JPWO2005089800A1 - ｈｓＨＲＤ３を含む医薬組成物 - Google Patents

Abstract

本発明は、滑膜組織又は滑膜細胞の増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む医薬組成物の提供であり、リウマチ、線維症、関節炎、癌及び脳神経疾患から選ばれる少なくとも１つの疾患を診断又は治療するために有用な、滑膜組織又は滑膜細胞の増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する医薬組成物、並びに滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞の増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する方法である。

Description

本発明は、シノビオリンと複合体を形成するヒトＨｒｄ３オルソログ（ｈｓＨＲＤ３）を含む医薬組成物、特にリウマチを診断又は治療するための医薬組成物に関する。

関節リウマチ（以下、ＲＡという）は、関節の滑膜組織に異常な増殖が見られる全身性の炎症性疾患である。本発明者は、この滑膜組織の異常増殖に必須の遺伝子としてシノビオリン遺伝子を同定している（ＷＯ ０２／０５２００７）。
シノビオリンは、ＲＡ患者由来の滑膜細胞に存在する膜タンパク質であり、ＲＩＮＧ ｆｉｎｇｅｒモチーフを有するＥ３ユビキチンライゲースをコードするものである。このモチーフは、タンパク質のユビキチン化に重要な役割を果たすが、実際、自己ユビキチン化活性を有すること、Ｐ４ＨＡ１というコラーゲン合成に必須のタンパク質のユビキチン化を起こすことが証明されている（ＷＯ ０２／０５２００７）。また、最近では、シノビオリンが線維症、癌又は脳神経疾患の発症にも関与することが見出されている（Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．２００３ Ｖｏｌ．１７，ｐ．２４３６−４９）。
シノビオリンは酵母からヒトまで高度に保存されており、出芽酵母において詳細な解析が行われている。シノビオリンの出芽酵母オルソログであり、コレステロール還元酵素の分解に関わる遺伝子であるＨｒｄ１ｐ（ＨＭＧ−ＣｏＡ Ｒｅｄｕｃｔａｓｅ Ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ １）は、出芽酵母Ｈｒｄ３ｐ（ＨＭＧ−ＣｏＡ Ｒｅｄｕｃｔａｓｅ Ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ３）と機能的複合体を形成し、小胞体における異常タンパク質の分解にかかわることが見出されている（Ｊ．Ｃ．Ｂ．２０００．Ｖｏｌ．１５１，ｐ．６９−８２）。しかしながら、Ｈｒｄ３ｐに関する機能は明らかではない。
インターロイキン−６はインターロイキン−１、ＴＮＦ−αとともに炎症性サイトカインとよばれ、種々の炎症反応を引き起こすサイトカインである。通常免疫系の細胞により産生されるが、リウマチ滑膜細胞、白血病、骨髄腫など様々な増殖性疾患を引き起こす細胞からも産生され、それらの増殖に必須である。インターロイキン−６が関与する病気として、リウマチ、多発骨髄腫、キャッスルマン病、クローン病、全身型若年性特発性関節炎、全身性エリテマトーデス、骨粗しょう症などがある。インターロイキン−６は細胞表面に発現するインターロイキン−６レセプターに結合する場合もあれば、細胞表面から遊離したレセプターと結合し、レセプターを発現していない細胞に結合することにより、炎症反応を誘導する場合もある。インターロイキン−６の炎症作用として、Ｂ細胞の抗体産生細胞への分化、肝臓におけるＣ−反応性タンパク質産生量の増加、骨髄における血小板の誘導、免疫系細胞の炎症部位への誘導、白血球のアポトーシスへの抵抗性の寄与、ＶＥＧＦの誘導を介した血管の誘導などが挙げられる。最近、インターロイキン−６とレセプターとの結合を阻害する抗インターロイキン−６レセプター抗体が作られるようになり、リウマチ、骨髄腫、クローン病などに効果を発揮している。

本発明は、滑膜細胞の異常増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む医薬組成物、及びｈｓＨＲＤ３を抑制することを特徴とする滑膜細胞の増殖を抑制する方法を提供することを課題とする。
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を行った。出芽酵母のｈｒｄ３破壊株において、Ｈｒｄ１ｐタンパク質が不安定かつ減少しており、基質が生理学的に安定化かつ増加していることが報告されていることから、ヒトＨｒｄ３ｐオルソログも、シノビオリンと同様に滑膜組織の異常増殖やインターロイキン−６の産生に必須であることがわかった。そして、ｈｓＨＲＤ３を用いて、新たな炎症反応の抑制、リウマチ、線維症、関節症、癌及び脳神経疾患等の診断法及び治療法の開発に有効であると考え、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の通りである。
（１）滑膜細胞の増殖を抑制する物質を含む医薬組成物。
滑膜細胞の増殖を抑制する物質としては、例えばシノビオリンの発現阻害物質が挙げられる。シノビオリンの発現阻害物質は、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質、好ましくは、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子に対するｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ）又はｓｈＲＮＡ（ｓｈｏｒｔ ｈａｉｒｐｉｎ ＲＮＡ）を例示することができる。
具体的にはｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子は、以下の（ａ）又は（ｂ）のＤＮＡを含むものである。すなわち、
（ａ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ
（ｂ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡと相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつｈｓＨＲＤ３活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡである。
さらに、ｓｉＲＮＡは、配列番号１に示す塩基配列のうち一部の配列を標的とするものであってもよい。
本発明の医薬組成物は、リウマチ、線維症、関節炎、癌及び脳神経疾患から選ばれる少なくとも１つの疾患を診断又は治療するために使用される。
（２）滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞の増殖を抑制する方法。
（３）滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞、がん細胞、白血病又は悪性腫瘍におけるアポトーシスを誘起させる方法。
（４）滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞、肺の線維化又は肝硬変におけるコラーゲンの産生を抑制する方法。
（５）滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞、がん細胞、白血病細胞、骨肉種細胞、悪性腫瘍細胞、免疫系細胞、破骨細胞からなる群から選ばれる少なくとも一種の細胞からインターロイキン−６の産生を抑制する方法。
（６）インターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む医薬組成物。
インターロイキン−６の産生を抑制する物質としては、例えばシノビオリンの発現阻害物質が挙げられる。シノビオリンの発現阻害物質は、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質、好ましくは、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子に対するｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡを例示することができる。
具体的にはｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子は、以下の（ａ）又は（ｂ）のＤＮＡを含むものである。すなわち、
（ａ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ
（ｂ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡと相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつｈｓＨＲＤ３活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡである。
さらに、ｓｉＲＮＡは、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の塩基配列のうち一部の配列を標的とするものであってもよい。
本発明の医薬組成物は、リウマチ、多発骨髄腫、キャッスルマン病、クローン病、全身型若年性特発性関節炎、全身性エリテマトーデス及び骨粗しょう症から選ばれる少なくとも１つの疾患を診断又は治療するために使用される。また、本発明の医薬組成物は炎症反応を抑制することもできる。
上記（２）〜（５）記載の方法において、滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現抑制は、例えばｈｓＨＲＤ３とシノビオリンとの結合阻害により行うことができる。

図１は、Ｈｒｄ３ｐとＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３のドメイン構造を示す図である。
図２は、ｓｉＲＮＡによるＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現が抑制されたことを示す図である。
図３は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞の増殖活性が抑制されたことを示す図である。
図４は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞のアポトーシスが誘導されたことを示す図である。
図５は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞へのアポトーシスが誘導されたことを示す図である。
図６は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞のシノビオリンタンパク質が減少したことを示す図である。
図７は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞のコラーゲン産生が抑制されたことを示す図である。
図８は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンが複合体を形成したことを示す図である。
図９は、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンが小胞体に共局在することを示す図である。
図１０は、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞のインターロイキン−６の産生が抑制されたことを示す図である。
図１１は、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３、およびシノビオリンの発現抑制により、両タンパク質の発現が抑制されたことを示す図である。
図１２Ａは、シノビオリンの非存在下ではＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３は不安定であることを示す図である。
図１２Ｂは、シノビオリンの非存在下ではＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３は不安定であることを示す図である。

以下、本発明を詳細に説明する。
本発明は、ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制し、滑膜細胞の異常増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む、リウマチ等の疾患の診断、治療に有効な医薬組成物に関する。
シノビオリンは酵母からヒトまで高度に保存されており、出芽酵母において詳細な解析が行われている。シノビオリンの出芽酵母オルソログであるＨｒｄ１ｐは、Ｈｒｄ３ｐと機能的な複合体を形成し、小胞体における異常タンパク質の分解に関わることが見出されている。出芽酵母のｈｒｄ３破壊株ではＨｒｄ１ｐの不安定化と減少が観察され、生理学的な基質の安定化と増加が報告されている。このことは、ヒトＨｒｄ３ｐオルソログ（ｈｓＨＲＤ３）もシノビオリンと同様に、滑膜組織の異常増殖に必須であり、新たな関節症の診断、および治療法の開発に有効であることを示している。
そこで、本発明において、まず出芽酵母Ｈｒｄ３ｐのアミノ酸配列を用いてホモロジー検索をした結果、ＳＥＬ１Ｌという既知の遺伝子が見出された。Ｈｒｄ３ｐとＳＥＬ１Ｌとの間においてアミノ酸配列の相同性は３０％、類似性は４５％であり、いずれも高くはないが、特異的な繰り返し構造と膜貫通ドメインが保存されている。従って、ＳＥＬ１ＬはＨｒｄ３ｐのオルソログであると決定した（図１）。次に２本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）を用いて滑膜細胞を処理すると、ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制できることを確認した（図２）。この条件下においては、滑膜細胞の細胞増殖活性は顕著に減少していた（図３）。また約３０％の細胞がアポトーシスを起こしていた（図４、５）。
出芽酵母においてＨｒｄ３ｐはＨｒｄ１ｐの安定化に必須である。そこでシノビオリンタンパク質をウェスタンブロットで検出したところ、シノビオリンタンパク質は、ｈｓＨＲＤ３抑制下において著しく減少していた（図６）。また、シノビオリンの発現が抑制されると、コラーゲン産生量も減少する。そこで、細胞内のコラーゲン量を測定したところ、これもコントロールに比べて減少していた（図７）。さらに、ｈｓＨＲＤ３はシノビオリンと細胞内で複合体を形成し（図８）、共に小胞体に局在している（図９）ことが明らかとなった。なお、滑膜細胞の増殖に重要な役割を果たしているインターロイキン−６も６３．２％まで減少していた（図１０）。また、細胞内にシノビオリンタンパク質が存在しないときは、ｈｓＨＲＤ３は著しく減少し（図１１）、非常に不安定であった（図１２Ａ及び図１２Ｂ）。
以上の結果は、ｈｓＨＲＤ３をターゲットとするアプローチは、ＲＡをはじめとする関節炎、線維症、癌及び脳神経疾患の新たな診断及び治療法の開発に有効であることを示している。特にＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の発現や機能のコントロールを介して、シノビオリンの発現や機能を制御するという作用機序に基づいた薬剤の開発に有用である。
１．滑膜細胞の増殖抑制
本発明において、「滑膜細胞」とは、リウマチ患者の関節部位において異常増殖している一連の細胞群を意味し、滑膜組織も包含する。
本発明において、「ｈｓＨＲＤ３」とは、酵母のシノビオリンであるＨｒｄ１ｐと結合して機能的複合体を形成し、小胞体の異常なタンパク質の分解に携わっている「Ｈｒｄ３ｐ」と呼ばれるタンパク質のヒトオルソログをいう。シノビオリンは、酵母からヒトまで高度に保存されており、特に出芽酵母において詳細な解析が行われている。この出芽酵母のオルソログであるＨｒｄ３ｐとアミノ酸のホモロジーが相同性で８０％、類似性で４５％であり、特異的な繰返し構造と膜貫通ドメインが保存されているＳＥＬ１Ｌという遺伝子が見いだされ、これが後にｈｓＨＲＤ３とされた。このｈｓＨＲＤ３は、配列番号１に示される塩基配列およびそのような配列と実質的に同一な塩基配列よりなる。実質的に同一な塩基配列とは、配列番号１からなるＤＮＡに対し相補的な塩基配列よりなるＤＮＡとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつｈｓＨＲＤ３活性を有するタンパク質をコードする塩基配列をいう。「ｈｓＨＲＤ３活性」とは、小胞体において、異常なタンパク質を分解する活性をいう。このような、ｈｓＨＲＤ３をコードするＤＮＡは、当業者に公知の方法で適当な断片を用いてプローブを作製し、このプローブを用いてコロニーハイブリダイゼーション、プラークハイブリダイゼーション、サザンブロット等の公知のハイブリダイゼーション法により、ｃＤＮＡライブラリーおよびゲノムライブラリーから得ることができる。上記ハイブリダイゼーションにおいてストリンジェントな条件としては、たとえば、ハイブリダイゼーションにおいて洗浄時の塩濃度が１００〜５００ｍＭ、好ましくは１５０〜３００ｍＭであり、温度が５０〜７０℃、好ましくは５５〜６５℃の条件が挙げられる。
ｈｓＨＲＤ３のアミノ酸配列を配列番号２に、Ｈｒｄ３ｐのアミノ酸配列を配列番号３に示す。
このｈｓＨＲＤ３の発現を抑制すると、滑膜細胞の増殖活性が著しく抑制される。滑膜細胞とは、通常の関節構成要素となる細胞であって、関節腔の内側の層を満たす滑液を産生する細胞である。
シノビオリン遺伝子の発現を抑制するには、ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制する方法が採用される。ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制するには、ＲＮＡｉという現象を利用することができるが、遺伝子工学技術を用いた部位特異的突然変異誘発法、アンチセンスヌクレオチド、リボザイムを用いてもよい。
ＲＮＡｉとは、ｄｓＲＮＡ（ｄｏｕｂｌｅ−ｓｔｒａｎｄ ＲＮＡ）が標的遺伝子に特異的かつ選択的に結合し、当該標的遺伝子を切断することによりその発現を効率よく阻害する現象である。例えば、ｄｓＲＮＡを細胞内に導入すると、そのＲＮＡと相同配列の遺伝子の発現が抑制（ノックダウン）される。
上記ＲＮＡｉを起こさせるために、例えばシノビオリン遺伝子に対するｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡを設計及び合成し、これを作用させればよい。あるいは、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制しても、シノビオリンの発現を抑制することができる。
ｓｉＲＮＡの設計基準は、以下の通りである。
（ａ）シノビオリンをコードする遺伝子の開始コドンから１００ヌクレオチド下流の領域を選択する。
（ｂ）選択した領域から、ＡＡで始まる連続する１５〜３０塩基、好ましくは１９塩基の配列を探し、その配列のＧＣ含量が３０〜７０％、好ましくは３５〜４５％となるものを選択する。
具体的には、以下の塩基配列を有するものをｓｉＲＮＡとして使用することができる。
センス鎖 ： ＣＵＵＧＡＵＡＵＧＧＡＣＣＡＧＣＵＵＵＴＴ（配列番号４）
アンチセンス鎖： ＡＡＡＧＣＵＧＧＵＣＣＡＵＡＵＣＡＡＧＴＴ（配列番号５）
ｓｉＲＮＡを滑膜細胞に導入するには、ｉｎ ｖｉｔｒｏで合成したｓｉＲＮＡをプラスミドＤＮＡに連結してこれを細胞に導入する方法、２本鎖ＲＮＡをアニールする方法などを採用することができる。
このようにｓｉＲＮＡで滑膜細胞を処理して、ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制する。
また、本発明は、ＲＮＡｉ効果をもたらすためにｓｈＲＮＡを使用することもできる。ｓｈＲＮＡとは、ショートヘアピンＲＮＡと呼ばれ、一本鎖の一部の領域が他の領域と相補鎖を形成するためにステムループ構造を有するＲＮＡ分子である。
ｓｈＲＮＡは、その一部がステムループ構造を形成するように設計することができる。例えば、ある領域の配列を配列Ａとし、配列Ａに対する相補鎖を配列Ｂとすると、配列Ａ、スペーサー、配列Ｂの順でこれらの配列が一本のＲＮＡ鎖に存在するように連結し、全体で４５〜６０塩基の長さとなるように設計する。配列Ａは、標的となるｈｓＨＲＤ３遺伝子（配列番号１）の一部の領域の配列であり、標的領域は特に限定されるものではなく、任意の領域を候補にすることが可能である。そして配列Ａの長さは１９〜２５塩基、好ましくは１９〜２１塩基である。
滑膜細胞の増殖を測定する方法は、培養液中にａｌａｍａｒＢｌｕｅを適当量添加し、数時間後の５４０ｎｍを励起波長としたときの５９０ｎｍの蛍光強度を測定すればよい。
さらに、シノビオリン遺伝子又はｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制するために、部位特異的突然変異誘発法等を使用することができる。部位特異的突然変異誘発法は当分野において周知であり、市販のキット、例えばＧｅｎｅＴａｉｌｏｒ^ＴＭ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（インビトロジェン社製）、ＴａＫａＲａ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｍｕｔａｎ−Ｋ、Ｍｕｔａｎ−Ｓｕｐｅｒ Ｅｘｐｒｅｓｓ Ｋｍ等（タカラバイオ社製））を使用することができる。
本発明は、ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンが結合して形成された、小胞体に局在する複合体の形成を阻害することにより、シノビオリンの発現を抑制する方法を提供する。
ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンとが結合して複合体を形成すると、シノビオリンの発現が上昇する。この場合、ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンの複合体は小胞体に局在する。小胞体内腔における生合成途中のタンパク質は不安定であるため、種々の物理化学的ストレス（例えば虚血、低酸素、熱ショック、アミノ酸飢餓、遺伝子変異等）に曝される。このようなストレスを小胞体ストレス（ＥＲストレス）といい、小胞体内に異常な折りたたみ構造を持つタンパク質（ｕｎｆｏｌｄｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ）の出現頻度を上昇させる。適切な高次構造がとれずに立体構造に異常をきたした不良又は損傷タンパク質は小胞体を出てゴルジ体に輸送されないため、そのままでは小胞体内に不良タンパク質等が蓄積されてしまう。そこで、これらのＥＲストレスに対して、細胞はＵＰＲ（Ｕｎｆｏｌｄｅｄ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｓｐｏｎｓｅ）及びＥＲＡＤ（Ｅｎｄｐｌａｓｍｉｃ Ｒｅｔｉｃｕｌｕｍ−Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ Ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ）と呼ばれる小胞体特異的なストレス応答機構によって、不良タンパク質等を分解し、そのような不良タンパク質が蓄積することによる小胞体のストレスを防ぐことにより、小胞体の品質管理を行い、細胞機能の恒常性を保持している。出芽酵母のｈｒｄ３破壊株においては、Ｈｒｄ１ｐタンパク質が不安定かつ減少しており、基質が生理学的に安定化かつ増加していることが観察されているため、ヒトにおいても、シノビオリンと複合体を形成しているｈｓＨＲＤ３がこの品質管理機能に何らかの関与をしていると考えられる。
つまり、ｈｓＨＲＤ３の発現が抑制されると、シノビオリンと結合するｈｓＨＲＤ３が減少し、その結果シノビオリンの発現も抑制されるのである。
また、シノビオリンの発現が増加すると、ＥＲＡＤが亢進されることにより、ＥＲストレスによるアポトーシスの感受性が低下し、反対に、シノビオリンの発現が抑制されると、アポトーシスの感受性が増加する。したがって、ｈｓＨＲＤ３の発現が抑制されると、シノビオリンの機能も低下し、結果としてアポトーシスが亢進する。
一方、コラーゲンについては、シノビオリンはＰ４ＨＡ１というコラーゲン合成に必須のタンパク質のユビキチン化を通じて、その酵素としての品質を保つことにより、コラーゲン合成に必須の働きをしている。シノビオリンの発現が抑制されるとＰ４ＨＡ１の酵素活性が低下し、コラーゲン合成が低下する。したがってｈｓＨＲＤ３の発現が抑制されると、シノビオリンの機能も低下し、結果としてコラーゲン合成が低下する。
したがって、ｈｓＨＲＤ３もシノビオリンと同様に、滑膜組織の異常増殖に必須であり、ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することにより、滑膜細胞の増殖を抑制すること、滑膜細胞、癌細胞、白血病又は悪性腫瘍のアポトーシスを誘起させること、及び、滑膜細胞、肺の繊維化又は肝硬変におけるコラーゲンの産生を抑制することができるため、新たなリウマチ、線維症、関節症、癌および脳神経疾患の診断、および治療法を開発することができる。
上記の滑膜細胞の増殖を抑制するシノビオリンの発現阻害物質は、インターロイキン−６の産生を抑制する物質でもある。
インターロイキン−６はＢリンパ球の増殖分化のみならず、広く免疫応答、造血反応、炎症反応、及び神経系の細胞の増殖・分化、あるいは機能発現に重要な役割をしている多機能を有する典型的なサイトカインである。その作用は、骨髄における血小板の誘導、免疫系細胞の炎症部位への誘導、白血球のアポトーシスへの抵抗性の寄与、ＶＥＧＦの誘導を介した血管の誘導、Ｂ細胞の抗体産生細胞への分化、肝臓におけるＣ−反応性タンパク質産生量の増加などがある。インターロイキン−６は、通常免疫系の細胞により産生されるが、リウマチ滑膜細胞、白血病、骨髄腫など様々な増殖性疾患を引き起こす細胞からも産生され、それらの増殖に必須である。インターロイキン−６が関与する疾患として、リウマチ、多発骨髄腫、キャッスルマン病、クローン病、全身型若年性特発性関節炎、全身性エリテマトーデス、骨粗しょう症などがある。また、慢性炎症性増殖性疾患においては、インターロイキン−６が病態を形成するのに重要な役割を演じていることが知られており、インターロイキン−６遺伝子の異常発現によりリウマチ等の自己免疫疾患や、血液中の細胞ががん化して起こる多発性骨髄腫及び白血病等の形質細胞腫の発症が誘導されることが明らかになっている。例えば、リウマチ患者関節液中ではインターロイキン−６が著増していること、形質細胞腫／多発性骨髄腫の増殖因子がインターロイキン−６そのものであること、インターロイキン−６が、骨髄性白血病細胞に作用し、増殖を抑制するとともに、マクロファージへの分化を誘導することなどである。
従って、滑膜細胞、がん細胞、白血病細胞、骨肉種細胞、悪性腫瘍細胞、免疫系細胞及び破骨細胞において、インターロイキン−６の産生を抑制することにより、これらのリウマチ等の自己免疫疾患や、血液中の細胞ががん化して起こる多発性骨髄腫、又は、白血病等の発症を抑制することができる。
インターロイキン−６の産生を抑制するには、上記の滑膜細胞の増殖を抑制するシノビオリンの発現阻害物質を用いることができる。具体的には、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質である、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子に対するｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡなどを用いることができる。
２．医薬組成物
（１）滑膜細胞の増殖を抑制する物質を含む医薬組成物
本発明の医薬組成物の適用疾患としては、リウマチ、線維症、関節炎、癌などの細胞増殖性疾患及び脳神経疾患などが挙げられ、単独でも複数の疾患が併発していても適用の対象となる。
本発明の医薬組成物を癌の治療剤として使用する場合は、適用部位は特に限定されず、脳腫瘍、舌癌、咽頭癌、肺癌、乳癌、食道癌、胃癌、膵臓癌、胆道癌、胆嚢癌、十二指腸癌、大腸癌、肝癌、子宮癌、卵巣癌、前立腺癌、腎癌、膀胱癌、横紋筋肉腫、線維肉腫、骨肉腫、軟骨肉腫、皮膚癌、各種白血病（例えば急性骨髄性白血病、急性リンパ性白血病、慢性骨髄性白血病、慢性リンパ性白血病、成人型Ｔ細胞白血病、悪性リンパ腫）等を対象として適用される。
上記癌は、原発巣であっても、転移したものであっても、他の疾患と併発したものであってもよい。
脳神経系疾患としては、例えばアルツハイマー、パーキンソン病、ポリグルタミン病が挙げられる。
（２）インターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む医薬組成物
本発明の医薬組成物の適用疾患としては、リウマチ、多発骨髄腫、キャッスルマン病、クローン病、全身型若年性特発性関節炎、全身性エリテマトーデス、骨粗しょう症などが挙げられる。
また、インターロイキン６は炎症に伴う多くの症状（痛み、発熱など）を引き起こすサイトカインでもある。したがって、本発明の医薬組成物は、炎症反応を抑制することもできる。炎症反応とは、生体に感染や外傷、火傷あるいはアレルゲンなどの刺激により起こる局所的な組織反応をいい、局所反応に伴う全身的な現象も含まれる。具体的には、発赤、発熱、疼痛、腫脹に機能障害を加えて、炎症の五徴という。これらは急性炎症の肉眼的特徴を示しているが、この現象は局所的な血管の変化、すなわち、血管の拡張、透過性の亢進、白血球の浸潤によるものである。
本発明の滑膜組織の異常増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する物質を有効成分として含有する医薬組成物の投与形態は、経口、非経口投与のいずれでも可能である。経口投与の場合は、液剤として、または適当な剤型により投与が可能である。非経口投与の場合は、経肺剤型（例えばネフライザーなどを用いたもの）、経鼻投与剤型、経皮投与剤型（例えば軟膏、クリーム剤）、注射剤型等が挙げられる。注射剤型の場合は、例えば点滴等の静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射等により全身又は局部的に投与することができる。
本発明の医薬組成物を遺伝子治療剤として使用する場合は、本発明の医薬組成物を注射により直接投与する方法のほか、核酸が組込まれたベクターを投与する方法が挙げられる。上記ベクターとしては、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、ヘルペスウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクター、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター等が挙げられ、これらのウイルスベクターを用いることにより効率よく投与することができる。
また、本発明の医薬組成物をリポソームなどのリン脂質小胞体に導入し、その小胞体を投与することも可能である。本発明の医薬組成物を保持させた小胞体をリポフェクション法により所定の細胞に導入する。そして、得られる細胞を例えば静脈内、動脈内等から全身投与する。脳等に局所投与することもできる。本発明の医薬組成物を目的の組織又は器官に導入するために、市販の遺伝子導入キット（例えばアデノエクスプレス：クローンテック社）を用いることもできる。
本発明の医薬組成物は、常法にしたがって製剤化することができ、医薬的に許容される担体や添加物を含むものであってもよい。このような担体及び添加物として、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリアクリル酸ナトリウム、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、メチルセルロース、エチルセルロース、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、寒天、ポリエチレングリコール、ジグリセリン、グリセリン、プロピレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、医薬添加物として許容される界面活性剤等が挙げられる。
上記添加物は、本発明の治療剤の剤型に応じて上記の中から単独で又は適宜組み合わせて選ばれる。例えば、注射用製剤として使用する場合、精製された滑膜組織の異常増殖を抑制する物質を溶剤（例えば生理食塩水、緩衝液、ブドウ糖溶液等）に溶解し、これにＴｗｅｅｎ ８０、Ｔｗｅｅｎ ２０、ゼラチン、ヒト血清アルブミン等を加えたものを使用することができる。あるいは、使用前に溶解する剤形とするために凍結乾燥したものであってもよい。凍結乾燥用賦形剤としては、例えば、マンニトール、ブドウ糖等の糖アルコールや糖類を使用することができる。
本発明の医薬組成物の投与量は、年齢、性別、症状、投与経路、投与回数、剤型によって異なる。投与方法は、患者の年齢、症状により適宜選択する。有効投与量は、一回につき体重１ｋｇあたり０．１μｇ〜１００ｍｇ、好ましくは１〜１０μｇである。但し、上記治療剤はこれらの投与量に制限されるものではない。アデノウイルスの場合の投与量は１日１回あたり１０^６〜１０^１３個程度であり、１〜８週間隔で投与される。但し、本発明の医薬組成物はこれらの投与量に制限されるものではない。ｓｉＲＮＡを混合する場合の用量は、０．０１〜１０μｇ／ｍｌ、好ましくは０．１〜１μｇ／ｍｌである。
以下、実施例により本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。

出芽酵母Ｈｒｄ３ｐを用いたホモロジー検索
出芽酵母Ｈｒｄ３ｐ／Ｙｌｒ２０７ｗｐのアミノ酸配列を用いてホモロジーサーチを実行した。
その結果、酵母Ｈｒｄ３ｐのヒトオルソログである配列番号１に示す塩基配列によりコードされるアミノ酸配列に相当するタンパク質を同定し、ＳＥＬ１Ｌ遺伝子が見出された。Ｈｒｄ３ｐのアミノ酸配列を配列番号３に示す。Ｈｒｄ３ｐとＳＥＬ１Ｌとの間においてアミノ酸配列の相同性は３０％、類似性は４５％であり、いずれも高くはないが、特異的な繰り返し構造と膜貫通ドメインが保存されている。従って、ＳＥＬ１ＬはＨｒｄ３ｐのオルソログであると決定した（図１）。

ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制の検討
（１）ＲＡ滑膜細胞を各遺伝子に対する２本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）でトランスフェクションし、９６時間後に細胞を回収した。ＲＮＡを抽出しＲＴ−ＰＣＲで各遺伝子の発現量を定量した。
すなわち、トランスフェクション前日、リウマチ患者から単離した滑膜細胞を６ｃｍディッシュ１枚に付き、１×１０^４個の細胞を播いた。３種類のＲＮＡｉ用オリゴとＲＮＡオリゴ無し（ネガティブコントロール）の各サンプルに付きディッシュ１枚、合計４枚播いた。培地は１０％ＦＢＳ（牛胎児血清）を含み、抗生物質を含まないＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ，Ｓｉｇｍａ Ｄ６０４６）を３ｍｌ用いた。２４時間後、血清も抗生物質も含まないＤＭＥＭ３ｍｌで１回洗い、同じＤＭＥＭを１．６ｍｌ加えた。
その後トランスフェクション試薬を添加した。トランスフェクション試薬は次のように調整した。ＧＦＰ、ｈｓＨＲＤ３、シノビオリンを標的としたＲＮＡｉのために、下記配列に示したＲＮＡオリゴ（配列番号４〜９）を最終濃度が１００μＭになるようにＴＥに溶かした。
ｈｓＨＲＤ３を標的としたｓｉＲＮＡのセンス鎖：ＣＵＵＧＡＵＡＵＧＧＡＣＣＡＧＣＵＵＵＴＴ（配列番号４）
ｈｓＨＲＤ３を標的としたｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖：ＡＡＡＧＣＵＧＧＵＣＣＡＵＡＵＣＡＡＧＴＴ（配列番号５）
ＧＦＰを標的としたｓｉＲＮＡのセンス鎖：ＧＧＣＵＡＣＧＵＣＣＡＧＧＡＧＣＧＣＡＴＴ（配列番号６）
ＧＦＰを標的としたｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖：ＵＧＣＧＣＵＣＣＵＧＧＡＣＧＵＡＧＣＣＴＴ（配列番号７）
シノビオリンを標的としたｓｉＲＮＡのセンス鎖：ＧＧＵＧＵＵＣＵＵＵＧＧＧＣＡＡＣＵＧＡＧＴＴ（配列番号８）
シノビオリンを標的としたｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖：ＣＵＣＡＧＵＵＧＣＣＣＡＡＡＧＡＡＣＡＣＣＴＴ（配列番号９）
各遺伝子に対するＲＮＡオリゴのセンス鎖とアンチセンス鎖を２０μＭになるように混合した。９０℃で２分間熱変性した後、３７℃で１時間ゆっくり冷却することにより、両オリゴをアニーリングさせた。アニーリングした２０μＭ ＲＮＡオリゴ１０μｌをオプティメン（Ｏｐｔｉｍｅｍ）３５０μｌと混合しＡ液を作った。次にＯｌｉｇｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ^ＴＭ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｔ．Ｎｏ．１２２５２−０１１）８μｌをオプティメン３２μｌと混合しＢ液を作った。Ａ液とＢ液を５分間インキュベート後、両者を混合し、さらに１５分インキュベートした。この混合液４００μｌを全量、培地を交換した各ディッシュに加えた。その４時間後、ＦＢＳを２００μｌ添加した。
トランスフェクション試薬添加９６時間後、細胞からフェノール抽出法で全ＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲに用いた。ＲＴ−ＰＣＲはＳＵＰＥＲＳＣＲＩＰＴ^ＴＭ Ｏｎｅ−Ｓｔｅｐ ＲＴ−ＰＣＴ １００ Ｒｅａｃｔｉｏｎｓ（Ｉｎｖｉｔｏｇｅｎ Ｃａｔ．Ｎｏ．１０９２８−０４２）を用いた。すなわち、２×ＲＸＮ混合物５０μｌ、ＲＴ／Ｐｌａｔｉｎｕｍ２μｌ、ＤＥＰＣ水２８μｌ、以下に示す増幅用プライマー３．２μＭ溶液の各セット１０μｌ×２、合計１００μｌを混合し、１０／μｌずつＰＣＲチューブに分注した。そして１μｌのＲＮＡをＲＴ−ＰＣＲ鋳型として添加してＰＣＲ反応を開始した。
ｈｓＨＲＤ３増幅用オリゴマー（５’−＞３’）：ＧＧＣＴＧＡＡＣＡＧＧＧＣＴＡＴＧ（配列番号１０）
ｈｓＨＲＤ３増幅用オリゴマー（３’−＞５’）：ＣＣＧＣＴＣＧＡＧＴＴＡＣＴＧＴＧＧＴＧＧＣＴＧＣＴＧＣＴＣ（配列番号１１）
シノビオリン増幅用オリゴマー（５’−＞３’）：ＡＧＣＴＧＧＴＧＴＴＴＧＧＣＴＴＴＧＡＧ（配列番号１２）
シノビオリン増幅用オリゴマー（３’−＞５’）：ＧＧＧＴＧＧＣＣＣＣＴＧＡＴＣＣＧＣＡＧ（配列番号１３）
ｈＧＡＰＤＨ増幅用オリゴマー（５’−＞３’）：ＡＧＧＴＧＡＡＧＧＴＣＧＧＡＧＴＣＡＡＣＧＧＡ（配列番号１４）
ｈＧＡＰＤＨ増幅用オリゴマー（３’−＞５’）：ＡＧＴＣＣＴＴＣＣＡＣＧＡＴＡＣＣＡＡＡＧＴＴＧ（配列番号１５）
ＲＮＡオリゴ無しは１００、５０、１０ｎｇ、その他は１００ｎｇのＲＮＡを鋳型として用いた。サイクルは、ｃＤＮＡ伸長反応として５０℃３０分９４℃２分を１回、続けてＰＣＲ増幅反応として９４℃３０秒、５０℃３０秒、７２℃１分を３０回行い、最後に７２℃５分最終伸長反応を行った後４℃で保存した。このＰＣＲ反応液に２μｌの６×サンプルバッファーを加え、全量を０．８％アガロースで１００ボルト３０分泳動しＵＶイルミネーターでＰＣＲ産物を検出した。
その結果、ｓｉＲＮＡにより、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現が抑制された（図２）。図２において、ｈｓＨＲＤ３のＲＮＡｉによりＰＣＲ産物の量が、１０ｎｇのオリゴ無し（ネガティブコントロール）と同じレベルに減少したことから、ｈｓＨＲＤ３のｍＲＮＡの発現レベルが１０％以下に抑制されたことが分かった。またこのときシノビオリンのｍＲＮＡは１００ｎｇのオリゴ無しやＧＦＰ ＲＮＡｉと同レベルであったことからｈｓＨＲＤ３の発現抑制はシノビオリンの転写には影響を与えないことが分かった。
（２）ＲＡ滑膜細胞を各遺伝子に対する二本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）でトランスフェクションし、４８時間後にａｌａｍａｒＢｌｕｅ^ＴＭを添加した。さらに４８時間後に細胞増殖活性を測定した。
すなわち、トランスフェクション前日、リウマチ患者から単離した滑膜細胞を９６−ウェルプレートの各ウェルに、１６０個の細胞を播いた。培地は１０％ＦＢＳ（牛胎児血清）を含み、抗生物質を含まないＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ，Ｓｉｇｍａ Ｄ６０４６）を１００μｌ用いた。２４時間後、血清も抗生物質も含まないＤＭＥＭ１００μｌで１回洗い、同じＤＭＥＭを８０μｌ加えた。その後実施例２（１）と同様の方法で調製したトランスフェクション試薬を２０μｌずつ、培地を交換した各ウェルに加えた。さらに４時間後、ＦＢＳを１０μｌ添加した。トランスフェクション試薬添加４８時間後に各ウェルに１０μｌのａｌａｍａｒＢｌｕｅ^ＴＭを添加した。４８時間３７℃でインキュベートした後、５６０ｎｍで励起したときの５９０ｎｍの蛍光強度を測定した。
その結果、ＳＥＩＬ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、滑膜細胞の増殖活性が約６０％にまで抑制された（図３）。
このことは、ｈｓＨＲＤ３はシノビオリン同様にＲＡ滑膜細胞の細胞増殖に重要であり、その発現抑制は細胞の増殖低下を引き起こすことを意味する。
（３）ＲＡ滑膜細胞を各遺伝子に対する二本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）でトランスフェクションし１２０時間後に細胞を回収した。回収した細胞をヨウ化プロピジウムで染色し、ＦＡＣＳでＤＮＡ含量を測定した。
すなわち、トランスフェクション前日、リウマチ患者から単離した滑膜細胞を６ｃｍディッシュ１枚に、１×１０^４個の細胞を播いた。三種類のＲＮＡｉ用オリゴとＲＮＡオリゴ無し（ネガティブコントロール）の各サンプルをそれぞれディッシュ１枚、合計４枚播いた。培地は１０％ＦＢＳ（牛胎児血清）を含み、抗生物質を含まないＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ，Ｓｉｇｍａ Ｄ６０４６）を３ｍｌ用いた。２４時間後、血清も抗生物質も含まないＤＭＥＭ３ｍｌで１回洗い、同じＤＭＥＭを１．６ｍｌ加えた。その後実施例２（１）と同様の方法で調製したトランスフェクション試薬４００μｌを全量、培地を交換した各ディッシュに加えた。さらに４時間後、ＦＢＳを２００μｌ添加した。
トランスフェクション試薬添加１２０時間後、全細胞を回収し、０．５ｍｌのＰＢＳ（−）／０．２％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００で可溶化した後、ナイロンメッシュを通して、細胞塊を取り除いた。１ｍｌの５０μｇ／ｍｌ ＲＮａｓｅ／ＰＢＳ（−）と１ｍｌの１００μｇ／ｍｌのヨウ化プロピジウム／ＰＢＳ（−）を加え、混合した後、氷中に保存した。各細胞の蛍光量をＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ（ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ）で計測し、ＣＥＬＬＱｕｅｓｔで解析した。
その結果、図４に示すようにアポトーシスを起こしたと考えられるＤＮＡ含量２ｎ以下の細胞群がｈｓＨＲＤ３のＲＮＡｉにより３０％以上にまで増加した。またこの割合はシノビオリンに対するＲＮＡｉと同程度に高かった（図５）。このことは、ｈｓＨＲＤ３はシノビオリン同様に滑膜細胞の増殖に必須の遺伝子であり、その発現抑制は高頻度のアポトーシスを引き起こすことを意味している。

（１）ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制下におけるウェスタンブロットを用いたシノビオリンの検出
ＲＡ滑膜細胞を各遺伝子に対する二本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）でトランスフェクションし、４８時間後に細胞を回収した。総抽出液を抽出しウェスタンブロットで各タンパク質を検出した。
すなわち、トランスフェクション前日、リウマチ患者から単離した滑膜細胞を１０ｃｍディッシュ１枚に付き、９×１０^４個の細胞を播いた。三種類のＲＮＡｉ用オリゴとＲＮＡオリゴ無し（ネガティブコントロール）の各サンプルに付きディッシュ１枚、合計４枚播いた。培地は１０％ＦＢＳ（牛胎児血清）を含み、抗生物質を含まないＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ，Ｓｉｇｍａ Ｄ６０４６）を１０ｍｌ用いた。２４時間後、血清も抗生物質も含まないＤＭＥＭ１０ｍｌで１回洗い、同じＤＭＥＭを９ｍｌ加えた。その後実施例２（１）と同様の方法で調製したトランスフェクション試薬の３倍量１．２ｍｌを、培地を交換した各ディッシュに加えた。さらに４時間後、ＦＢＳを１ｍｌ添加した。
トランスフェクション試薬添加４８時間後、全細胞を回収し、５０μｌの抽出バッファーＩＶ（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５、２ｍＭ ＥＤＴＡ、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、１％ＮＰ−４０、５００ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＰＭＳＦ、０．１％アプロティニン（Ａｐｒｏｔｉｎｉｎ）、０．５μｇ／ｍｌペプスタチンＡ（ＰｅｐｓｔａｔｉｎＡ）、１μｇ／ｍｌリューペプチン（Ｌｅｕｐｅｐｔｉｎ））に再縣濁した後、氷中に３０分置き、１４０００ｒｐｍ、４℃、３０分遠心した。上清１μｌをＢｉｏ−Ｒａｄ ＤＣ ＰｒｏｔｅｉｎＡｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＢＩＯ−ＲＡＤ、Ｃａｔ．Ｎｏ．５００−０１１６）を用いたタンパク質濃度測定に用い、残り４５μｌに１５μｌの４×ＳＤＳバッファーを加え、１００℃で５分加熱した。１０μｇ相当の細胞抽出液を７．５％アクリルアミドゲル２枚で泳動、分離し、ニトロセルロース膜（ＯＰＴＩＴＲＡＮ ＢＡ−Ｓ ８５ ＲＥＩＮＦＯＲＣＥＤＮＣ、Ｓｃｈｌｅｉｃｈｅｒ ＆ Ｓｃｈｕｅｌｌ、Ｃａｔ．Ｎｏ．１０ ４３９１９６）にブロット後、５％スキムミルクで３０分ブロッキングした。
一次抗体として１０００倍希釈した抗シノビオリンモノクローナル抗体（１０Ｄａ）または抗ＣＲＥＢ−１抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚｅ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ｓｃ−５８）で３０分インキュベートした。抗シノビオリンモノクローナル抗体の二次抗体には２０００倍希釈したＨＲＰ−結合抗−マウスＩｇＧ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ＮＡ９３１Ｖ）を、抗ＣＲＥＢ−１抗体には３０００倍希釈したＨＲＰ−結合抗−ウサギＩｇＧ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ＮＡ９３１Ｖ）を使用し、３０分インキュベートした。検出はＨｏｍｅ−ｍａｄｅ ＥＣＬ（４４μｌの９０ｍＭクマリン酸、１００μｌの２５０ｍＭルミノール、６μｌの過酸化水素水を２０ｍｌの１００ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．５で混合したもの）を使用した。
その結果、シノビオリンタンパク質は、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３抑制下において著しく減少していた（図６）。すなわち、ｈｓＨＲＤ３の発現抑制はシノビオリンタンパク質の不安定化を引き起こすことが明らかになった。
（２）シノビオリンの発現抑制下におけるコラーゲン産生量の検討
ＲＡ滑膜細胞を各遺伝子に対する二本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）でトランスフェクションし、４８時間後に細胞を回収した。総抽出液を調製し、細胞内のコラーゲン量を測定した。
すなわち、実施例３（１）と同様な方法でトランスフェクション、細胞抽出液を調製し、３０μｇ相当の抽出液を抽出バッファーＩＶで１００μｌに調節した後、ＳＩＲＣＯＬ Ｃｏｌｌａｇｅｎ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ（ＱＢＳ社／フナコシ Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｓ１１１１）でコラーゲン量を測定した。
その結果、ｈｓＨＲＤ３をノックアウトした細胞はコントロール（ＧＦＰ）に比べて、細胞内コラーゲン量が約７０％にまで減少していた（図７）。
すなわち、ｈｓＨＲＤ３はシノビオリンタンパク質の安定化を通じて、コラーゲンの産生を促進しており、ｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することにより、シノビオリンタンパク質の量が減少し、コラーゲン産生量を低下させることができる。

ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンの細胞内における複合体の形成
ＨＥＫ２９３細胞にＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３ＢとＦＬＡＧ−シノビオリンのプラスミドをトランスフェクションした。４８時間後に細胞を回収し、総抽出液を調整した。抗ＦＬＡＧ抗体（ａ）、または抗ＨＡ抗体（ｂ）で免疫沈降し、それぞれの抗体でウェスタンブロットを行った。
すなわち、ｈｓＨＲＤ３Ｂのシグナルペプチド（ＳＰ）の直後、配列番号１に示されたアミノ酸配列の２６番目と２７番目との間にＨＡ−タグが挿入されるようにＤＮＡ構築したプラスミド（ＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ）をｐｃＤＮＡ３−ベクターにクローニングした。
８×１０^５個のＨＥＫ２９３細胞を１０ｃｍディッシュ４枚に播いた。２４時間後、以下の（ｃ）〜（ｆ）の４種類の組み合わせのプラスミドをトランスフェクションした。
（ｃ）１０μｇのＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ／ｐｃＤＮＡ３と３μｇのｐＣＡＧＧＳ−ベクター
（ｄ）１０μｇのＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ／ｐｃＤＮＡ３と３μｇのＦＬＡＧ−シノビオリン／ｐＣＡＧＧＳ
（ｅ）１０μｇのｐｃＤＮＡ３−ベクターと３μｇのＦＬＡＧ−シノビオリン／ｐＣＡＧＧＳ
（ｆ）１０μｇのＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ／ｐｃＤＮＡ３と３μｇのＦＬＡＧ−シノビオリン／ｐＣＡＧＧＳ
トランスフェクション４８時間後、細胞を回収し、２００μｌの抽出バッファーＩＩ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．５％ＮＰ−４０、１０ｍＭ ＭｇＣｌ_２１０％ｇｌｙｃｅｒｏｌ、５ｍＭ ＥＧＴＡ、２０ｍＭ ＮａＦ、５０ｍＭ β−グリセロフォスフェート（ｇｌｙｃｅｒｏｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、１ｍＭ Ｎａ_３ＶＯ_４、１０ｍＭ ＮＥＭ（Ｎ−エチルマレイミド）、１ｍＭ ＰＭＳＦ、１ｍＭ ＤＴＴ、０．１％アプロティニン、０．５μｇ／ｍｌペプスタチンＡ、１μｇ／ｍｌリューペプチン）に再縣濁し、氷上で３０分インキュベートした後、１４０００ｒｐｍ、４℃、３０分遠心した。タンパク質１００μｇ相当の抽出物を抽出バッファーＩＩで１ｍｌに調節した。このとき同時に牛血清アルブミンを最終濃度０．５％になるように加えた。
次に、トランスフェクション（ｃ）（ｄ）由来の抽出物には４．９ｍｇの抗ＦＬＡＧ抗体（Ｍ２、ＳＩＧＭＡ、Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｆ３１６５）を、（ｅ）（ｆ）由来の抽出物には２．４ｍｇの抗ＨＡ抗体（１２ＣＡ５、Ｒｏｃｈｅ、Ｃａｔ．Ｎｏ．１ ５８３ ８１６）を加え、４℃で一晩浸透しながらインキュベートした。翌日、５０％スラリーのプロテイン−Ｇセファロースビーズを６０μｌ加え、さらに４℃で１時間インキュベートした。このビーズを０．５ｍｌの抽出バッファーＩＩで２回、０．５ｍｌの抽出バッファーＩＩ＋１５０ｍＭ ＮａＣｌ（最終濃度３００ｍＭ ＮａＣｌ）で２回洗い、３０μｌの２×ＳＤＳサンプルバッファーを加え、１００℃、５分加熱することにより、吸着したタンパク質を溶出した。実施例３（１）と同様の方法でＳＤＳ−ＰＡＧＥ、ウェスタンブロットを行い、免疫沈降したタンパク質を検出した。
その結果、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３はシノビオリンと細胞内で複合体を形成していることが判明した（図８）。
（２）ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンの細胞内における共局在
ＨＥＫ２９３細胞をＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３ＢとＦＬＡＧ−シノビオリンのプラスミドでトランスフェクションした。２４時間後に細胞を固定し、抗ＨＡ抗体と抗シノビオリンモノクローナル抗体で免疫染色した。
すなわち、２０００個のＨＥＫ２９３細胞をチャンバースライドの各チャンバーに播いた。２４時間後、０．１５μｇのＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ／ｐｃＤＮＡ３と０．０５μｇのＦＬＡＧ−シノビオリンでトランスフェクションした。トランスフェクション４８時間後、細胞を４％パラホルムアルデヒドで３０分固定し、３％ＢＳＡ／ＰＢＳ（−）で１晩ブロッキングした。翌日最終濃度が１ｎｇ／μｌになるように０．３％ＢＳＡ／ＰＢＳ（−）で希釈した抗ＨＡ抗体（３Ｆ１０、Ｒｏｃｈｅ、Ｃａｔ．Ｎｏ．１ ８６７ ４３１）と１００倍希釈した抗シノビオリンモノクローナル抗体（１０Ｄａ）で染色し、抗ＨＡ抗体は抗ラットＩｇ ＦＩＴＣ抗体（ＤＡＫＯ、Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｆ０２３４）で、抗シノビオリン抗体は抗マウスＩｇ ＴＲＩＴＣ抗体（ＤＡＫＯ、Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｒ０２７０）で検出した。サンプルの観察、撮影は共焦点レーザースキャン顕微鏡ＬＳＭ５１０（Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．）で、画像解析はＬＳＭ５１０−ｖ３．０で行った。
その結果、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンは小胞体に共局在した（図９）。図９において、左列はｈｓＨＲＤ３の局在の図（緑色）、中央列はシノビオリンの局在の図（赤色）、右列は両者を重ね合わせた図（黄色）である。
これらの結果より、ｈｓＨＲＤ３はシノビオリンと小胞体において複合体を形成していることが判明した。

ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制下におけるインターロイキン−６産生量の検討
（１）ＲＡ滑膜細胞を各遺伝子に対する二本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）でトランスフェクションし、９６時間後に培地を新しいものに交換した。さらに２４時間後に培地を回収し、その中に含まれるインターロイキン−６の量を測定した。
すなわち、トランスフェクション前日に、リウマチ患者から単離した滑膜細胞を６ｃｍディッシュ１枚に付き、１×１０^４個の細胞を播いた。三種類のＲＮＡｉとＲＮＡオリゴ無し（ネガティブコントロール）の各サンプルに付きディッシュ１枚、合計４枚播いた。培地は１０％ＦＢＳ（牛胎児血清）を含み、抗生物質を含まないＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ，Ｓｉｇｍａ Ｄ６０４６）を３ｍｌ用いた。２４時間後、血清も抗生物質も含まないＤＭＥＭ３ｍｌで１回洗い、同じＤＭＥＭを１．６ｍｌ加えた。その後実施例２（１）と同様の方法で調製したトランスフェクション試薬４００μｌを全量、培地を交換した各ディッシュに加えた。さらに４時間後、ＦＢＳを２００μｌ添加した。
トランスフェクション試薬添加９６時間後、培地を新しいものに交換した。２４時間培養後、培地を回収し、１４０００ｒｐｍ、３０ｍｉｎ、４℃で遠心した。その上清中に含まれるインターロイキン−６タンパク質量をＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（ＢＩＯＳＯＵＲＣＥ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ Ｋｉｔ ｆｏｒ Ｈｕｍａｎ ＩＬ−６，Ｃａｔ．＃ ＫＨＣ００６１）で測定した。同時に細胞も回収し、２０μＬの抽出バッファーＩＩＩ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５，５ｍＭ ＥＤＴＡ，１％ＮＯＮＩＤＥＴ Ｐ−４０，０．１％ＳＤＳ，２００ｍＭ ＮａＣｌ １０ｍＭ Ｎ−エチルマレイミド（ＮＥＭ），１ｍＭフェニルメチルスルフォニルフルオリド（ｐｈｅｎｙｌｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｎｙｌｆｌｕｏｒｉｄｅ）（ＰＭＳＦ），１ｍＭジチオトレイトール，０．１％アポロティニン，０．５μｇ／ｍｌペプスタチンＡ，１μｇ／ｍｌリューペプチン）に溶かし氷上に３０分置いた。１４０００ｒｐｍ、３０ｍｉｎ、４℃で遠心した後、上清１μｌをＢｉｏ−Ｒａｄ ＤＣ ＰｒｏｔｅｉｎＡｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＢＩＯ−ＲＡＤ、Ｃａｔ．Ｎｏ．５００−０１１６）を用いたタンパク質濃度測定に用いて、総タンパク質量を算出した。培地中のインターロイキン−６タンパク質量をこの総タンパク質量で割った値をグラフ化した（図１０）。
その結果、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の発現抑制により、インターロイキン−６タンパク質の産生量がコントロールに比べ、６３．２％にまで減少した（図１０）。すなわちＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３はインターロイキン−６の産生に必須な因子であることが明らかになった。
（２）上記（１）で調整した細胞総抽出液４５μｌに１５μｌの４×ＳＤＳバッファーを加え、３７℃で１０分加熱した。１０μｇ相当の細胞抽出液を７．５％アクリルアミドゲルで泳動、分離し、ニトロセルロース膜（ＯＰＴＩＴＲＡＮ ＢＡ−Ｓ ８５ ＲＥＩＮＦＯＲＣＥＤ ＮＣ、Ｓｃｈｌｅｉｃｈｅｒ ＆ Ｓｃｈｕｅｌｌ、Ｃａｔ．Ｎｏ．１０ ４３９１９６）を用いてブロットした後、５％スキムミルクで３０分ブロッキングした。
一次抗体として１０００倍希釈した抗ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３ペプチド抗体で３０分インキュベートした。二次抗体には１００００倍希釈したＨＲＰ−結合抗−ウサギＩｇＧ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ＮＡ９３４Ｖ）を用いて３０分インキュベートした。検出はＥＣＬ ｐｌｕｓ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ＲＰＮ２１３２）を使用した。
検出後、再度ブロッキングし、一次抗体として１０００倍希釈した抗シノビオリン抗体と５０００倍希釈した抗α−チューブリン抗体（ＳＩＧＭＡ Ｃｌｏｎｅ Ｂ−５−１−２）を用いて３０分インキュベートした。二次抗体には１００００倍希釈したＨＲＰ−結合抗−マウスＩｇＧ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ＮＡ９３１Ｖ）を用いて３０分インキュベートした。検出はＥＣＬ ｐｌｕｓ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｃａｔ．Ｎｏ．ＲＰＮ２１３２）を使用した。
その結果、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３、およびシノビオリンの発現抑制により両タンパク質は発現が見られなくなった（図１１）。すなわち両タンパク質は相互に安定化しあっていることが判明した。

ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３の安定性とシノビオリンとの複合体形成による影響
ＨＥＫ２９３細胞にＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂとベクター、またはＦＬＡＧ−シノビオリンのプラスミドをトランスフェクションした。３６時間後にシクロヘキシミドを加えてチェイスアッセイを開始した。０、１、２、４、６時間後に細胞を回収し、総抽出液を調整した。ウェスタンブロットで各タンパク質を検出、定量した。
すなわち、２×１０^５個のＨＥＫ２９３細胞を６−ウェルプレートに播いた。２４時間後、以下の（ｇ）、（ｈ）の２種類の組み合わせのプラスミドをトランスフェクションした。
（ｇ）０．５μｇのＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ／ｐｃＤＮＡ３と０．２５μｇのｐｃＤＮＡ３−ベクター
（ｈ）０．５μｇのＳＰ−ＨＡ−ｈｓＨＲＤ３Ｂ／ｐｃＤＮＡ３と０．２５μｇのＦＬＡＧ−シノビオリン／ｐｃＤＮＡ３
トランスフェクション３６時間後、培地を新鮮なものに交換した。さらに２時間後、最終濃度が３０μｇ／ｍｌになるようにシクロヘキシミドを添加した。０、１、２、４、６時間後に細胞を回収し、５０μｌの抽出バッファーＩＩＩ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５，５ｍＭ ＥＤＴＡ，１％ＮＯＮＩＤＥＴ Ｐ−４０，０．１％ＳＤＳ，２００ｍＭ ＮａＣｌ １０ｍＭ Ｎ−エチルマレイミド（ＮＥＭ）、１ｍＭフェニルメチルスルフォニルフルオリド（ＰＭＳＦ），１ｍＭジチオトレイトール，０．１％アプロティニン，０．５μｇ／ｍｌペプスタチンＡ，１μｇ／ｍｌリューペプチン）に溶かし氷上に３０分置いた。１４０００ｒｐｍ、３０ｍｉｎ、４℃で遠心した後、上清１μｌをＢｉｏ−Ｒａｄ ＤＣ ＰｒｏｔｅｉｎＡｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＢＩＯ−ＲＡＤ、Ｃａｔ．Ｎｏ．５００−０１１６）を用いたタンパク質濃度測定に用いた。残り４５μｌに１５μｌの４×ＳＤＳバッファーを加え、３７℃で１０分加熱した。１０μｇ相当の細胞抽出液を７．５％アクリルアミドゲルで泳動、分離し、ニトロセルロース膜（ＯＰＴＩＴＲＡＮ ＢＡ−Ｓ ８５ ＲＥＩＮＦＯＲＣＥＤ ＮＣ、Ｓｃｈｌｅｉｃｈｅｒ ＆ Ｓｃｈｕｅｌｌ、Ｃａｔ．Ｎｏ．１０ ４３９１９６）を用いてブロットした後、５％スキムミルクで１晩ブロッキングした。一次抗体として１００００倍希釈した抗ＨＡ抗体（３Ｆ１０、Ｒｏｃｈｅ、Ｃａｔ．Ｎｏ．１８６７ ４３１）で３０分インキュベートし、１００００倍希釈したＨＲＰ−結合抗−ラットＩｇＧで３０分インキュベートした。検出はＥＣＬ ｐｌｕｓ Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｃａｔ．Ｎｏ．ＲＰＮ２１３２）を用いた。検出したバンドをＩｍａｇｅＪＳｏｆｔｗａｒｅで定量した。正確な測定のために０時間目のサンプルを２倍、４倍希釈したものを用いて標準曲線を作成し、それに基づいて両比を推定した。
その結果、ＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３はシノビオリンの非存在下では、半減期が４．３時間から１．８時間と半分以下に短くなった（図１２Ａ、Ｂ）。すなわちＳＥＬ１Ｌ／ｈｓＨＲＤ３はシノビオリンと複合体を形成できないと、細胞内で不安定化することが判明した。

本発明により滑膜細胞（滑膜組織を含む）の異常増殖やインターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む医薬組成物が提供される。この物質は、滑膜組織又は滑膜細胞の異常増殖を抑制することができるため、リウマチ、線維症、関節症、癌及び脳神経疾患から選ばれる少なくとも１つ疾患の診断用又は治療用医薬組成物として有用である。

配列番号４：ＤＮＡ／ＲＮＡ結合分子
配列番号５：ＤＮＡ／ＲＮＡ結合分子
配列番号６：ＤＮＡ／ＲＮＡ結合分子
配列番号７：ＤＮＡ／ＲＮＡ結合分子
配列番号８：ＤＮＡ／ＲＮＡ結合分子
配列番号９：ＤＮＡ／ＲＮＡ結合分子
配列番号１０：合成ＤＮＡ
配列番号１１：合成ＤＮＡ
配列番号１２：合成ＤＮＡ
配列番号１３：合成ＤＮＡ
配列番号１４：合成ＤＮＡ
配列番号１５：合成ＤＮＡ

Claims (20)

1. 滑膜細胞の増殖を抑制する物質を含む医薬組成物。
2. 滑膜細胞の増殖を抑制する物質が、シノビオリンの発現阻害物質である請求項１記載の医薬組成物。
3. シノビオリンの発現阻害物質が、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質である請求項２記載の医薬組成物。
4. ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質が、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子に対するｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡである請求項３記載の医薬組成物。
5. ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子が、以下の（ａ）又は（ｂ）のＤＮＡを含むものである請求項３又は４記載の医薬組成物。
   （ａ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ
   （ｂ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡと相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつｈｓＨＲＤ３活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
6. ｓｉＲＮＡが、配列番号１に示す塩基配列のうち一部の配列を標的とするものである請求項４記載の医薬組成物。
7. リウマチ、線維症、関節炎、癌及び脳神経疾患から選ばれる少なくとも１つの疾患を診断又は治療するための請求項１〜６のいずれか１項に記載の医薬組成物。
8. 滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞の増殖を抑制する方法。
9. 滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞、がん細胞、白血病又は悪性腫瘍のアポトーシスを誘起させる方法。
10. 滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞、肺の線維化又は肝硬変におけるコラーゲンの産生を抑制する方法。
11. 滑膜細胞のｈｓＨＲＤ３の発現を抑制することを特徴とする、滑膜細胞、がん細胞、白血病細胞、骨肉種細胞、悪性腫瘍細胞、免疫系細胞及び破骨細胞からなる群から選ばれる少なくとも一種の細胞からインターロイキン−６の産生を抑制する方法。
12. ｈｓＨＲＤ３の発現の抑制が、ｈｓＨＲＤ３とシノビオリンとの結合阻害によるものである、請求項８〜１１のいずれか１項に記載の方法。
13. インターロイキン−６の産生を抑制する物質を含む医薬組成物。
14. インターロイキン−６の産生を抑制する物質がシノビオリンの発現阻害物質である請求項１３記載の医薬組成物。
15. シノビオリンの発現阻害物質が、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質である請求項１４記載の医薬組成物。
16. ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子の発現を抑制する物質が、ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子に対するｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡである請求項１５記載の医薬組成物。
17. ｈｓＨＲＤ３をコードする遺伝子が、以下の（ａ）又は（ｂ）のＤＮＡを含むものである請求項１５又は１６記載の医薬組成物。
    （ａ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ
    （ｂ）配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡと相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつｈｓＨＲＤ３活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ
18. ｓｉＲＮＡが、配列番号１に示す塩基配列のうち一部の配列を標的とするものである請求項１６記載の医薬組成物。
19. リウマチ、多発骨髄腫、キャッスルマン病、クローン病、全身型若年性特発性関節炎、全身性エリテマトーデス及び骨粗しょう症からなる群から選ばれる少なくとも１つの疾患を診断又は治療するための請求項１３〜１８のいずれか１項に記載の医薬組成物。
20. 炎症反応を抑制することができる、請求項１３〜１８のいずれか１項に記載の医薬組成物。

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