ES2286530T3 - Peptidos antagonistas del antigeno carcinoembrionario (cea). - Google Patents
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Abstract
Péptido que comprende un agonista de una secuencia natural de unión de MHC de clase I: en el que dicho agonista varía en una sustitución de aminoácido en la poisición 6 y/o la posición 7 de la SEC. ID. nº 1 y dicho agonista presenta aumento de inmunogenicidad en comparación con la secuencia natural.
Description
Péptidos antagonistas del antígeno
carcinoembrionario (CEA).
La presente invención se refiere a la
preparación y utilización de péptidos que pueden actuar como
agonistas del antígeno carcino-embrionario humano
(CEA). Más específicamente, el péptido agonista según la presente
invención se puede utilizar como inmunógeno, ya sea solo, o en
protocolos de cebado y refuerzo con otros inmunógenos como
rV-CEA, para una variedad de enfermedades
neoplásticas. Éstas pueden incluir cáncer colorectar, cáncer de
pulmón, cáncer pancreático y cáncer de pecho. De este modo, la
presente invención también se refiere a la producción y utilización
de vacunas contra el cáncer. Los agonistas de péptido según la
presente invención se pueden también utilizar para facilitar la
propagación de linfocitos T, por ejemplo, para pacientes vacunados,
para estudios de transferencia adoptiva.
Un reto principal de la inmunoterapia de cáncer
moderna es la identificación de epítopos de linfocitos T citotóxicos
(CTL) de antígenos asociados al tumor (TAA) definidos que favorecen
la lisis de células tumorales. La mayoría de los antígenos en
cánceres humanos no son específicos del tumor y se sobreexpresan en
células malignas al contrario que las células de los tejidos
normales. Por consiguiente, la inmunidad al cáncer en seres humanos
puede quedar mayormente en el desarrollo de una respuesta
inmunitaria eficaz dirigida principalmente a las
auto-moléculas cualitativamente comunes a todos los
tipos de células.
El antígeno carcino-embrionario
humano (CEA) es una glucoproteína de 180 kD en la mayoría de los
tumores de colon, rectales, de estómago y pancreáticos (1), algunos
del 50% de los carcinomas de mama (2) y el 70% de los carcinomas de
pulmon (3). CEA se expresa también en el tejido del intestino fetal
y en menor extensión en el epitelio del colon normal. La
inmunogenicidad de CEA ha sido ambigua, describiendo varios estudios
la presencia de anticuerpos, anti-CEA en pacientes
(4-7), mientras que otros estudios no la han
descrito (8-10). CEA se describió en primer lugar
como un antígeno fetal específico del cáncer en el adenocarcinoma
del aparato digestivo humano en 1965 (Gold, P. y Freeman, S.O.
(1965) Exp. Med. 121; 439-462). Desde ese
momento, CEA se ha caracterizado como un antígeno superficial
celular producido en exceso en casi todos los tumores sólidos del
aparato gastrointestinal humano. Se ha clonado el gen para la
proteína del CEA humano. (Oikawa et al. (1987) Biochim.
Biophys. Res. 142:511.518; Publicación de patente europea nº EP
0346710).
Recientemente, se publicó la primera evidencia
de una respuesta de CTL humano a CEA (11; WO 36726271). Este
péptido CAP1 presentó el nivel mayor de unión a linfocitos T2 entre
los diversos péptidos de CEA probados con estimulación de los
linfocitos T resultantes de la generación de líneas de linfocitos T
citotóxicos. Se ha identificado un péptido nonámero, denominado
CAP1 (con la secuencia YLSGANLNL) (SEC. ID nº: 1), basándose en la
unión a HLA-A2 y en la capacidad para generar CTL
específicos de las células mononucleares de la sangre periférica
(PBMC) de los pacientes de carcinoma inmunizados con un virus de
vacuna recombinante que expresa CEA (rV-CEA). Por
ejemplo, los linfocitos de la sangre periférica (PBL) de 5 pacientes
presentaron síntomas de respuesta a linfocitos T al péptido CAP1
después de la inmunización con rV-CEA. Otros dos
laboratorios han generado in vitro ya CAP1 específico de CTL
empleando péptidos pulsados por células dendríticas como células
que presentan antígenos (APC) (12). Recientemente se ha publicado
(13) también que CTL específicos de CAP1 se pueden generar a partir
de PBMC de pacientes de carcinoma inmunizados con
ALVAC-CEA recombinante de viruela aviar. Varios
grupos han descrito también la generación de anticuerpos,
anti-CEA y respuestas a linfocitos T proliferantes
específicos de CEA después de la inmunización con un
anti-Id a un anticuerpo monoclonal (Mab)
anti-CEA (14), proteína CEA recombinante (15) o
rV-CEA (16).
Varios investigadores han introducido CTL en el
tumor asociado y antígenos virales por estimulación in vitro
de PBMC con un péptido inmunodominante. Recientes trabajos con el
antígeno de melanoma gp100 (17-19), un péptido de
polimerasa de VIH (20) y el antígeno E6 tumoral del virus del
papiloma (21) demostraron el aumento de inmunogenicidad después de
las modificaciones en las secuencias del péptido. En estos estudios,
las sustituciones fueron en posiciones ancladas y se intentó
aumentar la unión a antígenos murinos o de MHC humano. Este enfoque
estaba basado en una correlación demostrada entre la inmunogenicidad
y la afinidad de unión al péptido a las moléculas MHC de clase I
(complejo de histocompatibilidad principal) para los epítopos de
antígeno vírico (22).
Los investigadores anteriores han trabajado
también con fragmentos de CEA. Por lo tanto, Shively (1989), en una
publicación de patente europea (EP nº 0343946 A2) describe numerosos
fragmentos de CEA que incluyen un epítopo único (definido por su
reactividad con un anticuerpo). El último fragmento de CEA es de una
longitud de 177 restos de aminoácidos y contiene la secuencia
nonámera de CAP1. Sin embargo, no se describieron ninguno de los
fragmentos de CEA más cortos que incluyen la secuencia de CAP1.
En resumen, la utilización de
rV-CEA solo como agente para reforzar la respuesta
inmunitaria específica para CEA de los pacientes de
rV-CEA adolece del inconveniente de estimular una
respuesta inmunitaria al virus de la vacuna. Sin embargo, la nueva
combinación de rV-CEA y CAP1 sugirió utilizar un
"segundo protocolo de generación" para el tratamiento de
pacientes de cáncer.
\global\parskip0.920000\baselineskip
Es un principio aceptado que cuando un péptido
inmunógeno se modifica de forma conservadora (p. ej.: se sustituye
un aminoácido hidrófobo por un aminoácido hidrófobo) el péptido
modificado probablemente tenga actividad inmonógena similar basada
en el mantenimiento de la forma, carga y carácter hidrófobo de la
molécula.
De forma más específica, un estudio de Madden
(33) ha identificado preferencias de aminoácido específico en
péptidos para el acomplejamiento de MHC, una etapa precursora para
el reconocimiento de linfocitos T. Madden así como otros
investigadores (31) sugieren que las posiciones de los aminoácidos
específicos en los péptidos estén disponibles para el
reconocimiento de linfocitos T.
Skipper et al. (40) describe la
identificación y caracterización de un epítopo de un péptido natural
de tirosinasa, en el que la secuencia del péptido se diferencia de
la que se prevé a partir del ADN. Este péptido modificado es
reconocido por los linfocitos T citotóxicos humanos ("CTL")
específicos de tirosinasa de modo más eficaz que el producto de
traducción directa y es el único de los dos péptidos que está
presentado por moléculas HLA-A2.1 en la superficie
celular. La modificación es una sustitución de una asparagina con un
ácido aspártico. Los autores proponen que la asparagina esté
N-glucosilada en el retículo endoplásmico durante la
síntesis de la proteína y esté desamidada después de la
traducción.
En el caso de CAP1, los anclajes primario y
secundario en las posiciones 2, 9 y 1 están ya ocupados por
aminoácidos preferidos y por eso se consideró un enfoque diferente
para mejorar la inmunogenicidad del péptido intentando aumentar su
capacidad para unirse al TCR. Parece que los restos de aminoácido
modificadores que se espera que contacten con TCR podrían generar
un análogo de CAP1 con sustituciones en posiciones de anclaje
distintas de MHC. Dicho análogo debe representar a continuación un
agonista potenciador del linfocito T capaz de estimular a CTL de
forma más eficaz que el péptido natural. Los resultados anteriores
apoyaron el concepto de que algunos análogos de péptidos podrían
actuar como agonistas de linfocitos T inhibiendo las respuestas al
péptido antigénico (23-29). Dicha inhibición se
demostró que era específica de TCR y podría no estar explicada por
la competición por la unión del péptido a la proteína MHC. De forma
análoga, un agonista potenciador del péptido sería un análogo que
aumentaría la función efectora sin acompañar aumentos en la unión a
MHC. Se procuró por lo tanto aumentar la inmunogenicidad de CAP1
analizando paneles de análogos que contienen sustituciones de
aminoácidos únicas en los restos, se predijo que interactuarían con
el receptor de linfocitos T (TCR) de los CTL específicos de CAP1.
La presente invención se refiere a la construcción de un nuevo
agonista potenciador de linfocitos T para el péptido CAP1, siendo
dicho primer ejemplo para un epítopo de CTL humano.
La presente invención se refiere a la
identificación de péptidos que son cambios de aminoácido únicos o
dobles de la secuencia del péptido CAP-1. Se ha
identificado el péptido CAP-1 como un epítopo muy
inmunógeno del antígeno carcino-embrionario
(denominado en la presente memoria "CEA"), que es capaz de
estimular respuestas a linfocitos T citolíticos específicos de CEA
("CTL"). CEA es un antígeno de la superficie celular que se
encuentra en abundancia en varios tipos de células cancerosas. Por
lo tanto, los péptidos de CEA capaces de estimular una respuesta a
CTL citolíticos, tal como CAP-1 son inmunógenos
potenciales para su utilización en la inmunoterapia del cáncer.
Los péptidos de la presente invención son
agonistas de CAP-1 y CEA; esto es, facilitan la
interacción entre el complejo con MHC de la célula que presenta al
antígeno y el complejo del receptor de linfocito T ("TCR") de
los linfocitos T. Por lo tanto, estos péptidos pueden servir como
inmunógenos para tratar y/o vacunar pacientes con cánceres que
expresen a CEA. Además, estos péptidos se pueden utilizar para
estimular linfocitos T en cultivos para la transferencia adoptiva
de linfocitos C a pacientes de cáncer. Cuatro de dichos péptidos
tienen secuencias de aminoácido:
(1) YLSGADLNL (Agonista
CAP1-6D) (SEC. ID nº: 2)
(2) YLSGADINL (Agonista
CAP1-6D, 7I) (SEC. ID nº: 3)
(3) YLSGANINL (Agonista
CAP1-7I) (SEC. ID nº: 4); y
(4) YLSGACLNL (Agonista
CAP1-6C) (SEC. ID nº: 5)
Los aminoácidos subrayados identifican los
cambios de aminoácido de la secuencia del péptido
CAP-1. Los péptidos CAP1-6D y
CAP1-6D, 7I son péptidos preferidos especialmente
según la presente invención y presentan aumento de actividad en
comparación con la actividad de CAP-1. Los péptidos
CAP1-7I y CAP1-6C presentan
actividad similar a CAP-1.
La presente invención abarca kits que comprenden
un péptido agonista y un vector que comprende un gen que codifica
CEA o una proteína CEA producida de forma recombinante. Además, el
kit puede incluir una molécula inmunoestimulante.
Otro objetivo de la presente invención es una
composición farmacéutica que comprende uno o más péptidos agonistas
solos o en combinación con una molécula inmunoestimulante y un
excipiente farmacéuticamente aceptable.
Otro aspecto de la presente invención se refiere
a la utilización de estos péptidos en la inmunoterapia del cáncer.
Los péptidos agonistas son útiles para estimular una respuesta
inmunitaria citolítica a CEA, produciendo la reducción y/o
prevención del tumor. Por consiguiente, la presente invención se
refiere asimismo a un procedimiento para tratar pacientes con
cáncer con los péptidos así como con una vacuna contra el
cáncer.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Figura 1A-1D: Efecto de las
sustituciones de un solo aminoácido en el péptido CAP1 de CEA en la
lisis por CEA CTL T-Vac8. Se marcaron células
C1R-A2 con ^{111}In y se incubaron durante 1 hora
en pocillos de fondo redondo (2.000/pocillo) con cada péptido
sustituido en 1 (sólido). Se añadió 0,1 \mug/ml (blanco) y 0,01
(rayado) de CTL de T-Vac8 a razón de E:T=1,45:1 y se
midió el isótopo liberado después de 4 horas. Se determinó la
liberación espontánea para cada péptido a 1 \mug/ml. Todos los
análisis se realizaron por triplicado. Las Figuras
1A-1D representan sustituciones en las posiciones p5
a p8, respectivamente. Los aminoácidos se denominan por el código
de una sola letra; el aminoácido que codifica la secuencia de CAP1
natural está indicado en cada figura y a lo largo del margen
derecho.
Figura 2A y 2B: CAP1 y los análogos
presentan sensibilidad diferente a la citotoxicidad de CEA CTL
T-Vac8. Se marcaron las células diana T2 de la
Figura 2A y C1R-A2 de la Figura 2B con ^{51}Cr y
se incubaron en placas de 96 pocillos con fondo redondo
(10.000/pocillo) con CAP1 (\bullet) o péptidos
CAP1-6D (\Box) o CAP1-7I
(\lozenge) sustituidos en las concentraciones indicadas. Después
de 1 hora, se añadieron CTL de T-Vac8 a razón de
E:T=2,5:1 y se determinó la liberación de isótopos después de 4
horas. Todos los análisis se hicieron por triplicado. NCA571
(\Delta) es un péptido nonámero obtenido después de la alineación
óptima de CEA con el gen NCA (11) relacionado.
Figura 3A y 3B: Efecto de las sustituciones
de un solo aminoácido en el péptido CAP1 en la unión a y en la
estabilidad de complejos de HLA-A2. Se
recogieron linfocitos T2 en medio exento de suero, a continuación se
incubaron (10^{6} por pocillo) con péptidos CAP1 (\bullet),
CAP1-6D (\Box) o CAP1-7I
(\lozenge) a las concentraciones indicadas (Figura 3A). Se
recogieron las célulae y se determinó la expresión de la superficie
celular de las moléculas HLA-A2 por coloración con
BB7.2 de MAb con conformación sensible, anticuerpo WG/32 específico
de HLA de anticuerpo específico a HLA (no mostrado) y
MOPC-195 de Ab de referencia del isótopo (no
mostrado). Se determinó la intensidad fluorescente media en una
población viva, activada de células.
Figura 3B: Se incubaron células con péptido a
razón de 100 \mug/ml toda la noche, se lavaron a continuación sin
péptido no unido y se incubaron a 37ºC. A los tiempos indicados se
colorearon las células para la presencia de complejos
péptido-HLA-A2 de la superficie
célular. Las barras de error indican SEM para dos experimentos.
Figura 4A y 4B: CTL generado a partir de
individuos aparentemente sanos con péptido CAP1-6D
que reconoce CAP1 y CAP1-6D. Se generaron
líneas de CTL (denominadas T-N1 y
T-N2) con CAP1-6D y se analizó la
especificidad del péptido. Se analizó T-N1 después
de 5 ciclos de estimulación en una proporción de efector a diana de
20:1 (Figura 4A). Se analizó T-N2 después de 10
ciclos en una proporción de efector a diana de 15:1 (Figura 4B). Se
incubaron dianas de C1R-A2 marcadas con ^{51}Cr
con la cantidad indicada de péptido CAP1 (\bullet) o
CAP1-6D (\Box). Después de 4 horas se determinó
la cantidad de liberación de isótopo con un contador gamma. Se
determinaron los valores de los cultivos por triplicado.
Figura 5A y 5B: CAP1-6D,
pero no CAP1 generados con líneas de linfocitos T de donantes
aparentemente sanos reconocen células tumorales que expresan CEA
endógeno. CAP1-6D generadas con CTL de
T-N2 (Figura 5A) y linfocitos T generados con CAP1
natural (Figura 5B) se analizaron después de 9 ciclos de
estimulación in vitro frente a dianas tumorales SW480 y
SW1463 (CEA^{+}, HLA-A2^{+}, \bullet y
\ding{115} respectivamente), Skmel24 (CEA^{-}, -A2^{+},
\Box) y K562 (\lozenge). Se cultivaron células tumorales durante
72 horas en presencia de \gamma-IFN para regular
HLA. Las células se trataron con tripsina y se marcaron con
^{51}Cr y se incubaron (5.000 células/pocillo) con CTL de
T-N2 en proporciones cada vez mayores de efector a
diana. Se incubaron los cultivos durante 4 horas y se determinó la
liberación de la cantidad de isótopo en un contador \gamma. Se
determinaron los valores de los cultivos por triplicado.
Figura 6: Restricción de A2.1 de MHC de
clase I de la línea CTL (T-N2) procedente del
agonista CAP1-6D. Se utilizó
T-N2 de la línea CTL como efector para la célula
diana SW837 del carcinoma de colon humano. SW837 es positivo para
CEA y negativo para HLA-A2.1. Se infectaron SW837 a
una MOI de 10:1 con una vacuna recombinante que contiene el
transgén de A2.1 (\sqbullet) o vacuna natural (\Delta).
Figura 7A y 7B: CTl generados con
CAP1-6D lisan CEA positivos, tumores positivos a
HLA-A2: Efecto de la regulación por aumento de
IFN. Se analizaron los CTL de T-N1 generados
con CAP1-6D frente a varias líneas celulares
tumorales: SW480 (CEA^{+} y HLA-A2^{+}
\bullet), SW1116 (CEA^{+} menos -A2^{-}, \Box) y CaOV3
(CEA^{-} menos -A2^{+}, \lozenge). Se cultivaron células
tumorales 72 horas en ausencia (Figura 7A) o presencia (Figura 7B)
de \gamma-IFN, tratada con tripsina y se marcaron
con ^{51}Cr, se incubaron (5.000 células/pocillo) a continuación
con CTL de T-N1 a proporciones cada vez mayores de
efector a diana. Se incubaron los cultivos durante 4 horas y se
determinó la cantidad de liberación de isótopo en un contador gamma.
Se determinaron los valores de los cultivos por triplicado.
La invención consiste en un agonista del péptido
del epítopo CEA natural, CAP-1 (SEC. ID nº: 1). El
agonista está caracterizado por su capacidad para producir
linfocitos T citotóxicos específicos del antígeno que inhiben el
crecimiento o destruyen las células de carcinomas que expresan los
CEA o los epítopos de CEA.
\global\parskip0.950000\baselineskip
Los agonistas de péptido de la presente
invención comprenden aproximadamente de 8 a 10 aminoácidos,
preferentemente de 9 a 10 aminoácidos. En una forma de realización,
el agonista comprende una secuencia con una sustitución en la
posición 6 comparada con el CAP-1 natural (SEC. ID.
nº: 1). En otra forma de realización el agonista comprende una
secuencia con una sustitución de aminoácido en la posición 7
comparada con el CAP-1 natural (SEC. ID. nº: 1).
Todavía en otra forma de realización, el agonista comprende una
secuencia con una sustitución de aminoácido en la posición 6 y en
la posición 7 comparada con el CAP-1 natural. El
aminoácido sustituido resulta útil para mejorar la interacción del
complejo de TCR en los linfocitos T citotóxicos con el complejo
ligando antígeno MHC-péptido. Dichas interacciones
mejoradas resultan en una función efectora superior por los
linfocitos T citotóxicos.
Un ejemplo de una sustitución comprende Asp y
Cys en la posición 6 o Ile en la posición 7.
En una forma de realización, el agonista de
péptido comprende la secuencia de aminoácido siguiente:
El péptido agonista de la presente invención se
puede obtener por tecnología de ADN recombinante o por síntesis
química del péptido.
El péptido agonista se puede formular en una
composición farmacéutica en combinación con un excipiente
farmacéuticamente aceptable para su utilización como inmunógeno en
un mamífero, preferentemente un ser humano. La composición puede
comprender además uno o más de otros constituyentes para aumentar la
respuesta inmunitaria que incluye, pero no se limita a moléculas
inmunoestimulantes, tales como interleucina 2, interleucina 6,
interleucina 12, interferón gamma, factor alfa de la necrosis
tumoral, GM-CSF, B7.1, B7.2, ICAM-1,
LFA-3, CD72 y ciclofosfamida.
El péptido agonista se administra a un mamífero
en una cantidad eficaz para generar una respuesta inmunitaria
específica de CEA, preferentemente una respuesta inmunitaria
celular. La eficacia del péptido ras mutante como inmunógeno
se puede determinar mediante parámetros in vivo o in vitro
como es sabido en esta técnica. Estos parámetros incluyen, pero no
se limitan a ensayos de citotoxicidad específica, regresión de
tumores que expresan CEA o epítopos de CEA, inhibición de células
cancerosas que expresan CEA o epítopos de CEA, producción de
citocinas y similares.
Al menos uno o más péptidos agonistas se pueden
administrar en una dosis de aproximadamente 0,05 mg a
aproximadamente 10 mg por vacunación del mamífero, preferentemente
aproximadamente 0,1 mg a aproximadamente 5 mg por vacunación. Se
pueden proporcionar varias dosis durante un periodo de semanas tal
como se indica. En una forma de realización se proporciona una
dosis cada mes durante 3 meses. El péptido agonista se puede
administrar solo o en combinación con adyuvantes, incorporados en
liposomas (patentes U.S. nº 5.643.999; nº 5.464.630; nº 5.059.421;
nº 4.885.172), con citocinas, modificadores de respuesta biológica
u otros reactivos en la técnica que se conocen porque aumentan la
respuesta inmunitaria. Los adyuvantes incluyen, pero no se limitan a
Detox^{TM} de RIBI, QS21, alumbre y adyuvante incompleto de
Freund. En una forma de realización, el péptido agonista se
administra en combinación con Detox^{TM} (RIBI Immunochem
Research, Hamilton, MT). Detox^{TM} de RIBI contiene como
ingredientes activos el esqueleto de la pared celular de
Mycobacterium phlei y el monofosforil lípido A de
Salmonella minnesota R595 preparado como una emulsión de
aceite en agua con escualeno y Tween 80.
Los péptidos agonista se pueden también conjugar
con péptidos cooperadores o con moléculas portadoras grandes para
aumentar la inmunogenicidad del péptido. Estas moléculas incluyen,
pero no se limitan al péptido de la gripe, a la vacuna del tétanos,
al epítopo CD4 de la vacuna del tétanos, a la exotoxina A de
Pseudomonas, poli-L-lisina,
una cola de lípido, la secuencia con señal del retículo endoplásmico
(ER) y similares.
Los péptidos de la presente invención se pueden
también conjugar con una molécula de inmunoglobina utilizando los
procedimientos aceptados en la técnica. La molécula de inmunoglobina
puede ser específica para un receptor superficial presente en las
células tumorales, pero ausente o en cantidades muy bajas en las
células normales. La inmunoglobina puede ser también específica de
un tejido específico. Dicho conjugado
péptido-inmunoglobina permite el direccionamiento
del péptido a un tejido y/o célula específico.
Otra forma eficaz de péptido agonista para
generar una respuesta inmunitaria específica del péptido en un
mamífero es una célula que presenta el antígeno pulsado por el
péptido agonista. Las células que presentan el antígeno incluyen,
pero no se limitan a células dendríticas, linfocitos B, monocitos,
macrófagos y similares. En una forma de realización preferida, la
célula que presenta el agonista pulsado por el péptido agonista es
una célula dendrítica.
Los CEA y los linfocitos T citotóxicos
específicos del péptido agonista pueden ser generados in vivo
o in vitro por estimulación de linfocitos de una fuente con
una cantidad eficaz de un agonista solo o en combinación con la
molécula inmunoestimulante y/o adyuvante o en una formulación de
liposomas. Las fuentes de linfocitos incluyen, pero no se limitan a
la sangre periférica, tejidos tumorales, ganglios linfáticos y
derrames, tales como de fluido pleural o fluido ascítico y
similares.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Los CEA y los linfocitos T citotóxicos
específicos del péptido agonista son inmunorreactivos con agonista
o péptido de CEA. Los linfocitos T citotóxicos inhiben la aparición
de células tumorales y de cáncer e inhiben el desarrollo o
destruyen las células tumorales que expresan CEA o los epítopos de
las mismas o las células tumorales que expresan agonistas. Los
linfocitos T citotóxicos, además de ser específicos para el
antígeno, son MHC de clase I restringidos. En una forma de
realización los linfocitos T citotóxicos son HLA-A2
de MHC de clase I restringidos. Los linfocitos T citotóxicos
presentan un fenotipo CD8^{+}.
Los pacientes seleccionados con células de
carcinoma que expresan CEA o epítopos de CEA son vacunados por vía
subcutánea hasta tres veces a intervalos mensuales con adyuvante
DETOX^{TM} mezclado con el agonista del péptido apropiado, pueden
ser también pacientes de carcinoma vacunados con células
mononucleares de sangre periférica autólogas pulsadas previamente
ex vivo con un agonista del péptido solo o en combinación con
un agonista del péptido. Las respuestas de los linfocitos T
anti-CEA se evalúan por medición por ensayos de
proliferación.
La vacunación con péptidos agonistas de CEA de
la presente invención provoca respuestas inmunitarias celulares
anti-CEA muy específicas y generalizadas. Además, el
desarrollo de dichos péptidos agonistas restringidos de MHC de
clase I tiene importantes implicaciones para ambas inmunoterapias
activa (es decir, vacunación) y pasiva (es decir, propagación ex
vivo para la transferencia celular adoptiva), que se pueden
utilizar para la producción y propagación de respuestas de CTL con
CD8^{+} específicas en los pacientes con cáncer.
Los pacientes con tumores sólidos que expresan
CEA o sus epítopos, incluyendo pero sin limitarse al cáncer de
colon, cáncer de pulmón, cáncer de páncreas, cáncer de endometrio,
cáncer de mama, cáncer de tiroides, melanoma, cáncer oral, cáncer
de laringe, seminoma, cáncer hepatocelular, cáncer de las vías
biliares, leucemia mieloblástica aguda, carcinoma basocelular,
carcinoma escamoso, cáncer de próstata y similares se benefician de
la inmunización con los péptidos agonistas. Los pacientes
susceptibles al tratamiento que utilizan los péptido agonistas de
la presente invención son aquellos pacientes que tienen tumores con
CEA o epítopos de CEA.
Los péptidos se pueden sintetizar químicamente
en condiciones GMP y purificar por HPLC hasta una pureza >95% y
liofilizar. Las composiciones farmacéuticas se formulan
redisolviendo el péptido con un excipiente farmacéuticamente
aceptable, tal como cloruro sódico. En un ejemplo, cada mililitro de
solución contiene 150 \mug de un péptido agonista más 9,0 mg de
cloruro sódico.
Cuando el péptido agonista se administra con un
adyuvante es deseable mezclar el péptido con el adyuvante momentos
antes de la administración al paciente.
El péptido agonista se puede administrar a un
paciente por varias vías incluyendo pero sin limitarse a subcutánea,
intramuscular, intradérmica, intraperitoneal, intravenosa o
similares. En una forma de realización el péptido agonista se
administra por vía subcutánea. El péptido se puede administrar en
una o más zonas al paciente. En una forma de realización, el
péptido, solo o en combinación con un adyuvante, se administra en
tres zonas por vía subcutánea, sobre el deltoides, los fémures y el
abdomen.
En otro procedimiento para generar una respuesta
inmunitaria, las células que presentan el antígeno pulsado por el
péptido agonista son administradas al paciente en una cantidad
eficaz para generar una respuesta inmunitaria específica del
antígeno. Las células que presentan el antígeno incluyen pero no se
limitan a las células dendríticas, linfocitos B, monocitos,
macrófagos y similares. En una forma de realización, las células
dendríticas se aislan de un paciente por los procedimientos
descritos en Romani, N. et al. (1994). Las células
dendríticas se cultivan in vitro con un péptido agonista
durante un período de aproximadamente 0,5 a aproximadamente 3 horas
y se lavan para eliminar el péptido no ligado. Las células
dendríticas pulsadas por el péptido agonista se vuelven a
transferir al paciente a una concentración de aproximadamente
10^{6} a aproximadamente 10^{9} células dendríticas. Dicha
concentración es eficaz para generar una respuesta inmunitaria en el
paciente que incluye la generación de linfocitos T citotóxicos
específicos del péptido agonista que son capaces de inhibir el
crecimiento o destruir las células tumorales.
Los criterios para determinar una respuesta
antitumoral en el paciente inmunizado son los siguientes:
1. Remisión completa (CR): Desaparición completa
de todos los indicios de tumor y retorno de las pruebas anormales a
los niveles normales durante un mínimo de 4
semanas.
2. Respuesta parcial (PR): Disminución de al
menos el 50% de la suma de los productos de los diámetros
perpendiculares de todas las lesiones medidas en ausencia de avance
de cualquier lesión o de la aparición de cualquier lesión nueva
durante al menos 4 semanas.
3. Enfermedad estable (SD): Cambio mensurable en
la enfermedad demasiado pequeño para reunir los requisitos de la
respuesta o el avance parcial y la aparición de ninguna nueva lesión
durante un periodo de al menos 12 semanas. Puede ser que no
empeoren los síntomas.
4. Enfermedad evolutiva (PD) o recaída: Para
considerar la enfermedad evolutiva se deben reunir alguno de los
siguientes criterios:
- Desarrollo de algún área nueva de enfermedad maligna (mensurable o palpable),
- Enfermedad (>25%) en cualquier área de pretratamiento de la enfermedad maligna mensurable.
La respuesta inmunológica a la inmunización con
los péptidos agonistas se evalúa por el ensayo de proliferación de
linfocitos T in vitro y/o mediante el ensayo de linfocitos T
citotóxicos in vitro antes y después de la vacunación.
La presente invención permite la inmunización
in vitro para la proliferación de linfocitos T y la
generación de líneas de linfocitos T citotóxicos para el péptido
agonista específico del tumor. El cultivo in vitro de los
linfocitos T específicos para el péptido procedentes de células
mononucleares de sangre periférica (PBMC), tejido de ganglio
linfático (LNT), o linfocitos infiltradores del tumor (TIL) con
péptido agonista e lL-2 genera CEA y linfocitos T
específicos del péptido agonista. Se determina la citotoxicidad de
estos linfocitos T frente a APC (linfocitos B transformados por EBV
autólogos o células tumorales autólogas) cebados con péptido
agonista como se ha descrito en la presente memoria. Los clones de
linfocitos T generados se caracterizan fenotípicamente por
citometría de flujo para expresar CD3, CD4 y CD8. Los linfocitos
citotóxicos específicos del péptido agonista se pueden transferir
de manera adoptiva a un paciente para inhibir o destruir CEA o los
epítopos de CEA que expresan células tumorales. Los pacientes pueden
ser reinmunizados a continuación con péptido agonista
preferentemente en adyuvante.
En general, entre aproximadamente 1 x 10^{5} y
2 x 10^{11} linfocitos T citotóxicos por infusión se administran,
por ejemplo, en una a tres infusiones de aproximadamente 200 a
aproximadamente 250 ml cada una durante un periodo de 30 a 60
minutos. Después de terminar las infusiones, el paciente puede ser
tratado con un modificador de respuesta biológica tal como
interleucina 2 (IL-2). En el caso de
IL-2, se administra por via intravenosa
IL-2 recombinante a una dosis de 720.000 IU por
kilogramo de peso corporal cada ocho horas. Después de la
transferencia adoptiva de los linfocitos T citotóxicos específicos
del antígeno a un paciente, el paciente puede ser tratado además
con el péptido agonista utilizado para cebar los linfocitos T
citotóxicos, para propagar además el número de linfocitos T in
vivo.
Un péptido agonista puede ser codificado
mediante una secuencia de ADN y sus variantes.
En una forma de realización la secuencia de ADN
que codifica el péptido agonista es una variante de la secuencia de
ADN que comprende:
Una variante de la SEC. ID nº: 6 incluye, pero
no está limitada a un codón ATC (Ile) en lugar del codón CTC (Leu
en la posición 7). Otra variante de la SEC. ID nº: 6 incluye pero no
se limita a un codón TGT (Cys) en lugar del codón ACC (Asn en la
posición 6).
En otra forma de realización, la secuencia de
ADN que codifica el péptido agonista comprende:
\hskip0.2cm4
y variantes de las
mismas.
En otra forma de realización todavía, la
secuencia de ADN que codifica el péptido agonista comprende:
o variantes de las
mismas.
Están incluidas las sustituciones conservadoras
basadas en la degeneración del codón siempre que la modificación
produzca un péptido agonista funcionalmente equivalente o un péptido
con inmunogenicidad aumentada.
Los vectores y plásmidos que comprenden una
secuencia de ADN que codifica un péptido agonista incluyen, pero no
se limitan al plásmido de E.coli, a un vector de
Listeria y a un vector vírico recombinante. Los vectores
víricos recombinantes incluyen, pero no se limitan al virus de la
viruela, virus de la viruela aviar, al virus de la viruela caprina,
al virus de la viruela porcina, vacunas, baculovirus, adenovirus
humano, SV40, virus del papiloma bovino y similares que comprenden
la secuencia de ADN que codifica un péptido antagonista.
El péptido agonista recombinante se puede
obtener utilizando un sistema de expresión de baculovirus según el
procedimiento de Bei et al. J. Clin. Lab. Anal.
9:261-268 (1995). Los vectores víricos recombinantes
se pueden reconstruir por procedimientos conocidos en la técnica
tales como la patente U.S. nº 5.093.258; el documento WO 96/10419;
Cepko et al. Cell 37:1053-1062 (1984); Morin
et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA
84:4626-4630 (1987); Lowe et al. Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 84:3896-3900 (1987); Panicali
& Paoletti, Proc. Natl. Acad. Sci. USA
79:4927-4931 (1982); Mackett et al., Proc. Natl.
Acad. Sci USA 79:7415-7419 (1982); documento WO
91/19803; Perkus et al. Science 229:981-984
(1985); Kaufman et al. Int. J. Cancer
48:900-907 (1991); Moss Science 252:1662
(1991); Smith y Moss BioTechniques Nov/Dic, pág.
306-312 (1984); Patente U.S. nº 4.738.846; Sutter y
Moss Proc. Natl. Acad. Sci. USA
89:10847-10851 (1992); Sutter et al.
Virology (1994); y Baxby y Paoletti Vaccine
10:8-9 (1992).
Las células huésped que pueden expresar el ADN
que codifica el péptido agonista realizado por vectores o plásmidos
son células huésped procarióticas o eucarióticas e incluyen pero no
se limitan a E. coli, Listeria, Bacillus
species,células COS, células de Vero, embriones de pollo,
fibroblastos, células tumorales, células que presentan antígeno y
similares. Cuando la célula huésped es una célula que presenta
antígeno, la célula huésped debería expresar además una molécula
MHC de clase I.
Se describió recientemente (11) la prueba de
respuestas de CTL a CEA en pacientes inmunizados con
rV-CEA. Se empleó el péptido nonámero CAP1 para
propagar CTL in vitro debido a: (a) su fuerte unión a
HLA-A2, y (b) su falta de identidad con otros
miembros de la familia del gen de CEA expresada en tejidos normales.
Se generaron CTL a partir de PBMC después de la inmunización de
pacientes mientras que no pudo proliferar la sangre de
preinmunización de los mismos pacientes. Además, las células
dendríticas pulsadas por CAP1 estimularon el desarrollo in
vitro de CTL restringidos por -A2 de la sangre periférica de
pacientes con cáncer inmunizados (12). Por último cuando se
generaron CTL in vitro por estimulación con células
dendríticas que codifican el ARNm de CEA completo, la citotoxicidad
frente a CAP1 fue mayor que la actividad frente a otros 6 péptidos
de CEA que se unen a -A2 (S. Nair y E. Gilboa, comunicación personal
u observación no publicada). Dichos resultados animan la idea de
que CAP1 es un epítopo inmunodominante de la molécula de CEA.
La presente invención está destinada a mejorar
la inmunogenicidad del péptido CAP1 introduciendo sustituciones de
aminoácidos en posiciones no ancladas para formar los péptidos
agonistas de la presente invención. Cuando se utilizó CTL de
T-Vac8 como efector, el análogo
CAP1-6D sensibilizó las células diana para la lisis
mucho mejor que el propio CAP1. Estudios adicionales demostraron
que la actividad citolítica de un segundo -A2 restringido, CTL
específico de CAP1, T-Vac24, fue tan bueno o mayor
con CAP1-6D que con CAP1. Estas demostraciones de
aumento de reactividad no se podrían explicar por la presentación
mejorada por MHC de clase I. Por último, se pudo utilizar
CAP1-6D para estimular CTL in vitro a partir
de PBMC tanto de pacientes de carcinoma como de donantes normales.
Antes de la presente invención, los intentos para estimular CTL de
anti-CAP1 de donantes normales utilizando esta
misma metodología no tuvieron éxito. La presente invención se
refiere a la estimulación de donantes normales con
CAP1-6D en oposición a CAP1 natural cuando la
estimulación con la secuencia nativa no puede producir actividad
citotóxica específica. En cambio, la estimulación con
CAP1-6D produjo varios CTL con reactividad del
péptido anti-CAP1 específico asi como reactividad
anti-tumoral. Por lo tanto, el péptido
CAP1-6D análogo es capaz de seleccionar una
población de CTL humana específica de CAP1 con más eficacia que
CAP1 natural. Dicho antagonista puede hallar aplicaciones en el
diseño de vacunas dirigidas a linfocitos T contra el carcinoma que
expresa CEA.
La presente invención también se refiere a la
generación más eficaz y a la propagación de linfocitos T específicos
del tumor para inmunoterapia adoptiva. En los últimos años, se ha
conseguido muchos avances en la caracterización del tumor asociado
a péptidos antígenos que pueden ser presentados a CTL por antígenos
HLA de clase I. En los casos en que las mutaciones generen
neoantígenos, tal como el punto mutado ras (35, 36), p53, (37, 38)
o \beta-catenina (39), nunca se ha observado que
las estrategias de vacunación dirijan la nueva secuencia bajo la
suposición de que el sistema inmunitario no es "tolerante" para
un antígeno. Más recientemente se ha propuesto que los
neo-antígenos pueden también aparecer mediante
desamidaciones después de la traducción (29, 40). Sin embargo, en
muchos casos las dianas deseadas de la terapia tumoral no son
neoantígenos sino más bien antígenos oncofetales normales o de
diferenciación que las células malignas sobreexpresan o expresan de
forma extrasistólica. Tal es el caso de CEA (41). En dichas
situaciones, los modelos que recurren a la "tolerancia"
predicen que el sistema inmunitario ha encontrado estos antígenos y
es menos capaz de responder a ellos. Este cuadro clásico ha sido
puesto en duda en los últimos años por numeros informes de inmunidad
producidos para antígenos de diferenciación sobreexpresados,
oncogenes y genes supresores del tumor (37, 38,
42-44). No obstante, con frecuencia es difícil
generar experimentalmente y propagar linfocitos T con la actividad
antitumoral deseada y es deseable, por lo tanto, idear nuevas
estrategias para generar CTL.
Se han descrito algunos péptidos de unión de
clase II en los que las sustituciones aumentan las respuestas de
los clones Th murinos y humanos sin aumentar la unión a los
antígenos de clase II (29, 45-47). Entre los
péptidos de clase I humanos, sin embargo, las únicas sustituciones
descritas para la generación de CTL fueron aquellas que aumentan la
unión a HLA (17-20). Las sustituciones en esos
estudios se dirigieron a restos en las posiciones de anclaje
primarias o secundarias que definen los motivos de unión a los
antígenos MHC de clase I. Incluso las sustituciones dirigidas a una
posición sin anclaje (19) consiguieron su efecto de potenciación
aumentando la unión a HLA-A2. El análogo
CAP1-6D en el presente informe representa que parece
ser una clase diferente de péptidos de CTL sustituidos, agonistas
que aumentan el reconocimiento del ligando
péptido-MHC por el receptor del linfocito T y
producen mayor función efectora sin aumentos de unión. A nuestro
jicio este es el dicho primer péptido agonista potenciador descrito
para un CTL humano.
La susceptibilidad lítica aumentada de las
dianas en presencia de CAP1-6D es poco probable que
se deba a la presentación del antígeno mejor. Los experimentos de
unión demuestran que HLA-A2 presenta el CAP1 natural
y los análogos CAP1-6D y CAP1-71
aproximadamente de igual modo. Otra posibilidad es que
CAP1-6D presente actividad aumentada porque se
presenta por más de un alelo y T-Vac8 es promiscuo
hacia los complejos péptido-MHC. Sin embargo,
T-Vac8, T-Vac24 CTL procedentes de
pacientes no inmunizados mostraron mejor lisis con
CAP1-6D. Como HLA-A2 es el único
MHC de clase I en las dianas empleadas, la lisis mejorada no puede
ser tenida en cuenta para la regeneración de otra MHC de clase
I.
Como los CTL anti-CAP1
procedentes de múltiples donantes demuestran una actividad cruzada
del agonista es posible que CAP1-6D se pueda
utilizar para estimular el crecimiento de CTL de numerosos -A2
individuales. Estamos animados por las diferencias completamente
distintas entre T-Vac8 y T-Vac24 en
magnitud de respuesta al agonista; esto implica que cada efector
utiliza diferentes segmentos de gen TCR y que no obstante pueden
reconocer tanto la secuencia natural como la sustitución de
CAP1-6D. La capacidad de CAP1-6D
para actuar como agonista con los linfocitos T que expresan
diferentes receptores de linfocitos T significa claramente su
potencial terapéutico. Por lo tanto, la presente invención también
se refiere a la estimulación con el agonista y generación posterior
de linfocitos T que reconocen la secuencia normal en individuos no
inmunizados. Dichos individuos no han encontrado nunca
supuestamente la secuencia modificada y como el agonista es más
eficaz para desencadenar una respuesta en los linfocitos T, dichos
agonistas pueden ser capaces de seleccionar más fácilmente CTL que
los inmunógenos basados en la secuencia natural.
Para que los CTL derivados de péptidos sean
reactivos terapéuticos útiles es esencial demostrar que pueden
lisar las células tumorales que expresan el antígeno endógeno (48,
49). Anteriormente (11) se ha demostrado que las células tumorales
procesan CEA y antígenos presentes reconocidos por los CTL generados
por estimulación con CAP1. Según la presente invención, los CTL
desarrollados en donantes normales por estimulación con
CAP1-6D son también capaces de reconocer CEA
alógenos positivos, células tumorales positivas a
HLA-A2. Estos linfocitos T no pueden reconocer
células tumorales negativas -A2 o células positivas -A2 que carecen
de expresión de CEA.
Se ha demostrado también que CTL seleccionados
con el agonista CAP1-6D se puede mantener
posteriormente por estimulación con la secuencia de CAP1 natural.
Este es un descubrimiento importante ya que CTL en pacientes, bien
establecido in vivo mediante inmunización activa o
transferido de forma adoptiva después de propagación ex
vivo, probablemente sólo encontrará la secuencia natural. Esto
permite que los CTL se mantengan durante una duración prolongada
in vivo.
Una de las razones originales para seleccionar y
probar CAP1 fue su falta de identidad con otras secuencias
descritas en el genoma humano. Se predijo por lo tanto que
cualquiera de las respuestas inmunitarias alcanzadas sería
improbablemente para dañar tejidos normales que llevan otros
antígenos. Por esta razón se emprendió una búsqueda similar de
bases de datos de proteínas para los péptidos
CAP1-6D y CAP1-7I y se dio a conocer
que no están descritos como secuencias humanas en ninguna parte en
el banco de genes (Genetics Computer Group, Madison, WI). Sin
embargo, dos secuencias similares, YLNVQDLNL (SEC. ID nº: 9) e
YLHDPEFNL (SEC. ID nº: 10), se describen para los antígenos del
virus de la fiebre porcina africana y del virus del sarampión,
respectivamente. Estas secuencias establecen el motivo del consenso
para HLA-A2 y por lo tanto permiten a los individuos
infectados expresar antígenos que intereaccionan con CAP1. Una
posibilidad interesante es que la presencia de CTL con
anti-CAP1 en algunos pacientes representa un ejemplo
de mimetismo del epítopo (50).
Dos recientes publicaciones sugieren que los
restos de asparagina modificada pueden aumentar la inmunogenicidad
de los péptidos de MHC de clase I. Skipper et al. (40)
utilizó CTL generados en cultivos de células tumorales de
linfocitos mezclados para identificar antígenos en extractos de
células de melanoma. Un péptido antigénico fue idéntico en 8 de las
9 posiciones en una secuencia de tirosinasa, con una sustitución de
asparagina a ácido aspártico en la posición 3. Cuando se probaron
utilizando péptidos sintéticos, los CTL fueron más activos frente
al péptido del ácido aspártico que frente al péptido que contiene la
asparagina predicha genéticamente. Estos autores piensan que las
desamidaciones después de la traducción pueden generar péptidos
antigénicos en antígenos con diferenciación normal. Hace poco, Chen
et al. (51) describieron la generación de CTL murinos en un
derivado de succinimida establecido de un péptido antigénico que
contiene asparagina. Aunque estos CTL podrían destruir dianas
pulsadas con el péptido de asparagina natural, lo hacen también con
menos sensibilidad. Aumentan la posibilidad de que la desamidación
de las proteínas in vivo e in vitro pueda producir
intermedios transitorios de succinimida que representan autoligandos
alterados capaces de producir una respuesta inmunitaria. En el otro
extremo, Kersh y Allen (52) sustituyeron una asparagina con contacto
en TCR por ácido aspártico en un péptido de hemoglobina y
eliminaron la sensibilidad a un clon Th murino. Actualmente no se
puede excluir la posibilidad de que el aumento de reactividad de
CAP1-6D sea debido a la desamidación de la
secuencia natural que a su vez ceba la respuesta que se detecta con
CAP1. Sin embargo, nuestra incapacidad repetida para aumentar los
CTL anti-CAP1 de PBMC preinmunizados de los mismos
pacientes en los que se generó CTL después de la inmunización,
alega razones contra de esto. Además, las supuestas desamidaciones
no tendrían en cuenta el reconocimiento de otros análogos tales como
CAP1-6C o CAP1-7I por CTL de
T-Vac8. En lugar de ello parece más razonable que
los receptores de linfocitos T tanto de T-Vac8 y
T-Vac24, así como las nuevas líneas descritas en la
presente memoria, pueden reconocer alguna desviación de la secuencia
de CAP1
natural.
natural.
En resumen, la síntesis de análogos de un
péptido de CEA inmunodominante con sustituciones de aminoácidos en
las situaciones previstas para interactuar potencialmente con el
receptor de linfocitos T permitió identificar un agonista
potenciador. Este agonista fue reconocido por dos CTL de CEA
diferentes y aumenta la actividad de uno de ellos en 2 a 3 órdenes
de magnitud. El agonista fue también capaz de estimular el
crecimiento de CTL en la sangre periférica de donantes no
inmunizados normales con mucha más facilidad que la secuencia de
péptido natural. Más importante, el CTL generado utilizando el
agonista potenciador fue capaz de reconocer y lisar dianas que
presentan la secuencia natural, incluyendo líneas celulares
tumorales que expresan el CEA endógeno. Según la presente
invención, la caracterización de este péptido agonista potenciador
facilita más inmunoterapias antitumorales agresivas cuando se
emplea como inmunógeno in vivo o para la propagación ex
vivo de CTL autólogos antitumorales. El enfoque sintético
empleado según la presente invención es también útil para mejorar
la inmunogenicidad de otro péptido de epítopos de CTL.
Se preparó un panel de sustituciones de un solo
aminoácido en las posiciones p5 a p8 del péptido CAP1 de CEA por
química f-moc utilizando una tecnología punta
(Chiron Mimotopes, Victoria, Australia). CAP1 (YLSGANLNL) Y
CAP1-6D (YLSGADLNL), más del 96% puro, se preparó
también mediante Multiple Peptide Systems (San Diego, CA). Se
sintetizaron otros péptidos CAP1-7I y NCA571 en un
sintetizador 432A de Applied Biosystems y tenían más del 90% de
pureza por HPLC en fase inversa de C18.
T-Vac8 (53) y
T-Vac24 (11) son CTL humanos específicos para el
péptido CAP1 de CEA. Estas líneas celulares se generaron por
estimulación in vitro de PBMC utilizando CAP1 e
IL-2, según los procedimientos publicados
anteriormente (11). En resumen, las PBMC después de la inmunización
procedían de individuos HLA-A2+ con carcinoma
avanzado a los que se había administrado rV-CEA en
una prueba en fase I. PBMC se aislaron en ingredientes de medio de
separación de linfocitos (Organon Teknika, Durham, NC) y se
colocaron 2 x 10^{5} células en pocillos de placas de cultivo
estériles de 96 pocillos (Coming Costar, Cambrigge, MA) junto con 50
\mug/ml de péptido. Después de 5 días de incubación a 37ºC en una
atmósfera humidificada que contenía CO_{2} al 5%, se eliminaron
los sobrenadantes y se sustituyeron por medio conteniendo 10 U/ml de
IL-2 humano (donación del Surgery Branch, NCI). Los
cultivos se alimentaron con IL-2 cada 3 días durante
11 días y a continuación se volvieron a estimular con PBMC
(5x10^{5}) autólogas irradiadas (4000 rad) y péptidos. Se
proporcionó IL-2 reciente cada tres días y se
realizaron reestimulaciones posteriores cada 2 semanas. Los CTL se
mantuvieron en medio de RPMI completo (GIBCO/BRL, Grand Island, NY)
con glutamina (GIBCO/BRL), penicilina, estreptomicina y suero AB
humano mezclados al 10% (Gemini Bioproducts, Inc., Calabasas,
CA).
La línea celular C1R-A2
(proporcionada por el Dr. W. Biddison, National Institute of
Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health,
Bethesda, MD) se mantiene en RPMI completo con suero de bovino
fetal al 10% (FBS, Biofluids Inc., Rockville, MD), glutamine,
aminoácidos no esenciales y piruvato (Biofluids) y 1 mg/ml de G418.
La línea celular 174.CEM-T2 (proporcionada por el
Dr. P. Creswell, Yale University School of Medicine, New Haven, CT)
es deficitaria en tratamiento del péptido endógeno y se mantiene en
Iscove (GIBCO/BRL) con FBS al 10%. Tanto las líneas
C1R-A2 y T2 presentan péptidos endógenos con
HLA-A2.
Las líneas celulares tumorales positivas a CEA
SW480, SW463, SW1116 y SW837 se consiguieron en el American Type
Culture Collection (ATCC, Rockville, MD) y se pasaron semanalmente
en el medio de cultivo respectivo descrito en el catálogo de ATCC.
La línea Skme124 de melanoma negativo a CEA (proporcionada por el
Dr. S. Rosenberg, National Cancer Institute, National Institutes of
Health, Bethesda, MD), se pasó semanalmente en RPMI 1640, FBS al
10% y 10 \mug/ml de gentamicina (Life Technologies). El CaOV3 del
tumor de ovario negativo para CEA fue proporcionado por el Dr. R.
Freedman (MD Anderson Cancer Center, Houston TX) y se cultivó en
RPMI con FBS al 15%, glutamina, 12 \mug/ml de insulina (Sigma, St.
Louis, MO), 10 \mug/ml de hidrocortisona (Biofluids) y 10
\mug/ml de gentamicina. Todas las líneas tumorales se trataron con
tripsina con Trypsin/Versene (Biofluids) durante 5 a 10 minutos
antes de marcar con isótopo para los análisis de CTL. La diana K562
destructora (NK) natural muy sensible se consiguió en ATCC y se
pasó semanalmente con RPMI 1640, FBS al 10%.
Se generaron líneas de linfocitos T
T-N1 y T-N2 de PBMC de dos donantes
positivos a HLA-A2 normales mediante estimulación
in vitro con péptido de la forma siguiente. Para el primer
ciclo de estimulación, se seleccionaron linfocitos T positivamente
mediante separación por lavado en matraces CD3+ MicroCellector
(Applied Immune Sciences, Santa Clara, CA). Se cultivaron células
CD3+ (3x10^{6}) con 10^{6} células 174.CEM-T2
que se habían infectado previamente con virus de vacuna que expresa
B7 humano en una multiplicidad de infección de 10, pulsadas con 50
\mug/ml de péptidos CAP1 o CAP1-6D y 2 \mug/ml
de microglobulina \beta2 humana (Intergen, Purchase, NY), y se
irradiaron (10.000 rad). Se incubaron los cultivos a 37ºC en una
atmósfera húmeda conteniendo CO_{2} al 5%, en matraces T25 RPMI
con suero humano al 10%, glutamina 2 mM y 10 \mug/ml de
gentamicina en un volumen total de 10 ml con 2x10^{7} PBMC
autólogas irradiadas (2500 rads) como células nutrientes.
Después de 24 horas de cultivo se añadieron 10 U/ml de
hulL-2 y 0,1 ng/ml de rIL-12 (R
& D Systems, Minneapolis, MN). Después de 9 días de cultivo,
se volvieron a estimular las células utilizando células
EBV-B autólogas irradiadas (10.000 rads) incubadas
previamente con 25\mug/ml de péptido en una proporción de 2,5:1
células estimulantes a linfocitos T, y 24 horas después se añadieron
de nuevo IL-2 e IL-12. La
concentración del péptido se dividió por dos en cada ciclo de
estimulación posterior hasta conseguir una concentración final de
3,12 \mug/ml.
Además, se generaron CTL de PBMC después de la
inmunización de Vac8 del paciente de cáncer por estimulación con
CAP1-6D según los procedimientos (11) ya
publicados.
Se marcaron células diana con ^{51}Cr o
^{111}In, se incubaron a continuación a razón de
2.000-10.000 por pocillo con o sin péptidos en
placas de microvaloración de fondo redondo (Corning Costar). Una
hora más tarde, se añadieron linfocitos T. Se recogieron los
sobrenadantes (Skatron, Inc., Sterling VA) después de 4 horas y se
midió la liberación de isótopos. Todos los análisis se realizaron
por triplicado y se calculó el porcentaje de liberación específica
según:
\frac{(liberación \ observada -
liberación \ espontánea)}{(liberación \ máxima - liberación \
espontánea)}\times
100
en la que la liberación espontánea
se obtiene omitiendo los linfocitos T y la liberación máxima se
obtiene añadiendo Triton X100 al
1%.
Se evaluó la unión de los péptidos a
HLA-A2 mediante incubación con células
174.CEM-T2 con tratamiento insuficiente y midiendo
la estabilidad de los complejos péptido-A2 en la
superfície de la célula (30). En resumen, se recogieron las células
y se lavaron con RPMI exento de suero, se incubaron a continuación
toda la noche a razón de 1-2x10^{6}
células/pocillo con varias concentraciones de péptidos. Al día
siguiente, se recogieron las células, se lavaron con PBS con
Ca^{2+}, Mg^{2+} y FBS al 5%, se dividieron a continuación en
alícuotas para análisis citométrico de flujo de un solo color. Se
incubaron las células 1 hora en hielo sin anticuerpo, con anticuerpo
A2, 69 anti-A2 (One Lambda, Inc., Canoga Park, CA)
o con anticuerpo de referencia UPC-10 compatible con
el isótopo (Organon Teknika) se lavó a continuación y se tiñó 1
hora con Ig anti-ratón de cabra
fluoresceína-isotiocianato (FITC) (Southern
Biotechnology Associates, Birmingham, AL). Se midió la coloración en
la superfície de la célula en un citómetro de flujo de Becton
Dickinson (Mountain View, CA) y se representó la intensidad media
de fluorescencia (MFI) para 10.000 células vivas frente a la
concentración de péptido.
Se cultivaron CTL de T-N1 como
se describe para 5 ciclos de estimulación antigénica utilizando el
análogo de CAP1-6D. Se cortó y empalmó a
continuación la línea y se mantuvieron los cultivos duplicados con
CAP1 o con CAP1-6D durante 5 ciclos de estimulación
adicionales. Se colorearon los linfocitos T (5x10^{5}) purificados
por Ficoll con un panel de 19 anticuerpos monoclonales murinos,
anti-V\beta y 2 anti-V\alpha
para zonas variables de receptor de linfocitos T \alpha\beta
humanos. Se incubaron las células con 10 \mug/ml de anticuerpo
purificados durante 30 minutos a 4ºC. Los monoclonales utilizados no
marcados fueron: clon 8 F10 de V\beta3.1, clon 1C1 de
V\beta5(a), clon W112 de V\beta5(b), clon LC4 de
V\beta5(c), clon OT145 de V\beta6.7, clon 16G8 de
V\beta8(a), clon S511 de V\beta12, clon BAM13 de
V\beta13, con F1 de V\alpha2 y clon 6D6 de V\alpha12.1 (T
Cell Diagnostics, Woburn, MA) y V\beta18 (Immunotech, Westbrook,
ME). Se colorearon las células con 10 \mug/ml de anticuerpo de
IgG anti-ratón de cabra marcado con FITC (Southern
Biotechnology Associates) durante 30 minutos en la oscuridad. Los
monoclonales marcados directamente fueron: V\beta11,
V\beta21.3, V\beta13.6, V\beta14, V\beta16, V\beta17,
V\beta20 y V\beta22 marcados con FITC y V\beta9 y V\beta23
marcados con PE (Immunotech). Se fijaron las células con
paraformaldehído al 1%, se lavaron con tampón bajo en FACSF (Becton
Dickinson) y se analizaron utilizando un citómetro de flujo de
Becton Dickinson.
Se consideraron varios factores para decidir qué
posiciones examinar para efectos sobre la actividad de linfocitos
T. Los experimentos de secuenciado y cartografía han definido un
motivo de unión en el que la posición 2 y el
C-terminal (posición 9 ó 10) son críticas para la
presentación del péptido por HLA-A2 (para reseña,
véase 31). Además, se ha identificado Tyr en la posición 1 como
anclaje secundario eficaz, (20, 32). Como el CAP1 del péptido CEA
ya tiene los aminoácidos preferidos en estas tres posiciones estos
restos no se alteraron. En su lugar, se centró la atención en los
restos previstos para interactuar con el TCR con la esperanza de
encontrar análogos que estimulen los linfocitos T citotóxicos de
CAP1 humanos. Estudios cristalográficos por rayos X de varios
péptidos unidos a HLA-A2 soluble sugieren que todos
los péptidos de unión suponen una conformación común en el surco
de unión al péptido (33). Cuando se examinaron cinco péptidos
modelo, sobresalieron 5 a 8 restos del surco de unión y están
disponibles en potencia para la unión a un TCR. Por consiguiente se
produjo un panel de 80 péptidos análogos a CAP1 en el que se
sintetizaron los restos en las posiciones 5 a 8
(p5-p8) con cada uno de los 20 aminoácidos
naturales. Los péptidos se denominan CAP1-pAA, en el
que p se refiere a la posición en el péptido y AA se refiere al
aminoácido de sustitución, utilizando el código de aminoácidos de
una sola letra, es decir, CAP1-6D en el que la
posición 6 está ocupada por el ácido aspártico.
Se estudiaron los efectos de estas sustituciones
de aminoácidos sobre el reconocimiento potencial de TCR utilizando
un CAP1 específico, la línea CTL humana restringida de
HLA-A2 denominada T-Vac8. En
resumen, se generó T-Vac8 como se describe en
Materiales y Procedimientos por estimulación del péptido in
vitro de PBMC de un paciente al que se había administrado
TV-CEA. Para la detección inicial, se utilizó
T-Vac8 en un análisis de citotoxicidad para medir
la liberación de ^{111}In en células C1R-A2
marcadas, incubadas con cada elemento del panel de péptidos (a tres
concentraciones de péptido). Se determinó la liberación espontánea
de las dianas (en ausencia de T-Vac8) para cada
péptido individual.
En las Figuras 1A a 1D se presentan los
resultados. De las 80 sustituciones de un solo aminoácido, la
mayoría no pudo activar la citotoxicidad de T-Vac8.
Sin embargo, seis sustituciones independientes conservaron la
reactividad. En la posición 5, tres análogos
CAP1-5F, CAP1-5I y
CAP1-5S proporcionaron estimulación, aunque a
niveles reducidos comparados con el propio CAP1. En la posición 6
las sustituciones CAP1-6C y CAP1-6D
activaron la citotoxicidad de T-Vac8 y parecían ser
iguales o mejores que CAP1, ya que fueron más activas a la
concentración intermedia (0,1 \mug/ml) de péptido. En la posición
7 pareció además que el análogo CAP1-7I era activo.
Por último, en la posición 8 ningún análogo fue capaz de
sensibilizar las dianas para la lisis por T-Vac8.
Se analizaron a continuación con detalle los dos análogos más
activos (CAP1-6D y CAP1-7I),
omitiendo CAP1-6C debido a que afectan a la
formación de disulfuro en condiciones de oxidación.
Se sintetizaron las preparaciones más puras
(pureza de 90 a 96%) de CAP1 natural y los análogos
CAP1-6D y CAP1-7I y se compararon
en un análisis de CTL durante un intervalo más amplio de
concentraciones de péptido, utilizando dos líneas celulares
diferentes como dianas (Figuras 2A y 2B). Empleando el análogo
CAP1-6D de linfocitos T2 fue al menos 10^{2}
veces más eficaz que el CAP1 natural. La actividad lítica de
CAP1-6D fue en el 1/2 máximo a 10^{-4} \mug/ml
(Figura 2A). En cambio, el análogo CAP1-7I y la
secuencia CAP1 natural eran comparables entre sí en todo el
intervalo de valoración del péptido y presentaban media lisis máxima
a 10^{-2} \mug/ml. Empleando las células C1R-A2
como dianas, CAP1-6D fue igualmente más eficaz entre
10^{2} y 10^{3} que CAP1 para mediar la lisis (Figura 2B).
Se analizó también el péptido de
CAP1-6D utilizando una segunda línea de linfocitos T
específicos de CEA, T-Vac24 (11). Esta línea se
generó a partir de PBMC después de la vacunación con
rV-CEA de un paciente con carcinoma diferente por
estimulación in vitro con el péptido CAP1 natural; en cambio
con T-Vac8 de CD8+ principalmente,
T-Vac24 tiene un gran porcentaje de células
positivas dobles CD4+CD8+ (11). En un ensayo de liberación de
^{111}In de 4 horas que emplea T-Vac24,
CAP1-6D fue ligeramente más eficaz (30% de lisis)
que la secuencia natural de CAP1 (20% de lisis); aunque las
diferencias no fueron tan pronunciadas como con
T-Vac8, el aumento de sensibilidad en el análogo se
observó en tres experimentos independientes. El péptido análogo se
acopla claramente al aparato lítico de un segundo CTL específico de
CAP1.
El aumento de eficacia de
CAP1-6D en el análisis de CTL podría ser debido a la
mejor presentación por la diana. Se determinó la unión a
HLA-A2 de los análogos de CAP1 más activos midiendo
la superficie celular de HLA-A2 en la línea celular
T2 humana insuficiente para el transporte. Cuando se comparan en
todo un intervalo 4 log de concentraciones, CAP1 natural y los dos
análogos CAP1-6D y CAP1-7I se
presentan igualmente en los linfocitos T2 (Figura 3). Además, los
experimentos de disociación indican que los complejos
HLA-A2 que se forman con los 3 péptidos no muestran
apreciables diferencias en la estabilidad (Figura 3 - inserción).
Cuando se lavaron células T2 pulsadas con péptidos exentas de
péptido no ligado, las vidas medias de los complejos
péptido-A2 de la superficie celular fueron de 12,5
h (CAP1), 9,7 h (CAP1-6D) y 10,8 h
(CAP1-7I). Si existe, el complejo formado con el
péptido agonista parece ligeramente menos estable. Ya que no existen
diferencias en la unión a HLA-A2, la eficacia
mejorada de CAP1-6D en los análisis de CTL parece
que se debe al mejor acoplamiento del linfocito T por el receptor,
comportamiento característico de un péptido agonista
potenciador.
El agonista CAP1-6D puede ser
útil tanto en aplicaciones experimentales como clínicas si puede
estimular el crecimiento de CTL específico de CEA en pacientes con
carcinomas probados. En un experimento, las PBMC después de la
inmunización de rV-CEA de Vac8 del paciente con
cáncer, (el mismo paciente con rV-CEA en el que se
probaron los CTL de T-Vac8) se estimularon in
vitro con CAP1-6D y después de 5 rondas de
estimulación se determinó la actividad de CTL frente a dianas
recubiertas con CAP1 o CAP1-6D. Esta nueva línea
demostró la actividad citotóxica dependiente del péptido frente a
células diana recubiertas con CAP1-6D o CAP1 natural
(Tabla 1).
Las PBMC después de la inmunización de Vac8 y
Vac24 de pacientes se demostró ya que producen actividad de CTL
cuando se estimulan con CAP1 mientras que las PBMC antes de la
inmunización fueron negativas (11, 34). Además, los intentos
previos de estimular la actividad de CTL en donantes sanos, no
inmunizados con el péptido de CAP1 no tuvieron éxito. Para probar
si el péptido agonista es realmente más inmunógeno que el CAP1
natural se intentó generar CTL de donantes sanos, no inmunizados
utilizando CAP1-6D. Se estimularon in vitro
PBMC de HLA-A2+ de individuos aparentemente sanos
con CAP1 o con agonista CAP1-6D. Después de 4 ciclos
de estimulación in vitro, se analizó la especificidad en
líneas celulares frente a células C1R-A2 pulsadas
con CAP1 o con CAP1-6D.
Mientras que las estimulaciones con péptido de
CAP1 o de CAP1-6D produjeron líneas de linfocitos T,
la lisis específica del péptido se obtuvo solamente en las líneas
generadas con CAP1-6D. Se derivaron dos líneas de
linfocitos T independientes de donantes diferentes utilizando
CAP1-6D y se denominaron T-N1 y
T-N2 (Figura 4A y Figura 4B respectivamente). Ambas
líneas CTL lisan dianas de C1R-A2 pulsadas con
péptidos de CAP1 naturales. Sin embargo, se obtiene una lisis más
eficaz utilizando el agonista de CAP1-6D. CTL de
T-N1 reconoce CAP1-6D a una
concentración de péptido 3 a 10 veces inferior que CAP1 y
T-N2 reconoce el agonista 100 veces mejor que CAP1.
En cambio, los intentos para generar una línea celular CTL de
donantes normales por estimulación con CAP1 produjo líneas sin
lisis dependiente del péptido y pérdida de las líneas en los ciclos
de estimulación iniciales. De este modo los intentos para generar
líneas de linfocitos T utilizando los dos péptidos demostraron la
capacidad de CAP1-6D para actuar como antagonista no
solamente en la etapa del efector, en la lisis de dianas, sino
también para seleccionar linfocitos T que están supuestamente en
frecuencias bajas de precursor.
Para determinar si los CTLs probados con el
agonista se podían mantener en la secuencia de CAP1 natural, se
cultivó T-N1 durante 5 ciclos tal como se describe
utilizando CAP1-6D, a continuación se dividió en
cultivos duplicados mantenidos en el agonista o en CAP1.
T-N1 continuó creciendo cuando se estimuló con uno
de los dos péptidos y respondía a ambos péptidos en el análisis de
CTL. El análisis fenotípico de la utilización de TCR en
T-N1 indica que la mayoría de las células (71%)
utilizan V\beta12, con una población menor que utiliza
V\beta5.3 (Tabla 2). El mismo modelo de uso de V\beta de TCR se
observó después de conectar las células a CAP1 durante más de 5
ciclos de estimulación. Este patrón de uso de V\beta fue distinto
del de T-Vac8. Estos datos indican que el agonista
puede seleccionar linfocitos T que están probablemente en una
frecuencia de precursor más baja pero que una vez seleccionados,
dichos CTL se podrían mantener con el CAP1 natural.
Se llevaron a cabo estudios para determinar la
capacidad de CTL generados con el agonista potenciador para lisar
de forma endógena las células tumorales humanas que expresan CEA. Se
probaron T-N1 y T-N2 frente a un
panel de las células tumorales siguientes: CEA^{+}/A2^{+} (SW480
y SW1463), CEA^{+}/A2^{-} (SW1116) o CEA^{-}/A2^{+} (CaOV3
y SKme124). Se determinó la capacidad para lisar de forma endógena
dianas tumorales que expresan CEA de una línea de linfocitos T
(T-N2) procedente del donante normal. Los CTL de
TN-2 generados con el agonista lisaron células
tumorales que expresan tanto CEA como HLA-A2
mientras presentaban lisis no valorable de células de melanoma
SKme124 de CEA^{-}/A2^{+} (Figura 5A). No se observó lisis
significativa de K562. En cambio, las líneas celulares generadas
por estimulación con CAP1 natural no presentaron ninguna actividad
antitumoral detectable (Figura 5B). La restricción de
HLA-A2.1de la respuesta de T-N2 a
las dianas tumorales positivas a CEA se demostró además por la
lisis específica de una célula tumoral para HLA-A2.1
positiva para CEA, SW837 después de la infección con una
construcción vacuna-A2.1 (rV-A2.1).
No se observó lisis cuando las dianas SW837 se infectaron con la
vacuna de referencia natural sin el transgén de A2.1 (Figura 6).
La capacidad de la línea de CTL
(T-N1) procedente de un segundo donante para
destruir las dianas de carcinoma que expresan CEA endógeno se
presenta en las Figuras 7A y 7B. T-N1 lisó de forma
específica las células tumorales WS480. Ésta aumentó drásticamente
al 79% de la lisis mediante pretratamiento de las células tumorales
con IFN-\gamma, tratamiento que aumenta la
densidad de la superficie celular tanto de HLA-A2
como de CEA. La especificidad de la destrucción de
T-N1 se demuestra por su incapacidad para lisar
tumores con CEA^{-}/A2^{+} tal como el tumor CaOV3 procedente
del ovario, el tumor SKme124 de melanoma o la diana K562 de NK. Por
último, la restricción por HLA-A2 se demuestra por
la incapacidad de TN-1 para lisar las células
tumorales SW1116 de CEA^{+}/A2^{-} (Figura 7A), incluso después
del tratamiento con IFN-\gamma (Figura 7B).
Se analizaron linfocitos T después de 5
estimulaciones in vitro. Se determinó la actividad citotóxica
en el ensayo de liberación de 4 horas con péptido a 25
\mug/ml.
\vskip1.000000\baselineskip
^{a} \begin{minipage}[t]{150mm}Determinado por análisis FACS utilizando un panel de 19 anticuerpos V\beta y 2 V\alpha (véase Materiales y Procedimientos). Sólo se muestran anticuerpos con coloración positiva.\end{minipage} |
^{b} \begin{minipage}[t]{150mm}Línea de CTL seleccionada y mantenida en el agonista CAP1-6D, tal como se describe en el apartado de Materiales y Procedimientos.\end{minipage} |
^{c} \begin{minipage}[t]{150mm}Línea de CTL seleccionada en el agonista CAP1-6D durante 5 ciclos de estimulación y mantenida en CAP1 para 10 ciclos adicionales.\end{minipage} |
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Tyr Leu His Asp Pro Glu Phe Asn Leu}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
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<212> DNA
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<213> Homo sapiens
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<400> 11
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\hskip-.1em\dddseqskiptacctttcgg gagcgaacat caacctc
\hfill27
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<210> 12
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<212> DNA
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<213> Homo sapiens
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<400> 12
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\hskip-.1em\dddseqskiptacctttcgg gagcgtgtct caacctc
\hfill27
Claims (21)
1. Péptido que comprende un agonista de una
secuencia natural de unión de MHC de clase I:
en el que dicho agonista varía en
una sustitución de aminoácido en la poisición 6 y/o la posición 7 de
la SEC. ID. nº 1 y dicho agonista presenta aumento de
inmunogenicidad en comparación con la secuencia
natural.
2. Composición farmacéutica que comprende al
menos un péptido según la reivindicación 1 y un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
3. Composición farmacéutica según la
reivindicación 2, que comprende además una molécula
autoestimulante.
4. Composición farmacéutica según la
reivindicación 3, en la que la molécula inmunoestimulante se
selecciona de entre el grupo que consta de IL-2,
B7.1, B7.2, ICAM-1, LFA-3, CD72,
GM-CSF, TNF\alpha, INF\gamma,
IL-12, IL-6 y combinaciones de las
mismas.
5. Composición farmacéutica según la
reivindicación 2, que comprende además una molécula HLA de clase I o
una célula que expresa una molécula HLA de clase I.
6. Composición farmacéutica según la
reivindicación 2, que comprende además un fármaco quimioterapéutico,
antibiótico, fármaco antivírico, fármaco antimicótico o
ciclofosfamida.
7. Composición farmacéutica según la
reivindicación 2, que comprende además un adyuvante.
8. Composición farmacéutica según la
reivindicación 7, en el que el adyuvante se selecciona de entre el
grupo que consta de alumbre, adyuvante incompleto de Freund, QS21 y
Ribi Detox^{TM}.
9. Conjugado de
péptido-inmunoglobulina que comprende el péptido
según la reivindicación 1 y una molécula de inmunoglobulina.
10. Composición farmacéutica según la
reivindicación 2, en el que el péptido se incorpora en un
liposoma.
11. Conjugado de la molécula
péptido-excipiente que comprende el péptido según la
reivindicación 1 conjugado con una molécula de excipiente.
12. Conjugado de la molécula
péptido-excipiente según la reivindicación 11, en el
que la molécula de excipiente se selecciona de entre el grupo que
consta de péptido de la gripe, vacuna del tétanos, epítopo CD4 de la
vacuna del tétanos, exotoxina A de Pseudomonas,
poli-L-lisina, una cola de lípido y
una secuencia con señal del retículo endoplásmico.
13. Kit que comprende un péptido agonista según
la reivindicación 1 y un vector que comprende una secuencia de
ácido nucleico que codifica CEA.
14. Kit según la reivindicación 13, que
comprende además una molécula inmunoestimulante.
15. Composición farmacéutica según la
reivindicación 5, en la que la molécula HLA de clase I es la
HLA-A2.
16. Kit según la reivindicación 13, en el que el
CEA codificado comprende un epítopo YLSGANLNL (SEC ID nº 1).
17. Kit según la reivindicación 14, en el que la
molécula inmunoestimuladora es el GM-CSF.
18. Péptido según la reivindicación 1 para su
utilización en medicina.
19. Utilización del péptido según la
reivindicación 1 para la preparación de una composición farmacéutica
destinada a la inmunoterapia del cáncer.
20. Utilización según la reivindicación 19, en
la que la inmunoterapia del cáncer comprende tratar y/o vacunar a
un paciente con un cáncer de expresión de CEA.
\newpage
21. Utilización según la reivindicación 19 ó 20,
en la que el cáncer es seleccionado de entre el grupo constituido
por cáncer colorrectal, cáncer de colon, cáncer de pulmón, cáncer de
páncreas, cáncer de endometrio, cáncer de mama, cáncer de tiroides,
melanoma, cáncer bucal, cáncer de laringe, seminoma, cáncer
hepatocelular, cáncer del conducto biliar, leucemia mieloblástica
aguda, carcinoma basocelular, carcinoma de células escamosas y
cáncer de próstata.
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