JP5945538B2 - ナイセリア・メニンギティディス(Neisseriameningitidis)rLP2086抗原の安定な製剤 - Google Patents
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Description
本明細書で使用する場合、単数形「ある(a)」、「ある(an)」および「この(the)」は、文脈からそうでないことが明らかでない限り、複数形への言及を含む。したがって、例えば、「この方法」という言及は、本明細書に記載し、かつ/または当業者であれば、本開示を読み取れば明らかになるであろう等のタイプの1つまたは複数の方法および/またはステップを含む。
本発明は、rLP2086サブファミリーA抗原ではなく、rLP2086サブファミリーB抗原が、二価のワクチン製剤中で効力を経時的に喪失し、したがって、不安定であるという新規の発見から生み出されている。二価の製剤中の構成成分を変化させることによって、二価のワクチン製剤中の界面活性剤対タンパク質の高いモル比により、rLP2086サブファミリーB抗原に特異的な不安定性が生じることを決定した。二価および一価の製剤中の界面活性剤対タンパク質のモル比を低下させると、効力の経時的な維持により決定した場合、rLP2086サブファミリーB抗原の安定性の増加が生じ、rLP2086サブファミリーA抗原の安定性には影響が及ばなかった。この結果は驚くべきものであるが、これは、リポタンパク質は典型的には、それらの疎水性脂質部分の凝集を阻止するために高い界面活性剤濃度を使用して精製および保存されるからである。したがって、いくつかの実施形態では、本発明は、rLP2086サブファミリーB抗原を含み、界面活性剤対タンパク質の低いモル比を備える免疫原性組成物を提供する。いくつかの実施形態では、本発明は、免疫原性組成物中のrLP2086サブファミリーB抗原の安定性を維持する方法を提供し、この方法は、rLP2086サブファミリーB抗原を、界面活性剤対タンパク質の低いモル比を備える緩衝液中に保存するステップを含む。
ナイセリア・メニンギティディス(Neisseria meningitidis)のORF2086に由来するヌクレオチド配列がコードするタンパク質を含む免疫原性組成物は、当技術分野で公知である。例示的な免疫原性組成物として、米国特許出願公開第US20060257413号および第US20090202593号に記載されているものが挙げられ、それらの出願公開は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれている。そこに記載されているそのような免疫原性組成物は、ORF2086タンパク質と同定されている、殺菌活性を示すタンパク質、その免疫原性部分、および/またはそれらの生物学的同等物を含む。ORF2086タンパク質は、ナイセリア種のオープンリーディングフレーム2086がコードするタンパク質を指す。
免疫原性組成物中のサブファミリーAタンパク質およびサブファミリーBタンパク質中の機能性エピトープを、立体構造に特異的なモノクローナル抗体を使用して、rLP2086基準物質と比べて定量化することによって、効力を決定する。in vivoにおいて免疫応答を惹起して、殺菌性抗体を生成させることになるサブファミリーAまたはサブファミリーBのrLP2086タンパク質中の機能性エピトープを定量的に測定することによって、効力を決定する。選択したモノクローナル抗体(mAb)を用いる効力アッセイに定量化技術を使用する。立体構造性であり、オーバーラップしない2つの機能性モノクローナル抗体を、免疫原性組成物中の各サブファミリーのrLP2086タンパク質について選択する。2つの精製モノクローナル抗体のうち、第1の抗体を、第1のタグにコンジュゲートさせ、第1のタグを使用して、rLP2086タンパク質分子を捕捉する。いくつかの実施形態では、第1のタグは、ビオチン、グルタチオン−Sトランスフェラーゼ(GST)、6×Hisタグ、またはビーズ(例えば、カルボキシル化ポリスチレンビーズもしくは常磁性ビーズ)である。いくつかの実施形態では、第1のタグを、ストレプトアビジンビーズ、ストレプトアビジンカラム、ニッケルビーズ、ニッケルカラム、遠心分離を用いて、または磁場を用いて捕捉する。第2の抗体を、第2のタグにコンジュゲートさせ、第2のタグは定量化可能である。いくつかの実施形態では、第2のタグは、ビオチン、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)、蛍光体または放射標識である。いくつかの実施形態では、第2のタグを、蛍光体またはHRPにコンジュゲートさせたストレプトアビジンを用いて、電気化学発光、蛍光検出または放射活性検出によって検出する。各免疫原性組成物中の2つのmAbにより認識される両方のエピトープを示すタンパク質のみが測定されることになる。タンパク質のいずれか一方または両方のエピトープの変化が反映されることになる。試料の効力を、基準物質の効力と比べて報告する。
いくつかの実施形態では、本発明は、rLP2086サブファミリーB抗原を経時的に安定化させる免疫原性組成物を提供し、この免疫原性組成物は、界面活性剤対タンパク質の低いモル比を有する緩衝液を含む。
いくつかの実施形態では、本発明は、rLP2086サブファミリーA抗原および/またはrLP2086サブファミリーB抗原を経時的に安定化させる免疫原性組成物を提供し、この免疫原性組成物は、安定化剤の高い濃度を有し、界面活性剤対タンパク質の低いモル比を有する緩衝液を含む。
実験手順
アルミニウムの結合の決定
アルミニウムおよび少なくとも1つのタンパク質抗原を含む組成物を遠心分離し、その結果、アルミニウムがペレット化された。アルミニウム吸収タンパク質の遠心分離は、当技術分野で公知である。例えば、Eganら、Vaccine、27巻(24):3175〜3180(2009)を参照されたい。また、アルミニウム結合型のタンパク質もペレット化され、一方、アルミニウム非結合型のタンパク質は、上清中に残留した。上清およびペレット中の総タンパク質を、ローリーアッセイにより決定した。上清中の総タンパク質を、組成物に添加した総タンパク質で割り、100%を乗じることによって、パーセント結合型タンパク質を計算した。同様に、パーセント非結合型タンパク質を、上清中の総タンパク質を、組成物に添加した総タンパク質で割り、100%を乗じることによって計算した。
rLP2086の効力アッセイは、rLP2086薬物物質の単一のタンパク質分子上の、立体構造性であり、オーバーラップしないエピトープを認識する2つの機能性モノクローナル抗体に依存する均一な捕捉アッセイまたはサンドイッチアッセイである。一方の精製モノクローナル抗体は、捕捉抗体(mAb)として働き、特有の色でコードされた識別子を有するカルボキシル化ポリスチレンビーズに化学的にコンジュゲートしている。第2の抗体は、ビオチン化されており、検出抗体として働き、続いて、この抗体に、蛍光体R−フィコエリトリンにコンジュゲートしているストレプトアビジン(SA−PE)が結合する。Bio−Plex検出装置の流体素子が、個々のマイクロスフェアおよびそれらに伴うSA−PEシグナルを定量化する。マイクロスフェアを伴うR−フィコエリトリンからの蛍光シグナルは、ビーズコンジュゲート抗体、抗原および検出抗体の間で三成分複合体が形成されることによってのみ検出されることになり、rLP2086試料中の機能性エピトープの数に比例することになる。一方または両方のエピトープが変化すると、基準標準物質に比して蛍光の喪失が生じ、このことは、効力の喪失を示すことになる。
試薬
モノクローナル抗体コンジュゲートマイクロスフェア(Luminex MicroPlex Microsphereのビーズ領域12番またはビーズ領域66番にコンジュゲートしている)。
ビオチン化モノクローナル抗体。
rLP2086基準物質、サブファミリーAおよびB、2mg/ml。−70℃で保存。
rLP2086サブファミリーAおよびBの二価の対照
ストレプトアビジン、R−フィコエリトリンにコンジュゲート、凍結乾燥
緩衝液
10mMヒスチジン、150mM NaCl、pH6.0
0.85%w/v生理食塩水中の5%w/vポリソルベート80(PS−80)。
マトリックス緩衝液(10mMヒスチジン、0.02%ポリソルベート80、150mM NaCl、pH6.0)。
アッセイ用緩衝液(0.1%BSA、0.02%ポリソルベート80、0.1%アジドを有するPBS、pH7.4)。
100×ストレプトアビジン、R−フィコエリトリンコンジュゲート(SA−PE)−凍結乾燥ストレプトアビジン、R−フィコエリトリンのバイアルを開け、1mLの蒸留水を添加する。完全に溶解するまでボルテックスした。
200μLのサブファミリーAタンパク質および200μLのサブファミリーBタンパク質を、600μLのマトリックス緩衝液に添加して、各サブファミリーの400μg/mlの濃度を得た。8つの濃度(3333〜1.5ng/mL)の検量線を、ストック溶液をアッセイ用緩衝液中に希釈することによって得た。
Charles River Canada(St.Constant、QC、カナダ)から得たNew Zealand Whiteウサギ、雌、2.5〜3.0kgを全細胞ELISAによりあらかじめスクリーニングして、2つの異なる髄膜炎菌株(それぞれのP2086サブファミリーから1つ)に対して低い反応性を示すウサギを同定した。これらのウサギは一般に、非常に低いバックグラウンドを有し、最も低い値を示すウサギを選択して、使用した。ウサギに、一価のrLP2086−A05ワクチン、一価のrLP2086−B01ワクチンまたは二価のrLP2086−A05+B01ワクチンのいずれかを用いて、0、4および9週目に筋肉内にワクチン接種した。それぞれの用量は、一価のワクチンについては100μgのタンパク質および二価のワクチンについては100μgの各タンパク質を含有し、10mMヒスチジン緩衝液、pH6.0、150mM NaCl、0.02%ポリソルベート80および250μgのAlPO4中に製剤化した。ワクチンを、右後ろ足中に筋肉内注射した(0.5ml/投与)。対照として、ウサギの1つの群に、製剤用緩衝液単独を用いてワクチン接種した。免疫前(0週目)の血清試料および免疫された(10週目)血清試料を得て、解析した。動物プロトコールは全て、確立されたInstitutional Animal Care and Use Committeeの指針に忠実に従った。
MnB細胞を、0.45〜0.55のOD650まで増殖させ、続いて、1×PBS中の1%(v/v)パラホルムアルデヒド中に10分間固定した。100マイクロリットル/ウェルの細菌を、96ウェルのU底ポリスチレン製プレート中に蒔き、遠心沈殿させ、1×PBS中の1%(w/v)BSA中で1回洗浄した。抗LP2086モノクローナル抗体を、細菌ペレットに添加し、再懸濁し、氷上で30分間インキュベートした。1%BSA/PBS中での2回の洗浄の後、ビオチン化ヤギ抗マウスIgG(サブクラス1+2a+2b+3)(Jackson Immunoresearch)を、細胞ペレットに添加し、再懸濁し、氷上で30分間インキュベートした。細胞を、2回洗浄し、ストレプトアビジン−PE(BD Biosciences)中に再懸濁し、氷上で30分間インキュベートした。1%BSA/PBS中での2回の洗浄の後、細胞ペレットを、1%パラホルムアルデヒド中に再懸濁した。マウスIgGを、陰性対照として含めた。1ウェル当たり2万(20,000)個の事象を、BD LSR IIフローサイトメーター上で獲得し、FlowJo v7ソフトウエア(Treestar、Ashland、Oregon)を使用して解析した。対数のFSC対SSCのドットプロット中で、細菌細胞に関するゲーティング後の各試料について、PEチャネルの平均蛍光強度(MFI)を決定した。MFIが、対照のマウスIgGのMFIの3倍である場合に、MFIを陽性とみなした。
rLP2086タンパク質とポリソルベート80の結合
rLP2086タンパク質AおよびBのそれぞれに結合しているポリソルベート80の安定性を理解するために、200μg/mLサブファミリーAをアルミニウム(Al)と共に用いて製剤化したrLP2086試料および200μg/mLサブファミリーBを用いて製剤化した別のrLP2086試料の両方を、2〜8℃および25℃で保存し、それらのタンパク質およびポリソルベート80の含有量について5カ月後に試験した。また、プラセボ(タンパク質を有さない緩衝液+Al)についても解析した。プラセボ中のポリソルベート80の分布を、図14に示し、一方、サブファミリーAタンパク質およびサブファミリーBタンパク質についてのポリソルベート80の分布をそれぞれ、図15および図16に示す。図17に示すように、サブファミリーBについての相対効力(%)を、結合型モル比と比較した。
図14に示すように、総%ポリソルベート80と上清中の%ポリソルベート80とが同じであり(0.017%)、このことは、ポリソルベート80は、アルミニウムに結合することも、ペレット中に捕捉されることもなかったことを示している。さらに、ポリソルベート80は、2〜8℃および25℃の両方で5カ月後も安定であった。
臨界モル比の研究
rLP2086の安定性に必要なポリソルベート80の臨界濃度を決定するために、表1に記載するように、200μg/mLおよび400μg/mLのサブファミリーAのみ、サブファミリーBのみ、ならびにサブファミリーAおよびBの両方を、異なるポリソルベート80の濃度と共に含有する40個のrLP2086製剤を調製した。各試料について、総タンパク質および結合型タンパク質、ならびに全体、上清およびペレットの%ポリソルベート80を、時間ゼロ(T0)、14日目および1カ月目において、2〜8℃および25℃の両方で決定した。この研究から得られた結果を図18〜図24に示す。
上清、ペレットおよび全体のポリソルベート80の濃度を、リン酸アルミニウムを有するrLP2086製剤試料40個全てについて決定した。全体および結合型のモル比を、サブファミリーAおよびBの両方について決定したが、200μg/mLにおける0.005%ポリソルベート80(5.4のモル比)以下を含有する両方のサブファミリーについては、それぞれ図18および図19に示すように、全体のモル比と結合型モル比とが類似するように見える。しかし、0.0065%ポリソルベート80(7.0のモル比)以上を含有する試料については、サブファミリーBについての全体のモル比が、結合型モル比よりもはるかに高かった。また、図20に記載するように、各400μg/mLにおけるサブファミリーA、サブファミリーBおよびサブファミリーA+Bについての全体のモル比と結合型モル比とについてのデータは、0.008%ポリソルベート80(8.6のモル比)以下を含有する製剤については同様に近かったが、0.017%ポリソルベート80(18.4のモル比)を含有する製剤については、全体のモル比が結合型モル比よりもはるかに高かった。
経時的なポリソルベート80の結合
上清およびペレット中のパーセント(%)ポリソルベート80を、AlPO4を有するサブファミリーAおよびBの製剤試料について、T0、14日目/25℃、1カ月目/4℃、および1カ月目/25℃において決定した。サブファミリーAおよびBの製剤試料の両方について、上清中の%ポリソルベート80は、2〜8℃で保存した試料については比較的同じであった。しかし、上清中の%ポリソルベート80は、25℃で保存した試料については、わずか14日後でさえ劇的に減少した。サブファミリーAおよびBの両方について、ペレット中の%ポリソルベート80は、T0/5℃および1カ月目/5℃においては比較的類似していた。しかし、上清中の%ポリソルベートは、25℃で保存した試料、とりわけ、0.008%ポリソルベート80(8.6のモル比)以上を含有するサブファミリーBについては顕著に増加した。また、%ポリソルベート80を、上清およびペレット中で、AlPO4を有するrLP2086サブファミリーAおよびBの製剤について、T0、14日目/25℃、1カ月目/4℃、および1カ月目/25℃において決定した。図21に示すように、ポリソルベート80の濃度は、0.008%を含有する試料については、4つの時点全てについておよそ同じであった。しかし、ポリソルベート80の濃度は、25℃で保存した、0.017%ポリソルベート80を含有する試料については増加した。ポリソルベート80は、0.008%以下のポリソルベート80を含有する試料の上清中には見出されなかった。図22に示すように、結合型モル比は、0.008%以下のポリソルベート80を含有する試料については、4つの時点全てにおいて安定であった。しかし、結合型モル比は、25℃で保存した、0.017%ポリソルベート80を含有する試料については増加した。
界面活性剤濃度とrLP2086サブファミリーB抗原の効力
ポリソルベート80の種々の濃度を伴う、さらなる安定性の研究により、効力を維持するためのポリソルベート80対タンパク質のモル比の臨界が裏付けられた。1つの実験では、免疫原性組成物を、200μgの投与量(400μg/mLの総タンパク質濃度)で、0.5mg/mLアルミニウム(リン酸アルミニウムとして)を有し、0.01%、0.02%、0.05%または0.1%のポリソルベート80(5.3、10.7、26.7および53.4のポリソルベート80対rLP2086タンパク質の対応するモル比)でスパイクした10mMヒスチジン緩衝溶液(HBS)中、pH6.3において製剤化した。製剤化した試料は、25℃でインキュベートし、対照試料は、2〜8℃で保存した。時間「0」においては、0.1%までのポリソルベート80の濃度では、効力の顕著な変化はなかった。しかし、より長い期間については、2〜8℃および25℃において、効力の低下が、温度およびポリソルベート80の濃度の関数として観察された。免疫原性組成物中のポリソルベート80の濃度を、0.01%から0.1%まで増加させると、安定性の3カ月目の時点で、25℃および2〜8℃においてそれぞれ、サブファミリーBタンパク質の効力が10%未満および25%に低下することが示された(図1)。
アルミニウム濃度とrLP2086サブファミリーA抗原およびB抗原の効力
いくつかの実験を実施して、サブファミリーAタンパク質およびサブファミリーBタンパク質の両方の95%超の結合を確保するのに最適なリン酸アルミニウムのレベルを決定した。最初の研究は、pH6.5における製剤化の最適化に焦点を合わせた。製剤を、サブファミリーAタンパク質およびサブファミリーBタンパク質に由来するそれぞれのタンパク質の200μg/mLを標的投与量として、0.02%ポリソルベート80および0.25mg/mLまたは0.5mg/mLのいずれかのアルミニウム(リン酸アルミニウムとして)を有するpH6.5の10mMヒスチジン緩衝液中に調製した。サブファミリーBタンパク質は、サブファミリーAタンパク質よりも低い程度でリン酸アルミニウムに結合した(図7)。アルミニウム含有量を0.25mg/mLから0.5mg/mLに増加させると、サブファミリーBタンパク質の結合が、>80%に増加した。タンパク質とアルミニウム懸濁液との間の結合機構が大部分はイオン性の相互作用であることから、懸濁液のpHが、結合に影響を及ぼす要因である。
緩衝剤としてのコハク酸塩およびヒスチジン
一連の製剤を調製して、コハク酸塩中とヒスチジン中とで、rLP2086サブファミリーAタンパク質およびBタンパク質の結合、ならびにpH、ポリソルベート80およびMgCl2の結合に対する作用を比較した(表2)。pH、緩衝液、タンパク質およびポリソルベートの濃度を変化させることによる製剤化の変数および/または限界下での製剤のロバスト性を評価した(図25および26)。アルミニウムとサブファミリーAタンパク質およびサブファミリーBタンパク質の結合は、使用した緩衝液(ヒスチジンまたはコハク酸)にかかわらず類似していた。
安全性、耐容性および免疫原性の研究
0および2カ月目の投与;0、2および6カ月目の投与;0および2カ月目の投与、続いて、12カ月目の追加免疫の投与のいずれかの投与計画に従って、研究を実施して、健常な思春期の集団において、投与したrLP2086ワクチンの安全性、耐容性および免疫原性を評価した。
A.来診1
来診1、1日目、ワクチン接種1の際に、対象は、最初に採血され、次いで、ワクチン接種を受ける。来診1の採血およびワクチン接種1は、同日に行う。ワクチン接種の前に、血液試料(およそ20mL)を、対象から収集する。群1、2、3および4に無作為化した対象については、rLP2086ワクチンの単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。群5の対象については、生理食塩水の単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。
B.来診2(来診1の42〜70日後)、ワクチン接種2
群1、2および3については、rLP2086ワクチンの単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。群4および5については、生理食塩水の単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。
C.来診3(来診2の28〜42日後)、ワクチン接種2後の採血
血液試料(およそ20mL)を、対象から収集する。
D.来診4(来診2の105〜126日後)、ワクチン接種3
群2、4および5については、rLP2086ワクチンの単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。群1および3については、生理食塩水の単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。
E.来診5(来診4の28〜42日後)、ワクチン接種3後の採血
血液試料(およそ20mL)を、対象から収集する。
F.来診6(来診4の161〜175日後)、ワクチン接種4
来診6時に、対象は、最初に採血され、次いで、ワクチン接種を受ける。来診6の採血およびワクチン接種4は、同日に行う。ワクチン接種の前に、血液試料(およそ20mL)を、対象から収集する。群3および5については、rLP2086ワクチンの単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。群1、2および4の対象については、生理食塩水の単回の0.5mLの筋肉内注射を、上部三角筋内に投与する。
G.来診7(来診6の28〜42日後)、ワクチン接種4後の採血
血液試料(およそ20mL)を、対象から収集する。
この研究の主要な目標は、LP2086サブファミリーAタンパク質およびLP2086サブファミリーBタンパク質を発現するMnB株を用いて実施するSBAにより測定する場合の60μg、120μgおよび200μgのrLP2086ワクチンの免疫原性を評価することであった。
Claims (52)
- ナイセリア・メニンギティディス血清群B LP2086サブファミリーBポリペプチド、ナイセリア・メニンギティディス血清群B LP2086(fHBP)サブファミリーAポリペプチド、界面活性剤、およびアルミニウムを含み、ここで界面活性剤対タンパク質のモル比が1:1〜5:1の間であり、95%より多いサブファミリーBポリペプチドがアルミニウムに結合しており、凍結乾燥されていない、免疫原性組成物。
- 界面活性剤対タンパク質のモル比が、1.4:1〜4.2:1の間である、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- 界面活性剤対タンパク質のモル比が、2.8:1である、請求項2に記載の免疫原性組成物。
- 界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である、請求項1から3のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 界面活性剤が、ポリソルベート界面活性剤である、請求項4に記載の免疫原性組成物。
- 界面活性剤が、ポリソルベート80である、請求項5に記載の免疫原性組成物。
- 多価カチオンをさらに含む、請求項1から6のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 多価カチオンが、カルシウムまたはアルミニウムである、請求項7に記載の免疫原性組成物。
- (Ca)3(PO4)2を含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- アルミニウムの濃度が、0.5mg/mlである、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- AlPO4、Al(OH)3、Al2(SO4)3およびミョウバンのうちの1つまたは複数を含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- ヒスチジンをさらに含む、請求項1から11のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- ヒスチジンの濃度が、2mM〜20mMの間である、請求項12に記載の免疫原性組成物。
- ヒスチジンの濃度が、5mM〜15mMの間である、請求項12に記載の免疫原性組成物。
- コハク酸塩をさらに含む、請求項1から11のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- コハク酸塩の濃度が、2mM〜10mMの間である、請求項15に記載の免疫原性組成物。
- コハク酸塩の濃度が、3mM〜7mMの間である、請求項15に記載の免疫原性組成物。
- コハク酸塩の濃度が、5mMである、請求項15に記載の免疫原性組成物。
- pHが、5.0〜8.0の間である、請求項1から18のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- pHが、5.8〜6.0の間である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ヒスチジンの濃度が、10mM、pH6.0である、請求項12に記載の免疫原性組成物。
- タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、10mMヒスチジン、pH6.0、および150mM NaClを含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- 200ug/mLのLP2086サブファミリーBポリペプチド、タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、10mMヒスチジン、pH6.0、および150mM NaClを含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- 200ug/mLのrLP2086サブファミリーAポリペプチド、200ug/mLのLP2086サブファミリーBポリペプチド、タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、10mMヒスチジン、pH6.0、および150mM NaClを含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、5mMコハク酸塩、pH6.0、および150mM NaClを含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- 200ug/mLのLP2086サブファミリーBポリペプチド、タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、5mMコハク酸塩、pH6.0、および150mM NaClを含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- 200ug/mLのrLP2086サブファミリーAポリペプチド、200ug/mLのLP2086サブファミリーBポリペプチド、タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、5mMコハク酸塩、pH6.0、および150mM NaClを含む、請求項1に記載の免疫原性組成物。
- 免疫原性組成物中のナイセリア・メニンギティディス由来のLP2086サブファミリーBポリペプチドの効力を安定化させるための方法であって、ここで組成物は凍結乾燥されておらず、効力とは免疫応答を上昇させる能力を意味し、1:1〜5:1の間の界面活性剤対タンパク質のモル比を有する組成物中にLP2086サブファミリーBポリペプチドを製剤化するステップを含み、ここで組成物はさらにナイセリア・メニンギティディス血清群B LP2086(fHBP)サブファミリーAポリペプチド、界面活性剤、および0.1mg/ml〜1mg/mlの間のアルミニウムを含み、ここで95%より多いサブファミリーBポリペプチドがアルミニウムに結合している、方法。
- 界面活性剤対タンパク質のモル比が、1.4:1〜4.2:1の間である、請求項28に記載の方法。
- 界面活性剤対タンパク質のモル比が、2.8:1である、請求項29に記載の方法。
- 界面活性剤が、容器中でのケイ素とポリペプチドの結合を低下させる、請求項28から30のいずれか一項に記載の方法。
- 容器が、シリンジまたはバイアルである、請求項31に記載の方法。
- 界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である、請求項28から32のいずれか一項に記載の方法。
- 界面活性剤が、ポリソルベート界面活性剤である、請求項28に記載の方法。
- 界面活性剤が、ポリソルベート80である、請求項28に記載の方法。
- 組成物が、多価カチオンをさらに含む、請求項28から35のいずれか一項に記載の方法。
- 多価カチオンが、カルシウムまたはアルミニウムである、請求項36に記載の方法。
- 組成物が、(Ca)3(PO4)2を含む、請求項28に記載の方法。
- アルミニウムの濃度が、0.5mg/mlである、請求項28に記載の方法。
- 組成物が、AlPO4、Al(OH)3、Al2(SO4)3またはミョウバンを含む、請求項28から39のいずれか一項に記載の方法。
- ヒスチジンをさらに含む、請求項28から40のいずれか一項に記載の方法。
- ヒスチジンの濃度が、2mM〜20mMの間である、請求項41に記載の方法。
- ヒスチジンの濃度が、5mM〜15mMの間である、請求項41に記載の方法。
- コハク酸塩をさらに含む、請求項28から43のいずれか一項に記載の方法。
- コハク酸塩の濃度が、2mM〜10mMの間である、請求項44に記載の方法。
- コハク酸塩の濃度が、3mM〜7mMの間である、請求項44に記載の方法。
- pHが、5.0〜8.0の間である、請求項28から46のいずれか一項に記載の方法。
- pHが、5.8〜6.0の間である、請求項47に記載の方法。
- ヒスチジンの濃度が、10mM、pH6.0である、請求項41に記載の方法。
- コハク酸塩の濃度が、5mM、pH6.0である、請求項44に記載の方法。
- サブファミリーBタンパク質を、タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、10mMヒスチジン、pH6.0、および150mM NaClを含む組成物中に製剤化する、請求項28に記載の方法。
- サブファミリーBタンパク質を、タンパク質に対して2.8:1のモル比のポリソルベート80、AlPO4としての0.5mg/mLアルミニウム、5mMコハク酸塩、pH6.0、および150mM NaClを含む組成物中に製剤化する、請求項28に記載の方法。
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