KR20240007690A - 다당류-단백질 접합체의 흡착을 개선시키는 방법 및 그로부터 수득된 다가 백신 제제 - Google Patents

다당류-단백질 접합체의 흡착을 개선시키는 방법 및 그로부터 수득된 다가 백신 제제 Download PDF

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Abstract

본 발명은 안정한 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 제제의 제조 방법을 제공한다. 본 안정한 제제는 각 접합체에 대하여 최적의 흡착률(%)을 보이며, 여기서 응집은 i) 조합된 흡착에 의해 달리 더 낮은 흡착률(%)을 보이는 접합체에 대한 개별적 또는 별개의 흡착 ii) 중성 pH에서 산성 pH로의 pH 이동을 동반한 히스티딘-숙신산 완충제 시스템 iii) 0.5 내지 약 1.4의 단백질에 대한 다당류의 비 iv) 제제화 용기에서 6날 러쉬톤 유형의 터빈 임펠라의 사용에 의해 방지될 수 있다.

Description

다당류-단백질 접합체의 흡착을 개선시키는 방법 및 그로부터 수득된 다가 백신 제제{METHODS FOR IMPROVING THE ADSORPTION OF POLYSACCHARIDE-PROTEIN CONJUGATES AND MULTIVALENT VACCINE FORMULATION OBTAINED THEREOF}
스트렙토코쿠스 뉴모니아에(Streptococcus pneumoniae)는 아동에서의 박테리아성 폐렴, 뇌수막염, 및 패혈증의 주된 원인이다. 최근 에스. 뉴모니아에(S. pneumoniae)에 의해 유발된 아동 사망은 그 범위가 전세계적으로 매년 70만 내지 100만 건에 달하는 것으로 추정된다. 2000년에는 약 1,450만 건의 중증 폐렴구균성 질환 에피소드 (대략적인 범위 1,110만 내지 1,800만 건)가 발생한 것으로 추정되었다. 폐렴구균성 질환은 1-59개월된 아동 중 약 82만 6천 건의 사망 (58만 내지 92만 6천 건)을 유발하였고, 그 중 9만 천 건 (6만 3천 내지 10만 건)은 HIV 양성에서 일어났고, 73만 5천 건 (51만 내지 82만 건)은 HIV 음성 아동에서 일어났다.
수년간 허가를 받아 온 다가 폐렴구균성 다당류 백신은 성인, 특히, 노인, 및 위험이 높은 대상체에서 폐렴구균성 질환을 예방하는 데 가치가 있는 것으로 입증되어 왔다. 그러나, 영아 및 유아는 비접합된 폐렴구균성 다당류에 대해 충분하게 반응하지 못한다. 유아 및 영아 시기에 침습성 폐렴구균성 질환을 유발하는 가장 빈번하게 단리되는 7가지의 혈청형 (4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F 및 23F)을 함유하는 폐렴구균성 접합체 백신인 프레브나르(Prevnar)®가 2000년 2월 미국에서 최초로 허가받았다.
추가의 프레브나르™ 13 (와이어스(Wyeth))은 1, 3, 4, 5, 7F, 9V, 14, 18C 및 23F 이외에도 혈청형 6A, 6B, 19A, 19F로부터의 다당류의 접합체를 함유하는 승인받은 백신이다. 신플로릭스(Synflorix)™ (GSK)는 1, 4, 5, 6B, 7F, 9V, 14, 18C, 19F, 및 23F를 보호할 뿐만 아니라, 19A & 6A도 교차 보호하는 것인 승인받은 또 다른 백신이다.
백신 제제는 일반적으로 긴 저장 수명 및 다회 투약용 용기 사용이라는 요구 사항을 충족시키기 위해서는 안정하고, 균일한 일관성을 가져야 한다. 다당류-단백질 접합체를 비롯한, 단백질 기반의 백신은 단백질이 응집 및 침전되기 쉽고, 이로 인해 침전된 단백질 생성물의 이용불가능에 기인하여 백신의 총 유효 농도는 더 낮아질 수 있다. 특히, 다당류-단백질 접합체 백신은 캐리어 단백질 단독인 것보다도 응집 경향이 더 강한 것으로 보인다 (문헌 [Berti et al, 2004, Biophys J 86:3-9] 참조). 다당류-단백질 접합체 백신을 위한 제제를 선택하는 것이 단백질 응집에 크게 영향을 줄 수 있다. 문헌 [Ho et al., 2001, Vaccine 19:716-725]를 참조한다.
전세계적으로 수개의 현존 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 조성물이 개발되었음에도 불구하고, 관련 기술분야에서는 개별 접합체의 높은 흡착을 제공하고, 다당류-단백질 접합체를 갖는 면역원성 조성물의 응집/침전은 이루어지지 않는 백신 제제가 계속해서 요구되고 있다.
이러한 다가 폐렴구균성 백신에서 전통적으로 사용된 애주번트는 알루미늄 염, 예컨대, 수산화알루미늄 및 인산알루미늄이었다. 실험상의 다른 애주번트 다수가 공지되어 있지만, 알루미늄 염에의 흡착은 가장 일반적인 백신 애주번트 제제에서도 계속해서 유지된다. 비록 알루미늄 염이 광범위하게 사용되고는 있지만, 상기 알루미늄 염이 특정 항원과 항상 화합성일 수 있는 것은 아니며, 이로 인해 다당류-단백질 접합체의 알럼 상의 흡착률(%) 또는 항원성과 관련하여 유의적으로 변동될 수 있다.
알루미늄 애주번트에 흡착된 접합체 백신 후보의 면역학적 특성 및 안정성은 i) 각 항원의 항원성, ii) 접합에 사용된 캐리어 단백질 유형, 및 iii) 사용된 애주번트 유형과 같은 다양한 파라미터에 의존한다. 가장 중요하게는, 항원의 애주번트 상에의 흡착 정도가 제제화 프로세스의 로트 대 로트의 일관성 및 백신 생성물의 효능에 대하여 미칠 수 있는 그의 영향력을 입증한 중요한 파라미터 중 하나인 것으로 앞서 보고된 바 있다. 추가로, 다당류-단백질 접합체의 흡착률(%)은 제제 보관시, 또는 예컨대, 온도 이탈과 같은 불리한 상황하에서는 추가로 하락할 수 있다. 2003년 11월 17일-21일에 개최된 폐렴구균성 접합체 백신의 제조 & 관리를 위한 생물학적 표준, 권고 사항에 대한 WHO 전문 위원회의 제54차 회의(WHO Expert Committee on Biological Standardization, Recommendations for the production & control of Pneumococcal conjugate vaccines,17-21 November 2003); 문헌 [Carl E. Frasch, Session IV: Conjugate Vaccines; Vaccine Technology II;Portugal. 2008]을 참조한다.
폐렴구균성 다당류-단백질 접합체에 대한 유럽 규제 기관(European regulatory agency: EMEA)의 가이드라인에 따르면, 흡착 완전성 (비결합 접합체 비율(%))은 알럼 함량, 멸균성, 아이덴티티 및 유리 다당류 함량과 함께 중요한 품질 관리 파라미터로서 간주되어야 한다. 신플로릭스 2009, 절차 번호 EMEA/H/C/000973에 대한 사정 보고서를 참조한다. WHO는 이들 백신 중의 적어도 80%의 항원이 흡착되도록 알럼 침전된 항원 (예컨대, 디프테리아 및 파상풍 톡소이드)에 대한 흡착을 최대화시킬 것을 권고하고 있다.
다당류-단백질 접합체 제조 동안, 제제는 다당류-다당류 유형, 단백질-단백질 유형 또는 다당류-단백질 유형의 응집체로 구성될 수 있다. 이러한 응집은 또한 완제품에서도 관찰되며, 이로 인해 다당류-단백질 접합체(들) 백신의 충전된 바이알 중 4% 내지 10%가 불합격이 되는 바, 이는 접합체 백신의 안정성 및 효능에 영향을 준다.
다당류 및 그의 접합체의 응집 및 안정성과 관련하여 상기 논의된 한계를 고려하면, 하류 프로세싱에 걸쳐 폐렴구균성 접합체 백신 제조의 최종 제제화 단계까지 응집을 감소시키고, 상기 다당류를 안정화시키는 것이 여전히 분명하게 요구되고 있다.
본 발명은 알루미늄 염을 포함하는 백신의 안정성에서의 개선을 제공하고, 특히, 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 중의 개별 접합체의 응집을 최소화시키고, 상기 접합체의 흡착률(%)을 개선시키는 방법을 제공한다. 본 발명의 발명자들은 다당류-단백질 접합체의 조합된 흡착, 및 1:1 초과의 다당류 대 단백질 비 사용으로 i) 혈청형 6A, 9V 및 23F에 대한 에스. 뉴모니아에 접합체의 경우, 흡착률(%)은 55% 미만이고, ii) 나머지 혈청형 접합체의 경우, 흡착률(%)은 약 80% 내지 90%가 되며, 이로써, 주어진 다가 폐렴구균성 접합체 제제를 위한 개별 혈청형 접합체에 대한 완전한 흡착을 달성하는 데 실패하였다는 것을 관찰하였다. 또한, pH 6.8 내지 7.0 사용으로 제조된 백신 제제는 약 4 내지 10%의 응집을 일으키고, 흡착을 낮춘다는 것도 관찰하게 되었다.
본 발명은 각 접합체에 대하여 75 내지 99%의 최적의 흡착을 보이는, 안정한 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 제제의 제조 방법이며, 여기서 응집이
a. 조합된 흡착에 의해 달리 상대적으로 더 낮은 흡착을 보이는 접합체에 대한 개별적 또는 별개의 흡착;
b. 중성 pH에서 산성 pH로의 pH 이동을 동반한 히스티딘-숙신산 완충제 시스템;
c. 0.6 내지 약 1.4의 단백질에 대한 다당류의 비; 및/또는
d. 제제화 용기에서 6날 러쉬톤(Rushton) 유형의 터빈 임펠라의 사용
중 적어도 하나에 의해 방지되는 것인 방법에 관한 것이다.
본 발명은 또한 포스포디에스테르 연결을 함유하는 스트렙토코쿠스 뉴모니아에 다당류, 특히, 19A, 19F, 6A 및 6B의 경우, 면역원성이 개선되고, 유리 다당류 함량이 감소된 다당류-단백질 접합체를 제조하는 방법을 개시한다. 상기 접합 프로세스는 시안화제 부산물 매개의 사이징된 다당류 분해를 최소화하고, 후속되는 다당류-다당류 응집을 막음으로써 불안정한 다당류를 안정화시킨다. 응집 감소 비결은 100 - 200 KDa 범위로 사이징된 다당류 사용, 및 (1):(0.8 - 1) 범위의 다당류 대 CDAP (시안화제) 비 사용에 기인하는 것일 수 있다.
본 발명에 따라 제조된 면역원성 조성물은 안정성 및 면역원성을 개선시킴과 동시에 다당류 - 다당류, 및 다당류 - 단백질 접합체 사이의 응집을 감소시킨다.
도 1: DMAP 처리 이전의 사이징된 19A PnPs (178 KDa)의 SEC-HP-RI 프로파일.
도 2: DMAP 처리 이후 (A) 24 h째 사이징된 19A PnPs (70 KDa) 및 (B) 72 h째 14.5 KDa의 SEC-HP-RI 프로파일 - 분해 프로파일.
도 3: 사이징된 19A PnPs의 SEC-HP-RI 프로파일 (178 KDa; A) 및 CDAP 매개의 활성화된 다당류 (5B, 5C & 5D), 5E (10 KDa DF를 거치지 않은 접합체), 5F (10 KDa DF를 거친 접합체), 10 KDa 투석여과 단계를 사용하지 않은, 5G-사이징된 19A/5H-활성화된 19A(19A에 대한 변형된 Ps:CDAP 비 1:1) 접합 방법의 시간-의존성 응집.
도 4: 사이징된 19F PnPs의 SEC-HP-RI 프로파일 (157 KDa; A) 및 CDAP 매개의 활성화된 다당류 (B), 10 KDa 투석여과 단계를 사용하지 않은, 6C/6D (19F에 대한 변형된 Ps:CDAP 비 1:1) 접합 방법의 시간-의존성 응집.
도 5: 6날 러쉬톤 유형의 터빈 평날 임펠라.
도 6: 흡착 프로토콜.
본 발명의 목적은 알루미늄 염을 포함하는 백신의 안정성에서의 개선을 제공하고, 특히, 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 중의 개별 접합체의 응집을 최소화시키고, 상기 접합체의 흡착률(%)을 개선시키는 방법을 제공하고자 하는 것이다. 본 발명의 발명자들은 다당류-단백질 접합체의 조합된 흡착, 및 1:1 초과의 다당류 대 단백질 비 사용으로 i) 혈청형 6A, 9V 및 23F에 대한 에스. 뉴모니아에 접합체의 경우, 흡착률(%)은 55% 미만이고, ii) 나머지 혈청형 접합체의 경우, 흡착률(%)은 약 80% 내지 90%가 되며, 이로써, 주어진 다가 폐렴구균성 접합체 제제를 위한 개별 혈청형 접합체에 대한 완전한 흡착을 달성하는 데 실패하였다는 것을 관찰하였다. 또한, pH 6.8 내지 7.0 사용으로 제조된 백신 제제는 약 4 내지 10%의 응집을 일으키고, 흡착을 낮춘다는 것도 관찰하게 되었다.
(a) CP를 발현하는 박테리아 균주의 접종원을 제공하는 단계; (b) 미리 설정된 pH를 유지하기 위해, 공급 배지의 첨가 속도가 알칼리 혼합물의 첨가 속도와 등가를 이루도록 하면서, pH 7.2에서 발효시켜 균주를 배양하는 단계; (c) 배양물 배지를 0.1-0.5 vvm의 기체 유속으로 50-150 RPM으로 교반하면서 35-38℃에서 발효시키는 단계를 포함하는, 특허 WO2013088448A1에 기술된 방법을 사용하여 다당류를 배양하였다.
특허 WO2012127485에 기술된 프로세스에 의해 다당류를 정제하였다. 본 프로세스에 의해 제조된 Pn-Ps는 약 60 내지 70%의 회수율을 보이며, 여기서 소수성 상호작용 크로마토그래피 (HIC) 이후의, 또는 이온 교환 크로마토그래피 (IEC) 이전의 C-Ps 함량과 비교하여 C-다당류 오염 감소는 1 내지 5배에 달하며, 단백질 오염은 1% 미만이고, 핵산 오염은 1% 미만이다. 상기 프로세스는 연구, 파일럿 및 상업적 규모로 수행되어 왔다.
CTAB/알콜 기반 방법과 비교하였을 때 본 프로세스는 80-90% 단축된 소요 시간 & 90% 절감된 비용으로 다당류를 정제할 수 있다.
본 발명의 한 중요한 실시양태에 따라, i) 약 0.8 내지 1.4인 단백질에 대한 다당류의 비 사용, ii) 에스. 뉴모니아에 접합체를 불충분하게 흡착시키는 경우, 개별적 또는 별개의 흡착 사용, iii) 제제화 동안 더 낮은 pH 유지에 의해 에스. 뉴모니아에 접합체에 대한 흡착률(%)을 75 내지 95%로 개선시킬 수 있다.
제1 실시양태의 한 측면에 따라, 바람직한 다당류 대 단백질의 비는 1:1이다.
제1 실시양태의 제2 측면에 따라, 상기 조성물은 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 14, 15B, 17F, 18C, 19A, 19F, 20, 22F, 23F, 33F 및 45로부터 선택되는 다당류를 갖는 적어도 2개의 다당류 단백질 접합체로 구성된다.
제1 실시양태의 제3 측면에 따라, 2, 3, 4, 6A, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 15B, 17F, 18C, 20, 22F, 23F, 33F 및 45로 이루어진 것으로부터 선택되는 임의의 에스. 뉴모니아에 혈청형, 및 바람직하게는 에스. 뉴모니아에 혈청형 6A, 9V, 및 23F에 대하여 개별 흡착 모드가 사용될 수 있다.
제1 실시양태의 바람직한 측면에 따라, 다가 폐렴구균성 접합체 백신은 10가이며, 여기서 에스. 뉴모니아에 혈청형 6A, 9V, 및 23F는 별개의 블렌드로서 개별적으로 흡착된 후, 이어서, 조합 모드로 흡착된 에스. 뉴모니아에 혈청형 1, 5, 6B, 7F, 14, 19A 및 19F의 혼합물로 구성된 또 다른 블렌드에 첨가된다.
제1 실시양태의 또 다른 바람직한 측면에 따라, 다가 폐렴구균성 접합체 백신은 11, 13, 15, 16가 또는 그 초과이며, 여기서 2, 3, 4, 6A, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 15B, 17F, 18C, 20, 22F, 23F, 33F 및 45로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 하나의 에스. 뉴모니아에 혈청형은 별개의 블렌드로서 개별적으로 흡착되거나, 또는 더 작은 군으로 흡착된 후, 이어서, 조합 모드로 흡착된 에스. 뉴모니아에 혈청형 1, 5, 6B, 7F, 14, 19A 및 19F의 혼합물로 구성된 또 다른 블렌드에 첨가된다.
제1 실시양태의 추가의 또 다른 바람직한 측면에 따라, 다가 폐렴구균성 접합체 백신은 16가이며, 여기서 2, 3, 4, 6A, 9V, 12F, 15B, 18C, 및 23F로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 하나의 에스. 뉴모니아에 혈청형은 별개의 블렌드로서 개별적으로 흡착되거나, 또는 더 작은 군으로 흡착된 후, 이어서, 조합 모드로 흡착된 에스. 뉴모니아에 혈청형 1, 5, 6B, 7F, 14, 19A 및 19F의 혼합물로 구성된 또 다른 블렌드에 첨가된다.
본 발명의 제2 실시양태는 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 제제에서의 응집이 i) 중성 pH에서 산성 pH로의 pH 이동 사용 및 ii) 히스티딘-숙신산 완충제 조합 사용에 의해 완전하게 방지될 수 있다는 것이다.
제2 실시양태의 한 측면에 따라, 상기 pH 이동은 pH 6.8에서, 비제한적으로, pH 5.2, 5.3, 5.4, 5.5, 5.6, 5.7, 5.8 및 5.9로부터 선택되는 pH로 일어날 수 있다. 보다 바람직하게는, pH 6.8에서 pH 5.4, 5.5, 5.6, 5.7 및 5.8로부터 선택되는 pH로 일어난다.
제2 실시양태의 또 다른 측면에 따라, 상기 히스티딘-숙신산 완충제 시스템의 농도는 1 mM 내지 200 M일 수 있다. 농도는 바람직하게는 적어도 1 mM (예컨대, 최대 200 mM, 150 mM, 100 mM, 90 mM, 80 mM, 70 mM, 60 mM, 50 mM, 40 mM, 30 mM, 20 mM, 10 mM 등)이다. 보다 바람직하게는 조성물 중 히스티딘-숙신산 완충제의 농도는 10 mM 내지 40 mM이다.
본 발명의 제3 실시양태는 폐렴구균성 벌크 접합체에서의 엉긴 침전물 또는 응집체 형성이 제제화 용기에서 자기 교반식, 축 방향 및 방사 방향 유형의 임펠라 대신 러쉬톤 터빈 평날 임펠라를 사용함으로써 방지될 수 있다는 것이다.
본 발명의 면역원성 조성물의 안정성은 관련 기술분야의 통상의 기술자에게 널리 공지되어 있고, 통상적인 것인 표준 기술을 사용하여 쉽게 측정된다. 예를 들어, 면역원성 조성물을 ELISA, 광 산란, 광학 밀도, 침강 속도 원심분리, 침강 평형 원심분리, 원편광 이색성 (CD), 로우리(Lowry) 검정법, 비신코닌산 (BCA) 검정법 등을 포함하나, 이에 제한되지 않는 방법에 의해 접합체의 흡착률(%), 안정성, 응집, 면역원성, 미립자 형성, 단백질 (농도) 손실 등에 대하여 검정한다.
바람직한 실시양태에서, 본 발명은 다가 폐렴구균성 접합체 백신 중의 접합체의 항원성에는 어떤 영향도 미치지 않으면서, 접합된/결합된 다당류를 직접적으로 정량화할 수 있는 신규한 ELISA를 제공한다. 상기 신규한 ELISA는 접합체가 70% 초과의 흡착을 보이는, 흡착률(%)에 대한 지시 파라미터로서 제제 매트릭스 중의 비흡착된 접합체 함량을 정량화하는 데 사용될 수 있다. 바람직하게는 상기 ELISA는 캐리어 단백질 뿐만 아니라, 접합된 다당류의 항원성에는 어떤 영향도 미치지 않으면서, 접합체를 알럼 애주번트로부터 탈착시키는 것을 포함하는 사전 검정 단계에 사용될 수 있다. 더욱 구체적으로, 수산화나트륨 및 시트르산을 사용하여 알럼 흡착된 접합체 샘플의 해리를 달성한다.
캐리어 단백질은 비제한적으로, CRM197, P4, 디프테리아 톡소이드, 파상풍 톡소이드, 파상풍 톡소이드의 단편 C, 백일해 톡소이드, 에이치. 인플루엔자에(H. influenzae)의 단백질 D, 이. 콜라이(E. coli) LT, 이. 콜라이 ST, 및 슈도모나스 아에루지노사(Pseudomonas aeruginosa)의 외독소 A, 외막 복합체 c (OMPC), 포린, 트랜스페린 결합 단백질, 뉴몰리신, 폐렴구균성 표면 단백질 A (PspA), 폐렴구균성 표면 어드헤신 A (PsaA), 폐렴구균성 PhtD, 폐렴구균성 표면 단백질 BVH-3 및 BVH-11, 바실러스 안트라시스(Bacillus anthracis)의 보호 항원 (PA) 및 바실러스 안트라시스의 해독된 부종 인자 (EF) 및 치사 인자 (LF), 오브알부민, 키홀 림펫 헤모시아닌 (KLH), 인간 혈청 알부민, 소 혈청 알부민 (BSA) 및 투베르쿨린의 정제된 단백질 유도체 (PPD), 특히, CRM197 또는 P4로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있다.
바람직한 실시양태에 따라, 상기 다가 조성물은
i) 캐리어 단백질로서 CRM197을 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질 접합체, 캐리어 단백질로서 TT를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질; 또는
ii) 캐리어 단백질로서 CRM197을 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질 접합체, 캐리어 단백질로서 DT를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질; 또는
iii) 캐리어 단백질로서 CRM197을 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질 접합체, 캐리어 단백질로서 폐렴구균성 표면 어드헤신 A (PsaA)를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질; 또는
iv) 캐리어 단백질로서 CRM197을 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질 접합체, 캐리어 단백질로서 TT를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질, 캐리어 단백질로서 DT를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질; 또는
v) 캐리어 단백질로서 CRM197을 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질 접합체, 캐리어 단백질로서 TT를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질, 캐리어 단백질로서 폐렴구균성 표면 어드헤신 A (PsaA)를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질; 또는
vi) 캐리어 단백질로서 CRM197을 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질 접합체, 캐리어 단백질로서 DT를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질, 캐리어 단백질로서 폐렴구균성 표면 어드헤신 A (PsaA)를 갖는 적어도 하나의 다당류 단백질로 구성될 수 있다.
또 다른 실시양태에서, 혈청형 3에 접합된 바람직한 캐리어 단백질은 CRM-197이고, 혈청형 4에 접합된 바람직한 캐리어 단백질은 TT 또는 DT이고, 혈청형 18C에 접합된 바람직한 캐리어 단백질은 CRM197이다.
본 발명의 또 다른 실시양태는 최종 제제 중에서 캐리어 단백질로서의 PsaA의 사용을 포함한다. PsaA는 또한 최종 제제 중에서 애주번트로서도 사용될 수 있다.
특정 실시양태에서, 본 발명의 다가 제제는 계면활성제, 바람직하게는 폴리소르베이트 20으로 구성될 수 있다. 특정 실시양태에서, 제제 중 폴리소르베이트 20의 최종 농도는 제제의 0.01중량/부피% 내지 10중량/부피%의 폴리소르베이트 20이다. 추가의 다른 실시양태에서, 제제 중 폴리소르베이트 20의 최종 농도는 제제의 0.01중량/부피%의 폴리소르베이트 20이다. 다른 실시양태에서, 제제 중 폴리소르베이트 20의 최종 농도는 제제의 0.05중량/부피% 폴리소르베이트 20이다. 추가의 다른 실시양태에서, 제제 중 폴리소르베이트 20의 최종 농도는 제제의 0.1중량/부피% 폴리소르베이트 20이다. 또 다른 실시양태에서, 제제 중 폴리소르베이트 20의 최종 농도는 제제의 1.0중량/부피% 폴리소르베이트 20이다. 추가의 또 다른 실시양태에서, 제제 중 폴리소르베이트 20의 최종 농도는 제제의 10.0중량/부피% 폴리소르베이트 20이다.
본 다가 백신 제제는 비제한적으로, 수은 함유 보존제 (예컨대, 티메로살), 2-페녹시-에탄올, 메틸 파라벤, 프로필 파라벤 및 벤질 알콜 (또는 그의 혼합물)로 이루어진 군으로부터 선택되는 보존제로 구성될 수 있다.
본 발명의 바람직한 실시양태에 따라, 상기 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 제제, 바람직하게는 10 또는 16가인 것은 인산알루미늄 흡착된 접합체, 히스티딘, 숙신산, 염화나트륨, 폴리소르베이트 20 및 티오메르살로 구성될 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 용량 0.5 ml 당 Al+++ 20-375 ㎍, 20-300 ㎍, 20-200 ㎍, 25-150 ㎍인 양으로 알루미늄 염 애주번트를 첨가하는 단계로 구성될 수 있다.
전형적으로, 면역원성 조성물은 액상 액제 또는 현탁제로서의 주사제로서 제조되고; 주사 이전에 액상 비히클 중의 액제 또는 그 중의 현탁제로 적합한 고체 형태로서도 또한 제조될 수 있다. 제제는 또한 애주번트 효과를 증강시키기 위해 유화되거나, 또는 리포솜 중에 캡슐화될 수 있다. 조성물의 직접적인 전달은 일반적으로 비경구적 전달이 될 것이다 (예컨대, 피하로, 복강내로, 정맥내로 또는 근육내로의 주사, 또는 조직의 간질 공간으로의 전달). 조성물은 또한 병변 내로 투여될 수 있다. 다른 투여 모드로는 경구 및 폐 투여, 좌제, 및 피부 경유용 또는 경피용 니들, 및 피하주사기를 포함한다. 투여 치료법은 단일 투약 스케줄 또는 다회 투약 스케줄 (예컨대, 부스터 투약 포함)일 수 있다.
바람직하게는 본 발명의 백신은 용액 중에서 또는 동결건조되어 보관될 수 있고, 여기서 본 발명의 동결건조된 백신 조성물은 인산알루미늄 겔 및 NaCl을 함유하는 희석제를 포함하는 1, 5, 또는 10회분 용량의 제제로서 제공될 수 있다.
본 발명의 또 다른 실시양태는 제제화 용기에서의 러쉬톤 터빈 평날 임펠라의 용도를 포함한다 (도 5 참조).
실시예:
실시예 1: 발효
방법은 (a) CP를 발현하는 박테리아 균주의 접종원을 제공하는 단계; (b) 미리 설정된 pH를 유지하기 위해, 공급 배지의 첨가 속도가 알칼리 혼합물의 첨가 속도와 등가를 이루도록 하면서, pH 7.2에서 발효시켜 균주를 배양하는 단계; (c) 배양물 배지를 0-0.5 vvm의 기체 유속으로 50-150 RPM으로 교반하면서 35-38℃에서 발효시키는 단계를 포함한다.
실시예 2: 협막 다당류 정제
에스. 뉴모니아에 협막 다당류 혈청형 19F 정제 (HIC에 이어서, IEC)
에스. 뉴모니아에 혈청형 19F의 발효조 배양물로부터의 5 L의 정화된 브로쓰를 농축시키고, 100 KDa MWCO 막을 사용하여 500 ml로 투석여과하였다. 투석여과는 중성 pH의 25 mM 인산나트륨 완충제를 사용한 후, 이어서, 주사용수 (WFI)를 이용하여 투석여과함으로써 달성하였다.
뉴클레아제를 다당류 용액에 첨가하여 최종 농도 8 U/ml의 용액을 얻었다. 효소 처리는 교반하면서, 37℃에서 10 ± 2 hr 동안 수행하였다.
황산암모늄을 50% 포화시까지 뉴클레아제 처리된 다당류 용액에 첨가하고, 2 - 8℃에서 12 ± 2 hr 동안 인큐베이션시켰다 (단, 혈청형 5 및 4 예외). 혼합물을 원심분리하였다. 펠릿 (침전물)을 폐기하였다. NaCl에 이어서 냉각 WFI를 사용하여 용액 (~500 ml)을 100 kD 투석여과하였다. 완충제 및 고농도의 염과 함께 다당류를 함유하는 상기 투석여과된 용액을 HIC 칼럼 상에 로딩하였다.
소수성 상호작용 크로마토그래피 칼럼 (300 ml)을 50% 포화된 황산암모늄 완충제로 평형화시킨 후, 다당류 용액 (500 ml)을 pH 범위 6 내지 8, 바람직하게는 pH 6 내지 pH 7에서 칼럼 상에 로딩하였다. 칼럼을 50% 포화된 황산암모늄을 함유하는 완충제로 추가로 세척하였다. 상기 조건하에서, 칼럼으로부터의 관류 및 평형 세척물세척물서 다당류를 회수하였다.
이어서, 100 KDa MWCO 필터를 사용하여 다당류 용액을 농축시킨 후, NaCl 및 주사용수 (WFI)를 이용하여 투석여과하였다.
이온 교환 크로마토그래피 칼럼 (300 ml)(강 음이온 교환체)을 20 mM 인산나트륨 완충제로 평형화시킨 후, 다당류 용액 (500 ml)을 pH 범위 6 내지 8, 바람직하게는 pH 6.5 내지 pH 7.5에서 칼럼 상에 로딩하였다. 칼럼을 완충제로 추가로 세척하였다. 흡착된 다당류를 1.0 M NaCl을 사용하여 단계식 구배 용출로 용출시켰다 (상이한 이온 강도의 NaCl에서 각종의 다당류가 용출되었다).
이어서, 100 KDa MWCO 필터를 사용하여 다당류 용액을 농축시킨 후, 주사용수 (WFI)를 이용하여 투석여과하였다.
투석여과된 다당류 용액을 폴리프로필렌 병 안으로 0.22 μ 막 필터를 통해 여과하였다. 정제된 다당류를 -20±5℃에서 냉동 보관하였다.
상기 프로세스를 혈청형 4, 6A, 6B, 7F, 9V, 10A, 14, 18C, 19A, 19F, & 23F에 대해서도 또한 사용하였다.
결과:
HIC 이후 & 이온 교환 크로마토그래피 이후의 C-다당류를 H1/P31 NMR 스펙트럼에 의해 추정하였다. 본 프로세스를 통해 오염 물질의 함량은 2-3배 감소되었다.
실시예 3: 다당류의 사이징
활성화 단계 이전에 균질기 (마이크로플루이딕스(Microfluidics)) 장치를 사용하여 다당류의 크기를 축소시켰다. 19A의 경우, 24-28 KPSI로 크기를 축소시킨 반면, 19F의 경우, 통과 개수가 약 1 내지 3개인 26-30 KPSI로 크기를 축소시켰다. 사이징된 다당류를 투석여과시키고, 농축시킨 후, 0.22 μ 여과하였다. 이어서, 평균 분자량을 추정하기 위해 사이징된 다당류에 대해 HPSEC-RI를 수행하였다.
실시예 4: 일반 접합 프로세스
리즈(Lees) 등의 CDAP 접합 방법 (Vaccine 26: 190-198, 1996)을 사용하여 다당류의 캐리어 단백질에의 접합을 수행하였다. 기계적으로 크기가 축소된 다당류 (단, 예외적으로, 6A의 경우, 천연 형태로 사용되었거나, 6A 크기에 의존하여 사이징되었다)를 2 M NaCl에 용해시켰다. 100 mg/ml 스톡 용액으로부터의 (아세토니트릴 중) CDAP를 다당류:CDAP 비에 따라 다당류 용액에 첨가하였다. 대략 1분 후, 2 M NaOH를 첨가하여 특정 활성화 pH를 수득하였다. 22℃에서 4-10분 동안 상기 pH에서 다당류의 활성화를 수행하였다. CRM-197 (정량은 초기 Ps/단백질 비에 의존한다)을 활성화된 다당류에 첨가하였고, 혈청형에 의존하여 3-8 hr 동안 특정 pH에서 커플링 반응을 수행하였다. 이어서, 22℃에서 1 hr 동안, 및 12℃에서 밤새도록 글리신을 이용하여 반응을 켄칭시켰다. 이어서, 접합체를 300 kDa 내지 500 kDa 투석여과, 이어서, 100 kDa 투석여과에 의해 정제하였다. 추가로, 정제된 0.22 um 여과된 접합체의 다당류 및 단백질 함량을 측정하였다.
<표 1>
10개의 혈청형에 대한 혈청형 특이 접합 반응 파라미터 변량
<표 2>
제제화 프로세스의 1 및 2 블렌드 접근법에서 PCV-10 제제의 개별 혈청형의 흡착률(%) 비교
1 블렌드 접근법에서, 혈청형 6A, 9V, 및 23F는 제제 중에서 불충분하게 흡착된 반면, 2 블렌드 접근법의 경우, 모든 혈청형에 대하여 흡착률(%)은 >70%였다.
<표 3>
pH 이동이 PCV-10 제제의 응집 거동에 미치는 효과
pH 6.8의 것과 비교하였을 때, pH 5.6-5.8의 경우, PCV10 제제에 대해서는 어떤 응집체도 발견되지 않았다.
다당류 대 단백질 비 (1:1)가 제제 중 폐렴구균성 접합체의 흡착 정도에 유익한 영향을 미치는 것으로 밝혀졌다.
<표 4>
Ps 대 CRM 197 비가 제제 중 폐렴구균성 접합체 (혈청형 6A)의 흡착에 미치는 효과
다당류 대 단백질 비가 접합체의 흡착에 미치는 효과가 관찰되었다. 단백질에 대한 Ps 비가 >1.5인 6A 접합체는 불량한 흡착을 보였다. PCV-10 제제에 사용된 대부분의 혈청형들은 0.6-1.3 범위의 Ps: Pr 비를 함유하였고, 그 결과, 혈청형 6A를 비롯한 다양한 혈청형에 대해 최적의 흡착을 보였다. 6A 혈청형에 대하여 달성된 흡착 데이터 및 PCV-10 제제 경험 내용에 기초하여, 16가를 제제화하는 동안, 유사 범위의 Ps: Pr 비의 남은 6개의 접합체가 16개의 혈청형 접합체 모두의 일관된 흡착을 보장할 수 있을 것으로 추정되었다.
<표 5>
상이한 용기를 위한 러쉬톤 터빈 평날 임펠라의 사양
실시예 6: ELISA 프로토콜
변형된 샌드위치 ELISA를 사용하여 항원 함량 및 흡착률(%)을 측정하였다.
종래 샌드위치 ELISA는 시험 조건/검정 조건과 관련하여 변형되었고, 이로써, 하기와 같은 유익한 특성을 갖는다:
i. 10가 백신 중의 9개의 다른 접합된 항원의 존재하에서 접합된 다당류를 정량화하기 위함
ii. 흡착이 80% 초과인, 인산알루미늄 겔로부터 10개의 접합체 모두를 용출시키기 위함
iii. 접합체의 포획이 심지어 pH 9에서도 접합체 항원성은 손상시키지 않으면서 일어나도록 함.
하기 제시된 프로토콜에 따라 ELISA를 사용하여 항원 함량 및 흡착률(%)을 측정하였다:
1일째
1. 플레이트를 포획 항체 (항-캐리어 단백질 항체)로 코팅한 후, 35 ± 5℃에서 0.5 - 2 hr 동안 인큐베이션시켰다.
2. 플레이트를 ELISA 플레이트 와셔를 사용하여 3-6회 세척하였다.
3. 플레이트를 차단 완충제 (혈청형 14 및 9V의 경우, 1X PBS 및 트리스 완충제 중 3% BSA)로 차단한 후, 30 ± 5℃에서 1.5 - 2.5 hr 동안 인큐베이션시켰다.
4. 플레이트를 ELISA 플레이트 와셔를 사용하여 3회 세척하였다.
5. 샘플을 플레이트 상에 첨가하였다.
6. 플레이트를 5±3℃에서 밤새도록 인큐베이션시켰다.
2일째
1. 플레이트가 실온에 도달하도록 하였다.
2. 플레이트를 3회 세척한 후, 1차 항체를 첨가하고, 이어서, RT에서 25±2 동안 30 min 동안 인큐베이션시킨 후, 세척하였다.
3. 2차 항체를 첨가한 후, 이어서, 25±2℃에서 30 min 동안 인큐베이션시켰다.
4. 기질 TMB를 첨가한 후, 이어서, 암실에서 RT하에 15-20 min 동안 인큐베이션시켰다.
5. 정지 용액을 첨가하였다.
6. 플레이트를 450 nm에서 판독하였다.
캐리어 단백질의 에피토프를 손상시키지 않으면서, 샘플을 용해시키는 방법
적절한 양의 0.5 M - 2 M NaoH를 2 ml의 백신 샘플에 첨가하였다. 용액이 투명해질 때까지, 상기 샘플을 온화하게 와동시켰다. 용액이 투명해질 때까지, 용액의 pH를 9-12로 조정하였다. 0.5 M 내지 2 M 시트르산을 사용하여 용액의 pH를 다시 6-7.4이 되도록 만들었다. 상기 용액을 5 min 동안 3000 내지 6000 x g로 원심분리하고 (샘플을 용해시키고), 시험을 위해 상청액을 수집하였다.
<표 6>
실시예 7: 폐렴구균성 접합체 백신 - 10가 (PCV10)
<표 7>
PCV10 조성물:
* 활성 성분은 캐리어 단백질 CRM197과 접합된다.
실시예 8: 제제 1 (PCV16)
폐렴구균성 접합체 백신 - 16가 (PCV16)
<표 8>
PCV16 조성물 "I"
* 백신의 활성 성분은 CRM197, TT 및 DT로부터 선택되는 적어도 하나의 캐리어 단백질에 접합된다.
** 오직 다회 투약으로 제공하는 경우에만 첨가된다.
실시예 9: 제제 1 (PCV16)
<표 9>
PCV16 조성물 "II"
* 백신의 활성 성분은 CRM197, TT 및 DT로부터 선택되는 적어도 하나의 캐리어 단백질에 접합된다.
** 오직 다회 투약으로 제공하는 경우에만 첨가된다.
실시예 10:
I) DMAP 존재하의 사이징된 PnPs (19A, 19F, 6A 및 6B)의 분해:
반응 용액 중 사이징된 PnPs를 1:1.5의 비로 DMAP를 이용하여 처리하고, SEC-HP-RI에 의해 그의 분해 프로파일에 대하여 체크하였다.
결과:
DMAP의 존재하에서는 오직 19A PnPs만이 분해된 반면, 다른 포스포디에스테르 함유 PnPs (19F, 6A & 6B)는 무손상 상태 그대로 유지된 것으로 관찰되었다. DMAP 매개의 PnPs 분해를 보여주는 도 1 (DMAP 비처리) & 2를 참조한다.
19A의 상기와 같은 분해를 최소화하기 위해 2 M NaCl을 사용하여 활성화된 PnPs를 10 KDa 투석여과함으로써 CRM197과의 접합 이전에 반응 용액으로부터 형성된 DMAP를 제거하였다.
II) CDAP 존재하의 사이징된 PnPs (19A, 19F, 6A 및 6B)의 분해 및 응집:
활성화 동안 반응 용액 중의 사이징된 PnPs를 1:1.5의 비로 CDAP를 이용하여 처리하였다. (RP-HPLC로 측정된 바) 50% DMAP가 부산물로서 생성되었고, 이는 PnPs의 분해 뿐만 아니라, 활성화 후 특정 시간 경과 후, 활성화된 PnPs 사이의 응집을 유도한 것으로 관찰되었다 (표 2 참조). SEC-HP-RI 프로파일에 의해 분해 및 응집을 체크하였다. CDAP 매개의 PnPs의 응집 & 분해를 보여주는 도 3A (CDAP 비처리), 3B, 3C & 3D (19A에 대한 것), 4A (CDAP 비처리), 4B (19F 대한 것)를 참조한다.
<표 10>
다당류-다당류 가교 결합 & 응집의 원인 요인
"CDAP 활성화 지속 기간"이 다당류-다당류 응집체 형성에 미치는 효과
III) 투석여과 단계 사용에 의한 PnPs:CDAP가 1:1.5 인 사이징된 PnPs (19A 및 19F)의 분해 및 응집 방지:
19A의 상기와 같은 분해 및 응집을 최소화하기 위해 2 M NaCl을 사용하여 활성화된 PnPs를 10 KDa 투석여과함으로써 CRM197과의 접합 이전에 반응 용액으로부터 형성된 DMAP를 제거하였다. 10 KDa 투석여과된 활성화된 PnPs 및 CRM197을 사용하여 접합체의 SEC-HP-RI 프로파일을 보여주는 도 3E (10 KDa DF를 거치지 않은 접합체) & 3F (10 KDa DF를 거친 접합체)를 참조한다. 그러나, 투석여과는 접합체 수율에는 불리한 영향을 미쳤으며, 이로써, 총 수율은 30%-40% 감소되었다.
IV) 투석여과 단계를 사용하지 않은, PnPs:CDAP의 비의 1:1 (19A) 및 1:0.8 (19F)로의 감소에 의한 사이징된 PnPs (19A 및 19F)의 분해 및 응집 방지:
반응 용액 중 사이징된 PnPs를 19A 및 19F에 대하여 각각 1:1 및 1:0.8의 비로 CDAP를 이용하여 처리하고, SEC-HP-RI에 의해 그의 분해 및 응집 프로파일에 대하여 체크하였다.
결과:
변형된 Ps:CDAP 비 (19A의 경우, 1:1, 및 19F의 경우, 1:0.8)가 19A 및 19F PnPs, 둘 모두에 대한 분해 및 응집을 방지하는 것으로 나타났다는 것을 관찰할 수 있었다. 도 3 (19A의 경우, G & H) & 4 (19F의 경우, C & D)를 참조한다. 변형된 비를 사용하였을 때의 추가의 이점은 10 KDa 투석여과 단계는 없었고, 이로써 총 수율은 확실하게 최소로 손실되었다는 점이었다.
혈청형 19A의 경우, "CDAP 활성화의 지속 기간"이 10 min 초과일 때, 활성화된 다당류 대 활성화된 다당류의 가교 결합이 일어났고, 최종적으로는 "다당류-다당류 응집체"의 형성이 유도된 것으로 관찰되었다.
추가로, 혈청형 19F의 경우, "CDAP 활성화의 지속 기간"이 20 min 초과일 때, 활성화된 다당류 대 활성화된 다당류의 가교 결합이 일어났고, 최종적으로는 "다당류-다당류 응집체"의 형성이 유도된 것으로 관찰되었다. 추가로, 접합 반응 지속 기간이 활성화된 다당류 대 활성화된 다당류의 가교 결합을 위해 소요되는 지속 시간보다 더 장시간이며, 이로 인해 응집체가 형성되는 것으로 나타났다. 도 3 & 4를 참조한다.
그러나, 6APnPs 및 6BPnPs와 같은 다른 혈청형의 경우, 상기와 같은 가교 결합은 관찰되지 않았다.
실시예 11:
접합체: PnPs19A & PnPs19F의 제조
하기와 같이 변형하여 리즈 등의 CDAP 접합 방법 (Vaccine 26: 190-198, 1996)을 사용하여 다당류의 캐리어 단백질에의 접합을 수행하였다:
i) 19A 접합체의 제조를 위해, 22℃에서 4 min의 활성화 기간으로 1:1의 다당류 대 CDAP 비를 사용하고, 1:1의 다당류 대 단백질 비를 사용
ii) 19F 접합체의 제조를 위해, 22℃에서 9 내지 10 min의 활성화 기간으로 1:0.8의 다당류 대 CDAP 비를 사용하고, 19F에 대하여 1:1의 다당류 대 단백질 비를 사용.
<표 10>
"전통적인 CDAP 접합 방법" (로트 1) 및 "개선된 접합 방법" (로트 2)을 이용하였을 때의 19A 및 19F에 대한 접합체 결과 비교
결과:
변형된 다당류:CDAP 비, CDAP 활성화 시간 및 초기 다당류:단백질 비가 활성화 동안 4-디메틸아미노-피리딘 매개의 사이징된 다당류의 분해를 최소화시켰고, 이는 또한 후속된 다당류-다당류 응집을 방지하였으며, 이로써, 유리 다당류 함량과 관련된 최종 접합체 특징을 개선시킨 것으로 나타났다.
19A & 19F 접합체를 제조하는 데 사용된 개선된 접합 방법을 통해 각 접합체 프로파일 (31P 양성자 NMR)에서 어떤 포스포모노에스테르 신호도 보이지 않은 접합체를 수득하게 되었고, 이는 변형된 접합 방법이 접합 반응 동안의 다당류 가수분해를 방지하는 데 효과적인 것으로 나타났다는 것을 시사하였다.
개시된 본 발명의 원리가 적용될 수 있는 다수의 가능한 실시양태를 비추어 볼 때, 예시된 실시양태는 단지 본 발명의 바람직한 예일 뿐이며, 본 발명의 범주를 제한하는 것으로 간주되지 않아야 함을 이해하여야 한다. 본 발명의 범주는 오히려 하기 특허청구범위에 의해 정의된다. 따라서, 본 발명자들은 본 발명자들의 발명으로서 본 특허청구범위의 범주 및 취지 내에 포함되는 모든 것을 주장한다.

Claims (59)

  1. 안정하고 면역원성이 있는 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 조성물을 제조하는 방법으로서, 상기 방법은 하기 단계들을 포함하고:
    i. 다당류-캐리어 단백질 접합체를 수득하기 위해, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 6A, 6B, 6C, 6D, 6E, 6F, 6G, 6H, 7A, 7B, 7C, 7D, 7F, 8, 9A, 9L, 9F, 9N, 9V, 10A, 10B, 10C, 10D, 10F, 11, 11A, 11B, 11C, 11D, 11E, 11F, 12A, 12B, 12F, 13, 13F, 14, 15A, 15B, 15C, 15F, 16, 16A, 16F, 17A, 17F, 18, 18A, 18B, 18C, 18F, 19A, 19B, 19C, 19F, 20, 20A, 20B, 21, 22A, 22F, 23A, 23B, 23F, 24A, 24B, 24F, 25A, 25F, 27, 28A, 28F, 29, 31, 32A, 32F, 33A, 33B, 33C, 33D, 33E, 33F, 34, 35A, 35B, 35C, 35D, 35F, 36, 37, 38, 39, 40, 41A, 41F, 42, 43, 44, 45, 46, 47A, 47F, 및 48을 포함하는 군으로부터 선택되는 스트렙토코쿠스 뉴모니아에(Streptococcus pneumoniae) 혈청형에서 유래하는 폐렴구균성 다당류를 캐리어 단백질에 1:0.5 내지 1:1.5의 비율로 8.0 내지 10의 범위의 pH에서 개별적으로 접합시키는 단계로서, 상기 폐렴구균성 다당류는 시안화제를 사용하여 캐리어 단백질에 접합되고, 상기 백신 조성물은 적어도 3개의 상이한 캐리어 단백질을 포함하는, 단계;
    ii. 단계 (i)에서 수득된, 4, 6A, 9V, 15B, 22F 및 23F로 이루어진 군으로부터 선택되는 스트렙토코쿠스 뉴모니아에 혈청형에서 유래하는 다당류를 포함하는 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체의 제1 세트를, 염, 히스티딘, 및 숙신산의 존재 하에 18℃ 내지 30℃의 범위의 온도에서, 5.0 내지 7.0의 범위의 pH로, 18시간 내지 30시간의 기간 동안, 알루미늄 염 애주번트 상에 흡착시키는 단계;
    iii. 단계 (i)에서 수득된, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 6A, 6B, 6C, 6D, 6E, 6F, 6G, 6H, 7A, 7B, 7C, 7D, 7F, 8, 9A, 9L, 9F, 9N, 9V, 10A, 10B, 10C, 10D, 10F, 11, 11A, 11B, 11C, 11D, 11E, 11F, 12A, 12B, 12F, 13, 13F, 14, 15A, 15B, 15C, 15F, 16, 16A, 16F, 17A, 17F, 18, 18A, 18B, 18C, 18F, 19A, 19B, 19C, 19F, 20, 20A, 20B, 21, 22A, 22F, 23A, 23B, 23F, 24A, 24B, 24F, 25A, 25F, 27, 28A, 28F, 29, 31, 32A, 32F, 33A, 33B, 33C, 33D, 33E, 33F, 34, 35A, 35B, 35C, 35D, 35F, 36, 37, 38, 39, 40, 41A, 41F, 42, 43, 44, 45, 46, 47A, 47F, 및 48을 포함하는 군으로부터 선택되는 에스. 뉴모니아에 혈청형에서 유래하는 다당류를 포함하는 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체의 제2 세트를, 염, 히스티딘, 및 숙신산의 존재 하에 18℃ 내지 30℃의 범위의 온도에서, 5.0 내지 7.0의 범위의 pH로, 12시간 내지 24시간의 기간 동안, 알루미늄 염 애주번트 상에 흡착시키는 단계; 및
    iv. 단계 (ii)에서 수득된 제1 세트를, 상기 조성물의 0.5 ml 용량(dose)당 80 μg 내지 150 μg의 범위의 계면활성제의 존재 하에, 러쉬톤 터빈 평날 임펠라의 도움으로 50시간 내지 80시간의 기간 동안, 4℃ 내지 12℃의 범위의 온도에서, 단계 (iii)에서 수득된 제2 세트와 블렌딩하는 단계;
    여기서 상기 조성물은 i) 조성물의 0.5 ml 용량당 Al3+ 20-375 μg 범위의 알루미늄 염 애주번트의 총 농도, ii) 각 다당류-캐리어 단백질이 적어도 30%의 흡착률(%)을 갖는 것, iii) 다당류-캐리어 단백질 접합체의 바람직한 물리화학적 및 면역원성 특징들을 보유하는 것, 및 iv) 조성물의 0.5 ml 용량당 80 μg 내지 150 μg의 범위의 계면활성제가 최소의 응집 및 입자 형성, 그리고 백신 조성물의 향상된 흐름 특성을 야기하는 것을 포함하는, 방법.
  2. 제1항에 있어서, 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체의 제2 세트가 1, 2, 3, 5, 6B, 7F, 8, 10A, 11A, 12F, 14, 18C, 19A, 19F 및 33F로 이루어진 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류를 포함하는, 방법.
  3. 제1항에 있어서, 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체의 제2 세트가 1, 2, 5, 6B, 7F, 8, 10A, 11A, 12F, 14, 18C, 19A, 19F 및 33F로 이루어진 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류를 포함하는, 방법.
  4. 제1항에 있어서, 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체의 제2 세트가 1, 2, 3, 5, 6B, 7F, 8, 10A, 11A, 12F, 14, 18C, 19A, 19F, 24F, 및 33F로 이루어진 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류를 포함하는, 방법.
  5. 제1항에 있어서, 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체의 제2 세트가 1, 2, 5, 6B, 7F, 8, 10A, 11A, 12F, 14, 18C, 19A, 19F, 24F, 및 33F로 이루어진 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류를 포함하는, 방법.
  6. 제1항에 있어서, 단계 (ii) 및 단계 (iii)에서의 알루미늄 염 애주번트가 수산화알루미늄, 인산알루미늄, 수산화인산알루미늄, 및 황산알루미늄칼륨 및 이들의 혼합물을 포함하는 군으로부터 선택되는, 방법.
  7. 제1항에 있어서, 단계 (ii) 및 단계 (iii)에서의 알루미늄 염 애주번트가 인산알루미늄이고, 알루미늄 염 애주번트의 총 농도가 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 Al3+ 170 μg 내지 200 μg의 범위인, 방법.
  8. 제1항에 있어서, 상기 적어도 3개의 상이한 캐리어 단백질이, CRM197, 디프테리아 톡소이드 (DT), 파상풍 톡소이드 (TT), 수막구균(Neisseria meningitidis) 외막 복합체, 파상풍 톡소이드의 단편 C, 8개의 개별 아미노산 변이를 갖는 재조합 전장 파상풍 독소 (8MTT), 백일해 톡소이드, 에이치. 인플루엔자에(H. influenzae)의 단백질 D, 이. 콜라이(E. coli) LT, 이. 콜라이 ST, 슈도모나스 아에루지노사(Pseudomonas aeruginosa)의 외독소 A, 외막 복합체 c (OMPC), 포린, fHbp, Por A, Por B 트랜스페린 결합 단백질, 뉴몰리신, 폐렴구균성 표면 단백질 A (PspA), 폐렴구균성 표면 어드헤신 A (PsaA), 디프테리아 독소 단편 B (DTFB), PhtA, PhtB, PhtE, 폐렴구균성 PhtD, 폐렴구균성 표면 단백질 BVH-3 및 BVH-11, 엠. 카타랄리스(M. catarrhalis) uspA, 바실러스 안트라시스(Bacillus anthracis)의 보호 항원 (PA) 및 바실러스 안트라시스의 해독된 부종 인자 (EF) 및 치사 인자 (LF), 오브알부민, 키홀 림펫 헤모시아닌 (KLH), C5a 펩티다아제 그룹 A 또는 그룹 B 스트렙토코쿠스, 인간 혈청 알부민, 소 혈청 알부민 (BSA), 투베르쿨린의 정제된 단백질 유도체 (PPD), 콜레라 독소 서브유닛 B, 합성 펩타이드, 열충격 단백질, 백일해 단백질, 사이토카인, 림포카인, 호르몬, 성장 인자, 씨. 디피실(C. difficile) 및 에스. 아갈락티아(S. agalactiae) 단백질의 독소 A 또는 B, 철 흡수 단백질, N19와 같은 다양한 병원체-유래 항원으로부터의 다중 인간 CD4+ T 세포 에피토프를 포함하는 인공 단백질 및 이들의 임의의 등가물로 이루어진 군으로부터 선택되고, 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류에 접합되는, 방법.
  9. 제1항에 있어서, 3, 6A, 9V, 15B, 19A, 및 22F를 포함하는 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 파상풍 톡소이드에 접합되고, 혈청형 4 및 24F에서 유래하는 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 디프테리아 톡소이드에 접합되고, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 6A, 6B, 6C, 6D, 6E, 6F, 6G, 6H, 7A, 7B, 7C, 7D, 7F, 8, 9A, 9L, 9F, 9N, 9V, 10A, 10B, 10C, 10D, 10F, 11, 11A, 11B, 11C, 11D, 11E, 11F, 12A, 12B, 12F, 13, 13F, 14, 15A, 15B, 15C, 15F, 16, 16A, 16F, 17A, 17F, 18, 18A, 18B, 18C, 18F, 19A, 19B, 19C, 19F, 20, 20A, 20B, 21, 22A, 22F, 23A, 23B, 23F, 24A, 24B, 24F, 25A, 25F, 27, 28A, 28F, 29, 31, 32A, 32F, 33A, 33B, 33C, 33D, 33E, 33F, 34, 35A, 35B, 35C, 35D, 35F, 36, 37, 38, 39, 40, 41A, 41F, 42, 43, 44, 45, 46, 47A, 47F, 및 48를 포함하는 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합되는, 방법.
  10. 제1항에 있어서, 폐렴구균성 다당류가 시안화 반응을 이용하여 캐리어 단백질에 접합되고, 시안화제는 1-시아노-4-디메틸아미노피리디늄 테트라플루오로보레이트 (CDAP), 1-시아노-4-피롤리디노피리디늄 테트라플루오로보레이트 (CPPT), 1-시아노-이미다졸 (1-CI), 1-시아노벤조트리아졸 (1-CBT), 2-시아노피리다진-3(2H)온 (2-CPO), 기능적 유도체, 및 이들의 변형물인, 방법.
  11. 제10항에 있어서, 폐렴구균성 다당류를 1-시아노-4-디메틸아미노피리디늄 테트라플루오로보레이트 (CDAP)와, 1:0.3 내지 1:2의 폐렴구균성 다당류:CDAP 중량비로 혼합된 상태로 22℃ 내지 25℃의 범위의 온도에서 4분 내지 10분의 기간 동안, 반응시키는 단계, 및
    CDAP 활성화된 폐렴구균성 다당류를 캐리어 단백질과, 1:0.5 내지 1:1.5의 CDAP 활성화된 폐렴구균성 다당류:캐리어 단백질 중량비로 혼합된 상태로, 접촉시키는 단계로서, 반응은 8.0-10의 범위의 pH에서 3시간 내지 5시간의 기간 동안 수행되고, 그 후 글리신으로 켄칭(quenching)하여 다당류-캐리어 단백질 접합체를 수득하는, 단계
    를 포함하는 시안화 반응을 이용하여 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질에 접합되는, 방법.
  12. 제1항에 있어서, 상기 접합 전에, 폐렴구균성 다당류 또는 캐리어 단백질이, 카르보디이미드, 환원성 아민화 반응 또는 시안화 반응을 이용하여, 히드라진, 카르보히드라지드, 히드라진 클로라이드, 디히드라지드, ε-아미노헥산산(ε-aminohexanoic acid), 클로로헥산올 디메틸 아세탈, D-글루쿠로노락톤, 시스타민 및 p-니트로페닐에틸아민, 헥산디아민, 에틸렌디아민, 1,6-디아미노옥시헥산 또는 β-프로핀아미도, 니트로페닐에틸아민, 할로알킬할라이드, 6-아미노카프로산, 및 이들의 조합으로 이루어진 군으로부터 선택되는 이종 또는 동종-2작용성 링커로 유도체화되는, 방법.
  13. 제1항에 있어서, 상기 접합 단계 전에, 혈청형 6A에서 유래하는 다당류를 제외한 폐렴구균성 다당류가, 열처리, 음파처리, 기계적 수단, 화학적 가수분해, 세포질용해성(endolytic) 효소 처리, 물리적 전단, 가우린(Gaulin)-호모게나이저, 및 초음파처리 중 하나 이상을 이용하여 사이징되고; 사이징 후의 혈청형 6A에서 유래하는 다당류를 제외한 폐렴구균성 다당류의 분자량은 50 kDa 내지 600 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 100 kDa 내지 200 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  14. 제1항에 있어서, 혈청형 6A에서 유래하는 폐렴구균성 다당류의 분자량은 400 kDa 내지 900 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 700 kDa 내지 800 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  15. 제1항에 있어서, 혈청형 4에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 130 kDa 내지 170 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 130 kDa 내지 165 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  16. 제1항에 있어서, 혈청형 24F에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 100 kDa 내지 200 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 120 kDa 내지 170 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  17. 제1항에 있어서, 혈청형 6B에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 100 kDa 내지 200 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 110 kDa 내지 175 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  18. 제1항에 있어서, 혈청형 9V에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 120 kDa 내지 160 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 130 kDa 내지 150 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  19. 제1항에 있어서, 혈청형 15B에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 120 kDa 내지 160 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 130 kDa 내지 150 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  20. 제1항에 있어서, 혈청형 19A에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 120 kDa 내지 160 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 130 kDa 내지 150 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  21. 제1항에 있어서, 혈청형 22F에서 유래하는 사이징된 다당류의 분자량은 100 kDa 내지 150 kDa의 범위 (SEC-HPLC), 바람직하게는 120 kDa 내지 140 kDa의 범위 (SEC-HPLC)인, 방법.
  22. 제1항에 있어서, 단계 (ii) 및 단계 (iii)에서의 염은 염화마그네슘, 염화칼륨, 염화나트륨 및 이들의 조합을 포함하는 군으로부터 선택되고, 염의 농도는 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 2 mg 내지 10 mg의 범위인, 방법.
  23. 제1항에 있어서, 단계 (ii) 및 단계 (iii)에서의 히스티딘은 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 0.1 mg 내지 10 mg의 범위에 있는, 방법.
  24. 제1항에 있어서, 단계 (ii) 및 단계 (iii)에서의 숙신산은 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 0.1 mg 내지 10 mg의 범위에 있는, 방법.
  25. 제1항에 있어서, 단계 (iv)에서의 계면활성제는 폴리소르베이트, 폴리머 글리콜, 소르비탄 에스테르, 및 이들의 조합을 포함하는 군으로부터 선택되고; 계면활성제의 농도는 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 80 μg 내지 120 μg의 범위인, 방법.
  26. 제1항에 있어서, 단계 (iv)에서의 계면활성제는 폴리소르베이트 20이고, 폴리소르베이트 20의 농도는 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 90 μg 내지 120 μg의 범위인, 방법.
  27. 제1항에 있어서, 단계 (ii) 및 단계 (iii)에서의 흡착은, 2-페녹시에탄올, 염화벤제토늄 (페메롤), 페놀, m-크레졸, 티오메르살, 포름알데히드, 메틸파라벤, 프로필파라벤, 염화벤잘코늄, 벤질알코올, 클로로부탄올, p-클로로-m-크레졸, 벤질알코올, 및 이들의 조합을 포함하는 군으로부터 선택되는 보존제의 존재 하에 수행되고, 보존제의 농도는 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 1 mg 내지 8 mg의 범위인, 방법.
  28. 제27항에 있어서, 상기 보존제는 백신 조성물의 0.5 ml 용량당 2.5 mg 내지 5 mg의 범위의 농도를 갖는 2-페녹시에탄올인, 방법.
  29. 제1항 내지 제28항 중 어느 한 항에 기재된 방법에 의해 제조되는, 안정하고 면역원성이 있는 다가 폐렴구균성 다당류-단백질 접합체 백신 조성물로서, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 6A, 6B, 6C, 6D, 6E, 6F, 6G, 6H, 7A, 7B, 7C, 7D, 7F, 8, 9A, 9L, 9F, 9N, 9V, 10A, 10B, 10C, 10D, 10F, 11, 11A, 11B, 11C, 11D, 11E, 11F, 12A, 12B, 12F, 13, 13F, 14, 15A, 15B, 15C, 15F, 16, 16A, 16F, 17A, 17F, 18, 18A, 18B, 18C, 18F, 19A, 19B, 19C, 19F, 20, 20A, 20B, 21, 22A, 22F, 23A, 23B, 23F, 24A, 24B, 24F, 25A, 25F, 27, 28A, 28F, 29, 31, 32A, 32F, 33A, 33B, 33C, 33D, 33E, 33F, 34, 35A, 35B, 35C, 35D, 35F, 36, 37, 38, 39, 40, 41A, 41F, 42, 43, 44, 45, 46, 47A, 47F, 및 48로 이루어진 군으로부터 선택되는 스트렙토코쿠스 뉴모니아에 혈청형에서 유래하는 다당류를 갖는, 백신 조성물.
  30. 제29항에 있어서, 상기 조성물은 15, 16, 17, 18, 19, 20 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 또는 30가 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체 조성물인, 백신 조성물.
  31. 제29항에 있어서, 상기 백신 조성물이 혈청형 1, 2, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 8, 9V, 10A, 11A, 12F, 14, 15B, 18C, 19A, 19F, 22F, 23F 및 33F에서 유래하는 다당류를 갖는 20개의 상이한 스트렙토코쿠스 뉴모니아에 다당류-캐리어 단백질 접합체를 포함하는, 백신 조성물.
  32. 제29항에 있어서, 상기 백신 조성물이 혈청형 1, 2, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 8, 9V, 10A, 11A, 12F, 14, 15B, 18C, 19A, 19F, 22F, 23F, 24F, 및 33F에서 유래하는 다당류를 갖는 21개의 상이한 스트렙토코쿠스 뉴모니아에 다당류-캐리어 단백질 접합체를 포함하는, 백신 조성물.
  33. 제29항에 있어서, 상기 백신 조성물이 CRM197, 디프테리아 톡소이드 (DT), 파상풍 톡소이드 (TT), 수막구균(Neisseria meningitidis) 외막 복합체, 파상풍 톡소이드의 단편 C, 8개의 개별 아미노산 변이를 갖는 재조합 전장 파상풍 독소 (8MTT), 백일해 톡소이드, 에이치. 인플루엔자에(H. influenzae)의 단백질 D, 이. 콜라이(E. coli) LT, 이. 콜라이 ST, 슈도모나스 아에루지노사(Pseudomonas aeruginosa)의 외독소 A, 외막 복합체 c (OMPC), 포린, fHbp, Por A, Por B 트랜스페린 결합 단백질, 뉴몰리신, 폐렴구균성 표면 단백질 A (PspA), 폐렴구균성 표면 어드헤신 A (PsaA), 디프테리아 독소 단편 B (DTFB), PhtA, PhtB, PhtE, 폐렴구균성 PhtD, 폐렴구균성 표면 단백질 BVH-3 및 BVH-11, 엠. 카타랄리스(M. catarrhalis) uspA, 바실러스 안트라시스(Bacillus anthracis)의 보호 항원 (PA) 및 바실러스 안트라시스의 해독된 부종 인자 (EF) 및 치사 인자 (LF), 오브알부민, 키홀 림펫 헤모시아닌 (KLH), C5a 펩티다아제 그룹 A 또는 그룹 B 스트렙토코쿠스, 인간 혈청 알부민, 소 혈청 알부민 (BSA), 투베르쿨린의 정제된 단백질 유도체 (PPD), 콜레라 독소 서브유닛 B, 합성 펩타이드, 열충격 단백질, 백일해 단백질, 사이토카인, 림포카인, 호르몬, 성장 인자, 씨. 디피실(C. difficile) 및 에스. 아갈락티아(S. agalactiae) 단백질의 독소 A 또는 B, 철 흡수 단백질, N19와 같은 다양한 병원체-유래 항원으로부터의 다중 인간 CD4+ T 세포 에피토프를 포함하는 인공 단백질 및 이들의 임의의 등가물로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 3개의 상이한 캐리어 단백질을 포함하고, 여기서 각 캐리어 단백질은 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류에 접합되는, 백신 조성물.
  34. 제29항에 있어서, 상기 조성물이 CRM197, 디프테리아 톡소이드 (DT), 및 파상풍 톡소이드 (TT)로부터 선택되는 3개의 상이한 캐리어 단백질을 포함하고, 각각은 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류에 접합되는, 백신 조성물.
  35. 제34항에 있어서, CRM197에 접합되는 폐렴구균성 다당류가 1, 2, 3, 4, 5, 6, 6A, 6B, 6C, 6D, 6E, 6F, 6G, 6H, 7A, 7B, 7C, 7D, 7F, 8, 9A, 9L, 9F, 9N, 9V, 10A, 10B, 10C, 10D, 10F, 11, 11A, 11B, 11C, 11D, 11E, 11F, 12A, 12B, 12F, 13, 13F, 14, 15A, 15B, 15C, 15F, 16, 16A, 16F, 17A, 17F, 18, 18A, 18B, 18C, 18F, 19A, 19B, 19C, 19F, 20, 20A, 20B, 21, 22A, 22F, 23A, 23B, 23F, 24A, 24B, 24F, 25A, 25F, 27, 28A, 28F, 29, 31, 32A, 32F, 33A, 33B, 33C, 33D, 33E, 33F, 34, 35A, 35B, 35C, 35D, 35F, 36, 37, 38, 39, 40, 41A, 41F, 42, 43, 44, 45, 46, 47A, 47F, 및 48를 포함하는 군으로부터 선택되는, 백신 조성물.
  36. 제34항에 있어서, TT에 접합되는 폐렴구균성 다당류가 1, 3, 5, 6A, 9V, 15B, 19A, 및 22F를 포함하는 군으로부터 선택되는, 백신 조성물.
  37. 제34항에 있어서, DT에 접합되는 폐렴구균성 다당류가 3, 4, 15B, 및 24F를 포함하는 군으로부터 선택되는, 백신 조성물.
  38. 제34항에 있어서, 3, 6A, 9V, 15B, 19A, 및 22F를 포함하는 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 파상풍 톡소이드에 접합되고, 혈청형 4 및 24F에서 유래하는 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 디프테리아 톡소이드에 접합되고, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 6A, 6B, 6C, 6D, 6E, 6F, 6G, 6H, 7A, 7B, 7C, 7D, 7F, 8, 9A, 9L, 9F, 9N, 9V, 10A, 10B, 10C, 10D, 10F, 11, 11A, 11B, 11C, 11D, 11E, 11F, 12A, 12B, 12F, 13, 13F, 14, 15A, 15B, 15C, 15F, 16, 16A, 16F, 17A, 17F, 18, 18A, 18B, 18C, 18F, 19A, 19B, 19C, 19F, 20, 20A, 20B, 21, 22A, 22F, 23A, 23B, 23F, 24A, 24B, 24F, 25A, 25F, 27, 28A, 28F, 29, 31, 32A, 32F, 33A, 33B, 33C, 33D, 33E, 33F, 34, 35A, 35B, 35C, 35D, 35F, 36, 37, 38, 39, 40, 41A, 41F, 42, 43, 44, 45, 46, 47A, 47F, 및 48를 포함하는 군으로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 적어도 하나의 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합되는, 백신 조성물.
  39. 제30항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 조성물의 각 용량은, 각 폐렴구균성 혈청형의 다당류 1.0 μg 내지 10 μg을 포함하는, 백신 조성물.
  40. 제29항 내지 제39항에 있어서, 상기 조성물은 20가 조성물이고 0.5 ml 용량으로 제제화되며, 하기를 포함하는, 백신 조성물:
    a. 혈청형 1, 2, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 8, 9V, 10A, 11A, 12F, 14, 15B, 18C, 19A, 19F, 22F, 23F, 및 33F에서 유래하는 20개의 상이한 에스. 뉴모니아에 다당류;
    b. 170 μg 내지 200 μg 의 Al3+을 함유하는 애주번트인 인산알루미늄;
    c. 1 mg 내지 2 mg의 농도의 히스티딘;
    d. 1 mg 내지 2 mg의 농도의 숙신산염;
    e. 80 μg 내지 120 μg의 농도의 폴리소르베이트 20;
    f. 2 mg 내지 10 mg의 농도의 염화나트륨; 및
    g. 5 내지 7의 범위의 pH;
    여기서,
    i. 혈청형 4에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 DT에 접합되고; 혈청형 15B, 6A, 9V, 19A, 및 22F에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 TT에 접합되고; 혈청형 1, 2, 5, 6B, 7F, 8, 10A, 11A, 12F, 14, 18C, 19F, 23F 및 33F에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합되고;
    ii. 2.2 μg 내지 3.3 μg의, 혈청형 6B를 제외한 각 에스. 뉴모니아에 다당류;
    iii. 4.4 μg 내지 6.6 μg의, 혈청형 6B로부터의 에스. 뉴모니아에 다당류;
    iv. 10 μg 내지 200 μg의 CRM197;
    v. 5 μg 내지 70 μg 의 파상풍 톡소이드; 및
    vi. 1 μg 내지 25 μg의 디프테리아 톡소이드.
  41. 제29항 내지 제39항에 있어서, 상기 조성물은 21가 조성물이고 0.5 ml 용량으로 제제화되며, 하기를 포함하는, 백신 조성물:
    a. 혈청형 1, 2, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 8, 9V, 10A, 11A, 12F, 14, 15B, 18C, 19A, 19F, 22F, 23F, 24F 및 33F에서 유래하는 21개의 상이한 에스. 뉴모니아에 다당류;
    b. 170 μg 내지 200 μg 의 Al3+을 함유하는 애주번트인 인산알루미늄;
    c. 1 mg 내지 2 mg의 농도의 히스티딘;
    d. 1 mg 내지 2 mg의 농도의 숙신산염;
    e. 80 μg 내지 120 μg의 농도의 폴리소르베이트 20;
    f. 2 mg 내지 10 mg의 농도의 염화나트륨; 및
    g. 5 내지 7의 범위의 pH;
    여기서,
    i. 혈청형 4 및 24F에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 DT에 접합되고; 혈청형 15B, 6A, 9V, 19A, 및 22F에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 TT에 접합되고; 혈청형 1, 2, 5, 6B, 7F, 8, 10A, 11A, 12F, 14, 18C, 19F, 23F 및 33F에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합되고;
    ii. 2.2 μg 내지 3.3 μg의, 혈청형 6B를 제외한 각 에스. 뉴모니아에 다당류;
    iii. 4.4 μg 내지 6.6 μg의, 혈청형 6B로부터의 에스. 뉴모니아에 다당류;
    iv. 10 μg 내지 200 μg의 CRM197;
    v. 5 μg 내지 70 μg 의 파상풍 톡소이드; 및
    vi. 1 μg 내지 25 μg의 디프테리아 톡소이드.
  42. 제29항 내지 제41항에 있어서, 혈청형 15B에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 DT에 접합된, 백신 조성물.
  43. 제29항 내지 제41항에 있어서, 혈청형 15B에서 유래하는 에스. 뉴모니아에 다당류가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합된, 백신 조성물.
  44. 제29항 내지 제41항에 있어서, 상기 백신 조성물이 9A, 9N, 및 9L로부터 선택되는 혈청형에서 유래하는 적어도 하나의 추가적인 에스. 뉴모니아에 다당류를 포함하는, 백신 조성물.
  45. 제1항 내지 제44항 중 어느 한 항에 있어서, 각 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체는 1500 kDa 내지 30000 kDa의 범위 (SEC-MALS)의 분자량을 갖는, 백신 조성물.
  46. 제1항 내지 제45항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 6A-TT 접합체의 분자량은 7000 kDa 내지 10000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 8000 kDa 내지 9000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  47. 제1항 내지 제46항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 4-DT 접합체의 분자량은 3000 kDa 내지 10000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 3000 kDa 내지 9000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  48. 제1항 내지 제47항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 24F-DT 접합체의 분자량은 1500 kDa 내지 10000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 2000 kDa 내지 6000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  49. 제1항 내지 제48항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 6B-CRM197 접합체의 분자량은 4000 kDa 내지 15000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 5000 kDa 내지 12000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  50. 제1항 내지 제49항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 9V-TT 접합체의 분자량은 15000 kDa 내지 30000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 20000 kDa 내지 30000 kD의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  51. 제1항 내지 제50항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 15B-TT 접합체의 분자량은 6000 kDa 내지 10000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 7500 kDa 내지 9000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  52. 제1항 내지 제51항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 19A-TT 접합체의 분자량은 5000 kDa 내지 8000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 6000 kDa 내지 7000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  53. 제1항 내지 제52항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물 중의 22F-TT 접합체의 분자량은 9000 kDa 내지 18000 kDa의 범위 (SEC-MALS), 바람직하게는 10000 kDa 내지 17000 kDa의 범위 (SEC-MALS)인, 백신 조성물.
  54. 제1항 내지 제53항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 조성물이 백신 조성물의 0.5ml 용량당 2.5 mg 내지 5 mg 범위의 2-페녹시에탄올을 포함하는 다회 투약(multi-dose) 조성물인, 백신 조성물.
  55. 제1항 내지 제54항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 조성물이 2-8℃, 25℃ 및 40℃에서 안정한, 백신 조성물.
  56. 제1항 내지 제55항 중 어느 한 항에 있어서, 폐렴구균성 다당류-캐리어 단백질 접합체가 15% 미만의 유리 다당류 및 10% 미만의 유리 단백질을 갖는, 백신 조성물.
  57. 제1항 내지 제56항 중 어느 한 항에 있어서, 혈청형 6A, 9V 및 19A에서 유래하는 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 파상풍 톡소이드 (TT)에 접합되었을 때, 혈청형 6A, 9V 및 19A에서 유래하는 폐렴구균성 다당류가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합되었을 때에 비해 향상된 IgG 역가를 나타내는, 백신 조성물.
  58. 제1항 내지 제57항 중 어느 한 항에 있어서, 혈청형 6A, 9V, 19A, 및 15B가 캐리어 단백질인 TT에 접합되었을 때, 혈청형 6A, 9V, 19A, 및 15B가 캐리어 단백질인 CRM197에 접합되었을 때에 비해 적어도 2배의 총 IgG 역가 및 기능적 IgG 역가의 상승이 있는, 백신 조성물.
  59. 제1항 내지 제58항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 백신 조성물은 질병 예방을 위한 인간 대상으로의 투여를 위해 제제화된 것이고, 백신 조성물의 유효량을 투여하는 것에 의해, 스트렙토코쿠스 뉴모니아에로 인한 감염의 발병을 줄이거나 예방하는, 백신 조성물.
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