CN103865850A - 一株蝙蝠弧菌及制备琼胶酶的方法 - Google Patents

一株蝙蝠弧菌及制备琼胶酶的方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一株蝙蝠弧菌(Vampirovibrio sp.)fjfst-2013001,已于2013年12月8日在中国典型培养物保藏中心登记保藏,其保藏编号为CCTCC M 2013638,以及用该菌株发酵制备琼胶酶的方法。本发明以该菌株作为菌种,采用碳源、氮源、无机盐组成的发酵培养基,在优化后的培养条件下,琼胶酶的活力达到4.17U/ml。发酵液通过硫酸铵进行盐析,离心收集沉淀,后进行透析,取透析液过离子交换柱及凝胶柱,冷冻干燥即可获得琼胶酶干粉。

Description

一株蝙蝠弧菌及制备琼胶酶的方法
技术领域
 本发明属于食品生物技术领域,涉及筛选一株蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)及其培养发酵制备琼胶酶的方法。 
背景技术
  琼胶(agar),又名琼脂,是一种在海洋红藻中经热水提取得到的海藻多糖,其资源丰富,广泛应用于食品,医药,生物技术等领域,琼胶主要由中性的琼胶糖和离子性的硫琼胶组成,琼胶糖是由1,3连接的β-D-半乳糖和1,4连接的3,6-内醚-α-L-半乳糖残基反复交替连接的直链聚合物。 
 琼胶酶来源广泛,主要存在于海洋细菌中:交替单胞菌属,噬细胞菌属,假单胞菌属, 交替假单胞菌属,链霉菌属,微颤菌属,弧菌属。在以海藻为食的动物属中均有发现,如海兔属,滨螺属,冠海詹属等。 
 利用微生物法制备琼胶酶已经有许多年历史了,包括cytophage,(Duckworth M.Turvey JR.Biochem J,1969a),(Van der Meulen HJ,Harder W.Antonie Van Leeuwenhoek.1975),Agarivorans(Hu ct al.Appl Microbiol.2008)(Fu et al.Appl Microbiol Biotechnol.2008),Vibrio(Araki er al.J Mar Biotechnol.1998a)Dong er al.Biosci Biotechnol Biochem.2007),Pseudoalteromonas(Vera et al.Appl Environ Microbiol.1998)(Schroeder et al.Microbiology.2003),Streptomyces(Bibb et al.J Gen Microbiol.1987),Alteromonas(Leon et al.Appl Environ Microbiol.1992)(Wang er al. Appl Microbiol Biotechnol.2006)(Potin et al.EurJBiochem.1993),Pseudomonas(Morrice et al. Eur J Biochem.1983)(Malmqvist.Biochim Biophys Acta.1978)。但是其制备的琼胶酶由于尚未适应大规模工业化生产。所以故急需筛选出新的菌株进入微生物库中,作为生产琼胶酶菌株的后备力量。 
琼胶寡糖就是指琼胶多糖经水解后聚合度(DP)为2-10的低聚糖,又称琼胶低聚糖,主要由琼二糖的重复单位连接而成,水溶性好,有利于人体吸收,大大提高了其应用价值,是一种新型的海洋功能性低聚糖,其生物活性正在逐渐被挖掘,不仅具有功能性低聚糖的一般特性,还具有许多普通寡糖无法替代的生理功能特性,如较强的抗肿瘤,抗氧化,抗炎,抗龋齿及抗淀粉老化等活性,是一种极具开发潜力的低聚糖。而在海洋中藻类含量丰富,琼胶酶水解产生的琼胶寡糖对于提高资源的利用价值,有着重要的作用,并有着深远的影响,此外,琼胶酶还可以作为多种产业的工具酶,可制成酶制剂,广泛应用于生物,食品和水产养殖等多种领域。 
发明内容
 本发明的目的是筛选出一种产琼胶酶的菌株,并提供一种利用此菌株制备琼胶酶的方法。 
 本发明的技术方案:一株筛选自市售鲍鱼肠道的细菌,可以用于制备琼胶酶(agarase),其分类命名为蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001,已于2013年12月8日在中国典型培养物保藏中心登记保藏,其保藏编号为CCTCC M 2013638,保藏地址为武汉大学。 
   微生物菌株的筛选与鉴定: 
本发明取市售新鲜鲍鱼,消毒之后,用无菌水清洗,用无菌手术刀将其与壳分离,用镊子和手术刀取下壳上的肠道,涂布于琼脂筛选培养基上,在25℃下,培养48h挑选有明显凹陷的菌落进入琼脂筛选培养基中进行划线分离纯化,纯种接到发酵培养基25℃, 120 rpm,摇瓶培养24-72h,检测培养基中的琼脂酶活力,最终筛选出目标菌株B-13,对其进行生理生化特性鉴定和分子生物学实验指南进行16s rDNA序列分析,确定其属于蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.),拟命名为蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001。
 用所述蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001生产琼胶酶的方法包括如下步骤: 
(1)  用250mL锥形瓶装20-60mL种子培养基,按常规方法灭菌,冷却,并接种菌落,接种后于20-30℃,80-140rpm摇床培养12-24h后得到种子发酵液;
(2) 用250mL锥形瓶装20-60mL发酵培养基,按常规方法灭菌,冷却,并按2%-10%的接种量,将种子发酵液接入发酵培养基,20-30℃培养24-60h后得到含琼胶酶的发酵液; 
(3) 而后将发酵培养基经过4℃,8000-10000g冷冻离心10-20min之后,取上清液;
(4)  将上清液加入质量分数为60%-80%的饱和硫酸铵进行盐析,放置冰箱过夜后,4℃、8000-10000g离心20-40min取沉淀;沉淀置于0.01-0.1mol/L PBS缓冲液中溶解,而后置于透析袋中透析;
(5)  取透析后的透析液,用0.01-0.1mol/L PBS缓冲液冲过2-3床体积后,加入5-10ml透析液进入Q-Sepharose Fast Flow中,上样平衡后,用2-3床0.01-0.1mol/L PBS缓冲液洗去杂质,而后用0.01-0.1mol/L PBS缓冲液含0-2mol/L的NaCl进行梯度洗脱,收集有琼胶酶活性的试管,将有活性的合并,充分透析脱盐,进行冷冻干燥,得粗酶粉;
(6) 取粗酶粉0.1g,溶于5ml的0.01-0.1mol/L PBS缓冲液中,待0.01-0.1mol/L PBS缓冲液冲过4-5床体积之后,加入5ml样液到凝胶柱Sephacryl S-100上,并用含0.01-0.1mol/L PBS缓冲液洗脱,测定并收集有琼胶酶活力的试管;
(7) 将试管中的液体合并进行冷冻干燥,即成琼胶酶。
所述种子培养基为:海水晶25g/L,蛋白胨5g/L,酵母粉1g/L,琼脂2g/L,调节pH为7.2-8.4,去离子水配制;发酵培养基配方:海水晶20-30g/L,蛋白胨3-7g/L,酵母粉0.5-2.5g/L,琼脂1.5-2.5g/L,调节pH为7.2-8.4,去离子水配制。 
用该方法生产的琼胶酶的检测方法: 
取上述步骤(3)得到含有琼胶酶的发酵液上清液1mL,加入1mL的PBS缓冲液(其中含有琼胶0.1%),置于40℃水浴锅中酶解30min,后加入1.5mLDNS,沸水浴15min。冷却至室温后,用蒸馏水补齐刻度,使用分光光度计在540nm下进行检测。1U定义为1min产生1ug琼胶寡糖的值。
本发明的有益效果:筛选出一种用于微生物法生产琼胶酶的菌株,分类命名为蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001。本发明以该菌作为菌种,以常见碳源,氮源,无机盐组成的发酵培养基,可以在24-60h内达到最大酶产量。 
具体实施方式
   以下是说明本发明的具体实施例,但本发明并不限于此。 
   实施例1 
取福州市售新鲜鲍鱼,立即浸入70%的酒精1min消毒,再用无菌水清洗数次,用无菌手术刀将其与壳分离,再用无菌水清洗数次,用镊子和手术刀取下壳上的肠道,置于预先灭菌的研钵中,加入灭菌的1ml海水研磨10min,后加入9ml灭菌海水混匀。吸取1ml进行稀释(10-1,10-2,10-3,10-4,),吸取0.5ml涂布于琼脂筛选培养基上,在25℃下,培养48h挑选有明显凹陷的菌落进入琼脂筛选培养基中进行划线分离纯化,将纯种接到液体培养基25℃,100rpm,摇瓶培养48h,离心取上清,采用分光光度法检测培养基中的琼脂酶活性,经过初筛,共分离获得6株能产琼胶酶的细菌,结合琼胶酶的生产能力,最终选定B-13作为出发菌株。
   实施例2 
经形态学和生理生化特性研究,B-13菌株的特征如下:
菌落形态:菌落呈现出圆形,表面光滑,乳白色,边缘整齐。
细胞形态:此为革兰氏阴性菌,形态为杆状。 
生理生化特征:为兼性厌氧菌,能利用淀粉,葡萄糖,蔗糖,醋酸钠,D-半乳糖等多种化合物作为碳源,也可以利用蛋白胨,酵母膏,硝酸铵,硫酸铵,等多种化合物作为氮源。 
对菌株的16S rRNA基因进行PCR扩增与序列测定,发现其16S rRNA的基因部分片断长度为1484bp,经过NCBI和核糖体数据库进行比对,鉴定为蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.),拟命名为蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001,菌株的16S rRNA序列具体可见序列表。 
   实施例3 
(1)    将蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001在种子培养基中,用250mL锥形瓶装30mL种子培养基,按常规方法灭菌,冷却,并接种菌落,接种后于25℃,140rpm摇床培养24h后得到种子发酵液,所述种子培养基为:海水晶25g/L,蛋白胨5g/L,酵母粉1g/L,琼脂2g/L,调节pH为7.4,去离子水配制。
(2)    用250mL锥形瓶装30mL发酵培养基,按常规方法灭菌,冷却,并按4%的接种量,将种子发酵液接入发酵培养基,接种后于25℃,140rpm摇床培养培养48h后得到含琼胶酶的发酵液,所述发酵培养基为:海水晶25g/L,蛋白胨5g/L,酵母粉1g/L,琼脂2g/L,调节pH为7.4,去离子水配制。 
该实施例所得的琼胶酶的活力为1.71U/mL 
   实施例4
(1)    将蝙蝠弧菌(Vampirovibriosp.)fjfst-2013001在种子培养基中,用250mL锥形瓶装30mL种子培养基,按常规方法灭菌,冷却,并接种菌落,接种后于25℃,100rpm摇床培养24h后得到种子发酵液,所述种子培养基为:海水晶25g/L,蛋白胨5g/L,酵母粉1g/L,琼脂2.5g/L,调节pH为8,去离子水配制。
(2)    用250mL锥形瓶装30mL发酵培养基,按常规方法灭菌,冷却,并按8%的接种量,将种子发酵液接入发酵培养基,接种后于25℃,100rpm摇床培养培养48h后得到含琼胶酶的发酵液,所述发酵培养基为:海水晶25g/L,蛋白胨5g/L,酵母粉1g/L,琼脂2.5g/L,调节pH为8,去离子水配制。 
该实施例所得的琼胶酶的活力为4.17U/mL 
   实施例5
(1)    将上述发酵培养基经过4℃, 8000g冷冻离心15min之后,取上清液。
(2)    将上清液加入质量分数为80%的饱和硫酸铵进行盐析,放置冰箱过夜,4℃, 10000g离心30min取沉淀。 
(3)    沉淀置于一定量的0.01mol/L PBS缓冲液中溶解,而后置于透析袋中透析。 
(4)    取透析后的透析液,用0.01-0.1mol/L PBS缓冲液冲过2-3床体积后,加入5-10ml透析液进入Q-Sepharose Fast Flow中,上样平衡后,用2-3床0.01-0.1mol/L PBS缓冲液洗去杂质,而后用0.01-0.1mol/L PBS缓冲液含0-2mol/L的NaCl进行梯度洗脱,收集有琼胶酶活性的试管,将有活性的合并之后,充分透析脱盐之后,进行冷冻干燥,得粗酶粉。 
(5)    取粗酶粉0.1g,溶于5ml的0.01-0.1mol/L PBS缓冲液中,待0.01-0.1mol/L PBS缓冲液冲过4-5床体积之后,加入5ml样液到凝胶柱Sephacryl S-100上,并用含0.01-0.1mol/L PBS缓冲液洗脱,测定并收集有琼胶酶活力的试管。 
(6)    将试管中的液体合并进行冷冻干燥,即成琼胶酶。 
                         SEQUENCE LISTING
 
<110>  福建农林大学
 
<120>  一株蝙蝠弧菌及制备琼胶酶的方法
 
<130>  1
 
<160>  1    
 
<170>  PatentIn version 3.3
 
<210>  1
<211>  1484
<212>  DNA
<213>  16S rRNA
 
<400>  1
cagagtttga tcctggctca ggacgaacgc tggcggtgtg cttcacacat gcaagtcgaa     60
 
cgaggtagca atacctagtg gcggacgggt gagtaacgcg tgggaatctg cctttagatg    120
 
ggggataacg ggccgaaagg tccgctaata ccgcatatgc cgcaaggtga aaggagtaat    180
 
ccgtctaaag atgagcccgc gtccgattag ctagttggta gagtaagagc ctaccaaggc    240
 
gacgatcggt agctggtctg agaggatgat cagccacaat gggactgaga cacggcccat    300
 
actcctacgg gaggcagcag tggggaattt tacgcaatgg gggaaaccct gacgtagcga    360
 
caccgcgtga gcgaagaagc cctttggggt gtaaagctct gtcagctgga acgaaaacaa    420
 
tgacggtacc agcagaggaa gcatcggcta actacgtgcc agcagccgcg gtaagacgta    480
 
ggatgcgagc gttgtccgga tttattgggc gtaaagagtt cgtaggtggt ttgttaagtt    540
 
tggtgttaaa gatcggggct caaccctggg actgcactga atactggcag actcgagtgt    600
 
ggtagaggct agtggaattc ccagtgtagc ggtgaaatgc gtagatattg ggaagaacac    660
 
cggtggcgta ggcgactagc tgggccgtaa ctgacgctga ggaacgaaag ccaggggagc    720
 
gaatgggatt agatacccca gtagtcctgg ccgtaaacga tggatactag gcgtatcggg    780
 
tatcgacccc tgatgtgccg cagctaacgc gataagtatc ccgcctgagt agtacggccg    840
 
caaggttgaa actcaaagga attgacgggg gcccgcacaa gcggtggaac atgtggttta    900
 
attcgaagca acgcgaagaa ccttaccagg gcttgacatg gtaggaagct ttcggaaacg    960
 
agagtgtgcc cgcaagggag cctacacaca ggtggtgcat ggctgtcgtc agctcgtgtc   1020
 
gtgagatgtt gggttaagtc ccgcaacgag cgcaaccccc gttgttagtt gccatcaggt   1080
 
aaagctgggc actctagcga gactgccggt gacaaaccgg aggaaggtgg ggacgacgtc   1140
 
aagtcatcat gccccttatg ccccgggcta cacacgtgtt acaatggctg ggacaatgtg   1200
 
atgcaatccc gtgaggggga gcgaaccacg aaacccagtc tcagttcaga tcgcaggctg   1260
 
caactcgcct gcgtgaagtc ggaatcgcta gtaaccgccg atcagcacgc ggcggtgaat   1320
 
acgttcccgg gccttgtaca caccgcccgt cacgtcatgg gagttggtca cgcccaaagt   1380
 
cggtgcgcta accttcggga agcagccgcc taaggcaggg ccgatgactg ggacgaagtc   1440
 
gtaacaaggt agccgtaccg gaaggtgcgg ctggatcacc tcct                    1484
 
 

Claims (5)

1.一株蝙蝠弧菌,其特征在于:所述的菌株为蝙蝠弧菌(Vampirovibrio sp.)fjfst-2013001,已于2013年12月8日在中国典型培养物保藏中心登记保藏,其保藏编号为CCTCC M 2013638。
2.根据权利要求1所述的一株蝙蝠弧菌,其特征在于:所述蝙蝠弧菌的16S rRNA的序列如SEQ ID NO.1所示。
3.一种如权利要求1所述的一株蝙蝠弧菌的用途,其特征在于:所述菌株用于制备琼胶酶。
4.一种如权利要求1所述的一株蝙蝠弧菌用于制备琼胶酶的方法,其特征在于:所述方法包括如下步骤:
(1) 用250mL锥形瓶装20-60mL种子培养基,按常规方法灭菌,冷却,并接种菌落,接种后于20-30℃,80-140rpm摇床培养12-24h后得到种子发酵液;
(2) 用250mL锥形瓶装20-60mL发酵培养基,按常规方法灭菌,冷却,并按2%-10%的接种量,将种子发酵液接入发酵培养基,20-30℃培养24-60h后得到含琼胶酶的发酵液; 
(3) 而后将发酵培养基经过4℃,8000-10000g冷冻离心10-20min之后,取上清液;
(4) 将上清液加入质量分数为60%-80%的饱和硫酸铵进行盐析,放置冰箱过夜后,4℃、8000-10000g离心20-40min取沉淀;
(5) 沉淀置于0.01-0.1mol/L PBS缓冲液中溶解,而后置于透析袋中透析;
(6) 取透析后的透析液,用0.01-0.1mol/L PBS缓冲液冲过2-3床体积后,加入5-10ml透析液进入Q-Sepharose Fast Flow中,上样平衡后,用2-3床0.01-0.1mol/L PBS缓冲液洗去杂质,而后用0.01-0.1mol/L PBS缓冲液含0-2mol/L的NaCl进行梯度洗脱,收集有琼胶酶活性的试管,将有活性的合并,充分透析脱盐,进行冷冻干燥,得粗酶粉;
(7) 取粗酶粉0.1g,溶于5ml的0.01-0.1mol/L PBS缓冲液中,待0.01-0.1mol/L PBS缓冲液冲过4-5床体积之后,加入5ml样液到凝胶柱Sephacryl S-100上,并用含0.01-0.1mol/L PBS缓冲液洗脱,测定并收集有琼胶酶活力的试管;
(8) 将试管中的液体合并进行冷冻干燥,即成琼胶酶。
5.根据权利要求4所述的一株蝙蝠弧菌用于制备琼胶酶的方法,其特征在于:所述种子培养基为:海水晶25g/L,蛋白胨5g/L,酵母粉1g/L,琼脂2g/L,调节pH为7.2-8.4,去离子水配制;发酵培养基配方:海水晶20-30g/L,蛋白胨3-7g/L,酵母粉0.5-2.5g/L,琼脂1.5-2.5g/L,调节pH为7.2-8.4,去离子水配制。
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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104498563A (zh) * 2015-01-15 2015-04-08 福建省绿麒食品胶体有限公司 一种江蓠菜琼胶寡糖及其制备方法
CN105420142A (zh) * 2015-10-13 2016-03-23 中国海洋大学 一种来源于海洋生物的细菌Pseudoalteromonas.sp.QJ97及用其生产琼胶酶的方法
CN111826297A (zh) * 2019-04-18 2020-10-27 新乡医学院 一种产琼胶酶菌株的选育方法
CN113817710A (zh) * 2021-11-09 2021-12-21 蓝脑科技(厦门)有限公司 一种琼胶酶冻干保护剂及琼胶酶的保存方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0743363A2 (en) * 1995-04-27 1996-11-20 Kabushiki Kaisha Yakult Honsha Novel beta-agrase and microorganism generating the same
CN101451113A (zh) * 2008-11-06 2009-06-10 国家***第二海洋研究所 一种需钠弧菌及采用该菌生产琼胶酶的方法
CN101845447A (zh) * 2010-04-22 2010-09-29 国家***第二海洋研究所 一种β-琼胶酶编码基因及基因获取方法
CN104498563A (zh) * 2015-01-15 2015-04-08 福建省绿麒食品胶体有限公司 一种江蓠菜琼胶寡糖及其制备方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0743363A2 (en) * 1995-04-27 1996-11-20 Kabushiki Kaisha Yakult Honsha Novel beta-agrase and microorganism generating the same
CN101451113A (zh) * 2008-11-06 2009-06-10 国家***第二海洋研究所 一种需钠弧菌及采用该菌生产琼胶酶的方法
CN101845447A (zh) * 2010-04-22 2010-09-29 国家***第二海洋研究所 一种β-琼胶酶编码基因及基因获取方法
CN104498563A (zh) * 2015-01-15 2015-04-08 福建省绿麒食品胶体有限公司 一种江蓠菜琼胶寡糖及其制备方法

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104498563A (zh) * 2015-01-15 2015-04-08 福建省绿麒食品胶体有限公司 一种江蓠菜琼胶寡糖及其制备方法
CN105420142A (zh) * 2015-10-13 2016-03-23 中国海洋大学 一种来源于海洋生物的细菌Pseudoalteromonas.sp.QJ97及用其生产琼胶酶的方法
CN105420142B (zh) * 2015-10-13 2018-11-09 中国海洋大学 一种来源于海洋生物的细菌Pseudoalteromonas.sp.QJ97及用其生产琼胶酶的方法
CN111826297A (zh) * 2019-04-18 2020-10-27 新乡医学院 一种产琼胶酶菌株的选育方法
CN113817710A (zh) * 2021-11-09 2021-12-21 蓝脑科技(厦门)有限公司 一种琼胶酶冻干保护剂及琼胶酶的保存方法
CN113817710B (zh) * 2021-11-09 2023-11-24 蓝脑科技(厦门)有限公司 一种琼胶酶冻干保护剂及琼胶酶的保存方法

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