WO2015080047A1 - 細胞培養培地及びそれを用いた培養方法 - Google Patents

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cell culture
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culture medium
gas6
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智久 加藤
金村　米博
智子 正札
勇人 福角
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株式会社カネカ
独立行政法人国立病院機構
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    • C12N2500/90—Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
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    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/90—Substrates of biological origin, e.g. extracellular matrix, decellularised tissue

Definitions

  • the present invention relates to a cell culture medium and a cell culture method. Furthermore, the present invention relates to a feeder cell that can be used in the culture method and a method for evaluating a medium for culturing the cell.
  • human pluripotent stem cells such as human ES cells (hESC) or human iPS cells (hiPSC) are increasingly being put to practical use in the field of regenerative medicine. These pluripotent stem cells have the ability to proliferate indefinitely and the ability to differentiate into various cells, and are expected as therapeutic means for intractable diseases, lifestyle-related diseases and the like. It has been shown that human pluripotent stem cells can induce differentiation into various cells such as nerve cells, cardiomyocytes, blood cells or retinal cells in vitro.
  • Feeder cells serve to supply stem cells with growth factors for maintaining and culturing human pluripotent stem cells. Therefore, conventionally, the culture of human pluripotent stem cells such as hESC and hiPSC has been mainly performed on a mouse-derived feeder cell (MEF: mouse-embryonic-fibroblast) layer. The activity that enables maintenance culture of human pluripotent stem cells has also been reported in various human cell tumors (Non-Patent Documents 1 to 4). However, the method using mouse-derived feeder cells has a problem in safety against living bodies because the feeder cells are mixed with human pluripotent stem cells. In addition, the culture method using human-derived feeder cells has a problem that it takes time and effort to prepare the feeder cells during culture.
  • MEF mouse-embryonic-fibroblast
  • Non-patent Document 5 a method in which a medium is conditioned in advance with MEF (MEF-CM) or a method in which MEF is chemically immobilized is known.
  • MEF-CM a method in which a medium is conditioned in advance with MEF
  • Non-patent Document 6 a method of using various human-derived cells such as fibroblasts, placental cells, bone marrow cells, endometrial cells as live feeder cells without using heterogeneous cells has been reported (Non-patent Document 6).
  • a medium containing bovine serum or KNOCKOUT TM SR (Knockout Serum Replacement: an additive that can be used to culture ES / iPS cells by using serum) is used.
  • KNOCKOUT TM SR Knockout Serum Replacement: an additive that can be used to culture ES / iPS cells by using serum.
  • many of these contain proteins extracted from bovine serum, and there are concerns about infections such as bovine spongiform encephalopathy (BSE) and cell contamination by viruses.
  • BSE bovine spongiform encephalopathy
  • human-derived serum may be used, it is not practical because it is limited or limited in use.
  • a medium in which a medium for human pluripotent stem cells containing these sera or serum substitutes is conditioned with MEF enables non-feeder culture of human pluripotent stem cells.
  • Non-patent Document 7 a receptor protein that specifically changes in human ES cells cultured in MEF-CM has also been analyzed.
  • Non-patent Documents 8 and 9 development of a chemically defined medium for culturing without using MEF has been promoted, and the problem of contamination with components derived from bovine serum is being avoided (Non-patent Documents 8 and 9). Analysis of functional proteins has also been undertaken from MEF secretions (Non-patent Document 10). Also. It has been reported that embryonic stem cells can be cultured without using feeder cells by adding vitronectin: IGF1 chimeric protein (Non-patent Document 11). As commercially available media containing IGF, mTeSR1 (registered trademark) of STEM® CELL Technologies, STEMPRO (registered trademark) of Life Technologies, etc. are known. However, in the culture of human pluripotent stem cells, there were problems such as inability to stably culture and poor proliferation.
  • Patent Document 1 contains a vitamin K-dependent protein of interest that has at least one protein contaminant that is endogenously expressed in a substantially lower amount than the host cell in the absence of modification.
  • a method comprising the step of recovering the growth medium is described, and GAS-6 is described as an example of a vitamin K-dependent protein (paragraphs 0008 and 0035).
  • Patent Document 2 describes that cells are cultured in a medium containing 10% FCS and GAS6 when performing a wound assay (paragraph 0059).
  • Patent Document 3 describes that gas6 is contained in the medium as a neuronal growth enhancer (paragraph number 0235). However, there is no report about adding GAS6 to serum-free medium.
  • GAS6 is a ligand for receptor tyrosine kinase (Non-patent Document 12).
  • Receptor type tyrosine kinases include EGFR, ERBB2, ERBB3, ERBB4, INSR, IGF-1R, IRR, PDGFR ⁇ , PDGFR ⁇ , CSF-1R, KIT / SCFR, FLK2 / FLT3, VEGRF1-3, FGFR1-4, CCK4, TRKA , TRKB, TRKC, MET, RON, EPHA1-8, EPHB1-6, AXL, MER, TYRO3, TIE, TEK, RYK, DDR1, DDR2, RET, ROS, LTK, ALK, ROR1, ROR2, MUSK, ATYK, AATYK2 , AATYK3, and RTK106.
  • GAS6 has been reported to function as a receptor tyrosine kinase ligand of the TAMTA (TYRO3, AXL, TAM
  • IGF-I protein supports feeder-cell-free and serum-free culture of human embryonic Stem Cells 19 (9): 1297-1305 Junichi Shimoda, Takayoshi Enomoto, Gas6 deficient mouse, Thrombus Haemostasis 2001; 12 (6): 514-521. Vyacheslav AK. Axl-dependent signaling: a clinical update. Clinical science 2012; 122: 361-368.
  • the present inventor has added GAS6 to a serum-free medium of human pluripotent stem cells, thereby proliferating human pluripotent stem cells without co-culture with feeder cells.
  • the inventors have found that this can be promoted, and have completed the present invention. That is, according to the present invention, GAS6 was identified as a factor that promotes the proliferation of human pluripotent stem cells.
  • a cell culture medium containing growth arrest-specific 6 (GAS6) and no serum A cell culture medium containing growth arrest-specific 6 (GAS6) and no serum.
  • the cell culture medium according to (1), wherein the concentration of growth arrest-specific 6 (GAS6) contained in the medium is 2 ng / ml or more and 100 ng / ml or less.
  • MMP3 Matrix Metalloproteinase-3
  • OPN Osteopontin
  • TNF-related weak inducer of apoptosis TNF-related Weak Inducer of Apoptosis
  • TWEAK R insulin-like growth factor-binding protein 2
  • IGFBP2 insulin-like growth factor-binding protein 2
  • GALS1 galectin 1
  • insulin-like growth factor-1 IGF-1
  • the cell culture medium according to any one of (1) to (7), the cell culture medium kit according to any one of (8) to (13), or the cell culture system according to (14) A method for culturing cells, comprising culturing cells using any of the above.
  • the extracellular matrix is gelatin, an isolated basement membrane component produced by Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) mouse sarcoma, placenta matrix, merosin, tenascin, heparin sulfate, chondroitin sulfate, dermatan sulfate, Aggrecan, biglycan, thrombospondin, laminin (laminin-511, laminin-111, laminin-332), fibronectin, vitronectin, collagen, E-cadherin, decorin, synthetic peptide, synthetic polymer, MEF or human serum or decidual mesenchyme
  • EHS Engelbreth-Holm-Swarm
  • the culture method according to (21), wherein the pluripotent stem cells are iPS cells (induced pluripotent stem cells).
  • a method for culturing cells comprising a step of culturing cells in the presence of feeder cells into which a base sequence encoding an amino acid sequence of growth arrest-specific protein 6 (GAS6) has been introduced.
  • the feeder cell is selected from the group of MEF (mouse embryonic fibroblast), STO cell line (ATCC deposit number CRL-1503), fibroblast, placental cell, bone marrow cell, and endometrial cell.
  • the culture method according to 1. The culture method according to (23) or (24), wherein the cell is a mouse-derived cell or a human-derived cell.
  • the culture method according to (26), wherein the pluripotent stem cells are iPS cells (induced pluripotent stem cells).
  • the feeder cell is selected from the group of MEF (mouse embryonic fibroblast), STO cell line (ATCC deposit number CRL-1503), fibroblast, placental cell, bone marrow cell, and endometrial cell.
  • the feeder cell according to 1.
  • a proliferation inhibitor of pluripotent stem cells comprising an anti-GAS6 antibody or a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor.
  • a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor is BMS777607 [N- (4-((2-amino-3-chloropyridin-4-yl) oxy) -3-fluorophenyl) -4-ethoxy-1- (4-fluorophenyl) -2-oxo-1, 2-dihydropyridine-3-carboxamide], R428 [1- (6,7-Dihydro-5H-benzo [2,3] cyclohepta [2,4-d] pyridazin-3-yl) -3-N-[(7S) -7-pyrrolidin-1-yl -6,7,8,9-tetrahydro-5H-benzo [7] annulen-3-yl] -1,2,4-triazole-3,5-diamine], and UNC
  • a cell culture medium comprising the growth inhibitor according to any one of (31) to (33).
  • a cell culture medium kit comprising the growth inhibitor according to any one of (31) to (33) and a basic medium.
  • a cell culture system comprising the cell culture medium according to (a) (34) or the cell culture medium kit according to (35), and (b) a cell culture device.
  • a cell culture medium comprising the step of culturing cells using any of the cell culture medium according to (34), the cell culture medium kit according to (35), or the cell culture system according to (36). Culture method.
  • a method for culturing pluripotent stem cells comprising a step of culturing pluripotent stem cells under conditions that inhibit the action of GAS6.
  • the step of culturing pluripotent stem cells under conditions that suppress the action of GAS6 is a step of culturing pluripotent stem cells in the presence of an anti-GAS6 antibody and / or a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor.
  • a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor is BMS777607 [N- (4-((2-amino-3-chloropyridin-4-yl) oxy) -3-fluorophenyl) -4-ethoxy-1- (4-fluorophenyl) -2-oxo-1, 2-dihydropyridine-3-carboxamide], R428 [1- (6,7-Dihydro-5H-benzo [2,3] cyclohepta [2,4-d] pyridazin-3-yl) -3-N-[(7S) -7-pyrrolidin-1-yl -6,7,8,9-tetrahydro-5H-benzo [7] annulen-3-yl] -1,2,4-triazole-3,5-diamine], and UNC569 [1-((trans-4-aminocyclohexyl) methyl) -N-butyl-3- (4-fluorophenyl)
  • the cell culture medium of the present invention By culturing cells using the cell culture medium of the present invention, it becomes possible to efficiently proliferate cells such as pluripotent stem cells. According to the cell culture medium of the present invention, since the cells can be cultured without using feeder cells, the cells can be cultured safely.
  • FIG. 1 shows the results of comparison of the proliferation efficiency of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors by alkaline phosphatase staining.
  • FIG. 2 shows the results of comparison of the proliferation efficiency of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors by alkaline phosphatase staining.
  • FIG. 3 shows the result of measuring and comparing the number of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors.
  • FIG. 1 shows the results of comparison of the proliferation efficiency of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors by alkaline phosphatase staining.
  • FIG. 3 shows the result of measuring and comparing the number of human iPS cells in serum
  • FIG. 4 shows the results of comparison of the proliferation efficiency of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors by alkaline phosphatase staining.
  • FIG. 5 shows the results of measuring and comparing the number of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors.
  • FIG. 6 shows the results of comparison of the growth efficiency of human iPS cells cultured without serum in a serum-free medium or serum-free medium conditioned with MEF without matrigel by alkaline phosphatase staining.
  • FIG. 5 shows the results of measuring and comparing the number of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or serum-free medium supplemented with various protein factors.
  • FIG. 6 shows the results of comparison of the growth efficiency of human iPS cells cultured without serum in a serum-free medium or serum-free medium
  • FIG. 7 shows the results of measuring and comparing the number of human iPS cells in serum-free medium, serum-free medium conditioned with MEF, or medium conditioned with MEF supplemented with anti-GAS antibody.
  • FIG. 8 shows the results of measuring and comparing the number of human iPS cells in a serum-free medium, a serum-free medium conditioned with MEF, or a medium conditioned with MEF supplemented with various GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitors.
  • FIG. 9 shows an outline of the arrangement of each constituent means of the culture apparatus.
  • FIG. 10 shows a block diagram of the observation apparatus of the automatic culture apparatus.
  • FIG. 11 shows the hardware configuration of the main part of the automatic culture apparatus.
  • FIG. 12 shows the configuration of the cell detection system of the cell culture device.
  • FIG. 13 shows an outline of the arrangement of each component in the culture apparatus.
  • FIG. 14 shows details of the image processing unit.
  • FIG. 15 shows an example of a cell extraction process executed by the image processing unit
  • the cell culture medium of the present invention is a medium characterized by containing growth arrest-specific protein 6 (GAS6) and no serum.
  • GAS6 growth arrest-specific protein 6
  • proliferation of human pluripotent stem cells can be promoted without using serum and feeder cells. This facilitates the culture of human pluripotent stem cells that are not exposed to either animal cells or cultures conditioned by animal cells.
  • the concentration of growth arrest-specific protein 6 (Growth arrest-specific 6; GAS6) contained in the medium is not particularly limited as long as cells can proliferate, but generally the lower limit is 0.0001 ng / ml, preferably 0.001 ng / ml, more preferably 0.01 ng / ml, even more preferably 0.1 ng / ml, particularly preferably 1 ng / ml, most preferably 2 ng / ml.
  • the upper limit is 10,000 ng / ml, preferably 1000 ng / ml, more preferably 500 ng / ml, further preferably 400 ng / ml, particularly preferably 300 ng / ml, still more preferably 200 ng / ml or less. More particularly preferably, it is 100 ng / ml or less.
  • the concentration is generally from 1 ng / ml to 200 ng / ml, particularly preferably from 2 ng / ml to 100 ng / ml.
  • the cell culture medium of the present invention is characterized by promoting cell growth and stably culturing cells in a medium not containing serum (that is, serum-derived component).
  • a medium that can be used in the present invention a medium used as a medium for animal cells can be prepared as a basal medium.
  • the basal medium BME medium, BGJb medium, CMRL1066 medium, Glasgow MEM medium, Improved MEM Zinc Option medium, IMDM medium, Medium 199 medium, Eagle MEM medium, ⁇ MEM medium, DMEM medium, Ham medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium
  • a medium that can be used for culturing animal cells such as a mixed medium thereof, and the like.
  • CHO-S-SFM II manufactured by GIBCO BRL
  • Hybridoma-SFM manufactured by GIBCO BRL
  • eRDF Dry Powdered Media manufactured by GIBCO BRL
  • UltraCULTURE TM BioWhittaker
  • UltraDOMA TM BioWhittaker
  • UltraCHO TM BioWhittaker
  • UltraMDCK TM BioWhittaker
  • MEF secretion component can be further added to the cell culture medium of the present invention.
  • MEF secretion components include decorin, matrix metalloproteinase-3 (MMP3), osteopontin (OPN), and TNF-related weak inducer receptor (TNF) of apoptosis.
  • MMP3 matrix metalloproteinase-3
  • OPN osteopontin
  • TNF-related weak inducer receptor TNF-related weak inducer receptor
  • TWEAK R TWEAK R
  • IGFBP2 insulin-like growth factor binding protein 2
  • GALS1 galectin 1
  • IGF-1 insulin-like growth factor-1
  • MEF secretory components that can be added in addition to growth arrest specific protein 6 (GAS6), preferably decorin, galectin 1 (galectin 1 (LGALS1)), and insulin-like growth factor-1 (insulin- at least one from the group consisting of like growth factor-1 (IGF-1)) can be added.
  • GAS6 growth arrest specific protein 6
  • LGALS1 galectin 1
  • IGF-1 insulin-like growth factor-1
  • decorin galectin 1 (galectin 1 (LGALS1)), and insulin-like growth factor-1 (IGF-1) can proliferate cells even when added alone.
  • Select cell culture medium from decorin, galectin 1 (galectin 1 (LGALS1)), and insulin-like growth factor-1 (IGF-1) It is also possible to add only one or more factors.
  • the concentration of each component contained in the medium is not particularly limited as long as the cells can grow, but generally the lower limit is 0.0001 ng / ml, considering the effect of addition, Preferably it is 0.001 ng / ml, more preferably 0.01 ng / ml, even more preferably 0.1 ng / ml, particularly preferably 1 ng / ml, most preferably 2 ng / ml.
  • the upper limit is 10,000 ng / ml, preferably 1000 ng / ml, more preferably 500 ng / ml, further preferably 400 ng / ml, particularly preferably 300 ng / ml, still more preferably 200 ng / ml or less. More particularly preferably, it is 100 ng / ml or less.
  • the concentration is generally from 1 ng / ml to 200 ng / ml, particularly preferably from 2 ng / ml to 100 ng / ml.
  • the cell culture medium of the present invention preferably does not contain albumin.
  • the cell culture medium of the present invention may appropriately contain transferrin, fatty acid, insulin, collagen precursor, trace element, 2-mercaptoethanol, 3-thiolglycerol, or an equivalent thereof.
  • the medium of the present invention can also contain fatty acids or lipids, amino acids (eg, non-essential amino acids), vitamins, growth factors, cytokines, antioxidants, 2-mercaptoethanol, pyruvic acid, buffers, inorganic salts, and the like.
  • 2-mercaptoethanol is not limited as long as it is used at a concentration suitable for stem cell culture. For example, it can be used at a concentration of about 0.05 to 1.0 mM, preferably about 0.1 to 0.5 mM.
  • the cell culture medium of the present invention can be produced by adding GAS6 to the basic medium, but it can also be used in the form of a cell culture medium kit containing GAS6 and the basic medium. That is, GAS6 and the basic medium are separately combined and supplied in the form of a kit, and the user can prepare and use the cell culture medium of the present invention by adding GAS6 to the basic medium at the time of use. .
  • a cell culture system including (a) the above-described cell culture medium or cell culture medium kit and (b) a cell culture apparatus.
  • the cell culture device is not limited as long as it is a device capable of culturing cells using the above-described cell culture medium or cell culture medium kit.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-92811 Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-92882, and the like.
  • the cell culture apparatus described in Japanese Unexamined Patent Publication No. 2010-148391 (the contents described in the above publication are incorporated herein by reference as part of the disclosure of the present specification) can be used.
  • a culture container for culturing cells an imaging device for imaging cells in the culture container, and the cells when imaging the cells
  • the light source means has a plurality of light sources, and turns on the light source corresponding to the position of the microscope
  • a cell culture device characterized by this can be used.
  • An example of the configuration of the cell culture apparatus is shown in FIG.
  • the cell culture device 1 includes a culture vessel 4 for culturing cells, a microscope 5 for imaging cells, a microscope driving device 6 for moving the microscope 5, a driver 10 for controlling the microscope driving device 6, a microscope 5, a switch 7 for turning on the power to a specific light source of the plurality of light sources 3 provided on the light source board based on the position information 5, a light source wiring 9 for connecting the switch 7 and the light source 3, and the light source 3
  • the light source substrate 2 is arranged and a controller 8 for controlling them.
  • the culture apparatus is connected to the controller 8 and includes an input unit 20 including a trackball or a keyboard.
  • the microscope drive device 6 includes a drive mechanism having a motor and a ball screw mechanism, and can move the microscope 5 two-dimensionally via the ball screw mechanism.
  • the ball screw mechanism has a position sensor including a rotary encoder that detects the rotation amount of the ball screw and converts it into position information of the microscope 5 to detect it.
  • the position sensor can identify the position of the microscope 5 two-dimensionally by detecting the rotation amount of the ball screw.
  • the position information of the microscope 5 is transmitted to the controller 8 via the driver 10.
  • the ball screw mechanism includes a ball screw having a spiral groove and a sleeve moving along the groove.
  • a microscope 5 is installed on the sleeve. The sleeve and the microscope 5 can be moved linearly by rotating the ball screw. By providing two ball screw mechanisms at right angles, the sleeve and the microscope 5 can be moved two-dimensionally.
  • a cell incubator In another example of the present invention, as described in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-92882, a cell incubator, a camera for photographing cells in the incubator, and the position of the camera in the incubator Moving means that moves relative to the incubator along the imaging surface, a memory that stores an image captured by the camera, a display that displays an image stored in the memory, and an automatic imaging mode And a control means formed to be able to switch between manual shooting mode and The automatic photographing mode controls the camera by scanning the camera at positions of a plurality of small sections obtained by dividing the photographing surface in accordance with a predetermined field of view of the camera by controlling the moving unit.
  • An automatic culture apparatus comprising a function of controlling a stage to move a position of the camera to take a local image at a designated position and display the taken local image on the display Can be used. An example of the configuration of the automatic culture apparatus is shown in FIGS.
  • the automatic culture device is configured by installing a circular petri dish 2 is a incubator cells in the incubator 1, the incubator 1 notoriously temperature, such as CO 2 The gas concentration is adjusted.
  • the petri dish 2 is installed on a base plate 4 supported by the stand 3, and the base plate 4 is provided with an opening 5 that does not hinder the observation of the bottom surface of the petri dish 2 from below.
  • a CCD camera 6 for photographing cells in the petri dish 2 is provided below the opening 5 of the base plate 4.
  • the CCD camera 6 includes a high-magnification objective lens that can observe cells.
  • a CMOS camera can be used instead of the CCD camera 6.
  • the CCD camera 6 is mounted on a Y-axis actuator 7 that moves in the Y direction indicated by the arrow in the figure.
  • the Y-axis actuator 7 is mounted on an X-axis actuator 8 that moves in the X direction indicated by the arrow in the figure.
  • a light source 54 is disposed at a position facing the CCD camera 6 across the petri dish 2, and the light source 54 is fixed to the CCD camera 6 and attached to the tip of the support arm 10.
  • the Y-axis actuator 7 and the X-axis actuator 8 constitute moving means for relatively moving the positions of the CCD camera 6 and the light source 54 to arbitrary positions along the bottom surface of the petri dish 2.
  • the CCD camera 6, the Y-axis actuator 7, the X-axis actuator 8, and the light source 54 are controlled by a computer 11 such as a personal computer (PC), and these constitute the observation apparatus according to the feature of the present invention. Has been.
  • the computer 11 is configured by connecting a computer main body 12, a display 13, a keyboard 14 and a mouse 15 as input means.
  • the computer main body 12 includes a CPU, a memory, an I / O, and the like, and includes an I / O necessary for a general-purpose computer.
  • the apparatus includes a control unit 20 including a computer main body 12.
  • the control unit 20 includes an incubator 1, a CCD camera 6, a Y-axis actuator 7, an X-axis actuator 8, a display 13, and a keyboard 14. , Connected to the mouse 15.
  • the keyboard 14 is provided with an interrupt switch 14a, a manual switch (X axis) 14b, and a manual switch (Y axis) 14c.
  • the control unit 20 is connected to an image memory 21 for storing an image photographed by the CCD camera 6 and a photographing position data memory 22.
  • control unit 20 controls the readout by reading out the image stored in the image memory 21 and displaying it on the display 13, and switching the photographing by the CCD camera 6 between the automatic photographing mode and the manual photographing mode. Control means is provided. Details of the operation using this apparatus are as described in paragraph numbers 0029 to 0053 of JP-A-2008-92882.
  • an incubator unit for culturing cells, and image acquisition for acquiring an image of the cell from the incubator unit A focus position adjusting unit that adjusts the focus of the image acquiring unit by moving one of the image acquiring unit and the incubator unit, and an image is acquired at a plurality of focal positions of the image acquiring unit.
  • An example of the configuration of the cell detection system is shown in FIGS.
  • the cell culture device 11 has a box-type structure in which the inside is cut off from the external space, and the inside of the incubator 12 for culturing cells and the cells in the incubator 12 are photographed.
  • the image processing unit 14 for processing image data obtained from the CCD camera 13, the converter 15 for transferring the image data to the image processing unit 14, and the CCD camera 13 or the incubator 12
  • the camera / incubator driving device 16 for performing the operation, the motor controller 17 for moving the camera / incubator driving device 16 to an arbitrary position, and the light source 18 installed on the upper part of the CCD camera 13 are configured.
  • the incubator 12 is formed of a transparent material, and the CCD camera 13 is configured to photograph the transmitted light that is irradiated from the light source 18 and transmitted through the incubator 12.
  • the CCD camera 13 preferably includes a CCD device having about 400,000 pixels, and the light source 18 is not particularly limited, but an LED is preferable in the present embodiment.
  • FIG. 13 is a diagram showing an outline of the arrangement of each component in the culture apparatus 11.
  • the arrangement when the incubator 12 is fixed in the culture apparatus 11 and the CCD camera 13 is moved is shown.
  • a light source 18 is attached to the upper surface portion in the culture apparatus 11.
  • An incubator 12 is disposed below the light source 18, and a CCD camera 13 having an objective lens 22 is disposed below the center of the incubator 12.
  • the CCD camera 13 is attached to the moving guide 21 so as to be movable up and down, and is moved up and down along the moving guide 21 by drive control of the camera / incubator driving device 16 operated by a command output from the CPU 32. Then, the focal position is changed in the vertical direction, and an image of the cells in the incubator 12 is taken.
  • the imaging apparatus combining the CCD camera 13 and the objective lens 22 has a minute area near the bottom located near the center of the incubator 12, for example, a minute area of about 1.5 mm (vertical) ⁇ 2.0 mm (horizontal). It is desirable that the camera is configured to be capable of photographing.
  • FIG. 14 is a diagram showing details of the image processing unit 14 of FIG.
  • the image processing unit 14 includes a CPU 32 that performs arithmetic processing via the data bus 31, a main memory 33 that the CPU 32 temporarily uses as a storage area, an external storage device 34 that stores image data and position information, a motor A communication port 35 for communicating with the controller 17, a monitor 36 for displaying an image after cell extraction, and a keyboard 37 for receiving user input.
  • the image from the CCD camera 13 is taken in via the converter 15 and subjected to various image processing.
  • FIG. 15 is a flowchart showing an example of cell extraction processing executed by the image processing unit.
  • the series of steps described in FIG. 15 is repeated at predetermined time intervals in the cell culturing process by, for example, a frequency of once / day, for example, by a pre-installed software.
  • the units described in 1 are sequentially driven and executed. Note that the output of the clock generator provided in the CPU 32 can be used for timing to repeatedly execute the series of steps described in FIG. 15 at predetermined time intervals. Details of the cell extraction process shown in FIG. 15 are as described in paragraph Nos. 0016 to 0028 of JP2010-148391A.
  • a cell culturing method including the step of culturing cells using the above-described cell culture medium, cell medium kit, or cell culture system of the present invention. Furthermore, safe pluripotent stem cells are provided by culturing cells using any of the cell culture medium, cell culture kit, or cell culture system.
  • a cell culturing method including the step of culturing cells using the above-described cell culture medium of the present invention.
  • the type of cells cultured in the present invention is not particularly limited, and any of stem cells or differentiated cells having both pluripotency and self-renewal ability may be used, preferably stem cells, more preferably pluripotent stem cells.
  • pluripotent stem cells refers to cells that can be cultured in vitro and have pluripotency capable of differentiating into all cells constituting the living body. Specifically, embryonic stem cells (ES cells), fetal primordial germ cell-derived pluripotent stem cells (EG cells: Proc Natl Acad Sci USA.
  • testis-derived pluripotent stem cells GS cell: Nature. 2008, 456: 344-349
  • somatic cell-derived induced pluripotent stem cells iPS cells
  • the animal species from which the cells to be cultured are derived is not particularly limited, and cells derived from any mammal can be used. For example, mouse-derived cells or human-derived cells can be used. Cell culture can be performed under normal cell culture conditions.
  • the cells can be cultured in the absence of feeder cells.
  • the cells can be cultured using a culture vessel coated with a culture substrate that serves as a scaffold for the cells.
  • the culture substrate used as a cell scaffold is not particularly limited as long as it is for cell culture.
  • gelatin Matrigel which is an isolated basement membrane component produced from Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) mouse sarcoma, placenta Matrix, merosin, tenascin, heparin sulfate, chondroitin sulfate, dermatan sulfate, aggrecan, biglycan, thrombospondin, laminin (laminin-511, laminin-111, laminin-332), fibronectin, vitronectin, collagen, E-cadherin, decorin, Examples include synthetic peptides, synthetic polymers, MEF, human serum, or extracellular matrix derived from decidual mesenchymal cells.
  • EHS Engelbreth-Holm-Swarm
  • cells can be cultured using the cell culture medium of the present invention on a culture substrate having a surface not coated with an extracellular matrix as described above.
  • the method comprises culturing cells in the presence of feeder cells into which a nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of growth arrest-specific protein 6 (Growth arrest-specific 6; GAS6) has been introduced.
  • a method for culturing cells is provided.
  • a feeder cell into which a base sequence encoding the amino acid sequence of growth arrest-specific protein 6 (Growth arrest-specific 6; GAS6) is introduced is provided. That is, feeder cells into which a GAS6 gene expression vector has been introduced can be used for on-feeder culture of human pluripotent stem cells, or can be used to acclimate the medium.
  • the type of feeder cell is not limited, but for example, MEF (mouse embryonic fibroblast), established STO cell line (ATCC deposit number CRL-1503), and neomycin resistance gene expression vector and LIF expression in STO cells
  • MEF mouse embryonic fibroblast
  • established STO cell line ATCC deposit number CRL-1503
  • neomycin resistance gene expression vector and LIF expression in STO cells examples include mouse-derived cells such as SNL cells into which vectors are stably incorporated, and human-derived cells such as fibroblasts, placental cells, bone marrow cells, and endometrial cells.
  • a method for evaluating a medium for culturing cells comprising detecting or quantifying growth arrest-specific protein 6 (Growth arrest-specific 6; GAS6) contained in the medium.
  • GAS6 protein can be detected and quantified by SDS-PAGE or two-dimensional electrophoresis followed by Western blotting using MS analysis or anti-GAS6 antibody, and enzyme immunoassay (Enzyme- It is also possible to quantify by Linked (Immunosorbent Assay: ELISA).
  • iPS cell proliferation can be suppressed by culturing iPS cells in the presence of an anti-GAS6 antibody or a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor. Therefore, according to the present invention, a proliferation inhibitor of pluripotent stem cells comprising an anti-GAS6 antibody or a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor is provided.
  • an anti-GAS6 antibody for use in suppressing proliferation of pluripotent stem cells and a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor for use in suppressing proliferation of pluripotent stem cells.
  • a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor for use in suppressing proliferation of pluripotent stem cells are further provided.
  • a cell culture medium containing the growth inhibitor of the present invention, a cell culture medium kit containing the growth inhibitor of the present invention and a basic medium, and a cell comprising the cell culture medium or cell culture kit of the present invention and a cell culture device Culture systems are also within the scope of the present invention.
  • the cell culture method including the step of culturing cells using any of the cell culture medium, cell culture medium kit, or cell culture system of the present invention is also within the scope of the present invention.
  • the components other than the growth inhibitor and the preferred ranges are as described above in the present specification.
  • a method for culturing pluripotent stem cells comprising a step of culturing pluripotent stem cells under conditions that suppress the action of GAS6.
  • the method for culturing pluripotent stem cells of the present invention can be performed in vitro.
  • pluripotent stem cells can be cultured in a state in which the proliferation of pluripotent stem cells is suppressed.
  • the method for culturing pluripotent stem cells according to the present invention described above includes a step of culturing pluripotent stem cells under a condition that suppresses the action of GAS6. This is a method for culturing stem cells.
  • Specific examples of pluripotent stem cells are as described above in the present specification, and preferably iPS cells.
  • the type of anti-GAS6 antibody used in the present invention is not particularly limited, and may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • the anti-GAS6 antibody may be a commercially available antibody, and is available from, for example, R & D Systems, Santa Cruz Biotechnology, etc.
  • the concentration of the anti-GAS6 antibody contained in the medium for culturing pluripotent stem cells is not particularly limited, but is preferably 1 ng / ml to 100 ng / ml, more preferably 10 ng / ml to 100 ng / ml. .
  • the type of GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor used in the present invention is not particularly limited, but is preferably an inhibitor of a TAM family receptor tyrosine kinase (TYRO3, AXL, MER).
  • TAM family receptor tyrosine kinase TYRO3, AXL, MER
  • BMS777607 N- (4-((2-amino-3-chloropyridin-4-yl) oxy) -3-fluorophenyl) -4-ethoxy-1- (4-fluorophenyl) -2 -Oxo-1,2-dihydropyridine-3-carboxamide
  • R428 [1- (6,7-dihydro-5H-benzo [2,3] cyclohepta [2,4-d] pyridazin-3-yl) -3- N-[(7S) -7-pyrrolidin-1-yl-6,7,8,9-tetrahydro-5H-benz
  • the concentration of BMS777607 contained in the medium is generally 1 ng / ml or more and 100 ng / ml or less, preferably 2 ng / ml or more and 20 ng / ml or less.
  • the concentration of R428 contained in the medium is generally 1 ng / ml or more and 500 ng / ml or less, preferably 8 ng / ml or more and 80 ng / ml or less.
  • the concentration of UNC569 contained in the medium is generally 0.5 ng / ml or more and 100 ng / ml or less, preferably 1 ng / ml or more and 10 ng / ml or less.
  • the step of culturing pluripotent stem cells under conditions that suppress the action of GAS6 is preferably a step of culturing pluripotent stem cells in the presence of an anti-GAS6 antibody and / or a GAS6 receptor tyrosine kinase inhibitor.
  • the pluripotent stem cells are cultured in a medium that does not contain albumin, in a mode that is cultured in a medium that does not contain serum, or in a medium that contains GAS6
  • an embodiment of culturing in a medium conditioned with MEF and these embodiments may be combined.
  • CM conditioned serum-free medium
  • MEF cells mouse fetal fibroblasts
  • FBS fetal fibroblasts
  • E8 medium Essential8 medium
  • the medium was collected in a CO2 incubator for 24 hours (37 ° C., 5% CO2 concentration), and then the medium was collected to obtain a conditioned medium.
  • a serum-free medium that was not conditioned and a serum-free medium that was conditioned were compared and analyzed using an anti-cytokine antibody array.
  • 100 ⁇ L Blocking Buffer (supplied with the kit) was applied onto an array of RayBio TM Mouse Cytokine Antibody array G-Series 2000 (RayBiotech) and incubated at 25 ° C. for 30 minutes.
  • 150 ⁇ L of each medium (dilution ratio: 1.5, approximately 155 ⁇ g of protein equivalent) was applied onto the array and incubated at 10 ° C. for 16 hours.
  • Array was Wash Buffer I (2 min at 25 ° C), Wash Buffer II (2 min x 2 at 25 ° C), Wash Buffer I (2 min 10 min at 25 ° C), ultrapure water (1 min at 25 ° C) After washing, the array was centrifuged at 1000 rpm, 25 ° C. for 3 minutes and dried for 20 minutes in the dark. Scanning using the array scanner GenePix TM 4400A (Molecular Devices, LLC), and using the analysis software Array-Pro Analyzer Ver. 4.5 (Media Cybernetics, Inc), the fluorescence intensity value at each spot from the obtained image Quantification was performed.
  • Passage is performed every 6-7 days, dissociates human iPS cell colonies from the feeder layer using a dissociation solution (collagenase solution), and pipettes to make 20-50 small clusters, and then new feeder cells Seeded on layer.
  • Human iPS cells maintained on feeder cells are dissociated with a dissociation solution, pipetted into about 20 to 50 small lumps, iPS cells collected by centrifugation at 300 rpm for 5 minutes, and then coated with gelatin After removing MEF by incubating on the dish for 30 minutes, the culture dish coated with Matrigel (registered trademark) (BD) was seeded in quarters.
  • the medium was compared with a serum-free medium (E8 medium) not conditioned with MEF and a medium conditioned with MEF.
  • Table 1 shows the results of comparison of proliferation. Moreover, each factor was added, the result observed after staining with alkaline phosphatase after culturing for 2 days is shown in FIG. In the conditioned medium, the growth efficiency of human iPS cells was improved as compared to the unconditioned medium.
  • FIGS. 1 and 2 show the results observed by staining with alkaline phosphatase.
  • Decorin, galectin 1 (LGALS1), and insulin-like growth factor-1 (IGF-1) were found to promote human iPS cell proliferation. It has been reported that Decorin can be used as a coating substrate for culture substrates in the culture of human pluripotent stem cells (WO9920741), and galectin 1 has been reported to promote the proliferation of mouse ES cells (KR2010130677A).
  • STEMPRO hESC SFM manufactured by Life Technologies
  • Serum-free medium not conditioned with MEF (E8 medium); Medium (E8CM) in which the E8 medium is conditioned with MEF; Decorin (100ng / ml), Matrix Metalloproteinase-3 (MMP3) (2ng / ml), GAS6 (2ng / ml), Osteopontin (OPN) (100ng / ml), TWEAK R (2ng / ml), Insulin-like growth factor -binding protein 2 (IGFBP2) (2ng / ml), galectin 1 (LGALS1) (2ng / ml), insulin-like growth factor-1 (IGF-1) (100ng / ml) or BSA (100ng / ml) Or E8 medium supplemented with 1 type; Decorin (100ng / ml), Matrix Metalloproteinase-3 (MMP3) (2ng / ml), GAS6 (2ng / ml), Osteopontin (OPN) (100ng
  • Table 1 shows the results of comparison of cell proliferation. Further, as described in (2-1) above, the cells were stained with alkaline phosphatase and the number of cells was counted.
  • FIG. 3 shows the results of determining the ratio of the number of cells when the number of cells when using the E8 medium is 1, and when the other medium is used.
  • Serum-free medium not conditioned with MEF (E8 medium); Medium (E8CM) in which the E8 medium is conditioned with MEF; Decorin (100ng / ml), GAS6 (100ng / ml), Osteopontin (OPN) (100ng / ml), galectin 1 (LGALS1) (100ng / ml), insulin-like growth factor-1 (IGF-1) (100ng / ml) ml) or ESA medium supplemented with either BSA (100 ng / ml); Decorin (100ng / ml), Matrix Metalloproteinase-3 (MMP3) (100ng / ml), GAS6 (100ng / ml), Osteopontin (OPN) (100ng / ml), TWEAK R (100ng / ml), Insulin-like growth factor E8 medium supplemented with all of -binding protein 2 (IGFBP2) (100 ng / ml),
  • FIG. 5 shows the results of determining the ratio of the number of cells when another medium is used, where the number of cells when using the E8 medium is 100.
  • FIG. 6 shows the results of observation of cells stained with alkaline phosphatase. In the conditioned medium, the cells were able to grow even when using culture dishes that were not coated with Matrigel.
  • FIG. 8 shows the results of determining the ratio of the number of cells when other media were used, where the number of cells when using a medium conditioned with MEF was 100.

Abstract

　本発明の課題は、フィーダー細胞を使用することなく細胞の増殖効率を高めることができる細胞培養培地であって、特に血清を含まない細胞培養培地を提供することである。本発明によれば、成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）を含有し、血清を含まない細胞培養培地が提供される。

Description

細胞培養培地及びそれを用いた培養方法
　本発明は、細胞培養培地、並びに細胞の培養方法に関する。さらに本発明は、上記培養方法において使用できるフィーダー細胞、並びに細胞を培養するための培地を評価する方法に関する。
　近年の研究により、ヒトES細胞（hESC）又はヒトiPS細胞（hiPSC）等のヒト多能性幹細胞は、再生医療分野において実用化の可能性が高まっている。これらの多能性幹細胞は、無限に増殖できる能力と様々な細胞に分化する能力とを有しており、難治性疾患、生活習慣病等に対する治療手段として期待されている。ヒト多能性幹細胞は、神経細胞、心筋細胞、血液細胞又は網膜細胞などの多様な細胞に試験管内で分化誘導できることが示されている。
　フィーダー細胞は、ヒト多能性幹細胞を維持培養するための増殖因子を幹細胞に供給する働きをする。そのため、従来においては、hESCやhiPSC等のヒト多能性幹細胞の培養は、主にマウス由来フィーダー細胞（MEF：mouse embryonic fibroblast）層上で行われていた。ヒト多能性幹細胞の維持培養を可能とする活性は、種々のヒト細胞腫でも報告されている（非特許文献１～４）。しかし、マウス由来のフィーダー細胞を用いる方法は、ヒト多能性幹細胞にフィーダー細胞が混入するため、生体に対する安全性に問題があった。またヒト由来のフィーダー細胞を使用する培養方法には、培養時にフィーダー細胞を調製するのに手間がかかるという問題があった。
　MEFなどのフィーダー細胞を使用することなくヒト多能性幹細胞を培養する方法としては、予め培地をMEFで馴化する方法（MEF-CM）やMEFを化学的に固定化する方法が知られている（非特許文献５）。また、異種細胞を用いることなく、線維芽細胞、胎盤細胞、骨髄細胞、子宮内膜細胞などの各種ヒト由来細胞を生フィーダー細胞として用いる方法も報告されている（非特許文献６）。さらに、ヒト多能性幹細胞を培養するために、牛血清やKNOCKOUTTM SR（Knockout Serum Replacement：血清の代わりとして用いることによりES／iPS細胞を培養することができる添加剤）などを含む培地が使用されている。しかし、これらはウシ血清から抽出されたタンパク質を添加したものが多く、牛海綿状脳症（BSE）などの感染症や、ウイルスによる細胞汚染が懸念されている。ヒト由来血清を使用する場合もあるが、使用する上での制約や有限なものであるため実用的ではない。また、これらの血清あるいは血清代替物を含むヒト多能性幹細胞用の培地をMEFで馴化した培地によれば、ヒト多能性幹細胞の無フィーダー培養が可能になることが知られている。しかし、大量の血清由来タンパク質が含まれている培地において、MEFにより分泌されるヒト多能性幹細胞の増殖に有益な因子を同定することは困難であった。このような因子の同定のため、MEF-CMで培養したヒトES細胞で特異的に変化するレセプター蛋白質を解析することも行われている（非特許文献７）。
　また、MEFを用いずに培養するためのケミカルデファインドな培地の開発も進められており、ウシ血清由来の成分の混入の問題も回避されつつある（非特許文献８及び９）。MEFの分泌物より機能性蛋白質の解析も取り組まれている（非特許文献１０）。また。ビトロネクチン：IGF1キメラタンパク質の添加によりフィーダー細胞を使用せずに胚性幹細胞を培養できることが報告されている（非特許文献１１）。IGFを含む市販の培地としては、STEM CELL Technologies社のmTeSR1（登録商標）や、Life Technologies社のSTEMPRO（登録商標）などが知られている。しかしながら、ヒト多能性幹細胞の培養において、安定して培養できないことや、増殖性が劣るといった課題があった。
　 一方、特許文献１には、内因的に発現される少なくとも一のタンパク質混入物を、修飾がない場合の宿主細胞よりも実質的に少ない量で有する対象とするビタミンＫ依存性タンパク質を含有してなる組成物の生成方法であって、a) 本発明に記載の宿主細胞を生成する；及び、b) 成長培地中で該宿主細胞を生育させ、対象とするビタミンＫ依存性タンパク質を含んでなる該成長培地を回収するという工程を含んでなる方法が記載されており、ビタミンＫ依存性タンパク質の一例としてＧＡＳ-６が記載されている（段落番号０００８及び００３５）。特許文献２には、傷アッセイを行う際に、１０％ＦＣＳ及びＧＡＳ６を含有する培地で細胞を培養することが記載されている（段落番号００５９）。また、特許文献３には、ニューロン増殖エンハンサーとしてｇａｓ６を培地に含有させることが記載されている（段落番号０２３５）。しかし、無血清培地にＧＡＳ６を添加することについての報告はない。
　また、ＧＡＳ６は受容体型チロシンキナーゼのリガンドであることが明らかにされている（非特許文献１２）。受容体型チロシンキナーゼには、ＥＧＦＲ、ＥＲＢＢ２，ＥＲＢＢ３、ＥＲＢＢ４、ＩＮＳＲ、ＩＧＦ―１Ｒ、ＩＲＲ、ＰＤＧＦＲα、ＰＤＧＦＲβ、ＣＳＦ―１Ｒ、ＫＩＴ／ＳＣＦＲ、ＦＬＫ２／ＦＬＴ３、ＶＥＧＲＦ１～３、ＦＧＦＲ１～４、ＣＣＫ４、ＴＲＫＡ、ＴＲＫＢ、ＴＲＫＣ、ＭＥＴ、ＲＯＮ、ＥＰＨＡ１～８、ＥＰＨＢ１～６、ＡＸＬ、ＭＥＲ、ＴＹＲＯ３、ＴＩＥ、ＴＥＫ、ＲＹＫ、ＤＤＲ１、ＤＤＲ２、ＲＥＴ、ＲＯＳ、ＬＴＫ、ＡＬＫ、ＲＯＲ１、ＲＯＲ２、ＭＵＳＫ、ＡＡＴＹＫ、ＡＡＴＹＫ２、ＡＡＴＹＫ３、ＲＴＫ１０６などがある。ＧＡＳ６は、TAM （ＴＹＲＯ３、ＡＸＬ、ＭＥＲ）ファミリーの受容体型チロシンキナーゼのリガンドとして機能することが報告されている（非特許文献１３）。
特表２００９－５０１０１４号公報 特表２００５－５３２８０５号公報 特開２００９－７７７１６号公報
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　本発明は、フィーダー細胞を使用することなく細胞の増殖効率を高めることができる細胞培養培地であって、特に血清を含まない細胞培養培地を提供することを解決すべき課題とした。さらに本発明は、上記した細胞培養培地を用いて細胞を培養する方法を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明者は、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、ヒト多能性幹細胞の無血清培地にGAS6を添加することにより、フィーダー細胞と共培養することなくヒト多能性幹細胞の増殖を促進できることを見出し、本発明を完成するに到った。即ち、本発明によれば、ヒト多能性幹細胞の増殖を促進する因子としてGAS6が同定された。
　本発明によれば以下の発明が提供される。
（１）成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）を含有し、血清を含まない細胞培養培地。
（２）培地中に含まれる成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）の濃度が２ｎｇ／ｍｌ以上１００ｎｇ／ｍｌ以下である、（１）に記載の細胞培養培地。
（３）さらに、デコリン（Decorin）、マトリックスメタロプロテアーゼ-3（Matrix Metalloproteinase-3（MMP3））、オステオポンチン（Osteopontin（OPN））、アポトーシスのTNF関連弱誘導因子受容体（TNF-related Weak Inducer of Apoptosis Receptor（TWEAK  R））、インスリン様成長因子結合タンパク質２（Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2））、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））からなる群より少なくとも1つ以上を含有する、（１）又は（２）に記載の細胞培養培地。
（４）アルブミンを含まない、（１）から（３）の何れか一に記載の細胞培養培地。
（５）細胞が、マウス由来の細胞またはヒト由来の細胞である、（１）から（４）の何れか一に記載の細胞培養培地。
（６）細胞が多能性幹細胞である、（１）から（５）の何れか一に記載の細胞培養培地。
（７）多能性幹細胞がiPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、（６）に記載の細胞培養培地。
（８）成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）と、基本培地とを含有する細胞用培地キット。
（９）基本培地が、Essential 8（登録商標）培地である、（８）に記載の細胞用培地キット。
（１０）さらに、デコリン（Decorin）、マトリックスメタロプロテアーゼ-3（Matrix Metalloproteinase-3（MMP3））、オステオポンチン（Osteopontin（OPN））、アポトーシスのTNF関連弱誘導因子受容体（TNF-related Weak Inducer of Apoptosis Receptor（TWEAK  R））、インスリン様成長因子結合タンパク質２（Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2））、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））からなる群より少なくとも1つ以上を含有する、（８）又は（９）に記載の細胞用培地キット。
（１１）細胞が、マウス由来の細胞またはヒト由来の細胞である、（８）から（１０）の何れか一に記載の細胞用培地キット。
（１２）細胞が多能性幹細胞である、（８）から（１１）の何れか一に記載の細胞用培地キット。
（１３）多能性幹細胞がiPS細胞又はＥＳ細胞である、（１２）に記載の細胞用培地キット。
（１４）（ａ）（１）から（７）の何れか一に記載の細胞培養培地又は（８）から（１３）の何れか一に記載の細胞用培地キットと、（ｂ）細胞培養装置とを含む、細胞培養システム。
（１５）（１）から（７）の何れか一に記載の細胞培養培地、（８）から（１３）の何れか一に記載の細胞用培地キット、又は（１４）に記載の細胞培養システムのいずれかを用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法。
（１６）細胞をフィーダー細胞の非存在下において培養する、（１５）に記載の培養方法。
（１７）細胞外マトリックスでコーティングされていない表面を有する培養基材上において細胞を培養する、（１５）又は（１６）に記載の培養方法。
（１８）細胞外マトリックスでコーティングされている培養基材上において細胞を培養する（１５）又は（１６）に記載の培養方法。
（１９）細胞外マトリックスが、ゼラチン、Engelbreth-Holm-Swarm（EHS）マウス肉腫から産生される単離した基底膜成分であるマトリゲル、胎盤マトリクス、メロシン、テネイシン、ヘパリン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、アグレカン、ビグリカン、トロンボスポンジン、ラミニン（ラミニン-511、ラミニン-111、ラミニン-332）、フィブロネクチン、ビトロネクチン、コラーゲン、E-カドヘリン、デコリン、合成ペプチド、合成ポリマー、MEF又はヒト血清又は脱落膜間葉系細胞由来の細胞外マトリクスからなる群のいずれか一つ以上である、（１７）又は（１８）に記載の培養方法。
（２０）細胞が、マウス由来の細胞またはヒト由来の細胞である、（１５）から（１９）の何れか一に記載の培養方法。
（２１）細胞が多能性幹細胞である、（１５）から（２０）の何れか一に記載の培養方法。
（２２）多能性幹細胞がiPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、（２１）に記載の培養方法。
（２３）成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）のアミノ酸配列をコードする塩基配列を導入したフィーダー細胞の存在下において細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法。
（２４）フィーダー細胞が、MEF（mouse embryonic fibroblast)、ＳＴＯ細胞株（ＡＴＣＣ寄託番号　ＣＲＬ－１５０３）、線維芽細胞、胎盤細胞、骨髄細胞、及び子宮内膜細胞の群より選ばれる、（２３）に記載の培養方法。
（２５）細胞が、マウス由来の細胞またはヒト由来の細胞である、（２３）又は（２４）に記載の培養方法。
（２６）細胞が多能性幹細胞である、（２３）から（２５）の何れか一に記載の培養方法。
（２７）多能性幹細胞がiPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、（２６）に記載の培養方法。
（２８）成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）のアミノ酸配列をコードする塩基配列を導入したフィーダー細胞。
（２９）フィーダー細胞が、MEF（mouse embryonic fibroblast)、ＳＴＯ細胞株（ＡＴＣＣ寄託番号　ＣＲＬ－１５０３）、線維芽細胞、胎盤細胞、骨髄細胞、及び子宮内膜細胞の群より選ばれる、（２８）に記載のフィーダー細胞。
（３０）培地中に含まれる成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）を検出又は定量することを含む、細胞を培養するための培地を評価する方法。
（３１）抗GAS6抗体又はGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤を含む、多能性幹細胞の増殖抑制剤。
（３２）GAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤が、
BMS777607[N-(4-((2-アミノ-3-クロロピリジン-4-イル)オキシ)-3-フルオロフェニル)-4-エトキシ-1-(4-フルオロフェニル)-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリジン-3-カルボキサミド]、
R428[1-(6,7-ジヒドロ-5H-ベンゾ [2,3]シクロヘプタ [2,4-d]ピリダジン-3-イル)-3-N-[(7S)-7-ピロリジン-1-イル-6,7,8,9-テトラヒドロ-5H-ベンゾ [7]アンヌレン-3-イル]-1,2,4-トリアゾール-3,5-ジアミン]、及び
UNC569[1-((トランス-4-アミノシクロヘキシル)メチル)-N-ブチル-3-(4-フルオロフェニル)-1H-ピラゾロ [3,4-d]ピリミジン-6-アミン]
から選ばれる１種以上である、（３１）に記載の増殖抑制剤。
（３３）多能性幹細胞が、iPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、（３１）又は（３２）に記載の増殖抑制剤。
（３４）（３１）から（３３）の何れか一に記載の増殖抑制剤を含む、細胞培養培地。
（３５）（３１）から（３３）の何れか一に記載の増殖抑制剤と、基本培地とを含有する細胞用培地キット。
（３６）（ａ）（３４）に記載の細胞培養培地又は（３５）に記載の細胞用培地キットと、（ｂ）細胞培養装置とを含む、細胞培養システム。
（３７）（３４）に記載の細胞培養培地、（３５）に記載の細胞用培地キット、又は（３６）に記載の細胞培養システムのいずれかを用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法。
（３８）GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞の培養方法。
（３９）GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養する工程が、抗GAS6抗体及び／又はGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤の存在下で多能性幹細胞を培養する工程である、（３８）に記載の培養方法。
（４０）GAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤が、
BMS777607[N-(4-((2-アミノ-3-クロロピリジン-4-イル)オキシ)-3-フルオロフェニル)-4-エトキシ-1-(4-フルオロフェニル)-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリジン-3-カルボキサミド]、
R428[1-(6,7-ジヒドロ-5H-ベンゾ [2,3]シクロヘプタ [2,4-d]ピリダジン-3-イル)-3-N-[(7S)-7-ピロリジン-1-イル-6,7,8,9-テトラヒドロ-5H-ベンゾ [7]アンヌレン-3-イル]-1,2,4-トリアゾール-3,5-ジアミン]、及び
UNC569[1-((トランス-4-アミノシクロヘキシル)メチル)-N-ブチル-3-(4-フルオロフェニル)-1H-ピラゾロ [3,4-d]ピリミジン-6-アミン]
から選ばれる１種以上である、（３９）に記載の培養方法。
（４１）多能性幹細胞を培養する培地中に含まれる抗GAS6抗体の濃度が１０ng/ml以上１００ng/ml以下である、（３９）に記載の培養方法。
（４２）多能性幹細胞を培養する培地がBMS777607を含む場合、培地中に含まれるBMS777607の濃度が２ng/ml以上２０ng/ml以下であり、多能性幹細胞を培養する培地がR428を含む場合、培地中に含まれるR428の濃度が８ng/ml以上８０ng/ml以下であり、多能性幹細胞を培養する培地がUNC569を含む場合、培地中に含まれるUNC569の濃度が１ng/ml以上１０ng/ml以下である、（４０）に記載の培養方法。
（４３）多能性幹細胞が、iPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、（３８）から（４２）の何れか一に記載の培養方法。
（４４）多能性幹細胞が、アルブミンを含まない培地で培養される、（３８）から（４３）の何れか一に記載の培養方法。
（４５）多能性幹細胞が、血清を含まない培地で培養される、（３８）から（４４）の何れか一に記載の培養方法。
（４６）多能性幹細胞が、GAS6を含む培地で培養される、（３８）から（４５）の何れか一に記載の培養方法。
（４７）多能性幹細胞が、MEFで馴化した培地で培養される、（３８）から（４６）の何れか一に記載の培養方法。
　本発明の細胞培養培地を用いて細胞を培養することにより、多能性幹細胞などの細胞を効率よく増殖させることが可能となる。本発明の細胞培養培地によれば、フィーダー細胞を使用することなく細胞を培養することができるので、細胞を安全に培養することができる。
図１は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は各種タンパク質因子を添加した無血清培地におけるヒトiPS細胞の増殖効率をアルカリホスファターゼ染色で比較した結果を示す。 図２は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は各種タンパク質因子を添加した無血清培地におけるヒトiPS細胞の増殖効率をアルカリホスファターゼ染色で比較した結果を示す。 図３は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は各種タンパク質因子を添加した無血清培地におけるヒトiPS細胞の細胞数を計測して比較した結果を示す。 図４は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は各種タンパク質因子を添加した無血清培地におけるヒトiPS細胞の増殖効率をアルカリホスファターゼ染色で比較した結果を示す。 図５は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は各種タンパク質因子を添加した無血清培地におけるヒトiPS細胞の細胞数を計測して比較した結果を示す。 図６は、無血清培地、又はMEFで馴化した無血清培地においてマトリゲルなしで培養したヒトiPS細胞の増殖効率をアルカリホスファターゼ染色で比較した結果を示す。 図７は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は抗GAS抗体を添加したMEFで馴化した培地におけるヒトiPS細胞の細胞数を計測して比較した結果を示す。 図８は、無血清培地、MEFで馴化した無血清培地、又は各種GAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤を添加したMEFで馴化した培地におけるヒトiPS細胞の細胞数を計測して比較した結果を示す。 図９は、培養装置の各構成手段の配置の概略を示す。 図１０は、自動培養装置の観察装置のブロック構成図を示す。 図１１は、自動培養装置の主要部のハードウエアの構成を示す。 図１２は、細胞培養装置の細胞検出システムの構成を示す。 図１３は、培養装置内の各構成要素の配置の概略を示す。 図１４は、画像処理ユニットの詳細を示す。 図１５は、画像処理ユニットの実行する細胞抽出処理の一例を示す。
　以下、本発明の実施の形態について説明する。
　本発明の細胞培養培地は、成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）を含有し、血清を含まないことを特徴とする培地である。成長停止特異的タンパク質6（GAS6）を添加することにより、血清及びフィーダー細胞を用いることなくヒト多能性幹細胞の増殖を促進することができる。これにより、動物細胞、若しくは動物細胞により馴化された培養液のどちらにも暴露されていないヒト多能性幹細胞の培養が容易になる。
　培地中に含まれる成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）の濃度は細胞が増殖できる限り特に限定されないが、一般的には下限は、添加効果を考慮すると、０．０００１ng/ml、好ましくは０．００１ng/ml、より好ましくは０．０１ng/ml、さらに好ましくは０．１ng/ml、特に好ましくは１ng/ml、もっとも好ましくは２ng/mlである。上限は、コスト面を考慮すると、１００００ng/ml、好ましくは１０００ng/ml、より好ましくは５００ng/ml、さらに好ましくは４００ng/ml、特に好ましくは３００ng/ml、よりさらに好ましくは２００ng/ml以下であり、より特に特に好ましくは１００ng/ml以下である。濃度は一般的には１ｎｇ／ｍｌ以上２００ｎｇ／ｍｌ以下であり、特に好ましくは２ｎｇ／ｍｌ以上１００ｎｇ／ｍｌ以下である。
　本発明の細胞培養培地は、血清（即ち、血清由来成分）が含まれていない培地において細胞増殖を促進し、安定に細胞を培養できることが特徴である。本発明において使用できる培地としては、動物細胞の培地に用いられる培地を基礎培地として調製することができる。基礎培地としては、BME培地、BGJb培地、CMRL1066培地、Glasgow MEM培地、Improved MEM Zinc Option培地、IMDM培地、Medium 199培地、Eagle MEM培地、αMEM培地、DMEM培地、ハム培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、及びこれらの混合培地等動物細胞の培養に用いることのできる培地であれば特に限定されない。例えば、インスリンおよびトランスフェリンを添加した血清由来成分不含培地である、CHO-S-SFM II（GIBCO BRL社製）、Hybridoma-SFM（GIBCO BRL社製）、eRDF Dry Powdered Media（GIBCO BRL社製）、UltraCULTURETM（BioWhittaker社製）、UltraDOMATM（BioWhittaker社製）、UltraCHOTM（BioWhittaker社製）、UltraMDCKTM（BioWhittaker社製）などが挙げられる。ヒト多能性幹細胞の培養用として開発されたEssential8（Life Technologies社製）、STEMPRO hESC SFM（Life Technologies社製）、mTeSR1（Veritas社製）、TeSR2（Veritas社製）、ReproXF（リプロセル社製）などが最適な培地である。特に好ましくは、ＩＴＳ（インスリン、 トランスフェリン、セレン）、ヒトＦＧＦ２、ＴＧＦ－β１、２－リン酸アスコルビン酸マグネシウム、及び炭酸水素ナトリウムを添加したＤＭＥＭ／Ｆ１２（１：１）培地、又はEssential8（Life Technologies社製）を使用することができる。
　本発明の細胞培養培地には、さらにMEF分泌成分を添加することができる。MEF分泌成分としては、具体的には、デコリン（Decorin）、マトリックスメタロプロテアーゼ-3（Matrix Metalloproteinase-3（MMP3））、オステオポンチン（Osteopontin（OPN））、アポトーシスのTNF関連弱誘導因子受容体（TNF-related Weak Inducer of Apoptosis Receptor（TWEAK  R））、インスリン様成長因子結合タンパク質２（Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2））、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））からなる群より少なくとも1つ以上を添加することができる。
　成長停止特異的タンパク質6（GAS6）に加えて添加することができるMEF分泌成分の中でも好ましくは、デコリン（Decorin）、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））からなる群より少なくとも1つ以上を添加することができる。例えば、「GAS6とDecorin」、「GAS6とLGALS1」、「GAS6とIGF-1」、「GAS6とDecorinとLGALS1」、「GAS6とDecorinとIGF-1」、「GAS6とLGALS1とIGF-1」、又は「GAS6とDecorinとLGALS1とIGF-1」などの組み合わせで添加することができる。
　なお、デコリン（Decorin）、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））については単独で添加した場合でも細胞の増殖を促進する効果があるので、細胞培養培地に、デコリン（Decorin）、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））から選択される１以上の因子のみを添加することも可能である。
　上記したMEF分泌成分を添加する場合、培地中に含まれる各々の成分の濃度は細胞が増殖できる限り特に限定されないが、一般的には下限は、添加効果を考慮すると、０．０００１ng/ml、好ましくは０．００１ng/ml、より好ましくは０．０１ng/ml、さらに好ましくは０．１ng/ml、特に好ましくは１ng/ml、もっとも好ましくは２ng/mlである。上限は、コスト面を考慮すると、１００００ng/ml、好ましくは１０００ng/ml、より好ましくは５００ng/ml、さらに好ましくは４００ng/ml、特に好ましくは３００ng/ml、よりさらに好ましくは２００ng/ml以下であり、より特に特に好ましくは１００ng/ml以下である。濃度は一般的には１ｎｇ／ｍｌ以上２００ｎｇ／ｍｌ以下であり、特に好ましくは２ｎｇ／ｍｌ以上１００ｎｇ／ｍｌ以下である。
　本発明の細胞培養培地は、アルブミンを含まないことが好ましい。
　本発明の細胞培養培地には、トランスフェリン、脂肪酸、インスリン、コラーゲン前駆体、微量元素、2-メルカプトエタノール、又は3-チオールグリセロール、あるいはこれらの均等物などを適宜含有するものであり得る。
　本発明の培地は、また、脂肪酸又は脂質、アミノ酸（例えば、非必須アミノ酸）、ビタミン、増殖因子、サイトカイン、抗酸化剤、2-メルカプトエタノール、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類等を含有できる。例えば、2-メルカプトエタノールは、幹細胞の培養に適する濃度で使用される限り限定されないが、例えば約0.05～1.0mM、好ましくは約0.1～0.5mMの濃度で使用できる。
　上記の通り、GAS6を基本培地に添加することにより本発明の細胞培養培地を製造することができるが、GAS6と、基本培地とを含有する細胞用培地キットの形態で使用することもできる。即ち、GAS6と、基本培地とを別々に組み合わせてキットの形態で供給し、使用者が使用時にGAS6を基本培地に添加することにより、本発明の細胞培養培地を調製して使用することができる。
　さらに本発明によれば、（a）上記した細胞培養培地又は細胞用培地キットと、（b）細胞培養装置とを含む、細胞培養システムが提供される。
　細胞培養装置としては、上記した細胞培養培地又は細胞用培地キットを用いて細胞を培養できる装置であれば限定されないが、例えば、特開２００８－９２８１１号公報、特開２００８－９２８８２号公報及び特開２０１０－１４８３９１号公報（上記公報に記載の内容は本明細書の開示の一部として本明細書中に援用されるものとする）に記載されている細胞培養装置を使用することができる。
　本発明の一例においては、特開２００８－９２８１１号公報に記載されているような、細胞を培養する培養容器と、前記培養容器の細胞を撮像する撮像装置と、前記細胞を撮像する時に前記細胞に光を照射する光源手段と、前記顕微鏡を移動する移動手段とを備える細胞培養装置において、前記光源手段は、複数の光源を有しており、前記顕微鏡の位置に対応する前記光源を点灯させることを特徴とする細胞培養装置を使用することができる。細胞培養装置の構成の一例を図９に示す。
　細胞培養装置１は、細胞を培養する培養容器４と、細胞を撮像するための顕微鏡５と、顕微鏡５を移動させるための顕微鏡駆動装置６と、顕微鏡駆動装置６を制御するドライバ１０と、顕微鏡５の位置情報に基づいて光源基板に設けられた複数の光源３の特定光源に対する電源をオン状態にする切換え器７と、切り換え器７と光源３とを接続する光源配線９と、光源３を配列させた光源基板２と、これらを制御するコントローラ８とから構成される。また、培養装置は、コントローラ８に接続され、トラックボール又はキーボードからなる入力部２０を備えている。顕微鏡駆動装置６は、モータとボールねじ機構を有する駆動機構が備えられており、ボールねじ機構を介して顕微鏡５を２次元的に移動させることができる。また、ボールねじ機構には、ボールねじの回転量を検出し、それを顕微鏡５の位置情報に変換して検出するロータリーエンコーダなどからなる位置センサを有している。位置センサはボールねじの回転量を検出することにより、顕微鏡５の位置を２次元的に特定することができる。この顕微鏡５の位置情報は、ドライバ１０を介してコントローラ８に伝達される。ボールねじ機構は、らせん状の溝を有するボールねじと、その溝に沿って移動するスリーブとからなる。そのスリーブには顕微鏡５が設置されている。ボールねじを回転させることによりスリーブ及び顕微鏡５を直線的に移動させることができる。２つボールねじ機構をそれぞれ直角になるように備えることにより、スリーブ及び顕微鏡５を２次元的に移動させることができる。
　本発明の別の例においては、特開２００８－９２８８２号公報に記載されているような、細胞の培養器と、該培養器内の細胞を撮影するカメラと、該カメラの位置を前記培養器の撮影面に沿って前記培養器に対して相対的に移動する移動手段と、前記カメラで撮影された画像を記憶するメモリと、該メモリに記憶された画像を表示するディスプレイと、自動撮影モードとマニュアル撮影モードとを切り替え可能に形成された制御手段とを備え、
前記自動撮影モードは、前記移動手段を制御して予め定められた前記カメラの視野に対応させて前記撮影面を分割した複数の小区画の位置に前記カメラを走査し、前記カメラを制御して前記小区画単位で前記撮影面を撮影して撮影画像を前記メモリに格納し、前記メモリ内に格納された画像を読み出して前記撮影面の全体画像を前記ディスプレイに表示させる機能を有し、（a）前記マニュアル撮影モードは、入力手段から入力される操作指令に基づいて前記移動手段を制御して前記カメラにより任意の位置の前記撮影面の局所画像を撮影するとともに、撮影された局所画像を前記ディスプレイに表示させる機能を有してなるか、（b）前記マニュアル撮影モードは、入力手段により前記ディスプレイ上で指定された位置に基づいて、前記移動手段を制御して前記カメラの位置を移動して指定された位置の局所画像を撮影し、撮影された局所画像を前記ディスプレイに表示させる機能を有してなることを特徴とする自動培養装置を使用することができる。自動培養装置の構成の一例を図１０及び図１１に示す。
　図１１の斜視図に示すように、本自動培養装置は、インキュベータ１内に細胞の培養器である円形のシャーレ２を設置して構成され、インキュベータ１内は周知のとおり温度、CO2などのガス濃度が調整されている。シャーレ２は、スタンド３に支持された台板４上に設置され、台板４にはシャーレ２の底面を下方から観察するのに支障がない程度の開口５が設けられている。台板４の開口５の下方にシャーレ２内の細胞を撮影するCCDカメラ６が設けられている。CCDカメラ６は、細胞を観察可能な高倍率の対物レンズを備えている。なお、CCDカメラ６に代えてCMOSカメラを用いることができる。CCDカメラ６は、図示矢印のY方向に移動させるY軸アクチュエータ７に搭載されている。Y軸アクチュエータ７は、図示矢印のX方向に移動させるX軸アクチュエータ８に搭載されている。また、シャーレ２を挟んでCCDカメラ６に対向する位置に光源５４が配置され、光源５４はCCDカメラ６に固定され支持アーム１０の先端に取り付けられている。Y軸アクチュエータ７とX軸アクチュエータ８により、CCDカメラ６と光源５４の位置を、シャーレ２の底面に沿って任意の位置に相対的に移動する移動手段が構成されている。CCDカメラ６、Y軸アクチュエータ７、X軸アクチュエータ８及び光源５４は、パーソナルコンピュータ（PC）等のコンピュータ１１により制御されるようになっており、これらによって本発明の特徴部に係る観察装置が構成されている。
　コンピュータ１１は、コンピュータ本体１２と、ディスプレイ１３と、入力手段であるキーボード１４及びマウス１５等を接続して構成されている。コンピュータ本体１２は、CPU、メモリ、I/O等を備えて構成され、汎用コンピュータに必要なI/Oを備えて構成されている。
　本装置は、図１０に示すように、コンピュータ本体１２により構成される制御部２０を備え、制御部２０はインキュベータ１、ＣＣＤカメラ６、Y軸アクチュエータ７、X軸アクチュエータ８、ディスプレイ１３、キーボード１４、マウス１５に接続されている。キーボード１４には、割り込みスイッチ１４a、マニュアルスイッチ（X軸）１４b、マニュアルスイッチ（Y軸）１４cが設けられている。また、制御部２０には、CCDカメラ６で撮影された画像を記憶する画像メモリ２１と、撮影位置データメモリ２２が接続されている。また、制御部２０には、画像メモリ２１に記憶された画像を読み出してディスプレイ１３に表示する図示していない読出し手段と、CCDカメラ６による撮影を自動撮影モードとマニュアル撮影モードとに切り替えて制御する制御手段が備えられている。
　本装置を用いた動作の詳細は、特開２００８－９２８８２号公報の段落番号００２９～００５３に記載の通りである。
　本発明のさらに別の例においては、特開２０１０－１４８３９１号公報に記載されているような、細胞を培養するための培養器手段と、前記培養器手段から前記細胞の画像を取得する画像取得手段と、前記画像取得手段及び前記培養器手段のいずれか一方を移動させて前記画像取得手段の焦点を調整する焦点位置調整手段と、前記画像取得手段の複数の焦点位置で画像を取得するように前記画像取得手段を制御する制御手段とを備えた細胞培養装置の細胞検出システムであって、前記複数の焦点位置で取得された複数の画像から、細胞の辺縁が明瞭な画像を選択する画像選択手段と、前記画像選択手段が選択した細胞の辺縁が明瞭な第１の画像と、当該第１の画像の焦点位置から焦点をずらした位置で取得された第２の画像とで差分処理を施す抽出手段とを備えたことを特徴とする細胞検出システムを使用することができる。細胞検出システムの構成の一例を図１２～図１５に示す。
　図１２に示すように細胞培養装置１１はその内部が外部空間と遮断される箱型構造を有し、その内部に、細胞を培養する培養器１２と、この培養器１２内の細胞を撮影するためのCCDカメラ１３と、このCCDカメラ１３から得られる画像データを処理する画像処理ユニット１４と、画像データを画像処理ユニット１４に転送するためのコンバータ１５と、CCDカメラ１３又は培養器１２を移動するためのカメラ・培養器駆動装置１６と、カメラ・培養器駆動装置１６を任意の位置に移動するためのモータコントローラ１７と、CCDカメラ１３の上部に設置した光源１８から構成されている。培養器１２は透明な材質で成型されており、CCDカメラ１３は、光源１８から照射され、培養器１２を透過した透過光を撮影するように構成されている。なお、上記構成において、CCDカメラ１３は４０万画素程度のCCDデバイスを備えていることが望ましく、また光源１８は特に限定する必要はないが、本実施例においてはLEDが望ましい。
　図１３は、培養装置１１内の各構成要素の配置の概略を示す図であり、図示する例では、培養装置１１の中に培養器12が固定され、CCDカメラ１３を移動する場合の配置を示している。図１３に示すように、培養装置１１内の上面部に光源１８が取り付けられている。この光源１８の下側に培養器１２が配置され、さらにこの培養器１２の中央付近下側に対物レンズ２２を備えたCCDカメラ１３が配置されている。CCDカメラ１３は移動用ガイド２１に上下動可能に取り付けられており、CPU３２から出力される指令によって動作させられるカメラ・培養器駆動装置１６の駆動制御によって、移動用ガイド２１に沿って上下に移動し、焦点位置を上下方向に変更して培養器１２内の細胞の画像を撮影する。なお、CCDカメラ１３と対物レンズ２２とを組み合わせた撮像装置は、培養器１２の中心付近に位置する底面近傍の微小面積、例えば１．５mm(縦)×２．０mm(横)程度の微小領域を撮影可能なように構成することが望ましい。
　図１４は、図１２の画像処理ユニット１４の詳細を示す図である。画像処理ユニット１４は、データバス３１を介して演算処理を行うCPU３２と、このCPU３２が一時的に記憶領域として使用する主メモリ３３と、画像データや位置情報を格納する外部記憶装置３４と、モータコントローラ１７と通信するための通信ポート３５と、細胞抽出後の画像を表示するモニタ３６と、ユーザの入力を受け付けるキーボード３７とから構成される。この画像処理ユニット１４において、CCDカメラ１３からの画像はコンバータ１５を介して取り込み、種々の画像処理を行なう。
　図１５は、画像処理ユニットにより実行される細胞抽出処理の一例を示すフローチャート図である。図１５に記載された一連のステップは、予めインストールされたソフトウェアによって、細胞培養過程における所定時間間隔で、例えば１回／日の頻度で繰り返して、CPU３２から出力される指令によって図１２～図１４に記載されたユニットが順次駆動制御されて実行されるものである。なお、図１５に記載された一連のステップを所定時間間隔で繰返し実行するための計時はCPU３２に備えられたクロック発生器の出力を用いることができる。図１５に示す細胞抽出処理の詳細は、特開２０１０－１４８３９１号公報の段落番号００１６～００２８に記載の通りである。
　本発明によれば、上記した本発明の細胞培養培地、細胞用培地キット、又は細胞培養システムを用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法が提供される。さらには、当該細胞培養培地、細胞用培地キット、又は細胞培養システムのいずれかを用いて細胞を培養することにより、安全な多能性幹細胞が提供される。
　本発明によれば、上記した本発明の細胞培養培地を用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法が提供される。
　本発明で培養される細胞の種類は特に限定されず、多分化能と自己複製能を併せ持つ幹細胞又は分化細胞の何れもでもよいが、好ましくは幹細胞であり、さらに好ましくは多能性幹細胞である。本発明において、「多能性幹細胞」とはインビトロにおいて培養することが可能で、かつ生体を構成するすべての細胞に分化しうる多分化能を有する細胞をいう。具体的には、胚性幹細胞（ES細胞）、胎児の始原生殖細胞由来の多能性幹細胞（EG細胞：Proc Natl Acad Sci USA. 1998, 95:13726-13731）、精巣由来の多能性幹細胞（GS細胞：Nature. 2008, 456:344-349）、体細胞由来人工多能性幹細胞（induced pluripotent stem cells;iPS細胞）等が挙げられる。また、培養する細胞の由来する動物種は特に限定されず、任意の哺乳類などに由来する細胞を使用することができ、例えば、マウス由来の細胞またはヒト由来の細胞などを使用することができる。なお、細胞の培養は、通常の細胞培養の条件下で行うことができる。
　本発明の好ましい態様においては、細胞をフィーダー細胞の非存在下において培養することができる。
　多能性幹細胞などをフィーダー細胞を使用することなく培養する場合、細胞の足場となる培養基質でコートした培養容器を用いて培養を行うことができる。細胞の足場となる培養基質としては、細胞培養用であれば特に限定されないが、例えば、ゼラチン、Engelbreth-Holm-Swarm（EHS）マウス肉腫から産生される単離した基底膜成分であるマトリゲル、胎盤マトリクス、メロシン、テネイシン、ヘパリン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、アグレカン、ビグリカン、トロンボスポンジン、ラミニン（ラミニン-511、ラミニン-111、ラミニン-332）、フィブロネクチン、ビトロネクチン、コラーゲン、E-カドヘリン、デコリン、合成ペプチド、合成ポリマー、MEF又はヒト血清又は脱落膜間葉系細胞由来の細胞外マトリクスなどが挙げられる。
　また、別の態様によれば、上記したような細胞外マトリックスでコーティングされていない表面を有する培養基材上において、本発明の細胞培養培地を用いて細胞を培養することもできる。
　本発明の別の態様によれば、成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）のアミノ酸配列をコードする塩基配列を導入したフィーダー細胞の存在下において細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法が提供される。さらに本発明によれば、成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）のアミノ酸配列をコードする塩基配列を導入したフィーダー細胞が提供される。即ち、GAS6遺伝子発現ベクターを導入したフィーダー細胞は、ヒト多能性幹細胞のオンフィーダー培養に利用したり、培地を馴化するのに用いることも可能である。フィーダー細胞の種類は限定されることはないが、例えば、MEF（mouse embryonic fibroblast)や樹立されたSTO細胞株（ＡＴＣＣ寄託番号　ＣＲＬ－１５０３）、またSTO細胞にネオマイシン抵抗性遺伝子発現ベクターとLIF発現ベクターを安定的に組み込んだSNL細胞などのマウス由来細胞や、線維芽細胞、胎盤細胞、骨髄細胞、子宮内膜細胞などのヒト由来細胞が挙げられる。
　さらに本発明によれば、培地中に含まれる成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）を検出又は定量することを含む、細胞を培養するための培地を評価する方法が提供される。GAS6タンパク質を検出および定量する方法としては、SDS-PAGEや二次元電気泳で分離した後にMS解析や抗GAS6抗体を用いてウエスタンブロット法により検出することができ、また酵素免疫測定法（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay：ELISA）により定量することも可能である。
　以下の実施例に記載の通り、抗GAS6抗体又はGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤の存在下においてiPS細胞を培養することにより、iPS細胞の増殖を抑制できることが判明した。従って、本発明によれば、抗GAS6抗体又はGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤を含む、多能性幹細胞の増殖抑制剤が提供される。
　本発明によればさらに、多能性幹細胞の増殖を抑制するために使用するための抗GAS6抗体、並びに多能性幹細胞の増殖を抑制するために使用するためのGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤が提供される。
　本発明によればさらに、多能性幹細胞の増殖抑制剤の製造のための抗GAS6抗体の使用、並びに多能性幹細胞の増殖抑制剤の製造のためのGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤の使用が提供される。
　本発明の増殖抑制剤を含む細胞培養培地、本発明の増殖抑制剤と基本培地とを含有する細胞用培地キット、並びに本発明の細胞培養培地又は細胞用培地キットと細胞培養装置とを含む細胞培養システムも本発明の範囲内である。さらに、本発明の細胞培養培地、細胞用培地キット、又は細胞培養システムのいずれかを用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法も本発明の範囲内である。増殖抑制剤以外の構成要素及び好ましい範囲は、本明細書中上記した通りである。
　更に本発明によれば、GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞の培養方法が提供される。本発明の多能性幹細胞の培養方法はインビトロで行うことができる。GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養することによって、多能性幹細胞の増殖を抑制した状態で多能性幹細胞の培養を行うことができる。即ち、上記した本発明による多能性幹細胞の培養方法は、GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞の増殖を抑制した状態で多能性幹細胞の培養を行う方法である。多能性幹細胞の具体例は、本明細書中上記の通りであり、好ましくは、iPS細胞である。
　本発明で使用する抗ＧＡＳ６抗体の種類は、特に限定されず、モノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でもよい。抗ＧＡＳ６抗体としては、市販の抗体でもよく、例えば、Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社、Ｓａｎｔａ　Ｃｒｕｚ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社などから入手可能である。多能性幹細胞を培養する培地中に含まれる抗GAS6抗体の濃度は、特に限定されないが、好ましくは１ng/ml以上１００ng/ml以下であり、より好ましくは１０ng/ml以上１００ng/ml以下である。
　本発明で使用するGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤の種類は、特に限定されないが、TAMファミリーの受容体型チロシンキナーゼ（ＴＹＲＯ３、ＡＸＬ、ＭＥＲ）の阻害剤であることが好ましい。具体的には、BMS777607[N-(4-((2-アミノ-3-クロロピリジン-4-イル)オキシ)-3-フルオロフェニル)-4-エトキシ-1-(4-フルオロフェニル)-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリジン-3-カルボキサミド]、R428[1-(6,7-ジヒドロ-5H-ベンゾ [2,3]シクロヘプタ [2,4-d]ピリダジン-3-イル)-3-N-[(7S)-7-ピロリジン-1-イル-6,7,8,9-テトラヒドロ-5H-ベンゾ [7]アンヌレン-3-イル]-1,2,4-トリアゾール-3,5-ジアミン]、及びUNC569[1-((トランス-4-アミノシクロヘキシル)メチル)-N-ブチル-3-(4-フルオロフェニル)-1H-ピラゾロ [3,4-d]ピリミジン-6-アミン]などを挙げることができる。
　BMS777607を使用する場合における培地中に含まれるBMS777607の濃度は、一般的には１ng/ml以上１００ng/ml以下であり、好ましくは２ng/ml以上２０ng/ml以下である。
R428を使用する場合における培地中に含まれるR428の濃度は、一般的には１ng/ml以上５００ng/ml以下であり、好ましくは８ng/ml以上８０ng/ml以下である。UNC569を使用する場合における培地中に含まれるUNC569の濃度は、一般的には０．５ng/ml以上１００ng/ml以下であり、好ましくは１ng/ml以上１０ng/ml以下である。
　GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養する工程としては、抗GAS6抗体及び／又はGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤の存在下で多能性幹細胞を培養する工程であることが好ましい。
　GAS6の作用を抑制する条件下で多能性幹細胞を培養する場合、多能性幹細胞は、アルブミンを含まない培地で培養する態様、血清を含まない培地で培養する態様、GAS6を含む培地で培養する態様、MEFで馴化した培地で培養する態様が好ましく、これらの態様を組み合わせてもよい。
　以下の実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
(１)馴化した無血清培地におけるタンパク質の検出
　馴化培地（ＣＭ）は、マイトマイシン処理により不活性化したマウス胎児線維芽細胞（ＭＥＦ細胞）を用いて無血清培地から調製した。マイトマイシン処理により不活性化したマウス胎児線維芽細胞（ＭＥＦ細胞）を、ＭＥＦ用培地（１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭ培地）中に約５００，０００　細胞／直径６０ｍｍディッシュの細胞密度で播種した。細胞を少なくとも１６時間培養した後、ＰＢＳ（－）、次いで、Essential8培地（インビトロジェン）(以下、この無血清培地をＥ８培地とも称する)で洗浄し、培地を同じ無血清培地に置換した。
　培地を置換した後、２４時間ＣＯ２インキュベーター内でインキュベート（３７℃、５％ＣＯ２濃度）した後、培地を回収し、馴化培地を得た。
　馴化していない無血清培地と馴化した無血清培地を抗サイトカイン抗体アレイにより比較解析した。RayBioTM Mouse Cytokine Antibody array G-Series 2000（RayBiotech社）のアレイ上に100μL Blocking Buffer（キット付属）をアプライし、25℃、30分間インキュベーションした。アレイ上に150μLの各培地（希釈倍率：1.5、タンパク質換算155μg程度）をアプライし、10℃、16時間インキュベートした。その後、Wash Buffer I（キット付属、25℃で2分間×3回、25℃で10分間×2回）、Wash Buffer II（キット付属、25℃で10分間×2回）で洗浄した。洗浄後、アレイ上に70μL Biotin-Conjugated Antibodyをアプライし、25℃で2時間インキュベートした。アレイをWash Buffer I（25℃で2分間）、Wash Buffer II(25℃で2分間×2回）洗浄した後、アレイ上に70μL Fluorescent Dye-conjugated Strepyavidinをアプライし、25℃、1.5時間インキュベートした。アレイをWash Buffer I（25℃で2分間）、Wash Buffer II(25℃で2分間×2回）、Wash BufferI（25℃で10分間×2回）、超純水（25℃で1分間）洗浄した後、アレイを1000rpm、25℃、3分間遠心し、20分間遮光下にて乾燥させた。アレイ用スキャナーGenePixTM 4400A（Molecular Devices, LLC）を用いてスキャニングを行い、解析ソフトウェアArray-Pro Analyzer Ver. 4.5（Media Cybernetics, Inc）を用いて、得られたイメージ画像から各スポットにおける蛍光強度値の定量化を行った。
　その結果、馴化した無血清培地において特異的に、Decorin、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）、Osteopontin（OPN）、TWEAK  R、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）、galectin 1（LGALS1）、insulin-like growth factor-1（IGF-1）、GAS6タンパク質が検出された。
（２）サイトカインの添加試験１
（２－１）馴化していない無血清培地又は馴化した無血清培地の場合
　実験に供したヒトiPS細胞（201B7）は、iPSアカデミアジャパンより入手した。ヒトiPS細胞の調製は、フィーダー細胞としてマイトマイシン処理で不活性化したマウス胎児線維芽細胞を播いたプラスチック培養ディッシュの上で維持培養した。培地は、D-MEM/F12（Sigma D6421）に終濃度20％のKNOCKOUTTM SR、0.1 mM NEAA（non-essential amino acids）、2 mM L-グルタミン、5 ng/ml ヒト basic FGF及び0.1 mM 2-メルカプトエタノールを添加したものを用い、37℃にてCO2インキュベーター内で培養した。継代は6～7日毎に行い、解離液（コラゲナーゼ溶液）を用いて、ヒトiPS細胞のコロニーをフィーダー層から解離し、ピペット操作で20～50個程度の小塊にした後、新しいフィーダー細胞層の上に播いた。フィーダー細胞上で維持培養したヒトiPS細胞を、解離液で解離し、ピペット操作で20から50個程度の小塊にし、300rpmで5分間遠心処理によりiPS細胞を回収した後、ゼラチンでコートした培養ディッシュ上で30分インキュベートすることによりMEF除去した後、マトリゲル（登録商標）（ＢＤ社）でコーティングされた培養ディッシュに、4分の1に分割して播種した。培地は、MEFで馴化していない無血清培地（Ｅ８培地）と、その培地をMEFで馴化した培地を用いて比較した。
　増殖性を比較した結果を表１に示す。また、各因子を添加し、２日間培養後、アルカリフォスファターゼで染色して観察した結果を図１に示す。馴化した培地では、馴化していない培地に比べ、ヒトiPS細胞の増殖効率の向上が認められた。
（２－２）
　Decorin、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）、Osteopontin（OPN）、TWEAK  R、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）、galectin 1（LGALS1）、又はinsulin-like growth factor-1（IGF-1）を2ng/ml又は100ng/mlの濃度で、無血清培地（Ｅ８培地）に添加し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。
　増殖性を比較した結果を表１に示し、アルカリフォスファターゼで染色して観察した結果を図１及び図２に示す。Decorin、galectin 1（LGALS1）、insulin-like growth factor-1（IGF-1）にヒトiPS細胞の増殖促進効果が認められた。Decorinはヒト多能性幹細胞の培養において培養基材のコーティング基質として使用できることが報告されており（WO9920741）、galectin 1はマウスES細胞の増殖を促進することが報告されており（KR2010130677A）、IGF-1についてはSTEMPRO hESC SFM（Life Technologies社製）等で培地に添加されているものである。
(２－３)
　GAS6を2ng/ml又は100ng/mlの濃度で、無血清培地（Ｅ８培地）に添加し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。増殖性を比較した結果を表１に示し、アルカリフォスファターゼで染色して観察した結果を図２に示す。その結果、GAS6のヒトiPS細胞の増殖促進効果が確認できた。
(２－４)
　GAS6、Decorin、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）、Osteopontin（OPN）、TWEAK  R、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）、galectin 1（LGALS1）、insulin-like growth factor-1（IGF-1）の全部を各々2ng/ml又は100ng/mlの濃度で、無血清培地（Ｅ８培地）に添加し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。GAS6のみを添加した培地に対して増殖性を比較した結果を表１に示し、アルカリフォスファターゼで染色して観察した結果を図２に示す。GAS6のみを添加した培地と比較してさらにヒトiPS細胞の増殖促進効果が認められた。
（３）サイトカインの添加試験２
　培地として、以下の培地を使用し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。
MEFで馴化していない無血清培地（Ｅ８培地）；
上記Ｅ８培地をMEFで馴化した培地（Ｅ８ＣＭ）；
Decorin（100ng/ml）、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）（2ng/ml）、GAS6（2ng/ml）、Osteopontin（OPN）（100ng/ml）、TWEAK  R（2ng/ml）、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）（2ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（2ng/ml）、insulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）又はBSA(100ng/ml) の何れか１種を添加したＥ８培地；
Decorin（100ng/ml）、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）（2ng/ml）、GAS6（2ng/ml）、Osteopontin（OPN）（100ng/ml）、TWEAK  R（2ng/ml）、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）（2ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（2ng/ml）、及びinsulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）の全てを添加したＥ８培地（Ｅ８＋８）；
Ｅ８培地をMEFで馴化した培地に、Decorin（100ng/ml）、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）（2ng/ml）、GAS6（2ng/ml）、Osteopontin（OPN）（100ng/ml）、TWEAK  R（2ng/ml）、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）（2ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（2ng/ml）、及びinsulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）の全てを添加した培地（Ｅ８ＣＭ＋８）；
Decorin（100ng/ml）、GAS6（2ng/ml）、Osteopontin（OPN）（100ng/ml）、TWEAK  R（2ng/ml）、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）（2ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（2ng/ml）、及びinsulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）を添加したＥ８培地(Ｅ８＋８－ＭＭＰ３)；
Decorin（100ng/ml）、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）（2ng/ml）、GAS6（2ng/ml）、TWEAK  R（2ng/ml）、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）（2ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（2ng/ml）、及びinsulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）を添加したＥ８培地（Ｅ８＋８－ＯＰＮ）；
　細胞の増殖性を比較した結果を表１に示す。また、上記（２－１）に記載の通り、細胞をアルカリフォスファターゼで染色し、細胞数を計測した。Ｅ８培地を用いた場合の細胞数を１として、他の培地を用いた場合の細胞数の比率を求めた結果を図３に示す。
（４）サイトカインの添加試験３
　培地として、以下の培地を使用し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。
MEFで馴化していない無血清培地（Ｅ８培地）；
上記Ｅ８培地をMEFで馴化した培地（Ｅ８ＣＭ）；
Decorin（100ng/ml）、GAS6（100ng/ml）、Osteopontin（OPN）（100ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（100ng/ml）、insulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）又はBSA(100ng/ml) の何れかを添加したＥ８培地；
Decorin（100ng/ml）、Matrix Metalloproteinase-3（MMP3）（100ng/ml）、GAS6（100ng/ml）、Osteopontin（OPN）（100ng/ml）、TWEAK  R（100ng/ml）、Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2）（100ng/ml）、galectin 1（LGALS1）（100ng/ml）、及びinsulin-like growth factor-1（IGF-1）（100ng/ml）の全てを添加したＥ８培地;
　細胞の増殖性を比較した結果を表１に示し、アルカリフォスファターゼで染色して観察した結果を図４に示す。GAS6を添加した培地では、ヒトiPS細胞の増殖効率の向上が認められた。また、細胞をアルカリフォスファターゼで染色し、細胞数を計測した。Ｅ８培地を用いた場合の細胞数を１００として、他の培地を用いた場合の細胞数の比率を求めた結果を図５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（５）マトリゲルについて
　マトリゲル（登録商標）（ＢＤ社）でコーティングされた培養ディッシュの代わりに、マトリゲル（登録商標）（ＢＤ社）でコーティングされていない培養ディッシュを用いて、上記（２－１）と同様に、馴化していない無血清培地又は馴化した無血清培地を用いて、ヒトiPS細胞の増殖性を比較した。細胞をアルカリフォスファターゼで染色して観察した結果を図６に示す。馴化した培地では、マトリゲルでコーティングされていない培養ディッシュを用いた場合でも、細胞は増殖できた。
（６）抗GAS6抗体について
　マトリゲル（登録商標）（ＢＤ社）でコーティングされた培養ディッシュを用いて、MEFで馴化した無血清培地（Ｅ８培地）に１００ng/mlの抗GAS6抗体（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社）を添加し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。細胞をアルカリフォスファターゼで染色し、細胞数を計測した。MEFで馴化した培地を用いた場合の細胞数を１００として、他の培地を用いた場合の細胞数の比率を求めた結果を図７に示す。抗GAS6抗体を添加することにより、MEFで馴化した培地での細胞の増殖性は低下した。
（７）抗GAS6抗体及びGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤について
　マトリゲル（登録商標）（ＢＤ社）でコーティングされた培養ディッシュを用いて、MEFで馴化した無血清培地（Ｅ８培地）に、１０ng/ml又は１００ng/mlの抗GAS6抗体（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社）、あるいは各種GAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤、BMS777607（Ｓａｎｔａ　Ｃｒｕｚ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社）（２ng/ml又は２０ng/ml）、R428（Ｓｙｎｋｉｎａｓｅ社）（８ng/ml又は８０ng/ml）、UNC569（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ社）（１ng/ml又は１０ng/ml）を添加し、上記（２－１）と同様にヒトiPS細胞の増殖への影響を調べた。いずれも、ＤＭＳＯに溶解した後、0.22μｍのフィルターによりフィルター滅菌処理を行い培地量に対し１／１０００量添加した。細胞をアルカリフォスファターゼで染色し、細胞数を計測した。MEFで馴化した培地を用いた場合の細胞数を１００として、他の培地を用いた場合の細胞数の比率を求めた結果を図８に示す。抗GAS6抗体又は各種GAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤を添加することにより、MEFで馴化した培地での細胞の増殖性は低下した。

Claims (19)

  1. 成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）を含有し、血清を含まない細胞培養培地。
  2. 培地中に含まれる成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）の濃度が２ｎｇ／ｍｌ以上１００ｎｇ／ｍｌ以下である、請求項１に記載の細胞培養培地。
  3. さらに、デコリン（Decorin）、マトリックスメタロプロテアーゼ-3（Matrix Metalloproteinase-3（MMP3））、オステオポンチン（Osteopontin（OPN））、アポトーシスのTNF関連弱誘導因子受容体（TNF-related Weak Inducer of Apoptosis Receptor（TWEAK  R））、インスリン様成長因子結合タンパク質２（Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2））、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））からなる群より少なくとも1つ以上を含有する、請求項１又は２に記載の細胞培養培地。
  4. 細胞がiPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、請求項１から３の何れか一項に記載の細胞培養培地。
  5. 成長停止特異的タンパク質6（Growth arrest-specific 6；GAS6）と、基本培地とを含有する細胞用培地キット。
  6. さらに、デコリン（Decorin）、マトリックスメタロプロテアーゼ-3（Matrix Metalloproteinase-3（MMP3））、オステオポンチン（Osteopontin（OPN））、アポトーシスのTNF関連弱誘導因子受容体（TNF-related Weak Inducer of Apoptosis Receptor（TWEAK  R））、インスリン様成長因子結合タンパク質２（Insulin-like growth factor-binding protein 2（IGFBP2））、ガレクチン1(galectin 1（LGALS1）)、及びインスリン様成長因子-1（insulin-like growth factor-1（IGF-1））からなる群より少なくとも1つ以上を含有する、請求項５に記載の細胞用培地キット。
  7. 細胞がiPS細胞である、請求項５又は６に記載の細胞用培地キット。
  8. （ａ）請求項１から４の何れか一項に記載の細胞培養培地又は請求項５から７の何れか一項に記載の細胞用培地キットと、（ｂ）細胞培養装置とを含む、細胞培養システム。
  9. 請求項１から４の何れか一項に記載の細胞培養培地、請求項５から７の何れか一項に記載の細胞用培地キット、又は請求項８に記載の細胞培養システムのいずれかを用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法。
  10. 細胞をフィーダー細胞の非存在下において培養する、請求項９に記載の培養方法。
  11. 細胞外マトリックスでコーティングされていない表面を有する培養基材上において細胞を培養する請求項９又は１０に記載の培養方法。
  12. 細胞外マトリックスでコーティングされている培養基材上において細胞を培養する請求項９又は１０に記載の培養方法。
  13. 抗GAS6抗体又はGAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤を含む、多能性幹細胞の増殖抑制剤。
  14. GAS6受容体型チロシンキナーゼ阻害剤が、
    BMS777607[N-(4-((2-アミノ-3-クロロピリジン-4-イル)オキシ)-3-フルオロフェニル)-4-エトキシ-1-(4-フルオロフェニル)-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリジン-3-カルボキサミド]、
    R428[1-(6,7-ジヒドロ-5H-ベンゾ [2,3]シクロヘプタ [2,4-d]ピリダジン-3-イル)-3-N-[(7S)-7-ピロリジン-1-イル-6,7,8,9-テトラヒドロ-5H-ベンゾ [7]アンヌレン-3-イル]-1,2,4-トリアゾール-3,5-ジアミン]、及び
    UNC569[1-((トランス-4-アミノシクロヘキシル)メチル)-N-ブチル-3-(4-フルオロフェニル)-1H-ピラゾロ [3,4-d]ピリミジン-6-アミン]
    から選ばれる１種以上である、
    請求項１３に記載の増殖抑制剤。
  15. 多能性幹細胞が、iPS細胞（induced pluripotent stem cells）である、請求項１３又は１４に記載の増殖抑制剤。
  16. 請求項１３から１５の何れか一項に記載の増殖抑制剤を含む、細胞培養培地。
  17. 請求項１３から１５の何れか一項に記載の増殖抑制剤と、基本培地とを含有する細胞用培地キット。
  18. （ａ）請求項１６に記載の細胞培養培地又は請求項１７に記載の細胞用培地キットと、（ｂ）細胞培養装置とを含む、細胞培養システム。
  19. 請求項１６に記載の細胞培養培地、請求項１７に記載の細胞用培地キット、又は請求項１８に記載の細胞培養システムのいずれかを用いて細胞を培養する工程を含む、細胞の培養方法。
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