JP2013095708A

JP2013095708A - クラゲコラーゲンペプチド混合物

Info

Publication number: JP2013095708A
Application number: JP2011240469A
Authority: JP
Inventors: Yuko Inotsume; 優子猪爪; Hirotomo Bando; 博友番戸; Sawayuki Aoki; 沢幸青木; Sunao Domae; 直堂前; Akiko Masuda; 晶子益田
Original assignee: Nicca Chemical Co Ltd; RIKEN Institute of Physical and Chemical Research
Current assignee: Nicca Chemical Co Ltd; RIKEN Institute of Physical and Chemical Research
Priority date: 2011-11-01
Filing date: 2011-11-01
Publication date: 2013-05-20
Also published as: KR20130048164A

Abstract

【課題】角質のバリア機能の修復改善効果を有するクラゲコラーゲンペプチド混合物を提供する。
【解決手段】下記アミノ酸配列のいずれかを含むクラゲコラーゲンペプチドを含有するクラゲコラーゲンペプチド混合物を提供する。
＜1＞Gly-Pro-Ala-Gly
＜2＞Pro-Gly-Val-Lys-Gly-Glu-Val-Gly-Glu-Ala-Gly-Lys-Arg-Gly
＜3＞Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys
＜4＞Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val
＜5＞Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg
＜6＞Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu
Pro(OH)はヒドロキシプロリンを示す。
【選択図】なし

Description

本発明は、特定のアミノ酸配列を含むクラゲコラーゲンペプチド混合物に関する。また、該クラゲコラーゲンペプチドを含有する外用剤に関し、特に、角化細胞賦活剤、インボルクリン産生促進剤、トランスグルタミナーゼ産生促進剤及び／または抗炎症剤としての外用剤に関する。

近年、日本近海におけるクラゲの大量発生が社会問題化しており、大量発生したエチゼンクラゲが漁網を破損し、漁獲量を低下させるなど漁業に深刻なダメージを与えている。またミズクラゲやエチゼンクラゲが工場や火力発電所、原子力発電所の取水口に詰まるなどの被害も生じている。大量発生したクラゲは、主に捕獲駆除されているものの、捕獲したクラゲの廃棄にもコストを要するため、捕獲駆除に替わる有効な解決手段が各方面から望まれていた。

その対策のひとつに、クラゲのコラーゲン原料としての利用が提案されている。

基礎化粧料の重要なアイテムであるコラーゲンは、主に牛や豚などの哺乳動物に由来するものが用いられており、哺乳動物はタンパク質の１／３がコラーゲンであるとされている。それに対し、クラゲは９５〜９８質量％の水分と、２〜５質量％の固形物からなり、この固形物の２０〜３０質量％がタンパク質であり、その８０質量％がコラーゲンであるといわれている。

一般に、哺乳動物由来のコラーゲンが、動物の皮膚や骨などの硬い組織からの抽出物であるのに対し、大量の水分を含む軟らかい組織で構成されているクラゲのコラーゲンには、他の動物性コラーゲンにはない機能や活性があるものと予想される。

クラゲ抽出物に関する検討として、ミズクラゲやエチゼンクラゲから得られた液状物を皮膚外用剤に配合して使用することにより、肌の水分保持能が更新され、角層のターンオーバーを正常化できるとの報告がある（特許文献１）。しかし、クラゲから得られた液状物、すなわちクラゲコラーゲンを含むタンパク質による表皮細胞賦活効果は、十分満足できるものではなかった。

皮膚は乾燥、紫外線などの物理的刺激から内部の細胞を保護し、体内成分の喪失を防止する役目をはたしている。この機能は皮膚のバリア機能または角質のバリア機能と呼ばれ、その機能の重要な役目を担っているのが角層である。

角層は表皮角化細胞が分化して形成された角質層と、細胞間を埋める細胞間脂質から形成されたものであり、角質層はケラチン繊維とコーニファイドエンベロープ（ＣＥ）から構成され、ＣＥはインボルクリンや、ロリクリンなどがトランスグルタミナーゼ１などの酵素により架橋して形成されたものである。角質のバリア機能は、ＣＥの一部と細胞間脂質であるセラミドなどが共有結合して形成されることが知られており、角質のバリア機能を改善するには、表皮角化細胞の増殖、インボルクリン、トランスグルタミナーゼの増加が重要と考えられている。

インボルクリン産生促進効果、トランスグルタミナーゼ産生促進効果については、オトギリソウ科セイロンテツボク、シラカンバ、ローヤルゼリーなど天然物及びそのエキス類による効果が報告されている（特許文献２、３、４）。しかし、クラゲコラーゲンペプチ
ドの表皮細胞の賦活化効果、インボルクリン、トランスグルタミナーゼ産生促進効果については、これまで報告されていない。

特開２０１１−１１６６７２号公報特開２００５−２１３１８７号公報特開２００７−２１７３２６号公報特開２００９−１８４９５５号公報

本発明は、角質のバリア機能の修復改善効果を有するクラゲコラーゲンペプチド混合物の提供を目的とする。

本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、特定のアミノ酸配列を含むクラゲコラーゲンペプチドの混合物に、優れた表皮角化細胞賦活効果、インボルクリン産生促進効果、トランスグルタミナーゼ産生促進効果、抗炎症効果を見出し、この知見に基づき本発明を完成するに到った。これらの効果により、角質のバリア機能を修復し、改善することが可能となる。

即ち、本発明は下記の（１）〜（１３）に係わるものである。
(1)下記アミノ酸配列のいずれかを含むクラゲコラーゲンペプチドを含有するクラゲコラーゲンペプチド混合物。

＜1＞Gly-Pro-Ala-Gly（配列番号１）
＜2＞Pro-Gly-Val-Lys-Gly-Glu-Val-Gly-Glu-Ala-Gly-Lys-Arg-Gly（配列番号２）
＜3＞Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys（配列番号３）
＜4＞Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val（配列番号４）
＜5＞Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg（配列番号５）
＜6＞Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu（配列番号６）
Pro(OH)はヒドロキシプロリンを示す。

（２）クラゲコラーゲンを加水分解して得られる項１に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。

（３）加水分解をトリプシン、ペプシン、パパインからなる群より選ばれた少なくとも１種のペプチド分解酵素を用いて行うことを特徴とする項２に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。

（４）加水分解を固体酸触媒を用いて行うことを特徴とする項２に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。

（５）固体酸触媒が、陽イオン交換体、ゼオライト、珪藻土からなる群より選ばれた少なくとも１種の固体酸触媒であることを特徴とする項４に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。

（６）クラゲコラーゲンが、ミズクラゲコラーゲンまたはエチゼンクラゲコラーゲンである項１〜５のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。

（７）クラゲコラーゲンを、ペプチド分解酵素または固体酸触媒を用いて加水分解することにより得られる、クラゲコラーゲンペプチド混合物。

（８）下記アミノ酸配列のいずれかを含むペプチド。

（９）項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または項８に記載のペプチドを含有する外用剤。

（１０）項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または項８に記載のペプチドを含有する角化細胞賦活剤。

（１１）項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または項８に記載のペプチドを含有するインボルクリン産生促進剤。

（１２）項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または項８に記載のペプチドを含有するトランスグルタミナーゼ産生促進剤。

（１３）項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または項８に記載のペプチドを含有する抗炎症剤。

本発明により未利用資源のクラゲを有効活用することができ、クラゲコラーゲンペプチドの混合物を比較的安価に提供することができる。また、本発明の角化細胞賦活効果、インボルクリン産生促進効果、トランスグルタミナーゼ産生促進効果、抗炎症効果に優れたクラゲコラーゲンペプチドを外用剤として経皮投与することにより、角層の形成が促進され、角質のバリア機能を修復改善することができる。

図１は、実施例１において製造されたクラゲコラーゲンペプチド混合物の質量分析の結果を示したものである。図２は、実施例９において製造されたクラゲコラーゲンペプチド混合物の質量分析の結果を示したものである。図３は、実施例１２〜１４において製造されたクラゲコラーゲンペプチド混合物の分子量分布を示したものである。図中、１〜３は、それぞれ、実施例１２〜１４において製造されたクラゲコラーゲンペプチド混合物の分子量分布を示し、４は分子量マーカーの分子量（表下部の数値は分子量（ｋＤａ）を示す。）を示す。

本明細書において用いる「クラゲコラーゲンペプチド」なる用語はクラゲコラーゲン由来のアミノ酸配列を含むペプチドをいう。本明細書において、クラゲコラーゲンペプチドの混合物（クラゲコラーゲンペプチド混合物）をクラゲコラーゲンペプチドということが
あり、クラゲコラーゲン由来のアミノ酸配列情報に基づき合成によって得られたペプチドをクラゲコラーゲンペプチドということがある。

本発明のクラゲコラーゲンペプチドの混合物は、クラゲコラーゲンの加水分解により得ることができる。一実施態様において、クラゲコラーゲンペプチドの混合物は下記アミノ酸配列のいずれかを含むクラゲコラーゲンペプチドを含有するものである。また、合成で得られた下記アミノ酸配列を含むペプチドを用いることも、合成によって得られた下記アミノ酸配列を含むペプチドと、クラゲコラーゲンを加水分解して得られたクラゲコラーゲンペプチドとの混合物を用いることもできる。

＜1＞Gly-Pro-Ala-Gly（配列番号１）
＜2＞Pro-Gly-Val-Lys-Gly-Glu-Val-Gly-Glu-Ala-Gly-Lys-Arg-Gly（配列番号２）
＜3＞Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys（配列番号３）
＜4＞Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val（配列番号４）
＜5＞Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg（配列番号５）
＜6＞Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu（配列番号６）

本発明のクラゲコラーゲンの加水分解には、ペプチド分解酵素または固体酸触媒を用いることができ、クラゲコラーゲンは、クラゲのタンパク質から得ることができる。

本発明で用いるクラゲの種類に特に制限はなく、例えば鉢虫網（Scyphozoa）、箱虫網（Cubozoa）、十文字クラゲ網（Staurozoa）及びヒドロ虫網（Hydrozoa）等に属するクラゲを用いることができ、具体的には、ミズクラゲ、アカクラゲ、ビゼンクラゲ、エチゼンクラゲ、エフィラクラゲ、ヒラタカムリクラゲ、クロカムリクラゲ、アマクサクラゲ、ヤナギクラゲ、ユウレイクラゲ、アマガサクラゲ、サムクラゲ、エビクラゲ、イボクラゲ、サカサクラゲ、ムラサキクラゲ、キタミズクラなどを用いることができる。これらのなかでも、資源の豊富さの観点から、ミズクラゲ、エチゼンクラゲを好ましく用いることができ、ミズクラゲを特に好ましく用いることができる。例えば、アミノ酸配列＜1＞〜＜6＞のいずれかを含むクラゲコラーゲンを本発明において好適に使用することができる。

まず、クラゲからタンパク質を抽出する方法について説明する。
クラゲからタンパク質を抽出する際、裁断機、ミンチ機及びカッター等を用いて破砕したものを用いることができ、クラゲを破砕することなく用いることもできる。クラゲまたはクラゲ破砕物を、４℃程度の低温下に１〜３６時間置くことにより、あるいは、４℃程度の低温下のリン酸緩衝液又は０.２％程度の塩化ナトリウム溶液、または、水に１〜３６時間浸漬することにより、タンパク質を含む水溶液が得られる。

タンパク質を含む水溶液は濾過し、さらに、塩化ナトリウムや硫酸アンモニウム等の無機塩を用いて塩析することにより、または、エタノールなどの低級アルコールで沈殿物とすることにより、不純物を除去することもできる。

このようにして得られた粗タンパク質からクラゲコラーゲンを得る方法に特に制限はなく、例えば、タンパク質を含む水溶液を遠心分離して得られた固形物をエタノールなどの低級アルコールに分散させ、さらに遠心分離する方法が挙げられ、この操作によって、クラゲのコラーゲンを固形物として得ることができる。このクラゲコラーゲンを水で分散し、透析膜などで脱塩して精製したものを用いることもできる。

遠心分離で得られた前記固形物に水を加えて分散した後、さらに遠心分離し、その上澄み中のクラゲコラーゲンと沈殿したクラゲコラーゲンとを、それぞれ個別に使用することもできる。本明細書において、沈殿したクラゲコラーゲンについては、ｐＨ１〜４の酸性
溶液に透明に溶解することから「酸性可溶性コラーゲン」と称する。なお、この酸性可溶性コラーゲンは、ｐＨ４〜１０の範囲では水に不溶であるが、ｐＨ１０以上のアルカリ域では分散状態を取りうる。また、本明細書において、上澄み中のクラゲコラーゲンは、酸性可溶性コラーゲンに対して「中性可溶性コラーゲン」と称する。なお、この中性可溶性コラーゲンはｐＨ域に関わらず、水に可溶のコラーゲンである。

クラゲコラーゲンペプチドの作成においては、酸性可溶性コラーゲンより、中性可溶性コラーゲンを好ましく用いることができる。なお、酸性可溶性コラーゲンの割合は、キレート剤で予め金属成分を除去しておくことにより低減させることができる。

（クラゲコラーゲンのペプチド分解酵素による加水分解）
本明細書において用いる「ペプチド分解酵素」なる用語は、タンパク質を分解してペプチドを生成する酵素をいう。分解により得られるペプチドの分子量は、１５０〜３５,０００Ｄａであることが好ましく、２５０〜３０,０００Ｄａであることがより好ましい。

クラゲコラーゲンの加水分解に用いるペプチド分解酵素に特に制限はないが、トリプシン、ペプシン、パパインからなる群より選ばれた少なくとも１種であることが好ましい。

このうちトリプシンは、分子量約２３０００のプロテアーゼであり、不活性型前駆体の
トリプシノーゲンとして膵臓から分泌され、自己限定分解によって活性型に変化したものである。生物実験では、アルギニン、リシンのＣ末端側を特異的に加水分解することを利用してタンパク質の構造解析に利用するほか、付着性細胞の継代などに用いられる。トリプシンの使用量は、基質となるクラゲコラーゲンの０.０００１〜５質量％であることが好ましく、０.００１〜２質量％であることがより好ましく、０.０１〜１質量％であることがさらに好ましい。トリプシンによる処理条件に特に制限はないが、ｐＨ７〜９、３０〜４０℃であることが好ましい。

ペプシンは、分子量約３５０００のプロテアーゼの一種であり、脊椎動物の胃液中に分泌された前駆体ペプシノーゲンが、塩酸または既存のペプシンの作用によりペプシンに変化する。ペプシンの使用量は、基質となるクラゲコラーゲンの０.０００１〜５質量％であることが好ましく、０.００１〜２質量％であることがより好ましく、０.０１〜１質量％であることがさらに好ましい。ペプシンによる処理条件に特に制限はないが、ｐＨ１〜４、３０〜４０℃であることが好ましい。

パパインは、パパイアの果肉に含まれる分子量約２３０００のプロテアーゼであり、消化剤やビールの清澄剤などに用いられる酵素である。パパインの使用量は、基質となるクラゲコラーゲンの０.０００１〜５質量％であることが好ましく、０.００１〜２質量％であることがより好ましく、０.０１〜１質量％であることがさらに好ましい。パパインによる処理条件に特に制限はないが、ｐＨ４〜１０、２０〜８０℃であることが好ましい。

これらのペプチド分解酵素（トリプシン、ペプシン、パパイン）は、１種を用いることができ、２種以上を組み合わせて用いることもできるが、２種以上のペプチド分解酵素をもちいるのが好ましい。

クラゲコラーゲンを２種以上のペプチド分解酵素で加水分解する場合において、クラゲコラーゲンが酸性可溶性コラーゲン、または、酸性可溶性コラーゲンと中性可溶性コラーゲンとの混合物である場合には、まずペプシンで加水分解することが好ましい。酸性条件で分解活性のあるペプシンで加水分解することにより、中性のｐＨ域でも可溶のコラーゲンペプチドを得ることができ、トリプシンおよび／またはパパインでさらに加水分解することが可能となる。このペプシンによる加水分解の後、さらにトリプシンおよび／または
パパインで加水分解する方法は、中性可溶性コラーゲンの加水分解にも用いることができる。例えば、ペプシンとトリプシン、ペプシンとパパインとトリプシンの組み合わせを本発明において好適に使用することができる。

（クラゲコラーゲンの固体酸触媒による加水分解）
クラゲコラーゲンペプチドの混合物は、クラゲコラーゲンを固体酸触媒で加水分解して得ることもできる。固体酸触媒による加水分解は、水の存在下、且つ加熱下で、固体酸触媒とクラゲコラーゲンとを接触させて、クラゲコラーゲンを加水分解する方法である。加水分解効率の観点から、クラゲコラーゲンは中性可溶性コラーゲンであることが好ましい。

本発明おいて、酸として機能し得る固体触媒を特に制限なく固体酸触媒として用いることができるが、加水分解効率の観点から、陽イオン交換体、ゼオライトおよび珪藻土からなる群から選ばれる少なくとも一種であることが好ましく、陽イオン交換体であることがより好ましい。これらの固体酸触媒は、１種のみを用いることも、２種以上を組み合わせて用いることもできる。

陽イオン交換体は、スルホン基、カルボキシル基の少なくとも１種を有する樹脂であることが好ましく、スルホン基、カルボキシル基は、それぞれスルホプロピル基、カルボキシメチル基であってもよい。陽イオン交換体のカウンターイオンがプロトン以外である場合、プロトン型に置換した後に使用することが好ましい。特に好ましい陽イオン交換体は、スルホプロピル基などの強酸性陽イオン交換基を有するスルホン酸型陽イオン交換体であり、陽イオン交換樹脂、陽イオン交換膜を好ましい形態としてあげることができる。スルホン酸型陽イオン交換樹脂の具体例としては、東ソー株式会社製ＴＯＹＯＰＥＡＲＬＳＰ−６５０Ｃ、ＳＰ−５５０Ｃ等のように親水性ビニルポリマーを基材として含むものや、ナフィオン（登録商標）等のようにパーフルオロスルホン酸を含むポリテトラフルオロエチレン共重合体を挙げることができる。

ゼオライトとしては、一般にゼオライト触媒として利用されているゼオライトを用いることができ、中でも、東ソー株式会社製ゼオラム（登録商標）を好ましく用いることができる。
珪藻土としては、例えば和光純薬工業株式会社製けいそう土（顆粒状）等が挙げられる。

前記固体酸触媒の形状に制限はなく、粒状、粉末状等の任意の形態を取り得る。粒状または粉末状であれば、加水分解させるべきクラゲコラーゲンを含む水溶液中に固体酸触媒を混合するバッチ法に使用することもでき、固体酸触媒を充填したカラムへクラゲコラーゲン水溶液を連続送液する連続法に使用することもできる。また、固体酸触媒からなる膜や粒状または粉末状の固体酸触媒を固定化した膜に、クラゲコラーゲン水溶液を通過させることもできる。

前記固体酸触媒としては、例えば平均粒子径が２μｍ〜２ｍｍ程度、イオン交換容量が０.０１〜１ｅｑ／Ｌ程度のものを使用することができる。本発明におけるクラゲコラーゲンの加水分解は、固体酸触媒上の酸点の作用により進行するものと考えられる。従って、クラゲコラーゲン吸着能が高い固体酸触媒を使用することが好ましく、クラゲコラーゲン吸着量が５〜１５０ｇ／Ｌの固体酸触媒を使用することが好ましい。例えば、前述の東ソー株式会社製ＴＯＹＯＰＥＡＲＬＳＰ−６５０Ｃのクラゲコラーゲン吸着量は３５〜５５ｇ／Ｌ程度、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬＳＰ−５５０Ｃのクラゲコラーゲン吸着量は８０〜１２０ｇ／Ｌ程度である。

前記固体酸触媒としては、多孔質体であることがより好ましい。比表面積が増大するほど吸着性が向上するとの観点から、細孔サイズが小さい多孔質体であることが好ましいが、細孔サイズより大きなクラゲコラーゲンの細孔内での加水分解が困難となるため、クラゲコラーゲンの加水分解に適したサイズの細孔を有する固体酸触媒を選択することが好ましい。固体酸触媒として用いる多孔質体の好ましい細孔の径は、０.０１〜０.７５μｍであり、より好ましくは、０.０５〜０.６μｍである。

固体酸触媒によるクラゲコラーゲンの加水分解は、水存在下かつ加熱下で固体酸触媒とクラゲコラーゲンとを接触させることにより行われる。加熱なしでは加水分解反応を良好に進行させることが困難である。加熱温度としては８０〜１６０℃程度、処理時間は５分〜４０時間程度であることが好ましい。クラゲコラーゲンの分解はクラゲコラーゲンペプチドまでの分解に留めることが重要であるが、高温で長時間処理した場合、クラゲコラーゲンがアミノ酸にまで加水分解されるおそれがあるため、処理温度が高温であるほど、処理時間を短時間とするのが好ましい。より好ましい処理条件は、８０〜１２０℃で５分〜２０時間であり、さらに好ましくは、８０〜１２０℃で５分〜５時間であり、より好ましくは９０〜１１０℃で５分〜２時間である（固体酸触媒については例えば国際公開第２０１０／０５８５９０号も参照のこと）。

ペプチド分解酵素又は固体酸触媒を用いた加水分解によって得られたこれらのクラゲコラーゲンペプチド混合物は、加水分解していないクラゲコラーゲンと比較して増加した角化細胞賦活活性、インボルクリン産生促進活性、トランスグルタミナーゼ産生促進活性及び／または抗炎症活性を示すことができる。

本発明においては、アミノ酸配列＜1＞〜＜6＞のいずれかのアミノ酸配列を含むペプチドを合成して得ることもできる。前記アミノ酸配列を含むペプチドの合成方法に特に制限はなく、例えば、Ｃ末端アミノ酸をポリスチレンからなる固相に固定し、これに保護アミノ酸を結合させることによってアミノ基を伸長することができ、アミノ酸保護には、Fmoc（Fluorenyl-MethOxy-Carbonyl）基やBoc（tert-ButOxy- Carbonyl）基を用いることができる。固相のアミノ基と保護アミノ酸との反応終了後、固相を洗浄し、未反応の保護アミノ酸を除去することが好ましい。その後、固相に結合しているアミノ酸の末端の保護基を除去（脱保護）することにより、次の反応点となるアミノ基が得られる。使用する保護アミノ酸を順次変更することで、目的のアミノ酸配列を含むペプチドを得ることができる。本発明のペプチドは、加水分解していないクラゲコラーゲンと比較して、例えば１.２倍、好ましくは、１.５倍、より好ましくは１.８倍、さらに好ましくは２倍増加した角化細胞賦活活性、インボルクリン産生促進活性、トランスグルタミナーゼ産生促進活性及び／又は抗炎症活性を示す。アミノ酸配列＜1＞〜＜6＞のいずれかを含むペプチドは、アミノ酸配列＜1＞〜＜6＞のいずれかからなるペプチドであってもよい。

本発明の細胞賦活効果、インボルクリン産生促進効果、トランスグルタミナーゼ産生促進効果、抗炎症効果に優れたクラゲコラーゲンペプチドは、皮膚外用剤、化粧品、浴用剤などの外用剤の形態で経皮投与することができる。経皮投与の観点から、クラゲコラーゲンペプチドの分子量は、１５０〜３５,０００Ｄａであることが好ましく、２５０〜３０,０００Ｄａであることがより好ましい。

本発明のクラゲコラーゲンペプチドの混合物を、外用剤として、皮膚外用剤または化粧品に製剤するときの剤型に特に制限はなく、ペースト剤、クリーム、ジェル、軟膏、ローション、乳液、パック、パウダー、パップ剤とすることができ、ウエットティッシュなどの紙製品に含浸して用いることもできる。皮膚外用薬、化粧品に配合するクラゲコラーゲンペプチドの量に特に制限はないが、皮膚外用剤中、化粧品中に０.０００５〜５０質量％であることが好ましい。本発明のクラゲコラーゲンペプチドを配合した皮膚外用剤、化
粧品の使用量にも特に制限はないが、クラゲコラーゲンペプチド量で成人１日当たり０.１〜１０００ｍｇとなる量を、１〜数回に分けて用いることが好ましい。

本発明のクラゲコラーゲンペプチド混合物を、外用剤として浴用剤に製剤する場合の剤型にも制限はなく、粉末、顆粒状などの固形製剤、乳液、ペースト状などの液体製剤等として用いることができる。浴用剤に配合可能なクラゲコラーゲンペプチドの量に特に制限はないが、浴用剤中に０.０００５〜５０質量％であることが好ましい。

本発明の皮膚外用剤、化粧品および浴用剤などの外用剤には、本発明のクラゲコラーゲンペプチドのほかに、皮膚外用剤、化粧品又は浴用剤で使用される公知の機能性成分、例えば、グリセリン、ブチレングリコール、尿素、アミノ酸類などの保湿剤；スクワラン、マカデミアナッツ油、ホホバ油などのエモリエント剤；ビタミンＥ類、トウガラシチンキなどの血行促進剤；ジブチルヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）、ジブチルヒドロキシアニソール（ＢＨＡ）、酢酸トコフェロール、アスコルビン酸などの抗酸化剤；グリチルリチン、アラントインなどの抗炎症剤；ヒノキチオール、塩化ベンザルコニウム、クロルヘキシジン塩、パラヒドロキシ安息香酸エステルなどの抗菌剤；アスコルビン酸、アルブチンなどの美白剤；スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）等の過酸化物抑制剤、など種々の公知物質等を配合することができる。また、イチョウエキス、胎盤抽出物、乳酸菌培養抽出物などの植物・動物・微生物由来の各種抽出物などを添加することができる。

また、前記皮膚外用剤、化粧品、浴用剤などの外用剤には、その剤型化のために界面活性剤や油脂類などの基剤成分を配合することができ、必要に応じて増粘剤、防腐剤、等張化剤、酸化防止剤、紫外線吸収剤、キレート剤、香料、着色料など種々の添加剤を併用することもできる。

使用可能な界面活性剤に制限はなく、高級アルキルアミンのアルキレンオキサイド付加物、高級脂肪酸アミドのアルキレンオキサイド付加物、多価アルコールの脂肪酸エステル、硬化ひまし油のアルキレンオキサイド付加物、ポリエチレングリコールソルビタンアルキルエステル、ステロール等のアルキレンオキサイド付加物等の非イオン界面活性剤、アルキル硫酸ナトリウム、アルキロイルメチルタウリンナトリウム、α−オレフィンスルホン酸ナトリウム、ポリオキシアルキレンアルキルエーテル硫酸ナトリウム等の陰イオン界面活性剤、塩化アルキルピリジニウム、塩化ジステアリルジメチルアンモニウム等の陽イオン界面活性剤、アルキルアミノプロピオン酸ナトリウム、アルキルポリアミノエチルグリシン等の両イオン性界面活性剤を用いることができる。これらの界面活性剤は１種を用いることができ、２種以上を同時に用いることもできる。

前記基剤として用いる成分に特に制限はなく、オリーブ油、ツバキ油、ホホバ油、アボガド油、マカデミアナッツ油、杏仁油、スクワラン、スクワレン、馬油などの油脂類を用いることができる。

前記増粘剤として用いる成分に特に制限はないが、水溶性高分子が好ましく、例えば、ポリビニルアルコール、ポリアクリルアミド、ポリエチレングリコール、及びこれらの誘導体；ヒドロキシアルキルセルロースなどのセルロース類及びその誘導体；デキストラン、ゼラチン、アラビアガム、トラガントガムなどのガム類；カルボキシビニルポリマーなどを用いることができる。

前記防腐剤として用いる成分に特に制限はなく、例えば、パラヒドロキシ安息香酸エステル、塩化アルキルピリジニウム、塩化ベンザルコニウム、クロルヘキシジン塩、ヒノキチオールなどを用いることができる。

前記等張化剤として用いる成分に特に制限はなく、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウムなどの無機塩類を用いることができる。

前記紫外線吸収剤として用いる成分に特に制限はなく、例えば、パラアミノ安息香酸、ベンゾフェノン系紫外線吸収剤、ベンゾトリアゾール系紫外線吸収剤などを用いることができきる。

使用可能なキレート剤に特に制限はなく、例えば、エチレンジアミン四酢酸、フィチン酸、クエン酸及びこれらの水溶性塩などを挙げることができる。

以下、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、本発明を限定するものではない。
１．クラゲコラーゲンの調製
蒸留水で洗浄したミズクラゲ（採取地：東京湾）の個体計１Ｋｇを、５ｍｍ〜１ｃｍの角状断片に切断した。これを、４℃下で２４時間撹拌してタンパク質を含む溶液を得た。これをガーゼでろ過して、濾液に等容量の局法エタノール（Ａ）を加え、撹拌して沈殿物を得た。この沈殿物に再度局法エタノール（Ａ）と同量の局方エタノールを加え、遠心分離（１００００×Ｇ）を行った。得られた固形物を蒸留水に分散し、分画分子量（ＭＷＣＯ）：１４０００の透析膜を用いて脱塩処理を行った。これを遠心分離（１００００×Ｇ）して、上澄み層と沈殿層とに分別し中性可溶性コラーゲン（上澄み）と、酸性可溶性コラーゲン（沈殿物）を得た。

２．抽出された中性可溶性コラーゲンのアミノ酸分析
アミノ酸の分析では、６−アミノキノリル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジルカルバメート（ＡＱＣ）を蛍光誘導体化試薬として用いた、
凍結乾燥した中性可溶性コラーゲンの１０μｇを水１０μＬに溶解し、ガラスチューブ（６×３２ｍｍ，ＣＨＲＯＭＡＣＯＬ０３−ＣＶＧ）内で乾固させた。

ガラスバイアル（ＷＨＥＡＴＯＮ２２５２８９）内に、フェノール結晶一片を加えた６Ｎ塩酸２００μＬと、前記ガラスチューブを入れ、ロータリー真空ポンプで減圧の上、ガラスバイアルを封印した。このガラスバイアルをアルミブロックヒーターにセットし、１１０℃にて２０時間加熱して、中性可溶性コラーゲンをアミノ酸に加水分解した。

前記中性可溶性コラーゲンの加水分解物（アミノ酸）に、２０ｍＭ塩酸１０μＬ、０.２Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８.８）３０μＬ、ＡＱＣ溶液（ＡＱＣ３ｍｇ／ｍｌのアセトニトリル溶液）１０μＬを加えて、５５℃にて１０分間加熱して、コラーゲンの加水分解物（アミノ酸）をアミノ酸蛍光誘導体とし、高速液体クロマトグラフ（ＨＰＬＣ）で分離した。

ａ）ＨＰＬＣ装置：Ａｇｉｌｅｎｔ社の１２００シリーズ（真空デガッサーＧ１３７９Ｂ、バイナリーポンプＧ１３１２Ｂ、オートサンプラーＧ１３２９Ｂ、カラム恒温槽Ｇ１３１６Ｂ、ダイオードアレイ検出器Ｇ１３１５Ｃ、蛍光検出器Ｇ１３２１Ａを含む）
ｂ）カラム：ＩｎｅｒｔｓｕｓｔａｉｎＣ１８ＨＰ（３.０×２５０ｍｍ，３μｍ）、ＧＬサイエンス社製
ｃ）移動相
Ａ液：９５％５ｍＭテトラブチルアンモニウムブロミド−３０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７.３）／５％アセトニトリル
Ｂ液：５０％３０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７.３）／５０％アセトニトリル
Ａ液９８％、Ｂ液２％から開始し、３.７５分後のＢ液が７.３％に、さらに、５０分後
のＢ液が７２.３％となるように濃度勾配を設けた。
ｄ）流速：０.４ｍｌ／分
ｅ）温度：５０℃
ｆ）蛍光励起波長（Ｅｘ）：２５０ｎｍ
ｇ）モニター波長（Ｅｍ）：３９５ｎｍ
ピアス社製ＡｍｉｎｏＡｃｉｄＳｔａｎｄａｒｄＨ（２.５μｍｏｌ／ｍｌ）の１０ｐｍｏｌ／μＬ溶液を標準アミノ酸溶液として、アミノ酸を定量した。結果を次表に示す。

クラゲコラーゲンは、３０％以上のＧｌｙを含有するものであった。
＊Ｌｙｓ（ＯＨ）、３Ｐｒｏ（ＯＨ）、４Ｐｒｏ（ＯＨ）はそれぞれ、ヒドロキシル基含有アミノ酸を示す。

３．抽出されたクラゲコラーゲンの金属分の測定
凍結乾燥した中性可溶性コラーゲンを０.１ｇ精秤して、硝酸１０ｍｌを加え、マイクロ波（ＭＡＲＳ５ＣＥＭ社製）でこれを湿式分解した。分解液を５０ｍｌにメスアップし、発光分光分析計（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ製Ｏｐｔｉｍａ５３００ＤＶ）で金属分を測定した。酸性可溶性コラーゲンに対しても同様の操作を行った。

４．クラゲコラーゲンペプチドの作成と分子量分布、質量分析およびアミノ酸配列の解析
以下の実施例におけるクラゲコラーゲンペプチド混合物の分子量分布は、ゲルろ過クロマトグラフィー（カラム：ＴＳＫｇｅｌＳｕｐｅｒＳＷ２０００、東ソー）を用いて測定した。
溶媒：６Ｍグアニジン塩酸／１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６）
流速：０.１５ｍｌ／分
測定波長：２１５ｎｍ

また、得られたクラゲコラーゲンペプチド混合物を逆相クロマトグラフィーで分離し、質量分析（ＵｌｔｒａｆｌｅｘＴＯＦ／ＴＯＦ、ＢＲＵＫＥＲＤＡＬＴＯＮＩＣＳ）およびアミノ酸配列解析（ＰＲＯＣＩＳＥ４９４ｃＬＣプロテインシークエンサー、ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を行った。

逆相クロマトグラフィーによる分離条件
カラム：ＩｎｅｒｔｓｉｌＯＤＳ−３（ＧＬサイエンス社製）
測定波長：２１５ｎｍ
流速２０μｌ／分
移動相
Ａ液：０.０８５％トリフルオロ酢酸水溶液
Ｂ液：０.０７５％トリフルオロ酢酸／８０％アセトニトリル液
Ａ液１００％から開始し、Ｂ液が１０分で１２.５％、７０分で５０％、７５分で１００％になるよう濃度勾配を設けた。

実施例１の分子量１１１２.４９８のピークなど特定のピークに対しては、Ａ液１００％から開始し、Ｂ液が２０分で１００％になるような濃度勾配を設けた。

４−１）ペプチド分解酵素によるクラゲコラーゲンペプチドの作成
実施例１）
凍結乾燥した中性可溶性コラーゲン０.０１ｇを１０ｍＬの水に溶解し、１ＮＨＣｌにてｐＨ２に調整した。コラーゲンに対して、０.５質量％のペプシン（試薬、ナカライ製、Pepsin(1:10,000））を加え、３７℃にて３時間反応させた。その後、１ＮＮａＯＨにてｐＨ７に調整してペプシンを失活させた。次にコラーゲンに対して０.５質量％のパパイン（和光純薬製試薬）を加え、６０℃にて３時間反応させ、さらに、コラーゲンに対して０.５質量％のトリプシン（和光純薬製試薬）を加え、３７℃にて３時間反応させた。その後、９５℃にて３０分間保持して酵素を失活させた。これを凍結乾燥して分子量５００〜６０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

また、質量分析及びアミノ酸配列解析の結果、実施例１のコラーゲンペプチドは、分子量１１１２.４９８のコラーゲンペプチドを含み、このコラーゲンペプチドは
アミノ酸配列＜1＞Gly-Pro-Ala-Gly（配列番号１）
を含むことを確認した。

実施例１の質量分析の結果を図１に、分子量１１１２.４９８のアミノ酸配列とタンデム質量分析の予想フラグメント質量の関係を下記の表３に示す。

実施例２）
実施例１の中性可溶性コラーゲンを、酸性可溶性コラーゲンとした以外は、実施例1と同様の操作を行い、分子量５００〜６０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例３）
凍結乾燥した中性可溶性コラーゲン０.０１ｇを１０ｍｌの水に溶解し、１ＮＨＣｌにてｐＨ２に調整した。コラーゲンに対して０.５質量％のペプシン（試薬、ナカライ製、Pepsin(1:10,000））を加え、３７℃にて３時間反応させた。その後、１ＮＮａＯＨにてｐＨ８に調整してペプシンを失活させた。これを凍結乾燥して分子量２ｋＤａ〜３０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例４）
実施例３の中性可溶性コラーゲンを、酸性可溶性コラーゲンとした以外は、実施例３と同様の操作を行い、分子量２ｋＤａ〜３０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例５）
実施例３の操作において、ペプシンを失活させた後、コラーゲンに対して０.５質量％のトリプシン（和光純薬製試薬）を加え、３７℃にて３時間反応させた。その後、９５℃にて３０分処理してトリプシンを失活させた。これを凍結乾燥し、分子量５００〜６０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例６）
実施例５の中性可溶性コラーゲンを、酸性可溶性コラーゲンとした以外は、実施例５と同様の操作を行い、分子量５００〜６０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例７）
実施例３の操作において、３７℃にて３時間反応させた後、１ＮＮａＯＨでｐＨ７に調整してペプシンを失活させた後、コラーゲンに対して０.５質量％のパパイン（和光純薬製試薬）を加え、６０℃にて３時間反応させた。その後、９５℃、３０分の条件でパパインを失活させ、凍結乾燥にて分子量１ｋＤａ〜２０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例８）
実施例７の中性可溶性コラーゲンを、酸性可溶性コラーゲンとした以外は、実施例７と同様の操作を行い、分子量１ｋＤａ〜２０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

固体酸触媒によるクラゲコラーゲンペプチドの作成
実施例９）
陽イオン交換樹脂（ＴＯＹＯＰＥＡＲＬＳＰ−５５０Ｃ）０.５ｇと、１質量％の中性可溶性コラーゲン水溶液０.５ｍＬとを混合して、陽イオン交換樹脂に中性可溶性コラーゲンを吸着させた後、９０℃にて３０分加熱し、中性可溶性コラーゲンを加水分解した。冷却後、５％トリエチルアミン／１０％アセトニトリル液にて樹脂から分解物を抽出した。これを凍結乾燥し、分子量２ｋＤａ〜２０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

また、実施例９のコラーゲンペプチドの質量分析及びアミノ酸配列解析の結果、分子量１９５０.９１５のコラーゲンペプチドを含み、分子量１９５０.９１５のコラーゲンペプチドは、
アミノ酸配列＜2＞Pro-Gly-Val-Lys-Gly-Glu-Val-Gly-Glu-Ala-Gly-Lys-Arg-Gly（配列番号２）
を含むことを確認した。

実施例９の質量分析の結果を図２に、分子量１９５０.９１５のアミノ酸配列とタンデム質量分析の予想フラグメント質量の関係を下記の表４に示す。

実施例１０）
実施例９の加熱時間を１５分とした以外は、実施例９と同様の操作を行い、分子量６ｋＤａ〜１００ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１１）
実施例９の加熱時間を６０分とした以外は、実施例９と同様の操作を行い、分子量１ｋＤａ〜１０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１２）
実施例９の加熱温度を１１０℃、加熱時間を５分とした以外は、実施例９と同様の操作を行い、分子量１ｋＤａ〜１０ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１３）
実施例１２の加熱時間を３０分とした以外は、実施例１２と同様の操作を行い、分子量１ｋＤａ〜５ｋＤａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１４）
実施例１２の加熱時間を６０分とした以外は、実施例１２と同様の操作を行い、分子量２００〜２０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１５）
実施例１２の加熱時間を２時間とした以外は、実施例１２と同様の操作を行い、分子量２００〜１０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１６）
実施例１２の加熱時間を４時間とした以外は、実施例１２と同様の操作を行い、分子量２００〜１０００Ｄａのコラーゲンペプチドの混合物を得た。

実施例１２〜１４の分子量分布を図３に示した。

５．臭化シアン分解コラーゲンペプチドの解析
凍結乾燥した中性可溶性コラーゲンに、中性可溶性コラーゲンに対して１０質量％の臭化シアンを添加し、３７℃にて２０時間反応して中性可溶性コラーゲンの加水分解物を得た。メチオニンのＣ末端側で切断する臭化シアンによる加水分解は、特異性が高くアミノ酸配列の解析に一般的に用いられる方法である。中性可溶性コラーゲンの加水分解物を濃縮遠心して臭化シアンを揮発させた後、水に再溶解し、ゲル濃度５〜２０質量％のアクリルアミドゲル（バイオクラフト製）を用いて、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法にて分離した。得られたゲル情報を電圧６０ＶにてＰＶＤＦ膜に４時間ブロット転写し、転写されたバンドをプロテインシークエンサー（ＰＲＯＣＩＳＥ４９４ＨＴ、ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）で解析して、次のアミノ酸配列情報を得た。

アミノ酸配列＜3＞Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys（配列番号３）
アミノ酸配列＜4＞Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val（配列番号４）
アミノ酸配列＜5＞Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg（配列番号５）
アミノ酸配列＜6＞Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu（配列番号６）
Pro(OH)はヒドロキシプロリンを示す。

前記アミノ酸配列＜1＞（ペプチド分解酵素による分解物）、アミノ酸配列＜2＞（固体酸触媒による分解物）、及び上記のアミノ酸配列＜3＞〜＜6＞は、いずれもクラゲコラーゲンに含まれるアミノ酸の配列であり、加水分解前のクラゲコラーゲンはアミノ酸配列＜
1＞〜＜6＞のすべてを有するものである。したがって、このクラゲコラーゲンを加水分解して得られるクラゲコラーゲンペプチドの混合物は、分解の手段に関わらず、アミノ酸配列＜1＞〜＜6＞を含むコラーゲンペプチドを含有するものとなる。

これら６種のアミノ酸配列のうち、アミノ酸配列＜3＞〜＜6＞のアミノ酸配列からなるペプチドの合成物（北海道システムサイエンス株式会社に製造を委託）を準備し、これを実施例１７〜２０とした。

実施例１７)Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys（配列番号３）
実施例１８）Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val（配列番号４）
実施例１９）Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg（配列番号５）
実施例２０）Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu（配列番号６）

６．クラゲコラーゲンペプチドの効果の評価
評価試験１（角化細胞を用いた賦活試験）
細胞賦活化作用は、活化培養細胞と細胞増殖試薬ＷＳＴ−１（ロシュ製）とを用いた細胞増殖効果で評価した。

ヒューマンサイエンス振興財団より分譲されたヒト皮膚由来不死化角化細胞ＰＨＫ１６−０ｂを４８ｗｅｌｌマルチプレートに２×１０⁴個播種し、３００μＬのＫＧＭ培地を加えて２日間培養した。その後、クラゲコラーゲン濃度１０μｇ／ｍＬのＫＧＭ培地３００μＬと交換し、３７℃のインキュベーター内で７日間培養した。再度新しいＫＧＭ培地２７０μＬと交換し、細胞増殖試薬ＷＳＴ−１を３０μＬ加えて３７℃のインキュベーター内で３時間反応した後、培地の４４０ｎｍにおける吸光度を測定した。コラーゲンペプチドを添加せずに、同条件にて培養したコントロールの細胞生存率を１００％とし、コラーゲンペプチドの細胞増殖率を評価（ｎ＝３）した。結果を次に示す。

いずれの加水分解条件で得られたクラゲコラーゲンペプチドにも細胞増殖効果が確認され、ペプチド分解酵素では、ペプシンによる加水分解したのち、さらに、パパイン及びトリプシンで加水分解して得られたコラーゲンペプチドに特に優れた効果が認められた。

固体酸触媒で得られたクラゲコラーゲンペプチドの細胞増殖効果も良好であり、１１０℃処理では処理時間が３０分以内のクラゲコラーゲンペプチドで良好な結果が得られた、クラゲコラーゲンのアミノ酸配列情報を元に製造したペプチドの細胞増殖効果も良好であり、特に実施例１７で卓越した効果が確認できた。一方、クラゲコラーゲン自体には、中性可溶性コラーゲン（比較例１）、酸性可溶性コラーゲン（比較例２）共に細胞増殖効果を確認できなかった。

評価試験２（角化細胞を用いたインボルクリン発現量試験）
成人ヒト皮膚由来正常角化細胞（コージンバイオ製）を、４８ｗｅｌｌマルチプレートに１×１０⁵個ずつ播種し、これにＫＧＭ培地を３００μＬ加えて３７℃にて２４時間培養した、クラゲコラーゲンペプチド濃度１０μｇ／ｍＬのＫＧＭ培地３００μＬに交換し、３７℃にて４８時間培養した。細胞を回収し、ウエスタンブロット法にてインボルクリン産生量を測定した。なお、一次抗体として、抗ヒトインボルクリン（コスモバイオ、ｓｃ−２８５５７）を、二次抗体として、抗ウサギＩｇＧ−ＨＲＰ（コスモバイオ、ｓｃ−２００４）を用いた。結果をＩｍａｇｅＪで解析し、無添加群（コントロール）に対する
インボルクリン発現率を評価した。結果を次に示す。

クラゲコラーゲンをペプチド分解酵素および固体酸触媒で加水分解して得られたクラゲコラーゲンペプチドの混合物に良好なインボルクリン発現効果を確認した。アミノ酸配列情報に基づき合成して得られたペプチドにも、インボルクリン産生効果が認められた。
評価試験３（角化細胞を用いたトランスグルタミナーゼ１発現量試験）
ヒト皮膚由来不死化角化細胞ＰＨＫ１６−０ｂを４８ｗｅｌｌマルチプレートに２０×１０⁴個播種し、これにＫＧＭ培地を３００μＬ加えて３７℃にて２４時間培養した。クラゲコラーゲンペプチド濃度１０μｇ／ｍＬのＫＧＭ培地３００μＬに交換して、３７℃にて４８時間培養した後に細胞を回収し、ウエスタンブロット法にてトランスグルタミナーゼ１産生量を測定した。なお、一次抗体として抗トランスグルタミナーゼ１（コスモバイオ、ＰＡＢ１５５４５）を、二次抗体として抗ウサギＩｇＧ−ＨＲＰ（コスモバイオ、ｓｃ−２００４）を用いた。結果をＩｍａｇｅＪで解析し、無添加群（コントロール）に対するトランスグルタミナーゼ１発現率を評価した。結果を次に示す。

クラゲコラーゲンをペプチド分解酵素で加水分解して得られたクラゲコラーゲンペプチドの混合物に良好なトランスグルタミナーゼ１発現効果を確認することができた。固体酸触媒で加水分解して得られたクラゲコラーゲンペプチド混合物およびアミノ酸配列情報に基づき合成して得られたペプチドにもトランスグルタミナーゼ１産生効果が確認できた。

評価試験４（角化細胞を用いたＣＯＸ−２阻害効果試験）
抗炎症効果は、紫外線照射を受けた角化細胞のＣＯＸ−２が産生するＰＧＥ₂の量で評価した。ＰＧＥ₂産生量が少ないほど、クラゲコラーゲンペプチドは抗炎症性を有するものとなる。

ヒト皮膚由来不死化角化細胞ＰＨＫ１６−０ｂを４８ｗｅｌｌマルチプレートに２０×１０⁴個播種し、ＫＧＭ培地を３００μＬ加えて、一晩培養した。アスピリン濃度５００μＭのＫＧＭ培地３００μＬに交換し４時間培養して、既に発現しているＣＯＸ−２を失活させた。ＰＢＳ（−）での洗浄を３回繰り返し、クラゲコラーゲンペプチド濃度を１０μｇ／ｍＬとしたＤＭＥＭ培地に交換し、５０ｍＪのＵＶＢを照射した後、４８時間培養した。その後、培地上清中のＰＧＥ₂量をプロスタグランジンＥ₂ ＥＩＡキット（ＣａｙｍａｎＣｈｅｍｉｃａｌ製）にて測定（ｎ＝３）した。

クラゲコラーゲンペプチド混合物に、良好な抗炎症効果が確認でき、特に、クラゲコラーゲンをペプシンで分解した後、さらにトリプシンで分解して得られたクラゲコラーゲンペプチドの混合物に優れた抗炎症効果を確認することができた。
７．化粧料への配合例
Ａ成分、Ｂ成分をそれぞれ８０℃に加温して溶解し、撹拌しながらＢ成分をＡ成分に徐々に加えて乳化した。その後撹拌しながら冷却し、４０℃で０.２質量％水溶液に調整したＣ成分を加え、全身用ローションを調整した。
（Ａ）成分
グレープシード油 0.1（ｇ）
ポリオキシエチレン（６０モル）硬化ヒマシ油 0.7
モノイソステアリン酸ジグリセリル 0.3
（Ｂ）成分
クエン酸 0.08
クエン酸Ｎａ 0.3
１，３−ブタンジオール 5
グリセリン 3
エタノール 5
キサンタンガム 0.1
メチルパラベン 0.2
精製水残量
（Ｃ）成分
クラゲコラーゲンペプチド（０.２質量％） 0.5
計 100

評価
前記組成の全身用ローションを、1日に２回（朝、夜）、顔面、及び前腕に適宜使用し、顔面および前腕の片側には実施例１〜２０のクラゲコラーゲンペプチドを配合した化粧料または酸性可溶性コラーゲン（比較例２）を配合した化粧料を、もう一方には、中性可溶性コラーゲン（比較例１）を配合した化粧料を使用した。これを１ヶ月間継続し、次の評価基準で判定した。結果を表９に示す。
なお、この使用期間中に皮膚の異常を訴えたものはいなかった。

スコア値
＋３：比較例1を配合した化粧料よりも潤いを強く感じた
＋２：比較例1を配合した化粧料よりもかなり潤いを感じられた
＋１：比較例1を配合した化粧料よりもやや潤いを感じられた
０：差がない
−１：比較例1を配合した化粧料の方がやや潤いを感じられた
−２：比較例1を配合した化粧料の方がかなり潤いを感じられた
−３：比較例1を配合した化粧料の方が潤い強く感じた

いずれのクラゲコラーゲンペプチドの混合物においても、中性可溶性コラーゲンを配合した化粧料を上回る肌の潤い効果を得ることができた。

ペプチド分解酵素による加水分解物としては、中性または酸性可溶性コラーゲンをペプシンで加水分解の後、さらにパパインおよびトリプシンで加水分解して得られたクラゲコラーゲンペプチド混合物で、特に良好な潤い効果が得られた。

固体酸触媒による加水分解物では、処理温度９０℃、処理時間３０分間の処理で得られたクラゲコラーゲンペプチド混合物に良好な潤い効果が認められた。

クラゲコラーゲンのアミノ酸配列情報に基づき合成したペプチドを配合した化粧料においても、肌の潤い効果は良好であった。

クラゲコラーゲンに由来するコラーゲンペプチドを用いることにより、角化細胞賦活効果、インボルクリン産生促進効果、トランスグルタミナーゼ産生促進効果、抗炎症効果を得ることができるため、これを経皮投与することにより、角質のバリア機能を修復改善し、表皮角化細胞の機能が正常化することが可能となる。

Claims

下記アミノ酸配列のいずれかを含むクラゲコラーゲンペプチドを含有するクラゲコラーゲンペプチド混合物。
＜1＞Gly-Pro-Ala-Gly（配列番号１）
＜2＞Pro-Gly-Val-Lys-Gly-Glu-Val-Gly-Glu-Ala-Gly-Lys-Arg-Gly（配列番号２）
＜3＞Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys（配列番号３）
＜4＞Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val（配列番号４）
＜5＞Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg（配列番号５）
＜6＞Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu（配列番号６）
Pro(OH)はヒドロキシプロリンを示す。
クラゲコラーゲンを加水分解して得られる請求項１に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。
加水分解をトリプシン、ペプシン、パパインからなる群より選ばれた少なくとも１種のペプチド分解酵素を用いて行うことを特徴とする請求項２に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。
加水分解を固体酸触媒を用いて行うことを特徴とする請求項２項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。
固体酸触媒が、陽イオン交換体、ゼオライト、珪藻土からなる群より選ばれた少なくとも１種の固体酸触媒であることを特徴とする請求項４に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。
クラゲコラーゲンが、ミズクラゲコラーゲンまたはエチゼンクラゲコラーゲンである請求項１〜５のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物。
クラゲコラーゲンを、ペプチド分解酵素または固体酸触媒を用いて加水分解することにより得られる、クラゲコラーゲンペプチド混合物。
下記アミノ酸配列のいずれかを含むペプチド。
＜1＞Gly-Pro-Ala-Gly（配列番号１）
＜2＞Pro-Gly-Val-Lys-Gly-Glu-Val-Gly-Glu-Ala-Gly-Lys-Arg-Gly（配列番号２）
＜3＞Val-Gly-Pro-Val-Thr-Glu-Glu-Val-Ser-Pro-Ala-Lys（配列番号３）
＜4＞Ser-Ala-Gly-Gln-Asn-Pro-Ala-Asp-Asp-Val（配列番号４）
＜5＞Gly-Thr-Pro(OH)-Gly-Ala-Gly-Gly-Ser-Arg（配列番号５）
＜6＞Gln-Gly-Pro-Gln-Gly-Glu-Leu（配列番号６）
Pro(OH)はヒドロキシプロリンを示す。
請求項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または請求項８に記載のペプチドを含有する外用剤。
請求項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または請求項８に記載のペプチドを含有する角化細胞賦活剤。
請求項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または請求項８に記載のペプチドを含有するインボルクリン産生促進剤。
請求項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または
請求項８に記載のペプチドを含有するトランスグルタミナーゼ産生促進剤。
請求項１〜７のいずれか１項に記載のクラゲコラーゲンペプチド混合物、及び／または請求項８に記載のペプチドを含有する抗炎症剤。