JPS63290899A - ヒトIgEFc蛋白質のフラグメントおよびその製造法 - Google Patents
ヒトIgEFc蛋白質のフラグメントおよびその製造法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/705—Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants
- C07K14/7056—Lectin superfamily, e.g. CD23, CD72
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
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- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
痩1上立机肛立夏
本発明はアレルギー治療薬として有用なヒトIgE (
ヒト免疫グロブリンE)Fc蛋白質のフラグメントを含
有する蛋白質、およびその製造法に関する。
ヒト免疫グロブリンE)Fc蛋白質のフラグメントを含
有する蛋白質、およびその製造法に関する。
来の 術および 日が 決しようとする問題点IgEは
免疫グロブリンIgの一種であり、工gの基本構造たる
Y字型の多重鎖構造のY字の幹の部分に当るFc部にお
いて、通常肥満細胞および好塩基球の膜上に存在するF
cレセプターに結合している。Y字の枝の部分たるFa
bは抗原と反応することにより、それらの細胞からヒス
タミンなどの生物活性を有する物質を放出させ、即時型
アレルギーなどを引き起す、一方、Fab部分を有さず
、Fc部分のみからなるFc部CCH2゜C:l+3.
CH4,から構成される)はFcレセプターへの結合能
を有するので、Fab部およびFc部を有する完全なI
gEとFcレセプターへの結合において競合し、しかも
このものはFab部を有さないため抗原と反応をしない
ので、細胞からのヒスタミンなどの遊離を阻害し、その
結果、即時型アレルギーなどを引き起こすことがないこ
とが知られている。
免疫グロブリンIgの一種であり、工gの基本構造たる
Y字型の多重鎖構造のY字の幹の部分に当るFc部にお
いて、通常肥満細胞および好塩基球の膜上に存在するF
cレセプターに結合している。Y字の枝の部分たるFa
bは抗原と反応することにより、それらの細胞からヒス
タミンなどの生物活性を有する物質を放出させ、即時型
アレルギーなどを引き起す、一方、Fab部分を有さず
、Fc部分のみからなるFc部CCH2゜C:l+3.
CH4,から構成される)はFcレセプターへの結合能
を有するので、Fab部およびFc部を有する完全なI
gEとFcレセプターへの結合において競合し、しかも
このものはFab部を有さないため抗原と反応をしない
ので、細胞からのヒスタミンなどの遊離を阻害し、その
結果、即時型アレルギーなどを引き起こすことがないこ
とが知られている。
一方、Fcの材料となるヒトIgE は正常人血清中に
は極めて微量にしか存在せず、IgE が高濃度に含
有されている骨髄腫患者血清から調製されており、随時
、同一種の標品を任意の量取得することは不可能である
0本発明者らの一部は株化ヒト骨髄腫細胞を培養して培
養液上清から高度に純化されたヒトIgE を大量に
取得する途を開いた(特開昭58−96028号公報)
、シかしながら、IgE を蛋白分解酵素で消化して
Fc部を取得することは難しく極めて微量のFc Lか
取得できず実用的な手法となるに至っていない。
は極めて微量にしか存在せず、IgE が高濃度に含
有されている骨髄腫患者血清から調製されており、随時
、同一種の標品を任意の量取得することは不可能である
0本発明者らの一部は株化ヒト骨髄腫細胞を培養して培
養液上清から高度に純化されたヒトIgE を大量に
取得する途を開いた(特開昭58−96028号公報)
、シかしながら、IgE を蛋白分解酵素で消化して
Fc部を取得することは難しく極めて微量のFc Lか
取得できず実用的な手法となるに至っていない。
分子生物学の最近の進歩によりFc部分をコードするD
NAを細菌に導入し、発現させることが可能になってき
た。この遺伝子組み換えの技術を応用し、Fc DNA
を細菌内で発現させることができれば、Fc蛋白質を大
量に調製することが可能になり、アレルギー治療薬とし
て実用化への道が開かれる。
NAを細菌に導入し、発現させることが可能になってき
た。この遺伝子組み換えの技術を応用し、Fc DNA
を細菌内で発現させることができれば、Fc蛋白質を大
量に調製することが可能になり、アレルギー治療薬とし
て実用化への道が開かれる。
骨髄腫患者NDから株化された骨髄腫細胞のIgE遺伝
子の塩基配列が決定され〔プロシージング・オブ・ナシ
ョナル・アカデミ−・オブ・サイエンス(Proc、N
atl、Acad、Sci、U、S、A、)79666
1(1982)、ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ(
Nucleic^cids Res、)旦719(19
83))、Fcフラグメントの大腸菌内での発現が報告
されている〔ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ(Nu
cleic Ac1ds Ras、)旦3077、プロ
シージング・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サ
イエンス(Proc、Natl、Acad、Sci。
子の塩基配列が決定され〔プロシージング・オブ・ナシ
ョナル・アカデミ−・オブ・サイエンス(Proc、N
atl、Acad、Sci、U、S、A、)79666
1(1982)、ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ(
Nucleic^cids Res、)旦719(19
83))、Fcフラグメントの大腸菌内での発現が報告
されている〔ヌクレイツク・アシッズ・リサーチ(Nu
cleic Ac1ds Ras、)旦3077、プロ
シージング・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サ
イエンス(Proc、Natl、Acad、Sci。
U、S、A、)812955(1984))、 L/か
じながら、Fc蛋白質は単鎖あたり9個のシスティン残
基を有するため、還元条件下にある大腸菌体から抽出さ
れたFc蛋白質は正しい高次構造を構築していない。
じながら、Fc蛋白質は単鎖あたり9個のシスティン残
基を有するため、還元条件下にある大腸菌体から抽出さ
れたFc蛋白質は正しい高次構造を構築していない。
組み換えDNA技術を用いて生産された蛋白質を正しい
高次構造へ構築する技術はまだ確立されておらず今後に
残された課題である。
高次構造へ構築する技術はまだ確立されておらず今後に
残された課題である。
上記課題を解決する一つの方法として宿主に動物細胞を
用い蛋白質を細胞外へ分泌させる方法がある。IL−2
のリーダー配列を用いてヒトIgEFc蛋白質DNAを
動物細胞で発現せしめFc蛋白質を培養培地中に効率よ
く分泌蓄積させる技術が完成され〔特願昭61−182
457号〕、さらに培地中に蓄積されたFc蛋白質を効
率よく単離精製する技術も完成した(特願昭61−28
1871号)。
用い蛋白質を細胞外へ分泌させる方法がある。IL−2
のリーダー配列を用いてヒトIgEFc蛋白質DNAを
動物細胞で発現せしめFc蛋白質を培養培地中に効率よ
く分泌蓄積させる技術が完成され〔特願昭61−182
457号〕、さらに培地中に蓄積されたFc蛋白質を効
率よく単離精製する技術も完成した(特願昭61−28
1871号)。
本発明者らは大腸菌でのFc蛋白質の発現を可能にすべ
く研究を行ない、上記の動物細胞で成功した手法〔ヒト
IgE蛋白質のFc部分全部(アミノ酸2″@からアミ
ノ酸1@まで)をコードするDNA含有プラスミドを用
いている〕を大腸菌に試みたが、抗ヒトIgE抗体と強
い反応性を示すFc蛋白質を得ることはできなかった。
く研究を行ない、上記の動物細胞で成功した手法〔ヒト
IgE蛋白質のFc部分全部(アミノ酸2″@からアミ
ノ酸1@まで)をコードするDNA含有プラスミドを用
いている〕を大腸菌に試みたが、抗ヒトIgE抗体と強
い反応性を示すFc蛋白質を得ることはできなかった。
4 点を解 するための
そこで本発明者等はFc[白[DNAを修飾し大腸菌に
とって好都合なフラグメントを発現する組み換え体が得
られれば、修飾フラグメントを大量に調製することが可
能になり、しかもこのものがアレルギーの治療に多大の
貢献をすることが期待できる点に着目し、Fc蛋白質の
一部欠けたものをコードする塩基配列を有するDNAで
形質転換させた組み換え大腸菌を作成し、このものを培
養して蛋白質を製造させたところ、抗ヒトIgE抗体と
強く反応する蛋白質が見つかった。具体的にはFc蛋白
質のカルボキシ末端76アミノ酸残基に相当するDNA
をコードしていない組み換え大腸菌294/ p G
E Ttrp712 (アミノ酸22′からアミノ酸
4#0までをコードするDNAを有するもの)(アミノ
酸番号については第1図参照)〔ハイブリドーマ±、
47(1985))の生産するFc蛋白質のフラグメン
トがヒトIgEIll定用キット(IgEリアジオツギ
(塩野義製薬)〕に強く反応することを見出した。すな
わち、上記組み換え菌体を培養し菌体内に当該蛋白質を
蓄積せしめ、このものを塩酸グアニジンを含む抽出液を
用いて抽出したのち、イムノアフィニテイーグロマトグ
ラフィー処理を含む精製処理をせしめた所、ヒトIgE
のC末端側で切断除去されているが、リンカ−ペプチド
: Met −LeuのC末端側にヒトIgEのFc蛋
白質の一部 Asp”’ −Asn −−−−−Arg −Ala”
’が結合した蛋白質が得られたのである。上記組み換え
大腸菌はAsp”’−Pro”’までのアミノ酸をコー
ドするDNAを含有しているにもかかわらず、C末端側
の一部アミノ酸が欠損したAsp”@−−−Ala”’
を含有する新規な蛋白質を産生じたのである。
とって好都合なフラグメントを発現する組み換え体が得
られれば、修飾フラグメントを大量に調製することが可
能になり、しかもこのものがアレルギーの治療に多大の
貢献をすることが期待できる点に着目し、Fc蛋白質の
一部欠けたものをコードする塩基配列を有するDNAで
形質転換させた組み換え大腸菌を作成し、このものを培
養して蛋白質を製造させたところ、抗ヒトIgE抗体と
強く反応する蛋白質が見つかった。具体的にはFc蛋白
質のカルボキシ末端76アミノ酸残基に相当するDNA
をコードしていない組み換え大腸菌294/ p G
E Ttrp712 (アミノ酸22′からアミノ酸
4#0までをコードするDNAを有するもの)(アミノ
酸番号については第1図参照)〔ハイブリドーマ±、
47(1985))の生産するFc蛋白質のフラグメン
トがヒトIgEIll定用キット(IgEリアジオツギ
(塩野義製薬)〕に強く反応することを見出した。すな
わち、上記組み換え菌体を培養し菌体内に当該蛋白質を
蓄積せしめ、このものを塩酸グアニジンを含む抽出液を
用いて抽出したのち、イムノアフィニテイーグロマトグ
ラフィー処理を含む精製処理をせしめた所、ヒトIgE
のC末端側で切断除去されているが、リンカ−ペプチド
: Met −LeuのC末端側にヒトIgEのFc蛋
白質の一部 Asp”’ −Asn −−−−−Arg −Ala”
’が結合した蛋白質が得られたのである。上記組み換え
大腸菌はAsp”’−Pro”’までのアミノ酸をコー
ドするDNAを含有しているにもかかわらず、C末端側
の一部アミノ酸が欠損したAsp”@−−−Ala”’
を含有する新規な蛋白質を産生じたのである。
このようにして本発明者等は、リンカ−ペプチドのC末
端側にヒトIgEのFc蛋白質の全部ではなくて一部が
結合しているもの、具体的にはヒトIgE蛋白質の22
6番目のアミノ酸から始まって365ないし400番目
のアミノ酸で終るフラグメントが結合した新規な蛋白質
が、抗ヒトIgE抗体と強い反応性を示すことを見出し
、本発明に到達したものである。
端側にヒトIgEのFc蛋白質の全部ではなくて一部が
結合しているもの、具体的にはヒトIgE蛋白質の22
6番目のアミノ酸から始まって365ないし400番目
のアミノ酸で終るフラグメントが結合した新規な蛋白質
が、抗ヒトIgE抗体と強い反応性を示すことを見出し
、本発明に到達したものである。
すなわち、本発明は(1)リンカ−ペプチドと、そのC
末端に結合したヒトIgE蛋白質の226番目のアミノ
酸から始まって365ないし400番目のアミノM(第
1図参照)で終るフラグメントとからなる蛋白質(1)
、(2) ffl白質(1)を生産する能力を有する組
換え大腸菌体を培養し、培養物中に蓄積された該蛋白質
を採取することを特徴とする該蛋白質の製造法、(3)
イムノアフィニティークロマトグラフィーを含む方法で
蛋白質の採取を行なう上記(2)の蛋白質の製造法、(
4)イムノアフィニティークロマトグラフィーにおいて
モノクローナル抗体を用いる上記(3)記載の蛋白質の
製造法に関するものである。
末端に結合したヒトIgE蛋白質の226番目のアミノ
酸から始まって365ないし400番目のアミノM(第
1図参照)で終るフラグメントとからなる蛋白質(1)
、(2) ffl白質(1)を生産する能力を有する組
換え大腸菌体を培養し、培養物中に蓄積された該蛋白質
を採取することを特徴とする該蛋白質の製造法、(3)
イムノアフィニティークロマトグラフィーを含む方法で
蛋白質の採取を行なう上記(2)の蛋白質の製造法、(
4)イムノアフィニティークロマトグラフィーにおいて
モノクローナル抗体を用いる上記(3)記載の蛋白質の
製造法に関するものである。
本発明の蛋白質(1)は新規な物質であり、従来、この
ような蛋白質は得られたことがなかったのである1本発
明の蛋白質(1)においてヒトIgEFc蛋白質のフラ
グメントのN末端側についているリンカ−ペプチドは大
腸菌での本蛋白質の発現が順調に行われるものであれば
どのようなものでも構わないが、具体的にはMet−L
suのようなものが挙げられる。
ような蛋白質は得られたことがなかったのである1本発
明の蛋白質(1)においてヒトIgEFc蛋白質のフラ
グメントのN末端側についているリンカ−ペプチドは大
腸菌での本蛋白質の発現が順調に行われるものであれば
どのようなものでも構わないが、具体的にはMet−L
suのようなものが挙げられる。
本発明の蛋白質(1)を生産する能力を有する組換え大
腸菌体としては前述の大腸菌294/ p GETtr
p712が具体的には挙げられるが、これに限定される
ことはない。
腸菌体としては前述の大腸菌294/ p GETtr
p712が具体的には挙げられるが、これに限定される
ことはない。
例えば、蛋白質(1)をコードする塩基配列を有するD
NAで形質転換された大腸菌であって、蛋白質(1)を
生産する組み換え大腸菌体、あるいはリンカ−ペプチド
をコードする塩基配列とその3′−末端に結合したヒト
IgE蛋白質の一部をコードする塩基配列とを有するD
NAで形質転換された大腸菌であって、大腸菌内のプロ
セッシングにより蛋白’Jt (1)を生産する組み換
え大腸菌体などのいずれを用いてもよい。
NAで形質転換された大腸菌であって、蛋白質(1)を
生産する組み換え大腸菌体、あるいはリンカ−ペプチド
をコードする塩基配列とその3′−末端に結合したヒト
IgE蛋白質の一部をコードする塩基配列とを有するD
NAで形質転換された大腸菌であって、大腸菌内のプロ
セッシングにより蛋白’Jt (1)を生産する組み換
え大腸菌体などのいずれを用いてもよい。
本発明の蛋白質(1)を製造する方法としては。
上記の蛋白質(1)を生産する能力を有する組換え大腸
菌体の培養、生成物の精製の他、リンカ−ペプチドとそ
のC末端に結合したヒトIgEF。
菌体の培養、生成物の精製の他、リンカ−ペプチドとそ
のC末端に結合したヒトIgEF。
蛋白質またはそのフラグメントとからなる蛋白質のC末
端側からアミノ酸を切除して、所望のアミノ酸を有する
フラグメントとすることもできる。
端側からアミノ酸を切除して、所望のアミノ酸を有する
フラグメントとすることもできる。
なお1本発明の蛋白質においては、一部のアミノ酸が削
除されていたり、他のアミノ酸に置換されていても、本
発明と同様の作用を有するものは本発明の蛋白質に含ま
れる。
除されていたり、他のアミノ酸に置換されていても、本
発明と同様の作用を有するものは本発明の蛋白質に含ま
れる。
本発明で用いられる形質転換大腸菌体の培養は。
自体公知の培地1例えばM−9培地中、15〜40℃、
好ましくは24〜37℃で3〜48時間、好ましくは5
〜12時間行い、必要により通気や撹拌を加えることも
できる。
好ましくは24〜37℃で3〜48時間、好ましくは5
〜12時間行い、必要により通気や撹拌を加えることも
できる。
培養後、公知の方法で菌体を集め、菌体を尿素、塩酸グ
アニジンなどの蛋白変性剤を含む緩衝液に懸濁し、冷所
で撹拌したのち、遠心分離により当該蛋白質を含む上澄
液を得る方法、あるいは緩衝液に懸濁し、超音波処理、
リゾチームおよび/または凍結融解によって菌体を破壊
したのち、遠心分離により当該蛋白質を含む上澄液を得
る方法などが適宜用い得るが、例えば菌体を集めて塩酸
グアニジン(3〜7M)を含む緩衝液を加え撹拌(0〜
10℃で0.5〜8時間)後、遠心分離して上澄を得る
方法が好ましい。
アニジンなどの蛋白変性剤を含む緩衝液に懸濁し、冷所
で撹拌したのち、遠心分離により当該蛋白質を含む上澄
液を得る方法、あるいは緩衝液に懸濁し、超音波処理、
リゾチームおよび/または凍結融解によって菌体を破壊
したのち、遠心分離により当該蛋白質を含む上澄液を得
る方法などが適宜用い得るが、例えば菌体を集めて塩酸
グアニジン(3〜7M)を含む緩衝液を加え撹拌(0〜
10℃で0.5〜8時間)後、遠心分離して上澄を得る
方法が好ましい。
上記抽出液からのFc蛋白質のフラグメントの分離、精
製は自体公知の分離精製法を適切に組み合わせて分離精
製することができる。すなわち、例えばモノクローナル
抗体を用いるイムノアフィニティークロマトグラフィー
、ゲルろ過クロマトグラフィーおよびイオン交換クロマ
トグラフィーなどの分離、精製手段から適宜選択し、組
み合わせて使用することができるが、とりわけ上記記載
のこれらの手段をこの順番に用いるのがよい。
製は自体公知の分離精製法を適切に組み合わせて分離精
製することができる。すなわち、例えばモノクローナル
抗体を用いるイムノアフィニティークロマトグラフィー
、ゲルろ過クロマトグラフィーおよびイオン交換クロマ
トグラフィーなどの分離、精製手段から適宜選択し、組
み合わせて使用することができるが、とりわけ上記記載
のこれらの手段をこの順番に用いるのがよい。
イムノアフィニティークロマトグラフィーのリガンドと
して抗ヒトIgE ポリクローナル抗体を用いることが
できるが、とりわけFc部分を認識するモノクローナル
抗体を用いることが好ましい。
して抗ヒトIgE ポリクローナル抗体を用いることが
できるが、とりわけFc部分を認識するモノクローナル
抗体を用いることが好ましい。
Fc部分を認識するモノクローナル抗体としてE 23
5 I 63. E 120.02など〔ハイブリドー
マ(llybridoma)4,47(1985))が
挙げられるが、とりわけE120.02が好ましい。
5 I 63. E 120.02など〔ハイブリドー
マ(llybridoma)4,47(1985))が
挙げられるが、とりわけE120.02が好ましい。
イムノアフィニティークロマトグラフィーの担体として
アフィゲル−10(バイオラッド社)、CNBr−活性
化セファローズ4B(ファルマシア社)、フォルミルセ
ルロファイン(生化学工業)などが用いられ、とりわけ
アフィゲル−10が好ましい。
アフィゲル−10(バイオラッド社)、CNBr−活性
化セファローズ4B(ファルマシア社)、フォルミルセ
ルロファイン(生化学工業)などが用いられ、とりわけ
アフィゲル−10が好ましい。
Fc?If白質のフラグメントをE 120.02をリ
ガンドとするイムノアフィニティークロマトグラフィー
により精製するには、前Fc蛋白質のフラグメント含有
抽出液を緩衝液(りん酸緩衝液など)に対してあらかじ
め充分に透析し、不溶物を遠心分離により除去した上澄
液を上記緩衝液で平衡化した上記カラムに吸着させ、緩
衝液で溶出する。該緩衝液に蛋白変性剤(尿素など)な
どを適量加えて使用でき、これら添加物の種類や濃度、
緩衝液のpHを組合せ、適切な溶出液として用いること
ができる。得られたFc蛋白質のフラグメントを含む両
分の濃縮には限外ろ過膜などを用いることができる。
ガンドとするイムノアフィニティークロマトグラフィー
により精製するには、前Fc蛋白質のフラグメント含有
抽出液を緩衝液(りん酸緩衝液など)に対してあらかじ
め充分に透析し、不溶物を遠心分離により除去した上澄
液を上記緩衝液で平衡化した上記カラムに吸着させ、緩
衝液で溶出する。該緩衝液に蛋白変性剤(尿素など)な
どを適量加えて使用でき、これら添加物の種類や濃度、
緩衝液のpHを組合せ、適切な溶出液として用いること
ができる。得られたFc蛋白質のフラグメントを含む両
分の濃縮には限外ろ過膜などを用いることができる。
ゲルろ過クロマトグラフィーは、例えばセファクリル5
−zoo(ファルマシャ社)カラムを用いて公知の手段
を適用して実施される。
−zoo(ファルマシャ社)カラムを用いて公知の手段
を適用して実施される。
イオン交換クロマトグラフィーは、例えばDEAE−ト
ヨバール650M (東洋曹達工業)カラムを用いて公
知の手段を適用して実施される。
ヨバール650M (東洋曹達工業)カラムを用いて公
知の手段を適用して実施される。
かくして生成されるヒトIgEFc蛋白質のフラグメン
トの純度の測定(比活性)には、市販のヒトIgE測定
用キット、例えばIgEリアジオツギ(ジオツギ製薬)
を用いて行なうことができる。
トの純度の測定(比活性)には、市販のヒトIgE測定
用キット、例えばIgEリアジオツギ(ジオツギ製薬)
を用いて行なうことができる。
本発明の製造法によれば、高度に精製された、医薬品等
として使用しうるヒトIgEFc蛋白質のフラグメント
含有蛋白質を得ることができる。
として使用しうるヒトIgEFc蛋白質のフラグメント
含有蛋白質を得ることができる。
例えば、ヒトIgEFc蛋白質の一部をコードする塩基
配列を有するDNAで形質転換された大腸菌体の産生じ
たFc蛋白質のフラグメント含有蛋白質を本発明の方法
により精製することにより下記の性状を有する高度に精
製されたヒトIgEFc蛋白質のフラグメント含有蛋白
質を得ることができる。
配列を有するDNAで形質転換された大腸菌体の産生じ
たFc蛋白質のフラグメント含有蛋白質を本発明の方法
により精製することにより下記の性状を有する高度に精
製されたヒトIgEFc蛋白質のフラグメント含有蛋白
質を得ることができる。
(1)SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(還元
条件下)で2本のバンドを示し、これによる分子量測定
値はそれぞれ20,000±1 、000ダルトンおよ
び18,000±1 、000ダルトンである。
条件下)で2本のバンドを示し、これによる分子量測定
値はそれぞれ20,000±1 、000ダルトンおよ
び18,000±1 、000ダルトンである。
(2)アミノ末端アミノ酸としてメチオニン(もしくは
そのホルミル体)を有する。
そのホルミル体)を有する。
(3)カルボキシ末端アミノ酸としてアラニンを有する
。
。
(4)IXIO’ユニット/■以上の比活性を有する。
本発明において蛋白質純度決定のためのFc蛋白質のフ
ラグメント含有蛋白質の活性の(比活性)測定はIgE
リアジオツギキットを用いるラジオイムノアッセイ法で
行なった。
ラグメント含有蛋白質の活性の(比活性)測定はIgE
リアジオツギキットを用いるラジオイムノアッセイ法で
行なった。
本発明の蛋白質の毒性は低く、IgEによってひきおこ
されるアレルギーの治療作用を有する。
されるアレルギーの治療作用を有する。
したがって、本発明の蛋白質は、たとえば、アレルギー
性鼻炎、アトピー性皮膚炎、気管支喘息などのアレルギ
ーの治療薬として用いることができる0本発明の蛋白質
をアレルギーの治療薬として用いるには、ヒトに、たと
えば噴震用液剤、軟膏剤、クリーム剤などとして噴霧、
塗布することにより非経口的に、または錠剤などとして
経口的に投与される。投与量は、性状、投与経路により
異なるが、およそ1回あたり、10ng〜100μgで
あり、1日約3回投与される。
性鼻炎、アトピー性皮膚炎、気管支喘息などのアレルギ
ーの治療薬として用いることができる0本発明の蛋白質
をアレルギーの治療薬として用いるには、ヒトに、たと
えば噴震用液剤、軟膏剤、クリーム剤などとして噴霧、
塗布することにより非経口的に、または錠剤などとして
経口的に投与される。投与量は、性状、投与経路により
異なるが、およそ1回あたり、10ng〜100μgで
あり、1日約3回投与される。
なお、本願明細書および図面において、塩基やアミノ酸
などを略号で表示する場合、IUPAC−I U B
Comm1ssion on Bioche+aica
l Nomancla−tureによる略号、あるいは
当該分野における慣用略号に基づくものであり、その例
を次に挙げる。
などを略号で表示する場合、IUPAC−I U B
Comm1ssion on Bioche+aica
l Nomancla−tureによる略号、あるいは
当該分野における慣用略号に基づくものであり、その例
を次に挙げる。
またアミノ酸に関し光学異性体がありうる場合は、特に
明示しなければL一体を示すものとする。
明示しなければL一体を示すものとする。
DNA デオキシリボ核酸
A アデニン
T チミン
G グアニン
Cシトシン
SDS ドデシル硫酸ナトリウム
Gly グリシン
Ala アラニン
Val バリン
Leu ロイシン
11a イソロイシン
Ser セリン
Thr スレオニン
Cys システィン
1/2Cys ハーフシスチン
Met メチオニン
Glu グルタミン酸
A g p アスパラギン酸
Lys リジン
A r g アルギニン
His ヒスチジン
Phe フェニルアラニン
Tyr チロシン
Trp トリプトファン
Pro プロリン
Asn アスパラギン
Gln グルタミン
ヌ】0乳
以下に、参考例および実施例を挙げて本発明をさらに具
体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるもので
はない。
体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるもので
はない。
なお、以下の参考例2に記載のp G E T trp
302を用いて、大腸菌294(I F 0−1417
1)をCohenら[プロシーディンゲス・オフ・ナシ
ョナル・アカデミ−・オフ・サイエンス・ニー・ニス・
ニーJ (Proc、Natl。
302を用いて、大腸菌294(I F 0−1417
1)をCohenら[プロシーディンゲス・オフ・ナシ
ョナル・アカデミ−・オフ・サイエンス・ニー・ニス・
ニーJ (Proc、Natl。
Acad、Sci、U、S、^、)61.2110(1
972)に記載の方法により形質転換させて得られた形
質転換体大腸菌294/pG E Ttrp302は、
財団法人発酵研究所(IFO) L: I FO−14
285トLテ寄Ifc!レテイル。
972)に記載の方法により形質転換させて得られた形
質転換体大腸菌294/pG E Ttrp302は、
財団法人発酵研究所(IFO) L: I FO−14
285トLテ寄Ifc!レテイル。
また、同じく参考例2に記載のp G E Ttrp7
12を用いて、大腸菌294(I F 0−14171
)をCohenら「プロシーディンゲス・オフ・ナショ
ナル・アカデミ−・オフ・サイエンス・ニー・ニス・ニ
ー」(Proc、Natl、Acad、Sci、U、S
、A、)61.2110(1972)に記載の方法によ
り形質転換させて得られた形質転換体大腸菌294/p
G E Ttrp712は、財団法人発酵研究所(IF
O)にIFO−14609として、また昭和62年5月
21日から通商産業省微生物工業技術研究所(FRI)
にFERM P−9382として寄託されている。
12を用いて、大腸菌294(I F 0−14171
)をCohenら「プロシーディンゲス・オフ・ナショ
ナル・アカデミ−・オフ・サイエンス・ニー・ニス・ニ
ー」(Proc、Natl、Acad、Sci、U、S
、A、)61.2110(1972)に記載の方法によ
り形質転換させて得られた形質転換体大腸菌294/p
G E Ttrp712は、財団法人発酵研究所(IF
O)にIFO−14609として、また昭和62年5月
21日から通商産業省微生物工業技術研究所(FRI)
にFERM P−9382として寄託されている。
参考例I E 120.02アフイゲル10カラムの
製造抗ヒトIgEモノクローナル抗体、E 120.0
2(ハイブリドーマ、土、 47(1985))360
s+gを含むPBS(137mM NaC1,2,7m
M KCI、 8.1mM Na、HPO,、1,5m
MK1.PO,、p)17.4)溶液75m1を2Qの
0.IM Na+lCO。
製造抗ヒトIgEモノクローナル抗体、E 120.0
2(ハイブリドーマ、土、 47(1985))360
s+gを含むPBS(137mM NaC1,2,7m
M KCI、 8.1mM Na、HPO,、1,5m
MK1.PO,、p)17.4)溶液75m1を2Qの
0.IM Na+lCO。
溶液に対して一晩4℃で透析したのち、アフィゲル10
(バイオラッド社) 75mΩに加えて混和し5℃で2
日間振とうした。混合液をガラスフィルター上に移して
ゲルをPBSで洗いアフィゲル10に結合しなかった蛋
白質を除いた。この操作でのモノクローナル抗体への結
合率は約87%で7フイゲル101mQ当り約4.2脂
gのモノクローナル抗体の結合したE 120.02−
アフィゲル1075mQが得られた0本ゲルをPBS、
3M尿素、 0.15M NaC1を含む0.2M酢酸
ナトリウム緩衝液(p H4,0)、 0.15MNa
(:1を含む0.2M酢酸、PBSで順次洗浄したのち
内径2.61のカラムに詰めE 120.02−アフィ
ゲルIOカラムを製造した。
(バイオラッド社) 75mΩに加えて混和し5℃で2
日間振とうした。混合液をガラスフィルター上に移して
ゲルをPBSで洗いアフィゲル10に結合しなかった蛋
白質を除いた。この操作でのモノクローナル抗体への結
合率は約87%で7フイゲル101mQ当り約4.2脂
gのモノクローナル抗体の結合したE 120.02−
アフィゲル1075mQが得られた0本ゲルをPBS、
3M尿素、 0.15M NaC1を含む0.2M酢酸
ナトリウム緩衝液(p H4,0)、 0.15MNa
(:1を含む0.2M酢酸、PBSで順次洗浄したのち
内径2.61のカラムに詰めE 120.02−アフィ
ゲルIOカラムを製造した。
参考例2 カルボキシ末端欠損Fc蛋白質発現プラス
ミドp G E Ttrp712の構築ヒトIgEのC
,−C4領域のポリペプチドが大腸菌において発現する
ように構築されたプラスミドp G E Ttrp30
2 [Kurokawa、ら、ヌクI/イック・アシッ
ズ・リサーチ(Nucleic Ac1ds Res、
)旦、3077−3085(1983) ;特開昭59
−44399号公報]を制限酵素MstIIで切断し、
生じた粘着末端を大腸菌DNAポリメラーゼ■ラージフ
ラグメントでうめた後。
ミドp G E Ttrp712の構築ヒトIgEのC
,−C4領域のポリペプチドが大腸菌において発現する
ように構築されたプラスミドp G E Ttrp30
2 [Kurokawa、ら、ヌクI/イック・アシッ
ズ・リサーチ(Nucleic Ac1ds Res、
)旦、3077−3085(1983) ;特開昭59
−44399号公報]を制限酵素MstIIで切断し、
生じた粘着末端を大腸菌DNAポリメラーゼ■ラージフ
ラグメントでうめた後。
50nHの5′末端をリン酸化した翻訳停止コドンを含
むEc*RIリンカ−dCTAGAATTCTAGをT
4DNAリガーゼ(New England Biol
abs社)を用いて結合させた。両端に結合したリンカ
一部分をEcoRIで切断したのち、DNAを再結合さ
せたヒトIgE 蛋白質の480番目のアミノ酸までを
コードするプラスミドp G E Ttrp712を構
築した。このプラスミドを用いて、Cohen らの方
法r(Proc、Natl、Acad、Sci、U、S
、A、)69.2110(1972)Jに従って大腸菌
294(IFO−14171)を形質転換させることに
より形質転換体大腸菌294/pG E Ttrp71
2を得た(第2図参照)。
むEc*RIリンカ−dCTAGAATTCTAGをT
4DNAリガーゼ(New England Biol
abs社)を用いて結合させた。両端に結合したリンカ
一部分をEcoRIで切断したのち、DNAを再結合さ
せたヒトIgE 蛋白質の480番目のアミノ酸までを
コードするプラスミドp G E Ttrp712を構
築した。このプラスミドを用いて、Cohen らの方
法r(Proc、Natl、Acad、Sci、U、S
、A、)69.2110(1972)Jに従って大腸菌
294(IFO−14171)を形質転換させることに
より形質転換体大腸菌294/pG E Ttrp71
2を得た(第2図参照)。
実施例1 形質転換体の培養
形質転換体大腸菌!菌294/ pG E Ttrp7
12 (第2図参照)を1.0%グルコース、0.2%
カザミノ酸を含むM−9培地で37℃、6時間培養した
後、菌体を集めた。
12 (第2図参照)を1.0%グルコース、0.2%
カザミノ酸を含むM−9培地で37℃、6時間培養した
後、菌体を集めた。
実施例2 菌体からの抽出
実施例1記載の方法で培養し、−20℃で凍結して得た
凍結保存菌体65gを7M塩酸グアニジン。
凍結保存菌体65gを7M塩酸グアニジン。
20mM 2−メルカプトエタノールを含むPBS
(p H7,4) 200mAに懸濁し5℃で4時間撹
拌した。
(p H7,4) 200mAに懸濁し5℃で4時間撹
拌した。
この懸濁液にP B 8267■Qを加えてさらに1時
間撹拌を続けたのち30,100X gで1時間遠心分
離して上清を得、ついでPBS 4Ωに対して5℃で
2日間透析した。なお、途中で3回PBSを交換した。
間撹拌を続けたのち30,100X gで1時間遠心分
離して上清を得、ついでPBS 4Ωに対して5℃で
2日間透析した。なお、途中で3回PBSを交換した。
透析内液を遠心分離して上清4’lOwa Q (2
115B;98.7X10’ユニツト)を得た。
115B;98.7X10’ユニツト)を得た。
実施例3 Fc蛋白質のフラグメントの製造■ イム
ノアフィニティークロマトグラフィー参考例1で調製し
たE 120.02−アフィゲル10カラム(2,6X
13.6m)をPBSにより平衡化して、実施例2で得
られた透析内液の一部15fujlを同カラムにかけた
のち、同緩衝液1,000mQ、 0.15MNaCQ
を含む0.2M酢酸ナトリウム緩衝液(pH7,2)6
0m Q 、 3 M尿素、 0.15M NaCQを
含む0.2M酢酸ナトリウム緩衝液(pH5,0) 1
00mQ 、 P BS 200■Ωで順次洗った。3
M尿素を含む緩衝液で溶出された活性画分約80m Q
をPBS2Qに対して5℃で24時間透析した。なお、
途中で1回PBSを交換した。3回のクロマトグラフィ
ー操作により得られた透析内液を遠心分離して上清24
1■Q(31,3+*g; 55,4 X 10”ユニ
ット)を得た。
ノアフィニティークロマトグラフィー参考例1で調製し
たE 120.02−アフィゲル10カラム(2,6X
13.6m)をPBSにより平衡化して、実施例2で得
られた透析内液の一部15fujlを同カラムにかけた
のち、同緩衝液1,000mQ、 0.15MNaCQ
を含む0.2M酢酸ナトリウム緩衝液(pH7,2)6
0m Q 、 3 M尿素、 0.15M NaCQを
含む0.2M酢酸ナトリウム緩衝液(pH5,0) 1
00mQ 、 P BS 200■Ωで順次洗った。3
M尿素を含む緩衝液で溶出された活性画分約80m Q
をPBS2Qに対して5℃で24時間透析した。なお、
途中で1回PBSを交換した。3回のクロマトグラフィ
ー操作により得られた透析内液を遠心分離して上清24
1■Q(31,3+*g; 55,4 X 10”ユニ
ット)を得た。
■ セファクリルS−200を用いたゲルろ過クロマト
グラフィー ■で得られた遠心上清をYM−5メンプラン(アミコン
社製、アメリカ)を用いて濃縮した。
グラフィー ■で得られた遠心上清をYM−5メンプラン(アミコン
社製、アメリカ)を用いて濃縮した。
得られた濃縮液全量をあらかじめPBSで平衡化したセ
ファクリルS−200カラム(1,6X105m)にか
け、同緩衝液を用いてFc蛋白質のフラグメントを溶出
した。活性画分24.7mA (9,4mg; 19.
3×101ユニツト)を得た。
ファクリルS−200カラム(1,6X105m)にか
け、同緩衝液を用いてFc蛋白質のフラグメントを溶出
した。活性画分24.7mA (9,4mg; 19.
3×101ユニツト)を得た。
■ DEAE−トヨパール650 Mを用いたイオン交
換クロマトグラフィー ■で得られた活性画分を10mM Tris−HCQ
(pH8゜2)緩衝液500m Qに対して24時間透
析した。なお途中で1回緩衝液を交換した。透析内液を
遠心分離したのち、上清をあらかじめlomM Tri
s−tic !1 (pH8,2)緩衝液で平衡化した
DEAE−トヨパール650Mカラム(0,72X17
cm)にかけ、同緩衝液lO履ρで洗った。カラムに結
合した蛋白質は10 mMTris−HCQ (pH8
,2)緩衝液100m Qに0.3M NaCQを含む
同緩衝液100mΩを連続的に加えるNaCQの直線濃
度勾配グラジェントにより溶出した。NaCQ濃度14
0■H付近に溶出された高比活性画分17.2iQ(1
,8mg; 6−5X10’ユニツト)を集めた。
換クロマトグラフィー ■で得られた活性画分を10mM Tris−HCQ
(pH8゜2)緩衝液500m Qに対して24時間透
析した。なお途中で1回緩衝液を交換した。透析内液を
遠心分離したのち、上清をあらかじめlomM Tri
s−tic !1 (pH8,2)緩衝液で平衡化した
DEAE−トヨパール650Mカラム(0,72X17
cm)にかけ、同緩衝液lO履ρで洗った。カラムに結
合した蛋白質は10 mMTris−HCQ (pH8
,2)緩衝液100m Qに0.3M NaCQを含む
同緩衝液100mΩを連続的に加えるNaCQの直線濃
度勾配グラジェントにより溶出した。NaCQ濃度14
0■H付近に溶出された高比活性画分17.2iQ(1
,8mg; 6−5X10’ユニツト)を集めた。
上記方法で製造した実質的に純粋なFc蛋白質のフラグ
メントは下記の性状を有していた。
メントは下記の性状を有していた。
(1)単一性:
実施例3で得られたFc蛋白質のフラグメントの純度を
ラエムリの方法〔「ネイチャー(Nature) J
+亜680(1970))に準じて5DS−ポリアクリ
ルアミドスラブゲル電気泳動を行った結果、Fc蛋白質
のフラグメントは還元条件下で主に2本のバンドを示し
た(第3図参照)。
ラエムリの方法〔「ネイチャー(Nature) J
+亜680(1970))に準じて5DS−ポリアクリ
ルアミドスラブゲル電気泳動を行った結果、Fc蛋白質
のフラグメントは還元条件下で主に2本のバンドを示し
た(第3図参照)。
(2)分子量:
Fc¥X白質のフラグメントの分子量は5DS−ポリア
クリルアミドスラブゲル電気泳動から還元条件下では2
0,000±1,000および18,000±i 、
oooダルトンと算出された。
クリルアミドスラブゲル電気泳動から還元条件下では2
0,000±1,000および18,000±i 、
oooダルトンと算出された。
(3)アミノ酸組成:
実施例3で得られたFc蛋白質のフラグメント15.6
μgをガラス製加水分解用試験管にとり、4%チオグリ
コール酸を含む定沸点塩酸を加えて。
μgをガラス製加水分解用試験管にとり、4%チオグリ
コール酸を含む定沸点塩酸を加えて。
減圧下に封管したのち、110℃で24.48.72時
間加水分解した。加水分解後、開管し、減圧下に塩酸を
除去し、残渣を0.02N塩酸に溶解して日立製835
型アミノ酸分析計によりアミノ酸分析を実施した。シス
チンおよびシスティンはハースの方法〔メソッズインエ
ンザイモロジー(Methods inEnzymol
、)旦、 197(1967))に従い、Fc蛋白質の
フラグメントを過ギ酸酸化したのち、減圧下、定沸点塩
酸中で24時間加水分解して、アミノ酸分析計によりシ
スティン酸として定量した。
間加水分解した。加水分解後、開管し、減圧下に塩酸を
除去し、残渣を0.02N塩酸に溶解して日立製835
型アミノ酸分析計によりアミノ酸分析を実施した。シス
チンおよびシスティンはハースの方法〔メソッズインエ
ンザイモロジー(Methods inEnzymol
、)旦、 197(1967))に従い、Fc蛋白質の
フラグメントを過ギ酸酸化したのち、減圧下、定沸点塩
酸中で24時間加水分解して、アミノ酸分析計によりシ
スティン酸として定量した。
アミノ酸分析値は、 24.48および72時間の加水
分解で得られた値を平均して求めた。但し、セリンおよ
びスレオニンの値は加水分解時間を0時間に外挿して求
めた。その結果を第1表に示す。
分解で得られた値を平均して求めた。但し、セリンおよ
びスレオニンの値は加水分解時間を0時間に外挿して求
めた。その結果を第1表に示す。
第 1 表
アミノ酸 モル%
Asp/Asn 9.8Thr
13.5Ser
9.4Glu/Gln
11.3Pro 3.8
aty 7.2Ala
4・91/2Cys
3.2V a l
5 、6Met 1.6I
le 3.4Lau
9.8Tyr2.7 Phe 3.3L
ys4.0 His 2・4A
rg 、2.4Tr
p 1.5(4)NH
,末端アミノ酸配列: 実施例3で得られたFc蛋白質のフラグメント24μg
に気相プロテインシークエネーター(アプライド・バイ
オシステムズ社製470A型、アメリカ)を用いる自動
エドマン分解法を適用して。
13.5Ser
9.4Glu/Gln
11.3Pro 3.8
aty 7.2Ala
4・91/2Cys
3.2V a l
5 、6Met 1.6I
le 3.4Lau
9.8Tyr2.7 Phe 3.3L
ys4.0 His 2・4A
rg 、2.4Tr
p 1.5(4)NH
,末端アミノ酸配列: 実施例3で得られたFc蛋白質のフラグメント24μg
に気相プロテインシークエネーター(アプライド・バイ
オシステムズ社製470A型、アメリカ)を用いる自動
エドマン分解法を適用して。
NH2末端アミノ酸配列を分析した。フェニルチオヒダ
ントインアミノ酸(PTH=アミノ酸)はミクロパック
C18−3カラム(パリアン社製、アメリカ)を用いる
高速液体クロマトグラフィーにより同定した。各ステッ
プで検出されたPTH−アミノ酸を第2表に示す。
ントインアミノ酸(PTH=アミノ酸)はミクロパック
C18−3カラム(パリアン社製、アメリカ)を用いる
高速液体クロマトグラフィーにより同定した。各ステッ
プで検出されたPTH−アミノ酸を第2表に示す。
第2表
ステップ 検出されたPTH−アミノ酸1
メチオニン 2 ロイシン 3 アスパラギン酸 4 アスパラギン 5 リジン 6 スレオニン 7 フェニルアラニン8
セリン 9 バリン 10 X傘 11 セリン 12 アルギニン 13 アスパラギン酸14
フェニルアラニン15 ス
レオニン 串:同定出来ず (5)COOH末端アミノ酸 実施例3で得られたFc蛋白質のフラグメント90μg
をガラス製ヒドラジン分解用試験管にとり、無水ヒドラ
ジンO,1rnQを加えて減圧下に封管したのち、10
0℃で6時間加熱した。得られたヒドラジン分解物をス
ピードバックコンセードレータ−(サーバント社製、ア
メリカ)を用いて乾固したのち、蒸留水に溶解した。こ
の溶液にベンズアルデヒドを添加し、室温1時間撹拌し
、遠心分離を行ったのち、上清を得た。この上清を乾固
し、日立fIB835型アミノ酸分析計によりアミノ酸
分析を実施した。その結果、1.In moleのアラ
ニンが検出された。
メチオニン 2 ロイシン 3 アスパラギン酸 4 アスパラギン 5 リジン 6 スレオニン 7 フェニルアラニン8
セリン 9 バリン 10 X傘 11 セリン 12 アルギニン 13 アスパラギン酸14
フェニルアラニン15 ス
レオニン 串:同定出来ず (5)COOH末端アミノ酸 実施例3で得られたFc蛋白質のフラグメント90μg
をガラス製ヒドラジン分解用試験管にとり、無水ヒドラ
ジンO,1rnQを加えて減圧下に封管したのち、10
0℃で6時間加熱した。得られたヒドラジン分解物をス
ピードバックコンセードレータ−(サーバント社製、ア
メリカ)を用いて乾固したのち、蒸留水に溶解した。こ
の溶液にベンズアルデヒドを添加し、室温1時間撹拌し
、遠心分離を行ったのち、上清を得た。この上清を乾固
し、日立fIB835型アミノ酸分析計によりアミノ酸
分析を実施した。その結果、1.In moleのアラ
ニンが検出された。
光」4蔓碩艮
本発明により製造されるヒトIgEFc蛋白質のフラグ
メント含有蛋白質はIgEによって引きおこされるアレ
ルギーの治療に有用な新規物質であり、また本発明によ
って該蛋白質の大量生産が可能となり、産業上の有用性
は大である。
メント含有蛋白質はIgEによって引きおこされるアレ
ルギーの治療に有用な新規物質であり、また本発明によ
って該蛋白質の大量生産が可能となり、産業上の有用性
は大である。
第1図はプラスミドP G E Ttrp712に含ま
れるリンカ−およびIgEのFc部分の塩基配列をアミ
ノ酸配列に翻訳して示した図である。 第2図は本発明で用いられるプラスミドPGETtrp
712の横築図である。 第3図は本発明で得られた蛋白質の5DS−ポリアクリ
ルアミドスラブゲル電気泳動の結果を示す。
れるリンカ−およびIgEのFc部分の塩基配列をアミ
ノ酸配列に翻訳して示した図である。 第2図は本発明で用いられるプラスミドPGETtrp
712の横築図である。 第3図は本発明で得られた蛋白質の5DS−ポリアクリ
ルアミドスラブゲル電気泳動の結果を示す。
Claims (4)
- (1)リンカーペプチドと、そのC末端に結合したヒト
IgE蛋白質の226番目のアミノ酸から始まって36
5ないし400番目のアミノ酸で終るフラグメントとか
らなる蛋白質。 - (2)リンカーペプチドと、そのC末端に結合したヒト
IgE蛋白質の226番目のアミノ酸から始まって36
5ないし400番目のアミノ酸で終るフラグメントとか
らなる蛋白質を生産する能力を有する組換え大腸菌体を
培養し、培養物中に蓄積された該蛋白質を採取すること
を特徴とする該蛋白質の製造法。 - (3)イムノアフィニティークロマトグラフィーを含む
方法で蛋白質の採取を行なう、特許請求の範囲第2項記
載の蛋白質の製造法。 - (4)イムノアフィニティークロマトグラフィーにおい
てモノクローナル抗体を用いる特許請求の範囲第3項記
載の蛋白質の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12385987A JPS63290899A (ja) | 1987-05-22 | 1987-05-22 | ヒトIgEFc蛋白質のフラグメントおよびその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12385987A JPS63290899A (ja) | 1987-05-22 | 1987-05-22 | ヒトIgEFc蛋白質のフラグメントおよびその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63290899A true JPS63290899A (ja) | 1988-11-28 |
Family
ID=14871158
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP12385987A Pending JPS63290899A (ja) | 1987-05-22 | 1987-05-22 | ヒトIgEFc蛋白質のフラグメントおよびその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63290899A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100725314B1 (ko) | 2003-11-13 | 2007-06-07 | 한미약품 주식회사 | 면역글로불린 불변영역의 대량 생산 방법 |
JP2009513110A (ja) * | 2005-08-16 | 2009-04-02 | ハンミ ファーマシューティカル カンパニー リミテッド | 開始メチオニン残基が除去された免疫グロブリンFc領域の大量生産方法 |
-
1987
- 1987-05-22 JP JP12385987A patent/JPS63290899A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100725314B1 (ko) | 2003-11-13 | 2007-06-07 | 한미약품 주식회사 | 면역글로불린 불변영역의 대량 생산 방법 |
JP2009513110A (ja) * | 2005-08-16 | 2009-04-02 | ハンミ ファーマシューティカル カンパニー リミテッド | 開始メチオニン残基が除去された免疫グロブリンFc領域の大量生産方法 |
JP2014110816A (ja) * | 2005-08-16 | 2014-06-19 | Hanmi Science Co Ltd | 開始メチオニン残基が除去された免疫グロブリンFc領域の大量生産方法 |
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