DD263662A3 - Verfahren zur Kultivierung von Mikroorganismen - Google Patents
Verfahren zur Kultivierung von MikroorganismenInfo
- Publication number
- DD263662A3 DD263662A3 DD263662A3 DD 263662 A3 DD263662 A3 DD 263662A3 DD 263662 A3 DD263662 A3 DD 263662A3
- Authority
- DD
- German Democratic Republic
- Prior art keywords
- methanol
- cultivation
- medium
- methylobacter
- culture
- Prior art date
Links
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims abstract description 11
- 238000000034 method Methods 0.000 title abstract description 11
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 44
- 241000589350 Methylobacter Species 0.000 claims abstract description 10
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 8
- 230000001580 bacterial Effects 0.000 claims abstract description 6
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N D-Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims abstract description 5
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims abstract description 5
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 4
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims abstract description 4
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N β-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 claims abstract description 4
- HEEACTTWORLLPM-UHFFFAOYSA-N 2-(1H-imidazol-5-yl)ethanol Chemical compound OCCC1=CNC=N1 HEEACTTWORLLPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 14
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 14
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 description 13
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 12
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 9
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 9
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 9
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 9
- KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M potassium hydroxide Inorganic materials [OH-].[K+] KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 8
- 229940041514 Candida albicans extract Drugs 0.000 description 6
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 6
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 6
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 6
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 4
- 241000894007 species Species 0.000 description 4
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- 229910015621 MoO Inorganic materials 0.000 description 3
- 210000003097 Mucus Anatomy 0.000 description 3
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L cacl2 Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 3
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000009423 ventilation Methods 0.000 description 3
- BJHIKXHVCXFQLS-UYFOZJQFSA-N Fructose Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C(=O)CO BJHIKXHVCXFQLS-UYFOZJQFSA-N 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-YOLKTULGSA-N Maltose Natural products O([C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@H]1CO)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 GUBGYTABKSRVRQ-YOLKTULGSA-N 0.000 description 2
- 229920000715 Mucilage Polymers 0.000 description 2
- SRBFZHDQGSBBOR-SQOUGZDYSA-N Xylose Natural products O[C@@H]1CO[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-SQOUGZDYSA-N 0.000 description 2
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 2
- 150000001479 arabinose derivatives Chemical class 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- SIKJAQJRHWYJAI-UHFFFAOYSA-N indole Chemical compound C1=CC=C2NC=CC2=C1 SIKJAQJRHWYJAI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- -1 methanol Chemical class 0.000 description 2
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N oxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 2
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-N pyruvic acid Chemical compound CC(=O)C(O)=O LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 235000019750 Crude protein Nutrition 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-KAZBKCHUSA-N D-Mannitol Natural products OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KAZBKCHUSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N D-sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 210000003495 Flagella Anatomy 0.000 description 1
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- 241000862974 Hyphomicrobium Species 0.000 description 1
- CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N Inositol Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N 0.000 description 1
- 229960000367 Inositol Drugs 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-UUNJERMWSA-N Lactose Natural products O([C@@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](O)O[C@@H]1CO)[C@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](CO)O1 GUBGYTABKSRVRQ-UUNJERMWSA-N 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 1
- 241001148215 Methylobacter bovis Species 0.000 description 1
- 241000589207 Methylobacter capsulatus Species 0.000 description 1
- 241001168953 Methylobacter chroococcum Species 0.000 description 1
- 241001148216 Methylobacter vinelandii Species 0.000 description 1
- 229910014103 Na-S Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910014147 Na—S Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 1
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 1
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 description 1
- 240000001377 Pseudomonas sp. PM-2 Species 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N Raffinose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N Raffinose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N 0.000 description 1
- PNNNRSAQSRJVSB-BXKVDMCESA-N Rhamnose Chemical compound C[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)C=O PNNNRSAQSRJVSB-BXKVDMCESA-N 0.000 description 1
- HEBKCHPVOIAQTA-ZXFHETKHSA-N Ribitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO HEBKCHPVOIAQTA-ZXFHETKHSA-N 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-GDQSFJPYSA-N Sucrose Natural products O([C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](CO)O1)[C@@]1(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-GDQSFJPYSA-N 0.000 description 1
- 240000000280 Theobroma cacao Species 0.000 description 1
- 235000009470 Theobroma cacao Nutrition 0.000 description 1
- 108010046334 Urease Proteins 0.000 description 1
- 229960003487 Xylose Drugs 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 239000003855 balanced salt solution Substances 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000498 cooling water Substances 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 201000009910 diseases by infectious agent Diseases 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000005187 foaming Methods 0.000 description 1
- VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N fumaric acid Chemical compound OC(=O)C=CC(O)=O VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 230000017525 heat dissipation Effects 0.000 description 1
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 1
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 1
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000004899 motility Effects 0.000 description 1
- 230000001264 neutralization Effects 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000004886 process control Methods 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 238000007086 side reaction Methods 0.000 description 1
- 229920002545 silicone oil Polymers 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
Abstract
Verfahren zur Kultivierung von Mikroorganismen auf Methanol oder Glucose als einzige Kohlenstoffquelle unter Anwesenheit eines wässrigen Nährmediums, dadurch gekennzeichnet, dass der Bakterienstamm Methylobacter acidophilus n. sp. (IMET B 346) verwendet wird.
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Kultivierung von Mikroorganismen auf Methanol als einziger Kohlenstoffquelle unter Anwesenheit eines wäßrigen Nährmediums.
Es sind Verfahren zur Kultivierung von Mikroorganismen auf der Basis von (^-Verbindungen, insbesondere von Methanol, bekannt. Diese Verfahren werden bei Verwendung von Bakterien als Organismenmaterial in Gegenwart von Luftsauerstoff innerhalb eines Temperaturbereiches von 280C bis 42°C, bei pH-Werten von 5,0 bis 8,5 sowie unter Anwendung von normalem oder erhöhtem Druck durchgeführt. Ein geeignetes Verfahren wird wie foigt beschrieben:
Man erzeugt eine Biomasse durch Kultivieren von Bakterien des Stammes MP4 (NCIß 10592) der Gattung Pseudomonas methylotropha in einem kohlenstoff begrenzten kontinuierlichen Kultivierungsprozeß bei einer Temperatur von 40°C. Die Kultur wird belüftet und gerührt, und den pH Wert steuert man automatisch bei 6,8. Das Schäumen wird durch automatisch programmierte Zusätze von Silikonöl gesteuert. Im einzelnen wird wie folgt verfahien: Es wird eine Impfkultur bereitet, indem man 10cm3 steriler Mineralsalzlösung zu einerSchrägkultur des Mikroorganismus hinzufügt, welcher auf Methanol, Mineralsalz-Agar in Schrägagarröhrchen wächst. (Ls wurde eine Suspension der Zellen bereitet, und die gesamte Suspension verwendet man zum Animpfen eines 11 Erlenmeyer-Kolbens, welcher 200cm3 der gleichen Methanol-Mineralsalzsubstanz (0,5%, Gewicht/ Volumen, Methanol) enthält. Den pH-Wert dieses Mediums stellt man vor dem Animpfari auf 6,8 ein. Dann inkubiert mar. dl jse Kultur 24 Stunden auf einer Schüttelmaschine bei einer Temperatur von 37 0C. Mit dieser Saatkultur wird anschließend eine Fermentiervorrichtung angeimpft, wolche 21 Medium nachfolgender Zusammensetzung enthält:
Methanol | 10,0 | g/i |
(NH4I2SO4 | 1,15 | g/i |
H3PO4 | 0,0066 | molar |
MgSO4-7 H2O | 0,42 | g/i |
FeSO4-7 H2O | 5,0 | mg/l |
CuSO4-5 H2O | 0,1 | mg/l |
H3BO3 | 0,07 | mg/l |
MnSO4 7 H2O | 0,5 | mg/l |
ZnSO4-7 H2O | 0,5 | mg/l |
Na2MoO4 | 0,1 | mg/l |
CaCI2-2 H2O | 13,2 | mg/l |
CoCI2-6 H2O | 0,1 | mg/l |
Der pH-Wert dieses Mediums wird auf 6,8 eingestellt, indem man ein 1:1 Gemisch von 4-n KOH:4-n NaOH hinzusetzt. Nach dem Animpfen des Mediums mit der Saatkultur wird die Kultur in der Fermentiervorrichtung bewegt und belüftet, wobei man die Temperatur der Kultur automatisch auf 4O0C und den pH-Wert der Kultur automatisch auf 6,8 einregelt.
Die Kultur läßt man als ansatzmäßige Kultur etwa 36 Stunden wachsen. In dieser Zeit ist das Methanol im Medium vom Mikroorganismus vollständig ausgenutzt, und die Konzentration des Methanols im Medium ist nahezu Null. Zu dieser Zeit beginnt man mit der kontinuierlichen Kultivierung, indem man damit beginnt, der Kultur kontinuierlich Medium zuzuführen.
Dazu wird wiederum die gleiche Zusammensetzung des Mediums verwendet. Das Medium wird in zwei Teilen der Kultur zugeführt. Der eine Teil weist die Mineralsalze auf, und der andere ist Methanol in 50%iger wäßriger Lösung. Die Zufuhrgeschwindigkeit den Mediums ist so, daß die Verdünnungsrate 0,1 h"1 beträgt. Die Kultur läßt man dann für etwj 24 Stunden wachsen, so daß sie ein stabiles, kohlenstoffbegrenztes stetiges Stadium erzielen kann. Die Zellen werden dann kontinuierlich gewonnen und getrocknet. Das Trockengewicht der Zellen im stetigen Zustand beträgt 4,1 g/l, und die Zellausbeute in bezug auf Methanol beträgt 0,41 g getrockneter Zellen je g ausgenutzten Methanols.
Die getrockneten Zellen besitzen einen Rohproteingehalt von 68Gew.-%.
Dieses Verfahren, wie auch alle anderen bisher hekannten Verfahren, weist den Nachteil auf, dal? bei pH-Werten im Bereich von 5,0 bis 8,5 gearbeitet werden muß.
Die Notwendigkeit eines pH-Wertes in der Nähe des Neutralpunktes bringt frr die Prozeßführung aber entscheidende Nachteile mit sich. Diese bestehen in der Ausfällung der als Nährstoffe notwendigen Mineralsalze. Dadurch entstehen in den Reaktoren Salzablagerungen die zu Verkrustungen fünren. Als Folge davon ergeben sich Störungen in der Gasversorgung durch Verstopfung de'r Belüftungseinrichtungen, Störungen im Kühlwasserkreislauf durch eine Senkung der Wärmeableitung und im
Ablauf durch Zusetzen der Rohre. Gleichzeitig kann die Reaktorleistung bezüglich des Sauerstoffüberganges nicht voll ausgenutzt v/erden, da die zum Wachstum des Organismen notwendigen Mineralsalze als anorganische Niederschläge dem Prozeß entzogen werden.
Eine Erhöhung der zugeführten Mineralsalzmengon führt zu keiner Lösung des Problems und belastet zusätzlich die Ökonomie der Verfahren.
Ein weiterer Nachteil des Verfahrens besteht darin, daß die verwendeten Bakterien der Gattung Pseudomonas und auch der Gattung Hyphomicrobium in beträchtlichem Umfang Schleimstoffe in das Medium absondern.
Diese Nebenreaktion, die organismenspezifisch sein kann bzw. durch bestimmte Milieueinflüsse nusgolöst oder verstärkt wird, nimmt u. U. ein solches Ausmaß an, daß ein technischer Prozeß abgebrochen werden muß. Die Reaktionsprodukte Biomasse und wäßriges Fermentationsmedium zeigen dann ein gallertartiges Verhalten und sind nicht mehr fließfähig. Dadurch wird eine Aufarbeitung der Produkte weitgehend erschwert bzw. unmöglich. Gleichzeitig sinkt die Leistung des Reaktors bezüglich seiner Stoffübergangsgeschwindigkeit, und die Ausbeute an Mikroorganismen nimmt ab.
Ziel der Erfindung
Die Erfindung verfolgt das Ziel, ein Verfahren zu entwickeln, ν /elches gestattet, in pH-Bereichen <6 zu arbeiten sowie die Bildung von Schleimstoffen im Medium verhindert.
Darlegung des Wesens der Erfindung
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, einen geeigenten Bakterienstamm zu ermittein und einzusetzen. Überraschenderweise gelang es, durch Selektionsversuche aus Anreicherungskulturen einen Mikroorganismus zu isolieren, der in der Lage ist, bei pH-Werten von 2,0 bis 6,0, vorzugsweise bei 3,6 auf Methanol aktiv zu wachsen, ohne dabei Schleimstoffe zu produzieren. Der Mikroorganismus wurde als neue Art von Methylobacter acidophilus η. sp. beschrieben. Erfindungsgemäß verfährt man so, daß man o:ne als Reinkultur unter sterilen Bedingungen im Schüttelkolben vorgezüchtete Bakterienkultur von Methylobacter acidophilus t.. sp. in einem Laborfermentor überimpft, so daß die Biomassse-Konzentration im Fermentor bei etwa 1 g/l liegt. Der wäßrige Fermentorinhalt enthält die für das Wachstum einer bestimmten Zellmasse erforderlichen Salze und hat einen pH-Wert von 3,6. Nach einer diskontinuierlichen Phase wird auf den kontinuierlichen Betrieb umgestellt, sobald eine bestimmte Zellkonzentration erreicht worden ist. Die Dosierung der Nährsalze wird so bemessen, daß im Fermentor stets eine Übereinstimmung zwischen Nährsalzangebot und Nährsalzbedarf besteht. Die Fermentation erfolgt vorzugsweise bei Temperaturen von 3O0C bis 340C und kann sowohl bei Normaldruck als auch bei Drücken von 2 bis 10at durchgeführt, werden. Unter den genannten Bedingungen ist die Gefahr einer Infektion durch Fromdorganismen auch unter sterilen Bedingungen sehr niedrig. Die Abtrennung der Biomasse aus den Fermentorabläufen geschieht mit Hilfe der üblichen Trennverfahren.
Der Produktiorisstamm Methylobacter acidophilus η. sp. wird folgendermaßen beschrieben:
Bei Methylobacter acidophilus handelt es sich um eine neubeschriebene Art der Gattung Methylobacter. Von Methylobacter chroococcum und Methylobacter bovis unterscheidet sich die Art in der Beweglichkeit, der Koloniefarbe und der Pigmentbildung, von Methylobacter capsulatus und Methylobacter vinelandii durch Größe und Zellmorphologie, von allen vier Arten durch ein sehr gutes Wachstum auf Methanol bzw. Glucose als einziger C-Quelle, durch das Optimum für das Wachstum bei niedrigem pH-Wert und den Bedarf an 0,1 % Hefeextrakt im Medium in Reinkultur.
Morphologie: große, dicke Stäubchen, mehr oder weniger abgerundet, zuweilen zwei oder mehrere kettenförmig zusarr menhängend, beweglich, polar begeißelt (1 bis 3 Geißeln), gram-negativ.
Größe: 0.9 bis 1,2 pm χ 3,6μπ\ daneben kürzere Stäbchen mitO,9 χ 1,8μιη und kokkoide Formen (0,9 χ 0,9pm). Koloniemorphologie: runde, leicht erhabene, glattrandige, weiß-gelbliche Kolonien von feucht-schmieriger Konsistenz, Größe
nach 48Std. 0,5 bis 1 mm
Wachstum auf Mineralsalzmedien mit 0,1 % Hefeextrakt: sehr gutes Wachstum auf Methanol bei pH = 3,6 bis 4,0, kein Wachstum auf dem gleichen Medium bei gleicher C-Quelle bei pH = 6,9; ähnliches Verhalten beim Wachstum auf Glucose,
mäßiges Wachstum bei pH = 4,0 auf Sacharose, Fructose und Glycerin, sehr geringes Wachstum bei pH = 4,0 auf Arabinose, Xylose, Mannose, Maltose, Lactose, Adonit, Duicit, Mannit, Inosit, Na-Lactat,
kein Wachstum bei pH = 4,0 auf Raffinose, Rhamnose, Na-S'jccinat, Na-Malat, Na-Fumarat, Na-Oxalat, Pepton, Bouillon, Gelatine.
Phyiologie: Nitratreduktiort: negativ,
H2S-Bildung: negativ,
Indolnachweis: negativ,
Urease: negativ,
Harnstoffspaltung: negativ,
Bersiekow-Reihe: Vergärung von Glucose und Arabinose unter Säurebildung.
Der Bakterienstamm wurde im Zentralinstitut für Mikrobiologie und experimentelle Therapie in Jena (DDR) unter der Nummer IMET B346 hinterlegt.
Durch die Verwendung dieses Bakterienstammes bei der Kultivierung von Mikroorganismen auf der Basis von C,-Verbindungen als einziger Kohlenstoffquelle ist es erstmalig gelungen, das Fermentationsverfahren in pH-Bereichen von 2 bis 6 durchführen zu können. Ein weiterer wesentlicher Vorteil besteht darin, daß der eingesetzte Bakterienstamm Methylobacter acidophilus η. sp. unter den Bedingungen des erfindungsgemäßen Verfahrens keine Schleimstoffe absondert. In den nachfolgenden Beispielen wird die Erfindung näher erläutert.
Der Stamm Methylobacter acidophilus wird in einen Rührkessetformentor mit einem Arbeitsvolumen von 5I eingeimpft, so daß
die aktuelle Biomasse-Konzentration im Ferrnentor bei etwa 1 g/l liegt. Das Fermentationsmedium enthält die für den Zuwachs
von 10g BTS/I erforderlichen Mengen an Mineralsalzen und einen geringen Anteil Hefeextrakt, es hat folgende
Zusammensetzung:
Methanol | 15g/l | H3BO3 | 14,0 mg/ |
NH4CI | 4,0 g/l | FeCI2-7H2O | 8,4 mg/1 |
K2HPO4 | 1,2 g/l | CaCI2-6H2O | 14,4 mg/1 |
MgSO4 ·7Η,0 | 0,8 g/l | Na2MoO4 -2H2O | 1,8 mg/1 |
CuSO4-5H2O | 4,8 mg/1 | ZnCI2-7H2O | 1,7 mg/1 |
CoSO4-5H2O | 1,2 mg/1 | Hefeextrakt | 0,1 % |
MnSO4-4H2O | 9,6 mg/1: |
Die Züchtung wird zunächst diskontinuierlich unter Rühren und ständiger Belüftung mit 1001 Luft/l Fermentorinhalt bei einer ι
Temperatur von 320C und bei Normaldruck durchgeführt. Der pH-Wert wird dabei durch Zugabe einer Mischung von KOH und {
NaOH (5%, Gewichtsverhältnis 1:1) konstant bei 3,6 gehalten. Wenn die vorgegebene Methanol-Menge verbraucht ist, setzt man |
erneut eine Menge von insgesamt 75g Methanol zu. ί
Nachdem schließlich die Biomasse-Konzentration im Fermentor einen Wert von etwa 10g/I erreicht hat, kann mit dem !
kontinuierlichen Betrieb bei einer Verweilzeit von 8Std. begonnen werden. Dabei kommt nunmehr eine Näht lösung zum Einsatz, ; die entsprechend den o.g. Angaben für eine Biomasse-Konzentration von 20g/l bilanziert wurde und 6,0% Methanol enthält. Auf
den Zusatz von Hefeextrakt kann dabei verzichtet werden. j
Nach einer Zeit von etwa 24Std. verläuft der Prozeß stabil bei einer Zellkonzentration von 18g/l ohne Anzeichen von .
Schleimbildung. Der Proteingehalt der abgetrennten und getrockneten Zellmasse liegt zwischen 70 und 75% (Asche-Gehalt: ί
Der Stamm Methylobacter acidophilus wird in einen 6I Di uck-Rührfermontor eingeimpft, so daß die aktuelle Biomasse-
Konzentration im Fermentor bei etwa 1 g/l liegt. Das Fermentationsmedium enthält die für den Zuwachs 10 g BTS/I erforderlichen ;
Mengen an Mineralsalzen und einen geringen Anteil an Hefeextrakt, die Zusammensetzung entspricht der wie in Beispiel 1. j
Die Züchtung wird zunächst diskontinuierlich unter Rühren und ständiger Belüftung mit 1001 Luft/l Fermentorinhalt bei einer :
Temperatur von 32°C und bei Normaldruck durchgeführt. Der pH-Wert wird dabei durch Zugabe einer Mischung von KOH und ;
NaOH (5% Gewichtsverhältnis 1:1) konstant bei 3,6 gehalten. Wenn die vorgegebene Methanol-Menge verbraucht ist, setzt man :
erneut eine Menge von insgesamt 75g Methanol zu.
Nachdem schließlich die Biomasse-Konzentration im Fermentor einen Wert von etwa 10g/I erreicht hat, beginnt man mit dem
kontinuierlichen Betrieb unter folgenden Bedingungen.
Man erhöht den Systemdruck auf 4,5at und führt eine Nährlösung folgender Zusammensetzung zu:
Methanol | 94,5 g/l |
NH4CI | 25,2 g/l |
K2HPO4 | 7 6 g/l |
MgSO4-7H2O | 5,0 g/l |
CuSO4-5H2O | 30,2 mg/l |
CoSO4-5H2O | 7,6 mg/1 |
MnSO4-4H2O | 60,5 mg/1 |
H3BO4 | 88,2 mg/1 |
FeCI2-7H2O | 52,9 mg/1 |
CaCI2-6H2O | 90,7 mg/1 |
Na2MoO4 -2H2O | 11,4 mg/1 |
ZnCI2-7H2O | 10,7 mg/1 |
Die Verweilzeit beträgt 7,5 Stunden. Die Temperatur 320C. Der Fermentorinhalt wird ständig mit 1001 Luft/l Fermentorinhalt bei 4,5at belüftet und intensiv gerührt. Die Einhaltung des pH-Wertes von 3,6 erfolgt automatisch unter Verwendung einer 10%ifjen Mischung von KOH und NaOH (Gewichtsverhältnis 1:1).
Nach etwa 36 Stunden stellt sich eine stabile Zellkonzentration von 63g/l ein. Eine SchleimDildung erfolgt nicht. Die getrocknete Zellrr,?sse besteht zu 68 bis 76% aus Protein {Aschegehalt = 8%).
Claims (3)
- ! Patentansprüche:1. Verfahren zur Kultivierung von Mikroorganismen auf Methanol oder Glucose als einziger ί Kohlenstoffquelle unter Anwesenheit eines wäßrigen Nährmediums, dadurch gekennzeichnet, daß ί der Bakterienstamm Methylobacter acidophilus η. sp. (IMET B346) verwendet wird. j
- 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Kultivierung bei einem pH-Wert von 2,0 bis 6,0, vorzugsweise bei 3,6 durchgeführt wird.
- 3. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Kultivierung bei einem Systemdruck von 1 bis 10 at durchgeführt wird.
Family
ID=
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE3891417C5 (de) | Verfahren zur Veränderung eines L-Threonin produzierenden Mikroorganismus und Verwendung eines so erhaltenen Mikroorganismus zur Herstellung von L-Threonin | |
DE4000942C2 (de) | ||
DE3128411A1 (de) | Kulturstamm-mutante von esccherichia coli sowie verfahren zur herstellung von phenylalanin | |
EP0072010B1 (de) | Verfahren zur Herstellung von D-Milchsäure unter Verwendung von Lactobacillus bulgaricus DSM 2129 | |
EP0575908B1 (de) | Pseudomonas aeruginosa und seine Verwendung zur Herstellung von L-Rhamnose | |
DE2633076A1 (de) | Verfahren zur durchfuehrung von enzymatischen reaktionen unter verwendung von in einer polymerisatmatrix eingeschlossenen mikroorganismen | |
DE2614114B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Kreatininamidohydrolase | |
DD232310A5 (de) | Verfahren zur herstellung von l-carnitin | |
DE69013737T2 (de) | Mevalonsäure produzierender Mikroorganismus. | |
EP0502525B1 (de) | Biotechnologisches Verfahren zur Herstellung von S-(+)-2,2-Dimethylcyclopropancarboxamid und R-(-)-2,2-Dimethylcyclopropancarbonsäure | |
DE2150375A1 (de) | Verfahren zur biotechnischen Herstellung rhamnosehaltiger Glycolipide | |
EP0498316A1 (de) | Mikrobielles Verfahren zur Herstellung von 6-Hydroxypicolinsäure | |
DE69119692T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Streptovaricin | |
DE2402217A1 (de) | Verfahren zur herstellung von proteinmaterial auf mikrobiologischem wege | |
DE2002048C3 (de) | ||
DD263662A3 (de) | Verfahren zur Kultivierung von Mikroorganismen | |
EP0229990B1 (de) | Verfahren zur Herstellung von exozellulären Biopolymeren mit Verdickungswirkung für wässrige Medien | |
DE69209610T2 (de) | Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums A82810 aus Actinomadura fibrosa sp. no. NRRL 18348 und Actinomadura sp. NRRL 18880 | |
DE2363285A1 (de) | Verfahren zur herstellung von lapfelsaeure durch mikrobiologische fermentation und mittel zur durchfuehrung des verfahrens | |
DE3878946T2 (de) | Verfahren zur herstellung von mevalonischer saeure. | |
DE4316646A1 (de) | Lävansucraseenzym, Verfahren zu dessen Herstellung, Mikroorganismen, die es produzieren und Zusammensetzungen, die es enthalten | |
DE2708112C3 (de) | Verfahren zur mikrobiologischen Erzeugung von Protein | |
DE2142916A1 (de) | Verfahren zur Herstellung von Enzymen mit Hilfe von Kohlenwasserstoffen | |
DE3441549A1 (de) | Verbesserte mikroorganismenstaemme zur fermentativen herstellung von l-serin | |
DE2757877C3 (de) | Herstellung von Biomassen |