DE4480132C2 - Verfahren und Rhodococcus rhodochrous-Stamm zur Herstellung von Amiden aus Nitrilen - Google Patents
Verfahren und Rhodococcus rhodochrous-Stamm zur Herstellung von Amiden aus NitrilenInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf die Biotechnolo
gie und betrifft einen neuen Bakterienstamm mit einer hohen
Nitrilhydratase-Aktivität, der in Verfahren zur Herstellung
von Amiden aus Nitrilen eingesetzt wird.
Das Enzym Nitrilhydratase, das die Umwandlung von Nitrilen
in Amide katalysiert, wurde bei vielen Arten von Bakterien
festgestellt. Zur Erzeugung der Nitrilhydratase ist es bei
der Züchtung von Bakterien notwendig, dem Nährmedium einen
Induktor zuzugeben, z. B. Nitrile und Amide von organischen
Säuren (US-A-4 555 487, EP-A-0 109 083, EP-A-0 204 555),
Harnstoff oder dessen Derivate (EP-A-0 362 829). Bekannt
sind ferner die Stämme Corynebacterium N774 (US-A-4 248
968) und Rhodococcus sp. S-6 (US-A-5 179 014), für die ein
Induktor nicht erforderlich ist. Nachteile des Stammes N774
sind eine niedrige Nitrilhydratase-Aktivität (die spezifi
sche Aktivität beträgt nur 50 bis 60 Einheiten/mg, wobei
die Einheit hier und im folgenden in Mikrogramm Acrylamid
pro Minute und Milligramm Zellen, bezogen auf die Trocken
masse, angegeben ist), ein nur kleiner Bereich von Nitri
len, die umgewandelt werden können (nur aliphatische Nitri
le), sowie eine nur geringe Wärmebeständigkeit der Enzyme
(Temperaturoptimum für N774 35°C). Ein Nachteil des Stam
mes S-6 ist seine Fähigkeit, die gebildeten Amide zu den
Säuren weiterzuhydrolysieren, was zu einer erheblichen
Verringerung der Qualität der Amide führt. Darüber hinaus
besitzt dieser Stamm S-6 eine geringe Wärmebeständigkeit
der Nitrilhydratase (Temperatur nicht höher als 30°C) und
eine niedrige Produktivität (Akkumulation von maximal 20%
Acrylamid in der Lösung). Für die Kultivierung der beiden
Stämme N774 und S-6 müssen ferner teure Komponenten in den
Nährmedien eingesetzt werden (Pepton, Hefeextrakt,
Fleischextrakt).
Der nach dem technischen Wesen und dem erreichten Ergebnis
der vorliegenden Erfindung am nächsten kommende Stamm ist
der Stamm Rhodococcus rhodochrous J1 (EP-A-0 362 829), der
eine Nitrilhydratase-Aktivität in Bezug auf aliphatische
und aromatische Nitrile aufweist.
Ein Nachteil dieses Stammes besteht in der Notwendigkeit,
im Nährmedium zur Kultivierung des Stammes Vitamine, Hefe
extrakt und Pepton einzusetzen. Ein weiterer Nachteil be
steht ferner darin, daß der Stamm J1 zur Erzeugung der
Nitrilhydratase eines Induktors, nämlich Harnstoff, in
hoher Konzentration (7,5-12 g/l) bedarf. Die spezifische
Aktivität der Nitrilhydratase erreicht bei Züchtung dieses
Stamms auf einem Nährmedium ohne Harnstoff nur 3,35 Einhei
ten/mg. Die Gesamtaktivität beträgt 17,7 Einheiten/ml. Die
Gesamtaktivität wird hier und im folgenden in Mikromol
Acrylamid pro Minute und Milliliter Kulturflüssigkeit (µmol
Acrylamid/min·ml) ausgedrückt. Bei einer Konzentration an
Harnstoff von 7,5 g/l erreicht die spezifische Aktivität im
Medium 497 Einheiten/mg, während die Gesamtaktivität
2480 Einheiten/ml beträgt. Dabei ist festzustellen, daß der
Harnstoff eine doppelte Rolle spielt, nämlich als Stick
stoffquelle und als Induktor für die Nitrilhydratase. Zum
Wachstum dieses Stammes ist eine Harnstoffkonzentration von
maximal 2 g/l ausreichend; hierbei erreicht die spezifische
Nitrilhydratase-Aktivität des Stamms J1 36,5 Einheiten/mg,
während die Gesamtaktivität 189 Einheiten/ml beträgt. Die
hohen Harnstoffkonzentrationen sind nur für die Induktion
notwendig. Deshalb verbleiben nach der Kultivierung des
Stamms J1 erhebliche Mengen an Harnstoff im Medium.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, einen neuen Stamm
von Rhodococcus rhodochrous anzugeben, der eine hohe
Nitrilhydratase-Aktivität besitzt und auf einfachen synthe
tischen Medien kultivierbar ist, die keine Vitamine und
Aminosäuren sowie keine Verbindungen enthalten, die als
Induktoren der Synthese der Nitrilhydratase dienen (wie
z. B. Nitrile, Amide oder Harnstoff); ferner soll ein Ver
fahren zur Herstellung von Amiden aus Nitrilen unter
Verwendung dieses Mikroorganismus angegeben werden.
Die Aufgabe wird gemäß den unabhängigen Ansprüchen gelöst.
Die abhängigen Ansprüche betreffen vorteilhafte Ausfüh
rungsformen der Erfindungskonzeption.
Der erfindungsgemäße, Nitrilhydratase produzierende Stamm
von Rhodococcus rhodochrous ist unter der Hinterlegungs
bezeichnung VKM Ac-1515 D bei der Allrussischen Sammlung
von Mikroorganismen, Institut für Biochemie und Physiologie
der Mikroorganismen, Puschkino, Moskau, Russische Födera
tion, hinterlegt (russisch-sprachige Hinterlegungsbezeich
nung BKM Ac-1515 D, als VKM Ac-1515 D transkribiert). Der
erfindungsgemäße Stamm Rhodococcus rhodochrous
VKM Ac-1515 D wird im folgenden kurz als M33 bezeichnet.
Der erfindungsgemäße Stamm M33 besitzt die Fähigkeit, auch
ohne Induktor zur Enzyminduktion eine Nitrilhydratase kon
stitutiv zu bilden, welche die Hydrolyse aliphatischer
Nitrile, z. B. von Acrylnitril, wie auch aromatischer Ni
trile, z. B. von 3-Cyanopyridin, zu den entsprechenden Ami
den, z. B. zu Acrylamid bzw. Nicotinsäureamid, zu katalysie
ren. Der erfindungsgemäße Stamm produziert Nitrilhydratase
in Abwesenheit von Harnstoff mit einer spezifischen Aktivi
tät von 200 bis 457 bzw. 500 Einheiten/mg und einer Gesamt
aktivität von 350 bis 360 Einheiten/ml (in Abhängigkeit von
der Kohlenstoffquelle) sowie in Anwesenheit von Harnstoff
im Medium in einer Konzentration von 2 g/l mit einer spezi
fischen Aktivität von 180 Einheiten/mg und einer Gesamt
aktivität von 1368 Einheiten/ml.
Eine weitere Eigenschaft, durch die sich der erfindungsge
mäße Stamm M33 von Stämmen gemäß dem Stand der Technik un
terscheidet, ist das praktisch vollständige Fehlen einer
Amidaseaktivität. Die Amidase stellt ein Enzym dar, das die
Hydrolyse der aus Nitrilen gebildeten Amide zu den entspre
chenden Carbonsäuren katalysiert, beispielsweise die Hydro
lyse von Acrylamid zu Acrylsäure, was zu einer erheblichen
Verschlechterung der Qualität der gebildeten Amide führt.
Dieses Problem tritt im Gegensatz zum Stand der Technik bei
dem erfindungsgemäßen Stamm nicht auf.
Der erfindungsgemäße Stamm M33 ist auf einfachen syntheti
schen Medien kultivierbar, die eine Kohlenstoffquelle in
Form von Pyruvat, Acetat oder Glucose in Konzentrationen
von 0,1 bis 4 Masse-% und eine Stickstoffquelle in Form von
Ammoniumsalzen, Nitraten oder Harnstoff in einer Konzentra
tion von 0,4 bis 2 Masse-% enthalten. Ferner ist von Bedeu
tung, daß zum Wachstum des Stammes M33 keine Vitamine, kei
ne Aminosäuren und kein Hefe- oder Fleischextrakt erforder
lich sind.
Der Stamm Rhodococcus rhodochrous M33 wurde aus dem Stamm
Rhodococcus rhodochrous M8 (vgl. SU 1731814) durch orien
tierte Selektion in zwei Schritten unter Verwendung von se
lektiven Medien, die im ersten Schritt Chloracetamid und im
zweiten Schritt Acetamid enthielten, erhalten.
Der erfindungsgemäße neue Stamm besitzt die wichtige Fähig
keit, Nitrilhydratase in Abwesenheit von Induktoren im Me
dium, wie etwa Nitrile, Amide oder Harnstoff, konstitutiv
zu bilden.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von Amiden
aus Nitrilen unter Verwendung eines Nitrilhydratase produ
zierenden Stamms von Rhodococcus rhodochrous ist entspre
chend dadurch gekennzeichnet, daß der unter der Hinterle
gungsbezeichnung VKM Ac-1515 D hinterlegte Stamm (kurz als
M33 bezeichnet) verwendet wird.
Die Umsetzung wird vorteilhaft in einem wässerigen Medium
durchgeführt, das einen pH-Wert im Bereich von 3 bis 10
aufweist. Die Temperatur bei der Umsetzung liegt im Bereich
von 0 bis 50°C und vorzugsweise im Bereich von 4 bis
30°C.
Der erfindungsgemäße Stamm wird vor der Verwendung zur
Hydrolyse von Nitrilen in einem Nährmedium kultiviert, vor
teilhaft bei einer Temperatur von 25 bis 30°C, und dann
vorzugsweise in Form einer Zellsuspension eingesetzt.
Es ist erfindungsgemäß auch möglich, trägerfixierte bzw.
immobilisierte Zellen einzusetzen.
Die Umsetzung kann kontinuierlich, quasikontinuierlich oder
diskontinuierlich vorgenommen werden. Sie wird vorteilhaft
so geführt, daß die Konzentration des Nitrils höchstens
8 Masse-% und vorzugsweise höchstens 2 Masse-%, bezogen auf
die Masse des Reaktionssystems, beträgt. Hierfür kann das
Nitril dem Reaktionsmedium durch periodische oder konti
nuierliche Zugabe vorzugsweise so zugegeben werden, daß die
vorgegebene Maximalkonzentration an Nitril nicht über
schritten wird.
Das erfindungsgemäße Verfahren eignet sich besonders gün
stig zur Hydrolyse von Nitrilen wie 2-Cyanopyridin,
3-Cyanopyridin, 4-Cyanopyridin, Acrylnitril und Acetonitril
zu den entsprechenden Amiden.
Aus der nachstehenden Tabelle 1 ist ersichtlich, daß der
erfindungsgemäße Stamm zur konstitutiven Bildung von
Nitrilhydratase befähigt ist.
*Die Stämme wurden in Erlenmeyerkolben (750 ml), die je
weils 150 ml Nährmedium mit Pyruvat (5 g/l) und NH₄Cl
(2 g/l) enthielten, unter intensiver Belüftung 24 h bei
30°C kultiviert. Nach 24 h wurden die erhaltenen Kul
turen in zwei Teile aufgeteilt; zu dem einen Teil wurde
Harnstoff als Induktor (10 g/l) zugegeben, wonach noch
48 h weiter kultiviert wurde. Die Zellen wurden dann
durch Zentrifugieren abgetrennt und zur Bestimmung der
Aktivität an Nitrilhydratase und Amidase verwendet. Die
Nitrilhydratase-Aktivität der erhaltenen Kulturen wurde
jeweils unter Verwendung von Acrylnitril als Substrat
unter standardisierten Bedingungen bestimmt. Die
Amidaseaktivität wurde anhand der Bildung von Ammonium
aus Acrylamid als Substrat bestimmt. Die Bestimmung der
Ammoniumkonzentration wurde nach Neßler vorgenommen.
**Mikromol Acrylamid pro Minute und Milligramm Zellen,
bezogen auf die Trockensubstanz (µmol Acryl
amid/min·mg).
***Mikromol Ammonium pro Minute und Milligramm Zellen,
bezogen auf die Trockensubstanz (µmol Ammonium/min·mg).
Wie aus Tabelle 1 ersichtlich ist, erreicht die spezifische
Aktivität der Nitrilhydratase 457 Einheiten/mg bei Kulti
vierung des Stamms M33 auf dem Nährmedium in Abwesenheit
von Harnstoff. Unter diesen Bedingungen beträgt die Nitril
hydratase-Aktivität des Ausgangsstamms M8 nur 8 Einhei
ten/mg. Es ist bekannt, daß die spezifische Aktivität der
Nitrilhydratase des Stamms J1 bei Kultivierung auf Nährme
dien, die keinen Harnstoff enthalten, nur 3,4 Einheiten/mg
erreicht (vgl. EP-A-0 362 829; US-A-5 089 411).
Der erfindungsgemäße Stamm M33 ist folglich im Unterschied
zum Ausgangsstamm M8 und zu dem Stamm J1 befähigt, die
Nitrilhydratase sogar in Abwesenheit eines Induktors im
Medium konstitutiv zu bilden, und weist zugleich eine
Amidaseaktivität auf, die um etwa den Faktor 20 verringert
ist.
Der unter der Hinterlegungsbezeichnung VKM Ac-1515 hinter
legte Stamm M33 wird durch die nachstehend angegebenen Kul
turbedingungen sowie morphologischen und physiologisch-bio
chemischen Eigenschaften charakterisiert.
Die Zellen des Stamms M33 sind nicht beweglich und werden
nach Gram gefärbt (Gram-positiv). Sie bilden keine Sporen
und sind nicht säurebeständig. Im Alter von 18 bis 20 h
bilden die Zellen lange, schwach verzweigte Fäden von bis
zu 20 µm Länge, die nach 48 bis 72 h in stäbchenförmige und
coccusförmige Elemente zerfallen.
Auf dichten Nährmiedien (MPA, Hottinger) bildet der Stamm
M33 nach 48 h Wachstum runde, glatte Kolonien mit einem
Durchmesser von 1 mm, die rosa-strohgelb bis rosa-orange
gefärbt sind. Bei Kultivierung auf Fleischpeptonbrühe wer
den ein Film und ein Sediment gebildet. Mit Lackmusmilch
tritt keine Farbänderung auf.
Der Stamm ist obligat aerob und reduziert Nitrat. Der Test
mit Methylrot sowie die Voges-Proskauer-Reaktion sind nega
tiv. Der Stamm erzeugt Hydrogensulfid bzw. Schwefelwasser
stoff, ist oxidasenegativ und katalase- sowie phosphatase
positiv. Er hydrolysiert Stärke und Cellulose nicht, jedoch
werden Tween® 60 und 80 hydrolysiert. Der Stamm verwertet
kein Adenin. Die Zellen halten eine Erwärmung in Magermilch
auf 72°C während 15 min nicht aus. Der Stamm wächst bei
pH-Werten von 6 bis 9 und Temperaturen von 5 bis 45°C. Aus
folgenden Zuckern und Alkoholen werden Säuren gebildet:
Glucose, Fructose, Maltose, Saccharose, Sorbit, Mannit und
Glycerin. Bei keinem der Zucker wurde eine Gasbildung fest
gestellt. Der Stamm verwendet als einzige Stickstoffquelle
Verbindungen von Ammonium, Nitrate und Harnstoff. Als ein
zige Kohlenstoffquelle werden Maltose, Mannit, Sorbit,
Glucose, Glycerin, Lactat, Pyruvat, Benzoat, p- und m-
Hydroxybenzoat und Tyrosin verwertet. Der Stamm verwertet
Rhamnose, Galactose, Inosit und α-Ketoglutarat nicht.
Die biochemische Analyse zeigte, daß in der Zellwand des
Stamms M33 meso-Diaminopimelinsäure, Arabinose und
Galactose enthalten sind, was für coryneforme Bakterien
charakteristisch ist, die eine Zellwand vom Typ IV aufwei
sen. Die Zellen enthalten ferner Lipid A (LCH), das für
Rhodococci charakteristisch ist.
Der Stamm M33 besitzt also Eigenschaften, die für coryne
forme Bakterien typisch sind. Aufgrund der oben angeführten
Eigenschaften sowie in Übereinstimmung mit Bergy′s Manual
of Systematic Bacteriology sowie dem Klassifizierungshand
buch von Nesterenko wurde der Stamm M33 der Gattung Rhodo
coccus und der Art R. rhodochrous zugeordnet.
Zur Erzeugung von Zellen des Stamms M33 mit hoher Nitril
hydratase-Aktivität wird die Impfkultur in ein Nährmedium
eingebracht und vorzugsweise bei 25 bis 30°C 24 bis 72 h
inkubiert.
Zur Umwandlung von Nitrilen in Amide werden vorzugsweise
Zellsuspensionen eingesetzt, die durch Zentrifugieren ent
sprechender Kulturen und anschließendes Resuspendieren der
Zellen in 10 mM Phosphatpuffer erhalten wurden.
Die in dieser Weise erhaltenen Zellen besitzen eine hohe
Nitrilhydratase-Aktivität und sind befähigt, die Hydrolyse
von aliphatischen und aromatischen Nitrilen zu den entspre
chenden Amiden in einem breiten Temperaturbereich von 0 bis
50°C und vorzugsweise 4 bis 30°C und bei pH-Werten von 3
bis 10 zu katalysieren.
Der Standardtest zur Messung der Nitrilhydratase-Aktivität
wird wie folgt durchgeführt. 1 ml einer 2%igen Nitrillösung
in 10 mM Phosphatpuffer mit einem pH-Wert von 7,6 wird mit
1 ml der Zellsuspension vermischt, die 0,04 mg Zellen, be
zogen auf die Trockensubstanz, enthält. Die Reaktion wird
bei 20°C 5 min durchgeführt. Anschließend wird die Reak
tion durch Zugabe von 20 µl konzentrierter HCl gestoppt.
Die Konzentration der gebildeten Amide wird gaschromato
graphisch bestimmt.
Die Aktivität der Nitrilhydratase wird in folgenden Ein
heiten ausgedrückt:
1 Einheit wird definiert als diejenige Enzymmenge, die zur Bildung des Amids aus dem Nitril unter den oben beschriebe nen Bedingungen in einer Rate von 1 mmol/min erforderlich ist.
1 Einheit wird definiert als diejenige Enzymmenge, die zur Bildung des Amids aus dem Nitril unter den oben beschriebe nen Bedingungen in einer Rate von 1 mmol/min erforderlich ist.
Die spezifische Aktivität wird in Mikromol Amid pro Minute
und Milligramm Zellen, bezogen auf die Trockensubstanz
(µmol Amid/min·mg), oder in Einheiten/mg ausgedrückt.
Die Gesamtaktivität wird in Mikromol Amid pro Minute und
Milliliter Kultur (µmol Amid/min·ml) oder in Einheiten/ml
ausgedrückt.
Die Erfindung wird im folgenden durch Ausführungsbeispiele
näher erläutert.
Zellen des Stamms M33 werden in Abwesenheit von Harnstoff
auf einem Nährmedium gezüchtet, das als Stickstoffquelle
Natriumnitrat enthält. In Erlenmeyerkolben (750 ml), die
150 ml Nährmedium mit folgender Zusammensetzung (g/l)
K₂HPO₄ | |
0,5 | |
KH₂PO₄ | 0,6 |
MgSO₄ | 0,5 |
FeSO₄ | 0,005 |
CoCl₂ | 0,01 |
Glucose | 5 |
NaNO₃ | 1 |
enthalten, werden 5 ml einer Kultur des Stamms M33 gegeben,
die zuvor auf einem Medium mit gleicher Zusammensetzung 2 d
bei 30°C gezüchtet worden war. Die Kolben werden auf einer
Schütteleinrichtung bei 30°C 48 h inkubiert. Die Nitril
hydratase-Aktivität der Zellen wird unter Verwendung von
Acrylnitril als Substrat bestimmt. Die spezifische Aktivi
tät der Nitrilhydratase des Stamms M33 erreicht 200 Einhei
ten/mg, die Gesamtaktivität 360 Einheiten/ml.
Die spezifische Aktivität des Stamms M33, der auf einem Me
dium ohne Gehalt an Harnstoff kultiviert worden war, ist
somit etwa 60fach höher als die spezifische Aktivität des
Stamms J1. Hinzu kommt, daß zur Kultivierung leicht im Han
del erhältliche und preiswerte Komponenten, nämlich Glucose
und Natriumnitrat, verwendet werden.
Die Kultivierung wird in Erlenmeyerkolben (750 ml) durchge
führt, die 150 ml Nährmedium wie in Beispiel 1 enthalten,
mit dem Unterschied, daß die Glucosekonzentration 20 g/l
beträgt und anstelle von Natriumnitrat Harnstoff in einer
Menge von 2 g/l eingesetzt wird. In die Kolben werden 5 ml
einer Kultur des Stamms M33 gegeben, die zuvor auf einem
Medium mit gleicher Zusammensetzung 2 d bei 30°C gezüchtet
wurde. Die Kolben werden auf einer Schütteleinrichtung bei
30°C 48 h inkubiert. Dann werden die Zellernte sowie die
Nitrilhydratase-Aktivität unter Verwendung von Acrylnitril
als Substrat bestimmt. Die Zellernte beträgt 7,6 g/l. Die
spezifische Aktivität beträgt 180 Einheiten/mg, die Gesamt
aktivität 1386 Einheiten/ml.
Der Stamm M33 wird wie in Beispiel 1 kultiviert. Die Zellen
werden durch Zentrifugieren abgetrennt, mit 10 mM Phosphat
puffer gewaschen und in 10 mM Phosphatpuffer resuspendiert.
Unter Verwendung verschiedener Nitrile als Substrate wird
die Nitrilhydrolyse unter standardisierten Bedingungen
durchgeführt. Die Reaktion wird jeweils durch Zugabe von
konzentrierter HCl gestoppt. Die Konzentration der gebilde
ten Amide wird gaschromatographisch bestimmt.
Die erhaltenen Ergebnisse sind in Tabelle 2 zusammengefaßt.
Aus den Ergebnissen der Tabelle 2 folgt, daß der Stamm M33
die Hydrolyse sowohl aliphatischer als auch aromatischer
Nitrile zu katalysieren befähigt ist.
Der Stamm M33 wird wie in Beispiel 1 kultiviert. In Kolben
von 100 ml Fassungsvermögen, die 40 ml destilliertes Wasser
(pH 7,6) enthalten, werden eine Biomasse aus Zellen M33 bis
zur einer Konzentration von 0,5 mg/ml sowie 3-Cyanopyridin
bis zu einer Konzentration von 8 Masse-% eingebracht. Die
Kolben werden dann bei 30°C unter Rühren inkubiert. Nach
60 min wird eine 10%ige Lösung von Nicotinsäureamid erhal
ten. Im Reaktionsgemisch fehlen 3-Cyanopyridin und Nicotin
säure.
In einen Stahlreaktor mit einem Fassungsvermögen von 1,5 l,
der mit einem mechanischen Rührwerk versehen ist und im
Temperaturbereich von 12 bis 20°C thermostatisierbar ist,
werden 400 ml destilliertes Wasser (pH 7,6) eingebracht.
Darin werden 272 mg Biomasse (bezogen auf die Trockensub
stanz) des Stamms M33 resuspendiert, die wie in Beispiel 1
beschrieben erhalten wurde. Danach wird zu dem Reaktionsge
misch reines Acrylnitril in einer solchen Geschwindigkeit
zugegeben, daß seine Konzentration in der Lösung 2 Masse-%
nicht übersteigt. Die qualitative und quantitative Zusam
mensetzung der Lösung wird durch Gas-Flüssig-Chromatogra
phie bestimmt. Insgesamt werden in den Reaktor 173 g Acryl
nitril eingebracht. Im Laufe von 8 h wird eine Lösung von
Acrylamid einer Konzentration von 46% (Masse/Volumen) er
halten. Die Ausbeute an Acrylamid beträgt nahezu 99%.
Acrylnitril und Acrylsäure als Nebenprodukte wurden nicht
festgestellt.
Der anmeldungsgemäße Stamm M33 besitzt folglich eine hohe
Nitrilhydratase-Aktivität und ist befähigt, sowohl alipha
tische als auch aromatische Nitrile zu den entsprechenden
Amiden zu hydrolysieren. Im Unterschied zu den bekannten
Mikroorganismenstämmen ist der Mutantenstamm M33 imstande,
bei Kultivierung in Medien, die keinen Induktor der Syn
these von Nitrilhydratase enthalten, Nitrilhydratase kon
stitutiv zu bilden. Dies erlaubt, zur Züchtung der Zellen
Medien ohne Zusatz von Vitaminen mit Glucose als Kohlen
stoffquelle und Natrium- oder Kaliumnitrat als Stickstoff
quelle zu verwenden, die keine speziellen Verbindungen wie
etwa Induktoren der Bildung der Nitrilhydratase (Amide,
Nitrile oder Harnstoff in hohen Konzentrationen) enthalten.
Ein weiterer Vorteil des Stamms M33 ist in dem praktisch
völligen Fehlen der Amidaseaktivität zu sehen, wodurch die
Bildung der Säuren aus den Amiden während der katalytischen
Hydrolyse der Nitrile blockiert ist.
Der Nitrilhydratase produzierende Stamm Rhodococcus
rhodochrous M33 empfiehlt sich daher in ganz besonderer
Weise für den Einsatz bei Verfahren zur Herstellung von
aliphatischen und aromatischen Amiden aus Nitrilen.
Claims (9)
1. Nitrilhydratase produzierender Stamm von Rhodococcus
rhodochrous, der unter der Hinterlegungsbezeichnung VKM
Ac-1515 D bei der Allrussischen Sammlung von Mikroorga
nismen, Institut für Biochemie und Physiologie der
Mikroorganismen, Puschkino, Moskau, Russische Födera
tion, hinterlegt ist.
2. Verfahren zur Herstellung von Amiden aus Nitrilen unter
Verwendung eines Nitrilhydratase produzierenden Stamms
der Mikroorganismenart Rhodococcus rhodochrous, dadurch
gekennzeichnet, daß der Stamm von Rhodococcus
rhodochrous verwendet wird, der unter der Hinterle
gungsbezeichnung VKM Ac-1515 D bei der Allrussischen
Sammlung von Mikroorganismen, Institut für Biochemie
und Physiologie der Mikroorganismen, Puschkino, Moskau,
Russische Föderation, hinterlegt ist.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß
die Umsetzung in einem wässerigen Medium durchgeführt
wird, das einen pH-Wert im Bereich von 3 bis 10 auf
weist.
4. Verfahren nach Anspruch 2 und/oder 3, dadurch gekenn
zeichnet, daß die Umsetzung bei einer Temperatur im Be
reich von 0 bis 50°C und vorzugsweise im Bereich von 4
bis 30°C durchgeführt wird.
5. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 2 bis
4, dadurch gekennzeichnet, daß der Rhodococcus
rhodochrous-Stamm VKM Ac-1515 D zuvor bei bis 45°C und
vorzugsweise 25 bis 30°C in einem Nährmedium kulti
viert wird.
6. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 2 bis
5, dadurch gekennzeichnet, daß der Rhodococcus
rhodochrous-Stamm VKM Ac-1515 D in Form einer Zellsus
pension verwendet wird.
7. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 2 bis
6, dadurch gekennzeichnet, daß die Konzentration des
Nitrils höchstens 8 Masse-% und vorzugsweise höchstens
2 Masse-%, bezogen auf die Masse des Reaktionssystems,
beträgt.
8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
das Nitril dem Reaktionsmedium durch periodische oder
kontinuierliche Zugabe so zugegeben wird, daß die vor
gegebene Maximalkonzentration nicht überschritten wird.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 8, dadurch ge
kennzeichnet, daß als Nitril 2-Cyanopyridin, 3-Cyano
pyridin, 4-Cyanopyridin, Acrylnitril oder Acetonitril
eingesetzt werden.
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Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1385972A2 (de) | 2001-04-26 | 2004-02-04 | Stockhausen GmbH | Verfahren zur herstellung einer wässrigen acrylamidlösung mit einem biokatalysator |
EP1385974A2 (de) | 2001-04-26 | 2004-02-04 | Stockhausen GmbH | Verfahren zur herstellung einer wässrigen acrylamidlösung mit einem biokatalysator |
DE10315376A1 (de) * | 2003-04-03 | 2004-11-04 | Stockhausen Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur Kultivierung des Nitrihydratase-produzierenden Stammes RHODOCOCCUS RHODOCHROUS M33 |
RU2600868C2 (ru) * | 2014-09-22 | 2016-10-27 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем нефти и газа Сибирского отделения Российской академии наук | Препарат для очистки почв от нефтезагрязнений |
Families Citing this family (18)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5866379A (en) * | 1997-01-28 | 1999-02-02 | Novus International | Enzymatic conversion of α-hydroxynitriles to the corresponding .alpha. |
CN1108372C (zh) | 1997-07-22 | 2003-05-14 | 隆萨股份公司 | 酰胺的制备工艺 |
EA200100718A1 (ru) | 1999-10-26 | 2001-12-24 | Сова Денко К.К. | Новая бактерия rhodococcus, ген нитрилазы, ген нитрилгидратазы и ген амидазы бактерии rhodococcus и способ получения карбоновых кислот с их использованием |
IN209344B (de) * | 2000-12-20 | 2007-09-21 | Dia Nitrix Co Ltd | |
AU2002228036A1 (en) * | 2001-01-09 | 2002-07-24 | Lonza Ag | Microbiological method for producing amides |
DE10120555A1 (de) * | 2001-04-26 | 2002-10-31 | Stockhausen Chem Fab Gmbh | Verfahren zur Herstellung einer wässrigen Acrylamidlösung mit einem Biokataysator |
US7273889B2 (en) * | 2002-09-25 | 2007-09-25 | Innovative Drug Delivery Systems, Inc. | NMDA receptor antagonist formulation with reduced neurotoxicity |
GB0327901D0 (en) | 2003-12-02 | 2004-01-07 | Ciba Spec Chem Water Treat Ltd | Process for producing polymers |
CA2547393C (en) * | 2003-12-02 | 2013-08-27 | Ciba Specialty Chemicals Water Treatments Limited | Strain of rhodococcus rhodochrous ncimb 41164 and its use as producer of nitrile hydratase |
JP5085936B2 (ja) * | 2003-12-02 | 2012-11-28 | チバ スペシャルティ ケミカルズ ウォーター トリートメント リミテッド | アミドの製造 |
US8012758B2 (en) * | 2007-02-16 | 2011-09-06 | Nalco Company | Method of monitoring microbiological activity in process streams |
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RU2539033C1 (ru) * | 2013-10-21 | 2015-01-10 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") | РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ Rhodococcus rhodochrous, ОБЛАДАЮЩИЙ КОНСТИТУТИВНОЙ АЦИЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТЬЮ, И СПОСОБ СИНТЕЗА N-ЗАМЕЩЕННЫХ АКРИЛАМИДОВ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ЭТОГО ШТАММА В КАЧЕСТВЕ БИОКАТАЛИЗАТОРА |
EP3201349A2 (de) * | 2014-09-30 | 2017-08-09 | Basf Se | Mittel und verfahren zur herstellung von amidverbindungen mit weniger acrylsäure |
EP3225693A1 (de) * | 2016-03-29 | 2017-10-04 | Basf Se | Verfahren zur herstellung von wässrigen acrylamidlösungen |
ITUA20163572A1 (it) | 2016-05-18 | 2017-11-18 | Columbia S R L | Metodo biotecnologico per la produzione di acrilammide e relativo nuovo ceppo batterico |
Family Cites Families (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2018240B (en) * | 1978-03-29 | 1982-12-22 | Nitto Chemical Industry Co Ltd | Process for producing acrylamide or methacrylamide utilizing microoganisms |
JPS5991879A (ja) * | 1982-11-16 | 1984-05-26 | Hideaki Yamada | シユ−ドモナス属細菌の培養法 |
JPS6083581A (ja) * | 1983-10-13 | 1985-05-11 | Hideaki Yamada | シユ−ドモナス属細菌の培養法 |
US5179014A (en) * | 1985-01-08 | 1993-01-12 | Nitto Chemical Industry Co., Ltd. | Process for the preparation of amides using microorganisms |
JPS61162193A (ja) * | 1985-01-08 | 1986-07-22 | Nitto Chem Ind Co Ltd | 微生物によるアミド類の製造法 |
JPH0740948B2 (ja) * | 1985-06-04 | 1995-05-10 | 旭化成工業株式会社 | アミドの微生物学的製造法 |
US5200331A (en) * | 1985-06-04 | 1993-04-06 | Asahi Kasei Kogyo Kabushiki Kaisha | Method of producing an amide utilizing a microorganism |
US5206158A (en) * | 1986-07-02 | 1993-04-27 | Gist-Brocades N.V. | Process for the preparation of difluorobenzamide |
MX169933B (es) * | 1987-09-18 | 1993-08-02 | Hideaki Yamada | Procedimiento para la produccion biologica de amidas |
CZ280901B6 (cs) * | 1988-10-06 | 1996-05-15 | Hideaki Yamada | Způsob kultivace bakterií |
JP2548051B2 (ja) * | 1991-05-22 | 1996-10-30 | 日東化学工業株式会社 | アクリルアミド水溶液の安定化法 |
DE69331323D1 (de) * | 1992-07-10 | 2002-01-24 | Energy Biosystems Corp | Für einen entschwefelungs-biokatalysator kodierende, rekombinante dna |
-
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- 1993-12-17 RU RU9393056089A patent/RU2053300C1/ru active
-
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- 1994-12-15 WO PCT/RU1994/000275 patent/WO1995017505A1/ru active IP Right Grant
- 1994-12-15 DE DE4480132T patent/DE4480132T1/de active Pending
- 1994-12-15 CA CA002155635A patent/CA2155635C/en not_active Expired - Lifetime
-
1995
- 1995-08-16 FI FI953865A patent/FI111738B/fi not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
NICHTS ERMITTELT * |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1385972A2 (de) | 2001-04-26 | 2004-02-04 | Stockhausen GmbH | Verfahren zur herstellung einer wässrigen acrylamidlösung mit einem biokatalysator |
EP1385974A2 (de) | 2001-04-26 | 2004-02-04 | Stockhausen GmbH | Verfahren zur herstellung einer wässrigen acrylamidlösung mit einem biokatalysator |
US7309590B2 (en) | 2001-04-26 | 2007-12-18 | Ashland Licensing And Intellectual Property Llc | Method for producing an aqueous acrylamide solution with a biocatalyst |
DE10315376A1 (de) * | 2003-04-03 | 2004-11-04 | Stockhausen Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur Kultivierung des Nitrihydratase-produzierenden Stammes RHODOCOCCUS RHODOCHROUS M33 |
DE10315376B4 (de) * | 2003-04-03 | 2005-07-14 | Stockhausen Gmbh | Verfahren zur Kultivierung des Nitrilhydratase-produzierenden Stammes RHODOCOCCUS RHODOCHROUS M33 |
RU2600868C2 (ru) * | 2014-09-22 | 2016-10-27 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем нефти и газа Сибирского отделения Российской академии наук | Препарат для очистки почв от нефтезагрязнений |
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Publication number | Publication date |
---|---|
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