JP6952879B2

JP6952879B2 - 新規バチルス・アミロリケファシエンス菌株、及びそれを用いた、大豆発酵物を製造する方法

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Publication number: JP6952879B2
Application number: JP2020511212A
Authority: JP
Inventors: セオヒョジェオング; キムビナ; キムジュンゲウン; ボキムセオング; ウォンパークセウング; ホングヨングホ
Original assignee: シージェイチェイルジェダングコーポレイション
Priority date: 2017-08-31
Filing date: 2018-08-30
Publication date: 2021-10-27
Anticipated expiration: 2038-08-30
Also published as: CN111465685A; US20200199691A1; JP2020532293A; KR102092851B1; AR112892A1; CN111465685B; US11332710B2; BR112020003916A2; UA126923C2; KR20190024612A; US20220251501A1; TW201946537A; EP3676371A4; TWI702914B; EP3676371A1

Description

本出願は、新規なバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株、及びそれを用いた、大豆発酵物を製造する方法に関する。

一般に、動物飼料にはタンパク質源として魚粉が含まれるが、近年、魚粉生産国において魚粉の生産が減少したり、魚粉の需給が不安定になっており、全世界的に魚粉の価格が上昇している。よって、動物性タンパク質である魚粉を代替する植物性素材のタンパク質の必要性が高まっており、それを開発する努力がなされている。代表的な植物性素材のタンパク質としては、堅果類、豆類、穀物に含まれるタンパク質が挙げられるが、豆類のうち大豆は他の豆類と比較してタンパク質、脂肪酸、多糖類が豊富であることが知られている。

脱脂大豆粕（以下「大豆粕」という）は、タンパク質と脂肪の含有量が多い大豆から油脂を抽出した残りの副産物である。しかし、大豆粕には様々な抗栄養因子（anti-nutritional factor, ANF）が含まれているので、飼料として用いると消化率が低下するという問題がある（非特許文献１）。特に、トリプシンインヒビター（trypsin inhibitor, TI）は生体内で酵素活性を阻害してタンパク質の利用性を低下させる代表的な抗栄養因子として知られており、とりわけ幼畜用飼料に抗栄養因子が添加される場合はその使用量に制限がある。また、水又は食塩を用いて、大豆粕から大豆蛋白が抽出される。このような大豆蛋白は、脱脂大豆粕から水溶性及び非水溶性炭水化物などの非蛋白成分を除去する程度により、脱脂大豆粉（defatted soy flour）、大豆蛋白濃縮物（soy protein concentrate）、組織状大豆蛋白（structured soy protein）、加水分解大豆蛋白（hydrolyzed soy protein）又は大豆蛋白分離物（soy protein isolate）の大豆蛋白加工品に分けられる。また、大豆蛋白は、タンパク質含有量が多いので、肉加工食品、乳加工食品、パン及びスナック食品以外に、家畜飼料にも活用される。

しかし、大豆粕から抽出された大豆蛋白は、タンパク質のサブユニットからなる高分子のタンパク質や、消化を阻害する抗栄養因子などを多数含む。特に、抗栄養因子は、主に植物性タンパク質中に存在するものであり、動物の消化能力を阻害する要因として知られている。よって、大豆蛋白を飼料に用いるためには、動物の飼料消化率を高められるように、抗栄養因子を減少させ、高分子量のタンパク質を低分子量のペプチドに変換する必要がある。

一方、現在生産されている大豆蛋白濃縮物（soy protein concentrates）、大豆蛋白分離物（soy protein isolate）、加水分解大豆蛋白（hydrolized soy protein）などの大豆蛋白加工品は、化学的処理又は酵素的処理により生産されている。しかし、化学的加工方法は、生産コストが高く、製造過程中の熱処理、化学的処理、熱乾燥などによりタンパク質変性、水溶性アミノ酸の消失などが起こり、タンパク質の実溶解度が低くなるという問題がある。よって、化学的加工方法においては、タンパク質に深刻な変性が起こらない程度に熱処理を行うので、抗栄養因子であるトリプシン抑制因子が結果物である大豆蛋白加工品中に相当量存在する。

このような大豆蛋白加工品の化学的加工方法の問題を解決する手段としてバチルス菌又はカビを用いて発酵させる生物学的加工方法の発酵大豆粕製品が開発されている（特許文献１（２００６年１１月６日登録）、特許文献２（２００４年１１月１９日登録）、特許文献３（２００９年１０月２９日登録）及び特許文献５（２０１２年４月１６日登録））。しかし、前記生物学的加工方法で製造された発酵大豆粕や発酵大豆蛋白濃縮物であっても、消化率の向上に関係する加工品中の低分子ペプチド含有量及び抗栄養因子含有量は、用いるバチルス、乳酸菌、酵母などの微生物の種や菌株により変化し、特に同じ微生物種であっても各菌株の酵素生産能力や生長速度などによっても含有量が変化する（特許文献４（２０１５年４月２７日登録））。すなわち、生物学的加工方法において用いられる菌株は、最終大豆蛋白加工品の特徴や消化率に差異をもたらす決定的要素となる。

本出願に関連する先行技術として、特許文献１、２、３及び５が公知である。前記文献に開示されている技術によれば、バチルス・サブティリス、アスペルギルス・オリザエ、ラクトバチルス・ロイテリ、サッカロマイセス・セレビシエからなる微生物群の種菌を用いて、発酵処理過程で複数の抗栄養因子を除去し、さらにタンパク質や炭水化物を消化しやすい低分子に分解することができるので、消化吸収率が高く高品質の飼料用蛋白素材を提供することができる。しかし、大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の発酵に用いられる前記微生物群、特にバチルス・サブティリス及びバチルス・アミロリケファシエンスは、抗菌力が低いので外部の汚染菌株に対する抵抗力が弱く、タンパク質分解酵素産生能が低いという欠点がある。その他にも、一部の微生物菌株は発酵過程中に粘液質を生成するが、その粘液質により発酵物の通気性が低下し、好気的発酵の効率が低下するという欠点がある。

一方、本出願に関連する先行技術である特許文献４において出願人が開示したバチルス・アミロリケファシエンスＫ２Ｇ菌株は、トリプシンインヒビターを含む抗栄養因子が除去されるので、タンパク質分解能力が高く、抗菌力があり、低分子化したペプチドを含有する動物飼料を提供するのに有用である。しかし、前記先行技術文献には、サルモネラ、ビブリオ、フォトバクテリウムなどの菌を含む様々な病原性微生物に対する抗菌力に優れ、大豆発酵物中の低分子ペプチド含有量を増加させ、粘液質の生成を阻害することのできる新規菌株及びそれを用いた大豆発酵物製造方法については何ら開示も示唆もされていない。

韓国登録特許第１０−０６４５２８４号公報韓国登録特許第１０−０４５９２４０号公報韓国登録特許第１０−０９２５１７３号公報韓国登録特許第１０−１５１７３２６号公報韓国登録特許第１０−１１３９０２７号公報

Li et al., J. Anim Sci., 68:1790, 1990

こうした背景の下、本発明者らは、新規バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種して低分子ペプチドの大豆発酵物を製造する方法を開発すべく鋭意研究を重ねた結果、低分子ペプチド含有量が増加し、抗菌力に優れ、粘液質が生成されない大豆発酵物を開発し、本出願を完成するに至った。

本出願は、新規バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種して低分子ペプチドの大豆発酵物を製造する方法を提供することを目的とする。

また、本出願は、低分子ペプチド含有量を増加させ、抗菌力に優れ、粘液質を生成しない新規バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を提供することを目的とする。

さらに、本出願は、前記方法により製造され、抗菌力に優れ、粘液質が生成されない大豆発酵物を提供することを目的とする。

さらに、本出願は、前記大豆発酵物を含む動物飼料組成物を提供することを目的とする。

本出願の他の目的及び利点は、請求の範囲、図面及び以下の詳細な説明によりさらに明確になるであろう。本明細書に記載されていない内容は、当業者であれば十分に認識、類推できるものであるので、その説明を省略する。

本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株は、抗菌力とタンパク質分解能力に優れ、粘液質生成能が低いので、大豆粕や大豆蛋白濃縮物に接種すると、低分子ペプチド含有量が多く、抗菌力に優れる高品質の大豆発酵物を製造することができる。特に、本出願の大豆発酵物が様々な病原菌に暴露する動物に提供されると、その抗菌力により病原菌による感染率を低下させ、生存率を上昇させるだけでなく、低分子ペプチド含有量が多いので消化吸収率を向上させることができる。

発酵大豆蛋白濃縮物の形態を示す写真である。発酵大豆蛋白濃縮物のＳＤＳ−ＰＡＧＥ結果を示す写真である。発酵大豆粕のＳＤＳ−ＰＡＧＥ結果を示す写真である。低水分における発酵大豆粕のＳＤＳ−ＰＡＧＥ結果を示す写真である。本出願の新規バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株の系統分類学的な類縁関係を示す系統樹（phylogenic tree）である。

本出願で開示される各説明及び実施形態はそれぞれ他の説明及び実施形態にも適用される。すなわち、本出願で開示される様々な要素のあらゆる組み合わせが本出願に含まれる。また、以下の具体的な記述に本出願が限定されるものではない。

前記目的を達成するための本出願の一態様は、バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種するステップと、前記バチルス・アミロリケファシエンス菌株を培養して発酵させた大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物を得るステップとを含む、大豆発酵物を製造する方法を提供する。

本出願による前記バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株は、タンパク質分解酵素活性に優れ、病原菌に対する抗菌力に優れ、発酵時の粘液質生成能が低減しているので、高品質の大豆発酵物を製造することができる。

本出願における「大豆発酵物」とは、前記大豆蛋白濃縮物又は大豆粕に本出願の菌株又は対照群の菌株を接種して発酵させて得られる産物である発酵大豆蛋白濃縮物又は発酵大豆粕を意味する。

本出願における「大豆蛋白濃縮物」とは、マメ科作物である大豆から抽出したタンパク質の濃縮物を意味する。大豆から抽出したタンパク質とは、Ｈａｘａｎｅなどの有機溶媒を用いて大豆から大豆油を抽出し、抽出した残滓である脱脂大豆から水溶性及び非水溶性炭水化物などの非タンパク質を除去したものである。

本出願における「大豆粕」とは、マメ科作物である大豆から搾油後に生じる産物であり、最も多く用いられる植物性タンパク質飼料である。大豆粕とは、動物に給与する最も経済的かつ高品質の植物性タンパク質飼料であり、大豆から油を抽出する際に生じる副産物である。

本出願における「バチルス・アミロリケファシエンス」とは、バチルス属の微生物であり、グラム陽性土壌細菌である。バチルス・サブティリスと近縁関係であることが知られており、ＢａｍＨ１酵素及びｒｉｂｏｎｕｃｌｅａｓｅの一種であるｂａｒｎａｓｅ（バルナーゼ）という抗生物質を生成する。前記土壌細菌は、農業において特に植物の根の感染源に対する抗菌活性機能菌として知られている。

近年、動物飼料には抗生剤の使用が制限されており、タンパク質源として植物性タンパク質である大豆発酵物が用いられる傾向にある。よって、病原性微生物による疾病被害の減少という面では、飼料組成物の天然抗菌性、特に大豆発酵物の抗菌力が重要になってくる。そこで、本発明者らは、活性に優れたタンパク質分解酵素を作製すると共に、発酵時の粘液質生成能が低減し、かつ様々な病原菌に対する抗菌力を有する菌株を開発すべく努力した。具体的には、従来から大豆発酵物を製造するために用いられることが知られているバチルス・アミロリケファシエンスを準備し、菌株改良のためにそれにＵＶを照射して菌株を選択、分離し、それらから様々な病原性微生物に対する抗菌力に優れた本出願のバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４を選択した。本出願における「改良」とは、菌株の欠点や生産性を補完するために、突然変異（mutation）、遺伝子組換え（genetic recombination）、遺伝子クローニング（gene cloning）の方法を用いることができ、突然変異には、遺伝子、染色体又はゲノム突然変異が含まれる。前記突然変異を誘導するために、ＵＶによる物理的突然変異、化学的突然変異、生物学的突然変異が用いられ、ＵＶは、ＵＶランプにより２００〜３００ｎｍの波長を９５〜１００％の致死率に達するまで照射する。本出願においては、Ａ２５４ｎｍのＵＶ波長を野生型菌株の致死率が９９．９９％に達するまで照射し、コロニーを形成した変異菌株のみ分離して得る。

一実施例によれば、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４は、病原菌に対する抗菌力に優れる。例えば、バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４は、サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）からなる群から選択される少なくとも１つの病原菌に対して抗菌力を有する。前記抗菌力は、希釈法（dilution method）、ディスク拡散法（disk diffusion test）、Ｅ−ＴＥＳＴなどを用いて測定することができる。

具体的には、サルモネラ菌は家畜に食中毒を引き起こし、ビブリオ種をはじめとする他の菌は敗血症、ビブリオコレラ、エビビブリオ症、ブリ類結節症、ヒラメエドワジエラ症などの疾患を養殖魚に引き起こすことが知られている。このような病原菌に対して、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスが病原菌の生育を効果的に抑制するので、それを用いて製造した大豆発酵物、又はそれを含む大豆発酵物は、前記病原菌に対する抗菌性を有する。

従来の大豆発酵物は、発酵過程中に産生される酵素により、原料である大豆の糖質、タンパク質に由来するレバン型フルクタン（levan form fructan）とポリグルタメート（polyglutamate）が重合して粘りのある粘液質が生成されるという問題があった。このような粘液質の生成は、大豆発酵物を凝集させ、攪拌を困難にし、発酵物中の溶存酸素、温度の制御や移送を困難にするので、大量生産工程における多くの問題をもたらす。前記粘液質を生成するか否かは、コロニーの表現型を観察してその粘性や光沢を測定したり、ポリ−γ−グルタミン酸などの高分子物質の含有量を測定することにより判断することができる。

一実施例によれば、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４は、粘液質生成能が低い。より具体的には、前記バチルス・アミロリケファシエンスで製造された大豆発酵物は、粘りのある粘液質の含有量が少なく、凝集する現象がほぼ起きないので、それを用いて高品質の大豆発酵物を製造することができる（実施例４参照）。

一実施例によれば、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４は、活性に優れたタンパク質分解酵素を産生し、高分子で構成された大豆蛋白をほとんど加水分解することにより、低分子ペプチドに分解し、大豆発酵物の消化吸収率を大幅に向上させることができる。本出願のペプチドとは、様々な組み合わせのアミノ酸がペプチド結合による重合物を形成しているものであり、一般に２〜５０個のアミノ酸が結合されている形態である。低分子ペプチドとは、分子量（Molecular Weight）の小さいペプチドであり、消化吸収を容易にし、動物飼料に適用すると消化率を上昇させるという利点がある。最終的に製造しようとする加水分解物が含む低分子ペプチドの種類と構成比に応じて、原料である前記大豆蛋白濃縮物の水分含有量、タンパク質含有量などの条件を適宜選択して用いることができる。

一実施例によれば、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスにより製造された大豆発酵物は、分子量３０ＫＤａ以下の低分子ペプチドを４０重量％以上含んでもよい。より具体的には、前記大豆発酵物は、分子量３０ＫＤａ以下のペプチドを４０〜１００重量％、５０〜９５重量％、６０〜９０重量％、７０〜９０重量％、７５〜９０重量％、７５〜８５重量％、又は８０〜８５重量％含んでもよい。また、前記大豆発酵物は、１０ＫＤａ以下のペプチドを１５重量％以上含んでもよい。より具体的には、前記大豆発酵物は、１０ＫＤａ以下のペプチドを１５〜８０重量％、２０〜７０重量％、３０〜６５重量％、４０〜６５重量％、又は５０〜６０重量％含んでもよい。一実施例によれば、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスにより製造された大豆発酵物は、発酵前と比較してタンパク質の含有量が増加したものであってもよい。これは、周知の菌株で発酵させた大豆発酵物と比較しても短時間でタンパク質含有量を増加させるので、発酵時間を短縮できることを示す。すなわち、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスは、大豆発酵物中の低分子ペプチド含有量を大幅に増加させることにより、飼料の品質を向上させ、短時間でタンパク質含有量を増加させるので、発酵時間を短縮することができる。

本出願のバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株の１６ＳＲＮＡを分析した結果、標準菌株であるバチルス・アミロリケファシエンス亜種プランタルム（Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum）ＦＺＢ４２Ｔ（ＣＰ０００５６０）と最も近い近縁関係を示し、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列の相同性は９９．９３％（１５０７ｂｐ／１５０８ｂｐ）であることが確認された。よって、本出願による前記変異菌株ＣＪ２４−３４をバチルス・アミロリケファシエンス亜種プランタルムＣＪ２４−３４と命名し、ブダペスト条約に基づいて２０１７年６月１５日付けで韓国微生物保存センター（KoreanCulture of Microorganisms, KCCM）に寄託番号ＫＣＣＭ１２０３８Ｐとして寄託した。

一実施例によれば、前記大豆発酵物を製造する方法は、前記バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種するステップの前に、大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の水分含有量を調節し、熱処理後に冷却して準備するステップをさらに含んでもよい。原料である大豆粕又は大豆蛋白濃縮物は、固体発酵させる前に適量の水を直接噴霧するか、混合して水分含有量を調節し、その後所定時間熱処理することが好ましい。具体的には、前記水分含有量は、目的とする大豆発酵物のタンパク質又は低分子ペプチド含有量又は発酵時間を設定するために調節される。また、熱処理の目的は、原料内の雑菌を死滅させ、原料が有する細胞壁を破壊してタンパク質を変性させ、目的とする微生物が活発に生育できる環境を提供することにある。熱処理方法は、当該技術分野で周知のいかなる方法を用いてもよい。具体的には、スチーム又は過熱水蒸気（superheated steam）を用いて行ってもよい。

一実施例によれば、本出願の大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の水分含有量を３０〜８０％（ｖ／ｗ）に調節し、熱処理を１０〜３０分間、熱処理温度７０〜１３０℃に調節し、その後３０〜５０℃で冷却して準備してもよく、本出願のバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４培養液を各大豆粕及び大豆蛋白濃縮物の重量に対して１０重量％接種し、２０〜５０℃で８〜７２時間発酵させてもよい。

より具体的には、前記大豆大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の調節した水分含有量（ｖ／ｗ）は、３０〜８０％、３０〜７０％、３０〜６０％、３０〜５０％、３０〜４０％、４０〜８０％、４０〜７０％、４０〜６０％、４０〜５０％であってもよい。大豆粕の水分含有量は、目的とする発酵大豆粕のタンパク質又は低分子ペプチド含有量又は発酵時間を設定するために、低水分又は高水分条件に好適に調節することができる。

一実施例によれば、熱処理温度が低いか、処理時間が短いと、雑菌の殺菌効果が低下し、後続の発酵工程が円滑に行われないという問題があり、熱処理温度が高いか、処理時間が長いと、大豆粕中のタンパク質の変性により消化率が減少し、最終製品の品質が低下するという問題が生じる。よって、このような問題が生じないように、熱処理温度又は処理時間を前記範囲から採用することが好ましい。このような熱処理過程により、大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に存在する汚染菌がほぼ死滅し、後続工程である固体発酵が円滑に行われる化学的環境が整うという効果があるだけでなく、消化率を阻害するトリプシンインヒビター（ＴＩ）などの抗栄養因子が若干減少するという効果も期待することができる。

より具体的には、前記熱処理温度は、７０〜１２０℃、７０〜１１０℃、７０〜１００℃、８０〜１３０℃、８０〜１２０℃、８０〜１１０℃、８０〜１００℃、９０〜１３０℃、９０〜１２０℃、９０〜１１０℃、９０〜１００℃であってもよい。また、前記熱処理時間は、より具体的には１０〜３０分、２０〜３０分であってもよい。

前述したように、熱処理された大豆粕又は大豆蛋白濃縮物は、固体発酵が可能な温度に冷却してもよい。前記冷却工程は、コンベア（conveyor）式放冷機を用いた移送過程により行ってもよく、より具体的には大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の温度が３０〜５０℃、３５〜４５℃又は３５〜４０℃になるまで行ってもよい。

前記発酵のための培養温度は、２０〜５０℃であってもよく、より具体的には３０〜５０℃、４０〜５０℃、３０〜４０℃、２０〜４０℃であってもよいが、これらに限定されるものではなく、目的とする大豆発酵物の品質により変動してもよい。また、前記発酵のための培養時間は、８〜７２時間であってもよく、より具体的には１０〜７０時間、１０〜６０時間、１０〜５０時間、１０〜４０時間、１０〜３０時間、１０〜２０時間、８〜１８時間であってもよいが、これらに限定されるものではなく、目的とする大豆発酵物の品質により変動してもよい。

一実施例によれば、前記大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株を１０^５〜１０^９ＣＦＵ／ｇ、１０^５〜１０^８ＣＦＵ／ｇ、１０^６〜１０^９ＣＦＵ／ｇ又は１０^６〜１０^８ＣＦＵ／ｇ接種してもよい。前記接種する菌株の量は、大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の固体発酵を左右する重要な要因となることがある。接種する菌株の量が少ないと、発酵物を製造するのに時間が長くかかり、発酵時間が長くなり、他の微生物に汚染される可能性が高くなる。それに対して、接種する菌株の量が多すぎると、発酵時間は短縮されるが、発酵環境を好適に維持することが困難になることがある。特に、発酵菌株の生育特性と発酵装置の種類により発酵成績が大きく左右されるので、生産ステップにおける菌株特性を考慮して接種量を適宜選定することが好ましい。

一実施例によれば、前記大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に本出願によるバチルス・アミロリケファシエンス菌株を接種し、その後固体発酵させると大豆発酵物が得られる。例えば、前記発酵工程には、充填層発酵器（packed-bed fermentor）が用いられてもよい。充填層発酵器には、バッチ通気培養装置、密閉培養装置、連続通気培養装置など様々な形式があり、大豆発酵物の製造に用いられるものであればいかなる形式を本発明の方法に用いてもよく、生産規模に応じて好適な装置を選択して用いてもよい。例えば、充填層発酵器に菌株が接種された大豆粕又は大豆蛋白濃縮物を５〜５０ｃｍの厚さで載せ、２０〜５０℃で８〜７２時間発酵させてもよい。

一実施例によれば、前記発酵ステップの後に、得られた大豆発酵物を低温低湿で乾燥するステップ、及び粉砕するステップをさらに含んでもよい。発酵終了直後の大豆発酵物中の残存水分含有量は、２０〜５０％（ｖ／ｗ）であってもよい。水分含有量が１０〜１２％（ｖ／ｗ）である大豆発酵物最終製品を製造するために、乾燥工程が追加されてもよい。発酵終了後に、大豆発酵物中に塊が形成されることがあるので、乾燥工程の後に、大豆発酵物の粒子サイズを均一にするための粉砕工程が追加されてもよい。前記乾燥工程及び粉砕工程は、当該技術分野で公知の様々な方法で行うことができるが、過度に高温で乾燥すると大豆発酵物中の生菌が死滅することがあるので、低温で乾燥工程を行うことが好ましい。また、前記粉砕工程は、大豆発酵物を用いる目的に応じて様々な大きさに粉砕することができ、例えばハンマーミル（hammer mill）を用いることができる。

本出願によるバチルス・アミロリケファシエンス菌株を用いて製造された大豆発酵物は、低分子ペプチド含有量が多いので、動物の消化吸収率を向上させることができ、タンパク質含有量が多いので、動物性タンパク質を代替する高品質のタンパク質飼料材料として利用価値が非常に高い。

一実施例によれば、本出願は、バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）、前記菌株の培養物、前記培養物の濃縮物、又は前記培養物の乾燥物を提供する。前述したように、前記菌株は新規な菌株であり、それを用いて製造された大豆発酵物は粘液質の含有量が少なく、低分子ペプチドの含有量が多く、抗菌性を有する。

一実施例によれば、本出願は、バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）、前記菌株の培養物、前記培養物の濃縮物、又は前記培養物の乾燥物を含み、サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）からなる群から選択される少なくとも１つの病原菌に対して抗菌力を有する抗菌性組成物を提供する。これについての詳細は、前述した内容及び実施例を参照することができる。

一実施例によれば、本出願は、前記方法により製造された大豆発酵物を含む飼料組成物を提供する。本出願による飼料組成物中の大豆発酵物の含有量は、適用家畜の種類及び年齢、適用形態、目的とする効果などに応じて好適に調節することができ、例えば１〜９９重量％、より具体的には１０〜９０重量％、２０〜８０重量％であってもよいが、これらに限定されるものではない。

本出願の飼料組成物は、投与のために、大豆発酵物以外に、さらにクエン酸、フマル酸、アジピン酸、乳酸などの有機酸、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、重合リン酸塩などのリン酸塩、ポリフェノール、カテキン、トコフェロール、ビタミンＣ、緑茶抽出物、キトサン、タンニン酸などの天然抗酸化剤の少なくとも１種を混合して用いてもよく、必要に応じて抗インフルエンザ剤、緩衝液、静菌剤など他の通常の添加剤を添加してもよい。また、希釈剤、分散剤、界面活性剤、結合剤又は滑沢剤をさらに添加して水溶液、懸濁液、乳濁液などの注射用剤形、カプセル、顆粒又は錠剤に製剤化してもよい。

さらに、本出願の飼料組成物は、補助成分としてのアミノ酸、無機塩類、ビタミン、抗酸化剤、抗真菌剤、抗菌剤などの各種補助剤、及び粉砕又は破砕したコムギ、オオムギ、トウモロコシなどの植物性タンパク質飼料、血粉、肉粉、魚粉などの動物性タンパク質飼料、動物性脂肪、植物性脂肪などの主成分以外にも、栄養補充剤、成長促進剤、消化吸収促進剤、疾患予防剤と共に用いてもよい。

本出願の飼料組成物を飼料添加物として用いる場合は、前記飼料組成物をそのまま添加してもよく、他の成分と共に用いてもよく、通常の方法で適宜用いられてもよい。飼料組成物の投与形態は、非毒性の製薬上許容される担体と組み合わせて即時放出又は徐放性剤形を用いてもよい。このような食用担体は、トウモロコシデンプン、ラクトース、スクロース、プロピレングリコールであってもよい。固体担体の場合は錠剤、散剤、トローチ剤などの投与形態であってもよく、液体担体の場合はシロップ剤、液体懸濁液剤、エマルジョン剤、溶液剤などの投与形態であってもよい。また、投与剤は、保存剤、滑沢剤、溶解促進剤、安定化剤を含有してもよく、他の炎症疾患改善剤及びウイルス予防上有用な物質を含有してもよい。

本出願の飼料組成物は、哺乳類、家禽類、魚類及び甲殻類をはじめとする多くの動物食餌、すなわち飼料に適用することができる。商業的に重要なブタ、ウシ、ヤギなどの哺乳類、ゾウ、ラクダなどの動物園の動物、イヌ、ネコなどの家畜に用いることができる。商業的に重要な家禽類にはニワトリ、アヒル、ガチョウなどが含まれ、マス、エビなどの商業的に飼育される魚類及び甲殻類も含まれる。

本出願による飼料組成物は、家畜飼料に乾燥重量で１ｋｇ当たり約１０〜５００ｇ、好ましくは１０〜１００ｇの量で混合してもよく、完全に混合してからマッシュに供給してもよく、追加加工工程によりペレット化、膨張化、押出工程を経てもよい。

本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株は、大豆発酵物を製造する用途を提供する。

本出願は、新規バチルス・アミロリケファシエンス（Bacillus amyloliquefaciens）ＣＪ２４−２３菌株、並びにそれを用いた、大豆発酵物を製造する方法、及びその発酵産物に関する。以下、実施例及び実験例を挙げて本出願をより詳細に説明する。しかし、これらの実施例は本出願を例示するものにすぎず、本出願がこれらに限定されるものではない。

新規バチルス・アミロリケファシエンス（Bacillus amyloliquefaciens）菌株の分離
従来から大豆粕又は大豆蛋白濃縮物発酵に用いられることが知られているバチルス・アミロリケファシエンス（以下、「ＣＪ８２３菌株」という，特許文献４参照）を準備し、次の方法で当該菌株の改良を行った。

まず、前記ＣＪ８２３菌株をＴＳＢ平板培地（培地の組成：酵素分解したカゼイン（enzymatic digest of casein）１７．０ｇ，酵素分解した大豆粕（enzymatic digest of soybean meal）３．０ｇ，塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）５．０ｇ，リン酸二カリウム（dipotassium phosphate）２．５ｇ，グルコース（dextrose）２．５ｇ，アガー（agar）１５．０ｇ，２５℃，最終ｐＨ：７．３±０．２）において３７℃の条件で１２時間培養して活性化した。前記活性化した菌株を０．８％ＮａＣｌ殺菌溶液９ｍＬに約２白金耳（Ａ６６０ｎｍで約０．２になるように希釈する）懸濁させて種菌として用いた。予め準備しておいたＴＳＢ５０ｍＬに前記種菌懸濁液を１％接種し、その後Ａ６６０ｎｍで約４．０〜５．０になるように３７℃にて１８０ｒｐｍで培養した。前記種菌を培養し、その後培養液を遠心分離（８０００ｒｐｍ，４℃，１０分）して菌体と上清を分離した。分離した菌体を培養液と同量の０．８％ＮａＣｌ殺菌溶液で２回洗浄した。前記菌体の濃度が約Ａ６６０ｎｍ＝０．８になるように０．８％ＮａＣｌ殺菌溶液２０ｍＬを菌体と混合し、１５ｍＬの混合物を滅菌したシャーレ（petri dish）に塗布した。次に、ＵＶランプ（VIBER LOURMAT, １１５Ｖ, ６０Ｈｚ）を用いて、Ａ２５４ｎｍの波長で約５０ｃｍの高さから菌体にＵＶを照射した。前記ＵＶ照射は、ＵＶ照射時間における前記野生型菌株の致死率が９９．９９％になるまで行った。次に、前記ＵＶ照射した混合物０．１ｍＬをＴＳＡ平板培地（培地の組成：ｔｒｙｐｔｉｃｓｏｙａｇａｒ，酵素分解したカゼイン１５ｇ，酵素分解した大豆粕５ｇ，ＮａＣｌ５ｇ，アガー１５ｇ，２５℃での最終ｐＨ７．３±０．２）において３７℃の条件で１２時間培養し、コロニーを形成した変異菌株のみ分離して得た。

バチルス・アミロリケファシエンスのタンパク質分解能力及び抗菌力の測定
実施例１で分離して得た各変異菌株のタンパク質分解能力及び抗菌力を次の方法で確認した。対照群としては、公知のバチルス・サブティリス（寄託番号ＫＣＣＭ１１４３８Ｐ）及びバチルス・アミロリケファシエンス（ＣＪ８２３菌株）を用いた（以下、それぞれ対照群１、対照群２という）。

１）タンパク質分解能力
実施例１で得た変異菌株のタンパク質分解能力を測定するために、２％（ｗ／ｖ）脱脂乳（Difco, USA）を含むＹＭ寒天培地（ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ３．０ｇ，ｍａｌｔｅｘｔｒａｃｔ３．０ｇ，ｐｅｐｔｏｎｅ１０．０ｇ，ａｇａｒ２０．０ｇ）に菌株を接種培養し、形成されるコロニーの直径（growth, G）を測定すると共に、基質が分解されて生成される透明環（clear zone, C）の大きさを測定した。

より具体的には、前記各変異菌株をＴＳＢ培地（培地の組成：酵素分解したカゼイン（enzymatic digest of casein）１７．０ｇ，酵素分解した大豆粕（enzymatic digest of soybean meal）３．０ｇ，塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）５．０ｇ，リン酸二カリウム（dipotassium phosphate）２．５ｇ，グルコース（dextrose）２．５ｇ，２５℃，最終ｐＨ７．３±０．２）において、３７℃の条件下、２００ｒｐｍの攪拌速度で１２時間培養した。その後、各変異菌株の培養液を脱脂乳含有ＹＭ寒天培地に１．０μｌずつスポッティングし、３７℃で１６時間培養した。培養終了後、培地上に形成されたコロニーの直径（Ｇ）と透明環の大きさ（Ｃ）を測定した。

２）サルモネラ・ティフィムリウムに対する抗菌力
実施例１で得た変異菌株の抗菌力を測定するために、家畜に疾患を引き起こし得る代表的な病原菌であるサルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium, ATCC14028）を用いた。より具体的には、前記変異菌株をそれぞれＧＹＰ培地（培地の組成：ｇｌｕｃｏｓｅ１０ｇ，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ８ｇ，ｐｏｌｙｐｅｐｔｏｎｅ２ｇ，ｐＨ７．０）において、３７℃の条件下、１８０ｒｐｍの攪拌速度で１２時間培養した。各変異菌株の培養液をサルモネラ・ティフィムリウムが１×１０^５ＣＦＵ／ｍｌで添加されたＧＹＰ寒天培地（培地の組成：ｇｌｕｃｏｓｅ１０ｇ，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ８ｇ，ｐｏｌｙｐｅｐｔｏｎｅ２ｇ，ａｇａｒ１５ｇ，ｐＨ７．０）に１．５μＬずつスポッティングし、３７℃で１５時間培養した。培養終了後、変異菌株のコロニーの周囲に形成される生育阻止円の大きさを測定し、抗菌力の活性力価を求めた。

表１は、菌株の培養終了後に、測定された透明環の大きさ（Ｃ）、コロニーの直径（Ｇ）、それらの比率（Ｃ／Ｇ）、それらの大きさの差（Ｃ−Ｇ）、及び生育阻止円の大きさを測定して求めた抗菌力を示すものである。

表１によれば、変異菌株のうちＣＪ２４−２８、ＣＪ２４−２９、ＣＪ２４−３２、ＣＪ２４−３３、ＣＪ２４−３４及びＣＪ２４−３６は、形成されたコロニーの大きさに対する透明環の大きさの比率（Ｃ／Ｇ）が高い方（２．２８〜２．５３）に属し、とりわけＣＪ２４−２８、ＣＪ２４−２９及びＣＪ２４−３４の抗菌力（全て＋＋＋＋＋）が最も高かった。それに対して、対照群１のＣ／Ｇ値が最も低く、対照群２のＣ／Ｇ値はその次に低く（それぞれ１．００、１．５０）、抗菌力はそれぞれ＋＋、＋＋＋＋にすぎなかった。すなわち、前記変異菌株は周知のバチルス・サブティリスやバチルス・アミロリケファシエンスよりタンパク質分解能力及び抗菌力がどちらも大幅に向上した菌株であることが確認されたので、前記菌株を大豆蛋白濃縮物や大豆粕に適用して大豆発酵物を製造すると、当該発酵物は抗菌力を有するものと期待される。

ＣＪ２４−３４菌株の抗菌力の測定
実施例２で抗菌力に優れるものとして選択された菌株（ＣＪ２４−２８、ＣＪ２４−２９及びＣＪ２４−３４）のうち、透明環の大きさ（Ｃ）とコロニーの直径（Ｇ）が最も大きく、タンパク質分解能力に優れたＣＪ２４−３４菌株のサルモネラ以外の病原性微生物に対する抗菌力をさらに確認することにした。抗菌力の確認のために、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）、ラクトコッカス・ガルビエ（Lactococcus garviaeae）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）の病原性微生物を用いた。これらは、敗血症、ビブリオコレラ、エビビブリオ症、ブリ類結節症、ヒラメ連鎖球菌症、ヒラメエドワジエラ症などを含む疾患を養魚に引き起こす恐れがあることが知られている。前記病原性微生物のうち、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）及びラクトコッカス・ガルビエ（Lactococcus garviaeae）は慶尚大学校病原体資源銀行から分譲された菌株であり、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）はＫＣＴＣから分譲された菌株である。各病原性微生物を表２に示す培地と温度で培養し、その後単一コロニーを選択してｔｅｓｔｔｕｂｅに移し、当該液体培地でｏｖｅｒｎｉｇｈｔして前培養した。前培養液を再び各病原菌の当該液体培地１００ｍＬに０．１％接種して約１２時間本培養した。本培養液は、抗菌力テストのために各病原菌の寒天培地を準備する際に用いた。

本出願のＣＪ２４−３４をＧＹＰ寒天培地（ｇｌｕｃｏｓｅ１％，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ０．８％，ｐｅｐｔｏｎｅ０．２％，ａｇａｒ０．２％）に培養して得た単一コロニーを、ＧＹＰ培地（ｇｌｕｃｏｓｅ１％，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ０．８％，ｐｅｐｔｏｎｅ０．２％）３ｍＬを含むｔｅｓｔｔｕｂｅに接種し、３７℃、１８０ｒｐｍの条件下、ｏｖｅｒｎｉｇｈｔで前培養した。前培養液を再びＧＹＰ培地１００ｍＬに０．１％接種し、３７℃、１８０ｒｐｍで本培養した。次に、本培養１６時間、２０時間後の培養液を採取し、それぞれの培養液１０ｍＬを８０００ｒｐｍ、４℃で１０分間遠心分離して上清を回収した。上清を再び０．２μｍｓｙｒｉｎｇｅｆｉｌｔｅｒで濾過して濾液を準備した。

寒天培地においてＣＪ２４−３４菌株が分泌する抗菌物質の抗菌力をテストすべく、各病原菌の寒天培地を準備するために、各病原菌培養条件で寒天培地を作製し、１２１℃、１５分で滅菌した。これを放冷し、寒天培地が固化する前に予め準備しておいた各病原菌培養液を寒天培地に１％添加して混合し、その後スクエアプレートに移し、それぞれの病原菌を接種した寒天培地を固化した。完全に固化した寒天培地プレートにｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐを取り付け、各カップに予め準備しておいたＣＪ２４−３４濾液（それぞれ１６時間、２０時間）を３００μＬずつｌｏａｄｉｎｇし、各病原菌培養条件で当該菌を培養した。培養終了後、病原菌別に培養した寒天培地に現れた透明環の大きさを測定した。ここで、ｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐの大きさは７ｍｍであり、抗菌物質により追加発生した透明環を含むｓｐｏｔの直径を測定することにより透明環の大きさを比較した。透明環の大きさが大きいほど、ＣＪ２４−３４が分泌した抗菌物質により病原菌が生育できなかったことを意味する。また、本実験においてはｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐの内部で発生した透明環も抗菌力の指標とみなしたが、ｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐの外部で発生した透明環と同様に大きさを測定することはできなかった。

表３に示す透明環の大きさから分かるように、本出願のＣＪ２４−３４は特定病原菌に対する抗菌力を有する抗菌物質を分泌することが確認された。Ｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐの大きさは７ｍｍであり、それに照らして、ＣＪ２４−３４の抗菌物質はＶｉｂｒｉｏｖｕｌｎｉｆｉｃｕｓ、Ｐｈｏｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｄａｍｓｅｌ、Ｌｉｓｔｏｎｅｌｌａａｎｇｕｉｌｌａｒｕｍ、Ｅｄｗａｒｄｓｉｅｌｌａｔａｒｄａの生育を抑制することが確認された。一方、Ｖｉｂｒｉｏｐａｒａｈａｅｍｏｌｙｔｉｃｕｓの透明環の大きさはｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐの大きさと同じ７ｍｍであり、外部の透明環の大きさの測定から抗菌力がないものと評価されうるが、実際にｐｌａｔｅ上を観察してｐｅｎｉｃｙｌｉｎｄｅｒｃｕｐの内部に透明環が一部存在することが確認されたので、この病原菌に対する抗菌力が一部存在すると言える。すなわち、本実験においてテストした全６種の病原菌のうち５種の病原菌（Vibrio vulnificus, Vibrio parahaemolyticus, Photobacterium damsel, Listonella anguillarum, Edwardsiella tarda）に対して抗菌力を示したので、本出願のＣＪ２４−３４菌株を大豆蛋白濃縮物や大豆粕に適用すると、病原菌増殖が防止された大豆発酵物及びそれを含む動物飼料組成物を製造できるものと期待される。

バチルス・アミロリケファシエンスの粘液質生成能の測定
実施例２で優れたタンパク質分解能力及び抗菌力が確認されて選択された変異菌株ＣＪ２４−２８、ＣＪ２４−２９及びＣＪ２４−３４の粘液質生成能を確認するために、前記菌株をＧＹＰ寒天培地で再び培養し、各コロニーの表現型を詳細に観察した。対照群として、実施例２の対照群２（バチルス・アミロリケファシエンス，ＣＪ８２３菌株）を用いた。

実験の結果、対照群２の菌株のコロニーにおいては光沢と共に粘性が観察され、粘液質生成が確認されたのに対して、実施例２で選択された変異菌株ＣＪ２４−２８、ＣＪ２４−２９及びＣＪ２４−３４のコロニーにおいては光沢や粘性が全く観察されず、粘液質生成が抑制されたことが確認された。

ＣＪ２４−３４菌株の大豆蛋白濃縮物における粘液質生成能及び発酵能
実施例２及び実施例３で選択された変異菌株のうちタンパク質分解能力及び抗菌力に優れることが確認されたＣＪ２４−３４菌株を大豆蛋白濃縮物に接種して発酵させた場合の菌株の粘液質生成の有無と発酵能力を確認することにした。対照群として、実施例２の対照群１（バチルス・サブティリス：寄託番号ＫＣＣＭ１１４３８Ｐ）及び対照群２（バチルス・アミロリケファシエンス：ＣＪ８２３）を用いた。

前記ＣＪ２４−３４菌株をＧＹＰ培地（培地の組成：ｇｌｕｃｏｓｅ１０ｇ／Ｌ，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ８ｇ／Ｌ，ｓｏｙｐｅｐｔｏｎ２ｇ／Ｌ）で前培養し、前培養により得られた本培養液を再びＧＹＰ培地に１％になるように接種し、その後菌体濃度がＡ６６０ｎｍ＝６以上になるまで培養した。

前記大豆蛋白濃縮物は、水分含有量を約４３％（ｖ／ｗ）に調節し、１００℃で３０分間熱処理し、その後３０〜５０℃に冷却して準備した。前記大豆蛋白濃縮物の重量で１０重量％の前記ＣＪ２４−３４菌株の培養液を前記前処理した大豆蛋白濃縮物に接種し、接種した培養液の水分含有量を約４６％に調節した。前記大豆蛋白濃縮物は、３７℃と湿度９５％が維持される恒温恒湿器で１６時間発酵させた。発酵前の前記大豆蛋白濃縮物のｐＨは約６．８であり、各菌株は約１０^７ＣＦＵ／ｇ接種した。発酵終了後、発酵物の粘液質生成の有無をチェックし、発酵物の水分、生菌数及びｐＨを再び測定した。発酵物のタンパク質含有量とタンパク質増加量は、発酵物を乾燥させた後の乾燥重量で測定した。

図１はＣＪ２４−３４及び２対照群の菌株を適用して発酵させた発酵大豆蛋白濃縮物の形態を示す写真である。図１のＡ及びＣはそれぞれ対照群１（バチルス・サブティリス）及び本出願によるＣＪ２４−３４で発酵させた発酵大豆蛋白濃縮物の写真であり、これらの発酵物は全て粘りや塊がないので、粘液質生成が抑制されたことが確認された。それに対して、図１のＢは対照群２（バチルス・アミロリケファシエンス）で発酵させた発酵大豆蛋白濃縮物の写真であり、この発酵物は粘りが強く、塊が形成されていた。すなわち、従来のバチルス・アミロリケファシエンスは発酵過程中に相当量の粘液質を形成するのに対して、本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４は粘液質をほとんど生成しないので、発酵物の大量生産に有用であることが確認された。

本出願のＣＪ２４−３４を用いた発酵物の特徴を調べるために、対照群を含む各菌株を適用した発酵大豆蛋白濃縮物の各時間における（０，１６時間）水分、生菌数、ｐＨ、タンパク質含有量及びタンパク質増加量を確認した（表４）。実験の結果、本出願によるＣＪ２４−３４で発酵させた発酵大豆蛋白濃縮物において、水分含有量は約３７％〜３９％であり、ｐＨは８以上であり、生菌数は約１０^９ＣＦＵ／ｇ以上であった。また、タンパク質含有量は原料のタンパク質含有量より約４％増加したので、発酵能力が確認された。

発酵大豆蛋白濃縮物のタンパク質分解性及び分子量分布度
本実施例においては、発酵物に含まれるペプチドサイズ及び分布を確認するために、実施例５の発酵大豆蛋白濃縮物のタンパク質分解性及び分子量分布度を分析した。これらは、それぞれＳＤＳ−ＰＡＧＥ及びＧＰＣ法で測定した。

１）ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ポリアクリルアミドゲル電気泳動法）
原料（大豆蛋白濃縮物）及び実施例５で準備した発酵大豆蛋白濃縮物（ＣＪ２４−３４の発酵大豆蛋白濃縮物及び対照群１の発酵大豆蛋白濃縮物）それぞれ１００ｍｇを８Ｍの尿素溶媒５ｍＬで懸濁（suspension）し、超音波処理（sonication）し、その後遠心分離（８０００ｒｐｍ，１０分）して上清を分離した。前記上清をｂｉｃｉｎｃｈｏｎｉｎｉｃａｃｉｄで定量し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥのゲルに載せた。

図２は発酵大豆蛋白濃縮物のＳＤＳ−ＰＡＧＥ結果を示す写真である。図２の左から、Ｍはバイオマーカー、１番は原料（大豆蛋白濃縮物）、２番及び３番は本出願によるＣＪ２４−３４の発酵大豆蛋白濃縮物、４番及び５番は対照群１の発酵大豆蛋白濃縮物の各タンパク質分布を示す。図２に示すタンパク質分布によれば、本出願によるＣＪ２４−３４の発酵大豆蛋白濃縮物は、高分子タンパク質をほとんど含まず、大半は低分子ペプチドで構成されることが確認されるので、当該菌株を飼料に適用すると消化吸収率が向上するものと期待される。それに対して、対照群１の発酵大豆蛋白濃縮物は高分子タンパク質を依然として含んでいるので、高分子タンパク質が十分に分解されていないことが確認された。

２）ＧＰＣ（Gel Permeation Chromatography）
ＧＰＣとは、分子量が異なる標準タンパク質を分析してそれぞれの保持時間（retention time）を確認し、次に分子量と保持時間の関係の標準曲線を算出することにより、測定しようとする試料中のタンパク質分子量分布度を求める方法である。より具体的には、特定分子量を有するタンパク質の保持時間を計算し、その時間に応じてクロマトグラムの部分を分け、全クロマトグラム面積中の各分子量範囲における部分面積比を計算するものである。

原料（大豆蛋白濃縮物）及び実施例５で準備した発酵大豆蛋白濃縮物（ＣＪ２４−３４の発酵大豆蛋白濃縮物及び対照群１の発酵大豆蛋白濃縮物）それぞれ１００ｍｇを８Ｍの尿素溶媒５ｍｌに懸濁（suspension）し、超音波処理（sonication）し、その後遠心分離（８０００ｒｐｍ，１０分）して上清を分離した。前記上清を０．４５μｍシリンジフィルター（syringe filter）で濾過し、濾液をＧＰＣ法で分析した。その結果を表５に示す。

表５は、原料及び発酵大豆蛋白濃縮物のＧＰＣ結果を示すものである。表５に示すように、本出願によるＣＪ２４−３４の発酵大豆蛋白濃縮物（１）及び（２）には、３０ＫＤａ以下のペプチドが約８０％、１０ＫＤａ以下のペプチドが約５５％含まれており、低分子ペプチドを中心に構成されていることが確認された。それに対して、対照群１の発酵大豆蛋白濃縮物は、原料に比べて低分子量ペプチドを多く含むが、１０ＫＤａ以下のペプチド含有量は約２３〜２４％にすぎず、ほとんど高分子ペプチドを中心に構成されていることが確認された。

ＣＪ２４−３４菌株の大豆粕発酵能、タンパク質分解性及び分子量分布度
本出願によるバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株が大豆粕に適用された場合も発酵能に優れるかを確認するために、発酵大豆粕の生産菌株として従来から用いられていた２種のバチルス・アミロリケファシエンス（ＫＣＣＭ１１４７１Ｐ，ＫＣＣＭ１１９０６Ｐ）を対照群として発酵能を確認した。前記ＫＣＣＭ１１４７１Ｐを対照群３とし、前記ＫＣＣＭ１１９０６Ｐを対照群４とする。

前記バチルス菌株をそれぞれＧＹＰ培地（培地の組成：ｇｌｕｃｏｓｅ１０ｇ／，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ８ｇ／Ｌ，ｓｏｙｐｅｐｔｏｎ２ｇ／Ｌ）で前培養し、前培養により得られた培養液を再びＧＹＰ培地に１％接種してＡ６６０ｎｍ＝６以上になるまで培養した。

大豆粕は、水分含有量を約４３％（ｖ／ｗ）に調節し、１００℃で３０分間熱処理し、その後３０〜５０℃に冷却して準備した。前記大豆粕の重量で１０重量％のバチルス培養液をそれぞれ前記前処理した大豆粕に接種し、水分含有量を約４６％に調節した。発酵前の前記大豆粕のｐＨは約６．８であり、各菌株は約１０^７ＣＦＵ／ｇ接種した。培養液を接種した大豆粕は、３７℃と湿度９５％が維持される恒温恒湿器で１８時間発酵させた。それぞれ発酵開始１４、１６、１８時間後の発酵大豆粕をサンプリングし、タンパク質含有量の経時的変化を測定した。それを表６に示す。

表６は、発酵大豆粕のタンパク質含有量及びタンパク質増加量を示すものである。表６に示すように、ＣＪ２４−３４の発酵大豆粕のタンパク質含有量とタンパク質増加量は、対照群３や対照群４に比べて高かった。より具体的には、発酵時間が同じであれば、ＣＪ２４−３４の発酵大豆粕のタンパク質含有量は、平均して対照群３に比べて約１％高く、対照群４に比べて約０．５％高かった。発酵大豆粕を製造する技術において、より速くタンパク質の含有量を増加させて発酵時間を短縮することは非常に重要であるので、本出願のバチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４には、大豆発酵物の生産性を向上させ、製造コストを減少させるという利点がある。

一方、発酵大豆粕を構成するペプチドサイズを確認するために、前記ＣＪ２４−３４で発酵させた発酵大豆粕と原料（大豆粕）のタンパク質分解性及び分子量分布度を分析した。そのために、実施例６と同様にＧＰＣ法を用いた。

図３は原料（大豆粕）及びＣＪ２４−３４で発酵させた発酵大豆粕のＳＤＳ−ＰＡＧＥ結果を示す写真である。図３の左から、Ｍはバイオマーカー、１番は原料（大豆粕）、２番は本出願によるＣＪ２４−３４で発酵させた発酵大豆粕のタンパク質分布を示す。図３に示すように、本出願によるＣＪ２４−３４の発酵大豆粕は、高分子タンパク質をほとんど含まず、大半は低分子ペプチドを含むことが確認されるので、当該菌株を飼料に適用すると消化吸収率が向上するものと期待される。

表７は、原料（大豆粕）及び発酵大豆粕のペプチド構成を分析したＧＰＣ結果を示すものである。表７に示すように、原料（大豆粕）は３０ＫＤａ以上のペプチドが約８２％であり、ほとんど高分子ペプチドで構成されているのに対して、本出願によるＣＪ２４−３４で発酵させた発酵大豆粕は３０ＫＤａ以下のペプチドが約８２％、１０ＫＤａ以下のペプチドが約５８％含まれており、ほとんど低分子ペプチドで構成されていることが確認された。すなわち、原料に含まれる高分子タンパク質のほとんどが低分子ペプチドに分解されているので、当該菌株を飼料に適用すると消化率が向上するものと期待される。

ＣＪ２４−３４の低水分条件における大豆粕発酵能
本出願によるＣＪ２４−３４菌株をＧＹＰ培地（培地の組成：ｇｌｕｃｏｓｅ１０ｇ／，ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ８ｇ／Ｌ，ｓｏｙｐｅｐｔｏｎ２ｇ／Ｌ）で前培養し、前培養により得られた培養液を再びＧＹＰ培地に１％接種し、Ａ６６０ｎｍ＝６以上になるまで培養した。

大豆粕は、水分含有量を低水分条件の約３１％（ｖ／ｗ）に調節し、１００℃で３０分間熱処理し、その後３０〜５０℃に冷却して準備した。大豆粕の重量で１０重量％のバチルス培養液を前記前処理した大豆粕に接種し、水分含有量を低水分条件の約３６％に調節した。培養液を接種した大豆粕は、３７℃と湿度９５％が維持される恒温恒湿器で１２時間発酵させた。発酵開始８、１０、１２時間後の発酵物をサンプリングし、水分、生菌数、タンパク質含有量及びタンパク質増加量を測定した。

表８に示すように、発酵時間が経過するにつれて水分は徐々に減少し、生菌数は７．０×１０^９ＣＦＵ／ｇまで増加した。また、バチルスの生長過程で大豆粕の糖成分が用いられることにより、発酵物中のタンパク質含有量が１２時間後に約４％増加する結果が確認された。すなわち、本出願による菌株は、低水分の大豆粕においても発酵能を有することが確認された。また、低水分の発酵大豆粕中のペプチドサイズの構成を確認するために、タンパク質分解性及び分子量分布度を確認した実施例６と同様にＳＤＳ−ＰＡＧＥ及びＧＰＣで分析した。

図４は低水分における発酵大豆粕のＳＤＳ−ＰＡＧＥ結果を示す写真である。図４の左から、Ｍはバイオマーカー、１番は原料（大豆粕）、２番は８時間発酵させた発酵大豆粕、３番は１０時間発酵させた発酵大豆粕、４番は１２時間発酵させた発酵大豆粕の各タンパク質分布を示す。図４に示すように、大豆粕原料の高分子タンパク質が発酵中に分解されるに伴って低分子ペプチドが増加するので、飼料に適用すると消化率の増加効果をもたらすことが確認された。

表９は、原料及び各発酵時間（８，１０，１２ｈｒ）における低水分条件の発酵大豆粕のＧＰＣ結果を示すものである。表９に示すように、本出願によるＣＪ２４−３４菌株で１２時間発酵させた大豆粕発酵物には、３０ＫＤａ以下のペプチドが約５２％、１０ＫＤａ以下のペプチドが約２４．８％含まれる。それに対して、原料（大豆粕）は、３０ＫＤａ以下のペプチドが約１６．３％であり、ほとんど高分子ペプチドで構成されていた。すなわち、原料に含まれる高分子タンパク質の相当量が低分子ペプチドに分解されることが確認されたので、低水分条件においても本出願の菌株ＣＪ２４−３４で発酵させた大豆粕は低分子ペプチド含有量が多く、飼料に適用すると向上した消化効果が得られるものと期待される。

本出願の変異バチルス・アミロリケファシエンス（Bacillus amyloliquefaciens）ＣＪ２４−３４菌株の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子塩基配列及び系統樹の分析
本出願のＣＪ２４−３４変異菌株の同定のために、表１０の塩基配列を用いて菌株の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列を分析した。

１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列による菌株同定のために、ユニバーサルプライマー（universal primer）として２７Ｆ（５’−ＡＧＡＧＴＴＴＧＡＴＣＣＴＧＧＣＴＣＡＧ−３’，配列番号１）と１４９２Ｒ（５’−ＧＧＴＴＡＣＣＴＴＧＴＴＡＣＧＡＣＴＴ−３’，配列番号２）を用いて、ＰＣＲで増幅して精製した。塩基配列決定のために、２７Ｆ（５’−ＡＧＡＧＴＴＴＧＡＴＣＣＴＧＧＣＴＣＡＧ−３’）、５１８Ｆ（５’−ＣＣＡＧＣＡＧＣＣＧＣＧＧＴＡＡＴＡＣＧ−３’，配列番号３）、８０５Ｒ（５’−ＴＡＣＣＡＧＧＧＴＡＴＣＴＡＡＴＣＣ−３’，配列番号４）及び１４９２Ｒ（５’−ＧＧＴＴＡＣＣＴＴＧＴＴＡＣＧＡＣＴＴ−３’）を用いて、１，５０８ｂｐの塩基配列を分析した。塩基配列は、ＢｉｇＤｙｅ（登録商標）Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒｖ３．１ＣｙｃｌｅＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇＫｉｔｓ(Applied Biosystems Inc., USA)を用いてシーケンシングし、ＡＢＩ３７３０ＸＬＤＮＡＡｎａｌｙｚｅｒ(Applied Biosystems, 3.850 Lincoln Centre Drive Foster City, CA 94404 USA)で分析した。

１６ＳｒＲＮＡ塩基配列の分析の結果、本出願のＣＪ２４−３４変異菌株は、配列番号５の１６ＳｒＲＮＡ塩基配列を含んでいることが確認された。配列表は図面の次に添付した。遺伝子塩基配列との類似性の判断は、ＥｚＴａｘｏｎｓｅｒｖｅｒ（http://eztaxon-e.ezbiocloud.net/）とＧｅｎＢａｎｋ／ＥＭＢＬ／ＤＤＢＪに登録されている塩基配列とを比較して得た。塩基配列を用いて多重配列整列を行い、その後ＭＥＧＡ６ｐｒｏｇｒａｍを用いて系統樹（phylogenic tree）を作成し、分類学的位置を分析した（図５）。

前記系統樹分析の結果、本出願のＣＪ２４−３４変異菌株は標準菌株であるバチルス・アミロリケファシエンス亜種プランタルム（Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum）ＦＺＢ４２Ｔ（ＣＰ０００５６０）と最も近い近縁関係を示し、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列相同性は９９．９３％（１５０７ｂｐ／１５０８ｂｐ）であることが確認された。

本出願による前記変異菌株ＣＪ２４−３４をバチルス・アミロリケファシエンスｓｕｂｓｐ．ＰｌａｎｔａｒｕｍＣＪ２４−３４と命名し、ブダペスト条約に基づいて２０１７年６月１５日付けで韓国微生物保存センター（KoreanCulture of Microorganisms, KCCM）に寄託番号ＫＣＣＭ１２０３８Ｐとして受託した。

本出願は、抗菌力とタンパク質分解能力に優れ、粘液質生成能が低い新規バチルス・アミロリケファシエンス（Bacillus amyloliquefaciens）菌株、並びにそれを用いた、動物の飼料消化率が向上した低分子ペプチドの発酵大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物、及びその製造方法を提供する優れた効果があるので、動物飼料、食品及び製薬産業において非常に有用な発明である。

寄託機関名：韓国微生物保存センター（国外）
受託番号：ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ
受託日：２０１７年６月１５日
（配列表）

配列表電子ファイル添付

本件出願は、以下の構成の発明を提供する。
（構成１）
バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種するステップと、
前記バチルス・アミロリケファシエンス菌株を培養して発酵させた発酵大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物を得るステップとを含む、大豆発酵物を製造する方法。
（構成２）
前記大豆発酵物は、サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）からなる群から選択される少なくとも１つの病原菌に対して抗菌力を有する、構成１に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成３）
前記大豆発酵物は、分子量３０ＫＤａ以下の低分子ペプチドを４０重量％以上含む、構成１又は２に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成４）
菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種するステップの前に、
大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の水分含有量を調節し、熱処理するステップをさらに含む、構成１〜３のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成５）
前記大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物の水分含有量を３０〜８０％（ｖ／ｗ）に調節し、前記熱処理を７０〜１３０℃で１０〜３０分間行うものである、構成４に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成６）
前記バチルス・アミロリケファシエンス菌株ＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）は、１０ ^５〜１０ ^９ＣＦＵ／ｇの菌数で接種するものである、構成１〜５のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成７）
前記培養は、２０〜５０℃で８〜７２時間行うものである、構成１〜６のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成８）
前記得られた発酵大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物を乾燥及び粉砕するステップをさらに含む、構成１〜７のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
（構成９）
バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）。
（構成１０）
バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）、前記菌株の培養物、前記培養物の濃縮物、又は前記培養物の乾燥物を含み、
サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）からなる群から選択される少なくとも１つの病原菌に対して抗菌力を有する、抗菌性組成物。
（構成１１）
構成１〜８のいずれか一項に記載の方法により製造された大豆発酵物。
（構成１２）
構成１１に記載の大豆発酵物を含む動物飼料組成物。

Claims

バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種するステップと、
前記バチルス・アミロリケファシエンス菌株を培養して発酵させた発酵大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物を得るステップとを含む、大豆発酵物を製造する方法。
前記大豆発酵物は、サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）からなる群から選択される少なくとも１つの病原菌に対して抗菌力を有する、請求項１に記載の大豆発酵物を製造する方法。
前記大豆発酵物は、分子量３０ＫＤａ以下の低分子ペプチドを４０重量％以上含む、請求項１又は２に記載の大豆発酵物を製造する方法。
前記菌株を大豆粕又は大豆蛋白濃縮物に接種するステップの前に、
該大豆粕又は大豆蛋白濃縮物の水分含有量を調節し、熱処理するステップをさらに含む、請求項１〜３のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
前記大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物の水分含有量を３０〜８０％（ｖ／ｗ）に調節し、前記熱処理を７０〜１３０℃で１０〜３０分間行うものである、請求項４に記載の大豆発酵物を製造する方法。
前記バチルス・アミロリケファシエンス菌株ＣＪ２４−３４（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）は、１０^５〜１０^９ＣＦＵ／ｇの菌数で接種するものである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
前記培養は、２０〜５０℃で８〜７２時間行うものである、請求項１〜６のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
前記得られた発酵大豆粕又は発酵大豆蛋白濃縮物を乾燥及び粉砕するステップをさらに含む、請求項１〜７のいずれか一項に記載の大豆発酵物を製造する方法。
バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）。
バチルス・アミロリケファシエンスＣＪ２４−３４菌株（ＫＣＣＭ１２０３８Ｐ）、前記菌株の培養物、前記培養物の濃縮物、又は前記培養物の乾燥物を含み、
サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ビブリオ・バルニフィカス（Vibrio vulnificus）、ビブリオ・パラヘモリティカス（Vibrio parahaemolyticus）、フォトバクテリウム・ダムセラエ（Photobacterium damsel）、リストネラ・アンギラルム（Listonella anguillarum）及びエドワジエラ・タルダ（Edwardsiella tarda）からなる群から選択される少なくとも１つの病原菌に対して抗菌力を有する、抗菌性組成物。