晶粒与一个或多个其它非LED光源(例如上文所述的那些)的组合。由多于一个光源发出的光可通过分光器(未显示)或本领域已知的任何其它合适的光学元件一其进入共同的光路，从而使来自众光源的光可以同时指向所述颗粒。

或者，光照子***可包含光学元件(未显示)，例如反射镜以及构建成将光学元件从光路中移进或移出的装置(未显示)，所述移进或移出取决于哪一光源用于照射颗粒。以这种方式，光源可用于以不同波长或波段的光来依次照射颗粒。光源还可以从上方照射基底(未显示)，而非从基底的下方。

可选择光源以提供如下波长或波段的光，所述光会使所偶联或掺入的颗粒或物质发荧光。例如，可选择激发掺入颗粒和/或偶联至颗粒表面的荧光团、荧光染料或其它荧光物质的波长或波段。以这种方式，可选择波长或波段，以使颗粒发出用于对颗粒进行分类的荧光。此外，可选择激发在颗粒表面通过试剂与颗粒偶联或位于颗粒内部的荧光团、荧光染料、量子点、荧光纳米晶体或其它荧光物质的波长或波段。这样，可选择波长或波段，以使颗粒发出用于检测和/或定量已在颗粒表面或颗粒内部发生的反应的荧光。或者可将波长或波段选择成激发颗粒自身，从而所述颗粒发出用于测定颗粒的物理尺寸和/或某类型颗粒的存在从而可以选择后续测试的荧光。应用这样的***的一个实例是生物防御应用，其中响应于荧光和/或颗粒散射的输出至少可用于检测生物或化学病原物质的可能存在。

除了检测之外，可使用输出结果来分析某些物理和/或光学特征。光照子***还包含反射器110，其基本上呈椭圆形并置于由LED或LED晶粒108所发光的光路中。反射器110构建成将光从LED或LED晶粒导向光照体积，从而使整个光照体积中的光强度基本上均一。LED或LED晶粒108和反射器110还可如本文所述进行进一步构建。颗粒40在测量期间被置于光照体积中。具体而言，反射器110构建成将光从LED或LED晶粒108导向基底114，其中颗粒40被固定在基底114上。颗粒40可包括上文所述的任何颗粒。基底114可包括本领域已知的任何合适的基底。可将固定于基底114的颗粒置于成像腔室(未显示)或任何其它用于维持基底114和固定其上的颗粒40相对于光照子***之位置的装置中。用于维持基底114之位置的装置还可构建成在成像前改变基底的位置(例如，用于将光照聚焦到基底上)。

可使用上文所述的磁性吸引、真空过滤板或如上所述本领域已知的任何其它合适的方法来将图9的颗粒40固定在基底114上。然而，优选固定颗粒40，以使该颗粒在检测器整合期间(可能持续数秒钟)不发生可察觉地移动。

图9所示***还包含检测子***，其构建成响应于来自成像体积中颗粒的光(例如，从颗粒散射和/或发射的光)而产生输出结果。例如，如图9所示，检测子***可包含光学元件116和二色分光器118。光学元件116构建成收集和对准来自基底114和固定于其上的颗粒40的光，并用于将光导向分光器118。光学元件116可包括本领域已知的任何合适的光学元件。另外，尽管光学元件116在图9中显示为单个光学元件，然而应理解，光学元件116可包含多于一个光学元件。此外，尽管光学元件116在图9中显示为折射型光学元件，然而应理解，光学元件116可包含一个或多个反射型光学元件、一个或多个折射型光学元件、一个或多个衍射型光学元件或其某种组合。

分光器118可包括本领域已知的任何合适的分光器。分光器118可构建成基于光的波长将光从光学元件116导向不同的检测器。例如，具有第一波长或波段的光可穿过分光器118，具有第二波长或波段(不同于第一波长或波段)的光可被分光器118反射。检测子***还可包含光学元件120和检测器122。穿过分光器118的光可被导向光学元件120。光学元件120构建成将穿过分光器的光聚焦在检测器122上。检测子***还可包含光学元件124和检测器126。被分光器118反射的光可指向光学元件124。光学元件124构建成将被分光器反射的光聚焦在检测器126上。光学元件120和124可如上文针对光学元件116所述进行构建。

检测器122和126可包括例如电荷耦合器件(CCD)检测器或本领域已知的任何其它合适的成像检测器，例如CMOS检测器、光敏元件的二维阵列、时间延迟积分(time delay integration，TDI)检测器等。在一些实施方案中，可使用检测器(例如二维CCD成像阵列)来同时获得基本上是完整基底或固定于基底上的所有颗粒的图像。***中包含的检测器数目可以与目标波长或波段的数目相等，从而使每个检测器用于生成一个波长或波段的图像。可使用光学带通元件(未显示)或本领域已知的任何其它合适的光学元件(置于从分光器到检测器之间的光路中)对通过检测器生成的每幅图像进行光谱过滤。可针对每幅捕获图像使用不同的滤光器“波段”。无论用于颗粒分类还是报告信号，获取图像的每个波长或波段的检测波长中心和宽度可以与目标荧光发射匹配。以这种方式，图9所示***的检测子***构建成同时生成不同波长或波段的多幅图像。

尽管图9所示***包含两个检测器，然而应理解，该***可包含多于两个检测器(例如，三个检测器、四个检测器等)。如上所述，通过使用一个或多个用于将不同波长或波段的光同时导向不同检测器的光学元件，检测器可构建成同时生成不同波长或波段的图像。此外，尽管图9所示***包含多个检测器，然而应理解，该***也可包含单个检测器。可使用单个检测器依次生成不同波长或波段的多幅图像。例如，可将不同波长或波段的光依次导向基底，并可在以每种不同波长或波段照射基底期间生成不同的图像。

在另一实例中，可以改变对导向单个检测器之波长或波段的光进行选择的不同滤光器，以依次生成不同波长或波段的图像(例如通过将不同滤光器移进和移出成像光路来实现)。因此，图9所示检测子***构建成生成代表颗粒112在若干目标波长处的荧光发射的多幅或一系列图像。此外，所述***可构建成向处理器(即影像处理引擎)提供代表颗粒发射荧光的多幅或一系列数字图像。在一个这样的实例中，***可包含处理器128。处理器128可构建成从检测器122和126获取(例如，接收)图像数据。例如，处理器128可以本领域已知的任何合适方式与检测器122和126偶联(例如，通过各将一个检测器与处理器偶联传输介质(未显示)，通过各在一个检测器与处理器之间偶联的一个或多个电子组建(未显示)例如模数转换器)。优选地，处理器128构建成处理和分析图像以确定颗粒40的一个或多个特征，例如颗粒分类以及关于颗粒表面上分析物的信息。所述一个或多个特征可以是任何合适格式的处理器输出结果，例如具有针对每个颗粒(针对每个波长或波段)的荧光强度之条目的数据阵列。处理器128可以是例如常包含在典型个人计算机、大型计算机***、工作站等中的处理器。一般地，术语“计算机***”可广义地定义为包括任何具有一个或多个处理器的装置，所述处理器从存储介质执行指令。处理器还可具有任何其它合适的功能硬件。例如，处理器可包含在固件中带有固定程序的DSP、现场可编程门阵列(FPGA)或使用时序逻辑“编写”的高级程序语言(例如超高速集成电路(VHSIC)硬件描述语言(VHDL)的其它可编程逻辑装置(PLD)。

在另一实例中，可利用处理器128执行的程序指令(未显示)可以用高级语言编写，所述语言例如C#(酌情与C++中的部分联用)、ActiveX控件、JavaBeans、微软基础类库(MFC)或期望的其它技术或方法。可以采用任意不同的方式来执行程序指令，包括基于过程的技术、基于组件的技术和/或面向对象的技术等。

图9所示***还可如上针对其它***和实施方案所述进行构建。

图10示意成像***的流式细胞仪实施方案，其构建成根据本发明的一些实施方案对颗粒进行测量。图10示意的***包含根据本文所述之实施方案构建的光照子***。在图10中，沿着其中流过颗粒74的光池(cuvette)72横截面的平面显示该***。在一个实例中，光池可以是标准熔融二氧化硅光池，例如标准流式细胞仪中使用的光池。然而，任何其它合适类型的观测或递送构造(例如适当限定的样品气流通路)也可用于递送待分析的样品。应用图10的***实施实时PCR方法需要将PCR溶液的等分试样从热循环仪转移至图10的检测***。通过在PCR过程中不同的时间间隔取出等分试样，便于对初始模板或DNA进行定量。该方法还可通过添加额外的缓冲剂或试剂或者可增进检测的扩增方法来对等分试样进行操作。另一些方法可包括在向热循环仪加样前对PCR试剂预等分，并在PCR过程中以各时间间隔将这些样品移走，或任何其它测定方法。

光照子***构建成用光照射颗粒74。光照子***包含LED或LED晶粒76。LED或LED晶片可以是本领域已知的任何合适的LED或LED晶粒。此外，光照子***可包含多于一个LED或LED晶粒(数据未显示)。在另一些实施方案中，光照子***包含LED或LED晶粒76以及一种或多种其它光源(未显示)例如LED、LED晶粒、激光、弧光灯、光纤照明、灯泡或其某种组合。所述其他光源可包括本领域已知的任何合适的光源。以这种方式，光照子***可包含多于一个光源。在一个实施方案中，光源可构建成以具有不同波长或波段的光(例如蓝光和绿光)照射颗粒。在一些实施方案中，光源可构建成以不同方向照射颗粒。

光照子***还包含反射器78，其基本上呈椭圆形并构建成将光从LED或LED晶粒76导向光照体积，从而使整个光照体积中的光强度基本上均一，或者在光照体积中具有选择性照射功能。LED或LED晶粒76以及反射器78还可如本文所述进行构建。在测量期间颗粒74流过光照体积。以这种方式，当颗粒流过光池时，从反射器78反射的光照射颗粒。该照射可导致颗粒本身或者附着其上或掺入其中的荧光团发出具有一种或多种波长或波段的荧光。荧光团可包括本领域已知的任何合适的荧光团。在一些实施方案中，颗粒74本身构建成发射荧光或者当适当强度和波长的光照射时天然发射荧光。在一个这样的实施方案中，从反射器78反射的光使颗粒发射荧光。

图10所示***还包含检测子***，其构建成响应于来自(例如，散射自/发射自)光照体积中颗粒的光而生成输出结果。例如，从颗粒向前散射的光可被光学元件82导向检测***80，所述光学元件82可以是折叠镜、合适的光导元件或二色反射元件。或者，检测***80可被直接置于前向散射光的光路中。以这种方式，光学元件82可不包含在***中。在一个实施方案中，所述前向散射光可以是与光照子***照射方向约呈180°角度的颗粒散射光，如图10所示。前向散射光与照射方向的角度可以不精确地为180°，从而入射光可以不射至检测***的光敏表面。例如，前向散射光可以是与光照方向呈小于或大于180°角度的颗粒散射光(例如，以约170°、约175°、约185°或约190°的角散射的光)。检测子***还可以收集与光照方向约呈90°角的颗粒散射光。颗粒散射的光还可以(或作为替代地)以任何角度或方向被检测子***收集。

在一个实施方案中，这种散射光可通过一个或多个分光器或二色镜被分离成多于一束光。例如，与光照方向呈约90°角散射的光可通过分光器84被分离成两束不同的光。所述两束不同的光可通过分光器86和88被再次分离，从而产生四束不同的光。可将每束光导向不同的检测***，后者可包含一个或多个检测器。例如，可将所述四束光之一导向检测***90。检测***90可构建成检测被颗粒散射的光。由检测***80和/或检测***90检测的散射光一般可与被光源照射的颗粒体积成正比。因此，检测***80和/或检测***90的输出结果可用于测定光照体积中颗粒的直径。

另外，检测***80和/或检测***90的输出结果可用于识别粘在一起的或大致同时通过光照体积的多于一个颗粒。因此，这样的颗粒可与其它样品颗粒和校准颗粒区分开来。可将另外三束光导向检测***92、94和96。检测***92、94和96可构建成检测由荧光团或颗粒本身发射的荧光。每个检测***可构建成检测不同波长或不同波长范围的荧光。例如，检测***之一可构建成检测绿色荧光。又一检测***可构建成检测黄-橙色荧光，另一检测***可构建成检测红色荧光。

在一些实施方案中，滤光器98、100和102可分别与检测***92、94和96偶联。滤光器可构建成阻挡除检测***所检测之波长以外的波长的荧光。此外，可将一个或多个透镜(未显示)与每个检测***在光学上偶联。透镜可构建成将散射光或发出的荧光聚焦在检测器的光敏表面上。检测器的输出结果与射至其上的荧光成正比，并引起电流脉冲。可以将电流脉冲转化为电压脉冲，低通(low pass)滤波，然后利用A/D转换器(未显示)进行数字化。处理器104例如数字信号处理器(digitalsignal processor，DSP)对脉冲下方的面积进行积分，从而提供了代表荧光强度的数字。如图10所示，处理器104可通过传输介质106而与检测器90偶联。处理器104还可以直接通过传输介质106以及一个或多个其它组件(未显示)例如A/D转换器而与检测器90偶联。处理器可以以类似的方式与***中其它检测器偶联。处理器104还可如本文所述进行构建。

在一些实施方案中，响应于荧光团或颗粒所发出荧光的输出结果可用于确定颗粒的身份以及关于曾在或正在颗粒表面上发生的反应的信息。例如，可使用两个所述检测***中的输出结果来确定颗粒的身份，可使用其它检测***的输出结果来确定曾在或正在颗粒表面上发生的反应。因此，对检测器和滤光器的选择可根据掺入或结合至颗粒的染料或荧光团类型和/或所测量反应(例如，掺入或结合至参与反应之反应物的染料)而变化，或者可取决于颗粒本身的荧光特征而变化。用于确定样品颗粒之身份的检测***(例如，检测***92和94)可以是雪崩光电二极管(APD)、光电倍增管(PMT)或其他类型的光检测器。用于确定曾在或正在颗粒表面上发生之反应的检测***(例如检测***96)可以是PMT、APD或另外类型的光检测器。测量***还可如本文所述进行构建。

尽管图10的***包含用于区分具有不同染色特征之颗粒的两个检测***，然而应理解，所述***可包含用于区分具有不同染色特征之颗粒的多于两个检测***(即，3个检测***，4个检测***，等等)。在这样的实施方案中，所述***可包含另外的分光器和另外的检测***。此外，可将滤光器和/或透镜与所述另外检测***中的每一个偶联。

在一些实施方案中，本文公开的***包含与成像腔室42偶联的热控制元件。通过与成像腔室42偶联的热控制元件，则成像腔室中的温度可根据进行不同生物反应的需要来进行调整。因此，通过将热控制元件与成像腔室偶联，可以在成像腔室42内部进行PCR。在一些方面，可以将成像腔室与用于将微球从腔室表面释放的装置(例如超声或振荡装置)偶联。另一些实施方案包括具有多个检测腔室和/或一次性检测腔室的***。

B.PCR

聚合酶链式反应(PCR)是分子生物学中广泛使用的技术，其通过体外酶促复制对一段DNA进行扩增。通常，PCR应用中使用热稳定性DNA聚合酶，例如Taq聚合酶。这种DNA聚合酶从核苷酸(dNTP)酶促组装新的DNA链，其中使用单链DNA作为模板，并以DNA引物起始DNA合成。基本的PCR反应需要几种组分和试剂，包括：含有待扩增靶序列的DNA模板；一种或多种引物，其与靶序列5’和3’端的DNA区域互补；DNA聚合酶(例如，Taq聚合酶)，其优选具有约70℃的最适温度；脱氧核糖核苷三磷酸(dNTP)；缓冲液，其为DNA聚合酶的最佳活性和稳定性提供合适的化学环境；二价阳离子，通常是镁离子(Mg2+)；以及一价阳离子钾离子。

多数PCR方法都使用热循环使PCR样品经历一系列限定的温度步骤。每个循环一般包括2或3个不连续的温度步骤。所述循环常如下进行：在高温(＞90℃)下的单个温度步骤(“起始”)，接着是一个或两个温度步骤，最后是最终的产物延伸(“最终延伸”)或短暂的保存(“最终保持”)。每个循环中所使用的温度和应用的时间长度取决于多种参数。它们包括DNA合成使用的酶、反应中二价离子和dNTP的浓度和引物的解链温度(Tm)。PCR方法中各步骤的常用温度为：起始步骤——94-96℃；变性步骤——94-98℃；退火步骤——50-65℃；延伸/延长步骤——70-74℃；最终延伸——70-74℃；最终保持——4-10℃。

实时聚合酶链式反应(也称作定量实时聚合酶链式反应(QRT-PCR)或动态聚合酶链式反应)用于对靶DNA分子进行扩增并同时定量。它使得可以对DNA样品中特定序列同时进行检测和定量(作为绝对拷贝数或者当与输入的DNA或另外的归一化基因进行归一化时的相对量)。实时PCR可与逆转录聚合酶链式反应联合使用来定量低丰度RNA。通过以对数标度将荧光对循环数作图来确定实时PCR的指数阶段期间所存在DNA的相对浓度。然后可通过将结果与标准曲线进行比较来确定DNA的量，所述标准曲线通过已知量DNA的连续稀释的实时PCR产生。

多重PCR和多重实时PCR在单个PCR反应中使用多种独特的引物组来产生不同DNA序列的扩增子。通过同时靶向多种基因，可以从单次测试中获得额外的信息，否则，所述信息的获得需要几倍的试剂和更长的时间。应当对每个引物组的退火温度进行优化使其在单个反应中起作用。

本文公开的方法还可在PCR过程期间使用不对称引发技术(asymmetric priming technique)，其可增强报告探针与互补靶序列的结合。进行不对称PCR以过量的针对所选链的引物来进行，从而优先扩增DNA模板的一条链(与另一条链相比)。

C.实时PCR检测化学制剂

目前有一些用于实时PCR的市售核酸检测化学制剂。这些化学制剂包括DNA结合剂、基于FRET的核酸检测、杂交探针、分子信标、水解探针和基于染料-引物的***。这些化学制剂中的每一种将在以下进行更详细地讨论。

1.DNA结合剂

首次动态PCR分析由Higuchi等进行，他们使用溴化乙锭来结合双链DNA产物(Higuchi等，1992；Higuchi等，1993；美国专利5,994,056；美国公开申请No.2001/6171785)。正如动态PCR中使用的所有其它DNA结合剂一样，溴化乙锭能够在结合后提高荧光强度。所得到的信号增强可以在反应过程中进行记录，并对循环数进行作图。与终点分析相比，以这种方式记录数据更能反映目标样品的起始浓度。

与其它检测化学制剂相比，结合剂相对廉价。使用这些结合染料的优点是它们成本低廉以及优异的信噪比。其缺点包括在PCR反应中与任意双链DNA非特异性结合的特性，包括由引物-二聚体形成产生的扩增子(Wittwer等，1997)。为了证实特异性扩增子的产生，应当进行解链曲线分析(Ishiguro等，1995)。另一缺点是：扩增较长产物将产生比扩增较短产物更多的信号。如果扩增效率不同，则定量可能更加不精确(Bustin和Nolan，2004)。

来自Invitrogen^TM(Carlsbad，CA)的

Green I是常用的嵌入染料(Bengtsson等，2003)。

Green I是环取代的不对称花青染料(Zipper等，2004；美国专利5,436,134；美国专利5,658,751)。与小沟结合的不对称花青染料(称作BEBO)已用于实时PCR中。BEBO导致荧光随时间非特异性增强，这可能是由于缓慢的聚集过程所致，并且与

Green I相比灵敏度较低。称为BOXTO的类似染料也已报道用于qPCR中(Bengtsson等，2003；美国公开申请No.2006/0211028)。像BEBO一样，BOXTO不如

Green I灵敏(美国公开申请No.2006/0211028)。

其它常见的报告试剂包括YO-PRO-1和噻唑橙(thiazole orange，TO)，它们同为嵌入式不对称花青染料(Nygren等，1998)。尽管这些染料在结合后表现出荧光强度的大幅增加，然而已有报道称TO和噁唑黄(Oxazole Yellow，YO)在实时PCR中性能欠佳(Bengtsson等，2003)。可使用的其它染料包括但不限于pico green、吖啶橙和色霉素A3(美国公开申请No.2003/6569627)。可与实时PCR相容的染料可从如下各供货商处获得，所述供货商例如Invitrogen、Cambrex Bio Science(Walkersville，MD)、Rockland Inc.(Rockland，ME)、Aldrich ChemicalCo.(Milwaukee，WI)、Biotium(Hayward，CA)、TATAA Biocenter AB.(Goteborg，Sweden)和Idaho Technology(Salt Lake，UT)(美国公开申请No.2007/0020672)。

一种称作EvaGreen^TM(Biotium)的染料已显示很有前景，因为它被设计成不抑制PCR并且与

Green I相比在碱性条件下更稳定(Dorak，2006；美国公开申请No.2006/0211028)。其它更新的染料包括

染料家族(Idaho Technology)。

I和

Plus是这些染料中最具有商业竞争力的。

Plus比

显著更亮(美国公开申请No.2007/0020672；Dorak，2006；美国公开申请No.2005/0233335；美国公开申请No.2066/0019253)。

2.基于FRET的核酸检测

许多实时核酸检测法使用通过荧光共振能转移(

Resonance Energy Transfer，FRET)发生相互作用的标记。该机制涉及供体和受体对，其中供体分子在特定波长被激发，随后将其能量非放射性转移至受体分子。这通常导致信号改变，其指示供体和受体分子彼此接近。

基于FRET的核酸检测的早期方法为本技术奠定了一般性基础，其中包括Heller等的工作(美国专利No.4,996,143；5,532,129和5,565,322，其通过引用并入)。这些专利通过包含两种经标记探针而引入基于FRET的核酸检测，所述探针彼此非常接近地与靶序列杂交。该杂交事件使得能量发生转移从而产生可测量的光谱响应改变，其间接指示了靶标的存在。

Cardullo等(通过引用并入)提出，荧光调节和非放射性荧光共振能转移可检测溶液中的核酸杂交(Cardullo等，1998)。该研究使用了三种基于FRET的核酸检测策略。第一种策略包括两种5’标记的彼此互补的探针，使得在杂交复合体长度上的供体和受体荧光团之间发生转移。在第二种方法中，荧光分子与两种核酸共价结合，其中一个在3’端而另一个在5’端。经荧光团标记的核酸与较长且未经标记之核酸上不同但距离较近的序列杂交。最后，用嵌入染料作为与探针5’端共价结合的受体荧光团的供体。

Morrison等(1989)(通过引用并入)使用互补的经标记探针通过竞争性杂交来检测未标记的靶DNA，产生随靶DNA浓度增加而增强的荧光信号。在这种情形中，所使用的两种探针彼此互补并且分别在其5’端和3’端用荧光素和荧光素猝灭剂标记。后来的工作还显示可使用荧光解链曲线来监测杂交(Morrison和Stols，1993)。

3.杂交探针

实时PCR中使用的杂交探针主要开发用于与Roche

仪器一起使用(美国公开申请No.2001/6174670；美国公开申请No.2000/6140054)。它们有时被称作FRET探针、

探针或双FRET探针(Espy等，2006)。

杂交探针在直接测量FRET的形式中使用(Wilhelm和Pingoud，2003)。用荧光能转移对中的各个成员分别对两种探针中的每一种进行标记，从而使杂交至靶DNA序列的邻近区域后，激发能从供体转移至受体，并且受体随后发的光可被记录为报告信号(Wittwer等，1997)。所述两种探针与靶序列退火，从而使上游探针在3’端被荧光标记，下游探针在其5’端被标记。下游探针的3’端通常通过磷酸化或一些其它手段被封闭，以防止探针在PCR期间延伸。与上游探针3’端偶联的染料足以防止该探针延伸。这种报告***与其它基于FRET的检测方法(分子信标、等等)的不同之处在于其使用FRET产生荧光信号而非猝灭荧光信号(Dorak，2006)。

典型的受体荧光团包括花青染料(Cy3和Cy5)、6-羧基-4，7，2’，7’-四氯荧光素(TET)、6-羧基-N，N，N’，N’-四甲基罗丹明(TAMRA)和6-羧基罗丹明X(ROX)。供体荧光团通常是6-羧基荧光素(FAM)(Wilhelm和Pingoud，2003)。杂交探针在基因分型和错配检测中特别有利。除了在PCR反应的每个循环中检测荧光以外，还可进行解链曲线分析。在探针杂交之后缓慢加热样品可提供关于目标序列的额外的定性信息(Lay和Wittwer，1997；Bernard等，1998a；Bernard等，1998b)。碱基对错配将不同程度地改变双链体的稳定性，这取决于错配类型及其在序列中的位置(Guo等，1997)。

4.分子信标

分子信标(也叫作发夹探针)是茎-环结构，其在存在互补靶序在时打开并杂交，通常导致荧光增强(美国专利5,925,517；美国公开申请No.2006/103476)。分子信标通常具有两侧为亲和对成员的核酸靶标互补序列，所述亲和对成员在测定条件下在不存在靶标时彼此相互作用而形成茎双链体。探针与其预先选定之靶序列的杂交使探针中产生构象变化，使“臂”分开并消除茎双链体，并从而使荧光团和猝灭剂分开。

5.水解探针

水解探针(也称为测定(美国专利5,210,015))受到普遍欢迎，因为它对每个靶序列仅包括一个探针，而非两个探针(如在杂交探针中)。这使得每个样品的成本下降。对这些探针的设计也没有分子信标复杂。它们通常在5’端标记报告分子，在3’端标记猝灭剂。当报告分子和猝灭记固定于同一探针上时，二者被强制靠近。这种靠近使报告分子信号有效地被猝灭，即使当探针与靶序列杂交时也是如此。在PCR反应的延伸或延长阶段，使用一种叫作Taq聚合酶的聚合酶，因为其具有5’外切核酸酶活性。该聚合酶使用上游引物作为结合位点，然后延伸。在聚合酶延伸期间水解探针在其5’端被Taq的5’外切核酸酶活性切割。当该情形发生时，报告荧光团从探针上释放，随后便不再靠近猝灭剂。由于PCR反应连续循环，这随着每个延伸阶段而产生持续的报告信号增强。为了确保每个循环的信号尽可能强，将水解探针设计成具有比反应中的引物高约10℃的Tm。

然而，切割探针5’端的过程不需要靶序列的扩增或延伸(美国专利5,487,972)。这通过将探针置于靶序列上的上游引物附近来实现。以这种方式，可以发生连续几轮的退火以及随后的探针水解，导致在未发生聚合作用的情况下产生显著量的信号。实时水解探针反应还描述于美国专利No.5,538,848和7,205,105，它们均通过参考并入本文。

6.基于染料-引物的***

存在可用于实时PCR的多种基于经染料标记之引物的***。它们的复杂程度从简单的发夹引物***到更复杂的引物结构(其中发夹探针的茎环部分通过不可扩增的接头与特定PCR引物结合)。这些方法的优点是它们不需要额外的介入标记探针(这对于基于探针的测定是必需的)，并且它们还允许多重测定，而这对于DNA结合染料来说是不可能实现的。然而，这些方法中每一种的成功都取决于对引物序列的仔细设计。

发夹引物包含反向重复序列，其被与靶DNA互补的序列所分隔(Nazarenko等，1997；Nazarenko等，2002；美国专利5,866,336)。所述重复序列退火形成发夹结构，从而使5’端的荧光团与3’端的猝灭剂紧密靠近，因而使荧光信号猝灭。将发夹引物设计成使其优选结合靶DNA，而非保持发夹结构。随着PCR反应的进行，引物与累积的PCR产物退火，荧光团和猝灭剂在物理上被分隔，从而荧光水平提高。

Invitrogen的LUX^TM(Light Upon eXtension)引物是发荧光的发夹引物，其在引物5’端含有4-6个核苷酸的短突出端，该突出端与3’端附近的内部序列互补并与3’端附近结合荧光团的位置重叠(Chen等，2004；Bustin，2002)。互补序列之间的碱基配对形成双链茎，其使得与紧靠引物3’端的报告染料猝灭。在PCR期间，LUX^TM引物被掺入新的DNA链中，然后线性化，这时产生互补的第二链。该结构改变导致荧光信号增强达10倍。这些引物可能难于设计，并且必须仔细分析二级结构以确保探针优先退火至PCR产物。定制LUX^TM引物的设计和验证服务可从Invitrogen获得。

最近，发夹探针已成为PCR引物的一部分(Bustin，2002)。在这种方法中，一旦引物发生延伸，发夹中的序列就与新合成的PCR产物退火，破坏发夹并将荧光团和猝灭剂隔开。

引物是双功能分子，其中上游发夹探针序列与下游引物序列共价连接(美国公开申请No.2001/6270967；美国公开申请No.2005/0164219；Whitcombe等，1999)。探针包含5’端的荧光团和3’端的猝灭剂。在靶标不存在时，探针形成6-7个碱基的茎，使荧光团和猝灭剂靠近并使得猝灭剂吸收荧光团发出的荧光。Scorpion探针的环部分由与靶序列中的一部分互补的序列组成，所述部分在引物序列3’端下游的11个碱基内。当靶标存在时，探针与第一个PCR循环中合成的靶区域结合。在第二个循环的变性和退火之后，探针和靶标杂交。发夹环变性所需的能量比所产生的新DNA双链体要少。因此，Scorpion探针环序列与新合成的PCR产物的一部分杂交，导致荧光团与猝灭剂分隔开并增强所发出的荧光。

正如所有基于染料-引物的方法一样，Scorpion引物的设计也遵循严格考虑二级结构和引物序列的设计，以确保不会有次级反应与正确的探针事件相竞争。应将引物对设计成产生约100-200bp的扩增子。理想状况下，引物应具有尽可能少的二级结构，并应对其发夹形成和二级结构进行测试。应将引物设计成不与探针元件杂交，因为这将会导致线性化以及非特异性荧光发射的增多。两种引物的Tm应当相近，茎Tm应比探针Tm高5-10℃。探针序列的长度应为17-27个碱基，探针靶标应为Scorpion 3’端下游的11个或更少的碱基。茎序列的长度应当为6-7个碱基，并且应主要包含胞嘧啶和鸟嘌呤。5’茎序列应以胞嘧啶起始，因为鸟嘌呤可能会使荧光团猝灭。几种寡核苷酸设计软件包中包含了用于Scorpion引物设计的算法，定制设计服务也可从一些寡核苷酸供货商处获得。

来自Promega的Plexor^TM***是一种实时PCR技术，其优点是无需设计探针并且只有一种PCR引物被标记(美国专利5,432,272；美国公开申请No.2000/6140496；美国公开申请No.2003/6617106)。该技术利用两种修饰核苷酸(异鸟嘌呤(iso-dG)和5’-甲基异胞嘧啶(iso-dC))之间的特异性相互作用(Sherrill等，2004；Johnson等，2004；Moser和Prudent，2003)。该技术的主要特征是异型碱基(iso-base)只能与互补的异型碱基进行碱基配对，并且当已有序列中存在异型碱基时DNA聚合酶只能掺入对应的互补异型碱基。将经荧光标记的iso-dC残基作为5’端核苷酸来合成一种PCR引物。随着扩增的进行，所述经标记引物发生退火和延伸，从而掺入PCR产物中。经猝灭剂标记的iso-dGTP(dabsyl-iso-dGTP)(可作为PCR预混合物中的游离核苷酸而获得)与iso-dC特异性碱基配对，并由此掺入互补的PCR链中，使荧光信号猝灭。与另一些染料-引物***相比，用于Plexor***的引物设计相对简单，并通常遵循典型的靶标特异性引物设计考虑因素。可从Promega获得的基于网络的Plexor引物设计软件辅助对合适的染料和猝灭剂组合进行选择，并提供被许可提供含异型碱基之引物寡核苷酸的提供商的链接。

D.示例性化学制剂

如上所述，有几种市售的核酸检测化学制剂目前用于实时PCR中。然而，当前的实时PCR技术将反应的多重性能力限制在约1-6。本发明的方法和***通过使用市售的核酸检测化学制剂(包括先前未在实时PCR中使用的检测化学制剂)可实现好得多的实时PCR多重性。以下将详述使用本发明所述这些检测化学制剂中几种的实施方案。

1.分子信标

分子信标(也称为发夹探针)可看作茎-环结构，当互补靶序列存在时，其打开并杂交，通常导致荧光增强；而当互补靶序列不存在时，其形成茎-环结构，导致荧光减弱(美国专利5,925,517；美国公开申请No.2006/103476)。根据本发明一个实施方案的探针是经标记的探针，其含有核酸靶标的互补序列，其两侧为亲和对成员或臂，它们在测定条件下在靶标不存在时彼此相互作用而形成茎双链体。探针与其预选靶序列的杂交使探针发生构象改变，使得两臂分开并消除茎双链体。本发明探针的一些实施方案使用相互作用的标记(由此可检测构象变化)，或者使用有特殊限制的等位基因区分结构，或者二者兼有。信号水平的特征性改变取决于标记部分是由于探针处于闭合状态而靠近还是由于探针处于打开状态而分开。根据该实施方案，分子信标还与光谱可区分或以其它方式可区分的颗粒结合，这提供了比先前使用常规方法(其中与发夹结合的染料通过区分染料的颜色而非区分与捕获探针结合之颗粒的性质来进行检测)可能实现水平更高的多重实施性。

图5和图6示意本发明的一个实施方案如何能够使荧光染料与猝灭分子分开，从而使颗粒表面上出现可检测荧光。在图5中，与猝灭分子和荧光染料偶联的发夹探针在溶液中是均质的。当探针采取发夹形式时，猝灭分子200限制了由荧光染料分子202发出的荧光量。发夹形式中的寡核苷酸探针在图5中标为205。当发夹分子的内部环与靶扩增子杂交时，荧光染料和猝灭分子如图5和图6所示分开，使珠子40表面上出现可检测荧光。为了使该荧光成像，将珠子40拉至平面阵列，这通过将磁性元件264移至阵列附近并用成像***(例如图1-2和图9中所示的成像***)检测荧光来实现。

2.杂交探针

实时PCR中使用的杂交探针有时称为FRET探针、

探针或双FRET探针(Espy等，2006)。杂交探针以直接测量FRET的形式使用(Wilhelm和Pingoud，2003)。用荧光能转移对的各个成员分别对两种探针中的每一种进行标记，从而使杂交至靶DNA序列的邻近区域后，激发能从供体转移至受体，并且受体随后的发光可记录为报告信号(Wittwer等，1997)。所述两种探针退火至靶序列，使上游探针在其3’端被荧光标记，下游探针在其5’端被标记。下游探针的3’端通常用磷酸化或另一些方式封闭，从而防止探针在PCR期间延伸。与上游探针3’端偶联的染料足以防止该探针延伸。

在该实施方案中，两种杂交探针之一可以与可区分颗粒(例如，经编码的珠子)偶联。在这种情况下，与颗粒偶联的捕获探针与目标靶核酸序列互补，未经偶联的探针与沿着靶序列的邻近区域杂交。在实时PCR反应中，所述靶序列是扩增子。供体或受体荧光团可与结合在颗粒上的寡核苷酸序列结合。

典型的受体荧光团包括花青染料(Cy3和Cy5)、6-羧基-4，7，2’，7’-四氯荧光素(TET)、6-羧基-N，N，N’，N’-四甲基罗丹明(TAMRA)和6-羧基罗丹明X(ROX)。供体荧光团通常是6-羧基荧光素(FAM)(Wilhelm和Pingoud，2003)。通过将报告探针与其相应序列匹配来实现对靶序列的基因分型。

图7示意本发明的经修饰FRET(荧光共振能转移)杂交探针。供体荧光团210与固定于顺磁性微球40表面上的探针结合。到每个PCR循环的检测阶段时，溶液的温度将有利于供体标记的探针和受体标记的探针与靶序列发生杂交。供体210和受体212的接近会允许荧光共振能转移。这会导致只有珠子40表面附近出现荧光，这通过使受体分子212以不同于供体210的波长发光来实现。

因此，在使用FRET杂交探针在样品中实施多重实时扩增和检测多种核酸靶标的方法的一个实施方案中，将在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针组，其中每组探针包含第一探针和第二探针，所述第一探针用荧光能转移对中的第一成员进行标记，并固定在经编码磁珠上，从而从其固定的经编码磁珠便可得知第一探针的身份，所述第二探针带有荧光能转移对中的第二成员。然后可进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物。扩增产物将与探针组杂交。通过向腔室表面施加磁场，经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上的探针杂交的扩增产物被拉至腔室表面，成像***(例如本文别处所述的那些)检测此处来自经编码磁珠的信号以及来自与扩增产物杂交的荧光能转移对的信号。然后可将磁场从腔室表面撤走，以便进行下一个扩增循环。扩增和检测可重复进行所需的次数，以获得反应的实时定量数据。应注意，来自荧光能转移对的信号可以是荧光增强或荧光减弱，这取决于所使用的报告分子。

也可以使用该双探针***而无需FRET对。在此实施方案中，仅标记不与颗粒偶联的探针，因此这两种探针与靶序列的杂交可通过两种探针之一上的标记而进行检测。例如，可在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针组，其中每组探针包含第一探针(其固定于经编码磁珠从而从其固定的经编码磁珠便可得知第一探针的身份)和包含标记的第二探针。进行扩增循环以形成用所述多种引物对扩增的多种核酸靶标的扩增产物。扩增产物与探针组杂交，向腔室表面施加磁场，从而将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上的探针杂交的扩增产物拉至腔室表面。因为与扩增产物上的互补序列杂交，所以未固定的经标记探针也被拉至腔室表面。然后，可使用成像***(例如本文别处所述的那些)检测来自经编码磁珠的信号以及来自与扩增产物杂交的第二探针的信号。然后可将磁场从腔室表面撤走，继而进行下一个扩增循环。扩增和检测可重复进行所需的次数，以获得反应的实时定量数据。

一些实施方案中可包括与探针(例如，探针组的第三探针、第四探针等)结合的额外的自由漂浮FRET染料或其它报告分子，其中使多于一对探针在任意给定时间与靶核酸序列杂交，只要该探针组的一个探针与颗粒或经编码磁性颗粒偶联即可。这些额外的探针还可进一步提高该方法的灵敏度、特异性和多重实施能力，这通过添加与靶标结合的额外区分特征或额外报告分子来实现。例如，通过与经编码磁性颗粒偶联的探针，该探针可与比其更长的靶标杂交，从而使用其它报告分子修饰的其它探针可以与靶序列中与经编码磁性颗粒偶联之探针的5’或3’的区域杂交。

可使用另外的试剂来提高本文所述之任意实施方案的效率。这些试剂可通过使用本领域技术人员已知的PCR添加物来改进所述方法。BSA或其它用作封闭剂或去污剂或表面活性剂的分子也可改进本文所述方法。BSA或本领域技术人员已知的其它类似试剂可改进在玻璃或石英腔室中进行的PCR反应，这通过减少DNA和其它试剂与反应腔室的吸引来实现。可使用表现出分子聚集效应的其它添加物来改进杂交时间。还可使用可改进杂交时间的本领域技术人员已知的其它分子、试剂、化学制剂、溶液。这样的一个例子可以是核酸结合蛋白或小沟结合剂。

本领域技术人员会认识到，对报告染料的修饰(例如添加硫酸基团的公知方法)会改变染料分子的亲水性，这可导致与经编码磁性颗粒的非特异性结合更少。

3.双探针竞争

另一些实施方案针对每种靶核酸序列使用两种探针。一种探针与珠子结合，并可用荧光团标记。还添加竞争性的“自由漂浮”探针，其包含猝灭剂或者荧光团对，从而可发生FRET。在这种情形下，珠子上的探针可在3’端包含荧光团，而在5’端与珠子结合。所述自由漂浮探针能够使珠子上荧光团发出的信号猝灭，这通过如下方式来实现：将其设计成所述珠子上探针的反向互补序列，并在其5’端含有猝灭部分，从而使其紧靠荧光团，并因此在与探针杂交后实现信号减弱。这些探针还可存在于PCR扩增期间或另一些扩增事件中。在PCR循环的靶标检测阶段，自由漂浮的探针会离开与珠子结合的探针，并与靶序列杂交。与珠子结合的探针将设计成使其与自由漂浮探针之间结合的有利程度和解链温度均低于自由漂浮探针与靶序列之间的结合。随着PCR反应持续进行，靶序列浓度增加，可观察到珠子相关信号的显著提高。通过将与珠子结合的探针设计成表现出有利于与靶序列结合(与靶序列和自由漂浮探针之间的结合动力学相比)的类似方法，可观察到可测量的信号增强的相同效果。结合动力学的不同可通过如下方式实现：将自由漂浮探针和固定探针设计成彼此具有不同的长度，或者在探针之一上***一个或多个碱基，所述碱基与另一探针上的序列形成错配，但与靶序列不形成错配。

4.掺入的猝灭分子

图8示意通过将核苷酸与猝灭分子预先偶联而将猝灭分子掺入新合成的DNA链的实例。这种预先偶联的核苷酸/猝灭剂可在PCR反应混合物中提供，并会掺入扩增产物中。用荧光染料(结合于珠子40的表面)标记的互补探针将会形成一个***，在该***中荧光信号会随着产生的靶寡核苷酸序列越来越多而减弱。例如，可在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、dNTP混合物(其中一部分dNTP与猝灭分子偶联)以及与所述多种核酸靶标互补的多种经荧光标记探针，其中探针被固定于多种经编码的磁珠上，从而从其所固定的经编码磁珠便可得知每种探针的身份。进行扩增循环以形成用多种引物对扩增的多种核酸靶标中每一种的扩增产物。因为扩增反应中的一部分dNTP与猝灭分子偶联，所以扩增产物中会掺入这些猝灭分子。然后，将扩增产物与固定于经编码磁珠上的探针杂交，向腔室表面施加磁场，从而将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上的探针杂交的扩增产物拉至腔室表面。然后检测来自经编码磁珠的信号以及来自经标记探针的信号。由于扩增产物中掺入了猝灭分子，因此来自探针的荧光信号会随着产生的扩增产物越来越多而减弱。可将磁场从腔室表面撤走，然后进行下一个扩增循环。扩增和检测可重复进行所需的次数，以获得反应的实时定量数据。

5.直接杂交

可如下进行PCR，其中用荧光染料(例如Cy3)或其它允许进行检测的物质对用于形成扩增序列或扩增子的引物进行标记。标记可以在例如引物的5’端。使用经标记的引物可以形成经标记的扩增子。经标记的扩增核酸序列可与偶联至可区分颗粒的寡核苷酸探针杂交并被其捕获。目前的商品化实时PCR方法均未使用直接杂交法。

使用直接杂交法的一个实施方案示意于图11中。如图11所示，用报告分子(例如荧光团Cy3)对引物对中一个引物的5’端进行标记。该引物对从PCR中存在的样品DNA扩增靶序列，以形成经标记的扩增子。PCR中还存在经编码磁珠，其与互补于扩增子中经标记链的探针偶联。经固定探针的3’端可以被封闭(例如用磷酸基团或3’反向dT)以防止该探针发生聚合酶延伸。在所需数目的PCR循环后，向腔室施加磁场，从而将经编码磁珠拉至腔室表面进行检测。在杂交条件下进行该步骤，从而使经标记的扩增子与其互补探针杂交，并因此也将被拉至腔室表面。经标记扩增子的存在通过检测腔室表面的标记(例如，来自Cy3标记的荧光信号)来检测。尽管图11示意了单反应，然而应理解该方法也可用于多重PCR反应。可使用经编码珠子、扩增子上的标记及其组合来区分同一反应中大量的不同扩增子。

6.带标签的引物

在另一实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对(其中每个引物对包含第一引物(其含有靶标特异性序列、靶标特异性序列5’端的标签序列以及位于靶标特异性序列和标签序列之间的间隔区)和第二引物(其含有靶标特异性序列))、标记试剂以及多种与所述多种引物对中的标签序列互补的探针(抗标签)，其中探针被固定于多种经编码磁珠上，从而从其固定的经编码磁珠便可得知每种探针的身份。进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的带标签且经标记的扩增产物。所述带标签且经标记的扩增产物与固定于经编码磁珠上的探针杂交，并向腔室表面施加磁场，从而将经编码磁珠以及与固定于该经编码磁珠上的探针杂交的带标签且经标记的扩增产物拉至腔室表面。然后，使用例如成像***(例如本文所述的那些)检测来自经编码磁珠的信号以及来自带标签且经标记的扩增产物的信号。可将磁场从腔室表面撤走，然后进行下一个扩增循环。扩增和检测可重复进行所需的次数，以获得反应的实时定量数据。在一些方面中，标记试剂可以是与引物对中第二引物结合的报告分子。在另一些方面中，标记试剂可以是嵌入染料。

如上所述，引物和探针中可以使用互补的标签序列(即，标签和抗标签)。已开发了多种包括使用结合于固体支持物的寡核苷酸标签的方法，所述寡核苷酸标签可用于特异性地与偶联至引物、探针序列、靶序列等的标签组分杂交。对非杂交标签和抗标签序列的正确选择在测定中是有用的，尤其是在需要严格的非交叉杂交行为的高度平行杂交环境中的测定。

在标签和抗标签序列的设计中还考虑了形成核酸杂交体的一些热力学特性。寡核苷酸与其互补序列形成双链体的温度(称为Tm，50％的核酸双链体解离的温度)根据多种序列依赖性特性而改变，所述特性包括标准A-T和G-C对的氢键能(反映为GC或碱基组成)、堆叠自由能(stacking free energy)以及(较小程度地)最接近的临近相互作用。这些能量在通常用于杂交测定的寡核苷酸中差异很大。例如，两种由24个核苷酸组成的探针(其中一种具有40％GC含量，另一种具有60％GC含量)与其互补靶标在标准条件下的杂交理论上可具有10℃的解链温度差异(Mueller等，1993)。当在包括一个对于一组中所有寡核苷酸序列的正确杂交而言并不都适宜的温度的杂交条件下形成杂交体时，杂交是有问题的。可能发生非互补探针的错配杂交，形成具有可测量错配稳定性的双链体(Santalucia等，1999)。特定寡核苷酸组中的双链体错配可在以下杂交条件下发生，其中错配导致双链体稳定性下降而产生比该特定组中最不稳定的正确双链体更高的Tm。例如，如果杂交在有利于富含AT完美匹配的双链体序列的条件下进行，则存在富含CG的双链体序列(其含有解链温度仍高于正确形成的富含AT双链体的错配碱基)杂交的可能性。因此，设计可用于多重杂交反应中的寡核苷酸序列家族必须要考虑寡核苷酸和双链体形成的热力学特性，这将减少或消除所设计之寡核苷酸组内的交叉杂交反应。

有多种不同的方法用于选择标签和抗标签序列以用在多重杂交测定中。对可在可寻址阵列中用作“识别码(zip code)”或标签的序列的选择已描述于Brenner及同事所实施方法的专利文献中(美国专利5,654,413，通过引用并入本文)。Chetverin等(WO 93/17126，美国专利No.6,103,463和6,322,971，通过引用并入本文)公开了二元寡核苷酸片段阵列用于分选和研究核酸。这些阵列具有结合于邻近可变核苷酸序列的恒定核苷酸序列，二者均通过共价连接部分与固体支持物结合。在设计基于亚基的标签时使用的参数在Barany等(WO 9731256，通过引用并入本文)中有所述及。多重测序法已在美国专利4,942,124中描述，其通过引用并入本文。该方法使用至少两种载体，其标签序列彼此不同。

美国专利7,226,737(通过引用并入本文)描述了一组210种不交叉杂交的标签和抗标签。美国公开申请No.2005/0191625(通过引用并入本文)描述了一族1168种标签序列，已证实其具有以最小的交叉杂交与其互补序列正确杂交的能力。美国申请No.60/984,982(通过引用并入本文)描述了在核酸序列扩增中使用标签、抗标签和捕获复合物。

一群寡核苷酸标签或抗标签序列可与一群引物或其它多核苷酸序列以几种不同的方式缀合，包括但不限于直接化学合成、化学偶联、连接、扩增等。带有靶标特异性引物序列的合成序列标签可用于在PCR扩增中酶促延伸靶标上的引物。一群寡核苷酸标签或抗标签序列可与固体支持物缀合，例如通过支持物表面上的表面化学性质而缀合。

如上所述，扩增反应中所用引物对中的一个引物包含标签序列。在包含标签序列的引物开始延伸后，带标签的延伸产物可作为该引物对中另一引物的模板。然而，不希望这些模板上的延伸经过标签区域，因为这可能干扰标签序列与探针中抗标签序列的杂交。因此，可将间隔区置于引物的靶标特异性序列和标签序列之间。间隔区部分防止聚合酶延伸进标签序列区域中，这使得标签序列可以在扩增期间保持单链，并因此可自由地与其互补抗标签序列在捕获复合物中杂交。

间隔区部分是指在连接(例如共价连接)到第一核苷酸序列和第二核苷酸序列之间时有效抑制(优选地阻止)该第一或第二核苷酸序列(但不同时抑制第一和第二核苷酸序列)延伸的任何部分。有许多分子可用作间隔区部分。间隔区部分的非限制性实例包括C6-20直链烯烃和iSp18(其为18个原子的六聚乙二醇)。例如，间隔区部分可包括至少一种脱氧呋喃核糖基萘(deoxy ribofuranosyl naphthalene)或呋喃核糖基萘(deoxy ribofuranosyl naphthalene)部分，其可以与相邻的核苷酸通过3’-呋喃键或优选通过2’-呋喃键进行连接。间隔区部分可以是与靶标特异性序列方向相反的寡核苷酸序列。因此，在本发明的一些方面中，引物的标签序列可以既是标签也是间隔区，其中靶标特异性序列采取5’至3’方向，但标签序列采取3’至5’方向。在这样的方向下，标签序列不能被聚合酶延伸。多种间隔区部分及其用途描述于美国专利5,525,494中，其通过引用并入本文中。

如果不使用间隔区部分，则可采取步骤使得标签序列可以与抗标签序列杂交。例如，可用抗标签引物替代扩增中带标签且被阻隔的引物。在这种情形下，使聚合酶延伸进入抗标签序列区域，得到互补标签序列。然后，将含有抗标签/标签区域的双链扩增产物变性，之后与固体基质上偶联的抗标签杂交。

7.与颗粒结合的引物

在本发明的一些实施方案中，可使用本身结合至磁响应颗粒表面的引物。在这些实施方案中，结合至珠子的杂交探针不需要捕获扩增子，因为扩增子将在珠子上合成。通常，每对引物中只有一个引物与颗粒结合。引物对中的另一引物将是“自由漂浮的”。这样的引物还可表现出使其在延伸后光谱可区分的特性，例如使用也用作分子信标的引物，在该引物延伸后(其改变了荧光团与猝灭剂的接近程度)观察到信号变化。在这些实施方案中还可使用其它检测化学手段，例如标记自由漂浮引物、将经标记的dNTP掺入扩增子或者使用DNA嵌入试剂。

8.水解探针

靶标核酸检测的另一种方法利用某些聚合酶的核酸外切酶活性。在该实施方案中，荧光团与猝灭剂的一对或者FRET对可以是对结合至颗粒(例如珠子)的单个探针进行的修饰。这些荧光染料之一还可以与磁珠表面结合，另一荧光染料与探针结合，所述探针附着至颗粒表面，从而使两种荧光染料由于彼此在空间上接近而发生相互作用。在靶序列与探针杂交后，另一引物位于探针下游，从而在引物延伸后，猝灭部分(或荧光部分)被切割，产生可测量的信号变化。

9.

另一些实施方案可包括使用

或等同于

的探针，其与珠子结合用于实时观察结果。这些探针描述于美国专利No.6,635,427中。可使用氨基修饰的C12接头或者通过其它一些接头或其他共价结合相互作用将

与超顺磁性微球结合。通过将这些探针与珠子结合，珠子可在PCR反应期间出现，从而通过与目的靶序列结合而形成双链产物，从而能够以高度多重性实时PCR的形式检测和分析核酸序列。

10.免疫PCR

可使用免疫PCR检测抗原、细胞、内生孢子和任何其它可利用抗体检测的目标分子或蛋白质，其中所述抗体与核酸序列相连。已有的免疫PCR方法描述于美国专利No.5,665,539；Sano，T.等，Science，258：120-122(1992)以及Sims，PW等，Anal Biochem.281：230-232(2000)，其均通过引用并入本文。然而，已有的方法实时检测免疫PCR的多重性能力有限。在一个实施方案中，本发明提供了一种能够大大提高实时检测免疫PCR之多重性能力的方法，其通过首先将捕获抗体或适配体(aptamer)与磁性(例如，超顺磁的)颗粒连接来实现，其中所述颗粒能够与目标靶分子反应和结合。该颗粒不需要被编码即可实现光谱识别。反应发生后，或在反应期间，或在反应前，可将磁性颗粒(可以是纳米级颗粒或微米级颗粒)引入检测和扩增腔室。通过施加磁场，与捕获抗体或适配体连接的颗粒可被拉至腔室表面。可对这些颗粒以及与其结合或以其他方式附着的分子进行清洗步骤，这可包括使一定量的水溶液流过被磁力保持在原位的颗粒，如果需要的话，冲走多余的靶分子。

可将检测抗体或检测适配体引入反应腔室，并使其与靶分子反应和结合，所述靶分子也与捕获抗体或适配体结合(它们进而与磁性颗粒连接)。检测抗体或检测适配体与核酸序列连接，后者能够形成可扩增的核酸产物。检测抗体不一定被引入能够施加磁场的检测腔室，而是可被引入单独的反应容器中，随后被引入能够施加磁场的反应容器中。检测抗体不需要与靶分子或靶标/捕获/颗粒复合物一起在清洗步骤前引入。如果在形成或清洗靶标/捕获/颗粒复合物或其尚未完全复合之任意部分的任何多种变型方法中，颗粒尚未被拉至腔室表面，则一旦靶标/捕获/颗粒复合物或靶标/捕获/颗粒/检测复合物(“捕获夹心复合物”)被引入能够施加磁场的检测腔室，该复合物就可被拉至腔室表面。一旦被拉至腔室表面，就可使用本领域已知的任何数目的试剂或缓冲液或水溶液来实现对该复合物的洗涤。通常可使用的缓冲液可包括但不限于使用PBS、BSA、PBS/BSA、水、PCR缓冲液等。在这种情形中，清洗可通过除去多余的检测抗体或适配体而改进该测定，这可提高特异性。如果不需要，则捕获抗体或捕获适配体不需要与能被拉至表面的颗粒结合。

可在PCR反应或实时PCR反应中使用所述“捕获夹心复合物”，其中也存在经编码的磁珠。在该实施方案中，捕获夹心复合物或多种捕获夹心复合物已被引入能进行热循环的检测腔室中，被磁场拉至并保持在腔室表面以便进行清洗步骤。清洗后，与适于核酸靶标检测之核酸探针偶联的经编码珠子在介质中被引入，所述介质中还包含进行聚合酶链式反应或其它核酸扩增方法必需的所有试剂和组分。该溶液还包含本文其它实施方案中所述的实时PCR多重检测所需的任何试剂。例如，多种检测抗体或检测适配体与核酸序列相连，所述核酸序列包含不同的序列组合从而允许对核酸序列进行多重检测，从而使对这多种序列的检测反过来可与检测或定量测定靶标分子相关联，这是由于前者与检测抗体或检测适配体结合。

例如，一旦将捕获夹心复合物和PCR试剂以及经编码磁珠合并，随后的方法可包括本文所述用于多重扩增和检测的任何多个实施方案。例如，在一个实施方案中，本发明提供了扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、标记试剂以及与所述多种核酸靶标互补的探针的样品，其中所述探针固定于多种经编码的颗粒上，从而可以通过每种探针所固定的经编码磁珠来获知其身份；(b)进行扩增循环，以形成用多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；(c)将经标记扩增产物与固定于经编码磁珠上的探针进行杂交；(d)向腔室表面施加磁场，从而将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的经标记扩增产物吸引至腔室表面；(e)检测经编码磁珠和经标记扩增产物；(f)从腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；其中扩增和检测该样品中的多种核酸靶标。在本发明的一些方面中，步骤(b)至(f)重复10～40次。

11.核酸类似物

本文公开的方法中使用的核酸可包括核苷酸异构体或碱基类似物，例如“锁核酸(Locked Nucleic Acid)”等。核酸序列可包含天然核苷酸的类似物或者全部由其组成。核苷酸类似物是本领域公知的。非限制性实例是“肽核酸”，也称为“PNA”、“基于肽的核酸类似物”或“PENAM”，描述于美国专利No.5,786,461、5,891,625、5,773,571、5,766,855、5,736,336、5,719,262、5,714,331、5,539,082和WO 92/20702，其均通过引用并入本文。与诸如DNA和RNA的分子相比，肽核酸一般具有提高的序列特异性、结合特性和酶降解抗性(Egholm等，1993；PCT/EP/01219)。肽核酸一般包含一个或多个核苷酸或核苷，其包含核苷碱基部分、不是戊糖的核苷碱基接头部分和/或不是磷酸骨架部分的骨架部分。PNA中核苷碱基接头部分的实例包括叠氮原子、氨基和/或脲基连接(参见例如美国专利5,539,082)。PNA中骨架部分的实例包括氨乙基甘氨酸、聚酰胺、聚乙基、聚硫代酰胺、聚亚磺酰胺或聚磺酰胺骨架部分。

另一非限制性实例是锁核酸或“LNA”。LNA单体是双环化合物，其在结构上类似于RNA核苷。LNA具有由亚甲基接头限定的呋喃糖构象，所述接头连接2’-O位和4’-C位，如Koshkin等，1998a和1998b以及Wahlestedt等，2000所述。

另一非限制性实例是描述于美国专利5,908,845中所述的“聚醚核酸”，其通过引用并入本文。在聚醚核酸中，一个或多个核苷碱基与聚醚骨架中的手性碳原子连接。

12.杂交

如本文所用，“杂交”、“与......杂交”或“能够杂交”意指形成双链或三链分子或者具有部分双链或三链性质的分子。本文使用的术语“退火”与“杂交”同义。术语“杂交”、“与......杂交”或“能够杂交”涵盖了术语“严格条件”或“高严格度”以及术语“低严格度”或“低严格条件”。

本文使用的“严格条件”或“高严格度”是使含有互补序列的一个或多个核酸链之间杂交但不使非互补序列杂交的条件。这样的条件是本领域普通技术人员公知的，并优选用于需要高选择性的应用。严格条件可包括低盐和/或高温条件，例如通过约0.02M至约0.15M NaCl、在约50℃至约70℃来提供。应理解，所需严格度的温度和离子强度部分地由特定核酸长度、靶序列的长度和核苷碱基含量、核酸的电荷组成以及杂交混合物中的甲酰胺、四甲基氯化铵或其它溶剂的存在或浓度来决定。

还应理解，这些用于杂交的范围、组成和条件仅通过非限制性实例来阐述，而针对特定杂交反应的理想严格度常常通过比较一种或多种阳性或阴性对照来经验性确定。低严格度条件的非限制性实例包括在约0.15M至约0.9M NaCl、约20℃至约50℃的温度范围下进行杂交。当然，本领域技术人员还可改变低严格性条件或高严格性条件以适合具体应用。

E.经编码颗粒

尽管本文所述的一些实施方案与经编码颗粒(即珠子)有关，然而应理解，所述光照子***、***和方法也可利用其它颗粒例如微米颗粒、金或其它金属的纳米颗粒、量子点或纳米点。所述颗粒优选是超顺磁性的。微球、珠子和颗粒的实例示例于Fulton的美国专利No.5,736,330、Chandler等的美国专利5,981,180、Fulton等的美国专利6,057,107、Chandler等的美国专利6,268,222、Chandler等的美国专利6,449,562、Chandler等的美国专利6,514,295、Chandler等的美国专利6,524,793和Chandler的美国专利6,528,165中，其通过引用并入本文。

经编码颗粒内部或其表面上的染料或荧光染料的激发可通过激光、二极管发光、弧光灯、热、放射性发射、化学发光、电发光、电化学发光或本领域技术人员已知的任何其它方法来实现。

在一些实施方案中，本发明与

和MagPlex^TM技术联用。Luminex xMAP技术允许检测固定于经荧光编码之微球上的核酸产物。通过用两种光谱可区分之荧光染料中每一种的10种不同强度对微球染色，产生了100种荧光不同的微球群。这些个体群(组)可以代表个体检测序列，每组的杂交程度可单独检测。使用第三报告子来测量杂交反应的程度，该报告子通常是又一种光谱可区分的荧光团。所述报告分子指示反应的程度，其通过将分子附着于微球上来实现。因为微球和报告分子均被标记，所以数字信号处理允许将信号转换成每个反应的实时定量数据。Luminex技术描述于例如美国专利5,736,330、5,981,180和6,057,107中，其均通过引用具体并入本文。

MagPlexTM微球是使用上述

技术进行荧光标记的超顺磁性微球。微球包含表面羧基基团用于与配体(和生物分子)共价连接。

F.试剂盒

本发明还提供了试剂盒，其含有用于本文公开的扩增和检测方法的组分。本文公开的任何组分均可合并在试剂盒中。在一些实施方案中，试剂盒包含用于引发多种核酸靶标扩增的多种引物对，以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而由其固定的经编码磁珠便可得知每种探针的身份。在一些实施方案中，试剂盒还包含标记试剂。在一些实施方案中，试剂盒包含不与经编码磁珠结合的探针。在一些实施方案中，试剂盒包含成像腔室，其可以是用于成像***中的一次性成像腔室。

试剂盒的组分可包装在含水介质中或者为冻干形式。试剂盒的容器形式一般包括至少一个小瓶、试管、烧瓶、瓶、注射器或其它容器形式，其中可放置(优选适当地等分)所述组分。当试剂盒中存在多于一种组分时，该试剂盒一般还会包含第二个、第三个或其它额外的容器，其中可分别放置所述另外的组分。然而，各种组分的组合也可容纳于一个小瓶中。本发明的试剂盒还通常包含用于商品销售的将各容器分隔开的单独包装。这样的包装可包括纸板或注射用包装或吹塑塑料包装，其中容纳有所需的小瓶、瓶等。

当试剂盒的组分以一种或多种溶液提供时，所述溶液可以是水溶液，特别优选无菌水溶液。然而，试剂盒中的某些组分可作为干粉来提供。当试剂和/或组分作为干粉提供时，可通过添加合适的溶剂将粉末重溶。可以预想到，溶剂也可在其他容器中提供。

试剂盒还可包含应用试剂盒组分的说明书。说明书可包括能够实现的多种变型。

G.实施例

以下实施例用于展示本发明的一些优选实施方案。本领域技术人员应理解，以下实施例中公开的技术代表了本发明人发现在本发明实践中发挥良好作用的技术，并因此可认为其构成了优选实施方式。然而，根据本公开内容，本领域技术人员应理解，可对已公开的具体实施方案进行多种变化，并仍获得相近的或类似的结果，而不偏离本发明的精神和范围。

1.实施例1：PCR循环条件下磁性微球的稳定性。

本研究证明了Luminex超顺磁性微球在PCR循环条件下的高稳定性。还证明了扩增子可随PCR反应浓度增加而在PCR反应的不同阶段被捕获和检测。本研究还显示，双探针***对于使用磁性微球的实时PCR检测来说是可行的设计。杂交探针(美国2001/6174670)也使用双探针***。

实验设计：使用双探针***来检测凝血因子V基因扩增子的生成，其中存在与靶标特异性核苷酸探针偶联的磁性微球。靶标特异性探针(FV Probe Ano)与珠子组22结合。该探针未经荧光标记。在混合物中包含另一种探针，它不与珠子组结合，而是靶标特异性的并用Cy3荧光团在3’端标记。还加入了与无靶标特异性的寡核苷酸序列偶联的第二种珠子(珠子组27)作为阴性对照。

使用以下试剂及浓度制备PCR混合物：

以优化的非对称浓度使用引物，其中PCR混合物中用于扩增靶序列的引物(FV Rev)的终浓度为400nM，相比之下，正向引物(FVFwd52)的终浓度为50nM。经优化，该反应中的氯化镁浓度要高于本领域技术人员预期的正常浓度。因为没有可加热的检测腔室，所以进行了概念验证(proof-of-concept)实验来获得PCR混合物(不含基因组模板)。该混合物被等分为16等份，每份48μL。将基因组模板加至每个等分试样中，并在PCR反应的不同循环数时将它们从Perkin Elmer9700热循环仪中取出。从热循环仪中取出所述等分试样并且不再向各反应中添加任何试剂后，立即将等分试样置于单独的加热器上95℃30秒，然后是52℃3分钟。然后，不进行进一步的修饰，立即用Luminex 100设备分析所述等分试样。所加入Luminex和Magplex微球组的终浓度为每个反应约5000个微球。

该反应的循环条件如下所述：

热变性步骤：95℃5分钟

循环步骤(43个循环)：95℃30秒，45℃45秒，72℃45秒。

本研究中使用的寡核苷酸序列从IDT订购，如下所示：

引物：

FV Rev：TGTTATCACACTGGTGCTAAAAAGG(SEQ ID NO：1)

FV Fwd52：ACTACAGTGACGTGG(SEQ ID NO：2)

探针：

探针B短：/3Cy3sp/ATAATGGGGCATTTCCTTCAAGAGAACAGTA(SEQ ID NO：3)

FV Probe Ano：

/5AmMC12/TCTGGCTAGAACATGTTAGGTCTCCTGGCT/3InvdT/(SEQ ID NO：4)

AT-29：/5AmMC12/AAAGAAAGGATTTGTAGTAAGATT(SEQ ID NO：5)

莱登凝血因子V的基因组基因序列(gi：2769646和gi：488109)示于图13中。

表1中的数据显示，信号随着PCR反应中循环数增加而增强。数据显示，特异性珠子组(22)的信号增强，而非特异性珠子组(27)的信号未显著增强。此处的信号显示为来自Luminex分析仪的中值荧光强度(Median Fluorescent Intensity，MFI)。通过测量来自约100个单独偶联的磁珠的报告信号并计算中值而获得该MFI。

表1：

表1中的数据图示于图14中。从图14可以看出，珠子组22的曲线形状是典型实时PCR反应所预期的形状。该曲线显示出指示PCR反应的基线期、指数期和平台期。

使用以下实验步骤将珠子与捕获探针偶联：

1.将新的-20℃干燥Pierce EDC粉末等分试样置于室温下。

2.将胺取代的寡核苷酸(“探针”或“捕获”寡聚物)在dH₂O中重悬至1mM(1纳摩尔/μL)。

3.根据与微球一起提供的产品信息页的说明，将储存的未偶联Luminex微球重悬。

4.将5.0×10⁶个储存微球移至USA Scientific微离心管。

5.通过以≥8000×g离心1-2分钟使储存微球沉淀。

6.除去上清液，通过振荡和超声处理约20秒而用50μL的0.1M MES(pH 4.5)重悬沉淀的微球。

7.用dH₂O制备1∶10稀释的1mM捕获寡聚物(0.1纳摩/μL)。

8.添加2μL(0.2纳摩)1∶10稀释的捕获寡聚物来重悬微球，并通过振荡进行混合。

9.用dH₂O制备新的10mg/mL EDC溶液。(注：恢复EDC粉末至干燥状态以在下一次EDC添加时再次利用。)

10.对于每个偶联反应，逐个地向微球中加入2.5μL新的10mg/mL EDC(25μg或约等于终浓度0.5μg/μL)，并通过振荡进行混合。

11.在室温下在暗处孵育30分钟。

12.用dH₂O制备第二份新的10mg/mL EDC溶液。(注意：现在应丢弃EDC粉末等分试样。)

13.对于每个偶联反应，逐个地向微球加入2.5μL新的10mg/mL EDC，并通过振荡进行混合。

14.在室温下在暗处孵育30分钟。

15.向偶联的微球中添加1.0mL 0.02％Tween-20。

16.通过以≥8000×g离心1-2分钟使经偶联微球沉淀。

17.除去上清液，利用振荡用1.0mL的0.1％SDS重悬经偶联微球。

18.通过以≥8000×g离心1-2分钟使经偶联微球沉淀。

19.除去上清液，通过振荡和超声处理约20秒而用100μL的TE(pH8.0)重悬经偶联微球。

20.利用血细胞计数器对经偶联微球进行计数：

a.用dH₂O以1∶100稀释重悬的经偶联微球。

b.利用振荡充分混合。

c.将10μL移至血细胞计数器。

d.对血细胞计数器4角的大格中的微球进行计数。

e.微球数/μL＝(4角大格中微球总数)×2.5×100(稀释系数)。

f.注意：最大值为50,000个微球/μL。

21.在2-8℃下在暗处储存经偶联微球。

2.实施例2：使用带标签的引物进行扩增检测

以下实施例表明，可使用带标签引物法实时测量核酸扩增信号。该实施例还表明，可使用成像***来进行这些测量，所述成像***包含石英成像腔室和磁体，该磁体可移动至接近石英成像腔室，以用磁力将超顺磁性颗粒拉至该腔室的二维表面上电荷耦合器件(CCD)检测器的对侧(参见例如图1和图2)，其中存在聚合酶链式反应溶液但不对其进行改动，其测量结果与Luminex 200***相当。包含石英腔室和磁体的成像***可认为是“静态”成像***，这是因为检测器在颗粒和与其结合的任何分子通过磁场固定于腔室表面时对它们进行成像。相反地，Luminex 200***可认为是“流动”***，这是因为在检测期间颗粒不是固定的。

实验设计：

在该设计中，使用了两种引物，其中一种引物在其5’端用Cy3荧光团修饰。另一引物用位于靶标特异性区域与标签序列之间的C18间隔物进行修饰，所述标签序列与结合于超顺磁性微球的特异性探针(抗标签)序列互补。在这种情形中，引物LUA-MEU在C18间隔物(iSp18-IDT)的5’侧含有标签序列，该标签序列与偶联至珠子组43的Bead ME tf探针序列互补。在本研究中，所述引物组被设计成扩增MTHFR外显子7基因序列中的区域。在PCR反应期间，PCR混合物中包含两个Luminex MagPlex微球组(珠子组)。与珠子组43结合的探针与引物LUA-MEU-TF上的5’标签序列互补，但是偶联至珠子组12的探针不与本反应中该引物的标签序列互补，因此其用作阴性对照。所添加的Luminex Magplex微球组的浓度均为每个反应约5000个微球。

使用以下浓度和试剂来制备PCR混合物：

该反应的循环条件如下：

热变性步骤：95℃，5分钟。

循环步骤(36个循环)：94℃，30秒；55℃，30秒；72℃，30秒。

该实验中使用的寡核苷酸序列从IDT定购，如下所示：

引物：

LUA-MEU-TF：

CAAACAAACATTCAAATATCAATC/iSp18/CAAGGAGGAGCTGCTGAAGAT

G(SEQ ID NO：16)

LUA-MED-TF：

/5Cy3/CACTTTGTGACCATTCCGGTTTG(SEQ ID NO：17)

探针：

珠子组43：Bead ME tf：

/5AmMC12/GATTGATATTTGAATGTTTGTTTG(SEQ ID NO：18)

珠子组12：W12822：

/5AmMC12/CAA CAG TGG AGG AAA GCC/3InvdT/(SEQ ID NO：19)

靶序列：

MTHFR外显子7(MRE7)[gi：17444393]112bp

GGAGGAGCTGCTGAAGATGTGGGGGGAGGAGCTCACCAGTGAAG

AAGTGTCTTTGAAGTCTTTGTTCT

TCCTCCTCGACGACTTCTACACCCCCCTCCTCGAGTGGTCACTTC

TTCACAGAAACTTCAGAAACA

AGAATACCTCTCGGGAGAACCAAACCGGAATGGTCACAAAGTGA(SEQ ID NO：20)

在本实验中，引物浓度和氯化镁浓度不需要进行优化。这是由于扩增引物设计的性质所致，其中扩增产物含有对应于标签系列的单链突出端。C18间隔物阻止了聚合酶的延伸，从而使与珠子组43上探针互补的标签序列无法作为模板用于第二链合成。因此，扩增产物5’端的单链标签序列能够与探针杂交，而不会发生直接杂交模型中出现的来自反向互补链的竞争。

在本研究中，制备过量的无模板PCR混合物并等分到32个单独的PCR管中，每管50μL体积。该PCR混合物包含两组LuminexMagPlex微球。一经混合和等分后，将16个PCR反应物与基因组DNA混合，并且16管无模板(no template，nt)的反应物用作阴性PCR对照。使用Luminex LX200设备对8个阳性样品和8个阴性样品进行分析。另外，使用上述“静态”成像设备对8个阳性样品和8个阴性样品进行分析。对于每一组8个样品的情况，都在PCR反应的不同阶段将各个样品从热循环仪取出。在以下循环数时将这些样品从热循环仪取出：0、5、10、15、20、25、30、35。暂时将该反应物在室温下保存在暗处，直至热循环完成。

然后，将样品置于95℃加热器中1分钟，然后是37℃10分钟。

同时，也对这些样品进行Reliant Gel System凝胶(货号No.54929)测定以查看扩增特异性。

来自“静态”成像设备的术语示于表2中：

表2

对于“静态”成像设备来说，将每种样品分派到石英成像腔室中，经编码磁珠被拉至腔室背面并在分析期间保持不动。该数据显示了来自报告分子波长的代表性中值。两种珠子组可以使用分类波长来划分。注意到珠子组43中在第30循环和第35循环时信号增加。这种信号增加在扩增大小和强度方面与凝胶数据相对应。

使用与利用“静态”成像设备分析相同的样品条件(表2)，从Luminex 200设备得到的数据(表3)。

表3

该数据在扩增大小和强度方面与凝胶数据相对应。使用“静态”成像***形式也显示出类似的信号增加模式。

3.实施例3：八重反应

在本实施例中，利用8组引物和14个珠子组来实施直接杂交法。使用了过量的珠子组以显示扩增产物不与含有无关探针的珠子组发生非特异性杂交。

制备含有以下试剂的PCR混合物：

表4

将该混合物(包含Luminex MagPlex微球以及与其结合的探针序列)等分至40只PCR管中，每管50μL。然后，向20个反应物中分别添加约100ng的基因组DNA。这些反应利用BioRad iCycler热循环仪进行循环。引物被设计成扩增囊性纤维化CFTR基因的特定区域。该反应中使用的8组引物中每一组的引物序列示于图5，其中还包括每个50μL反应中的终浓度。

表5：引物组成

该反应的循环条件如下：

热变性步骤：95℃，10分钟。

循环步骤(36个循环)：94℃，30秒；56℃，90秒；72℃，90秒。

在PCR反应期间的不同循环数时取出各个PCR样品。这些管在其各自所述循环数的56℃步骤期间被取出。“无模板”和“有模板”样品在以下循环数时同时取出：5、8、12、16、20、24、28、30、36以及又一次36。将这些从热循环仪取出的样品在室温下保持在暗处，直至所有36个循环结束。不对样品进行添加试剂的任何进一步改动，将这些样品在95℃加热1分钟，然后在44℃孵育15分钟，然后利用Luminex200设备以及利用上述“静态”成像***进行分析。尽管尚没有可加热的检测腔室，但是本实验的设计显示，如果本文所述的一般步骤适于在能进行热循环的检测腔室中分析的话，则有可能实时进行该反应。

反应中使用的珠子组以及与其偶联的探针示于表6。

表6：

该实验中使用的囊性纤维化基因序列(SEQ ID NO：8-15)在图15中给出。反应结果通过凝胶分析进行验证。

使用Luminex 200设备在44℃下收集数据。所收集的数据示于表7。所有数值可与噪声区分的含模板样品在表7中用阴影表示。可使用本领域技术人员已知的另外的优化技术来改进反应条件以及进一步提高信噪比。预计其MFI值对扩增子来说为靶标特异性的珠子组在趋进反应结束时高于干扰信号。而预计其探针为非特异性或阴性的珠子组则不然。

表7

在44℃下使用“静态”成像***收集数据。使用“静态”成像***收集的净数据示于表8。所有数值可与噪声区分的阳性样品在表8中高亮显示。用于获得表8的“静态”成像***原始数据示于表9。表8如下计算：对所有循环数，计算无模板样品的所有珠子组中数据点的MFI平均值，从所有数据点中减去该平均值。当所述计算的所得总和为负数时，所有负数转化为0。一些较低的循环数中包含假性值，可认为其是离群值。

表8

用于获得表8的“静态”成像***原始数据示于表9。

表9

根据本公开内容，本文公开和要求保护的所有组合物和方法无需过度实验就可制备和实施。尽管本发明的组合物和方法通过一些实施方案进行了描述，然而对于本领域技术人员来说显然的是，在不背离本发明构思、精神和范围的前提下，可对本文所述的组合物和方法以及所述方法的步骤或步骤次序进行改动。更具体地，很明显，可用本文所述的试剂来替换一些在化学和生理上相关的试剂，而实现同样的或近似的结果。所有这些对本领域技术人员来说很明显的类似替代方案和改变均视为在由所附权利要求限定的本发明的精神、范围和构思内。

以下内容对应于母案申请的原始权利要求书：

1.一种扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：

(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、标记试剂以及与所述多种核酸靶标互补的多种第一探针，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而通过固定每种探针的经编码磁珠来获知该探针的身份；

(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的经标记扩增产物；

(c)将经标记的扩增产物与固定于经编码磁珠上的所述探针进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，用以将所述经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的经标记扩增产物吸引至所述腔室表面；

(e)检测来自所述经编码磁珠的信号以及来自所述经标记扩增产物的信号；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，之后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中该样品中的所述多种核酸靶标被扩增和检测。

2.项1的方法，其还包括将来自所述经标记扩增产物的信号与样品中核酸靶标的浓度相关联。

3.项1的方法，其中所述多种引物对进一步限定为8～500种不同的引物对。

4.项1的方法，其中所述标记试剂与每个引物对中的一种引物结合。

5.项1的方法，其中所述腔室是石英腔室。

6.项1的方法，其中所述标记试剂是荧光染料。

7.项1的方法，其中所述标记试剂是荧光共振能转移对。

8.项1的方法，其还包括在所述腔室中合并与所述多种核酸靶标互补的多种第二探针，其中所述多种第二探针不固定在所述多种经编码磁珠上，并且其中所述多种第二探针和所述多种第一探针与所述多种核酸靶标上的不同区域互补。

9.项8的方法，其中将荧光共振能转移对的一个成员与固定于所述经编码磁珠上的所述多种第一探针结合，而将该荧光共振能转移对的另一成员与不固定于所述经编码磁珠上的所述多种第二探针结合。

10.项1的方法，其中所述标记试剂是成对的荧光团和猝灭剂。

11.项1的方法，其中所述标记试剂是DNA嵌入剂。

12.项1的方法，其中所述经编码磁珠用荧光染料进行编码。

13.项12的方法，其中所述经编码磁珠用不同的荧光强度进行编码。

14.项12的方法，其中所述经编码磁珠用不同的荧光发射波长进行编码。

15.项1的方法，其中所述经编码磁珠是超顺磁性的。

16.项1的方法，其中施加所述磁场包括将永磁体置于所述腔室表面附近。

17.项1的方法，其中施加所述磁场包括开启所述腔室表面附近的电磁体。

18.项1的方法，其中在扩增循环中的引物退火阶段施加所述磁场。

19.项1的方法，其中在扩增循环中的引物延伸阶段施加所述磁场。

20.项1的方法，其中在扩增循环之后施加所述磁场。

21.项1的方法，其中对所述经编码磁珠和经标记扩增产物的检测包括对从所述经编码磁珠和经标记扩增产物发出的荧光波长进行成像。

22.项1的方法，其中撤走所述磁场包括将永磁体从所述腔室表面附近的位置移开。

23.项1的方法，其中撤走所述磁场包括将所述腔室表面附近的电磁体关闭。

24.项1的方法，其中步骤(b)至(f)被重复10～40次。

25.项1的方法，其中所述多种探针包含经封闭的3’羟基。

26.项25的方法，其中所述3’羟基用磷酸基封闭。

27.项25的方法，其中所述3’羟基用3’反向dT封闭。

28.一种扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：

(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种分子信标，其中所述分子信标固定于多种经编码磁珠上，从而通过固定每种分子信标的经编码磁珠来获知该分子信标的身份；

(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；

(c)将所述扩增产物与固定于经编码磁珠上的分子信标进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，以将所述经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之分子信标杂交的扩增产物吸引至腔室表面；

(e)检测来自所述经编码磁珠的信号以及来自所述分子信标的信号；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中该样品中的所述多种核酸靶标被扩增和检测。

29.一种扩增和检测样品中核酸靶标的方法，该方法包括：

(a)在腔室中合并含有该核酸靶标的样品、用于引发所述核酸靶标扩增的引物对以及与所述核酸靶标互补的探针组，其中所述探针组包含固定于磁珠上的第一探针和含有标记的第二探针；

(b)进行扩增循环，以形成用所述引物对扩增的所述核酸靶标的扩增产物；

(c)将所述扩增产物与所述探针组进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，以将所述磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；

(e)检测来自与扩增产物杂交的所述第二探针的信号；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中该样品中的所述核酸靶标被扩增和检测。

30.项29的方法，其中所述磁珠是经编码的磁珠。

31.项29的方法，其进一步限定为包括以下步骤的扩增和检测多种核酸靶标的方法：

(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针组，其中每个探针组包含第一探针和含有标记的第二探针，所述第一探针固定于经编码磁珠上，从而通过固定所述第一探针的经编码磁珠来获知该第一探针的身份；

(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的扩增产物；

(c)将所述扩增产物与所述探针组进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，以将所述经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；

(e)检测来自所述经编码磁珠的信号和来自与所述扩增产物杂交的所述第二探针的信号；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中该样品中的所述多种核酸靶标被扩增和检测。

32.一种扩增和检测样品中核酸靶标的方法，该方法包括：

(a)在腔室中合并含有该核酸靶标的样品、用于引发所述核酸靶标扩增的引物对、与猝灭剂分子偶联的dNTP以及与所述核酸靶标互补的荧光标记探针，其中所述探针被固定于磁珠上；

(b)进行扩增循环，以形成所述核酸靶标的扩增产物，所述扩增产物包含猝灭剂分子；

(c)将所述扩增产物与固定于所述磁珠上的探针进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，以将所述磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；

(e)检测来自经标记探针的信号，其中所述经标记探针信号的减弱指示了所述经标记探针与含有猝灭剂分子之扩增产物之间的杂交；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中该样品中的所述核酸靶标被扩增和检测。

33.项32的方法，其中所述磁珠是经编码磁珠。

34.项32的方法，其进一步限定为包括以下步骤的扩增和检测多种核酸靶标的方法：

(a)在所述腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、与猝灭剂分子偶联的dNTP以及与所述多种核酸靶标互补的多种荧光标记探针，其中所述探针被固定于多种经编码磁珠上，从而通过固定每种探针的经编码磁珠来获知该探针的身份；

(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的包含猝灭剂分子的扩增产物；

(c)将所述扩增产物与固定于所述经编码磁珠上的探针进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，以将所述经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的扩增产物吸引至腔室表面；

(e)检测来自所述经编码磁珠的信号以及来自所述经标记探针的信号，其中所述经标记探针信号的减弱指示了所述经标记探针与含有猝灭剂分子之扩增产物之间的杂交；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中该样品中的所述多种核酸靶标被扩增和检测。

35.一种扩增和检测样品中多种核酸靶标的方法，该方法包括：

(a)在腔室中合并含有多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、标记试剂以及多种探针，其中每种引物对包含第一引物和第二引物，所述第一引物含有靶标特异性序列、该靶标特异性序列5’的标签序列以及所述靶标特异性序列与所述标签序列之间的间隔区，所述第二引物含有靶标特异性序列，所述探针与所述多种引物对中的标签序列互补，其中所述探针固定于多种经编码磁珠上，从而可以通过固定每种探针的经编码磁珠来获知该探针的身份；

(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标中每一种的带标签的经标记扩增产物；

(c)将所述带标签的经标记扩增产物与所述固定于经编码磁珠的探针进行杂交；

(d)向腔室表面施加磁场，以将经编码磁珠和与固定于该经编码磁珠上之探针杂交的带标签的经标记扩增产物吸引至腔室表面；

(e)检测所述经编码磁珠以及所述带标签的经标记扩增产物；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，然后进行下一扩增循环；以及

(g)重复步骤(b)至(f)至少一次；

其中扩增和检测该样品中的多种所述核酸靶标。

36.项35的方法，其中所述标记试剂是与所述引物对中第二引物结合的报告分子。

37.项35的方法，其中所述标记试剂是嵌入染料。

参考文献

以下参考文献明确地通过引用并入本文，其程度为它们提供示例性步骤或其它细节用于补充本文所述内容。

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Claims (29)

1.一种定量样品中核酸靶标的量的方法，该方法包括：

(a)在腔室中合并含有所述核酸靶标的样品、用于引发所述核酸靶标扩增的引物对、标记试剂以及与所述核酸靶标互补的探针，其中所述探针固定于磁珠上；

(b)进行扩增循环，以形成用所述引物对扩增的所述核酸靶标的扩增产物；

(c)将所述扩增产物与所述探针组进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加磁场，用以将所述磁珠、与固定于该磁珠上之探针杂交的所述扩增产物以及与所述扩增产物缔合的任何标记试剂吸引至所述腔室表面；

(e)检测来自所述标记试剂的信号；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，之后进行下一扩增循环；

(g)重复步骤(b)至(f)至少直到所述信号能区别于背景噪声；以及

(h)通过将所述信号与所述样品中核酸靶标的量建立关联来定量该样品中核酸靶标的量。

2.权利要求1的方法，其中定量所述样品中核酸靶标的量包括确定所述核酸靶标的绝对量。

3.权利要求1的方法，其中定量所述样品中核酸靶标的量包括确定所述核酸靶标的相对量。

4.权利要求1的方法，其中将所述信号与所述样品中核酸靶标的量建立关联包括：

(a)将所述信号对扩增循环数作图；以及

(b)将所述信号对扩增循环数的图与标准曲线进行比较，该标准曲线通过已知量之所述核酸靶标的连续稀释的实时PCR得到。

5.权利要求1的方法，其中所述信号是荧光信号。

6.权利要求5的方法，其还包括测定来自多个所述磁珠的荧光信号的中值荧光强度(MFI)。

7.权利要求6的方法，其包括测定来自约100个所述磁珠的荧光信号的MFI。

8.权利要求1的方法，其中所述磁珠是经编码磁珠。

9.权利要求8的方法，其中所述经编码磁珠用具有不同发射波长或不同荧光强度或兼具二者的荧光染料进行编码。

10.权利要求8的方法，其还包括检测来自经所述荧光染料编码之磁珠的荧光信号。

11.权利要求8的方法，其还包括在所述腔室中合并阴性对照磁珠。

12.权利要求11的方法，其还包括测定来自多个所述经编码磁珠的荧光信号的中值荧光强度(MFI)；以及测定来自多个所述阴性对照珠的荧光信号的中值荧光强度(MFI)。

13.权利要求12的方法，其进一步从所述经编码磁珠的MFI减去所述阴性对照珠的MFI。

14.权利要求1的方法，其中所述磁珠是超顺磁性的。

15.权利要求1的方法，其中步骤(b)至(f)被重复10～40次。

16.权利要求1的方法，其中所述探针包含经封闭的3’羟基。

17.权利要求1的方法，其中所述标记试剂与固定于所述磁珠上的所述探针结合。

18.权利要求17的方法，其中所述探针是分子信标探针。

19.权利要求1的方法，其中所述标记试剂与互补于所述核酸靶标的第二探针结合，其中所述第二探针不固定在所述磁珠上，并且其中所述第二探针和所述经固定探针与所述核酸靶标上的不同区域互补。

20.权利要求1的方法，其中所述标记试剂与所述引物对中的一种引物结合。

21.权利要求1的方法，其中所述标记试剂是荧光团。

22.权利要求1的方法，其中所述标记试剂是成对的荧光团和猝灭剂。

23.权利要求1的方法，其中所述标记试剂是荧光共振能转移对。

24.权利要求1的方法，其中所述标记试剂是DNA嵌入剂。

25.权利要求1的方法，其中所述样品包含多种核酸靶标。

26.权利要求25的方法，其还包括：

(a)在所述腔室中合并含有所述多种核酸靶标的样品、用于引发所述多种核酸靶标扩增的多种引物对、标记试剂以及与所述多种核酸靶标互补的多种探针，其中所述多种探针中的每一种固定于经编码磁珠上，从而通过固定每种探针的经编码磁珠来获知该探针的身份；

(b)进行扩增循环，以形成用所述多种引物对扩增的所述多种核酸靶标之多种扩增产物；

(c)将所述多种扩增产物与所述多种探针组进行杂交；

(d)向所述腔室表面施加所述磁场，以将所述经编码磁珠、所述多种扩增产物以及与所述扩增产物缔合的任何标记试剂吸引至腔室表面；

(e)检测来自所述经编码磁珠的信号和来自所述标记试剂的信号；

(f)从所述腔室表面撤走磁场，之后进行下一扩增循环；

(g)重复步骤(b)至(f)至少直到来自所述标记试剂的信号高于背景噪声；以及

(h)通过将来自所述标记试剂的信号与所述样品中多种核酸靶标的量建立关联来定量该样品中多种核酸靶标的量。

27.权利要求26的方法，其中所述经编码磁珠用不同的荧光强度进行编码或者用不同的荧光发射波长进行编码或者用上述两者进行编码。

28.权利要求26的方法，其中所述检测包括检测来自所述经编码磁珠的第一和第二荧光信号以及来自所述标记试剂的第三荧光信号。

29.权利要求26的方法，其中所述多种引物对进一步限定为8～500种不同的引物对。

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