CN1420987A - 用于vegf的elisa - Google Patents

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Abstract

在患者血流或其他生物标本中血管内皮细胞生长因子(VEGF)的活性能够作为癌症，糖尿病，心脏病，和其它病理学的诊断和预后指标。发展了VEGF作为抗原的抗体－夹心ELISA方法和试剂盒以检测来自动物模型和人类患者的生物标本中VEGF水平并且用作诊断/预后指标。

Description

用于VEGF的ELISA
                       发明背景
                       发明领域
本发明涉及检测VEGF的免疫测定，其可用作癌症，心血管病或其他病理学患者的诊断和预后方法。
                      相关领域描述
现已确定血管发生和多种疾病的发病机理有关。包括固体肿瘤，眼内新生血管综合症如增生性视网膜病或年龄相关的黄斑退化(AMD)，风湿性关节炎，和牛皮癣(Folkman et al.J.Biol.Chem.267：10931-10934(1992)；Klagsbrun etal.Annu.Rev.Physiol.53：217-239(1991)；and Garner A.Vascular diseases.In：Pathobiology of ocular disease.A dynamic approach.Garner A.Klintworth GK.Eds.2nd Edition(Marcel Dekker.NK，1994)pp 1625-1710)。在固体肿瘤情况下，新生血管形成使肿瘤细胞与正常细胞相比获得了生长优势和增生的自主权。相应地，在乳腺癌和几种其他肿瘤上已经观察到在肿瘤部位微血管密度和患者存活之间有相互关系(Weidner et al.N Engl J Med 324：1-6(1991)；Horaket al.Lancet 340：1120-1124(1992)；和Macchiarini et al.Lancet 340：145-146(1992))。
对血管发生的正调节物的研究已经产生了许多候选物，包括aFGF，bFGF，TGF-α，TGF-β，HGF，TNF-α，血管生成素，IL-8等(Folkmanet al.，出处同上，和Klagsbrun et al.，出处同上)。至今鉴定的负调节物包括血小板结合蛋白(Good et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA.87：6624-6628(1990))，16kD的催乳素N-末端片段(Clapp et al.Endocrinology，133：1292-1299(1993))，(O’Reilly et al.Cell 79：315-328(1994))，和endostatin(O’Reilly et al.Cell88：277-285(1996))。
过去几年的工作已经确立血管内皮细胞生长因子(VEGF)在正常和异常的血管发生调节中的关键地位(Ferrara et al.Endocr.Rev.18：4-25(1997))。发现即使是单个VEGF等位基因的缺失也导致胚胎致死，表明此因子在血管***的发育和分化上起到不可替代的作用(Ferrara et al.，出处同上)。
而且，已经表明VEGF是与肿瘤和眼内疾病相关的新生血管形成的关键调节物(Ferrara et al.，出处同上)。被检测的大多数人类肿瘤中VEGF mRNA过表达(Berkman et al.J Clin Invest 91：153-159(1993)；Brown et al.HumanPathol.26：86-91(1995)；Brown et al.Cancer Res.53：4727-4735(1993)；Mattern etal.Brit.J.Cancer.73：931-934(1996)；and Dvorak et al.Am J.Pathol.146：1029-1039(1995))。并且，在眼内液体中VEGF的浓度与糖尿病和其他与缺血相关的视网膜病患者的血管活动性增生是高度相关的(Aiello et al.N.Engl.J.Med.331：1480-1487(1994))。进而，研究已经证实VEGF在患者慢性新生血管膜中的定位受急性黄斑退化(AMD)的影响(Lopez et al.Invest.Ophtalmo.VisSci.37：855-868(1996))。
VEGF是分子量为45KD的肝素结合生长因子(Plouet et al.EMBOJ.8：3801(1989)；Neufeld et al.Prog.Growth Factor Res.5：89(1994))。它是由两个相同亚基组成的二聚体糖蛋白。尽管VEGF由单一基因编码，但是由于可选择的mRNA剪接使体内至少存在五种同工型。这些同工型，VEGF121，VEGF145，VEGF165，VEGF189，和VEGF206，分别包含121，145，165，189，和206个氨基酸(Leung et al.Science 246：1306(1989)；Houcket al.Mol.Endocrinol.5：1806(1991)；Tischer et al.J.Biol.Chem.266：11947(1991)；Neufeld et al.The FASEB Journal 13：9-22(1999))。VEGF同工型对肝素表现出不同的亲和性：VEGF121结合肝素能力弱，而VEGF165，VEGF189和VEGF206以递增的亲和性结合肝素。VEGF121和VEGF165是分泌性的并且在循环中发现了此两种同工型。相对照，VEGF189和VEGF206多发现与细胞外基质中含蛋白聚糖的肝素硫酸盐有关(Houck et al.J.Biol.Chem.267：26031(1992)；Park et al.Mol.Biol.Cell 4：1317(1993))。五种同工型中，VEGF165是在大多数细胞和组织中表达最丰富的变体。
已经鉴定了VEGF的五种受体：VEGFR-1(FLT-1)，VEGFR-2(KDR/FLK-1)和VEGFR-3，它们均是传递信号的酪氨酸蛋白激酶，和neuropilin-1及neuropilin-2，这两者是选择性结合VEGF165的辅助-同工型-特异的受体(de Viries et al.Science 255：989(1991)；Terman et al.Biochem.Biophys.Res.Commun.187：1579(1992)；Millauer et al.Cell72：835(1993)；Neufeld et al.，出处同上)。许多小组正在积极研究这些受体在VEGF生物学中的多种作用。
VEGF由组织产生且不必进入循环发挥其生物学作用，而是作为旁分泌调节物在局部发挥作用。这就产生了循环性VEGF的意义和它在正常生物学或病理学中起到何作用的问题。Yang et al.J.Pharm.Exp.Ther.284：103(1998)的最近研究发现rhVEGF165从循环中的清除非常快速，说明循环中内源性VEGF很有可能是VEGF连续不断合成的结果。此外，已有几项研究试图发现循环性VEGF水平与肿瘤患病的相互关系，并且已表明VEGF水平是潜在的预后标志(Ferrari and Scagliotti Eur.J.Cancer 32A：2368(1996)；Gasparini et al.J.Natl.Cancer Inst.89：139(1997)；Kohn Cancer 80：2219(1997)；Baccala et al.Urology 51：327(1998)；Fjisaki et al.Am.J.Gastroenterol.93：249(1998))。很明显，能够精确测量VEGF对于理解其在多种生物过程如血管未闭的维持，***，缺血，糖尿病，和癌症中的作用是很重要的。
文献广泛报道在正常人和患者中内源VEGF的浓度不同，范围从检测不到至高水平。已经有报道VEGF165/165可被蛋白水解性地断裂成三种其他形式：165/110异二聚体，110/110同型二聚体，和55个氨基酸的C-末端片段(Keyt et al.J.Biol.Chem.271：7788-7795(1996)；Keck et al.Arch.Biochem.Biophys.344：103-113(1997))。
测量内源VEGF水平的能力依赖于敏感性和特异性测定法的可得性。已经报道了用于VEGF的以比色、化学发光和荧光为基础的酶联免疫吸附测定(ELISAs)Houck et al.，出处同上，(1992)；Yeo et al.Clin.Chem.38：71(1992)；Kondoet al.Biochem.Biophys.Acta 1221：211(1994)；Baker et al.Obstet.Gynecol.86：815(1995)；Hanatani et al.Biosci.Biotechnol.Biochem.59：1958(1995)；Leithand Michelson Cell Prolif. 28：415(1995)；Shifren et al.J.Clin.Endocrinol.Metab.81：3112(1996)；Takano et al.Cancer Res.56：2185(1996)；Toi et al.Cancer77：1101(1996)；Brekken et al.Cancer Res.58：1952(1998)；Obermair et al.Br.J.Cancer 77：1870-1874(1998)；Webb et al.Clin.Sci.94：395-404(1998)。相似的ELISAs已经成功地应用于血浆和尿液标本中少量药物和其他抗原成分的判定，无需提取步骤，并且是简单易完成的。
Houck et al.，出处同上(1992)描述了具有ng/ml敏感度的比色ELISA，很明显对检测内源的VEGF水平不够敏感。Yeo et al.，出处同上(1992)描述了双位点时间-分辨免疫荧光分析，但是在正常血清中未检测到VEGF(Yeo et al.Cancer Res.53：2912(1993))。Baker et al.，出处同上(1995)，使用此免疫荧光分析的改良方式，报道孕妇血浆中VEGF的可检测水平，在先兆子痫妇女中为较高水平。Anthony et al.Ann.Clin.Biochem.34：276(1997)使用放射免疫分析报道了孕妇中相似的数据。Hanatani et al.，出处同上(1995)开发出能够测定循环性VEGF的化学发光ELISA并且报道了30个正常个体(男性和女性)的血清VEGF水平为8-36pg/ml。Brekken et al.出处同上(1998)描述使用了对VEGF单独或者VEGF：Flk-1复合物有结合优势的抗体的ELISA试验。
一种用于VEGF检测的ELISA试剂盒可从R&D Systems(Abingdon，U.K.)商业获得。这种R&D VEGF ELISA试剂盒已经被用于夹心试验，其中单克隆抗体被用于捕捉靶VEGF抗原而多克隆抗体被用于检测VEGF。Webb et al.出处同上(1998)。还不清楚使用R&D ELISA试剂盒的结果是否受蛋白水解过程或VEGF降解或其他血清蛋白干扰的影响。Obermair et al.，出处同上(1998)。
Keyt et al.J.Biol.Chem.271：7788-7795(1996)；Keyt et al.J.Biol.Chem.271：5638(1996)；和Shifren et al.，出处同上(1996)也开发出以二元单克隆抗体对为基础的比色ELISA。尽管这种ELISA能检测癌症患者升高的VEGF水平，但是它缺乏测定正常个体中VEGF内源水平所需的敏感性。Rodriguez etal.J.Immunol.Methods 219：45(1998)描述了在纯净的血浆或血清中VEGF敏感性为10pg/ml的双位点荧光VEGF ELISA。然而，这种荧光测定仅能充分检测VEGF种类中完整的165/165和165/110。
因此，需要发展一种诊断性和预后性的测定法，其在动物模型或患者的生物标本中比现有ELISAs能检测到更高的VEGF可测定水平，并且能够测定VEGF的所有同工型。
                         发明概述
本发明开发了以VEGF作为抗原的多位点抗体-夹心ELISA方法和试剂盒以检测生物标本中的VEGF并被用作诊断/预后的指标。与现在使用的VEGF ELISAs相比，本测定具有高度敏感性且能够检测循环中内源VEGF的多数同工型。
具体地，本发明提供检测生物标本中VEGF的方法，优选来自血管病，糖尿病，或者癌症的病人的标本，包括以下步骤：
(a)将生物标本与固定于固体支持物的预混合捕捉试剂接触和保温。其中捕捉试剂是抗人VEGF的多克隆和单克隆抗体，该单克隆抗体特异性结合人VEGF的C-末端(残基111-165)。
(b)从固相化捕捉试剂上分离生物标本；
(c)将固相化捕捉试剂与结合VEGF的KDR和FLT1受体结合结构域的可检测抗体接触；和
(d)用检测可检测型抗体的工具(means)测定结合于捕捉试剂的VEGF水平。
优选地，以单克隆对多克隆抗体重量比约为0.8∶1至1.2∶1来固定捕捉试剂。更优选地，单克隆对多克隆抗体重量比约为1∶1。
另一方面，本发明提供检测生物标本中VEGF的免疫测定试剂盒，此试剂盒包括：
(a)作为捕捉试剂，抗人VEGF多克隆和单克隆抗体以单克隆对多克隆抗体重量比约为0.8∶1至1.2∶1而预混合的混合物，其中单克隆抗体特异地结合人VEGF的C-末端(残基111-165)；和
(b)作为检测试剂，结合VEGF的KDR和FLT1受体结合结构域的可检测抗体。
该测定的独特性在于，它使用多克隆/单克隆抗体混合物作为捕捉试剂，并且捕捉性单克隆抗体结合VEGF的C-末端部位。以前公开的VEGF ELISAs多数以二元单克隆抗体对为基础来捕捉/检测，或者以单克隆抗体作为捕捉试剂而以多克隆抗体来检测。如果将多克隆抗体单独作为捕捉抗体，测定法的所有敏感性会丧失。单克隆捕捉抗体结合VEGF C-末端的能力确保所有内源VEGF分子，包括165/165，165/110和110/110能够被这里描述的测定所检测。而且，本发明的检测抗体结合VEGF的生物活性区，例如，VEGF的KDR和FLT1受体结合结构域，这确保检测到的VEGF分子是不被例如，循环中可溶性VEGF受体封闭的。这样，这里描述的测定提供对很可能有生物活性的循环性VEGF分子更准确的测定。
                     附图描述
图1表示抗rhVEGF的亲和纯化的兔多克隆抗体两种不同制剂的对比，用正方形表示优选的抗体而用圆圈代表来自不同放血的相同抗体。
图2表示本文中抗VEGF的亲和纯化的兔多克隆抗体用胍和甘氨酸洗脱的ELISAs的对比。
图3表示三种不同VEGF ELISAs典型标准曲线和可能的hook效应的对比。其中圆圈代表用Mab 3.5F8单独作为包被和检测试剂的单-位点测定，正方形代表用Mab 3.5F8作为包被试剂和Mab A4.6.1作为检测试剂的双-位点测定，菱形代表这里的用Mab 3.5F8和亲和纯化的多克隆抗体作为包被试剂而用Mab A4.6.1作为检测试剂的多位点测定。
图4表示单克隆抗体Mab 3.5F8包被最高限，其中ELISA使用0.4(圆圈)，1(正方形)，2(菱形)，或者4(三角形)μg/ml单克隆抗体和1μg/ml亲和纯化的多克隆抗体。
图5表示兔多克隆抗体包被最高限，其中ELISA使用0(圆圈)，0.1(正方形)，0.4(菱形)，1(三角形)，2(带虚线的倒三角形)，或者4(带实线的倒三角形)μg/ml亲和纯化的多克隆抗体和0.4μg/ml Mab 3.5F8。
图6表示pH值对这里所述多位点VEGF ELISA的影响，其中圆圈代表pH4时的ELISA，正方形pH5，菱形pH6，三角形pH7，半线菱形pH8，和倒菱形pH9。
图7表示在多位点VEGF ELISA中掺入了rhVEGF的六份正常人EDTA血浆标本稀释的线性关系。
图8A-8C表示掺入了rhVEGF的正常大鼠EDTA血浆标本的线性关系。其中图8A表示高掺入，图8B表示中等掺入，图8C表示低掺入，其中圆圈是大鼠混合血浆1，正方形是大鼠混合血浆2，菱形是大鼠1。
图9A-9B分别表示掺入了rhVEGF的四份雄性和四份雌性Yorkshire猪EDTA血浆标本的稀释的线性关系。
图10A-10C表示三种不同ELISA测定对VEGF 165/165(圆圈)，165/110(正方形)，121/121(菱形)和110/110(三角形)的特异性。图10A表示用Mab 3.5F8单独作为包被和检测抗体的单-位点ELISA的特异性(图10A)，图10B表示用Mab 3.5F8作为包被抗体和Mab A4.6.1作为检测抗体的双-位点VEGF荧光ELISA测定的特异性，图10C表示这里的用Mab 3.5F8和PAb作为包被抗体而用Mab A4.6.1作为检测抗体的多位点VEGF荧光ELISA测定的特异性。
图11A和11B分别表示仅使用Mab 3.5F8作为包被试剂的双位点ELISA检测和本文中用PAb和Mab 3.5F8作为包被试剂的多位点ELISA检测到的正常人血浆和血清VEGF。
图12表示用图10中描述的所有三种测定所得心脏病患者血浆VEGF的量。其中圆圈代表单位点测定，正方形代表双位点测定，三角形代表多位点测定。
图13表示正常供体和心血管患者的血浆VEGF水平，其使用以Mab3.5F8作为包被抗体和Mab 4.6.1作为检测抗体的双-位点测定或这里的用Mab 3.5F8和亲和纯化的多克隆抗体作为包被抗体而用Mab 4.6.1作为检测抗体的多位点测定获得，其中N是患者数。
图14表示肺癌患者的血清VEGF，其使用Mab 3.5F8单独作为包被试剂的双位点测定和这里用PAb和Mab 3.5F8作为包被试剂的多位点ELISA来检测。
图15表示正常供体和糖尿病患者(非胰岛素依赖型糖尿病(NIDDM)和胰岛素依赖型糖尿病(IDDM))的血清VEGF水平，其使用Mab 3.5F8作为包被抗体和Mab 4.6.1作为检测抗体的双-位点测定来检测。
图16A和16B表示测定人血浆时，以亲和纯化的抗DNA酶多克隆抗体和亲和纯化的抗VEGF多克隆抗体作为包被试剂之一的本文所述多位点测定与以Mab 3.5F8作为包被试剂的双位点测定的对比图。图16A表示用Mab3.5F8作为包被试剂(x-轴)的双位点ELISA，用Mab 3.5F8和抗DNA酶多克隆抗体作为包被试剂(实心圆圈)的多位点测定以及这里阐述的使用Mab3.5F8和抗VEGF PAb作为包被试剂的多位点测定(空心圆圈)测得的血浆VEGF的相互关系。图16B表示双位点ELISA(实心圆圈)、用Mab 3.5F8和抗DNA酶多克隆抗体作为包被试剂的多位点ELISA(实心菱形)，和这里阐述的使用Mab 3.5F8和抗VEGF PAb作为包被试剂的多位点测定(实心正方形)的标准曲线。
                         优选实施方案详述
A.定义
这里使用的术语“VEGF”指165个氨基酸的血管内皮细胞生长因子，和相关的121-，145-，189-，和206-氨基酸的血管内皮细胞生长因子，如Leung et al.Science 246：1306(1989)，Houck et al.Mol.Endocrin.5：1806(1991)，和Neufeld et al.，出处同上所述，以及这些生长因子的天然等位基因形式和加工形式。
术语“检测”使用其最广义的意义，包括对靶分子的定性和定量测定。一方面，这里所述的检测方法仅用于鉴定生物标本中VEGF的存在。另一方面，此方法用于测试标本中VEGF是否为可检测水平。还有一方面，此方法可用于定量标本中VEGF的量并且进一步对比不同标本中的VEGF水平。
术语“生物标本”指来自任何动物的身体标本，但是优选来自哺乳动物，更优选来自人。最优选地，这些生物标本是来自血管的、糖尿病的或者癌症的患者。这些生物标本包括生物体液如血清，血浆，玻璃体液体，淋巴液，滑液，滤泡液，***，羊水，乳汁，全血，尿液，脑脊液，唾液，痰液，泪液，汗液，粘液，和组织培养基，也包括组织提取物如匀浆的组织，和细胞提取物。这里优选的生物标本是血清，血浆或尿液。
术语“捕捉试剂”指能结合并捕捉标本中靶分子的试剂，并因此在适当条件下能将捕捉试剂-靶分子复合物与标本中其余部分分离。一般地，捕捉试剂为固相化或者是可固相化。在夹心免疫测定中，捕捉试剂优选针对靶抗原的一种抗体或者不同抗体的混合物。
术语“可检测的抗体”指能直接通过可被检测工具放大的标记检测或者间接通过例如，另一种被标记的抗体而检测的抗体。在直接标记的例子中，一般将抗体连接于可用某些工具(means)检测的部分上。优选的可检测抗体是生物素化的抗体。
术语“检测工具(means)”指在这里的ELISA中用于检测可检测型抗体的存在的部分或技术，并且包括能放大固相化标记如在微滴定板上捕捉的标记的检测试剂。优选地，检测工具是荧光检测试剂如亲和素或链亲和素。
术语“抗体”使用其最广义意义并且包括单克隆抗体(包括激动剂，拮抗剂和中和抗体)，多克隆抗体，多价抗体，多特异性抗体，和抗体片段，只要它们具有所需结合特异性。
本文中术语“单克隆抗体”是指从基本均一的抗体群的抗体，即除了可能少量存在的天然突变以外，该抗体群中的各个抗体均相同。单克隆抗体具有高度的特异性，针对单个抗原位点。而且，与通常包括针对不同决定簇(表位)的不同抗体的常规(多克隆)抗体制剂相反，每种单克隆抗体是针对抗原上的单个表位。除了其特异性之外，单克隆抗体的优点在于它们可被合成并不受其它抗体的污染。修饰词“单克隆”表明该抗体的特点，即其来自基本上同质的抗体群，不解释为需通过任何特殊方法产生该抗体。例如，根据本发明应用的单克隆抗体可通过由Kohler等(自然，256：495(1975))首先描述的杂交瘤法进行制备，或者可通过重组DNA法进行制备(例如见美国专利4816567)。“单克隆抗体”还可利用例如Clackson等(自然，352：624-628(1991))和Marks等(分子生物学杂志，222：581-597(1991))所述技术从噬菌体抗体文库中分离。
本文中单克隆抗体特别包括“嵌合”抗体，其重链和/或轻链的一部分与源自特殊物种或属于特殊抗体种类或亚类的抗体的相应序列相同或同源，但所述链的剩余部分的序列与源自另一个物种或属于另一个抗体种类或亚类的抗体(以及此抗体的片段，只要它们显示所需的生物学活性)的相应序列相同或同源(美国专利4,816,567；和Morrison等，美国国家科学院院刊，81：6851-6855(1984))。
“人源化”型非人(例如小鼠)抗体是嵌合的免疫球蛋白、免疫球蛋白链或其片段(如Fv、Fab、Fab’、F(ab)’)或抗体的其它抗原结合序列，它们包含非人免疫球蛋白的最小序列。在很大程度上，人源化抗体是人免疫球蛋白(受者抗体)中受者的互补决定区(CDR)残基被具有所需特异性、亲和力和性能的小鼠、大鼠、家兔或非人灵长类等非人源物种抗体(供体抗体)的CDR残基所取代。在一些实例中，人免疫球蛋白的框架区(FR)残基由相应的非人类残基所取代。而且，人源化抗体可包括在受者抗体或供体CDR或框架序列中不存在的残基。这些修饰旨在进一步改善和最大化抗体的性能。通常，人源化抗体基本上包括至少一个(通常包括两个)可变区的全部，其中CDR的全部或基本上全部对应于非人免疫球蛋白的相应部分，而FR序列的全部或基本上全部是人免疫球蛋白序列。人源化抗体还任选包括免疫球蛋白恒定区(Fc)，通常为人免疫球蛋白的恒定区的至少一部分。详见Jones等，自然，321：522-525(1986)；Riechmann等，自然332：323-329(1988)；和Presta，Curr.Op.Struct.Biol.2：593-596(1992)。
需要治疗的“哺乳动物”是指哺乳类任何动物，包括人、家禽、农用动物，和动物园、运动项目用的动物或宠物，如犬、马、猫、牛等。优选哺乳动物是人。
术语“癌症”、“癌症的”、和“恶性的”是指或描述哺乳动物中以细胞生长失控为典型特点的生理状态。癌症的例子包括但不局限于：癌，包括腺癌，淋巴瘤，母细胞瘤，黑素瘤，肉瘤，和白血病。这些癌症的更具体例子包括鳞状细胞癌，小细胞肺癌，非小细胞肺癌，胃肠道癌症，何杰金氏和非何杰金氏淋巴瘤，胰腺癌，成胶质细胞瘤，***，卵巢癌，肝癌(liver cancer)例如肝癌(hepatic carcinoma)和肝细胞瘤，膀胱癌，乳腺癌，结肠癌，结肠直肠癌，子宫内膜癌，唾液腺癌，肾癌如肾细胞癌和Wilm’s瘤，基底细胞癌，黑素瘤，***癌，外阴癌，甲状腺癌，睾丸癌，食管癌，和各种头颈部癌症。这里治疗优选的癌症是乳腺癌，结肠癌，肺癌和黑素瘤。
短语“血管的”和“心血管的”可互换使用且描述具有刺激血管发生和/或心血管化以及抑制血管发生和/或心血管化指征的患者。这些疾病包括，例如，动脉疾病，如动脉粥样硬化，高血压，炎症性血管炎，Reynaud’s病和Reynaud’s现象，动脉瘤，和动脉再狭窄；静脉和淋巴疾病如血栓性静脉炎，***炎，和淋巴水肿；以及其他血管疾病例如外周血管疾病，癌症例如血管肿瘤如血管瘤(毛细的和空洞的)，血管球肿瘤，毛细血管扩张，杆菌性血管瘤病，血管内皮瘤，血管肉瘤，血管外皮细胞瘤，Kaposi’s肉瘤，***瘤，和***肉瘤，肿瘤血管发生，创伤如外伤，烧伤和其它损伤的组织，移植物固定，结疤，缺血再灌注损伤，类风湿性关节炎，脑血管疾病，肾脏疾病如急性肾衰，和骨质疏松。这也包括心绞痛，心肌梗死如急性心肌梗死，心肌肥大，和心脏衰竭如充血性心力衰竭(CHF)。
术语“糖尿病”指糖代谢的渐进性疾病包括胰岛素的产生或利用不足并以高血糖和糖尿为特征。此术语包括所有类型的糖尿病，例如I型糖尿病和II型糖尿病以及胰岛素抵抗型糖尿病，例如Mendenhall’s综合征，Werner综合征，矮妖精貌综合征，脂肪萎缩型糖尿病，和其它脂肪萎缩。
术语“亲和纯化的”指通过亲和层析柱洗脱来纯化某物质。
B.完成本发明的方式
这里描述的测定是利用下列步骤的多位点免疫测定。
第一步
本文所述测定法的第一步中，将生物标本与固相化捕捉(或包被)试剂接触并保温，此试剂是抗VEGF单克隆抗体和抗VEGF的多克隆抗体。这些抗体可以来源于任何物种。但是优选地单克隆抗体是鼠的或大鼠的单克隆抗体，更优选鼠的，且最优选Mab 3.5F8(Rodriguez et al.出处同上(1998))，多克隆抗体是抗兔或抗山羊抗体，更优选抗兔的。而且，多克隆抗体优选已亲和纯化以降低背景。因此，在具体的优选实施方案中，固相化单克隆抗体是鼠单克隆抗体，最优选Mab 3.5F8，固相化多克隆抗体是亲和纯化的兔抗体。将固相化捕捉试剂在被固定前混合在一起。传统的固定通过将捕捉试剂变为不溶而完成，此过程或者在测定程序前，或者在之后完成，前者通过吸附于水不溶性基质或表面(美国专利第3720760号)或者非共价或共价偶联(例如，如美国专利第3645852或Rotmans et al.J.Immunol.Methods57：87-98(1983)中描述的，用戊二醛或碳二亚胺交联，此前将支持物用例如，硝酸和还原剂活化或不活化)，后者通过例如免疫沉淀。
用于固定的固相可以是基本不溶于水且可用于免疫测定的任何惰性支持物或载体，包括例如表面，粒状，多孔基质等形式的支持物。常用载体的例子包括小薄片，Sephadex，聚氯乙烯，塑料珠，和用聚乙烯，聚丙烯，聚苯乙烯制造的测定板或试管，以及类似物包括96孔微滴定板，还有特殊物质如滤纸，琼脂糖，交联葡聚糖，和其它多糖。或者，反应性水不溶性基质诸如氰溴化物活化的碳水化合物和如美国专利3969287；3691016；4195128；4247642；4229537；和4330440中描述的反应性物质适用于固定捕捉试剂。在一个优选的实施方案中将固相化捕捉试剂包被于微滴定板上，并且具体地使用的优选固相是可用于同时分析若干标本的多孔微滴定板。最优选的是微量测定96孔ELISA板例如以Nune Maxisorb或Immulon为名出售的板。
如上述将固相用预混合的捕捉试剂包被，其可按照目的通过非共价或共价相互作用或物理交联来连接。接合的技术包括美国专利4376110所描述的，该专利引入本文作参考。如果是共价交联，将平板或其他固相与交联试剂连同捕捉试剂在本领域熟知的条件下保温，例如室温下1小时。
常用于将预混合的捕捉试剂连接于固相底物的交联试剂包括，例如，1，1-双(二重氮基乙酰)-2-苯基乙烷，戊二醛，N-羟基琥珀酰亚胺酯，例如，与4-叠氮水杨酸的酯，同型双功能亚氨酸酯，包括二琥珀酰亚胺酯如3，3’-二硫代双(琥珀酰亚氨基丙酸酯)，和双功能马来酰亚胺如二-N-马来酰亚氨基-1，8-辛烷。甲基-3-[(对-叠氮苯基)二硫]丙酰亚胺等衍生试剂产生在光存在时能形成交联的光活化型中间物。
如果使用96孔板，优选将其用捕捉试剂混合物(一般在缓冲液例如0.05M碳酸钠中稀释)包被，该过程是，在约4-20℃，较优选在约4-8℃，pH约8-12，更优选pH约9-10，且最优选约9.6时保温至少约10小时，更优选至少过夜。如果希望包被时间缩短(为1-2小时)，可以使用底部有硝酸纤维素膜的96孔板(Millipore MULTISCREENTM)或37℃包被。在测定之前可以将平板长时间堆积并包被，然后以手工，半自动化，或例如通过用机器人自动化形式同时完成几个标本的测定。
然后一般将包被的平板用非特异性结合并饱和结合位点的封闭试剂处理以封闭在板孔中自由配体与过剩位点的非目的结合。为此目的的合适的封闭试剂实例包括，例如，明胶，牛血清白蛋白，卵清蛋白，酪蛋白，和脱脂牛奶。封闭处理一般在室温条件下进行约1-4小时，优选约1.5-3小时。
包被和封闭后，将适当稀释的VEGF标准品(纯化的VEGF)或要分析的生物标本加到固定相上。优选的稀释率按体积约为5-15％，优选地约10％。可以用于此目的的稀释缓冲液包括(a)含有0.5％BSA，0.05％TWEEN 20TM去污剂(P20)，0.05％PROCLINTM300抗生物素，5mM EDTA，0.25％Chaps表面活性剂，0.2％β-γ球蛋白，和0.35M NaCl的PBS；(b)含有0.5％BSA，0.05％P20，0.05％PROCLINTM300，pH7的PBS；(c)含有0.5％BSA，0.05％P20，0.05％PROCLINTM300，5mMEDTA，和0.35M NaCl；pH6.5的PBS；(d)含有0.5％BSA，0.05％P20，0.05％PROCLINTM300，5mM EDTA，0.2％β-γ球蛋白，和0.35M NaCl的PBS；和(e)含有0.5％BSA，0.05％P20，0.05％PROCLINTM300，5mM EDTA，0.25％Chaps和0.35M NaCl的PBS。本文所述测定法优选的缓冲液是缓冲液(c)，因为它具有区别每种标准品的最大分辨率和最大信-噪比。PROCLINTM300起防腐剂作用，而TWEEN 20TM作为去污剂以消除非特异性结合。缓冲液(c)中加入的EDTA和盐的作用是降低其他缓冲液的背景，包括缓冲液(b)。
捕捉试剂的重量比(单克隆抗体比多克隆抗体)优选约0.8∶1至1.2∶1，更优选约1∶1。使用的捕捉试剂的量足以获得相对于VEGF标准品的良好信号，但是与标本中预期的内源性VEGF水平对比摩尔浓度不过剩。为达足够的灵敏度，优选加入生物标本的量是使已固相化捕捉试剂摩尔浓度超过适当稀释后生物标本中预期的游离VEGF的最大摩尔浓度。预期的水平主要取决于特定分析标本中游离VEGF浓度水平与患者的临床状况的任何已知相互关系。因此，例如，癌症患者血清中游离VEGF的最大预期浓度非常高，而基于现有文献预测正常儿童或成人的血清中具有较低浓度的游离VEGF。
但是，如果存在过多捕捉试剂，捕捉试剂将与生物标本中存在的抗-VEGF竞争结合VEGF，产生不准确结果。因此，通常将生物标本进行必要稀释以达到所需VEGF浓度范围，然后测定捕捉试剂的浓度，此时捕捉试剂的最终浓度常凭经验决定，以使测定的敏感性在目的范围内最高。但是，作为一般原则，摩尔过剩优选少于标本经任何合适稀释后其中预期的最大量游离VEGF的摩尔浓度的约10倍。最优选地，固相化单克隆抗体的量约为0.4μg/ml，固相化多克隆抗体的量约为0.4μg/ml。
选择保温标本和固相化捕捉试剂的条件使测定的敏感性最高且使解离最低。优选地，在非常恒定的温度下完成保温，范围从约0℃至约40℃，优选从约36℃至38℃以比在例如室温下获得较小变异，较低变异系数。保温时间主要取决于温度，一般不超过约10小时以避免不敏感测定。优选地，在36-38℃保温约0.5至3小时，更优选地1.5至3小时以使游离的VEGF与捕捉试剂的结合最多。如果加入蛋白酶抑制剂阻断生物液体中蛋白酶降解VEGF时，保温的持续时间可以长一些。
在此阶段，保温混合物的pH值一般在约6-9.5范围内，优选在约6-7范围内，更优选在约6.0-6.5，且最优选测定(ELISA)稀释液的pH值为6.35±0.1。酸性的pH值例如pH4-5可降低VEGF的回收。选择保温缓冲液的pH值以维持捕捉试剂对被捕捉的VEGF特异性结合的显著水平。可以使用各种缓冲液以达到和保持此步骤中想要的pH值，包括硼酸盐，磷酸盐，碳酸盐，Tris-HCl或Tris-磷酸盐，醋酸盐，巴比妥，等等。使用的具体缓冲液不是本发明的关键，但是在每一测定中一种缓冲液可以较其他的优选。
第二步
本文所述测定方法的第二步中，将生物标本从固相化捕捉试剂中分离(优选通过洗涤)以去除未捕捉的VEGF。洗涤使用的溶液一般为用上述保温步骤的考虑和缓冲液确定pH值的缓冲液(洗涤缓冲液)，其优选的pH值约为约6-9。洗涤可以进行三次或更多次。洗涤温度一般从冰箱温度至中等温度，在测定期间保持恒定温度，一般约0-40℃，更优选约4-30℃。例如，洗涤前可以将洗涤缓冲液放于4℃储存箱的冰中，且在此步骤中可以使用平板洗涤器。如果担心被捕捉的VEGF在随后步骤中可能以某种程度解离时，在此阶段也可以加入交联试剂或其他合适的试剂以允许现有结合的VEGF共价附着于捕捉试剂上。
第三步
在下一步中，将固相化捕捉试剂与可检测的抗体接触，优选地在约20-40℃，更优选约36-38℃，两者接触的实际温度和时间主要依赖于使用的检测工具。例如，当使用4-甲基伞形酮-β-半乳糖苷(MUG)和链亲和素-β-半乳糖苷酶作为检测工具时，优选使接触过夜(例如约15-17小时或更长)以使信号增至最大。可检测的抗体可以是多克隆或单克隆抗体，优选是单克隆抗体，更优选是鼠源的，且最优选是MAb A4.6.1。而且，优选的可检测的抗体是可直接检测的，优选具有荧光标记。与传统比色标记对比荧光标记有更高测定敏感性。更优选地，可检测抗体是生物素化的且检测工具是亲和素或链亲和素-β-半乳糖苷酶和MUG。
优选在冲洗平板后加入相对于预期的游离VEGF最大浓度(如上所述)为摩尔过量的抗体。尽管可以使用任何抗体，此抗体(是可直接或间接测定的)优选是多克隆抗体。抗体的亲和性必须足够高以至于可以检测到少量的游离VEGF，但是未高到引起VEGF从捕捉试剂上脱离。
第四步
在测定方法的最后一步中，用针对可检测抗体的检测工具测定已与捕捉试剂结合的游离VEGF水平。如果生物标本来源于血管的，糖尿病的，或癌症的患者，测定步骤优选包括将上面三步的反应结果与标准曲线对比以判定与正常个体对比的VEGF水平。
抗体的生产
抗VEGF的多克隆抗体一般通过在动物上经多次皮下(sc)或腹膜内(ip)注射VEGF和佐剂而产生。将VEGF或含有靶氨基酸序列的片段与在被免疫种属体内激发免疫应答的蛋白质偶联是有用的，后一种蛋白如，匙孔血蓝蛋白，血清白蛋白，牛甲状腺球蛋白，或大豆胰蛋白酶抑制剂，偶联可利用双功能或衍化试剂例如，马来酰亚胺苯甲酰磺基琥珀酰亚胺酯(通过半胱氨酸残基偶联)，N-羟基琥珀酰亚胺酯(通过赖氨酸残基偶联)，戊二醛，琥珀酸酐，SOCl2，或R1N＝C＝NR，其中R和R1是不同烷基。
用作包被抗体或可检测抗体的抗体可以从任何方便的脊椎动物来源获得，例如，鼠类，灵长类，兔形目，山羊，兔，大鼠，鸡，牛，羊，马，犬，猫，或猪。可以使用嵌合抗体或人源化抗体，例如下列文献描述的：美国专利第4,816,567；Morrison et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81：6851(1984)；Neuberger et al.Nature 312：604(1984)；Takeda et al.Nature 314：452(1985)；和1998年10月15日公开的WO98/45331，以及上面提及的那些附加参考文献。
通过将1mg或1μg偶联物(分别针对兔或小鼠)与3倍体积的Freund’s完全佐剂混合，将该溶液在皮内多部位注射，动物可以被这种免疫原性偶联物或衍生物免疫。一个月后将动物用1/5至1/10原初量的偶联物的Freund’s不完全佐剂混合液经多部位皮下注射而加强免疫。7-14天后将动物放血，测定血清抗-VEGF滴度。对动物加强免疫直至滴度达到平台期。优选地，将动物用VEGF的偶联物加强免疫，但该偶联物是与不同蛋白质的偶联和/或通过不同交联试剂的偶联。偶联物也可以是重组细胞培养中的蛋白融合体。而且，可用凝聚试剂例如明矾增强免疫应答。在许多免疫学教科书中描述了生产多克隆抗体的方法，例如，Davis et al.Microbiology，3rd Edition，(Harper&Row，New York，1980)。
通过从被免疫的动物回收脾细胞和以传统方式使细胞永生化，例如通过与骨髓瘤细胞融合或通过Epstein-Barr病毒转化，并且筛选能表达目的抗体的克隆可制备单克隆抗体。参见，例如，Kohler和Milstein Eur.J.Immunol.6：511(1976)。或可以通过重组方法生产单克隆抗体，或单克隆抗体的抗原结合区，例如Fab或(Fab)2片段。
合适的抗体的例子包括那些已经用于目的蛋白的已知RIA中者，例如本文所引参考文献中描述的直接抗VEGF的那些抗体。
检测
加入固相化捕捉试剂中的抗体可直接标记，或可间接检测，其通过洗去过量的第一抗体后，加入摩尔过量的已标记的直接抗第一抗体来源动物种属IgG的第二抗体。在后者，间接测定中，将已标记的抗第一抗体的抗血清加入标本中以在原位产生标记的抗体。
用于第一或第二抗体的标记是任何可检测的不干扰游离VEGF与抗体结合的功能物。合适的标记物的例子包括那些在免疫测定中使用的已知的许多标记物，包括可被直接检测的组分，例如，荧光染料，化学发光物质，和放射性标记，还有一些组分，例如必须经反应或衍化才能被检测的酶。这些标记的例子包括放射性同位素32P，14C，125I，3H，和131I，荧光团如稀土螯合物或荧光素和其衍生物，罗丹明和其衍生物，丹磺酰，伞形酮，萤光素酶例如，萤火虫萤光素酶和细菌萤光素酶(美国专利第4737456号)，虫萤光素，2，3-二氮杂萘二酮，辣根过氧化物酶(HRP)，碱性磷酸酶，β-半乳糖苷酶，葡糖淀粉酶，溶菌酶，糖氧化酶例如葡萄糖氧化酶，半乳糖氧化酶，和葡萄糖-6-磷酸脱氢酶，杂环氧化酶例如尿酸酶和黄嘌呤氧化酶，它与利用过氧化氢以氧化染料前体例如HRP的酶偶联，乳过氧化物酶，或微过氧化物酶，生物素/亲和素，生物素/链亲和素，带有MUG的生物素/链亲和素-β-半乳糖苷酶，离心(spin)标记物，噬菌体标记物，稳定的自由基，等等。如上所述，荧光标记是优选的。
可利用传统方法将这些标记共价结合于蛋白质或多肽上。例如，可以使用偶联试剂如二醛，碳二亚胺，二马来酰亚胺，bis-imidates，二-重氮化-联苯胺，等将抗体用上述荧光，化学发光，和酶标记物标记。参见，例如，美国专利第3940475(荧光测定)和3645090(酶)；Hunter et al.Nature144：945(1962)；David et al.Biochemistry 13：1014-1021(1974)；Pain et al.J.Immunol.Methods 40：219-230(1981)；和Nygren J.Histochem.And Cytochem.30：407-412(1982)。这里优选的标记是荧光的以使放大性和敏感性提高到8pg/ml，更优选带有链亲和素-β-半乳糖苷酶的生物素和MUG以放大信号。
这些标记，包括酶与抗体的偶联是免疫分析技术中对普通技术人员而言标准的操作程序。参见，例如，O’Sullivan et al.“Methods for the Preparationof Enzyme-antibody Conjugates for Use in Enzyme Immunoassay”，Methods inEnzymology，ed.J.J.Langone and H.Van Vynakis，Vol.73(Academic Press，NewYork，New york，1981)，pp.147-166。
加入最后标记的抗体后，判定结合抗体的量，其通过洗涤去除过量未结合的标记抗体，再用相应于该标记物的检测方法测定所结合的标记的量，并找出测定量与生物标本中游离VEGF量之间的相互关系。例如，在使用酶的情况中，显色并测定的量可以直接定量所存在的VEGF量。具体地，如果HRP是标记物，用底物OPD在490nm的吸收率来检测颜色。
在一个实施例中，从固定相上洗涤去直接抗未标记的第一抗体的酶标第二抗体后，通过将固相化捕捉试剂与酶的底物保温而产生并测定颜色或化学发光。然后通过对比平行进行的VEGF标准品试验所产生的颜色或化学发光来计算游离VEGF浓度的量。
试剂盒
为方便起见，可以以试剂盒的形式提供本发明的测定方法。此类试剂盒是一种包装组合物，其包括的基本元件有：
(a)捕捉试剂，包括抗人VEGF分子的多克隆和单克隆抗体，其中单克隆抗体特异性结合VEGF分子的C-末端，单克隆抗体与多克隆抗体的重量比约为0.8∶1至1.2∶1；和
(b)检测试剂，包括可检测的(标记的或未标记的)抗体，其结合VEGF受体结合结构域KDR和FLT1。
这些基本元件如本文上述所定义。
优选地，试剂盒进一步包括支持捕捉试剂的固体支持物，其为一种单独的元件或在其上已固定了捕捉试剂。因此，试剂盒中捕捉抗体可以是被固定在固体支持物上，或被固定在试剂盒包括的或与试剂盒分别提供的这类载体上。优选地，将捕捉试剂包被在微量滴定板上。检测试剂可以是能直接检测的标记抗体，或能通过在不同种属中产生的直接抗未标记抗体的标记抗体来检测的未标记抗体。当标记是酶时，试剂盒一般包括酶需要的底物和辅助因子，而当标记是荧光团时，包括提供可检测的发色基团的染料前体。当检测试剂未被标记时，试剂盒可以进一步包括针对该可检测抗体的检测工具，例如，抗未标记抗体的标记抗体，优选荧光检测形式。
在一个优选的具体实施方案中，试剂盒中单克隆抗体对多克隆抗体的重量比约为1∶1，可检测的抗体是生物素化的鼠单克隆抗体，单克隆抗体是鼠或大鼠的，更优选鼠的，且最优选MAb 3.5F8，多克隆抗体是亲和纯化的，且更优选山羊的或兔的，最优选兔的，鼠单克隆抗体的量是0.4μg/ml，兔多克隆抗体的量是0.4μg/ml。优选地，本试剂盒中捕捉试剂是固定的。而且，优选可检测的抗体是MAb A4.6.1。
一般地试剂盒也包含用于进行测定的仪器，和/或作为抗原标准品的VEGF(例如，纯化的VEGF，优选重组生产的VEGF)，以及其它附加物例如稳定剂，洗涤和保温缓冲液，等等。
VEGF标准品的例子是在哺乳类细胞中生产的重组人类VEGF，所述细胞可从Genentech.Inc.，South San Francisco，California获得。
试剂盒的成分可以以预定比率提供，其中各种试剂的相对量可变以提供基本上使测定的敏感度最大的反应溶液中试剂浓度。具体地，所提供的试剂可以为干粉，通常是冻干的，包括赋形剂，其通过溶解将提供具有适于与待测标本混合的合适浓度的试剂溶液。
下面的实施例意在说明实施本发明的现已知的一个实施方案，但是不应认为本发明局限于这些实施例。所有公开的和专利的文献在这里引用作为参考。
实施例1
2.材料与方法
2.1.试剂
将在大肠杆菌(Genentech，South San Francisco，CA)中表达的纯化的重组人VEGF165(rhVEGF)用作标准品和对照(在如下面定义的ELISA稀释液中制备并在-70℃贮存)。链亲和素-β-半乳糖苷酶(Strep-β-gal)购自BoehringerMannheim.W.Germany；MUG购自Sigma，St.Louis，MO。二甲亚砜(DEMO)购自Sigma。
2.2.抗VEGF抗体
抗rhVEGF165抗体的制备如Kim et al.，Growth Factors，7：53(1992)所描述。简言之，将BALB/c小鼠用偶联了匙孔血蓝蛋白的rhVEGF165以10mg的剂量腹膜内超免疫。将脾细胞与小鼠骨髓瘤系融合并用ELISA筛选含有杂交瘤的孔中培养上清中抗rhVEGF165Mab的存在。将阳性杂交瘤用有限稀释技术克隆两次。本ELISA使用的单克隆抗体已在Kim et al.出处同上(1992)中表述其特征。认为捕捉抗体之一，MAb 3.5F8，以13pM的Kd结合于肝素结合结构域附近，氨基酸残基111-165处。Rodriguez et al.出处同上(1998)。
用作另一包被抗体的兔多克隆抗体(PAb)可如下制备，将VEGF用标准方法注入兔体内，使其通过亲和柱来纯化，其中该层析柱偶联了VEGF因而可捕捉多克隆抗体，因而去除标本中的免疫球蛋白。洗掉不需要的抗体分子并将结合的抗体用0.2M甘氨酸，pH2洗脱，然后在4℃的PBS中透析过夜前将pH调至中性，含有抗体的洗脱物可用于多位点测定。
检测抗体，MAb A4.6.1，以86pM的Kd结合rhVEGF165。几种证据表明此MAb在KDR受体结合区附近结合rhVEGF(Kim et al.，出处同上(1992))。
2.3.MAb A4.6.1的生物素化
将MAb A4.6.1按照下列方法用生物素化酰氨基己酸-N-羟基琥珀酰亚胺酯(Biotin-X-NHS)(Research Organics.Cleveland.OH)生物素化。将MAb A4.6.1用100mM NaHCO3 pH8.5于2-8℃透析过夜。将总量60μl的5mg/ml溶于DMSO中的生物素-X-NHS溶液以生物素∶MAb比率1∶10(w/w)加入MAb中(透析后调节至浓度2-10mg/ml)。将此混合物在室温轻轻摇动下保温2小时，加入5μl乙醇胺终止反应。偶联后，将抗体于2-8℃轻轻摇动下用PBS透析，且PBS每隔两小时更换一次，总共三次。
2.4.多位点VEGF ELISA
两种Mab，3.5F8(包被)和生物素化的A4.6.1(检测)，以及如上述的一种PAb(包被)用于进行特异而敏感的VEGF ELISA。在此ELISA中，每孔按MAb3.5F8和亲和纯化的PAb各100μl混合，然后以每个于0.05M碳酸钠pH9.6中为0.4μg/ml的量加入MaxiSorpTM96孔微量滴定板上(Nunc.Roskilde，Denmark)。在2-8℃保温24-72小时后，将已包被的平板用400μl ELISA洗涤缓冲液(含0.05％TWEEN-20TM去污剂的PBS)经BIOTEK EL304TM平板洗涤器(Biotek Instruments，Winooski，VT)洗涤三次，用ELISA封闭稀释液以200Hl/孔(含有0.5％BSA.0.05％TWEEN-20TM，和0.05％PROC LINTTM300抗生物素，pH7.2的PBS)在室温轻轻摇动下封闭1-3小时。封闭后，将平板用400μl ELISA洗涤缓冲液重复洗涤3次。然后以100μl/孔向双份孔中加入标准品，标本，或对照并于37℃摇动保温1.5-2小时。为定量人血浆中的rhVEGF165，在ELISA稀释液中(含有0.5％BSA.0.05％TWEEN-20TM，和0.05％PROCLINTM300，5mM EDTA，和0.35M NaCl，pH6.3±0.1的PBS)制备标准曲线。标准曲线是由128pg/ml经1∶2系列稀释至2pg/ml。标本/标准品保温后，将平板用400μl ELISA洗涤缓冲液洗涤6次，并向平板中加入100μl/孔的用ELISA稀释液以1∶200新鲜稀释至理想浓度的MAbA4.6.1-生物素。于37℃摇动保温了1.5-2小时后，将平板如上述洗涤6次，向平板中加入100μl/孔的用ELISA稀释液以1∶40K稀释的链亲和素-β-半乳糖苷酶。于37℃摇动保温了45-60分钟后，将平板如上述洗涤6次，向平板中加入100μl/孔的用含有1mM MgCl2 pH7.3±0.1的0.1M NaPO4溶液新鲜稀释至340μg/ml的MUG/DMSO(1/100)。将底物反应37℃避光摇动保温15-17小时(将平板用箔包裹)。加入150μl/孔pH10.5±0.1的0.15M甘氨酸终止反应。每孔内容物的荧光单位(FSU)用360nm激发和460nm发射滤光片在CYTOFLUOR 40000TM荧光平板读数仪(PerSeptive Biosystems，Framingham.MA)上读取。使用四参数曲线吻合程序以产生标准曲线，由它内推标本和对照的浓度。FSU读数在加入150μl甘氨酸后于室温稳定至少30分钟。
2.5.人血浆标本
用几种方法评估准确测定人血浆中VEGF的能力。用rhVEGF165评定血浆对测定敏感性和性能的影响。将已知量的rhVEGF165加入每份人血浆标本中，回收百分比判定如下：(1)从被测标本VEGF总量中减去从平行标本测定的标本中内源VEGF的量，(2)然后用“回收的”VEGF效价除以加入标本中的VEGF量再乘以100。还评定了加入每份人血浆中的rhVEGF165的稀释线性关系。在这些研究中，加入rhVEGF165后，将每份血浆标本用ELISA稀释液1∶10稀释后再用ELISA稀释液1∶2系列稀释。在纯净的人EDTA血浆(冰冻的)中制备高和低基质(标准)对照。将它们用EL1SA稀释液以1/10稀释成终浓度10％血浆。
测定每份人血浆标本的内源VEGF水平。取正常健康个体的血液加入15％K3 EDTA Vacutainer试管中(Becton Dickenson，San Jose，CA)。将试管在2000×g离心20分钟并收集血浆。将血浆标本用ELISA稀释液1∶10稀释以用于测定。同上也评定所选标本中内源VEGF的稀释线性关系。
3.结果
3.1标本稳定性
将纯净的人EDTA血浆的稳定性检测三个冻-融循环。将血浆用于冰处理，然后轻轻在温水中混合使之解冻。下面表1中的数据表明经冻融处理后对VEGF的定量无显著影响。因此，人EDTA血浆对三个冻-融循环是稳定的。
表1：正常人EDTA血浆的净冻-融稳定性
    EDTA血浆    双位点    多位点
    32          22.11     78.84     新鲜25.4      75.16     1冻-融14.85     75.16     2冻-融18.88     72.08     3冻-融平均值      20.31     75.31stddev      4.51      2.77％CV        2.2       4
    33          35.44     100.24    新鲜35.87     101.71    1冻-融35.44     101.71    2冻-融39.19     101.71    3冻-融平均值      36.49     101.34stddev      1.81      0.73％CV        5         1
    34          17.51     78.18     新鲜25.03     94.6      1冻-融22.11     94.6      2冻-融24.72     83.95     3冻-融平均值      22.34     87.83stddev      3.48      8.16％CV        16        9
    39          29.35     84.62     新鲜31.11     81.39     1冻-融28.02     75.16     2冻-融31.11     71.51     3冻-融平均值      29.90     78.17stddev      1.50      5.93％CV        5         8
    38          23.43     83.95     新鲜29.94     80.07     1冻-融21.8      83.95     2冻-融24.72     66.84     3冻-融平均值      24.97     78.70stddev      3.52      8.12％CV        14        10平均值      12        6
Stddev＝标准差
CV＝变异系数
3.2检测的极限
将空白，1，2，4和8pg/ml标准品的大约20个复制物，用这里的多位点VEGF ELISA测定。用分析物(VEGF)浓度判定检测的极限，其中测得VEGF的平均FSU值减2个标准差高于空白荧光发射(460nm)的平均FSU值加上2个标准差。表2中的结果表明检测的极限在ELISA稀释液中为8pg/ml。由于一般将血浆标本1∶10稀释以使基质干扰最小化，所以在原始标本中至少可检测到80pg/ml或1.6pM VEGF。
表2：检测的极限(0.4μg/ml，0.4μg/ml)
  复制品    标准      标准      标准      标准      标准0pg/ml    1pg/ml    2pg/ml    4pg/ml    8pg/ml
            FSUs      FSUs      FSUs      FSUs      FSUs
    1       1103      1277      1351      1546      22162       1091      1382      1359      1617      22923       1103      1336      1413      1745      22414       1180      1328      1986      1770      22665       1235      1321      1382      1654      22166       1135      1382      1631      1735      22167       1180      1306      1328      1692      22668       1154      1125      1512      1654      22419       1079      1351      1366      1682      227910      1129      1559      1529      1678      238411      1129      1314      1445      1654      226612      1263      1413      1299      1617      222813      1079      1382      1336      1631      221614      1235      1284      1851      1716      256515      1135      ---       1711      1780      226616      1129      ---       1590      2077      226617      1017      ---       1445      1654      227918      1351      ---       1445      1740      237119      1079      ---       1546      1599      231820      2025      ---       1626      1663      2228
    均值    1192      1340      1508      1695      2281标准差  211       94        183       108       82
    +1SD    1402      1434      1690      1803      2363+2SD    1613      1528      1873      1911      2445-1SD    981       1246      1325      1587      2199-2SD    770       1152      1142      1479      2117
3.3抗VEGF PAb的检验和制备
将从同一兔中纯化的但是不同次抽血的抗rhVEGF兔多克隆抗体的两种不同制剂在测定中对比，用MAb 3.5F8作为单克隆抗体，并用0.4μg/ml的每种类型抗体。结果，如图1中显示，表明两种抗体都适于应用。
将兔多克隆抗体用甘氨酸洗脱，然后用胍洗脱，所得抗体用于本文优选条件下的测定中。图2和表3中的结果表明这两种洗脱方法无显著性差异。但是，甘氨酸洗脱似乎稍微敏感一些。正常人EDTA血浆标本以及高和低基质对照的对比表现出在两种制剂中相似的定量。胍峰比甘氨酸峰更紧密结合VEGF。
表3：以甘氨酸和胍作为洗脱剂的对比
正常人EDTA血浆PAb(甘氨酸)+Mabs PAb(胍)+Mabs    ％3.5F8/A4.6.1     3.5F8/A4.6.1    回收(pg/ml)          (pg/ml)
    12345678     37411127949405935     4834906236574531          7712312412813671132116
    High MatLow Mat     999     1028          97115
平均回收率％112
3.4robustness/ruggedness
用ANOVA统计分析评价低和高基质对照在测定组间和测定组内的精确性。在测定范围内以低浓度和高浓度将rhVEGF掺入纯净的人EDTA血浆来制备基质对照。结果显示测定组间变异(CV)范围为11-17％而测定组内变异范围为8-14％。数据总结如表4。
表4：基质对照的可重复性
试验名称   高(pg/ml)      低(pg/ml)
kn324p2    107.5          6.8kn324p2    111.2          11.6kn324p3    93.8           10.4kn324p3    96.7           11.2kn320p7    103.6          13.7kn320p7    103.6          13.7kn320p8    99.7           14.3kn320p8    102.0          14.7kn322p2    110.6          13.3kn322p2    102.0          ---kn322p3    97.0           14.4kn322p3    103.9          13.9kn322p1    99.0           12.0kn322p1    95.2           12.3kn320p3    101.1          15.3kn320p3    98.0           14.5kn320p2    105.1          14.9kn320p2    100.5          14.2kn320p1    106.0          14.1kn320p1    103.4          13.9kn319p2    87.1           10.2kn319p2    100.2          9.3kn319p1    97.6           9.4kn319p1    99.6           9.1kn316p1    92.4           11.7kn316p1    97.9           11.3kn313p1    117.8          18.8kn313p1    111.4          16.2kn212p2    92.4           14.6kn212p2    92.4           15.7kn311p1    123.9          14.2kn212p1    103.8          13.9kn212p1    93.2           13.7kn331p1    106.2          12.9kn331p1    109.2          13.3kn331p2    99.8           11.9
基质对照   测定组内(％CV) 测定组间(％CV)
低         14.0           11.0高         8.0            17.0
3.5 hook效应
过去几种标本在增加标本稀释度时已经表现出与测定的VEGF增加呈非线性关系。因此，测试这里的多位点ELISA的hook效应(用单位点和双位点ELISA并行对照)。用测定缓冲液将rhVEGF从16ng/ml稀释成1pg/ml。结果(如图3描绘)显示VEGF定量没有显著降低。但是，从512pg/ml开始可看到轻微降低和平台效应。因为在本文所述的多位点ELISA测定中使用的标本稀释产生的浓度小于128pg/ml，所以hook效应不必考虑。
3.6包被最大量
判断包被最大量的方法除了Pab或MAb 3.5F8包被浓度改变外与上面方法部分描述的相同。具体地，图4中将MAb 3.5F8的浓度从0.4改变至4μg/ml而保持多克隆抗体的浓度不变(0.1μg/ml)，图5和表5中多克隆抗体的浓度从0.4变化至4μg/ml而保持MAb 3.5F8的浓度不变(0.4μg/ml)。
当对于低和高对照VEGF定量中MAb 3.5F8和PAb基本恒定在浓度0.1和0.4μg/ml而其他包被抗体的浓度不变时，优选包被浓度的上限(例如0.4μg/ml)以增加捕捉VEGF的机会。在每例中MAb 3.5F8和PAb的浓度为1μg/ml时增加了测定的VEGF的量，但此浓度也产生较高的背景。因此，结果表明两种包被试剂的优选浓度约为0.4μg/ml。
表5：多克隆抗体加MAb 3.5F8的包被最大量
Mab 3.5F8         0.4μg/ml   0.4μg/ml    0.4μg/ml     0.4μg/mlPAb               0μg/ml     0.4μg/ml    0.1μg/ml     0
高基质(pg/ml)     100.4       89.3         94.0          97.3
低基质(pg/ml)     22.4        9.7          10.1          5.4
8个不同           97.3        33.5         42.5          10.7正常人血          202.5       106.5        77.0          19.7浆供体(pg/ml)     162.3       52.9         59.0          26.892.0        27.5         29.8          11.1115.6       41.4         42.5          11.0202.5       70.8         69.7          15.8409.9       196.6        207.9         94.9512.1       25.7         275.0         113.0
3.7多位点VEGF ELISA的pH图谱
进行pH作图以判定改变测定缓冲液的pH是否增加或减少正常人EDTA血浆中VEGF的回收。改变pH能离解结合蛋白或其他复合物，如果存在这样的复合物，它将干扰MAb A4.6.1检测。
检查所述测定的pH图谱的方法除了标本保温和生物素保温时，将测定缓冲液用NaOH或HCl调节使测定缓冲液pH范围为pH4至9以外，与上面方法部分中描述的相同。将标准曲线，低和高基质，和四份正常人EDTA血浆标本用这些改变pH的测定缓冲液进行稀释后评定。
图6和表6的结果显示pH4和5时没有VEGF的回收。但是，在可接受范围内测定对照组于pH6-9出现良好的VEGF血浆回收。测定缓冲液的pH从6-9变化时VEGF定量没有显著差异。但是，优选的测定缓冲液是pH约为6.35±0.1者，其导致VEGF的最大量结合并适合于测定中的所有稀释步骤。
表6：正常人EDTA血浆在改变pH时的VEGF回收
pH               4      5      6      7      8       9正常人EDTA血浆                 pg/ml  pg/ml  pg/ml   pg/ml
    1            ---    ---    198.9  122.0  173.3   204.02            ---    ---    141.4  81.7   138.7   138.63            ---    ---    240.7  150.3  220.9   243.54            ---    ---    112.2  113.2  176.7   190.3
    对照                       pg/ml  pg/ml  pg/ml   pg/ml
    高基质       ---    ---    104.5  105.0  93.8    124.0低基质       ---    ---    25.7   25.1   19.7    16.9
3.8稀释线性关系
将大约85pg/ml rhVEGF掺入纯净的人EDTA血浆中，系列稀释成1/10，1/20，1/40和1/80并分析。结果，如表7和图7，显示掺入EDTA血浆的rhVEGF表现出与预期浓度线性相关，相关系数为0.996。经测定，连续系列稀释的稀释校正浓度值之间差异百分率不超过19％±7.5的均值，如表7所示。
表7：正常人EDTA血浆的稀释线性关系
正常人EDTA   测定的    稀释度    校正的浓度  ％差异血浆(标本)   pg/ml
S1           103       10        1026        ---62        20        1237        2135        40        1416        1420        80        1599        13S2           109       10        1088        ---59        20        1176        835        40        1416        2022        80        1788        26S3           104       10        1039        ---60        20        1202        1632        40        1278        621        80        1677        31S4           88        10        878         ---52        20        1036        1832        40        1278        2319        80        1528        20S5           93        10        926         ---57        20        1136        2332        40        1278        1218        80        1433        12S6           119       10        1192        ---81        20        1612        3547        40        1893        1729        80        2298        21
3.9人血浆中VEGF的准确-定量
在从几个正常健康个体新鲜收集的血浆中测定内源VEGF水平。在个体人EDTA血浆标本中掺入最低，低，中，和高浓度的rhVEGF以落入标准曲线的测定范围。判定内源VEGF的浓度并且从所测定的浓度中减去之以获得与靶掺入的对比。表8中的结果显示高，中，低，和较低掺入的平均回收％分别为99％，113％，106％和118％。
表8：人EDTA血浆中rhVEGF的掺入回收
高掺入中掺入低掺入更低掺入     [内源的]    [测定的]   [测定的内源的] [靶]   ％pg/ml       pg/ml      pg/ml          pg/ml 回收
    18.6        100.5      81.9           85.3  9622.5        114.8      92.3           85.3  10830.3        111.0      80.8           85.3  9522.8        96.2       73.4           85.3  8618.4        103.2      84.9           85.3  10034.1        121.1      87.0           85.3  102
平均回收％                                      99
    21.0        98.3       47.1           49.3  969.1         89.1       80.1           49.3  16210.8        66.8       55.9           49.3  11321.0        59.5       38.5           49.3  789.1         66.8       57.8           49.3  117
平均回收％                                      113
    4.5        32.9        28.4           22.9  12410.0       32.9        22.9           22.9  10014.9       38.3        23.4           22.9  1028.6        31.2        22.6           22.9  999.3        33.7        24.4           22.9  10715.9       40.9        25.0           23.5  10636.2       58.8        22.6           23.5  9638.9       66.4        27.5           23.5  117
平均回收％                                      106
    4.3        24.9        20.2           17.8  1144.6        26.1        21.5           17.8  1207.4        27.9        20.4           17.8  1146.6        26.4        19.9           17.8  11110.8       33.1        22.2           17.8  1245.5        29.6        24.0           17.8  1353.9        22.7        18.6           17.8  105
平均回收％                                      118
*0.4μg/ml Mab 3.5F8+0.4μg/ml PAb包被
3.10正常大鼠EDTA血浆中VEGF的精确-定量
在一个个体和两个混合的雄性大鼠EDTA血浆标本中掺入低，中，和高浓度的rhVEGF以达到标准曲线的测定范围。判定内源VEGF的浓度并且从所测定的浓度中减去以获得与靶掺入物(稀释对照)的对比。然后将掺入物用ELISA稀释液1∶2稀释以判定稀释线性关系。表9中结果显示高于6.25pg/ml的高，中，和低掺入的平均回收百分率范围从84-103％。
表9：正常大鼠EDTA血浆中VEGF掺入物的回收
[预期的]          [测定的]                         [测定的]                        [测定的]
稀释对照pg/ml  雄性大鼠混合血浆1pg/ml  回收％  雄性大鼠混合血浆2pg/ml  回收％  个体雄性大鼠pg/ml  回收％  平均回收％
高掺入151985324中掺入4422115低掺入201063较低掺入1054 160106582541271351814621088 10610910910594125115104881351025298149202 15585431540207019910830 1038781619293660938618076470 14892431839167112600520 98958276897165156263049420 1039791819296824081954026747967
内源的                   LTS                       43                              39
3.11正常大鼠EDTA血浆用ELISA稀释的线性关系
测定大鼠EDTA血浆(2份雄性混合血浆，1个体)的稀释的线性关系。在纯净的血浆标本中掺入低(20pg/ml)，中(44pg/ml)，和高浓度(98pg/ml)的rhVEGF并用ELISA稀释液进行1/10，1/20，1/40和1/80系列稀释。表10和图8A-8C中的结果显示在测定范围8-128pg/ml内，自最低限1/20稀释开始，正常大鼠血浆标本被线性稀释。
表10：大鼠血浆标本线性关系总结(相关系数为单位(R))
掺入 大鼠混合血浆1 大鼠混合血浆2 大鼠1 平均R值
高 0.996 0.996 0.999 0.997
中 1 0.999 0.994 0.998
低 0.929 0.993 0.98 0.967
3.12正常Yorkshire猪EDTA血浆中VEGF的准确-定量
在八个Yorkshire猪(四个雄性和四个雌性)的EDTA血浆标本中掺入最低，低，中，和高浓度的rhVEGF以致达到标准曲线的测定范围。判定内源VEGF的浓度并且从所测定的浓度中减去它以获得与靶掺入(稀释对照)的对比。然后将掺入物用ELISA稀释液1/10，1/20，1/40，1/80稀释以判定稀释线性关系。图9A(雌性)和图9B(雄性)以及表11中的结果显示在测定范围8-128pg/ml内，自最低限1/20稀释开始，正常Yorkshire猪血浆标本被线性稀释。
表11：Yorkshire猪标本的线性关系总结
性别 相关系数(R)
雌性 0.99718
雌性 0.99917
雌性 0.99998
雌性 0.99958
雄性 1
雄性 0.99965
雄性 0.99995
雄性 0.99961
均值 0.99939
s.d. 0.00093491
％CV 0.094
3.13用三种ELISA检测各种类型的VEGF
设计本试验以判定是否这里的多位点ELISA可以测定所有VEGF变体。图10A，10B，和10C分别显示VEGF的单位点，双位点和多位点ELISA的对比。通过对比这些图可以看出这里的多位点测定能够捕捉更多的VEGF变体。
3.14用双位点，多位点，或PAb作包被进行检测
对比这里使用PAb和MAb3.5F8作为包被抗体的多位点ELISA与仅使用MAb3.5F8或PAb作为包被抗体的ELISA以评价正常人标本中VEGF的量。表12列出的结果显示在多位点测定中检测到的pg/ml水平的VEGF量远高于用PAb单独或MAb3.5F8单独测定的量。
表12：在正常人血浆标本中用PAb单独，MAb单独，或PAb加MAb测定的VEGF的量
NHP标本号               捕捉试剂
Mab 3.5F8(平均值pg/ml) 抗VEGF的PAb(平均值pg/ml) 抗VEGF的PAbMAb 3.5F8(平均值pg/ml)
1 49 173 225
2 26 LTS 149
3 39 124 211
4 41 103 189
5 27 LTS 153
6 29 LTS 149
7 16 LTS 159
8 25 LTS 144
9 21 LTS 122
10 36 148 185
11 24 72 171
12 23 LTS 145
13 40 103 200
14 34 83 143
15 42 LTS 200
16 20 85 152
17 51 196 285
18 25 LTS 145
19 20 LTS 154
20 20 LTS 143
21 23 LTS 155
22 28 77 163
23 39 180 285
24 24 87 168
25 45 148 261
26 21 131 179
27 34 LTS 189
28 18 LTS 131
29 50 159 251
30 73 LTS 359
31 21 85 149
32 42 214 237
33 33 LTS 234
34 30 152 206
35 21 87 154
36 76 307 445
37 28 70 225
38 53 51 304
39 32 84 193
40 28 LTS 106
41 44 105 275
42 32 44 217
43 28 69 197
44 25 LTS 69
45 50 114 285
46 28 38 176
47 21 67 125
48 28 27 192
49 29 LTS 159
50 18 27 107
LTS＝未检测到
3.15用双位点和多位点ELISAs测定的正常人血浆和正常人血清中的 VEGF水平的对比
将来自正常人类供体的血浆和血清标本用MAb 3.5F8作为捕捉抗体和PAb A4.6.1作为检测抗体的双位点ELISA以及用PAb和Mabs的本文所述多位点测定分析，方法如方法部分所述。图11A和图11B分别总结血浆和血清的结果，表明在两类标本中本文所述多位点测定比双位点测定可检测更多的VEGF。
3.16用单位点，双位点，和多位点ELISAs测定的正常人和心脏病患 者的VEGF水平对比
由Genentech，Inc.赞助了为评价TNK，一种t-PA变体的效率而进行的临床试验，来自正常人供体和来自上述临床试验中登记的患心脏病供体的标本用MAb 3.5F8作为包被和检测试剂进行单位点ELISA，用Mab 3.5F8作为捕获抗体，MAb A4.6.1作为检测抗体进行双位点ELISA分析，或用PAb和Mabs及方法章节所述方法进行本文所述多位点测定。图12显示用所有三种试验所测定的心脏病患者中血浆VEGF的量，图13和表13通过VEGF的平均值，标准差，％CV和s.e.m.总结了用双位点和多位点试验测定的正常人和心脏病患者血浆VEGF的量。结果显示在两种类型标本中用本文所述多位点测定比双位点测定检测到更多VEGF。
表13：对正常人和心脏病患者中VEGF的双位点和多位点测定的敏感性
         正常供体        心脏病患者
    双位点     多位点     双位点     多位点
均值pg/ml     32.61     192.40     37.54     279.23
s.d.     13.05     67.66     23.89     156.69
％CV     40.02     35.17     63.65     56.11
s.e.m.(标准误均值)     1.84     9.56     5.34     35
3.17用双位点和多位点ELISAs测定的肺癌患者血清VEGF水平的对 比
将来自非小细胞肺癌患者的血清标本用MAb3.5F8作为捕获抗体和MAb A4.6.1作为检测抗体的双位点ELISA，和用PAb和Mabs的本文所述多位点测定和方法部分所述方法进行分析。图14展示的结果表明在肺癌标本中本文所述多位点测定比双位点测定可检测到更多的VEGF。
3.18糖尿病患者的血清VEGF水平
用上面描述的双位点ELISA(MAb3.5F8作为包被试剂和MAb A4.6.1作为检测试剂)测定正常人和NIDDM(I型糖尿病)及IDDM(II型糖尿病)患者的血清VEGF水平。图15显示，用此测定时，NIDDM和IDDM患者血清VEGF水平高于正常人。因为在其他疾病患者中多位点测定比双位点测定可检测到更多的VEGF，所以预期本文所述多位点测定适合于检测糖尿病患者体内升高的VEGF水平。
3.19在多位点测定中抗VEGF PAb相对于抗DNA酶的PAb的特异性
如上述进行正常人血浆标本的双位点和多位点ELISA。此外，用抗DNA酶的PAb而不是抗VEGF的PAb作为包被试剂进行多位点测定。都是0.4μg/ml的浓度。图16和表14显示用多位点VEGF测定检测的VEGF是特异的。用抗DNA酶的PAb加上MAb3.5F8进行的ELISA结果显示几乎与单独用MAb3.5F8作为捕捉试剂的ELISA结果相同，其斜率为1.04(图16A)。
表14：评价人EDTA血浆的VEGF量
人EDTA血浆    MAb 3.5F8   抗VEGF的PAb      抗DNA酶的PAb(0.4μg/ml) (0.4μg/ml)和MAb (0.4μg/ml)和MAb3.5F8(0.4μg/ml) 3.5F8(0.4μg/ml)
高基质(pg/ml)  147.9      147.4            119.2
低基质(pg/ml)  12.8       18.3             12.5
7个不同        61.1       164.0            59.5正常人血浆     33.8       120.4            48.4供体(pg/ml)    34.6       174.3            64.547.4       104.5            102.128.3       70.4             79.667.6       113.0            71.861.1       105.9            65.4
3.20优选的测定和结果的总结
测定的类型 免疫测定(荧光ELISA)：鼠抗-VEGF单克隆抗体(MAb3.5F8)和兔亲和纯化的多克隆抗体作捕捉试剂，抗-VEGF单克隆抗体(MAbA4.6.1)作为检测试剂。
标准品 rhVEGF参考物质VEGF或等效物。标准曲线用ELISA稀释液稀释：PBS/0.5％BSA/0.05％Polysorbate 20/0.05％PROCLINTM300/5mM EDTA/0.35M NaCl，pH6.35±0.1
合格的种属 人，大鼠，Yorkshire猪
生物基质 血清，EDTA血浆，ELISA稀释液＝稀释缓冲液
测定范围 ELISA稀释液中1-128pg/ml
生物基质中的定量范围可定量浓度最低限可定量浓度最高限 对人血清和EDTA血浆为80pg/ml至1280pg/ml(1/10最低限稀释)对Yorkshire猪EDTA血浆为240pg/ml至850pg/ml(1/20最低限稀释)在此范围内仅在大约60％的％CV时有报道内源VEGF量低至120pg/ml对大鼠EDTA血浆为80pg/ml至1280pg/ml
人EDTA血浆中的测定组内精确性 低14％    高8％
人EDTA血浆中的测定组间精确性 低11％    高8％
准确性 在六个正常人EDTA血浆标本中掺入高，中，低浓度的rhVEGF，平均回收％为：低       中等     高106％    113％    99％在4个正常人血清标本中掺入高浓度的rhVEGF，平均回收％为：高    113％在3个大鼠EDTA血浆标本中掺入高，中，低浓度的rhVEGF，定量范围内平均回收％为：低    中等    高82％  91％    99％在四个雌性和四个雄性Yorkshire猪EDTA血浆标本中掺入高，中，低浓度的rhVEGF，据报道rhVEGF定量低于12pg/ml(所测定的内源VEGF)，仅供参考(平均回收％在低于12pg/ml时大约为60％)。在定量范围内平均回收％为：低     中等    高n/a    86％    107％
    特异性 将rhVEGF，IGF，TNF NGF，hGH，IFN，llbllla，rhuMAb VEGF，抗-VEGF MAb 3.5F8掺入人EDTA血浆中。在内源VEGF血清水平以上仅rhVEGF掺入是可测量值。
线性关系和干扰 将rhVEGF掺入六个不同正常人EDTA血浆标本。将标本连续1/2稀释以包括标准曲线的范围。每个标本进行四次稀释。将获得的rhVEGF值对1/稀释度绘图并且计算线性回归分析的相关系数(R2)。在标准曲线范围内标本是线性的。n     平均R2   SD6     0.996     0.005将rhVEGF以高，中，低浓度掺入三个大鼠EDTA血浆标本。在高和中等定量范围内标本是线性的。n     平均R2    SD       掺入3      0.998     0.002    高3      0.998     0.003    中3      0.967     0.034    低将rhVEGF掺入8个猪EDTA血浆标本并将标本连续1/2稀释以包括标准曲线的范围。每个标本进行四次稀释。在标准曲线范围内标本是线性的。n       平均R2    SD8       1          0.001
标本稳定性 测试5正常EDTA血浆标本的冻-融稳定性。人EDTA血浆标本对3个冻-融循环稳定。平均回收％：1X  101％2X  101％3X  93％
RUGGEDNESS/ROBUSTNESS PH作图显示多位点测定可耐受pH6-9。在pH4和5时不能对rhVEGF定量。标本保温1.5和16小时对标本定量无影响。(对照回收中的差异％：H对照19％，L对照16％)。测定在室温下进行。在人血浆和血清标本的VEGF定量中保温温度无影响(1小时与37℃过夜)。平均回收％：1小时    过夜血清     113％    121％血浆     115％    113％
测定的可接受性基质对照缓冲液对照标准曲线：相关系数精确性(％CV)准确性(％差异)回归参数标本 Westgard Multi-rules.平均数±2SD(对于低对照为30％CV)n/a＞0.994＜10％＜20％＜20％CV各稀释度之间＜20％差异
具体评价 含有rhuMAb VEGF的标本会干扰VEGF定量的准确性。测试了多种标本以改善内源VEGF(欲从可能的结合蛋白上释放VEGF)的标本线性关系。从0.5-1.5M增加NaCl的量与改变pH值相结合并加入甘氨酸或KSCN(预处理)或加热灭活均不改善稀释线性关系或增加测定的VEGF。
4.讨论
已知正常个体在生长，妊娠，和老化或病理生理疾病状态中VEGF的水平或循环形式知之甚少。这里描述了能测定VEGF的各种同工型和它们在人血浆中水平的敏感，高通量测定的开发和特点。此测定代表在正常个体和多种疾病状态下测定VEGF水平的重要工具。
这里的多位点VEGF ELISA能以同样良好的效力测定165/165，165/110，121/121，和110/110 VEGF变体。通过此测定，可在正常供体中检测到较高的血浆VEGF(192±68pg/ml，n＝50)。对相同的18例心血管病患者，检测到比正常供体显著升高的血浆VEGF(279±157pg/ml，n＝18，p＜0.001)。见图13。实际上，单克隆抗体MAb 3.5F8加上亲和纯化的抗无关蛋白质的多克隆抗体不比单独MAb 3.5F8者产生任何额外信号。得出结论是除了完整VEGF，其他VEGF变体和同工型存在于正常供体和心血管病患者的循环中。对于任何打算理解循环中VEGF的生物活性的测定而言，证明VEGF的受体结合结构域可用于结合的能力是很重要的特征。
荧光底物，链亲和素-β-半乳糖苷酶/MUG，优选用于检测***以便ELISA可检测正常个体中内源VEGF水平。此底物的使用和最佳ELISA稀释剂的判定导致更低的背景吸收值，其被优选以提高测定的敏感性。
由于用作捕捉和检测的抗体的选择使这里描述的多位点ELISA是高度特异的。包被抗体之一，MAb 3.5F8，结合在VEGF的肝素结合结构域附近(残基111-165)并且另一包被抗体，兔多克隆抗体结合VEGF。检测抗体，MAb A4.6.1，结合在该分子的KDR受体结合结构域(残基1-110)，产生对VEGF特异的ELISA。
此多位点ELISA的特异性随着对VEGF的生物学的更多了解而变得重要，Keyt et al.出处同上(p.7788)已经证明此研究中检测的不同VEGF变体在体外具有不同的生物学活性。测定特异性的知识在评价临床数据和在实验室数据间对比中也是非常重要的。
已发表的报道(Kondo et al.，出处同上(1994)；Takano et al.出处同上(1996)；Rodriguez et al.，出处同上)已经指出在癌症患者中血清VEGF水平升高。考虑到血管发生在固体肿瘤发展中是普遍现象，并且在各种来源的多种肿瘤细胞中观察到VEGF，一种肿瘤血管发生因子的表达，循环VEGF水平的测定具有作为广谱实体肿瘤的非侵入性诊断标志的潜力。
结论是，已经发展出测定大多数VEGF分子形式的敏感ELISA。按照本发明，在动物体内产生抗人VEGF的抗体，其C-末端特异的抗体为单克隆抗体且完整VEGF特异抗体为多克隆抗体，优选亲和纯化的抗体。这两种抗体可作为在固体支持物如微量滴定板上的包被抗体(固相化捕捉试剂)。只要用于检测的抗体对人VEGF的KDR和FLT1结合结构域是特异的，它们可以是多克隆抗体或单克隆抗体。
相信如这里描述的准确且敏感的ELISAs在帮助理解多种疾病状态下VEGF水平是重要的。更好理解VEGF水平以及在正常个体和在病理生理疾病状态下存在的主要同工型将增加对VEGF在正常和病理血管发生中作用的知识。
尽管已经描述了本发明以及它们的具体实施方案，应当理解它能进一步修饰并且此申请打算包括本发明的任何变化，应用，或适应，其一般遵循本发明的原则并且包括背离本发明内容但在本发明所属领域中是已知的或习惯的操作，而且可以被应用于本文所述的基本特征，并落在附加的权利要求书的范围内。

Claims (26)

1.一种用于检测生物标本中血管内皮细胞生长因子(VEGF)的方法其包括以下步骤：
(a)将生物标本与预混合并固定于固体支持物上的捕捉试剂接触并保温，其中捕捉试剂是抗人VEGF的多克隆和单克隆抗体，该单克隆抗体特异性结合人VEGF的C-末端(残基111-165)；
(b)从固相化捕捉试剂上分离生物标本；
(c)将固相化捕捉试剂与可结合VEGF的KDR和FLT1受体结合结构域的可检测抗体接触；和
(d)用针对可检测抗体的检测工具测定结合于捕捉试剂的VEGF水平。
2.权利要求1的方法，其中生物标本是从人类受试者中分离的。
3.权利要求2的方法，其中人类受试者是血管病患者，糖尿病患者，或癌症患者并且测定步骤进一步包括与标准曲线对比以判定相对于正常个体的VEGF水平。
4.权利要求1的方法，其中生物标本是血浆，血清或尿液。
5.权利要求1的方法，其中捕捉试剂是固相化的重量比约0.8∶1至1.2∶1的单克隆抗体和多克隆抗体。
6.权利要求5的方法，其中单克隆抗体对多克隆抗体的重量比约为1∶1。
7.权利要求6的方法，其中固相化单克隆抗体的量约为0.4μg/ml且固相化多克隆抗体的量约为0.4μg/ml。
8.权利要求1的方法，其中将固相化捕捉试剂包被于微量滴定板上。
9.权利要求1的方法，其中可检测的抗体是可直接检测的。
10.权利要求9的方法，其中可检测的抗体用荧光试剂放大。
11.权利要求10的方法，其中可检测的抗体是生物素化的且检测工具为亲和素或链亲和素-β-半乳糖苷酶和4-甲基伞形酮-β-半乳糖苷。
12.权利要求1的方法，其中固相化的单克隆抗体是鼠的且固相化多克隆抗体是兔或山羊的。
13.权利要求1的方法，其中固相化多克隆抗体是亲和纯化的。
14.权利要求1的方法，其中可检测的抗体是单克隆抗体。
15.权利要求14的方法，其中可检测的抗体是鼠单克隆抗体。
16.权利要求15的方法，其中固相化单克隆抗体是MAb 3.5F8且可检测的抗体是MAb A4.6.1。
17.一种用于检测生物标本中血管内皮细胞生长因子(VEGF)的免疫测定试剂盒，此试剂盒包括：
(a)以单克隆抗体比多克隆抗体重量比大约0.8∶1至1.2∶1而预混合的抗人VEGF多克隆抗体和单克隆抗体作为捕捉试剂，其中单克隆抗体特异性结合人VEGF的C末端(残基111-165)；和
(b)以能结合VEGF的KDR和FLT1受体结合结构域的可检测抗体作为检测试剂。
18.权利要求17的试剂盒，进一步包括支持捕捉试剂的固体支持物。
19.权利要求18的试剂盒，其中捕捉试剂被固定在固体支持物上。
20.权利要求19的试剂盒，其中捕捉试剂被包被在微量滴定板上。
21.权利要求17的试剂盒，进一步包括针对可检测抗体的检测工具。
22.权利要求21的试剂盒，其中检测工具是荧光检测型的。
23.权利要求17的试剂盒，进一步包括纯化VEGF作为抗原标准品。
24.权利要求17的试剂盒，其中单克隆抗体对多克隆抗体的重量比约为1∶1，单克隆抗体是鼠的，多克隆抗体是亲和纯化的，且单克隆抗体的量是0.4μg/ml，多克隆抗体的量为0.4μg/ml。
25.权利要求24的试剂盒，其中捕捉试剂是被固定的且多克隆抗体是兔或山羊的抗体。
26.权利要求25的试剂盒，其中可检测抗体是鼠单克隆抗体MAb A4.6.1并且捕捉试剂单克隆抗体是MAb3.5F8。
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