KR20090116759A - 처리된 종자의 종자 안정성을 안전하게 보호하는 방법 - Google Patents

처리된 종자의 종자 안정성을 안전하게 보호하는 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 살충제, 살비제 또는 살선충제로 종자 처리 시에 종자의 발아 및 묘목의 활력에 대한 악영향을 극복하는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 방법은 살충제, 살비제 또는 살선충제로 처리한 종자의 발아 및 활력을 현저하게 증진시킨다. 본 발명은 1) 종자를 수화한 다음, 2) 종자를 건조시킨 다음, 3) 살충제, 살비제 또는 살선충제 화합물로 종자를 처리하는 단계를 포함하는 방법을 기술한다.

Description

처리된 종자의 종자 안정성을 안전하게 보호하는 방법{SAFEGUARDING SEED SAFETY OF TREATED SEEDS}
본 발명은 살충제, 살비제 또는 살선충제로 종자 처리 시에 종자의 발아 및 묘목의 활력에 대한 악영향을 극복하는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 방법은 살충제, 살비제 또는 살선충제로 처리한 종자의 발아 및 활력을 현저하게 증진시킨다.
본 발명은 적어도
1) 종자를 수화한 다음,
2) 종자를 건조시킨 다음,
3) 살충제, 살비제 또는 살선충제 화합물로 종자를 처리하는 단계를 포함하는 방법을 기술한다.
살충제, 살비제 및 살선충제는 원치않는 유기체로 작물의 손상을 방지하거나 적어도 감소시키는 데 널리 사용되고 있다. 이들 화합물은 파종 이전 및/또는 묘목이 나타나기 이전 및/또는 이후에 토양에 적용될 수 있다. 살충제, 살비제 및 살선충제는 또한 종자 처리제로서 종자에 가해질 수 있다. 살충제, 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 포함하는 종자 처리제는 이들 유형의 화합물 중 하나만을 포함하거나 둘 이상의 동일한 유형의 화합물의 혼합물도 포함할 수 있다. 또한, 살충제, 살비제 및 살선충제 활성 성분 또는 이의 혼합물은 적어도 하나의 다른 살충제, 살비제 또는 살선충제와의 혼합물로 사용될 수 있다. 하나 이상의 살진균제 화합물은 또한, 상기 언급된 살충제, 살비제 또는 살선충제(의 혼합물)와 혼합될 수 있다. 또한 본 명세서에서, 살충 종자 처리란 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 포함하는 종자 처리제에 관한 것이며, 또한 화합물의 혼합물을 포함하는 종자 처리제에 관한 것이기도 하다.
종자 처리제의 이용이 분무 또는 과립 적용의 사용에 비해 몇 가지 이점이 있기 때문에(예컨대, Altmann, R. 2003. Pflanzenschutz-Nachrichten Bayer 56(1), pp 102-110; Hewett, P.D. and Griffiths, D.C. 1986. Biology of seed treatment. In: Seed treatment. Ed: Jeffs, K. A.), 종자 처리제의 이용 시장은 성장 중이다 (Halmer, P. 2004. Methods to improve seed performance in the field. In: Handbook of seed physiology. Applications to agriculture. Eds: Benech-Arnold, R.L. and Sanchez, R.A.). 종자 처리는 파종 후부터 종자를 보호한다. 초기 생장 단계에서의 우수한 전체적인 보호는 스트레스 환경에 더 잘 견디는 건강하고 활력이 있는 식물을 생성시킨다. 또한, 제품의 총 필요량은 분무 또는 과립 적용보다 더 낮다. 종자 처리제의 수단에 의한 작물 보호는 또한 농부를 위한 많은 이점을 포함한다. 다른 살충제 적용에 대한 필요성이 더 적으며, 농부는 탱크 혼합을 계 산하고 준비하지 않아도 된다. 두 가지 면으로 시간이 절약된다. 작물 보호 화합물을 분무하는 때는 기후에 매우 의존적이나, 이 문제는 처리된 종자에 대해서는 발생하지 않는다.
농약 회사는 종자 처리제로 적용하기에 특히 적합한 제제를 개발한다. 이러한 제제는 필름 코팅의 형태로 종자에 가해질 수 있다. 특징으로서, 필름 코팅은 모든 개별 종자의 표면을 고르게 덮는 균일하고, 더스트가 없는 수 투과성 필름이다 (Halmer, P. 2000. Commercial seed treatment technology. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J. D.). 제제 외에, 코팅 혼합물은 또한 일반적으로 물, 아교 (전형적으로 중합체), 충전 물질, 염료 및 코팅의 특정 성질을 개선시키는 특정 첨가제와 같은 다른 성분을 포함한다. 수개의 코팅이 단일 종자에 결합될 수 있다. 본 명세서에서, '종자 처리'는 펠렛 혼합물에 직접 살충제, 살비제 또는 살선충제 종자 처리제를 포함하는 것 뿐 아니라, 펠렛 내 또는 상에 코팅 사용의 가능성을 포함하여, 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 함유한 제제를 포함하는 필름 코팅을 종자 상에 적용하는 것을 말한다.
종자 펠렛팅은 주로 원 종자의 크기 및 자연 형상을 변화시키려고 의도된 기술이며, 이 기술은 필름 코팅과 결합될 수 있다 (Halmer, P. 2000. Commercial seed treatment technology. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J. D.). 펠렛팅은 둥글거나 둥글린 형상을 생성하며, 이는 현대 파종 장치로 쉽게 뿌릴 수 있다. 펠렛팅 혼합물은 적어도 아교 및 충전 물질 을 포함한다. 후자는 예를 들어, 점토, 운모, 백악 또는 셀룰로오스일 수 있다. 또한, 특정 첨가제가 펠렛의 특정 성능을 개선시키기 위하여 포함될 수 있다. 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 화합물을 포함하는 종자 처리제가 펠렛팅 혼합물에 직접 첨가될 수 있다. 또한, 필름 코팅과의 몇몇 배합물이 가능하다: 필름 코팅은 펠렛의 외측에 첨가되거나, 펠렛팅 물질의 두 층 사이에 첨가되거나, 펠렛팅 물질이 첨가되기 전 종자에 직접 첨가될 수 있다. 또한, 복수의 필름 코팅층이 단일 펠렛에 도입될 수 있다. 펠렛팅의 특정 유형은 외피로 덮는 것이다. 이 기술은 충전 물질을 덜 사용하며, 결과물은 '미니-펠렛'이다.
필름 코팅을 적용하기 위한 다양한 기술 및 장치가 존재하며, 이들 중 다수는 또한 종자 펠렛팅을 위하여 사용 또는 채용될 수 있다. 종자 처리 장치의 제조사는 예를 들어, Gustafson Equipment, Satec 및 SUET이다. 기술 및 장치는 배합 공정 및 종자에 종자 처리 혼합물을 적용하는 방법에 따라 달라진다 (Jeffs, K.A. and Tuppen, RJ. 1986. Applications of pesticides to seeds. Part 1 : Requirements for efficient treatment of seeds. In: Seed treatment. Ed: Jeffs, K.A.). 예를 들어, 혼합물은 회전 디스크 분무기 또는 스프레딩 브러쉬의 수단에 의하여 가해질 수 있다. 종자 및 혼합물은 드럼 또는 회전 트러프(trough)의 오거(auger) 수단에 의해 배합될 수 있다. 첨가되는 필름 코팅 혼합물의 양이 적고, 종자 수분 함량이 약간만 (전형적으로 1% 미만) 증가되도록 종자 자체에 의해 흡수될 수 있다면, 추가의 건조 단계가 필요하지 않다. 이 원리는 자기-건조로 불린다 (Black et al., 2006. The encyclopedia of seeds. Science, technology and uses). 만약 그렇지 않으면, 건조 분말 (이를 테면 활석)이 첨가되거나, 추가의 건조 단계가 필요하다. 이 단계는 통합된 유체 베드 건조기가 장착된 SUET 회전 종자 처리기와 같이 필름 코팅을 위한 장비에 통합될 수 있다. 또한, 몇몇 SATEC 뱃취 코팅기는 건조 공기와 연결되도록 장착된다.
작물 보호 화합물 이용의 단점은 그들이 작물 자체에 나쁜 영향을 미칠 수 있고, 화합물이 종자 처리제로서 첨가되는 경우 종자에 보유된다는 사실이다 (Halmer, P. 2000. Commercial seed treatment technology. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J.D.; Halmer, P. 2004. Methods to improve seed performance in the field. In: Handbook of seed physiology. Applications to agriculture. Eds: Benech-Arnold, R.L. and Sanchez, R.A.). 따라서 종자 안정성이 영향을 받는다. 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 포함하는 종자 처리제는 처리된 종자의 더 느리고 덜 균일한 발아를 유발할 수 있다. 기본적으로, 발아는 어린 뿌리가 종자 코트 또는 과피를 뚫고나오는 때로 정의된다. 종자가 종자를 완전하게 덮는 물질에 파종되는 경우, 발아는 묘목이 이 물질로부터 발생(emerge)하는 때로 정의된다(예를 들어, 발생). 더 느린 발아는 묘목의 더 느린 발생을 유발한다. 본 명세서에서 달리 언급되지 않는 한 상기에서 언급된 종자의 발아에 관한 정의는 이를 따르며, 묘목의 발생과 상호호환적으로 사용된다. 또한, 종자 처리는 최대 발아 및 묘목의 활력에 영향을 미칠 수 있다. 활력 있는 묘목은 정상의 생산력을 생산하는 식물로 발달될 수 있는 건강한 묘목이다. 종자 처리는 활력을 더 낮추고, 심지어 더 많은 수의 비정상 묘목 또는 죽은 종자를 유발할 수 있다. 발아 및 활력에 대한 종자 처리의 악영향은 필드 및 실험실의 기후 챔버, 온실 또는 발아실의 제어된 조건 하에서 실험으로 평가될 수 있다.
종자 안정성에 대하여 종자 처리의 악영향이 발생하더라도, 종자 처리의 혜택이 비용을 능가하기 때문에 이들은 일반적으로 허용되나, 결국 이들은 현대 농업 시스템에 바람직하지 않다. 발아 지연은 종자가 질병을 유발하는 유기체 또는 토양 해충에 의해 공격받을 위험(및 기간)을 증가시킨다 (Jonitz, A and Leist, N. 2003. Pflanzenschutz-Nachrichten Bayer, 56(1), pp 173-207). 더 느리며 덜 균일한 발아는 또한 그 다음의 분무 처리에 영향을 미칠 수 있다. 예를 들어, 많은 제초제는 특정 발달 단계의 묘목에 매우 효과적이다. 원칙적으로, 발아의 지연은 또한 작물의 생장 기간을 단축시켜, 생산력을 떨어뜨릴 수 있다. 마지막으로, 묘목의 활력이 영향을 받는다면, 이는 시장성이 있는 식물의 수를 감소시킬 수 있고, 또한 생산성도 감소시킬 수 있다.
본 발명은 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 포함하는 종자 처리제로 처리된 농작물, 채소 작물 또는 화훼 작물의 묘목의 활력 및 종자의 발아를 개선하는 방법을 포함한다.
본 발명은 또한 살충제, 살비제 및 살선충제의 활성을 증진시키기 위하여 사용될 수 있다.
따라서, 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 함유하는 종자 처리제는 종자의 발아 및 묘목의 활력에 영향을 미칠 수 있다. 놀랍게도, 본 발명자들은 종자를 수화시킨 후, 종자 처리의 적용 전에 건조시키는 것이, 발아 및 활력에 대한 이들 종자 처리의 악영향을 감소시키거나 심지어는 없애는 것을 발견하였다. 상기 화학 종자 처리로 코팅하기 전에 수화되고 건조된 종자는 수화 및 건조 처리뿐 아니라, 화학적 종자 처리 보호의 혜택이 있다. 다수의 처리가 종자를 해칠 수 있다는 일반적인 견해와 달리, 두 처리의 병용은 심지어 종자 성능에 상승 효과를 나타낸다. 수화 및 건조된 상태에서의 종자 처리의 악영향은 비-수화 및 건조된 상태에서보다 더 작거나 없다.
본 발명은 하기 기재된 작물의 종자에 적용될 수 있다. 또한, 작물의 이들 목록에 종의 잡종뿐 아니라 종의 유전자 변형된 식물도 포함된다.
본 발명은 통상의 프라이밍(priming) 과정이 적용될 수 있는 임의의 종자에 성공적으로 사용될 수 있다.
특히, 본 발명은 다음 농작물 속의 종자에 적용가능하다: 아라키스 (Arachis), 아베나 (Avena), 브라시카 (Brassica), 카타무스 (Carthamus), 글리신 (Glycine), 고시피움 (Gossypium), 헬리안투스 (Helianthus), 호르데움 (Hordeum), 롤리움 (Lolium), 메디카고 (Medicago), 오리자 (Oryza), 포아 (Poa), 세칼레 (Secale), 소르굼 (Sorghum), 트리폴리움 (Trifolium), 트리티쿰 (Triticum) 및 제아 (Zea). 또한, 트리티칼레 (Triticale)도 포함된다. 특히 바람직한 농작물의 속은 브라시카, 고시피움, 헬리안투스, 오리자 및 제아이다. 가장 바람직한 농작물의 속은 브라시카, 고시피움 및 제아이다.
또한, 본 발명은 특히 베타 (Beta) 속에 적용될 수 있다. 사탕무의 경우 (Beta vulgaris, 베타 불가리스), 상품명 "Advantage"의 특정 프라이밍 과정이 이미다클로프리드 또는 테플루트린으로의 처리와 호환가능한 것으로 입증되었다 (British Sugar Beet Review, Draycott, A.P. 2006. The advantage of Advantage on sugarbeet? In: British Sugar Beet Review, 74 (1), pp 13-17).
또한, 베타는 본 발명을 수행하기 위한 가장 바람직한 속이다.
채소 작물의 경우, 본 발명은 특히 알리움 (Allium), 아피움 (Apium), 아스파라거스 (Asparagus), 브라시카 (Brassica), 캅시쿰 (Capsicum), 시세르 (Cicer), 시코리움 (Cichorium), 시트릴루스 (Citrillus), 쿠쿠미스(Cucumis), 쿠쿠르비타 (Cucurbita), 사이나라 (Cynara), 다우쿠스 (Daucus), 락투카 (Lactuca), 렌스 (Lens), 파세올루스 (Phaseolus), 피숨 (Pisum), 라파누스 (Raphanus), 솔라눔 (Solanum) (종종 라이코페르시콘 에스쿨렌툼 (Lycopersicon esculentum)으로 나타내는 토마토 포함), 스피나시아 (Spinacia), 발레리아넬라 (Valerianella) 및 비시아(Vicia)의 종자에 적용가능하다. 채소 작물의 경우, 특히 바람직한 속은 알리움, 브라시카, 캅시쿰, 시트릴루스, 쿠쿠미스, 쿠쿠르비타, 다우쿠스, 락투카 및 솔라눔이다. 채소 작물의 가장 바람직한 속은 알리움, 캅시쿰, 쿠쿠미스, 다우쿠스, 락투카 및 솔라눔이다. 채소 작물의 더욱 가장 바람직한 속은 알리움, 브라시카, 다우쿠스, 락투카 및 솔라눔이다.
특히, 본 발명은 다음 화훼 작물의 속에 적용가능하다: 안티리눔 (Antirrhinum), 베고니아(Begonia), 크리산테뭄 (Chrysanthemum), 사이클라멘 (Cyclamen), 디안투스 (Dianthus), 가자니아 (Gazania), 게르베라 (Gerbera), 임파티엔스 (Impatiens), 임포메아 (Ipomoea), 라바테라 (Lavatera), 로벨리아 (Lobelia), 펠라르고니움 (Pelargonium), 페투니아 (Petunia), 플록스 (Phlox), 프리물라 (Primula), 살비아 (Salvia), 타게타 (Tageta), 베르베나 (Verbena), 빈카 (Vinca), 비올라 (Viola) 및 진니아 (Zinnia). 특히 바람직한 화훼 작물은 사이클라멘, 디안투스, 임파티엔스, 펠라르고니움, 페투니아, 프리물라, 타게타, 베르베나 및 비올라이다. 가장 바람직한 화훼 작물은 디안투스, 임파티엔스, 펠라르고니움, 페투니아, 타게타 및 베르베나이다.
종자의 '수화'는 짧은 기간 동안 충분한 물에 담그는 것부터 수 주 동안 특정 량의 물을 조절하여 첨가하는 것에 이르기까지 종자가 물을 흡수하게 하는 모든 기술을 포함한다. 따라서, 종자 수화 기술은 또한 프라이밍 개념에 일반적으로 포함되는 기술을 포함한다. 종자 프라이밍은 어린 뿌리의 돌출을 허용하기에 충분하지 않으나, 초기 발아 이벤트를 시작하기 위한 종자에 의한 물의 흡수 이후 건조로 정의된다 (McDonald, M.B. 2000. Seed priming. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J. D.). 본 명세서에서 '물'은 수돗물, 빗물 및 증류수를 포함하는 모든 종류의 물일 수 있다. 또한, 수증기 형태의 물이 포함된다. 수화 과정의 결과에 영향을 미치는 중요한 인자는 기간, 온도 및 프라이밍 매질의 매트릭 포텐셜(matric potential) 또는 삼투 포텐셜이다. 또한, 광 또는 어둠 및 산화량도 수화 방법의 결과에 영향을 미친다.
수화 단계 중에, 물이 종자에 흡수되어, 효소 시스템 및 다른 세포 성분의 자극 및 생성을 유발한다 (McDonald, M.B. 2000. Seed priming. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J. D.). 이러한 방식으로, 종자는 이미 발아의 제1 단계 부분을 만족시켜, 재습윤에 따라 더 빠른 발아가 유발된다. 또한, 모든 종자가 동일한 발달 단계에 있기 때문에, 수화 처리는 발아를 더 균일하게 한다. 프라이밍 도중 및 이에 따라 일반적으로 수화 도중에, 촉진 물질, 이를 테면 살진균제, 생물 조절 유기체 및 식물 생장 조절제의 첨가가 종자 성능을 추가로 증진시킬 수 있다. 살진균제는 프라이밍 매질의 바람직한 조건에서 곰팡이의 과도한 성장을 예방하기 위하여 프라이밍 과정 중에 첨가될 수 있다.
이른바, 하이드로프라이밍 (hydropriming (드럼 프라이밍 포함)), 오스모프라이밍(osmopriming) 및 고체 매트릭스 프라이밍의 종자 프라이밍을 위한 다수의 기술이 현재 알려져 있다 (McDonald, M. B. 2000. Seed priming. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J. D.; Black et al., 2006. The encyclopedia of seeds. Science, technology and uses). 프라이밍은 또한 때때로 종자 컨디셔닝으로도 언급된다.
· 하이드로프라이밍은 종자가 대부분 충분한 물 공급 시에 짧은 기간 동안 또는 저온에서, 물을 취하도록 하는 기술을 포함한다. 이들 기술은 또한 때때로 침지 또는 담금 (steeping)으로 언급된다. 짧은 기간 또는 저온은 발아가 일어나지 않게 한다. 하이드로프라이밍 과정의 기간은 5 내지 50 ℃의 온도에서 0.5 내지 60 시간 범위이다. 바람직한 기간은 10 내지 30 ℃의 온도에서 1 내지 24 시간의 범위이다. 다르게는 바람직한 기간은 1 내지 48 시간이다. 특히 바람직한 하이드로프라이밍 기간은 15 내지 25 ℃의 온도에서 4 내지 16 시간이다. 다르게는, 하이드로프라이밍의 특히 바람직한 기간 범위는 4 내지 32 시간이고, 온도 범위는 15 내지 20 ℃이다.
하이드로프라이밍은 또한 제한된 양의 물을 연속적 또는 단계적으로 첨가하는 것을 포함하는 기술을 포함한다. 이 개념의 복잡한 형태는 드럼 프라이밍이다. 회전 드럼에 종자가 유지되는데, 이때 제한된 양의 물 (또는 수증기)이 종자에 천천히 가해진다. 제한된 양의 물은 프라이밍 정도를 조절한다. 일반적으로 드럼 프라이밍 과정의 기간은 5 내지 30 ℃의 온도에서 1 내지 21일의 범위이다. 바람직한 기간은 10 내지 30 ℃의 온도에서 5 내지 17일의 범위이다. 특히 바람직한 드럼 프라이밍 기간은 15 내지 25 ℃의 온도에서 7 내지 14일이다.
· 오스모프라이밍으로, 종자는 삼투 용액에 노출된다. 이는 예를 들어, 블롯터 (blotter) 또는 컨테이너 또는 (통기된) 컬럼에서 수행될 수 있다. 폴리에틸렌글리콜 (PEG)이 종종 삼투조절제로 사용된다. 삼투조절제의 다른 유형은 무기 염, 이를 테면 KH2PO4, KH(PO4)2, K3PO4, KCL, KNO3 및 Ca(NO3)2 (때때로 이 기술은 솔트프라이밍 (saltpriming) 또는 할로프라이밍으로 언급됨) 또는 만니톨이다. 이의 낮은 수분 포텐셜 때문에, 삼투조절제는 종자에서 물의 흡수를 조절한다. 일반적으로, 오스모프라이밍 과정의 기간은 5 내지 30 ℃의 온도 및 -0.4 내지 -3.6 MPa의 삼투 포텐셜에서 1 내지 21일의 범위이다. 바람직하게, 오스모프라이밍 기간은 10 내지 30 ℃의 온도 및 -0.5 내지 -2.6 MPa의 삼투 포텐셜에서 3 내지 15 일이다. 대안적인 바람직한 기간은 2 내지 15일 노출이다. 오스모프라이밍의 특히 바람직한 기간은 15 내지 25 ℃의 온도 및 -1 내지 -2 MPa의 삼투 포텐셜에서 7 내지 14일이다. 대안적으로, 오스모프라이밍 기간의 특히 바람직한 범위는 15 내지 20 ℃의 온도 및 -0.5 내지 -2.0 Mpa의 삼투 포텐셜에서 0.5 내지 14일이다.
· 고체 매트릭스 프라이밍 (SMP)으로, 종자는 물 및 고체 담체와 혼합된다. 고체 담체의 예는 질석 및 규조토 실리카 산물이다. 물은 종자에 흡수될 뿐만 아니라 고체 입자 표면에 흡수되며, 이러한 방식으로 종자의 물 흡수가 조절된다. 입자-유사 담체를 사용하는 것 외에, SMP는 또한 다른 것들 중에 축축한 타월, 마대, 축축한 모래, 멸균된 퇴비 또는 압축 진흙을 사용하여 수행될 수 있다. 일반적으로 SMP 과정의 기간은 5 내지 30 ℃의 온도 및 -0.4 내지 -3.6 MPa의 삼투 포텐셜에서 1 내지 21일의 범위이다. 바람직하게, SMP 기간은 10 내지 30 ℃의 온도 및 -0.5 내지 -2.6 MPa의 삼투 포텐셜에서 3 내지 15일이다. SMP의 특히 바람직한 기간은 15 내지 25 ℃ 및 -1 내지 -2 MPa의 삼투 포텐셜에서 7 내지 14일이다. 대안적으로, SMP 기간의 특히 바람직한 범위는 15 내지 20 ℃의 온도, -1 내지 -2 Mpa의 삼투 포텐셜에서 8 시간 내지 7 일이다.
삼투 포텐셜이 SMP 프로토콜에 대하여 측정되고 나타내어질 수 있지만, 주어진 종자:담체 물질:물의 비율이 더욱 통상적이다. 예를 들어 종자 크기, 담체 재료 및 종자의 목적 수분 흡수에 따라 많은 비율이 가능하다. 종자의 양 (부피 또는 중량)을 1로 취하면, 담체 물질의 양은 예를 들어 0.25 내지 3의 범위일 수 있다. 그 다음, 물의 양은 예를 들어 0.50 내지 8의 범위일 수 있다. 1:2:2.5의 종자:담체:물의 비율이 종종 사용된다. 대안적으로, SMP에 대한 특히 바람직한 기간 범위는 15 내지 20 ℃의 온도, 1:2:2.5의 종자:담체:물의 비율에서 8 시간 내지 7일이다.
본 발명에 포함되는 다른 기술은 가습 및 경화이다. 이들 기술은 엄밀하게는 항상 프라이밍 정의에 포함되지는 않으나, 종자의 수화 및 건조 개념에 포함된다. 가습은 종자가 습한 공기에 노출되는 기술이다. 사용된 공기 습도는 일반적으로 높으며, 전형적으로 95 내지 100%이다. 이 기술은 흡수 손상에 매우 민감한 대량 파종된 종에 대하여 특히 적합하다. 경화는 종자가 연속적인 수화 및 건조 사이클 (전형적으로 2 또는 3)에 노출되는 기술이며, 발아를 향상시킬 수 있다.
종자의 수화 후, 건조 단계는 연속적으로 그리고 실제로 종자에 종자 처리를 적용할 수 있게 하기 위하여 필요하다. 게다가, 건조가 없으면, 화학적 종자 처리제가 종자를 침투할 수 있고, 종자 및 묘목에 대해서도 해로울 수 있다. 바람직하게, 종자는 생중량 기준으로 3 내지 15%의 수분 함량으로 건조된다. 일반적으로, 이는 수확한 다음 건조한 후에 도달하는 수분 함량이다. 따라서, 대부분의 경우에, 종자는 수화 전 그들의 수분 함량으로 다시 건조된다(재건조). 공기 증류, 강제 공기 (enforced air), 유체화된 베드, 원심 분리의 수단 또는 태양 건조에 의한 건조와 같이, 건조에 적용할 수 있는 해당 분야에 알려진 많은 방법이 있다 (Black et al., 2006. The encyclopedia of seeds. Science, technology and uses). 주위 습도 및 온도, 종자의 수분 함량, 속한 식물의 종 및 적용가능하다면 공기 유동과 같은 많은 인자가 종자 건조 과정에 영향을 미친다. 따뜻한 공기 건조를 포함하는 기술이 상업적 종자 건조에 종종 사용된다. 일반적으로, 20 내지 50 ℃의 온도 및 20 내지 60%의 상대 습도에서 훌륭한 결과가 성취될 것이다. 기간은 방법에 따라 매우 달라지며, 수시간 내지 수일의 범위이다. 종자는 또한 인공 건조제(예를 들어, 실리카 겔 또는 염화 칼슘)의 수단에 의해 건조될 수 있다.
명확한 이점 외에도, 종자를 수화 및 건조시키는 것은 또한 몇몇의 단점을 갖는다. 명백하게, 이러한 기술의 사용은 특수 장비 및 자격이 있는 인원이 필요하기 때문에, 종자에 추가의 비용이 든다. 유사하게, 기술은 추가의 시간이 소요되는 단계를 포함한다. 또한, 프라이밍된 종자의 저장 기간이 감소되는 것으로 알려져 있다 (McDonald, M.B. 2000. Seed priming. In: Seed technology and its biological basis. Eds: Black, M. and Bewley, J. D.). 이는 저장 및 물류 관리의 문제를 갖는다. 부분적으로 이러한 이유 때문에, 종자를 수화 및 건조시키는 것은 사탕무에 적용될 수 있지만, 일반적으로 옥수수 또는 카놀라와 같은 부피가 큰 작물에 이용되지 않는다. 현재, 이러한 기술은 부추 및 당근과 같은 고가의 채소 작물 및 일부 관상용 식물 및 잔디 종에 더 널리 사용되고 있다 (Black et al., 2006. The encyclopedia of seeds. Science, technology and uses).
따라서, 종자의 수화 및 건조는 모든 작물에서 표준화된 과정은 아니다. 그러나 작물을 살충제로 처리하는 것이 필요하며, 종자 처리 살충제가 점점 더 많이 사용되고 있다. 본 발명은 종자 처리에서 종자 품질 및 발생의 감소 없이 살충제, 살비제 및 살선충제를 포함할 가능성을 제공한다. 화학 종자 처리와 병용되는 수화 및 건조는 품종 산출 능력을 충분히 개발하기 위해 선행되는 빠른, 전형적으로 이른 성장을 보호한다. 또한, 본 발명은 많은 작물에서 종자 처리 살충제 이용에 대한 가능성을 증가시킨다. 이는 상기 설명한 바와 같이 종자 처리의 사용이 분무 또는 과립 적용을 사용하는 것보다 많은 이점이 있기 때문에 바람직하다. 본 발명으로 인해, 화학 종자 처리제로 처리될 수 있는 종 및 품종의 수가 증가한다. 이전에, 일부 품종은 이들이 화학 종자 처리제에 대하여 너무 민감하기 때문에 처리될 수 없었다. 이외에, 본 발명은 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 화합물을 포함하는 종자 처리제로 사용될 화합물의 개발 가능성을 제공한다. 종자에 대한 악영향 때문에 이전에는 종자 처리로 사용될 수 없었던 특정 활성 성분이 이제 포함될 수 있다.
본 발명의 방법은 다음 그룹의 살충제, 살비제 및 살선충제와 함께 사용될 수 있다:
그룹 (1) 아세틸콜린-수용체-작용제/-길항제 (예를 들어, 클로로니코티닐/네오니코티노이드로서);
그룹 (2) 아세틸콜린에스테라아제 (AChE) 억제제 (예를 들어, 카바메이트 및 유기인산염으로서);
그룹 (3) 전압 작동성 나트륨 채널의 나트륨-채널 조절제/차단제 (예를 들어, 피레트로이드 및 옥사디아진으로서);
그룹 (4) 아세틸콜린-수용체 조절제 (예를 들어, 스피노신으로서);
그룹 (5) GABA-작동성 클로라이드-채널 길항제 (예를 들어, 사이클로디엔, 유기염소 및 피프롤로서);
그룹 (6) 클로라이드-채널-활성화제 (예를 들어 멕틴으로서);
그룹 (7) 유충-호르몬 모방체;
그룹 (8) 엑디손-작용제/-장애물질 (예를 들어, 디아실하이드라진으로서);
그룹 (9) 키틴 생합성의 억제제 (예를 들어, 벤조일우레아로서);
그룹 (10) 산화적 인산화의 억제제, ATP-장애물질 (예를 들어, 유기주석으로서);
그룹 (11) 양성자 구배의 장애에 의한 산화적 인산화의 언커플러(Uncoupler) (예를 들어, 피롤 및 디니트로페놀로서);
그룹 (12) 부위-I 전자 수송 억제제 (예를 들어, METI's로서);
그룹 (13) 부위-II 전자 수송 억제제;
그룹 (14) 부위 III 전자 수송 억제제;
그룹 (15) 곤충 창자 막의 미생물 장애물질;
그룹 (16) 지방산 합성의 억제제 (테트론산 및 테트람산);
그룹 (17) 카복사미드;
그룹 (18) 옥토파미너직 작용제 (octopaminergic agonist);
그룹 (19) 마그네슘-자극 ATP아제 (ATPase)의 억제제;
그룹 (20) 리아노딘 수용체 (Ryanodin receptor) 활성화제;
그룹 (21) 네레이스톡신-유사체;
그룹 (22) 생물학적 제제, 호르몬 또는 페로몬;
그룹 (23) 미공지 또는 불명확 작용 방식을 가진 활성 성분 (예를 들어, 훈증제, 곤충 섭식의 선택적 억제제 및 진드기 성장의 억제제).
그룹 (1) 내지 (23)의 활성 성분은 상업적으로 입수할 수 있거나 문헌["The Pesticide Manual"](The Pesticide Manual, 13th edition, Editor: CDS Tomlin, British Crop Protection Council, ISBN 1 901396 13 4)에 기재되어 있다. 상업적으로 입수할 수 없거나 문헌[The Pesticide Manual]에 기재되어 있지 않은 활성 성분은 그들의 IUPAC 또는 CAS 식별자나 그들의 분자식으로 확인한다.
그 중에서 아세틸콜린-수용체-작용제/-길항제의 그룹 (1)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(1.1) 클로로니코티닐/네오니코티노이드 (예를 들어, 아세트아미프리드, 클로티아니딘, 디노테푸란, 이미다클로프리드, 니텐피람, 니티아진, 티아클로프리드, 티아메톡삼, 이미다클로티즈: ((2E)-1-[(2-클로로-1,3-티아졸-5-일)메틸]-N-니트로이미다졸리딘-2-이민), AKD 1022: ((2E)-1-[(2-클로로-1,3-티아졸-5-일)메틸]-3,5-디메틸-N-니트로-1,3,5-트리아지난-2-이민);
(1.2) 니코틴, 벤설타프, 카르타프.
그룹 (1)의 바람직한 활성 성분은:
(1.1.1) 클로티아니딘
(1.1.2) 이미다클로프리드
(1.1.3) 티아클로프리드
(1.1.4) 티아메톡삼
(1.1.5) 아세트아미프리드
(1.1.6) 디노테푸란
(1.1.7) 니텐피람
(1.1.8) 이미다클로티즈
(1.1.9) AKD 1022이다.
그룹 (1)의 특히 바람직한 활성 성분은:
(1.1.1) 클로티아니딘
(1.1.2) 이미다클로프리드
(1.1.3) 티아클로프리드
(1.1.4) 티아메톡삼
(1.1.5) 아세트아미프리드이다.
아세틸콜린에스테라아제 (AChE) 억제제의 그룹 (2)는 특히 다음 활성 성분을 포함한다:
(2.1) 카바메이트 (예를 들어, 알라니카르브, 알디카르브, 알독시카르브, 알릭시카르브 (allyxycarb), 아미노카르브, 벤디오카르브, 벤푸라카르브, 부펜카르브, 부타카르브, 부토카르복심, 부톡시카르복심, 카바릴, 카보푸란, 카보설판, 클로에토카르브, 디메틸란, 에티오펜카르브, 페노부카르브, 페노티오카르브, 포르메타네이트, 푸라티오카르브, 이소프로카르브, 메탐-소듐, 메티오카르브, 메토밀, 메톨카르브, 옥사밀, 포스포카르브, 피리미카르브, 프로메카르브, 프로폭서, 티오디카르브, 티오파녹스, 트리아자메이트, 트리메타카르브, XMC, 크실릴카르브);
(2.2) 유기인산염 (예를 들어, 아세페이트, 아자메티포스, 아진포스 (-메틸, -에틸), 브로모포스-에틸, 브롬펜빈포스 (-메틸), 부타티오포스, 카두사포스, 카보페노티온, 클로르에톡시포스, 클로르펜빈포스, 클로르메포스, 클로르피리포스 (-메틸/-에틸), 코우마포스, 시아노펜포스, 시아노포스, 클로르펜빈포스, 데메톤-S-메틸, 데메톤-S-메틸설폰, 디알리포스, 디아지논, 디클로펜티온, 디클로르보스/DDVP, 디크로토포스, 디메토에이트, 디메틸빈포스, 디옥사벤조포스, 디설포톤, epn, 에티온, 에토프로포스, 에트림포스, 팜푸르, 페나미포스, 페니트로티온, 펜설포티온, 펜티온, 플루피라조포스, 포노포스, 포르모티온, 포스메틸란, 포스티아제이트, 헵테노포스, 아이오도펜포스, 이프로벤포스, 이사조포스, 이소펜포스, 이소프로필 O-살리실레이트, 이소크산티온 (isoxathion), 말라티온, 메카르밤, 메타크리포스, 메타미도포스, 메티다티온, 메빈포스, 모노크로토포스, 날레드 (naled), 오메토에이트, 옥시데메톤-메틸, 파라티온 (-메틸/-에틸), 펜토에이트, 포레이트, 포살론, 포스메트, 포스파미돈, 포스포카르브, 폭심, 피리미포스 (-메틸/-에틸), 프로페노포스, 프로파포스, 프로페탐포스, 프로티오포스, 프로토에이트, 피라클로포스, 피리다펜티온, 피리다티온, 퀴날포스, 세부포스, 설포텝, 설프로포스, 테부피림포스, 테메포스, 테르부포스, 테트라클로르빈포스, 티오메톤, 트리아조포스, 트리클로르폰, 바미도티온).
본 발명의 방법에 바람직한 아세틸콜린에스테라아제 (AChE) 억제제는 그룹 (2)의 다음 활성 성분이다:
(2.1.1) 메티오카르브
(2.1.2) 티오디카르브
(2.1.3) 알디카르브
(2.1.4) 옥사밀
(2.2.1) 에토프로포스
(2.2.2) 페나미포스
(2.2.3) 테부피림포스
(2.2.4) 카두사포스
(2.2.5) 포스티아제이트
(2.2.6) 클로르피리포스-(메틸-/에틸).
본 발명의 방법에 특히 바람직한 아세틸콜린에스테라아제 (AChE) 억제제는 그룹 (2)의 다음 활성 성분이다:
(2.1.1) 메티오카르브
(2.1.2) 티오디카르브
(2.1.3) 알디카르브
(2.2.1) 에토프로포스
(2.2.2) 페나미포스.
전압 작동성 나트륨 채널의 나트륨-채널 조절제/차단제의 그룹 (3)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(3.1) 피레트로이드 (예를 들어, 아크리나트린, 알레트린 (d-시스-트랜스, d-트랜스), 베타-시플루트린, 비펜트린, 비오알레트린, 비오알레트린-s-사이클로펜틸-이성체, 비오에타노메트린, 비오페르메트린, 비오레스메트린, 클로바포르트린, 시스-사이페르메트린, 시스-레스메트린, 시스-페르메트린, 클로시트린, 사이클로프로트린, 시플루트린, 시할로트린, 사이페르메트린 (알파-, 베타-, 쎄타-, 제타-), 사이페노트린, DDT, 델타메트린, 엠펜트린 (1R-이성체), 에스펜발레레이트, 에토펜프록스, 펜플루트린, 펜프로파트린, 펜피리트린, 펜발레레이트, 플루브로사이트리네이트, 플루사이트리네이트, 플루펜프록스, 플루메트린, 플루발리네이트, 푸브펜프록스, 감마-시할로트린, 이미프로트린, 카데트린, 람다-시할로트린, 메토플루트린, 페르메트린 (시스-, 트랜스-), 페노트린 (1R-트랜스 이성체), 프랄레트린, 프로플루트린, 프로트리펜부트, 피레스메트린, 레스메트린, RU 15525, 실라플루오펜, 타우-프루발리네이트, 테플루트린, 테랄레트린, 테트라메트린 (1R-이성체), 트랄로시트린, 트랄로메트린, 트랜스플루트린, ZXI 8901, 피레트린 (피레트럼);
(3.2) 옥사디아진 (예를 들어, 인독사카르브).
본 발명의 방법에 바람직한 전압 작동성 나트륨 채널의 나트륨-채널 조절제/차단제는 그룹 (3)의 다음 활성 성분이다:
(3.1.1) 베타-시플루트린
(3.1.2) 시플루트린
(3.1.3) 델타메트린
(3.1.4) 테플루트린
(3.1.5) 비펜트린
(3.2.1) 인독사카르브.
특히 본 발명의 방법의 전압 작동성 나트륨 채널의 나트륨-채널 조절제/차단제는 그룹 (3)의 다음 활성 성분을 포함한다:
(3.1.1) 베타-시플루트린
(3.1.2) 시플루트린
(3.1.3) 델타메트린
(3.1.4) 테플루트린
(3.2.1) 인독사카르브.
아세틸콜린 수용체 조절제의 그룹 (4)는 다음 활성 성분을 포함한다:
(4.1) 스피노신 (예를 들어, 스피노사드).
바람직하게, 본 발명의 방법은 아세틸콜린 수용체 조절제의 그룹 (4)의 다음 바람직한 활성 성분과 함께 사용된다:
(4.1.1) 스피노사드
(4.1.2) 화학식 (I)을 가지며 제WO 97/00265 A1호, 제US 6001981호 및 문헌[Pest Manag. Sci. 57, 177-185, 2001]로부터 알려진 화합물이며, XDE-175로도 알려져 있는 스피네토람:
Figure 112009052961062-PCT00001
GABA-작동성 클로라이드-채널-길항제의 그룹 (5)는 다음 활성 성분을 포함한다:
(5.1) 사이클로디엔 유기염소 (예를 들어, 캄페클로르, 클로르단, 감마-HCH, HCH, 헵타클로르, 린단, 메톡시클로르);
(5.2) 피프롤 (예를 들어, 아세토프롤, 에티프롤, 피프로닐, 바닐리프롤).
바람직하게, 본 발명의 방법은 GABA-작동성 클로라이드-채널-길항제의 그룹 (5)의 다음 활성 성분과 함께 사용될 수 있다:
(5.2.1) 피프로닐
(5.2.2) 에티프롤.
클로라이드-채널-활성화제의 그룹 (6)는 다음 활성 성분을 포함한다:
(6.1) 멕틴 (z.b. 아바멕틴, 아베르멕틴, 에마멕틴, 에마멕틴-벤조에이트, 이베르멕틴, 밀베-멕틴, 밀베마이신).
바람직하게, 본 발명의 방법은 다음 그룹 (6)의 바람직한 활성 성분과 함께 사용될 수 있다:
(6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트
(6.1.2) 아베르멕틴.
유충-호르몬 모방체의 그룹 (7)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(7.1) 디오페놀란, 에포페노난, 페녹시카르브, 하이드로프렌, 키노프렌, 메토프렌, 피리프록시펜, 트리프렌.
바람직하게, 본 발명의 방법은 다음 그룹 (7)의 바람직한 활성 성분과 함께 사용된다:
(7.1.1) 피리프록시펜.
엑디손-작용제/-장애물질의 그룹 (8)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(8.1) 디아실하이드라진 (예를 들어, 크로마페노지드, 할로페노지드, 메톡시페노지드, 테부페노지드).
바람직하게, 본 발명의 방법은 다음 그룹 (8)의 바람직한 활성 성분과 함께 사용된다:
(8.1.1) 메톡시페노지드.
키틴 생합성의 억제제의 그룹 (9)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(9.1) 벤조일우레아 (예를 들어, 비스트리플루론, 클로플루아주론, 디플루벤주론, 플루아주론, 플루사이클록수론, 플루페녹수론, 헥사플루무론, 루페누론, 노발루론, 노비플루무론, 펜플루론, 테플루벤즈-우론, 트리플루무론);
(9.2) 부프로페진;
(9.3) 사이프로마진.
바람직하게, 본 발명의 방법은 다음 그룹 (9)의 바람직한 활성 성분과 함께 사용된다:
(9.1.1) 트리플루무론
(9.1.2) 플루페녹수론.
산화적 인산화의 억제제, ATP-장애물질 (예를 들어, 유기주석으로서)의 그룹 (10)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(10.1) 디아펜티우론;
(10.2) 유기주석 (예를 들어, 아조사이클로틴, 사이헥사틴, 펜부타틴-옥사이드).
양성자 구배의 장애에 의한 산화적 인산화의 언커플러의 그룹 (11)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(11.1) 피롤 (예를 들어, 클로르페나피르);
(11.2) 디니트로페놀 (예를 들어, 비나파실 (binapacyrl), 디노부톤, 디노카프, DNOC).
부위-I 전자 수송 억제제의 그룹 (12)는 다음 활성 성분을 포함한다:
(12.1) METI's (예를 들어, 펜아자자퀸, 펜피록시메이트, 피리미디펜, 피리다벤, 테부펜피라드, 톨펜피라드);
(12.2) 하이드라메틸논;
(12.3) 디코폴.
바람직하게, 본 발명의 방법은 다음 그룹 (12)의 바람직한 활성 성분과 함께 사용된다:
(12.1.1) 테부펜피라드
(12.2.1) 하이드라메틸논.
부위-II 전자 수송 억제제의 그룹 (13)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(13.1) 로테논.
부위-III 전자 수송 억제제의 그룹 (14)는 다음 활성 성분을 포함한다:
(14.1) 아세퀴노실, 플루아크리피림.
곤충 창자 막의 미생물 장애물질의 그룹 (15)는 다음 활성 성분을 포함한다:
(15.1) 바실루스 투린지엔시스 (Bacillus thuringiensis) 균주.
지방산 합성의 억제제의 그룹 (16)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(16.1) 테트론산 (예를 들어, 스피로디클로펜, 스피로메시펜);
(16.2) 테트람산, 예를 들어 시스-3-(2,5-디메틸페닐)-8-메톡시-2-옥소-1-아자스피로[4.5]데크-3-엔-4-일 카보네이트 (스피로테트라메이트 CAS-등록-번호: 203313-25-1}).
바람직하게, 본 발명의 방법은 다음 그룹 (16)의 바람직한 활성 성분과 함께 사용된다:
(16.1.1) 스피로디클로펜
(16.1.2) 스피로메시펜
(16.2.1) 스피로테트라메이트.
카복사미드의 그룹 (17)은 다음을 포함한다:
(17.1) 플로니카미드.
옥토파미너직 작용제의 그룹 (18)은 다음을 포함한다:
(18.1) 아미트라즈.
마그네슘-자극 ATP아제의 억제제의 그룹 (19)는 다음을 포함한다:
(19.1) 프로파지트.
리아노딘 수용체의 활성화제의 그룹 (20)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(20.1) N2-[1,1-디메틸-2-(메틸설포닐)에틸]-3-요오도-N1-[2-메틸-4-[1 ,2,2,2-테트라플루오로-1-(트리플루오르메틸)에틸]페닐]-1,2-벤젠디카복사미드 (플루벤디아미드, CAS-등록-번호: 272451-65-7)
(20.2) 화학식 (II)의 리낙시피르
Figure 112009052961062-PCT00002
(20.3) 화학식 (III)의 시아지피르.
네레이스톡신 유사체의 그룹 (21)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(21.1) 티오시클람 하이드로겐 옥살레이트, 티오설탑-소듐.
그룹 (22) 생물학적 제제, 호르몬 또는 페로몬은 다음 활성 성분을 포함한다:
(22.1) 아자디라치틴, 바실루스 종, 뷰베리아 종 (Beauveria spec.), 코들레몬, 메타리지움 종 (Metarrhizium spec.), 패실로마이세스 종 (Paecilomyces spec.), 투린지엔신, 베르티실리움 종 (Verticillium spec.).
공지 또는 불명확 작용 방식을 가진 활성 성분의 그룹 (23)은 다음 활성 성분을 포함한다:
(23.1) 훈증제 (예를 들어, 알루미늄 포스피드, 메틸 브로마이드, 설푸릴 플루오라이드);
(23.2) 곤충 섭식의 선택적 억제제 (예를 들어, 크라이올라이트, 플로니카미드, 피메트로진);
(23.3) 진드기 성장 억제제 (예를 들어, 클로펜테진, 에톡사졸, 헥시티아족스);
(23.4) 아미도플루메트, 벤클로티아즈, 벤족시메이트, 비페나제이트, 브로모프로필레이트, 부프로페진, 키노메티오네이트, 클로르디메포름, 클로로벤질레이트, 클로로피크린, 클로티아조벤, 사이클로프렌, 시플루메토펜, 디사이클라닐, 페녹사크림, 펜트리파닐, 플루벤지민, 플루페네림, 플루텐진, 고시플루레 (gossyplure), 하이드라메틸논, 자포닐루레, 메톡사디아존, 페트롤레움, 피페로닐 부톡사이드, 포타슘 올레에이트, 피라플루프롤, 피리달릴, 피리프롤, 설플루라미드, 테트라디폰, 테트라설, 트리아라텐, 베르부틴, 3-메틸-페닐-프로필카바메이트 (츄마시드 z), 3-(5-클로르-3-피리디닐)-7-(2,2,2-트리플루오르에틸)-7-아자비사이클로[3.2.1]옥탄-3-카보니트릴 (cas-등록-번호 175972-70-3) 및 상응하는 3-엔도-이성체 (cas-등록-번호 175974-60-5) (WO 96/37494, WO 97/25923 비교),
특히 매우 바람직한 활성 성분은:
(1.1.1) 클로티아니딘
(1.1.2) 이미다클로프리드
(1.1.3) 티아클로프리드
(1.1.4) 티아메톡삼
(1.1.5) 아세트아미프리드
(2.1.1) 메티오카르브
(2.1.2) 티오디카르브
(3.1.1) 베타-시플루트린
(3.1.2) 시플루트린
(3.1.3) 델타메트린
(3.1.4) 테플루트린
(3.2.1) 인독사카르브
(4.1.1) 스피노사드
(4.1.2) 스피네토람
(5.2.1) 피프로닐
(5.2.2) 에티프롤
(6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트
(6.1.2) 아베르멕틴
(16.1.1) 스피로디클로펜
(16.1.2) 스피로메시펜
(16.2.1) 스피로테트라메이트
(20.1) 플루벤디아미드
(20.2) 리낙시피르
(20.3) 시아지피르이다.
특히 가장 바람직한 활성 성분은:
(1.1.1) 클로티아니딘
(1.1.2) 이미다클로프리드
(1.1.4) 티아메톡삼
(2.1.1) 메티오카르브
(2.1.2) 티오디카르브
(3.1.1) 베타-시플루트린
(3.1.4) 테플루트린
(4.1.1) 스피노사드
(4.1.2) 스피네토람
(5.2.1) 피프로닐
(5.2.2) 에티프롤
(6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트
(6.1.2) 아베르멕틴
(16.2.1) 스피로테트라메이트
(20.2) 리낙시피르
(20.3) 시아지피르이다.
본 발명의 바람직한 특성, 특히 바람직한 특성, 가장 특히 바람직한 특성을 임의의 방식으로 결합하여, 본 발명의 근원적인 기술적 문제를 해결하는 구체예를 생성할 수 있다.
처리된 종자의 발아 및 활력에서의 종자 처리의 악영향 및 수화 및 건조 종자의 긍정적인 효과는 몇 종류의 실험에서 평가될 수 있다. 이러한 실험은 전형적으로 4개의 처리를 포함한다: 대조군 처리; 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제 활성 성분을 포함하는 종자 처리만; 수화 및 건조 처리만; 및 종자 처리가 가해지기 전에 수화 및 건조된 종자를 포함하는 처리('병용 처리'). 전형적으로, 대조군 종자는 원 종자로 정의되며, 이는 세척 및 선별되나, 상기 기술된 바와 같은 임의의 종류의 수화 및 건조 처리에 노출되지 않는다. 화학적 종자 처리가 오직 하나 또는 둘 이상의 살충제, 살비제 또는 살선충제 화합물의 배합물을 포함한다면, 진균제 (예를 들어, 티람)가 모든 처리에 진균제 종자 처리로서 첨가될 수 있다. 종자 처리의 부정적인 영향은 대조군 종자의 발아 및/또는 활력에 비하여 '오직' 화학 처리된 종자의 발아 및/또는 활력의 감소로 정의된다. 처리된 종자의 발아 및 활력에서 수화 및 건조의 긍정적인 효과는 수화 또는 건조된 상태에서 종자 처리의 악영향의 감소 또는 부재로 정의된다.
상기 도입된 실험은 필드 및 실험실 내의 기후 챔버, 온실 또는 발아실의 제어된 조건 하에서 수행될 수 있다. 제어된 조건 하에서, ISTA (International Seed Testing Association) 핸드북에 기술된 것과 같은 발아 테스트 및 활력 테스트로 본 분야에 통상 알려진 테스트가 수행될 수 있다 (ISTA, 2005. International rules for seed testing; AOSA, 1973. Seed vigor testing handbook. Contribution no. 32 to the handbook on seed testing. Association of Official Seed Analysts (AOSA)). 전형적으로, 발아 테스트는 필터 종이 또는 블롯터에서의 테스트 및 모래, 퇴비 또는 토양에서의 테스트를 포함한다. 수분, 온도 및 광 처리는 발아에 최적이다 (예를 들어 ISTA, 2005. International rules for seed testing 참고). 일반적으로 발아 테스트에서 묘목은 모든 필수 구조가 눈에 보일 때 평가된다. 그 다음, 예를 들어 ISTA 지침에 따라 '정상적으로' 발아되는 모든 묘목의 수를 세었다. 또한, 비정상, 다배(multigerm) 또는 사멸 종자의 수를 기록하였다. 전형적으로, 이러한 유형의 평가를 발아 과정 중에 적어도 2회 수행하였다; 모든 필수 구조가 눈에 보일 때 첫번째 및 최종 계수. 최종 계수의 시간은 식물의 종 및 주위 조건에 따라 달라진다. 일반적으로, 최종 계수는 파종 5 내지 60일 후에 취해진다. 상기 기술된 묘목의 평가에 대안적으로, 발아는 임의의 묘목이 임의의 처리 도중 종자 코트 또는 과피를 뚫고나오는 때로부터 모든 처리에서 평가될 수 있다. 결과적으로, 계수는 발아 속도에 따라 격일, 하루에 한번 또는 하루에 수회 수행될 수 있다. 이러한 방식으로, 발아의 전 과정이 평가될 수 있다.
활력 테스트가 종자 활력을 평가하기 위하여 수행될 수 있다. 이는 넓은 범위의 필드 조건 하에서 정상 묘목의 빠르고 균일한 발생 및 발달 가능성과 관련되는 종자 특성을 나타내는 개념이다. 이러한 테스트의 결과는 최적의 조건 하에서의 표준 발아 테스트보다 필드에서 종자 성능의 훌륭한 예고자이다 (ISTA, 2005. International rules for seed testing; AOSA, 1973. Seed vigor testing handbook. Contribution no. 32 to the handbook on seed testing. Association of Official Seed Analysts (AOSA)). 특정 활력 테스트는 종자가 동화 전 또는 발아 도중에 스트레스를 받는 스트레스 테스트이다. 스트레스 테스트에서, 하층토는 모래 또는 코코넛 섬유와 같은 인공 물질에서 실제 경작할 수 있는 토양의 범위일 수 있다. 그 외에, 또는 덧붙여, 기후 조건은 통상 최적으로 허용되는 것보다 더 높거나 더 낮다. 활력 스트레스 테스트의 잘 알려진 예는 종종 옥수수 종자에 수행되는 저온 테스트이다. 이러한 테스트에서, 종자를 경작할 수 있는 토양에 파종하고, 10 ℃의 온도(저온 상)에서 7일 동안 유지한다. 이후에, 최대의 발아 및 묘목 특성이 평가된 후에 종자를 25 ℃에서 또다른 7일 동안 유지한다 (Jonitz, A and Leist, N. 2003. Pflantzenschutz-Nachrichten Bayer, 56(1), pp 173-207). 또한 활력 테스트를 위하여, 발아는 전체 발아 과정의 조사를 수행하기 위하여 두 특정 시기뿐 아니라 그 사이의 많은 시기에 계수될 수 있다. 물질로 덮인 종자의 경우, 모든 처리에서 발생의 계수는 포함된 임의의 처리에서 임의의 발생 묘목이 상기 물질 위에 보이는 순간부터 시작할 수 있다. 그 후에, 발생은 발생 과정에 따라 빈번한 간격으로 계수될 수 있다. 최종 계수에서, 묘목은 묘목이 만족스러운 식물로 발달할 수 있는지 여부를 나타내는 분류로 배열될 수 있다. 본 명세서에서, 이러한 분류는 활력 분류로 칭해진다. 묘목은 정상, 약간 손상 또는 비정상으로 분류된다. 발아 또는 발생하지 않는 종자는 사멸 종자로 분류된다.
제어된 조건 하에서의 실험 외에, 테스트는 또한 필드에서 수행될 수 있다. 대부분의 경우, 필드의 덜 최적인 조건 때문에, 발생은 제어된 조건 하에서 특정 종에 대한 첫번째 계수보다는 더 나중 단계 또는 나중 단계 후에 계수된다. 묘목의 활력 평가 외에, 작물의 생장 기간 마지막에 생산성이 평가될 수 있다.
그들의 특정 물리적 및/또는 화학적 특성에 따라, 본 발명의 살충제, 살비제 및 살선충제는 통상의 제제, 이를 테면 용액, 유제, 현탁제, 분말, 더스트 (dust), 포움 (foam), 페이스트, 가용성 분말, 과립제, 에어로졸, 유현탁제 (suspoemulsion) 농축물, 종자를 위한 코팅 조성물 및 폴리머 물질 중에 마이크로캡슐 및 활성 화합물이 주입된 천연 및 합성 물질 및 ULV 냉무제 및 온무제로 전환될 수 있다.
이들 제제는 공지된 방법으로, 예를 들어, 임의로 계면활성제, 즉 유화제 및/또는 분산제 및/또는 포움 형성제를 사용하여 활성 화합물 또는 활성 화합물 배합물을 증량제, 즉 액체 용매, 가압 액화 가스 및/또는 고형 담체와 혼합하여 제조된다.
사용된 증량제가 물인 경우, 예를 들어 보조 용매로서 유기 용매를 사용하는 것이 또한 가능하다. 주로 적합한 액체 용매는 크실렌, 톨루엔 또는 알킬나프탈렌과 같은 방향족 화합물, 클로로벤젠, 클로로에틸렌 또는 메틸렌 클로라이드와 같은 염소화 방향족 또는 염소화 지방족 탄화수소, 사이클로헥산 또는 파라핀, 예를 들어, 광유 분획물, 광유 및 식물유와 같은 지방족 탄화수소, 부탄올 또는 글리콜과 같은 알콜 및 이들의 에테르 및 에스테르, 아세톤, 메틸 에틸 케톤, 메틸 이소부틸 케톤 또는 사이클로헥사논과 같은 케톤, 디메틸포름아미드 및 디메틸 설폭사이드와 같은 강한 극성 용매 및 물이다.
액화 가스 증량제 또는 담체는 표준 온도 및 대기압 하에서 가스인 액체, 예를 들어 부탄, 프로판, 질소 및 이산화 탄소와 같은 에어로졸 추진제를 의미하는 것으로 이해된다.
적절한 고형 담체로는 예를 들어 암모늄염, 및 카올린, 점토, 활석, 쵸크, 석영, 아타펄가이트, 몬모릴로나이트 또는 규조토와 같은 분쇄된 천연 광물, 및 고분 실리카, 알루미나 및 실리케이트와 같은 분쇄된 합성 광물이 있다. 적절한 과립제용 고형 담체로는 예를 들어 방해석, 대리석, 경석, 해포석 및 백운석과 같은 분쇄 및 분류된 천연 암석, 또는 무기 및 유기 가루의 합성 과립, 및 톱밥, 코코넛 껍질, 옥수수 속대 및 담배줄기와 같은 유기물질의 과립이 있다.
적절한 유화제 및/또는 포움 형성제로는 예를 들어 비이온성 및 음이온성 유화제, 예를 들어 폴리옥시에틸렌 지방산 에스테르, 폴리옥시에틸렌 지방 알콜 에테르, 예를 들어 알킬아릴 폴리글리콜 에테르, 알킬설포네이트, 알킬설페이트, 아릴설포네이트 및 단백질 가수분해물이 있다. 적절한 분산제로는 예를 들어 리그노설피트 폐액 및 메틸셀룰로오즈가 있다.
점착부여제, 예를 들어 카복시메틸셀룰로오즈, 및 아라비아 고무, 폴리비닐 알콜 및 폴리비닐아세테이트와 같은 분말, 과립 또는 라텍스 형태의 천연 및 합성 중합체, 또는 세팔린 및 레시틴과 같은 천연 인지질, 및 합성 인지질이 제제에 사용될 수 있다. 그밖의 다른 가능한 첨가제는 광유 및 식물유이다.
착색제, 예를 들어 산화철, 산화티탄 및 프루시안 블루와 같은 무기안료, 알리자린 염료, 아조 염료 및 금속 프탈로시아닌 염료와 같은 유기 염료 및 철, 망간, 붕소, 구리, 코발트, 몰리브덴 및 아연의 염과 같은 미량 영양소가 사용될 수도 있다.
상업적 제제로부터 제조된 사용 형태의 활성 화합물 함량은 넓은 범위 내에서 변할 수 있다. 동물 해충, 이를 테면 곤충 및 진드기를 구제하기 위한 사용 형태의 활성 화합물의 농도는 0.0000001 내지 95 중량%의 활성 화합물일 수 있으며, 바람직하게는 0.0001 내지 25 중량%이다. 사용 형태에 적합한 방식으로 적용된다.
본 섹션에서의 실시예는 비-수화 상태에서 발아 및 활력에 악영향을 갖는 적어도 하나의 살충제, 살비제 또는 살선충제를 포함하는 종자 처리제로 종자를 코팅하기 전에 종자를 수화 및 건조시키는 것의 긍정적인 효과를 나타낸다. 전형적으로, 실험은 4개의 처리를 포함하며, 함께 본 명세서에 청구된 효과를 나타낸다: 대조군 종자; 종자 처리만으로 코팅된 종자; 오직 수화 및 건조된 종자; 특정 종자 처리로 코팅하기 전에 수화 및 건조된 종자. 표는 발아 및 활력 또는 관련 변수의 데이터를 포함한다. 특정 변수의 평균 데이터 외에, 표는 또한 비-수화 상태와 관련된 2개의 처리 및 수화 상태와 관련된 2개의 처리 사이 변수의 평균의 절대 차를 포함한다 (컬럼 머리에 'd'로 나타냄; 예를 들어 'dEmg'). 이러한 차이는 비-수화 및 수화 상태에서 종자 처리 효과의 방향 및 크기를 나타낸다. 두 상태에서 종자 처리의 악영향은 마이너스-부호 (-)로 나타내고, 수화 상태에서 특정 변수에 대한 악영향의 부재는 플러스-부호 (+)로 나타낸다. 실시예에서, 특정 변수에 대한 종자 처리의 악영향이 비-수화 및 건조 상태에서보다 수화 및 건조 상태에서 더 작거나 없는 것으로 나타났다.
실시예 1
토마토 (Lycopersicon esculentum, Tristar 품종) 종자의 발생에 대한, 종자 처리 살충제 Gaucho(활성 성분 이미다클로프리드 함유)로의 필름 코팅 전의 수화 및 건조 효과를 기후실에서 조사하였다. 종자를 7일 동안 20 ℃의 온도 및 - 1.0 Mpa의 삼투 포텐셜에서 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기 용액에서 오스모프라이밍의 수단으로 수화시켰다. 수화 후, 종자를 수화 전의 수분 함량으로 다시 건조시켰다. Gaucho WS70을 종자 kg 당 100 또는 200 g 제품의 농도로 가하였다. 종자 처리제를 중합체 (폴리비닐아세테이트)의 수단으로 종자 상에 코팅하였다. 종자를 화분 토양 및 강-모래 (1:3 비율)의 혼합물 중에 트레이에 파종하였다. 복제물당 50개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 트레이를 지속적으로 23 ℃, 20 시간의 명 및 4 시간의 암의 광 처리로 유지하였다. 표의 데이터는 파종 4일 후에 묘목 발생의 평균 퍼센트를 나타낸다 (DAS).
품종 투여량 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Tristar 100g/kg(종자) 대조군 + Gauch 80.7 34.0 대조군 상태 -46.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ Gaucho 96.0 91.3 오스모프라이밍 상태 -4.7
Tristar 200g/kg(종자) 대조군 + Gauch 80.7 34.0 대조군 상태 -46.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ Gaucho 96.0 90.7 오스모프라이밍 상태 -5.3
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 2
표는 상추 (Lactuca sativa) 종자, 품종 Smile (그린 오크리프 레터스(green oakleaf lettuce))의 발생에 대한, 종자 처리 살충제 Cruiser (활성 성분 티아메톡삼 함유)로의 필름 코팅 전의 수화 및 건조 효과의 데이터를 나타낸다. 종자를 하루 동안 15 ℃의 온도 및 - 1.5 Mpa의 삼투 포텐셜에서 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기 용액에서 오스모프라이밍의 수단으로 수화시켰다. 수화 후, 종자를 수화 전의 수분 함량으로 다시 건조시켰다. 모든 종자를 점토-기제의 펠렛팅 혼합물의 수단으로 펠렛화하였다. 펠렛의 최종 크기는 3 내지 3.5 mm 범위였다. Cruiser 70WS을 100,000개의 펠렛 당 115 g의 제품의 농도로 가하였다. 종자 처리제를 중합체 수단으로 펠렛 상에 코팅하였다. 종자를 코코넛 섬유가 채워진 트레이에 파종하고, 질석 2번으로 덮었다. 복제물당 100개 종자인 3개의 복제물을 파 종하였다. 먼저, 트레이를 2 ℃의 평균 온도에서 7일의 냉각 기간에 적용하였다. 그 다음, 트레이를 각각 6 시간의 명 및 18 시간의 암으로 15 및 10 ℃의 변온에 노출시켰다. 표에 나타낸 데이터는 7-일 냉각 기간의 마지막으로부터 3일에 묘목 발생의 평균 퍼센트를 나타낸다.
품종 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Smile 대조군 + Cruiser 45.0 16.0 대조군 상태 -29.0
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ Cruiser 42.7 29.3 오스모프라이밍 상태 -13.4
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 3
흰 양배추(Brassica oleracea convar. capitata var. alba)의 발생에 대한, 종자 처리 살충제 Gaucho (활성 성분 이미다클로프리드 함유)로의 필름 코팅 전 수화 및 건조 효과를 기후실에서 조사하였다. 실험을 하나의 품종으로 수행하였다: Lennox. 모든 종자를 통상 사용 전에 뜨거운-물로 처리하였다. 종자를 1:2:2.5의 비율의 종자:질석(3번):수돗물의 혼합물과 함께 고체 매트릭스 프라이밍의 수단으로 수화시켰다. 혼합물을 회전 컨테이너에 유지시켰다. 두 노출 시간을 포함하였다: 노출 8 및 24 시간. 프라이밍 과정 동안 온도를 15 ℃로 유지시켰다. 수화 후에, 종자를 이들의 초기 수분 함량으로 다시 건조시켰다. Gaucho WS70를 100,000 개의 종자당 115 또는 230 g의 제품의 농도로 가하였다. 종자 처리제를 중합체 수단으로 펠렛 상에 코팅하였다. 종자를 코코넛 섬유로 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 50개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 트레이를 각각 20 및 15 ℃에서 12 시간의 명 및 12 시간의 암의 광 처리로 유지시켰다. 표는 파종 후 5일에 묘목 발생의 평균 퍼센트를 나타낸다.
품종 노출 시간 (시간) 투여량 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Lennox 8 115 g/U 대조군 + Gaucho 97.0 61.3 대조군 상태 -35.7
SMP SMP+Gaucho 91.3 75.3 SMP 상태 -16.0
Lennox 8 230 g/U 대조군 + Gaucho 97.0 34.7 대조군 상태 -62.3
SMP SMP+Gaucho 91.3 48.0 SMP 상태 -43.3
Lennox 24 115 g/U 대조군 + Gaucho 97.0 61.3 대조군 상태 -35.7
SMP SMP+Gaucho 99.3 94.7 SMP 상태 -4.6
Lennox 24 230 g/U 대조군 + Gaucho 97.0 34.7 대조군 상태 -62.3
SMP SMP+Gaucho 99.3 85.3 SMP 상태 -14.0
표에 사용된 약어:
U = 유닛: 100,000개의 종자
SMP = 고체 매트릭스 프라이밍
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 4
종자 처리 살충제 Mundial (활성 성분 피프로닐 함유)로 필름 코팅하기 전 수화 및 건조는 양파 (Allium cepa; 품종 Safari) 종자의 발아에 긍정적인 효과를 나타낸다. 종자를 15 ℃의 온도 및 - 2.0 Mpa의 삼투 포텐셜에서 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)로 7일 동안 오스모프라이밍하였다. 그 다음, 종자를 이들의 초기 수분 함량으로 다시 건조시켰다. Mundial (FS 제제; 500 g/ L)를 100,000개의 종자당 20 ml의 제품으로 가하였다. 또한 모든 종자를 살진균제로 처리하였다. 그 다음 살진균제의 혼합물을 코팅 혼합물에 가하였다: 종자 kg당 2.3 g의 티람 + 0.86 g의 카벤다짐. 종자 처리를 중합체 수단으로 종자에 가하였다. 종자를 코코넛 섬유가 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 100개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 트레이를 지속적으로 30 ℃의 온도에서 18 시간의 명 및 6 시간의 암의 광 처리로 유지시켰다. 표에 포함된 데이터는 파종 후 5일에 묘목 발생의 퍼센트 평균을 나타낸다.
품종 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Safari 대조군 + Mundial 60.7 46.3 대조군 상태 -14.4
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Mundial 77.3 72.0 오스모프라이밍 상태 -5.3
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 5
종자 처리 살충제 Poncho-beta (활성 성분 클로티아니딘 및 베타시플루트린 함유)로의 필름 코팅 전 수화 및 건조는 당근 (Daucus carota) 종자의 발아에 긍정적인 효과를 나타낸다. 종자를 15 내지 20 ℃ 및 -1.0 내지 -2.0 Mpa에서 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기 용액에서 7 내지 21일 동안 오스모프라이밍하였다. 그 다음, 종자를 이들의 수화 전 수분 함량으로 다시 건조시켰다. Poncho-beta (FS 제제)를 3개의 농도로 가하였다 (100,000개의 종자당): 7 g의 클로티아니딘 + 0.9 g의 베타시플루트린; 14 g의 클로티아니딘 + 1.8 g의 베타시플루트린 및 28 g의 클로티아니딘 + 3.6 g의 베타시플루트린. 또한 모든 종자를 살진균제로 처리하였다. 다음 살진균제의 혼합물을 코팅 혼합물에 가하였다 (종자 kg 당): 1.2 g의 티람 + 4 g의 아이프로디온 + 0.33 g의 메탈락실-m. 종자 처리를 상업적 중합체 수단으로 종자에 가하였다. 수돗물로 적신 블롯터에서 발아 테스트를 수행하였다. 복제물당 100개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 발아 트레이를 각각 30 및 20 ℃에서 8 시간의 명 및 16 시간의 암으로 발아 캐비넷에 유지시켰다. 종자의 파종 7일 후에 종자를 평가하였다. 정상적으로 발아된 (적어도 발아 테스트를 위한 ISTA 지침에 따라) 모든 종자를 계수하였다. 표는 품종 Laguna 및 Elegance에 대하여 정상적으로 발아된 종자의 평균 퍼센트를 나타낸다.
품종 투여량 처리 Gn (%) 상태 dGn (%)
Laguna 7 g의 클로티아니딘 + 0.9 g의 베타시플루트린/U 대조군 + Poncho-beta 47.7 39.0 대조군 상태 -8.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 74.7 70.7 오스모프라이밍 상태 -4.0
Laguna 14 g의 클로티아니딘 + 1.8 g의 베타시플루트린/U 대조군 + Poncho-beta 47.7 43.7 대조군 상태 -4.0
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 74.7 76.0 오스모프라이밍 상태 +1.3
Laguna 28 g의 클로티아니딘 + 3.6 g의 베타시플루트린/U 대조군 + Poncho-beta 47.7 39.7 대조군 상태 -8.0
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 74.7 80.0 오스모프라이밍 상태 +5.3
Elegance 7 g의 클로티아니딘 + 0.9 g의 베타시플루트린/U 대조군 + Poncho-beta 84.0 78.7 대조군 상태 -5.3
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 94.7 94.0 오스모프라이밍 상태 -0.7
Elegance 14 g의 클로티아니딘 + 1.8 g의 베타시플루트린/U 대조군 + Poncho-beta 84.0 75.0 대조군 상태 -9.0
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 94.7 92.0 오스모프라이밍 상태 -2.7
Elegance 28 g의 클로티아니딘 + 3.6 g의 베타시플루트린/U 대조군 + Poncho-beta 84.0 72.7 대조군 상태 -11.3
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 94.7 90.0 오스모프라이밍 상태 -4.7
표에 사용된 약어:
U = 유닛: 100,000개의 종자
Gn = 정상 발아
dGn = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 6
종자 처리 살충제 Poncho-beta (활성 성분 클로티아니딘 및 베타시플루트린 의 혼합물 함유)로 필름 코팅하기 전 수화 및 건조는 또한 필드에서 당근 (Daucus carota) 종자의 발생에 긍정적인 효과를 나타낸다 (품종 Laguna 및 Elegance). 수화 및 코팅 방법은 실시예 5의 설명에 기술된 바와 같다. 100,000개의 종자당 7 g의 클로티아니딘 및 0.9 g의 베타시플루트린의 혼합물과 관련된 처리만을 필드에 파종하였다. 복제물당 200개 종자인 3개의 복제물을 옥외 모래 필드 토양에 파종하였다. 파종 10일 후에 초기 발생을 계수하였다.
품종 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Laguna 대조군 + Poncho-beta 37.5 6.8 대조군 상태 -30.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 49.8 32.8 오스모프라이밍 상태 -17.0
Elegance 대조군 + Poncho-beta 33.7 10.8 대조군 상태 -22.9
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Poncho-beta 36.8 56.0 오스모프라이밍 상태 +19.2
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 7
부추 (Allium ampeloprasum var. porrum; 때때로 Allium porrum으로도 분류) 종자의 성능에 대한, 종자 처리 살충제 Gaucho (활성 성분 이미다클로프리드 함유)로 필름 코팅 전 수화 및 건조의 효과를 조사하였다. 표는 품종 Parton에 대한 데이터를 포함한다. 종자를 15 ℃의 온도에서 하이드로프라이밍의 수단으로 수화시 켰다. 2개의 노출 시간을 조사하였다: 8 및 32 시간의 노출. 하이드로프라이밍에 사용된 수돗물을 지속적으로 통기시켰다. 수화 후, 종자를 수화 전 이들의 수분 함량으로 재건조시켰다. Gaucho WS70을 100,000 개의 펠렛 당 32 또는 64 g의 제품 농도로 가하였다. 종자 처리제를 중합체 수단으로 종자 상에 코팅하였다. 종자를 코코넛 섬유로 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 100개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 트레이를 각각 20 및 15 ℃에서 12 시간의 명 및 12시간의 암의 광 처리로 기후실에서 유지시켰다.
표 7a
이 표는 9 DAS (파종 후 일수)에서 발생의 평균 퍼센트 및 18 DAS에서 최대 발아의 평균 퍼센트의 데이터를 나타낸다.
품종 노출 시간 (시간) 투여량 처리 Emg (%) Gmax 상태 dEmg (%) dGmax
Parton 8 32 g/U 대조군 + Gaucho 79.7 44.3 90.7 85.7 대조군 상태 -35.4 -5.0
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 80.7 54.0 89.0 84.0 오스모프라이밍 상태 -26.7 -5.0
Parton 8 64 g/U 대조군 + Gaucho 79.7 37.3 90.7 84.0 대조군 상태 -42.4- -6.7
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 80.7 51.3 89.0 89.7 오스모프라이밍 상태 -29.4 +0.7
Parton 32 32 g/U 대조군 + Gaucho 79.7 44.3 90.7 85.7 대조군 상태 -35.4 -5.0
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 84.3 68.7 92.7 89.7 오스모프라이밍 상태 -15.6 -3.0
Parton 32 64 g/U 대조군 + Gaucho 79.7 37.3 90.7 84.0 대조군 상태 -42.4 -6.7
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 84.3 61.7 92.7 88.7 오스모프라이밍 상태 -22.6 -4.0
표에 사용된 약어:
U = 유닛: 100,000개의 종자
Emg = 발생
Gmax = 최대발아
dEmg/dGmax = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
표 7b
이 표는 18 DAS에서 시장성 있는 식물의 평균 수에 대한 데이터를 나타낸다. 시장성 있는 식물의 수는 활력 분류 A 및 B에 지정된 모든 식물을 포함한다. 분류 A는 모든 정상 묘목을 포함하며; 분류 B는 약간 손상되고/거나 작은 묘목을 포함한다.
품종 노출 시간 (시간) 투여량 처리 시장성 있는 식물 (%) 상태 d시장성 있는 식물 (%)
Parton 8 32 g/U 대조군 + Gaucho 89.0 82.0 대조군 상태 -7.0
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 87.0 83.0 오스모프라이밍 상태 -4.0
Parton 8 64 g/U 대조군 + Gaucho 89.0 79.0 대조군 상태 -10.0
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 87.0 88.0 오스모프라이밍 상태 +1.0
Parton 32 32 g/U 대조군 + Gaucho 89.0 82.0 대조군 상태 -7.0
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 90.3 87.7 오스모프라이밍 상태 -2.6
Parton 32 64 g/U 대조군 + Gaucho 89.0 79.0 대조군 상태 -10.0
하이드로프라이밍 하이드로프라이밍+Gaucho 90.3 85.7 오스모프라이밍 상태 -4.6
표에 사용된 약어:
U = 유닛: 100,000개의 종자
d시장성 있는 식물 = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 8
본 실시예는 당근 종자 (Daucus carota; 품종 Starca)의 성능에 대한, 살충제 화합물 클로티아니딘과 베타시플루트린 및 클로티아니딘과 스피노사드의 혼합물의 코팅 전 수화 및 건조의 긍정적인 효과를 나타낸다. 종자를 15 내지 20 ℃ 및 -1.0 내지 -2.0 MPa에서 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기된 용액에서 7 내지 21일 동안 오스모프라이밍하였다. 그 다음, 종자를 수화 전 이들의 수분 함량으로 재건조시켰다. 클로티아니딘을 100,000개의 종자당 7 g의 농도로 두 혼합물에 가하였다. 베타시플루트린 또는 스피노사드를 100,000개의 종자당 각각 0.9 또는 3.5 g의 농도로 혼합물에 가하였다. 종자 처리제를 중합체 수단으로 종자 상에 코팅하였다. 또한 모든 종자를 살진균제로 처리하였다. 다음의 살진균제의 혼합물을 코팅 혼합물에 가하였다 (종자 kg당): 1.2 g의 티람 + 4 g의 아이프로디온 + 0.33 g의 메탈락실-m. 종자를 코코넛 섬유가 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 100개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 트레이를 각각 20 및 15 ℃에서 12 시간의 명 및 12 시간의 암의 광 처리로 기후실에 유지시켰다.
표 8a
이 표는 파종 7일 후 (DAS)에 평균 발생 퍼센트 데이터를 나타낸다.
품종 투여량 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Starca 7g의 클로티아니딘 + 0.9g의 베타시플루트린/U 대조군 + 클로티아니딘 & 베타시플루트린 19.0 9.3 대조군 상태 -9.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ 클로티아니딘 & 베타시플루트린 86.7 89.0 오스모프라이밍 상태 +2.3
Starca 7g의 클로티아니딘 + 3.5g의 스피노사드/U 대조군 + 클로티아니딘 & 스피노사드 19.0 9.3 대조군 상태 -9.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ G클로티아니딘 & 스피노사드 86.7 89.7 오스모프라이밍 상태 +3.0
표에 사용된 약어:
U = 유닛: 100,000개의 종자
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
표 8b
이 표는 14 DAS에서 활력 분류 A의 퍼센트 평균의 데이터를 나타낸다. 이 분류는 크기 및 떡잎에 관하여 정상이며, 손상되지 않은 모든 묘목을 포함한다.
품종 투여량 처리 VitA (%) 상태 dVitA (%)
Starca 7g의 클로티아니딘 + 0.9g의 베타시플루트린/U 대조군 + 클로티아니딘 & 베타시플루트린 66.3 57.3 대조군 상태 -9.0
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ 클로티아니딘 & 베타시플루트린 71.7 76.0 오스모프라이밍 상태 +4.3
Starca 7g의 클로티아니딘 + 3.5g의 스피노사드/U 대조군 + 클로티아니딘 & 스피노사드 66.3 61.7 대조군 상태 -4.6
오스모프라이밍 오스모프라이밍+ G클로티아니딘 & 스피노사드 71.7 78.0 오스모프라이밍 상태 +6.3
표에 사용된 약어:
U = 유닛: 100,000개의 종자
VitA = 활력 분류 A
dVitA = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 9
부추 (Allium ampeloprasum var. porrum; 때때로 Allium porrum으로도 분류) 종자의 성능에 대한, 종자 처리 살충제 Gaucho (활성 성분 이미다클로프리드 함유)로의 필름 코팅 전 수화 및 건조의 효과를 기후실에서 조사하였다. 두 개의 품종으로 실험을 수행하였다: Ashton 및 Shelton. 종자를 7 내지 14일 동안 15 내지 22 ℃의 온도에서 드럼 프라이밍하고, 최종적으로 건조 중량에 기초하여 70 내지 100%의 수분 함량에 도달시켰다. 그 다음, 종자를 이들의 초기 수분 함량으로 재건조시켰다. 모든 종자를 살진균제 티람 (종자 kg당 1.5 g의 티람)으로 처리하였다. Gaucho WS70을 종자 kg당 140 g 제품의 농도로 가하였다. 종자 처리제를 중합체 수단으로 종자에 코팅하였다. 종자를 코코넛 섬유가 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 50개 종자인 3개의 복제물을 파종하였다. 트레이를 각각 20 및 15 ℃에서 12 시간의 명 및 12 시간의 암의 광 처리로 유지시켰다.
다음 3개의 처리를 실험에 포함하였다: 대조군; Gaucho 필름 코팅; Gaucho 필름 코팅 전 수화 및 건조. '오직 수화 및 건조된' 처리는 포함되지 않으나, 발생 및 활력 A 둘 모두에 대하여, 이러한 처리의 결과는 최대 100%일 수 있다. 실 험이 최대 발생 또는 활력 A를 사용하여 해석될지라도; 실시예는 또한 특허 청구범위를 나타낸다.
표 9a
이 표는 사용된 부추 품종에 따른, DAS 8 또는 9에서 평균 발생 퍼센트 데이터를 나타낸다.
품종 DAS에서 Emg 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Ashton 9 대조군 + Gaucho 82.7 48.7 대조군 상태 -34.0
드럼 프라이밍 드럼 프라이밍 + Gaucho 최대 100 92.7 드럼 프라이밍 상태 최대 -7.3
Shelton 8 대조군 + Gaucho 70.0 24.7 대조군 상태 -45.3
드럼 프라이밍 드럼 프라이밍 + Gaucho 최대 100 91.3 드럼 프라이밍 상태 최대 -8.7
표에 사용된 약어:
DAS = 파종 후 일수
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
표 9b
이 표는 활력 분류 A (Vit A)에서 묘목의 평균 퍼센트 데이터를 나타낸다. 이 분류는 크기 및 떡잎에 관하여 정상이며 손상되지 않은 모든 묘목을 포함한다. 활력 평가는 품종에 따라 17 또는 20 DAS에서 수행된다.
드럼 프라이밍 상태에서 종자 처리의 악영향의 해석을 위하여, 두 품종의 프 라이밍 대조군의 모든 묘목이 거의 활력 A로 분류되지 않는다는 것을 주목해야한다 (따라서 VitA는 100%). 따라서, 두 품종에 대한 드럼 프라이밍 상태의 악영향은 표에 나타낸 최대값보다 더 작은 것으로 기대된다.
품종 DAS에서 VitA 처리 Emg (%) 상태 dVitA (%)
Ashton 20 대조군 + Gaucho 71.3 23.3 대조군 상태 -48.0
드럼 프라이밍 드럼 프라이밍 + Gaucho 최대 100 62.7 드럼 프라이밍 상태 최대 -37.3
Shelton 17 대조군 + Gaucho 72.7 41.3 대조군 상태 -31.4
드럼 프라이밍 드럼 프라이밍 + Gaucho 최대 100 78.7 드럼 프라이밍 상태 최대 -21.3
표에 사용된 약어:
DAS = 파종 후 일수
VitA = 활력 분류 A
dVitA = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 10
평지 (oilseed rape, Brassica napus; 품종 Talent) 종자의 성능에 대한, 종자 처리 살충제 Elado (활성 성분 클로티아니딘 및 메타시플루트린 포함)로의 필름 코팅 전 수화 및 건조의 효과를 온실에서 조사하였다. 종자를 15 ℃, -1.0 MPa에서 20 시간 동안 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기된 용액에서 오스모프라이밍하였다. 이후에, 종자를 이들의 초기 수분 함량으로 재건조시켰다. Elado FS 480을 종자 kg당 10 g의 클로티아니딘 및 2 g의 베타시플루트린의 농도로 가하였다. 또한 모든 종자를 살진균제 티람 및 디메토모르프로 처리하였다 (각각 종자 kg당 4 및 5 g). 종자를 필드로부터의 사양토가 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 50개 종자인 3개의 복제물을 사용하였다. 트레이를 지속적으로 20 ℃에서 12 시간의 명 및 12 시간의 암의 광 처리로 온실에 유지시켰다. 표는 파종 3일 후에 평균 발생 퍼센트 데이터를 나타낸다.
품종 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Talent 대조군 + Elado 52.0 36.7 대조군 상태 -15.3
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Elado 76.7 74.0 오스모프라이밍 상태 -2.7
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 11
평지 (Brassica napus; 품종 Talent) 종자의 성능에 대한, 종자 처리 살충제 Prosper (살충성 활성 성분 클로티아니딘 및 살진균제 티람, 카복신 및 메탈락실 포함)로의 필름 코팅 전 수화 및 건조의 효과를 기후실에서 조사하였다. 종자를 15 ℃, -1.0 MPa에서 20 시간 동안 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기된 용액에서 오스모프라이밍하였다. 이후에, 종자를 이들의 초기 수분 함량으로 재건조시켰다. Prosper FS 300을 종자 100 kg당 150 g의 클로티아니딘, 150 g의 티람, 70 g의 카복신 및 5 g의 메탈락실의 농도로 가하였다. 프라이밍되지 않은 종자 및 프 라이밍된 대조군 종자를 임의의 살진균제로 처리하지 않았다. 이 방식으로, 비-수화 및 수화 상태에서 살충제 및 살진균제의 혼합물의 효과를 평가하였다. 종자를 화분 토양이 채워진 트레이에 파종하였다. 복제물당 50개 종자인 3개의 복제물을 사용하였다. 트레이를 각각 20 및 15 ℃에서, 12 시간의 명 및 12 시간의 암으로 온실에 유지시켰다. 표는 파종 4일 후에 평균 발생 퍼센트 데이터를 나타낸다.
품종 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Talent 대조군 + Prosper 77.0 65.3 대조군 상태 -11.7
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Prosper 78.7 78.7 오스모프라이밍 상태 0.0
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).
실시예 12
옥수수 (Zea Mays; 품종 Agromax) 종자의 성능에 대한, 종자 처리 살충제 Cruiser (살충성 활성 성분 티아메톡삼 포함)로의 필름 코팅 전 수화 및 건조의 효과를 온실에서 조사하였다. 종자를 15 ℃, -0.6 MPa에서 48 시간 동안 폴리에틸렌글리콜 (PEG 6000)의 통기된 용액에서 오스모프라이밍하였다. 이후에, 종자를 이들의 초기 수분 함량으로 재건조시켰다. Cruiser FS350을 낟알당 1.25 mg의 활성 성분의 농도로 가하였다. 모든 종자를 낟알당 0.62 mg의 활성 성분에서 살진균제 티람으로 처리하였다. 종자를 필드로부터의 사양토가 채워진 트레이에 파종하였 다. 복제물당 25개 종자인 3개의 복제물을 사용하였다. 트레이를 지속적으로 20 ℃에서 12 시간의 명 및 12 시간의 암의 광 처리로 온실에 유지시켰다. 표는 파종 3일 후에 평균 발생 퍼센트 데이터를 나타낸다.
품종 처리 Emg (%) 상태 dEmg (%)
Agromax 대조군 + Cruiser 88.0 50.7 대조군 상태 -37.3
오스모프라이밍 오스모프라이밍 + Cruiser 84.0 61.3 오스모프라이밍 상태 -22.7
표에 사용된 약어:
Emg = 발생
dEmg = 특정 상태에서 특정 변수의 차이 (실시예의 도입부 참고).

Claims (13)

  1. 제1 단계에서 식물의 종자를 수화시키고, 제2 단계에서 건조시킨 후, 제3 단계에서 적어도 하나의 살충성 화합물, 살비성 화합물 또는 살선충성 화합물을 함유하는 종자 처리제로 처리하는 것을 특징으로 하나, 단 식물이 베타 (Beta) 속의 식물이면, 살충성 화합물, 살비성 화합물 또는 살선충성 화합물은 이미다클로프리드 또는 테플루트린으로부터 선택될 수 없는, 상기 종자 처리제로 처리된 농작물, 채소 작물 또는 화훼 작물의 묘목 활력 및 종자의 발아를 개선하는 방법.
  2. 제 1항에 있어서, 묘목이
    농작물 중 아라키스 (Arachis) 속, 아베나 (Avena) 속, 베타 (Beta) 속, 브라시카 (Brassica) 속, 카타무스 (Carthamus) 속, 글리신 (Glycine) 속, 고시피움 (Gossypium) 속, 헬리안투스 (Helianthus) 속, 호르데움 (Hordeum) 속, 롤리움 (Lolium) 속, 메디카고 (Medicago) 속, 오리자 (Oryza) 속, 포아 (Poa) 속, 세칼레 (Secale) 속, 소르굼 (Sorghum) 속, 트리폴리움 (Trifolium) 속, 트리티쿰 (Triticum) 속, 트리티칼레 (Triticale) 속 및 제아 (Zea) 속;
    채소 작물 중 알리움 (Allium) 속, 아피움 (Apium) 속, 아스파라거스 (Asparagus) 속, 브라시카 (Brassica) 속, 캅시쿰 (Capsicum) 속, 시세르 (Cicer) 속, 시코리움 (Cichorium) 속, 시트릴루스 (Citrillus) 속, 쿠쿠미스(Cucumis) 속, 쿠쿠르비타 (Cucurbita) 속, 사이나라 (Cynara) 속, 다우쿠스 (Daucus) 속, 락투카 (Lactuca) 속, 렌스 (Lens) 속, 파세올루스 (Phaseolus) 속, 피숨 (Pisum) 속, 라파누스 (Raphanus) 속, 솔라눔 (Solanum) 속 (종종 라이코페르시콘 에스쿨렌툼 (Lycopersicon esculentum)으로 나타내는 토마토 포함), 스피나시아 (Spinacia) 속, 발레리아넬라 (Valerianella) 속 및 비시아 (Vicia) 속;
    화훼 작물 중 안티리눔 (Antirrhinum) 속, 베고니아(Begonia) 속, 크리산테뭄 (Chrysanthemum) 속, 사이클라멘 (Cyclamen) 속, 디안투스 (Dianthus) 속, 가자니아 (Gazania) 속, 게르베라 (Gerbera) 속, 임파티엔스 (Impatiens) 속, 임포메아 (Ipomoea) 속, 라바테라 (Lavatera) 속, 로벨리아 (Lobelia) 속, 펠라르고니움 (Pelargonium) 속, 페투니아 (Petunia) 속, 플록스 (Phlox) 속, 프리물라 (Primula) 속, 살비아 (Salvia) 속, 타게타 (Tageta) 속, 베르베나 (Verbena) 속, 빈카 (Vinca) 속, 비올라 (Viola) 속 및 진니아 (Zinnia) 속으로부터 선택되는 방법.
  3. 제 2항에 있어서, 묘목이
    농작물 중 베타 속, 브라시카 속, 고시피움 속, 헬리안투스 속, 오리자 속 및 제아 속;
    채소 작물 중 알리움 속, 브라시카 속, 캅시쿰 속, 시세르 속, 시트릴루스 속, 쿠쿠미스 속, 쿠쿠르비타 속, 다우쿠스 속, 락투카 속 및 솔라눔 속 (종종 라이코페르시콘 에스쿨렌툼으로 나타내는 토마토 포함);
    화훼 작물 중 사이클라멘 속, 디안투스 속, 임파티엔스 속, 펠라르고니움 속, 페투니아 속, 프리물라 속, 타게타 속, 베르베나 속, 비올라 속으로부터 선택되는 방법.
  4. 제 3항에 있어서, 묘목이
    농작물 중 베타 속, 브라시카 속, 고시피움 속, 제아 속;
    채소 작물 중 알리움 속, 캅시쿰 속, 쿠쿠미스 속, 다우쿠스 속, 락투카 속, 솔라눔 속; 선택적으로 알리움 속, 브라시카 속, 다우쿠스 속, 락투카 속 및 솔라눔 속;
    화훼 작물 중 디안투스 속, 임파티엔스 속, 펠라르고니움 속, 페투니아 속, 타게타 속, 베르베나 속으로부터 선택되는 방법.
  5. 제 1항 내지 제 4항 중 어느 한 항에 있어서, 종자가
    (1.1.1) 클로티아니딘,
    (1.1.2) 이미다클로프리드,
    (1.1.3) 티아클로프리드,
    (1.1.4) 티아메톡삼,
    (1.1.5) 아세트아미프리드,
    (1.1.6) 디노테푸란,
    (1.1.7) 니텐피람,
    (1.1.8) 이미다클로티즈,
    (1.1.9) AKD 1022,
    (2.1.1) 메티오카르브,
    (2.1.2) 티오디카르브,
    (2.1.3) 알디카르브,
    (2.1.4) 옥사밀,
    (2.2.1) 에토프로포스,
    (2.2.2) 페나미포스,
    (2.2.3) 테부피림포스,
    (2.2.4) 카두사포스,
    (2.2.5) 포스티아제이트,
    (2.2.6) 클로르피리포스-(메틸-/에틸),
    (3.1.1) 베타-시플루트린,
    (3.1.2) 시플루트린,
    (3.1.3) 델타메트린,
    (3.1.4) 테플루트린,
    (3.1.5) 비펜트린,
    (3.2.1) 인독사카르브,
    (4.1.1) 스피노사드,
    (4.1.2) 스피네토람 (I),
    (5.2.1) 피프로닐,
    (5.2.2) 에티프롤,
    (6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트,
    (6.1.2) 아베르멕틴,
    (7.1.1) 피리프록시펜,
    (8.1.1) 메톡시페노지드,
    (9.2) 부프로페진,
    (9.3) 사이프로마진,
    (9.1.1) 트리플루무론,
    (9.1.2) 플루페녹수론,
    (10.1) 디아펜티우론,
    (10.2) 아조사이클로틴, 사이헥사틴, 펜부타틴-옥사이드,
    (11.1) 클로르페나피르,
    (11.2) 비나파실, 디노부톤, 디노카프, DNOC,
    (12.1.1) 테부펜피라드,
    (12.2.1) 하이드라메틸논,
    (13.1) 로테논,
    (14.1) 아세퀴노실, 플루아크리피림,
    (15.1) 바실루스 투린지엔시스 (Bacillus thuringiensis) 균주,
    (16.1.1) 스피로디클로펜,
    (16.1.2) 스피로메시펜,
    (16.2.1) 시스-3-(2,5-디메틸페닐)-8-메톡시-2-옥소-1-아자스피로[4.5]데크-3-엔-4-일 카보네이트 (스피로테트라메이트 CAS-등록-번호: 203313-25-1}),
    (17.1) 플로니카미드,
    (18.1) 아미트라즈,
    (19.1) 프로파지트,
    (20.1) N2-[1,1-디메틸-2-(메틸설포닐)에틸]-3-요오도-N1-[2-메틸-4-[1 ,2,2,2-테트라플루오로-1-(트리플루오르메틸)에틸]페닐]-1,2-벤젠디카복사미드 (플루벤디아미드, CAS-등록-번호: 272451-65-7),
    (20.2) 화학식 (II)의 리낙시피르,
    (20.3) 시아지피르 (III),
    (21.1) 티오시클람 하이드로겐 옥살레이트, 티오설탑-소듐,
    (22.1) 아자디라치틴, 바실루스 종 (Bacillus spec.), 뷰베리아 종 (Beauveria spec.), 코들레몬, 마타리지움 종 (Metarrhizium spec.), 패실로마이세스 종 (Paecilomyces spec.), 투린지엔신, 베르티실리움 종 (Verticillium spec.),
    (23.1) 알루미늄 포스피드, 메틸 브로마이드, 설푸릴 플루오라이드,
    (23.2) 크라이올라이트, 플로니카미드, 피메트로진,
    (23.3) 클로펜테진, 에톡사졸, 헥시티아족스,
    (23.4) 아미도플루메트, 벤클로티아즈, 벤족시메이트, 비페나제이트, 브로모프로필레이트, 부프로페진, 키노메티오네이트, 클로르디메포름, 클로로벤질레이트, 클로로피크린, 클로티아조벤, 사이클로프렌, 시플루메토펜, 디사이클라닐, 페녹사크림, 펜트리파닐, 플루벤지민, 플루페네림, 플루텐진, 고시플루레 (gossyplure), 하이드라메틸논, 자포닐루레, 메톡사디아존, 페트롤레움, 피페로닐 부톡사이드, 포타슘 올레에이트, 피라플루프롤, 피리달릴, 피리프롤, 설플루라미드, 테트라디폰, 테트라설, 트리아라텐, 베르부틴, 3-메틸-페닐-프로필-카바메이트 (츄마시드 z), 3-(5-클로르-3-피리디닐)-7-(2,2,2-트리플루오르에틸)-7-아자비사이클로[3.2.1]옥탄-3-카보니트릴 (cas-등록-번호 175972-70-3) 및 상응하는 3-엔도-이성체 (cas-등록-번호 175974-60-5)로부터 선택되는 적어도 하나의 화합물로 처리되는 방법.
  6. 제 1항 내지 제 4항 중 어느 한 항에 있어서, 종자가
    (1.1.1) 클로티아니딘,
    (1.1.2) 이미다클로프리드,
    (1.1.3) 티아클로프리드,
    (1.1.4) 티아메톡삼,
    (1.1.5) 아세트아미프리드,
    (2.1.1) 메티오카르브,
    (2.1.2) 티오디카르브,
    (3.1.1) 베타-시플루트린,
    (3.1.2) 시플루트린,
    (3.1.3) 델타메트린,
    (3.1.4) 테플루트린,
    (3.2.1) 인독사카르브,
    (4.1.1) 스피노사드,
    (4.1.2) 스피네토람,
    (5.2.1) 피프로닐,
    (5.2.2) 에티프롤,
    (6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트,
    (6.1.2) 아베르멕틴,
    (16.1.1) 스피로디클로펜,
    (16.1.2) 스피로메시펜,
    (16.2.1) 스피로테트라메이트,
    (20.1) 플루벤디아미드,
    (20.2) 리낙시피르,
    (20.3) 시아지피르로부터 선택되는 적어도 하나의 화합물로 처리되는 방법.
  7. 제 1항 내지 제 4항 중 어느 한 항에 있어서, 종자가
    (1.1.1) 클로티아니딘,
    (1.1.2) 이미다클로프리드,
    (1.1.4) 티아메톡삼,
    (2.1.1) 메티오카르브,
    (2.1.2) 티오디카르브,
    (3.1.1) 베타-시플루트린,
    (3.1.4) 테플루트린,
    (4.1.1) 스피노사드,
    (4.1.2) 스피네토람,
    (5.2.1) 피프로닐,
    (5.2.2) 에티프롤,
    (6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트,
    (6.1.2) 아베르멕틴,
    (16.2.1) 스피로테트라메이트,
    (20.2) 리낙시피르,
    (20.3) 시아지피르로부터 선택되는 적어도 하나의 화합물로 처리되는 방법.
  8. 제 1항에 있어서, 종자를 하이드로프라이밍 (드럼 프라이밍 포함), 오스모프라이밍 또는 고체 매트릭스 프라이밍으로 수화시키고, 생중량 기준으로 3 내지 15%의 수분 함량으로 건조시키는 방법.
  9. 제 8항에 있어서, 종자를 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 1 내지 24 시간 동안 하이드로프라이밍, 또는 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 5 내지 17일 동안 드럼 프라이밍, 또는 -0.5 내지 -2.6 MPa의 삼투 포텐셜과 함께 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에 서 3 내지 15일 동안 오스모프라이밍, 또는 -0.5 내지 -2.6 MPa의 삼투 포텐셜과 함께 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 3 내지 15일 동안 고체 매트릭스 프라이밍으로 수화시키는 방법.
  10. 제 1항에 있어서, 묘목이
    농작물에서 베타, 브라시카, 고시피움, 제아;
    채소 작물에서 알리움, 캅시쿰, 쿠쿠미스, 다우쿠스, 락투카, 솔라눔; 선택적으로: 알리움, 브라시카, 다우쿠스, 락투카 및 솔라눔;
    화훼 작물에서 디안투스, 임파티엔스, 펠라르고니움, 페투니아, 타게타, 베르베나의 속으로부터 선택되며,
    10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 1 내지 24 시간 동안 하이드로프라이밍, 또는 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 5 내지 17일 동안 드럼 프라이밍, 또는 -0.5 내지 -2.6 MPa의 삼투 포텐셜과 함께 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 3 내지 15일 동안 오스모프라이밍, 또는 -0.5 내지 -2.6 MPa의 삼투 포텐셜과 함께 10 ℃ 내지 30 ℃의 온도에서 3 내지 15일 동안 고체 매트릭스 프라이밍으로 수화되고,
    (1.1.1) 클로티아니딘,
    (1.1.2) 이미다클로프리드,
    (1.1.4) 티아메톡삼,
    (2.1.1) 메티오카르브,
    (2.1.2) 티오디카르브,
    (3.1.1) 베타-시플루트린,
    (3.1.4) 테플루트린,
    (4.1.1) 스피노사드,
    (4.1.2) 스피네토람,
    (5.2.1) 피프로닐,
    (5.2.2) 에티프롤,
    (6.1.1) 에마멕틴-벤조에이트,
    (6.1.2) 아베르멕틴,
    (16.2.1) 스피로테트라메이트,
    (20.2) 리낙시피르,
    (20.3) 시아지피르로부터 선택되는 적어도 하나의 화합물로 처리되는 방법.
  11. 제 10항에 있어서, 묘목이 베타 속, 브라시카 속, 고시피움 속, 제아 속으로부터 선택되는 방법.
  12. 제 10항에 있어서, 묘목이 알리움 속, 캅시쿰 속, 쿠쿠미스 속, 다우쿠스 속, 락투카 속, 솔라눔 속; 선택적으로 알리움 속, 브라시카 속, 다우쿠스 속, 락투카 속 및 솔라눔 속으로부터 선택되는 방법.
  13. 제 10항에 있어서, 묘목이 디안투스 속, 임파티엔스 속, 펠라르고니움 속, 페투니아 속, 타게타 속, 베르베나 속으로부터 선택되는 방법.
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