JP4159103B2 - 細胞培養構造体、細胞培養容器、スフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器およびこれらの製造方法 - Google Patents
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Description
この発明は、細胞培養構造体、細胞培養容器、スフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器およびこれらの製造方法に関するものである。
今日、創薬の開発において、細胞培養技術によって培養した細胞が、薬剤の薬理活性評価や毒性試験のシミュレーターに利用されている。
しかしながら、従来の細胞培養技術で培養した細胞は、細胞が二次元方向に広がった単層細胞であるため、生体内と同等の三次元組織を構築することができず、また、細胞が体内で有している特異的な機能を長時間維持することができず、そのことに起因してシミュレーションの精度が担保できないという問題があった。
そこで近年、生体内と同等の機能を有する三次元組織であるスフェロイドの培養が注目されている。例えば、底面がロート状のウェルに複数の単一細胞を播種し、底面でこの単一細胞を凝集および***させてスフェロイドを培養するもの（特許文献１）や、所定のポリマー混合物のキャスト液表面に水を結露させ、該結露により生じた微小水滴を蒸発させることにより得られるハニカム構造体上でスフェロイドを培養するものがある（特許文献２）。
しかしながら、前者は、培養によって生ずるスフェロイドの足場がなく細胞培養構造体又は細胞培養容器にスフェロイドが固定され難い。そのため、培地交換の際に、スフェロイドが培地とともに失われてしまうか、あるいは、培地交換の作業が極めて煩雑になり良好な培養環境を維持することが困難になるという課題があった。また、複数の細胞が凝集してスフェロイドを形成しているため、仮に癌細胞の動態をシミュレーションしようとしても、生体内で一つの癌細胞から***して形成された腫瘍の性質とスフェロイドの性質とは、厳密には異なるため、シミュレーションの精度が落ちるという課題もあった。
また、後者は、ハニカム構造体に使用する材料に制約があることや、ハニカム構造の大きさを精密に制御できないこと、構造を平面方向の形状が円であるハニカム構造以外の形状にすることが困難であること等の課題があった。また、ハニカム構造を作製するのに非常に時間が掛かる他、コストも高く、大量生産に向かないという課題もあった。また、用いられている細胞は、肝細胞のような複数の細胞が協働していても評価可能な細胞であり、癌細胞のように、生体内で一つの細胞から***して形成される腫瘍のシミュレーションの評価については示唆されていない。
そこで、本発明は、形状や大きさ、材質が制御された細胞培養構造体、細胞培養容器、スフェロイド付き構造体およびスフェロイド付き容器を提供することを目的とする。また、これらを簡単かつ短時間で安価に製造する製造方法を提供することを目的とする。
上記目的を達成するために、本発明の細胞培養構造体は、セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有することを特徴とする。
この場合、細胞培養構造体は、ポリスチレン、ポリイミド、アクリル樹脂、環状オレフィン系熱可塑性樹脂、酸化アルミニウム、ガラス、石英ガラス、シリコンのいずれか１以上により形成されている方が好ましい。また、前記凹凸構造は、ナノインプリント技術を用いて形成されたものである方が好ましい。また、前記凹凸構造は、平面方向の形状が正多角形のものが良く、更に正三角形、正方形、正六角形のいずれかであるセルからなり、等方的に均一な構造である方が好ましい。また、細胞培養構造体は、１ｍｍ以下のフィルム状である方が好ましい。また、前記セルは、最大内径が３μｍ以下である方が好ましい。また、細胞培養構造体は、平面方向の面積が細胞を培養する容器、例えばマルチウェルプレートの底面の面積よりも大きく形成されている方が好ましい。
また、本発明の細胞培養構造体の製造方法は、細胞接着面として機能する凹凸構造を有する細胞培養構造体の製造方法であって、ナノインプリント技術を用いて、加工対象物にセル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続した前記凹凸構造を形成することを特徴とする。
この場合、前記凹凸構造は、平面方向の形状が正三角形、正方形、正六角形のいずれかであるセルからなり、等方的に均一な構造である方が好ましい。また、前記加工対象物は、ポリスチレン、ポリイミド、環状オレフィン系熱可塑性樹脂、アクリル樹脂、酸化アルミニウム、ガラス、石英ガラス、シリコンのいずれか１以上により形成されたものである方が好ましい。また、前記加工対象物は、１ｍｍ以下のフィルム状である方が好ましい。また、前記セルは、最大内径が３μｍ以下である方が好ましい。また、前記加工対象物は、平面方向の面積が細胞を培養する容器、例えばマルチウェルプレートの底面の面積よりも大きい方が好ましい。
本発明のスフェロイド付き構造体は、セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有する細胞培養構造体上に、この細胞培養構造体上で培養されたスフェロイドが固定されていることを特徴とする。
この場合、凹凸構造上に、周囲の単位長さ当たりの仮足の数が０．１本／μｍ以上である細胞から形成されたスフェロイドが固定されている。また、前記スフェロイドは、癌細胞から培養されたものである。また、前記スフェロイドは、直径が１０μｍ以上の大きさである方が好ましい。
また、本発明のスフェロイド付き構造体の製造方法は、セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有する細胞培養構造体上に細胞を播種すると共に培養し、スフェロイドを形成することを特徴とする。
また、本発明の細胞培養容器は、細胞を培養するための細胞培養容器であって、上述した本発明の細胞培養構造体を有することを特徴とする。
また、本発明の別の細胞培養容器は、細胞を培養するための細胞培養容器であって、上述した本発明の細胞培養構造体と、１以上の穴を有すると共に、前記細胞培養構造体を底板として結合可能な筒状部材と、を具備することを特徴とする。
また、本発明の更に別の細胞培養容器は、細胞を培養するための細胞培養容器であって、上述した本発明の細胞培養構造体と、１以上の穴を有する筒状部材と、前記細胞培養構造体を前記筒状部材と共に挟持する底板と、を具備することを特徴とする。
また、本発明の更に別の細胞培養容器は、上述した本発明の細胞培養構造体を組み込んで細胞を培養するための細胞培養容器であって、１以上の穴を有する筒状部材と、前記細胞培養構造体を前記筒状部材と共に挟持する底板と、を具備することを特徴とする。
この場合、前記筒状部材と前記細胞培養構造体との間を密封するシール部材を具備する方が好ましい。
また、本発明の細胞培養容器の製造方法は、細胞を培養するための容器に、上述した本発明の細胞培養構造体を固着することを特徴とする。
また、本発明の別の細胞培養容器の製造方法は、細胞を培養するための容器に、上述した本発明の細胞培養構造体と、１以上の穴を有する筒状部材と、を嵌合することを特徴とする。
また、本発明の細胞培養容器の製造方法は、凹凸構造を有する細胞培養構造体を、１以上の穴を有する筒状部材と、前記筒状部材の底部に配置される底板とで挟み込んで嵌合することを特徴とする。
この場合、前記筒状部材と前記細胞培養構造体との間にシール部材を配置する方が好ましい。
本発明のスフェロイド付き容器は、上述した本発明の細胞培養容器に、この細胞培養容器内で培養したスフェロイドが固定されていることを特徴とする。
本発明のスフェロイド付き容器の製造方法は、上述した本発明の細胞培養構容器内に細胞を播種し培養することを特徴とする。
本発明によれば、微細構造の形状や大きさ、材質が制御された細胞培養構造体、細胞培養容器を製造できるので、たとえば薬剤のスクリーニング評価に適したスフェロイドを簡単かつ短時間、更に低コストで培養することができる。
１００ 型
２００ 加工対象物
２０１ 多角形
２０２ 線
２０３ 溝
２１０ 細胞培養容器
２１１ 穴
２１２ 筒状部材
２１３ 基板
２１５ シール部材
２２０ 細胞培養構造体
２００ 加工対象物
２０１ 多角形
２０２ 線
２０３ 溝
２１０ 細胞培養容器
２１１ 穴
２１２ 筒状部材
２１３ 基板
２１５ シール部材
２２０ 細胞培養構造体
以下に、本発明の実施の形態を図１ないし図１４に基づいて詳細に説明する。
＜１＞細胞培養構造体
本発明の細胞培養構造体は、図１に示すように、セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有するものである。これにより、細胞が二次元方向（平面方向）に広がった単層細胞に成長するのを阻害し、三次元状のスフェロイドに成長させることができる。この際、凹凸構造の平面方向の形状は正多角形のものが良く、更に平面方向へ等方的に連続して形成できる正三角形、正方形、正六角形のものが好ましい。これにより、等方的に均一な構造上でスフェロイドを成長させることができる。
＜１＞細胞培養構造体
本発明の細胞培養構造体は、図１に示すように、セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有するものである。これにより、細胞が二次元方向（平面方向）に広がった単層細胞に成長するのを阻害し、三次元状のスフェロイドに成長させることができる。この際、凹凸構造の平面方向の形状は正多角形のものが良く、更に平面方向へ等方的に連続して形成できる正三角形、正方形、正六角形のものが好ましい。これにより、等方的に均一な構造上でスフェロイドを成長させることができる。
このように、凹凸の幅を３μｍ以下にすることで、実施例５に記載のように、平板効率が同素材からなる平滑の細胞培養基材と比して高い細胞培養構造体が得られる。この理由としては、実施例１０に記載のように、凹凸構造の幅が小さくなる程、播種された細胞は多くの仮足を成長させるようになり、細胞培養構造体への接着性が向上するためであると考えられる。ここで仮足とは、細胞質の一時的な突出で、細胞の接着や遊走に際して形成されるものである。仮足は、ガンの浸潤・転移にも関与している。運動時には、細胞膜付近でアクチンの重合による繊維ができ、この繊維がネットワークを形成することで仮足ができる。
なお、凹凸の幅は、例えば、３μｍ以下、２μｍ以下、１μｍ以下、７００ｎｍ以下、５００ｎｍ以下、２５０ｎｍ以下というように、小さくなるほど仮足を成長させることができる点で好ましい。
また、凹凸の深さ（加工対象物２００の垂直方向の寸法）は、１０ｎｍ以上、１００ｎｍ以上、２００ｎｍ以上、５００ｎｍ以上、１μｍ以上、１０μｍ以上、１００μｍ以上等種々の大きさに形成される。また、この凹凸のアスペクト比としては、０．２以上、０．５以上、１以上、２以上等種々のものがある。
また、セルの最小内径（好ましくは最大内径）やセル間の線２０２の幅は３μｍ以下、２μｍ以下、１μｍ以下、７００ｎｍ以下、５００ｎｍ以下、２５０ｎｍ以下というように、小さくなるほど仮足を成長させることができる点で好ましい。
また、細胞培養構造体の形状としては、どのようなものでも良いが、例えば、フィルム状のものや基板状（プレート状）のものを用いることができる。更に、材質は、細胞に対し無毒性のものであればどのようなものでも良く、例えば「ポリスチレン」、「ポリイミド」、「環状オレフィン共重合体（ＣＯＣ）や環状オレフィン重合体（ＣＯＰ）等の環状オレフィン系熱可塑性樹脂」、「アクリル樹脂」、「光硬化性樹脂や熱硬化性樹脂等のその他の樹脂」、「酸化アルミニウム等の金属」、「ガラス」、「石英ガラス」、「シリコン」等の材料を用いることができる。また、シリコンやガラス等からなる基板本体の表面に、「樹脂」、「フォトレジスト」、「酸化アルミニウムなどの金属」等の被覆層が形成されたものを用いることもできる。
なお、フィルム状とは、その厚さが、少なくとも１ｍｍ以下のものを指す。また、顕微鏡観察のし易さの観点からは薄い方が好ましく、５００μｍ以下、２００μｍ以下、１００μｍ以下、５０μｍ以下、４０μｍ以下等、種々の厚さのものを用いることができる。
また、細胞培養構造体の大きさは、通常の容器、例えばシャーレ又はディッシュ、マルチウェルプレート、フラスコ、チェンバースライドの底面の大きさ以上に形成される方が好ましい。例えば、マルチウェルプレートの場合には、縦７０〜９０ｍｍ、横１００〜１３０ｍｍに形成される方が良い。また、細胞培養構造体がフィルム状の場合には、マルチウェルプレートの各穴の底面の大きさ以上に形成される方が好ましい。例えば、９６穴マルチウェルプレートの場合には、約７ｍｍ以上に形成する方が良い。
また、図１（ｃ）に示すように、図１（ｂ）の隣り合う多角形２０１（正方形）同士の間に溝２０３が形成されているものも含まれる。この溝により、培養時の培地の成分を細胞又はスフェロイドの隅々にまで行き渡らせることができる。
次に、このような細胞培養構造体の製造方法について説明する。細胞培養構造体の製造方法には、加工対象物２００に対し型１００を押圧して型１００に形成された微細なパターン（凹凸構造）を転写するナノインプリント技術を用いることができる。ナノインプリント技術には、熱式のインプリントプロセス技術や光式のインプリントプロセス技術等がある。図２に熱式のインプリントプロセス技術に用いる加工装置１を示す。
加工装置１は、図２に示すように、所定のパターンを有する型１００と加工対象物２００とを押圧して、型のパターンを加工対象物２００に転写する微細加工装置であって、型１００を保持する型保持部２と、加工対象物２００を保持する加工対象物保持部１２と、加工対象物２００に対する型１００の相対的な位置およびその位置を変化させる変位速度を調節可能な変位手段５と、加工対象物２００に対する型１００の相対的な位置を検出する位置検出手段７と、型１００と加工対象物２００との間の圧力を検出する圧力検出手段８と、型１００を加熱する型加熱手段３と、型１００を冷却する型冷却手段４と、型１００の温度を検出する型温度検出手段３１と、加工対象物２００を加熱する加工対象物加熱手段１３と、加工対象物２００を冷却する加工対象物冷却手段１４と、加工対象物２００の温度を検出する加工対象物温度検出手段１３１と、位置検出手段７、圧力検出手段８、型温度検出手段３１および加工対象物温度検出手段１３１の検出情報に基づいて、変位手段５、型加熱手段３、型冷却手段４、加工対象物加熱手段１３および加工対象物冷却手段１４の作動を制御する制御手段３００と、で主に構成される。
型１００の材料は、加工対象物２００にその成分が付着することがなければどのようなものでも良く、例えば「ニッケル等の金属」、「セラミックス」、「ガラス状カーボン等の炭素素材」、「シリコン」などが用いられる。また、型１００は、加工対象物２００に押圧して加工対象物２００を加工し得るものであればどのようなものでもよいが、その一端面（パターン面１００ａ）に、凹凸からなる所定のパターンが形成されている。このパターンは、上述した細胞培養構造体の凹凸構造を反転させたものである。また、このパターンは、そのパターン面１００ａに精密機械加工を施すことで形成することができる。また、型１００の原盤となるシリコン基板等にエッチング等の半導体微細加工技術によって所定の凹凸を形成した後、このシリコン基板等の表面に電気鋳造(エレクトロフォーミング)法、例えばニッケルメッキ法によって金属メッキを施し、この金属メッキ層を剥離して、凹凸からなるパターンを形成することもできる。もちろん型１００は、微細パターンが形成できるものであれば材質やその製造法が特に限定されるものではない。このパターンの凹凸の幅は、製造される細胞培養構造体の種類にもよるが、３μｍ以下、２μｍ以下、１μｍ以下、７００ｎｍ以下、５００ｎｍ以下、２５０ｎｍ以下等種々の大きさに形成される。更に、この凹凸の深さ（加工対象物２００の垂直方向の寸法）は、１０ｎｍ以上、１００ｎｍ以上、２００ｎｍ以上、５００ｎｍ以上、１μｍ以上、１０μｍ以上、１００μｍ以上等種々の大きさに形成される。また、この凹凸のアスペクト比としては、０．２以上、０．５以上、１以上、２以上等種々のものがある。更に、このパターンが占める領域は、９００ｍｍ２以上、更に好ましくは２５００ｍｍ２以上の大きさが良い。なお、この型は、成型中に加熱・冷却されるため、できる限り薄型化し、その熱容量を小さくする方が好ましい。
型保持部２は、図２に示すように、型１００を保持する型保持面２ａに、ねじやクランプ金具等の締結具で型１００を面接触するように固定可能に形成される。なお、型保持部２の構造は、型１００を型保持面２ａ上に保持するものであればどのようなものでも良く、例えば、型保持面２ａに静電吸着や真空吸着により吸着保持する構造とすることも可能である。
また、型保持部２には、型１００を加熱するための型加熱手段３、例えば非常に応答性の良いカーボンヒータを備えている。カーボンヒータは、制御手段３００によって図示しない電源からの電流供給を制御されており、型１００を所定の一定温度に維持することができる。なお、ヒータとしては、例えば、伝熱ヒータやセラミックヒータ、ハロゲンヒータ、ＩＨヒータ等を用いることも可能である。
また、型保持部２には、型１００を冷却する型冷却手段４が設けられている。型冷却手段４としては、例えばアルミニウムや銅等の熱伝導性の高い金属で形成された型保持部２の内部に水や油等の冷却液、空気や不活性ガス等の冷却気体を流すことで、型１００を冷却することができる冷却流路を用いることができる。
また、型保持部２には、型１００の温度を検出する型温度検出手段３１、例えば熱電対が設けられている。また、型温度検出手段３１は、制御手段３００に電気的に接続されており、検出した型１００の温度に関する情報を制御手段３００に伝達するように形成されている。
加工対象物保持部１２は、図２に示すように、加工対象物２００を略水平状態に保持するものであり、上面に加工対象物保持面１２ａを有した保持ステージを備えている。
この保持ステージには、加工対象物保持面１２ａに多数のバキューム孔(図示せず)が形成されており、このバキューム孔に図示しない負圧源から負圧を作用させることで、加工対象物保持面１２ａ上に、加工対象物２００を吸着保持できる構成となっている。なお、加工対象物保持部１２の構造は、加工対象物２００を加工対象物保持面１２ａに保持するものであればどのようなものでも良く、例えば、クランプ金具等の締結具で加工対象物保持面１２ａに固定したり、静電吸着で吸着保持したりする構造とすることも勿論可能である。
また、保持ステージの下部には保持した加工対象物２００を加熱するための加工対象物加熱手段１３、例えば非常に応答性の良いカーボンヒータを備えている。カーボンヒータは、制御手段３００によって図示しない電源からの電流供給を制御されており、保持ステージ上の加工対象物２００を所定の一定温度に維持することができる。なお、ヒータとしては、例えば、伝熱ヒータやセラミックヒータ、ハロゲンヒータ、ＩＨヒータ等を用いることも可能である。
また、加工対象物保持部１２には、加工対象物２００を冷却する加工対象物冷却手段１４を設けることも可能である。加工対象物冷却手段１４としては、例えばアルミニウムや銅等の熱伝導性の高い金属で形成された加工対象物保持部１２の内部に水や油等の冷却液、空気や不活性ガス等の冷却気体を流すことで、加工対象物２００を冷却することができる冷却流路を用いることができる。
また、加工対象物保持部１２には、加工対象物２００の温度を検出する加工対象物温度検出手段１３１、例えば熱電対が設けられている。また、加工対象物温度検出手段１３１は、制御手段３００に電気的に接続されており、検出した加工対象物２００の温度に関する情報を制御手段３００に伝達するように形成されている。
変位手段５は、図２に示すように、例えば、垂直方向に配置されたボールネジ５１と、このボールネジ５１を回転駆動させる電気モータ５２とから構成されている。また、ボールネジ５１の下端部と型保持部２の上面は、押圧部５３、ベアリング機構５４を介して連結されている。そして、ボールネジ５１を電気モータ５２で回転駆動することで、基台５０と上部ベース５５との間に設けられた複数例えば４本の支柱５６に対し、押圧部５３を型１００と加工対象物２００の接離方向（以下、Ｚ方向と称する）に変位させることができる。なお、電気モータ５２としては、直流モータ、交流モータ、ステッピングモータ、サーボモータ等、種々のものを用いることができる。ここで、変位手段５は、加工対象物２００に対する型１００の位置を、型１００のパターンの深さ以下の変位量で調節できる方が好ましい。具体的には、変位量を１００μｍ以下で調節することができるものが良く、好ましくは１０μｍ以下、更に好ましくは１μｍ以下、更に好ましくは１００ｎｍ以下、更に好ましくは１０ｎｍ以下、更に好ましくは１ｎｍ以下で調節できるものが好ましい。
また、変位手段５は、加工対象物２００に対する型１００の変位速度を調節できるものが好ましい。具体的には、１００μｍ／秒以下で調節できるものが良く、好ましくは１０μｍ／秒以下、更に好ましくは１μｍ／秒以下、更に好ましくは１００ｎｍ／秒以下、更に好ましくは１０ｎｍ／秒以下、更に好ましくは１ｎｍ／秒以下で調節できるものが良い。なぜなら、制御手段３００は、圧力検出手段８が検出した情報に基づいて変位手段５の作動を制御し、型１００と加工対象物２００との間の圧力を調節しているが、圧力検出手段８が検出した情報を変位手段５にフィードバックするには、多少の時間が掛かる。したがって、変位速度が大き過ぎると圧力検出手段８が検出した情報を変位手段５にフィードバックするのが遅れ、型１００と加工対象物２００との間の実際の圧力を正確に制御することができなくなるからである。
なお、ここでは、変位手段５を型保持部２側に設ける場合について説明したが、加工対象物保持部１２側に設けることも勿論可能である。また、変位手段５としては、型１００と加工対象物２００との相対的な変位量や変位速度を調節できるものであれば、ボールねじと電気モータにより構成されるものに限られず、例えば、電圧を調節して大きさ（寸法）を変化させることができる圧電素子や磁界を調節して大きさ（寸法）を変化させることができる磁歪素子を用いることもできる。また、ボールねじおよび電気モータと圧電素子又は磁歪素子の両方を用いることも勿論可能である。この場合には、型１００と加工対象物２００を大きく変位させる際に、ボールねじおよび電気モータを適用し、型１００と加工対象物２００を微小量変位させる際に、圧電素子又は磁歪素子を用いることができる。更に、油圧式のものや空圧式のもの等を用いることも勿論可能である。
変位手段５をこのように構成することによって、型１００を保持する型保持部２を上下し、加工対象物保持部１２に保持される加工対象物２００に対し、型１００のパターン面１００ａを精密に近接・押圧及び離間することができる。
位置検出手段７は、例えば、型保持部２に配置されたリニアスケールにより形成される。このリニアスケールを用いて、加工対象物２００と型保持部２との距離を測定し、その値から加工対象物２００に対する型１００の相対的な位置や変位速度を計算して検出することができる。また、位置検出手段７は、制御手段３００に電気的に接続されており、検出した型１００の位置や変位速度に関する情報を伝達するように形成されている。なお、位置検出手段７としては、リニアスケールに限らず種々のものを用いることができ、例えば、型保持部２側に設けられたレーザー測長機を用いて、加工対象物２００の位置を測定するか、加工対象物保持部１２側に設けられたレーザー測長機を用いて、型１００の位置を測定すればよい。また、電気モータに設けられたエンコーダを用いて、変位手段５の変位量から計算により測定するものでもよい。なお、位置検出手段７の分解能は、少なくとも型１００のパターンの深さ方向（Ｚ方向）の大きさ以下、あるいは、変位手段５が調節できる変位量以下の値で検出できるものが好ましい。具体的には、１００μｍ以下で検出することができるものが良く、好ましくは１０μｍ以下、更に好ましくは１μｍ以下、更に好ましくは１００ｎｍ以下、更に好ましくは１０ｎｍ以下、更に好ましくは１ｎｍ以下で検出することができるものが好ましい。
位置検出手段７をこのように構成することによって、パターンの大きさや型１００と加工対象物２００との間の圧力に応じて、加工対象物２００に対する型１００のパターン面１００ａの位置を精密に調節することができるので、パターンの転写性および離型性を向上することができる。
圧力検出手段８は、型１００と加工対象物２００との間の圧力を検出するもので、例えば、型１００と加工対象物２００との間の荷重を測定するロードセルを用いることができる。これにより、荷重を測定し、型１００のパターン面１００ａの面積で割れば型１００と加工対象物２００との間の圧力を検出することができる。また、圧力検出手段８は、制御手段３００に電気的に接続されており、検出した圧力に関する情報を伝達するように形成されている。
制御手段３００は、位置検出手段７、圧力検出手段８、型温度検出手段３１および加工対象物温度検出手段１３１の検出情報に基づいて、変位手段５、押圧手段６、型加熱手段３、型冷却手段４、加工対象物加熱手段１３および加工対象物冷却手段１４の作動を制御するもので、例えばコンピュータを用いることができる。
ここで、調節する変位速度は、加工対象物２００の材料や温度等にもよるが、例えば、１００μｍ／秒以下で調節するのが良く、好ましくは１０μｍ／秒以下、更に好ましくは１μｍ／秒以下、更に好ましくは１００ｎｍ／秒以下、更に好ましくは１０ｎｍ／秒以下、更に好ましくは１ｎｍ／秒以下で調節するのが良い。これにより、型１００と加工対象物２００の間の実際の圧力を確実に予め設定した所定値以下に調節することができる。なお、圧力検出手段８の情報に基づいて型加熱手段３および加工対象物加熱手段１３の少なくともいずれか一方を制御し、加工対象物２００の成型面２００ａの温度を変化させて、型１００と加工対象物２００との間の圧力を調節することも可能である。
この加工装置１を用いた細胞培養構造体の製造方法は以下の通りである。
まず、型１００と加工対象物２００は、成型するための所定の温度に加熱される。ここで、加工対象物２００が基板等の比較的厚みのあるものの場合には、型１００は加工対象物２００より高い温度に加熱される方が好ましく、更に好ましくは、型１００を加工対象物２００が軟化する軟化温度（ガラス転移点や融点の温度）より高い温度に加熱し、加工対象物２００はその軟化温度（ガラス転移点や融点の温度）より低い温度に加熱する方が好ましい。これにより、型１００と加工対象物２００とを押圧した際に、型１００から加工対象物２００に熱が伝達し、加工対象物２００の表面近傍のみを軟化させることができるので、成型時に加工対象物２００が潰れる等の問題を回避することができる。一方、加工対象物２００がフィルムやシートのように比較的薄いものの場合には、型１００と加工対象物２００の温度を同じか同程度の温度に加熱する。これは、熱が伝わり易く結局型１００と加工対象物２００が同じ温度になるためである。加熱する温度は、加工対象物２００の材質や型１００の材質によるが、例えば、加工対象物が軟化する軟化温度（Ｔｇ）＋２０℃以上、軟化温度（Ｔｇ）＋２５℃以上、軟化温度（Ｔｇ）＋３０℃以上等にすれば良い。勿論、この温度に限定されるものではない。
型１００と加工対象物２００とを所定温度に加熱した後、型１００と加工対象物２００とを予め設定した圧力で押圧する。この際、型１００と加工対象物２００との間の圧力は、型１００のパターンを加工対象物２００に転写できる大きさの範囲で、できる限り小さい圧力を用いる方が良い。具体的には、４ＭＰａ以下、好ましくは２ＭＰａ以下、更に好ましくは１．５ＭＰａ以下、更に好ましくは１ＭＰａ以下、更に好ましくは、０．５ＭＰａ以下、更に好ましくは０．２５ＭＰａ以下にするのが良い。これにより、従来よりも比較的小さい圧力で押圧するため、型１００と加工対象物２００との間の密着力を増加させることがなく、型崩れ等を防止して離型を容易にすることができる。
この場合、加工対象物２００に対する型１００の変位速度は、型１００と加工対象物２００との間の圧力が予め設定した圧力、例えば４ＭＰａを常に超えないように調節できる速度にする方が良い。なお、更に好ましくは、加工対象物２００に対する型１００の変位量を制御して押圧する方が好ましい。
また、型１００と加工対象物２００とを押圧し、型１００のパターンを加工対象物に転写する際には、型１００と加工対象物２００の雰囲気を真空にする方が好ましい。この場合、パターンの転写前に真空雰囲気にすれば良いが、加工対象物２００の酸化等を考慮すれば、加工対象物２００の加熱前に真空雰囲気にする方が好ましい。真空度としては、例えば４０Ｐａ以下にすれば良い。
次に、型１００と加工対象物２００とを接触させたまま、型１００と加工対象物２００を冷却し、加工対象物２００の温度をガラス転移温度（または軟化温度）以下にする。例えば、冷却温度を軟化温度（Ｔｇ）−５℃以下、軟化温度（Ｔｇ）−４５℃以下、軟化温度（Ｔｇ）−９０℃以下等にすれば良い。勿論、この温度に限定されるものではない。また、型１００と加工対象物２００との間の圧力を保持したままで冷却しても良いし、ゼロ近傍まで減圧した後に冷却しても良い。
最後に、型１００と加工対象物２００とを離型して、微細加工方法のプロセスを終了する。
なお、この場合、転写されたパターンが形成されている加工対象物上の領域は、大きい方が好ましく、例えば、９００ｍｍ２以上、更に好ましくは２５００ｍｍ２以上の大きさが良い。
これにより、精密に形状を制御された、非常に安価で、大量生産に向く細胞培養構造体、すなわち、凹凸の幅が３μｍ以下の凹凸構造を有する細胞培養構造体を製造することができる。
なお、細胞培養構造体の製造方法は、ナノインプリント技術以外の方法を用いても良く、例えば、ブラストやコロナ放電、エッチング等の他の方法により表面に凹凸構造を形成するようにしても良い。この場合、細胞培養構造体は、凹凸の幅を３μｍ以下に形成する方が良く、好ましくは、２μｍ以下、１μｍ以下、７００ｎｍ以下、５００ｎｍ以下、２５０ｎｍ以下に形成される。
また、この場合にも、細胞培養構造体の大きさは、通常の容器、例えばシャーレ又はディッシュ、マルチウェルプレート、フラスコ、チェンバースライドの底面の大きさ以上に形成される方が好ましい。例えば、マルチウェルプレートの場合には、縦７０〜９０ｍｍ、横１００〜１３０ｍｍに形成される方が良い。また、細胞培養構造体がシート又はフィルム状の場合には、マルチウェルプレートの各穴の底面の大きさ以上に形成される方が好ましい。例えば、９６穴マルチウェルプレートの場合には、約７ｍｍ以上に形成する方が良い。
＜２＞細胞培養容器
本発明の細胞培養容器２１０は、細胞を培養するための容器であって、上述した本発明の細胞培養構造体を有するものである。
＜２＞細胞培養容器
本発明の細胞培養容器２１０は、細胞を培養するための容器であって、上述した本発明の細胞培養構造体を有するものである。
容器としては、細胞を培養できるものであればどのようなものでも良く、例えば、培養用のシャーレ又はディッシュ、マルチウェルプレート、フラスコ、チェンバースライド等がある。
凹凸構造は、例えば、容器内の少なくとも一部に上述した本発明の細胞培養構造体を固着して形成すれば良い。
また、細胞培養容器がシャーレやマルチウェルプレートである場合には、例えば、図７、図８に示すように、１以上の穴２１１を有する筒状部材２１２と、プレート状の上述した細胞培養構造体２２０と、で構成するか、あるいは、図９に示すように、１以上の穴２１１を有する筒状部材２１２と、シート又はフィルム状の上述した細胞培養構造体２２０と、この細胞培養構造体２２０を筒状部材２１２との間に挟み込んで一体化する基板２１３と、で構成すれば良い。
この一体化する方法としては、種々の方法を用いることができるが、例えば、無毒性の接着剤を用いて接合したり、熱融着で接合、或いは吸着やねじによる螺合により接合したりすることができる。
無毒性接着剤には、アロンアルファ（商標名）等があり、少なくとも筒状部材２１２と細胞培養構造体２２０の間を密封するように接合すれば良い。
熱融着の場合は、少なくとも筒状部材２１２又は細胞培養構造体２２０をガラス転移温度又は融点近くまで加熱して接合する。例えば、超音波による振動エネルギーを摩擦熱に変換し、少なくとも筒状部材２１２又は細胞培養構造体２２０のいずれか一方をガラス転移温度又は融点まで加熱する超音波溶着を用いて接合すれば良い。
また、通常のシャーレやマルチウェルプレートの容器内に、所定のパターンが形成された型を押圧して、容器内の底面等に上述した細胞培養構造体と同様のパターンを転写するようにしても良い。この場合、型としては、容器の穴２１１の大きさよりわずかに小さいハンコ状のものを用い、型を容器の穴の上を移動しながら穴の中に挿入してパターンを成型するか、あるいは、このハンコ状の型を複数並べて複数の穴の中に挿入し、一括でパターンを成型すれば良い。もちろん、上述したブラストやコロナ放電、エッチング等の他の技術を用いて凹凸構造を形成することも可能である。
また、図１０、図１１に示すように、筒状部材２１２と細胞培養構造体２２０との間には、これらの間を密封するシール部材２１５、例えばシリコンゴム等からなるガスケットを配置する方が好ましい。このガスケットは、筒状部材２１２又は細胞培養構造体２２０にシリコンゴム等を塗布して一体に形成されるものでも勿論構わない。
＜３＞スフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器
次に、細胞培養構造体上又は細胞培養容器上で培養したスフェロイドを有するスフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器について説明する。
＜３＞スフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器
次に、細胞培養構造体上又は細胞培養容器上で培養したスフェロイドを有するスフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器について説明する。
上述した細胞培養構造体又は細胞培養容器上にスフェロイドにする細胞を播種し、培養することで細胞は、***を繰り返し、三次元立体状のスフェロイドとなる。
ここで使用する細胞としては、間葉系細胞、肝細胞、繊維芽細胞、内皮細胞、神経細胞、心筋細胞、グリア細胞、角膜上皮細胞、軟骨細胞、骨芽細胞、脂肪細胞等の正常な細胞や、癌細胞由来細胞株（例えば、HepG2、HuH-7）や、イモータライズ（不死化）された細胞（例えば、HHY41、NKNT-3、Fa2N-4株等）、や染色体異常を有する細胞等の異常な細胞を用いることができる。培養に使用する培地は、かかる目的の細胞の種別に応じて当業者であれば適宜調製して使用することができる。なお、本発明の細胞培養構造体および細胞培養容器は、いずれもその表面に細胞が固着する構造を有するため、培養により生じたスフェロイドはかかる構造体又は容器上に固着して形成される。この理由は、本発明の細胞培養構造体上では、非常に多くの仮足が成長し、凹凸構造にしっかりとした足場を作るためであると考えられる。ここで、本発明の細胞培養構造体上に単細胞を播種すると共に８時間培養すると、細胞の周囲に、周囲の単位長さ当たり０．１本／μｍ以上の仮足が形成される。従って、スフェロイド形成のための培養に際する培地交換は、通常の培養と同様の手法で可能であり、培地交換を行いながらスフェロイドを容易に形成できる。
スフェロイドの大きさとしては、１０μｍ以上あれば良いが、好ましくは１５〜５０μｍが良く、更に好ましくは２０〜４０μｍが良く、更に好ましくは２５〜３５μｍである方が良いが、スフェロイドを使用する目的に応じて培地交換と培養を繰り返してより大きなスフェロイドを形成することも可能である。なお、本発明における「スフェロイドの大きさ」は、細胞培養構造体又は細胞培養容器と平行の平面上における長径を指称し、光学顕微鏡観察又は電子顕微鏡観察により正確に測定することができる。
このような方法により得られるスフェロイドは、主に、単一の細胞が***することで生じたクローン細胞によって構成される。通常、生体内にできる癌細胞は、従来技術のスフェロイド（特許文献１に記載のスフェロイド）のように複数の細胞が凝集してなるものではなく、単一細胞が***して形成されるため、本発明では、生体内にできる癌細胞に、より近い性質のスフェロイドを培養することができ、より確度の高いスクリーニングを行うことができる。
また、かかるスフェロイドは生体内に存在する組織と様々な点で共通した性質を有しており、単層培養と比して、より生体内の組織環境を再現している。
また、本発明により得られるスフェロイドは、様々な材質に人為的に制御された微細構造上で培養されることにより、この微細構造が形成された固相への固着面積が制御される。すなわち、その固着面積を、スフェロイドの全表面積の５０％未満、好ましくは４０％未満、更に好ましくは３０％未満に調整することが可能である。
また、このように固相へ固着したスフェロイドは、従来の非固着型スフェロイド（アガロースゲル内で成型されたスフェロイドやフラスコ内で培地を流動させて成型させたスフェロイド）と比して、細胞外基質に対する細胞接着因子、細胞接着タンパク質又は細胞骨格タンパク質を強く発現していることが好ましい。かかる細胞接着因子・細胞接着タンパク質・細胞骨格タンパク質としては、たとえばインテグリン、カドヘリン、アクチンが例示される。これらはいずれも細胞接着に密接に関連していることが知られている。生体内の組織や腫瘍は、その三次元構造を維持すべくかかる因子・タンパク質を発現しているため、これらを発現しているスフェロイドは特に生体内における組織や腫瘍の特性を維持しているといえる。本発明により得られるスフェロイドはかかる因子・タンパク質を、従来のスフェロイドと比して強く発現している。これらの因子・タンパク質の発現量は、たとえばこれらの因子・タンパク質に対する特異的結合対（抗体、レセプター、レクチンなど当業者であれば適宜選択して使用することができる）を利用した免疫染色、ウェスタンブロッティングなどで確認することができる。
例えば、アクチンの測定は下記の方法によって行うことができる。
スフェロイドを形成する培養細胞を固定し、界面活性剤等で処理を行い、細胞を溶解させ、更にBSA（Bovine serum alubumin）等でブロッキングする。この様にして調整したサンプルに、抗アクチン抗体等を結合させて、結合した抗体に対して例えば蛍光物質等の標識物質でラベルした二次抗体等を結合させ、この標識物質等を検出、定量することでアクチンを測定できる。
スフェロイドを形成する培養細胞を固定し、界面活性剤等で処理を行い、細胞を溶解させ、更にBSA（Bovine serum alubumin）等でブロッキングする。この様にして調整したサンプルに、抗アクチン抗体等を結合させて、結合した抗体に対して例えば蛍光物質等の標識物質でラベルした二次抗体等を結合させ、この標識物質等を検出、定量することでアクチンを測定できる。
また、さらに本発明により得られるスフェロイドは、たとえば酸素の欠乏や、栄養の不足といった腫瘍や組織と同様の環境を実現している。このことは、たとえば酸素が不足した状態で発現するタンパク質（たとえばＨＩＦ−１αタンパク質等）の高発現（タンパク質量で単層培養時の１．５倍以上、好ましくは２倍以上の発現）や、栄養が不足した状態で観察される現象（たとえばＡＭＰＫのリン酸化亢進等：たとえばＡＭＰＫのリン酸化亢進であれば単層培養時の１．５倍以上、好ましくは２倍以上、より好ましくは２．５倍以上の亢進）を確認できることで裏付けられる。これらはそれぞれに対する特異的結合対（抗体やレセプターなど）を使用したウェスタンブロット、免疫染色などにより当業者であれば適宜観察することができる。
このようにして製造された本発明により得られるスフェロイドは、薬剤のスクリーニングのために使用することができる。すなわち、細胞培養基材又は細胞培養容器に固着したスフェロイドに対して、化学物質、薬剤等を添加し、スフェロイドを形成する細胞に対して何らかの効果を有するものをスクリーニングすることができる。
また、本発明のスフェロイドは、疾病の悪性度鑑別のために使用することもできる。すなわち、生体から採取した組織片や腫瘍片を、細胞毎に分散させた後、本発明のスフェロイドとする課程において増殖能の評価を行ったり、或いはかかるスフェロイドからの遊離細胞の有無を評価することにより癌転移能の評価をすることができる。
また、本発明のスフェロイドは、再生医療のために使用することもできる。すなわち、健常な組織より採取した細胞より本発明のスフェロイドを調製し、かかるスフェロイドを患者や治療を要する動物の該当組織に直接的又は間接的に注入することで、該当組織の機能の維持・再生に使用することができる。
また、本発明のスフェロイドは、食品機能評価のために使用することもできる。すなわち、細胞培養基材又は細胞培養容器に固着したスフェロイドに対して、機能性食品、食品中の活性成分等を添加し、スフェロイドを形成する細胞に対して何らかの効果を有するものをスクリーニングすることができる。
また、本発明のスフェロイドは、食品又は薬剤の安全性評価のために使用することもできる。すなわち、細胞培養基材又は細胞培養容器に固着したスフェロイドに対して、食品・薬剤等を添加し、スフェロイドを形成する細胞の形態的・生化学的変化を検証することで、これらの物質の安全性評価をすることができる。
以下、本発明を実施例により、より具体的に説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。
加工対象物としては、ガラス転移温度｛軟化温度（Ｔｇ）｝が１３６℃のシクロオレフィンポリマーからなる膜厚４０μｍおよび１００μｍの透明なフィルム（日本ゼオン株式会社製：ＺＦ１４）を用いた。
なお、微細成型の評価には、SCIVAX社製の微細成型装置（VX-2000N-US）を使用した。金型は、加工対象物に転写した際に、ラインアンドスペースからなる凹凸構造を転写可能なパターンを有するものと、正六角形のハニカム構造を転写可能なパターン（ハニカム構造を反転させたパターン）を有するものの二つを用いた。また、この金型は、ニッケル製のもので、転写可能領域が５０ｍｍ×５０ｍｍ（金型の外形は５５ｍｍ×５５ｍｍ）：面積が２５００ｍｍ２の正方形であるものを用いた。ラインアンドスペースからなる凹凸構造は、凹凸の深さが１μｍで、凹凸の幅が、１０μｍ、５μｍ、４μｍ、３μｍ、２μｍ、１μｍ、７００ｎｍ、５００ｎｍの８種類の領域が形成されているものとした。また、ハニカム構造は、線幅が２５０ｎｍでこの線の高さが３８０ｎｍ（アスペクト比が約１．５）、一つのセル（六角形）の最大内径が２μｍ（すなわち、線幅も含めた最大外径が２．５μｍ）とした。
加工対象物をシリコン基板上に載置した後、ガラス転移温度｛軟化温度（Ｔｇ）｝＋２５℃（１６１℃）に加熱し、ガラス転移温度｛軟化温度（Ｔｇ）｝＋２５℃（１６１℃）に加熱した金型を５μｍ／秒の速度で該フィルム表面に押し付け、金型上部に取り付けた荷重センサーが４５００Ｎ（圧力が約１．５Ｍｐａ）に達したところで、その荷重で６００秒間保持した。
その後、膜厚４０μｍのフィルムに対しては、金型の圧力を一定に保持しながら、ガラス転移温度｛軟化温度（Ｔｇ）｝−４６℃（９０℃）まで冷却し、冷却完了後、金型を１０μｍ／秒の速度でフィルムから離型した。走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）で観察したところ、転写領域全面に伸びや剥離の無い均一で良好な凹凸構造（ラインアンドスペースおよびハニカム構造）のパターンが転写されていた。ハニカム構造からなるパターンの転写後の平面写真（倍率：１万倍）を図３に、斜視方向からの写真（倍率：５千倍）を図４に示す。
また、膜厚が１００μｍのフィルムに対しては、金型の圧力を一定に保持しながら、ガラス転移温度｛軟化温度（Ｔｇ）｝−５℃（１３１℃）まで冷却し、冷却完了後、金型を１０μｍ／秒の速度でフィルムから離型した。走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）で観察したところ、転写領域全面に伸びや剥離の無い均一で良好なハニカム構造のパターンが転写されていた。転写後の平面写真（倍率：１万倍）を図５に、斜視方向からの写真（倍率：２万倍）を図６に示す。
厚さ３ｍｍのポリスチレン製プレートを常法のブラストにより表面を粗面処理し、凹凸を有するフィルムを作成することができる。
膜厚４０μｍのポリスチレン製フィルムを常法のコロナ放電により表面を粗面処理し、凹凸を有するフィルムを作成することができる。
実施例１で製造した厚さ４０μｍの細胞培養構造体（ハニカム構造）を１．５ｃｍ角の大きさに切り取り、これを直径が３．５ｃｍのシャーレ内に熱融着により固定して本発明細胞培養容器を調製した。
実施例４で調製した本発明細胞培養容器内にα−ＭＥＭ培地（１０％牛胎児血清、２０ｍｍｏｌ／ｌＨＥＰＥＳ、８ｍｍｏｌ／ｌ炭酸水素ナトリウム、４２０００単位／ｌペニシリン、および０．０３ｇ／ｌストレプトマイシンを含む）２ｍｌとともにヒトグリオーマ由来の細胞株Ｕ２５１細胞を１０００個播種した。これを３７℃、２％ＣＯ２の雰囲気下で７日間（途中、３日目と６日目に培地交換を行った）培養したところスフェロイドが形成され（図１２参照）、本発明のスフェロイド付き構造体が形成された。
また、このようにして形成されたスフェロイドについて、ウェスタンブロット法により、ＨＩＦ−１αタンパク質の発現量（抗ＨＩＦ−１ウサギポリクローナル抗体を使用：サンタクルーズバイオテック社製）及びＡＭＰＫのリン酸化（抗ＡＭＰＫウサギポリクローナル抗体：セルシグナリングテクノロジー社製）を培養開始７日後に確認した。対照としては、従来のポリスチレン製培養皿で同様の細胞密度で播種、培地交換して培養したＵ２５１細胞を使用した。この結果を図１３に示す。なお、ウェスタンブロット法は、次の方法により行った。まず、培養細胞より抽出した総蛋白質20μgをプレキャストゲル(ATTO製ポリアクリルアミドゲルcパジェル)で電気泳動を行った。電気泳動後に、ブロッティング緩衝液(20 mM Glycine/25mMTrisHCl/20%Methanol, pH 8.0)でPVDF膜(ATTO製クリアブロット・Ｐ膜)に転写を行った。転写後のPVDF膜を5%BSA・TBST(20 mM Tris-HCl/0.15 M NaCl/0.1 % Tween（商標名） 20,pH 8.0)溶液でブロッキングを行った後に、1次抗体を含む1%BSA・TBST溶液中で1時間インキュベーションした。TBST溶液で十分に洗浄後、2次抗体を含む溶液中で1時間インキュベーションした。十分に洗浄後、化学発光法(GL/Amersham製ECLplus)で検出した。
この結果より、培養されたスフェロイドは、ＨＩＦ−１αタンパク質の発現量が単層細胞よりも多く、また、単層細胞よりもＡＭＰＫのリン酸化が亢進していることから、単層細胞よりも生体内の組織に近い性質を示すことがわかる。このことは、本発明により得られるスフェロイドが、薬剤耐性、毒性などの試験に有用であることを示している。
また、このようにして形成されたスフェロイドについて、アクチンフィラメントの測定を行った。アクチンフィラメントの測定は、次の方法により行った。まず、培養細胞をPBSで２回洗浄する。3%Folmaldehyde/PBSで15分間固定してPBSで２回洗浄する。次に、0.1%TritonX-100/PBSで15分間処理を行いPBSで２回洗浄する。次に、1%BSA/PBSで30分間ブロッキングして２回PBSで洗浄する。次に、1μg/ml抗マウスアクチンモノクローナル抗体/0.1%BSA/PBS中で１時間インキュベーション後、PBSで３回洗浄する。次に、1μg/mlAlexaFlour488/0.1%BSA/PBSで１時間インキュベーション後、PBSで４回洗浄する。最後に、glycerol/PBSで封入し蛍光顕微鏡で観察する。その結果、アクチンフィラメントの増加を確認できる。
なお、上述の本発明スフェロイド付き構造体の調製に際し、平板効率とスフェロイド生成率を測定した。この結果を図１４に示す。
平板効率は、単位面積あたりに播種した細胞数に対する培養開始３日経過時に単位面積あたりにコロニーを形成している数の割合（％）として算出し、スフェロイド生成率は、単位面積あたりに播種した細胞数に対する培養開始７日経過時に単位面積あたりに形成されたスフェロイド数の割合（％）として算出した。
実施例４で調製した本発明細胞培養容器内にα−ＭＥＭ培地（１０％牛胎児血清、２０ｍｍｏｌ／ｌＨＥＰＥＳ、８ｍｍｏｌ／ｌ炭酸水素ナトリウム、４２０００単位／ｌペニシリン、および０．０３ｇ／ｌストレプトマイシンを含む）２ｍｌとともにヒト頭頚部由来の細胞株ＳＱ２０Ｂ細胞を１０００個播種した。これを３７℃、２％ＣＯ２の雰囲気下で７日間（途中、３日目と６日目に培地交換を行った）培養したところスフェロイドが形成され（図１５参照）、本発明スフェロイド付き構造体が形成された。
実施例４で調製した本発明細胞培養容器内にα−ＭＥＭ培地（１０％牛胎児血清、２０ｍｍｏｌ／ｌＨＥＰＥＳ、８ｍｍｏｌ／ｌ炭酸水素ナトリウム、４２０００単位／ｌペニシリン、および０．０３ｇ／ｌストレプトマイシンを含む）２ｍｌとともにヒト大腸癌由来の細胞株ＳＷ４８０細胞を１０００個播種した。これを３７℃、２％ＣＯ２の雰囲気下で７日間（途中、３日目と６日目に培地交換を行った）培養したところスフェロイドが形成され（図１６参照）、本発明スフェロイド付き構造体が形成された。
実施例４で調製した本発明細胞培養容器内にα−ＭＥＭ培地（１０％牛胎児血清、２０ｍｍｏｌ／ｌＨＥＰＥＳ、８ｍｍｏｌ／ｌ炭酸水素ナトリウム、４２０００単位／ｌペニシリン、および０．０３ｇ／ｌストレプトマイシンを含む）２ｍｌとともにヒト大腸癌由来の細胞株ＨＴ２９細胞を１０００個播種した。これを３７℃、２％ＣＯ２の雰囲気下で７日間（途中、３日目と６日目に培地交換を行った）培養したところスフェロイドが形成され（図１７参照）、本発明スフェロイド付き構造体が形成された。
実施例１で製造した厚さ４０μｍの細胞培養構造体（ラインアンドスペース）を１．５ｃｍ角の大きさに切り取り、これを直径が３．５ｃｍのシャーレ内に熱融着により固定して本発明細胞培養容器を調製した。
実施例９で調製した本発明細胞培養容器内にα−ＭＥＭ培地（１０％牛胎児血清、２０ｍｍｏｌ／ｌＨＥＰＥＳ、８ｍｍｏｌ／ｌ炭酸水素ナトリウム、４２０００単位／ｌペニシリン、および０．０３ｇ／ｌストレプトマイシンを含む）２ｍｌとともに正常肝細胞株を１０００個播種した。これを３７℃、２％ＣＯ２の雰囲気下で８時間培養したところ仮足を有するスフェロイドが細胞培養構造体上に形成された。
また、このようにして形成されたスフェロイドについて、スフェロイドの周囲の長さと、スフェロイドの周囲に形成されている仮足の数を測定し、周囲の単位長さ（１μｍ）当たりに対して成長している仮足の本数（本／μｍ）を計測した。この結果を表１および図１８に示す。
この結果より、スフェロイドの仮足の数は、ラインアンドスペースの凹凸の幅の大きさが３μｍ以下になると急激に増加していることがわかる。
Claims (32)
- セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有することを特徴とする細胞培養構造体。
- ポリスチレン、ポリイミド、アクリル樹脂、環状オレフィン系熱可塑性樹脂、酸化アルミニウム、ガラス、石英ガラス、シリコンのいずれか１以上により形成されていることを特徴とする請求項１記載の細胞培養構造体。
- 前記凹凸構造は、ナノインプリント技術を用いて形成されたものであることを特徴とする請求項１又は２記載の細胞培養構造体。
- 前記凹凸構造は、平面方向の形状が正多角形であることを特徴とする請求項１ないし３のいずれかに記載の細胞培養構造体。
- 前記凹凸構造は、平面方向の形状が正三角形、正方形、正六角形のいずれかであるセルからなり、等方的に均一な構造であることを特徴とする請求項１ないし４のいずれかに記載の細胞培養構造体。
- １ｍｍ以下のフィルム状であることを特徴とする請求項１ないし５のいずれかに記載の細胞培養構造体。
- 前記セルは、最大内径が３μｍ以下であることを特徴とする請求項１ないし６のいずれかに記載の細胞培養構造体。
- 平面方向の面積が細胞を培養する容器の底面の面積よりも大きく形成されていることを特徴とする請求項１ないし７のいずれかに記載の細胞培養構造体。
- 平面方向の面積がマルチウェルプレートの底面の面積よりも大きく形成されていることを特徴とする請求項１ないし７のいずれかに記載の細胞培養構造体。
- 細胞接着面として機能する凹凸構造を有する細胞培養構造体の製造方法であって、
ナノインプリント技術を用いて、加工対象物にセル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続した前記凹凸構造を形成することを特徴とする細胞培養構造体の製造方法。 - 前記凹凸構造は、平面方向の形状が正三角形、正方形、正六角形のいずれかであるセルからなり、等方的に均一な構造であることを特徴とする請求項１０記載の細胞培養構造体の製造方法。
- 前記加工対象物は、ポリスチレン、ポリイミド、環状オレフィン系熱可塑性樹脂、アクリル樹脂、酸化アルミニウム、ガラス、石英ガラス、シリコンのいずれか１以上により形成されたものであることを特徴とする請求項１０又は１１記載の細胞培養構造体の製造方法。
- 前記加工対象物は、１ｍｍ以下のフィルム状であることを特徴とする請求項１０ないし１２のいずれかに記載の細胞培養構造体の製造方法。
- 前記セルは、最大内径が３μｍ以下であることを特徴とする請求項１０ないし１３のいずれかに記載の細胞培養構造体の製造方法。
- 前記加工対象物は、平面方向の面積が細胞を培養する容器の底面の面積よりも大きいことを特徴とする請求項１０ないし１４のいずれかに記載の細胞培養構造体の製造方法。
- 前記加工対象物は、平面方向の面積がマルチウェルプレートの底面の面積よりも大きいことを特徴とする請求項１０ないし１４のいずれかに記載の細胞培養構造体の製造方法。
- セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有する細胞培養構造体上に、この細胞培養構造体上で培養されたスフェロイドが固定されていることを特徴とするスフェロイド付き構造体。
- 凹凸構造上に、周囲の単位長さ当たりの仮足の数が０．１本／μｍ以上である細胞から形成されたスフェロイドが固定されていることを特徴とする請求項１７記 載のスフェロイド付き構造体。
- 前記スフェロイドは、癌細胞から培養されたものであることを特徴とする請求項１７又は１８記載のスフェロイド付き構造体。
- 前記スフェロイドは、直径が１０μｍ以上の大きさであることを特徴とする請求項１７ないし１９のいずれかに記載のスフェロイド付き構造体。
- セル間の幅が３μｍ以下、深さが１０ｎｍ以上で平面方向の形状が多角形であると共に最小内径が３μｍ以下のセルを複数連続して形成された細胞接着面として機能する凹凸構造を有する細胞培養構造体上に細胞を播種すると共に培養し、スフェロイドを形成することを特徴とするスフェロイド付き構造体の製造方法。
- 細胞を培養するための細胞培養容器であって、
請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体を有することを特徴とする細胞培養容器。 - 細胞を培養するための細胞培養容器であって、
請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体と、
１以上の穴を有すると共に、前記細胞培養構造体を底板として結合可能な筒状部材と、
を具備することを特徴とする細胞培養容器。 - 細胞を培養するための細胞培養容器であって、
請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体と、
１以上の穴を有する筒状部材と、
前記細胞培養構造体を前記筒状部材と共に挟持する底板と、
を具備することを特徴とする細胞培養容器。 - 請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体を組み込んで細胞を培養するための細胞培養容器であって、
１以上の穴を有する筒状部材と、
前記細胞培養構造体を前記筒状部材と共に挟持する底板と、
を具備することを特徴とする細胞培養容器。 - 前記筒状部材と前記細胞培養構造体との間を密封するシール部材を具備することを特徴とする請求項２３ないし２５のいずれかに記載の細胞培養容器。
- 細胞を培養するための容器に、請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体を固着することを特徴とする細胞培養容器の製造方法。
- 請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体と、１以上の穴を有する筒状部材と、を嵌合することを特徴とする細胞培養容器の製造方法。
- 請求項１ないし９のいずれかに記載の細胞培養構造体を、１以上の穴を有する筒状部材と、前記筒状部材の底部に配置される底板とで挟み込んで嵌合することを特徴とする細胞培養容器の製造方法。
- 前記筒状部材と前記細胞培養構造体との間にシール部材を配置することを特徴とする請求項２８又は２９記載の細胞培養容器の製造方法。
- 請求項２２ないし２６のいずれかに記載の細胞培養容器に、この細胞培養容器内で培養したスフェロイドが固定されていることを特徴とするスフェロイド付き容器。
- 請求項２２ないし２６のいずれかに記載の細胞培養構容器内に細胞を播種し培養することを特徴とするスフェロイド付き容器の製造方法。
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Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2010084613A1 (ja) | 2009-01-26 | 2010-07-29 | アイランド ジャイアント デベロップメント エルエルピー | 細胞培養足場の製造方法 |
| WO2011077894A1 (ja) * | 2009-12-25 | 2011-06-30 | Ｓｃｉｖａｘ株式会社 | スフェロイド形成促進方法およびスフェロイド形成促進培地 |
| JP5614733B2 (ja) * | 2012-09-05 | 2014-10-29 | Jsr株式会社 | 細胞の上皮性維持に作用する物質のスクリーニング方法 |
| WO2017146124A1 (ja) | 2016-02-22 | 2017-08-31 | 国立大学法人大阪大学 | 立体的細胞組織の製造方法 |
| KR20190001726A (ko) * | 2017-06-28 | 2019-01-07 | 충남대학교산학협력단 | 세포배양용 용기의 제조방법 및 이를 이용한 세포배양 방법 |
| US11254917B2 (en) | 2016-02-22 | 2022-02-22 | Toppan Printing Co., Ltd. | Method of promoting spheroid formation |
| US11447743B2 (en) | 2014-04-22 | 2022-09-20 | Nippon Shokubai Co., Ltd. | Cell culture substrate comprising fluorine-containing polymer on its surface |
Families Citing this family (51)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR100946643B1 (ko) * | 2007-11-30 | 2010-03-09 | 코아스템(주) | 세포배양장치 및 이를 구비한 대용량 자동화 세포배양기 |
| JP4578517B2 (ja) * | 2007-12-26 | 2010-11-10 | Ｓｃｉｖａｘ株式会社 | インプリント装置およびインプリント方法 |
| JP2010022366A (ja) * | 2008-06-16 | 2010-02-04 | Scivax Kk | スフェロイド作製方法 |
| JP4553038B2 (ja) * | 2008-07-10 | 2010-09-29 | 株式会社豊田中央研究所 | 培養細胞のハンドリング体、その製造方法及びその利用 |
| KR101001296B1 (ko) * | 2008-11-04 | 2010-12-14 | 한국전자통신연구원 | 3차원 신경회로망 구현장치 |
| JP4815496B2 (ja) | 2009-01-26 | 2011-11-16 | エンパイア テクノロジー ディベロップメント エルエルシー | ナノポーラス表面を有する立体製品の製造方法 |
| JP2010188426A (ja) * | 2009-01-26 | 2010-09-02 | Emprie Technology Development LLC | 清拭シート |
| GB0903040D0 (en) * | 2009-02-23 | 2009-04-08 | Univ Glasgow | Retention of a stem cell phenotype |
| JP4483994B1 (ja) * | 2009-02-26 | 2010-06-16 | 株式会社豊田中央研究所 | 細胞培養担体及びその利用 |
| JP5589159B2 (ja) * | 2009-07-14 | 2014-09-17 | Ｊｓｒ株式会社 | 細胞剥離抑制器具及びこれを用いた培養容器、細胞回収方法 |
| JP2011050295A (ja) * | 2009-09-01 | 2011-03-17 | Scivax Kk | 細胞培養構造体、細胞培養容器及びこれらの製造方法 |
| WO2011052281A1 (ja) * | 2009-10-30 | 2011-05-05 | 国立大学法人 東京大学 | 神経スフェロイドネットワークの構築方法 |
| JP5767481B2 (ja) * | 2010-02-15 | 2015-08-19 | 丸善石油化学株式会社 | 機能性容器成形方法、成形用金型およびこれらを用いて製造した機能性容器 |
| AU2011258295B2 (en) * | 2010-05-25 | 2015-01-29 | Cook Biotech Incorporated | Methods, substrates, and systems useful for cell seeding of medical grafts |
| US10655107B2 (en) | 2011-09-20 | 2020-05-19 | Corning Incorporated | Adherent cell culture method |
| JP2013099278A (ja) * | 2011-11-08 | 2013-05-23 | Dainippon Printing Co Ltd | 細胞培養容器の製造方法 |
| JP5957851B2 (ja) * | 2011-11-08 | 2016-07-27 | 大日本印刷株式会社 | ボトル型の細胞培養容器及びその製造方法 |
| JP5861399B2 (ja) * | 2011-11-08 | 2016-02-16 | 大日本印刷株式会社 | 機能性フィルムを移送するための負圧吸着ヘッドとそれを用いた機能性フィルムの移送方法 |
| JP5957850B2 (ja) * | 2011-11-08 | 2016-07-27 | 大日本印刷株式会社 | 細胞培養容器の製造方法 |
| JP5810850B2 (ja) * | 2011-11-08 | 2015-11-11 | 大日本印刷株式会社 | 樹脂製細胞培養容器とその製造方法 |
| JP5812816B2 (ja) * | 2011-11-15 | 2015-11-17 | コバレントマテリアル株式会社 | 細胞培養担体及びその製造方法 |
| JP5821559B2 (ja) * | 2011-11-17 | 2015-11-24 | 大日本印刷株式会社 | 機能性フィルムの移送装置 |
| KR102234887B1 (ko) * | 2013-04-19 | 2021-04-01 | 주식회사 에이엔케이 | 세포배양 기판 |
| US9790465B2 (en) | 2013-04-30 | 2017-10-17 | Corning Incorporated | Spheroid cell culture well article and methods thereof |
| JP6399734B2 (ja) * | 2013-07-01 | 2018-10-03 | 国立研究開発法人理化学研究所 | 分化転換制御方法および基板 |
| US11597910B2 (en) | 2014-08-13 | 2023-03-07 | Mitsui Chemicals, Inc. | Medical instrument, cell culture method, fluorine-containing cyclic olefin polymer and fluorine-containing cyclic olefin polymer composition for it, and cultured cells |
| KR101647793B1 (ko) | 2014-09-02 | 2016-08-12 | 충남대학교산학협력단 | 온도 감응성 글리콜 키토산 유도체를 이용한 스페로이드 형성용 배양 용기 및 이를 이용한 스페로이드 형성 방법 |
| JP6930914B2 (ja) | 2014-10-29 | 2021-09-01 | コーニング インコーポレイテッド | 灌流バイオリアクタ・プラットフォーム |
| SG11201703493SA (en) | 2014-10-29 | 2017-05-30 | Corning Inc | Cell culture insert |
| DE102015205534B4 (de) * | 2015-03-26 | 2017-01-26 | Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. | Artifizielles Descemet-Konstrukt |
| WO2016158039A1 (ja) | 2015-03-31 | 2016-10-06 | 三井化学株式会社 | 医療器具、フッ素含有環状オレフィンポリマー、フッ素含有環状オレフィンポリマー組成物、および細胞培養方法 |
| KR101743231B1 (ko) | 2015-09-18 | 2017-06-02 | 한국생명공학연구원 | 세포 스페로이드 배양기를 포함하는 세포 스페로이드 배양 시스템 |
| WO2017059227A1 (en) * | 2015-09-30 | 2017-04-06 | University Of Houston System | Multi-use combined micro and nanowell plates |
| TW201730330A (zh) * | 2016-01-20 | 2017-09-01 | Soken Chemical & Engineering Co Ltd | 細胞培養基板及其製造方法 |
| JP6324429B2 (ja) * | 2016-03-30 | 2018-05-16 | Jsr株式会社 | ラインパターン、光制御部材および光学結像部材の製造方法 |
| JP2018085978A (ja) * | 2016-11-30 | 2018-06-07 | 旭硝子株式会社 | 培養容器 |
| KR101800249B1 (ko) | 2016-12-23 | 2017-12-20 | 주식회사 티앤알바이오팹 | 세포 프린팅 조성물의 혼합 장치 |
| JP6995476B2 (ja) * | 2016-12-28 | 2022-01-14 | デクセリアルズ株式会社 | 培養容器カバー、培養容器カバーの製造方法、及びカバー付き培養容器 |
| KR101935989B1 (ko) | 2017-01-18 | 2019-01-07 | 서강대학교산학협력단 | 하이드로젤 마이크로웰을 이용한 멀티셀룰라 스페로이드의 제조 방법 |
| WO2018182044A1 (ja) * | 2017-03-31 | 2018-10-04 | 国立大学法人北海道大学 | 細胞培養基材、がん細胞集合体及び該基材を用いたその製造方法、並びに該がん細胞集合体を用いた薬剤のスクリーニング方法 |
| US11857970B2 (en) | 2017-07-14 | 2024-01-02 | Corning Incorporated | Cell culture vessel |
| JP7245222B2 (ja) | 2017-07-14 | 2023-03-23 | コーニング インコーポレイテッド | 手動又は自動で培地を交換するための３ｄ細胞培養容器 |
| CN111065729B (zh) | 2017-07-14 | 2024-04-26 | 康宁股份有限公司 | 细胞培养容器 |
| WO2019014610A1 (en) | 2017-07-14 | 2019-01-17 | Corning Incorporated | CELL CULTURE CONTAINER FOR 3D CULTURE AND METHODS OF CULTURING 3D CELLS |
| KR101965900B1 (ko) * | 2017-11-03 | 2019-04-05 | 한국화학연구원 | 스페로이드 형성 및 카운팅 기기 및 이의 제조 방법, 그리고 이를 이용한 스페로이드 배양 방법 및 계수 방법 |
| JP7171695B2 (ja) | 2018-07-13 | 2022-11-15 | コーニング インコーポレイテッド | 液体培地送達面を含む側壁を有するマイクロキャビティ皿 |
| CN111065725B (zh) | 2018-07-13 | 2024-03-29 | 康宁股份有限公司 | 包括具有互联的壁的微板的流体装置 |
| WO2020013845A1 (en) | 2018-07-13 | 2020-01-16 | Corning Incorporated | Cell culture vessels with stabilizer devices |
| WO2020059365A1 (ja) * | 2018-09-21 | 2020-03-26 | シャープ株式会社 | 三次元培養法、三次元培養構造体、および三次元培養構造体の製造方法 |
| JP7180698B2 (ja) * | 2019-02-14 | 2022-11-30 | 王子ホールディングス株式会社 | 細胞シート形成部材、基材、および、細胞シート形成部材の製造方法 |
| US11732232B2 (en) | 2020-08-14 | 2023-08-22 | Korea Research Institute Of Bioscience And Biotechnology | Biomimetic cell culture apparatus and cell culture system comprising the same |
Family Cites Families (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE4132379A1 (de) * | 1991-09-28 | 1993-04-08 | Kernforschungsz Karlsruhe | Substrat fuer zellkulturen und kultur von zellen oder zellaggregaten |
| JP2716646B2 (ja) | 1993-05-21 | 1998-02-18 | 住友ベークライト株式会社 | 細胞凝集体の形成方法 |
| EP1064353B1 (en) * | 1998-03-18 | 2002-11-06 | Massachusetts Institute Of Technology | Vascularized perfused microtissue/micro-organ arrays |
| JP4431233B2 (ja) * | 1999-11-30 | 2010-03-10 | テルモ株式会社 | ハニカム構造体およびその調製方法、ならびにその構造体を用いたフィルムおよび細胞培養基材 |
| JP2002335949A (ja) * | 2001-05-22 | 2002-11-26 | Inst Of Physical & Chemical Res | ハニカム構造体フィルムを用いた細胞の三次元組織培養法 |
| JP2005027598A (ja) | 2003-07-09 | 2005-02-03 | Kitakyushu Foundation For The Advancement Of Industry Science & Technology | 細胞培養チップ及び培養器、それらを用いた細胞培養方法、球状細胞組織体を担持させた細胞担持モジュール、球状細胞組織体 |
| JP4294425B2 (ja) * | 2003-09-10 | 2009-07-15 | 独立行政法人農業・食品産業技術総合研究機構 | 細胞培養プレート |
| JP2006223672A (ja) * | 2005-02-18 | 2006-08-31 | Sii Nanotechnology Inc | 生体組織構造を模倣したナノバイオデバイス |
| WO2006093207A1 (ja) * | 2005-03-02 | 2006-09-08 | National University Corporation Hokkaido University | 細胞の分化／増殖を制御するための基材 |
-
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Cited By (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2010084613A1 (ja) | 2009-01-26 | 2010-07-29 | アイランド ジャイアント デベロップメント エルエルピー | 細胞培養足場の製造方法 |
| WO2011077894A1 (ja) * | 2009-12-25 | 2011-06-30 | Ｓｃｉｖａｘ株式会社 | スフェロイド形成促進方法およびスフェロイド形成促進培地 |
| JP5614733B2 (ja) * | 2012-09-05 | 2014-10-29 | Jsr株式会社 | 細胞の上皮性維持に作用する物質のスクリーニング方法 |
| US11447743B2 (en) | 2014-04-22 | 2022-09-20 | Nippon Shokubai Co., Ltd. | Cell culture substrate comprising fluorine-containing polymer on its surface |
| WO2017146124A1 (ja) | 2016-02-22 | 2017-08-31 | 国立大学法人大阪大学 | 立体的細胞組織の製造方法 |
| US11254917B2 (en) | 2016-02-22 | 2022-02-22 | Toppan Printing Co., Ltd. | Method of promoting spheroid formation |
| EP4349972A2 (en) | 2016-02-22 | 2024-04-10 | Osaka University | Method for producing three-dimensional cell tissue |
| KR20190001726A (ko) * | 2017-06-28 | 2019-01-07 | 충남대학교산학협력단 | 세포배양용 용기의 제조방법 및 이를 이용한 세포배양 방법 |
| KR102038068B1 (ko) * | 2017-06-28 | 2019-10-29 | 충남대학교산학협력단 | 세포배양용 용기의 제조방법 및 이를 이용한 세포배양 방법 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
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| JP4159103B2 (ja) | 細胞培養構造体、細胞培養容器、スフェロイド付き構造体、スフェロイド付き容器およびこれらの製造方法 | |
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