DE2850950B2 - Verwendung von nativem oder thermisch modifiziertem Cytochrom c als Stabilisator für ein immunochemisches Meßreagens, immunochemisches Meflreagens sowie Pufferlösung zur Probenverdünnung bei immunchemischen Meßverfahren - Google Patents
Verwendung von nativem oder thermisch modifiziertem Cytochrom c als Stabilisator für ein immunochemisches Meßreagens, immunochemisches Meflreagens sowie Pufferlösung zur Probenverdünnung bei immunchemischen MeßverfahrenInfo
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Description
Eine Vielzahl von immunochemischen Methoden wird zur Messt» !g von physiologisch aktiven Substanzen
in Körperfluids, Blut, urin oddgL verwendet Von
diesen Methoden hat eine Methode breite Anwendung zur Messung der vorstehend erwähnten physiologisch
aktiven Substanzen gefunden, bei deren Durchführung ein Meßreagens eingesetzt wird, in dem feinverteilte
körnige Feststoffe, wie Blutzelren, hochmolekulare Latices etc. als Träger für das Antigen oder den
Antikörper 'vorliegen, wobei die Messung auf der Grundlage einer immunochemischen Agglutinierungsreaktion oder A?glutinierungsinhibieningsreaktion erfolgt Eine derartige Methode läßt sich leicht anwenden
und liefert schnell die Meß^rgebnuse.
Das Reagens wird beispielweise für die Diagnose einer Schwangerschaft durch Messung von Gonadrotropin (hCG), das in dem Serum oder Urin einer Frau,
die evtl. schwanger ist, enthalten ist, oder für die
Diagnose des Wachsens eines Fötus durch Messen des östriols in dem Urin einer schwangeren Frau verwendet
Daher sind die wesentlichen Anforderungen an das Reagens folgende: Zuerst muß das Reagens eine
derartig hohe Meßempfindlichkeit besitzen, daß sogar dann, wenn eine Spurenmenge eines festzustellenden
Materials vorliegt, das Reagens die Agglutinierungsreaktion oder die Agglatinierungsinhibierungsreaktion
auf der Grundlage der immunochemischen Reaktion bewirkt, die zwischen dem zu entdeckenden Material
und dem Reagens abläuft, und damit die Messung des zu entdeckenden Materials ermöglicht Ferner muß das
Reagens eine derartig hohe Spezifität besitzen, daß in dem Fall, daß das zu entdeckende Material nicht
vorliegt das Reagens keine Agglutinierungsreaktioii oder keine Agglutinierungsinhibierungsreaktion verursacht. Ferner muß das Reagens die Empfindlichkeit und
die Spezifität in dem Grad, wie er unmittelbar nach der Herstellung des Reagenses vorliegt, beibehalten, und
zwar auch nach einer längeren Zeitspanne. Dies bedeutet, daß das Reagens eine gute Lagerungsfähigkeit
besitzen muß.
Es war bisher schwierig, ein Reagens mit feinverteilten Feststoffteilchen in einem Zustand der Meßsmpfindlichkeit und Spezifität, wie er unmittelbar nach der
Herstellung vorliegt, während einer längeren Zeitspanne zu halten. Daher ist das Reagens mit dem Nachteil
behaftet, daß es eine kurze wirksame Zeitspanne besitzt und häufig sogar während der wirksamen Periode
Um diese Probleme zu meistern» sind verschiedene Methoden bekanntgeworden. Erwähnt sei beispielsweise eine Methode, bei deren Durchführung zuvor die
feinverteilten Feststoffteilchen mit einem Protein bedeckt werden, das nicht an der Immunoreaktion
teilnimmt, worauf man das Antigen oder den Antikörper sich an den feinvertrilten Feststoffteilchen adsorbieren
läßt Ferner ist eine Methode bekannt, bei deren
Durchführung man das Antigen oder den Antikörper sich an den feinverteilten Feststoffteilchen adsorbieren
läßt, worauf eine Behandlung derselben mit einer Proteinlösung erfolgt die nicht an der Intmunoreaktion
teilnimmt OP-PS 12 471/1968, JP-PS 11407/1974 und
JP-OS 82 230/1975).
Diese bekannten Methoden verwenden als Proteine, die nicht an der Immunoreaktion teilnehmen, Blutserumalbumin (BSA), Eialbumin (EA), Lactoalbumin,
Hämoglobin, Blutserumglobulin, Lactoglobulin od. dgl.
Obwohl diese Proteine bestimmte Wirkungen zeigen, sind ihre Effekte noch nicht vollständig zufriedenstellend.
Es stellte sich daher die Aufgabe, ein Stabilisierungsmittel zu finden, welches ein Reagens in die Lage
versetzt, in ausreichendem Ausmaße seine hohe Meßempfindlichkeit und -spezifität während einer
längeren Zeitspanne beizubehalten. Die Erfindung beruht auf der Erkenntnis, daß Cytochrom c eine
hervorragende Wirkung ergibt
Die Erfindung betrifft demgemäß die durch die Patentansprüche gekennzeichneten Gegenstände.
Ein erfindungsgemäß verwendbarer Stabilisator wird in der Weise erhalten, daß Cytochrom c in einer
Konzentration von 0,01 bis 5%, vorzugsweise 0,1 bis
1,0%, in einer 0,05- bis 0,2%igen Natriumazidlösung
aufgelöst wird, worauf die Lösung über Nacht in einer Pufferlösung dialysiert wird, beispielsweise in einem
Glycin-Kochsalz-Puffer (nachfolgend als GBS bezeichnet, pH 8,2).
ω Die Konzentration an Cytochrom c darf nicht
geringer als 0,01% sein, da sonst die angestrebten Wirkungen nicht erzielt werden. Obwohl keine kritische
obere Grenze bezüglich der Konzentration an Cytochrom c besteht, ist es in der Praxis zweckmäßig, die
μ Konzentration nicht höher als 5%, insbesondere nicht
höher als 1 %, zu halten.
Cytochrom c bietet eine weitere vorteilhafte Wirkung, wenn es einer Wärmebehandlung unterzogen
wird Dazu werden 0,01 bis 5%, vorzugsweise 0,1 bis
1,0%, Cyt.och.rom c in einer 0,05- bis 0,2%igen
Natriumazidlösung aufgelöst, worauf die Lösung in einem Autoklaven auf 100 bis 1300C während einer
Zeltspanne von 2 bis 8 Stunden erhitzt wird. Nach dem
Entfernen der durch das Erhitzen gebildeten Feststoffe wird die erhaltene Lösung in einer Pufferlösung, wie
beispielsweise GBS, dialysiert
Vorzugsweise wird auf eine Temperatur von 100 bis I30°C und insbäsondere 115 bis 125°C erhitzt. Die
Erhitzungszeit schwankt von 2 bis 8 Stunden.
Während der Herstellung des Stabilisators kann man anstelle der Dialyse der Cytochrom-c-Lösung mit der
Pufferlösung in der Weise verfahren, daß jeder der Bestandteile der Pufferlösung in der jeweils gewünschten Konzentration zugesetzt wird, worauf der pH auf
einen geeigneten Wert eingestellt wird.
Fig. 1 zeigt ein Absorptionsspektrum eines Stabilisators, der hauptsächlich aus nativem Cytochromc
besteht Der Absorptionspeak, der für Cytochrom c
spezifisch ist, wird im sichtbaren Bereich bei 550 nm
beobachtet
Die Fig.2 zeigt ein Absorptionsspek^um im
sichtbaren Bereich eines Stabilisators, der hauptsächlich aus thermisch modifiziertem Cytochrom c besteht Es ist
ersichtlich, daß infolge der thermischen Modifizierung die Absorption bei 550 nm, die für Cytochrom c
spezifisch ist, verschwindet, wobei man eine allmähliche
Zunahme der Absorption in Richtung auf die kürzere Wellenlänge feststellt
Zur Gewinnung eines Reagenses, das seine Meßempfindlichkeit und -spezifität während einer längeren
Zeitspanne durch Einsatz von Cytochrom c als Stabilisator beizubehalten vermag, werden die feinverteilten
Feststoffteilchen, an denen das Antigen oder der Antikörper adsorbiert ist, mit nativem oder thermisch
modifiziertem Cytochrom c behandelt In diesem Falle können noch weiter verbesserte Wirkungen dadurch
erzielt werden, daß man gleichzeitig eine Pufferlösung zum Verdünnen der Probe verwendet welche natives
oder thermisch modifiziertes Cytochrom c als Stabilisator enthält
Die Behandlung der feinverteilten Feststoffteilchen mit Cytochromc wird in der folgenden Weise
durchgeführt: Eine Pufferlösung, in der das Antigen oder der Antikörper aufgelöst ist, wird mit einer
Suspension der feinteiligen Feststoffteilchen vermischt
wobei die Teifchen das Antigen oder den Antikörper adsorbieren, worauf man eine Zentrifugenabscheidung
durchführt Dann wird natives oder thermisch modifiziertes Cytochrom c zugesetzt und mit dem erhaltenen
Niederschlag vermischt Nachdem die feinteiligen Feststoffteilchen durch Zentrifugieren abgetrennt wor
den sind, wird der erhaltene Niederschlag erneut in der Pufferlösung suspendiert
Die Pufferlösung zum Verdünnen der Probe wird mit Cytochrom c in der folgenden Weise versetzt: Komponenten der zu verwendenden Pufferlösung, beispielsweise Glycin und Natriumchlorid im Falle von GBS1 werden
einer wärmebehandelten Lösung von Cytochrom c oder thermisch modifiziertem Cytochrom c in der Weise
zugesetzt, daß die jeweiligen Konzentrationen 0,75% bzw. 0,85% betragen. Nachdem Natriumazid in einer
Endkonzentration von 0,1% zugesetzt worden ist, wird der pH der Lösung auf 8.2 unter Verwendung einer 1/10
n-Natriumhydroxidlösung eingestellt.
Außer der vorsfehend erwähnten GBS kommen auch Pufferlösungen in Krage, vie sie gewöhnlich auf dem
Gebiet der Immunochemie eingesetzt werden, beispielsweise Phosphatpuffer-Kochsalzlösung (PBS), Boratpuffer-Kochsalzlösung (BBS) etc.
Als feinverteilte Feststoffteilchen für ein erfindungs gemäßes immunochemisches Meßreagens eignen sich
Blutzellen verschiedener Tiere, hochmolekulare Latices
(beispielsweise Polystyrollatex, Styrol/Butadien-Copolymerlatex, Styrol/Divinylbenzol-Copolymerlatex) oder
hochmolekulare Latices, in die eine fimktionelle Gruppe
ίο eingeführt worden ist beispielsweise eine Hydroxylgruppe oder Carboxylgruppe.
Außer Cytochrom c aus Fferdeherzmuskel können auch das Cytochrom c des Rinderherzmuskels oder das
Hefecytochrom c erfindungsgemäß eingesetzt werden.
is Die Erfindung wird unter Bezugnahme auf die folgenden Versuchsbeispiele und Beispiele näher
erläutert
Dieses Beispiel zeigt einen Vergleic": der Wirkungen
von Cytochromc und von Proteinen, wie sie bisher
verwendet worden sind.
Cytochrom c wird nach einer Methode behandelt wie
sie in dem später beschriebenen Beispiel 1 oder 2
erläutert wird. Als herkömmliche Proteine werden jeweils BSA und EA in einer Konzentration von 0,1 % in
GBS aufgelöst Die eingesetzten feinteiligen Feststoffteilchen bestehen aus Polystyrollatexteilchen, an denen
man den Antikörper nach der in dem weiter unten folgenden Beispiel 6 beschriebenen Methode adsorbiert
Anschließend wird ein Reagens in der Weise hergestellt, daß man eine Behandlung mit einem jeden der
vorstehend beschriebenen Stabilisierungsmittel oder
Eine Pufferlösung zum Verdünnen der Probe, welche Cytochrom c enthält wird gemäß Beispiel 3 hergestellt
Die vorstehend erwähnten Reagenzien und die Pufferlösung werden bei 37° C während der ir>
> der
Nach Beendigung einer jeden vorherbestimmten Zeitspanne werden die mit Cytochrom c behandelten
Reagenzien mit der vorstehend erwähnten Pufferlösung zum Verdünnen der Probe vereinig», während die
Reagenzien, die mit BSA oder EA behandelt worden sind, mit einer Pufferlösung zum Verdünnen der Probe,
die kein Stabilisierungsmittel enthält vereinigt werden. Anschließend wird hCG für jedes Reagens gemessen,
um eine Veränderung der Meßempfindlichkeit festzu
stellen und das Auftreten einer nichtspezifischen
Reaktion zu beobachten. Die Meßempfindlichkeit wird als Grad der Agglutinierung zum Zeitpunkt der
Messung von hCG von 1 iu/ml und 0,5 iu/ml zum
Ausdruck gebracht, während die nichtspezifische
Reaktion als Grad der Agglutinierung zum Zeitpunkt
der Messung des Urins einer nichtschwangeren Fr-au, der kein hCG enthält, ausgedrückt wird.
Der Agglutinierungsgrad wird nach folgendem Standard bewertet:
+ + zeigt eine starke Agglutinierung bei visueller Beobachtung.
+ zeigt eine klare Agglutinierung b'.'i visueller
Beobachtung.
± zeigt eine undeutliche Agglutinierung bei visueller Beobach'ung.
- zeigt keine Agglutinierung bei visueller Beobachtung.
Cytochrom c
Herkömmliche
r miOmc
Konzentration Lagerungs/eilspannc an hCCi
.::'.. .">!'. t;lbiir 1 Monat
nach der (iu/ml) Herstellung
Das Stabilisierungs- 1,0
mittel besteht haupt- 0,5
sächlich aus nativem 0
Cytochrom c
Cytochrom c
Das Stabilisierungs | 1,0 |
mittel besteht haupt | 0,5 |
sächlich aus thermisch | 0 |
modifiziertem | |
Cytochrom c | |
BSA | 1.0 |
0,5 | |
0 | |
IA | 1.0 |
0.5 | |
0 |
.1 Mr-
"onatc
( (■
•I- Y
-r
f f
Der Stabilisator, d^r hauptsächlich aus nativem
Cytochrom c besteht, zeigt eine leichte Veränderung seiner Spezifität nach einer 6 Monate dauernden
Lagerung, während der Stabilisator, der hauptsächlich aus dem thermisch modifizierten Cytochrom c besteht,
eine nichtspezifische Reaktion sogar nach einer längeren Zeitspanne erkennen läßt. Im Falle von BSA
kann die Meßempfindlichkeit relativ gut beibehalten werden, die nichtspezifische Reaktion wird jedoch im
Verlaufe der Lagerungsperiode in zunehmendem Maße ausgeprägter, so daß die Zuverlässigkeit des Reagenses
verlorengeht. Im Falle der Verwendung von EA steigt die Meßempfindlichkeit im Verlaufe der Lagerungsperiode
an, wobei eine starke Agglutinierung sogar im Falle eines Urins einer nichtschwangeren Frau, der kein
hCG enthält, festzustellen ist, wodurch die Messung von hCG bedeutungslos wird.
Versuchsbeispiel 2
Ein Reagens, das durch Behandeln der feinteiligen Feststoffteilchen mit dem Stabilisierungsmittel, das aus
thermisch modifiziertem Cytochrom c besteht, erhalten worden ist. ein Reagens ohne Stabilisierungsbehandlung,
eine Pufferlösung zum Verdünnen der Probe, welche rf :s vorstehend beschriebene Stabilisierungsmittel
und eine Pufferlösung zum Verdünnen der Probe, die kein Stabilisierungsmittel enthält, werden bei 37°C
jeweils während der in Tabelle III angegebenen Zeitspanne gelagert. Nach dem Verstreichen einer
jeden Zeitspanne erfolgt eine Vereinigung in der ebenfalls in der Tabelle III angegebenen Kombination
zum Messen von hCG und zur Bestimmung der Wirkungen des Stabilisierungsmittels.
Wie aus der Tabelle III ersichtlich ist, kann die maximale Stabilisierungswirkung durch Vereinigung
des Reagenses, das mit dem Stabilisierungsmittel behandelt worden ist. und der . Pufferlösung zum
Verdünnen der Probe, die das Stabilisierungsmittel enthält, erzielt werden, Eine Stabilisierungswirkung bis
zu einem bestimmten Ausmaß wird ebenfalls in dem Falle beobachtet, in dem das Reagens allein mit dem
Stabilisierungsmittel behandelt worden ist Die in diesem Falle angewendeten Untersuchungsstandards
sind die gleichen wie im Falle des Versuchsbeispiels 1.
Kombination aus Reagens und
Pufferlösung zum Verdünnen einer
Probe
Pufferlösung zum Verdünnen einer
Probe
Konzentration
anhCG
anhCG
(iu/ml)
Lagerungsperiode
unmittelbar
nach der
Herstellung
nach der
Herstellung
1 Monat
3 Monate
6 Monate
Stabilisiertes Reagens und 1,0
Pufferlösung, die Stabil isierungs- 0.5
mittel enthält 0
mittel enthält 0
Stabilisiertes Reagens und
Pufferlösung, die kein Stabilisierungsmittel enthält
Pufferlösung, die kein Stabilisierungsmittel enthält
Nichtstabilisiertes Reagens und
Pufferlösung, die Stabilisierungsmittel enthält
Pufferlösung, die Stabilisierungsmittel enthält
1,0
0,5
1,0
0,5
+ 'r
Fortsetzung
Kombination aus Reagens und Konzentration
Pufferlösung /um Verdünnen einer an hCG
l'rnhe
l'rnhe
fiu/ml)
Nicht.sj.'.Jilisiertes Reagens sowie 1,0
nichLsUibilisierte Pufferlösung 0,5
nichLsUibilisierte Pufferlösung 0,5
Lagerungs pe rinde
unmitti. .Dai
nach der Herstellung
I Monat
} Monate
Mo,i,i,^
Versuchsbeispiel 3
Dieses Beispiel zeigt die Stabilisierungswirkung in Abhängigkeit einer Veränderung der Konzentration an
f "ytochrom c. Die experimentellen Methoden sowie die Untersuchungsstandards sind die gleichen wie im Falle
des Versuchsbeispiels I. Wie aus der Tabelle IV hervorgeht, werden eine Herabsetzung der Meßempfindlichkeit
sowie das Auftreten der nichtspezifischen Reaktion bei einer Konzentration von 0,01% nach einer
Lagerung während einer längeren Zeitspanne festgestellt, ausgezeichnete Wirkungen werden iedoch bei
Konzentrationen oberhalb 0.1 % festgestellt.
Konzentration
.m ( vtnchrnm c
.m ( vtnchrnm c
Kon/enlration
an hC'Ci
an hC'Ci
(iu/ml)
l.ageriingsperiode
unmittelbar nach der 1 Monat Herstellung
i Monate
(i Monate
1,0
0,5
0
0,5
0
1,0
0,5
0
0,5
0
1,0
0,5
0
1.0
0,5
0
f +
Cytochrom c des Pferdeherzmuskels wird in einer
Konzentration von 03% in einer 0,l%igen Natriumazidlösung aufgelöst Die erhaltene Lösung wird in GBS
(pH 8,2) über Nacht zur Gewinnung des Stabilisierungsmittels dialysiert
Cytochrom c des Rinderherzmuskels wird in einer Konzentration von 0,5% in einer 0,l%igen Natriumazidlösung aufgelöst Die erhaltene Lösung wird in
einem Autoklaven bei 121°C während einer Zeitspanne von 6 Stunden behandelt Nachdem feste Materialien
durch Filtration entfernt worden sind, wird das Filtrat in GBS über Nacht dialysiert.
Ein Hefecytochrom c wird in einer 0,l%igen Natriumazidiösung aufgelöst Die erhaltene Lösung wird in
einem Autoklaven bei 12I°C während einer Zeitspanne ίο von 4 Stunden wärmebehandelt Nachdem feste
Materialien entfernt worden sind, werden Glycin, Natriumchlorid sowie Natriumazid dem Filtrat zur
Einstellung von Konzentrationen von 0,75%, 0,85% bzw. 0,1% zugesetzt. Die Lösung wird auf einen pH von
13,2 unter Einsatz einer 1/lOn-Natriumhydroxidlösung
eingestellt Dabei wird eine Pufferlösung zum Verdünnen der Probe erhalten.
hCG wird in einer Konzentration von 0,03% in einer IBoratpufferlösung aufgelöst Zu 50 ml der erhaltenen
!Lösung wird eine gleiche Menge einer Suspension von 10% Polystyrollatex (durchschnittlicher Teilchendurchmesser 0,54 Mikron) gegeben, worauf auf 37° C während
einer Zeitspanne von 30 Minuten erhitzt wird Dabei läßt man den Polystyrollatex das hCG absorbieren.
Nach einer Zentrifugenabscheidung werden 500 ml des Stabilisierungsmittels, das gemäß Beispiel 2 hergestellt
worden ist, dem Niederschlag zugesetzt. Nach einem Absitzenlassen bei 4°C über Nacht und einer Zentrifugenabscheidung
wird der Niederschlag erneut in der Pufferlösung suspendiert, um damit das hCG-Meßreagens
zu stabilisieren.
Menschliche Placentalactogen (hPL) wird in einem Kaninchen zu:' Gewinnung eines Anti-hPL-Antiserums
immunisiert Das erhaltene Anti-hPL-Antiserum wird durch Aussalzen mit Natriumsulfat gereinigt, wobei eine
Anti-hPL-y-Globulinfraktion erhalten wird. Diese Fraktion
wird dann in einer Konzentration von 0,06% in PBS aufgelöst Zu 200 ml dieser Lösung werden 200 ml einer
3,3%igcn Suspension von roten Schafsblutzellen gegeben, die mit Formalin und Gerbsäure behandelt worden
sind. Dann wird vermischt, auf 37°C während einer Zeitspanne von 10 Minuten erhitzt und eine Abtrennung
durch Zentrifugieren durchgeführt. Dabei erhält man Anti-hPL-y-Gtobulin-adsorbierende Blutzellen. Nachdem
die Blutzellen mit PBS gewaschen worden sind, werden 200 ml des gemäß Beispiel 2 hergestellten
Stabilisierungsmittels zugesetzt, worauf man bei 1O0C über Nacht absitzen läßt. Anschließend werden die
Anti-hPL-y-GIobulin-adsorbierenden Blutzellen durch
Zentrifugieren abgetrennt und erneut in PBS suspendiert
Gonadotropin (hCG) wird in einem Kaninchen zur Gewinnung eines Anti-hCG-Antiserums immunisiert.
Eine y-Globulin-Fraktion wird aus dem erhaltenen
Antiserum durch Aussalzen unter Verwendung von Natriumsulfat gereinigt Die Fraktion wird dann in einer
Konzentration von 0,06% in GBS aufgelöst. Zu 20 ml dieser Lösung werden 20 ml einer 10%igen Suspension
eines Styrol/Divinylbenzol-Copolymerlatex (durchschnittlicher Teilchendurchmesser 0,3 Mikron), wobei in
den Latex Hydroxylgruppen eingeführt worden sind, zugesetzt
Dann wird auf 37° C während einer Zeitspanne von 10
Minuten erhitzt damit der Latex das Anti-hCG-y-Globulin
adsorbiert Nach einem Waschen mit GBS werden 220 m! des gemäß Beispiel 2 hergestellten Stabilisierungsmittels
dei,: Niederschlag zugesetzt. Nach einem Absitzenlassen bei 4°Cüber Nacht wird der Latex durch
Zentrifugieren abgetrennt und dann in GBS suspendiert.
hPL wird in einem Kaninchen zur Gewinnung eines
Anti-hPL-Antiserums immunisiert. Die y-Globulinfraktion
wird aus dem erhaltenen Antiserum durch Aussalzen mit Natriumsulfat gereinigt. Die Fraktion
wird in einer Konzentration von 0,6% in PBS aufgelöst. Zu 20 ml dieser Lösung wird eine gleiche Menge einer
10%igen Suspension eines Styrol/Divinylbenzol-Copolymerlatex
(durchschnittlicher Teilchendurchmesser 0.3 Mikron) gegeben, worauf auf 56°C während einer
Zeitspanne von 20 Minuten erhitzt wird. Dabei adsorbieren die festen Teilchen die y-Globulinfraktion.
Das gemäß Beispiel 1 hergestellte Stabilisierungsmittel wird dem durch Zentrifugieren erhaltenen Niederschlag
zugesetzt, worauf man das Ganze bei tiefer Temperatur über Nacht stehen läßt. Der Niederschlag wird durch
Zentrifugenabtrennung gesammelt und erneut in PBS suspendiert.
östriol 16,17-dihämisuccinat-BSA wird in einem
Kaninchen zur Gewinnung eines Antiöstriolantiserums immunisiert. Eine y-Globulinfraktion wird aus dem
so erhaltenen Antiserum unter Verwendung von Natriumsulfat gereinigt. Die Fraktion wird in einer Konzentration
von 0,08% in GBS aufgelöst Zu 5 ml dieser Lösung wird eine 10%ige Suspension von Styrol/Divinylbenzol-Copolymerlatex
(durchschnittlicher Teilchendurchmesser ungefähr 03 Mikron) gegeben, worauf auf 45°C
während einer Zeitspanne von 1 Stunde erhitzt wird. Dabei adsorbiert der Latex das Antiöstriol-y-globulin.
Nach einer Zentrifugenabscheidung wird ein gemäß Beispiel 2 hergestelltes Stabilisierungsmittel dem
Niederschlag zugesetzt, worauf man das Ganze bei 4°C über Nacht absitzen läßt. Nach der Zentrifugenabscheidung
des Latex wird der Niederschlag gesa.iimelt und
erneut in GBS suspendiert.
Hierzu 2 Blatt Zeichnungen
Claims (1)
- Patentansprüche;1, Verwendung von nativem oder thermisch modifiziertem Cytochrom c als Stabilisator für ein immunochemisches Meßreagens,2, Immunochemisches Meßreagens, enthaltend feinverteilte Feststoffteilchen, an die ein Antigen oder ein Antikörper adsorbiert ist, sowie ein Protein als Stabilisator, dadurch gekennzeichnet, daß der Stabilisator natives oder thermisch modifiziertes Cytochrom c ist3. Pufferlösung zur Probenverdünnung bei imrnunochemischen Meßverfahren, enthaltend einen Stabilisator, dadurch gekennzeichnet, daß natives oder thermiüch modifiziertes Cytochrom c als Stabilisator enthalten ist
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP52142925A JPS5816471B2 (ja) | 1977-11-29 | 1977-11-29 | 免疫化学的測定試薬の安定化剤 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2850950A1 DE2850950A1 (de) | 1979-06-07 |
DE2850950B2 true DE2850950B2 (de) | 1980-12-18 |
DE2850950C3 DE2850950C3 (de) | 1981-11-19 |
Family
ID=15326814
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2850950A Expired DE2850950C3 (de) | 1977-11-29 | 1978-11-24 | Verwendung von nativem oder thermisch modifiziertem Cytochrom c als Stabilisator für ein immunochemisches Meßreagens, immunochemisches Meßreagens sowie Pufferlösung zur Probenverdünnung bei immunchemischen Meßverfahren |
Country Status (4)
Country | Link |
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