ES2279522T3 - Preparaciones liofilizadas de hgf. - Google Patents
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Abstract
LA INVENCION TRATA DE UNA PREPARACION DE HGF LIOFILIZADA PREPARADA MEDIANTE LA LIOFILIZACION DE UNA SOLUCION ACUOSA QUE CONTIENE HGF, Y DE UNA PREPARACION DE HGF LIOFILIZADA QUE CONTIENE UN ESTABILIZANTE, CLORURO DE SODIO, UN TAMPON Y/O UN AGENTE TENSIOACTIVO. SEGUN LA INVENCION, EL HGF PUEDE SER ESTABILIZADO Y ALMACENADO DURANTE UN LARGO PERIODO DE TIEMPO.
Description
Preparaciones liofilizadas en HGF.
La presente invención se refiere a una
preparación liofilizada de HGF obtenida mediante liofilización de
una disolución que contiene HGF (factor de crecimiento de
hepatocitos). Más particularmente, se refiere a la preparación
liofilizada de HGF que contiene al menos uno de un estabilizante,
cloruro sódico, tampón o agente tensioactivo. La invención, por lo
tanto, presenta una preparación estabilizada de HGF que puede
conservarse durante un largo periodo.
El HGF es una proteína que intensifica la
proliferación de hepatocitos, y se ha informado de proteínas que
tienen diferentes secuencias de aminoácidos, y son conocidas con los
nombres de HGF, TCF, SCF, etc. En la invención, estas proteínas
conocidas que tienen actividad de crecimiento de hepatocitos se
denominan colectivamente HGF.
El HGF es un péptido fisiológicamente activo que
muestra diversas acciones farmacológicas, y se informa de sus
acciones farmacológicas, por ejemplo, en Experimental Medicine
(Japan), Vol. 10, Nº 3 (número extraordinario),
330-339 (1992). Debido a sus acciones
farmacológicas, se espera que el HGF se desarrolle como un agente
para la cirrosis hepática, agente para una nefropatía, promotor de
la proliferación de células epiteliales, agente carcinostático,
inhibidor de los efectos secundarios en la terapia contra el cáncer,
agente para una neumopatía, agente para una lesión gastroduodenal,
agente para un trastorno cerebral y nervioso, agente para mitigar
los efectos secundarios causados por inmunosupresores, promotor de
la descomposición del colágeno, agente para trastornos del
cartílago, agente para una enfermedad arterial, agente para la
fibrosis pulmonar, agente para una hepatopatía, agente para una
coagulación anormal de la sangre, agente para una hipoproteinemia,
agente para curar heridas, agente mejorador para un trastorno
nervioso, promotor de hemocitoblastos, promotor del crecimiento
capilar, etc. (Patente Japonesa abierta a examen público Nº
4-18028, Patente Japonesa abierta a examen público
Nº 4-49246, documento de Patente EP Nº 492614,
Patente Japonesa abierta a examen público Nº
6-25010, documento de Patente WO 93/8821, Patente
Japonesa abierta a examen público Nº 6-172207,
Patente Japonesa abierta a examen público Nº
7-89869, Patente Japonesa abierta a examen público
Nº 6-40934, documento de Patente WO 94/2165,
Patente Japonesa abierta a examen público Nº
6-40935, Patente Japonesa abierta a examen público
Nº 6-56692, Patente Japonesa abierta a examen
público Nº 7-41429, documento de Patente WO 93/3061,
Patente Japonesa abierta a examen público Nº
5-213721, etc.).
Se describen preparaciones de HGF en el
documento de Patente WO 90/10651 y la Patente Japonesa abierta a
examen público Nº 6-247872. Esta publicación WO
90/10651 describe un HGF de tipo de eliminación (dLeHGF), en el que
se eliminan cinco restos de aminoácidos del HGF, y se denomina
TCF-II. Esta memoria descriptiva muestra que el HGF
se estabiliza mediante albúmina, suero humano, gelatina, sorbitol,
manitol, xilitol, etc. Pero, se refiere a preparaciones en
disolución acuosa, y el HGF se estabiliza en una disolución acuosa.
La publicación de Patente Japonesa abierta a examen público Nº
6-247872 descubre una preparación que tiene HGF
contenido en alta concentración por coexistencia de aminoácidos
básicos y HGF (TCF).
El documento de Patente
EP-A-0456188 describe agentes
terapéuticos para cirrosis hepática que contienen un factor de
crecimiento de hepatocitos como ingrediente activo, un estabilizante
(albúmina, manitol, sorbitol, glicina), un tampón (tampón de
fosfato), cloruro sódico (NaCl o disoluciones salinas), y un agente
tensioactivo (polisorbato) (Ejemplos 1-5). Se
mencionan alternativas, que incluyen citrato, de la col. 9, línea 52
a la col. 10, línea 13.
El documento de Patente
EP-A-0462277 describe experimentos
8-14 de composiciones que comprenden un factor de
crecimiento de hepatocitos (TCF-II), un
estabilizante (albúmina, sorbitol, glicina), un tampón (PBS),
cloruro sódico o disolución salina, y un agente tensioactivo (Tween
80).
El documento de Patente
EP-A-0722737 describe un factor de
crecimiento de hepatocitos contenido en preparaciones
farmacéuticas. En los Ejemplos de preparación 1-3 se
mencionan composiciones liofilizadas que comprenden un HGF, un
estabilizante (manitol, albúmina, sorbitol, glicina), un tampón
(fosfato), cloruro sódico o disoluciones salinas, y un agente
tensioactivo (polisorbato).
El documento de Patente
EP-A-0308238 describe formulaciones
liofilizadas estables que contienen factores de crecimiento, sin
embargo, ninguno de ellos son factores de crecimiento de
hepatocitos.
El documento de Patente
EP-A-0588477 describe una
composición medicinal que comprende TCF-II adecuado
para el tratamiento de hepatopatías. El Ejemplo 3 describe
composiciones liofilizadas que comprenden TCF-II, un
estabilizante (albúmina, sorbitol o glicina), un tampón (PBS),
cloruro sódico o disoluciones salinas, y un agente tensioactivo
(Tween 80).
El documento de Patente
JP-A-6040938 describe composiciones
liofilizadas de factor de crecimiento de hepatocitos (HGF) que
comprenden un estabilizante (heparina, manitol, albúmina), un tampón
(tampón de fosfato), cloruro sódico o disoluciones salinas, y un
agente tensioactivo (polisorbato).
El documento de Patente
JP-A-6172207 describe un factor de
crecimiento de hepatocitos contenido en preparaciones farmacéuticas
que incluyen composiciones liofilizadas que comprenden un HGF, un
estabilizante (manitol, albúmina, sorbitol, glicina), un tampón
(fosfato), cloruro sódico o disoluciones salinas, y un agente
tensioactivo (polisorbato).
El documento de Patente
EP-A-0612530 describe preparaciones
farmacéuticas en forma liofilizada que comprenden
TCF-II, tampón de fosfato, Arg y Tween 80.
El documento de Patente
EP-A-0517182 describe un agente de
crecimiento de hepatocitos que comprende un polisacárido o uno de
sus derivados, heparina, sulfato de heparano, sulfato de
condroitina, y sulfato de dextrano.
Generalmente, la proteína no es tan estable en
una actividad de congelación (Protein, Nucleic Acid, Enzyme
(Japan), 37(9), 1517, 1992). El estabilizante de
la proteína en disolución acuosa tiene la finalidad de estabilizar
por acción mutua de la molécula de agua y la proteína. Por lo tanto,
en una preparación liofilizada de proteína en ausencia de agua, el
estabilizante de la proteína para una disolución acuosa no muestra
un efecto estabilizante en la mayoría de los casos (Protein,
Nucleic Acid, Enzyme (Japan), 37(9), 1517,
1992).
Por otra parte, no se ha conocido nada acerca de
una preparación liofilizada de HGF, y no podría esperarse hasta que
punto la preparación liofilizada de HGF mostraría estabilidad física
y biológica.
La propia preparación de disolución acuosa de
HGF, cuando se conserva a baja temperatura o temperatura ambiente
durante varios días, cambia de propiedades, mostrando agregación,
turbidez y gelificación, y forma variantes y polímeros, y tiene una
baja estabilidad física y disminuye su actividad biológica, y por lo
tanto tiene una baja estabilidad de actividad biológica, y no es
una preparación estable adecuada para una conservación a largo
plazo. Ha habido un punto fatal para el desarrollo de HGF como
medicinas o fármacos para animales en forma de preparación para
inyección. La invención soluciona los problemas citados
anteriormente. Esto es, es un objeto de la invención presentar una
preparación estable que pueda conservarse durante un largo periodo,
como medicina para tratamiento médico o fármacos para animales.
La invención se refiere a
(1) una preparación liofilizada, que comprende
factor de crecimiento de hepatocitos como ingrediente
biológicamente activo, sulfato de dextrano como agente
estabilizante, un tampón de citrato, y un agente tensioactivo que es
polisorbato;
(2) la preparación liofilizada conforme a (1),
en la que la preparación comprende además cloruro sódico;
(3) el uso de sulfato de dextrano como agente
estabilizante para fabricar una preparación liofilizada de factor
de crecimiento de hepatocitos que contiene factor de crecimiento de
hepatocitos, un tampón de citrato y un agente tensioactivo que es
polisorbato; y
(4) el uso de sulfato de dextrano conforme a
(3), en el que la preparación comprende además cloruro sódico.
En la preparación liofilizada de HGF de la
invención, el HGF se estabiliza, y puede conservarse durante un
largo periodo.
Como HGF usado en la presente invención, puede
usarse uno preparado mediante diversos métodos, si se purifica
hasta un grado que pueda usarse como medicina.
Se conocen diversos métodos para preparar HGF.
Por ejemplo, el HGF puede obtenerse mediante extracción y
purificación de órganos (por ejemplo, hígado, bazo, pulmón, médula
ósea, cerebro, riñón, placenta, etc.), glóbulos sanguíneos (por
ejemplo, trombocitos, leucocitos, etc.), suero y plasma de mamíferos
tales como ratas, vacas, caballos, ovejas, y similares (véase
FEBS Letters, 224, 312, 1987; Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 86, 5844, 1989, etc.).
También, es posible obtener HGF mediante cultivo
de células de cultivo o líneas celulares primarias que producen HGF,
seguido por separación y purificación del producto del cultivo (por
ejemplo, sobrenadante del cultivo, célula cultivada, etc.). Además,
el HGF puede obtenerse por un método de ingeniería genética, que
comprende clonar el gen que codifica el HGF con un vector apropiado,
insertarlo en una célula anfitriona apropiada para obtener un
transformado, y separar el HGF recombinado deseado a partir del
sobrenadante del cultivo del transformado (por ejemplo,
Nature, 342, 440, 1989, Patente Japonesa abierta a
examen público Nº 5-111383, Biochem. Biophys.
Res. Commun., 163, 967, 1989). La célula anfitriona no
está limitada específicamente, y pueden usarse diversas células
anfitrionas usadas convencionalmente en métodos de ingeniería
genética, que son, por ejemplo, Escherichia coli, Bacillus
subtilis, levadura, hongos filamentosos, y células de plantas o
animales.
Más específicamente, el método de extraer y
purificar HGF a partir de tejidos vivos es, por ejemplo, administrar
tetracloruro de carbono a una rata por vía intraperitoneal, retirar
el hígado de la rata con hepatitis, molerlo, y purificar mediante
una técnica ordinaria de purificación de proteínas, tal como
cromatografía de columna en gel, usando S-Sepharose
y Heparin Sepharose, HPLC, y similares.
Además, mediante el método de ingeniería
genética, el gen que codifica la secuencia de aminoácidos del HGF
humano es clonado en un vector tal como ADN del virus del papiloma
bovino y similares, para obtener un vector de expresión, y usando
este vector de expresión, se transforman células de animales tales
como células de ovario de hámster chino (CHO), células de ratón
C127, células COS de mono, y similares, y puede obtenerse HGF a
partir del sobrenadante del cultivo de los transformados.
En el HGF obtenido de este modo, una parte de la
secuencia de aminoácidos del HGF puede eliminarse o sustituirse por
otro(s) aminoácido(s), puede insertarse otra secuencia
de aminoácidos, pueden unirse uno o más aminoácidos al extremo N
y/o extremo C, o pueden eliminarse o sustituirse asimismo
cadena(s) de sacáridos, con tal de que tengan
sustancialmente el mismo efecto que el HGF.
La "preparación liofilizada de HGF" hace
referencia a una preparación preparada liofilizando una disolución
acuosa que contiene HGF mediante el uso de un método ordinario de
liofilización.
El "estabilizante" es sulfato de dextrano.
La preparación liofilizada de HGF preparada añadiendo el
estabilizante es una preparación con un aumento adicional de la
estabilidad de conservación del HGF.
El "tampón" es un tampón de citrato. El
tampón actúa para ajustar el pH de la disolución acuosa después de
la redisolución, y para mantener la solubilidad del HGF. Esto es,
por ejemplo, en el caso del HGF recombinado usado en los ejemplos,
la solubilidad del HGF varía con el pH, y la solubilidad es
aproximadamente de 0,1 a 5,0 mg/ml alrededor de pH 7, pero la
solubilidad está por encima de 20 mg/ml alrededor de pH 5, y por lo
tanto se prefiere mantener el pH alrededor de 5,0 a 6,0. El tampón
es un tampón de citrato, y se usa más preferiblemente citrato
sódico. Este tampón de citrato contribuye también a la
estabilización de HGF en una disolución acuosa después de la
redisolución. Un intervalo preferido de adición del tampón es, por
ejemplo, de 1 a 100 mM a la cantidad de agua después de la
redisolución.
El "agente tensioactivo" incluye, por
ejemplo, polisorbato 20, polisorbato 80, y pueden utilizarse dos o
más tipos de los mismos simultáneamente. Un agente tensioactivo
particularmente preferido es el polisorbato 80. Es conocido que el
HGF es probable que sea adsorbido en un material del recipiente tal
como vidrio y resina. Por lo tanto, añadiendo un agente
tensioactivo, se impide la adsorción de HGF en el recipiente después
de la redisolución. Un intervalo preferido de cantidad de adición
de agente tensioactivo es de 0,001 a 2,0% en peso, por ejemplo, al
peso de agua después de la redisolución.
El "cloruro sódico" actúa para mantener la
solubilidad del HGF. Esto es, por ejemplo, en el caso de HGF
recombinado usado en los Ejemplos, la solubilidad se intensifica
añadiendo cloruro sódico, y la solubilidad aumenta notablemente, en
particular, a 300 mM o más (Patente Japonesa abierta a examen
público Nº 6-247872). La cantidad de adición de
cloruro sódico está limitada por la relación de presión osmótica,
pero puede ser una cantidad que muestra una relación de presión
osmótica de la preparación para inyección para uso general. En
particular, se prefiere que la relación de presión osmótica sea de
1 a 2, que se permite como la relación de presión osmótica de
inyección para un tratamiento médico o fármaco para animales, y se
prefiere añadir, por ejemplo, de 150 a 300 mM a la cantidad de agua
después de la redisolución.
La preparación liofilizada de HGF se prepara
mediante liofilización de una disolución acuosa que contiene HGF,
mediante un método ordinario de liofilización. Por ejemplo, el HGF
se disuelve en un disolvente apropiado (por ejemplo, agua
esterilizada, tampón, disolución fisiológica, etc.), se filtra a
través de un filtro que ha de esterilizarse, y, se añaden el
estabilizante, tampón, agente tensioactivo, y cloruro sódico, y la
mezcla se liofiliza. La preparación de la invención puede contener
aditivos necesarios para la fabricación farmacéutica, por ejemplo,
un auxiliar para la disolución, un antioxidante, un agente que
mitiga el dolor, un agente isotónico, y similares. El método de
liofilización puede comprender tres operaciones unitarias, por
ejemplo, (1) una etapa de congelación de enfriar y congelar a
presión ordinaria, (2) una primera etapa de secado de sublimar y
secar el agua libre no retenida por el soluto, a presión reducida, y
(3) una segunda etapa de secado de retirar el agua adsorbida
intrínseca y el agua de cristalización del soluto (Pharm. Tech.
Japan, 8(1), 75-87, 1992). El HGF
es muy estable cuando se prepara una disolución, cuando se
liofiliza, y en una disolución acuosa redisolviendo la preparación
liofilizada. El contenido de HGF puede ajustarse apropiadamente
dependiendo de la enfermedad que ha de tratarse y la vía de
administración.
La preparación liofilizada se usa añadiendo agua
destilada para inyección y redisolviendo, antes del uso.
La preparación liofilizada de HGF de la
invención puede estabilizar el HGF, y puede conservarse durante un
largo periodo.
La invención se describe con más detalle
mediante la presentación de Ejemplos, pero debe observarse que la
invención no está limitada a estos Ejemplos solos. En los Ejemplos,
se usó dLeHGF (HGF del tipo de eliminación de cinco aminoácidos,
también conocido como TCF-II), descrito en la
publicación de Patente WO 90/10651).
En tampón de citrato 10 mM (pH 5,0) que contenía
cloruro sódico 300 mM y polisorbato 80 al 0,01%, se disolvieron 20
mg/ml de HGF, y se obtuvo de forma aséptica una disolución acuosa de
HGF. Después de ajustar el pH de la disolución acuosa, se cargó de
forma aséptica en un vial, y se liofilizó en las condiciones
mostradas en la Tabla 1, y se obtuvo una preparación liofilizada de
HGF. La flecha (\rightarrow) en la Tabla muestra el cambio de
temperatura.
Se obtuvo una preparación liofilizada de HGF
usando tampón de citrato 10 mM (pH 6,0) en vez de tampón de citrato
10 mM (pH 5,0) del Ejemplo 1.
Se obtuvo una preparación liofilizada de HGF
usando tampón de fosfato 10 mM (pH 6,0) en vez de tampón de citrato
10 mM (pH 5,0) del Ejemplo 1.
Se obtuvo una preparación liofilizada de HGF
usando tampón de fosfato 10 mM (pH 7,0) en vez de tampón de citrato
10 mM (pH 5,0) del Ejemplo 1.
En tampón de citrato 10 mM (pH 5) que contenía
cloruro sódico 300 mM y polisorbato 80 al 0,01%, se disolvieron 20
mg/ml de HGF. En sucesión, se disolvieron 50 mg/ml de glicina, y se
obtuvo de forma aséptica una disolución de HGF. Después de ajustar
el pH de la disolución, se cargó de forma aséptica en un vial, y se
liofilizó en las mismas condiciones que en el Ejemplo 1, y se
obtuvo una preparación liofilizada de HGF.
Se obtuvo una preparación liofilizada de HGF
usando alanina en vez de la glicina del Ejemplo 5.
En tampón de citrato 10 mM (pH 5) que contenía
cloruro sódico 300 mM y polisorbato 80 al 0,01%, se disolvieron 20
mg/ml de HGF. En sucesión, se disolvieron 200 mg/ml de sorbitol, y
se obtuvo de forma aséptica una disolución de HGF. Después de
ajustar el pH de la disolución, se cargó de forma aséptica en un
vial, y se liofilizó en las mismas condiciones que en el Ejemplo 1,
y se obtuvo una preparación liofilizada de HGF.
En tampón de citrato 10 mM (pH 6) que contenía
cloruro sódico 300 mM y polisorbato 80 al 0,01%, se disolvieron 10
mg/ml de HGF. En sucesión, se disolvieron 50 mg/ml de sulfato de
dextrano, se ajustó el pH, y se obtuvo una disolución de HGF. Se
cargó luego en un vial, y se liofilizó en las mismas condiciones que
en el Ejemplo 1, y se obtuvo una preparación liofilizada de
HGF.
Se obtuvo una preparación liofilizada de HGF de
la misma manera que en el Ejemplo 1, excepto por el uso de tampón
de citrato 10 mM (pH 6,0) en vez de tampón de citrato 10 mM (pH
5,0), y regulando la concentración de HGF a 10 mg/ml.
Ejemplo de Ensayo
1
Para observar los cambios en la actividad
biológica de HGF en el procedimiento de liofilización, usando una
disolución acuosa de HGF antes de liofilización y una disolución
acuosa de HGF redisuelta directamente después de la liofilización
del Ejemplo 1, se determinó la actividad biológica del HGF (el
método de determinación de la actividad biológica se muestra a
continuación). Los resultados se muestran en la Tabla 2. Ya que la
actividad específica no cambió antes y después de la liofilización,
se muestra que la actividad biológica del HGF no se inactiva por el
procedimiento de liofilización y redisolución, lo que sugiere que se
puede usar el HGF como preparación liofilizada.
Se purificaron hepatocitos obtenidos por
perfusión del hígado de ratas Wistar macho, y, después de confirmar
la tasa de supervivencia celular, se sembraron en una placa con una
densidad de 1x10^{4}/pocillo. Después de una preincubación
durante 20 horas en un incubador con dióxido de carbono al 5%, se
añadieron una muestra de HGF y una muestra normal (n = 3). Después
de una preincubación adicional durante 24 horas en un incubador con
dióxido de carbono al 5%, se añadió
[^{3}H-timidina] para marcar durante 2 horas. Las
células se recogieron en un recogedor de células, y se determinó la
cantidad de [^{3}H] dentro de las células. Los resultados de la
determinación se comprobaron mediante un método de calibración de
líneas paralelas, y se determinó la actividad específica frente a
la muestra normal.
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\newpage
Ejemplo de Ensayo
2
Las preparaciones liofilizadas preparadas en los
Ejemplos se conservaron durante 1 mes a -40ºC, 25ºC, y 50ºC, y se
disolvieron, y se observaron visualmente las propiedades de las
preparaciones disueltas. La preparación liofilizada se disolvió
usando agua purificada. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
Cuando se conservaron a -40ºC o 25ºC, las preparaciones de todos
los Ejemplos fueron estables en cuanto a las propiedades. Cuando se
almacenó a 50ºC, la preparación del Ejemplo 1 se enturbió
inmediatamente después de la disolución, pero las preparaciones de
los Ejemplos 5, 6 y 7 fueron estables en cuanto a las
propiedades.
Ejemplo de Ensayo
3
Las preparaciones liofilizadas preparadas en los
Ejemplos 1, 5, 6 y 7 se conservaron durante 1 mes o 2 meses a
-40ºC, 25ºC, 40ºC, y 50ºC, y se determinó la proporción de contenido
de polímero y contenido de HGF contenidos en las preparaciones
liofilizadas. El método de determinación es el método de filtración
en gel como se explica a continuación. Los resultados se muestran
en la Tabla 4 y Tabla 5. Independientemente de la temperatura de
conservación, la producción de polímero fue baja en las
preparaciones de todos los Ejemplos, y las preparaciones fueron
físicamente estables. En particular, la producción de polímero fue
extremadamente baja en las preparaciones de los Ejemplos 5, 6 y 7,
y las preparaciones fueron físicamente estables.
La concentración de HGF se diluyó a 2 mg/ml, y
se determinó en las siguientes condiciones mediante el método de
filtración en gel.
Columna: TOSOH TSK G-3000SW XL
(\phi0,78X30 cm)
Caudal: 0,5 ml/min
Detección: DO 280
Temperatura: 25ºC
Vehículo: trometamol 10 mM, NaCl 150 mM,
dodecilsulfato sódico (SDS) al 0,05%, pH 7,0
Aplicación: 20 \mul
Tiempo de retención del polímero: 13,0 min
Tiempo de retención del HGF: 14,4 min
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo de Ensayo
4
La preparación liofilizada preparada en el
Ejemplo 8 se conservó durante 1 mes a 50ºC, y se determinó la
proporción de contenido de polímero y contenido de HGF contenidos
en las preparaciones liofilizadas. El método de determinación fue
el mismo que en el Ejemplo 3. Como ejemplo comparativo, se usó y
ensayó de manera similar la preparación liofilizada del Ejemplo 9
preparada con la misma composición y método, excepto que no estaba
contenido el sulfato de dextrano. Los resultados se muestran en la
Tabla 6. Como se muestra en la Tabla 6, añadiendo sulfato de
dextrano, se ha encontrado que la producción de polímero fue baja
incluso si se conservada a alta temperatura, y que mejora la
estabilidad.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Ejemplo de Ensayo
5
Las preparaciones liofilizadas preparadas en los
Ejemplos 1, 5, 6 y 7 se conservaron durante 1 mes o 2 meses a
-40ºC, 40ºC, 50ºC y 60ºC, y se determinó la actividad biológica de
la disolución acuosa después de redisolver las preparaciones
liofilizadas, mediante el método de determinación de actividad
biológica mostrado en el Ejemplo de Ensayo 1. Los resultados se
muestran en la Tabla 7 y Tabla 8. Los valores iniciales de actividad
biológica de las disoluciones acuosas después de redisolver las
preparaciones de los Ejemplos 1, 5, 6 y 7 fueron respectivamente
1,01 \pm 0,25, 0,91 \pm 0,18, 0,88 \pm 0,05, y 1,03 \pm
0,04. Cuando se conservaron a 60ºC, se observó una ligera tendencia
de disminución de la actividad biológica, pero cuando se conservaron
a 50ºC o una temperatura inferior, no hubo casi cambio en la
actividad biológica en las preparaciones de cualquier Ejemplo, y la
actividad biológica fue estable.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (4)
1. Una preparación liofilizada, que comprende
factor de crecimiento de hepatocitos como ingrediente biológicamente
activo, sulfato de dextrano como agente estabilizante, un tampón de
citrato, y un agente tensioactivo que es polisorbato.
2. La preparación liofilizada conforme a la
reivindicación 1, en la que la preparación comprende además cloruro
sódico.
3. El uso de sulfato de dextrano como agente
estabilizante para la fabricación de una preparación liofilizada de
factor de crecimiento de hepatocitos, que contiene factor de
crecimiento de hepatocitos, un tampón de citrato, y un agente
tensioactivo que es polisorbato.
4. El uso de sulfato de dextrano conforme a la
reivindicación 3, en el que la preparación comprende además cloruro
sódico.
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