JP6851358B2 - 単一ホルモンのインスリン陽性細胞へのヒト胚性幹細胞の分化 - Google Patents

Description

（関連出願の相互参照）
本出願は、２０１１年１２月２２日に出願された、米国特許仮出願第６１／５７９，３
５１号の利益を主張するものであり、当該出願を、本明細書にその全容において、かつあ
らゆる目的について援用するものである。

（発明の分野）
本発明は、細胞分化の分野にある。より具体的には、本発明は、段階的分化の各工程で
定義された条件を用いて、多能性幹細胞から分化した単一ホルモンのインスリン産生細胞
を提供する。その集団において分化したインスリン産生細胞の１０％以上は、単一ホルモ
ンの膵臓β細胞に特徴的なマーカーを発現する。

Ｉ型糖尿病の細胞置換療法の進歩及び移植可能なランゲルハンス島の不足により、生着
に適したインスリン産生細胞すなわちβ細胞の供給源の開発に注目が集まっている。１つ
の手法として、例えば、胚性幹細胞のような多能性幹細胞から機能性のβ細胞を生成する
ことがある。

脊椎動物の胚発生において、多能性細胞は、原腸形成として公知のプロセスにて、３つ
の胚葉（外胚葉、中胚葉、及び内胚葉）を含む細胞のグループを生じる。例えば、甲状腺
、胸腺、膵臓、腸、及び肝臓などの組織は、内胚葉から中間ステージを経て発達する。こ
のプロセスにおける中間ステージは、胚体内胚葉の形成である。胚体内胚葉細胞（defini
tive endoderm cell）は、ＨＮＦ３β、ＧＡＴＡ４、ＭＩＸＬ１、ＣＸＣＲ４、及びＳＯ
Ｘ１７などの多数のマーカーを発現する。

原腸形成の終了までに、内胚葉は、内胚葉の前部、中間、及び後部の領域を特異的にマ
ークする因子のパネルの発現によって認識することができる前部−後部ドメインに分割さ
れる。例えば、Ｈｈｅｘ及びＳｏｘ２は内胚葉の前領域を特定し、Ｃｄｘ１、２及び４は
後半分を特定する。

内胚葉組織の移行は、内胚葉を腸管の領域化に役立つ異なった中胚葉組織に近接させる
。これは、例えば、ＦＧＦ、Ｗｎｔ、ＴＧＦ−Ｂ、レチノイン酸（ＲＡ）、及びＢＭＰリ
ガンド、並びにそれらのアンタゴニストのような多数の分泌された因子によって達成され
る。例えば、ＦＧＦ４及びＢＭＰは推定後腸内胚葉においてＣｄｘ２の発現を促進し、前
方の遺伝子Ｈｈｅｘ及びＳＯＸ２の発現を阻害する（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ２０００
，１２７：１５６３〜１５６７）。ＷＮＴシグナル伝達はまた、後腸の発達を促進し、前
腸の運命を阻害するために、ＦＧＦシグナル伝達と平行して作用することが示されている
（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ２００７，１３４：２２０７〜２２１７）。最後に、間葉に
よって分泌されるレチノイン酸は、前腸−後腸の境界を調節する（Ｃｕｒｒ Ｂｉｏｌ
２００２，１２：１２１５〜１２２０）。

特異的転写因子の発現レベルは、組織のアイデンティティを指定するために使用できる
可能性がある。原腸管への胚体内胚葉の形質転換中に、腸管は、制限された遺伝子発現パ
ターンにより分子レベルで観察することができる広いドメインに領域化される。例えば、
腸管で領域化された膵臓ドメインは、ＰＤＸ−１の非常に高い発現及びＣＤＸ２並びにＳ
ＯＸ２の非常に低い発現を示す。同様に、Ｆｏｘｅ１の高レベルの存在は、食道組織の指
標である。肺組織において高度に発現されるのはＮＫＸ２．１である。ＳＯＸ２／Ｏｄｄ
１（ＯＳＲ１）は胃組織において高度に発現される。ＰＲＯＸ１／Ｈｈｅｘ／ＡＦＰの発
現は肝組織において高い。ＳＯＸ１７は胆管構造の組織で高度に発現される。ＰＤＸ１、
ＮＫＸ６．１／ＰＴｆ１ａ、及びＮＫＸ２．２は膵臓組織において高度に発現される。Ｃ
ＤＸ２の発現は、腸組織において高い。上記要約は、Ｄｅｖ Ｄｙｎ ２００９，２３８
：２９〜４２及びＡｎｎｕ Ｒｅｖ Ｃｅｌｌ Ｄｅｖ Ｂｉｏｌ ２００９，２５：２
２１〜２５１からの引用である。

膵臓の形成は、膵臓内胚葉への胚体内胚葉の分化から生じる（Ａｎｎｕ Ｒｅｖ Ｃｅ
ｌｌ Ｄｅｖ Ｂｉｏｌ ２００９，２５：２２１〜２５１；Ｄｅｖ Ｄｙｎ ２００９
，２３８：２９〜４２）。背側と腹側の膵臓ドメインは、前腸上皮から生じる。また、前
腸は、食道、気管、肺、甲状腺、胃、肝臓、膵臓、胆管系を生じさせる。

膵臓内胚葉の細胞は膵臓−十二指腸ホメオボックス遺伝子ＰＤＸ１を発現する。ＰＤＸ
１が存在しない場合、膵臓は、腹側芽及び背側芽の形成を越えて発達しない。したがって
、ＰＤＸ１の発現は、膵臓器官形成において重要な工程を印している。成熟した膵臓は、
他の細胞型の中でも、外分泌組織及び内分泌組織を含む。外分泌組織及び内分泌組織は、
膵臓内胚葉の分化によって生じる。

Ｄ’Ａｍｏｕｒらは、高濃度のアクチビン及び低血清の存在下でのヒト胚性幹細胞由来
の胚体内胚葉の濃縮培地の生産を記述している（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ
２００５，２３：１５３４〜１５４１；Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ．７，７０４，７３
８）。マウスの腎臓被膜下でのこれらの細胞の移植は、内胚葉組織の特徴を有する、より
成熟した細胞への分化をもたらした（米国特許第７，７０４，７３８号）。ヒト胚性幹細
胞由来の胚体内胚葉細胞は、ＦＧＦ−１０及びレチノイン酸の添加後、ＰＤＸ１陽性細胞
に更に分化することができる（米国特許公開第２００５／０２６６５５４Ａ１号）。免疫
不全マウスの腎臓被膜下でのこれらの膵臓前駆細胞のその後の移植は、３〜４ヶ月の成熟
期の後に、機能的膵内分泌細胞の形成をもたらした（米国特許第７，９９３，９２０号及
び米国特許第７，５３４，６０８号）。

Ｆｉｓｋらは、ヒト胚性幹細胞からの膵島細胞の産生のためのシステムを報告している
（米国特許第７，０３３，８３１号）。この場合、分化経路は３つの段階に分割された。
ヒト胚性幹細胞は、最初に、酪酸ナトリウムとアクチビンとの組み合わせを用いて内胚葉
に分化された（米国特許第７，３２６，５７２号）。次に細胞をノギンなどのＢＭＰアン
タゴニストと共に、ＥＧＦ又はベータセルリンと組み合わせて培養して、ＰＤＸ１陽性細
胞を生成した。最終分化は、ニコチンアミドにより誘発された。

小分子阻害剤もまた、膵内分泌前駆細胞の誘導のために使用されている。例えば、ＴＧ
Ｆ−Ｂ受容体及びＢＭＰ受容体の小分子阻害剤（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ２０１１，１
３８：８６１〜８７１；Ｄｉａｂｅｔｅｓ ２０１１，６０：２３９〜２４７）は、有意
に膵内分泌細胞の数を増すために使用されている。加えて、小分子活性化剤もまた、胚体
内胚葉細胞又は膵臓前駆細胞を生成するために使用されている（Ｃｕｒｒ Ｏｐｉｎ Ｃ
ｅｌｌ Ｂｉｏｌ ２００９，２１：７２７〜７３２；Ｎａｔｕｒｅ Ｃｈｅｍ Ｂｉｏ
ｌ ２００９，５：２５８〜２６５）。

ヒト胚性幹細胞からの膵臓前駆細胞の誘導におけるこれまでの試みは、膵臓内胚葉の正
しい同定におけるＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１の共発現の重要性を明らかにした。しかし
、当該技術分野は、ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６の発現において陽性の細胞の集団はＣＤＸ２
の発現が低い又は発現しないものと同定してきたが、これまでの報告は、発達中の膵臓の
すぐ前方のマーカーの存在を試験するに至っていない。前方の内胚葉を印すＳＯＸ２は、
成人の島では発現されず、発達中の膵臓において非常に低レベルで発現される。（Ｄｉａ
ｂｅｔｅｓ ２００５，５４：３４０２〜４３０９）。対照的に、本願の実施例のいくつ
かは、ヒト胚性幹細胞から生成された膵臓内胚葉細胞の少なくとも３０％がＰＤＸ−１及
びＮＫＸ６．１の発現について陽性であり、かつＣＤＸ２及びＳＯＸ２の発現に陰性であ
る細胞集団を開示する。

機能的膵臓β細胞を生成するための以前のあらゆる試みは、成熟したβ細胞の特徴を有
する細胞を得るまでに至っていない。成熟したβ細胞の特徴としては、単一ホルモンのイ
ンスリンの発現、プロインスリンからインスリン及びＣ−ペプチドへの正しい処理、ＰＤ
Ｘ−１及びＮＫＸ６．１の強発現、グルコースに応答した適切なインスリン放出、グルコ
ース輸送体の発現、及びグルコキナーゼの高発現が含まれる。以前の報告の全ては、２つ
以上の膵臓ホルモンを産生する内分泌細胞をもたらしている。例えば、Ｄ’Ａｍｏｕｒら
（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ ２００６，２４：１３９２〜１４０１）は、シナプト
フィジンによる測定で１０％までのインスリン陽性細胞及び２０％までの内分泌細胞を含
む細胞集団の生成を報告している。その他の同様の報告（Ｃｅｌｌ Ｒｅｓ ２００９，
１９：４２９〜４３８；Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ ２００７，２５：１９４０〜１９５３；
Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｏｂｅｓ Ｍｅｔａｂ ２００８，１０：１８６〜１９４）もまた、
多能性細胞から非機能的インスリン陽性細胞への分化を示している。実際に、最近の研究
は、重症複合免疫不全（ＳＣＩＤ）マウスにおける多ホルモン細胞の移植が、機能的β細
胞の生成をもたらさなかったことを明確に示した（Ｄｉａｂｅｔｅｓ ２０１１，６０：
２３９〜２４７；Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ ２０１１，２９：７５０〜７５６）。
ヒト胎児の膵臓では内分泌細胞の一部（１０〜２０％まで）が多ホルモン細胞であるが、
多ホルモン細胞は成人のヒトの膵臓では消失している（Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ Ｃｅｌｌ
Ｂｉｏｌ １９９９，１１２：１４７〜１５３；Ｊ Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ Ｃｙｔｏｃｈ
ｅｍ ２００９，５７：８１１〜８２４）。

再生医療の急成長分野が成熟し続けるにつれて、最終分化した、適切に調節された膵内
分泌細胞の形成のための方法が強く望まれている。適切でありかつ定義された培養条件の
操作、及び様々な経路の活性剤／阻害剤の添加の正確なタイミングを用いて、ヒト胚性幹
細胞をインビトロで機能的膵臓β細胞に分化させることができることが、本明細書で実証
される。具体的には、ＢＭＰ阻害の正確なタイミング、ビタミンＣの使用とともにレチノ
イン酸の勾配を用いることが、単一ホルモンの膵内分泌細胞の生成に有効であることが証
明された。

本発明は、多能性細胞の段階的分化によってインビトロで得られる膵臓内胚葉系統（pa
ncreatic endoderm lineage）の細胞の集団を提供する。分化の各工程で使用する培地に
は、グルコースを追補する。いくつかの実施形態では、分化の各工程で、５ｍＭ〜２０ｍ
Ｍのグルコースを含む培地中で細胞を培養する。

いくつかの実施形態では、多能性幹細胞の分化が生成する膵臓内胚葉細胞集団において
、分化集団の細胞の１０％超が、単一ホルモンの膵臓β細胞に特徴的なマーカーを発現す
る。

いくつかの実施形態では、多能性幹細胞の分化が生成する膵臓内胚葉細胞集団において
、分化集団の３０％超が、ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１の発現について陽性であるが、Ｃ
ＤＸ２及びＳＯＸ２の発現については陰性である。

いくつかの実施形態では、段階的分化は、ＴＧＦ−Ｂリガンドを更に追補した培地中で
未分化ヒト胚性幹細胞を培養する工程を含む。いくつかの実施形態では、段階的分化は、
ＷＮＴ活性化剤を更に追補した培地中で未分化ヒト胚性幹細胞を培養する工程を含む。い
くつかの実施形態では、段階的分化は、ＦＧＦリガンドを更に追補した培地中で胚体内胚
葉細胞を培養する工程を含む。いくつかの実施形態では、段階的分化は、ｓｈｈ阻害剤、
ＦＧＦリガンド、ＰＫＣ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤
の勾配を更に追補した培地中で腸管細胞を培養する工程を含む。いくつかの実施形態では
、段階的分化は、ＰＫＣ活性化剤、ｓｈｈ阻害剤、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤を更に
追補した培地中で後方前腸細胞（posterior foregut cell）を培養する工程を含む。いく
つかの実施形態では、段階的分化は、アスコルビン酸を更に追補した培地中で細胞を培養
する工程を含む。

一実施形態において、本発明は、５ｍＭ〜２０ｍＭのグルコースを含む培地中での分化
の各段階で細胞を培養する工程を含む、多能性細胞を膵臓内胚葉系統の細胞集団に段階的
に分化するためのインビトロの方法を提供する。いくつかの実施形態では、多能性細胞の
段階的分化のためのインビトロの方法は、更に、ＴＧＦ−Ｂリガンド及びＷＮＴ活性化剤
を追補した培地中で多能性細胞を培養することによって多能性細胞を胚体内胚葉（ＤＥ）
細胞に分化する工程を含む。いくつかの実施形態では、多能性細胞の段階的分化のための
インビトロの方法は、更に、ＦＧＦリガンドを追補した培地中でＤＥ細胞を培養すること
によりＤＥ細胞を腸管細胞に分化する工程を含む。いくつかの実施形態では、多能性細胞
の段階的分化のためのインビトロの方法は、更に、ｓｈｈ阻害剤、ＦＧＦリガンド、ＰＫ
Ｃ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤を追補した培地中で腸
管細胞を培養することにより腸管細胞を後方前腸内胚葉細胞に分化する工程を含む。いく
つかの実施形態では、多能性細胞の段階的分化のためのインビトロの方法は、更に、ｓｈ
ｈ阻害剤、ＦＧＦリガンド、ＰＫＣ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、レチノイド、及びＢ
ＭＰ阻害剤を追補した培地中で腸管細胞を培養することにより腸管細胞を後方前腸内胚葉
細胞に分化する工程を含む。いくつかの実施形態では、多能性細胞の段階的分化のための
インビトロの方法は、更に、ＰＫＣ活性化剤、ｓｈｈ阻害剤、レチノイド、及びＢＭＰ阻
害剤を追補した培地中で後方前腸内胚葉細胞を培養することにより後方前腸内胚葉細胞を
膵臓前腸細胞に分化する工程を含む。いくつかの実施形態では、多能性細胞の段階的分化
のためのインビトロの方法は、更に、ｓｈｈ阻害剤、ＴＧＦ−Ｂ阻害剤、及びレチノイド
を追補した培地中で膵臓前腸細胞を培養することにより膵臓前腸細胞を膵臓内胚葉細胞に
分化する工程を含む。いくつかの実施形態では、多能性細胞の段階的分化のためのインビ
トロの方法は、更に、膵臓内胚葉細胞を膵臓β細胞集団に分化する工程を含む。

一実施形態では、多能性細胞の段階的分化のためのインビトロの方法の少なくとも一工
程において、培地には更にアスコルビン酸が追補される。いくつかの実施形態では、分化
集団の細胞の１０％超が、単一ホルモンのインスリン陽性細胞である。いくつかの実施形
態では、本発明の方法によって生成された培養物中の膵臓内胚葉細胞の３０％超は、ＰＤ
Ｘ−１＋、ＮＫＸ６．１＋、ＳＯＸ２−、及びＣＤＸ２−である。

一実施形態において、本発明は、ヒト胚性幹細胞を膵臓β細胞に分化するためのインビ
トロの方法に関し、この方法は、ａ）胚体内胚葉（ＤＥ）の集団を生成するために、グル
コース、ＴＧＦ−Ｂリガンド及びＷＮＴ活性化剤を追補した培地中で未分化ヒト胚性幹細
胞を培養する工程、ｂ）腸管細胞の集団を生成するためにグルコース及びＦＧＦリガンド
を追補した培地中でＤＥ細胞を培養する工程、ｃ）ＰＤＸ−１及びＳＯＸ２を発現する後
方前腸内胚葉細胞の集団を生成するために、グルコース、ｓｈｈ阻害剤、ＦＧＦリガンド
、ＰＫＣ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、レチノイド及びＢＭＰ阻害剤の勾配を追補した
倍地中で腸管細胞を培養する工程、ｄ）ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１を発現する膵臓前腸
細胞の集団を生成するために、グルコース、ＰＫＣ活性化剤、ｓｈｈ阻害剤、レチノイド
及びＢＭＰ阻害剤を追補した倍地中で後方前腸細胞を培養する工程、ｅ）ＰＤＸ−１及び
膵臓前腸細胞と比較してより高いレベルのＮＫＸ６．１並びにより低いレベルのＳＯＸ２
を発現する膵臓内胚葉細胞の集団を得るために、グルコース、ｓｈｈ阻害剤、ＴＧＦ−Ｂ
阻害剤及びレチノイドを追補した倍地中で膵臓前腸細胞を培養する工程、及びｆ）膵臓内
胚葉細胞を膵臓β細胞集団に分化する工程を含む。いくつかの実施形態では、本発明の方
法により生成される膵臓β細胞集団は、ＰＤＸ−１＋、ＮＫＸ６．１＋、ＳＯＸ２−、及
びＣＤＸ２−である。いくつかの実施形態では、段階的分化方法の少なくとも一工程にお
いて、培地に更にアスコルビン酸を追補する。いくつかの実施形態では、本発明の方法に
より得られる膵臓β細胞は、単一ホルモンのインスリン産生細胞であり、ＮＫＸ６．１＋
及びＰＤＸ−１＋でもある。

実施例１に従って分化された細胞におけるアイソタイプコントロールのマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化された細胞におけるクロモグラニンのマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化された細胞におけるＫＩ−６７のマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化された細胞におけるＮＫＸ６．１のマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化された細胞におけるＳＯＸ２のマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化された細胞におけるＣＤＸ２のマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化された細胞におけるＰＤＸ−１のマーカーのＳ３の２日目のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ４の２日目に収穫した細胞におけるＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞におけるＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の７日目に収穫した細胞のＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞のクロモグラニン（ｙ軸）及びＣＤＸ２（ｘ軸）のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各プロットの共発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞のクロモグラニン（ｙ軸）及びＳＯＸ２（ｘ軸）のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各プロットの共発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化され、Ｓ５の２日目に収穫した細胞のクロモグラニン（ｙ軸）及びＮＫＸ６．１（ｘ軸）のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各プロットの共発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤ１４２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＦＯＸＥ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＨＮＦ４−アルファの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ２．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ２．２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＯＳＲ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ−１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＲＯＸ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＴＦ１ａの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ１７の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるイヌリンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＺＩＣ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるグルカゴンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｇｎ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４及びＳ５で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるソマトスタチンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるＰＤＸ−１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるアルブミンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例２に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、又はＳ４の３日目に収穫したＨ１細胞株の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるＮＫＸ６．１のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるＰＤＸ−１のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるＮＧＮ３のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるＮｅｕｒｏＤのマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるクロモグラニンのマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるＣＤＸ２のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例３に従って分化し、Ｓ２、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５で収穫したＨ１細胞におけるＳＯＸ２のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるＮＫＸ６．１のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるＰＤＸ−１のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるクロモグラニンのマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるＮＧＮ３のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるＮｅｕｒｏＤのマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるＣＤＸ２のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるアルブミンのマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例４に従って分化し、Ｓ３及びＳ４の４日目に収穫したＨ１細胞におけるＳＯＸ２のマーカーの発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ−１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるアルブミンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例５に従って分化し、第４段階で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ−１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるアルブミンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例６に従って分化し、Ｓ３又はＳ６の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ−１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例７に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、又はＳ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ−１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例８に従って分化し、Ｓ３、Ｓ４、Ｓ５、又はＳ６で収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のＨＮＦ３ＢのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ３の４日目のＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の２日目のＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目のアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目のＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目のクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目のＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目のＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目のＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＨＨｅｘの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＦＯＸＥ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＩＰＦ１（ＰＤＸ−１）の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ２．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ２．２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＲＯＸ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例９に従って分化し、Ｓ１Ｄ３、Ｓ２Ｄ３、Ｓ３Ｄ４、Ｓ４Ｄ２、及びＳ４Ｄ４に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＳＯＸ９の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ３の３日目のＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のアイソタイプコントロールのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のＮＫＸ６．１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のクロモグラニンのマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のＳＯＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のＣＤＸ２のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のＫＩ−６７のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目のＰＤＸ−１のマーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるソマトスタチンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰａｘ６の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰａｘ４の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるグルカゴンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるインスリンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるソマトスタチンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰａｘ６の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰａｘ４の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＧＮ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるインスリンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるグルカゴンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１２に従って分化し、Ｓ４の２日目、Ｓ５の２日目、及びＳ５の９日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるクロモグラニンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰａｘ４の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰａｘ６の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＤＸ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＰＴＦ１ａの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるグルカゴンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるインスリンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮｅｕｒｏＤの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるｎｇｎ３の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＺｉｃ１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＣＤＸ２の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるアルブミンの遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。 実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけるＮＫＸ６．１の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。

開示を分かりやすくするため、限定を目的とすることなく、「発明を実施するための形
態」を本発明の特定の特徴、実施形態、又は用途を、説明又は例示する下記の小項目に分
割する。

定義
幹細胞は、単一細胞レベルでの自己再生能及び分化能の両方によって定義される未分化
細胞である。幹細胞は、自己再生前駆細胞、非再生性前駆細胞、及び最終分化細胞を含む
子孫細胞を生成することができる。幹細胞はまた、複数の胚葉（内胚葉、中胚葉及び外胚
葉）から様々な細胞系統の機能性細胞へとインビトロで分化する能力を特徴とする。幹細
胞はまた、移植後に複数の胚葉の組織を生じさせ、胚盤胞に注入後、実質的に（全てでは
ないとしても）ほとんどの組織に寄与する。

幹細胞は、発生能によって、（１）全胚及び胚体外細胞型を生じる能力を意味する全能
性、（２）全胚細胞型を生じる能力を意味する多能性、（３）細胞系統の小集合を生じる
が、すべて特定の組織、器官、又は生理学的システム内で生じる能力を意味する複能性（
例えば、造血幹細胞（ＨＳＣ）は、ＨＳＣ（自己再生）、血液細胞に限定された寡能性前
駆細胞、並びに血液の通常の構成要素である全細胞型及び要素（例えば、血小板）を含む
後代を産生できる）、（４）複能性幹細胞と比較して、より限定された細胞系統の小集合
を生じる能力を意味する寡能性、並びに（５）１つの細胞系統（例えば、***形成幹細胞
）を生じる能力を意味する単能性に分類される。

分化は、特殊化されていない（「中立の」）又は比較特殊化されていない細胞が、例え
ば、神経細胞又は筋細胞などの特殊化された細胞の特徴を獲得するプロセスである。「分
化した細胞」又は「分化誘導された細胞」とは、細胞の系統内でより特殊化した（「コミ
ットした」）状況にある細胞である。分化プロセスに適用された際の用語「コミットした
」は、通常の環境下で特定の細胞型又は細胞型の小集合への分化を続け、かつ通常の環境
下で異なる細胞型に分化したり、又は低分化細胞型に戻ったりすることができない地点ま
で、分化経路において進行した細胞を指す。「脱分化」は、細胞が細胞系統内で比較的特
殊化されて（又は拘束されて）いない状況に戻るプロセスを指す。本明細書で使用される
場合、細胞系統は、細胞の遺伝、すなわちその細胞がどの細胞から来たか、またどの細胞
を生じ得るかを規定する。ある細胞の系統とは、所定の発生及び分化の遺伝体系内にその
細胞を位置付けるものである。系統特異的マーカーとは、対象とする系統の細胞の表現型
と特異的に関連した特徴を指し、分化決定されていない細胞の、対象とする系統への分化
を評価するために使用することができる。

本明細書で言うところの「マーカー」とは、対象とする細胞で差異的に発現される核酸
又はポリペプチド分子である。この文脈において、差異的な発現は、陽性マーカーのレベ
ルの増大及び陰性マーカーのレベルの減少を意味する。マーカー核酸又はポリペプチドの
検出可能なレベルは、他の細胞と比較して対象とする細胞において充分に高いか又は低い
ことから、当該技術分野において知られる各種の方法のいずれを用いても対象とする細胞
を他の細胞から識別及び区別することが可能である。

本明細書で使用する細胞は、特異的マーカーが細胞内で検出されたとき、特異的マーカ
ー「について陽性」又は「陽性」である。同様に、細胞は、特異的マーカーが細胞内で検
出されないとき、特異的マーカー「について陰性」又は「陰性」である。

本明細書で使用する「ステージ１」及び「Ｓ１」は、胚体内胚葉（ＤＥ）に特徴的なマ
ーカーを発現する細胞を同定するために互換的に使用される。

本明細書で使用するとき、「胚体内胚葉」は、原腸形成中、胚盤葉上層から生じ、胃腸
管及びその誘導体を形成する細胞の特徴を有する細胞を指す。胚体内胚葉細胞は、以下の
マーカーの少なくとも１つを発現する：ＨＮＦ３β、ＧＡＴＡ４、ＳＯＸ１７、ＣＸＣＲ
４、ケルベロス、ＯＴＸ２、グースコイド、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＭＩＸＬ１。

本明細書で使用するとき、「腸管」は、以下のマーカーのうちの少なくとも一つを発現
する胚体内胚葉に由来する細胞を指す：ＨＮＦ３−β、ＨＮＦ１−β、又はＨＮＦ４−α
。腸管細胞は、肺、肝臓、膵臓、胃、及び腸などの全ての内胚葉臓器を生じさせ得る。

本明細書で使用するとき、原腸管に特徴的なマーカーを発現する細胞を特定する「ステ
ージ２」及び「Ｓ２」は互換的に使用される。

「前腸内胚葉」とは、食道、肺、胃、肝臓、膵臓、胆嚢、及び十二指腸の一部を生じさ
せる内胚葉細胞を指す。

「後方前腸」は、後方胃、膵臓、肝臓、及び十二指腸の一部を生じさせることができる
内胚葉細胞を指す。

「中腸内胚葉」は、腸、十二指腸の一部、虫垂、及び上行結腸を生じさせることができ
る内胚葉細胞を指す。

「後腸内胚葉」は、横行結腸の遠位３分の１、下行結腸、Ｓ状結腸、及び直腸を生じさ
せることができる内胚葉細胞を指す。

「ステージ３」及び「Ｓ３」の双方は、前腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現する細胞
を特定するために互換的に使用される。「前腸系統に特徴的なマーカーを発現する細胞」
は、本明細書で使用するとき、以下のマーカーの少なくとも１つを発現する細胞を指す：
ＰＤＸ−１、ＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＳＯＸ２、及びＨＮＦ４ α。

「ステージ４」及び「Ｓ４」は、膵臓前腸前駆細胞に特徴的なマーカーを発現する細胞
を特定するために互換的に使用される。本明細書で使用するとき、「膵臓前腸前駆細胞系
統に特徴的なマーカーを発現する細胞」は、以下のマーカーの少なくとも１つを発現する
細胞を指す：ＰＤＸ−１、ＮＫＸ６．１、ＨＮＦ６、ＦＯＸＡ２、ＰＴＦ１ａ、Ｐｒｏｘ
１、及びＨＮＦ４ α。

本明細書で使用するとき、「ステージ５」及び「Ｓ５」は、膵臓内胚葉及び膵内分泌前
駆細胞に特徴的なマーカーを発現する細胞を特定するために互換的に使用される。本明細
書で使用するとき、「膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞」は、以下のマ
ーカーの少なくとも１つを発現する細胞を指す：ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＨＮＦ１ β
、ＰＴＦ１ α、ＨＮＦ６、ＨＮＦ４ α、ＳＯＸ９、ＨＢ９、又はＰＲＯＸ１。膵臓内
胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞は、ＣＤＸ２又はＳＯＸ２を実質的に発現し
ない。

本明細書で使用するとき、「ステージ６」及び「Ｓ６」は、膵内分泌細胞が濃縮された
細胞を特定するために互換的に使用される。

本明細書で使用するとき、「膵内分泌細胞」又は「膵臓ホルモン発現細胞」又は「膵内
分泌系統に特徴的なマーカーを発現する細胞」とは、以下のホルモンの少なくとも１つを
発現することが可能な細胞を指す：インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、及び膵臓
ポリペプチド。

「膵内分泌前駆細胞」又は「膵内分泌前駆細胞」は、細胞を発現する膵臓ホルモンにな
り得る膵臓内胚葉細胞を指す。そのような細胞は、以下のマーカーの少なくとも１つを発
現し得る：ＮＧＮ３、ＮＫＸ２．２、ＮｅｕｒｏＤ、ＩＳＬ−１、Ｐａｘ４、Ｐａｘ６、
又はＡＲＸ。

本明細書で使用する「機能的膵臓β細胞」は、グルコース応答性でありかつＰＤＸ−１
及びＮＫＸ６．１について陽性となり得る単一ホルモンのインスリン陽性細胞を指す。

本明細書では、「ｄ１」、「ｄ １」、及び「１日目」、「ｄ２」、「ｄ ２」、及び
「２日目」、「ｄ３」、「ｄ ３」及び「３日目」等は互換的に使用される。これらの数
字の組み合わせは、本願の段階的分化プロトコル中の異なるステージにおけるインキュベ
ーションの日を特定する。

「アスコルビン酸」及び「ビタミンＣ」は、本明細書で互換的に使用され、ヒト及び他
の動物種のための必須栄養素に関する。

「グルコース」及び「Ｄ−グルコース」は、本明細書で互換的に使用され、天然に一般
に見出される糖、デキストロースを指す。

特定のマーカーについて「陽性」又はマーカー「＋」（すなわちＰＤＸ−１＋）の細胞
は、その特定のマーカーが検出され得る細胞である。特定のマーカーについて「陰性」又
はマーカー「−」（すなわちＮＫＸ６．１−）の細胞は、本明細書において教示される方
法によってそのマーカーが検出されない細胞である。

本願では、「クロモグラニン」及び「ＣＨＧＮ」は、酸性の分泌糖タンパク質クロモグ
ラニンをコードする遺伝子を特定するために互換的に使用される。

膵内分泌前駆細胞において発現されるタンパク質及びそれをコードする遺伝子を特定す
る「ＮｅｕｒｏＤ」及び「ＮｅｕｒｏＤ１」は、本明細書で互換的に使用される。

「ＬＤＮ」及び「ＬＤＮ−１９３１８９」は本明細書で互換的に使用され、米国カリフォルニア州のＳｔｅｍｇｅｎｔから入手可能なＢＭＰ受容体阻害剤を示す。

多能性幹細胞の単離、増殖及び培養
多能性幹細胞は、ステージ特異的胚抗原（ＳＳＥＡ）３及び４、並びにＴｒａ−１−６
０及びＴｒａ−１−８１と呼ばれる抗体によって検出可能なマーカーのうちの１つ以上を
発現している（Ｔｈｏｍｓｏｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８２：１１４５，１９９８）。イ
ンビトロでの多能性幹細胞の分化は、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ−１−６０、及びＴｒａ−１
−８１の発現の消失をもたらす。未分化多能性幹細胞は、一般にアルカリホスファターゼ
活性を有し、これは、製造業者（米国カリフォルニア州Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏ
ｒｉｅｓ）により説明されているように、細胞を４％パラホルムアルデヒドで固定した後
、基質としてＶｅｃｔｏｒ Ｒｅｄを使用して現像することにより検出することができる
。未分化の多能性幹細胞はまた、ＲＴ−ＰＣＲにより検出されるように、一般にＯＣＴ４
及びＴＥＲＴも発現する。

増殖させた多能性幹細胞の別の望ましい表現型は、３つの胚葉のすべて、すなわち、内
胚葉、中胚葉、及び外胚葉組織の細胞に分化する能力である。幹細胞の多能性は、例えば
細胞をＳＣＩＤマウスに注入し、４％パラホルムアルデヒドを使用して、形成された奇形
腫を固定した後、それらを３つの胚葉からの細胞型の痕跡に関して組織学的に検査するこ
とにより確認することができる。代替的に、多能性は、胚様体を形成し、この胚様体を３
つの胚葉に関連したマーカーの存在に関して評価することにより決定することができる。

増殖させた多能性幹細胞株は、標準的なＧバンド法を使用し、対応する霊長類種の発表
されている核型と比較することで、核型を決定することができる。細胞は「正常な核型」
を有することが望ましく、「正常な核型」とは、細胞が正倍数体であり、ヒト染色体がす
べて揃っておりかつ目立った変化のないことを意味する。多能性細胞は、様々なフィーダ
ー層を用いて、又はマトリックスタンパク質被覆した容器を用いて、容易に培養で増殖さ
せることができる。あるいは、ｍＴｅｓｒ（商標）１培地（カナダ、Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ
のＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）のような定義された培地と組み合わせ
た化学的に定義された表面を、細胞のルーチン増殖に用いてもよい。多能性細胞は、酵素
で、若しくは機械的に、又はＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸）など様々なカルシウム
キレート剤を用いて、培養プレートから容易に取り出すことができる。あるいは、多能性
細胞は、マトリックスタンパク質又はフィーダー層の非存在下で、懸濁液中で増殖させて
もよい。

多能性幹細胞の供給源
使用が可能な多能性幹細胞の種類としては、妊娠期間中の任意の時期（必ずしもではな
いが、通常は妊娠約１０〜１２週よりも前）に採取した前胚性組織（例えば胚盤胞など）
、胚性組織又は胎児組織などの、妊娠後に形成される組織に由来する多能性細胞の樹立株
が含まれる。非限定的な例は、ヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣｓ）又はヒト胚生殖細胞の樹立
株であり、例えば、ヒト胚性幹細胞株Ｈ１、Ｈ７、及びＨ９（米国ウィスコンシン州Ｍａ
ｄｉｓｏｎのＷｉＣｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）などである。フィ
ーダー細胞の不在下で既に培養された多能性幹細胞集団から採取した細胞も好適である。
また、ＯＣＴ４、Ｎａｎｏｇ、Ｓｏｘ２、ＫＬＦ４、及びＺＦＰ４２など多数の多能性に
関係する転写因子の強制発現を用いて、成体体細胞から誘導することができる誘導性多能
性細胞（ＩＰＳ）又は再プログラム化された多能性細胞も好適である（Ａｎｎｕ Ｒｅｖ
Ｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｈｕｍ Ｇｅｎｅｔ，２０１１，１２：１６５〜１８５）。本発明
の方法に使用されるヒト胚性幹細胞は、Ｔｈｏｍｓｏｎらによって記述されたように調製
してもよい（米国特許第５，８４３，７８０号；Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９８，２８２：１
１４５；Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．，１９９８，３８：１３３；Ｐｒｏｃ．
Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，１９９５：９２：７８４４）。

多能性幹細胞からの、膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞の形成
多能性幹細胞の特徴は当業者に周知であり、多能性幹細胞の更なる特徴は、継続して同
定されている。多能性幹細胞のマーカーとして、例えば、以下のもの、すなわち、ＡＢＣ
Ｇ２、ｃｒｉｐｔｏ、ＦＯＸＤ３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４５、ＯＣ
Ｔ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮＯＧ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ１、ＺＦＰ４２、ＳＳＥＡ−３、ＳＳ
ＥＡ−４、Ｔｒａ １−６０、Ｔｒａ １−８１の１つ以上の発現が挙げられる。

本発明で用いるのに好適な多能性幹細胞としては、例えば、ヒト胚性幹細胞株Ｈ９（Ｎ
ＩＨコード：ＷＡ０９）、ヒト胚性幹細胞株Ｈ１（ＮＩＨコード：ＷＡ０１）、ヒト胚性
幹細胞株Ｈ７（ＮＩＨコード：ＷＡ０７）、及びヒト胚性幹細胞株ＳＡ００２（Ｃｅｌｌ
ａｒｔｉｓ，Ｓｗｅｄｅｎ）が挙げられる。多能性細胞に特徴的な以下のマーカー、すな
わち、ＡＢＣＧ２、ｃｒｉｐｔｏ、ＣＤ９、ＦＯＸＤ３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４３、ＣＯＮ
ＮＥＸＩＮ４５、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮＯＧ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ１、ＺＦＰ４２
、ＳＳＥＡ−３、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ １−６０、及びＴｒａ １−８１のうちの少な
くとも１つを発現する細胞も本発明で用いるのに好適である。

胚体内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＳＯＸ１７、ＧＡＴＡ４、ＨＮＦ３ β、ＧＳＣ
、ＣＥＲ１、Ｎｏｄａｌ、ＦＧＦ８、短尾奇形、Ｍｉｘ様ホメオボックスタンパク質、Ｆ
ＧＦ４、ＣＤ４８、エオメソダーミン（ＥＯＭＥＳ）、ＤＫＫ４、ＦＧＦ１７、ＧＡＴＡ
６、ＣＸＣＲ４、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＯＴＸ２からなる群から選択される。胚体
内胚葉系に特徴的なマーカーのうちの少なくとも１つを発現している細胞は本発明での使
用に好適である。本発明の一態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、原始線条前駆細胞である。別の態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発
現している細胞は、中内胚葉細胞である。別の態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカ
ーを発現している細胞は、胚体内胚葉細胞である。

膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＨＮＦ１ β、ＰＴＦ
１ α、ＨＮＦ６、ＨＮＦ４ α、ＳＯＸ９、ＨＢ９、及びＰＲＯＸ１からなる群から選
択される。膵臓内胚葉系に特徴的なこれらのマーカーのうちの少なくとも１つを発現する
細胞が本発明における使用に適している。本発明の一態様では、膵臓内胚葉系統に特徴的
なマーカーを発現する細胞は、膵臓内胚葉細胞であり、ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１の発
現はＣＤＸ２及びＳＯＸ２の発現より実質的に高い。

膵内分泌系統に特徴的なマーカーは、ＮＧＮ３、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＰＤＸ１、
ＮＫＸ６．１、ＰＡＸ４、ＡＲＸ、ＮＫＸ２．２、及びＰＡＸ６からなる群から選択され
る。一実施形態では、膵内分泌細胞は、以下のホルモン、すなわち、インスリン、グルカ
ゴン、ソマトスタチン、及び膵臓ポリペプチドのうちの少なくとも１つを発現することが
できる。本発明で使用するに好適なものは、膵内分泌系統の特徴を示すマーカーを少なく
とも１つ発現する細胞である。本発明の一態様において、膵内分泌系統に特徴的なマーカ
ーを発現している細胞は、膵内分泌細胞である。膵内分泌細胞は、膵臓ホルモン発現細胞
であってよい。あるいは、膵内分泌細胞は膵臓ホルモン分泌細胞であってもよい。

本発明の一態様では、膵内分泌細胞は、β細胞系統に特徴的なマーカーを発現している
細胞である。β細胞系統に特徴的なマーカーを発現する細胞は、ＰＤＸ１と、以下の転写
因子、すなわち、ＮＫＸ２．２、ＮＫＸ６．１、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＨＮＦ３ β
、ＭＡＦＡ、ＰＡＸ４、及びＰＡＸ６のうちの少なくとも１つを発現する。本発明の一態
様では、β細胞系統に特徴的なマーカーを発現している細胞は、β細胞である。

本発明は、ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１陽性でもある単一ホルモンのインスリン陽性細
胞を生成し得るインビトロの方法及び細胞集団を説明する。本発明で使用される方法は、
以下の中間ステージを経てヒト多能性細胞から単一ホルモンの細胞への分化を段階的に導
く一連のステージを含む。
ａ）グルコース、ＴＧＦ−Ｂリガンド、及びＷＮＴ活性化剤を含む培地中で多能性細胞
を培養する工程を含む、未分化ヒト胚性幹細胞からの胚体内胚葉（ＤＥ）細胞の生成。
ｂ）グルコース、ビタミンＣ、及びＦＧＦリガンドを含む培地中でＤＥ細胞を培養する
工程を含む、腸管細胞へのＤＥ細胞の分化。
ｃ）ＰＤＸ−１及びＳＯＸ２を発現する後方前腸内胚葉細胞への腸管細胞の分化。この
分化は、ｓｈｈ阻害剤、ＢＭＰ阻害剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、ＦＧＦリガンド、レチノイ
ン酸、ビタミンＣ、及びＰＫＣ活性化剤の存在下で腸管細胞を培養することによって達成
される。
ｄ）後方前腸細胞を、ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１を発現し、かつ後方前腸細胞と比較
して低いレベルのＳＯＸ２を発現する膵臓前腸細胞に分化する工程。この分化は、ｓｈｈ
阻害剤、ＢＭＰ阻害剤、低用量のレチノイン酸、ビタミンＣ、及びＰＫＣ活性化剤の存在
下で後方前腸細胞を培養することによって達成される。
ｅ）膵臓前腸細胞を、ＰＤＸ−１及び、膵臓前腸細胞と比較して高いレベルのＮＫＸ６
．１並びに低いレベルのＳＯＸ２を発現する膵臓内胚葉細胞に分化する工程。この分化は
、ｓｈｈ阻害剤、ＴＧＦ−Ｂ阻害剤、低用量のレチノイン酸、及びビタミンＣを追補した
倍地中で膵臓前腸細胞を培養することにより達成される。
ｆ）膵臓内胚葉細胞を、膵内分泌前駆細胞に分化し、続いて、単一ホルモンの膵内分泌
細胞に分化する工程。この分化は、ｓｈｈ阻害剤、低用量のレチノイン酸、及びビタミン
Ｃを追補した倍地中で膵臓内胚葉細胞を培養することにより達成される。

一実施形態では、段階的分化の全ステージにおいて、細胞は、２５ｍＭ未満のグルコー
スを含有する培地製剤において培養される。いくつかの実施形態では、グルコース濃度は
、約８ｍＭ〜約２０ｍＭのグルコースの範囲内である。

いくつかの実施形態では、腸管ステージの細胞を生成するための及びその後の全ての工
程に使用される培地製剤は、アスコルビン酸（ビタミンＣとしても知られる）を含有する
。一実施形態では、アスコルビン酸の濃度は約０．０１ｍＭ〜約１ｍＭである。一実施形
態では、アスコルビン酸の濃度は約０．１ｍＭ〜約０．５ｍＭである。

本発明を以下の実施例によって更に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定さ
れるものではない。

（実施例１）
ウシ胎児血清の非存在下での、膵内分泌前駆細胞への細胞株Ｈ１のヒト胚性幹細胞の分
化−ＢＭＰ／ＴＧＦ−Ｂ経路の調節は膵臓内胚葉集団の産生の改善及びＳＯＸ２＋集団の
百分率の低下をもたらす。
この実施例は、ＣＤＸ２及びＳＯＸ２の低レベルの発現を有する一方でＰＤＸ−１及び
ＮＫＸ６．１の非常に高い発現レベルを有する膵臓内胚葉培養物が生成され得ることを示
すために実施した。

ヒト胚性幹細胞株Ｈ１（ｈＥＳＣ Ｈ１）は、多様な継体（継体４０〜継体５２）で収
穫し、１０μＭのＹ２７６３２（Ｒｏｃｋ阻害剤、カタログ番号Ｙ０５０３、米国ミズー
リ州のＳｉｇｍａＡｌｄｒｉｃｈ）を追補したｍＴｅＳＲ（登録商標）１培地（カナダ、
ＶａｎｃｏｕｖｅｒのＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）において、単一細
胞として、１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（
１：３０希釈、米国ニュージャージー州のＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）で被覆された
皿上に播種した。播種の４８時間後に、培養物を不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａを含まな
いリン酸緩衝生理食塩水）中で約３０秒間洗浄し、インキュベートした。培養物は、以下
のようにして膵内分泌系統に分化させた。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−３日）：ステージ１の培地（０．１％の無脂肪
酸ＢＳＡ（カタログ番号６８７００、米国アイオワ州のＰｒｏｌｉａｎｔ）、０．００１
２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム（カタログ番号Ｓ３１８７、米国ミズーリ州のＳｉｇｍａ
Ａｌｄｒｉｃｈ）、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）（カタログ番号３５０５０−０７９
、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、５ｍＭのＤ−グルコース（カタログ番号Ｇ８７６９、米国ミ
ズーリ州のＳｉｇｍａＡｌｄｒｉｃｈ）が追補された、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８（米
国ミネソタ州Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）及び１μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤、
１４−Ｐｒｏｐ−２−エン−１−イル−３，５，７，１４，１７，２３，２７−ヘプタア
ザテトラシクロ［１９．３．１．１〜２，６〜．１〜８，１２〜］ヘプタコサ−１（２５
），２（２７），３，５，８（２６），９，１１，２１，２３−ノナエン−１６−オン、
米国特許出願第１２／４９４，７８９号、参照によりその全容が本明細書に援用される）
を含有するＭＣＤＢ−１３１培地（カタログ番号１０３７２−０１９、米国カリフォルニ
ア州のＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中で、細胞を１日培養した。次いで、０．１％の無脂肪酸
ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、
５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８、及び１００ｎＭのＭＣＸ化合物
を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地中で細胞を１日培養した。次いで、０．１％の無脂肪酸
ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、
５ｍＭのＤ−グルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１
倍地中で細胞を１日培養した。
ｂ．ステージ２（原腸管−２日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭの
Ｄ−グルコース、及び２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で２日
間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−２日）：ステージ２の細胞を、ステージ３の培地（ＩＴＳ−Ｘ
（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）の１：２００希釈液）、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ Ｇｌ
ｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳ
Ａ、２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ（Ｒ ＆ Ｄ ｓｙｓ
ｔｅｍｓ）、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１（ｓｈｈ阻害剤、ＳｉｇｍａＡｌｄｒｉｃｈ）
、１μＭのレチノイン酸（ＲＡ）（ＳｉｇｍａＡｌｄｒｉｃｈ）、及び２００ｎＭのＴＰ
Ｂ（ＰＫＣ活性化剤、カタログ番号５６５７４０；米国ニュージャージー州のＥＭＤ）を
追補した、１００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９（ＢＭＰ受容体阻害剤；カタログ番号０４
−００１９；米国カリフォルニア州のＳｔｅｍｇｅｎｔ）を含有するＭＣＤＢ−１３１倍
地）中で、１日培養した。次いで、それらの細胞を、１０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を
追補したステージ３の培地中で更に１日培養した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−２日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１ＸのＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５
０ｎＭのＲＡ、２００ｎＭのＴＰＢ、及び５０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を追補したＭ
ＣＤＢ−１３１倍地中で２日培養した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉−２〜７日）：ステージ４の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２
００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１ＸのＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ
／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、及び
５０ｎＭのＲＡを追補したＭＣＤＢ−１３１倍地中で２〜７日培養した。

特定のステージで、リアルタイムＰＣＲ、免疫組織化学、又は蛍光活性化細胞選別（Ｆ
ＡＣＳ）により試料を収集し、解析した。

ＦＡＣＳ解析については、ｈＥＳＣ由来の細胞をＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（カタ
ログ番号１２６０４、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にて３７℃で３〜５分間インキュベートす
ることによって単一細胞懸濁液中に放出した。次いで、細胞を染色緩衝液（０．２％無脂
肪酸ＢＳＡを含有するＰＢＳ）（カタログ番号５５４６５７、米国ニュージャージー州の
ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）において２回洗浄した。細胞内抗体染色については、細
胞を最初にＧｒｅｅｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ＬＩＶＥ／ＤＥＡＤ細胞染料（Ｉｎｖ
ｉｔｒｏｇｅｎカタログ番号Ｌ２３１０１）にて４℃で２０分間インキュベートして、解
析中の生／死の区別を可能にし、次いで、冷たいＰＢＳにて一回洗浄した。細胞を２５０
μＬのＣｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ Ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ
ｓカタログ番号５５４７２２）にて４℃で２０分間固定し、次いで、ＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗ
ａｓｈ Ｂｕｆｆｅｒ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓカタログ番号
５５４７２３）で２回洗浄した。細胞を、（二次抗体の適切な種の）２％正常血清を追補
したＰｅｒｍ／Ｗａｓｈ緩衝液からなる染色／ブロッキング溶液１００μＬ中に再懸濁し
た。次いで、経験的に予め決定した希釈で一次抗体を用いて細胞を４℃で３０分間インキ
ュベートし、次いで、Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ緩衝液にて２回洗浄した。最後に、適切な二次
抗体を用いて細胞を４℃で３０分間インキュベートし、次いで、Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ緩衝
液で２回洗浄してから、ＢＤ ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩで解析した。

以下の希釈の一次抗体を使用した。ウサギ抗インスリン（１：１００；カタログ番号Ｃ
２７Ｃ９、米国マサチューセッツ州のＣｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）、マウス抗インス
リン（１：１００；カタログ番号ａｂ６９９９、米国マサチューセッツ州のＡｂｃａｍ）
、マウス抗グルカゴン（１：１２５０；カタログ番号Ｇ２６５４；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒ
ｉｃｈ）、ウサギ抗シナプトフィジン（１：１００；カタログ番号Ａ００１０、米国カリ
フォルニア州のＤａｋｏ）、ウサギ抗クロモグラニンＡ（１：８００；Ｄａｋｏ）、マウ
ス抗ＮＫＸ６．１（１：５０；ＤＳＨＢ、米国アイオワ州のＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ
Ｉｏｗａ）、マウス抗ＣＤＸ２（１：２５０；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ヤギ抗Ｎｅｕ
ｒｏＤ（１：５００；Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、マウス抗ＳＯＸ２（米国カリフォルニ
ア州のＢＤ）、マウス抗ＮＫＸ２．２（ＤＳＨＢ）、マウス抗Ｐａｘ６（米国カリフォル
ニア州のＢＤ）、マウス抗ＰＤＸ−１（米国カリフォルニア州のＢＤ）。以下の希釈で二
次抗体を使用した。ヤギ抗マウスＡｌｅｘａ ６４７（１：５００；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅ
ｎ）、ヤギ抗ウサギＰＥ（１：２００；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ロバ抗ヤギ（１：８０
０；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）。二次抗体を添加後に、試料を４℃で３０分間インキュベー
トし、次いで、Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ緩衝液にて最終洗浄した。ＢＤ ＦＡＣＳ Ｄｉｖａ
ソフトウェアを使用して細胞をＢＤ ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩで解析し、少なくとも
３０，０００イベントを獲得した。

図１Ａ〜図１Ｇは、実施例１に従って分化し、Ｓ３の２日目に解析した細胞のアイソタ
イプコントロール（図１Ａ）、クロモグラニン（図１Ｂ）、ＫＩ−６７（図１Ｃ）、ＮＫ
Ｘ６．１（図１Ｄ）、ＳＯＸ２（図１Ｅ）、ＣＤＸ２（図１Ｆ）、ＰＤＸ−１（図１Ｇ）
のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを図示する。各マーカーの発現百分率を各ヒス
トグラムに示す。ステージ３の２日目に、細胞の９５％以上がＰＤＸ−１（図１Ｇ）の発
現について陽性であり、集団の細胞の約６０％がＳＯＸ２（図１Ｅ）の発現について陽性
であったが、ＣＤＸ２（図１Ｆ）若しくはＮＫＸ６．１（図１Ｄ）、又はクロモグラニン
（図１Ｂ）について陽性であったのは細胞の１０％未満であった。ＫＩ−６７陽性細胞の
百分率の高さによって示されているように、ステージ３では、有意な百分率の細胞が活性
細胞周期にあった（図１Ｃ）。

図２Ａ〜図２Ｇは、実施例１に従って分化し、Ｓ４の２日目に収穫した細胞の、ＦＡＣ
Ｓ染色により決定したアイソタイプコントロール（図２Ａ）、クロモグラニン（図２Ｂ）
、ＫＩ−６７（図２Ｃ）、ＮＫＸ６．１（図２Ｄ）、ＳＯＸ２（図２Ｅ）、ＣＤＸ２（図
２Ｆ）、ＰＤＸ−１（図２Ｇ）の発現プロファイルを図示する。各マーカーの発現百分率
を各ヒストグラムに示す。ステージ３と同様に、細胞の９５％以上がＰＤＸ−１（図２Ｇ
）の発現について陽性であったが、ＣＤＸ２の発現（図２Ｆ）については細胞の約１０％
が陽性であり、ＮＫＸ６．１の発現（図２Ｄ）については細胞の約４０％が陽性であった
。ＳＯＸ２の発現（図２Ｅ）については細胞の約４５％が陽性であり、これはＳ３より６
０％低い。クロモグラニンの発現は約３％であった（図２Ｂ）。ＫＩ−６７陽性細胞（図
２Ｃ）の百分率の高さによって示されているように、ステージ４では、有意な百分率の細
胞が活性細胞周期にあった。

図３Ａ〜図３Ｇは、本実施例に概略を記載した分化プロトコルに続いて、ステージ５の
２日目に収穫した細胞のＦＡＣＳ解析により決定した相対発現プロファイルを図示する。
図３Ａ：アイソタイプコントロール；図３Ｂ：クロモグラニン；図３Ｃ：ＫＩ−６７；図
３Ｄ：ＮＫＸ６．１；図３Ｅ：ＳＯＸ２；図３Ｆ：ＣＤＸ２；図３Ｇ：ＰＤＸ−１。各マ
ーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。ステージ３及び４と同様に、細胞の９５％
以上がＰＤＸ−１の発現について陽性であったが、ＣＤＸ２の発現については細胞の約１
０％が陽性であり、ＮＫＸ６．１の発現については細胞の約６７％以上が陽性であった。
ＳＯＸ２の発現は約５０％であり、ステージ３と比較すると低いが、Ｓ４での発現と同様
であった。

図４Ａ〜図４Ｇは、本実施例に概略を記載したプロトコルに従った分化のステージ５の
７日目に収穫し解析した細胞のＦＡＣＳ染色により測定したときのＰＤＸ−１（図４Ｇ）
、ＮＫＸ６．１（図４Ｄ）、ＣＤＸ２（図４Ｆ）、ＳＯＸ２（図４Ｅ）、Ｋｉ−６７（増
殖マーカー；図４Ｃ）、及びクロモグラニン（膵内分泌腺マーカー；図４Ｂ）の発現を図
示する。ステージ３及び４と同様に、細胞の＞９０％がＰＤＸ−１について陽性であった
が、ＣＤＸ２の発現は１０％未満であり、ＮＫＸ６．１の発現は＞７０％に有意に増加し
、ＳＯＸ２の発現は約２％に劇的に減少した。

更に、ＳＯＸ２、ＣＤＸ２、及びＮＫＸ６．１を発現する細胞の大部分は、クロモグラ
ニンの発現について陰性であった（図５Ａ〜図５Ｃを参照）。したがって、本実施例に概
略を記載したプロトコルに従って調製されたＳ５の培養物がもたらす細胞の集団において
、細胞の少なくとも５０％はＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１を発現するが、ＣＤＸ−２、Ｓ
ＯＸ２、及びクロモグラニンについては陰性である。表Ｉは、Ｓ３〜Ｓ５の様々な内胚葉
マーカーの発現百分率をまとめたものである。

^*分化開始以降の総日数

図６Ａ〜図６Ｔは、本実施例で概説したプロトコルに従って分化したＳ２、Ｓ３、Ｓ４
、及びＳ５の細胞のリアルタイムＰＣＲによって測定し、未分化Ｈ１細胞における発現の
倍数変化として報告したｍＲＮＡ発現プロファイルを図示する。ステージ３で、ＦＯＸｅ
１（図６Ｃ）及びＮＫＸ２．１（図６Ｅ）のような前方前腸マーカーの非常に低い発現が
認められた。しかし、腸管の胃領域をマークするＳＯＸ２（図６Ｍ）及びＯＳＲ１（図６
Ｈ）はステージ３で有意に上方調節され、それらの発現はＳ４〜Ｓ５で低下した。ＰＴＦ
１ａ（図６Ｋ）、ＮＫＸ６．１（図６Ｇ）、及びＰＤＸ−１（図６Ｉ）のような膵臓内胚
葉マーカーは、培養のＳ５の２日目に最大発現レベルに達した。ＰＤＲデータは、細胞が
ステージ３でＰＤＸ−１＋ ＳＯＸ２＋集団を通じた移行を経てからＳ４〜Ｓ５でＰＤＸ
−１＋ ＮＫＸ６．１＋ ＳＯＸ２− ＣＤＸ２−になることを示している（図６Ｉ、図
６Ｇ、図６Ｍ、及び図６Ａを参照）。内分泌マーカー（クロモグラニン、インスリン、グ
ルカゴン、及びソマトステイン）の発現は、Ｓ５の終わりに最大発現レベルに達した。膵
内分泌前駆細胞マーカーＮＫＸ２．２、ＮｅｕｒｏＤ、及びＮＧＮ３の発現は、Ｓ４〜Ｓ
５で最大発現レベルに達した。ＺＩＣ１及びＳＯＸ１７のような他の系統のマーカーの発
現は、Ｓ４〜Ｓ５で低いままであった。

結論として、本実施例で概説したプロトコルに従って分化したステージ５の２日目の細
胞は、ＣＤＸ２及びＳＯＸ２を低レベルで発現する一方で、ＮＫＸ６．１及びＰＤＸ−１
の高い発現レベルを維持する。タイムリーなＢＭＰ阻害、Ｓ４〜Ｓ５での低用量ＲＡの使
用、及びＳ１〜Ｓ２での高グルコースの使用という独特の組み合わせが、実施例１に記載
の細胞集団を結果的にもたらしたと考えられる。

（実施例２）
ＢＭＰの阻害及びＰＫＣ活性化がＳ３〜Ｓ４でＳＯＸ２の発現に与える影響
本実施例で概説したプロトコルは、ＢＭＰの阻害、ＦＧＦ７の添加、及びＰＫＣの活性
化がＳ３〜Ｓ４でのＳＯＸ２の発現に与える影響を明らかにするために行った。

ヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞は、多様な継体（継体４０〜継体５２）で収穫し、１０μ
ＭのＹ２７６３２を追補したｍＴｅｓｒ（登録商標）１培地において、単一細胞として、
１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希
釈）で被覆された皿上に播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分
泌系統の細胞に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−３日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８、１．５μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で
１日処理した。次いで、２日目〜３日目にかけて、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
Ｍのグルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で処
理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−３日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
３日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−３日）：ステージ２の細胞を、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、５
０ｎＭ又は２００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９、及び／又は２００ｎＭのＴＰＢの存在下
若しくは非存在下で、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ Ｇ
ｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸Ｂ
ＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、２０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、２μＭのＲＡを
追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で処理した。下の表ＩＩに記載した組み合わせを用いた培
地にて細胞を３日間インキュベートした。

ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、２
００ｎＭのＴＰＢ、４００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９、２μＭのＡＬｋ５阻害剤（ＳＤ
−２０８、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ２００７，７２：１５２〜
１６１に開示されている）、及び１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤（Ｎ−｛４−［２−エ
チル−１−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾル−１−イル）ブチル］フェニル｝−１，３−
ベンゾチアゾール−２−アミン、ベルギー、Ｊａｎｓｓｅｎ）を追補したＭＣＤＢ−１３
１倍地で３日間処理した。

上記の全ての条件に関し、ｍＲＮＡをＳ２〜Ｓ４で収集し、リアルタイムＰＣＲを用い
て解析した。Ｓ３の対照条件は、ＦＧＦ７、ＡＡ、ＳＡＮＴ、ＲＡ、及び２００ｎＭのＬ
ＤＮ−１９３１８９を上記の工程ｃに記載されている濃度で用いた培養物を指す。図７Ａ
〜図７Ｇに示したＰＣＲデータにより明らかなように、Ｓ３でのＬＤＮ−１９３１８９の
除去は、ＮＧＮ３のような内分泌マーカー（図７Ｄ）及びクロモグラニンのような膵内分
泌マーカー（図７Ｃを参照）の有意な減少をもたらした。Ｓ３でのＰＫＣ活性化剤の添加
及びＬＤＮ−１９３１８９の除去は、内分泌マーカーを更に減少させる一方でＮＫＸ６．
１の発現を高めた（図７Ａ〜図７Ｇを参照）。更に、５０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９の
添加は、内分泌マーカー（クロモグラニン及びＮＧＮ３）の誘導において２００ｎＭのＬ
ＤＮ−１９３１８９に匹敵する有効性を有した。Ｓ３でのＬＤＮ−１９３１８９の除去及
びＴＰＢの添加は、ＣＤＸ２（図７Ｅ）及びアルブミン（図７Ｆ）の発現を高める一方で
ＳＯＸ２（図７Ｇ）の発現を抑制した。更に、ＦＧＦ７及びＬＤＮ−１９３１８９の両方
の除去は、ＬＤＮ−１９３１８９を除去しＦＧＦ７を保持した培養物と比較して、有意に
ＳＯＸ２（図７Ｇ）の発現を高め、アルブミン（図７Ｆ）の発現を低下させた。これらの
データは、ＢＭＰの阻害、ＦＧＦの活性化、及びＰＫＣの活性化の正確な調節が、ＰＤＸ
−１及びＮＫＸ６．１が豊富な一方でＣＤＸ２、ＳＯＸ２及びアルブミンが低い内胚葉ド
メインをもたらし得ることを実証している。最後に、Ｓ３〜Ｓ４でのＢＭＰの持続的な阻
害は、プロ内分泌遺伝子の発現及びＳＯＸ２発現の上方調節を高めた。このことは、膵内
分泌遺伝子を増す一方で、膵臓の発達においては欠如しているか又は低いが胃のような前
方前腸内胚葉臓器に存在するＳＯＸ２の発現を上方調節しないように、ＢＭＰの阻害を正
確に調整する必要があることを裏付けている。

（実施例３）
続いて内分泌マーカーを誘導するには、前腸ステージでのＢＭＰの早期阻害が必要であ
る。
本実施例は、続いて内分泌マーカーを誘導するにはＳ３でＢＭＰシグナル伝達を早期に
阻害する必要があることを示す。しかし、ステージ３でのＢＭＰの持続的な阻害もまた、
ＳＯＸ２の強発現を結果としてもたらす。内分泌マーカーの高発現及びＳＯＸ２の低発現
の両方を得るためには、ＳＸＯ２及びＣＤＸ２の低発現を有する一方でプロ膵内分泌マー
カーを誘導するＢＭＰ阻害の勾配が必要である。

ヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞は、多様な継体（継体４０〜継体５２）で、１０μＭのＹ
２７６３２を追補したｍＴｅｓｒ（商標）１培地において、単一細胞として、１ｃｍ²当
たり細胞１００，０００個の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）で被覆
された皿上に播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細
胞に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−４日）：ＤＥの開始の前に、細胞を洗浄し、不
完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、Ｓ１の培地に
てインキュベートした。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒ
ト胚性幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム
、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬの
ＧＤＦ８、１．５μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１
培地で１日処理した。次いで、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍ
Ｌの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのグルコース、及
び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で２日間（２〜４日目）
処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−３日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
３日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−３日）：ステージ２の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、２０ｎｇ／ｍＬ
のアクチビン−Ａ、２μＭのＲＡ、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、１００ｎＭのＬＤＮ−１
９３１８９（１日目のみ又はステージ３の期間中）、及び２００ｎＭのＴＰＢを追補した
ＭＣＤＢ−１３１倍地で処理した。いくつかの培地では、ＬＤＮ−１９３１８９をステー
ジ３から除去した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、１
００ｎＭのＴＰＢ、２００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９、２μＭのＡＬｋ５阻害剤、及び
１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉／内分泌−４日）：ステージ４の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１
：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１
５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、２００ｎＭのＬＤＮ−１９３１
８９、及び２μＭのＡＬｋ５阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で４日間処理した。

図８Ａ〜図８Ｇに示すＰＣＲの結果により明らかなように、ステージ３からのＬＤＮ−
１９３１８９（ＢＭＰ阻害剤）の除去は、ステージ４及びステージ５でのプロ内分泌遺伝
子ＮＧＮ３（図８Ｃ）、ＮｅｕｒｏＤ（図８Ｄ）、クロモグラニン（図８Ｅ）の発現を止
める。しかし、ＰＤＸ−１（図８Ｂ）及びＮＫＸ６．１（図８Ａ）の発現は、ステージ４
〜５でのＮＧＮ３及びＮｅｕｒｏＤと比較して有意に下方調節されない。更に、ステージ
３でのＬＤＮ−１９３１８９の完全な除去は、ＣＤＸ２の発現の有意な増加をもたらす（
図７Ｆ）。ステージ３の初日のＬＤＮ−１９３１８９の添加の後、ステージ３の２〜３日
目にそれを除去することは、ＮＧＮ３及びＮｅｕｒｏＤの発現を有意に高める一方で、ス
テージ４でのＣＤＸ２及びＳＯＸ２の発現を減少させた。ステージ３の期間中ＬＤＮ−１
９３１８９を保持した培養物は、Ｓ３〜Ｓ４でＳＯＸ２の非常に高い発現を示した（図８
Ｇ）。このデータは、ステージ３の１日目のＢＭＰの阻害が、膵内分泌マーカーをトリガ
する一方でＳＯＸ２及びＣＤＸ２の発現を抑制するのに十分であることを示している。

要約すると、ステージ４〜５に内分泌前駆細胞の形成を誘導し、かつＰＤＸ−１及びＮ
ＫＸ６．１の発現を維持し、その一方でＳＯＸ２の発現を抑制するために、ＢＭＰの阻害
はステージ３の１日目に必要である。更に、ステージ３でのＰＫＣ活性剤の添加は、ＰＤ
Ｘ−１及びＮＫＸ６．１の発現を更に高めた。

（実施例４）
ステージ３の１日目でのＢＭＰシグナル伝達の阻害は、ステージ４で膵臓前駆細胞を生
成するために十分であり、一方、ステージ３の最終日でのＢＭＰシグナル伝達の阻害は、
内分泌マーカーの発現の有意な低下をもたらす。
本実施例は、ステージ３でのＢＭＰシグナル伝達の早期阻害が、膵内分泌前駆細胞マー
カーの誘導を可能にし、一方、ステージ３の後期でのＢＭＰシグナル伝達の阻害が、ステ
ージ４での内分泌前駆細胞マーカーの発現レベルを有意に低下させることを示している。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、１０μＭのＹ２
７６３２を追補したｍＴｅｓｒ（商標）１培地において、単一細胞として、１ｃｍ²当た
り細胞１００，０００個の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）で被覆さ
れた皿上に播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞
に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−４日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８、及び１．５μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培
地で１日処理した。次いで、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬ
の重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのグルコース、及び
１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−３日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
３日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−３日）：ステージ２の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬ
のＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、及び下の表ＩＩＩに記載した混合物を追補したＭＣＤＢ−１
３１倍地で３日間処理した。

ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、１
００ｎＭのＴＰＢ、２００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９、２μＭのＡＬｋ５阻害剤、及び
１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理した。

図９Ａ〜図９Ｈは、上記の培養条件の組み合わせに関しての膵臓内胚葉、内分泌前駆細
胞、及び前腸内胚葉マーカーの遺伝子発現プロファイルを図示する。前述の実施例と同じ
く、ステージ３の１日目のＢＭＰ経路の遮断は、膵内分泌マーカー、クロモグラニンの発
現による測定でのその後の内分泌プログラムの誘導のために重要である（図９Ｃを参照）
。しかし、ステージ３の１日目でのＢＭＰ阻害剤の添加は、後続ステージでの内分泌マー
カーの発現をトリガする。更に、ステージ３の１日目でのＢＭＰ阻害剤の添加はまた、ス
テージ３〜４で、前腸マーカーであるＳＯＸ２の発現を減少させた（図９Ｈ）。しかし、
ステージ３の最終日でのみＢＭＰ阻害剤を添加することは、ステージ３の１日目でのみＢ
ＭＰ阻害剤で処理した細胞と比較して、ステージ３の終わりに、ＳＯＸ２の有意により高
い発現を示す。図９Ａ〜図９Ｈに示す発現レベルは、ＳＯＸ２の非常に高い発現レベルを
有する未分化Ｈ１細胞の発現レベルに相対している。前方前腸のマーカーであることに加
えて、ＳＯＸ２は、ＥＳ細胞の多能性の維持において重要な周知の転写因子である。本実
施例は、ＢＭＰシグナル伝達の持続期間及び動力学に対するステージ３培養物の感度並び
にその後のＳＯＸ２の膵内分泌誘導及び発現への影響を明らかにした前述の結果を更に裏
付けている。

（実施例５）
膵臓前腸ステージ（ステージ４）でのＢＭＰ阻害の最適用量
前述の実施例では、ステージ３でのＢＭＰ阻害の最適な期間について説明した。本実施
例では、Ｓ４の培地でのＢＭＰ阻害剤の最適な用量を特定する。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、ｍＴｅｓｒ（商
標）１培地において、１０μＭのＹ２７６３２と、１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個
の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）で被覆された皿上に単一細胞とし
て播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞に分化し
た。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−４日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８、１μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で１日
処理した。次いで、２日目〜４日目にかけて、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．
００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭの
グルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で処理し
た。
ｂ．ステージ２（原腸管−３日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
３日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−４日）：ステージ２の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬ
のＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、２０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、１００ｎＭのＬＤＮ−１
９３１８９、及び１００ｎＭのＴＰＢを追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で１日処理した。
次いで、細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ Ｇｌｕ
ｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ
、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、２０ｎｇ／
ｍＬのアクチビン−Ａ、及び１００ｎＭのＴＰＢを追補したＭＣＤＢ−１３１倍地中で３
日間処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−４日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、２００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８
９、２μＭのＡＬｋ５阻害剤、１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤、及び表ＩＶ（下記）に
記載した濃度のＬＤＮ−１９３１８９（LDN-193189-193189）を追補したＭＣＤＢ−１３
１倍地で、ステージ４の１〜４日目にかけて処理した。

ｄ．ステージ５（膵臓内胚葉／内分泌前駆細胞−３日）：ステージ４の細胞を、ＩＴＳ
−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０
．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、５０ｎＭのＬＤＮ−１
９３１８９、及び１μＭのＡＬｋ５阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理
した。

上記の処理後に収穫した細胞のリアルタイムＰＣＲ解析の結果を図１０Ａ〜図１０Ｈに
示す。この図は、５０ｎＭ又は１００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９をＳ４の１日目又は２
日目又は３日目又は４日目に添加することが、内分泌マーカーの発現を延長する一方でＳ
４〜Ｓ５でのＳＯＸ２の低発現を維持することができることを示している（図１０Ａ〜図
１０Ｈを参照）。

（実施例６）
前腸ステージ（ステージ３）でのＢＭＰ阻害の最適用量
本実施例は、ステージ３でのＢＭＰ阻害の最適用量、及びその後のステージ６での内分
泌マーカーへの影響を特定する。

ヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞は、多様な継体（継体４０〜継体５２）で、１０μＭのＹ
２７６３２を追補したｍＴｅｓｒ（商標）１培地において、単一細胞として、１ｃｍ²当
たり細胞１００，０００個の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）で被覆
された皿上に播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細
胞に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−４日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８、及び１．５μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培
地で１日処理した。次いで、２日目〜４日目にかけて、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳ
Ａ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．
５ｍＭのグルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地
で処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−３日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
３日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬ
のＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、２０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、１００ｎＭのＴＰＢ、及
び１０〜５０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で１日処理し
た。次いで、細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ Ｇ
ｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸Ｂ
ＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、２０ｎ
ｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、及び１００ｎＭのＴＰＢを追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
２日間処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、２０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９
、２μＭのＡＬｋ５阻害剤、１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤、及び１００ｎＭのＴＰＢ
を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉／内分泌前駆細胞−３日）：ステージ４の細胞を、ＩＴＳ
−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０
．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、＋／−２５ｎＭのＬＤ
Ｎ−１９３１８９、及び／又は２μＭのＡＬｋ５阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地
で３日間処理した。
ｆ．ステージ６（膵内内分泌ホルモン生成−３日）：ステージ５の細胞を、ＩＴＳ−Ｘ
の１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．０
０１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、及び２％の無脂肪酸ＢＳＡを追補したＭＣＤＢ−１
３１倍地で３日間処理した。

図１１Ａ〜図１１Ｈは、内分泌マーカーの発現をトリガする一方でＳＯＸ２の低発現を
維持するには、ステージ３の１日目のＢＭＰの低〜中等度の阻害が必要であることを示し
ている。更に、内分泌マーカーを高めながらステージ５でＢＭＰを阻害することもまた、
ＳＯＸ２の発現の上方調節につながった。

本実施例のデータは、これまでの実施例で提示した結果を更に確定する。このデータは
、ＳＯＸ２の発現を抑制しながら膵内分泌マーカーの誘導をトリガするにはステージ３〜
５でのＢＭＰ経路の正確な調整が必要であることを裏付けている。

（実施例７）
Ｓ３（前腸ステージ）でのＢＭＰ阻害の最適な時間枠
本実施例は、後のステージでの内分泌の誘導を保持しかつＳＯＸ２の発現を減少させな
がら、ＢＭＰシグナル伝達を阻害するための、ステージ３における最適な時間枠を特定す
る。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、ｍＴｅｓｒ（商
標）１培地において、１０μＭのＹ２７６３２と、１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個
の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）で被覆された皿上に単一細胞とし
て播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞に分化し
た。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−４日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８、及び１．５μＭのＭＣＸ化合物を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で１日処理した。次
いで、２日目〜４日目にかけて、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／
ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのグルコース、
及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−３日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
３日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−３日）：ステージ２の細胞を、ステージ３の最初の２時間のみ
又は６時間のみ又は２４時間のみ、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコー
ス、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％
の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、２μＭの
ＲＡ、２０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、及び１００ｎＭのＴＰＢを追補した、１００ｎ
ＭのＬＤＮ−１９３１８９を含有するＭＣＤＢ−１３１倍地で処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、２５ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９
、２μＭのＡＬｋ５阻害剤、１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤、及び１００ｎＭのＴＰＢ
を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉／内分泌前駆細胞−３日）：ステージ４の細胞を、ＩＴＳ
−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０
．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、及び２μＭのＡＬｋ５
阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で３日間処理した。

図１２Ａ〜図１２Ｇは、本実施例で収集したデータのリアルタイムＰＣＲ解析を示す。
ステージ３で少なくとも２時間ＢＭＰ阻害剤で処理することは、Ｎｇｎ３（図１２Ｄ）及
びＮｅｕｒｏＤ（図１２Ｅ）のようなプロ内分泌転写因子の発現をトリガする一方で、Ｓ
ＯＸ２（図１２Ｇ）の非常に低い発現を維持することができ、Ｓ４〜Ｓ５でのＮＫＸ６．
１（図１２Ａ）及びＰＤＸ−１（図１２Ｂ）の発現を有意に増加させる。しかし、ステー
ジ５の３日目に、ＣＤＸ２の発現は、ＢＭＰ阻害剤で２４時間処理した細胞よりも、その
阻害剤で２時間又は６時間処理した細胞においての方が高かった（図１２Ｆ）。

本実施例のデータは、ＣＤＸ２の発現及びＳＯＸ２の発現を低レベルに維持するために
、及び膵臓内胚葉マーカーの高発現を維持する一方で内分泌の分化を開始するために、Ｂ
ＭＰ経路の２４時間の阻害が最適であることを示唆している。

（実施例８）
ステージ３（前腸段階）及びステージ４（膵臓前腸前駆細胞ステージ）の最適な期間
本実施例は、膵内分泌系統の細胞集団への多能性細胞の段階的分化におけるＳ３及びＳ
４の最適な期間を決定するために実施した。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、１０μＭのＹ２
７６３２を追補したｍＴｅｓｒ（商標）１培地において、単一細胞として、１ｃｍ²当た
り細胞１００，０００個の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）で被覆さ
れた皿上に播種した。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞
に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−４日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８、１．５μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で
１日処理した。次いで、２日目〜４日目にかけて、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
Ｍのグルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で処
理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−２日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、２．５ｍ
ＭのＤ−グルコース、及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で
２日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−２〜３日）：ステージ２の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希
釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬ
の重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／
ｍＬのＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、２０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、１００ｎＭのＴＰＢ
を追補した、１００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を含有するＭＣＤＢ−１３１倍地で１日
処理した。次いで、細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１
Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂
肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、２μＭのＲＡ、
２０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、及び１００ｎＭのＴＰＢを追補したＭＣＤＢ−１３１
倍地で処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−２〜３日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの
１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００
１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、２５ｎＭのＬＤＮ−１９３１
８９、１００ｎＭのＣＹＰ２６Ａ阻害剤、及び１００ｎＭのＴＰＢを追補したＭＣＤＢ−
１３１倍地で２〜３日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉／内分泌前駆細胞−２日）：ステージ４の細胞を、ＩＴＳ
−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０
．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、及び１μＭのＡＬｋ５
阻害剤を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で２日間処理した。
ｆ．ステージ６（膵内分泌前駆細胞／ホルモン−２日）：ステージ５の細胞を、ＩＴＳ
−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０
．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、及び２％の無脂肪酸ＢＳＡを追補したＭＣＤＢ
−１３１倍地で２日間処理した。

ステージ３、ステージ４、ステージ５、又はステージ６で収穫した試料のリアルタイム
ＰＣＲ解析のデータを図１３Ａ〜図１３Ｇに示す。このデータは、Ｓ３及びＳ４が２日間
である培養と比較して、Ｓ３及びＳ４を３日間に延長することがＮＫＸ６．１の発現を高
めることを示す（図１３Ａ）。ステージ３で３日間処理した細胞は、Ｓ３及びＳ４の期間
が２日間だけである培養と比較したとき、プロ内分泌マーカーの発現の下方調節を示す（
図１３Ｄ及び図１３Ｅ）。更に、ステージ４を３日間に延長することは、ＳＯＸ２の発現
を有意に高めた（図１３Ｇ）。

本実施例で得たデータは、これまでの実施例で生成されたデータと同じく、延長された
ＢＭＰ阻害が前腸をＳＯＸ２の高い集団の方へ促すことを示している。本実施例及び前述
の実施例からのデータに基づき、ステージ３及びステージ４の最適な期間は２日間である
と結論することができる。理想的なプロトコルは、プロ内分泌マーカーの高レベルの発現
、ＮＫＸ６．１の高発現、ＣＤＸ２の低発現、及びＳＯＸ２の低発現を伴う分化された細
胞をもたらすであろう。

（実施例９）
高グルコース及びＢ２７サプリメントの存在下での、ＢＭＰの阻害への長時間の曝露は
、Ｓ３及びＳ４のＳＯＸ２の発現を有意に増加させる。
このプロトコルは、ホルモン産生細胞への多能性細胞の段階的分化の間にＳ３及びＳ４
でのＳＯＸ２の発現に影響を与える因子を決定するために行った。

ヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞は、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）被覆皿上
で培養し、ｍＴｅｓｒ（商標）１培地で７０％のコンフルエンスまで培養し、以下のよう
に分化した。
ａ．未分化細胞を、０．２％ ＦＢＳ、１００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、２０ｎｇ／
ｍＬのＷＮＴ−３ａが追補されたＲＰＭＩ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中で１日培養し
た。次いで、細胞を、０．５％ ＦＢＳ、１００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡが追補された
ＲＰＭＩ培地で更に２日間処理した（ステージ１）。
ｂ．ステージ１の細胞を、２％ＦＢＳ、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を添加したＤＭＥＭ
／Ｆ１２培地で３日間処理した（ステージ２）。
ｃ．ステージ２の細胞を、１％のＢ２７、０．２５％のＳＡＮＴ−１、２μＭのＲＡ、
１００ｎｇ／ｍＬのノギン（米国ミネソタ州のＲ ＆ Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ）が追補され
たＤＭＥＭ−高グルコース培地中で４日間培養した（ステージ３）。
ｄ．ステージ３の細胞を、１％のＢ２７、１００ｎｇ／ｍＬのノギン、１μＭのＡＬＫ
５阻害剤ＩＩ（米国カリフォルニア州のＡｘｘｏｒａ）、及び５０ｎＭのＴＰＢが追補さ
れたＤＭＥＭ−高グルコース培地にて４日間処理した（ステージ４）。

図１４Ａ〜図１４Ｈは、以下のマーカーに関して得られたステージ３の４日目に収穫し
た細胞のＦＡＣＳヒストグラムを図示する：アイソタイプコントロール（図１４Ａ）、ク
ロモグラニン（図１４Ｂ）、ＫＩ−６７（図１４Ｃ）、ＮＫＸ６．１（図１４Ｄ）、ＳＯ
Ｘ２（図１４Ｅ）、ＨＮＦ３Ｂ（図１４Ｆ）、ＣＤＸ２（図１４Ｇ）、ＰＤＸ−１（図１
４Ｈ）。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。ステージ３での細胞の大部分
は、ＰＤＸ−１（図１４Ｈ）及びＨＮＦ３Ｂ（図１４Ｆ）の発現について陽性であり、Ｎ
ＫＸ６．１（図１４Ｄ）の発現について陰性であり、クロモグラニン（図１４Ｂ）及びＣ
ＤＸ２（図１４Ｇ）について低発現を示した。しかし、９０％を超える細胞が、ＳＯＸ２
（図１４Ｅ）についてもまた強陽性であった。これは、ステージ３では細胞の大部分がＰ
ＤＸ−１及びＳＯＸ２について陽性かつＮＫＸ６．１について陰性であり、膵臓のＰＤＸ
−１ドメインに前方の前腸集団と一貫した内胚葉集団の確立を示唆している。

更に、本実施例で概要を述べたプロトコルを用いて生成した細胞集団において、ステー
ジ３でＳＯＸ２＋であった細胞の百分率は、実施例１に概要を述べたプロトコルを用いて
生成した細胞集団においてＳＯＸ２＋であった細胞の百分率より有意に高かった。この差
は、本実施例のステージ３での培養培地における、ＢＭＰアンタゴニスト（ノギン）への
長時間の曝露並びにＦＧＦ７及びＰＫＣ活性化剤の欠如に起因し得る。

図１５Ａ〜図１５Ｇは、実施例９に従って分化した、Ｓ４の２日目の以下のマーカーの
ＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。図１５Ａ：アイソタイプコントロール、
図１５Ｂ：ＮＫＸ６．１、図１５Ｃ：ＫＩ−６７、図１５Ｄ：クロモグラニン、図１５Ｅ
：ＳＯＸ２、図１５Ｆ：ＣＤＸ２、図１５Ｇ：ＰＤＸ−１。各マーカーの発現百分率を各
ヒストグラムに示す。

図１６Ａ〜図１６Ｆは、実施例９に従って分化された細胞のＳ４の４日目の以下のマー
カーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。図１６Ａ：アイソタイプコントロ
ール、図１６Ｂ：ＮＫＸ６．１、図１６Ｃ：クロモグラニン、図１６Ｄ：ＳＯＸ２、図１
６Ｅ：ＣＤＸ２、図１６Ｆ：ＰＤＸ−１。各マーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示
す。

下の表Ｖは、本実施例に概要を述べたプロトコルに従って分化した細胞のＳ３及びＳ４
での内胚葉マーカーの発現率（％）について得られたデータをまとめたものである。

図１７Ａ〜図１７Ｊは、実施例９に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞におけ
る以下の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析の結果を示す。図１７Ａ：ＣＤＸ２、図
１７Ｂ：ＨＨｅｘ、図１７Ｃ：ＦＯＸＥ１、図１７Ｄ：ＩＰＦ１（ＰＤＸ−１）、図１７
Ｅ：ＮＫＸ２．１、図１７Ｆ：ＮＫＸ２．２、図１７Ｇ：ＮＫＸ６．１、図１７Ｈ：ＰＲ
ＯＸ１、図１７Ｉ：ＳＯＸ２、図１７Ｊ：ＳＯＸ９。

図１４〜図１７及び表Ｖに見られるように、ステージ４の２日目から４日目に、ＮＫＸ
６．１の有意な増加があり、一方、ＰＤＸ−１の高発現は維持された。ステージ３からス
テージ４にかけてＳＯＸ２の発現は低下したが、７５％までの細胞がなおＳＯＸ２＋であ
った。図５と同じく、ＣＤＸ２＋細胞、ＳＯＸ２＋細胞、及びＮＫＸ６．１＋細胞は、ク
ロモグラニン集団から相互排他的であった。これは、実施例９に概要を述べたプロトコル
を用いて生成したステージ４の４日目の細胞集団のＮＫＸ６．１＋ ＳＯＸ２＋ ＰＤＸ
−１＋ ＣＤＸ２−クロモグラニン陰性の割合が５０％までであることを示唆している。
これは、Ｓ４〜Ｓ５にＰＤＸ−１＋ ＮＫＸ６．１＋ ＳＯＸ２−、ＣＤＸ２−、クロモ
グラニン陰性の割合が約４０〜７０％で、ＰＤＸ−１＋ ＮＫＸ６．１＋ ＳＯＸ２＋が
２〜２５％であった実施例１で生成された細胞集団と対照的である。明らかに、実施例１
のプロトコルを用いて生成された細胞は、ＰＤＸ−１＋かつＮＸＫ６．１＋でありながら
も実施例９で生成された細胞と比較してＳＯＸ２及びＣＤＸ２について低い又は陰性の集
団として定義されたように、はるかに高い膵臓内胚葉の百分率を有していた。

本実施例で得たデータは、高グルコース及びＢ２７サプリメントの存在下でのＢＭＰ阻
害への長時間の曝露がステージ３及び４の分化でのＳＯＸ２の発現を有意に増加させるこ
との裏付けを提供するものである。

（実施例１０）
これまでに公開されたプロトコルは、ステージ３〜４で有意な数のＳＯＸ２＋の集団の
形成をもたらす。
Ｋｒｏｏｎらは、ヒト胚性幹細胞からの膵臓内胚葉系統の細胞を調製するためのプロト
コルを公開している（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ ２００８，２６：４４３〜４５２
、これ以降においては「Ｋｒｏｏｎ」）。本明細書において提供される実施例においては
、ヒト胚性幹細胞は、Ｋｒｏｏｎのプロトコルに従って分化させ、分化の異なる段階に特
徴的なマーカーの発現についてアッセイした。

ヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞をＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）被覆皿上に
播種し、７０％のコンフルエンスまでｍＴｅｓｒ（商標）培地中で培養し、Ｋｒｏｏｎに
よりこれまでに公開されているプロトコルを用いて以下のように分化した。
ａ）未分化細胞を、０．２％のＦＢＳ、１００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、２０ｎｇ／
ｍＬのＷＮＴ−３ａが追補されたＲＰＭＩ培地に１日曝露した後、０．５％のＦＢＳ、１
００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡが追補されたＲＰＭＩ培地にて更に２日間処理した（ステ
ージ１）。
ｂ）ステージ１の細胞を、２％のＦＢＳ、５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を添加したＲＰＭ
Ｉ培地で３日間処理した（ステージ２）。
ｃ）ステージ２の細胞を、１％のＢ２７、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、２μＭのＲＡ
、５０ｎｇ／ｍＬのノギン（ミネソタ州のＲ ＆ Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ）が追補されたＤ
ＭＥＭ−高グルコース培地にて３日間処理した（ステージ３）。
ｄ）ステージ３の細胞を、１％のＢ２７が追補されたＤＭＥＭ−高グルコース培地中で
３日間培養した（ステージ４）。
ｅ）ステージ４の細胞をウェルから掻き取り、１％のＢ２７が追補されたＤＭＥＭ−高
グルコース培地中にクラスターとして２日間再懸濁した。

図１８Ａ〜図１８Ｇは、実施例１０に従って分化した、Ｓ３の３日目の以下のマーカー
のＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。アイソタイプコントロール（図１８Ａ
）、ＮＫＸ６．１（図１８Ｂ）、クロモグラニン（図１８Ｃ）、ＳＯＸ２（図１８Ｄ）Ｃ
ＤＸ２（図１８Ｅ）、ＫＩ−６７（図１８Ｆ）、ＰＤＸ−１（図１８Ｇ）。各マーカーの
発現百分率を各ヒストグラムに示す。

図１９Ａ〜図１９Ｇは、実施例１０に従って分化された細胞のＳ４の５日目の以下のマ
ーカーのＦＡＣＳヒストグラム発現プロファイルを示す。アイソタイプコントロール（図
１９Ａ）、ＮＫＸ６．１（図１９Ｂ）、クロモグラニン（図１９Ｃ）、ＳＯＸ２（図１９
Ｄ）、ＣＤＸ２（図１９Ｅ）、ＫＩ−６７（図１９Ｆ）、ＰＤＸ−１（図１９Ｇ）。各マ
ーカーの発現百分率を各ヒストグラムに示す。

図１８及び図１９に示されるように、ステージ４の終わり（５日目）までに、懸濁液中
の細胞のクラスターの２０％までがＮＫＸ６．１＋ ＰＤＸ−１＋ ＳＯＸ２−であり、
かつ２０％までがＰＤＸ−１＋ ＮＫＸ６．１＋ ＳＯＸ２＋であった。これらの結果は
、実施例１０に従って生成された細胞集団の有意な割合がステージ４でＮＫＸ６．１＋か
つＳＯＸ２＋であったことを示している。

下の表ＶＩは、本実施例で生成された細胞のＳ３〜Ｓ４での内胚葉マーカーの百分率を
まとめたものである。

^*懸濁培養物中での最後の２日

（実施例１１）
アスコルビン酸の添加は、多ホルモン細胞数を有意に減少させ、単一ホルモンのインス
リン陽性細胞数を同時に増加させた。

ホルモン生成細胞への多能性細胞の分化中のマーカーの発現にアスコルビン酸が与える
影響をテストした。以下のように、分化の全ての段階でグルコースを追補し、ステージ３
、４及び５の形成でアスコルビン酸を追補した培地中で細胞を培養した。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、ｍＴｅｓｒ（商
標）１培地において、１０μＭのＹ２７６３２と、１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個
の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）被覆皿上に単一細胞として播種し
た。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−３日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８、
及び１μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で１日
処理した。次いで、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸
ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのグルコース、１００ｎｇ／ｍＬ
のＧＤＦ８、及び１００ｎＭのＭＣＸ化合物が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で２日目
に処理し、続いて、更に１日、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭
酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのグルコース、及び１００ｎｇ
／ｍＬのＧＤＦ８が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地にて処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−２日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭの
Ｄ−グルコース、及び２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で２日
間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−２日）：ステージ２の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、２５ｎｇ／
ｍＬのＦＧＦ７、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、１μＭのＲＡ、２００ｎＭのＴＰＢ（Ｐ
ＫＣ活性剤）、１００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９（ＢＭＰ受容体阻害剤）を追補したＭ
ＣＤＢ−１３１倍地で１日処理した。次いで、細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２
．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭
酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビン−Ａ、２５ｎｇ／ｍ
ＬのＦＧＦ７、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、１μＭのＲＡ、２００ｎＭのＴＰＢ（ＰＫ
Ｃ活性剤）、１０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で更に１
日処理した。いくつかの培養物は、ステージ３の期間中、０．２５ｍＭのアスコルビン酸
（カタログ番号Ａ４５４４、Ｓｉｇｍａ、米国ミズーリ州）で処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−２日）：ステージ３の細胞を、０．２５ｍＭのア
スコルビン酸あり又はなしで、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、
１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無
脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎＭのＲＡ、２００ｎＭのＴＰＢ、５
０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を追補したＭＣＤＢ−１３１倍地で２日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉−２〜７日）：ステージ４の細胞を、０．２５ｍＭのアス
コルビン酸あり又はなしで、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１
Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂
肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎＭのＲＡを追補したＭＣＤＢ−１３１
倍地で２〜７日間処理した。

図２０Ａ〜図２０Ｊは、実施例１１に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞にお
ける以下の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析を示す。図２０Ａ：ソマトスタチン、
図２０Ｂ：ＰＤＸ１、図２０Ｃ：Ｐａｘ６、図２０Ｄ：Ｐａｘ４、図２０Ｅ：ＮＫＸ６．
１、図２０Ｆ：ＮＧＮ３、図２０Ｇ：グルカゴン、図２０Ｈ：ＮｅｕｒｏＤ、図２０Ｉ：
インスリン、図２０Ｊ：クロモグラニン。この図は、ステージ３、又はステージ３及び４
でのアスコルビン酸の添加が、ステージ４〜５でソマトスタチン及びグルカゴンの発現を
有意に減少させる一方で、インスリンの発現を増加させることを示している（図２０Ａ、
図２０Ｇ、及び図２０Ｉを参照）。更に、ステージ４〜５で、ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．
１のような膵臓内胚葉マーカーの発現は、０．２５ｍＭのアスコルビン酸の添加によって
有意に変化しなかった（図２０Ｂ及び図２０Ｄを参照）。ステージ４〜５で、Ｐａｘ６の
発現は下方調節され、Ｐａｘ４の発現は維持された（図２０Ｃ及び図２０Ｄを参照）。Ｓ
３〜Ｓ５で＋／−アスコルビン酸で処理した培養物は、ステージ５の終わりにインスリン
、グルカゴン、及びソマトスタチンホルモンに対して免疫染色された。表ＶＩＩは、イン
スリン陽性細胞、グルカゴン及びソマトスタチン陽性細胞、並びに多ホルモン細胞（１つ
の細胞内で２つ以上のホルモンを発現）の平均百分率をまとめたものである。

（実施例１２）
ステージ３でのアスコルビン酸の最適用量
本実施例は、単一ホルモン、ＰＤＸ−１陽性、かつＮＫＸ６．１陽性のインスリン陽性
細胞を生成するために使用するアスコルビン酸の最適用量を決定するために実行した。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、ｍＴｅｓｒ（商
標）１培地において、１０μＭのＹ２７６３２と、１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個
の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）被覆皿上に単一細胞として播種し
た。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−３日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのＤ−グルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ
８と１μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で１日
処理した。次いで、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸
ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのグルコース、１００ｎｇ／ｍＬ
のＧＤＦ８、及び１００ｎＭのＭＣＸ化合物が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で２日目
に処理し、続いて、更に１日、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭
酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのグルコース、及び１００ｎｇ
／ｍＬのＧＤＦ８が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地にて処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−２日）：ステージ１の細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、
０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭの
Ｄ−グルコースが追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で、０．２５ｍＭのアスコルビン酸及
び２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７あり又はなしで、２日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−２日）：ステージ２の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、２５ｎｇ／ｍ
ＬのＦＧＦ７、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、＋／−０．２５ｍＭのアスコルビン酸、１
μＭのＲＡ、及び２００ｎＭのＴＰＢ、並びに１日目については１００ｎＭのＬＤＮ−１
９３１８９が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で処理し、続いて、ＩＴＳ−Ｘの１：２０
０希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／
ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、２５
ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、＋／−０．２５ｍＭのアスコルビ
ン酸、１μＭのＲＡ、及び２００ｎＭのＴＰＢ、並びに更に１日は１０ｎＭのＬＤＮ−１
９３１８９が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−２日）：ステージ３の細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：
２００希釈、２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５
０ｎＭのＲＡ、２００ｎＭのＴＰＢ、及び５０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９を追補したＭ
ＣＤＢ−１３１倍地にて、０．２５ｍＭ〜１ｍＭのアスコルビン酸の添加あり又はなしで
、２日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉−２〜９日）：ステージ４の細胞を、０．２５ｍＭのアス
コルビン酸の添加あり又はなしで、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグルコー
ス、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、２％
の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、及び５０ｎＭのＲＡを追補したＭＣＤ
Ｂ−１３１倍地で２〜９日間処理した。

図２１Ａ〜図２１Ｊは、実施例１２に従って分化したヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞にお
ける以下の遺伝子の発現のリアルタイムＰＣＲ解析のデータを示す。図２１Ａ：ソマトス
タチン、図２１Ｂ：ＰＤＸ１、図２１Ｃ：Ｐａｘ６、図２１Ｄ：Ｐａｘ４、図２１Ｅ：Ｎ
ＫＸ６．１、図２１Ｆ：ＮＧＮ３、図２１Ｇ：ＮｅｕｒｏＤ、図２１Ｈ：インスリン、図
２１Ｉ：グルカゴン、図２１Ｊ：クロモグラニン。実施例１０からのデータと一貫し、ス
テージ２〜４でのアスコルビン酸の添加は、ソマトスタチン、グルカゴン、及びＰａｘ６
の発現を有意に低減する一方で、ステージ５でのインスリン及びＰａｘ４の発現を維持し
た。更に、０．２５ｍＭのアスコルビン酸と比較して、Ｓ４で０．５〜１ｍＭのアスコル
ビン酸を使用することに有意な利益はなかった。最後に、ステージ２でのアスコルビン酸
の添加もまた、ステージＳ３〜５でグルカゴン及びソマトスタチンの発現を低下する一方
でインスリンの発現を維持することに有効であることが証明された。したがって、アスコ
ルビン酸は、ステージ特定のやり方で単一ホルモン細胞の発現の調節のために作用する。
アスコルビン酸の添加は分化プロトコルの早期ステージで重要であるが、後期ステージで
は多ホルモン細胞数を減少するのに有効であると証明されなかった。

（実施例１３）
レチノイン酸及びアスコルビン酸の組み合わせは、単一ホルモンのインスリン陽性細胞
を生成するために必要である。
この実施例は、多能性細胞の分化中に単一ホルモンのインスリン陽性細胞を生成するた
めの要件を明らかにするために実施した。

多様な継体（継体４０〜継体５２）のヒト胚性幹細胞株Ｈ１の細胞を、ｍＴｅｓｒ（商
標）１培地において、１０μＭのＹ２７６３２と、１ｃｍ²当たり細胞１００，０００個
の濃度で、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（１：３０希釈）被覆皿上に単一細胞として播種し
た。播種から４８時間後に、培養物を以下のように膵内分泌系統の細胞に分化した。
ａ．ステージ１（胚体内胚葉（ＤＥ）−３日）：ＤＥの開始の前に、培養物を洗浄し、
不完全なＰＢＳ（Ｍｇ又はＣａなし）で３０秒間インキュベートし、次いで、ステージ１
の培地を加えた。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）被覆皿上で単一細胞として培養したヒト胚性
幹細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ
ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのＤ−グルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８、
１μＭのＭＣＸ化合物（ＧＳＫ３Ｂ阻害剤）を追補したＭＣＤＢ−１３１培地で１日処理
した。次いで、細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、重炭酸ナトリウム、ＧｌｕｔａＭａ
ｘ（商標）、更に５ｍＭのグルコース、１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８、及び１００ｎＭの
ＭＣＸ化合物が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で２日目に処理し、続いて、更に１日、
０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ Ｇｌｕｔ
ａＭａｘ（商標）、５ｍＭのグルコース、及び１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８が追補された
ＭＣＤＢ−１３１倍地にて処理した。
ｂ．ステージ２（原腸管−２日）：細胞を、０．１％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．００１２
ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、５ｍＭのＤ−グルコー
ス、０．２５ｍＭのアスコルビン酸、及び２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７が追補されたＭＣＤ
Ｂ−１３１倍地で２日間処理した。
ｃ．ステージ３（前腸−２日）：細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭの
グルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウ
ム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７
、０．２５ｍＭのアスコルビン酸、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、１μＭのＲＡ、２００
ｎＭのＴＰＢ、及び１日目については１００ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９が追補されたＭ
ＣＤＢ−１３１倍地で処理し、続いて、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５ｍＭのグル
コース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナトリウム、
２％の無脂肪酸ＢＳＡ、１０ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７、０
．２５ｍＭのアスコルビン酸、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、１μＭのＲＡ、及び２００
ｎＭのＴＰＢ、並びに更に１日については１０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９が追補された
ＭＣＤＢ−１３１倍地で処理した。
ｄ．ステージ４（膵臓前腸前駆細胞−２日）：細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、
２．５ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重
炭酸ナトリウム、２％の無脂肪酸ＢＳＡ、０．２５μＭのＳＡＮＴ−１、５０ｎＭのＲＡ
、２００ｎＭのＴＰＢ、５０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９、及び０．１ｍＭのアスコルビ
ン酸が追補されたＭＣＤＢ−１３１倍地で２日間処理した。
ｅ．ステージ５（膵臓内胚葉−３日）：細胞を、ＩＴＳ−Ｘの１：２００希釈、２．５
ｍＭのグルコース、１Ｘ ＧｌｕｔａＭａｘ（商標）、０．００１５ｇ／ｍＬの重炭酸ナ
トリウム、及び２％の無脂肪酸ＢＳＡを追補したＭＣＤＢ−１３１倍地にて、以下の培養
条件で３日間処理した。
・＋０．１ｍＭのアスコルビン酸
・０．１ｍＭのアスコルビン酸＋５０ｎＭのＲＡ
・０．１ｍＭのアスコルビン酸＋５０ｎＭのＲＡ＋０．２５μＭのＳＡＮＴ−１
・０．１ｍＭのアスコルビン酸＋５０ｎＭのＲＡ＋０．２５μＭのＳＡＮＴ−１＋５
０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９
・０．１ｍＭのアスコルビン酸＋５０ｎＭのＲＡ＋０．２５μＭのＳＡＮＴ−１＋１
μＭのＡｌｋ５ ｉｎｈ
・０．１ｍＭのアスコルビン酸＋５０ｎＭのＲＡ＋０．２５μＭのＳＡＮＴ−１＋１
μＭのＡｌｋ５ ｉｎｈ＋５０ｎＭのＬＤＮ−１９３１８９

図２２Ａ〜図２２Ｌは、実施例１３に従って分化し、Ｓ５の３日目に収穫した胚性幹細
胞株Ｈ１の細胞における、Ｐａｘ４（図２２Ａ）、Ｐａｘ６（図２２Ｂ）、ＰＤＸ１（図
２２Ｃ）、ＰＴＦ１ａ（図２２Ｄ）、グルカゴン（図２２Ｅ）、インスリン（図２２Ｆ）
、ＮｅｕｒｏＤ（図２２Ｇ）、ｎｇｎ３（図２２Ｈ）、Ｚｉｃ１（図２２Ｉ）、ＣＤＸ２
（図２２Ｊ）、アルブミン（図２２Ｋ）、ＮＫＸ６．１（図２２Ｌ）の発現のリアルタイ
ムＰＣＲ解析からのデータを示している。

上記の組み合わせで処理した培養物は、ステージ５の終わりに、インスリン、グルカゴ
ン、及びソマトスタチンホルモンに対して免疫染色された。表ＶＩＩＩは、インスリン陽
性細胞、グルカゴン及びソマトスタチン陽性細胞、並びに多ホルモン細胞（１つの細胞内
で２つ以上のホルモンを発現）の平均百分率をまとめたものである。

図２２及び下記の表ＶＩＩＩに示されるように、ステージ５での低用量のレチノイン酸
とアスコルビン酸の添加は、Ｓ５でビタミンＣのみで処理された培養物と比較して、ホル
モン陽性細胞の総数を有意に減少させる一方で、単一ホルモンのインスリン陽性細胞の百
分率を増加させた。更に、レチノイン酸、アスコルビン酸、ソニックヘッジホッグ阻害剤
、及びＡＬＫ５阻害剤の組み合わせは、アスコルビン酸（ビタミンＣ）のみで処理された
培養物と比較して、単一ホルモンのインスリン陽性細胞の数を更に増加させた。このデー
タは、単一ホルモンのインスリン陽性細胞を生成するには因子の独特の組み合わせが必要
であることを示している。

本発明は、以下の態様を包含し得る。
［１］
多能性細胞の段階的分化から得られる、膵臓内胚葉細胞のインビトロ分化集団であって
、分化の各段階の細胞が、５ｍＭ〜２０ｍＭのグルコースを含む培地中で培養される、膵
臓内胚葉細胞の分化集団。
［２］
前記分化された膵臓内胚葉細胞の３０％超が、ＰＤＸ−１＋ＮＫＸ６．１＋、ＳＯＸ２
−、及びＣＤＸ２−である、上記［１］に記載の膵臓内胚葉細胞の分化集団。
［３］
前記分化集団の細胞の１０％超が単一ホルモンのインスリン陽性細胞である、上記［１
］又は［２］に記載の膵臓内胚葉細胞の分化集団。
［４］
前記段階的分化が、未分化のヒト胚性幹細胞をＴＧＦ−Ｂリガンドが更に追補された培
地中で培養する工程を含む、上記［１］〜［３］のいずれか一項に記載の膵臓内胚葉細胞
の分化集団。
［５］
前記段階的分化が、未分化のヒト胚性幹細胞をＷＮＴ活性化剤が更に追補された培地中
で培養する工程を含む、上記［１］〜［４］のいずれか一項に記載の膵臓内胚葉細胞の分
化集団。
［６］
前記段階的分化が、胚体内胚葉細胞をＦＧＦリガンドが更に追補された培地中で培養す
る工程を含む、上記［１］に記載の膵臓内胚葉細胞の分化集団。
［７］
前記段階的分化が、ｓｈｈ阻害剤、ＦＧＦリガンド、ＰＫＣ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガ
ンド、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤の勾配が更に追補された培地中で腸管細胞を培養す
る工程を含む、上記［１］〜［４］のいずれか一項に記載の膵臓内胚葉細胞の分化集団。
［８］
前記段階的分化が、ＰＫＣ活性化剤、ｓｈｈ阻害剤、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤が
更に追補された培地中で後方前腸細胞を培養する工程を含む、上記［５］に記載の膵臓内
胚葉細胞の分化集団。
［９］
前記段階的分化が、アスコルビン酸が更に追補された培地中で細胞を培養する工程を含
む、上記［１］〜［６］のいずれか一項に記載の膵臓内胚葉細胞の分化集団。
［１０］
膵臓内胚葉系統の細胞の集団への多能性細胞の段階的分化のためのインビトロの方法で
あって、５ｍＭ〜２０ｍＭのグルコースを含む培地中での分化の各段階で細胞を培養する
工程を含む、方法。
［１１］
ＴＧＦ−Ｂリガンド及びＷＮＴ活性化剤を追補した培地中で前記多能性細胞を培養する
ことによって、前記多能性細胞を胚体内胚葉（ＤＥ）細胞に分化する工程を更に含む、上
記［１０］に記載のインビトロの方法。
［１２］
ＦＧＦリガンドを追補した培地中で前記ＤＥ細胞を培養することによって、前記ＤＥ細
胞を腸管細胞に分化する工程を更に含む、上記［１１］に記載のインビトロの方法。
［１３］
ｓｈｈ阻害剤、ＦＧＦリガンド、ＰＫＣ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、レチノイド、
及びＢＭＰ阻害剤を追補した培地中で腸管細胞を培養することによって、前記腸管細胞を
後方前腸内胚葉細胞に分化する工程を更に含む、上記［１２］に記載のインビトロの方法
。
［１４］
ＰＫＣ活性化剤、ｓｈｈ阻害剤、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤を追補した培地中で後
方前腸内胚葉細胞を培養することによって、前記後方前腸内胚葉細胞を膵臓前腸細胞に分
化する工程を更に含む、上記［１３］に記載のインビトロの方法。
［１５］
ｓｈｈ阻害剤、ＴＧＦ−Ｂ阻害剤、及びレチノイドを追補した培地中で前記膵臓前腸細
胞を培養することによって、前記膵臓前腸細胞を膵臓内胚葉細胞に分化する工程を更に含
む、上記［１４］に記載のインビトロの方法。
［１６］
前記膵臓内胚葉細胞を膵臓β細胞集団に分化する工程を更に含む、上記［１５］に記載
のインビトロの方法。
［１７］
少なくとも一工程において前記培地にアスコルビン酸を更に追補する、上記［１０］〜
［１６］のいずれか一項に記載のインビトロの方法。
［１８］
前記分化集団の細胞の１０％超が単一ホルモンのインスリン陽性細胞である、上記［１
０］〜［１７］のいずれか一項に記載のインビトロの方法。
［１９］
培養物の膵臓内胚葉細胞の３０％超がＰＤＸ−１＋、ＮＫＸ６．１＋、ＳＯＸ２−、及
びＣＤＸ２−である、上記［１８］に記載のインビトロの方法。
［２０］
ヒト胚性幹細胞を膵臓β細胞に分化するためのインビトロの方法であって、
ａ）胚体内胚葉（ＤＥ）細胞の集団を生成するために、未分化のヒト胚性幹細胞を、グ
ルコース、ＴＧＦ−Ｂリガンド、及びＷＮＴ活性化剤を追補した培地中で培養する工程と
、
ｂ）腸管細胞の集団を生成するために、前記ＤＥ細胞を、グルコース及びＦＧＦリガン
ドを追補した培地中で培養する工程と、
ｃ）ＰＤＸ−１及びＳＯＸ２を発現する後方前腸内胚葉細胞の集団を生成するために、
グルコース、ｓｈｈ阻害剤、ＦＧＦリガンド、ＰＫＣ活性化剤、ＴＧＦ−Ｂリガンド、レ
チノイド、及びＢＭＰ阻害剤の勾配を追補した培地中で前記腸管細胞を培養する工程と、
ｄ）ＰＤＸ−１及びＮＫＸ６．１を発現し、かつ前記後方前腸細胞と比較して低いレベ
ルのＳＯＸ２を発現する膵臓前腸細胞の集団を生成するために、グルコース、ＰＫＣ活性
剤、ｓｈｈ阻害剤、レチノイド、及びＢＭＰ阻害剤を追補した培地中で前記後方前腸細胞
を培養する工程と、
ｅ）ＰＤＸ−１及び膵臓前腸細胞と比較して高いレベルのＮＫＸ６．１並びに低いレベ
ルのＳＯＸ２を発現する膵臓内胚葉細胞の集団を得るために、グルコース、ｓｈｈ阻害剤
、ＴＧＦ−Ｂ阻害剤、及びレチノイドを追補した培地中で前記膵臓前腸細胞を培養する工
程と、
ｆ）前記膵臓内胚葉細胞を膵臓β細胞集団に分化する工程と、を含む、方法。
［２１］
前記膵臓β細胞集団がＰＤＸ−１＋、ＮＫＸ６．１＋、ＳＯＸ２−、及びＣＤＸ２−で
ある、上記［２０］に記載の方法。
［２２］
少なくとも一工程において前記培地にアスコルビン酸が更に追補される、上記［２０］
又は［２１］に記載の方法。
［２３］
前記膵臓β細胞が、ＮＫＸ６．１＋及びＰＤＸ−１＋でもある単一ホルモンのインスリ
ン産生細胞である、上記［２２］に記載の方法。

Claims (15)

1. 単一ホルモンのインスリン産生細胞を生成する方法であって、
   （ａ）ｓｈｈ阻害剤、ＢＭＰ阻害剤、低用量のレチノイン酸、アスコルビン酸およびＰＫＣ活性化剤で、ＰＤＸ−１およびＳＯＸ２を発現する後方前腸内胚葉細胞を処理することによって、前記後方前腸内胚葉細胞をＰＤＸ−１およびＮＫＸ６．１を発現する膵臓前腸前駆細胞に分化する工程、
   （ｂ）ｓｈｈ阻害剤、低用量のレチノイン酸、アスコルビン酸、ＰＫＣ活性化剤およびＢＭＰ受容体阻害剤で、ＰＤＸ−１およびＮＫＸ６．１を発現する膵臓前腸前駆細胞を処理することによって、前記膵臓前腸前駆細胞を膵臓内胚葉細胞に分化する工程、および
   （ｃ）ｓｈｈ阻害剤、低用量のレチノイン酸、およびアスコルビン酸で処理することによって、膵臓内胚葉細胞を単一ホルモンの膵内分泌細胞に分化し、それにより単一ホルモンのインスリン産生細胞を生成する工程
   を含む、方法。
2. 前記膵臓内胚葉細胞が、ＰＤＸ−１、前記膵臓前腸前駆細胞と比較して高いレベルのＮＫＸ６．１および低いレベルのＳＯＸ２を発現する、請求項１に記載の方法。
3. 前記ＰＫＣ活性化剤がＴＰＢである、請求項１または２に記載の方法。
4. 前記ＢＭＰ受容体阻害剤がＬＤＮ−１９３１８９である、請求項１から３のいずれか一項に記載の方法。
5. 工程（ｂ）が、０．２５μＭ ＳＡＮＴ−１、２００ｎＭ ＴＰＢ、５０ｎＭ レチノイン酸、５０ｎＭ ＬＤＮ−１９３１８９および０．１ｍＭ アスコルビン酸による処理を含む、請求項１から４のいずれか一項に記載の方法。
6. 工程（ｃ）が、ＡＬＫ５阻害剤による処理をさらに含む、請求項１から５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記ＡＬＫ５阻害剤がＡＬＫ５阻害剤ＩＩである、請求項６に記載の方法。
8. 前記ＡＬＫ５阻害剤がＳＤ２０８である、請求項６に記載の方法。
9. 工程（ｃ）が、０．１ｍＭ アスコルビン酸、５０ｎＭ レチノイン酸、０．２５μＭ ＳＡＮＴ−１および１μＭ Ａｌｋ５阻害剤による処理を含む、請求項６から８のいずれか一項に記載の方法。
10. 工程（ａ）、（ｂ）、（ｃ）または（ａ）と（ｂ）と（ｃ）との全てにおけるｓｈｈ阻害剤が、ＳＡＮＴ−１である、請求項１から９のいずれか一項に記載の方法。
11. 工程（ａ）、（ｂ）、（ｃ）または（ａ）と（ｂ）と（ｃ）との全てが、０．０１ｍＭ〜１ｍＭのアスコルビン酸による処理を含む、請求項１から４、６から８および１０のいずれか一項に記載の方法。
12. 工程（ａ）、（ｂ）、（ｃ）または（ａ）と（ｂ）と（ｃ）との全てが、０．１ｍＭ〜０．５ｍＭのアスコルビン酸による処理を含む、請求項１から４、６から８および１０のいずれか一項に記載の方法。
13. 工程（ａ）、（ｂ）、（ｃ）または（ａ）と（ｂ）と（ｃ）との全てが、２５ｍＭ未満のグルコースを含む培地における処理を含む、請求項１から１２のいずれか一項に記載の方法。
14. グルコース濃度が、８ｍＭ〜２０ｍＭのグルコースの範囲内である、請求項１３に記載の方法。
15. 前記膵臓前腸前駆細胞が、ヒト膵臓前腸前駆細胞である、請求項１から１４のいずれか一項に記載の方法。

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