DE2843539C3 - Testmittel zur Bestimmung einer oxydierenden Substanz - Google Patents
Testmittel zur Bestimmung einer oxydierenden SubstanzInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Testmittel zur Bestimmung
einer oxidierenden Substanz, z. B. zur qualitativen und quantitativen Bestimmung von biologischen Komponenten
wie Glucose und Harnstoff, wobei solche Komponenten in den Tests in eine oxidierende
Substanz, wie ein Peroxid, umgewandelt werden.
Glucoseoxydase wandelt Glucose enzymatisch in Gluconsäure und Wasserstoffperoxid um. Das so
gebildete Wasserstoffperoxid kann zu H2O mittels einer peroxidativ aktiven Substanz in Gegenwart eines
Indikatorsystems reduziert werden, wobei das Indikatorsystem oxidiert wird und beispielsweise durch eine
Farbänderung eine Wirkung anzeigt. Seit geraumer Zeit wird in Glucose-Testsystemen der chromogene Indikator
ortho-Tolidin verwendet, aber man erhält Ergebnisse, bei denen durch störende Substanzen, wie Ascorbinsäure,
der oxydierte Indikator reduziert wird. Außerdem wird die Sicherheit von ortho-Tolidin bezweifelt.
In gleicher Weise wird Harnsäure durch Uricase enzymatisch in Allantoin und Wasserstoffperoxyd
umgewandelt. Das gebildete Wasserstoffperoxyd kann dann durch eine peroxydativ aktive Substanz in
Gegenwart eines Indikatorsystems, und zwar gewöhnlich ortho-Dianisidin, zu H2O reduziert werden.
Die Verwendung von 3-Methyl-2-benzothiazolinonhydrazonhydrochlorid
mit N,N-Dimethylanilin zur Bildung eines Azofarbstoff-Indikators bei der Bestimmung
von Harnsäure ist aus »Gin. Chem. 17:1154 (1971)« und
Glucose »Clin. Chem. 18: 943 (1972)« bekannt. Obwohl behauptet wird, daß die Mischung mit N,N-Dimethylanilin
'beständiger ist als ortho-Tolidin, treten doch aufgrund der Anfälligkeit gegenüber Störung durch
Ascorbinsäure erhebliche Fehler bei den berichteten Harnsäure- und Glucosekonzentrationen auf.
Aus der DE-OS 25 06 115 ist es bekannt daß man zu der vorerwähnten Mischung aus 3-Methyl-2-benzothiazolinonhydrazon
mit einem aromatischen Amin, z. B. einem Naphthylamin-derivat noch einen Puffer aus
einer im Verhältnis zum Amin mindestens äquimolaren Menge an Zitronensäure und/oder Maleinsäure zugeben
kann.
Aus dem Stand der Technik ist, soweit die Verwendung von Hydrazonindikatoren zu Analyse von
H2O2 gelehrt wird, bekannt, daß die Reaktion zwischen
MBTH und dem aromatischen Amin beständig ist gegenüber der Einwirkung von reduzierenden Substanzen
auf die Probe. Obwohl dies hinsichtlich der Indikatoren wie ortho-Tolidin stimmen kann, ergibt die
Verwendung solcher Hydrazonindikatoren sehr schlechte Anzeigungen in Gegenwart von Ascorbat
Deshalb waren die früheren Arbeiten zur Entwicklung von Indikatorsystemen, die im wesentlichen frei
von einer Anfälligkeit gegenüber der Einwirkung von störenden Substanzen sind oder hinsichtlich der
Sicherheit der Indikatoren bisher ergebnislos.
Aufgabe der Erfindung ist es, ein Testmittel zur Bestimmung von oxydierenden Substanzen zur Verfügung
zu stellen, das gegenüber der Störung durch reduzierende Substanzen beständig ist.
Diese Aufgabe wird bei Testmitteln gemäß dem Oberbegriff der Ansprüche 1 und 2 durch die im
kennzeichnenden Teil der Ansprüche 1 und 2 genannten Merkmale gelöst Vorteilhafte Ausgestaltungen der
erfiridungsgemäßen Testmittel sind in den Ansprüchen 3—6 beschrieben. Die Erfindung wird im Folgenden an
Hand der Zeichnung näher erläutert.
F i g. 1 ist eine graphische Darstellung und gibt die Werte an, die man im Beispiel 2 gefunden hat bei einem
Glucoseoxydase-Peroxydasereagenz-Test unter Verwendung von ortho-Tolidin als Indikator, wobei man die
Kurve durch Auftragen des Absorptionskoeffizienten der Probe K im Verlauf der Zeit erhielt;
F i g. 2 ist eine graphische Darstellung der im Beispiel 2 bei einem Glucoseoxydase-Peroxydasereagenz-Test gemessenen Werte unter Verwendung von MBTH/ Diäthylanilin (DEA) als Indikator, wobei K gegen die Zeit aufgetragen wurde;
F i g. 2 ist eine graphische Darstellung der im Beispiel 2 bei einem Glucoseoxydase-Peroxydasereagenz-Test gemessenen Werte unter Verwendung von MBTH/ Diäthylanilin (DEA) als Indikator, wobei K gegen die Zeit aufgetragen wurde;
F i g. 3 ist eine graphische Darstellung der in Beispiel 2 berichteten Werte für einen Glucoseoxydase-Peroxydasereagenz-Test
unter Verwendung von MBTH/Chromotropsäure (CTA) als erfindungsgemäßen Indikator,
wobei man K gegenüber der Zeit aufgetragen hat;
F i g. 4 ist eine graphische Darstellung der im Beispiel
so 3 beschriebenen Werte für MBTH/CTA gemäß der Erfindung bei verschiedenen pH-Niveaus, wobei die
Werte durch Auftragen der optischen Dichte (OD) gegenüber der Zeit gewonnen wurden, und
F i g. 5 ist eine graphische Darstellung der im Beispiel 3 für verschiedene MBTH-Kuppler berichteten Werte
in Tris-Malonat-Puffer (pH 7) mit der Ausnahme, daß die Dimethylanilinkurve bei einem Zitronensäurepuffer
(pH 5) beobachtet wurde.
In dem Testsystem können die Mittel, welche auf die Gegenwart eines Bestandteiles in der Probe unter
Ausbildung wenigstens einer oxydierenden Substanz ansprechen, Glucoseoxydase für die Glucosebestimmung
oder Uricase für die Harnsäurebestimmung und eine peroxydativ aktive Substanz einschließen. Typische
peroxydative aktive Substanzen sind Peroxydase oder Hämoglobin, welche dann angewendet werden, wenn
Wasserstoffperoxyd die oxydierende Substanz ist.
Die Kupplung verläuft wahrscheinlich mittels eines
Die Kupplung verläuft wahrscheinlich mittels eines
Mechanismus, wie er für S-Methyl^-benzothiazoIinonhydrazon
(MBTH) und 4,5-Dihydroxy-2,7-naphthalin-disulfonsäure
(Chromotropsäure, CTA) im Diagramm A angegeben wird.
Diagramm A
HO OH
CTA
HO OH
Das erfindungsgemäße Testmittel ist hochempfindlich gegenüber niedrigen Niveaus von in Körperflüssigkeiten
nachzuweisenden Bestandteilen, und auch hoch widerstandsfähig gegenüber den Einwirkungen von
gleichzeitig reduzierenden Substanzen, insbesondere Ascorbinsäure in Urin. Da eine charakteristische
Farbreaktion stattfindet in Abhängigkeit von der Konzentration der nachzuweisenden oxydierenden
Substanz, ist eine quantitative Bestimmung für Bestandteile solcher Körperflüssigkeiten wie Glucose und
Harnsäure möglich.
Mit den Testmitteln gemäß der Erfindung ist ein störungsfreier Nachweis von Glucose in Mengen von
wenigstens 1,0 mg/dl möglich, und zwar auch in Gegenwart von geringen, aber nachweisbaren Mengen
von Ascorbat und es ist auch möglich, die Anwesenheit von erheblich erhöhten Glucose-Niveaus zu bestimmen,
und zwar von solchen über 500 mg/dl in Gegenwart von wenigstens 1000 mg/dl Ascorbinsäure.
Die bei den Testmitteln geeigneten Hydrazone sind Kondensationsprodukte eines Hydrazins mit einem
Aldehyd oder Keton und enthalten die Gruppe >C=NNH2. Viele Hydrazone sind zu einer oxydativen
Kupplung mit Hydroxynaphthalinsulfonaten unter Ausbildung einer gefärbten Einheit fähig. Dazu gehören u. a.
3-Methyl-2-benzothiazolinon-hydrazon,
1 -Methyl-2-chinolinon-hydrazon,
N-Methylpyridon-;2-hydrazon,
N-Methylpyridon-2-hydrazon,
N-Methyl-chinolinon-2-hydrazon,
1 -Methyl-chinolonon-4-hydrazon,
N-Methyl-2-benzothiazolinonhydrazon,
N-Methyl-thiazolinon-2-hydrazon,
N-Methyl-4-phenylthiazolinon-2-hydrazon,
N-Methyl-oxazolinon-2-hydrazon,
N-Methyl-benzooxazoünon-2-hydrazonund
l,3-Dimethyl-benz-imidazolinon-2-hydrazon.
Bevorzugt wird ein 3-(Ci-C4-Alkyl)-2-benzothiazolinon-hydrazon-chromogen,
wie 3-Methyl-2-benzothiazolinon-hydrazon (MBTH) verwendet. Solche Hydrazone sind stark reduzierende Mittel.
Auch die Säureadditionssalze der Hydrazone können verwendet werden. Alle üblichen Säureadditionssalze,
wie solche, die als Chlorwasserstoffsäure, Bromwasserstoffsäure, Schwefelsäure, Salpetersäure und dgL,
gebildet wurden, sind geeignet Die Säureadditionssalze könren entweder alleine oder sie können in Kombination
mit dem entsprechenden Hydrazon verwendet werden.
Die Molverhältnisse von Hydrazon/Kuppler liegen
Die Molverhältnisse von Hydrazon/Kuppler liegen
ίο im Bereich von 17 :1 bis etwa 1:17, wobei ungefähr
äquimolare Verhältnisse bevorzugt werden für eine optimale Kombination von Nachweisempfindlichkeit
und Störungsbeständigkeit
Die Zusammensetzung kann weiterhin Stabilisierungsmittel enthalten, wobei Carboxymethylcellulose
und Polyoxyäthylenäther von Fettalkoholen besonders bevorzugt werden.
Testmittel der Erfindung werden vorzugsweise in einem im allgemeinen neutralen oder schwach alkalisehen
pH-Bereich verwendet obwohl sie auch noch in einem etwas niedrigeren pH-Bereich wirksam bleiben.
Durch Aufrechterhaltung eines im allgemeinen neutralen oder alkalischen pH wird eine verbesserte
Reaktivität hinsichtlich der Geschwindigkeit und der Beständigkeit gegenüber Störungen erzielt, ganz im
Gegensatz zu der Lehre des Standes der Technik.
Bei der Anwendung der Testmittel in Lösung wird das Hydroxynaphthalinsulfonat vorzugsweise in Konzentrationen
von etwa 10~5 Molar (M) bis etwa 10~3 Μ
eingesetzt Das Hydrazon liegt vorzugsweise in Konzentrationen von etwa 10~5 M bis etwa 10~3 M vor.
Sind ein oder mehrere Stabilisierungsmittel vorhanden, so werden sie vorzugsweise in einer Gesamtkonzentration
von etwa 0,5 mg/dl bis etwa 5,0 mg/dl angewendet Falls Peroxydase wenigstens eines der auf die
Bestandteile ansprechenden Mittel in dem Reagenz des Testsystems vorliegt, so liegt die Konzentration der
Peroxydase vorzugsweise im Bereich von 10 μg (Mikrogramm)/1 bis etwa 200 μg/L Das zur Herstellung
der Lösung verwendete Lösungsmittel kann Wasser sein, eine physiologische Lösung, ein organisches
Lösungsmittel, wie Methanol, oder Mischungen davon.
Die Testmittel können auch eine Trägermatrix umfassen. Derartige Testmittel können durch Imprägnierung
oder nach anderen geeigneten Verfahren hergestellt werden, wie durch Drucken oder Sprühen
der Zusammensetzung auf die Matrix. Vorzugsweise wird das Testmittel durch mehrfaches Eintauchen
hergestellt. Die Konzentrationen des verwendeten Reagenz in den Flüssigkeiten liegt im Bereich von etwa
10"3 M bis zu einer gesättigten Lösung. Im allgemeinen ist bei der Verwendung eines Hydrazons und eines
Kupplers eine Konzentration von jeweils etwa 0,02 M geeignet. Die Peroxydase-Konzentration in der verwendeten
Eintauchlösung liegt im Bereich von 0,015 mg/ml bis etwa 2 mg/ml.
Der Ausdruck »Trägermatrix« bezieht sich auf feuchtigkeitsaufnehmende und nicht feuchtigkeitsaufnehmende
Matrizes, die unlöslich sind, und ihre strukturelle Einheit beibehalten, wenn sie Wasser oder
physiologischen Flüssigkeiten ausgesetzt werden. Geeignete feuchtigkeitsaufnehmende Substanzen sind z. B.
Papier, Cellulose, Holz, synthetischer Harz, Vliese, Glasfasern, Gewebe und Vliese und dergl. Nicht
feuchtigkeitsaufnehmende Matrizes &.ind organo-plastische
Materialien wie Polypropylen und dergL Wird eine feuchtigkeitsaufnehmende Matrix verwendet, so wird
die Matrix vorteilhaft durch geeignete Mittel, wie durch
einen zweiseitig klebenden Klebestreifen, an einem unlöslichen Trägerteil befestigt, wie ein organo-plastischer Streifen, z. B. Polystyrol, weil dies die Anwendung
erleichtert
Alternativ können die Testmittel auch in Form einer verpreßten ooer verformten Tablette, welche die
üblichen Trägermaterialien enthält, vorliegen.
Das Testmittel wird vorzugsweise angewendet, indem man es kurz in eine Testprobe eintaucht, oder indem
man auf andere Weise eine Testprobe auf die Trägermatrix bringt, und dadurch wird eine nachweisbare Farbänderung erzeugt, falls oxydative Komponenten
vorliegen. Das Testmittel kann in gleicher Weise angewendet werden bei Plasmaproben, Serumproben
oder anderen zu prüfenden Körperflüssigkeiten.
Die Beziehung zwischen K (dem Absorptionskoeffizienten der Probe), die in einigen der folgenden
Beispiele angegeben wird, und der Konzentration der absorbierten Spezies (wie Harnsäure oder Glucose)
wird durch die Kubelka-Monk-Gleichung ausgedrückt,
die mit einer ausführlichen Diskussion der Reflexionsspektrophotometrie in Kortümi, G., »Reflectance
Spectroscopy«, Springer-Verlag Ine, New York, 1969,
beschrieben wird. K ist dabei definiert als das Zweifache der Absorptions/Einheitsweglänge (2 AJb) bei Durchlässigkeitsmessungen. Es wird hierbei angenommen, daß
K proportional der Konzentration der gebildeten gefärbten Indikatormoleküle ist Bei der durch die
Kubelka-Monk-Gleichung definierten Beziehung nimmt der Prozentsatz der Reflexion (0ZoR) ab in dem Maße,
wie die Konzentration der nachgewiesenen oxydativen Substanz ansteigt, und umgekehrt Die vorgenommenen
Ablesungen stimmen daher im umgekehrten Maße gemäß der Gleichung mit der Konzentration der
nachzuweisenden absorbierten Spezies überein. Die Ablesungen wurden bei den angegebenen Wellenlängen
vorgenommen.
Ein Testmittel mit einer Zusammensetzung gemäß der Erfindung wurde hergestellt und hinsichtlich der
Empfindlichkeit zum Nachweis von Glucose mit im Handel erhältlichen üblichen Mitteln, welche Indikatoren des Standes der Technik verwendeten, verglichen.
Eine erste Imprägnierlösung wurde hergestellt in 42,5 Millilitern (ml) destilliertem H2O, zu dem die folgenden
Substanzen unter Rühren gegeben wurden:
714 Milligramm (mg)
3136 mg
2400 mg
Glucoseoxydase
(5000 I. U. per ml)
Peroxydase (100 I. U. per mg)
Polyvinylpyrrolidon (PVP)
Copolymer aus Methylvinyläther und Maleinsäureanhydrid
15 ml
324 mg
360 mg/3,6 ml H2O
720 mg/14,4 ml
Eine internationale Einheit (I. U.) der Enzymaktivität ist wirksam, um die Umwandlung von 1 Mikromol
ι ο (μπιοί) des Substrats pro Min. unter bestimmten pH- und
Temperaturbedingungen zu bewirken. Blätter von Whatman 3 MM-Filterpapier wurden bis zur Sättigung
mit der vorerwähnten Lösung getränkt und bei 87° C getrocknet
is Eine zweite Irnprägnierlösung wurde hergestellt in
50 ml einer 4 :1-Methanol/^O-Lösung, zu der unter
Rühren gegeben wurden:
MBTH | 0,20 Gramm (g) |
20 4,5-Dihydroxy-2,7-naphthalin- | |
disulfonsäure (Chromotropsäure) | 0,05 g |
Natriumlaurylsulfat | 0,20 g |
Rückstand der ersten Imprägnierlösung enthielt wurde dann bis zur Sättigung mit der zweiten Imprägnierlösung imprägniert und bei 6O0C getrocknet Das so
zubereitete Papier wurde in 2,5 mm χ 2,5 mm Stücke
geschnitten und bildete so ein Gerät gemäß der
Erfindung, das in diesem Beispiel als MBTH/CTA
bezeichnet wird. Das Gerät wurde dann auf ein zweiseitig mit Klebstoff beaufschlagtes Klebeband
gegeben und so an einen organo-plastischen Träger geheftet
Die erfindungsgemäß hergestellten Geräte wurden mit CLISTINIX-Reagenzstreifen (ortho-Tolidin), DIA-STIX-Reagenzstreifen (Kaliumiodid) und S-GLUKO-TEST (ortho-Tolidin) verglichen. CLISTINIX und
DIASTIX sind von der Ames Company, Division of
Miles Laboratories und S-GLUKOTEST ist von
Biodynamics/BMC, Indianapolis, Indiana, erhältlich.
Alle Geräte wurden geprüft, indem man sie kurz in Urinlösungen einer bekannten Glucosekonzentration
eintauchte. Es wurde jeweils die Farbentwicklung
festgestellt um zu unterscheiden zwischen 0,1, 2,5,10,
20, 30, 50 und 100 Milligramm/Deziliter (mg/dl). Die
Angabe »0« zeigt an, daß kein erkennbarer Nachweis erfolgte, während »50« anzeigt, daß ein Nachweis bei
wenigstens 50 mg/dl in der Probe möglich war.
Zwischenzahlen geben relative, sichtbar unterschiedliche Farbintensitäten, die beobachtet wurden, an. Die
Ergebnisse werden in Tabelle 1 gezeigt
DIASTIX®
0
1
2
5
10
20
30
50
100
0
0
0
0
0
0
0
5
10
0
0
0
0
0
0
5
10
0 | 0 | 0 |
0 | 0 | 5 |
0 | 0 | 10 |
0 | 0 | 20 |
0 | 0 | 30 |
0 | 0 | 38 |
1 | 0 | 42 |
8 | 8 | 50 |
10 | 10 | 50 |
Diese Ergebnisse zeigen, daß das Testmitte! gemäß der Erfindung empfindlich ist gegenüber Glucosemengen,
die erheblich niedriger sind als solche, wie sie mit den Nachweisgeräten des Standes der Technik erkennbar
waren.
Bei den in diesem Beispiel beschriebenen Versuchen wurde die relative Beständigkeit gegen Ascorbat von
verschiedenen MBTH-Kuppler-Systemen miteinander und gegenüber o-Tolidin verglichen.
Zunächst wurde eine Imprägnierlösung hergestellt, die folgende Bestandteile enthielt:
Destilliertes Wasser 40 ml
Äthanol 40 ml
Copolymer aus M ethylvinylather
und Maleinsäureanhydrid
5% Gewicht/Volumen
(w/v) in destilliertem Wasser 52 ml
Trismalonat-Puffer
[2,8 m Tris (hydroxymethyl)aminomethan; 1,4 m Malonsäure,
1,4 m Natriummalonat] 32 ml
Polyvinylpyrolidon
10% w/v in destilliertem Wasser 28 ml
200 mg Peroxydase in 4,3 ml Glucoseoxydase (1000 v/ml) + 19,3 ml destilliertes Wasser
Blätter aus Eaton-Dikeman 2004-Filterpapier (E & D)
wurden bis zur Sättigung mit der vorher zubereiteten Lösung imprägniert und dann bei 300C getrocknet.
Ein erster Teil dieser getrockneten Papiere wurde mit 0,02 M o-Tolidin in CHCl3 gesättigt und dann bei 500C
getrocknet, wobei man das o-Tolidin enthaltende Testgerät erhielt. Der restliche bzw. der zweite Teil des
vorher zubereiteten getrockneten Papiers wurde dann bis zur Sättigung mit einer Lösung aus 50 ml Methanol,
worin 234 mg MBTH-Hydrochlorid-monohydrat gelöst waren, imprägniert und bei 600C getrocknet.
Bei einer dritten Imprägnierung wurden die Papiere aus dem zweiten Teil jeweils imprägniert bis zur
Sättigung mit den angegebenen Lösungen eines der folgenden potentiellen Kuppler:
Chromotropsäure
Violettsäure
Violettsäure
Dimethylaminobenzoe-
säure
Diäthylanilin
400 mg in 40 ml Methanol
+ 10 ml Wasser
350 mg in 40 ml Methanol
+ 10 ml Wasser
+ 10 ml Wasser
350 mg in 40 ml Methanol
+ 10 ml Wasser
165 mg in 50 ml Methanol
186 mg in 50 ml Methanol
186 mg in 50 ml Methanol
Die so imprägnierten Papiere wurden dann bei 600C
ι r> getrocknet und bildeten das Testmittel.
Diese Testmittel wurden mit 100 mg/dl Urin-Glucoselösungen,
welche entweder 0 oder 50 mg/dl Ascorbat enthielten, geprüft und alle Farbänderungen wurden mit
Hilfe eines aufzeichnenden Reflexionsspektrophotome-
JD ters abgelesen. Die Reflexionswerte bei den spezifischen
Wellenlängen wurden nach der zuvor erwähnten Kubelka-Monk-Gleichung umgerechnet und die äquivalenten
Absorptionswerte (K) wurden als Funktion gegen die Zeit aufgetragen.
Bei der Bewertung der relativen Ascorbatbeständigkeit wurden die Daten für die ersten 30 Sekunden
verwendet, weil während dieses Zeitraumes ein im allgemeinen lineares Ansprechen von K mit der Zeit
erfolgte. Dies wird graphisch durch die Kurvenwerte
so der Probe in den Figuren 1 bis 3 gezeigt. Ein Verhältnis der Neigungen wurde angewendet, wobei die Neigung
von K gegenüber der Zeit für die Daten, die in Gegenwart von 50 mg/dl Ascorbat aufgenommen
wurden, geteilt wurden durch die Neigung von K gegenüber der Zeit für die Daten, die in Abwesenheit
von Ascorbat aufgenommen wurden. Ein Wert von 1 bedeutet, daß keine Störung durch Ascorbat vorliegt.
Ein Wert von 0 würde bedeuten, daß eine vollständige Störung durch Ascorbat vorliegt. Die Ergebnisse
werden in Tabelle 2 gezeigt:
Relative Beeinflussung durch Ascorbat
Indikator | λ beobachtet | Neigung bei 50 mg/dl |
(nM) | Ascorbat | |
Neigung bei 0 Ascorbat | ||
o-Tolidin | 620 | 0,005 |
MBTH-Chromotropsäure (CTA) | 560 | 0.42 |
MBTH-Violettsäure | 540 | 0,08 |
MBTH-Dimethylaminobenzolsäure | 600 | 0,08 |
MBTH-Diäthylanilin (DEA) | 600 | 0,07 |
Die bei den verschiedenen Zeiten gefundenen Ergebnisse und deren jeweiligen K-Werte werden in
Fig. 1 für ortho-Tolidin gezeigt, in Fig.2 für
MBTH/DEA und in F i g. 3 für MBTH/CTA.
Diese deutlichen Werte zeigen, daß MBTH/Chromotropsäure
eine Ascorbatbeständigkeit hat, die wesentlich größer ist als bei ortho-Tolidin und tatsächlich
bemerkenswert (6 mal) Ascorbat-beständiger ist als frühere Formulierungen, die sich auf MBTH/Diäthylanilin
aufbauten.
Es wurden Lösungen aus den nachfolgend angegebenen Zusammensetzungen hergestellt und miteinander
verglichen, um die Einwirkung von Veränderungen des pH-Wertes und durch Puffer mit und ohne Ascorbat zu
vergleichen.
Es wurde eine erste Testlösung bei einem pH von 5,0 in 0311M Citratpuffer hergestellt Eine weitere
Testlösung wurde bei pH 7,0 eingestellt mit 0,093 M
ίο
Tris[Tris(hydroxyrnethyl)arninornethan], kombiniert mit 0,093 M Malonat. In jedem Puffersystem wurden
Testlösungen zubereitet mit Konzentrationen von ΙΟΟμΜ MBTH, 100 μΜ Kuppler, 333 μΜ H2O2 und
56,8 μΜ(1 mg/dl) Ascorbinsäure.
Diese Lösungen wurden in 3 ml Standardgläsern oder in Quarzküvetten bewertet. In allen Fällen ließ man die
Tabelle 3
Tris-Malonat-Puffer (pH 7)
Tris-Malonat-Puffer (pH 7)
Reaktion ablaufen, indem man Peroxydase bis zu einer Konzentration von 125 Nanogramm (ng/ml) einspritzte.
Die Veränderungen in der optischen Dichte (ΔΟΌ) wurden mittels eines üblichen Aufzeichnungs-Absorptionsspectrophotometers
aufgezeichnet, wobei man die Ergebnisse, die in den Tabellen 3 und 4 gezeigt werden,
erhielt.
MBTH-Kuppler
Wellenlänge Verhältnis der Reaktion (Δ OD/Min.)
kein Ascorbat Ascorbat
kein Ascorbat Ascorbat
Chromotropsäure | 572 nm | 0,600 | 0,223 | 0,159 | Reaktion | Ascorbin |
N,N-Dimethylanilin | - | keine Reaktion keine | 0,0977 | 0,0065 | ||
l-Hydroxy-2-naphthalinsulfonsäure | 495 nm | 0,373 | 0,0815 | 0,0000 | ||
l-Hydroxy-3-naphthalinsulfonsäure | 490 nm | 0,545 | 0,0037 | |||
l-Hydroxy-5-naphthalinsulfonsäure | 495 nm | 0,493 | 0,0000 | |||
Tabelle 4 | 0,000 | |||||
Zitronensäure-Puffer (pH 5) | Verhältnis der Reaktion | |||||
MBTH-Kuppler | Wellenlänge | (A OD/Min.) | ||||
kein Ascorbin | ||||||
0,162 | ||||||
Chromotropsäure | 572 nm | 0,189 | ||||
N,N-Dimethylanilin | 570 nm | 0,0891 | ||||
l-Hydroxy-2-naphthalinsulfonsäure | 495 nm | 0,0992 | ||||
l-Hydroxy-3-naphthalinsulfonsäure | 490 nm | 0,0822 | ||||
l-Hydroxy-5-naphthalinsulfonsäure | 495 nm |
Die bei dem Tris-Malonat-Puffersystem bei pH 7 für die jeweils angegebenen erfindungsgemäßen Kuppler
beobachteten Ergebnisse waren gegenüber denen mit Dimethylanilin erheblich überlegen. Sie waren reaktiver
sowohl in Gegenwart als auch in Abwesenheit von Ascorbat. Die Aktivität bei etwa pH 7,0, ausgedrückt als
Farbentwicklung (4OD) pro Minute war etwa 3- bis 4mal so groß wie bei Zitronensäure bei pH 5,0 ohne
Ascorbat und eine noch größere Differenz sieht man mit Ascorbat Die zu unterschiedlichen Zeiten erzielten
Ergebnisse und die jeweiligen Absorptionswerte (optische Dichte) werden graphisch in Fig.4 für das
MBTH/Chromotropsäuresystem in Tris-Malonat (pH 7) und für das Zitronensäure (pH 5)-System gezeigt. Ein
Vergleich der mit den verschiedenen Kupplern erzielten Ergebnisse wird graphisch in Fig.5 gezeigt für das
Tris-Malonat-System (pH 7), mit einer bemerkenswerten
Ausnahme. Weil Dimethylanilin bei diesen Parametern nicht reagiert, wurde dessen Kurve von den mit
Zitronensäure (pH 5) gemessenen Daten entnommen.
Die Vergleichsversuche zeigen, daß die erfindungsgemäßen
Kupplersysteme optimal wirksam sind in einem bevorzugten physiologischen pH-Bereich, was insbesondere
bei Enzymbewertungen bedeutsam ist
Testmittel, die in der nachfolgend beschriebenen Weise hergestellt worden sind und Zusammensetzun-
gen gemäß der Erfindung enthielten, wurden bei diesem Beispiel Zeiten erhöhter Temperatur ausgesetzt, um
deren Stabilität zu prüfen.
Ein Puffer wurde zur Verwendung in der ersten Imprägnierlösung hergestellt durch Zugabe von 19,8 g
Zitronensäure, 87,2 g Natriumcitrat, 66,8 g Äthylendiamin-tetraessigsäure
zu 935 ml H2O, wobei man rührte.
Vier aliquote Mengen der ersten Imprägnierlösung wurden dann hergestellt, indem man jeweils 50 ml des
zuvor hergestellten Puffers, 13 ml eines Copolymer aus
10% Methylvinyläther mit Maleinsäureanhydrid, 10 ml 5%iges Polyvinylpyrrolidon (PVP) und 0,15 g Peroxydase
kombinierte und dann jeweils Glucoseoxydase und Wasser, wie in Tabelle 5 gezeigt wird, zugab.
Formulierung
Glucoseoxydase
H2O
2
3
4
5ml | 35 ml |
10ml | 30 ml |
20 ml | 20ml |
40 ml | 0ml |
4 Blätter von E & D-Papier wurden bis zur Sättigung imprägniert und zwar jeweils mit einer der vorerwähnten
Formulierungen und dann bei 90° C getrocknet
Es wurde eine zweite Imprägnierlösung hergestellt, indem man 0,32 g Chromotropsäure, 0,8 g Natriumlaurylsulfat
und 2,4 g MBTH in einem Lösungsmittel aus 160 ml Methanol und 40 ml H2O löste. Die so
zubereiteten Blätter wurden dann bis zur Sättigung mit dieser zweiten Lösung imprägniert, bei 50° C getrocknet
und auf eine Größe von 2,5 mm χ 2,5 mm geschnitten. Die so hergestellten Testmittel wurden durch ein
zweiseitig klebendes Klebeband an organoplastische Unterlagen befestigt, um sie besser handhaben zu
können.
Die Hälfte dieser Testmittel wurde einer trockenen Wärme von 6O0C während 3 Tagen in einen üblichen
Laboratoriumsofen ausgesetzt, während die andere
Hälfte bei Raumtemperatur (RT) zur Kontrolle aufbewahrt wurde. Die Testmittel, und zwar sowohl die
der Wärme ausgesetzten als auch die für die Kontrolle wurden dann geprüft, indem man sie kurz in Urinproben
eintauchte, welche die in Tabelle 6 angegebenen Konzentrationen an Glucose enthielten. Die erzielten
Ergebnisse wurden aufgezeichnet durch einen Vergleich der beobachteten Farben bei den Kontrolltestmitteln
und den der Wärme ausgesetzten Testmitteln. Farbabschnitte mit steigender Intensität zeigen die unterschiedlichen
Glucose-Konzentrationen an und diesen wurden willkürlich die Zahlenwerte (0 bis 70) zugeordnet
in der folgenden Weise:
mg% | 0 | 50 | 100 | 250 | 500 | 1000 | 2000 | >2000 |
Werte | 0 | 10 | 20 | 30 | 40 | 50 | 60 | 70 |
Die Ergebnisse für die der Wärme ausgesetzten Testmittel wurden mit denen der Kontrollprobe verglichen.
Tabelle 6
Glucose | Formulierung Nr. | 60 C | 2 | 60 "C | 3 | 60 C | 4 | 60C |
1 | 0 | RT | 0 | RT | 0 | RT | 0 | |
Mg% Wert | RT | δ | 0 | 20 | 0 | 32 | 0 | 42 |
0= 0 | 0 | 18 | 25 | 42 | 35 | 45 | 45 | 55 |
50=10 | 10 | 28 | 45 | 52 | 48 | 58 | 55 | 60 |
100 = 20 | 20 | 37 | 55 | 58 | 60 | 62 | 60 | 70 |
250 = 30 | 30 | 45 | 60 | 62 | 65 | 70 | 70 | >70 |
500 = 40 | 40 | 55 | 65 | 70 | 70 | 70 | >70 | >70 |
1000 = 50 | 50 | 70 | 70 | >70 | ||||
2000 = 60 | 60 | |||||||
Beim Vergleich der wärmeausgesetzten Streifen zeigt ten Farbe bei dem der Wärme ausgesetzten und nicht
es sich, daß die Formulierung 4 am wenigsten beeinflußt 40 der Wärme ausgesetzten Testmittel vor. Das heißt, daß
worden war. Selbst bei der Formulierung 1, die am man bei keiner dieser Formulierungen einen echten
meisten durch Wärme beeinflußt worden war, Hegt kein Verlust der Empfindlichkeit feststellen konnte,
wesentlicher Unterschied in der Intensität der gebilde-
Hierzu 5 Blatt Zeichnungen
Claims (6)
1. Testmittel zur Bestimmung einer oxidierenden Substanz, enthaltend ein Hydrazon und ein Naphthalin,
dadurch gekennzeichnet, daß das Naphthalin ein Hydroxynaphthalinsulfonat aus der
Gruppe 4,5-Dihydroxy-2,7-naphthalin-disulfonsäure
und/oder l-Hydroxy-2-naphthalin-sulfonsäure ist
2. Testmittel zur Bestimmung eines Bestandteiles in einer Probe, enthaltend ein Reagenzsystem,
welches auf den Bestandteil in der Probe unter Ausbildung einer oxidierenden Substanz anspricht,
und ein Reagenzsystem aus einem Hydrazon und einem Naphthalin zur Bestimmung der oxidierenden
Substanz, dadurch gekennzeichnet, daß das Naphthalin ein Hydroxynaphthaünsulfonat aus der Gruppe
4,5-Dihydroxy-2)7-naphthalin-disuIfonsäure und/
oder l-Hydroxy-2-naphthalinsulfonsäure ist
3. Testmittel gemäß Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß das Hydrazon 3-MethyI-2-benzothiazolinhydrazon
ist
4. Testmittel gemäß Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß es eine Trägermatrix umfaßt.
5. Testmittel gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Trägermatrix feuchtigkeitsaufnehmend
ist
6. Testmittel gemäß Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet daß es in Form einer Tablette
vorliegt
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