JPH0566393B2 - - Google Patents
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Description
本発明は新規なオリゴサツカライド誘導体及び
これを基質として用いるα−アミラーゼ活性の測
定方法に関する。 試料、特にヒトの生体内の唾液、膵液、血液、
尿中のα−アミラーゼ活性の測定は医学上の診断
において重要である。例えば、膵炎、膵臓癌、耳
下腺炎においては、血液や尿中のα−アミラーゼ
活性は通常の値に比べて著しい上昇を示す。 α−アミラーゼ活性の測定方法については、こ
れまで種々の方法が発表されているが、大別する
と、でんぷん、アミロース、アミロペクチン等の
長鎖の天然物及びその修飾物を使用する方法と、
グルコース残基数が4〜7個のオリゴサツカライ
ド及びその誘導体を使用する方法の2種に分けら
れる。 しかしながら、最近では、例えばマルチテトラ
オース、マルトペンタオース、マルトヘキサオー
ス、マルトヘプタオース等のオリゴサツカライド
を基質に用いる方法(特開昭50−56998号公報、
特開昭53−37096号公報)やp−ニトロフエノー
ル等の色原体を還元末端に結合したオリゴサツカ
ライドを用いる方法(特開昭54−51892号公報)
等、均一で構造の明確な基質を用いる方法がこれ
まで多く使用されてきたデンプンを用いる方法に
代わつてアミラーゼ測定法の主流となりつつあ
る。 これらの方法では通常、測定用共役酵素として
α−グルコシダーゼ(E.C.3.2.1.20;α−D−グ
ルコシドグルコヒドロラーゼ)又はグルコアミラ
ーゼ(E.C.3.2.1.3;1,4−α−D−グルカング
ルコヒドロラーゼ)、又はβ−グルコシダーゼ
(E.C.3.2.1.21;β−D−グルコシドグルコヒドロ
ラーゼ)を必要とする。 これらの共役酵素は、α−1,4−グリコシド
結合を有する糖鎖の非還元性末端からα−1,4
−グリコシド結合を加水分解するエキソタイプの
酵素であり、α−アミラーゼ反応に関係なく基質
を分解してしまう欠点を有する。この為これら共
役酵素を用いる上記測定法に於ては、測定用試液
が不安定で、試薬盲検値が極めて高くそれにより
測定精度を著しく悪化してきた。さらに測定に充
分な量のグルコアミラーゼ、あるいはα−グルコ
シダーゼを使用できず、正確で且つ精度の高い測
定法の組立が困難であつた。 かかる問題点を解決すべく、本発明者らは、こ
れまで数種の新規な修飾オリゴサツカライドを合
成し、これらを用いるα−アミラーゼ活性の測定
法について特許出願している。 例えば、α−アミラーゼ活性を測定するに際
し、グルコースが4〜7個からなる直鎖状オリゴ
サツカライドの非還元末端グルコースの6位の一
級アルコール(−CH2OH)が一般式−CH2Rで
表わされる基で置換された下記構造式を有するオ
リゴサツカライド誘導体を、基質として使用する
ことを特徴とするα−アミラーゼ活性の測定方法
がある。(特開昭59−51800号) (式中、右端のグルコース単位は還元性基、kは
2〜5の整数であり、Rは、例えばピリジルアミ
ノ基を表わす。) これらの基質は、均一で構造が明確でありα−
グルコシダーゼ、β−グルコシダーゼ又はグルコ
アミラーゼの基質とならない点に特徴を有してい
る。しかしながら、これらの基質を用いてα−ア
ミラーゼ活性を測定するには、高速液体クロマト
グラフイー法によるか、或いはα−グルコシダー
ゼ、β−グルコシダーゼ又はグルコアミラーゼを
共役酵素に用いて生成するグルコースを測定する
方法によらねばならず、前者は特殊な機器を必要
とする点、後者は検体中に含まれるグルコースに
より影響を受ける点等に問題があつた。 今回、本発明者らは、このような問題点を有さ
ないα−アミラーゼ活性の測定法及びこれを用い
る基質について更に研究を重ねた結果、グスコー
ス鎖が4〜7個のオリゴサツカライドの非還元末
端グルコースの6位の一級アルコール(−
CH2OH)を−CH2R1(R1は特定の有機残基)に
置換し、更に還元末端グルコースの1位をフエノ
キシ基若しくは置換フエノキシ基又はウンベリフ
エリル基で置換した新規なオリゴサツカライド誘
導体を合成し、これをα−アミラーゼ活性測定用
の基質として用いることにより、上記した如き従
来法の問題点を全て解消した優れたα−アミラー
ゼ活性測定法を提供し得る本発明に到達した。 即ち、本発明は、グルコースが4〜7個からな
る直鎖状オリゴサツカライドの非還元末端グルコ
ースの6位の一級アルコール(−CH2OH)が−
CH2R1で示される基で置換され、更に、還元末
端グルコースの1位がフエノキシ基若しくは置換
フエノキシ基又はウンベリフエリル基で置換され
た、下記構造式〔1〕、 〔式中、nは2〜5の整数であり、R1は2−ピ
リジルアミノ基、3−ピリジルアミノ基の如きピ
リジルアミノ基、アニリノ基若しくはメチルアニ
リノ基、ヒドロキシアニリノ基、カルボキシフエ
ニルアミノ基の如き置換アニリノ基、低級アルキ
ルアミノ基、或いはカルボキシメトキシ基(−
OCH2COOH)又はその塩を表わし、R2は
これを基質として用いるα−アミラーゼ活性の測
定方法に関する。 試料、特にヒトの生体内の唾液、膵液、血液、
尿中のα−アミラーゼ活性の測定は医学上の診断
において重要である。例えば、膵炎、膵臓癌、耳
下腺炎においては、血液や尿中のα−アミラーゼ
活性は通常の値に比べて著しい上昇を示す。 α−アミラーゼ活性の測定方法については、こ
れまで種々の方法が発表されているが、大別する
と、でんぷん、アミロース、アミロペクチン等の
長鎖の天然物及びその修飾物を使用する方法と、
グルコース残基数が4〜7個のオリゴサツカライ
ド及びその誘導体を使用する方法の2種に分けら
れる。 しかしながら、最近では、例えばマルチテトラ
オース、マルトペンタオース、マルトヘキサオー
ス、マルトヘプタオース等のオリゴサツカライド
を基質に用いる方法(特開昭50−56998号公報、
特開昭53−37096号公報)やp−ニトロフエノー
ル等の色原体を還元末端に結合したオリゴサツカ
ライドを用いる方法(特開昭54−51892号公報)
等、均一で構造の明確な基質を用いる方法がこれ
まで多く使用されてきたデンプンを用いる方法に
代わつてアミラーゼ測定法の主流となりつつあ
る。 これらの方法では通常、測定用共役酵素として
α−グルコシダーゼ(E.C.3.2.1.20;α−D−グ
ルコシドグルコヒドロラーゼ)又はグルコアミラ
ーゼ(E.C.3.2.1.3;1,4−α−D−グルカング
ルコヒドロラーゼ)、又はβ−グルコシダーゼ
(E.C.3.2.1.21;β−D−グルコシドグルコヒドロ
ラーゼ)を必要とする。 これらの共役酵素は、α−1,4−グリコシド
結合を有する糖鎖の非還元性末端からα−1,4
−グリコシド結合を加水分解するエキソタイプの
酵素であり、α−アミラーゼ反応に関係なく基質
を分解してしまう欠点を有する。この為これら共
役酵素を用いる上記測定法に於ては、測定用試液
が不安定で、試薬盲検値が極めて高くそれにより
測定精度を著しく悪化してきた。さらに測定に充
分な量のグルコアミラーゼ、あるいはα−グルコ
シダーゼを使用できず、正確で且つ精度の高い測
定法の組立が困難であつた。 かかる問題点を解決すべく、本発明者らは、こ
れまで数種の新規な修飾オリゴサツカライドを合
成し、これらを用いるα−アミラーゼ活性の測定
法について特許出願している。 例えば、α−アミラーゼ活性を測定するに際
し、グルコースが4〜7個からなる直鎖状オリゴ
サツカライドの非還元末端グルコースの6位の一
級アルコール(−CH2OH)が一般式−CH2Rで
表わされる基で置換された下記構造式を有するオ
リゴサツカライド誘導体を、基質として使用する
ことを特徴とするα−アミラーゼ活性の測定方法
がある。(特開昭59−51800号) (式中、右端のグルコース単位は還元性基、kは
2〜5の整数であり、Rは、例えばピリジルアミ
ノ基を表わす。) これらの基質は、均一で構造が明確でありα−
グルコシダーゼ、β−グルコシダーゼ又はグルコ
アミラーゼの基質とならない点に特徴を有してい
る。しかしながら、これらの基質を用いてα−ア
ミラーゼ活性を測定するには、高速液体クロマト
グラフイー法によるか、或いはα−グルコシダー
ゼ、β−グルコシダーゼ又はグルコアミラーゼを
共役酵素に用いて生成するグルコースを測定する
方法によらねばならず、前者は特殊な機器を必要
とする点、後者は検体中に含まれるグルコースに
より影響を受ける点等に問題があつた。 今回、本発明者らは、このような問題点を有さ
ないα−アミラーゼ活性の測定法及びこれを用い
る基質について更に研究を重ねた結果、グスコー
ス鎖が4〜7個のオリゴサツカライドの非還元末
端グルコースの6位の一級アルコール(−
CH2OH)を−CH2R1(R1は特定の有機残基)に
置換し、更に還元末端グルコースの1位をフエノ
キシ基若しくは置換フエノキシ基又はウンベリフ
エリル基で置換した新規なオリゴサツカライド誘
導体を合成し、これをα−アミラーゼ活性測定用
の基質として用いることにより、上記した如き従
来法の問題点を全て解消した優れたα−アミラー
ゼ活性測定法を提供し得る本発明に到達した。 即ち、本発明は、グルコースが4〜7個からな
る直鎖状オリゴサツカライドの非還元末端グルコ
ースの6位の一級アルコール(−CH2OH)が−
CH2R1で示される基で置換され、更に、還元末
端グルコースの1位がフエノキシ基若しくは置換
フエノキシ基又はウンベリフエリル基で置換され
た、下記構造式〔1〕、 〔式中、nは2〜5の整数であり、R1は2−ピ
リジルアミノ基、3−ピリジルアミノ基の如きピ
リジルアミノ基、アニリノ基若しくはメチルアニ
リノ基、ヒドロキシアニリノ基、カルボキシフエ
ニルアミノ基の如き置換アニリノ基、低級アルキ
ルアミノ基、或いはカルボキシメトキシ基(−
OCH2COOH)又はその塩を表わし、R2は
【式】又は
【式】を表
わす。(但し、R3〜R6は水素、低級アルキル基、
低級アルコキシ基、ニトロ基、カルボキシル基、
スルホン基又はハロゲンを表わし、夫々同じであ
つても異なつていても良く、R7は水素、低級ア
ルコキシ基、ハロゲン又はニトロ基を表わす。ま
た、R8は水素又はメチル基を表わす。)〕 で示されるオリゴサツカライド誘導体、及びこれ
を基質として用いるα−アミラーゼ活性測定法の
発明である。 本発明のオリゴサツカライド誘導体は、通常デ
キストリン、アミロース等の多糖類を原料とし
て、一般に下記の如く合成される。 合成例 1 (1) 先ず非還元末端グルコースの6位の一級アル
コールが2−ピリジルアミノ基で置換されたオ
リゴサツカライド誘導体を公知文献例えばジヤ
ーナルオブザバイオケミストリー93巻1055頁
(1983年)に従い合成する。 即ち、デキストリンのグルコース残基の6位
の一級アルコールをジメチルスルホキシドと
N,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミドで
部分酸化後、2−アミノピリジンとシツフの塩
基を形成させ、シアノボロハイドライドで還元
し、2−アミノピリジル基が導入されたデキス
トリンを得る。これにバチルス属由来液化型ア
ミラーゼとグルコアミラーゼを作用させ、非還
元末端グルコースに2−ピリジルアミノ基が導
入されたオリゴサツカライド誘導体の混合液を
得る。100℃、10分の加熱処理で、添加したア
ミラーゼとグルコアミラーゼを変性させた後、
過して不溶物を除く。次いで、要すれば、イ
オン交換カラムクロマトグラフイーにより精製
し、
低級アルコキシ基、ニトロ基、カルボキシル基、
スルホン基又はハロゲンを表わし、夫々同じであ
つても異なつていても良く、R7は水素、低級ア
ルコキシ基、ハロゲン又はニトロ基を表わす。ま
た、R8は水素又はメチル基を表わす。)〕 で示されるオリゴサツカライド誘導体、及びこれ
を基質として用いるα−アミラーゼ活性測定法の
発明である。 本発明のオリゴサツカライド誘導体は、通常デ
キストリン、アミロース等の多糖類を原料とし
て、一般に下記の如く合成される。 合成例 1 (1) 先ず非還元末端グルコースの6位の一級アル
コールが2−ピリジルアミノ基で置換されたオ
リゴサツカライド誘導体を公知文献例えばジヤ
ーナルオブザバイオケミストリー93巻1055頁
(1983年)に従い合成する。 即ち、デキストリンのグルコース残基の6位
の一級アルコールをジメチルスルホキシドと
N,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミドで
部分酸化後、2−アミノピリジンとシツフの塩
基を形成させ、シアノボロハイドライドで還元
し、2−アミノピリジル基が導入されたデキス
トリンを得る。これにバチルス属由来液化型ア
ミラーゼとグルコアミラーゼを作用させ、非還
元末端グルコースに2−ピリジルアミノ基が導
入されたオリゴサツカライド誘導体の混合液を
得る。100℃、10分の加熱処理で、添加したア
ミラーゼとグルコアミラーゼを変性させた後、
過して不溶物を除く。次いで、要すれば、イ
オン交換カラムクロマトグラフイーにより精製
し、
【式】(Gはグルコース単位を
表わす。)で示されるO−6−デオキシ−6−
〔(2−ピリジル)アミノ〕−α−D−グルコピ
ラノシル−(1→4)−O−α−D−グルコピラ
ノシル−(1→4)−O−α−D−グルコピラノ
シル−(1→4)−O−α−D−グルコピラノシ
ル−(1→4)−D−グルコピラノシル−(1→
4)−D−グルコピラノースの画分を得る。 (2) 次いで、これに例えば、p−ニトロフエニル
−α−D−グルコシド若しくはo−クロロフエ
ニル−α−D−グルコシド又は4−メチルウン
ベリフエリル−α−D−グルコシド等と、バチ
ルス属由来のサイクロマルトデキストリン−グ
ルカノトランスフエラーゼ(E.C.2.4.1.19)を
加え反応させる。この反応を式で示せば下記の
如くなる。 (ここで、Gはグルコース単位を示し、PNP
はp−ニトロフエノキシ基を、OCPはo−ク
ロロフエノキシ基を、MUFは4−メトキシウ
ンベリフエリル基を夫々表わす。) 反応液をゲルクロマトグラフイーにより精製
し、
〔(2−ピリジル)アミノ〕−α−D−グルコピ
ラノシル−(1→4)−O−α−D−グルコピラ
ノシル−(1→4)−O−α−D−グルコピラノ
シル−(1→4)−O−α−D−グルコピラノシ
ル−(1→4)−D−グルコピラノシル−(1→
4)−D−グルコピラノースの画分を得る。 (2) 次いで、これに例えば、p−ニトロフエニル
−α−D−グルコシド若しくはo−クロロフエ
ニル−α−D−グルコシド又は4−メチルウン
ベリフエリル−α−D−グルコシド等と、バチ
ルス属由来のサイクロマルトデキストリン−グ
ルカノトランスフエラーゼ(E.C.2.4.1.19)を
加え反応させる。この反応を式で示せば下記の
如くなる。 (ここで、Gはグルコース単位を示し、PNP
はp−ニトロフエノキシ基を、OCPはo−ク
ロロフエノキシ基を、MUFは4−メトキシウ
ンベリフエリル基を夫々表わす。) 反応液をゲルクロマトグラフイーにより精製
し、
【式】(又は…−G−
OCP、…−G−MUF等)で示されるO−6−
デオキシ−6−〔(2−ピリジル)アミノ〕−α
−D−グルコピラノシル−(1→4)−O−α−
D−グルコピラノシル−(1→4)−O−α−D
−グルコピラノシル−(1→4)−O−α−D−
グルコピラノシル−(1→4)−p−ニトロフエ
ニルグルコピラノース(又は…−o−クロロフ
エニルグルコピラノース、…−4−メチルウン
ベリフエリルグルコピラノース等)を得る。 合成例 2 (1) 非還元末端グルコースの6位の一級アルコー
ルがカルボキシメチル基で置換されたオリゴサ
ツカライド誘導体を、公知文献例えば、特開昭
59−31699号公報に従い合成する。即ち、分子
量約15000から20万のアミロース、水酸化ナト
リウム、そしてモノクロル酢酸を水溶液中で反
応させる。アミロースのグルコース単位1モル
に対し、アルカリは5〜30モル、モノクロル酢
酸は約0.5〜2.5モルを使用する。反応は約30〜
70℃で30分〜3時間加熱撹拌することにより進
行する。本反応によりグルコースの約15〜30個
毎にカルボキシメチル基又はその塩が入つた修
飾アミロースを得る。本反応はS.Peat等の方法
〔Nature、159、810(1947)〕による。 次いで生成物を中和後、外液に水を使用し透
析する。透析操作により、塩化ナトリウム、ハ
イドロキシ酢酸ナトリウム等の反応副生成物が
除去される。本液をPH約5〜7程度の緩衝液に
加え、さらにα−アミラーゼを加え37℃で一定
時間反応させる。 反応後、反応液を70℃以上の温度で、30〜60
分加熱し、α−アミラーゼを失活させる。加熱
処理後、反応液を約20℃程度まで冷却させ、液
のPHを6〜8の中性に調整後、α−グルコシダ
ーゼ又はグルコアミラーゼを加え、37℃で10〜
30時間作用させ、α−アミラーゼの作用により
生成したオリゴサツカライド誘導対(オリゴ糖
も含む)の非還元末端からα−1,4−グルコ
シド結合を分解し、カルボキシメチル基あるい
はその塩が非還元末端グルコースに入つたオリ
ゴサツカライド誘導体をうる。 次に、この混合物を濃縮し、H.Kondo等の
方法〔Agric.Biol.Chem.、45、2369(1981)〕に
従いゲル過によるクロマトグラフイーで、目
的とするオリゴサツカライド誘導体即ち、カル
ボキシメチル基又はその塩が非還元末端に入つ
たマルトペンタオース、マルトヘキサオース、
マルトヘプタオースの各分画を得る。 (2) 上で得た各分画を濃縮後、各々に、p−ニト
ロフエニル−α−グルコシド若しくはo−メト
キシフエニル−α−グルコシド又は4−メチル
ウンベリフエリル−α−グルコシド等と、バチ
ルス属由来のサイクロマトデキストリングルカ
ノトランスフエラーゼ(E.C.2.4.1.19)を加え
反応させる。この反応を式で示せば下記の如く
なる。
デオキシ−6−〔(2−ピリジル)アミノ〕−α
−D−グルコピラノシル−(1→4)−O−α−
D−グルコピラノシル−(1→4)−O−α−D
−グルコピラノシル−(1→4)−O−α−D−
グルコピラノシル−(1→4)−p−ニトロフエ
ニルグルコピラノース(又は…−o−クロロフ
エニルグルコピラノース、…−4−メチルウン
ベリフエリルグルコピラノース等)を得る。 合成例 2 (1) 非還元末端グルコースの6位の一級アルコー
ルがカルボキシメチル基で置換されたオリゴサ
ツカライド誘導体を、公知文献例えば、特開昭
59−31699号公報に従い合成する。即ち、分子
量約15000から20万のアミロース、水酸化ナト
リウム、そしてモノクロル酢酸を水溶液中で反
応させる。アミロースのグルコース単位1モル
に対し、アルカリは5〜30モル、モノクロル酢
酸は約0.5〜2.5モルを使用する。反応は約30〜
70℃で30分〜3時間加熱撹拌することにより進
行する。本反応によりグルコースの約15〜30個
毎にカルボキシメチル基又はその塩が入つた修
飾アミロースを得る。本反応はS.Peat等の方法
〔Nature、159、810(1947)〕による。 次いで生成物を中和後、外液に水を使用し透
析する。透析操作により、塩化ナトリウム、ハ
イドロキシ酢酸ナトリウム等の反応副生成物が
除去される。本液をPH約5〜7程度の緩衝液に
加え、さらにα−アミラーゼを加え37℃で一定
時間反応させる。 反応後、反応液を70℃以上の温度で、30〜60
分加熱し、α−アミラーゼを失活させる。加熱
処理後、反応液を約20℃程度まで冷却させ、液
のPHを6〜8の中性に調整後、α−グルコシダ
ーゼ又はグルコアミラーゼを加え、37℃で10〜
30時間作用させ、α−アミラーゼの作用により
生成したオリゴサツカライド誘導対(オリゴ糖
も含む)の非還元末端からα−1,4−グルコ
シド結合を分解し、カルボキシメチル基あるい
はその塩が非還元末端グルコースに入つたオリ
ゴサツカライド誘導体をうる。 次に、この混合物を濃縮し、H.Kondo等の
方法〔Agric.Biol.Chem.、45、2369(1981)〕に
従いゲル過によるクロマトグラフイーで、目
的とするオリゴサツカライド誘導体即ち、カル
ボキシメチル基又はその塩が非還元末端に入つ
たマルトペンタオース、マルトヘキサオース、
マルトヘプタオースの各分画を得る。 (2) 上で得た各分画を濃縮後、各々に、p−ニト
ロフエニル−α−グルコシド若しくはo−メト
キシフエニル−α−グルコシド又は4−メチル
ウンベリフエリル−α−グルコシド等と、バチ
ルス属由来のサイクロマトデキストリングルカ
ノトランスフエラーゼ(E.C.2.4.1.19)を加え
反応させる。この反応を式で示せば下記の如く
なる。
【表】
(ここで、Gはグルコース単位を示し、PNP
はp−ニトロフエノキシ基を、OMPはo−メ
トキシフエノキシ基を、MUFは4−メチルウ
ンベリフエリル基を夫々表わし、mは4から6
までの整数を示す。) 反応液をゲルクロマトグラフイーにより精製
し、本発明のオリゴサツカライド誘導体、即
ち、カルボキシメチル基又はその塩が非還元末
端に入り、p−ニトロフエノキシ基若しくはo
−メトキシフエノキシ基、又は4−メチルウン
ベリフエリル基等が還元末端に入つたマルトテ
トラオース、マルトペンタオース、マルトヘキ
サオースを得る。 合成例 3 合成例2に従い、カルボキシメチル基又はその
塩が非還元末端に入つたマルトテトラオース、マ
ルトペンタオース、マルトヘキサオース、マルト
ヘプタオースの各分画を得る。この各分画を濃縮
後、各々に、α−D−グルコピラノシル−(1→
4)−D−〔1−(p−ニトロフエノキシ)グルコ
ピラノース〕若しくはα−D−グルコピラノシル
−(1→4)−D−〔1−(p−クロロフエノキシ)
グルコピラノース〕又はα−D−グルコピラノシ
ル−(1→4)−D−〔1−(4−メチルウンベリフ
エリル)グルコピラノース〕等と、バチルス属由
来のサイクロマルトデキストリングルカノトラン
スフエラーゼ(E.C.2.4.1.19)を加え反応させる。
この反応を式で示せば下記の如くなる。
はp−ニトロフエノキシ基を、OMPはo−メ
トキシフエノキシ基を、MUFは4−メチルウ
ンベリフエリル基を夫々表わし、mは4から6
までの整数を示す。) 反応液をゲルクロマトグラフイーにより精製
し、本発明のオリゴサツカライド誘導体、即
ち、カルボキシメチル基又はその塩が非還元末
端に入り、p−ニトロフエノキシ基若しくはo
−メトキシフエノキシ基、又は4−メチルウン
ベリフエリル基等が還元末端に入つたマルトテ
トラオース、マルトペンタオース、マルトヘキ
サオースを得る。 合成例 3 合成例2に従い、カルボキシメチル基又はその
塩が非還元末端に入つたマルトテトラオース、マ
ルトペンタオース、マルトヘキサオース、マルト
ヘプタオースの各分画を得る。この各分画を濃縮
後、各々に、α−D−グルコピラノシル−(1→
4)−D−〔1−(p−ニトロフエノキシ)グルコ
ピラノース〕若しくはα−D−グルコピラノシル
−(1→4)−D−〔1−(p−クロロフエノキシ)
グルコピラノース〕又はα−D−グルコピラノシ
ル−(1→4)−D−〔1−(4−メチルウンベリフ
エリル)グルコピラノース〕等と、バチルス属由
来のサイクロマルトデキストリングルカノトラン
スフエラーゼ(E.C.2.4.1.19)を加え反応させる。
この反応を式で示せば下記の如くなる。
【表】
(ここで、Gはグルコース単位を示し、PNPは
p−ニトロフエノキシ基を、PCPはp−クロロ
フエノキシ基を、MUFは4−メチルウンベリフ
エリル基を夫々表わし、m′は3から6までの整
数を示す。) 反応液をゲルクロマトグラフイーにより精製
し、本発明のオリゴサツカライド誘導体、即ち、
カルボキシメチル基又はその塩が非還元末端に入
り、p−ニトロフエノキシ基若しくはp−クロロ
フエノキシ基、又は4−メチルウンベリフエリル
基が還元末端に入つたマルトテトラオース、マル
トペンタオース、マルトヘキサオース、マルトヘ
プタオースを得る。 一般式〔1〕で示される本発明のオリゴサツカ
ライド誘導体に於て、R1で示される特定の有機
残基としては2−ピリジルアミノ基、3−ピリジ
ルアミノ基等のピリジルアミノ基、アニリノ基若
しくはメチルアニリノ基、ヒドロキシアニリノ
基、カルボキシフエニルアミノ基の如き置換アニ
リノ基、メチルアミノ基、エチルアミノ基、プロ
ピルアミノ基等の低級アルキルアミノ基、或いは
カルボキシメトキシ基(−OCH2COOH)又はそ
の塩が挙げられる。また、一般式〔1〕の−OR2
に於て、
p−ニトロフエノキシ基を、PCPはp−クロロ
フエノキシ基を、MUFは4−メチルウンベリフ
エリル基を夫々表わし、m′は3から6までの整
数を示す。) 反応液をゲルクロマトグラフイーにより精製
し、本発明のオリゴサツカライド誘導体、即ち、
カルボキシメチル基又はその塩が非還元末端に入
り、p−ニトロフエノキシ基若しくはp−クロロ
フエノキシ基、又は4−メチルウンベリフエリル
基が還元末端に入つたマルトテトラオース、マル
トペンタオース、マルトヘキサオース、マルトヘ
プタオースを得る。 一般式〔1〕で示される本発明のオリゴサツカ
ライド誘導体に於て、R1で示される特定の有機
残基としては2−ピリジルアミノ基、3−ピリジ
ルアミノ基等のピリジルアミノ基、アニリノ基若
しくはメチルアニリノ基、ヒドロキシアニリノ
基、カルボキシフエニルアミノ基の如き置換アニ
リノ基、メチルアミノ基、エチルアミノ基、プロ
ピルアミノ基等の低級アルキルアミノ基、或いは
カルボキシメトキシ基(−OCH2COOH)又はそ
の塩が挙げられる。また、一般式〔1〕の−OR2
に於て、
【式】で表わされる置換
フエノキシ基としては、オリゴサツカライドの還
元末端に結合し、グルコアミラーゼ、α−グルコ
シダーゼ又はβ−グルコシダーゼの作用を受けて
加水分解され得るものであり、更に、水解後は、
ニトロフエノール類の如くそれ自体可視部に吸収
を有するものか、又はカテコールオキシダーゼ、
ラツカーゼ、チロシナーゼ、又はモノフエノール
オキシダーゼ等の酸化酵素の作用を受けてカプラ
ーとカツプリングして色素を生ずるか、或いは酸
化剤によりカプラーとカツプリングして色素を生
ずるものであればいずれにても良い。このような
条件を満足するR2としては、例えば、p−ニト
ロフエニル基、m−ニトロフエニル基、o−クロ
ロフエニル基、p−クロロフエニル基、2,6−
ジクロロフエニル基、o−メトキシフエニル基、
p−メトキシフエニル基、o−メチルフエニル
基、o−カルボキシフエニル基、o−スルホフエ
ニル基等が挙げられるが、これらに限定されな
い。 また、一般式〔1〕の−OR2に於て、
元末端に結合し、グルコアミラーゼ、α−グルコ
シダーゼ又はβ−グルコシダーゼの作用を受けて
加水分解され得るものであり、更に、水解後は、
ニトロフエノール類の如くそれ自体可視部に吸収
を有するものか、又はカテコールオキシダーゼ、
ラツカーゼ、チロシナーゼ、又はモノフエノール
オキシダーゼ等の酸化酵素の作用を受けてカプラ
ーとカツプリングして色素を生ずるか、或いは酸
化剤によりカプラーとカツプリングして色素を生
ずるものであればいずれにても良い。このような
条件を満足するR2としては、例えば、p−ニト
ロフエニル基、m−ニトロフエニル基、o−クロ
ロフエニル基、p−クロロフエニル基、2,6−
ジクロロフエニル基、o−メトキシフエニル基、
p−メトキシフエニル基、o−メチルフエニル
基、o−カルボキシフエニル基、o−スルホフエ
ニル基等が挙げられるが、これらに限定されな
い。 また、一般式〔1〕の−OR2に於て、
【式】で表わされるウンベリ
フエリル基としては、R8が水素のウンベリフエ
リル基又はR8がメチル基の4−メチルウンベリ
フエリル基が挙げられる。 本発明のオリゴサツカライド誘導体を基質とし
て用いるα−アミラーゼ活性測定法の測定原理は
概略次の通りである。
リル基又はR8がメチル基の4−メチルウンベリ
フエリル基が挙げられる。 本発明のオリゴサツカライド誘導体を基質とし
て用いるα−アミラーゼ活性測定法の測定原理は
概略次の通りである。
【表】
〓又はα−グルコシダーゼ、β−〓
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 グルコースが4〜7個からなる直鎖状オリゴ
サツカライドの非還元末端グルコースの6位の一
級アルコール(−CH2OH)が−CH2R1で示され
る基で置換され、更に、還元末端グルコースの1
位がフエノキシ基若しくは置換フエノキシ基又は
ウンベリフエリル基で置換された、下記構造式
〔1〕 〔式中、nは2〜5の整数であり、R1は2−ピ
リジルアミノ基、3−ピリジルアミノ基の如きピ
リジルアミノ基、アニリノ基若しくはメチルアニ
リノ基、ヒドロキシアニリノ基、カルボキシフエ
ニルアミノ基の如き置換アニリノ基、低級アルキ
ルアミノ基、或いはカルボキシメトキシ基 (−OCH2COOH)又はその塩を表わし、 R2は【式】又は 【式】 を表わす。(但し、R3〜R6は水素、低級アルキル
基、低級アルコキシ、ニトロ基、カルボキシル
基、スルホン基又はハロゲンを表わし、夫々同じ
であつても異なつていても良く、R7は水素、低
級アルコキシ基、ハロゲン又はニトロ基を表わ
す。また、R8は水素又はメチル基を表わす。)〕 で示されるオリゴサツカライド誘導体。 2 グルコースが4〜7個からなる直鎖状オリゴ
サツカライドの非還元末端グルコースの6位の一
級アルコール(−CH2OH)が−CH2R1で示され
る基で置換され、更に、還元末端グルコースの1
位がフエノキシ基若しくは置換フエノキシ基又は
ウンベリフエリル基で置換された、下記構造式
〔1〕、 〔式中、nは2〜5の整数であり、R1は2−ピ
リジルアミノ基、3−ピリジルアミノ基の如きピ
リジルアミノ基、アニリノ基若しくはメチルアニ
リノ基、ヒドロキシアニリノ基、カルボキシフエ
ニルアミノ基の如き置換アニリノ基、低級アルキ
ルアミノ基、或いはカルボキシメトキシ基 (−OCH2COOH)又はその塩を表わし、 R2は【式】又は 【式】 を表わす。(但し、R3〜R6は水素、低級アルキル
基、低級アルコキシ、ニトロ基、カルボキシル
基、スルホン基又はハロゲンを表わし、夫々同じ
であつても異なつていても良く、R7は水素、低
級アルコキシ基、ハロゲン又はニトロ基を表わ
す。また、R8は水素又はメチル基を表わす。)〕 で示されるオリゴサツカライド誘導体を基質とし
て使用することを特徴とするα−アミラーゼ活性
測定法。 3 α−アミラーゼの共役酵素として、グルコア
ミラーゼ、α−グルコシダーゼ又はβ−グルコシ
ダーゼを用い、酵素反応により生成するニトロフ
エノール類の吸収スペクトルを測定することによ
りα−アミラーゼ活性を測定する、特許請求の範
囲第2項記載の測定法。 4 α−アミラーゼの共役酵素として、グルコア
ミラーゼ、α−グルコシダーゼ又はβ−グルコシ
ダーゼを用い、酵素反応により生成するフエノー
ル又はフエノール誘導体に、必要によりカツプラ
ーの存在下、カテコールオキシダーゼ、ラツカー
ゼ、チロシナーゼ又はモノフエノールオキシダー
ゼを作用させ、生成する色素の吸収スペクトルを
測定することにより、α−アミラーゼ活性を測定
する。特許請求の範囲第2項記載の測定法。 5 α−アミラーゼの共役酵素として、グルコア
ミラーゼ、α−グルコシダーゼ又はβ−グルコシ
ダーゼを用い、酵素反応により生成するフエノー
ル又はフエノール誘導体に、必要によりカツプラ
ーの存在下、酸化剤を作用させ、生成する色素の
吸収スペクトルを測定することにより、α−アミ
ラーゼ活性を測定する、特許請求の範囲第2項記
載の測定法。 6 α−アミラーゼの共役酵素として、グルコア
ミラーゼ、α−グルコシダーゼ又はβ−グルコシ
ダーゼを用い、酵素反応により生成するウンベリ
フエロン又は4−メチルウンベリフエロンの蛍光
強度を測定することにより、α−アミラーゼ活性
を測定する、特許請求の範囲第2項記載の測定
法。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59176320A JPS6183195A (ja) | 1984-08-24 | 1984-08-24 | 新規なオリゴサツカライド誘導体、及びこれを基質として用いるα−アミラ−ゼ活性測定法 |
US06/765,080 US4762917A (en) | 1984-08-24 | 1985-08-13 | Oligosaccharide derivatives and their use as substrate for measuring .alpha. |
DE8585110567T DE3582538D1 (de) | 1984-08-24 | 1985-08-22 | Oligosaccharidderivate und ihre verwendung als substrat um die alpha-amylase-aktivitaet zu messen. |
EP85110567A EP0173255B1 (en) | 1984-08-24 | 1985-08-22 | Oligosaccharide derivatives and their use as substrate for measuring alpha-amylase activity |
AT85110567T ATE62691T1 (de) | 1984-08-24 | 1985-08-22 | Oligosaccharidderivate und ihre verwendung als substrat um die alpha-amylase-aktivitaet zu messen. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59176320A JPS6183195A (ja) | 1984-08-24 | 1984-08-24 | 新規なオリゴサツカライド誘導体、及びこれを基質として用いるα−アミラ−ゼ活性測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6183195A JPS6183195A (ja) | 1986-04-26 |
JPH0566393B2 true JPH0566393B2 (ja) | 1993-09-21 |
Family
ID=16011521
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59176320A Granted JPS6183195A (ja) | 1984-08-24 | 1984-08-24 | 新規なオリゴサツカライド誘導体、及びこれを基質として用いるα−アミラ−ゼ活性測定法 |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4762917A (ja) |
EP (1) | EP0173255B1 (ja) |
JP (1) | JPS6183195A (ja) |
AT (1) | ATE62691T1 (ja) |
DE (1) | DE3582538D1 (ja) |
Families Citing this family (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SE451849B (sv) * | 1985-12-11 | 1987-11-02 | Svenska Sockerfabriks Ab | Sett att syntetisera glykosidiska bindningar samt anvendning av pa detta sett erhallna produkter |
US5192666A (en) * | 1986-07-11 | 1993-03-09 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | α-amylase assay using modified oligosaccharide and process for producing said modified oligosaccharide |
JPH0630602B2 (ja) * | 1986-07-11 | 1994-04-27 | 和光純薬工業株式会社 | 非還元末端修飾オリゴサッカライド誘導体の新規な製造法 |
DE3752216T2 (de) * | 1986-07-11 | 1999-04-22 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Osaka | Verfahren zur Herstellung eines modifizierten Oligosaccharids |
EP0259521A1 (en) * | 1986-09-10 | 1988-03-16 | Akzo N.V. | Test reagent for amylase determination |
US4963479A (en) * | 1986-10-07 | 1990-10-16 | Hoechst Celanese Corporation | Reagent system for an alpha-amylase assay containing aromatic substituted glycoside |
US5654163A (en) * | 1991-04-23 | 1997-08-05 | Boehringer Mannheim Gmbh | Indophenol substituted maltooligosides as α-amylase substrates |
US5300634A (en) * | 1991-05-07 | 1994-04-05 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Process for producing maltooligosaccharide derivative |
WO1993011434A1 (en) * | 1991-11-27 | 1993-06-10 | Osborn Laboratories, Inc. | Apparatus and method of saliva collection and verification for dried saliva spot drug and hiv antibody testing |
US5334502A (en) * | 1991-11-27 | 1994-08-02 | Osborn Laboratories, Inc. | Method of collecting, identifying, and quantifying saliva |
CA2089228A1 (en) * | 1992-02-14 | 1993-08-15 | Akira Hasegawa | Oligosaccharide derivatives suitable for .alpha.-amylase determination |
JPH0770165A (ja) * | 1993-06-28 | 1995-03-14 | Hayashibara Biochem Lab Inc | 非還元性オリゴ糖とその製造方法並びに用途 |
DE4432621A1 (de) * | 1994-09-14 | 1996-03-21 | Huels Chemische Werke Ag | Verfahren zur Bleichung von Tensidlösungen |
CN113481278B (zh) * | 2021-06-15 | 2022-04-12 | 四川省食品检验研究院 | 同时测定蔗糖酶活力和果聚糖酶活力的方法 |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AT362526B (de) * | 1977-09-13 | 1981-05-25 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagens zur bestimmung von alpha- -amylase |
US4233403A (en) * | 1978-02-27 | 1980-11-11 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Amylase assay |
DE3000292A1 (de) * | 1980-01-05 | 1981-07-09 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Indoxylmaltodextrine, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
JPS609799B2 (ja) * | 1981-10-21 | 1985-03-13 | 株式会社理工化学研究所 | アミラ−ゼ活性の新規な測定法 |
JPS5931699A (ja) * | 1982-08-17 | 1984-02-20 | Wako Pure Chem Ind Ltd | α−アミラ−ゼ活性の測定法 |
DE3372774D1 (en) * | 1982-09-16 | 1987-09-03 | Wako Pure Chem Ind Ltd | Modified oligosaccharides used as substrate for measuring alpha-amylase activity |
DE3328616A1 (de) * | 1983-08-08 | 1985-02-28 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Oligoglucosidderivate |
-
1984
- 1984-08-24 JP JP59176320A patent/JPS6183195A/ja active Granted
-
1985
- 1985-08-13 US US06/765,080 patent/US4762917A/en not_active Expired - Fee Related
- 1985-08-22 DE DE8585110567T patent/DE3582538D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1985-08-22 EP EP85110567A patent/EP0173255B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1985-08-22 AT AT85110567T patent/ATE62691T1/de active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6183195A (ja) | 1986-04-26 |
DE3582538D1 (de) | 1991-05-23 |
EP0173255A3 (en) | 1987-05-27 |
ATE62691T1 (de) | 1991-05-15 |
EP0173255A2 (en) | 1986-03-05 |
US4762917A (en) | 1988-08-09 |
EP0173255B1 (en) | 1991-04-17 |
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