JP2020183411A - 脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
ナノ粒子を生産するプロセスおよび系に関する。
標的細胞または組織に到達するのが困難であることにより妨げられている。特に、生細胞
への多くの生物学的活性剤の輸送は、細胞の複雑な膜系により非常に制限される。これら
の制限は、結果を達成するのに望ましい濃度よりもはるかに高い濃度の生物学的活性剤を
使用する必要性をもたらす可能性があり、これは、毒性効果および副作用の危険性を増大
させる。この問題に対する解決法の1つは、細胞への選択的進入を可能にさせる特異的な
担体分子および担体組成物を利用することである。脂質担体、生分解性ポリマーおよび各
種共役系を使用して、細胞への生物学的活性剤の送達を改善することができる。
o therapeutic)(mRNAおよびRNAi剤などのヌクレオシド、ヌクレオチド、ポリ
ヌクレオチド、核酸および誘導体を含む)である。概して、核酸は、細胞または原形質(
plasma)において、ほんの限られた持続期間、安定である。とりわけ、RNA干渉、RN
Ai療法、mRNA療法、RNA薬、アンチセンス療法および遺伝子療法の開発は、活性
核酸剤を細胞へ導入する有効な手段の必要性を増大させてきた。これらの理由で、核酸ベ
ースの作用物質を安定化および送達することができる組成物は、特に興味が持たれている
。
性脂質を伴うウイルスベクターまたは配合物の使用を含む。ウイルスベクターを使用して
、遺伝子を幾つかの細胞型へ効率的に移行させることができるが、それらは一般的に、化
学的に合成された分子を細胞へ導入するのに使用することはできない。
相互作用する陽イオン性脂質を組み込んだ送達化合物を使用することである。かかる組成
物は、組成および調製方法に依存して、リポソーム、ミセル、リポプレックス、または脂
質ナノ粒子を提供すると報告される(概説に関して、Felgner, 1990, Advanced Drug Del
ivery Reviews, 5, 162-187、Felgner, 1993, J. Liposome Res., 3, 3-16、Gallas, 201
3, Chem. Soc. Rev., 42, 7983-7997、Falsini, 2013, J. Med. Chem. dx.doi.org/10.10
21/jm400791q、およびその中の参照文献を参照)。
1の記述以来、生物学的活性剤の送達のための脂質ベースの担体系を開発することは、持
続的な関心および努力の対象となっている(Allen, 2013, Advanced Drug Delivery Revi
ews, 65, 36-48)。まず、正に帯電したリポソームを使用することにより、機能的核酸を
培養細胞へ導入するプロセスが、Philip Felgner et al. Proc. Natl. Acad. Sci., USA,
84, 7413-7417 (1987)により記載された。そのプロセスは後に、K. L. Brigham et al.,
Am. J. Med. Sci., 298, 278-281 (1989)によりin vivoで実証された。より最近
では、脂質ナノ粒子配合物は、in vitroおよびin vivoで実証された有効
性を伴って開発されている(Falsini, 2013, J. Med. Chem. dx.doi.org/10.1021/jm4007
91q、Morrissey, 2005, Nat. Biotech., 23, 1002-1007、Zimmerman, 2006, Nature, 441
, 111-114.、Jayaraman, 2012, Angew. Chem. Int. Ed., 51, 8529-8533.)。
防御することができるため、魅力的な担体である。様々な種類の脂質配合物の中から、陽
イオン性脂質を含有する配合物が、ポリアニオン(例えば、核酸)を送達するのに一般的
に使用される。かかる配合物は、陽イオン性脂質単独を使用して、任意に他の脂質および
ホスファチジルエタノールアミンなどの両親媒性物質を含むように形成され得る。脂質配
合物の組成ならびにその調製方法の両方が、得られる凝集体の構造およびサイズに影響を
及ぼすことは、当該技術分野で周知である(Leung, 2012, J. Phys Chem. C, 116, 18440
-18450)。
粒子中に核酸を封入すると報告されている。しかしながら、核酸封入に対する既存のアプ
ローチには、低い封入率または非スケーラビリティーの問題があり、高度の一様性を欠如
するナノ粒子を生産し、および/または80nm未満の平均粒径を達成しない。したがっ
て、高度の封入をもたらし、スケーラブルであり、80nm未満の平均粒子直径を有する
一様なサイズのナノ粒子を生産する脂質ナノ粒子中に核酸を封入する新たな方法が必要と
される。
は、スケーラブルであり、小さな平均粒径(例えば、80nm未満)、粒径の改善された
一様性、および高度の核酸封入(例えば、90%を超える)を有する被封入核酸ナノ粒子
の形成を提供する。本発明のプロセスにより生産されるナノ粒子は、長期安定性を有する
。
るステップと、合流した流れを流動させて、被封入核酸ナノ粒子の第1の出口溶液を供給
するステップにより、脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を提供する。各脂質流
は、有機溶媒(例えば、エタノール)中に1つまたは複数の脂質の混合物を含む。各核酸
流は、水溶液中に1つまたは複数の核酸の混合物を含む。脂質および核酸流の交差ポイン
トで、各流れは、線速度を特徴とする。1つまたは複数の脂質ナノ粒子流は、約1.5メ
ートル/秒よりも大きいか、またはそれに等しい複合線速度を有する。同様に、1つまた
は複数の核酸流は、約1.5メートル/秒よりも大きいか、またはそれに等しい複合線速
度を有する。脂質および核酸流の合流および混合後の有機溶媒の最終濃度は、凝集を最低
限に抑える量(例えば、33%未満)である。ある特定の実施形態では、第1の出口溶液
中の有機溶媒の最終濃度は、約20%〜約25%である。第1の態様によるある特定の実
施形態では、合流した脂質および核酸流は、希釈溶媒で希釈されて、第1の出口溶液を供
給する。第1の態様による他の実施形態では、複合核酸流(複数可)の複合線速度は、約
3〜約14メートル/秒であり、脂質流(複数可)の複合線速度は、約1.5〜約7メー
トル/秒である。
び透析によりさらに加工処理される。第2の態様によるある特定の実施形態では、透析さ
れた溶液はまた、滅菌ろ過されてもよい。第2の態様のプロセスにより生産される被封入
核酸ナノ粒子は、長期安定性を有する。
約80nm未満の平均直径を有する。ある特定の実施形態では、ナノ粒子は、約30〜約
80nMの平均直径を有する。好ましい実施形態では、ナノ粒子は、約70nm未満(例
えば、約40〜70nm)の平均直径を有する。
含む被封入核酸ナノ粒子組成物であって、約40nm〜約70nmの平均直径を有する、
組成物を提供する。
本発明は、一様に小さな粒径を有する被封入核酸ナノ粒子を生産するプロセスを提供す
る。本発明の1つの実施形態のステップを一般的に説明する代表的な流れ図が、図1に示
される。ステップ100では、1つまたは複数の脂質流は、第1の交差ポイントで1つま
たは複数の核酸流と合流して、第1の合流した流れを供給する。次に、第1の合流した流
れは、合流した流れの個々の流れの会合を可能にするように流動され(ステップ110)
、すぐに脂質ナノ粒子構築および核酸封入のプロセスが起きる。初期核酸流(複数可)に
関して選択される特定パラメーターに依存して、合流した流れは任意選択で、水性媒質で
さらに希釈して(ステップ120)、第1の出口溶液を得てもよい(ステップ130)。
あるいは、任意選択の希釈ステップ120を省略してもよく、第1の出口流は、ステップ
100において適切に希釈された核酸流(複数可)の使用により、流動している合流した
流れから直接得てもよい。ステップ130で得られる第1の出口溶液は、被封入核酸ナノ
粒子を含有する。
安定性を有する配合物として被封入核酸ナノ粒子を提供し得る。最初に、第1の出口溶液
を、室温である期間(例えば、60分)インキュベートして(ステップ140)、続いて
、水性媒質(例えば、水、クエン酸緩衝液)で希釈して(ステップ150)、濃縮および
透析して(ステップ160)、最終的に滅菌ろ過する(ステップ170)。希釈ステップ
150は、有機溶媒濃度を2倍に希釈し得る。濃縮は、タンジェンシャルフローフィルト
レーションによるものであり得る。
複数の核酸流と合流/交差させることにより得られることが見出され、ここで、複合脂質
流および複合核酸流はそれぞれ、1.5メートル/秒よりも大きい線速度を維持し、流れ
を合流/混合する際の有機溶媒の最終濃度は、33容量%未満である。33%未満の有機
溶媒を保持することにより、ナノ粒子の凝集が阻害される一方で、本発明の高い流速が、
粒径を小さく、かつ一様に保つ。上記プロセスは、核酸の効率的な封入を提供する。
ートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約1.5〜約7メートル/
秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約3〜約14メ
ートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約1.5〜約4.5メート
ル/秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約8〜約1
4メートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約1.5〜約4.5メ
ートル/秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約3〜
約8メートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約1.5〜約4.5
メートル/秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約9
〜約14メートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3〜約4メー
トル/秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約11〜
約14メートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3〜約4メート
ル/秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約9〜約1
1メートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3〜約4メートル/
秒である。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約6〜約8メー
トル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3〜約4メートル/秒であ
る。さらに他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約10.2メー
トル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3.4メートル/秒である
。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約6.8メートル/秒で
あり、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3.4メートル/秒である。さらに他
の実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約13.6メートル/秒であ
り、1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約3.4メートル/秒である。さらに他の
実施形態では、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約3.4メートル/秒であり、
1つまたは複数の脂質流の複合線速度は、約1.7メートル/秒である。他の実施形態で
は、1つまたは複数の核酸流の複合線速度は、約3メートル/秒であり、1つまたは複数
の脂質流の複合線速度は、約1.5メートル/秒である。他の実施形態では、1つまたは
複数の核酸流の複合線速度は、約14メートル/秒であり、1つまたは複数の脂質流の複
合線速度は、約7メートル/秒である。
本発明で使用するのに適した核酸として、アンチセンスDNAまたはRNA組成物、キ
メラDNA:RNA組成物、アロザイム、アプタマー、リボザイム、デコイおよびそれら
の類似体、プラスミドおよび他のタイプの発現ベクター、および小核酸分子、RNAi剤
、短鎖干渉核酸(siNA)、メッセンジャーリボ核酸(メッセンジャーRNA、mRN
A)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、および短鎖ヘアピン
RNA(shRNA)分子、ペプチド核酸(PNA)、ロックド核酸リボヌクレオチド(
LNA)、モルホリノヌクレオチド、トレオース核酸(TNA)、グリコール核酸(GN
A)、sisiRNA(低分子内部セグメント化干渉RNA)、aiRNA(非対称干渉
RNA)、および細胞培養物、対象または生物中などの関連細胞および/または組織に対
してセンス鎖とアンチセンス鎖との間に1つ、2つまたはそれ以上のミスマッチを有する
siRNAが挙げられる。かかる化合物は、精製されてもよく、または部分的に精製され
てもよく、また天然に存在してもよく、または合成であってもよく、また化学的に修飾さ
れてもよい。一実施形態では、生物学的活性剤は、RNAi剤、短鎖干渉核酸(siNA
)、短鎖干渉RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(mi
RNA)、または短鎖ヘアピンRNA(shRNA)分子である。一実施形態では、生物
学的核酸剤は、RNA干渉(RNAi)を媒介するのに有用なRNAi剤である。
リマーであり、ここで、ヌクレオチドはそれぞれ、糖構成成分としてリボースまたはその
修飾を含有する。ヌクレオチドはそれぞれ、塩基としてアデニン(A)、グアニン(G)
、シトシン(C)、ウラシル(U)またはその修飾を含有する。mRNA分子における遺
伝情報は、3つのヌクレオチド塩基それぞれで構成されるコドンへ配置されるmRNA分
子のヌクレオチド塩基の配列でコードされる。コドンはそれぞれ、翻訳(タンパク質合成
)を終結させる停止コドンを除いて、ポリヌクレオチドの特異的なアミノ酸をコードする
。生細胞内で、mRNAは、タンパク質合成の部位であるリボソームへ輸送されて、そこ
で、mRNAは、タンパク質合成(翻訳)に関する遺伝情報を提供する。より完全な説明
に関しては、Alberts B et al. (2007) Molecular Biology of the Cell, Fifth Edition
, Garland Scienceを参照されたい。
oで翻訳される。in vivoでの翻訳中または後に、5’キャップ(RNAキャップ
、RNA 7−メチルグアノシンキャップ、またはRNA m7Gキャップとも称される
)が、mRNAの5’末端へin vivoで付加される。5’キャップは、5’−5’
−三リン酸結合によって第1の転写ヌクレオチドへ連結される末端7−メチルグアノシン
残基である。さらに、ほとんどの真核生物mRNA分子は、mRNA分子の3’末端にポ
リアデニリル部分(「ポリ(A)テール」)を有する。in vivoで、真核細胞は、
多くの場合約250アデノシン残基長で、転写後にポリ(A)テールを付加する。したが
って、典型的な成熟真核生物mRNAは、mRNAキャップを伴う5’末端に始まる構造
を、続いてヌクレオチドの5’非翻訳領域(5’UTR)、次にヌクレオチド塩基のAU
Gトリプレットである開始コドンに始まり、タンパク質に関するコード配列であり、ヌク
レオチド塩基のUAA、UAGまたはUGAトリプレットであり得る停止コドンに終わる
オープンリーディングフレーム、続いてヌクレオチドの3’非翻訳領域(3’UTR)を
有し、ポリアデノシンテールで終わる。典型的な成熟真核生物mRNAの特色は、in
vivoで真核細胞において自然に作られているのに対して、同じであるか、または構造
的かつ機能的に等価な特色は、分子生物学の方法を使用して、in vitroで作るこ
とができる。したがって、典型的な成熟真核生物mRNAに類似した構造を有する任意の
RNAは、mRNAとして機能することができ、「メッセンジャーリボ核酸」という用語
の範囲内である。
ズを有する。mRNA分子のサイズは、特定タンパク質をコードするmRNA種の独自性
に応じて、事実上多様である一方で、mRNA分子に関する平均サイズは、500〜10
,000塩基である。
び多くのウイルスの細胞において遺伝情報を有するポリマー核酸を指す。in vivo
で、DNAは、RNAの自己複製および合成が可能である。DNAは、二重らせんへとね
じれ、かつ相補的塩基アデノシン(A)とチミン(T)、またはシトシン(C)とグアニ
ン(G)との間で水素結合により結合されたヌクレオチドの2つの長鎖で構成される。ヌ
クレオチドの配列が、個々の遺伝的特徴を決定する。The American Heritage(登録商標
) Dictionary of the English Language, Fourth Edition(2009年に改訂). Hough
ton Mifflin Company.を参照されたい。
り連結される。ヌクレオチドはそれぞれ、糖構成成分としてデオキシリボースまたはその
修飾を含有する。ヌクレオチドはそれぞれ、塩基としてアデニン(A)、グアニン(G)
、シトシン(C)、チミン(T)またはその修飾を含有する。
で構成される二重鎖らせんであり、一方の骨格は、3’(三ダッシュ)であり、他方が、
5’(五ダッシュ)である。この二重鎖形成では、塩基は、水素結合により対形成され、
アデニンは、チミンへ結合し、グアニンは、シトシンへ結合し、それが、二重らせん構造
をもたらす。他のDNA分子は単鎖であるが、単鎖DNA分子は、それらが相補的ヌクレ
オチド配列を伴う別の単鎖DNAまたはRNA分子と適合する場合には二重鎖結合になる
潜在力を有する。より完全な説明に関しては、Alberts B et al. (2007) Molecular Biol
ogy of the Cell, Fifth Edition, Garland Scienceを参照されたい。
ンパク質の合成に関して、遺伝情報は、mRNA分子が創出される場合、転写と呼ばれる
プロセスでmRNA分子のヌクレオチド配列へコピーされる。
Aの第1の形態は、染色体と呼ばれる非常に大きなサイズのポリマーである。染色は、細
胞中にタンパク質の多くまたはほとんどに関する遺伝情報を含有し、また細胞がDNA分
子の複製を制御することができる情報も含有する。細菌細胞は、1つまたは複数の染色体
を含有し得る。真核細胞は通常、それぞれが染色体である1つよりも多い細胞染色体を含
有する。
は、それを本発明の脂質ナノ粒子中に封入することができるサイズを有する。DNAのこ
れらのより短い形態の幾つかは、タンパク質を有用にコードするようなサイズを有し得る
。DNAのこれらの第2のより短い有用な形態の例として、プラスミドおよび他のベクタ
ーが挙げられる。より完全な説明に関しては、Alberts B et al. (2007) Molecular Biol
ogy of the Cell, Fifth Edition, Garland Scienceを参照されたい。
に複製することができる。プラスミドは一般的に、小さな環状の二重鎖DNA分子として
in vivoで存在する。事実上、プラスミドは、生物の生存に有益であり得るタンパ
ク質(例えば、抗生物質耐性)へ転写および翻訳することができる遺伝子を有する。事実
上、プラスミドは頻繁に、水平遺伝子伝播によりある生物から別の生物へ伝達され得る。
人工または組換えプラスミドは、分子生物学で広く使用されており、組換えDNA配列の
複製、および宿主生物内の有用なタンパク質の発現を可能にするのに役立つ。プラスミド
サイズは、1〜25キロ塩基対を上回って様々であり得る。組換えプラスミドは、それを
本発明の脂質ナノ粒子中に封入することができるサイズを有するように、組換え的に作製
することができる。
n vitroで別の細胞へ人工的に運搬するための媒体として使用されるDNA分子で
あり、そこで、DNAは、複製および/または発現させることができる。外来DNAを含
有するベクターは、組換え体と称される。プラスミドおよびウイルスベクターは、中でも
有用なベクターのタイプである。標的細胞へのベクターの挿入は通常、細菌細胞に関して
は形質転換、真核細胞に関してはトランスフェクションと呼ばれるが、ウイルスベクター
の挿入は多くの場合、形質導入と呼ばれる。
子を依然として含有し、したがってウイルスプロモーターによって導入遺伝子の翻訳を可
能にする修飾ウイルスDNAまたはRNAを有する組換えウイルスである。ウイルスベク
ターは多くの場合、挿入物の宿主ゲノムへの永続的な組込みのために設計され、したがっ
て導入遺伝子が組み込まれた後に、宿主ゲノムにおいて明確な遺伝子マーカーが残る。ウ
イルスベクターは、それを本発明の脂質ナノ粒子中に封入することができるサイズを有す
るように、組換え的に作製することができる。
NA干渉」(RNAi)という用語は、RNAi剤を使用して、RNAi剤と同じである
か、またはRNAi剤に非常に類似している配列を含有するメッセンジャーRNA(mR
NA)を分解する翻訳後標的遺伝子サイレシング技法である。Zamore and Haley 2005 Sc
ience 309: 1519-1524、Zamore et al. 2000 Cell 101: 25-33、Elbashir et al. 2001 N
ature 411: 494-498、およびKreutzer et al., PCT国際公開第00/44895号パ
ンフレット、Fire, PCT国際公開第99/32619号パンフレット、Mello and Fire
, PCT国際公開第01/29058パンフレット等を参照されたい。
写阻害、またはエピジェネティクスなどの配列特異的なRNA干渉について記載するのに
使用される他の用語と等価である。例えば、本発明の脂質を含有する配合物は、siNA
分子と併用して、転写後レベルおよび/または転写前レベルの両方で、エピジェネティッ
クに遺伝子を発現停止させることができる。非限定的な例では、siNA分子による遺伝
子発現の調節は、当該技術分野で公知であるように、RISC、あるいは翻訳阻害を介し
たRNA(コードまたは非コードRNAのいずれか)のsiNA媒介性切断に起因し得る
。別の実施形態では、siNAによる遺伝子発現の調節は、例えばJanowski et al. 2005
Nature Chemical Biology 1: 216-222で報告されるような転写阻害に起因し得る。
)、shRNA、短鎖干渉オリゴヌクレオチドおよび化学的に修飾された短鎖干渉核酸分
子が挙げられる。「短鎖干渉RNA」(siRNA)または「短鎖干渉核酸」(siNA
)等の用語は、本明細書中で使用する場合、配列特異的な様式で、RNA干渉(RNAi
)または遺伝子サイレンシングを媒介することにより、遺伝子発現もしくはウイルス複製
を阻害または下方制御することが可能な任意の分子を指す。siRNAは、発現停止され
る遺伝子標的に相同的または特異的である、より長い二重鎖RNA(dsRNA)から、
リボヌクレアーゼIII切断により生成され得る。それらはまた、当該技術分野で公知の
各種方法により人工的に作製することができる。
、幾つかの形式、構成成分、置換および/修飾のいずれかを有することができる。
またはパッセンジャー)鎖を含み、アンチセンス鎖は、RISC(RNA干渉サイレンシ
ング複合体)へ取り込まれて、標的mRNAの対応する配列を標的とする。アンチセンス
鎖の配列(またはその一部)は、標的mRNAの配列(またはその一部)と適合する。数
個のミスマッチ(一般的には15nt配列につき、1〜3つ程度)は、標的特異的なRN
Ai活性を防止することなく存在し得る。アンチセンスおよびセンス鎖は、別々の分子で
あってもよく、またはリンカーもしくはループにより結合されていて(例えば、shRN
Aを形成する)もよい。アンチセンス鎖は概して、49量体またはそれよりも短く、多く
の場合、19量体〜25量体である。センス鎖は、アンチセンス鎖と同じ長さであっても
よく、またはそれよりも短くてもよく、もしくは長くてもよい。本明細書中に示されるよ
うに、アンチセンス鎖は、18量体程度と短くてもよく、センス鎖は、14量体程度と短
くてもよい。
チド)オーバーハングを有する、それぞれが21量体であるRNAの2つの鎖である。El
bashir et al. 2001 Nature 411: 494-498、Elbashir et al. 2001 EMBO J. 20: 6877-68
88。オーバーハングは、dTdT、TT、UU、U(2’−OMe)dT、U(2’−O
Me)U(2’−OMe)、T(2’−OMe)T(2’−OMe)、T(2’−OMe
)dT等などのジヌクレオチドにより置き換えることができる。オーバーハングは、ヌク
レアーゼによる切断から、RNAi剤を防御するよう作用する一方で、RNAi活性に干
渉せず、また標的認識に寄与もしない。Elbashir et al. 2001 Nature 411: 494-498、El
bashir et al. 2001 EMBO J. 20: 6877-6888、およびKraynack et al. 2006 RNA 12:163-
176。さらなる3’−末端ヌクレオチドオーバーハングとして、dT(デオキシチミジン
)、2’−O、4’−C−エチレンチミジン(eT)、および2−ヒドロキシエチルリン
酸(hp)が挙げられる。4−チオウラシルおよび5−ブロモウラシル置換もまた行うこ
とができる。Parrish et al. 2000 Molecular Cell 6: 1077-1087。ヌクレオチドオーバ
ーハングは、非ヌクレオチド3’末端キャップが、末端を切断から防御することが可能で
あり、分子のRNAi活性が許容される場合には、かかるキャップにより置き換えること
ができる。例えば、米国特許第8,097,716号明細書、同第8,084,600号
明細書、同第8,404,831号明細書、同第8,404,832号明細書、および同
第8,344,128号明細書、および米国特許出願公開第61/886,739号明細
書(これは、全体が参照により援用される)を参照されたい。
る。これらとして、糖、アルキル、シクロアルキル、リビトールまたは他のタイプの脱塩
基ヌクレオチド、2’−デオキシリビトール、ジリビトール、2’−メトキシエトキシリ
ビトール(2’−MOEを伴うリビトール)、C3〜6アルキル、または4−メトキシブ
タン−1,3−ジオール(5300)が挙げられるが、限定されない。幾つかの分子では
、ギャップをセンス鎖に導入することができ、2つのより短いセンス鎖を生じる。これは
、sisiRNAと呼ばれる。WengelsおよびKjemsに対する国際公開第20
07/107162号パンフレット。センス鎖とアンチセンス鎖との間の1つまたは複数
のミスマッチおよびバルジもまた導入することができる。Khvorovaに対する米国
特許出願公開第2009/0209626号明細書。
しながら、RNAヌクレオチドは、様々なRNAi剤で置換または修飾され得る。1つま
たは複数の位置で、RNAヌクレオチドは、DNA、ペプチド核酸(PNA)、ロックド
核酸(LNA)、モルホリノヌクレオチド、トレオース核酸(TNA)、グリコール核酸
(GNA)、アラビノース核酸(ANA)、2’−フルオロアラビノース核酸(FANA
)、シクロヘキセン核酸(CeNA)、アンヒドロヘキシトール核酸(HNA)、または
アンロックド核酸(UNA)により置き換えることができる。特に、シード領域(アンチ
センス鎖のおよそ位置2〜7およびセンス鎖の対応する位置)で、一方または両方の鎖に
おけるヌクレオチドは、DNAにより置き換えることができる。全体的なシード領域は、
DNAにより置き換えることができ、RNA干渉を媒介することが可能なDNA−RNA
ハイブリッドを形成する。Yamato et al. 2011. Cancer Gene Ther. 18: 587-597。
ることができる。修飾および/または置換は、糖、リン酸および/または塩基で行われ得
る。各種態様では、RNAi剤は、糖の2’−修飾、例えば、2’−アミノ、2’−C−
アリル、2’−デオキシ、2’−デオキシ−2’−フルオロ(2’−F)、2’−O−メ
チル(2’−OMe)、2’−O−メトキシエチル(2’−O−MOE)、2’−O−ア
ミノプロピル(2’−O−AP)、2’−O−ジメチルアミノエチル(2’−O−DMA
OE)、2’−O−ジメチルアミノプロピル(2’−O−DMAP)、2’−O−ジメチ
ルアミノエチルオキシエチル(2’−O−DMAEOE)、または2’−O−N−メチル
アセトアミド(2’−O−NMA)を含み、他のRNA修飾は、当該技術分野で公知であ
る。例えば、Usman and Cedergren 1992 TIBS. 17: 34、Usman et al. 1994 Nucleic Aci
ds Symp. Ser. 31: 163、Burgin et al. 1996 Biochemistry 35: 14090を参照されたい。
幾つかの実施形態では、一方または両方の鎖の3’末端上の2つのRNAヌクレオチドは
、2’−MOEで修飾されて、2’−MOEクランプを形成する。米国特許第8,097
,716号明細書、および同第8,084,600号明細書。
より置き換えることができる。これとしては、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエー
ト、ホスホルアミデート、ボラノホスホノエート、アミドリンカー、および式(Ia):
6〜10アリール、C1〜6アルコキシおよびC1〜6アリールオキシから選択され、こ
こで、C1〜6アルキルおよびC6〜10アリールは、無置換であるか、または任意選択
で独立して、ハロ、ヒドロキシルおよびNH2から独立して選択される1つ〜3つの基で
置換され、R4は、O、S、NH、またはCH2から選択される)
を有する化合物が挙げられ得るが、限定されない。
ル、5−ヨードウラシル、ヒポキサンチン、キサンチン、4−アセチルシトシン、5−(
カルボキシヒドロキシメチル)ウラシル、5−カルボキシメチルアミノメチル−2−チオ
ウリジン、5−カルボキシメチルアミノメチルウラシル、ジヒドロウラシル、ベータ−D
−ガラクトシルキューオシン、イノシン、N6−イソペンテニルアデニン、1−メチルグ
アニン、1−メチルイノシン、2,2−ジメチルグアニン、2−メチルアデニン、2−メ
チルグアニン、3−メチルシトシン、5−メチルシトシン、N6−アデニン、7−メチル
グアニン、5−メチルアミノメチルウラシル、5−メトキシアミノメチル−2−チオウラ
シル、ベータ−D−マンノシルキューオシン、5’−メトキシカルボキシメチルウラシル
、5−メトキシウラシル、2−メチルチオ−N6−イソペンテニルアデニン、ウラシル−
5−オキシ酢酸(v)、ワイブトキソシン、プソイドウラシル、キューオシン、2−チオ
シトシン、5−メチル−2−チオウラシル、2−チオウラシル、4−チオウラシル、5−
メチルウラシル、ウラシル−5−オキシ酢酸メチルエステル、ウラシル−5−オキシ酢酸
(v)、5−メチル−2−チオウラシル、3−(3−アミノ−3−N−2−カルボキシプ
ロピル)ウラシル、(acp3)w、および2,6−ジアミノプリンで修飾または置換さ
れ得る。ある特定の態様では、RNAi剤は、非天然核酸塩基を含むことができ、ここで
非天然核酸塩基は、ジフルオロトリル、ニトロインドリル、ニトロピロリル、またはニト
ロイミダゾリルである。多くの他の修飾が、当該技術分野で公知である。例えば、Usman
et al. 1992 TIBS 17:34、Usman et al. 1994 Nucl. Acids Symp. Ser. 31: 163、Burgin
et al. 1996 Biochem. 35: 14090を参照されたい。
O−メチルウリジン−5’−リン酸で表すことができる。簡潔に述べると、任意の1つま
たは複数の位置が、2’−O−メチル修飾ヌクレオチド、5’ホスホロチオエート基を含
むヌクレオシド、コレステリル誘導体またはドデカン酸ビスデシルアミド基に連結した末
端ヌクレオシド、ロックドヌクレオシド、脱塩基ヌクレオシド、2’−デオキシ−2’−
フルオロ修飾ヌクレオシド、2’−アミノ修飾ヌクレオシド、2’−アルキル修飾ヌクレ
オシド、モルホリノヌクレオシド、アンロックドリボヌクレオチド(例えば、非環状ヌク
レオチド単量体、国際公開第2008/147824号パンフレットに記載されるような
)、ホスホルアミデートまたは非天然塩基を含むヌクレオシド、またはそれらの任意の組
合せを含むが限定されない、当該技術分野で公知の任意の修飾または置換で表すことがで
きる。
混合して、適合させるか、または組み合わせて、任意の標的に対し、かつ任意の配列を含
むRNAi剤を形成することができる。例えば、本開示は、2つの鎖を含むRNAi剤に
関し、ここで一方または両方の鎖が、リン酸または修飾ヌクレオシド間リンカーにおいて
3’末端で終結する18量体であり、5’から3’の順序で、スペーサー、第2のリン酸
または修飾ヌクレオシド間リンカー、および3’末端キャップをさらに含む。別の実施形
態では、本開示は、センスおよびアンチセンス鎖を含むRNAi剤に関し、ここでアンチ
センス鎖は、5’から3’の順序で、リン酸または修飾ヌクレオシド間リンカーにおいて
3’末端で終結する18量体を含み、5’から3’の順序で、スペーサー、第2のリン酸
または修飾ヌクレオシド間リンカー、および3’末端キャップをさらに含み、ここでセン
ス鎖は、5’から3’の順序で、リン酸または修飾ヌクレオシド間リンカーにおいて3’
末端で終結する14量体(またはそれよりも長い)を含み、5’から3’の順序で、スペ
ーサー、第2のリン酸または修飾ヌクレオシド間リンカー、および3’末端キャップをさ
らに含む。
を有することができ、本明細書中に記載するか、または当該技術分野で公知であるような
任意の方式、構成成分、置換および/または修飾を有することができる。
を下方調節する(例えば、低減させるか、または阻害する)ことができる任意の分子であ
る。RNAi阻害剤は、RISCなどのタンパク質構成成分、またはmiRNAもしくは
siRNAなどの核酸構成成分を含むRNAi経路の任意の構成成分との相互作用、ある
いはそれらの機能を妨げることにより、RNAi(例えば、標的ポリヌクレオチドのRN
Ai媒介性切断、翻訳阻害、または転写サイレンシング)を、下方制御するか、低減させ
るか、または阻害することができる。RNAi阻害剤は、細胞または患者において、RN
Ai経路のRISC、miRNA、もしくはsiRNAまたは任意の他の構成成分と相互
作用するか、あるいはそれらの機能を妨げる、siNA分子、アンチセンス分子、アプタ
マー、または小分子であり得る。RNAi(例えば、標的ポリヌクレオチドのRNAi媒
介性切断、翻訳阻害、または転写サイレンシング)を阻害することによって、RNAi阻
害剤を使用して、標的遺伝その発現を調節する(例えば、上方制御するか、または下方制
御する)ことができる。一実施形態では、RNA阻害剤を使用して、翻訳阻害、転写サイ
レンシング、またはポリヌクレオチド(例えば、mRNA)のRISC媒介性切断による
遺伝子発現の内因性下方制御または阻害を妨げる(例えば、低減させるか、または防止す
る)ことにより、遺伝子発現を上方制御する。したがって、遺伝子発現の内因性抑制、サ
イレンシング、または阻害のメカニズムを妨げることによって、本発明のRNi阻害剤を
使用して、機能の損失に起因する疾患または状態の治療のために遺伝子発現を上方制御す
ることができる。「RNAi阻害剤」という用語は、本明細書中の各種実施形態において
「siNA」という用語と交換可能に使用される。
した遺伝子標的に対して相補性を有し、また標的RNAを特異的に切断するように作用す
る酵素活性も有し、それにより標的RNA分子を失活させる核酸分子を指す。相補領域は
、酵素核酸分子の、標的RNAへの十分なハイブリダイゼーションを可能にし、したがっ
て切断を可能にする。100%の相補性が好ましいが、50〜75%程度の低い相補性も
また、本発明で有用であり得る(例えば、Werner and Uhlenbeck, 1995, Nucleic Acids
Research, 23, 2092-2096、Hammann et al., 1999, Antisense and Nucleic Acid Drug D
ev., 9, 25-31を参照)。核酸は、塩基、糖、および/またはリン酸基で修飾され得る。
酵素核酸という用語は、リボザイム、触媒RNA、酵素RNA、触媒DNA、アプタマー
またはアプタマー結合リボザイム、調節可能リボザイム、触媒オリゴヌクレオチド、ヌク
レオザイム(nucleozyme)、DNAザイム(DNAzyme)、RNA酵素、エンドリボヌクレ
アーゼ、エンドヌクレアーゼ、ミニザイム(minizyme)、リードザイム(leadzyme)、オ
リゴザイム(oligozyme)またはDNA酵素などの語句と交換可能に使用される。これら
の専門用語は全て、酵素活性を有する核酸分子について記載している。酵素核酸分子の重
要な特色は、それが、標的核酸領域の1つまたは複数に対して相補的である特異的な基質
結合部位を有すること、およびそれが、分子に核酸切断および/またはライゲーション活
性を付与する当該基質結合部位内のまたは周囲のヌクレオチド配列を有することである(
例えば、Cech et al., 米国特許第4,987,071号明細書、Cech et al., 1988, 26
0 JAMA 3030を参照)。本発明のリボザイムおよび酵素核酸分子は、例えば当該技術分野
で、および本明細書中の他の箇所で記載されるように、化学的に修飾することができる。
はRNA−DNAまたはRNA−PNA(タンパク質核酸、Egholm et al., 1993 Nature
365, 566)相互作用を用いて、標的RNAへ結合して、標的RNAの活性を変更させる
非酵素核酸分子を指す(概説に関しては、Stein and Cheng, 1993 Science 261, 1004、
およびWoolf et al., 米国特許第5,849,902号明細書を参照)。アンチセンスD
NAは、化学的に合成することができるか、または単鎖DNA発現ベクターもしくはそれ
らの等価体の使用によって発現させることができる。本発明のアンチセンス分子は、例え
ば当該技術分野で記載されるように、化学的に修飾することができる。
結合して、細胞RNアーゼH酵素により認識される非共有結合的複合体を形成することが
可能な核酸分子の領域(一般的に、4〜25ヌクレオチド長、好ましくは5〜11ヌクレ
オチド長よりも長いか、またはそれらに等しい)を指す(例えば、Arrow et al., 米国特
許第5,849,902号明細書、Arrow et al., 米国特許第5,989,912号明細
書を参照)。RNアーゼH酵素は、核酸分子−標的RNA複合体へ結合して、標的RNA
配列を切断する。
ン酸化2’−5’−連結アデニル酸残基を含有するアンチセンスオリゴヌクレオチドを指
す。これらのキメラは、配列特異的な様式で、標的RNAへ結合して、細胞2−5A依存
性リボヌクレアーゼを活性化して、続いて標的RNAを切断する(Torrence et al., 199
3 Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 1300、Silverman et al., 2000, Methods Enzymol.,
313, 522-533、Player and Torrence, 1998, Pharmacol. Ther., 78, 55-113)。2−5
Aアンチセンスキメラ分子は、例えば当該技術分野で記載されるように、化学的に修飾す
ることができる。
異的な様式で二重鎖DNAへ結合して、三重鎖らせんを形成することができるオリゴヌク
レオチドを指す。かかる三重鎖らせん構造の形成は、標的遺伝子の転写を阻害することが
知られている(Duval-Valentin et al., 1992 Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89, 504、Fo
x, 2000, Curr. Med. Chem., 7, 17-37、Praseuth et. al., 2000, Biochim. Biophys. A
cta, 1489, 181-206)。本発明の三重鎖形成オリゴヌクレオチド分子は、例えば当該技術
分野で記載されるように、化学的に修飾することができる。
に結合するように設計されるRNA分子またはアプタマーを指す。かかる結合は、標的分
子の阻害または活性化をもたらし得る。デコイRNAまたはアプタマーは、特異的なリガ
ンドの結合に関して、天然に存在する結合標的と競合し得る。同様に、デコイRNAは、
受容体へ結合して、エフェクター分子の結合を阻止するよう設計され得るか、または目的
の受容体へ結合して、受容体との相互作用を防止するよう設計され得る。本発明のデコイ
分子は、例えば当該技術分野で記載されるように、化学的に修飾することができる。
を含む天然に存在するか、または合成のデオキシリボ核酸分子を指し、例えば、ssDN
Aは、センスもしくはアンチセンス遺伝子配列またはEST(発現配列タグ)であり得る
。
4,186号明細書、同第5,741,679号明細書、同第5,589,332号明細
書、同第5,871,914号明細書、およびPCT国際公開第00/24931号パン
フレット、同第00/26226号パンフレット、同第98/27104号パンフレット
、同第99/29842号パンフレットを含む、アロステリック酵素核酸分子を指す。
るポリヌクレオチド組成物を意味し、ここでポリヌクレオチドは、細胞において標的分子
により一般的に認識される配列と異なる配列を有する。あるいは、アプタマーは、標的分
子が天然では核酸へ結合しない標的分子へ結合する核酸分子であり得る。標的分子は、任
意の目的の分子であり得る。本発明のアプタマー分子は、例えば当該技術分野で記載され
るように、化学的に修飾することができる。
3.1 陽イオン性脂質
脂質組成物における使用に適した陽イオン性脂質として、N,N−ジオレイル−N,N
−ジメチルアンモニウムクロリド(DODAC)、N,N−ジステアリル−N,N−ジメ
チルアンモニウムブロミド(DDAB)、N−(1−(2,3−ジオレオイルオキシ)プ
ロピル)N,N,N−トリメチルアンモニウム(DOTAP)クロリド、N−(1−(2
,3−ジオレイルオキシ)プロピル)−N,N,N−トリメチルアンモニウムクロリド(
DOTMA)、N,N−ジメチル−2,3−ジオレイルオキシ)プロピルアミン(DOD
MA)、1,2−ジオレオイル−3−ジメチルアンモニウム−プロパン(DODAP)、
1,2−ジオレオイルカルバミル−3−ジメチルアンモニウムプロパン(DOCDAP)
、1,2−ジリネオイル−3−ジメチルアンモニウムプロパン(DLINDAP)、トリ
フルオロ酢酸ジオレオイルオキシ−N−(2−スペルミンカルボキシアミド(2-spennine
carboxamido))エチル−N,N−ジメチル−プロパンアミニウム(DOSPA)、ジオ
クタデシルアミドグリシルスペルミン(spennine)(DOGS)、DC−Chol、1,
2−ジミリスチルオキシプロピル−3−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミ
ド(DMRIE)、3−ジメチルアミノ−2−(コレスタ−5−エン−3ベータ−オキシ
ブタン−4−オキシ)−1−(cis,cis−9,12−オクタデカジエンオキシ)プ
ロパン(CLinDMA)、2−[5’−(コレスタ−5−エン−3−オキシ)−3’−
オキサペントキシ]−3−ジメチル−1−(cis,cis−9’,12’−オクタデカ
ジエンオキシ)プロパン(CpLinDMA)、N,N−ジメチル−3,4−ジオレイル
オキシベンジルアミン(DMOBA)、1,2−N,N’−ジオレイルカルバミル−3−
ジメチアミノプロパン(DOcarbDAP)および/またはそれらの混合物が挙げられ
るが、それらに限定されない。
は、その全体が参照により本明細書に援用される)に開示されている。適切な脂質は、式
(I):
ヘテロシクリル−C1〜8−アルキルまたはヘテロシクリル−C1〜8−アルコキシルで
あり、それらはそれぞれ、C1〜8−アルキル、C3〜7−シクロアルキル、C3〜7−
シクロアルキル−C1〜8−アルキル、ヘテロシクリル、−[(C1〜C4)アルキレン
]v−N(R’)R”、−O−[(C1〜C4)アルキレン]v−N(R’)R”または
−N(H)−[(C1〜C4)アルキレン]v−N(R’)(R”)から独立して選択さ
れる1つ、2つまたは3つの基で任意選択で置換されてもよく、ここで上記(C1〜C4
)アルキレンは、1つまたは複数のR基で任意選択で置換され、vは、0、1、2、3ま
たは4であり、Rは、水素または−C1〜8−アルキルであるか、またはvが0である場
合、Rは存在せず、R’およびR”はそれぞれ独立して、水素、−C1〜8−アルキルで
あるか、またはR’およびR”は、それらが結合する窒素と合わせて、N、OおよびSか
ら選択される別のヘテロ原子を任意選択で含み、−C1〜8−アルキル、ヒドロキシもし
くはシクロアルキル−C1〜8−で任意選択で置換される5〜8員環の複素環またはヘテ
ロアリールを形成し、R2およびR3はそれぞれ独立して、C12〜22アルキル、C1
2〜22アルケニル、
を有する化合物、またはその塩である。
あるか、またはR4は、
る。
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((1,3−ジメチルピロリジン−3−
カルボニル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−
ジエノエート;
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((3−(4−メチルピペラジン−1−
イル)プロパノイル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9
,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((4−(ピロリジン−1−イル)ブタ
ノイル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエ
ノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((4−(ピペリジン−1−イル)ブタ
ノイル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエ
ノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((3−(ジメチルアミノ)プロパノイ
ル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエノエ
ート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((2−(ジメチルアミノ)アセトキシ)
メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((3−(ジエチルアミノ)プロパノイ
ル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエノエ
ート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((1,4−ジメチルピペリジン−4−
カルボニル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−
ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((1−(シクロプロピルメチル)ピペ
リジン−4−カルボニル)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ
−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((3−モルホリノプロパノイル)オキ
シ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル
)オキシ)メチル)プロパン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエノエー
ト);
2−(((1,3−ジメチルピロリジン−3−カルボニル)オキシ)メチル)プロパン
−1,3−ジイルビス(8−(オクタノイルオキシ)オクタノエート);
(9Z,12Z)−3−((4,4−ビス(オクチルオキシ)ブタノイル)オキシ)−
2−((((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロピ
ルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−((4,4−ビス(オクチルオキシ)ブタノイル)オキシ)−
2−((((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロピ
ルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−((4,4−ビス(オクチルオキシ)ブタノイル)オキシ)−
2−(((((1−エチルピペリジン−3−イル)メトキシ)カルボニル)オキシ)メチ
ル)プロピルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
2−((((2−(ジエチルアミノ)エトキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロパ
ン−1,3−ジイルビス(2−ヘプチルウンデカノエート);
(9Z,12Z)−3−(((2−(ジエチルアミノ)エトキシ)カルボニル)オキシ
)−2−(((2−ヘプチルウンデカノイル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ−9
,12−ジエノエート;
2−((((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロ
パン−1,3−ジイルビス(2−ヘプチルウンデカノエート);
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−2−(((2−ヘプチルウンデカノイル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ−
9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((2−(ジメチルアミノ)エトキシ)カルボニル)オキシ
)−2−(((3−オクチルウンデカノイル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ−9
,12−ジエノエート;
2−((((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロ
パン−1,3−ジイルビス(3−オクチルウンデカノエート);
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−2−(((3−オクチルウンデカノイル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ−
9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−2−(((9−ペンチルテトラデカノイル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ
−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−2−(((5−ヘプチルドデカノイル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ−9
,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(2,2−ビス(ヘプチルオキシ)アセトキシ)−2−(((
(2−(ジメチルアミノ)エトキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロピルオクタデカ
−9,12−ジエノエート;および
(9Z,12Z)−3−((6,6−ビス(オクチルオキシ)ヘキサノイル)オキシ)
−2−((((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)メチル)プロ
ピルオクタデカ−9,12−ジエノエート
から成る群から選択される化合物が挙げられる。
は、その全体が参照により本明細書に援用される)に開示されている。適切な脂質は、式
(III):
または8であり、L1は、−O−または結合であり、L2は、−OC(O)−または−C
(O)O−であり、R1は、下記:
、Cylは、1つまたは2つのアルキル基で任意選択で置換される5〜7員環窒素含有複
素環であり、RおよびR’はそれぞれ独立して、水素またはC1〜8アルキルであり、R
2は、ヒドロキシルで任意選択で置換されるC6〜20アルキル、C15〜19アルケニ
ル、C1〜12アルキル−OC(O)−C5〜20アルキル、C1〜12アルキル−C(
O)O−C5〜20アルキル、および
を有する化合物、またはその塩である。
る:
こで上記化合物は、式(VI):
ここで上記化合物は、式(VII):
、ここで上記化合物は、式(VIII):
れ、ここで上記化合物は、式(IX):
2−(10−ドデシル−3−エチル−8,14−ジオキソ−7,9,13−トリオキサ
−3−アザオクタデカン−18−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(9−ドデシル−2−メチル−7,13−ジオキソ−6,8,12−トリオキサ−
2−アザヘプタデカン−17−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(9−ドデシル−2−メチル−7,13−ジオキソ−6,8,12−トリオキサ−
2−アザペンタデカン−15−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(10−ドデシル−3−エチル−8,14−ジオキソ−7,9,13−トリオキサ
−3−アザヘキサデカン−16−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(8−ドデシル−2−メチル−6,12−ジオキソ−5,7,11−トリオキサ−
2−アザヘプタデカン−17−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(10−ドデシル−3−エチル−8,14−ジオキソ−7,9,13−トリオキサ
−3−アザノナデカン−19−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(9−ドデシル−2−メチル−7,13−ジオキソ−6,8,12−トリオキサ−
2−アザオクタデカン−18−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(8−ドデシル−2−メチル−6,12−ジオキソ−5,7,11−トリオキサ−
2−アザオクタデカン−18−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(10−ドデシル−3−エチル−8,14−ジオキソ−7,9,13−トリオキサ
−3−アザイコサン−20−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(9−ドデシル−2−メチル−7,13−ジオキソ−6,8,12−トリオキサ−
2−アザノナデカン−19−イル)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル4
,4−ビス(オクチルオキシ)ブタノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル4
,4−ビス((2−エチルヘキシル)オキシ)ブタノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル4
,4−ビス((2−プロピルペンチル)オキシ)ブタノエート;
3−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタ
デシル4,4−ビス((2−プロピルペンチル)オキシ)ブタノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル4
,4−ビス((2−プロピルペンチル)オキシ)ブタノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル6
,6−ビス(オクチルオキシ)ヘキサノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル6
,6−ビス(ヘキシルオキシ)ヘキサノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル6
,6−ビス((2−エチルヘキシル)オキシ)ヘキサノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル8
,8−ビス(ヘキシルオキシ)オクタノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル8
,8−ジブトキシオクタノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル8
,8−ビス((2−プロピルペンチル)オキシ)オクタノエート;
3−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタ
デシル8,8−ビス((2−プロピルペンチル)オキシ)オクタノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル8
,8−ビス((2−プロピルペンチル)オキシ)オクタノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル3
−オクチルウンデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル3
−オクチルウンデカ−2−エノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル7
−ヘキシルトリデカ−6−エノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル9
−ペンチルテトラデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル9
−ペンチルテトラデカ−8−エノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル5
−ヘプチルドデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)トリデシル5−
ヘプチルドデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ウンデシル5−
ヘプチルドデカノエート;
1,3−ビス(オクタノイルオキシ)プロパン−2−イル(3−(((2−(ジメチル
アミノ)エトキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル)スクシネート;
1,3−ビス(オクタノイルオキシ)プロパン−2−イル(3−(((3−(ジメチル
アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル)スクシネート;
1−(3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデ
シル)10−オクチルデカンジオエート;
1−(3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデ
シル)10−オクチルデカンジオエート;
1−(3−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)
ペンタデシル)10−オクチルデカンジオエート;
1−(3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデ
シル)10−(2−エチルヘキシル)デカンジオエート;
1−(3−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)
ペンタデシル)10−(2−エチルヘキシル)デカンジオエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル1
0−(オクタノイルオキシ)デカノエート;
8−ドデシル−2−メチル−6,12−ジオキソ−5,7,11−トリオキサ−2−ア
ザノナデカン−19−イルデカノエート;
3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタデシル1
0−(オクタノイルオキシ)デカノエート;
3−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ペンタ
デシル10−(オクタノイルオキシ)デカノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)ペンタデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)ペンタデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニ
ル)オキシ)ペンタデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((2−(ジメチルアミノ)エトキシ)カルボニル)オキシ
)ペンタデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
1−((9Z,12Z)−オクタデカ−9,12−ジエノイルオキシ)ペンタデカン−
3−イル1,4−ジメチルピペリジン−4−カルボキシレート;
2−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)テトラデシル4
,4−ビス((2−エチルヘキシル)オキシ)ブタノエート;
(9Z,12Z)−(12Z,15Z)−3−((3−(ジメチルアミノ)プロパノイ
ル)オキシ)ヘンイコサ−12,15−ジエン−1−イルオクタデカ−9,12−ジエノ
エート;
(12Z,15Z)−3−((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)ヘンイコ
サ−12,15−ジエン−1−イル3−オクチルウンデカノエート;
(12Z,15Z)−3−((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)ヘンイコ
サ−12,15−ジエン−1−イル5−ヘプチルドデカノエート;
(12Z,15Z)−3−((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)ヘンイコ
サ−12,15−ジエン−1−イル7−ヘキシルトリデカノエート;
(12Z,15Z)−3−((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)ヘンイコ
サ−12,15−ジエン−1−イル9−ペンチルテトラデカノエート;
(12Z,15Z)−1−((((9Z,12Z)−オクタデカ−9,12−ジエン−
1−イルオキシ)カルボニル)オキシ)ヘンイコサ−12,15−ジエン−3−イル3−
(ジメチルアミノ)プロパノエート;
(13Z,16Z)−4−(((2−(ジメチルアミノ)エトキシ)カルボニル)オキ
シ)ドコサ−13,16−ジエン−1−イル2,2−ビス(ヘプチルオキシ)アセテート
;
(13Z,16Z)−4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オ
キシ)ドコサ−13,16−ジエン−1−イル2,2−ビス(ヘプチルオキシ)アセテー
ト;
2,2−ビス(ヘプチルオキシ)エチル3−((3−エチル−10−((9Z,12Z
)−オクタデカ−9,12−ジエン−1−イル)−8,15−ジオキソ−7,9,14−
トリオキサ−3−アザヘプタデカン−17−イル)ジスルファニル)プロパノエート;
(13Z,16Z)−4−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オ
キシ)ドコサ−13,16−ジエン−1−イルヘプタデカン−9−イルスクシネート;
(9Z,12Z)−2−(((11Z,14Z)−2−((3−(ジメチルアミノ)プ
ロパノイル)オキシ)イコサ−11,14−ジエン−1−イル)オキシ)エチルオクタデ
カ−9,12−ジエノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−13−(オクタノイルオキシ)トリデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−(オク
タノイルオキシ)トリデシル3−オクチルウンデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−ヒドロ
キシトリデシル5−ヘプチルドデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−(オク
タノイルオキシ)トリデシル5−ヘプチルドデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−(オク
タノイルオキシ)トリデシル7−ヘキシルトリデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−ヒドロ
キシトリデシル9−ペンチルテトラデカノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−(オク
タノイルオキシ)トリデシル9−ペンチルテトラデカノエート;
1−(3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−
(オクタノイルオキシ)トリデシル)10−オクチルデカンジオエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−13−(オク
タノイルオキシ)トリデシル10−(オクタノイルオキシ)デカノエート;
(9Z,12Z)−3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−5−オクチルトリデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
3−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−5−オクチル
トリデシルデカノエート;
5−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−7−オクチル
ペンタデシルオクタノエート;
(9Z,12Z)−5−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)−7−オクチルペンタデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
9−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−11−オクチ
ルノナデシルオクタノエート;
9−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−11−オクチ
ルノナデシルデカノエート;
(9Z,12Z)−9−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキ
シ)ノナデシルオクタデカ−9,12−ジエノエート;
9−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ノナデシルヘキ
サノエート;
9−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ノナデシル3−
オクチルウンデカノエート;
9−((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)ノナデシルヘキサノエート;
9−((4−(ジメチルアミノ)ブタノイル)オキシ)ノナデシル3−オクチルウンデ
カノエート;
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((4−(((3−(ジメチルアミノ)プ
ロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイル
ビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((4−(((3−(ジエチルアミノ)プ
ロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイル
ビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z,15Z,15’Z)−2−((4−(((3−(
ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパ
ン−1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12,15−トリエノエート);
(Z)−2−((4−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ
)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジオレエート;
2−((4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジテトラデカノエート;
2−((4−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジテトラデカノエート;
2−((4−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ
)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジテトラデカノエート;
2−((4−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジドデカノエート;
2−((4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジドデカノエート;
2−((4−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ
)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジドデカノエート;
2−((4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルビス(デカノエート);
2−((4−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ
)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルビス(デカノエート);
2−((4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)ヘキサ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−((4−(((3−(エチル(メチル)アミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ
)ヘキサデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
2−(((13Z,16Z)−4−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ)カルボ
ニル)オキシ)ドコサ−13,16−ジエノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジ
オクタノエート;
2−(((13Z,16Z)−4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボ
ニル)オキシ)ドコサ−13,16−ジエノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジ
オクタノエート;
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((2−(((3−(ジエチルアミノ)プ
ロポキシ)カルボニル)オキシ)テトラデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイル
ビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((2−(((3−(ジメチルアミノ)プ
ロポキシ)カルボニル)オキシ)ドデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルビス
(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((2−(((3−(ジメチルアミノ)プ
ロポキシ)カルボニル)オキシ)テトラデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイル
ビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−((2−(((3−(ジエチルアミノ)プ
ロポキシ)カルボニル)オキシ)ドデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルビス
(オクタデカ−9,12−ジエノエート);
2−((2−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)テトラ
デカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジオクタノエート;
4,4−ビス(オクチルオキシ)ブチル4−(((3−(ジメチルアミノ)プロポキシ
)カルボニル)オキシ)ヘキサデカノエート;
4,4−ビス(オクチルオキシ)ブチル2−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ
)カルボニル)オキシ)ドデカノエート;
(9Z,12Z)−10−ドデシル−3−エチル−14−(2−((9Z,12Z)−
オクタデカ−9,12−ジエノイルオキシ)エチル)−8,13−ジオキソ−7,9−ジ
オキサ−3,14−ジアザヘキサデカン−16−イルオクタデカ−9,12−ジエノエー
ト;
2−((4−(((3−(ジエチルアミノ)プロポキシ)カルボニル)オキシ)−11
−(オクタノイルオキシ)ウンデカノイル)オキシ)プロパン−1,3−ジイルジオクタ
ノエート;および
(9Z,9’Z,12Z,12’Z)−2−(9−ドデシル−2−メチル−7,12−
ジオキソ−6,8,13−トリオキサ−2−アザテトラデカン−14−イル)プロパン−
1,3−ジイルビス(オクタデカ−9,12−ジエノエート)
から選択される。
全に飽和した分岐状または未分岐状炭化水素鎖を指す。例えば、C1〜8アルキルは、1
〜8個の炭素原子を有するアルキル基を指す。例えば、C4〜22アルキルは、4〜22
個の炭素原子を有するアルキル基を指す。例えば、C6〜10アルキルは、6〜10個の
炭素原子を有するアルキル基を指す。例えば、C12〜22アルキルは、12〜22個の
炭素原子を有するアルキル基を指す。アルキルの代表的な例として、メチル、エチル、n
−プロピル、イソプロピル、n−ブチル、sec−ブチル、イソ−ブチル、tert−ブ
チル、n−ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、n−ヘキシル、3−メチルヘキシル
、2,2−ジメチルペンチル、2,3−ジメチルペンチル、n−ヘプチル、n−オクチル
、n−ノニル、n−デシル、n−ウンデカニル、n−ドデカニル、n−トリデカニル、9
−メチルヘプタデカニル、1−ヘプチルデシル、2−オクチルデシル、6−ヘキシルドデ
シル、4−ヘプチルウンデシル等が挙げられるが、それらに限定されない。
るような二価アルキル基を指す。アルキレンの代表的な例として、メチレン、エチレン、
n−プロピレン、イソ−プロピレン、n−ブチレン、sec−ブチレン、イソ−ブチレン
、tert−ブチレン、n−ペンチレン、イソペンチレン、ネオペンチレン、n−へキシ
レン、3−メチルへキシレン、2,2−ジメチルペンチレン、2,3−ジメチルペンチレ
ン、n−ヘプチレン、n−オクチレン、n−ノニレン、n−デシレン等が挙げられるが、
それらに限定されない。
よび1つまたは複数の炭素間二重結合を有する不飽和の分岐状または未分岐状炭化水素鎖
を指す。例えば、C12〜22アルケニルは、鎖内に1つまたは複数の炭素間二重結合を
有する12〜22個の炭素原子を有するアルケニル基を指す。ある特定の実施形態では、
アルケニル基は、鎖内に1つの炭素間二重結合を有する。他の実施形態では、アルケニル
基は、鎖内に1つよりも多い炭素間二重結合を有する。アルケニル基は、式(I)または
(III)で規定するように、1つまたは複数の置換基で任意選択で置換されてもよい。
アルケニルの代表的な例として、エチレニル、プロペニル、ブテニル、ペンテニル、ヘキ
セニル等が挙げられるが、それらに限定されない。アルケニルの他の例として、Z−オク
タデカ−9−エニル、Z−ウンデカ−7−エニル、Z−ヘプタデカ−8−エニル、(9Z
,12Z)−オクタデカ−9,12−ジエニル、(8Z,11Z)−ヘプタデカ−8,1
1−ジエニル、(8Z,11Z,14Z)−ヘプタデカ−8,11,14−トリエニル、
リノレニル、2−オクチルデカ−1−エニル、リノレイルおよびオレリルが挙げられるが
、それらに限定されない。
するような二価アルケニル基を指す。アルケニレンの代表的な例として、エテニレン、プ
ロペニレン、ブテニレン、ペンテニレン、ヘキセニレン等が挙げられるが、それらに限定
されない。
任意のアルキル部分(即ち、−O−C1−3アルキル基、ここでC1〜3アルキルは、本
明細書中で規定する通りである)を指す。かかる基の例として、メトキシ、エトキシおよ
びプロポキシが挙げられるが、それらに限定されない。
する飽和した単環式、二環式または三環式炭化水素を指す。例えば、C3〜7シクロアル
キルは、3〜7個の炭素原子を有するシクロアルキル環を指す。シクロアルキル基は、式
(I)で規定するように、1つまたは複数の置換基で任意選択で置換されてもよい。シク
ロアルキルの代表的な例として、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シク
ロヘキシル、ビシクロ[2.1.1]ヘキシル、ビシクロ[2.2.1]ヘプチル、アダ
マンチル等が挙げられるが、それらに限定されない。
びヨードを指す。
する、4〜12員環の飽和もしくは不飽和の単環式または二環式環を指す。複素環系は、
芳香族ではない。1つよりも多いヘテロ原子を含有する複素環式基は、異なるヘテロ原子
を含有してもよい。複素環式基は、単環式、スピロ、または融合もしくは架橋二環式環系
である。単環式複素環式基の例として、テトラヒドロフラニル、ジヒドロフラニル、1,
4−ジオキサニル、モルホリニル、1,4−ジチアニル、アゼチジニル、ピペラジニル、
ピペリジニル、1,3−ジオキソラニル、イミダゾリジニル、イミダゾリニル、ピロリニ
ル、ピロリジニル、テトラヒドロピラニル、ジヒドロピラニル、1,2,3,6−テトラ
ヒドロピリジニル、オキサチオラニル、ジチオラニル、1,3−ジオキサニル、1,3−
ジチアニル、オキサチアニル、チオモルホリニル、1,4,7−トリオキサ−10−アザ
シクロドデカニル、アザパニル等が挙げられる。スピロ複素環の例として、1,5−ジオ
キサ−9−アザスピロ[5.5]ウデンカニル、1,4−ジオキサ−8−アザスピロ[4
.5]デカニル、2−オキサ−7−アザスピロ[3.5]ノナニル等が挙げられるが、そ
れらに限定されない。融合複素環系は、8〜11個の環原子を有し、複素環がフェニル環
に融合される基を含む。融合複素環の例として、デカヒドロクニリニル(qunilinyl)、
(4aS,8aR)−デカヒドロイソキノリニル、(4aS,8aS)−デカヒドロイソ
キノリニル、オクタヒドロシクロペンタ[c]ピロリル、イソイノリニル、(3aR,7
aS)−ヘキサヒドロ−[1,3]ジオキソロ[4.5−c]ピリジニル、オクタヒドロ
−1H−ピロロ[3,4−b]ピリジニル、テトラヒドロイソキノリニル等が挙げられる
が、それらに限定されない。
合により、または上記で規定するようなC1〜8アルキル基により、分子の残部に結合さ
れた、上記で規定するような複素環を指す。
から個々に選択される1、2、3または4つのヘテロ原子を含む5または6員環の芳香族
単環式環基を指す。ヘテロアリール基は、炭素原子またはヘテロ原子を介して結合され得
る。ヘテロアリールの例として、フリル、ピロリル、チエニル、ピラゾリル、イミダゾリ
ル、チアゾリル、イソチアゾリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、トリアゾリル、テト
ラゾリル、ピラジニル、ピリダジニル、ピリミジルまたはピリジルが挙げられるが、それ
らに限定されない。
または上記で規定するようなC1〜8アルキル基により、分子の残部に結合された、上記
で規定するようなヘテロアリール環を指す。
本発明の脂質組成物における使用に適した中性脂質として、例えば、様々な中性、非荷
電または両性イオン性脂質が挙げられる。本発明における使用に適した中性リン脂質の例
として、5−ヘプタデシルベンゼン−1,3−ジオール(レゾルシノール)、ジパルミト
イルホスファチジルコリン(DPPC)、ジステアロイルホスファチジルコリン(DSP
C)、ホスホコリン(DOPC)、ジミリストイルホスファチジルコリン(DMPC)、
ホスファチジルコリン(PLPC)、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホ
スホコリン(DAPC)、ホスファチジルエタノールアミン(PE)、卵ホスファチジル
コリン(EPC)、ジラウリルオイルホスファチジルコリン(DLPC)、ジミリストイ
ルホスファチジルコリン(DMPC)、1−ミリストイル−2−パルミトイルホスファチ
ジルコリン(MPPC)、1−パルミトイル−2−ミリストイルホスファチジルコリン(
PMPC)、1−パルミトイル−2−ステアロイルホスファチジルコリン(PSPC)、
1,2−ジアラキドイル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン(DBPC)、1−ステア
ロイル−2−パルミトイルホスファチジルコリン(SPPC)、1,2−ジエイコセノイ
ル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン(DEPC)、パルミトイルオレオイルホスファ
チジルコリン(POPC)、リゾホスファチジルコリン、ジオレオイルホスファチジルエ
タノールアミン(DOPE)、ジリノレオイルホスファチジルコリンジステアロイルホス
ファチジルエタノールアミン(DSPE)、ジミリストイルホスファチジルエタノールア
ミン(DMPE)、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン(DPPE)、パル
ミトイルオレオイルホスファチジルエタノールアミン(POPE)、リゾホスファチジル
エタノールアミンおよびそれらの組合せが挙げられるが、それらに限定されない。一実施
形態では、中性リン脂質は、ジステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)およびジ
ミリストイルホスファチジルエタノールアミン(DMPE)から成る群から選択される。
本発明における使用に適した陰イオン性脂質として、ホスファチジルグリセロール、カ
ルジオリピン、ジアシルホスファチジルセリン、ジアシルホスファチジン酸、N−ドデカ
ノイルホスファチジルエタノールアミン、N−スクシニルホスファチジルエタノールアミ
ン、N−グルタリルホスファチジルエタノールアミンコハク酸水素コレステロール(CH
EMS)、およびリジルホスファチジルグリセロールが挙げられるが、それらに限定され
ない。
ヘルパー脂質は、トランスフェクション(例えば、生物学的活性剤を含むナノ粒子のト
ランスフェクション)をある程度高める脂質である。ヘルパー脂質がトランスフェクショ
ンを高めるメカニズムは、例えば、粒子安定性を高めること、および/または膜融合性を
高めることを含み得る。ヘルパー脂質として、ステロイドおよびアルキルレゾルシノール
が挙げられる。本発明における使用に適したヘルパー脂質として、コレステロール、5−
ヘプタデシルレゾルシノール、およびコハク酸水素コレステロールが挙げられるが、それ
らに限定されない。
ステルス脂質は、ナノ粒子がin vivoで(例えば、血中で)存在することができ
る間、増加する脂質である。本発明の脂質組成物における使用に適したステルス脂質とし
て、脂質部分に連結される親水性ヘッド基を有するステルス脂質が挙げられるが、それら
に限定されない。かかるステルス脂質の例として、国際公開第2011/076807号
パンフレットに記載されるような、式(XI)
(式中、
Zは、PEGならびにポリ(オキサゾリン)、ポリ(エチレンオキシド)、ポリ(ビニ
ルアルコール)、ポリ(グリセロール)、ポリ(N−ビニルピロリドン)、ポリ[N−(
2−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド]、多糖およびポリ(アミノ酸)ベースのポ
リマーから選択され、ここでポリマーは、直鎖状であってもよく、または分岐状であって
もよく、ポリマーは、任意選択で置換されてもよく、
Zは、n個のサブユニットにより重合され、
nは、10〜200ユニットのZ間の数平均重合度であり、nは、種々のポリマータイ
プに関して最適化され、
L1は、エーテル(例えば、−O−)、エステル(例えば、−C(O)O−)、スクシ
ネート(例えば、−O(O)C−CH2−CH2−C(O)O−)、カルバメート(例え
ば、−OC(O)−NR’−)、カーボネート(例えば、−OC(O)O−)、ケトン(
例えば、−C−C(O)−C−)、カルボニル(例えば、−C(O)−)、尿素(例えば
、−NRC(O)NR’−)、アミン(例えば、−NR’−)、アミド(例えば、−C(
O)NR’−)、イミン(例えば、−C(NR’)−)、チオエーテル(例えば、−S−
)、キサントエート(例えば、−OC(S)S−)、およびホスホジエステル(例えば、
−OP(O2)O−)のうちの0、1つ、2つまたはそれ以上を含む、任意選択で置換さ
れるC1〜10アルキレンまたはC1〜10ヘテロアルキレンリンカーであり、それらの
いずれも、0、1つまたは複数のZ基により置換されてもよく、
R’は、−H、−NH、−NH2、−O−、−S−、ホスフェートまたは任意選択で置
換されるC1〜10アルキレンから独立して選択され、
X1およびX2は、炭素または−NH−、−O−、−S−もしくはホスフェートから選
択されるヘテロ原子から独立して選択され、
A1およびA2は、C6〜30アルキル、C6〜30アルケニル、およびC6〜30ア
ルキニルから独立して選択され、ここでA1およびA2は、同じであってもよく、または
異なってもよく、あるいは、
A1およびA2は、それらが結合する炭素と一緒に、任意選択で置換されるステロイド
を形成する)が挙げられる。
い。
に関する情報は、Romberg et al., Pharmaceutical Research, Vol. 25, No. 1, 2008, p
.55-71、およびHoekstra et al., Biochimica et Biophysica Acta 1660 (2004) 41-52に
見出すことができる。
キシド)と称される)ならびにポリ(オキサゾリン)、ポリ(ビニルアルコール)、ポリ
(グリセロール)、ポリ(N−ビニルピロリドン)、ポリアミノ酸およびポリ[N−(2
−ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド]ベースのポリマーから選択される基を含む。
さらなる適したPEG脂質は、例えば国際公開第2006/007712号パンフレット
に開示されている。
立して含むアルキル鎖長を有するジアルキルグリセロールまたはジアルキルグリカミド基
を含むものを含む、ポリエチレングリコール−ジアシルグリセロールまたはポリエチレン
グリコール−ジアシルグリカミド(PEG−DAG)が挙げられる。ジアルキルグリセロ
ールまたはジアルキルグリカミド基は、1つまたは複数の置換アルキル基を含む。本明細
書中に記載する実施形態のいずれかにおいて、PEG複合体は、PEG−ジラウリルグリ
セロール、PEG−ジミリスチルグリセロール(PEG−DMG)(NOF, Tokyo, Japan
からのカタログ#GM−020)、PEG−ジパルミトイルグリセロール、PEG−ジス
テリルグリセロール、PEG−ジラウリルグリカミド、PEG−ジミリスチルグリカミド
、PEG−ジパルミトイルグリカミド、およびPEG−ジステリルグリカミド、PEG−
コレステロール(1−[8’−(コレスタ−5−エン−3[ベータ]−オキシ]カルボキ
シアミド−3’,6’−ジオキサオクタニル]カルバモイル−[オメガ]−メチル−ポリ
(エチレングリコール)、PEG−DMB(3,4−ジテトラデコキシルベンジル−[オ
メガ]−メチル−ポリ(エチレングリコール)エーテル)、1,2−ジミリストイル−s
n−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[メトキシ(ポリエチレングリコール
)−2000](Avanti Polar Lipids, Alabaster, Alabama, USAからのカタログ#88
0150P)から選択することができる。
S033である。
チレングリコールまたは他のポリアルキレンエーテルポリマーを意味する。一実施形態で
は、PEGは、エチレングリコールまたはエチレンオキシドの任意選択で置換される直鎖
状または分岐状ポリマーである。一実施形態では、PEGは無置換である。一実施形態で
は、PEGは、例えば、1つまたは複数のアルキル、アルコキシ、アシル、ヒドロキシま
たはアリール基により置換される。一実施形態では、上記用語は、PEG−ポリウレタン
またはPEG−ポリプロピレンなどのPEG共重合体を含み(例えば、J. Milton Harris
, Poly(ethylene glycol) chemistry: biotechnical and biomedical applications (199
2)を参照)、別の実施形態では、上記用語は、PEG共重合体を含まない。一実施形態で
は、PEGは、約130〜約50,000、亜実施形態では、約150〜約30,000
、亜実施形態では、約150〜約20,000、亜実施形態では、約150〜約15,0
00、亜実施形態では、約150〜約10,000、亜実施形態では、約150〜約60
00、亜実施形態では、約150〜約5000、亜実施形態では、約150〜約4000
、亜実施形態では、約150〜約3000、亜実施形態では、約300〜約3000、亜
実施形態では、約1000〜約3000、および亜実施形態では、約1500〜約250
0の分子量を有する。
K」であり、それは、約2000ダルトンの平均分子量を有する。PEG−2Kは、本明
細書中では、下記式(XIIa)により表され、ここではnは45であり、数平均重合度
が約45個のサブユニットを含むことを意味する。しかしながら、例えば、数平均重合度
が、約23個のサブユニット(n=23)および/または68個のサブユニット(n=6
8)を含むものを含む、当該技術分野で公知の他のPEG実施形態が使用されてもよい。
下の実施例1〜36である。
「脂質ナノ粒子」とは、分子間力によって互いに物理的に結合された複数の(即ち、1
つよりも多い)脂質分子を含む粒子を意味する。脂質ナノ粒子は、例えば、ミクロスフェ
ア(単層および多層ベシクル、例えばリポソームを含む)、エマルジョン中の分散相、ミ
セルまたは懸濁液中の内部相であり得る。
封入するための分子間力/静電相互作用によって互いに物理的に結合された複数の脂質分
子を指す。
入核酸ナノ粒子組成物を提供する。被封入核酸ナノ粒子は、脂質ナノ粒子ホストおよび脂
質ナノ粒子ホスト中に封入される核酸を含む。「薬学的に許容される担体」という用語は
、本明細書中で使用する場合、無毒性の不活性希釈剤を意味する。薬学的に許容される担
体として作用し得る材料として、発熱物質除去水(pyrogen-free water)、脱イオン水、
等張生理食塩水、リンゲル溶液、およびリン酸緩衝溶液が挙げられるが、それらに限定さ
れない。好ましい実施形態では、被封入核酸ナノ粒子は、約40〜約70nmの平均サイ
ズ、および例えばMalvern Zetasizer Nano ZSを使用して、動
的光散乱により決定される場合の約0.1未満の多分散指数を有する。脂質ナノ粒子ホス
トは、本明細書中の他の箇所で記載されるように、分解性陽イオン性脂質、脂質付加され
た(lipidated)ポリエチレングリコール、コレステロール、および1,2−ジステアロ
イル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン構成成分を含む。
子組成物を調製する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質およびヘルパー脂
質、例えばコレステロールを使用する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質
、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質、例えばDSPCを使用する方
法を提供する。本発明の別の実施形態は、陽イオン性脂質、ヘルパー脂質、例えばコレス
テロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステルス脂質、例えばS010、S024
、S027、S031、またはS033を使用する方法を提供する。本発明の別の実施形
態は、脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を提供し、ここでナノ粒子は、陽イオ
ン性脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、ステルス
脂質、例えばS010、S024、S027、S031、またはS033を含み、核酸は
、例えばRNAまたはDNAである。本発明の別の実施形態は、陽イオン性脂質、ヘルパ
ー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステルス脂質、例え
ばS010、S024、S027、S031、またはS033を使用する方法を提供し、
ここで核酸は、例えばmRNA、siRNAまたはDNAである。
ヘルパー脂質(コレステロール)、任意選択の中性脂質(DSPC)およびステルス脂質
(例えば、S010、S024、S027、またはS031)を含有する。配合物が4つ
の脂質構成成分を含有する場合、脂質のモル比は、40〜60の標的を有する陽イオン性
脂質に関して20〜70モルパーセントの範囲であってもよく、ヘルパー脂質のモルパー
セントは、30〜50の標的で20〜70の範囲であり、中性脂質のモルパーセントは、
0〜30の範囲であり、PEG脂質のモルパーセントは、2〜5の標的で1〜6の範囲を
有する。
〜60%、コレステロール30〜60%/DSPC5〜10%、およびPEG−DMG、
S010、S011またはS024 1〜5%を含有する。
脂質モル比で、陽イオン性脂質およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、
脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂
質約40〜55/ヘルパー脂質約40〜55/中性脂質約5〜15の脂質モル比で、陽イ
オン性脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質、例えばDSPCを
使用する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質約40〜55/ヘルパー脂質
約40〜55/中性脂質約5〜15/ステルス脂質約1〜10の脂質モル比で、陽イオン
性脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステ
ルス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、またはS033を使用する
方法を提供する。
脂質モル比で、陽イオン性脂質およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、
脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂
質約40〜50/ヘルパー脂質約40〜50/中性脂質約5〜15の脂質モル比で、陽イ
オン性脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質、例えばDSPCを
使用する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質約40〜50/ヘルパー脂質
約40〜50/中性脂質約5〜15/ステルス脂質約1〜5の脂質モル比で、陽イオン性
脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステル
ス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、またはS033を使用する方
法を提供する。
脂質モル比で、陽イオン性脂質およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、
脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂
質約43〜47/ヘルパー脂質約43〜47/中性脂質約7〜12の脂質モル比で、陽イ
オン性脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質、例えばDSPCを
使用する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質約43〜47/ヘルパー脂質
約43〜47/中性脂質約7〜12/ステルス脂質約1〜4の脂質モル比で、陽イオン性
脂質、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステル
ス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、またはS033を使用する方
法を提供する。
モル比で、陽イオン性脂質およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、脂質
ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質約
45%、ヘルパー脂質約44%、および中性脂質約9%の脂質モル比で、陽イオン性脂質
、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質、例えばDSPCを使用する方
法を提供する。別の実施形態は、陽イオン性脂質約45%、ヘルパー脂質約44%、中性
脂質約9%、およびステルス脂質約2%の脂質モル比で、陽イオン性脂質、ヘルパー脂質
、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステルス脂質、例えばS0
10、S024、S027、S031、またはS033を使用する方法を提供する。
核酸ナノ粒子組成物を調製する方法を提供する。別の実施形態は、式(I)を有する化合
物およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用する方法を提供する。別の実施形態
は、式(I)を有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質、
例えばDSPCを使用する方法を提供する。本発明の別の実施形態は、式(I)を有する
化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステ
ルス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、またはS033を使用する
方法を提供する。本発明の別の実施形態は、脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法
を提供し、ここでナノ粒子は、式(I)を有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステ
ロール、中性脂質、例えばDSPC、ステルス脂質、例えばS010、S024、S02
7、S031、またはS0303を含み、核酸は、例えばRNAまたはDNAである。本
発明の別の実施形態は、式(I)を有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール
、中性脂質、例えばDSPC、およびステルス脂質、例えばS010、S024、S02
7、S031、またはS0303を使用する方法を提供し、ここで核酸は、例えばmRN
A、siRNAまたはDNAである。
〜55の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物およびヘルパー
脂質、例えばコレステロールを使用して、脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入する方法を
提供する。別の実施形態は、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物約40〜5
5/ヘルパー脂質約40〜55/中性脂質約5〜15の脂質モル比で、式(I)〜式(I
X)のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、および中性脂質
、例えばDSPCを使用する方法を提供する。別の実施形態は、式(I)を有する化合物
約40〜55/ヘルパー脂質約40〜55/中性脂質約5〜15/ステルス脂質約1〜1
0の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例
えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステルス脂質、例えばS010
、S024、S027、S031、またはS033を使用する方法を提供する。
0/ヘルパー脂質約40〜50の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有す
る化合物およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、脂質ナノ粒子ホスト中
に核酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、式(I)〜式(IX)のいずれかを
有する化合物約40〜50/ヘルパー脂質約40〜50/中性脂質約5〜15の脂質モル
比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステ
ロール、および中性脂質、例えばDSPCを使用する方法を提供する。別の実施形態は、
式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物約40〜50/ヘルパー脂質約40〜5
0/中性脂質約5〜15/ステルス脂質約1〜5の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)
のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばD
SPC、およびステルス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、または
S033を使用する方法を提供する。
7/ヘルパー脂質約43〜47の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有す
る化合物およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、脂質ナノ粒子ホスト中
に核酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、式(I)〜式(IX)のいずれかを
有する化合物約43〜47/ヘルパー脂質約43〜47/中性脂質約7〜12の脂質モル
比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステ
ロール、および中性脂質、例えばDSPCを使用する方法を提供する。別の実施形態は、
式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物約43〜47/ヘルパー脂質約43〜4
7/中性脂質約7〜12/ステルス脂質約1〜4の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)
のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばD
SPC、およびステルス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、または
S033を使用する方法を提供する。
よびヘルパー脂質約44%の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する化
合物およびヘルパー脂質、例えばコレステロールを使用して、脂質ナノ粒子ホスト中に核
酸を封入する方法を提供する。別の実施形態は、式(I)〜式(IX)のいずれかを有す
る化合物約45%、ヘルパー脂質約44%、および中性脂質約9%の脂質モル比で、式(
I)〜式(IX)のいずれかを有する化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、お
よび中性脂質、例えばDSPCを使用する方法を提供する。別の実施形態は、式(I)〜
式(IX)のいずれかを有する化合物約45%、ヘルパー脂質約44%、中性脂質約9%
、およびステルス脂質約2%の脂質モル比で、式(I)〜式(IX)のいずれかを有する
化合物、ヘルパー脂質、例えばコレステロール、中性脂質、例えばDSPC、およびステ
ルス脂質、例えばS010、S024、S027、S031、またはS033を使用する
方法を提供する。
0:1(wt/wt)であり得る。ある特定の実施形態では、脂質:核酸の比は、約17
〜19:1である。他の実施形態では、脂質:核酸の比は、約18.5:1である。
値のサイズの分布を有する。より狭い範囲の粒径は、粒径のより一様な分布に対応する。
粒径は、インキュベーション後、またはナノ粒子配合物を完全に加工処理(例えば、希釈
、ろ過、透析等)した後に、ナノ粒子の収集時に決定され得る。例えば、粒径決定は通常
、60分のインキュベーション期間後、および/または完全な試料の加工処理後に実施さ
れる。平均粒径は、Z−平均値または数平均値のいずれかとして報告される。Z−平均値
は、Malvern Zetasizerで動的光散乱により測定される。ナノ粒子試料
は、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中に希釈されて、その結果、カウントレート(coun
t rate)は、およそ200〜400kctである。データは、強度測定の加重平均値とし
て表される。動的光散乱はまた、粒径分布の幅を定量化する多分散指数(PDI)を提供
する。より大きなPDIは、より大きな粒径分布と相関し、また逆の場合も同様である。
他方で、数平均値は、顕微鏡下での測定により決定することができる。
30〜約150nmの平均直径を有する。他の実施形態では、粒子は、約30〜約40n
mの平均直径を有する。他の実施形態では、粒子は、約40〜約70nmの平均直径を有
する。他の実施形態では、粒子は、約65〜約80nmの平均直径を有する。他の実施形
態では、粒子は、約50〜約80nmのZ平均値および/または約40〜約80nmの数
平均値を有する。さらなる他の実施形態では、粒子は、約50〜約70nmのZ平均値お
よび/または約40〜65nmの数平均値を有する。さらに他の実施形態では、粒子は、
約70〜約80nmのZ平均値および/または約60〜80nmの数平均値を有する。得
られる粒子の特定サイズは、核酸および脂質流の線速度、任意選択の希釈ステップの使用
、および使用する特定核酸または脂質に依存し得る。より大きな線速度、および第1の出
口溶液中の有機溶媒濃度を33%未満に維持することが、より小さな粒径を生じる傾向に
ある。
は、約30〜約150nmの平均直径を有する。他の実施形態では、粒子は、約30〜約
40nmの平均直径を有する。他の実施形態では、粒子は、約40〜約70nmの平均直
径を有する。他の実施形態では、粒子は、約65〜約80nmの平均直径を有する。他の
実施形態では、粒子は、約50〜約80nmのZ平均値および/または約40〜約80n
mの数平均値を有する。さらなる他の実施形態では、粒子は、約50〜約70nmのZ平
均値および/または約40〜65nmの数平均値を有する。さらに他の実施形態では、粒
子は、約70〜約80nmのZ平均値および/または約60〜80nmの数平均値を有す
る。さらなる他の実施形態では、本発明のプロセスにより生産される被封入siRNAナ
ノ粒子は、約30、約35、約40、約45、約50、約55、約60、約65、約70
、約75、または約80nmの平均直径を有し得る。
て、多分散指数(PDI)は、0〜1.0の範囲であり得る。特定の好ましい実施形態で
は、PDIは、約0.2未満である。他の好ましい実施形態では、PDIは、約0.1未
満である。
脂質、および中性脂質と組み合わせることにより、特定の細胞および組織へのin vi
voでの送達のために、例えばリポソーム配合物、脂質ナノ粒子(LNP)配合物等を含
む配合物へとさらに最適化されてもよい。一実施形態では、さらなる最適化は、これら各
種タイプの脂質間の脂質モル比を調節することにより得られる。一実施形態では、さらな
る最適化は、所望の粒径、N/P比、および/またはプロセスパラメーターの1つまたは
複数を調節することにより得られる。上記で列挙する実施形態に関する当業者に公知の各
種最適化技法は、本発明の一部とみなされる。
下記方法を使用して、本発明の脂質ナノ粒子を作製することができる。粒子におけるサ
イズ低減を達成するために、および/またはサイズの均質性を増加させるために、当業者
は、以下に提示する方法ステップを使用して、種々の組合せを実験してもよい。さらに、
当業者は、リポソーム配合物で使用される超音波処理、ろ過または他のサイジング技法を
用いることができる。
緩衝液などの水溶液を供給するステップ、脂質(複数可)の有機アルコール、例えばエタ
ノールなどの有機溶液を含む第2のリザーバを供給するステップ、続いて水溶液を有機脂
質溶液と混合するステップを含む。第1のリザーバは、任意選択で、第2のリザーバと液
洛している。混合ステップに続いて、任意選択で、インキュベーションステップ、ろ過ま
たは透析ステップ、ならびに希釈および/または濃縮ステップが行われる。インキュベー
ションステップは、混合ステップからの溶液を、およそ室温で約0〜約24時間(好まし
くは、約1時間)容器中で、および任意選択で光から防御して静置させるステップを含む
。一実施形態では、希釈ステップに続いて、インキュベーションステップが行われる。希
釈ステップは、例えばポンピング装置(例えば、ぜん道ポンプ)を使用した、水性緩衝液
(例えば、クエン酸緩衝液または純水)を用いた希釈を包含し得る。ろ過ステップは、限
外ろ過または透析であってもよい。限外ろ過は、適切な限外ろ過膜(例えば、GE中空繊
維カートリッジまたはそれらの等価体)と併用して適切なポンピングシステム(例えば、
ぜん動ポンプまたはそれらの等価体などのポンピング装置)を使用した、希釈した溶液の
濃縮、続くダイアフィルトレーションを含む。透析は、適切な膜(例えば、10,000
mwc スネークスキン膜)に通した溶媒(緩衝液)交換を含む。
で核酸は、脂質(複数可)により封入される。
できる容易さの考慮を含む。可溶化剤としても使用される有機溶媒は好ましくは、核酸お
よび脂質の透明な単一相混合物を供給するのに十分な量で存在する。適切な有機溶媒とし
て、注射用製剤用の共溶媒としての使用に関して、Strickley, Pharmaceutical Res. (20
04), 21, 201-230により記載されるものが挙げられる。例えば、有機溶媒は、エタノール
、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール300、ポリエチレングリコール40
0、グリセリン、ジメチルアセトアミド(DMA)、N−メチル-2−ピロリドン(NM
P)、およびジメチルスルホキシド(DMSO)のうちの1つまたは複数(例えば、2つ
)から選択され得る。好ましくは、有機溶媒は、エタノールである。
を含む水溶液を保持するための少なくとも1つのリザーバ、および有機脂質溶液を保持す
るための別の1つまたは複数のリザーバを含む。装置はまた、水溶液および有機脂質溶液
を、混合領域または混合チャンバーへポンピングするよう設定されたポンプメカニズムを
通常含む。幾つかの実施形態では、混合領域または混合チャンバーは、クロスカップリン
グ、または等価体を含み、それにより、水性および有機流体流を、十字コネクターへの入
力として組み合わせることが可能であり、得られた複合水性および有機溶液を、十字コネ
クターから、収集リザーバまたはその等価体へ出すことが可能である。他の実施形態では
、混合領域または混合チャンバーは、Tカップリングまたはその等価体を含み、それによ
り、水性および有機流体流を、Tコネクターへの入力として組み合わせることが可能であ
り、得られた複合水性および有機溶液を、Tコネクターから、収集リザーバまたはその等
価体へ出すことが可能である。
ためのシステムを示す図2を参照することにより、より良好に理解され得る。装置1は、
それぞれ第1の核酸流10、第2の核酸流20、および脂質流30を受けるための通路1
2、通路22および通路32を有する十字16を含有する。流れ10、流れ20、および
流れ30は、核酸溶液を含有する1つまたは複数のリザーバ、および脂質の溶液を含有す
る1つまたは複数のリザーバに通じる適切なチューブを通って各々の流れをポンピングす
ることにより、通路12、通路22および通路32へ送達され得る(チューブおよびリザ
ーバは示していない)。図2における通路12、通路22、および通路32は、ほぼ等し
い内径を有する。流10、流20、および流30は、交差ポイント14で集まって、複合
流40を形成する。十字16の幾何学のため、脂質流30は、核酸流10および核酸流2
0に対して直角の方向で流動し、核酸流10および核酸流20は、交差ポイント14に向
かって互いに対して約180°で反対方向で流動する。複合流40は、通路42を通って
、プロセスチャンバー70へと流動し、プロセスチャンバーの本体(72)は、通路42
よりも大きな直径を有し得る。プロセスチャンバー70はまた、様々な長さを有してもよ
い。例えば、プロセスチャンバー70は、通路12、通路22、および通路32の直径の
約100〜2000倍の長さ、および通路12、通路22、および通路32の直径の約4
倍の直径を有し得る。
交差する。希釈流50は、希釈溶液を含有する希釈リザーバからチューブを通って送達さ
れ得る。図2では、通路52は、通路12、通路22、および通路32よりも約2倍大き
な直径を有する。合流した流れ40および希釈流50は、Tチャンバー54で交差する。
合流した流れ40および希釈流50の交差により生じる流れは、被封入核酸ナノ粒子を含
有する第1の出口溶液60である。
.5mg/mLであり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度は、約10〜約25mg
/mLである。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度は、約0.2
〜約0.9mg/mLであり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度は、約15〜約2
0mg/mLである。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度は、約
0.225、0.3、0.33、または0.45〜約0.675mg/mLであり、1つ
または複数の脂質流中の脂質の濃度は、約16〜約18mg/mLである。他の実施形態
では、1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度は、約0.225、0.3、0.33、0
.45、または0.675mg/mLであり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度は
、約16.7mg/mLである。
は、陽イオン性脂質、中性脂質、ヘルパー脂質、およびステルス脂質の混合物であっても
よく、それらはそれぞれ、最終的な被封入核酸ナノ粒子に関して、本明細書中で上記の他
の箇所で記載されるように、ほぼ同じ相対量で存在し得る。脂質流に使用される有機溶媒
は、脂質を可溶化させることが可能なものであり、即ち水性媒質と混和性である。適切な
有機溶媒として、エタノール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール300、
ポリエチレングリコール400、グリセリン、ジメチルアセトアミド(DMA)、N−メ
チル−2−ピロリドン(NMP)、およびジメチルスルホキシド(DMSO)が挙げられ
る。好ましくは、有機溶媒は、約80%またはそれ以上のエタノールを含む。好ましくは
、有機溶媒は、約90%またはそれ以上のエタノールを含む。より好ましくは、有機溶媒
はエタノールである。ある特定の実施形態では、脂質流は、クエン酸ナトリウムの緩衝溶
液(例えば、25mM)などの任意選択の緩衝溶液を含む。
くてもよく、または少なくとも1つの塩を含んでもよい。例えば、第1の水溶液は、添加
塩を伴わずに、脱イオンまたは蒸留水中に適切な核酸を含んでもよい。ある特定の実施形
態では、第1の水溶液は、例えば塩化ナトリウムおよび/またはクエン酸ナトリウムなど
の少なくとも1つの塩を含む第1の緩衝溶液である。第1の水溶液において、塩化ナトリ
ウムは、約0〜約300mMの範囲の濃度で存在し得る。ある特定の実施形態では、塩化
ナトリウムの濃度は、約50、66、75、100、または150mMである。第1の水
溶液は、約0mM〜約100mMの濃度でクエン酸ナトリウムを含み得る。第1の緩衝溶
液は好ましくは、pH約4〜約6.5、より好ましくは約4.5〜5.5を有する。幾つ
かの実施形態では、第1の緩衝溶液のpHは、約5であり、クエン酸ナトリウム濃度は、
約25mMである。他の実施形態では、第1の緩衝溶液のpHは、約6であり、クエン酸
ナトリウムの濃度は、約100mMである。好ましくは、第1の緩衝溶液は、陽イオン性
脂質のpKa未満であるpHを有する。水溶液中に塩を含まない本発明の実施形態に関し
て、脂質流は、任意選択の緩衝溶液を含む。核酸流または脂質流のいずれかにおける塩(
例えば、クエン酸ナトリウム)の非存在下では、封入は起きない。
ル酸水素カリウム/水酸化ナトリウム、フタル酸水素二ナトリウム/オルトリン酸二水素
ナトリウム、フタル酸水素二カリウム/オルトリン酸二水素カリウム、オルトリン酸二水
素カリウム/水酸化ナトリウムが挙げられるが、それらに限定されない。
25%エタノール、約0.15〜0.25mg/mLの核酸、および約3〜4.5mg/
mLの脂質を含む。他の実施形態では、有機溶媒はエタノールを含み、第1の出口溶液は
、約20%エタノール、約0.15〜0.2mg/mLの核酸、および約3〜3.5mg
/mLの脂質を含む。さらに他の実施形態では、有機溶媒はエタノールを含み、第1の出
口溶液は、約20%エタノール、約0.18mg/mLの核酸、および約3.3mg/m
Lの脂質を含む。他の実施形態では、有機溶媒はエタノールを含み、第1の出口溶液は、
約25%エタノール、約0.2〜0.25mg/mLの核酸、および約4〜4.5mg/
mLの脂質を含む。さらなる他の実施形態では、有機溶媒はエタノールを含み、第1の出
口溶液は、約25%エタノール、約0.23mg/mLの核酸、および約4.2mg/m
Lの脂質を含む。
トル/秒の複合線速度を有し、脂質流30は、1秒当たり約1.5〜約4.5メートルの
線速度を有し、脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出口溶液60中
の有機溶媒の濃度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、
約15〜20:1または約17〜19:1であり、出口溶液60中の有機溶媒の濃度は、
約20〜25%である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:
1であり、出口溶液60中の有機溶媒の濃度は、約25%である。上記範囲からの核酸流
および脂質流に関する線速度の選択は、本明細書中に規定するように、脂質対核酸の比を
維持するための要件により制限されることが理解されよう。したがって、他のパラメータ
ー(例えば、核酸濃度(mg/mL)、流速(mL/分))の調節は、標的脂質対核酸比
を達成するのに必要であり得る。
秒の複合線速度を有し、脂質流30は、1秒当たり約3〜約4メートルの線速度を有し、
脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出口溶液60中の有機溶媒の濃
度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約15〜20:
1または約17〜19:1であり、出口溶液60中の有機溶媒の濃度は、約20〜25%
である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1であり、出口
溶液60中の有機溶媒の濃度は、約25%である。
複合線速度を有し、脂質流30は、1秒当たり約3.4メートルの線速度を有し、各流れ
10/20/30/50は、ほぼ同じ流速(mL/分)を有し、脂質:核酸の質量による
比は、約15〜20:1であり、出口溶液60中の有機溶媒の濃度は、約25%である。
ほぼ等しい容量の2つの核酸流、1つの脂質流および1つの希釈流を供給することにより
、第1の出口溶液中の脂質流(100%有機溶媒中の脂質)に由来する有機溶媒の総濃度
は、約25%である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約17〜19:1で
ある。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、18.5:1である。
濃度、および3.4メートル/秒の線速度を有してもよく、脂質流30は、約16.7m
g/mLの総脂質濃度、および約3.4メートル/秒の線速度を有してもよく、個々の流
れの流速はほぼ等しい。例えば、通路12、通路22、および通路32は、内径0.5m
mを有してもよく、流10、流20、および流30はそれぞれ、約40mL/分の流速、
および約3.4メートル/秒の対応する線速度を有する。あるいは、通路12、通路22
、および通路32は、内径1.0mmを有してもよく、流10、流20、および流30は
それぞれ、約160mL/分の流速を有するのに対して、対応する線速度は、約3.4メ
ートル/秒のままである。さらなる代替物では、通路12、通路22、および通路32は
、内径約2.0mmを有してもよく、流10、流20、および流30はそれぞれ、約64
0mL/分の流速を有するのに対して、線速度は、約3.4メートル/秒のままである。
上述の例から明らかであるように、通路および流れの直径の倍増は、一定の線速度を維持
するために流速の4倍増加を要する。これらの例では、希釈流50は、流10、流20、
および流30と同じ流速を有するが、通路52の2倍よりも大きい直径が、各プロセスス
ケールで、希釈流に関して50%よりも低い線速度をもたらす。驚くべきことに、同じ高
度の核酸封入および小さくて、かつ一様な粒径を維持しながら、本発明のプロセスは、上
述するように縮尺され得ることが見出されている。
濃度、ならびに希釈流50を含む、個々の流れの流速(mL/分)に関する。しかしなが
ら、核酸および脂質の濃度は、上記で付与される特定の値に限定されず、流速が相応して
調節されるのであれば、必要に応じて、一般的に脂質:核酸の比を約15〜20:1に維
持するように上下に調節してもよい。例えば、0.45mg/mLから0.405mg/
mLへの核酸濃度の10%減少は、一定の核酸の全体的な送達を保持するために流速(m
L/分)の約1.11倍増加により遂行される。一定の核酸流の直径を保持して、mL/
分の流速の1.11倍増加は、メートル/秒の線速度の1.11倍増加をもたらす。同様
に、一定の希釈流の流速を保持して、出口溶液60中の脂質流からの有機溶媒の全体的な
濃度は、約23.5%へ減少する。当然のことながら、希釈流50の流速は同様に、その
ように望まれる場合には、有機溶媒濃度を約25%に保持するように低減させることがで
きる。最終的に、核酸濃度の十分な低減および核酸流の流速の対応する増加が、有機溶媒
濃度を第1の出口溶液60中で約25%に維持するための希釈流50の必要性を不要にし
得る。逆に、核酸濃度を増加させてもよい(例えば、0.9mg/mLへ)。しかしなが
ら、かかる2倍増加は、有機溶媒の濃度を約25%に、また脂質:核酸の比を約15〜2
0:1に保持するのに、核酸流の流速(複数可)の対応する減少、および希釈流の速度の
増加を必要とする。核酸もしくは脂質濃度、流速、または流れ10、流れ20、流れ30
、および流れ50の線速度のさらなる変動は、上述の原理に従って行われてもよい。
線速度はともに、一緒に低減または上昇させてもよい。したがって、各流れに関して一定
の直径および濃度を保持して、複合核酸流の線速度は3.4メートル/秒へ、脂質流の線
速度は1.7メートル/秒へ低減されてもよい。他の実施形態では、複合核酸流の線速度
は約3メートル/秒へ、脂質流の線速度は約1.5メートル/秒へ低減されてもよい。同
様に、複合核酸流の線速度は約14メートル/秒へ、脂質流の線速度は約7メートル/秒
へ上昇されてもよい。一般的に、速度の上限範囲は、流れをポンピングするのに使用する
設備の機械的制限によってのみ対象となる。非常に高い流速/速度は、設備故障を引き起
こす背圧を生じ得る。概して、図2による複合核酸流の速度は、約3メートル/秒〜1秒
当たり約14メートル、脂質流に関しては、約1.5〜約4.5メートル/秒の範囲であ
り得る。好ましくは、複合核酸流の速度は、約6〜8メートル/秒、脂質流に関しては、
約3〜約4メートル/秒である。ある特定の実施形態では、複合核酸流の複合速度は、約
6.8メートル/秒、脂質流に関しては、約3.4メートル/秒である。
昇させてもよい。例えば、より効率的なプロセスのために可能な限り高い濃度を保持する
ことが一般的に望ましいが、核酸の濃度を約0.045mg/mLへ、および脂質の濃度
を約1.67mg/mLへ低減させることが可能である。しかしながら、さらに低い濃度
では、粒子凝集が増加する傾向にある。
.1〜約1.5mg/mLであり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度は、約10〜
約25mg/mLである。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度は
、約0.2〜約0.9mg/mLであり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度は、約
15〜約20mg/mLである。他の実施形態では、1つまたは複数の核酸流中の核酸の
濃度は、約0.225、0.3、0.33、または0.45〜約0.675mg/mLで
あり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度は、約16〜18mg/mLである。他の
実施形態では、1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度は、約0.225、0.3、0.
33、0.45または0.675mg/mLであり、1つまたは複数の脂質流中の脂質の
濃度は、約16.7mg/mLである。概して、より高い核酸濃度は、好ましい範囲(例
えば、約0.15〜0.25mg/mL)で第1の出口流60中の核酸濃度を維持するた
めに、相応して増加されるレベルの希釈流50からの希釈を要する。
、合流した流れ(例えば、流れ40)と交差し得るように、十字54aで置き換えてもよ
い(図2a)。希釈流50aおよび50bは、十字54aの通路52aおよび通路52b
を通って入る。単一希釈流ではなく、2つの希釈流を使用することで、合流した流れ40
のより大きな希釈倍数が可能となる。第1の出口流60の得られたより大きな希釈は、い
くらか小さな粒径を提供し得る。例えば、図2に関連した上述の核酸流/脂質流の流速お
よび速度を使用するが、図2a由来の十字54aを代用することで、希釈溶媒の容量を2
倍にすることができる。第1の合流した流れ40の得られたより大きな希釈は、より低濃
度の脂質流由来の有機溶媒(例えば、エタノール)を有する第1の出口流60を生じる。
例えば、十字54aを使用して、第1の出口溶液中の有機溶媒濃度は、約20%に低減さ
れ得る。他の点で、核酸濃度、脂質濃度、流速、速度等は、図2に関連して上述するのと
同じ十字54aを使用して変動させてもよい。
たは50bにより供給されるものと等しい容量の希釈溶媒を含有する希釈プール中で単に
希釈されてもよい。
ンバー86で置き換えてもよい。チャンバー86を使用したプロセスは、1つの核酸流8
0および1つの脂質流90に関して、2つの流入通路82および92を有する。混合チャ
ンバー86を使用したプロセスでは、核酸流および脂質流は、互いに対して約180°の
反対方向の流動を有する。チャンバー86を使用して、2つの核酸流を利用する十字16
を使用して達成され得る脂質:核酸の同じ比を維持するために、単一の核酸流の流速およ
び速度は、脂質流の流速および速度の2倍となり得る。例えば、Tチャンバー86(例え
ば、0.5mm直径の通路82および92)を使用した一実施形態では、約0.45mg
/mLの核酸を有する核酸流は、約80mL/分の流速および6.8メートル/秒の線速
度を有してもよく、脂質流は、約16.7mg/mLの濃度および3.4メートル/秒の
線速度を有し得る。チャンバー86を使用したプロセスにおいて、40mL/分の流速で
図2に示すような希釈流50を用いることで、約25%の第1の出口溶液中の有機溶媒の
濃度をもたらす。驚くべきことに、小さな粒径および一様性の同じ有益な特性が、十字1
6を使用して得ることができるように、Tチャンバー86を使用して得られ得る。Tチャ
ンバー86を使用することは、図2における個々の核酸流の流速と比較して、核酸流の流
速を2倍にする点が異なる。全体的な核酸流の流速は、両方のプロセスに関して依然とし
て同じであり、したがって、実質的に等価な特性を有するナノ粒子を生じる。
、約3〜約8メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約1.5〜約4.
5メートルの線速度を有し、脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出
口溶液中の有機溶媒の濃度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質
量比は、約15〜20:1または約17〜19:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度
は、約20〜25%である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.
5:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約25%である。
〜約8メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約3〜約4メートルの線
速度を有し、脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出口溶液中の有機
溶媒の濃度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約15
〜20:1または約17〜19:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約20〜2
5%である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1であり、
出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約25%である。
8メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約3.4メートルの線速度を
有し、流れ80は、流れ90および希釈流50の2倍の流速(mL/分)を有し、脂質:
核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約2
5%である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約17〜19:1である。他
の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1である。
0は、約8〜約14メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約1.5〜
約4.5メートルの線速度を有し、脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であ
り、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核
酸の質量比は、約15〜20:1または約17〜19:1であり、出口溶液中の有機溶媒
の濃度は、約20〜25%である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約
18.5:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約20%または25%である。
約9〜約11メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約3〜約4メート
ルの線速度を有し、脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出口溶液中
の有機溶媒の濃度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、
約15〜20:1または約17〜19:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約2
0〜25%である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1で
あり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約25%である。
10.2メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約3.4メートルの線
速度を有し、流れ80は、流れ90の3倍の流速(mL/分)を有し、脂質:核酸の質量
による比は、約15〜20:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約25%である
。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約17〜19:1である。他の特定の実
施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1である。
約11〜約14メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約3〜約4メー
トルの線速度を有し、脂質:核酸の質量による比は、約15〜20:1であり、出口溶液
中の有機溶媒の濃度は、33%未満である。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は
、約15〜20:1または約17〜19:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約
20〜25%である。他の特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1
であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約20%である。
13.6メートル/秒の線速度を有し、脂質流90は、1秒当たり約3.4メートルの線
速度を有し、流れ80は、流れ90の4倍の流速(mL/分)を有し、脂質:核酸の質量
による比は、約15〜20:1であり、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約20%である
。特定の実施形態では、脂質:核酸の質量比は、約17〜19:1である。他の特定の実
施形態では、脂質:核酸の質量比は、約18.5:1である。
速、および線速度は同様に、Tチャンバー86を使用して変化させてもよい。特に、図2
に関連して上述する核酸濃度、脂質濃度、およびエタノール濃度はまた、Tチャンバー8
6を用いた本発明の実施形態にも当てはまる。1つの例示的な実施形態では、核酸の同じ
全体的な送達(約36mg/分)を維持するために、核酸濃度を、3分の1に(例えば、
0.45から0.3mg/mLへ)低減させてもよく、核酸流の流速を、50%(例えば
、80mL/分から120mL/分へ)増加させてもよい。線速度は同様に、約10.2
メートル/秒へ増加される。核酸流のより大きな希釈のため、出口溶液中の約25%の有
機溶媒の濃度は、補足的な希釈流を使用することなく得られ得る。核酸流の流速を160
mL/分(0.5mmの流に関して速度13.6メートル/秒)へさらに増加させること
により、出口溶液中の有機溶媒の濃度は、約20%へ低減される。この後者のプロセスで
は、粒径および一様性の著しい変化を伴わずに、核酸流の速度は、約6.8メートル/秒
へ低減されてもよく、脂質流の速度は、約1.7メートル/秒へ低減されてもよい。
釈流は、直角または正面のいずれかで交差するが、これらの角度は重要ではない。例えば
、図3におけるTチャンバー86は、Y形状チャンバー84により置き換えてもよい(図
3b)。あるいは、Tチャンバーの方向付けは、チャンバー94で示されるように回転さ
せてもよい(図3c)。図3cは、脂質流90の前方向の流動と交差する核酸流80を示
すが、核酸および脂質流の位置は、図3cで入れ替えてもよい。
さらに変化させてもよい。例えば、適切な設備を用いて、2、3、または4つの脂質流を
、1、2、3または4つの核酸流と合流させてもよい。
封入の割合は、70%を上回る。本発明の幾つかの実施形態では、75%またはそれ以上
の核酸が封入される。他の実施形態では、80%または85%の核酸が封入される。さら
なる他の実施形態では、90%またはそれ以上の核酸が封入される。他の実施形態では、
約91、約92、約93、約94、約95、約96、約97、約98、約99、または約
100の核酸が封入される。
で約60分間インキュベートしてもよい。インキュベーション後、溶液を第2の希釈溶媒
と混合して、第1の出口溶液を約2倍希釈して、第2の出口溶液を供給してもよい。第2
の希釈溶媒は、第3の緩衝溶液または水であり得る。希釈ステップは、図3aにおけるT
チャンバー86のようなTコネクター中で、インキュベートした第1の出口溶液を、第2
の希釈溶媒(水)と混合することにより実施され得る。インキュベートした第1の出口溶
液および第2の希釈溶媒は、例えば約0.5〜1メートル/秒などの任意の適切な流速ま
たは速度で、Tコネクターへ供給され得る。希釈ステップ後に、第2の出口溶液中の有機
溶媒の濃度は、第1の出口溶液に対して、半分低減される。したがって、幾つかの実施形
態では、第2の出口溶液中の有機溶媒(例えば、エタノール)の濃度は、16.5%未満
である。他の実施形態では、第2の出口溶液中の有機溶媒(例えば、エタノール)の濃度
は、約10〜15%、約10〜12.5%、約12.5%、または約10%である。第2
の出口溶液は、タンジェンシャルフローフィルトレーションにより濃縮されて、リン酸緩
衝生理食塩水(PBS)を用いた15Xダイアフィルトレーションに付して、出発緩衝液
およびエタノールを除去してもよく、出発緩衝液およびエタノールは、PBSで置き換え
られる。タンジェンシャルフローフィルトレーション後、以下の実施例でより詳細に記載
するように、PBS中の濃縮された被封入核酸ナノ粒子のプールを収集して、滅菌ろ過し
てもよい。上述のさらなるプロセスステップにより生産される配合物中に存在する被封入
核酸ナノ粒子は、4℃で6カ月間を上回って安定に保存され得る。
施形態が存在する。例えば、本明細書中に記載する実施形態によれば、核酸流が、緩衝溶
液中に1つまたは複数のsiRNA分子の混合物を含み、かつ本明細書中に開示する線速
度を有するsiRNA流であるさらなる実施形態が存在する。
6.1 siRNA脂質配合物
被封入siRNA脂質ナノ粒子は、図2〜図3bで一般に示され、また上記で一般的に
記載されるシステムおよび装置により、エタノール中に溶解した脂質の溶液を、クエン酸
緩衝液中に溶解したsiRNAと混合することにより形成した。内径0.5、1.0、ま
たは2.0mmを有する通路を有する混合チャンバーを使用した。プロセシングチャンバ
ーは、50mm〜1000mmの長さを有していた。希釈チャンバーは、約0.5または
1.0または2.0または4.0mmの混合チャンバーの内径に等しいか、またはその少
なくとも2倍の内径を有する通路を有していた。脂質溶液は、陽イオン性脂質、ヘルパー
脂質(コレステロール)、中性脂質(DSPC)およびステルス脂質を含有していた。
らの実験に関する総脂質対siRNAの比は、約18.3:1であった。siRNA溶液
の濃度は、pH5を有するクエン酸ナトリウム:塩化ナトリウム緩衝液中で0.225、
0.3、0.3375、または0.45mg/mLであった。NaClの濃度は、50m
M、66mM、75mM、または100mMであった。流速および線速度は、以下に記載
するように変動させた。
EG脂質)を以下の表に示す。
していた。
6.2.1 エタノール中の脂質混合物の調製
下記は、陽イオン性脂質アミン対siRNAリン酸(N:P)モル比4.5:1で封入
されるsiRNAの例である。表4に示す量の脂質(陽イオン性脂質、DSPC、コレス
テロールおよび脂質付加されたPEG)を、エタノール150mL中に溶解する。脂質の
モル比は、それぞれ45:9:44:2である。混合物を短期間超音波処理した後、5分
間穏やかに攪拌して、続いて使用するまで37℃で維持する。
siRNA流用の緩衝液は、pH5の100mM塩化ナトリウムおよび25mMクエン
酸ナトリウムである。まず、クエン酸緩衝液のpHがpH5.00であることを確認する
。そうでない場合は、加工処理前に、pHを調製する。封入用の水中の十分なsiRNA
を、−80℃の保存から解凍させる。siRNA配列番号1をクエン酸緩衝溶液へ添加し
て、溶解したsiRNAの濃度を、UV分光光度計で260nmにて、光学密度により測
定する。siRNAの最終濃度を、滅菌PETGボトルにおいてクエン酸緩衝液150m
l中で0.45mg/mlへ調節して、使用するまで室温で保持する。
siRNA封入は、図2に一般的に示すようなシステムを用いて実施する。滅菌シリン
ジに、等量(25ml)のエタノール中の脂質(シリンジ(a))、クエン酸緩衝液中の
siRNA(シリンジ(b1)および(b2))、および水単独(シリンジ(c))を充
填する。16.7mg/mLの脂質を含有するシリンジ(a)上のルアーフィッティング
から通じるチューブを、内径0.5mmを有する十字接合部の中央入力へ取り付ける。0
.45mg/mlでsiRNAを含有するシリンジ(b1)および(b2)上のルアーフ
ィッティングから通じるチューブを、十字接合部の側面入力へ取り付ける。チューブは、
内径1.55mmを有するフッ素化エチレンプロピレン(FEP)チューブである。シリ
ンジ(a)、(b1)および(b2)を、シリンジポンプA上に設置する。脂質入力の反
対側の十字の中央入力からつながるチューブを、内径1mmを有するT接合部へ取り付け
る(例えば、図2、T接合部54を参照)。水単独を含有するシリンジ(c)上のルアー
フィッティングから通じるチューブを、T接合部へ取り付けて、siRNA脂質ナノ粒子
のインライン希釈を可能にして、シリンジ(c)を、シリンジポンプB上に設置する。T
接合部からの出力ラインを、希釈したsiRNA脂質ナノ粒子の収集用の滅菌PETGボ
トルより上に位置させる。全てのフィッティングがシリンジ上で締まっていることを確認
することが重要である。シリンジポンプを、適したシリンジ製造業者(syringe manufact
urer)およびサイズおよび1分当たり40mlの流速に設定する。両方のポンプを同時に
始動させて、およそ0.5秒後に材料を収集し始める。被封入siRNA脂質ナノ粒子お
よそ90mlを収集して、それは、25容量%のエタノール、0.23mg/mLのsi
RNA、4.2mg/mLの脂質、および50mM NaClを含有する。60分後、混
合インキュベーション期間後に、Malvern Zetasizerを使用して、粒径
を決定する。
内径1.0mmのT接合部を、siRNA脂質ナノ粒子懸濁液のさらなる希釈用に設定
する。この希釈ステップは、1つのシリンジポンプ上で2つのシリンジを用いて実行する
。1つの140mLのシリンジは、siRNA脂質ナノ粒子を含有し、第2の140mL
のシリンジは、水を含有する。流速は、1分当たり25mlに設定する。siRNA流お
よび水流は、互いに180度でT接合部に入る。希釈したsiRNA脂質ナノ粒子懸濁液
を、滅菌PETGボトルへ収集する。最終容量は、およそ280mlであり、エタノール
濃度12.5%を有する。
の透析および濃縮
封入の実行におけるあらゆる50mgのsiRNAに関しては、Vivaflow 5
0カートリッジを使用する。100mgのsiRNA封入の実行に関しては、直列に取り
付けた2つのVivaflow 50カートリッジを使用する。まず、再生セルロースカ
ートリッジをすすいで、製造業者からの任意の保存溶液を除去しなくてはならない。これ
は、空のTFFリザーバにDI水500mlを注ぐことにより行われ、流速115ml/
分でぜん動ポンプにより再循環させる。透過物(permeate)は制限されるべきではなく、
水500ml全体を膜に通して流したら、すすぎプロセスは、完了である。
体的な圧力20〜25psiを維持しながら、混合物を濃縮する。ろ液は、濃縮ステップ
全体にわたって、1分当たりおよそ4mlで溶出されるべきである。この速度は、適正な
流速が達成されるまで、ピンチ弁で透過物ラインを制限することにより達成される。リザ
ーバ中の液体レベルが、目盛り15mlになるまで濃縮する。濃縮したsiRNA脂質ナ
ノ粒子懸濁液を、発熱物質を含まず、ヌクレアーゼを含まない1×PBS 225mlに
対してダイアフィルトレーションする(Diafilter)。流速を80ml/分に増加する。
ダイアフィルトレーション後、TFFシステムのホールドアップ容量へ、材料の濃縮を再
開する。siRNA脂質ナノ粒子懸濁液をリザーバから収集する。さらに2mlの1×P
BSでTFFシステムをすすいで、希釈したsiRNA脂質ナノ粒子懸濁液を含有するこ
の洗浄液を収集することが可能であるが、この洗浄液は、濃縮したsiRNA脂質ナノ粒
子懸濁液とは別個に収集されるべきである。分析するまで材料を4℃で保存する。
50℃で10分間予熱したアルミニウム蓄熱ヒーターに配置されるガラスバイアル中の
懸濁液およそ10mlを加熱することにより、siRNA脂質ナノ粒子をろ過する。次に
、バイアルを取り出して、溶液をシリンジで取り出して、滅菌バイアルへ直接、0.22
μmのPESシリンジフィルターに通してろ過する。この最終的な生成物を4℃で保存す
る。
脂質ナノ粒子へのsiRNA配合の効率を決定するために、sybr gold蛍光を
測定することにより、siRNAの封入パーセントを決定することができる。siRNA
に結合されると、sybr goldは蛍光を発する。sybr gold蛍光の強度は
、siRNAの量に比例する。
RNAストックの濃度は、UV測定により検証される。siRNAストックを、PBSで
8μg/mLへ希釈する。段階希釈を行って、4、2、1、0.5および0.25μg/
mLのsiRNA溶液を調製する。等量の8μg/mLおよび4μg/mLの溶液を混合
することにより、6μg/mLのsiRNAを調製する。
0μLで希釈する(これが、この段階で溶液Aである)。注記:この第1の希釈ステップ
は、およそ3.6mg/mLまたはそれ未満の予想siRNA濃度を有する配合物に当て
はまる。濃度がおよそ3.6mg/mLよりも高い場合には、希釈はより大きくすべきで
ある。溶液A 40μLを、PBS 160μLで希釈する(これが、この段階で溶液1
である)。
の溶液を調製する(例えば、PBS 15mL中sybr gold 3μL)(溶液2
)。96ウェルの黒色の透明底プレートにおいて、溶液1 10μLを、溶液2 190
μLと混合して、試料混合物1を供給する。このミックス中では、sybr goldは
、封入されていない(即ち、遊離の)siRNAへのみ結合する。リポソーム中に封入さ
れたsiRNAへ接近は見られない。
び0.2%トリトン−xの溶液を調製する(例えば、PBS中0.2%トリトン15mL
中のsybr gold 3μL)。96ウェルの黒色の透明底プレートにおいて、溶液
1 10μLを、溶液3 190μLと混合して、試料混合物2を供給する。このミック
ス中では、トリトン−xは、リポソームを崩壊して、予め封入されたsiRNAを、sy
br gold結合へと露出させる。したがって、sybr goldは、封入されてい
ない(即ち、遊離の)siRNA、および全ての新たに露出されたsiRNAへ結合する
。遊離のsiRNA+新たに露出されたsiRNA=総siRNA。
1を供給するか、または溶液3 190μLと混合して、標準混合物2を供給する。
ラメーターを使用したSpectraMax M5分光光度計で測定する:
λex=485nm λem=530nm
リードモード: 蛍光、トップリード
波長: Ex 485nm、Em 530nm、オートカットオフ
オン 530nm
感度: 読取り6、PMT:オート
オートミックス: 前:オフ
オートキャリブレート: オン
アッセイプレートタイプ: 96ウェルcostarblk/clrbtm
読み取るべきウェル: プレート全体を読み取る
修正時間: オフ
カラム波長優先: カラム優先
キャリッジ速度: 標準
オートリード: オフ
作成する。次に、試料1混合物の蛍光強度は、遊離のsiRNAに関する検量線により提
供される方程式へ代入する。続いて、試料の実測した濃度に、希釈規模を乗じて、脂質ナ
ノ粒子配合物中の遊離のsiRNAを得る。
する。次に、試料2混合物の蛍光強度は、総siRNAに関する検量線により提供される
方程式へ代入する。続いて、試料の実測した濃度に、希釈規模を乗じて、脂質ナノ粒子配
合物中の総siRNAを得る。
]×100%により算出される。
遊離のsiRNAのサイズ(5nm)は、リポソームのサイズ(50〜200nm)と
異なるので、それらは、サイズ排除カラムでは異なる時間で溶出する。遊離のsiRNA
は、リポソーム後に溶出する。siRNAに関する保持時間は、およそ17分であるのに
対して、リポソームに関する保持時間は、およそ10分である。溶出したsiRNAの検
出は、260nmで設定した吸収波長を有するUV検出器によって実施する。
0μL分取量へ、TRITON X−100 10μLを添加する。siRNAストック
の濃度は、UV測定により検証される。段階希釈を行って、siRNAストックの1/2
、1/4、1/8、1/16および1/32濃度で標準物質を調製する。TRITON
X−100 10μLを、各標準物質200μLへ添加する。各標準物質の濃度は、UV
測定により検証される。
0×PBS(FISHER、BP399)を1×へ希釈)へ添加する。分散液を、均質に
なるまで穏やかにボルテックスする(分散液1)。別のHPLCバイアル中では、脂質ナ
ノ粒子配合物25μLを、20%TRITON−X 185μLへ添加する。分散液を、
透明かつ均質になるまで穏やかにボルテックスする(分散液2)。
GILENT 1200 HPLCで実施する。パラメーターは、下記である:
カラム温度: 30℃
移動相の流速 1ml/分で30分間
UV検出器の波長: 260nm
注入容量: 20μL
注入の数: 2
Hを有する移動相1×PBSは、1mL/分で30分間流動している。溶出した材料は、
吸収波長260nmを有するUV検出器により検出される。
、およそ10分のピークは、被封入siRNAを含有する脂質ナノ粒子を表し、およそ1
7分のピークは、封入されていない(即ち、遊離の)siRNAを表す。
NAが、17分ですでに遊離のsiRNAと一緒に溶出することが可能となる。およそ1
0分のピークが消失し、クロマトグラム中に唯一のピーク、即ちおよそ17分のピークが
残り、封入されていない(即ち、遊離の)siRNAおよび新たに遊離のsiRNAの両
方を表す。遊離のsiRNA+新たに遊離のsiRNA=総siRNA。
成する。分散1におけるおよそ17分のピークの積算面積を、遊離のsiRNAに関する
検量線により提供される方程式へ代入して、分散液中の遊離のsiRNAの濃度を得る。
続いて、試料の実測した濃度に、希釈規模を乗じて、脂質ナノ粒子配合物中の遊離のsi
RNAを得る。
により提供される方程式へ代入して、分散液中の総siRNAの濃度を得る。続いて、試
料の実測した濃度に、希釈規模を乗じて、脂質ナノ粒子配合物中の総siRNAを得る。
]×100%により算出される。
siRNA脂質ナノ粒子を、Malvern InstrumentsからのZeta
sizer Nano ZSを使用して、サイズおよび多分散性に関して分析する。1m
g/mlを上回る被封入siRNA濃度で配合したsiRNAに関して、試料5μlを1
×PBS 115μlで希釈する。小容量の使い捨てマイクロキュベットへ添加する。キ
ュベットをZetasizer Nano ZSへ挿入する。機械設定に関して、材料は
ポリスチレンラテックスであると、分散剤は水であると、また細胞はZEN040である
と設定する。待ち時間なしで、試料を25℃で測定する。Z−Ave(直径として設定、
ナノメートル単位で)および多分散性指数(PDI)を記録する。
れる結果を示す。封入のパーセンテージは、SEC法を使用して決定した。
図2に実質的に示すようなシステムを使用して、濃度0.45mg/mLのsiRNA
配列番号1、pH5の100mL NaCl、および25mMクエン酸ナトリウムを有す
る2つの水性核酸流を、反対方向から、内径0.5mmを有する通路を有する十字形状の
混合チャンバーへ、それぞれ流速40mL/分で導入した。同時に、脂質流を、十字形状
の混合チャンバーへ、2つの核酸流に直角の方向から、流速40mL/分で導入した。脂
質流は、エタノール中45%陽イオン性脂質A1、44%コレステロール、9%DSPC
、および2%PEG−脂質B1で構成されていた。脂質の総濃度は、16.7mg/mL
であった。1回の実行で、交差形状の混合チャンバーからの合流した流れを、図2におけ
るチャンバー54に類似したT形状のチャンバー(内径1.0mm)を使用して、水を用
いた希釈ステップに付した。水を、T形状チャンバーへ、速度40mL/分で導入した。
得られた溶液を収集して、被封入核酸ナノ粒子を、サイズおよび一様性に関して分析して
、結果を表6のエントリー1に示した。エントリー1から得られる溶液は、25容量%の
エタノール、0.23mg/mLのsiRNA、4.2mg/mLの脂質、および50m
M NaClを含んでいた。同じ濃度、流速、および初期の十字形状の混合チャンバーを
用いた別個の実験では、混合チャンバーからの合流した流れを、エントリー1で使用する
希釈容量に等しい容量の水で希釈した。これらの結果を表6のエントリー2に示す。収集
した溶液の濃度は、エントリー1と同じであった。比較のために、同じプロセス条件下で
あるが、いかなる希釈ステップも伴わない別の実験を行った。これらの結果を表6のエン
トリー3に示す。いかなる希釈ステップも伴わない場合、エントリー3の収集した溶液は
、33%エタノール、0.3mg/mLのsiRNA、5.6mg/mLの脂質および6
6mMのNaClを含んでいた。エントリー1およびエントリー2に関するZ−Avg、
#−Avg、ならびにPDIは、希釈ステップを欠如したエントリー3よりも小さかった
。表中のZ−Avg、#−Avg、ならびにPDIは、混合の60分後に決定した。
、siRNA配列番号3を用いて、図4aに示す一様のサイズの脂質ナノ粒子を生産した
。流速40mg/mLで、siRNA配列番号3の濃度を0.9mg/mLへ増加させる
と同時に、十字形状の混合チャンバーを、図3aのT形状の混合チャンバー(内径0.5
mm)で置き換えることで(半分の容量中に同じ総量のsiRNA)、図4bに示すあま
り一様でないサイズの脂質ナノ粒子を生産した。T形状の混合チャンバーおよび0.9m
g/mLのsiRNAを使用した類似のプロセスをプロセス実施例4に記載する。
図3aに示すようなチャンバーに類似した、かつ内径0.5mmを有するT形状の混合
チャンバーを使用した一連の実験において、単一の核酸流および単一の脂質流を、様々な
流速/速度および濃度で混合した。核酸および脂質流は、プロセス実施例2において上述
するのと同じ成分を含んでいた。これらの例では、希釈ステップを使用せず、初期siR
NA濃度は、表6のエントリー1と同じ最終溶液濃度を得るように調節した。これらの実
験におけるエタノール中の脂質の濃度は、16.7mg/mL(1×)または25mg/
mL(1.5×)のいずれかであった。結果を以下の表7に示し、Z−Avg、#−Av
g、およびPDIは、混合の60分後に決定した。
図3aに示すようなチャンバーに類似し、かつプロセス実施例3で使用するT形状の混
合チャンバー(内径0.5mm)を使用した一連の実験において、単一の核酸流および単
一の脂質流を、反対方向から、様々な流速/線速度で混合して、続いて図2で一般的に示
すように、内径1mmの希釈tee水で希釈した。siRNA配列番号4、陽イオン性脂
質A1、PEG脂質B1、コレステロール、およびDSPCは、上述するような量で、プ
ロセス実施例4で使用した。エタノール流中の脂質の総濃度は、16.7mg/mLであ
った。核酸流中のsiRNAの濃度は、0.9mg/mLであった。表8の結果により、
線速度を増加させると、粒径およびPDIが減少することが示される。
表9は、図3cに示すチャンバーに類似した代替的な混合チャンバー(内径0.5mm
)を使用した2つの実験からの結果を示す。エントリー1では、siRNAが分岐から入
る、得られた結果を示し、エントリー2では、脂質が分岐から入る、得られた結果を示す
。両方の実験に関して、siRNAおよび脂質は、プロセス実施例2で上述するのと同じ
であった。siRNA流に関する流速は、120mL/分であり、脂質流の流速は、40
mL/分であった。siRNA濃度は、66mM NaClを含有する緩衝溶液中で0.
3mg/mLであった。脂質の濃度は、16.7mg/mLであった。Z−Ave、#−
Avg、およびPDIは、混合の60分後に決定した。
3〜6の範囲の流れの総数を有する核酸および脂質流の様々な形状を有する混合チャン
バーを使用して、一連の実験を行った。それぞれの場合で、混合チャンバーは、内径1m
mのチャンバーを有し、流速は、siRNA流に関しては240mL/分、および脂質流
に関しては80mL/分の複合流量を維持するように調節した。これらの実験におけるs
iRNAの濃度は、0.3mg/mLであり、脂質の濃度は、16.7mg/mLであっ
た。複合siRNA流の線速度は、5.1メートル/秒であった。複合脂質流の線速度は
、1.7メートル/秒であった。流れの数が、流れの1つを上回る配置を可能にする場合
、表10は、脂質またはsiRNA流間の角度を示す。例えば、3つの脂質流および3つ
のsiRNA流の場合、各脂質流は、60度(即ち、3つの隣接した脂質流)または12
0度(即ち、脂質流は、120度で分離されており、介在するsiRNA流も120度で
分離される)のいずれかによって、次の脂質流と分離される。表10に概要する実験結果
に関して、45:9:44:2の比での陽イオン性脂質A4、DSCP、コレステロール
およびPEG脂質B1とともに、siRNA配列番号5を使用した。表10に示す結果に
より、総流速/速度が一定のままである様々な混合形状に関して、実質的に同じ結果が得
られることが示される。
6.8.1 材料および試薬
配列の特色:
タバコエッチウイルス(Tobacco Etch Virus)(TEV)5’UTR:14〜154
最適コザック(Kozak)配列:155〜163
タンパク質受託番号#NP_000221のヒトレプチンコードアミノ酸1〜167、
GeneArtにより最適化された配列コドン:164〜664
2つの停止コドン:665〜670
ヒトベータ−グロブリン3’UTRの2つのコピー:689〜954
120個のヌクレオチドポリAテール:961〜1080
下記は、陽イオン性脂質アミン対mRNAリン酸(N:P)モル比4:1で封入される
mRNAの例である。脂質(陽イオン性脂質、DSPC、コレステロールおよび脂質付加
されたPEG)をエタノール中に溶解する。脂質のモル比は、それぞれ40:10:48
:2である。例えば、表12では、エタノール中の容量63mlの脂質に関する全ての構
成成分の量および最終濃度が見られる。容量63mlは、確実に標的容量が、シリンジへ
充填するのに利用可能であるのに必要とされる容量の1.05倍を表す。混合物を秤量し
て、滅菌ポリエチレンテレフタレートグリコール修飾(PETG)の125mlのボトル
に入れて、エタノールを添加する。混合物を短期間超音波処理した後、5分間穏やかに攪
拌して、続いて使用するまで37℃で維持する。
まず、クエン酸緩衝液のpHがpH6.00であることを確認する。そうでない場合は
、加工処理前に、pHを調整する。封入用の水中の十分なmRNAを、−80℃の保存か
ら解凍させて、Amicon Ultra−15遠心濃縮器を用いて、水からクエン酸緩
衝液pH6.0へ交換する。mRNA 10〜12mgを各濃縮器へ充填することができ
、それを4,000rpmで4℃にて5分間遠心分離する。容量は、クエン酸緩衝液pH
6.0の添加により増加させる。所望の緩衝液条件を達成するには、クエン酸緩衝液pH
6.0による10倍以上の容量の交換を推奨する。mRNAの濃度を、UV分光光度計で
260nmにて、光学密度により測定する。mRNAの最終濃度を、滅菌した250ml
のPETGボトルにおいてクエン酸緩衝液126ml中で0.25mg/mlへ調節して
、使用するまで室温で保持する。容量126mlは、確実に標的容量が、シリンジへ充填
するのに利用可能であるのに必要とされる容量の1.05倍を表す。
mRNA封入は、図2に一般的に示すようなシステムを用いて実施する。滅菌した60
mlシリンジに、等量(60ml)のエタノール中の脂質(シリンジ(a))、クエン酸
緩衝液中のmRNA(シリンジ(b1)および(b2))、およびクエン酸緩衝液単独(
シリンジ(c))を充填する。脂質を含有するシリンジ(a)上のルアーフィッティング
から通じるチューブを、内径0.5mmを有する十字接合部の中央入力へ取り付ける。0
.25mg/mlでmRNAを含有するシリンジ(b1)および(b2)上のルアーフィ
ッティングから通じるチューブを、十字接合部の側面入力へ取り付ける。チューブは、内
径0.8mmを有するPTFEチューブである。シリンジ(a)、(b1)および(b2
)を、シリンジポンプA上に設置する。脂質入力の反対側の十字の中央入力からつながる
チューブを、T接合部へ取り付ける(例えば、図2、T接合部54を参照)。クエン酸緩
衝液単独を含有するシリンジ(c)上のルアーフィッティングから通じるチューブを、T
接合部へ取り付けて、mRNA脂質ナノ粒子のインライン希釈を可能にして、シリンジ(
c)を、シリンジポンプB上に設置する。T接合部からの出力ラインを、希釈したmRN
A脂質ナノ粒子の収集用の滅菌した500mlのPETGボトルより上に位置させる。全
てのフィッティングがシリンジ上で締まっていることを確認することが重要である。シリ
ンジポンプを、適したシリンジ製造業者およびサイズ(BD、Plastipak、60
ml)および1分当たり最大16mlの流速に設定した。両方のポンプを同時に始動させ
て、およそ0.5秒後に材料を収集し始める。被封入mRNA脂質ナノ粒子およそ220
〜230mlを収集する。
mRNA脂質ナノ粒子懸濁液135mlを吸引するのに140mlのシリンジを使用す
る。残りの85〜95mlを第2の140mlのシリンジへ移す。同容量のクエン酸緩衝
液を用いて、140mlのシリンジを調製する。別のT接合部を、mRNA脂質ナノ粒子
懸濁液の別の希釈用に設定する。この希釈ステップは、唯一のシリンジポンプ上で両方の
シリンジを用いて実行する。容量135mlを有する140mlのシリンジ(一方は、脂
質ナノ粒子を含有し、他方は、クエン酸緩衝液を含有する)をまず実行して、より小さな
容量を有する140mlのシリンジは、2番目に実行する。全てのフィッティングがシリ
ンジ上で締まっていることを確認することが重要である。最初の実行に関して、正確なサ
イズおよび製造業者(140ml、Sherwood−Monoject)に合わせて、
シリンジポンプに関する設定を変化させる。流速は、1分当たり25mlに設定する。希
釈したmRNA脂質ナノ粒子懸濁液を、滅菌した500mlのPETGボトルへ収集する
。最終容量は、およそ440〜460mlである。
透析および濃縮
封入の実行におけるあらゆる15mgのmRNAに関しては、Vivaflow 50
カートリッジを使用する。30mgのmRNA封入の実行に関しては、直列に取り付けた
2つのVivaflow 50カートリッジを使用する。まず、再生セルロースカートリ
ッジを、発熱物質を含まないようにしなくてはならない。この手順は、封入の前日に始め
るべきである。Minimate TFFシステムを使用して、2つのVivaflow
50カートリッジを直列で設定して、チューブを取り付ける。発熱物質を含まず、ヌク
レアーゼを含まない水500mlをリザーバへ充填して、それを圧力20psiでカート
リッジに通して流す。0.1MのNaOH/1.0MのNaCl 100mlをリザーバ
へ充填して、50mlをカートリッジに通して流す。残りの50mlをカートリッジで一
晩静置させる。翌朝、残りの50mlを20psiでカートリッジに通して流す。発熱物
質をより含まず、ヌクレアーゼを含まない水をリザーバへ充填して、50mlをカートリ
ッジに通して流す。この水洗浄を2回以上繰り返す。最終的なすすぎ水の分取量を試験し
て、エンドトキシンが検出可能な量以下であることを確認する。
的な圧力20〜25psiを維持しながら、混合物を濃縮する。ろ液は、1分当たりおよ
そ4mlで溶出させて、始動させるべきであるが、減速する。リザーバ中の液体レベルが
、目盛り40mlになるまで濃縮する。濃縮したmRNA脂質ナノ粒子懸濁液を、発熱物
質を含まず、ヌクレアーゼを含まない1×PBS 300mlに対してダイアフィルトレ
ーションする。圧力20〜15psiを保持する。ダイアフィルトレーション後、リザー
バ上の目盛り10ml線のすぐ下まで、材料の濃縮を再開する。mRNA脂質ナノ粒子懸
濁液をリザーバから収集する。さらに5mlの1×PBSでTFFシステムをすすいで、
希釈したmRNA脂質ナノ粒子懸濁液を含有するこの洗浄液を収集することが可能である
が、この洗浄液は、濃縮したmRNA脂質ナノ粒子懸濁液とは別個に収集されるべきであ
る。分析するまで材料を4℃で保存する。
脂質ナノ粒子へのmRNA配合の効率を決定するために、Life Technolo
giesからのQuant−IT ribogreenRNAアッセイキットを使用して
、mRNAの封入パーセントを測定する。mRNA脂質ナノ粒子懸濁液は、ヌクレアーゼ
を含まないTE緩衝液中でアッセイして、脂質ナノ粒子の外側のmRNAの濃度を決定し
、またTE緩衝液+0.75%のTriton X−100界面活性剤中でもアッセイし
て、脂質ナノ粒子を分解させて、脂質ナノ粒子懸濁液全体中のmRNAの濃度を決定する
。2つの濃度の関係を使用して、封入パーセントを算出する。
方中で、キット中に提供される100μg/mlのストック標準物質RNAからRNAの
1000ng/ml溶液を調製する。表13に従って、TE緩衝液およびTE緩衝液+0
.75%のTriton X−100界面活性剤の両方において、このストックを使用し
て、標準曲線を作成する。
5%のTriton X−100界面活性剤の両方中に、mRNA脂質ナノ粒子試料を慎
重に調製する。2ステップの希釈に関して、TEまたはTE+Tritonではなく、確
実にPBS中で第1のステップを実施する。各緩衝液条件において各試料に関して2組の
希釈を行い、mRNA脂質ナノ粒子試料1つにつき、緩衝液条件1つ当たり総計6個のウ
ェルに関して、三重反復で各組の希釈をアッセイする。標準曲線用試料を作製し、96デ
ィープウェルプレートにおいてmRNA脂質ナノ粒子試料を希釈して、それらを調製する
際に試料の完全な混合を確実にする。より大きな容量の標準曲線用試料を準備して、後の
使用のために、密封した96ディープウェルプレート中で、4℃で最大3日間保存するこ
とができる。
(未処理のCostar、#3573)へ添加する。250μlの自動多チャネルピペッ
トを使用して、標準曲線用試料85μlを吸引して、40μlをアッセイプレートの2つ
のウェルへ分取する。各希釈したmRNA脂質ナノ粒子試料125μlを吸引して、40
μlを、アッセイプレートの3つのウェルへ分取する。
レートの各ウェルへ60μlを添加する。標準曲線用試料の各ウェル中に60μlを分取
して、その結果、TEおよびTE+界面活性剤標準曲線試料との間でチップを交換するよ
うにしながら、125μlの自動多チャネルピペットを使用して、希釈したribogr
een試薬125μlを吸引する。各希釈したmRNA脂質ナノ粒子試料間でチップを交
換する。
ば、Biomek FX robot上に黒色384ウェルアッセイプレートを配置させ
て、30μlのXLチップを使用することにより、これを行うことができる。混合後、4
80nmでの励起および520nmでの発光で、蛍光マイクロプレートーリーダーを使用
して蛍光を測定する。
E+Triton X−100条件に関して、蛍光対RNA濃度の標準曲線を作成する。
試薬ブランクの蛍光値を、試料それぞれの蛍光値から差し引いて、続いて適切な標準曲線
から試料それぞれのRNA濃度を決定する。TE+Triton X−100中の試料と
、TE緩衝液単独中の試料との間の濃度の差を、TE+Triton X−100界面活
性剤中の試料の濃度で除算することにより、試料の封入パーセントを決定する。
mRNA脂質ナノ粒子を、Malvern InstrumentsからのZetas
izer Nano ZSを使用して、サイズおよび多分散性に関して分析する。1mg
/mlを上回る被封入mRNA濃度で配合したmRNAに関して、試料5μlを1×PB
S 115μlで希釈する。小容量の使い捨てマイクロキュベット(Brand、#75
9200)へ添加する。キュベットをZetasizer Nano ZSへ挿入する。
機械設定に関して、材料はポリスチレンラテックスであると、分散剤は水であると、また
細胞はZEN040であると設定する。待ち時間なしで、試料を25℃で測定する。Z−
Ave(直径として設定、ナノメートル単位で)および多分散性指数(PDI)を記録す
る。
れらの変更は、本発明の趣旨および範囲からの逸脱とみなされるべきではない。
10 第1の核酸流
12 通路
14 交差ポイント
16 十字
20 第2の核酸流
22 通路
30 脂質流
32 通路
40 複合流
42 通路
50 希釈流
50a 希釈流
50b 希釈流
52 通路
52a 通路
52b 通路
54 Tチャンバー
54a 十字
60 第1の出口溶液
70 プロセスチャンバー
72 プロセスチャンバーの本体
80 核酸流
82 流入通路
84 Y形状チャンバー
86 チャンバー
90 脂質流
92 流入通路
94 チャンバー
れらの変更は、本発明の趣旨および範囲からの逸脱とみなされるべきではない。
本発明は下記の態様も含む。
<1>
脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入して、被封入核酸ナノ粒子を提供する方法であって
、
1つまたは複数の核酸流を供給するステップであって、前記1つまたは複数の核酸流が
、第1の水溶液中に核酸の混合物を含み、かつ約1.5メートル/秒よりも大きいか、ま
たはそれに等しい複合線速度を有する、ステップと、
1つまたは複数の脂質流を供給するステップであって、前記1つまたは複数の脂質流が
、有機溶媒中に1つまたは複数の脂質の混合物を含み、かつ約1.5メートル/秒よりも
大きいか、またはそれに等しい複合線速度を有する、ステップと、
第1の交差ポイントで前記1つまたは複数の脂質流を前記1つまたは複数の核酸流と合
流させて、第1の合流した流れを供給するステップと、
第1の方向で前記第1の合流した流れを流動させ、それらの構成成分を混合して、前記
被封入核酸ナノ粒子を含む第1の出口溶液を供給するステップと
を含み、前記第1の水溶液および前記有機溶媒が混和性であり、前記第1の水溶液または
前記有機溶媒のうちの片方が、緩衝液を含有し、前記第1の出口溶液中の前記有機溶媒の
濃度が、33%未満である、方法。
<2>
前記第1の水溶液が、アルカリ金属塩の水溶液を含む第1の緩衝溶液であり、
前記有機溶媒が、アルコール溶媒を含む、<1>に記載の方法。
<3>
前記第1の合流した流れを、第2の緩衝溶液および水から選択される希釈溶媒で希釈し
て、第1の出口流を供給するステップ
をさらに含む、<1>または<2>に記載の方法。
<4>
前記アルカリ金属塩が、NaClおよびクエン酸ナトリウムの1つまたは複数から選択
され、
前記有機溶媒がエタノールを含む、<3>に記載の方法。
<5>
前記第1の出口溶液中の前記有機溶媒の濃度が、約20〜約25%である、<1>〜<4>のいずれかに記載の方法。
<6>
前記1つまたは複数の脂質流の複合線速度が、約1.5〜約4.5メートル/秒であり
、
前記1つまたは複数の核酸流の複合線速度が、約3〜約14メートル/秒である、
<1>〜<5>のいずれかに記載の方法。
<7>
前記1つまたは複数の脂質流の複合線速度が、約3〜約4メートル/秒であり、
前記1つまたは複数の核酸流の複合線速度が、約9〜約14メートル/秒である、
<1>または<3>〜<6>のいずれかに記載の方法。
<8>
前記第1の合流した流れを、希釈溶媒で希釈するステップが、
希釈流を供給するステップであって、前記希釈流が、第2の緩衝溶液および水から選択
される水性溶媒を含む、ステップと、
前記第1の合流した流れを前記希釈流と合流させて、前記第1の出口流を供給するステ
ップと
を含み、前記1つまたは複数の脂質流の複合線速度が、約3〜約4メートル/秒であり、
前記1つまたは複数の核酸流の複合線速度が、約6〜約8メートル/秒である、
<2>〜<6>のいずれかに記載の方法。
<9>
前記第1の出口溶液をインキュベートするステップをさらに含む、<1>〜<8>のいずれかに記載の方法。
<10>
前記インキュベートした第1の出口溶液を、第3の緩衝溶液および水から選択される第
2の希釈溶媒で希釈して、第2の出口溶液を供給するステップと、
前記第2の出口溶液を濃縮するステップおよび透析するステップ
をさらに含む、<9>に記載の方法。
<11>
前記濃縮するステップが、タンジェンシャルフローフィルトレーションにより濃縮する
ステップを含む、<10>に記載の方法。
<12>
濃縮した透析溶液を滅菌ろ過するステップをさらに含む、<10>または<11>に記載の方法。
<13>
前記核酸がsiRNAである、<1>〜<12>のいずれかに記載の方法。
<14>
前記核酸がmRNAである、<1>〜<12>のいずれかに記載の方法。
<15>
前記脂質ナノ粒子ホストが、表2から選択される脂質の1つまたは複数を含む、<1>〜<14>のいずれかに記載の方法。
<16>
前記被封入核酸ナノ粒子が、約30nm〜約80nmの平均粒径直径(average partic
le size diameter)を有する、<1>〜<15>のいずれかに記載の方法。
<17>
前記被封入核酸ナノ粒子が、約40nm〜約70nmの平均粒径直径、および動的光散
乱により決定される場合の約0.1未満の多分散指数を有する、<1>〜<16>のいずれかに記載の方法。
<18>
脂質:核酸の質量による比が、約15〜20:1である、<1>〜<17>のいずれかに記載の方法。
<19>
前記1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度が、約0.1〜約1.5mg/mLであり
、前記1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度が、約10〜約25mg/mLである、<1>〜<18>のいずれかに記載の方法。
<20>
前記第2の出口溶液中のエタノールの濃度が、約10〜15%である、<9>〜<19>のいずれかに記載の方法。
<21>
2つの核酸流および1つの脂質流を供給するステップと、
十字コネクターで前記2つの核酸流を前記1つの脂質流と合流させて、前記第1の合流
した流れを供給するステップと
を含む、<1>〜<20>のいずれかに記載の方法。
<22>
前記2つの核酸流が、互いに対して約180°で反対方向から前記十字コネクターに入
り、前記脂質流が、前記2つの核酸流に対して約90°で前記十字コネクターに入る、<21>に記載の方法。
<23>
前記第1の方向での前記第1の合流した流れを流動させるステップが、前記脂質流と実
質的に同じ方向で、かつ前記2つの核酸流に対して約90°で前記十字コネクターから外
へ前記第1の合流した流れを流動させるステップを含む、<22>に記載の方法。
<24>
前記第1の合流した流れを前記希釈流と合流させるステップが、前記第1の合流した流
れを、前記第1の合流した流れの方向に対して約90°から前記希釈流と交差させるステ
ップを含む、<8>〜<23>のいずれかに記載の方法。
<25>
前記核酸流由来の核酸の約90%超が、前記第1の出口溶液中に封入される、<1>〜<24>のいずれかに記載の方法。
<26>
薬学的に許容される担体、ならびに
脂質ナノ粒子ホストおよび核酸を含む被封入核酸ナノ粒子であって、前記核酸が、前記
脂質ナノ粒子ホスト中に封入されている、被封入核酸ナノ粒子
を含む被封入核酸ナノ粒子組成物であって、前記被封入核酸ナノ粒子が、約40nm〜約
70nmの平均粒径、および動的光散乱により決定される場合の約0.1未満の多分散指
数を有する、被封入核酸ナノ粒子組成物。
<27>
前記脂質ナノ粒子ホストが、分解性陽イオン性脂質、脂質付加されたポリエチレングリコール、コレステロールおよび1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホコリンを含む、<26>に記載の組成物。
Claims (27)
- 脂質ナノ粒子ホスト中に核酸を封入して、被封入核酸ナノ粒子を提供する方法であって
、
1つまたは複数の核酸流を供給するステップであって、前記1つまたは複数の核酸流が
、第1の水溶液中に核酸の混合物を含み、かつ約1.5メートル/秒よりも大きいか、ま
たはそれに等しい複合線速度を有する、ステップと、
1つまたは複数の脂質流を供給するステップであって、前記1つまたは複数の脂質流が
、有機溶媒中に1つまたは複数の脂質の混合物を含み、かつ約1.5メートル/秒よりも
大きいか、またはそれに等しい複合線速度を有する、ステップと、
第1の交差ポイントで前記1つまたは複数の脂質流を前記1つまたは複数の核酸流と合
流させて、第1の合流した流れを供給するステップと、
第1の方向で前記第1の合流した流れを流動させ、それらの構成成分を混合して、前記
被封入核酸ナノ粒子を含む第1の出口溶液を供給するステップと
を含み、前記第1の水溶液および前記有機溶媒が混和性であり、前記第1の水溶液または
前記有機溶媒のうちの片方が、緩衝液を含有し、前記第1の出口溶液中の前記有機溶媒の
濃度が、33%未満である、方法。 - 前記第1の水溶液が、アルカリ金属塩の水溶液を含む第1の緩衝溶液であり、
前記有機溶媒が、アルコール溶媒を含む、
請求項1に記載の方法。 - 前記第1の合流した流れを、第2の緩衝溶液および水から選択される希釈溶媒で希釈し
て、第1の出口流を供給するステップ
をさらに含む、請求項1または2に記載の方法。 - 前記アルカリ金属塩が、NaClおよびクエン酸ナトリウムの1つまたは複数から選択
され、
前記有機溶媒がエタノールを含む、
請求項3に記載の方法。 - 前記第1の出口溶液中の前記有機溶媒の濃度が、約20〜約25%である、
請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。 - 前記1つまたは複数の脂質流の複合線速度が、約1.5〜約4.5メートル/秒であり
、
前記1つまたは複数の核酸流の複合線速度が、約3〜約14メートル/秒である、
請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。 - 前記1つまたは複数の脂質流の複合線速度が、約3〜約4メートル/秒であり、
前記1つまたは複数の核酸流の複合線速度が、約9〜約14メートル/秒である、
請求項1または3〜6のいずれか一項に記載の方法。 - 前記第1の合流した流れを、希釈溶媒で希釈するステップが、
希釈流を供給するステップであって、前記希釈流が、第2の緩衝溶液および水から選択
される水性溶媒を含む、ステップと、
前記第1の合流した流れを前記希釈流と合流させて、前記第1の出口流を供給するステ
ップと
を含み、前記1つまたは複数の脂質流の複合線速度が、約3〜約4メートル/秒であり、
前記1つまたは複数の核酸流の複合線速度が、約6〜約8メートル/秒である、請求項2
〜6のいずれか一項に記載の方法。 - 前記第1の出口溶液をインキュベートするステップをさらに含む、請求項1〜8のいず
れか一項に記載の方法。 - 前記インキュベートした第1の出口溶液を、第3の緩衝溶液および水から選択される第
2の希釈溶媒で希釈して、第2の出口溶液を供給するステップと、
前記第2の出口溶液を濃縮するステップおよび透析するステップ
をさらに含む、請求項9に記載の方法。 - 前記濃縮するステップが、タンジェンシャルフローフィルトレーションにより濃縮する
ステップを含む、請求項10に記載の方法。 - 濃縮した透析溶液を滅菌ろ過するステップをさらに含む、請求項10または11に記載
の方法。 - 前記核酸がsiRNAである、請求項1〜12のいずれか一項に記載の方法。
- 前記核酸がmRNAである、請求項1〜12のいずれか一項に記載の方法。
- 前記脂質ナノ粒子ホストが、表2から選択される脂質の1つまたは複数を含む、請求項
1〜14のいずれか一項に記載の方法。 - 前記被封入核酸ナノ粒子が、約30nm〜約80nmの平均粒径直径(average partic
le size diameter)を有する、請求項1〜15のいずれか一項に記載の方法。 - 前記被封入核酸ナノ粒子が、約40nm〜約70nmの平均粒径直径、および動的光散
乱により決定される場合の約0.1未満の多分散指数を有する、請求項1〜16のいずれ
か一項に記載の方法。 - 脂質:核酸の質量による比が、約15〜20:1である、請求項1〜17のいずれか一
項に記載の方法。 - 前記1つまたは複数の核酸流中の核酸の濃度が、約0.1〜約1.5mg/mLであり
、前記1つまたは複数の脂質流中の脂質の濃度が、約10〜約25mg/mLである、請
求項1〜18のいずれか一項に記載の方法。 - 前記第2の出口溶液中のエタノールの濃度が、約10〜15%である、請求項9〜19
のいずれか一項に記載の方法。 - 2つの核酸流および1つの脂質流を供給するステップと、
十字コネクターで前記2つの核酸流を前記1つの脂質流と合流させて、前記第1の合流
した流れを供給するステップと
を含む、請求項1〜20のいずれか一項に記載の方法。 - 前記2つの核酸流が、互いに対して約180°で反対方向から前記十字コネクターに入
り、前記脂質流が、前記2つの核酸流に対して約90°で前記十字コネクターに入る、請
求項21に記載の方法。 - 前記第1の方向での前記第1の合流した流れを流動させるステップが、前記脂質流と実
質的に同じ方向で、かつ前記2つの核酸流に対して約90°で前記十字コネクターから外
へ前記第1の合流した流れを流動させるステップを含む、請求項22に記載の方法。 - 前記第1の合流した流れを前記希釈流と合流させるステップが、前記第1の合流した流
れを、前記第1の合流した流れの方向に対して約90°から前記希釈流と交差させるステ
ップを含む、請求項8〜23のいずれか一項に記載の方法。 - 前記核酸流由来の核酸の約90%超が、前記第1の出口溶液中に封入される、請求項1
〜24のいずれか一項に記載の方法。 - 薬学的に許容される担体、ならびに
脂質ナノ粒子ホストおよび核酸を含む被封入核酸ナノ粒子であって、前記核酸が、前記
脂質ナノ粒子ホスト中に封入されている、被封入核酸ナノ粒子
を含む被封入核酸ナノ粒子組成物であって、前記被封入核酸ナノ粒子が、約40nm〜約
70nmの平均粒径、および動的光散乱により決定される場合の約0.1未満の多分散指
数を有する、被封入核酸ナノ粒子組成物。 - 前記脂質ナノ粒子ホストが、生分解性陽イオン性脂質、脂質付加されたポリエチレング
リコール、コレステロールおよび1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホ
コリンを含む、請求項26に記載の組成物。
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