WO2019131942A1 - 細胞凝集促進剤 - Google Patents

細胞凝集促進剤 Download PDF

Info

Publication number
WO2019131942A1
WO2019131942A1 PCT/JP2018/048314 JP2018048314W WO2019131942A1 WO 2019131942 A1 WO2019131942 A1 WO 2019131942A1 JP 2018048314 W JP2018048314 W JP 2018048314W WO 2019131942 A1 WO2019131942 A1 WO 2019131942A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
cell
culture
less
medium
Prior art date
Application number
PCT/JP2018/048314
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
将人 伊吹
Original Assignee
株式会社カネカ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 株式会社カネカ filed Critical 株式会社カネカ
Priority to US16/958,359 priority Critical patent/US20210062159A1/en
Priority to EP18894959.8A priority patent/EP3733837A4/en
Priority to CN201880084375.7A priority patent/CN111527197A/zh
Priority to JP2019562204A priority patent/JP7349911B2/ja
Publication of WO2019131942A1 publication Critical patent/WO2019131942A1/ja

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0696Artificially induced pluripotent stem cells, e.g. iPS
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/60Transcription factors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/70Enzymes
    • C12N2501/72Transferases (EC 2.)
    • C12N2501/727Kinases (EC 2.7.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2513/003D culture

Definitions

  • the present invention relates to a cell aggregation promoter.
  • the present invention also relates to a method of producing cell clumps, and cell clumps produced thereby.
  • the invention also relates to cell culture compositions.
  • pluripotent stem cells such as human ES cells and human iPS cells have increased the possibility of practical application of regenerative medicine. Because these cells have the ability to proliferate indefinitely and the ability to differentiate into various cells, in regenerative medicine using pluripotent stem cells, treatment for intractable diseases, lifestyle-related diseases, etc. Is expected to fundamentally change. From pluripotent stem cells, it has already been possible to induce differentiation in vitro into various types of cells including neurons, cardiomyocytes, blood cells and retinal cells.
  • suspension culture in which cells are suspended in a culture medium is expected to be suitable for mass production of cells because scale-up is easy.
  • Non Patent Literature 1 uses spinner flasks as a cell culture vessel for suspension culture, and performs suspension culture of human pluripotent stem cells while stirring a liquid culture medium with strong stirring force to produce spheroids of uniform size. A method is disclosed.
  • Non-Patent Document 2 discloses a method of producing spheroids of uniform size in each microwell using a substrate on which minute microwells are formed.
  • Non-Patent Document 3 discloses a method of using a culture medium prepared with viscosity and specific gravity as a culture medium, and maintaining a suspended state of pluripotent stem cells while performing culture while suppressing collisions between cells.
  • Patent Document 1 discloses a technique of culturing a cell in a liquid medium while swirling to produce a cell aggregate.
  • Patent Document 2 discloses a method for suspension culture of pluripotent stem cells until the average diameter of cell mass is about 200 ⁇ m or more and 300 ⁇ m or less.
  • Patent Document 3 discloses a technique for suppressing cell aggregation by suspending and culturing cells in a medium containing lysophospholipid such as lysophosphatidic acid (LPA) and sphingosine-1-phosphate (S1P). There is.
  • lysophospholipid such as lysophosphatidic acid (LPA) and sphingosine-1-phosphate (S1P).
  • Non-Patent Documents 1 to 3 and Patent Documents 1 and 2 have the following problems.
  • Non-Patent Document 1 has a problem that cell death is likely to occur due to shear stress.
  • Non-Patent Document 2 has problems such as difficulty in scale-up and difficulty in replacing the culture medium.
  • Non-Patent Document 3 there is a problem that oxygen and nutrient components are difficult to be supplied to cell aggregates because the movement of the culture medium at the time of culture is small.
  • Patent Document 1 does not disclose means for controlling the size of a cell mass to an appropriate size.
  • Patent Document 2 describes that a water-soluble polymer is added to a culture medium to increase viscosity as a means for preventing adhesion between cell masses. For this reason, there is a problem that it is difficult to supply oxygen and nutrient components to the cell aggregate as in Non-Patent Document 3.
  • the present inventors suppress cell aggregation by suspending and culturing the cells in a medium containing lysophospholipid in Patent Document 3, thereby suppressing aggregation of appropriate size.
  • a suspension culture technology that can be produced without causing damage.
  • lysophospholipid is disclosed as a component which suppresses cell aggregation. If, in addition to lysophospholipids, a component that suppresses or promotes cell aggregation by being present in the culture medium in suspension culture is provided, the size of the cell aggregate is a mechanical / physical means. The present inventors thought that it would be possible to control more appropriately regardless of
  • a cell aggregation promoter for use in suspension culture of cells which comprises an SRF inhibitor.
  • the cell aggregation promoter according to (1) wherein the concentration of the SRF inhibitor is 9.0 ⁇ g / mL or more and 10.0 mg / mL or less.
  • a method for producing a cell aggregate comprising the step of suspending and culturing cells in a medium containing an SRF inhibitor.
  • the production method according to (6), wherein the concentration of the SRF inhibitor in the culture medium is 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less.
  • (12) A cell culture composition comprising cells, a culture medium, and an SRF inhibitor.
  • the cell culture composition according to (12), wherein the concentration of the SRF inhibitor is 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less.
  • (17) The cell culture composition according to any one of (12) to (16), wherein the form of the cell is a cell aggregate.
  • a method for promoting cell aggregation which comprises the step of suspension culture of cells in a medium containing an SRF inhibitor.
  • the method according to (18), wherein the concentration of the SRF inhibitor in the culture medium is 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less.
  • the method according to any one of (18) to (20), wherein the SRF inhibitor is CCG-1423.
  • the method according to any one of (18) to (21), wherein the cell is a stem cell.
  • a cell culture medium comprising a medium and an SRF inhibitor.
  • the dimension of the widest part is at most 500 ⁇ m, preferably at most 300 ⁇ m, in 70% or more (by weight) of cell aggregates.
  • the size of the widest part is at least 40 ⁇ m, preferably at least 100 ⁇ m, in 70% or more (by weight) of cell aggregates (11) or the cell aggregate according to (29), the cell culture composition according to (17) or (29), or the cell culture medium according to (28) or (29).
  • the present specification includes the disclosure content of Japanese Patent Application No. 2017-254688 on which the priority of the present application is based.
  • One embodiment of the cell aggregation promoter of the present invention can be formulated into a culture medium to promote cell aggregation during suspension culture.
  • cell aggregates can be produced in high yield.
  • One embodiment of the cell clumps of the invention has a suitable size and a high viable cell rate.
  • One embodiment of the cell culture composition of the present invention can be used to produce cell aggregates in high yield.
  • FIG. 1 shows images observed by phase contrast microscopy on the first day of culture when human iPS cells are cultured in suspension in a medium to which CCG-1423 has been added or not added.
  • FIG. 2 shows the results of measurement of the number of dead cells on the first day of culture when human iPS cells are cultured in suspension in a medium to which CCG-1423 has been added or not added.
  • FIG. 3 shows culture of suspension culture of human iPS cells in a medium to which CCG-1423 is added or not added to prepare cell aggregates, followed by suspension culture from day 1 to day 5. An observation image by a phase contrast microscope of FIG.
  • FIG. 4 shows that human iPS cells are cultured in suspension in a medium to which CCG-1423 has been added or not added to prepare cell aggregates, and then culture is continued in suspension from day 1 to day 5 of culture
  • FIG. 5 shows the results of cell yield on day 5 of culture when human iPS cells are cultured in suspension in a medium to which CCG-1423 has been added or not added to prepare cell aggregates, and suspension culture is continued. The measurement results are shown.
  • FIG. 6 shows the undifferentiated markers (SOX2, OCT4 and human iPS cells on the fifth day of culture when the cell clumps are prepared after suspension culture with addition of CCG-1423 and suspension culture is continued. The measurement result of a Nanog) positive rate is shown.
  • FIG. 7 shows the distribution of the diameter of cell aggregates on the first day of culture when human iPS cells were suspended in culture (day 1 of culture) in a medium containing CCG-1423 to prepare cell aggregates It is a graph.
  • Cells forming a cell aggregate in the present invention can be adherent cells (adherent cells).
  • the adherent cells may be animal-derived cells and the like, preferably mammalian animal-derived cells and the like, and more preferably living tissue-derived cells and cells derived from living tissue-derived cells and the like.
  • neural tissue-derived cells and cells derived from neural tissue-derived cells and the like more preferably animal-derived stem cells and cells differentiated from animal-derived stem cells and the like, more preferably animal-derived pluripotency Stem cells and cells differentiated from animal-derived pluripotent stem cells, etc., and more preferably mammalian animal-derived pluripotent stem cells It can be differentiated from a mammal-derived pluripotent stem cells such as cells, and most preferably be a cell such as differentiated from human pluripotent stem cells and human pluripotent stem cells.
  • a “stem cell” is a cell capable of differentiating into another cell and capable of self-replication.
  • stem cells in particular, they have pluripotency (pluripotency) capable of differentiating into all types of cells that constitute a living body, and they are abundant in in vitro culture under appropriate conditions. Cells that can continue to proliferate indefinitely while maintaining their ability are called “pluripotent stem cells”.
  • pluripotent stem cells include, for example, embryonic stem cells (ES cells), EG cells that are pluripotent stem cells derived from fetal primordial germ cells (Shamblott M. J. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1998) 95, p.
  • pluripotent stem cells examples include iPS cells (induced pluripotent stem cells) and the like, but the present invention is not limited thereto.
  • the pluripotent stem cells used in the present invention are particularly preferably ES cells or iPS cells.
  • ES cells are pluripotent stem cells derived from early embryos called blastocysts.
  • iPS cells are pluripotent cultured cells in which somatic cells are initialized to an undifferentiated state by introducing a reprogramming factor into somatic cells.
  • OCT3 / 4 and KLF4 and SOX2 and c-Myc can be used (Takahashi K, et al. Cell. 2007; 131: 861-72), for example, OCT3 / 4 and SOX2 and LIN28.
  • Nanog can be used (Yu J, et al. Science. 2007; 318: 1917-20.).
  • the mode of transfer of these factors into cells is not particularly limited, and examples include gene transfer using a plasmid, transfer of synthetic RNA, and direct transfer as a protein.
  • iPS cells produced by a method using microRNA, RNA, low molecular weight compounds and the like may be used.
  • pluripotent stem cells such as ES cells and iPS cells
  • pluripotent stem cells such as ES cells and iPS cells
  • commercially available products or cells subjected to distribution may be used, or newly prepared ones may be used.
  • iPS cells for example, 253G1 strain, 201B6 strain, 201B7 strain, 409B2 strain, 454E2 strain, HiPS-RIKEN strain 1A, HiPS-RIKEN strain 2A, HiPS-RIKEN strain 12A, Nips-B2 strain, TkDN4-M strain , TkDA3-1 strain, TkDA3-2 strain, TkDA3-4 strain, TkDA3-5 strain, TkDA3-9 strain, TkDA3-20 strain, hiPSC 38-2 strain, MSC-iPSC1 strain, BJ-iPSC1 strain, etc.
  • ES cells for example, KhES-1 strain, KhES-2 strain, KhES-3 strain, KhES-4 strain, KhES-5 strain, SEES-1 strain, SEES-2 strain, SEES-2 strain, SEES-3 strain, SEES-4 strain, SEES-5 strain, SEES-6 strain, SEES-7 strain, HUES8 strain, CyT49 strain, H1 strain, H9 strain, HS-181 strain, RPChiPS771-2 strain and the like can be used.
  • Freshly generated clinical grade iPS cells or ES cells may be used.
  • the origin of the cells at the time of producing the iPS cells is not particularly limited, and for example, fibroblasts or lymphocytes can be used.
  • the type of cells in the present invention is not particularly limited as long as it is a cell that can adhere to a plastic, a cell, etc. by extracellular matrix, cadherin, etc.
  • pluripotent stem cells described above artificial pluripotent Stem cells (iPS cells), embryonic stem cells (ES cells), GS cells which are pluripotent stem cells derived from testis, EG cells derived from primordial germ cells of the fetus, Muse cells derived from bone marrow etc., somatic stem cells Mesenchymal stem cells, neural stem cells, etc.
  • ⁇ cells derived from bone marrow, adipose tissue, dental pulp, placenta, placenta, umbilical cord blood, amniotic membrane, chorion etc.
  • neurons derived from bone marrow, adipose tissue, dental pulp, placenta, placenta, umbilical cord blood, amniotic membrane, chorion etc.
  • cardiac muscle cells cardiac muscle progenitor cells
  • hepatocytes hepatic progenitor cells
  • examples of such cells include ⁇ cells, ⁇ cells, fibroblasts, chondrocytes, corneal cells, vascular endothelial cells, vascular endothelial precursor cells, pericytes, etc.
  • the form may be knocked down.
  • the cells used in the present invention may be of any animal origin and, for example, rodents such as mice, rats and hamsters, humans, primates such as gorilla and chimpanzee, and further dogs, cats, rabbits and cattle
  • the cells may be derived from mammals such as domestic animals such as horses, sheep and goats or pets, but cells derived from humans are particularly preferred.
  • the “isolated cells” are the cells in which a plurality of cells are attached as a group in a detached and dispersed state.
  • the isolation is a step of detaching and dispersing cells in a state of being adhered to a culture vessel, a culture carrier or the like or a cell population in which cells are adhered to each other to form a single cell.
  • the cell population to be isolated may be suspended in liquid medium.
  • the method of isolation is not particularly limited, but a chelating agent such as a stripping agent (cell detachment enzyme such as trypsin or collagenase) or EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) or a mixture of a stripping agent and a chelating agent can be suitably used.
  • a chelating agent such as a stripping agent (cell detachment enzyme such as trypsin or collagenase) or EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) or a mixture of a stripping agent and a chelating agent can be suitably used.
  • the release agent is not particularly limited, include trypsin, Accutase (registered trademark), TrypLE TM Express Enzyme (Life Technologies Japan, Ltd.), TrypLE TM Select Enzyme (Life Technologies Japan, Ltd.), dispase (registered trademark), collagenase, etc.
  • Be The cells cryopreserved after isolation can also be suitably used in the present invention
  • a cell aggregate is a massive cell population formed by three-dimensional aggregation of a plurality of cells, and is also called a spheroid. Cell clumps typically have a generally spherical shape.
  • cell aggregation refers to formation of a clump by three-dimensional aggregation of a plurality of cells. Although there is aggregation by different cells and aggregation by the same cells, any aggregation is included herein. The aggregation by the same cell also includes the case where a mass is formed by the proliferation of one cell.
  • the mechanism of cell aggregation includes, but is not limited to, nonspecific adsorption between membrane proteins and cells of cell membrane, adhesion between cells via cadherin on the cell surface, and the like.
  • the cells constituting the cell aggregate are not particularly limited as long as they are one or more types of the cells.
  • a cell aggregate composed of pluripotent stem cells such as human pluripotent stem cells or human embryonic stem cells is a cell expressing a pluripotent stem cell marker and / or exhibiting positive pluripotent stem cell markers including.
  • pluripotent stem cell markers include Alkaline Phosphatase, NANOG, OCT4, SOX2, TRA-1-60, c-Myc, KLF4, LIN28, SSEA-4, SSEA-1, etc.
  • Pluripotent stem cell markers can be detected by any detection method in the art.
  • methods for detecting expression markers include, but are not limited to, flow cytometry. If cells showing stronger fluorescence compared to the negative control (isotype control) are detected in flow cytometry using a fluorescently labeled antibody, the cells are judged as “positive” for the marker. The percentage of cells that are positive for fluorescently labeled antibody analyzed by flow cytometry may be described as the positive rate.
  • the fluorescently labeled antibody any antibody known in the art can be used, and for example, an antibody labeled with fluorescein isothiocyanate (FITC), phycoerythrin (PE), allophycocyanin (APC) or the like But not limited thereto.
  • the percentage (percentage) of cells expressing pluripotent stem cell markers and / or positive for pluripotent stem cell markers is, for example, 80% or more, 90 %, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 100% or less.
  • a cell aggregate in which the proportion of cells expressing pluripotent stem cell markers and / or showing positive pluripotent stem cell markers is within the above range is highly undifferentiated and is a more homogeneous cell population.
  • a pluripotent stem cell marker is synonymous with an undifferentiated marker, and both can be substituted and used.
  • the size (also referred to as "size") of the cell aggregate produced according to one or more embodiments of the present invention is not particularly limited, but when observed with a microscope, the upper limit of the size of the widest part in the observed image is For example, it is 1000 ⁇ m or less, 900 ⁇ m or less, 800 ⁇ m or less, 700 ⁇ m or less, 600 ⁇ m or less, 500 ⁇ m or less, 400 ⁇ m or less, 300 ⁇ m or less, 200 ⁇ m or less.
  • the lower limit is, for example, 40 ⁇ m or more, 50 ⁇ m or more, 60 ⁇ m or more, 70 ⁇ m or more, 80 ⁇ m or more, 90 ⁇ m or more, 100 ⁇ m or more.
  • one human iPS cell has a size of about 10 ⁇ m.
  • a cell aggregate having such a size range is preferable as a cell growth environment because oxygen and nutrient components are easily supplied to internal cells.
  • a population of cell aggregates produced according to one or more embodiments of the present invention is, for example, 10% or more, 20% or more, 30% or more, 40% or more, 50% by weight of cell aggregates constituting the population. % Or more, 60% or more, 70% or more, 80% or more, 90% or more preferably have dimensions in the above range. In a population of cell aggregates containing 20% or more of cell aggregates of the size in the above range, in individual cell aggregates, oxygen and nutrient components are easily supplied to internal cells, which is preferable as a cell growth environment.
  • the population of cell aggregates produced according to one or more embodiments of the present invention is, for example, 50% or more, 60% or more, 70% or more of the proportion of living cells (viability) among the cells constituting the population. It is preferably 80% or more and 90% or more. Cell aggregates having a viability in the above range tend to maintain the aggregation state, which is a preferable state for cell growth.
  • the medium used in the present invention is a culture medium for any animal cell culture as a basal medium, and a cell aggregation promoter comprising an SRF inhibitor or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor, or an SRF inhibitor or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor, And it can prepare by adding other components suitably as needed.
  • the medium used in the present invention is preferably one suitable for suspension culture of cells, and is typically a liquid medium.
  • BME medium As a basal medium, BME medium, BGJb medium, CMRL 1066 medium, Glasgow MEM medium, Improved MEM Zinc Option medium, IMDM medium (Iscove's Modified Dulbecco's Medium), Medium 199 medium, Eagle MEM medium, ⁇ MEM medium, DMEM medium (Dulbecco's Modified Eagle's Medium), Ham's F10 medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium, and a mixed medium thereof (eg, DMEM / F12 medium (Dulbecco's Modified Eagle's Medium / Using a medium such as Nutrient Mixture F-12 Ham)) It can be, but is not particularly limited.
  • the weight ratio of DMEM medium and ham F12 medium is preferably 60/40 to 40/60, more preferably 55/45 to 45/55, most preferably equivalent.
  • the culture medium mixed at (weight ratio of 50/50) is used.
  • the medium used in the present invention is preferably a medium free of serum, ie, a serum free medium or a medium containing serum replacement.
  • a serum free medium ie, a serum free medium or a medium containing serum replacement.
  • examples of the serum replacement may be mentioned KnockOut TM Serum Replacement (KSR) ( Gibco).
  • the medium used in the present invention more preferably contains at least one selected from L-ascorbic acid, insulin, transferrin, selenium and sodium hydrogen carbonate, and more preferably all of them.
  • L-ascorbic acid, insulin, transferrin, selenium and sodium hydrogen carbonate can be added to the medium in the form of solution, derivative, salt or mixed reagent.
  • L-ascorbic acid may be added to the culture medium in the form of a derivative such as 2-phosphate magnesium ascorbate.
  • Selenium may be added to the medium in the form of selenite (such as sodium selenite).
  • Insulin and transferrin may be of natural origin separated from tissues (such as humans, mice, rats, cattle, horses, goats, etc.) or serum of animals (preferably human, mouse, rat, etc.) or recombinantly produced by genetic engineering It may be a protein. Insulin, transferrin and selenium may be added to the medium in the form of the reagent ITS (insulin-transferrin-selenium). ITS is an additive for promoting cell growth, including insulin, transferrin, and sodium selenite.
  • a commercially available medium containing at least one selected from L-ascorbic acid, insulin, transferrin, selenium and sodium bicarbonate can be used.
  • Commercially available media to which insulin and transferrin have been added include CHO-S-SFM II (Life Technologies Japan Ltd.), Hybridoma-SFM (Life Technologies Japan Ltd.), eRDF Dry Powdered Media (Life Technologies Japan Ltd.), UltraCULTURE TM (BioWhittaker Inc.), UltraDOMA TM (BioWhittaker Inc.), UltraCHO TM (BioWhittaker, Inc.), can be used UltraMDCK TM (BioWhittaker Inc.).
  • STEMPRO registered trademark
  • hESC SFM Life Technologies Japan Ltd.
  • mTeSR1 Veritas
  • TeSR2 Veritas
  • media used for culturing human iPS cells and human ES cells can also be suitably used.
  • the medium used in the present invention preferably comprises at least one growth factor.
  • the growth factors include, but are not limited to, FGF2 (Basic fibroblast growth factor-2), TGF- ⁇ 1 (Transforming growth factor- ⁇ 1), Activin A, IGF-1, MCP-1, IL-6, PAI, It is preferred to include one or more selected from the group consisting of PEDF, IGFBP-2, LIF and IGFBP-7. Particularly preferred growth factors are FGF2 and / or TGF- ⁇ 1.
  • the most preferable medium as used in the present invention is L-ascorbic acid, insulin, transferrin, selenium and sodium hydrogen carbonate as components other than the SRF inhibitor and ROCK inhibitor described later, and at least one growth factor.
  • Serum medium particularly preferably DMEM / F12 containing L-ascorbic acid, insulin, transferrin, selenium and sodium bicarbonate, and at least one growth factor (preferably FGF2 and TGF- ⁇ 1) and no serum. It is a culture medium.
  • Essential 8TM medium (Life Technologies Japan Co., Ltd.) to which SRF inhibitor or SRF inhibitor and ROCK inhibitor are added can be suitably used.
  • Essential 8TM medium is DMEM / F12 medium DMEM / F-12 (HAM) 1: 1, which is commercially available from Life Technologies Japan KK, and Essential 8TM supplement (L-ascorbic acid, insulin, transferrin, Selenium, sodium bicarbonate, FGF2 and TGF- ⁇ 1 can be mixed and prepared.
  • Essential 8TM supplement L-ascorbic acid, insulin, transferrin, Selenium, sodium bicarbonate, FGF2 and TGF- ⁇ 1 can be mixed and prepared.
  • the medium used in the present invention may be a fatty acid or a lipid, an amino acid (eg, non-essential amino acid), a vitamin, a cytokine, an antioxidant, 2-mercaptoethanol, pyruvate, a buffer, an inorganic salt, an antibiotic, etc. You may contain.
  • antibiotics penicillin, streptomycin, amphotericin B and the like can be used.
  • SRF inhibitor is defined as a substance that inhibits the activity of a serum response factor (SRF), which is a transcription factor belonging to the MADS (MCM1, Agamous, Deficiens, and SRF) box superfamily, for example, CCG-1423.
  • SRF serum response factor
  • SRF inhibitor one or more SRF inhibitors can be used.
  • the SRF inhibitor is particularly preferably one or more selected from CCG-1423 and CCG-100602 and CCG-203971 and CCG-222740, and most preferably CCG-1423.
  • ROCK inhibitor is defined as a substance that inhibits the kinase activity of Rho-kinase (ROCK, Rho-associated protein kinase), for example, Y-27632 (4-[(1R) -1-aminoethyl] -N-pyridine -4-ylcyclohexane-1-carboxamide or a salt thereof (eg dihydrochloride) (eg, Ishizaki et al., Mol. Pharmacol. 57, 976-983 (2000); Narumiya et al., Methods Enzymol.
  • ROCK Rho-associated protein kinase
  • H-1152 ((S)-(+)-2-methyl-1-[(4-methyl-5-isoquinolinyl) sulfonyl] -hexahydro-1H-1,4-diazepine or a salt thereof (For example, dihydrochloride) (see, for example, Sasaki et al., Pharmacol. Ther.
  • Fasudil / HA1077 (1- (5-isoquinolinesulfonyl) homopipette (For example, Uenata et al., Nature 389: 990-994 (1997)), Wf-536 ((+)-(R) -4- (1-aminoethyl) ) -N- (4-Pyridyl) benzamide monohydrochloride) (see, for example, Nakajima et al., Cancer Chemother. Pharmacol. 52 (4): 319-324 (2003)), Y39983 (4-[(1R) -1).
  • ROCK inhibitors include RNA interference Inducible nucleic acids (eg, siRNA), dominant negative mutants, and their expression vectors.
  • other low molecular weight compounds are also known as ROCK inhibitors, and such compounds or their derivatives can also be used as ROCK inhibitors in the present invention (for example, US Patent Application Publication No. 20050209261, No. 2) No. 20040014755 No. 20040002755 No. 20040002508 No. 20040002507 No. 20030125344 No. 20030087919, and WO 2003/062227 No. 2003/059913 No. 2003/062225 No. 2002/076976 and 2004/039796)).
  • the ROCK inhibitor one or more ROCK inhibitors can be used.
  • the ROCK inhibitor is particularly preferably one or more selected from Y-27632 and H-1152, most preferably Y-27632.
  • Y-27632 and H-1152 may each be used in the form of a hydrate.
  • One aspect of the present invention is a method for promoting cell aggregation, which comprises the step of suspension culture of cells in a medium containing an SRF inhibitor or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor (suspension culture step).
  • promoting (s) aggregation of cells refers to promoting cell aggregation, thereby promoting the formation or expansion of cell aggregates.
  • cell aggregation promoting agent refers to an agent having an effect of promoting cell aggregation.
  • the method of this embodiment includes a suspension culture step as an essential step, and a maintenance culture step and a recovery step as a selection step. Each step will be described below.
  • SRF inhibitor SRF inhibitor, ROCK inhibitor, culture medium and cells are as described above.
  • the concentration of the SRF inhibitor in the medium in the suspension culture step can be appropriately adjusted according to various conditions such as the type of cells, the number of cells, the type of medium, etc. so as to promote cell aggregation. .
  • the lower limit of the concentration of the inhibitor is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 4.5 ng / mL or more, more preferably 45 ng / mL or more, particularly preferably 450 ng / mL or more, most preferably 1.1 ⁇ g / mL or more, 2 ⁇ g / mL or more, 3 ⁇ g / mL or more, 4 ⁇ g / mL or more, 5 ⁇ g / mL or
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 4.6 mg / mL or less, more preferably 460 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 46 ⁇ g / mL or less, most preferably 19 ⁇ g It is less than / mL.
  • the concentration of the inhibitor is preferably 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less. It is particularly preferable that the concentration of the SRF inhibitor in the medium in the suspension culture step is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 17 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or more
  • the concentration of ROCK inhibitor in the culture medium in the suspension culture step should be appropriately adjusted according to various conditions such as the type of cells, the number of cells, the type of medium, etc., so as to promote cell aggregation.
  • the lower limit of the concentration is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 3.3 ng / mL or more, more preferably 33 ng / mL or more, particularly preferably 330 ng / mL or more, most preferably 800 ng / mL or more, 1 ⁇ g / mL or more, 2 ⁇ g / mL or more, 3 ⁇ g / mL or more, 4 ⁇ g / mL or more, 5 ⁇ g / mL or more, 6 ⁇ g / mL or more, 7 ⁇ g / mL or more, 8 ⁇ g / mL or more, 9 ⁇ g / mL or more, 10 ⁇ g / mL or more, 11 ⁇ g / mL or more, 12 ⁇ g / mL or more, 13 ⁇ g / mL or more, 14 ⁇ g / mL or more.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 3.4 mg / mL or less, more preferably 340 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 34 ⁇ g / mL or less, most preferably 14 ⁇ g It is less than / mL. It is particularly preferable that the concentration of ROCK inhibitor in the medium in the suspension culture step is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more , 9 ⁇ M or more, 10 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 17 ⁇ M or more, 18 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 23 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more As mentioned above, 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34
  • suspension culture is carried out under the condition that cells will form cell aggregates if the SRF inhibitor of the present invention, or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor are not present in the medium. It is preferable that it is a process.
  • the culture vessel used for the suspension culture step is preferably a vessel with low cell adhesion to the inner surface of the vessel.
  • Such containers with low cell adhesion to the inner surface of the container include, for example, a plate that has been subjected to a hydrophilic surface treatment with a biocompatible substance.
  • a plate that has been subjected to a hydrophilic surface treatment with a biocompatible substance.
  • Nunclon TM Sphera Thermo Fisher Scientific, Inc.
  • the shape of the culture vessel is not particularly limited, and examples thereof include a dish-like, flask-like, well-like, bag-like, and spinner-flask-like culture vessel-like shape.
  • Suspension culture may be stationary culture, or may be culture (fluid culture) under conditions in which the medium flows, but is preferably fluid culture.
  • fluid culture culture under conditions in which the medium flows so as to promote cell aggregation is preferable.
  • the medium flows so that the cells gather at one point by stress (centrifugal force, afferent force) by the flow such as swirling or oscillating flow
  • Culture under conditions or culture under conditions in which the medium flows by linear reciprocation may be mentioned, and spin culture or rock culture is particularly preferable.
  • “Swirl culture method” refers to a method of culture under conditions in which the culture medium flows so that cells gather at one point by stress (centrifugal force, centripetal force) by swirl flow.
  • the culture vessel containing the culture medium containing cells is swirled along a horizontal plane so as to draw a closed orbit such as a circle, an ellipse, a flat circle, a flat ellipse, or the culture vessel is allowed to stand. It is carried out by swirling the medium in the vessel using a stirring bar such as a stirrer bar or a stirring blade as it is.
  • the latter can be achieved, for example, by using a spinner flask-like culture vessel with a stirring wing.
  • Such culture vessels are commercially available and they can also be used. In that case, the amount of culture medium or culture solution may be used in the amount recommended by the culture container manufacturer.
  • the swirling speed in the swirl culture method is not particularly limited, but the upper limit is preferably 200 rpm or less, more preferably 150 rpm or less, still more preferably 120 rpm or less, more preferably 115 rpm or less, more preferably 110 rpm or less, more preferably 105 rpm or less More preferably, it is 100 rpm or less, more preferably 95 rpm or less, and particularly preferably 90 rpm or less.
  • the lower limit is preferably 1 rpm or more, more preferably 10 rpm or more, more preferably 50 rpm or more, more preferably 60 rpm or more, more preferably 70 rpm or more, more preferably 80 rpm or more, more preferably 90 rpm or more.
  • the swing width in the swing culture there is no particular limitation on the swing width in the swing culture, but the lower limit may be, for example, 1 mm or more, preferably 10 mm or more, more preferably 20 mm or more, and most preferably 25 mm or more.
  • the upper limit of the swing width can be, for example, 200 mm or less, preferably 100 mm or less, preferably 50 mm or less, more preferably 30 mm or less, and most preferably 25 mm or less.
  • the radius of gyration during swirl culture is also not particularly limited, but preferably the swirl width is set to fall within the above range.
  • the lower limit of the rotation radius is, for example, 5 mm or more, preferably 10 mm or more, and the upper limit may be, for example, 100 mm or less, preferably 50 mm or less.
  • the "rocking culture method” refers to a method of culturing under conditions that give a rocking flow to a culture medium by linear reciprocating motion such as rocking (rocking) stirring.
  • the culture vessel containing the medium containing cells is swung in a plane generally perpendicular to the horizontal plane.
  • the rocking speed is not particularly limited.
  • the lower limit is one or more, four or more, six or more, eight or more, or ten times or more per minute, while the upper limit is one.
  • the swing may be performed 15 times or less, 20 times or less, 25 times or less, or 50 times or less per minute.
  • the swing angle is not particularly limited, but for example, the lower limit is 0 ° or more, 1 ° or more, 2 ° or more, 4 ° or more, 6 ° or more, or 8 ° or more, while the upper limit is 10 ° or less, 12 ° or less It can be 15 degrees or less, 18 degrees or less, or 20 degrees or less.
  • the culture using a spinner flask-like culture vessel is a culture that is performed while stirring the liquid medium using a stirring wing in the culture vessel.
  • the number of rotations and the amount of medium are not particularly limited. If it is a commercially available spinner flask-like culture vessel, the amount recommended by the manufacturer can be suitably used as the amount of the cell culture composition.
  • the rotation speed can be, for example, 10 rpm or more and 100 rpm or less, but is not particularly limited.
  • the seeding density (cell density at the start of suspension culture) in the medium of cells in suspension culture can be appropriately adjusted, but the lower limit is, for example, 0.01 ⁇ 10 5 cells / mL or more, more preferably 0. 1 ⁇ 10 5 cells / mL or more, more preferably 1 ⁇ 10 5 cells / mL or more.
  • the upper limit of the seeding density is, for example, 20 ⁇ 10 5 cells / mL or less, more preferably 10 ⁇ 10 5 cells / mL or less. When the seeding density is in this range, cell aggregates of appropriate size are likely to be formed.
  • the amount of the cell culture composition during suspension culture can be appropriately adjusted depending on the culture vessel used, but for example, a 12-well plate (the area of the well bottom in plan view per well is 3.5 cm 2 ) is used In the case where it is carried out, it may be 0.5 mL / well or more and 1.5 mL / well or less, more preferably 1.3 mL / well.
  • 1.5 mL / well or more preferably 2 mL / well or more, more preferably 3 mL / well or more
  • 1.5 mL / well or more preferably 2 mL / well or more, more preferably 3 mL / well or more
  • 10 mL / vessel or more when using a 125 mL Erlenmeyer flask (a volume of 125 mL Erlenmeyer flask), 10 mL / vessel or more, preferably 15 mL / vessel or more, more preferably 20 mL / vessel or more, more preferably 25 mL / vessel or more, more preferably 20 mL / More than container, more preferably more than 25 mL / container, more preferably more than 30 mL / container, less than 50 mL / container, more preferably less than 45 mL / container, more preferably less than 40 mL / container .
  • 100 mL / container or more preferably 105 mL / container or more, more preferably 110 mL / container or more, more preferably 115 mL / container or more, more preferably 120 mL Or more, 150 mL / container or less, more preferably 145 mL / container or less, more preferably 140 mL / container or less, more preferably 135 mL / container or less, more preferably 130 mL / container or less, more preferably 125 mL / Can be less than the container.
  • 250 mL / vessel or more 250 mL / vessel or more, preferably 260 mL / vessel or more, more preferably 270 mL / vessel or more, more preferably 280 mL / vessel or more, more preferably 290 mL Or more, 350 mL / container or less, more preferably 340 mL / container or less, more preferably 330 mL / container or less, more preferably 320 mL / container or less, more preferably 310 mL / container or less .
  • 2000 mL Erlenmeyer flask (2000 mL Erlenmeyer flask) it can be 500 mL / container or more, more preferably 550 mL / container or more, more preferably 600 mL / container or more, 1000 mL / container or less, more preferably It can be 900 mL / container or less, more preferably 800 mL / container or less, more preferably 700 mL / container or less.
  • 1000 mL / container or more preferably 1100 mL / container or more, more preferably 1200 mL / container or more, more preferably 1300 mL / container or more, more preferably 1400 mL / container Or more, more preferably 1500 mL / container or more, 2000 mL / container or less, more preferably 1900 mL / container or less, more preferably 1800 mL / container or less, more preferably 1700 mL / container or less, more preferably 1600 mL / container
  • the following can be made.
  • a 2 L culture bag (disposable culture bag having a volume of 2 L), 100 mL / bag or more, more preferably 200 mL / bag or more, more preferably 300 mL / bag or more, more preferably 400 mL / bag or more, more preferably 500 mL / Bag or more, more preferably 600 mL / bag or more, more preferably 700 mL / bag or more, more preferably 800 mL / bag or more, more preferably 900 mL / bag or more, more preferably 1000 mL / bag or more, 2000 mL / Bag or less, more preferably 1900 mL / bag or less, more preferably 1800 mL / bag or less, more preferably 1700 mL / bag or less, more preferably 1600 mL / bag or less, more preferably 1500 m / Bag less, more preferably 1400 mL / bag less, more preferably 1300 mL / bag less
  • a 10-L culture bag (a disposable culture bag having a volume of 10 L)
  • 500 mL / bag or more more preferably 1 L / bag or more, more preferably 2 L / bag or more, more preferably 3 L / bag or more, more preferably 4 L / Bag or more, more preferably 5 L / bag or more, 10 L / bag or less, more preferably 9 L / bag or less, more preferably 8 L / bag or less, more preferably 7 L / bag or less, more preferably 6 L
  • It can be less than / bag.
  • a 20 L culture bag (a disposable culture bag with a volume of 20 L), 1 L / bag or more, more preferably 2 L / bag or more, more preferably 3 L / bag or more, more preferably 4 L / bag or more, more preferably 5 L / bag or more, more preferably 6 L / bag or more, more preferably 7 L / bag or more, more preferably 8 L / bag or more, more preferably 9 L / bag or more, more preferably 10 L / bag or more, 20 L / bag or less, more preferably 19 L / bag or less, more preferably 18 L / bag or less, more preferably 17 L / bag or less, more preferably 16 L / bag or less, more preferably 15 L / bag or less, more preferably 14 L / bag Bag or less, more preferably 13 L / bag or less, more preferable Properly is 12L / bag less, more preferably, to less 11L / bag.
  • a 50 L culture bag (a disposable culture bag having a capacity of 50 L), 1 L / bag or more, more preferably 2 L / bag or more, more preferably 5 L / bag or more, more preferably 10 L / bag or more, more preferably 15 L / Bag or more, more preferably 20 L / bag or more, more preferably 25 L / bag or more, 50 L / bag or less, more preferably 45 L / bag or less, more preferably 40 L / bag or less, more preferably 35 L / Bag or less, more preferably 30 L / bag or less.
  • the amount of cell culture composition is in this range, cell aggregates of an appropriate size are likely to be formed.
  • the volume of the culture vessel to be used can be appropriately selected and is not particularly limited, but the lower limit is, for example, 0.32 cm 2 or more, preferably 0.65 cm, as the area when the bottom of the portion containing the liquid medium is planarly viewed. 2 or more, more preferably 0.65 cm 2 or more, more preferably 1.9 cm 2 or more, more preferably 3.0 cm 2 or more, 3.5 cm 2 or more, 9.0 cm 2 or more, or 9.6 cm 2 or more cultures
  • a container can be used, and the upper limit is, for example, 1000 cm 2 or less, preferably 500 cm 2 or less, more preferably 300 cm 2 or less, more preferably 150 cm 2 or less, more preferably 75 cm 2 or less, more preferably 55 cm 2 or less More preferably 25 cm 2 or less, even more preferably 21 cm 2 or less, and even more preferably Alternatively, a culture vessel of 9.6 cm 2 or less, or 3.5 cm 2 or less can be used.
  • Conditions such as temperature, time, CO 2 concentration and the like of suspension culture of cells in the presence of the SRF inhibitor or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor are not particularly limited.
  • the culture temperature is preferably 20 ° C. or more, more preferably 35 ° C. or more, preferably 45 ° C. or less, more preferably 40 ° C. or less, and most preferably 37 ° C.
  • the culture time is preferably 0.5 hours or more, more preferably 12 hours or more, preferably 7 days or less, more preferably 72 hours or less, more preferably 48 hours or less, and most preferably 24 hours or less.
  • the CO 2 concentration at the time of culture is preferably 4% or more, more preferably 4.5% or more, preferably 10% or less, more preferably 5.5% or less, and most preferably 5%.
  • a passaging operation may be involved in the suspension culture step. When culture conditions are in this range, cell aggregates of appropriate size tend to be formed.
  • medium exchange can be performed at an appropriate frequency. The frequency of medium replacement varies depending on the cell type to be cultured, for example, once or more on 5 days, once or more on 4 days, once or more on 3 days, once or more on 2 days, once or more on 1 day You can do it.
  • the medium may be exchanged by collecting the cells in the same manner as the recovery step described later, adding fresh medium, gently dispersing the cell aggregate, and culturing again.
  • the extent to which the number of cells is increased in the suspension culture step and where the state of the cells is to be adjusted may be appropriately determined depending on the type of cells to be cultured, the purpose of cell aggregation, the type of culture medium and culture conditions.
  • the cells used in the suspension culture step are cells previously cultured in the maintenance culture step, recovered in the recovery step, and optionally made single cells.
  • the maintenance culture step, the recovery step, and single cell formation are as described later.
  • the culture solution is discarded and cells are recovered by a conventional method.
  • cells are preferably recovered as single cells by exfoliation or dispersion treatment. The specific method will be described in detail in the recovery step described later.
  • the collected cells may be subjected to the next step after washing as they are or, if necessary, washing with buffer (including PBS buffer), saline or medium (preferable to the medium used in the next step or the basal medium). .
  • Maintenance culture In the "maintenance culture step", the cell population before the suspension culture step, or the cell aggregate obtained after the suspension culture step or after the subsequent recovery step is cultured to grow the cells while maintaining the undifferentiated state It is a process.
  • Maintenance culture may be adhesion culture in which cells are cultured while being attached to a culture substrate such as a container or carrier, or may be suspension culture in which cells are cultured in suspension in a medium.
  • cells of interest may be cultured by an animal cell culture method known in the art. Either adhesion culture or suspension culture may be used.
  • the culture vessel used in the maintenance culture step, the seeding density of cells, and the culture conditions are as described above for the suspension culture step.
  • the flow state of the culture medium in the maintenance culture process does not matter. It may be stationary culture or fluid culture.
  • the term "stationary culture” refers to culture in a state where the medium is allowed to stand in a culture vessel. In adherent culture, this static culture is usually employed.
  • fluid culture refers to culture under conditions in which the medium is allowed to flow. Specific embodiments of the fluid culture are as described above for the suspension culture process.
  • the extent to which the number of cells is increased in the maintenance culture step and where the state of the cells is to be adjusted may be appropriately determined depending on the type of cells to be cultured, the purpose of cell aggregation, the type of culture medium and culture conditions.
  • a preferred embodiment of the maintenance culture step is a maintenance culture step of further culturing the cell aggregate formed by the suspension culture step in the presence of the SRF inhibitor or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor.
  • the culture method in the maintenance culture step of this embodiment is not particularly limited, but includes, for example, the step of suspending and culturing the cell aggregate in a medium not containing the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor.
  • the culture medium used for the maintenance culture the same culture medium as described above can be used except that the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor are not contained, and the same culture conditions as the suspension culture process can be used. In the maintenance culture process of this embodiment, it is preferable to perform medium exchange at an appropriate frequency.
  • the frequency of medium exchange varies depending on the cell type, preferably once or more on 5 days, more preferably once or more on 4 days, more preferably once or more on 3 days, more preferably once or more on 2 days, Most preferably, the medium exchange operation can be included at a frequency of once or more per day. This frequency of media change is particularly suitable for culturing stem cell clumps.
  • the method of medium exchange is not particularly limited, preferably the whole amount of the cell culture composition containing cell aggregates is collected in a centrifuge tube, placed in a state of centrifugation or standing for about 5 minutes, and the supernatant is retained leaving precipitated cell aggregates.
  • the culture period of the maintenance culture step of this embodiment is not particularly limited, but is preferably 3 days to 7 days.
  • the culture solution is discarded and cells are recovered by a conventional method.
  • cells are preferably recovered as single cells by exfoliation or dispersion treatment. The specific method will be described in detail in the recovery step described later.
  • the collected cells may be subjected to the next step after washing as they are or, if necessary, washing with buffer (including PBS buffer), saline or medium (preferable to the medium used in the next step or the basal medium). .
  • the “recovery step” is a step of recovering the cultured cells from the culture solution after the maintenance culture step or the suspension culture step, and is a selection step in the method of the present invention.
  • (cell) recovery refers to the separation of the culture fluid and the cells to obtain the cells.
  • the cell recovery method may be in accordance with a conventional method used in cell culture methods in the art, and is not particularly limited. Cell culture methods can generally be roughly divided into suspension culture methods and adhesion culture methods. Hereinafter, methods for recovering cells after each culture method will be described.
  • the container containing the culture solution may be left in the standing state for about 5 minutes, and the supernatant may be removed while leaving the precipitated cells and cell aggregates.
  • Centrifugation may be carried out at a rotational speed and treatment time at which cells are not damaged by the centrifugal force.
  • the lower limit of the rotation speed is not particularly limited as long as cells can be sedimented, but may be, for example, 500 rpm or more, 800 rpm or more, or 1000 rpm or more.
  • the upper limit may be a speed at which cells are not damaged or hardly damaged by centrifugal force, and may be, for example, 1400 rpm or less, 1500 rpm or less, or 1600 rpm or less.
  • the lower limit of the treatment time is not particularly limited as long as the cells can be sedimented by the rotation speed, but may be, for example, 30 seconds or more, 1 minute or more, 3 minutes or more, or 5 minutes or more.
  • the upper limit may be a time during which cells are not damaged or hardly received by the rotation, and may be, for example, 30 seconds or less, 6 minutes or less, 8 minutes or less, or 10 minutes or less.
  • the recovered cells can be washed as needed.
  • the cleaning method is not limited. For example, it may be performed in the same manner as the washing method after the step in the above-mentioned maintenance culture step.
  • buffer including PBS buffer
  • saline or culture medium (basal medium is preferred) may be used.
  • the cell surface attached to the external matrix can also be washed, if necessary.
  • buffer including PBS buffer
  • saline saline
  • culture medium basic medium is preferred
  • the washing solution after washing may be removed by the same operation as the culture solution. This washing step may be repeated multiple times.
  • the peeling method may be performed by a method known in the art. Usually, scraping, a stripping agent containing a proteolytic enzyme as an active ingredient, a chelating agent such as EDTA, or a mixture of a stripping agent and a chelating agent are used.
  • Scraping is a method in which cells attached to the outer matrix are scraped off by mechanical means using a scraper or the like.
  • the cells are susceptible to damage by mechanical manipulation, when the recovered cells are subjected to further culture, the scaffold portion of the cells adhered to the external matrix is chemically disrupted or degraded to The peeling method which cancels
  • a peeling agent and / or a chelating agent is used.
  • the release agent is not limited, for example, trypsin, collagenase, pronase, hyaluronidase, other elastase, commercially available Accutase (registered trademark), TrypLE TM Express Enzyme (Life Technologies Japan, Ltd.), TrypLE TM Select Enzyme (Life Technologies Japan stock Companies), dispase (trademark registration), etc. can be used.
  • the concentration and treatment time of each exfoliating agent may be used within the range of conventional methods used for exfoliation or dispersion of cells.
  • the lower limit of the concentration in the solution is not particularly limited as long as it is a concentration at which cells can be detached, for example, 0.01% or more, 0.02% or more, 0.03% or more, 0.04 % Or more, 0.05% or more, 0.08% or more, or 0.10% or more.
  • the upper limit of the concentration in the solution is not particularly limited as long as the cells themselves are not affected by the action of trypsin or the like, but for example 0.15% or less, 0.20% or less, 0 .25% or less or 0.30% or less may be sufficient.
  • the treatment time depends on the concentration of trypsin
  • the lower limit is not particularly limited as long as the cells are sufficiently detached from the external matrix by the action of trypsin, for example, 1 minute or more, 2 minutes or more, It may be 3 minutes or more, 4 minutes or more, or 5 minutes or more.
  • the upper limit of the treatment time is not particularly limited as long as the cells themselves are not affected by the action of trypsin or the like, for example, 8 minutes or less, 10 minutes or less, 12 minutes or less, 15 minutes or less , 18 minutes or less, or 20 minutes or less.
  • the other release agents or chelating agents may be generally the same.
  • it can carry out by the density
  • the cells exfoliated from the external matrix are centrifuged to remove the supernatant containing the exfoliating agent. Centrifugation conditions may be the same as in the above-mentioned "recovery method after suspension culture method”.
  • the recovered cells can be washed as needed. The washing method may be carried out in the same manner as the above-mentioned "recovery method after suspension culture method”.
  • the cells obtained after this step may partially include cell aggregates such as monolayer cell fragments and cell aggregates.
  • the collected cells can also be made into single cells if necessary.
  • single cell formation refers to dispersion of cell aggregates in which a plurality of cells adhere or aggregate to one another, such as monolayer cell fragments or cell aggregates, etc., to a single free cell state. Say what to do.
  • Unicellularization may be achieved by increasing the concentration of the exfoliating agent and / or chelating agent used in the above exfoliating method and / or prolonging the treatment time with the exfoliating agent and / or chelating agent.
  • the lower limit of the concentration in the solution is not particularly limited as long as it is a concentration at which the cell aggregate can be dispersed, but, for example, 0.15% or more, 0.18% or more, 0.20% or more, or It may be 0.24% or more.
  • the upper limit of the concentration in the solution is not particularly limited as long as the concentration is not affected by the dissolution of the cells themselves, but 0.25% or less, 0.28% or less, or 0.30% or less If it is Although the treatment time depends on the concentration of trypsin, the lower limit thereof is not particularly limited as long as the cell aggregate is sufficiently dispersed by the action of trypsin, for example, 5 minutes or more, 8 minutes or more, It may be 10 minutes or more, 12 minutes or more, or 15 minutes or more.
  • the upper limit of the treatment time is not particularly limited as long as the cells themselves are not affected by the action of trypsin or the like, for example, 18 minutes or less, 20 minutes or less, 22 minutes or less, 25 minutes or less , 28 minutes or less, or 30 minutes or less.
  • a commercially available release agent it may be used at a concentration capable of dispersing cells into a single state as described in the attached protocol.
  • the treatment with the release agent and / or the chelating agent can be physically lightly treated to promote single cell formation.
  • this physical treatment is not limited, for example, a method of pipetting cells several times with a solution may be mentioned.
  • cells may be passed through a strainer or mesh as needed.
  • the single-celled cells can be recovered by removing the supernatant containing the exfoliating agent by standing or centrifuging.
  • the collected cells may be washed as necessary.
  • the conditions for centrifugation and the washing method may be carried out in the same manner as the above-mentioned "recovery method after suspension culture method".
  • Cell aggregation promoter> Another aspect of the present invention is a cell aggregation promoter for use in suspension culture of cells, which comprises an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor.
  • the cell aggregation promoter of the present invention can be suitably used to promote cell aggregation in a suspension culture system to form cell aggregates of substantially uniform size.
  • the undifferentiated nature of stem cells can be maintained.
  • the form of the cell aggregation promoter in the present invention is not particularly limited, and may be an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor itself, or an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor and the like
  • the composition which combined the component may be sufficient.
  • the form of the composition is not particularly limited.
  • the composition may be, for example, in the form of a culture medium used for suspension culture, or may be in the form of a composition for addition added at the time of preparation of the culture medium.
  • a preferred embodiment of the cell aggregation promoter in the present invention is a buffer such as a medium or a phosphate buffer containing an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor.
  • concentration of SRF inhibitor and ROCK inhibitor in the medium ⁇ 6.
  • Another preferred embodiment of the cell aggregation promoter in the present invention is a liquid or solid composition containing the SRF inhibitor, or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor in a liquid or solid medium.
  • the liquid or solid composition is an additive to be added when preparing a culture medium for suspension culture.
  • the cell aggregation promoter of this embodiment has a final concentration of SRF inhibitor and ROCK inhibitor of ⁇ 6. It is preferable that the concentration of the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor in the medium described in the suspension culture in the column of “Method for promoting cell aggregation” be adjusted.
  • the concentration of the SRF inhibitor in the cell aggregation promoter of this embodiment is not particularly limited, but preferably, it is one or more times the concentration mentioned as the preferred concentration in the medium at the time of suspension culture of the SRF inhibitor, More preferably 2 times or more, more preferably 10 times or more, more preferably 100 times or more, more preferably 1000 times or more, more preferably 10000 times or more.
  • the lower limit of the concentration is not particularly limited as long as the cell aggregation promoting effect is exerted, but preferably 9.0 ⁇ g / mL or more, 10.0 ⁇ g / mL or more, 20.0 ⁇ g / mL or more, 30.0 ⁇ g / mL or more, 40.0 ⁇ g / mL or more, 50.0 ⁇ g / mL or more, 60.0 ⁇ g / mL or more, 70.0 ⁇ g / mL or more, 80.0 ⁇ g / mL or more, 90.0 ⁇ g / mL or more, 100.0 ⁇ g / mL or more .
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but preferably 10.0 mg / mL or less, 9.0 mg / mL or less, 8.0 mg / mL or less, 7.0 mg / mL or less, 6 .0 mg / mL or less, 5.0 mg / mL or less, 4.0 mg / mL or less, 3.0 mg / mL or less, 2.0 mg / mL or less, 1.0 mg / mL or less, 900.0 ⁇ g / mL or less, 800.
  • the concentration of the SRF inhibitor is particularly preferably in the range of 20 ⁇ M or more and 20 mM or less.
  • the lower limit of the concentration of the SRF inhibitor is, for example, 20 ⁇ M or more, 200 ⁇ M or more, 0.05 mM or more, 0.1 mM or more, 0.2 mM or more, 0.3 mM or more, 0.4 mM or more, 0.5 mM or more, 0 .6 mM, 0.7 mM, 0.8 mM, 0.9 mM, 1 mM, 2 mM, 3 mM, 4 mM, 5 mM, 6 mM, 7 mM, 8 mM, 9 mM, 10 mM, 11 mM As mentioned above, it is 12 mM or more, 13 mM or more, 14 mM or more, 15 mM or more.
  • the upper limit is, for example, 20 mM or less.
  • the concentration of the ROCK inhibitor in the cell aggregation promoter of this embodiment is not particularly limited, but preferably, it is 1 time the concentration mentioned as the preferable concentration in the medium at the time of suspension culture of ROCK inhibitor. Or more, more preferably 2 times or more, more preferably 10 times or more, more preferably 100 times or more, more preferably 1000 times or more, more preferably 10000 times or more.
  • ROCK inhibitor is Y In the case of C.-27632 (Wako Pure Chemical Industries, Ltd., CAS No.
  • the lower limit of the concentration is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 6.7 ⁇ g / mL or more, 7.0 ⁇ g / mL or more, 8.0 ⁇ g / mL or more, 9.0 ⁇ g / mL or more, 10.0 ⁇ g / mL or more, 20.0 ⁇ g / mL or more, 30.0 ⁇ g / mL or more, 40.0 ⁇ g / mL or more, 50.0 ⁇ g / mL or more, 60.0 ⁇ g / mL or more, 70.0 ⁇ g / mL or more, 80 More than 0 ⁇ g / mL, more than 90.0 ⁇ g / mL, more than 100.0 ⁇ g / mL.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but preferably 14.0 mg / mL or less, 13.0 mg / mL or less, 12.0 mg / mL or less, 11.0 mg / mL or less, and 10 3.
  • 0 mg / mL or less 9.0 mg / mL or less, 8.0 mg / mL or less, 7.0 mg / mL or less, 6.0 mg / mL or less, 5.0 mg / mL or less, 4.0 mg / mL or less, 0 mg / mL or less, 2.0 mg / mL or less, 1.0 mg / mL or less, 900.0 ⁇ g / mL or less, 800.0 ⁇ g / mL or less, 700.0 ⁇ g / mL or less, 600.0 ⁇ g / mL or less, 500.0 ⁇ g It is less than / mL.
  • the concentration of the ROCK inhibitor is particularly preferably in the range of 20 ⁇ M to 40 mM.
  • the lower limit of the concentration of the ROCK inhibitor is, for example, 20 ⁇ M or more, 200 ⁇ M or more, 0.5 mM or more, 0.6 mM or more, 0.7 mM or more, 0.8 mM or more, 0.9 mM or more, 1 mM or more, 2 mM or more, 3 mM 4m or more, 5mM or more, 6mM or more, 7mM or more, 8mM or more, 9mM or more, 11mM or more, 12mM or more, 13mM or more, 14mM or more, 15mM or more, 16mM or more, 17mM or more, 18mM or more, 19mM or more, 20 mM or more.
  • the upper limit is, for example, 40 mM or less and 30 mM or less.
  • the cell aggregation promoting agent may contain, in addition to the SRF inhibitor or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor, a solvent and / or an excipient and the like.
  • a solvent include water, buffer (including PBS), saline, organic solvent (DMSO, DMF, xylene, lower alcohol) and the like.
  • Excipients include antibiotics, buffers, thickeners, colorants, stabilizers, surfactants, emulsifiers, preservatives, preservatives, antioxidants, and the like.
  • Antibiotics are not particularly limited, and for example, penicillin, streptomycin, amphotericin B and the like can be used.
  • buffer phosphate buffer, Tris-HCl buffer, glycine buffer and the like can be mentioned.
  • thickener gelatin, polysaccharides and the like can be mentioned.
  • coloring agent phenol red etc. are mentioned.
  • stabilizing agent albumin, dextran, methylcellulose, gelatin and the like can be mentioned.
  • surfactant cholesterol, alkyl glycoside, alkyl polyglucoside, alkyl monoglyceryl ether, glucoside, maltoside, neopentyl glycol type, polyoxyethylene glycol type, thioglucoside, thiomaltoside, peptide, saponin, phospholipid, fatty acid sorbitan ester And fatty acid diethanolamide.
  • emulsifier examples include glycerin fatty acid ester, sorbitan fatty acid ester, propylene glycol fatty acid ester, sucrose fatty acid ester and the like.
  • Preservatives include benzoic acid, sodium benzoate, ethanol, sodium edetate, dried sodium sulfite, citric acid, glycerin, salicylic acid, sodium salicylate, dibutylhydroxytoluene, D-sorbitol, sorbic acid, potassium sorbate, sodium dehydroacetate And isobutyl p-hydroxybenzoate, isopropyl p-hydroxybenzoate, ethyl p-hydroxybenzoate, butyl p-hydroxybenzoate, propyl p-hydroxybenzoate, methyl p-hydroxybenzoate, propylene glycol, phosphoric acid and the like.
  • citric acid citric acid derivatives, vitamin C and its derivatives, lycopene, vitamin A, carotenoids, vitamin B and its derivatives, flavonoids, polyphenols, glutathione, selenium, sodium thiosulfate, vitamin E and Derivatives thereof, alpha lipoic acid and derivatives thereof, pycnogenol, flavangenol, superoxide dismutase (SOD), glutathione peroxidase, glutathione-S-transferase, glutathione reductase, catalase, ascorbic acid peroxidase, and mixtures thereof .
  • SOD superoxide dismutase
  • the cell aggregation promoter may contain a growth factor, and preferably contains one or more growth factors of FGF2 and TGF- ⁇ 1.
  • Another aspect of the present invention is a method for producing a cell aggregate, which comprises the step of suspension culture of cells in a medium containing an SRF inhibitor or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor.
  • cell aggregates of a suitable size can be produced with high yield.
  • the cells are stem cells
  • undifferentiated maintained stem cells of a suitable size can be produced in high yield.
  • SRF inhibitor SRF inhibitor, ROCK inhibitor, culture medium and cells are as described above.
  • the lower limit of the concentration of the inhibitor is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 4.5 ng / mL or more, more preferably 45 ng / mL or more, particularly preferably 450 ng / mL or more , Most preferably 1.1 ⁇ g / mL or more, 2 ⁇ g / mL or more, 3 ⁇ g / mL or more, 4 ⁇ g / mL or more, 5 ⁇ g / mL or more, 6 ⁇ g / mL or more, 7 ⁇ g / mL or more, 8 ⁇ g / mL or more, 9 ⁇ g / mL or more 10 ⁇ g / mL or more, 11 ⁇ g / mL or more, 12 ⁇ g / mL or more, 13 ⁇ g / mL or more, 14 ⁇ g / mL or more, 15 ⁇ g
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 4.6 mg / mL or less, more preferably 460 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 46 ⁇ g / mL or less, 40 ⁇ g / mL or less, 30 ⁇ g / ML or less, 20 ⁇ g / mL or less.
  • the concentration of the inhibitor is preferably 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less. It is particularly preferable that the concentration of the SRF inhibitor in the culture medium in the above step is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, and most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 17 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or
  • the lower limit of the concentration is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 3.3 ng / mL or more, more preferably 33 ng / mL or more, particularly preferably 330 ng / mL or more, and most preferably 800 ng / mL.
  • mL or more 1 ⁇ g / mL or more, 2 ⁇ g / mL or more, 3 ⁇ g / mL or more, 4 ⁇ g / mL or more, 5 ⁇ g / mL or more, 6 ⁇ g / mL or more, 7 ⁇ g / mL or more, 8 ⁇ g / mL or more, 9 ⁇ g / mL or more, 10 ⁇ g / mL or more It is mL or more, 11 ⁇ g / mL or more, 12 ⁇ g / mL or more, 13 ⁇ g / mL or more, 14 ⁇ g / mL or more.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 3.4 mg / mL or less, more preferably 340 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 34 ⁇ g / mL or less, most preferably 14 ⁇ g / mL It is below. It is particularly preferable that the concentration of ROCK inhibitor in the medium in the above step is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M 10 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 18 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 23 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or more, 35
  • Method for promoting cell aggregation> Specifically described in the step of suspension culture of cells in a medium containing SRF inhibitor or SRF inhibitor and ROCK inhibitor in the method for promoting cell aggregation described in the section above. Are the same as in the first embodiment.
  • Another aspect of the present invention is a cell aggregate obtained by the method for producing a cell aggregate described above.
  • Cell clumps according to this aspect of the invention have a suitable size and a high viable cell rate.
  • the cells when the cells are stem cells, the cells constituting the cell aggregate maintain the undifferentiated nature.
  • the cell clump according to this aspect of the invention is preferably Cell Aggregates] The features described in the section are included.
  • the method for producing the cell aggregate of the present invention comprises an optional step in addition to the suspension culture step of suspension culturing the cells in a medium containing the SRF inhibitor or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor.
  • the optional step is, for example, a maintenance culture step or a cell aggregate collection step.
  • the suspension culture may include a passaging operation. Preferred embodiments of the maintenance culture process and the recovery process are described in ⁇ 6.
  • the method of promoting cell aggregation is the same as the maintenance culture step and the recovery step described in the section of the section.
  • Cell culture composition Another aspect of the present invention is a cell culture composition comprising cells, a culture medium, an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor.
  • Cell culture compositions according to this aspect of the invention can be used to produce cell aggregates in high yield.
  • stem cells when the cells are stem cells, stem cells can be used to produce undifferentiated maintained, moderately sized cell aggregates of stem cells in high yield.
  • the cell culture composition according to this aspect of the invention may also comprise cells in the form of cell aggregates.
  • SRF inhibitor SRF inhibitor, ROCK inhibitor, medium, cells and cell aggregates are as described above.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 4.6 mg / mL or less, more preferably 460 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 46 ⁇ g / mL or less, most preferably 19 ⁇ g / mL It is below.
  • the concentration of the inhibitor is preferably 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less. It is particularly preferred that the concentration of SRF inhibitor in the cell culture composition according to this aspect of the invention is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, and most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 17 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or
  • the concentration of the ROCK inhibitor in the cell culture composition according to this aspect of the present invention is, for example, Y-27632 (Wako Pure Chemical Industries, Ltd., CAS No. 331752-47-7, C 14 H).
  • the range of 3.3 ng / mL or more and 3.4 mg / mL or less is particularly preferable.
  • the lower limit of the concentration is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 3.3 ng / mL or more, more preferably 33 ng / mL or more, particularly preferably 330 ng / mL or more, and most preferably 800 ng / mL.
  • mL or more 1 ⁇ g / mL or more, 2 ⁇ g / mL or more, 3 ⁇ g / mL or more, 4 ⁇ g / mL or more, 5 ⁇ g / mL or more, 6 ⁇ g / mL or more, 7 ⁇ g / mL or more, 8 ⁇ g / mL or more, 9 ⁇ g / mL or more, 10 ⁇ g / mL or more It is mL or more, 11 ⁇ g / mL or more, 12 ⁇ g / mL or more, 13 ⁇ g / mL or more, 14 ⁇ g / mL or more.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 3.4 mg / mL or less, more preferably 340 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 34 ⁇ g / mL or less, most preferably 14 ⁇ g / mL It is below. It is particularly preferred that the concentration of ROCK inhibitor in the cell culture composition according to this aspect of the invention is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M 10 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 18 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 23 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or more, 35
  • step of producing cell aggregates from the cell culture composition there may be mentioned a step of suspension culture of cells in the cell culture composition. Specific embodiments of this process are described in ⁇ 6.
  • the cell culture composition may be prepared by adding the SRF inhibitor or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor to the medium and then adding the cells, or mixing the cells into the medium and then the SRF inhibitor, or although it may be prepared by adding SRF inhibitor and ROCK inhibitor, it is preferably prepared by adding cells after adding SRF inhibitor or SRF inhibitor and ROCK inhibitor to the medium.
  • a stabilizer can also be added when adding an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor to a culture medium.
  • the stabilizing agent is not particularly limited as long as it is a substance that contributes to stabilization of the SRF inhibitor, or the SRF inhibitor and the ROCK inhibitor in the liquid medium, maintenance of the activity, adsorption to the culture vessel, etc. Proteins such as albumin, emulsifiers, surfactants, amphiphilic substances, or polysaccharides such as heparin can be used.
  • the cell culture composition is stored by freezing a medium containing an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor (which may further contain the above-mentioned stabilizer), and then thawed to obtain cells. It may be prepared by adding.
  • Cell culture medium> Another aspect of the present invention is a cell culture medium comprising a culture medium, an SRF inhibitor, or an SRF inhibitor and a ROCK inhibitor.
  • the cell culture medium according to this aspect of the present invention can be used as a medium for producing cell aggregates in high yield from cells by suspension culture.
  • the cells are stem cells
  • stem cells can be used to produce undifferentiated maintained, moderately sized cell aggregates of stem cells in high yield.
  • SRF inhibitor SRF inhibitor, ROCK inhibitor, culture medium and cells are as described above.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 4.6 mg / mL or less, more preferably 460 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 46 ⁇ g / mL or less, most preferably 19 ⁇ g / mL It is below.
  • the concentration of the inhibitor is preferably 4.5 ng / mL or more and 4.6 mg / mL or less. It is particularly preferred that the concentration of SRF inhibitor in the cell culture medium according to this aspect of the invention is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, and most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 17 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or
  • the concentration of the ROCK inhibitor in the cell culture medium according to this aspect of the present invention is, for example, Y-27632 (Wako Pure Chemical Industries, Ltd., CAS No. 331752-47-7, C 14 H 21).
  • the range of 3.3 ng / mL or more and 3.4 mg / mL or less is particularly preferable.
  • the lower limit of the concentration is not particularly limited as long as it exerts a cell aggregation promoting effect, but is preferably 3.3 ng / mL or more, more preferably 33 ng / mL or more, particularly preferably 330 ng / mL or more, and most preferably 800 ng / mL.
  • mL or more 1 ⁇ g / mL or more, 2 ⁇ g / mL or more, 3 ⁇ g / mL or more, 4 ⁇ g / mL or more, 5 ⁇ g / mL or more, 6 ⁇ g / mL or more, 7 ⁇ g / mL or more, 8 ⁇ g / mL or more, 9 ⁇ g / mL or more, 10 ⁇ g / mL or more It is mL or more, 11 ⁇ g / mL or more, 12 ⁇ g / mL or more, 13 ⁇ g / mL or more, 14 ⁇ g / mL or more.
  • the upper limit is not particularly limited as long as the cell does not die, but is preferably 3.4 mg / mL or less, more preferably 340 ⁇ g / mL or less, particularly preferably 34 ⁇ g / mL or less, most preferably 14 ⁇ g / mL It is below. It is particularly preferred that the concentration of ROCK inhibitor in the cell culture medium according to this aspect of the invention is also in the range of 10 nM or more and 10 mM or less.
  • the lower limit of the concentration is preferably 10 nM or more, more preferably 100 nM or more, particularly preferably 1 ⁇ M or more, most preferably 2.5 ⁇ M or more, 3 ⁇ M or more, 4 ⁇ M or more, 5 ⁇ M or more, 6 ⁇ M or more, 7 ⁇ M or more, 8 ⁇ M or more, 9 ⁇ M 10 ⁇ M or more, 11 ⁇ M or more, 12 ⁇ M or more, 13 ⁇ M or more, 14 ⁇ M or more, 15 ⁇ M or more, 16 ⁇ M or more, 18 ⁇ M or more, 19 ⁇ M or more, 20 ⁇ M or more, 21 ⁇ M or more, 22 ⁇ M or more, 23 ⁇ M or more, 24 ⁇ M or more, 25 ⁇ M or more 26 ⁇ M or more, 27 ⁇ M or more, 28 ⁇ M or more, 29 ⁇ M or more, 31 ⁇ M or more, 32 ⁇ M or more, 33 ⁇ M or more, 34 ⁇ M or more, 35
  • step of producing cell aggregates from the cell culture medium there may be mentioned a step of suspension culture of cells in the cell culture medium. Specific embodiments of this process are described in ⁇ 6.
  • the cell culture medium can be frozen and stored before use, and can be used by thawing at the time of use.
  • Example 2 Confirmation of aggregation promoting effect by cell aggregation assay> The aggregation promoting effect of cells by addition of SRF inhibitor was examined.
  • the cell aggregation promoting agent is adjusted to a final concentration of 4.55 mg / mL (10 mM) with CCG-1423 (Cayman, 10010350), and the adjusted cell aggregation promoting agent is added to the cell suspension of CCG-1423. After adding so that a final concentration might be 10 micromol, it seeded to the suspension culture 12 well plate (Sumitomo Bakelite Co., Ltd.) at a ratio of 1.3 mL / well.
  • Plates seeded with cells are cultured on a rotary shaker (Optima Co., Ltd.) at a speed of 90 rpm in a circular culture with a 25 mm circular width (diameter) along the horizontal plane, 5% CO 2 , 37 ° C. Suspension culture was performed under the environment. As a control test, a test was conducted under the conditions using the cell suspension prepared in the same manner as described above except that CCG-1423 was not added.
  • the culture was started, and the image was acquired with a phase-contrast microscope on the next day (culture day 1).
  • the number of dead cells was calculated using Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST (Dojin Chemical Laboratory Co., Ltd.).
  • Example 3 Effect on cell proliferation ability and undifferentiated ability after aggregate formation in the presence condition of CCG-1423> Suspension culture of human iPS cells was performed to measure glucose consumption, cell yield, positive rate of undifferentiated marker, and analyzed the influence of CCG-1423 on cells.
  • a cell suspension is prepared in the same manner as in Example 2, and a cell aggregation promoter is separately prepared to have a final concentration of 4.55 mg / mL (10 mM) of CCG-1423 (same as above), and the adjusted cell aggregation is promoted.
  • the agent was added to the cell suspension so that the final concentration of CCG-1423 was 10 ⁇ M, and then seeded at a rate of 4 mL / well in a suspension culture 6-well plate (Sumitomo Bakelite Co., Ltd.).
  • Plates seeded with cells are cultured on a rotary shaker (Optima Co., Ltd.) at a speed of 90 rpm in a circular culture with a 25 mm circular width (diameter) along the horizontal plane, 5% CO 2 , 37 ° C. Suspension culture was performed under the environment. The medium was replaced with fresh medium (Essential 8 TM medium containing BSA (final concentration 5 mg / mL) (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) every day from the next day of culture (day 1 of culture) and culture was continued until after 5 days of culture . As a control test, the cells were similarly cultured in a medium not containing CCG-1423 and Y-27632.
  • the cell clumps were collected on day 5 of culture, after dispersion by Accutase, was suspended Essential 8 TM medium containing BSA of 5 mg / mL. A portion of this cell suspension was stained with trypan blue to examine the cell number. After centrifuging the cell suspension at 300 g for 3 minutes, the supernatant was removed and the cells were washed with PBS (phosphate buffered saline). Then, fix at room temperature with 4% paraformaldehyde (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) for 20 minutes, wash 3 times with PBS, resuspend cells in 300 ⁇ L PBS, and add 3 mL of cold methanol while vortexing And permeabilized at ⁇ 20 ° C. overnight.
  • PBS phosphate buffered saline
  • the cell yield was measured on the 5th day of culture. Measurement of cell yield was performed in the following procedure. That is, the formed cell aggregate is treated with Accutase for 5 to 10 minutes, the cells are monodispersed by pipetting with a blue tip, trypan blue staining, and then the cell number is determined using a hemocytometer to obtain the cell yield. Was measured.
  • FIG. 3 is a photomicrograph observed on the first to fifth days of culture. Under the conditions to which CCG-1423 was added, cell aggregates were formed from the seeding to the first day of culture, and by continuing the culture, the cells gradually proliferated and the cell aggregates became large.
  • FIG. 7 is a distribution chart of cell aggregate size (diameter) on day 1 of culture under the condition of addition of CCG-1423.
  • Table 1 shows the number and proportion of cell aggregates of a certain size according to the first day of culture under the condition of adding CCG-1423.
  • the ratio of cell aggregates having a cell aggregate size (diameter) of 40 ⁇ m or more and 300 ⁇ m or less to the total number of cell aggregates was 100% .
  • the proportion of cell aggregates in which the cell aggregate size (diameter) is 60 ⁇ m to 300 ⁇ m is 99.5%
  • the proportion of cell aggregates in which the cell aggregate size (diameter) is 80 ⁇ m to 300 ⁇ m Is 98.5%
  • the proportion of cell aggregates in which the cell aggregate size (diameter) is 100 ⁇ m to 300 ⁇ m is 98.5%.
  • FIG. 1 The measurement results of the positive rate of undifferentiated markers are shown in FIG.
  • Cell aggregates were prepared in a medium containing CCG-1423, and then cells grown in suspension culture were 99% or more of SOX2 positive cells, 97% or more of OCT4 positive cells, and 99% of Nanog positive cells as markers. As described above, it was confirmed that the clumps of human iPS cells formed by the addition of CCG-1423 maintain the undifferentiated nature.

Abstract

本発明は、細胞凝集塊の大きさを機械学的/物理学的な手段に依らずに適切に制御するための手段を提供することを目的とし、具体的には、SRF阻害剤を含む、細胞の浮遊培養に用いるための細胞凝集促進剤に関する。本発明はまた、SRF阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程を含む、細胞凝集塊の製造方法に関する。

Description

細胞凝集促進剤
 本発明は、細胞凝集促進剤に関する。本発明はまた、細胞凝集塊の製造方法、及び、それにより製造された細胞凝集塊に関する。本発明はまた、細胞培養組成物に関する。
 ヒトES細胞やヒトiPS細胞等のヒト多能性幹細胞の近年の研究により、再生医療の実用化の可能性が高まっている。これらの細胞は、無限に増殖できる能力と、様々な細胞に分化する能力を有していることから、多能性幹細胞を用いた再生医療には、難治性疾患、生活習慣病等に対する治療法を根本的に変革することが期待されている。多能性幹細胞からは、神経細胞をはじめとして、心筋細胞、血液細胞、及び網膜細胞などさまざまな種類の細胞に試験管内で分化誘導することが既に可能になっている。
 多能性幹細胞を用いて各種臓器を再生する再生医療に関する実用化に向けた課題の一つに、臓器再生に必要な大量の細胞を如何に効率的に生産するかという課題がある。例えば肝臓の再生には約2×1011個の細胞が必要である。平坦な基板上での接着培養により前記個数の細胞を培養するには10cm以上の基板が必要であり、これは一般的な10cmディッシュで約20,000枚分に相当する。基板表面上での接着培養では得られる細胞数が培養面積に依存するためスケールアップが困難であり、再生医療に必要な十分な量の細胞を供給することは困難である。
 そこで、培地中で細胞を浮遊させながら培養する浮遊培養はスケールアップが容易であることから、細胞の大量生産に適していると期待される。
 例えば、非特許文献1には、浮遊培養の細胞培養容器としてスピナーフラスコを用い、強い撹拌力により液体培地を撹拌しながらヒト多能性幹細胞の浮遊培養を行い均一な大きさのスフェロイドを製造する方法が開示されている。
 非特許文献2では微小なマイクロウェルが形成された基板を用い、各マイクロウェル中で均一な大きさのスフェロイドを作製する方法が開示されている。
 非特許文献3では培地として、粘性や比重の調製された培地を用い、多能性幹細胞の浮遊状態を保持するとともに細胞同士の衝突を抑制しながら培養を行う方法が開示されている。
 特許文献1には細胞を液体培地中で旋回培養しながら培養して、細胞の凝集塊を作製する技術が開示されている。
 特許文献2には多能性幹細胞を、細胞塊の平均直径が約200μm以上300μm以下となるまで浮遊培養する方法が開示されている。
 特許文献3には、リゾホスファチジン酸(LPA)、スフィンゴシン-1-リン酸(S1P)等のリゾリン脂質を含む培地中で細胞を浮遊培養することにより、細胞の凝集を抑制する技術が開示されている。
特開2003-304866号公報 国際公開WO2013/077423号パンフレット 国際公開WO2016/121737号パンフレット
Olmer R. et al., Tissue Engineering: Part C, Volume 18 (10): 772-784 (2012) Ungrin MD et al., PLoS ONE, 2008, 3(2), e1565 Otsuji GT et al., Stem Cell Reports, Volume 2: 734-745 (2014)
 本発明者らは、膜タンパク質や細胞膜の細胞間での非特異的な吸着、細胞表面のカドヘリンを介した細胞間の接着が多能性幹細胞等の接着性細胞を浮遊培養するうえで重要な機構であることを見出した。つまり、浮遊培養の技術に求められることは、細胞の膜タンパク質や細胞表面のカドヘリンなどの結合に障害を与えることなく、適度な大きさの細胞凝集塊を作製しなければならないという課題が存在する。しかしながら、非特許文献1~3、特許文献1又は2に開示された浮遊培養の技術には、以下の問題があった。
 非特許文献1の方法では剪断応力により細胞死が生じやすいという問題がある。
 非特許文献2の方法は大規模化が困難であることや、培地の交換が困難である等の問題がある。
 非特許文献3の方法では培養時の培地の移動が少ないため酸素や栄養成分が細胞凝集塊に供給され難いという問題がある。
 特許文献1では細胞塊の大きさを適度な大きさに制御するための手段は開示されていない。
 特許文献2では細胞塊同士の接着を防ぐための手段として培地に水溶性高分子を添加して粘性を高めることが記載されている。このため非特許文献3と同様に、酸素や栄養成分が細胞凝集塊に供給され難いという問題がある。
 そこで本発明者らは、上記課題を解決するために、特許文献3においてリゾリン脂質を含む培地中で細胞を浮遊培養することにより、細胞の凝集を抑制し、適度な大きさの凝集塊を細胞に障害を与えることなく生産することが可能な浮遊培養の技術を開発した。
 ところで、特許文献3では細胞凝集を抑制する成分としてリゾリン脂質のみが開示されている。仮に、リゾリン脂質以外にも、浮遊培養において培地中に存在することにより細胞の凝集を抑制又は促進する成分が提供されれば、細胞凝集塊の大きさを、機械学的/物理学的な手段に依らずにより適切に制御することが可能になると本発明者らは考えた。
 本発明者らは、鋭意研究の結果、SRF阻害剤が、浮遊培養において培地中に存在することにより細胞の凝集を促進する作用を奏することを見出し、以下の各発明を完成するに至った。
(1)SRF阻害剤を含む、細胞の浮遊培養に用いるための細胞凝集促進剤。
(2)前記SRF阻害剤の濃度が9.0μg/mL以上10.0mg/mL以下である、(1)に記載の細胞凝集促進剤。
(3)さらにROCK阻害剤を含む、(1)又は(2)に記載の細胞凝集促進剤。
(4)前記SRF阻害剤がCCG-1423である、(1)から(3)のいずれかに記載の細胞凝集促進剤。
(5)前記細胞が幹細胞である、(1)から(4)のいずれかに記載の細胞凝集促進剤。
(6)SRF阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程を含む、細胞凝集塊の製造方法。
(7)前記培地中における前記SRF阻害剤の濃度が4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である、(6)に記載の製造方法。
(8)さらに、前記培地中にROCK阻害剤を含む、(6)又は(7)に記載の製造方法。
(9)前記SRF阻害剤がCCG-1423である、(6)から(8)のいずれかに記載の製造方法。
(10)前記細胞が幹細胞である、(6)から(9)のいずれかに記載の製造方法。
(11)(6)から(10)のいずれかに記載の製造方法により得られた細胞凝集塊。
(12)細胞と、培地と、SRF阻害剤とを含む、細胞培養組成物。
(13)前記SRF阻害剤の濃度が4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である、(12)に記載の細胞培養組成物。
(14)さらにROCK阻害剤を含む、(12)又は(13)に記載の細胞培養組成物。
(15)前記SRF阻害剤がCCG-1423である、(12)から(14)のいずれかに記載の細胞培養組成物。
(16)前記細胞が幹細胞である、(12)から(15)のいずれかに記載の細胞培養組成物。
(17)前記細胞の形態が細胞凝集塊である、(12)から(16)のいずれかに記載の細胞培養組成物。
(18)SRF阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程を含む、細胞の凝集を促進する方法。
(19)前記培地中における前記SRF阻害剤の濃度が4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である、(18)に記載の方法。
(20)さらにROCK阻害剤を含む、(18)又は(19)に記載の方法。
(21)前記SRF阻害剤がCCG-1423である、(18)から(20)のいずれかに記載の方法。
(22)前記細胞が幹細胞である、(18)から(21)のいずれかに記載の方法。
(23)培地と、SRF阻害剤とを含む、細胞培養培地。
(24)前記SRF阻害剤の濃度が4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である、(23)に記載の細胞培養培地。
(25)さらにROCK阻害剤を含む、(23)又は(24)に記載の細胞培養培地。
(26)さらに増殖因子を含む、(23)から(25)のいずれかに記載の細胞培養培地。
(27)幹細胞の培養に用いるための、(23)から(26)のいずれかに記載の細胞培養培地。
(28)細胞凝集塊を作製するための、(23)から(27)のいずれかに記載の細胞培養培地。
(29)細胞凝集塊の70%以上(重量基準)において、最も幅の広い部分の寸法が500μm以下、好ましくは300μm以下である、(6)から(10)のいずれかに記載の製造方法、(11)に記載の細胞凝集塊、(17)に記載の細胞培養組成物、又は(28)に記載の細胞培養培地。
(30)細胞凝集塊の70%以上(重量基準)において、最も幅の広い部分の寸法が40μm以上、好ましくは100μm以上である、(6)から(10)及び(29)のいずれかに記載の製造方法、(11)又は(29)に記載の細胞凝集塊、(17)又は(29)に記載の細胞培養組成物、又は(28)もしくは(29)に記載の細胞培養培地。
 本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2017-254688号の開示内容を包含する。
 本発明の細胞凝集促進剤の一実施形態は、浮遊培養時の細胞の凝集を促進するために培地中に配合することができる。
 本発明の細胞凝集塊の製造方法の一実施形態によれば、細胞凝集塊を高収量で製造することができる。
 本発明の細胞凝集塊の一実施形態は適度な寸法を有し、生細胞率が高い。
 本発明の細胞培養組成物の一実施形態は、細胞凝集塊を高収量で製造するために用いることができる。
図1は、ヒトiPS細胞を、CCG-1423を添加または未添加の培地中で浮遊培養したときの培養1日目の位相差顕微鏡による観察像を示す。 図2は、ヒトiPS細胞を、CCG-1423を添加または未添加の培地中で浮遊培養したときの培養1日目の死細胞数の測定結果を示す。 図3は、ヒトiPS細胞を、CCG-1423を添加または未添加の培地中で浮遊培養し、細胞凝集塊を作製した後、継続して浮遊培養したときの、培養1日目から5日目の位相差顕微鏡による観察像を示す。 図4は、ヒトiPS細胞を、CCG-1423を添加または未添加の培地中で浮遊培養し、細胞凝集塊を作製した後、継続して浮遊培養したときの、培養1日目から5日目のグルコース消費量の測定結果を示す。 図5は、ヒトiPS細胞を、CCG-1423を添加または未添加の培地中で浮遊培養し、細胞凝集塊を作製した後、継続して浮遊培養したときの、培養5日目の細胞収量の測定結果を示す。 図6は、CCG-1423を添加して浮遊培養し、細胞凝集塊を作製した後、継続して浮遊培養したときの、培養5日目のヒトiPS細胞の、未分化マーカー(SOX2、OCT4およびNanog)陽性率の測定結果を示す。 図7は、ヒトiPS細胞を、CCG-1423を含む培地中で浮遊培養(培養1日目)して細胞凝集塊を作製した際の培養1日目の細胞凝集塊の直径の分布を示したグラフである。
 以下、本発明を、好ましい実施形態を用いて詳細に説明する。
<1.細胞>
 本発明において細胞凝集塊を形成する細胞は、接着性を有する細胞(接着性細胞)であることができる。接着性細胞は、動物由来細胞等であることができ、好ましくは哺乳類動物由来細胞等であることができ、より好ましくは生体組織由来細胞及び生体組織由来細胞から派生した細胞等であることができ、特に好ましくは上皮組織由来細胞及び上皮組織細胞から派生した細胞等、又は結合組織由来細胞及び結合組織由来細胞から派生した細胞等、又は筋組織由来細胞及び筋組織由来細胞から派生した細胞等、又は神経組織由来細胞及び神経組織由来細胞から派生した細胞等であることができ、さらに好ましくは動物由来幹細胞及び動物由来幹細胞から分化した細胞等であることができ、もっと好ましくは動物由来多能性幹細胞及び動物由来多能性幹細胞から分化した細胞等であることができ、よりさらに好ましくは哺乳類動物由来多能性幹細胞及び哺乳類動物由来多能性幹細胞から分化した細胞等であることができ、もっとも好ましくはヒト由来多能性幹細胞及びヒト由来多能性幹細胞から分化した細胞等であることができる。
 本発明において「幹細胞」とは、別の細胞に分化することができ且つ自己複製能をもつ細胞である。「幹細胞」のなかでも特に、生体を構成する全ての種類の細胞に分化することができる多分化能(多能性)を有し、適切な条件下のインビトロ(in vitro)での培養において多能性を維持したまま無限に増殖を続けることができる細胞を「多能性幹細胞」という。多能性幹細胞の具体例としては、例えば、胚性幹細胞(ES細胞)、胎児の始原生殖細胞由来の多能性幹細胞であるEG細胞(Shamblott M.J. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA.(1998) 95, p.13726-13731)、精巣由来の多能性幹細胞であるGS細胞(Conrad S., Nature(2008) 456, p.344-349)、体細胞由来の人工多能性幹細胞であるiPS細胞(induced pluripotent stem cells)等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明に用いる多能性幹細胞は、特に好ましくは、ES細胞又はiPS細胞である。ES細胞は、胚盤胞と呼ばれる初期胚に由来する多能性幹細胞である。iPS細胞は、体細胞に初期化因子を導入することにより体細胞を未分化状態へと初期化し、多能性を付与した培養細胞である。初期化因子としては、例えばOCT3/4及びKLF4及びSOX2及びc-Mycを用いることができ(Takahashi K, et al. Cell. 2007;131:861-72.)、例えばOCT3/4及びSOX2及びLIN28及びNanogを用いることができる(Yu J, et al. Science. 2007;318:1917-20.)。これらの因子の細胞への導入形態は特に限定されないが、例えば、プラスミドを用いた遺伝子導入、合成RNAの導入、タンパク質として直接導入などが挙げられる。また、microRNAやRNA、低分子化合物等を用いた方法で作製されたiPS細胞を用いてもよい。ES細胞、iPS細胞を始めとする多能性幹細胞は、市販品又は分譲を受けた細胞を用いてもよいし、新たに作製したものを用いてもよい。iPS細胞として、例えば253G1株、201B6株、201B7株、409B2株、454E2株、HiPS-RIKEN-1A株、HiPS-RIKEN-2A株、HiPS-RIKEN-12A株、Nips-B2株、TkDN4-M株、TkDA3-1株、TkDA3-2株、TkDA3-4株、TkDA3-5株、TkDA3-9株、TkDA3-20株、hiPSC 38-2株、MSC-iPSC1株、BJ-iPSC1株等を使用することができる。ES細胞として、例えばKhES-1株、KhES-2株、KhES―3株、KhES-4株、KhES-5株、SEES-1株、SEES-2株、SEES-3株、SEES-4株、SEES-5株、SEES-6株、SEES-7株、HUES8株、CyT49株、H1株、H9株、HS-181株、RPChiPS771-2株等を使用することができる。新たに作製された臨床グレードのiPS細胞又はES細胞を用いてもよい。iPS細胞を作製する際の細胞の由来は特に限定されないが、例えば、繊維芽細胞又はリンパ球等を用いることができる。
 また、本発明における細胞の種類としては、細胞外マトリックスやカドヘリン等によってプラスチックや細胞などに接着することができる細胞であれば特に限定されないが、例えば、上述した多能性幹細胞(人工多能性幹細胞(iPS細胞)、胚性幹細胞(ES細胞)、精巣由来の多能性幹細胞であるGS細胞、胎児の始原生殖細胞由来のEG細胞、骨髄等に由来するMuse細胞等)、体性幹細胞(骨髄、脂肪組織、歯髄、胎盤、卵膜、臍帯血、羊膜、絨毛膜等に由来する間葉系幹細胞、神経幹細胞等)、神経細胞、心筋細胞、心筋前駆細胞、肝細胞、肝臓前駆細胞、α細胞、β細胞、繊維芽細胞、軟骨細胞、角膜細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、周細胞等が例示でき、前記細胞は遺伝子導入された形態やゲノム上の対象遺伝子などをノックダウンされた形態でもよい。
 本発明で用いられる細胞は、任意の動物由来のものであってよく、例えば、マウス、ラット、ハムスター等のげっ歯類、ヒト、ゴリラ、チンパンジー等の霊長類、さらにイヌ、ネコ、ウサギ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ヤギ等の家畜又は愛玩動物等の哺乳動物由来のものであってよいが、ヒト由来の細胞が特に好ましい。
 本発明では、接着又は浮遊させながら培養した後に単離された細胞を用いることができる。ここで「単離された細胞」とは、複数の細胞が集団として接着している細胞を剥離、分散した状態の前記細胞である。単離とは、培養容器や培養担体等に接着していた状態の細胞又は細胞同士が接着している状態の細胞集団を剥離、分散して単一の細胞にする工程である。単離する細胞集団は液体培地中に浮遊した状態であってもよい。単離の方法は特に限定されないが、剥離剤(トリプシン又はコラゲナーゼ等の細胞剥離酵素)又はEDTA(エチレンジアミン四酢酸)等のキレート剤又は剥離剤とキレート剤の混合物等を好適に使用することができる。剥離剤は特に限定されないが、トリプシン、Accutase(商標登録)、TrypLETM Express Enzyme(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、TrypLETM Select Enzyme(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、ディスパーゼ(商標登録)、コラゲナーゼなどが挙げられる。単離後に凍結保存した前記細胞も本発明で好適に使用することができる。
<2.細胞凝集塊>
 細胞凝集塊は、複数の細胞が三次元的に凝集して形成される塊状の細胞集団であって、スフェロイドとも呼ばれる。細胞凝集塊は、典型的には、概ね球状の形状を有する。
 本明細書において「細胞凝集」とは、複数の細胞が三次元的に集合して、集塊を形成することをいう。異なる細胞による凝集と同一細胞による凝集があるが、本明細書ではいずれの凝集も包含する。同一細胞による凝集は、1つの細胞の増殖によって集塊が形成される場合も含む。細胞凝集の機構としては、限定はしないが、膜タンパク質や細胞膜の細胞間での非特異的な吸着、細胞表面のカドヘリンを介した細胞間の接着等が挙げられる。
 本発明において、細胞凝集塊を構成する細胞は1種類以上の前記細胞であれば特に限定されない。例えば、ヒト多能性幹細胞又はヒト胚性幹細胞等の多能性幹細胞で構成された細胞凝集塊は、多能性幹細胞マーカーを発現している及び/または多能性幹細胞マーカーが陽性を呈する細胞を含む。多能性幹細胞マーカーとしては、例えば、Alkaline Phosphatase、NANOG、OCT4、SOX2、TRA-1-60、c-Myc、KLF4、LIN28、SSEA-4、SSEA-1等が例示できる。
 多能性幹細胞マーカーは、当該技術分野において任意の検出方法により検出することができる。発現マーカーを検出する方法としては、例えばフローサイトメトリーが挙げられるが、これらに限定されない。蛍光標識抗体を用いるフローサイトメトリーにおいて、ネガティブコントロール(アイソタイプコントロール)と比較してより強い蛍光を発する細胞が検出された場合、当該細胞は当該マーカーについて「陽性」と判定される。フローサイトメトリーによって解析した蛍光標識抗体について陽性を呈する細胞の比率は、陽性率と記載されることがある。また、蛍光標識抗体は、当該技術分野において公知の任意の抗体を使用することができ、例えば、イソチオシアン酸フルオレセイン(FITC)、フィコエリスリン(PE)、アロフィコシアニン(APC)等により標識された抗体が挙げられるが、これらに限定されない。
 細胞凝集塊を構成する細胞が多能性幹細胞である場合、多能性幹細胞マーカーを発現する及び/または多能性幹細胞マーカーが陽性を呈する細胞の割合(比率)は、例えば80%以上、90%以上、91%以上、92%以上、93%以上、94%以上、95%以上、96%以上、97%以上、98%以上、99%以上、100%以下とすることができる。多能性幹細胞マーカーを発現する及び/または多能性幹細胞マーカーが陽性を呈する細胞の割合が前記範囲内である細胞凝集塊は未分化性が高く、より均質な細胞集団である。なお、多能性幹細胞マーカーは未分化マーカーと同義であり、両者は置き換えて使用することができる。
 本発明の一以上の実施形態により製造される細胞凝集塊の寸法(「サイズ」ともいう)は特に限定されないが、顕微鏡で観察したとき、観察像での最も幅の広い部分の寸法の上限は例えば1000μm以下、900μm以下、800μm以下、700μm以下、600μm以下、500μm以下、400μm以下、300μm以下、200μm以下である。下限は例えば40μm以上、50μm以上、60μm以上、70μm以上、80μm以上、90μm以上、100μm以上である。因みにヒトiPS細胞1個が約10μmの寸法である。このような寸法範囲の細胞凝集塊は、内部の細胞にも酸素や栄養成分が供給され易く細胞の増殖環境として好ましい。
 本発明の一以上の実施形態により製造される細胞凝集塊の集団は、該集団を構成する細胞凝集塊のうち重量基準で例えば10%以上、20%以上、30%以上、40%以上、50%以上、60%以上、70%以上、80%以上、90%以上が上記の範囲の寸法を有することが好ましい。上記の範囲の寸法の細胞凝集塊を20%以上含む細胞凝集塊の集団では、個々の細胞凝集塊において、内部の細胞にも酸素や栄養成分が供給され易く細胞の増殖環境として好ましい。
 本発明の一以上の実施形態により製造される細胞凝集塊の集団は、該集団を構成する細胞のうち生細胞の割合(生存率)が、例えば50%以上、60%以上、70%以上、80%以上、90%以上であることが好ましい。上記の範囲の生存率の細胞凝集塊は、凝集状態を維持しやすく、細胞の増殖に好ましい状態である。
<3.培地>
 本発明で用いる培地は、任意の動物細胞培養用培地を基礎培地とし、SRF阻害剤若しくはSRF阻害剤とROCK阻害剤、又はSRF阻害剤若しくはSRF阻害剤とROCK阻害剤を含む細胞凝集促進剤、及び、必要に応じて他の成分を適宜添加することにより調製することができる。本発明で用いる培地は細胞の浮遊培養に適したものであることが好ましく、典型的には、液体培地である。
 基礎培地としては、BME培地、BGJb培地、CMRL1066培地、Glasgow MEM培地、Improved MEM Zinc Option培地、IMDM培地(Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium)、Medium 199培地、Eagle MEM培地、αMEM培地、DMEM培地(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)、ハムF10培地、ハムF12培地、RPMI 1640培地、Fischer’s培地、及びこれらの混合培地(例えば、DMEM/F12培地(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham))等の培地を使用することができるが、特に限定されない。DMEM/F12培地としては特に、DMEM培地とハムF12培地とを好ましくは60/40以上40/60以下の重量比、より好ましくは55/45以上45/55以下の重量比、最も好ましくは等量(50/50の重量比)で混合した培地を用いる。
 本発明で用いる培地は、好ましくは血清を含まない培地、すなわち無血清培地であるか又は血清代替品(Serum Replacement)を含む培地である。血清代替品の例としては、KnockOutTM Serum Replacement(KSR)(Gibco)を挙げることができる。
 本発明で用いる培地は、より好ましくは、L-アスコルビン酸、インスリン、トランスフェリン、セレン及び炭酸水素ナトリウムから選択される少なくとも1つを含み、より好ましくはこれらの全部を含む。L-アスコルビン酸、インスリン、トランスフェリン、セレン、及び炭酸水素ナトリウムは、溶液、誘導体、塩又は混合試薬等の形態で培地に添加することができる。例えば、L-アスコルビン酸は、2-リン酸アスコルビン酸マグネシウムなどの誘導体の形態で培地に添加してもよい。セレンは亜セレン酸塩(亜セレン酸ナトリウムなど)の形態で培地に添加してもよい。インスリン及びトランスフェリンは、動物(好ましくは、ヒト、マウス、ラット、ウシ、ウマ、ヤギ等)の組織又は血清等から分離した天然由来のものであってもよいし、遺伝子工学的に作製した組換えタンパク質であってもよい。インスリン、トランスフェリン、及びセレンは、試薬ITS(インスリン-トランスフェリン-セレン)の形態で培地に添加してもよい。ITSは、インスリン、トランスフェリン、及び亜セレン酸ナトリウムを含む、細胞増殖促進用の添加剤である。
 L-アスコルビン酸、インスリン、トランスフェリン、セレン及び炭酸水素ナトリウムから選択される少なくとも1つを含む市販の培地を使用することができる。インスリン及びトランスフェリンを添加した市販の培地としては、CHO-S-SFM II(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、Hybridoma-SFM(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、eRDF Dry Powdered Media(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、UltraCULTURETM(BioWhittaker社)、UltraDOMATM(BioWhittaker社)、UltraCHOTM(BioWhittaker社)、UltraMDCKTM(BioWhittaker社)等を用いることができる。STEMPRO(登録商標) hESC SFM(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、mTeSR1(Veritas社)、TeSR2(Veritas社)なども好適に用いることができる。その他、ヒトiPS細胞やヒトES細胞の培養に使用されている培地も好適に使用することができる。
 本発明で用いる培地は好ましくは少なくとも1つの増殖因子を含む。増殖因子としては、限定するものではないが、FGF2(Basic fibroblast growth factor-2)、TGF-β1(Transforming growth factor-β1)、Activin A、IGF-1、MCP-1、IL-6、PAI、PEDF、IGFBP-2、LIF及びIGFBP-7からなる群から選択される1つ以上を含むことが好ましい。特に好ましい増殖因子は、FGF2及び/又はTGF-β1である。
 本発明で用いる培地として最も好ましいものは、後述するSRF阻害剤とROCK阻害剤以外の成分として、L-アスコルビン酸、インスリン、トランスフェリン、セレン及び炭酸水素ナトリウム、並びに、少なくとも1つの増殖因子を含む無血清培地であり、特に好ましくは、L-アスコルビン酸、インスリン、トランスフェリン、セレン及び炭酸水素ナトリウム、並びに、少なくとも1つの増殖因子(好ましくはFGF2及びTGF-β1)を含み、血清を含まないDMEM/F12培地である。このような培地としては、SRF阻害剤又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を添加した、Essential 8TM培地(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)が好適に使用できる。Essential 8TM培地は、ライフテクノロジーズジャパン株式会社から市販されている、DMEM/F12培地であるDMEM/F-12(HAM)1:1と、Essential 8TMサプリメント(L-アスコルビン酸、インスリン、トランスフェリン、セレン、炭酸水素ナトリウム、FGF2及びTGF-β1を含む)とを混合して調製することができる。
 本発明で用いる培地は、脂肪酸又は脂質、アミノ酸(例えば、非必須アミノ酸)、ビタミン、サイトカイン、抗酸化剤、2-メルカプトエタノール、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、抗生剤等の更なる成分を含有してもよい。
 抗生剤としては、ペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンB等を使用することができる。
<4.SRF阻害剤>
 SRF阻害剤は、MADS(MCM1, Agamous, Deficiens, and SRF)ボックススーパーファミリーに属する転写因子である血清応答因子(SRF、serum response factor)の活性を阻害する物質として定義され、例えば、CCG-1423(N-[2-[4(4-クロロフェニル)アミノ]-1-メチル-2-オキソエトキシ]-3,5-ビス(トリフルオロメチル)-ベンズアミド)、CCG-1423アナログであるCCG-100602(1-[3,5-ビス(トリフルオロメチル)ベンゾイル]-N-(4-クロロフェニル)-3-ピペリジンカルボキサミド)、CCG-203971(6-amino-1,4-dihydro-1,3-dimethyl-4-[4-(trifluoromethyl)phenyl]-pyrano[2,3-c]pyrazole-5-carbonitrile)、CCG-222740(参考文献:Yu-Wai-Man C et al. Local delivery of novel MRTF/SRF inhibitors prevents scar tissue formation in a preclinical model of fibrosis. Sci Rep. 2017 Mar 31;7(1):518)及びそれらの誘導体、並びにSRFに対するアンチセンス核酸、RNA干渉誘導性核酸(例えば、siRNA)、ドミナントネガティブ変異体、及びそれらの発現ベクターが挙げられる。
 SRF阻害剤としては、1種又は2種以上のSRF阻害剤を使用することができる。
 上記の、N-[2-[4(4-クロロフェニル)アミノ]-1-メチル-2-オキソエトキシ]-3,5-ビス(トリフルオロメチル)-ベンズアミドの構造式は以下の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
 SRF阻害剤は、特に好ましくは、CCG-1423及びCCG-100602及びCCG-203971及びCCG-222740から選択される1以上であり、最も好ましくは、CCG-1423である。
<5.ROCK阻害剤>
 ROCK阻害剤は、Rho-キナーゼ(ROCK,Rho-associated protein kinase)のキナーゼ活性を阻害する物質として定義され、例えば、Y-27632(4-[(1R)-1-アミノエチル]-N-ピリジン-4-イルシクロヘキサン-1-カルボキサミド又はその塩(例えば2塩酸塩))(例えば、Ishizaki et al., Mol. Pharmacol. 57, 976-983 (2000);Narumiya et al., Methods Enzymol. 325,273-284 (2000)参照)、H-1152((S)-(+)-2-メチル-1-[(4-メチル-5-イソキノリニル)スルホニル]-ヘキサヒドロ-1H-1,4-ジアゼピン又はその塩(例えば2塩酸塩))(例えば、Sasaki et al., Pharmacol. Ther. 93: 225-232 (2002)参照)、Fasudil/HA1077(1-(5-イソキノリンスルホニル)ホモピペラジン又はその塩(例えば2塩酸塩))(例えば、Uenata et al., Nature 389: 990-994 (1997)参照)、Wf-536((+)-(R)-4-(1-アミノエチル)-N-(4-ピリジル)ベンズアミド1塩酸塩)(例えば、Nakajima et al., CancerChemother. Pharmacol. 52(4): 319-324 (2003)参照)、Y39983(4-[(1R)-1-Aminoethyl]-N-1H-pyrrolo[2、3-b]pyridin-4-ylbenzamide dihydrochloride)、SLx-2119(2-[3-[4-(1H-indazol-5-ylamino)-2-quinazolinyl]phenoxy]-N-(1-methylethyl)-acetamide)、Azabenzimidazole-aminofurazans、DE-104、XD-4000、HMN-1152、4-(1-aminoalkyl)-N-(4-pyridyl)cyclohexane-carboxamides、Rhostatin、BA-210、BA-207, BA-215, BA-285, BA-1037、Ki-23095、VAS-012(例えば、James K. Liao et al., J Cardiovasc Pharmacol. 2007 Jul;50(1):17-24.)及びそれらの誘導体、並びにROCKに対するアンチセンス核酸、RNA干渉誘導性核酸(例えば、siRNA)、ドミナントネガティブ変異体、及びそれらの発現ベクターが挙げられる。また、ROCK阻害剤としては他の低分子化合物も知られており、本発明においてはこのような化合物又はそれらの誘導体もROCK阻害剤として使用できる(例えば、米国特許出願公開第20050209261号、同第20050192304号、同第20040014755号、同第20040002508号、同第20040002507号、同第20030125344号、同第20030087919号、及び国際公開第2003/062227号、同第2003/059913号、同第2003/062225号、同第2002/076976号、同第2004/039796号参照)。ROCK阻害剤としては、1種又は2種以上のROCK阻害剤を使用することができる。
 上記の、4-[(1R)-1-アミノエチル]-N-ピリジン-4-イルシクロヘキサン-1-カルボキサミドの構造式は以下の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 また、上記の(S)-(+)-2-メチル-1-[(4-メチル-5-イソキノリニル)スルホニル]-ヘキサヒドロ-1H-1,4-ジアゼピンの構造式は以下の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 ROCK阻害剤は、特に好ましくは、Y-27632及びH-1152から選択される1以上であり、最も好ましくは、Y-27632である。Y-27632及びH-1152は、それぞれ、水和物の形態で用いられてもよい。
<6.細胞の凝集を促進する方法>
 本発明の一態様は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程(浮遊培養工程)を含む、細胞の凝集を促進する方法である。
 本明細書において「細胞(の)凝集(を)促進(する)」とは、細胞凝集作用を促進し、それにより細胞凝集塊の形成又は増大を促進することをいう。本明細書において「細胞凝集促進剤」とは、細胞凝集を促進する効果を有する薬剤をいう。
 本態様の方法は、浮遊培養工程を必須の工程として、維持培養工程並びに回収工程を選択工程として含む。以下、それぞれの工程について、説明をする。
(浮遊培養工程)
 SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程(浮遊培養工程)の具体的な実施形態について説明する。
 SRF阻害剤、ROCK阻害剤、培地及び細胞の具体的な実施形態は既述の通りである。
 浮遊培養工程での培地中のSRF阻害剤の濃度は、細胞の凝集を促進することができるように、細胞の種類、細胞数、培地の種類等の諸条件に応じて適宜調整することができる。浮遊培養工程での培地中のSRF阻害剤の濃度は、例えばSRF阻害剤がCCG-1423(Cayman Chemical、CAS No.285986-881、C1814ClF、分子量=454.8)の場合、前記阻害剤の濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは、4.5ng/mL以上であり、より好ましくは45ng/mL以上、特に好ましくは450ng/mL以上、最も好ましくは1.1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上、15μg/mL以上、16μg/mL以上、17μg/mL以上、18μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは4.6mg/mL以下であり、より好ましくは460μg/mL以下、特に好ましくは46μg/mL以下、最も好ましくは19μg/mL以下である。また、前記阻害剤の濃度は、好ましくは4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である。浮遊培養工程での培地中のSRF阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、10nM以上が好ましく、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上、26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。一方、上限としては好ましくは10mM以下であり、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 また、浮遊培養工程での培地中のROCK阻害剤の濃度は、細胞の凝集を促進することができるように、細胞の種類、細胞数、培地の種類等の諸条件に応じて適宜調整することができる。浮遊培養工程での培地中のROCK阻害剤の濃度は、例えばROCK阻害剤がY-27632(和光純薬工業株式会社、CAS No.331752-47-7、C1421O・2HCl・HO、分子量=338.27)の場合、3.3ng/mL以上3.4mg/mL以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは3.3ng/mL以上であり、より好ましくは33ng/mL以上、特に好ましくは330ng/mL以上、最も好ましくは800ng/mL以上、1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは3.4mg/mL以下であり、より好ましくは340μg/mL以下、特に好ましくは34μg/mL以下、最も好ましくは14μg/mL以下である。浮遊培養工程での培地中のROCK阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限は、好ましくは10nM以上であり、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上、26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。上限としては、好ましくは10mM以下であり、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 浮遊培養工程は、仮に本発明のSRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤が培地中に存在しない場合には、細胞が、細胞凝集塊を形成することとなる条件下において浮遊培養を行う工程であることが好ましい。
 浮遊培養工程に用いる培養容器は、好ましくは容器内面への細胞の接着性が低い容器が好ましい。このような容器内面への細胞の接着性が低い容器としては、例えば生体適合性がある物質で親水性表面処理されているようなプレートが挙げられる。例えば、NunclonTMSphera(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社)を培養容器として使用できるが特に限定はされない。
 培養容器の形状は特に限定されないが、例えば、ディッシュ状、フラスコ状、ウェル状、バッグ状、スピナーフラスコ状等の形状の培養容器が挙げられる。
 浮遊培養は静置培養であってもよいし、培地が流動する条件での培養(流動培養)であってもよいが、好ましくは流動培養である。流動培養としては、細胞の凝集を促進するように培地が流動する条件での培養が好ましい。細胞の凝集を促進するように培地が流動する条件での培養としては、例えば、旋回流、揺動流等の流れによる応力(遠心力、求心力)により細胞が一点に集まるように培地が流動する条件での培養や、直線的な往復運動により培地が流動する条件での培養が挙げられ、旋回培養法又は揺動培養法が特に好ましい。
 「旋回培養法」(振盪培養法を含む)とは、旋回流による応力(遠心力、求心力)により細胞が一点に集まるように培地が流動する条件で培養する方法をいう。具体的には、細胞を含む培地を収容した培養容器を概ね水平面に沿って円、楕円、扁平した円、扁平した楕円等の閉じた軌道を描くように旋回させたり、培養容器は静置させたままでスターラ―バーや撹拌翼のような撹拌子を用いて容器内の培地を旋回させたりすることにより行う。後者は、例えば、撹拌翼の付いたスピナーフラスコ状の培養容器を用いることで達成し得る。そのような培養容器は市販されており、それらを利用することもできる。その場合、培地や培養液の量等は培養容器メーカー推奨の量で使用すればよい。
 旋回培養法における旋回速度は特に限定されないが、上限は、好ましくは200rpm以下、より好ましくは150rpm以下、さらに好ましくは120rpm以下、より好ましくは115rpm以下、より好ましくは110rpm以下、より好ましくは105rpm以下、もっと好ましくは100rpm以下、より好ましくは95rpm以下、特に好ましくは90rpm以下とすることができる。下限は好ましくは1rpm以上、より好ましくは10rpm以上、さらに好ましくは50rpm以上、より好ましくは60rpm以上、より好ましくは70rpm以上、さらに好ましくは80rpm以上、もっと好ましくは90rpm以上とすることができる。旋回培養の際の旋回幅は特に限定されないが、下限は、例えば1mm以上、好ましくは10mm以上、より好ましくは20mm以上、最も好ましくは25mm以上とすることができる。旋回幅の上限は、例えば200mm以下、好ましくは100mm以下、好ましくは50mm以下、より好ましくは30mm以下、最も好ましくは25mm以下とすることができる。旋回培養の際の回転半径もまた特に限定されないが、好ましくは旋回幅が前記の範囲となるように設定される。回転半径の下限は例えば5mm以上、好ましくは10mm以上であり、上限は例えば100mm以下、好ましくは50mm以下とすることができる。旋回培養の条件をこの範囲とすることで、適切な寸法の細胞凝集塊を製造することが容易となるため好ましい。
 「揺動培養法」とは、揺動(ロッキング)撹拌のような直線的な往復運動により培地に揺動流を付与する条件で培養する方法をいう。具体的には、細胞を含む培地を収容した培養容器を概ね水平面に垂直な平面内で揺動させることにより行う。揺動速度は特に限定されないが、例えば1往復を1回とした場合、下限は1分間に2回以上、4回以上、6回以上、8回以上、又は10回以上、一方、上限は1分間に15回以下、20回以下、25回以下、又は50回以下で揺動すればよい。揺動の際、垂直面に対して若干の角度、すなわち揺動角度を培養容器につけることが好ましい。揺動角度は特に限定されないが、例えば、下限は0°以上、1°以上、2°以上、4°以上、6°以上、又は8°以上、一方、上限は10°以下、12°以下、15°以下、18°以下又は20°以下とすることができる。揺動培養の条件をこの範囲とすることで、適切な寸法の細胞凝集塊を製造することが可能となるため好ましい。
 更に、上記のような旋回と揺動とを組み合わせた運動により撹拌しながら培養することもできる。
 スピナーフラスコ状の培養容器を用いた培養は、培養容器の中に攪拌翼を使用して、液体培地を攪拌しながら行う培養である。回転数や培地量は特に限定されない。市販のスピナーフラスコ状の培養容器であれば、細胞培養組成物の量として、メーカー推奨の量を好適に使用することができる。回転数は例えば10rpm以上、100rpm以下とすることができるが、特に限定されない。
 浮遊培養における細胞の培地中での播種密度(浮遊培養の開始時の細胞密度)は適宜調整することができるが、下限として、例えば0.01×10個細胞/mL以上、より好ましくは0.1×10個細胞/mL以上、より好ましくは1×10個細胞/mL以上である。播種密度の上限としては、例えば20×10個細胞/mL以下、より好ましくは10×10個細胞/mL以下である。播種密度がこの範囲であるとき、適切な大きさの細胞凝集塊が形成され易い。例えば、0.1×10個細胞/mL、0.2×10個細胞/mL、0.3×10個細胞/mL、0.4×10個細胞/mL、0.5×10個細胞/mL、0.6×10個細胞/mL、0.7×10個細胞/mL、0.8×10個細胞/mL、0.9×10個細胞/mL、1×10個細胞/mL、1.5×10個細胞/mL、2×10個細胞/mL、3×10個細胞/mL、4×10個細胞/mL、5×10個細胞/mL、6×10個細胞/mL、7×10個細胞/mL、8×10個細胞/mL、9×10個細胞/mL、10×10個細胞/mLでも良い。
 浮遊培養の際の細胞培養組成物の量は使用する培養容器によって適宜調整することができるが、例えば12ウェルプレート(1ウェルあたりの平面視でのウェル底面の面積が3.5cm)を使用する場合は0.5mL/ウェル以上、1.5mL/ウェル以下とすることができ、より好ましくは1.3mL/ウェルとすることができる。例えば6ウェルプレート(1ウェルあたりの平面視でのウェル底面の面積が9.6cm)を使用する場合は、1.5mL/ウェル以上、好ましくは2mL/ウェル以上、より好ましくは3mL/ウェル以上とすることができ、6.0mL/ウェル以下、好ましくは5mL/ウェル以下、より好ましくは4mL/ウェル以下とすることができる。例えば125mL三角フラスコ(容量が125mLの三角フラスコ)を使用する場合は、10mL/容器以上、好ましくは15mL/容器以上、より好ましくは20mL/容器以上、より好ましくは25mL/容器以上、より好ましくは20mL/容器以上、より好ましくは25mL/容器以上、より好ましくは30mL/容器以上とすることができ、50mL/容器以下、より好ましくは45mL/容器以下、より好ましくは40mL/容器以下とすることができる。例えば500mL三角フラスコ(容量が500mLの三角フラスコ)を使用する場合は、100mL/容器以上、好ましくは105mL/容器以上、より好ましくは110mL/容器以上、より好ましくは115mL/容器以上、より好ましくは120mL/容器以上とすることができ、150mL/容器以下、より好ましくは145mL/容器以下、より好ましくは140mL/容器以下、より好ましくは135mL/容器以下、より好ましくは130mL/容器以下、より好ましくは125mL/容器以下とすることができる。例えば1000mL三角フラスコ(容量が1000mLの三角フラスコ)を使用する場合は、250mL/容器以上、好ましくは260mL/容器以上、より好ましくは270mL/容器以上、より好ましくは280mL/容器以上、より好ましくは290mL/容器以上とすることができ、350mL/容器以下、より好ましくは340mL/容器以下、より好ましくは330mL/容器以下、より好ましくは320mL/容器以下、より好ましくは310mL/容器以下とすることができる。例えば2000mL三角フラスコ(容量が2000mLの三角フラスコ)の場合は、500mL/容器以上、より好ましくは550mL/容器以上、より好ましくは600mL/容器以上とすることができ、1000mL/容器以下、より好ましくは900mL/容器以下、より好ましくは800mL/容器以下、より好ましくは700mL/容器以下とすることができる。例えば3000mL三角フラスコ(容量が3000mLの三角フラスコ)の場合は、1000mL/容器以上、好ましくは1100mL/容器以上、より好ましくは1200mL/容器以上、より好ましくは1300mL/容器以上、より好ましくは1400mL/容器以上、より好ましくは1500mL/容器以上とすることができ、2000mL/容器以下、より好ましくは1900mL/容器以下、より好ましくは1800mL/容器以下、より好ましくは1700mL/容器以下、より好ましくは1600mL/容器以下とすることができる。例えば2L培養バッグ(容量が2Lのディスポーザブル培養バッグ)の場合は、100mL/バッグ以上、より好ましくは200mL/バッグ以上、より好ましくは300mL/バッグ以上、より好ましくは400mL/バッグ以上、より好ましくは500mL/バッグ以上、より好ましくは600mL/バッグ以上、より好ましくは700mL/バッグ以上、より好ましくは800mL/バッグ以上、より好ましくは900mL/バッグ以上、より好ましくは1000mL/バッグ以上とすることができ、2000mL/バッグ以下、より好ましくは1900mL/バッグ以下、より好ましくは1800mL/バッグ以下、より好ましくは1700mL/バッグ以下、より好ましくは1600mL/バッグ以下、より好ましくは1500mL/バッグ以下、より好ましくは1400mL/バッグ以下、より好ましくは1300mL/バッグ以下、より好ましくは1200mL/バッグ以下、より好ましくは1100mL/バッグ以下とすることができる。例えば10L培養バッグ(容量が10Lのディスポーザブル培養バッグ)の場合は、500mL/バッグ以上、より好ましくは1L/バッグ以上、より好ましくは2L/バッグ以上、より好ましくは3L/バッグ以上、より好ましくは4L/バッグ以上、より好ましくは5L/バッグ以上とすることができ、10L/バッグ以下、より好ましくは9L/バッグ以下、より好ましくは8L/バッグ以下、より好ましくは7L/バッグ以下、より好ましくは6L/バッグ以下とすることができる。例えば、20L培養バッグ(容量が20Lのディスポーザブル培養バッグ)の場合は、1L/バッグ以上、より好ましくは2L/バッグ以上、より好ましくは3L/バッグ以上、より好ましくは4L/バッグ以上、より好ましくは5L/バッグ以上、より好ましくは6L/バッグ以上、より好ましくは7L/バッグ以上、より好ましくは8L/バッグ以上、より好ましくは9L/バッグ以上、より好ましくは10L/バッグ以上とすることができ、20L/バッグ以下、より好ましくは19L/バッグ以下、より好ましくは18L/バッグ以下、より好ましくは17L/バッグ以下、より好ましくは16L/バッグ以下、より好ましくは15L/バッグ以下、より好ましくは14L/バッグ以下、より好ましくは13L/バッグ以下、より好ましくは12L/バッグ以下、より好ましくは11L/バッグ以下とすることができる。例えば50L培養バッグ(容量が50Lのディスポーザブル培養バッグ)の場合は、1L/バッグ以上、より好ましくは2L/バッグ以上、より好ましくは5L/バッグ以上、より好ましくは10L/バッグ以上、より好ましくは15L/バッグ以上、より好ましくは20L/バッグ以上、より好ましくは25L/バッグ以上とすることができ、50L/バッグ以下、より好ましくは45L/バッグ以下、より好ましくは40L/バッグ以下、より好ましくは35L/バッグ以下、より好ましくは30L/バッグ以下とすることができる。細胞培養組成物の量がこの範囲であるとき、適切な大きさの細胞凝集塊が形成され易い。
 使用する培養容器の容量は適宜選択することができ特に限定されないが、液体培地を収容する部分の底面を平面視したときの面積として、下限が、例えば0.32cm以上、好ましくは0.65cm以上、より好ましくは0.65cm以上、さらに好ましくは1.9cm以上、もっと好ましくは3.0cm以上、3.5cm以上、9.0cm以上、又は9.6cm以上の培養容器を用いることができ、上限としては、例えば1000cm以下、好ましくは500cm以下、より好ましくは300cm以下、より好ましくは150cm以下、より好ましくは75cm以下、もっと好ましくは55cm以下、さらに好ましくは25cm以下、さらにより好ましくは21cm以下、さらにもっと好ましくは9.6cm以下、又は3.5cm以下の培養容器を用いることができる。
 前記SRF阻害剤又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤の存在下での細胞の浮遊培養の温度、時間、CO濃度等の条件は特に限定されない。培養温度は好ましくは20℃以上、より好ましくは35℃以上、好ましくは45℃以下、より好ましくは40℃以下、最も好ましくは37℃である。培養時間は好ましくは0.5時間以上、より好ましくは12時間以上、好ましくは7日間以下、より好ましくは72時間以下、より好ましくは48時間以下、最も好ましくは24時間以下である。培養時のCO濃度としては、好ましくは4%以上、より好ましくは4.5%以上、好ましくは10%以下、より好ましくは5.5%以下、最も好ましくは5%である。また、本発明の細胞の凝集を促進する方法においては、浮遊培養工程中で継代操作を伴ってもよい。培養条件がこの範囲であるとき、適切な大きさの細胞凝集塊が形成され易い。また、適当な頻度で培地交換を行うことができる。培地交換の頻度は培養する細胞種によって異なるが、例えば、5日に1回以上、4日に1回以上、3日に1回以上、2日に1回以上、1日に1回以上で行えばよい。培地交換は、後述する回収工程と同様の方法で細胞を回収した後、新鮮な培地を添加し、穏やかに細胞凝集塊を分散させた後、再度培養すればよい。
 浮遊培養工程で細胞の数をどこまで増やすか、また細胞の状態をどこに合わせるかについては、培養する細胞の種類、細胞凝集の目的、培地の種類や培養条件に応じて適宜定めればよい。
 浮遊培養工程に用いる細胞は、予め維持培養工程により培養され、回収工程により回収され、必要に応じて単細胞化された細胞であることが好ましい。維持培養工程、回収工程、単細胞化については、後述する通りである。
 浮遊培養工程後は、常法により培養液を廃棄し、細胞を回収する。この時、細胞は、剥離又は分散処理によって単一の細胞として回収することが好ましい。具体的な方法については、後述の回収工程で詳述する。回収した細胞は、そのまま、又は必要に応じてバッファ(PBSバッファを含む)、生食、又は培地(次の工程で使用する培地か基礎培地が好ましい)で洗浄後、次の工程に供すればよい。
(維持培養工程)
 「維持培養工程」は、浮遊培養工程前の細胞集団、又は浮遊培養工程後、若しくはその後の回収工程後に得られる細胞凝集塊を、未分化性を維持した状態で細胞を増殖させるために培養する工程である。維持培養は、細胞を容器、担体等培養基材に接着させながら培養する接着培養であってもよいし、細胞を培地中で浮遊させながら培養する浮遊培養であってもよい。
 維持培養工程では、当該分野で既知の動物細胞培養法により、対象となる細胞を培養すればよい。接着培養又は浮遊培養を問わない。
 維持培養工程で使用する培地、細胞の具体的な実施形態は既述の通りである。
 維持培養工程で使用する培養容器、細胞の播種密度、培養条件は、浮遊培養工程に関して既述の通りである。
 維持培養工程における、培地の流動状態は問わない。静置培養でもよいし、流動培養でもよい。
 「静置培養」とは、培養容器内で培地を静置した状態で培養することをいう。接着培養では、通常、この静置培養が採用される。
 「流動培養」とは、培地を流動させる条件下で培養することをいう。流動培養の具体的な実施形態は、浮遊培養工程に関して既述の通りである。
 維持培養工程で細胞の数をどこまで増やすか、また細胞の状態をどこに合わせるかについては、培養する細胞の種類、細胞凝集の目的、培地の種類や培養条件に応じて適宜定めればよい。
 維持培養工程の好適な一態様は、SRF阻害剤又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤の存在下での浮遊培養工程により形成された細胞凝集塊を更に培養する維持培養工程である。この態様の維持培養工程での培養方法は特に限定されないが、例えばSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含まない培地中で細胞凝集塊を浮遊培養する工程が挙げられる。この維持培養に用いる培地としては、SRF阻害剤及びROCK阻害剤を含まない以外は上記と同様の培地を用いることができ、培養の条件としては浮遊培養工程と同様の条件を用いることができる。この態様の維持培養工程では、適当な頻度で培地交換を行うことが好ましい。培地交換の頻度は細胞種により異なるが、好ましくは5日に一回以上、より好ましくは4日に一回以上、さらに好ましくは3日に一回以上、もっと好ましくは2日に一回以上、最も好ましくは1日に一回以上の頻度で培地交換作業を含むことができる。この頻度の培地交換は、幹細胞の細胞凝集塊を培養する際に特に好適である。培地交換の方法は特に限定されないが、好ましくは細胞凝集塊を含む細胞培養組成物を遠沈管に全量回収し、遠心分離又は静置状態5分程度置き、沈降した細胞凝集塊を残して上清を除去し、その後、新鮮な培地を添加し、穏やかに細胞凝集塊を分散させた後、再度プレート等の培養容器に細胞凝集塊分散培地を戻すことで細胞凝集塊を継続して培養することができる。この態様の維持培養工程の培養期間は特に限定されないが、3日以上7日以下が好ましい。細胞凝集塊をSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含まない培地中で上記の条件において更に浮遊培養することにより、適切な寸法の細胞凝集塊を得ることができる。
 維持培養工程後は、常法により培養液を廃棄し、細胞を回収する。この時、細胞は、剥離又は分散処理によって単一の細胞として回収することが好ましい。具体的な方法については、後述の回収工程で詳述する。回収した細胞は、そのまま、又は必要に応じてバッファ(PBSバッファを含む)、生食、又は培地(次の工程で使用する培地か基礎培地が好ましい)で洗浄後、次の工程に供すればよい。
(回収工程)
 「回収工程」は、維持培養工程又は浮遊培養工程後の培養液から培養した細胞を回収する工程で、本発明の方法における選択工程である。
 本明細書において「(細胞の)回収」とは、培養液と細胞とを分離して細胞を取得することをいう。細胞の回収方法は、当該分野の細胞培養法で使用される常法に従えばよく、特に限定はしない。細胞培養方法は、一般に浮遊培養方法と接着培養方法に大別できる。以下、それぞれの培養方法後の細胞の回収方法について説明をする。
(浮遊培養方法後の回収方法)
 細胞を浮遊培養法で培養した場合、細胞は培養液中に浮遊した状態で存在する。したがって、細胞の回収は、静置状態又は遠心分離により上清の液体成分を除去することで達成できる。また、細胞の回収方法としてはフィルターや中空糸分離膜等を選択することもできる。
 静置状態で液体成分を除去する場合、培養液の入った容器を静置状態5分程度置き、沈降した細胞や細胞凝集塊を残して上清を除去すればよい。また遠心分離は、遠心力によって細胞がダメージを受けない回転速度と処理時間で行えばよい。例えば、回転速度の下限は、細胞を沈降できれば特に限定はされないが、例えば500rpm以上、800rpm以上、又は1000rpm以上であればよい。一方、上限は細胞が遠心力によるダメージを受けない、又は受けにくい速度であればよく、例えば1400rpm以下、1500rpm以下、又は1600rpm以下であればよい。また処理時間の下限は、上記回転速度により細胞を沈降できる時間であれば特に限定はされないが、例えば30秒以上、1分以上、3分以上、又は5分以上であればよい。また、上限は、上記回転により細胞がダメージを受けない、又は受けにくい時間であればよく、例えば30秒以下、6分以下、8分以下、又は10分以下であればよい。回収した細胞は、必要に応じて洗浄することができる。洗浄方法は、限定しない。例えば前述の維持培養工程における工程後の洗浄方法と同様に行えばよい。洗浄液には、バッファ(PBSバッファを含む)、生食、又は培地(基礎培地が好ましい)を使用すればよい。
(接着培養後の回収方法)
 接着培養法で細胞を培養した場合、培養後、多くの細胞は培養容器や培養担体等の外部マトリクスに接着した状態で存在する。したがって、培養容器から培養液を除去するには、培養後の容器を静かに傾けて液体成分を流し出せばよい。外部マトリクスに接着した細胞が培養容器内に残るため、培養液と細胞を容易に分離することができる。
 その後、必要に応じて外部マトリクスに接着した細胞表面を洗浄することもできる。洗浄液には、バッファ(PBSバッファを含む)、生食、又は培地(基礎培地が好ましい)を使用すればよい。ただし、これらに限定はされない。洗浄後の洗浄液は、培養液と同様の操作で除去すればよい。この洗浄ステップは、複数回繰り返してもよい。
 続いて、外部マトリクスに接着した細胞集団を外部マトリクスから剥離する。剥離方法は、当該分野で公知の方法で行えばよい。通常は、スクレ―ピング、タンパク質分解酵素を有効成分とする剥離剤、EDTA等のキレート剤、又は剥離剤とキレート剤の混合物等が使用される。
 スクレ―ピングは、スクレーパー等を用いて外部マトリクスに付着した細胞を機械的手段によって剥ぎ取る方法である。ただし機械的操作により細胞が損傷を受けやすいため、回収後の細胞をさらなる培養に供する場合には、外部マトリクスに固着している細胞の足場部分を化学的に破壊又は分解し、外部マトリクスとの接着を解除する剥離方法が好ましい。
 剥離方法では、剥離剤及び/又はキレート剤を使用する。剥離剤は限定しないが、例えば、トリプシン、コラゲナーゼ、プロナーゼ、ヒアルロニダーゼ、エラスターゼの他、市販のAccutase(商標登録)、TrypLETMExpress Enzyme(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、TrypLETM Select Enzyme(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)、ディスパーゼ(商標登録)等を利用することができる。各剥離剤の濃度及び処理時間は、細胞の剥離又は分散で用いられる常法の範囲で使用すればよい。例えば、トリプシンの場合、溶液中の濃度の下限は、細胞を剥離できる濃度であれば特に限定はされないが、例えば0.01%以上、0.02%以上、0.03%以上、0.04%以上、0.05%以上、0.08%以上、又は0.10%以上であればよい。一方、溶液中の濃度の上限は、トリプシンの作用によって細胞そのものが溶解される等の影響を受けない濃度であれば特に限定はされないが、例えば0.15%以下、0.20%以下、0.25%以下、又は0.30%以下であればよい。また処理時間は、トリプシンの濃度によって左右されるものの、その下限はトリプシンの作用によって外部マトリクスから細胞が十分に剥離される時間であれば特に限定はされず、例えば1分以上、2分以上、3分以上、4分以上又は5分以上であればよい。一方、処理時間の上限は、トリプシンの作用によって細胞そのものが溶解される等の影響を受けない時間であれば特に限定はされず、例えば8分以下、10分以下、12分以下、15分以下、18分以下、又は20分以下であればよい。他の剥離剤又はキレート剤の場合も、概ね同様に行えばよい。なお、市販の剥離剤を使用する場合には、添付のプロトコルに記載の濃度及び処理時間で行うことができる。
 外部マトリクスから剥離した細胞は、遠心分離により剥離剤を含む上清を除去する。遠心条件は、上記「浮遊培養方法後の回収方法」と同様でよい。回収した細胞は、必要に応じて洗浄することができる。洗浄方法も上記「浮遊培養方法後の回収方法」と同様に行えばよい。
 本工程後に得られた細胞は、単層細胞片や細胞凝集塊等の細胞集合体を一部に包含し得る。一方、回収した細胞は、必要に応じて単一細胞化することもできる。
(単一細胞化)
 本明細書において「単一細胞化」とは、単層細胞片や細胞凝集塊等のように複数の細胞が互いに接着又は凝集した細胞集合体を分散させて、単一の遊離した細胞状態にすることをいう。
 単一細胞化は、上記の剥離方法で使用する剥離剤及び/又はキレート剤の濃度を高めにする、及び/又は剥離剤及び/又はキレート剤での処理時間を長くすればよい。例えば、トリプシンの場合、溶液中の濃度の下限は、細胞集合体を分散できる濃度であれば特に限定はされないが、例えば0.15%以上、0.18%以上、0.20%以上、又は0.24%以上であればよい。一方、溶液中の濃度の上限は、細胞そのものが溶解される等の影響を受けない濃度であれば特に限定はされないが、0.25%以下、0.28%以下、又は0.30%以下であればよい。また処理時間は、トリプシンの濃度によって左右されるものの、その下限は、トリプシンの作用によって細胞集合体が十分に分散される時間であれば特に限定はされず、例えば5分以上、8分以上、10分以上、12分以上、又は15分以上であればよい。一方、処理時間の上限は、トリプシンの作用によって細胞そのものが溶解される等の影響を受けない時間であれば特に限定はされず、例えば18分以下、20分以下、22分以下、25分以下、28分以下、又は30分以下であればよい。なお、市販の剥離剤を使用する場合には、添付のプロトコルに記載の、細胞を分散させて単一状態にできる濃度で使用すればよい。前記剥離剤及び/又はキレート剤による処理後に物理的に軽く処理することで、単一細胞化を促進できる。この物理的処理は限定しないが、例えば、細胞を溶液ごと複数回ピペッティングする方法が挙げられる。さらに、必要に応じて、細胞をストレーナーやメッシュに通過させてもよい。
 単一細胞化した細胞は、静置又は遠心分離により剥離剤を含む上清を除去して回収することができる。回収した細胞は、必要に応じて洗浄してもよい。遠心分離の条件や洗浄方法については上記「浮遊培養方法後の回収方法」と同様に行えばよい。
<7.細胞凝集促進剤>
 本発明の他の一態様は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む、細胞の浮遊培養に用いるための細胞凝集促進剤である。
 本発明の細胞凝集促進剤は、浮遊培養系において細胞の凝集を適度に促進し、略均一な大きさの細胞凝集塊を形成するために用いることができる。本発明の細胞凝集促進剤を用いた幹細胞の浮遊培養では、幹細胞の未分化性を維持することができる。
 本発明における細胞凝集促進剤の形態は特に限定されず、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤自体であってもよいし、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤と他の成分とを組み合わせた組成物であってもよい。前記組成物の形態は特に限定されない。前記組成物は例えば浮遊培養に用いる培地の形態であってもよいし、培地の調製時に配合される添加用組成物の形態であってもよい。
 本発明における細胞凝集促進剤の好ましい実施形態は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含有する培地又はリン酸緩衝液等の緩衝液である。培地中のSRF阻害剤及びROCK阻害剤の濃度としては、<6.細胞の凝集を促進する方法>の欄にて浮遊培養に関して記載の培地中のSRF阻害剤及びROCK阻害剤の濃度が例示できる。
 本発明における細胞凝集促進剤の別の好ましい実施形態は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を液状又は固形状媒体中に含有する液状又は固形状組成物である。前記液状又は固形状組成物は、浮遊培養用の培地を調製する際に添加される添加物である。この実施形態の細胞凝集促進剤は、調製される培地中でのSRF阻害剤及びROCK阻害剤の最終濃度が、<6.細胞の凝集を促進する方法>の欄にて浮遊培養に関して記載の培地中のSRF阻害剤及びROCK阻害剤の濃度となるように調製されていることが好ましい。この実施形態の細胞凝集促進剤中でのSRF阻害剤の濃度は特に限定されないが、好ましくは、SRF阻害剤の、浮遊培養時の培地中での好ましい濃度として挙げた前記濃度の1倍以上、より好ましくは2倍以上、より好ましくは10倍以上、より好ましくは100倍以上、より好ましくは1000倍以上、より好ましくは10000倍以上であり、具体的には、例えばSRF阻害剤がCCG-1423(Cayman Chemical、CAS No.285986-881、C1814ClF、分子量=454.8)の場合、9.0μg/mL以上10.0mg/mL以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは9.0μg/mL以上、10.0μg/mL以上、20.0μg/mL以上、30.0μg/mL以上、40.0μg/mL以上、50.0μg/mL以上、60.0μg/mL以上、70.0μg/mL以上、80.0μg/mL以上、90.0μg/mL以上、100.0μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは10.0mg/mL以下、9.0mg/mL以下、8.0mg/mL以下、7.0mg/mL以下、6.0mg/mL以下、5.0mg/mL以下、4.0mg/mL以下、3.0mg/mL以下、2.0mg/mL以下、1.0mg/mL以下、900.0μg/mL以下、800.0μg/mL以下、700.0μg/mL以下、600.0μg/mL以下、500.0μg/mL以下である。また、SRF阻害剤の濃度は、20μM以上20mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記SRF阻害剤の濃度の下限としては、例えば、20μM以上、200μM以上、0.05mM以上、0.1mM以上、0.2mM以上、0.3mM以上、0.4mM以上、0.5mM以上、0.6mM以上、0.7mM以上、0.8mM以上、0.9mM以上、1mM以上、2mM以上、3mM以上、4mM以上、5mM以上、6mM以上、7mM以上、8mM以上、9mM以上、10mM以上、11mM以上、12mM以上、13mM以上、14mM以上、15mM以上である。一方、上限としては、例えば20mM以下である。また、この実施形態の細胞凝集促進剤中でのROCK阻害剤の濃度は特に限定されないが、好ましくは、ROCK阻害剤の、浮遊培養時の培地中での好ましい濃度として挙げた前記濃度の1倍以上、より好ましくは2倍以上、より好ましくは10倍以上、より好ましくは100倍以上、より好ましくは1000倍以上、より好ましくは10000倍以上であり、具体的には、例えばROCK阻害剤がY-27632(和光純薬工業株式会社、CAS No.331752-47-7、C1421O・2HCl・HO、分子量=338.27)の場合、6.7μg/mL以上14.0mg/mL以下の範囲であることが特に好ましい。例えば、6.7mg/mLでも良い。前記濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは6.7μg/mL以上、7.0μg/mL以上、8.0μg/mL以上、9.0μg/mL以上、10.0μg/mL以上、20.0μg/mL以上、30.0μg/mL以上、40.0μg/mL以上、50.0μg/mL以上、60.0μg/mL以上、70.0μg/mL以上、80.0μg/mL以上、90.0μg/mL以上、100.0μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは14.0mg/mL以下、13.0mg/mL以下、12.0mg/mL以下、11.0mg/mL以下、10.0mg/mL以下、9.0mg/mL以下、8.0mg/mL以下、7.0mg/mL以下、6.0mg/mL以下、5.0mg/mL以下、4.0mg/mL以下、3.0mg/mL以下、2.0mg/mL以下、1.0mg/mL以下、900.0μg/mL以下、800.0μg/mL以下、700.0μg/mL以下、600.0μg/mL以下、500.0μg/mL以下である。また、ROCK阻害剤の濃度は、20μM以上40mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記ROCK阻害剤の濃度の下限としては、例えば20μM以上、200μM以上、0.5mM以上、0.6mM以上、0.7mM以上、0.8mM以上、0.9mM以上、1mM以上、2mM以上、3mM以上、4mM以上、5mM以上、6mM以上、7mM以上、8mM以上、9mM以上、10mM以上、11mM以上、12mM以上、13mM以上、14mM以上、15mM以上、16mM以上、17mM以上、18mM以上、19mM以上、20mM以上である。一方、上限としては、例えば40mM以下、30mM以下である。
 細胞凝集促進剤は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤に加えて、溶媒及び/又は賦形剤等を含有してもよい。溶媒としては、水、バッファ(PBSを含む)、生食、有機溶媒(DMSO、DMF、キシレン、低級アルコール)等が挙げられる。賦形剤としては、抗生剤、緩衝剤、増粘剤、着色剤、安定化剤、界面活性剤、乳化剤、防腐剤、保存剤、抗酸化剤等が挙げられる。抗生剤は特に限定されないが、例えばペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンB等を使用することができる。緩衝剤としては、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、グリシン緩衝液などが挙げられる。増粘剤としては、ゼラチン、多糖類などが挙げられる。着色剤としては、フェノールレッドなどが挙げられる。安定化剤としては、アルブミン、デキストラン、メチルセルロース、ゼラチンなどが挙げられる。界面活性剤としては、コレステロール、アルキルグリコシド、アルキルポリグルコシド、アルキルモノグリセリルエーテル、グルコシド、マルトシド、ネオペンチルグリコール系、ポリオキシエチレングリコール系、チオグルコシド、チオマルトシド、ペプチド、サポニン、リン脂質、脂肪酸ソルビタンエステル、脂肪酸ジエタノールアミドなどが挙げられる。乳化剤としては、グリセリン脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル、プロピレングリコール脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステルなどが挙がられる。防腐剤としては、アミノエチルスルホン酸、安息香酸、安息香酸ナトリウム、エタノール、エデト酸ナトリウム、カンテン、dl-カンフル、クエン酸、クエン酸ナトリウム、サリチル酸、サリチル酸ナトリウム、サリチル酸フェニル、ジブチルヒドロキシトルエン、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、窒素、デヒドロ酢酸、デヒドロ酢酸ナトリウム、2-ナフトール、白糖、ハチミツ、パラオキシ安息香酸イソブチル、パラオキシ安息香酸イソプロピル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸ブチル、パラオキシ安息香酸プロピル、パラオキシ安息香酸メチル、l-メントール、ユーカリ油などが挙げられる。保存剤としては、安息香酸、安息香酸ナトリウム、エタノール、エデト酸ナトリウム、乾燥亜硫酸ナトリウム、クエン酸、グリセリン、サリチル酸、サリチル酸ナトリウム、ジブチルヒドロキシトルエン、D-ソルビトール、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、デヒドロ酢酸ナトリウム、パラオキシ安息香酸イソブチル、パラオキシ安息香酸イソプロピル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸ブチル、パラオキシ安息香酸プロピル、パラオキシ安息香酸メチル、プロピレングリコール、リン酸などが挙げられる。抗酸化剤としては、クエン酸、クエン酸誘導体、ビタミンCおよびその誘導体、リコペン、ビタミンA、カロテノイド類、ビタミンBおよびその誘導体、フラボノイド類、ポリフェノール類、グルタチオン、セレン、チオ硫酸ナトリウム、ビタミンEおよびその誘導体、αリポ酸およびその誘導体、ピクノジェノール、フラバンジェノール、スーパーオキサイドディスムターゼ(SOD)、グルタチオンペルオキシダーゼ、グルタチオン-S-トランスフェラーゼ、グルタチオン還元酵素、カタラーゼ、アスコルビン酸ペルオキシダーゼ、およびこれらの混合物などが挙げられる。
 細胞凝集促進剤は、増殖因子を含有してもよく、好ましくはFGF2及びTGF-β1の1種以上の増殖因子を含有していることが好ましい。
<8.細胞凝集塊の製造方法、及び、それにより製造された細胞凝集塊>
 本発明の他の一態様は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程を含む、細胞凝集塊の製造方法である。
 この方法によれば、適度な寸法の細胞凝集塊を、高収量で製造することができる。特に、細胞が幹細胞である場合、幹細胞の未分化性の維持された、適度な寸法の細胞凝集塊を、高収量で製造することができる。
 SRF阻害剤、ROCK阻害剤、培地及び細胞の具体的な実施形態は既述の通りである。
 前記工程での培地中のSRF阻害剤の濃度は、例えばSRF阻害剤がCCG-1423(Cayman Chemical、CAS No.285986-881、C1814ClF、分子量=454.8)の場合、前記阻害剤の濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは4.5ng/mL以上、より好ましくは45ng/mL以上、特に好ましくは450ng/mL以上、最も好ましくは1.1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上、15μg/mL以上、16μg/mL以上、17μg/mL以上、18μg/mL以上、19μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは4.6mg/mL以下、より好ましくは460μg/mL以下、特に好ましくは46μg/mL以下、40μg/mL以下、30μg/mL以下、20μg/mL以下である。また、前記阻害剤の濃度は、好ましくは4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である。前記工程での培地中のSRF阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、好ましくは10nM以上、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上、26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。一方、上限としては、好ましくは10mM以下、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 また、前記工程での培地中のROCK阻害剤の濃度は、例えばROCK阻害剤がY-27632(和光純薬工業株式会社、CAS No.331752-47-7、C1421O・2HCl・HO、分子量=338.27)の場合、3.3ng/mL以上3.4mg/mL以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは3.3ng/mL以上、より好ましくは33ng/mL以上、特に好ましくは330ng/mL以上、最も好ましくは800ng/mL以上、1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは3.4mg/mL以下、より好ましくは340μg/mL以下、特に好ましくは34μg/mL以下、最も好ましくは14μg/mL以下である。前記工程での培地中のROCK阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限は、好ましくは10nM以上、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上,26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。上限としては、好ましくは10mM以下、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 前記工程の具体的な実施形態は、<6.細胞の凝集を促進する方法>の欄で説明した、細胞の凝集を促進する方法における「SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程」の具体的な実施形態と同様である。
 本発明の他の一態様は、前記の細胞凝集塊の製造方法により得られた細胞凝集塊である。
 本発明のこの態様に係る細胞凝集塊は適度な寸法を有し、生細胞率が高い。また、細胞が幹細胞である場合、細胞凝集塊を構成する細胞が未分化性を維持している。
 本発明のこの態様に係る細胞凝集塊は、好ましくは、<2.細胞凝集塊>の欄に記載の特徴を備える。
 また、本発明の細胞凝集塊を製造する方法は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する浮遊培養工程の他に、適宜任意の工程を含むことができる。前記任意の工程としては、例えば維持培養工程、細胞凝集塊の回収工程である。さらに、前記浮遊培養は継代操作を含んでいてもよい。維持培養工程及び回収工程の好適な実施形態は、<6.細胞の凝集を促進する方法>の欄で説明した維持培養工程及び回収工程と同様である。
<9.細胞培養組成物>
 本発明の他の一態様は、細胞と、培地と、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤とを含む、細胞培養組成物である。
 本発明のこの態様に係る細胞培養組成物は、細胞凝集塊を高収量で製造するために用いることができる。特に、細胞が幹細胞である場合、幹細胞の未分化性の維持された、適度な寸法の細胞凝集塊を、高収量で製造するために用いることができる。
 また、本発明のこの態様に係る細胞培養組成物は、細胞を細胞凝集塊の形態で含んでもよい。
 SRF阻害剤、ROCK阻害剤、培地、細胞及び細胞凝集塊の具体的な実施形態は既述の通りである。
 本発明のこの態様に係る細胞培養組成物中のSRF阻害剤の濃度は、例えばSRF阻害剤がCCG-1423(Cayman Chemical、CAS No.285986-881、C1814ClF、分子量=454.8)の場合、前記阻害剤の濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは4.5ng/mL以上、より好ましくは45ng/mL以上、特に好ましくは450ng/mL以上、最も好ましくは1.1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上、15μg/mL以上、16μg/mL以上、17μg/mL以上、18μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは4.6mg/mL以下、より好ましくは460μg/mL以下、特に好ましくは46μg/mL以下、最も好ましくは19μg/mL以下である。また、前記阻害剤の濃度は、好ましくは4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である。本発明のこの態様に係る細胞培養組成物中のSRF阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、好ましくは10nM以上、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上,26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。一方、上限としては、好ましくは10mM以下、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 また、本発明のこの態様に係る細胞培養組成物中のROCK阻害剤の濃度は、例えばROCK阻害剤がY-27632(和光純薬工業株式会社、CAS No.331752-47-7、C1421O・2HCl・HO、分子量=338.27)の場合、3.3ng/mL以上3.4mg/mL以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは3.3ng/mL以上、より好ましくは33ng/mL以上、特に好ましくは330ng/mL以上、最も好ましくは800ng/mL以上、1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは3.4mg/mL以下、より好ましくは340μg/mL以下、特に好ましくは34μg/mL以下、最も好ましくは14μg/mL以下である。本発明のこの態様に係る細胞培養組成物中のROCK阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限は、好ましくは10nM以上、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上,26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。上限としては、好ましくは10mM以下、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 前記細胞培養組成物から細胞凝集塊を製造する工程としては、前記細胞培養組成物中で細胞を浮遊培養する工程が挙げられる。この工程の具体的な実施形態は、<6.細胞の凝集を促進する方法>の欄で説明した、細胞の凝集を促進する方法における「SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程」の具体的な実施形態と同様である。
 前記細胞培養組成物は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を培地に添加した後に細胞を添加することにより調製してもよいし、細胞を培地に混合した後にSRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を添加することにより調製してもよいが、好ましくはSRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を培地に添加した後に細胞を添加することにより調製する。SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を培地に添加する際、安定化剤を添加することもできる。前記安定化剤は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤の液体培地中での安定化、活性維持、培養容器等への吸着防止等に寄与する物質であれば特に限定されないが、アルブミン等のタンパク質、乳化剤、界面活性剤、両親媒性物質、或いは、ヘパリン等の多糖類等を使用することができる。
 前記細胞培養組成物は、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地(前記安定化剤を更に含んでいても良い)を凍結して保存し、その後に解凍してから細胞を添加することにより調製してもよい。
<10.細胞培養培地>
 本発明の他の一態様は、培地と、SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤とを含む、細胞培養培地である。
 本発明のこの態様に係る細胞培養培地は、浮遊培養により細胞から細胞凝集塊を高収量で製造するための培地として用いることができる。特に、細胞が幹細胞である場合、幹細胞の未分化性の維持された、適度な寸法の細胞凝集塊を、高収量で製造するために用いることができる。
 SRF阻害剤、ROCK阻害剤、培地及び細胞の具体的な実施形態は既述の通りである。
 本発明のこの態様に係る細胞培養培地中のSRF阻害剤の濃度は、例えばSRF阻害剤がCCG-1423(Cayman Chemical、CAS No.285986-881、C1814ClF、分子量=454.8)の場合、前記阻害剤の濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは4.5ng/mL以上、より好ましくは45ng/mL以上、特に好ましくは450ng/mL以上、最も好ましくは1.1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上、15μg/mL以上、16μg/mL以上、17μg/mL以上、18μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは4.6mg/mL以下、より好ましくは460μg/mL以下、特に好ましくは46μg/mL以下、最も好ましくは19μg/mL以下である。また、前記阻害剤の濃度は、好ましくは4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である。本発明のこの態様に係る細胞培養培地中のSRF阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、好ましくは10nM以上、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上,26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。一方、上限としては、好ましくは10mM以下、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 また、本発明のこの態様に係る細胞培養培地中のROCK阻害剤の濃度は、例えばROCK阻害剤がY-27632(和光純薬工業株式会社、CAS No.331752-47-7、C1421O・2HCl・HO、分子量=338.27)の場合、3.3ng/mL以上3.4mg/mL以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限としては、細胞凝集促進効果を奏すれば特に限定されないが、好ましくは3.3ng/mL以上、より好ましくは33ng/mL以上、特に好ましくは330ng/mL以上、最も好ましくは800ng/mL以上、1μg/mL以上、2μg/mL以上、3μg/mL以上、4μg/mL以上、5μg/mL以上、6μg/mL以上、7μg/mL以上、8μg/mL以上、9μg/mL以上、10μg/mL以上、11μg/mL以上、12μg/mL以上、13μg/mL以上、14μg/mL以上である。一方、上限としては、細胞が死滅しない濃度であれば特に限定されないが、好ましくは3.4mg/mL以下、より好ましくは340μg/mL以下、特に好ましくは34μg/mL以下、最も好ましくは14μg/mL以下である。本発明のこの態様に係る細胞培養培地中のROCK阻害剤の濃度はまた、10nM以上、10mM以下の範囲であることが特に好ましい。前記濃度の下限は、好ましくは10nM以上、より好ましくは100nM以上、特に好ましくは1μM以上、最も好ましくは2.5μM以上、3μM以上、4μM以上、5μM以上、6μM以上、7μM以上、8μM以上、9μM以上、10μM以上、11μM以上、12μM以上、13μM以上、14μM以上、15μM以上、16μM以上、17μM以上、18μM以上、19μM以上、20μM以上、21μM以上、22μM以上、23μM以上、24μM以上、25μM以上,26μM以上、27μM以上、28μM以上、29μM以上、30μM以上、31μM以上、32μM以上、33μM以上、34μM以上、35μM以上、36μM以上、37μM以上、38μM以上、39μM以上である。上限としては、好ましくは10mM以下、より好ましくは1mM以下、特に好ましくは100μM以下、最も好ましくは40μM以下である。
 前記細胞培養培地から細胞凝集塊を製造する工程としては、前記細胞培養培地中で細胞を浮遊培養する工程が挙げられる。この工程の具体的な実施形態は、<6.細胞の凝集を促進する方法>の欄で説明した、細胞の凝集を促進する方法における「SRF阻害剤、又はSRF阻害剤及びROCK阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程」の具体的な実施形態と同様である。
 前記細胞培養培地は、使用前まで凍結して保存し、使用時に解凍して使用することができる。
<実施例1.ヒトiPS細胞の維持培養>
 ヒトiPS細胞として、TkDN4-M株(東京大学医科学研究所)を使用した。Vitronectin(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社)をコートした細胞培養用ディッシュ上にヒトiPS細胞を播種し、培地はEssential 8TM(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社)を使用して維持培養した。継代時の細胞剥離剤としては、Accutase(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社)を用いた。また、細胞播種時のみ、Y-27632(和光純薬工業株式会社)を10μMの濃度になるように培地に添加した。培地交換は毎日実施した。実験には継代数50回までのヒトiPS細胞を使用した。
<実施例2.細胞凝集アッセイによる凝集促進効果の確認>
 SRF阻害剤添加による細胞の凝集促進効果について検討した。
(方法)
 実施例1の手順で培養したヒトiPS細胞をAccutaseで3分間から5分間処理して剥離し、単細胞まで分散した。この細胞を最終濃度5mg/mLのBSA(和光純薬工業株式会社)および最終濃度2.5μMのY-27632(和光純薬工業株式会社)を含むEssential 8TM培地で懸濁し、その一部をトリパンブルー染色して細胞数を調べた。1mLあたり2×10個の細胞を含むように調製した。別途CCG-1423(Cayman、10010350)を最終濃度4・55mg/mL(10mM)になるように細胞凝集促進剤を調整し、前記調整した細胞凝集促進剤を前記細胞懸濁液にCCG-1423の最終濃度が10μMとなるように添加した上で、浮遊培養用12ウェルプレート(住友ベークライト株式会社)に1.3mL/ウェルの割合で播種した。細胞を播種したプレートは、ロータリーシェーカー(株式会社オプティマ)上で90 rpmのスピードで水平面に沿って旋回幅(直径)が25mmの円を描くように旋回培養し、5%CO、37℃の環境下で浮遊培養を行った。コントロール試験として、CCG-1423を添加していない以外は上記と同様に調製した細胞懸濁液を用いた条件での試験を行った。
 培養を開始して翌日(培養1日目)に位相差顕微鏡にて画像を取得した。
 また、Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST(株式会社同仁化学研究所)を用いて、死細胞数を算出した。
(結果)
 上記浮遊培養後(培養1日目)の顕微鏡観察像を図1に示す。観察の結果、コントロール試験(0μM CCG-1423)に比べて、CCG-1423を添加した条件では比較的大きな凝集塊を形成しており、凝集が促進されていた。死細胞数を調べた結果、コントロール試験(0μM CCG-1423)に比べて、CCG-1423を添加した条件では死細胞数が減少していた(図2)。
<実施例3.CCG-1423存在条件での凝集塊形成後の細胞増殖能、未分化能への影響>
 ヒトiPS細胞の浮遊培養を行いグルコース消費量、細胞収量、未分化マーカーの陽性率を測定し、CCG-1423が与える細胞への影響を解析した。
(方法)
 実施例2と同様に細胞懸濁液を調製し、別途CCG-1423(同上)を最終濃度4・55mg/mL(10mM)になるように細胞凝集促進剤を調整し、前記調整した細胞凝集促進剤を前記細胞懸濁液にCCG-1423の最終濃度が10μMとなるように添加した上で、浮遊培養用6ウェルプレート(住友ベークライト株式会社)に4mL/ウェルの割合で播種した。細胞を播種したプレートは、ロータリーシェーカー(株式会社オプティマ)上で90 rpmのスピードで水平面に沿って旋回幅(直径)が25mmの円を描くように旋回培養し、5%CO、37℃の環境下で浮遊培養を行った。培養翌日(培養1日目)以降、毎日新鮮な培地(最終濃度5mg/mLのBSA(和光純薬工業株式会社)を含むEssential 8TM培地)に培地交換し、培養5日後まで培養を続けた。コントロール試験として、CCG-1423およびY-27632を含まない培地で同様に培養した。培養中、毎日位相差顕微鏡により画像を取得とした。培養1日目に取得した画像中の208個の細胞凝集塊を観察し、顕微鏡写真のスケールと比較して各細胞凝集塊の最も広い部分の幅(「φ」とする)を求め、その分布を調べ、平均値±標準偏差を算出した。培地交換時に回収した培養上清に含まれるグルコースの濃度を、バイオセンサーBF-5iD(王子計測機器株式会社)で測定し、グルコース消費量を計算した。
 また、培養5日目に細胞凝集塊を回収し、Accutaseにより分散後、5mg/mLのBSAを含むEssential 8TM培地で懸濁した。この細胞懸濁液の一部をトリパンブルー染色して細胞数を調べた。上記細胞懸濁液を300gで3分間遠心分離後、上清を取り除き、PBS(リン酸緩衝生理食塩水)で細胞を洗浄した。その後、4%パラホルムアルデヒド(和光純薬工業株式会社)により室温で20分間固定後、PBSで3回洗浄し、300μLのPBSで細胞を再懸濁後、ボルテックスで攪拌しながら冷メタノール3mLを添加し、-20℃で一晩以上透過処理を行った。3%FBS(ウシ胎仔血清)/PBSで3回洗浄後、3%FBS(ウシ胎仔血清)/PBSにより細胞を再懸濁して室温で30分から1時間ブロッキングした。その後、蛍光標識抗SOX2抗体(Cat.No.656110、Biolegend社)及び蛍光標識抗OCT4抗体(Cat.No.653703、Biolegend社)及び蛍光標識抗Nanog抗体(Cat.No.674010、Biolegend社)により4℃で30分から1時間染色した。3%FBS(ウシ胎仔血清)/PBSで1回洗浄後、セルストレーナーに通過させた細胞をFACSVerseにて解析した。コントロール試験として、上記3種の抗体(蛍光標識済抗SOX2抗体、蛍光標識抗OCT4抗体、蛍光標識抗Nanog抗体)の代わりに上記3種の各抗体に対応した3種の蛍光標識済アイソタイプコントロール抗体(Cat.No.400129、Cat.No.400314、Cat.No.400136;Biolegend社)を反応させた以外は同様に処理した細胞を用いた。
 また、培養5日目に細胞収量を測定した。細胞収量の測定は次の手順で行った。すなわち、形成した細胞凝集塊をAccutaseで5分から10分処理し、ブルーチップでのピペッティングによって細胞を単分散させ、トリパンブルー染色した後、血球計算盤を用いて細胞数を係数し、細胞収量を測定した。
(結果)
 図3は培養1日目から5日目に観察した顕微鏡写真である。CCG-1423を添加した条件では播種後から培養1日目にかけて細胞凝集塊が形成されており、培養を継続することで徐々に細胞が増殖し、細胞凝集塊が大きくなった。
 図7はCCG-1423を添加した条件下での培養1日目の細胞凝集塊サイズ(直径)の分布図である。また、以下の表1にはCCG-1423を添加した条件下での培養1日目のある一定サイズ別の細胞凝集塊の個数およびその割合を示す。
 CCG-1423を添加した条件下での培養1日目の細胞凝集塊サイズ(直径)の平均値±標準偏差を算出した結果、171.3±22.8μmであった。
 また、CCG-1423を添加した条件下での培養1日目において、細胞凝集塊全個数に対する、細胞凝集塊サイズ(直径)が40μm以上300μm以下となる細胞凝集塊の割合は100%であった。そのうち、前記細胞凝集塊サイズ(直径)が60μm以上300μm以下となる細胞凝集塊の割合は99.5%であり、前記細胞凝集塊サイズ(直径)が80μm以上300μm以下となる細胞凝集塊の割合は98.5%であり、前記細胞凝集塊サイズ(直径)が100μm以上300μm以下となる細胞凝集塊の割合は98.5%であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 グルコース消費量を図4に、培養5日目の細胞収量を図5にそれぞれ示す。CCG-1423を添加した条件では、グルコース消費量は日々増加し、細胞が増殖していることが示唆され、培養5日目には播種細胞数(8×10個/ウェル)のおよそ8.5倍に増殖していることが明らかになった。
 未分化マーカーの陽性率の測定結果を図6に示す。CCG-1423を含む培地で細胞凝集塊を作製し、その後も浮遊培養にて増殖した細胞において、マーカーであるSOX2陽性細胞が99%以上、OCT4陽性細胞が97%以上、Nanog陽性細胞が99%以上であり、CCG-1423添加によって形成されたヒトiPS細胞の凝集塊は未分化性を維持していることが確認された。
 本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。

Claims (17)

  1.  SRF阻害剤を含む、細胞の浮遊培養に用いるための細胞凝集促進剤。
  2.  前記SRF阻害剤の濃度が9.0μg/mL以上10.0mg/mL以下である、請求項1に記載の細胞凝集促進剤。
  3.  さらにROCK阻害剤を含む、請求項1又は2に記載の細胞凝集促進剤。
  4.  前記SRF阻害剤がCCG-1423である、請求項1から3のいずれか1項に記載の細胞凝集促進剤。
  5.  前記細胞が幹細胞である、請求項1から4のいずれか1項に記載の細胞凝集促進剤。
  6.  SRF阻害剤を含む培地中で細胞を浮遊培養する工程を含む、細胞凝集塊の製造方法。
  7.  前記培地中における前記SRF阻害剤の濃度が4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である、請求項6に記載の製造方法。
  8.  さらに、前記培地中にROCK阻害剤を含む、請求項6又は7に記載の製造方法。
  9.  前記SRF阻害剤がCCG-1423である、請求項6から8のいずれか1項に記載の製造方法。
  10.  前記細胞が幹細胞である、請求項6から9のいずれか1項に記載の製造方法。
  11.  請求項6から10のいずれか1項に記載の製造方法により得られた細胞凝集塊。
  12.  細胞と、培地と、SRF阻害剤とを含む、細胞培養組成物。
  13.  前記SRF阻害剤の濃度が4.5ng/mL以上4.6mg/mL以下である、請求項12に記載の細胞培養組成物。
  14.  さらにROCK阻害剤を含む、請求項12又は13に記載の細胞培養組成物。
  15.  前記SRF阻害剤がCCG-1423である、請求項12から14のいずれか1項に記載の細胞培養組成物。
  16.  前記細胞が幹細胞である、請求項12から15のいずれか1項に記載の細胞培養組成物。
  17.  前記細胞の形態が細胞凝集塊である、請求項12から16のいずれか1項に記載の細胞培養組成物。
PCT/JP2018/048314 2017-12-28 2018-12-27 細胞凝集促進剤 WO2019131942A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US16/958,359 US20210062159A1 (en) 2017-12-28 2018-12-27 Cell aggregation promoter
EP18894959.8A EP3733837A4 (en) 2017-12-28 2018-12-27 MEANS TO PROMOTE THE CELL AGGREGATION
CN201880084375.7A CN111527197A (zh) 2017-12-28 2018-12-27 细胞聚集促进剂
JP2019562204A JP7349911B2 (ja) 2017-12-28 2018-12-27 細胞凝集促進剤

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2017254688 2017-12-28
JP2017-254688 2017-12-28

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2019131942A1 true WO2019131942A1 (ja) 2019-07-04

Family

ID=67063755

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2018/048314 WO2019131942A1 (ja) 2017-12-28 2018-12-27 細胞凝集促進剤

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20210062159A1 (ja)
EP (1) EP3733837A4 (ja)
JP (1) JP7349911B2 (ja)
CN (1) CN111527197A (ja)
WO (1) WO2019131942A1 (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11884637B1 (en) 2023-08-28 2024-01-30 King Faisal University 3-(4-chlorophenyl)-5-{[5-methyl-2-(propan-2-yl)phenoxy]methyl}-1,2,4-oxadiazole as an antitumor and antimicrobial compound
US11905261B1 (en) 2023-08-28 2024-02-20 King Faisal University 3-(4-methoxyphenyl)-5-{[5-methyl-2-(propan-2-yl)phenoxy]methyl}-1,2,4-oxadiazole as an antitumor and antimicrobial compound

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002076976A2 (en) 2001-03-23 2002-10-03 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
US20030087919A1 (en) 2001-03-23 2003-05-08 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
WO2003059913A1 (en) 2002-01-10 2003-07-24 Bayer Healthcare Ag Roh-kinase inhibitors
WO2003062225A1 (en) 2002-01-23 2003-07-31 Bayer Pharmaceuticals Corporation Pyrimidine derivatives as rho-kinase inhibitors
WO2003062227A1 (en) 2002-01-23 2003-07-31 Bayer Pharmaceuticals Corporation Rho-kinase inhibitors
JP2003304866A (ja) 2002-04-17 2003-10-28 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 三次元凝集塊形成による細胞の分化制御
WO2004039796A1 (de) 2002-10-28 2004-05-13 Bayer Healthcare Ag Heteroaryloxy-substituierte phenylaminopyrimidine als rho-kinaseinhibitoren
WO2013077423A1 (ja) 2011-11-25 2013-05-30 国立大学法人京都大学 多能性幹細胞の培養方法
WO2016121737A1 (ja) 2015-01-29 2016-08-04 株式会社カネカ 細胞凝集塊の作製方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8003606B2 (en) * 2008-06-06 2011-08-23 Joslin Diabetes Center, Inc. Inhibiting serum response factor (SRF) to improve insulin sensitivity
WO2011035143A2 (en) * 2009-09-17 2011-03-24 The Regents Of The University Of Michigan Methods and compositions for inhibiting rho-mediated diseases and conditions
WO2015041533A1 (en) * 2013-09-20 2015-03-26 Stichting Het Nederlands Kanker Instituut Rock in combination with mapk-pathway
WO2015066189A2 (en) * 2013-10-29 2015-05-07 Cornell University Modification of nuclear actin by mical-2 regulates srf signaling
CN106924231A (zh) * 2017-03-24 2017-07-07 南方医科大学南方医院 Ccg‑1423在制备治疗胃癌的药物中的用途

Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002076976A2 (en) 2001-03-23 2002-10-03 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
US20030087919A1 (en) 2001-03-23 2003-05-08 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
US20030125344A1 (en) 2001-03-23 2003-07-03 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
US20040014755A1 (en) 2002-01-10 2004-01-22 Dhanapalan Nagarathnam Rho-kinase inhibitors
WO2003059913A1 (en) 2002-01-10 2003-07-24 Bayer Healthcare Ag Roh-kinase inhibitors
WO2003062225A1 (en) 2002-01-23 2003-07-31 Bayer Pharmaceuticals Corporation Pyrimidine derivatives as rho-kinase inhibitors
WO2003062227A1 (en) 2002-01-23 2003-07-31 Bayer Pharmaceuticals Corporation Rho-kinase inhibitors
US20040002507A1 (en) 2002-01-23 2004-01-01 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
US20040002508A1 (en) 2002-01-23 2004-01-01 Bayer Corporation Rho-kinase inhibitors
US20050192304A1 (en) 2002-01-23 2005-09-01 Dhanapalan Nagarathnam Rho-kinase inhibitors
US20050209261A1 (en) 2002-01-23 2005-09-22 Dhanapalan Nagarathnam Rho-kinase inhibitors
JP2003304866A (ja) 2002-04-17 2003-10-28 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 三次元凝集塊形成による細胞の分化制御
WO2004039796A1 (de) 2002-10-28 2004-05-13 Bayer Healthcare Ag Heteroaryloxy-substituierte phenylaminopyrimidine als rho-kinaseinhibitoren
WO2013077423A1 (ja) 2011-11-25 2013-05-30 国立大学法人京都大学 多能性幹細胞の培養方法
WO2016121737A1 (ja) 2015-01-29 2016-08-04 株式会社カネカ 細胞凝集塊の作製方法

Non-Patent Citations (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHEMICAL ABSTRACTS, Columbus, Ohio, US; abstract no. 331752-47-7
CONRAD S., NATURE, vol. 456, 2008, pages 344 - 349
HARMA V. ET AL.: "Lysophosphatidic acid and sphingosine-1-phosphate promote morphogenesis and block invasion of prostate cancer cells in three-dimensional organotypic models", ONCOGENE, vol. 31, no. 16, 19 April 2012 (2012-04-19), pages 2075 - 2089, XP55622500 *
HARMA V. ET AL.: "Quantification of dynamic morphological drug responses in 3D organotypic cell cultures by automated image analysis", PLOS ONE, vol. 9, no. 5, 8 May 2014 (2014-05-08), pages 1 - 18, XP055615799 *
ISHIZAKI ET AL., MOL. PHARMACOL., vol. 57, 2000, pages 976 - 983
JAMES K. LIAO ET AL., J CARDIOVASC PHARMACOL., vol. 50, no. 1, July 2007 (2007-07-01), pages 17 - 24
NAKAJIMA ET AL., CANCERCHEMOTHER. PHARMACOL., vol. 52, no. 4, 2003, pages 319 - 324
NARUMIYA ET AL., METHODS ENZYMOL., vol. 325, 2000, pages 273 - 284
OLMER R. ET AL., TISSUE ENGINEERING, vol. 18, no. 10, 2012, pages 772 - 784
OTSUJI GT ET AL., STEM CELL REPORTS, vol. 2, 2014, pages 734 - 745
SASAKI ET AL., PHARMACOL. THER., vol. 93, 2002, pages 225 - 232
SHAMBLOTT M. J. ET AL., PROC. NATL. ACAD. SCI. USA., vol. 95, 1998, pages 13726 - 13731
TAKAHASHI K ET AL., CELL, vol. 131, 2007, pages 861 - 72
UENATA ET AL., NATURE, vol. 389, 1997, pages 990 - 994
UNGRIN MD ET AL., PLOS ONE, vol. 3, no. 2, 2008, pages e1565
YU J ET AL., SCIENCE, vol. 318, 2007, pages 1917 - 20
YU-WAI-MAN C ET AL.: "Local delivery of novel MRTF/SRF inhibitors prevents scar tissue formation in a preclinical model of fibrosis", SCI REP., vol. 7, no. 1, 31 March 2017 (2017-03-31), pages 518

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11884637B1 (en) 2023-08-28 2024-01-30 King Faisal University 3-(4-chlorophenyl)-5-{[5-methyl-2-(propan-2-yl)phenoxy]methyl}-1,2,4-oxadiazole as an antitumor and antimicrobial compound
US11905261B1 (en) 2023-08-28 2024-02-20 King Faisal University 3-(4-methoxyphenyl)-5-{[5-methyl-2-(propan-2-yl)phenoxy]methyl}-1,2,4-oxadiazole as an antitumor and antimicrobial compound
US11970471B1 (en) 2023-08-28 2024-04-30 King Faisal University 3-(4-chlorophenyl)-5-{[5-methyl-2-(propan-2-yl)phenoxy]methyl }- 1,2,4-oxadiazole as an antitumor and antimicrobial compound

Also Published As

Publication number Publication date
EP3733837A1 (en) 2020-11-04
JP7349911B2 (ja) 2023-09-25
US20210062159A1 (en) 2021-03-04
EP3733837A4 (en) 2021-10-06
CN111527197A (zh) 2020-08-11
JPWO2019131942A1 (ja) 2020-12-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7336386B2 (ja) 多能性幹細胞凝集抑制剤
JP5924750B2 (ja) Cd82陽性心筋前駆細胞
JP6238265B2 (ja) 細胞凝集塊の作製方法
AU2017377309B2 (en) Mammalian cell cryopreservation liquid
WO2021162090A1 (ja) 多能性幹細胞の分化抑制方法
WO2019131942A1 (ja) 細胞凝集促進剤
EP1625213A2 (en) A method for efficient transfer of human blastocyst-derived stem cells (hbs cells) from a feeder-supported to a feeder-free culture system
JP7257333B2 (ja) 細胞凝集抑制剤
WO2020203532A1 (ja) 多能性幹細胞の製造方法
WO2020203538A1 (ja) 多能性幹細胞を含む細胞集団及びその製造方法
WO2022124298A1 (ja) 多能性幹細胞集団を製造する製造方法
JP2023103416A (ja) 拡張型心筋症治療剤
JP2021126065A (ja) 細胞凝集促進剤
JP7477983B2 (ja) 細胞凝集抑制剤
CN117529550A (zh) 心肌细胞和组合物以及用于生产它们的方法
WO2023017806A1 (ja) 多能性幹細胞の製造方法
JP2019118279A (ja) 細胞凝集促進剤
TW201734206A (zh) 高機能肝細胞及其利用
WO2023149495A1 (ja) 人工多能性幹細胞の製造方法
WO2024101385A1 (ja) 多能性幹細胞の製造方法及び多能性幹細胞に対する分化誘導方法
JP2023173802A (ja) 細胞凝集塊組成物の製造方法
JP2023114300A (ja) 人工多能性幹細胞の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 18894959

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2019562204

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018894959

Country of ref document: EP

Effective date: 20200728