CN101451113B - 一种需钠弧菌及采用该菌生产琼胶酶的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种能生产琼胶酶的新型微生物需钠弧菌(Vibrionatriegens)CGMCC No.2428以及该菌生产琼胶酶的方法。该菌分离自东海沉积物,属于革兰氏阴性菌,好氧生长,最适生长NaCl浓度为5-10g/L,最适生长pH值为7.5,能利用酵母膏、葡萄糖、蔗糖、麦芽糖等多种糖类作为能源与碳源生长,经鉴定该菌属于Vibrio natriegens。V.natriegens CGMCC No.2428生长周期短,7h就达对数生长期,该菌能诱导表达琼胶酶,通过简单的分离方法,可从培养液中收集琼胶酶。本发明提供的琼胶酶制备工艺简单,成本低廉,大量快速,可运用于工业生产或医药领域,以产生琼胶低聚糖。
Description
技术领域
本发明涉及保藏号为CGMCC No.2428的新微生物,保藏日期为2008年4月1日,分类命名为弧菌(Vibrio),后鉴定为需钠弧菌(Vibrio natriegens),本发明还涉及该菌株生产琼胶酶的方法。
背景技术
琼胶是某些海藻细胞壁中的一种水溶性多糖,由琼脂糖和琼脂胶组成。琼脂胶主要由含硫酸基、甲基等取代基团、结构复杂的多糖链构成。琼脂糖是由(1→3)-O-β-D-半乳糖和(1→4)-O-3,6-内醚-α-L-半乳糖交替组成的线形链状分子。
琼胶酶是一种降解琼脂糖的糖基水解酶,产酶菌多为海洋细菌。通过查阅资料、文献检索所知,Alterococcus、Alteromonas、Bacillus、Cytophaga、Microscilla、Microbulbifer、Pseudoalteromonas、Pseudomonas、Streptomyces、Zobellia等属中的某些菌株可产生琼胶酶,中国专利200410023656.1报道了一种从我国南海海域分离的生产琼胶酶的新菌种Alteromonas sp.nov.SY37-12(CCTCCM204009)。
琼胶酶水解海藻产生的寡糖往往具有抗肿瘤、抗病毒、增强免疫等性质,可作为手性药物拆分剂应用于生物医药领域,推动生物催化和生物转化的产业化工作。海洋中藻类含量极其丰富,将是未来人类食品有效来源之一,琼胶酶水解海藻产生的低聚糖用于生物质能源和食品,对于实现能源多样化,缓解能源危机,提高已有资源的利用价值,具有重大的作用,并将对传统能源和食品行业产生深远影响。此外,琼胶酶还可作为分子生物学的报告基因和多糖结构测定的工具酶、海产养殖的酶制剂等。可见,琼胶酶作为手性药物拆分剂、生物活性物质生产剂、风味改进剂,可广泛应用于生物医药、食品化工、海产养殖等领域。
发明内容
本发明的一个目的是提供一种能生产具有高酶活性琼胶酶的菌株。
本发明的菌株是从自然环境中分离出来的新菌株,以往也没有需钠弧菌(Vibrio natriegens或简写为V.natriegens)生产琼胶酶的报道。制备琼胶酶的需钠弧菌(V.natriegens)分离自东海沉积物,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,菌种保藏号为CGMCC No.2428。
经形态鉴定及生物学特性研究,保藏号为CGMCC No.2428的菌株具有以下特征:
(1)菌落形态:菌落呈圆形,表面光滑,边缘平整,凸起,乳白色。
(2)细胞形态:革兰氏阴性菌,细胞显微镜下(Olympus,BX40)呈现运动性,形态为杆状居多(2-3μm×0.4-0.6μm)。
(3)生理生化特征:好氧生长,氧化酶、接触酶阳性,吲哚反应阴性,不水解淀粉、酪素、纤维素,能利用酵母膏、葡萄糖、***糖、蔗糖、麦芽糖,不能利用木聚糖、乳糖、山梨醇,对庆大霉素、氯霉素敏感。
对保藏号为CGMCC No.2428的菌株的16S rRNA基因进行PCR扩增与序列测定,发现16S rRNA基因部分片断长度为532bp,与已知需钠弧菌(V.natriegens)的16S rRNA基因序列相似性为99.4%。菌株V.natriegens CGMCC No.2428的16S rRNA序列具体可见序列表。
因此,参照《Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology》第二版第二卷的内容,根据菌株的限制因子特点、形态特征和生理生化指标,结合16S rRNA基因序列相似性,鉴定菌株CGMCC No.2428为需钠弧菌(V.natriegens)。
本发明的另一个目的是提供一种采用CGMCC No.2428生产琼胶酶的方法,包括以下步骤:
(1)将需钠弧菌(CGMCC No.2428)接种至发酵培养基中,20—37℃培养5-10小时;
(2)往发酵培养基中加入无菌琼脂糖诱导培养15-25小时;
(3)发酵培养基经高速离心,上清液经过微孔滤膜后,旋转蒸发至干,即得琼胶酶。
上述方法步骤(1)中,需钠弧菌可接种于pH值为6.5-8.5(优选7.5)的发酵培养基中,在20-37℃(优选30-35℃)温度下培养5-10小时(优选7小时),使菌株V.natriegens CGMCC No.2428达到对数生长期。所述的发酵培养基组成如下:氯化钠5-10g/L,水合氯化镁2-6g/L,氯化钾0.5-2.5g/L,胰蛋白胨5-20g/L,其余为水,pH为6.5-8.5(优选7.5)。
上述方法步骤(2)中,需加入无菌琼脂糖诱导菌株表达琼脂酶。往培养基中加入加入无菌琼脂糖至终浓度0.05-5g/L(优选为1g/L),150-250(优选180)rpm培养3-6h后,转速下调至50-100rpm(优选80rpm)再培养15-25h(优选18h),得到需钠弧菌(V.natriegens)的富集培养液。
上述方法步骤(3)中,将步骤(2)中的富集培养液高速离心,例如5000-10000rpm离心5-10min,经离心获得的上清液中含有琼胶酶。上清液通过0.22μm孔径的微孔滤膜后,旋转蒸发至干,即为V.natriegens CGMCC No.2428琼胶酶,4℃低温保藏备用。
本发明发现的V.natriegens CGMCC No.2428生长周期短,7h就达对数生长期,该菌能诱导表达琼胶酶,诱导表达时间为17-22h。通过简单的分离方法,可从培养液中收集高活性的琼胶酶。本发明提供的琼胶酶制备工艺简单,成本低廉,大量快速,适合运用于工业生产或医药领域,以生产琼胶低聚糖广泛应用于生物医药、食品化工、海产养殖等领域。
附图说明
图1为V.natriegens CGMCC No.2428生长曲线图;
图2为不同琼脂糖诱导条件下V.natriegens CGMCC No.2428琼胶酶酶活力曲线图;
图3为不同培养时间条件下V.natriegens CGMCC No.2428琼胶酶酶活力曲线图
具体实施方式
实施例1:需钠弧菌(Vibrio natriegens)CGMCC No.2428的分离筛选
将采自我国东海沉积物样品2g放在50ml含玻璃珠的过滤除菌陈海水中,振荡打散,取上清液过滤除菌陈海水梯度稀释后涂布筛选培养基平板,37℃培养7天左右,观察结果。菌落周围形成凹陷的菌株挑选保藏,经卢戈氏碘液鉴定,菌落周围形成透明圈者为产酶菌株。将筛选获得的菌株接种液体筛选培养基,测定发酵液的琼胶酶活力,筛选出一株产琼胶酶菌株,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,菌种保藏号为CGMCCNo.2428。菌株筛选培养基(g/L):氯化钠19.45,氯化镁8.8,氯化钙1.8,氯化钾0.55,碳酸氢钠0.16,柠檬酸铁0.1,溴化钾0.08,氯化锶0.034,硼酸0.022,磷酸氢钠0.008,硅酸钠0.004,氟化钠0.0024,硝酸铵0.0016,酵母抽提物5.0,蛋白胨1.0,pH7.4,其余为水。
实施例2:需钠弧菌(V.natriegens)CGMCC No.2428的形态鉴定及生物学特性
V.natriegens CGMCC No.2428接种于发酵培养基(DSMZmedium308),培养基组成如下(g/L):氯化钠5.0,水合氯化镁4.0,氯化钾1.0,胰蛋白胨10.0,pH7.5,其余为水。制备固体培养基可再加入20g/L的琼脂。121℃灭菌30分钟。接种培养后,经鉴定,该菌具有以下特征:(1)菌落形态:菌落呈圆形,表面光滑,边缘平整,凸起,乳白色。(2)细胞形态:革兰氏阴性菌,细胞显微镜下(Olympus,BX40)呈现运动性,形态为杆状居多(2-3μm×0.4-0.6μm)。(3)生理生化特征:好氧生长,氧化酶、接触酶阳性,吲哚反应阴性,不水解淀粉、酪素、纤维素,能利用酵母膏、葡萄糖、***糖、蔗糖、麦芽糖,不能利用木聚糖、乳糖、山梨醇,对庆大霉素、氯霉素敏感。
实施例3:需钠弧菌(V.natriegens)CGMCC No.2428的16SrRNA基因的PCR扩增与序列测定
V.natriegens CGMCC No.2428接种于固体发酵培养基,从斜面中直接挑取一环菌体,加入400μL无菌水混匀,100℃水浴5分钟,12000rpm离心2分钟,上清直接用于PCR。扩增16S rRNA基因的一对通用引物如下:
正向引物:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′;
反向引物:5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′;
上述引物分别对应大肠杆菌的16S rRNA基因的8—27和1510—1492位碱基。PCR反应体系(50μL)为:10×buffer 5μL,10mMdNTPs1μL,4mM引物各1μL,ddH2O 42μL,Taq酶0.5μL,模板DNA0.5μL。PCR反应条件为:94℃变性45s;55℃退火45s;72℃延伸90s,30个循环后72℃延伸10min。PCR产物纯化与序列测定由北京诺赛基因组研究中心有限公司完成。完成测定的16S rRNA基因部分片断长度为532bp,与菌株V.natriegens ATCC14048T的相关序列相似性为99.4%。菌株V.natriegens CGMCC No.2428的16S rRNA序列具体可见序列表。
因此,参照《Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology》第二版第二卷的内容,根据菌株的限制因子特点、形态特征和生理生化指标,结合16S rRNA基因序列相似性,鉴定菌株CGMCC No.2428为需钠弧菌(V.natriegens)。
实施例4:需钠弧菌(V.natriegens)CGMCC No.2428琼胶酶发酵生产条件
V.natriegens CGMCC No.2428接种于发酵培养基(DSMZmedium 308),其生长范围与最佳生长条件如下:NaCl浓度范围为1-100g/L,最适为5-10g/L;生长pH值范围为6.5—8.5,最适为7.5;生长温度范围为20—37℃,最适为30—35℃。V.natriegensCGMCC No.2428接种于DSMZ medium 308培养基35℃培养7小时可至对数生长期(图1)。
琼脂糖是琼胶酶的诱导剂。将不同浓度的无菌琼脂糖(0、0.05、0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0g/L)加入处于对数生长期的菌液中,180rpm培养4h后,转速下调至80rpm继续培养24h。还原糖浓度测定根据3,5-二硝基水杨酸(DNS)比色法,具体描述如下:培养液经5000rpm离心10min,直接取200μl上清液加入等体积的反应底物溶液(琼脂糖2.0g/L、氯化钠5.0g/L、Tris-HCl 50mM,pH7.5),溶液充分混匀后55℃反应30min,再加入300μl DNS溶液沸水浴显色7min。溶液2000rpm离心5min后取上清500μl稀释至2.5ml,静至1min后测定光吸收值(OD540)。定义酶活力单位(U)为:每分钟释放1μmol还原糖所需要的酶量。V.natriegensCGMCC No.2428在不同琼脂糖诱导条件下的酶活力大小见图2,琼脂糖浓度为5g/L条件下,V.natriegens CGMCC No.2428琼胶酶产量优于其他试验条件;琼脂糖浓度为1g/L条件下,V.natriegensCGMCC No.2428琼胶酶产量可达10.3U/ml。
将无菌琼脂糖加入处于对数生长期的菌液中,至琼脂糖浓度为1g/L和5g/L,180rpm培养4h后,转速下调至80rpm继续培养。每隔4-8h取样,测定上清液中琼胶酶酶活大小(图3)。琼脂糖诱导表达17-22h,V.natriegens CGMCC No.2428琼胶酶产量即可达到最大值,为17-20U/ml。
实施例5:需钠弧菌(Vibrio natriegens)CGMCC No.2428琼胶酶制备
对数生长期的V.natriegens CGMCC No.2428菌液中加入无菌琼脂糖至终浓度1g/L,180rpm培养4h后,转速下调至80rpm培养18h。溶液5000rpm离心10min,上清液通过0.22μm孔径的微孔滤膜后,40-45℃旋转蒸发至干,即为V.natriegens CGMCCNo.2428琼胶酶,4℃低温保藏备用。使用过程中,采用Tris-HCl-NaCl溶液(氯化钠5.0g/L、Tris-HCl50mM,pH=7.5)溶解,加至琼脂糖溶液混匀后55℃温浴12-24h,即可产生琼胶低聚糖。
序列表
<110>国家***第二海洋研究所
<120>一种需钠弧菌及采用该菌生产琼胶酶的方法
<160>1
<170>PatentIn version3.3
<210>Seq ID No.1
<211>532
<212>DNA
<213>Vibrio natriegens
<400>Seq ID No.1
Claims (10)
1.一种需钠弧菌(Vibrio natriegens),菌种保藏号为CGMCCNo.2428。
2.根据权利要求1所述的需钠弧菌(Vibrio natriegens),其特征在于:所述需钠弧菌(Vibrio natriegens)的16S rRNA序列如Seq ID NO.1所示。
3.一种利用权利要求1所述的需钠弧菌(Vibrio natriegens)制备琼胶酶的方法,包括如下步骤:
(1)将需钠弧菌CGMCC No.2428接种至发酵培养基中,20-37℃培养5-10小时;
(2)往发酵培养基中加入无菌琼脂糖诱导培养15-25小时;
(3)发酵培养基经高速离心,上清液经过微孔滤膜后,旋转蒸发至干,即得琼胶酶。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(1)中的发酵培养基包括如下成分:氯化钠5-10g/L,水合氯化镁2-6g/L,氯化钾0.5-2.5g/L,胰蛋白胨5-20g/L,其余为水,pH为6.5-8.5。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于:所述步骤(1)中的发酵培养基包括如下成分:氯化钠5g/L,水合氯化镁4g/L,氯化钾1g/L,胰蛋白胨10g/L,其余为水,pH为7.5。
6.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(1)中的培养温度为30-35℃。
7.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(2)中往发酵培养基中加入无菌琼脂糖至终浓度0.05-5g/L。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述步骤(2)的过程为:培养基中加入无菌琼脂糖至终浓度0.05-5g/L,150-250rpm培养3-6h后,转速下调至50-100rpm,再培养15-18h,得到需钠弧菌(V.natriegens)的富集培养液。
9.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(3)中的离心速度为5000-10000rpm。
10.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(3)中的微孔滤膜孔径为0.22μm。
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104611312A (zh) * | 2015-02-16 | 2015-05-13 | 集美大学 | 一种需钠弧菌发酵生产琼胶酶的培养基及其发酵方法 |
CN105087427A (zh) * | 2015-07-06 | 2015-11-25 | 华侨大学 | 产琼胶酶的需钠弧菌及其应用 |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101955895B (zh) * | 2010-02-09 | 2012-05-23 | 浙江工业大学 | 玫瑰杆菌及其在制备琼胶寡糖中的应用 |
CN101845447B (zh) * | 2010-04-22 | 2012-04-04 | 国家***第二海洋研究所 | 一种β-琼胶酶编码基因及基因获取方法 |
CN102559547B (zh) * | 2011-12-22 | 2013-06-05 | 浙江工业大学 | 产琼脂酶的类芽孢杆菌及其应用 |
CN103865850B (zh) * | 2014-03-14 | 2015-11-18 | 福建农林大学 | 一株蝙蝠弧菌及制备琼胶酶的方法 |
CN104651430A (zh) * | 2015-02-13 | 2015-05-27 | 集美大学 | 一种固定化琼胶酶制备琼胶寡糖的方法 |
CN105420142B (zh) * | 2015-10-13 | 2018-11-09 | 中国海洋大学 | 一种来源于海洋生物的细菌Pseudoalteromonas.sp.QJ97及用其生产琼胶酶的方法 |
CN106467901A (zh) * | 2015-12-01 | 2017-03-01 | 华南理工大学 | 一种产琼胶酶、淀粉酶和木聚糖酶的纤维弧菌 |
CN111826297A (zh) * | 2019-04-18 | 2020-10-27 | 新乡医学院 | 一种产琼胶酶菌株的选育方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0743363A2 (en) * | 1995-04-27 | 1996-11-20 | Kabushiki Kaisha Yakult Honsha | Novel beta-agrase and microorganism generating the same |
CN1560226A (zh) * | 2004-03-02 | 2005-01-05 | 中国海洋大学 | 用Alteromonas sp.nov.SY37-12菌株生产琼胶酶 |
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Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0743363A2 (en) * | 1995-04-27 | 1996-11-20 | Kabushiki Kaisha Yakult Honsha | Novel beta-agrase and microorganism generating the same |
CN1560226A (zh) * | 2004-03-02 | 2005-01-05 | 中国海洋大学 | 用Alteromonas sp.nov.SY37-12菌株生产琼胶酶 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
付万冬.高产琼胶酶菌株的筛选、发酵条件优化及琼胶酶酶学性质的研究.《中国优秀博硕士学位论文全文数据库(硕士)基础科学辑》.2007,(第3期),正文第13页至32页. * |
王静雪等.海洋弧菌QJH-12发酵产琼胶酶条件的优化.《海洋科学》.2007,第31卷(第7期),全文. * |
邓欢等.海湾扇贝幼体期流行性弧菌病的研究.《大连水产学院学报》.2004,第19卷(第4期),第260页第2.3节. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104611312A (zh) * | 2015-02-16 | 2015-05-13 | 集美大学 | 一种需钠弧菌发酵生产琼胶酶的培养基及其发酵方法 |
CN105087427A (zh) * | 2015-07-06 | 2015-11-25 | 华侨大学 | 产琼胶酶的需钠弧菌及其应用 |
CN105087427B (zh) * | 2015-07-06 | 2018-08-24 | 华侨大学 | 产琼胶酶的需钠弧菌及其应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101451113A (zh) | 2009-06-10 |
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C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20101006 Termination date: 20121106 |